CN1166952C - 一种检测鲤科鱼类卵黄蛋白原试剂盒的制备方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种检测鲤科鱼类卵黄蛋白原试剂盒的制备方法，首先是卵黄蛋白原的诱导和分离纯化，配制乙炔基雌二醇溶液，腹腔注射入鱼体，诱导一段时间，取鱼血，离心获得血清，用离子交换柱分离纯化，透析脱盐，制备冻干粉；其次是卵黄蛋白原多克隆抗体的制备，称取冻干粉，溶于双蒸水中，加入弗氏佐剂乳化，免疫大白兔，制备多克隆抗体。本发明可灵敏、准确、方便的定量检测多种鲤科鱼类血液中、肝组织及鱼体中的卵黄蛋白原。
Description
技术领域
本发明涉及类雌激素的生态安全及风险性评价研究，特别是涉及一种基于酶联免疫吸附原理定量检测鲤科鱼类血液中、肝组织以及鱼体中卵黄蛋白原(Vitellogenin，VTG)含量的试剂盒的制备方法。
背景技术
当前，人类使用了大量的杀虫剂及除草剂来提高农业产量，许多化工产品的应用也显著改善了人们的生活水平。但大量使用这些人工化学品给我们的环境及人类健康本身也造成了极大的危害。近年来越来越多的研究表明，多种野生动物生殖力衰退，野生群落退化，人类精子数量和质量降低、乳腺癌和睾丸癌等发病率上升。这些现象的发生均与环境中某些具有激素活性的污染物的存在有着密切关系。他们能够模拟或干扰内源性激素的作用，对人类和野生动物的发育，生殖和健康产生各种负面影响。这类化合物一般被统称为内分泌干扰物，即那些可干扰维持体内内分泌平衡，调节生长发育的内源激素的产生、分泌、运输、代谢及作用的外源化合物。它们可干扰生物体内分泌系统的功能，从而影响生物体的生长、发育和繁殖。所以目前迫切需要建立能够筛选和鉴定环境中已经大量存在的以及人们不断新合成的物质是否具有内分泌干扰效应的方法，并借助这些方法对其生态安全性进行正确的评价。
卵黄蛋白原是具有种特异性的高分子量磷脂蛋白。卵黄生成期间的雌鱼分泌雌激素，诱导肝细胞生成卵黄蛋白原，卵黄蛋白原通过血液循环系统，运输到卵巢，在经过修饰后，成为鱼卵生长发育的营养物质一卵黄蛋白。雌鱼在卵黄生成期可生成大量卵黄蛋白原，但在雌鱼的其它生活期间，鱼体内的卵黄蛋白原的含量却很低。雄鱼和幼鱼在大剂量的人工雌激素作用下，以及在低剂量的类雌激素长期作用下，都能诱导体内卵黄蛋白原的生成。另外，某些内分泌干扰物具有抗雌激素的作用，其干扰雌鱼体内卵黄蛋白原的生成，使雌鱼血液中卵黄蛋白原的含量比正常时低。因而雄鱼和幼鱼及非卵黄生成期的雌鱼体内卵黄蛋白原生成水平的变化可作为环境中类雌激素污染存在的生物标志物。
目前国外也建立了几种硬骨鱼类卵黄蛋白原的酶联免疫吸附检测试剂盒和放射性免疫检测试剂盒，但试剂盒所能检测的鱼类在中国的分布很少或没有，不具有代表性，而且试剂盒的价格极其昂贵，难以推广。
发明内容
本发明的目的在于提供一种检测鲤科鱼类卵黄蛋白原试剂盒的制备方法，采用该方法制备的试剂盒，可灵敏、准确、方便的定量检测多种鲤科鱼类血液中、肝组织以及鱼体中的卵黄蛋白原。
为了达到上述目的，本发明采用以下技术方案：本发明基于间接酶联免疫吸附检测原理，即检测样品非特异吸附在酶标板上，封闭多余的结合位点，加入适量的抗体与之结合，除去多余的抗体后，再加入过量的酶标记抗抗体与之结合一段时间，除去多余酶标记抗抗体后，最后加入底物开始酶促反应，并测定溶液的吸收强度，而吸收强度与检测样品中卵黄蛋白原的含量呈正相关。同时用标准蛋白溶液同步对比操作拟合标准曲线，检测样品可根据其吸收强度在标准曲线上计算出卵黄蛋白原的相应浓度。
本发明与现有技术相比，具有以下优点和效果：检测试剂盒利用抗原抗体之间的特异结合能力，可灵敏、准确、方便的检测多种鲤科鱼类卵黄蛋白原，其最低检测限为10ng/ml，线性工作范围为25ng/ml-150ng/ml，为类雌激素的筛选、鉴定和风险性评价提供了一个有效的研究手段。
具体实施方式
其步骤如下：
(1)卵黄蛋白原标准样品的诱导和分离纯化
配制17α-乙炔基雌二醇(17α-ethinylestradiol，EE2)溶液：将100mg17α-乙炔基雌二醇先溶于5mL丙酮，再转溶于10mL豆油中，丙酮用氮气吹干。腹腔注射入鱼体，剂量为5mg/kg，暴露5-7天后，取鱼血，4℃离心获得血清。血清通过离子交换层析柱，填料为DEAE Sepharose CL-6B。层析柱先用0.025mol/LTris-HCl(pH 7.5)缓冲液平衡，加入2mL血清样品，用含NaCl的Tris-HCl(pH7.5)缓冲液进行梯度洗脱，采用部分收集器收集洗脱液，并以电泳确定各管中是否含有卵黄蛋白原。收集含卵黄蛋白原蛋白的溶液，经透析脱盐后，冷冻干燥为冻干粉。
(2)卵黄蛋白原多克隆抗体的制备
称取1mg卵黄蛋白原的蛋白冻干粉，溶于1mL双蒸水中，加入1mL弗氏完全佐剂，乳化后，在新西兰大白兔背部皮内多点注射，进行初次免疫。第28、42、56天各加强免疫一次：免疫剂量同第一次，但采用弗氏不完全佐剂乳化抗原溶液，并在新西兰大白兔背部皮下多点注射，加强免疫。65天后，从兔耳缘静脉抽取少量血液测量抗体的滴度，如果抗体的效价较低，可多加强免疫一次。如抗体的效价高，则从兔颈动脉放血，制备卵黄蛋白原的抗血清。
(3)本发明所制备的试剂盒的具体操作步骤如下：
1.在96孔酶标板每孔中加入100ul用标准样品稀释液稀释了的样品、标准品、阴性标准品或试剂空白样品。
2. 4℃冰箱中，包被过夜(16-24小时)。
3.弃去酶标板中的液体，每孔加入360ul封闭液，置于4℃冰箱中，封闭过夜(16-24小时)。
4.弃去酶标板中的封闭液，每孔加入300ul的洗涤液，轻微振荡1分钟后，弃去洗涤液，重复3次。
5.每孔加入100ul用稀释液稀释的卵黄蛋白原多克隆抗体，室温孵育1小时。
6.弃去酶标板中的卵黄蛋白原多克隆抗体，如步骤4洗板4次。
7.每孔加入100ul用稀释液稀释的酶标记羊抗兔IgG抗体，室温孵育1小时。
8.弃去酶标板中的酶标记羊抗兔IgG抗体，同步骤4洗板4次。
9.每孔加入100ul显色底物，室温暗处反应10至30分钟，待标准品呈现明显的黄色后，加入50ul反应终止液，终止反应。
10.用酶标仪在490nm处检测样品的吸光度。
11.根据样品的吸收强度在标准曲线上算出其相应浓度。
本发明所设计的鲤科鱼类卵黄蛋白原定量检测试剂盒组成如下：
A、空白96孔高吸附酶标板(1块)
B、标准品：1支(5ug左右的卵黄蛋白原冻干粉)，使用前用标准品稀释液稀释到所需浓度
C、阴性对照标准品：1支(0.2ml/支)，为不含卵黄蛋白原的鲤鱼血清
D、卵黄蛋白原多克隆抗体(50ul)，使用前用稀释液稀释1000倍
E、酶标记羊抗兔IgG抗体(50ul)，使用前用稀释液稀释1000倍
F、显色液(A)和标准品稀释液(B)、稀释液(C)、洗涤缓冲液(D)各一支
G、终止液(0.5mol/L H2SO4)8ml
注：标准品稀释液：0.1mol/L碳酸盐缓冲液，pH 9.5
稀释液：PBS缓冲液，pH7.4
洗涤缓冲液：含0.05％Tween 20的稀释液
封闭液：含1％牛血清白蛋白的稀释液
显色液：邻苯二胺(OPD)溶液
Claims (1)
1、一种检测鲤科鱼类卵黄蛋白原试剂盒的制备方法，包括下列步骤：
A、卵黄蛋白原标准样品的诱导和分离纯化：
①配制17α-乙炔基雌二醇溶液，将100mg 17α-乙炔基雌二醇先溶于5mL丙酮，再转溶于10mL豆油中，丙酮用氮气吹干；
②腹腔注射入鱼体，剂量为5mg/kg，暴露5-7天，取鱼血，4℃离心获得血清；
③血清通过离子交换层析柱，填料为二乙基氨基乙基交联琼脂糖CL-6B，层析柱用0.025mol/L Tris-HCl，pH7.5缓冲液平衡，加入2mL血清样品，用含NaCL的0.025mol/L Tris-HCl，pH7.5缓冲液进行梯度洗脱；
④收集含卵黄蛋白原蛋白的洗脱液，透析脱盐后，冷冻干燥为冻干粉；
B、卵黄蛋白原多克隆抗体的制备：
①称取1mg卵黄蛋白原的蛋白冻干粉，溶于1mL双蒸水中，加入1mL弗氏完全佐剂，乳化后，在大白兔背部皮内注射，进行初次免疫；
②第28、42、56天各加强免疫一次，免疫剂量同第一次，采用弗氏不完全佐剂乳化抗原溶液，并在大白兔背部皮下注射，加强免疫；
③65天后，从兔耳缘静脉抽取少量血液测量抗体的滴度；
④从兔颈动脉放血，制备卵黄蛋白原的抗血清。
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