CN115678998A - 一种检测肺腺癌EGFR突变的miRNA标志物、试剂盒及方法 - Google Patents

一种检测肺腺癌EGFR突变的miRNA标志物、试剂盒及方法 Download PDF

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梁嘉琪
卞赟艺
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张欢
隋启海
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Abstract

本发明公开了一种检测肺腺癌EGFR突变的miRNA标志物、试剂盒及方法。所述的miRNA标志物由miR‑10a‑5p、miR‑10b‑5p、miR‑34a‑5p、miR‑181a‑5p、miR‑203a‑3p、miR‑30e‑3p、miR‑542‑3p和miR‑4772‑3p组成。本发明通过运用limma包筛选与肺腺癌EGFR突变密切相关的差异miRNA,通过Lasso回归和logistic回归构建上述miRNA组合物的评分Score,可用于肺腺癌EGFR突变的检测。本发明的检测方法具有灵敏度、特异度高的特点,同时性价比高,能够简便、快速地为临床上EGFR‑TKI治疗提供科学的指导。

Description

一种检测肺腺癌EGFR突变的miRNA标志物、试剂盒及方法
技术领域
本发明涉及一种检测肺腺癌EGFR突变的miRNA标志物、试剂盒及方法,属于分子诊断技术领域。
背景技术
肺腺癌是当前最主要的肺癌病理亚型,已占据每年所有新发肺癌病例的近三分之二。近年来,随着miRNA及组织学等基础学科的进展,人们针对肺腺癌的分子机制有了更深入的理解。人们发现表皮生长因子受体(EGFR)突变是肺腺癌的主要驱动因素之一。肺腺癌患者EGFR突变率为50%左右,不吸烟肺腺癌患者可高达60%-70%。EGFR基因突变通常发生在外显子18-21,其中19外显子DEL缺失(约占45%)及21外显子L858R点突变(约占40%)最常见。
目前临床EGFR酪氨酸激酶抑制剂(EGFR-TKI)例如吉非替尼、阿法替尼、奥希替尼等已成为进展期且具有EGFR突变的肺腺癌患者的标准治疗方式。通过检测患者是否具有EGFR突变,来判断患者是否适合用EGFR-TKI治疗,已经是目前临床的常规操作。
目前检测EGFR突变的方法存在成本高昂、流程繁琐等缺陷。例如EGFR突变的标准检测方法直接测序法,过程稍繁琐、耗时长,检测10%以下突变率的样本常常出现假阴性。NGS是边合成边测序技术(Sequencing by Synthesis,SBS),高通量高深度,价格昂贵。
发明内容
本发明的目的是:提供一种检测肺腺癌EGFR突变的miRNA标志物、试剂盒及方法,通过检测多个miRNA标志物的表达量,作为生物标志物用于判断患者EGFR突变情况,为临床上EGFR-TKI治疗提供指导。
为了实现上述目的,本发明提供了一种检测试剂在制备检测肺腺癌EGFR突变的试剂盒中的应用,所述检测试剂由检测以下miRNA表达量的试剂组成:miR-10A-5P、miR-10B-5P、miR-34A-5P、miR-181A-5P、miR-203A-3P、miR-30E-3P、miR-542-3P和miR-4772-3P,所述检测试剂作为试剂盒实现检测肺腺癌EGFR突变的唯一关键成分。
优选地,所述试剂盒内还包括说明书,所述说明书记载如下评分模型:
Score=0.558×miR-10a-5p+0.446×miR-10b-5p+0.635×miR-34a-5p+0.921×miR-181a-5p-0.346×miR-203a-3p+0.984×miR-30e-3p+0.503×miR-542-3p-0.74×miR-4772-3p-39.893;
上述评分模型中各基因代表的是miRNA表达量的Log2(TPM+1)转换值,即采用TPM计算度量指标,TPM公式=(每条miRNA比对到的read数目)/(样本总比对read数目)×106,并转换成Log2(TPM+1)后代入评分模型中计算Score得分,当检测样本Score得分大于0时,则该检测样本存在EGFR突变;当检测样本得分等于或小于0时,则该检测样本不存在EGFR突变;所述检测样本为新鲜组织肿瘤样本。
本发明还提供了一种检测肺腺癌EGFR突变的试剂盒,至少包括特异性检测以下miRNA表达量的试剂:miR-10A-5P、miR-10B-5P、miR-34A-5P、miR-181A-5P、miR-203A-3P、miR-30E-3P、miR-542-3P和miR-4772-3P。
本发明还提供了一种用于非疾病诊断和治疗目的的检测肺腺癌EGFR突变的方法,包括如下步骤:
步骤1:使用miRcute miRNA提取分离试剂盒miRcute miRNA Isolation Kit提取肿瘤组织样本中的miRNA;
步骤2:miRNA文库构建:采用TruSeq miRNA Sample Prep Kitv2试剂盒完成;
步骤3:簇生成:采用TruSeq SR Cluster Kitv3-cBot–HS试剂盒完成;
步骤4:Illumina Hiseq2000测序:Hiseq2000上机,测序结果将原始数据转换成Fastq格式;
步骤5:数据分析及计算:
对原始Fastq文件数据去除接头序列后,并检验测序片段碱基的质量和长度,筛选质量可靠的测序片段;将测序结果与miRbase数据库比对过滤,鉴定出检测样本中的miRNA数据;根据鉴定的miRNA进行表达量统计,miRNA表达量计算采用TPM计算度量指标,TPM公式=(每条miRNA比对到的read数目)/(样本总比对read数目)×106,并转换成Log2(TPM+1);将目的miRNA的表达量转换成Log2(TPM+1)后代入评分模型:Score=0.558×miR-10a-5p+0.446×miR-10b-5p+0.635×miR-34a-5p+0.921×miR-181a-5p-0.346×miR-203a-3p+0.984×miR-30e-3p+0.503×miR-542-3p-0.74×miR-4772-3p-39.893计算Score得分。
步骤6:判断:当检测样本Score得分大于0时,则该检测样本存在EGFR突变;当检测样本得分等于或小于0时,则该检测样本不存在EGFR突变;所述检测样本为新鲜组织肿瘤样本。
与现有技术相比,本发明的有益效果在于:
(1)本发明中通过检测患者多个miRNA的表达量,作为生物标志物用于判断患者EGFR突变情况,将会更具性价比地为EGFR突变检测提供保障,同时具有高敏感性、特异性和应用价值,有助于实现针对患者的精准医疗;
(2)本发明首次提出了该miRNA组合物可用于评估肺腺癌EGFR突变,较目前常用的方法,具有操作便捷,可定量分析、准确性高、灵敏度和特异性好、性价比高的优点。
附图说明
图1为EGFR突变型和野生型患者显著差异miRNA火山图;
图2为LASSO回归结果图;
图3为ROC曲线。
具体实施方式
为使本发明更明显易懂,兹以优选实施例,并配合附图作详细说明如下。
实施例1miRNA集的筛选及效果验证
(一)肺腺癌预后评分模型构建
1、方法
首先从TCGA数据库中获得448例肺腺癌样本的miRNA表达数据和突变数据,根据患者的EGFR突变与否分为EGFR突变型(51例)和野生型(397例),通过R语言limma包筛选出两组间的显著差异miRNA共38个,其中显著上调的miRNA共36个,显著下调的miRNA共2个(图1)。
进一步通过Lasso回归最终挑选出18个miRNA为:miR-101-3p、miR-10a-5p、miR-10b-5p、miR-34a-5p、miR-181a-5p、miR-203a-3p、miR-205-5p、miR-181a-3p、miR-224-5p、miR-30e-3p、miR-501-5p、miR-542-3p、miR-181a-2-3p、miR-339-3p、miR-146b-3p、miR-589-5p、miR-4772-3p、miR-664b-3p(图2)。
进一步对上述18个miRNA进行Logistic回归分析,最终挑选出8个miRNA(表1),并构建得分模型:
Score=0.558×miR-10a-5p+0.446×miR-10b-5p+0.635×miR-34a-5p+0.921×miR-181a-5p-0.346×miR-203a-3p+0.984×miR-30e-3p+0.503×miR-542-3p-0.74×miR-4772-3p-39.893;
表1:Logistic回归结果
Figure BDA0003947911620000041
最后我们基于该miRNA表达,计算每个样本的评分,通过ROC曲线(图3)分析其敏感性和特异性,将TCGA样本分为两组,评分大于0归于EGFR突变型,评分等于或小于0归于EGFR野生型。与实际检测结果相比较,计算灵敏度=41/51=80.4%,特异度=371/444=83.1%(表2)。
表2本方法在TCGA数据库肺腺癌中预测的灵敏度与特异度
Figure BDA0003947911620000051
(二)效果验证
我们将复旦大学附属中山医院胸外科收集的47例肺腺癌样本,进行miRNA测序。具体步骤如下:
①使用miRcute miRNA提取分离试剂盒(miRcute miRNA Isolation Kit)提取肿瘤组织样本中的miRNA;
②miRNA文库构建:采用TruSeq miRNA Sample Prep Kitv2试剂盒完成;
③簇生成:采用TruSeq SR Cluster Kitv3-cBot–HS试剂盒完成;
④Illumina Hiseq2000测序:Hiseq2000上机,测序结果将原始数据转换成Fastq格式;
⑤数据分析:
对原始Fastq文件数据去除接头序列后,并检验测序片段碱基的质量和长度,筛选质量可靠的测序片段;将测序结果与miRbase数据库比对过滤,鉴定出结果中的已知人的miRNA数据;根据鉴定的miRNA进行表达量统计,miRNA表达量计算采用TPM(transcript permillion)计算度量指标,TPM公式=(每条miRNA比对到的read数目)/(样本总比对read数目)×106,并转换成Log2(TPM+1)。将目的miRNA的表达量Log2(TPM+1)进行相关计算,根据评分模型Score=0.558×miR-10a-5p+0.446×miR-10b-5p+0.635×miR-34a-5p+0.921×miR-181a-5p-0.346×miR-203a-3p+0.984×miR-30e-3p+0.503×miR-542-3p-0.74×miR-4772-3p-39.893计算Score得分。
⑥根据计算结果分为两组,得到大于0的为EGFR突变型,等于或小于0的为EGFR野生型,与实际检测结果相比较,计算灵敏度=20/26=76.9%,特异度=16/21=71.4%。
表3本方法在中山医院肺腺癌患者中预测的灵敏度与特异度
Figure BDA0003947911620000061
上述实施例仅为本发明的优选实施例,并非对本发明任何形式上和实质上的限制,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员,在不脱离本发明的前提下,还将可以做出若干改进和补充,这些改进和补充也应视为本发明的保护范围。

Claims (4)

1.一种检测试剂在制备检测肺腺癌EGFR突变的试剂盒中的应用,其特征在于,所述检测试剂由检测以下miRNA表达量的试剂组成:miR-10A-5P、miR-10B-5P、miR-34A-5P、miR-181A-5P、miR-203A-3P、miR-30E-3P、miR-542-3P和miR-4772-3P,所述检测试剂作为试剂盒实现检测肺腺癌EGFR突变的唯一关键成分。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于,所述试剂盒内还包括说明书,所述说明书记载如下评分模型:
Score=0.558×miR-10a-5p+0.446×miR-10b-5p+0.635×miR-34a-5p+0.921×miR-181a-5p-0.346×miR-203a-3p+0.984×miR-30e-3p+0.503×miR-542-3p-0.74×miR-4772-3p-39.893;
上述评分模型中各基因代表的是miRNA表达量的Log2(TPM+1)转换值,即采用TPM计算度量指标,TPM公式=(每条miRNA比对到的read数目)/(样本总比对read数目)×106,并转换成Log2(TPM+1)后代入评分模型中计算Score得分,当检测样本Score得分大于0时,则该检测样本存在EGFR突变;当检测样本得分等于或小于0时,则该检测样本不存在EGFR突变;所述检测样本为新鲜组织肿瘤样本。
3.一种检测肺腺癌EGFR突变的试剂盒,其特征在于,至少包括特异性检测以下miRNA表达量的试剂:miR-10A-5P、miR-10B-5P、miR-34A-5P、miR-181A-5P、miR-203A-3P、miR-30E-3P、miR-542-3P和miR-4772-3P。
4.一种用于非疾病诊断和治疗目的的检测肺腺癌EGFR突变的方法,其特征在于,包括如下步骤:
步骤1:使用miRcute miRNA提取分离试剂盒miRcute miRNA Isolation Kit提取肿瘤组织样本中的miRNA;
步骤2:miRNA文库构建:采用TruSeq miRNA Sample Prep Kitv2试剂盒完成;
步骤3:簇生成:采用TruSeq SR Cluster Kitv3-cBot–HS试剂盒完成;
步骤4:Illumina Hiseq2000测序:Hiseq2000上机,测序结果将原始数据转换成Fastq格式;
步骤5:数据分析及计算:
对原始Fastq文件数据去除接头序列后,并检验测序片段碱基的质量和长度,筛选质量可靠的测序片段;将测序结果与miRbase数据库比对过滤,鉴定出检测样本中的miRNA数据;根据鉴定的miRNA进行表达量统计,miRNA表达量计算采用TPM计算度量指标,TPM公式=(每条miRNA比对到的read数目)/(样本总比对read数目)×106,并转换成Log2(TPM+1);将目的miRNA的表达量转换成Log2(TPM+1)后代入评分模型:Score=0.558×miR-10a-5p+0.446×miR-10b-5p+0.635×miR-34a-5p+0.921×miR-181a-5p-0.346×miR-203a-3p+0.984×miR-30e-3p+0.503×miR-542-3p-0.74×miR-4772-3p-39.893计算Score得分。
步骤6:判断:当检测样本Score得分大于0时,则该检测样本存在EGFR突变;当检测样本得分等于或小于0时,则该检测样本不存在EGFR突变;所述检测样本为新鲜组织肿瘤样本。
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