CN113801848B - 电刺激诱导小鼠海马神经元细胞系氧化应激模型的建立方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种电刺激诱导小鼠海马神经元细胞系氧化应激模型的建立方法,其通过电刺激装置对小鼠海马神经元细胞进行不同电压和通电时长的刺激后再培养,获得小鼠海马神经元细胞系氧化应激模型。本发明操作简单,成本低,通过本发明获得的氧化应激模型可进一步用于氧化应激介导的高压电烧伤引起神经精神疾病的发病机制和抗氧化机制的研究。
Description
技术领域
本发明涉及一种电刺激诱导小鼠海马神经元细胞系氧化应激模型的建立方法。
背景技术
随着社会发展与进步,电能的应用越来越广泛,电烧伤发生率逐年增加, 且有较高致残率和致死率,成为危害人身安全的重要因素之一。高压电烧伤是由高压交流电流经机体所引起的机体组织和器官损伤,与一般热力烧伤不同,它通过电物理效应、化学效应等多种效应引起机体复合损伤,其渐进性损伤严重。
研究发现,高压电烧伤与氧化应激的关系密切。高压电烧伤可通过热效应引起细胞直接损伤,也可通过激活白细胞等方式引发全身组织的氧化应激,而当机体产生了持续而高水平的氧化应激反应,进入抵抗期和耗竭期时,则可能发展为PTSD。影像学研究显示,PTSD患者海马体积持续性缩小,可能与高水平氧化应激触发神经元凋亡有关。目前关于高压电烧伤与氧化应激在动物水平上的研究相对有限,而在细胞水平的研究几乎没有,本课题组之前通常选用其他化学药物(如H2O2)替代电流刺激细胞,以研究高压电烧伤在细胞水平发生氧化应激后的变化,而化学药物刺激无法模拟电流刺激的瞬时性及电压电势的趋向性等特点。
因此,为了阐明电能对海马神经元细胞氧化应激损伤的作用机制,宜选择合适的装置和方法刺激细胞,建立可靠的细胞模型。
发明内容
本发明的目的在于提供一种电刺激诱导海马神经元细胞(HT-22)氧化应激细胞模型的建立方法和装置,以能够操作简单,成本低的方法建立电刺激诱导的小鼠海马神经元细胞氧化应激模型,从而可进一步用于氧化应激介导的高压电烧伤引起神经精神疾病的发病机制和抗氧化机制的研究。
本发明采用以下技术方案:
一种电刺激诱导小鼠海马神经元细胞系氧化应激模型的建立方法,其通过电刺激装置对小鼠海马神经元细胞进行不同电压和通电时长的刺激后再培养,获得小鼠海马神经元细胞系氧化应激模型。
进一步的,其具体包括如下步骤:
(a)小鼠海马神经元细胞在培养基中进行体外培养;
(b)经步骤(a)扩大培养后的小鼠海马神经元细胞在电刺激装置中,于25V~100V的电压下进行通电1~10s;
(c)经步骤(b)处理后的小鼠海马神经元细胞继续培养24h,获得小鼠海马神经元细胞系氧化应激模型。
进一步的,所述步骤(a)和步骤(c)的培养基为:质量体积比浓度10%的胎牛血清的DMEM培养基。
进一步的,所述步骤(a)和步骤(c)的培养条件为:小鼠海马神经元细胞在孔板中,于37℃在5%CO2 培养箱中进行培养。
进一步的,所述步骤(a)进行扩大培养结束时,小鼠海马神经元细胞的浓度为5~10×104 个/mL。
进一步的,所述电刺激装置包括变压器和孔板;所述变压器的输出端通过导线连接石墨电极,所述石墨电极深入孔板的孔内对培养基及培养的细胞进行通电。
进一步的,所述变压器的变压范围为0-100V。
进一步的,所述步骤(b)中,通电电压为25V、50V、75V或100V;通电时间为1s、3s、5s或10s。
作为优选的,所述步骤(b)中,通电电压为50V或75V;通电时间为5s。
本发明的有益效果在于,利用本发明的电刺激诱导的海马神经元细胞氧化应激细胞模型的建立方法,能够操作简单、成本低的建立电刺激诱导的HT-22细胞氧化应激模型,从而可进一步用于氧化应激介导的高压电引起神经精神疾病脑区损伤作用机制和抗氧化机制的研究。
附图说明
图1为电刺激装置的结构示意图。
其中,1、变压器;2、孔板;3、导线;4、石墨电极。
图2为实施例1中不同电刺激强度对小鼠海马神经元细胞存活率的影响图。
图3为实施例2中不同电压强度电击5s后小鼠海马神经元细胞凋亡图。
图4为实施例3中不同电刺激强度对小鼠海马神经元细胞SOD活性的影响图。
具体实施方式
以下结合实施例对本发明的具体实施方式作出进一步的说明。
实施例1:不同电刺激电压和电刺激时间对小鼠海马神经元细胞存活率的影响试验
1、细胞培养与电刺激实验
电刺激装置包括变压器1和24孔板2;所述变压器1的输出端通过导线3连接石墨电极4,所述石墨电极4深入24孔板2的孔内对培养基及培养的细胞进行通电。所述变压器的变压范围为0-100V。
根据研究目的要求,本实验分别设置假电组(0V)和不同电刺激(电压强度分别为25V、50V、75V、100V,电击时长分别为1s、3s、5s、10s)组。小鼠海马神经元细胞培养于含10%胎牛血清的DMEM培养基,细胞浓度5-10×10 4 个/mL,接种于24孔板,每孔1ml,置于37℃、5%CO2 培养箱中培养。24h后即每孔细胞生长到80%左右,电击组分别按照25V(1 s、3 s、5s、10s),50V(1、3、5、10s),75V(1、3、5、10s),100V(1、3、5、10s)的电刺激强度组合施加电刺激,对照组施加0V的假电刺激,待施加完电刺激后更换新的培养液(每孔1ml),在37℃、5%CO2 培养箱中继续培养。
2、CCK-8法检测细胞存活率
继续培养24h后,弃去培养基,每孔加入1000μl空白培养基和100μl CCK-8溶液,37℃、5%CO2 培养箱中孵育2.5h,用酶标仪测定450nm波长处的吸光度值,计算细胞存活率。
由此得到不同电刺激强度对小鼠海马神经元细胞存活率的影响,结果如图2所示。图2表明,随着电压的升高,细胞存活率逐渐降低;且随着电刺激时间的增加,细胞存活率也呈下降趋势。与对照组(0V)相比,其他组小鼠海马神经元细胞存活率均显著降低(P<0.05)。同时,刺激时长为5s时,不同电压刺激小鼠海马神经元细胞存活率下降梯度较为合适。
实施例2:用流式细胞仪检测不同电刺激强度下小鼠海马神经元细胞凋亡情况
1、细胞培养与电刺激:细胞培养方法同实施例1,电刺激组分别按25V&5s、50V&5s、75V&5s和100V&5s施加电刺激。
2、流式细胞仪检测细胞凋亡情况
收集 HT-22 细胞,用预冷 PBS 离心洗涤。用双蒸水稀释 5×Binding Buffer为1×工作液,取500μl 1×Binding Buffer 重悬细胞,再加入 5μL Annexin V- FITC 和 10μl PI,轻轻混匀。避光,室温反应 10 min,样品在1 h 内用流式细胞仪检测。
由此得到不同电刺激强度刺激后小鼠海马神经元细胞的凋亡情况,结果如图3所示。图3表明,随着电压强度的增加,细胞凋亡率逐渐上升;其中50V&5s、75V&5s和100V&5s刺激细胞后,与对照组(0V)相比,凋亡率均显著升高(P<0.05)。
实施例3:不同电刺激强度对小鼠海马神经元细胞SOD活性的影响实验
1、细胞培养与电刺激:细胞培养方法同实施例1,电刺激组分别按25V&5s、50V&5s和75V&5s施加电刺激。
2、WST-1法检测细胞SOD活性
继续培养24h后,弃去培养基,设置对照孔、对照空白孔、测定孔和测定空白孔,用酶标仪测定450nm波长处的吸光度值,计算细胞SOD抑制率。
用BCA法测定待测组细胞上清液蛋白浓度,计算细胞SOD力(细胞SOD活力(U/mgprot) =细胞SOD抑制率÷50%×反应体系(0.24ml)/稀释倍数(0.02ml)÷待测样本蛋白浓度(mgprot/ml))。
由此得到不同电刺激强度对小鼠海马神经元细胞SOD活性的影响,结果如图4所示。图4表明,随着刺激电压的增加,SOD活性先升高再下降;50V&5s和75V&5s刺激细胞后,与对照组(0V)相比,SOD活性显著降低(P<0.05)。
上述实施例中,实验数据采用SPSS 26.0统计分析软件进行单因素ANOVA方差分析,全部数据均以均数±标准差(means±SD)表示。当P<0.05认为有统计学差异。
综上,细胞发生凋亡(细胞凋亡流式图),并且与对照组比较有差异;氧化应激的指标(SOD)也发生变化,与对照组比较有差异,说明神经元细胞发生了氧化应激,即其氧化应激细胞模型建立成功。
Claims (6)
1.一种电刺激诱导小鼠海马神经元细胞系氧化应激模型的建立方法,其特征在于,
(a)小鼠海马神经元细胞在培养基中进行体外培养;
(b)经步骤(a)扩大培养后的小鼠海马神经元细胞在电刺激装置中,于50V或75V的电压下进行通电5s;
(c)经步骤(b)处理后的小鼠海马神经元细胞继续培养24h,获得小鼠海马神经元细胞系氧化应激模型。
2.根据权利要求1所述的建立方法,其特征在于,所述步骤(a)和步骤(c)的培养基为10%的胎牛血清的DMEM培养基。
3.根据权利要求1所述的建立方法,其特征在于,所述步骤(a)和步骤(c)的培养条件为:小鼠海马神经元细胞在孔板中,于37℃在5%CO2 培养箱中进行培养。
4.根据权利要求1所述的建立方法,其特征在于,所述步骤(a)进行扩大培养结束时,小鼠海马神经元细胞的浓度为5~10×104 个/mL。
5.根据权利要求1所述的建立方法,其特征在于,所述电刺激装置包括变压器(1)和孔板(2);所述变压器(1)的输出端通过导线(3)连接石墨电极(4),所述石墨电极(4)深入孔板(2)的孔内对培养基及培养的细胞进行通电。
6.根据权利要求5所述的建立方法,其特征在于,所述变压器(1)的变压范围为0-100V。
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