CN116574735A - 一种多核苷酸及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了一种多核苷酸及其应用,属于基因工程技术领域。所述的多核苷酸的序列为SEQ ID NO.1。所述的多核苷酸可应用于构建蛋白表达载体,通过本发明的多核苷酸构建的载体的蛋白表达量提升,稳定性增加,利于细胞电转染;转染细胞株所产生的蛋白质量优于其他载体,有很好的实际应用前景。

Description

一种多核苷酸及其应用
技术领域
本发明属于基因工程技术领域,具体涉及一种多核苷酸及其应用。
背景技术
近年来,蛋白质药物被应用于不同疾病的治疗,其中单克隆抗体(mAbs)是发展最快的一类。目前生物药领域主要使用的哺乳类宿主细胞包含CHO、NSO、SP2/0、HEK等,而在整个单株抗体则以CHO为主要宿主细胞。CHO细胞是生产这些蛋白质药物应用最广泛的细胞株,表达载体影响目标蛋白的表达量、表达稳定性与纯化后蛋白质量。
CHO细胞至少包括如下优点:(1)适合悬浮培养,符合工业大规模生产的需求;(2)糖型修饰与人相似,贴近天然mAbs的结构和功能;(3)外源基因可以稳定地整合到CHO细胞中达到高表达量;(4)非人源细胞,故人源病毒不能感染和扩增;(5)分泌低量的内源蛋白,有利于目的蛋白的分离纯化;(6)研究与药物开发应用历史完整,故目前的新药开发仍以CHO细胞为主要平台。
近几年的细胞株开发平台的发展过程中,CHO细胞也不断地被挑选与改造而衍生出多个细胞系,如DG44、DXB11、CHO-S、CHO-K1与CHOZN等。这些细胞系是经由人工挑选优化、突变筛选或基因工程的方式建立并用于不同的药物发展与平台应用。随着基因改造技术的进步与发现(如:Zinc finger、TALENT与CRISPR),根据应用需求可以为自有的野生型CHO细胞株进行各项改造已达到产量、提高稳定性或质量的升级。
宿主细胞主要提供蛋白质药物表达的部分平台,相应的表达株载体可进一步体现出其生产能力。故挑选适当且符合宿主细胞的载体细胞株构建十分重要。
现有的表达载体的构建策略包括如下步骤:启动子的挑选(猿猴空泡病毒40(SV40)、延伸因子-1α(EF-1α)和巨细胞病毒(CMV)等);筛选基因的选择(谷氨酰胺合成酶基因(glutaminesynthetase, GS)、L-氨基亚砜蛋氨酸(Methionine Sulphoximine,MSX)、二氢叶酸还原酶(dhfr)(MTX)和抗嘌呤霉素(Puromycin)基因等);表基因调控元件的使用(UCOE和MAR等);载体元件的排列(单顺反子载体、多启动子表达载体、IRES(内部核糖体进入位点)或Furin-2A(弗林蛋白酶-2A多肽)元件介导的三顺反子载体)。将上述启动子、终结子与筛选基因进行基础排列便形成原型载体。
除了以上数种必要元件,添加如UCOE和MAR的特殊基因组开放区于表达载体也是可应用的方向。基因组开放区具有如下特点:来源于真核生物,相关基因具稳定高表达的特性与基因组区间含大量的表基因修饰。这样的特点可有效率的构建符合蛋白质药物工业生产用细胞株,同时缩短蛋白质药物临床前研究的时间。将基因组开放区置入原型载体中便形成具高表达与稳定性的哺乳类细胞表达载体。
以下简单介绍几种较为常用的载体:
(1)ThermoFisher
pcDNA 系列载体:主要架构为启动子、终结子与筛选基因基本串联。试用多数哺乳类细胞表达,但稳定性较差。
pCHO-1.0:主要架构为启动子、终结子与筛选基因基本串联。该载体的特点是使用优化的启动子(重组)使其便于CHO细胞抗体药物的表达。
(2)Lonzo GS® Vectors system:主要架构为启动子、终结子与筛选基因。该筛选系统以GS筛选为主要筛选标记,载体进一步添加transposon等元件使细胞株开发效率提升。
(3)Merck UCOE® Expression Technology(Novagen):主要架构为启动子、终结子与筛选基因。载体进一步添加UCOE元件并挑选不同的启动子进行搭配。用于提高表达量与提升稳定性,进而使细胞株开发效率提升。
如上所述,“表基因调控元件的使用(UCOE和MAR等)”目前为普遍使用的相似元件。该元件置于载体启动子前端进而增强目标基因表达与表达稳定性,目前主要应用范围是哺乳类动物细胞稳定细胞株构建。但是,传统载体用于稳定细胞株构建的过程需花费较高的人力、物力才能挑选高表达的细胞株;且传统载体构建的细胞株稳定性不佳。此外,构建稳定细胞株的最终目的为产生高质量蛋白,而传统载体构建的细胞株后期纯化的蛋白质量不佳。
遍在染色质开放元件(UCOE)是具有组织非特异性显性染色质重塑功能的DNA结构域,能使DNA不依赖于染色体插入位点,处于转录活性“开放”状态,自UCOE发现以来,已经得到广泛应用,研究证实在表达载体的启动子之前插入UCOE可以显著提高转基因转录的水平和稳定性,并且有效的保护启动子免受表观遗传沉默。但完整的UCOE序列分子量过大,不利于后期宿主细胞的电转染。
发明内容
本发明截取UCOE其中一段进行改造,使其保留原本的作用外更便于细胞电转染,此外在实验过程中还发现该载体转染的细胞株产生的蛋白质量优于其他载体。
一方面,本发明提供了一种多核苷酸。
所述的多核苷酸的序列为SEQ ID NO.1。
本发明还提供了前述的多核苷酸在构建表达载体中的应用。
一般地,所述的表达载体用于表达蛋白。
另一方面,本发明提供了包括前述的多核苷酸的表达载体。
所述的表达载体在插入目的序列前先插入前述的多核苷酸序列。
所述的表达载体上还可以包括CMV启动子。所述的CMV启动子为SEQ ID NO.3。
所述的表达载体上还包括开放性阅读框。
所述的表达载体可以用于表达HER2蛋白。
优选地,所述的表达载体可以是pEm载体。
优选地,所述的多核苷酸插入pEm的位置为ClaI /BsrGI。
优选地,所述的表达载体为如图1所示的质粒。
再一方面,本发明提供了前述的表达载体在制备基因工程细胞中的应用。
所述的表达载体在插入目的蛋白的表达序列后通过转染完成基因工程细胞的制备。
本发明同时提供了包括前述的表达载体的基因工程细胞。
所述的基因工程细胞可以是CHO细胞、NS0细胞、SP2/0细胞或HEK细胞。
优选地,所述的基因工程细胞为CHO细胞。
优选地,所述的基因工程细胞用于表达蛋白。
又一方面,本发明提供了一种表达载体的构建方法。
所述的表达载体的构建方法中包括在载体中插入前述的多核苷酸。
又一方面,本发明提供了一种基因工程细胞的构建方法。
所述的基因工程细胞的构建方法中包括前述的表达载体的构建方法。
所述的基因工程细胞的构建方法中还包括在表达载体上插入目的蛋白的基因序列。
所述的表达载体通过转染完成基因工程细胞的构建。
又一方面,本发明提供了一种利用基因工程表达蛋白的方法。
所述的方法中包括前述的基因工程细胞的构建方法。
本发明同时提供了前述的多核苷酸通过基因工程在表达蛋白中的应用。
所述的多核苷酸用于构建蛋白表达载体,转染细胞后进行表达以获得目的蛋白。
本发明的有益效果:
1、通过本发明的多核苷酸构建的载体蛋白表达量提升,稳定性增加,利于细胞电转染。
2、本发明构建的载体转染的细胞株所产生的蛋白质量优于其他载体。
附图说明
图1为无元件引入的载体pEm。
图2为引入SEQ ID NO.1的载体pEm-SEQ ID NO.1。
图3为引入SEQ ID NO.2的载体pEm-SEQ ID NO.2。
图4为不同载体的小库筛选效率对比。
具体实施方式
下面结合具体实施例,对本发明作进一步详细的阐述,下述实施例不用于限制本发明,仅用于说明本发明。以下实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,实施例中未注明具体条件的实验方法,通常按照常规条件,下述实施例中所使用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
实施例1表达载体的构建
合成DNA序列搭配pEm载体系统,经由载体构建的一系列过程,最终构建一个表达载体。具体包括如下步骤:
1、pEm载体系统具备启动子(CMV)加下游开放阅读框系统,其构建方式为:NCBI公开数据库获得启动子序列(SEQ ID NO.3)及开放阅读框序列,基因合成并添加相关酶切位点(HindIII、EcoRI、NotI、SalI)用于启动子和开放阅读框酶切酶连及启动子加开放阅读框与载体的酶切酶连。质粒图谱见图1。
2、SEQ ID NO.1人工合成。
3、pEm-SEQ ID NO.1载体的构建
分别对pEm载体启动子上游和SEQ ID NO.1进行酶切:
pEm空载双酶切体系(30µL)包含:pEm空载 2µg(5µL)、ClaI (品牌:ThermoScientific™,货号:ER0141)1µL、BsrGI(品牌:Thermo Scientific™,货号:ER0932) 1µL、10×buffer(品牌:Thermo Scientific™,购买限制性内切酶附送)3µL、ddH2O 20µL。37℃酶切1h。
SEQ ID NO.1双酶切体系(30µL)包含:SEQ ID NO.1 0.9µg(14µL)、ClaI 1µL、BsrGI 1µL、10×buffer 3µL、ddH2O 11µL。37℃酶切1h。
胶回收获得两个线性的黏性末端片段,目的片段大小分别为10.3Kbp和4.1Kbp。
使用连接酶对载体和片段进行连接,具体条件如下:
SEQ ID NO.1酶切产物与pEm空载酶切产物按摩尔比5:1进行连接。酶连接体系(20µL)包含:ddH2O 3µL、T4 DNA连接酶(品牌:Thermo Scientific™,货号:EL0014)10µL、SEQID NO.1酶切产物2µL、pEm空载酶切产物5µL。酶连条件:反应体系在16℃条件下反应1h。
以上连接产物进行转化(DH5α),过夜培养后观察菌落形态,选择形状均匀一致的6个单菌落进行单克隆PCR验证。在验证其真实性后,挑选需要的单菌落进行扩繁,并小量抽提质粒。最终获得pEm-SEQ ID NO.1载体,质粒图谱见图2。
4、SEQ ID NO.2人工合成。
5、pEm-SEQ ID NO.2载体构建
分别对pEm载体启动子上游和SEQ ID NO.2进行双酶切。
pEm载体双酶切体系(30µL)包含:pEm载体 2µg(5µL)、ClaI 1µL、BsrGI 1µL、10×buffer 3µL、ddH2O 20µL。37℃酶切1h。
SEQ ID NO.2双酶切体系(30µL)包含:SEQ ID NO.2 0.9µg(14µL)、ClaI 1µL、BsrGI 1µL、10×buffer 3µL、ddH2O 11µL。37℃酶切1h。
胶回收获得两个线性的黏性末端片段,目的片段大小分别为10.3Kbp和1.3Kbp。
使用连接酶对SEQ ID NO.2酶切产物与pEm载体酶切产物 按摩尔比5:1进行连接。酶连接体系(20µL)包含:ddH2O 3µL、T4 DNA 连接酶10µL、SEQ ID NO.2酶切产物 2µL、pEm载体酶切产物 5µL。酶连条件:反应体系在16℃条件下反应1h。
以上连接产物进行转化(DH5α),过夜培养后观察菌落形态,选择形状均匀一致的6个单菌落进行单克隆PCR验证。在验证其真实性后,挑选需要的单菌落进行扩繁,并小量抽提质粒。最终获得pEm-SEQ ID NO.2载体。
6、单克隆抗体表达载体pEm-GOI(mAb)的构建
以测试蛋白为HER2(mAb-HC、mAb-LC)举例,具体构建过程如下:
6.1、通过基因合成方法准备GOI(mAb),即GOI(mAb-HC)和GOI(mAb-LC)
6.1.1 GOI(mAb-HC)的5'端设计切位为HindIII,3'端设计切位为EcoRI。
6.1.2 GOI(mAb -LC)的5'端设计切位为NotI,3'端设计切位为SalI。
6.1.3 GOI(mAb)设计应删除以下限制酶切位:HindIII、EcoRI、ApaLI、ApaI、BamHI、SalI、ScaI、NruI、SmaI、NotI、BglII、XhoI、XbaI、PvuI、BsrGI、ClaI。
6.2、建构GOI(mAb-HC)(SEQ ID NO.4)于pEm载体
6.2.1利用HindIII / EcoRI限制酶分别对pEm与GOI(mAb-HC)进行酶切,pEm载体和GOI(mAb-HC)双酶切体系(30µL)包含:pEm载体和GOI(mAb-HC)分别 2µg(5µL)、HindIII 1µL、EcoRI 1µL、10×buffer 3µL、ddH2O 20µL。37℃酶切1h。经琼脂糖凝胶电泳验证片段大小正确后,选择所需的片段条带进行胶回收。pEm回收片段大小10645bp,GOI(mAb-HC)回收片段大小1428bp。
6.2.2连接以上载体pEm与GOI(mAb-HC)的回收片段以构建pEm-GOI(mAb-HC)。使用连接酶对GOI(mAb-HC)酶切产物与pEm载体酶切产物按摩尔比5:1进行连接。酶连接体系(20µL)包含:DNA连接酶 10µL、GOI(mAb-HC)酶切产物3.5µL、pEm载体酶切产物 5.5µL。酶连条件:反应体系在16℃条件下反应1h。
6.2.3以上连接产物进行转化(DH5α),过夜培养后观察菌落形态,选择形状均匀一致的6个单菌落进行单克隆PCR验证。在验证其真实性后,挑选需要的单菌落进行扩繁,并小量抽提质粒。最终获得pEm-GOI(mAb-HC)。
6.3、建构GOI(mAb-LC)(SEQ ID NO.5)于pEm-GOI(mAb-HC)质粒
6.3.1再利用NotI/SalI限制酶分别对pEm-GOI(mAb-HC)与GOI(mAb- LC)进行酶切,pEm-GOI(mAb-HC)和GOI(mAb-LC)双酶切体系(30µL)包含:pEm-GOI(mAb-HC)和GOI(mAb-LC)分别2µg(5µL)、NotI 1µL、SalI 1µL、10×buffer 3µL、ddH2O 20µL。37℃酶切1h。经琼脂糖凝胶电泳验证片段大小正确后,选择所需的片段条带进行胶回收。pEm-GOI(mAb-HC)回收片段大小12030bp,GOI(mAb-LC)回收片段大小731bp。
6.3.2连接载体pEm-GOI(mAb-HC)与GOI(mAb-LC)以构建pEm-GOI(mAb)。使用连接酶对GOI(mAb-LC)酶切产物与pEm-GOI(mAb-HC)酶切产物 按Pmol=5:1进行连接。酶连接体系(20µL)包含:DNA连接酶 12.5µL、GOI(mAb-LC)酶切产物 6µL、 pEm-GOI(mAb-HC)载体酶切产物 6.5µL。酶连条件:反应体系在16℃条件下反应1h。
6.4、转化及Clone PCR验证pEm-GOI(mAb)质粒的真实性
于6.3.2步结束后的连接产物进行转化(DH5α),观察菌落形态,选择形状均匀一致的6个单菌落进行单克隆PCR验证。在验证其真实性后,挑选需要的两个单菌落进行扩繁,并抽提质粒pEm-GOI(mAb),琼脂糖凝胶电泳及Nanodrop 2000确定质粒浓度和质量。
6.5、目的基因测序
构建完成的pEm-GOI(mAb)表达载体测序验证插入目的DNA序列正确性。
6.6、稳定细胞系的建立,pEm-GOI(mAb)表达载体可以通过PvuI线性化
构建完成的pEm -GOI(mAb)表达载体通过PvuI酶切制备线性化质粒后,用无水乙醇进行沉降,回收的质粒进行浓度和质量检测。质粒回收浓度在1μg/μL左右,紫外光260/280比值在1.80-2.0左右,260/230比值在2左右,结果符合细胞转染的要求。
7、单克隆抗体表达载体pEm-SEQ ID NO.1-GOI(mAb)的构建
单克隆抗体表达载体pEm-SEQ ID NO.1-GOI(mAb)的构建方法与步骤6中pEm- GOI(mAb)相似,将步骤6中载体pEm更换为pEm-SEQ ID NO.1载体即可。
8、单克隆抗体表达载体pEm-SEQ ID NO.2-GOI(mAb)的构建
单克隆抗体表达载体pEm-SEQ ID NO.2-GOI(mAb)的构建方法与步骤6中pEm- GOI(mAb)相似,将步骤6中载体pEm更换为pEm-SEQ ID NO.2载体即可。
9、最终获取三个符合细胞转染要求的线性化质粒,即pEm-GOI(mAb)、pEm-SEQ IDNO.1-GOI(mAb)和pEm-SEQ ID NO.2-GOI(mAb)。
实施例2宿主细胞的培养
宿主细胞:CHO-K1(ATCC #CCL61),已驯化至EmCD CHO基础培养基(品牌:Eminence,货号:L10400.1000)中。
培养基:EmCD CHO 基础培养基+1%m/V HT(品牌:Gibco,货号:0010057DG,成分:10mM次黄嘌呤+1.6mM胸苷)+0.5%m/V抗结团剂(品牌:Gibco,货号:0010057DG)+6mM 谷氨酰胺。
培养条件:37℃,5%CO2,120 RPM(轴距为50mm)。
容器:125mL及250mL摇瓶。
电转染及稳定细胞株筛选:细胞转染应在宿主细胞CHO-K1复苏1.5周至3周内进行,宿主细胞活率在90%以上。传代过程中细胞密度控制在4×106cells/mL以下。在转染前48小时活化细胞,按照8×105-10×105cells/mL接种密度传代至带档板摇瓶中。转染前24小时,再次按照8×105-10×105cells/mL接种细胞使其转染当天应保证细胞密度控制在1.5×106-2.0×106cells/mL,细胞活率应大于95%,电转染参数如下表1:
表1
制备小库并加压筛选稳定细胞株
小库:细胞经转染后按一定密度进行96孔板铺板,孔内细胞群称为小库。
1、细胞转染48h后,取样进行细胞计数,用Octet检测上清蛋白表达量。
2、挑选高表达量实验组,将相同载体的细胞混合采用筛选培养基(EmCD CHO 基础培养基+1%HT(次黄嘌呤+胸苷)+0.5%抗结团剂+30μM L-甲硫氨酸亚砜亚胺+10 μg/mL 嘌呤霉素)进行96孔板铺板,分别按铺板密度10000 cells/ 200 μL/孔或15000 cells/ 200 μL/孔两个条件进行96孔板铺板,制备小库并加压筛选。培养条件:37℃,5%CO2,静置培养。
3、96孔板经培养2-3周后,显微镜下观察小库细胞生长情况。
待小库细胞汇合度≥50%后,用Octet检测上清中HER2蛋白(重链SEQ ID NO.6,轻链SEQ ID NO.7)表达量,保留表达量相对较高的小库依次扩大至24孔板、6孔板、50mL摇管和125mL摇瓶培养。每阶段均用Octet检测上清中蛋白表达量,每个载体96孔板阶段分别检测约80-150个左右小库,全部扩大至24孔板培养。待24孔板小库细胞汇合度>80%后,根据表达量保留约1/3 小库扩大至6孔板培养。待6孔板小库细胞汇合度>80%后,根据表达量保留约1/2 小库扩大至50mL摇管培养。50mL摇管培养3-4天后,保留8个左右表达量和活细胞数较优的小库扩大至125mL摇瓶培养。
96孔板、24孔板和6孔板培养条件:37℃,5%CO2,静置培养。50mL摇管培养条件:37℃,5%CO2,180RPM(轴距50mm)。125mL摇瓶培养条件:37℃,5%CO2,120RPM(轴距50mm)。
最终筛选出的稳定细胞株进行流加培养评估见表2:
表2
其中,补料118A/B指补料A培养基和补料B培养基的混合物,补料A培养基为EmCDCHO118补料A培养基(品牌:Eminence,货号:P11810.0001),补料B培养基为EmCD CHO118补料B培养基(品牌:Eminence,货号:P11811.0001)。
流加培养后细胞上清采用OCTET(生物分子相互作用仪)检测表达量,检测结果见表3。
表3 小库细胞用于流加培养的表达数据
对于流加培养后的细胞上清进行蛋白纯化,纯化步骤如下:
(1)装柱:将Protein A填料(GE Mabselect SuRea LX 1mL)混匀,加到重力柱中,至柱高30mm,此时柱体积约有1mL。将重力柱固定,打开重力柱下端的堵头,使得保存液缓慢流出。
(2)再生:直至保存液快至柱面时,缓缓加入再生液(50mM氢氧化钠/1M氯化钠溶液)总共20mL至柱中,每次等到液面接近填料表面时加入10mL再生液,共计2次。注意每次加入时力度不要过大以免冲击柱面。时刻保持柱面上方有再生液。
(3)预平衡:直至再生液快至柱面时,缓缓加入平衡液(20mM磷酸缓冲溶液/150mM氯化钠;pH =7.0),总共20mL至柱中,每次等到液面下降至填料表面时加入10mL平衡液,共计2次。注意每次加入时力度不要过大以免冲击柱面。时刻保持柱面上方有平衡液。
(4)孵育:预平衡完毕后,用堵头堵住出液孔,再加入0.5mL平衡液,用移液器小心重悬填料,等填料上层平整后,缓慢加入待纯化上清(上样量不超过40mg蛋白/mL柱体积),室温下孵育30min。
(5)清洗柱子:孵育结束后,打开堵头,上清溶液在重力作用下,缓慢滴落(为提高回收率,可重复(4)操作1-2次)至收集容器中,用20mL平衡液清洗柱子,操作方式同(3)。
(6)洗脱待最后一次平衡液流干后,慢慢加入洗脱液(0.1M柠檬酸缓冲溶液;pH=3.5),分次加入,收集洗脱液。
(7)中和:调节洗脱液与中和液(1M三氨基甲烷(Tris))的比例,向样品洗脱液加入中和液,使终点pH控制在5.5±0.2范围内。
(8)过滤:将上一步骤溶液用0.22μm针式过滤器过滤。
(9)检测:用分光光度计检测过滤后溶液,记录浓度和纯化日期。
(10)再次清洗柱子:用20mL平衡液清洗柱子,操作方式同(3)。
(11)再次再生柱子:用20mL再生液清洗柱子,操作方式同(2)。
(12)保存:用5mL保存液清洗柱子,操作方式同(2),最后一次加5mL保存液(20%乙醇/150mM氯化钠溶液)将堵头堵上,盖上柱盖。重力柱保存在4℃重复使用。
纯化后样品进行-40℃保存。
质量分析
纯化后蛋白进行质量分析(包括带电性CEX及糖型N-Glycan)。
CEX检测:
利用HPLC(高效液相色谱)搭配弱阳离子色谱柱,取纯化后HER2蛋白,经梯度洗脱达到电荷异构体分离。检测结果见表4。
表4 小库细胞用于流加培养的目标蛋白质量数据:带电性
糖型N-Glycan检测:
将HER2蛋白用肽糖苷F酶对糖蛋白上的N-聚糖进行释放,并用2-AB等荧光试剂标记聚糖还原末端,衍生化后的聚糖在UPLC(超高效液相色谱)中产生荧光检测信号。其检测结果见表5。
表5 小库细胞用于流加培养的目标蛋白质量数据:糖型
图4结果显示SEQ ID NO.1引入的载体可提高小库筛选效率及表达的中位数,提高效率不仅大幅优于pEm载体,且优于引入SEQ ID NO.2的载体。经过挑选的最佳小库细胞于流加培养表达可达4.68 g/L(表1),与pEm及pEm- SEQ ID NO.2相比较,蛋白表达量显著提高。
将表达的蛋白质量进行质量分析(CEX及N-Glycan),SEQ ID NO.1引入的载体的蛋白质量结果完全符合现行抗体药物的范围(带电性:主峰55-60%;糖型:Man 3-5%),而其他两组数据均不符合要求。

Claims (14)

1.一种多核苷酸,其特征在于,序列为SEQ ID NO.1。
2.权利要求1所述的多核苷酸在构建表达载体中的应用。
3.包括权利要求1所述的多核苷酸的表达载体。
4.根据权利要求3所述的表达载体,其特征在于,还包括CMV启动子。
5.根据权利要求4所述的表达载体,其特征在于,还包括开放性阅读框。
6.根据权利要求5所述的表达载体,其特征在于,所述的表达载体为pEm载体。
7.根据权利要求6所述的表达载体,其特征在于,所述的多核苷酸插入pEm的位置为ClaI /BsrGI。
8.权利要求3-7任一项所述的表达载体在制备基因工程细胞中的应用。
9.包括权利要求3-7任一项所述的表达载体的基因工程细胞。
10.根据权利要求9所述的基因工程细胞,其特征在于,用于表达蛋白。
11.一种表达载体的构建方法,其特征在于,包括在载体中插入权利要求1所述的多核苷酸。
12.一种基因工程细胞的构建方法,其特征在于,包括权利要求11所述的表达载体的构建方法。
13.根据权利要求12所述的构建方法,其特征在于,还包括在表达载体上插入目的蛋白的基因序列。
14.一种利用基因工程表达蛋白的方法,其特征在于,包括权利要求12-13任一项所述的基因工程细胞的构建方法。
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