CN112941096B - 重组质粒组合、基因改造酵母菌及生产奇数链脂肪酸方法 - Google Patents

重组质粒组合、基因改造酵母菌及生产奇数链脂肪酸方法 Download PDF

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Abstract

本发明涉及真核生物酵母菌基因改造和发酵领域,提供了一种重组质粒组合、基因改造酵母菌及生产奇数链脂肪酸方法,包括至少一个表达质粒;所述表达质粒包括至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性、脂肪酸合成酶活性、丙酰辅酶A合成酶活性、醛脱氢酶活性或酮酸脱羧酶活性的多肽的多核苷酸;上述重组质粒组合可以对微生物进行基因工程改造,使得改造的微生物内能够进行关键酶的表达调节,以建立奇数链脂肪酸的合成途径,可以利用丙酸或非丙酸的L‑苏氨酸和(或)葡萄糖直接合成奇数链脂肪酸,发酵成本低,能够进一步通过基因改造的方法继续提高奇数链脂肪酸产量和比例。

Description

重组质粒组合、基因改造酵母菌及生产奇数链脂肪酸方法
技术领域
本发明涉及真核生物酵母菌基因改造和发酵领域,具体涉及一种用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合、基因改造酵母菌和生产奇数链脂肪酸的方法。
背景技术
奇数链脂肪酸(Odd chain fatty acid,OCFA)的功能类似不饱和脂肪酸,有助于提高细胞膜的流动性。自然界绝大多数脂肪酸都是偶数链脂肪酸,奇数链脂肪酸极为稀少,因此奇数链脂肪酸相比常规的偶数链脂肪酸具有更高的价值。在生产方面,奇数链脂肪酸无论化学合成还是天然提取都较为困难,前者污染严重,后者成本过高。利用微生物生产奇数链脂肪酸是解决奇数链脂肪酸生产困难问题的重要途径。
目前,较为常用的微生物发酵方法是利用基因工程大肠杆菌来生产奇数链脂肪酸。如Wu H(Biotechnology and Bioengineering,2014,111(11):2209-2219)等报道了利用基因工程大肠杆菌来生产奇数链脂肪酸的方法;中国专利文献CN103906845B披露的相似的利用基因工程大肠杆菌来生产奇数链脂肪酸的方法。上述这些已披露的方法以基因工程改造的大肠杆菌作为发酵微生物,以含有丙酸或丙酸盐的培养基培养。然而,大肠杆菌发酵过程中存在如下缺陷:(1)可能合成内毒素,增加产品食用风险;(2)发酵过程极易污染,而大型发酵设备灭菌困难,对操作条件和设备要求较高;(3)不能以淀粉、葡萄糖等廉价碳源直接合成奇数链脂肪酸,因此大幅提高了生产成本。
近几年,也有人提出利用其他微生物生产奇数链脂肪酸。如Park YK(Biotechnology for Biofuels,2018,11(1):158)等报道了利用产油酵母Yarrowialipolytica以丙酸为底物合成奇数链脂肪酸的方法;Bhatia,SK等报道了利用未改造的Rhodococcus sp.以丙酸作为碳源合成奇数链脂肪酸的研究;CN201511003214.5披露了利用裂殖壶菌以乳酸盐或丙酸盐为底物生产奇数链脂肪酸的方法。然而,上述方法仍然需要添加丙酸或丙酸盐作为碳源,不仅提高了发酵成本,还存在由于丙酸不是微生物利用的最佳碳源导致微生物生长缓慢、发酵周期延长等问题,同时Rhodococcus sp和裂殖壶菌的遗传背景不清晰、基因改造操作技术不完善,使得通过基因改造的方法继续提高微生物奇数链脂肪酸产量和比例较为困难。除上述报道外,2019年,Wang FZ(Biotechnology forBiofuels,2019,12:141)等报道了利用裂殖壶菌以简单碳源葡萄糖生产奇数链脂肪酸的研究,虽然不需添加丙酸为发酵底物,但其同样存在遗传背景不清晰、基因改造操作技术不完善,使得通过基因改造的方法继续提高微生物奇数链脂肪酸产量和比例困难,以及发酵成本过高的问题仍然没有解决。
发明内容
因此,本发明要解决的技术问题在于现有技术中的基因工程改造的微生物继续提高奇数链脂肪酸产量和比例困难,发酵成本过高的缺陷,进而提供一种用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合、基因改造酵母菌和生产奇数链脂肪酸的方法,以真核细胞生物酵母菌为出发微生物,利用重组质粒组合进行通过基因工程改造获得细胞内酶表达调节的酵母菌并且在微生物细胞内建立奇数链脂肪酸的合成途径,使得基因工程改造的酵母菌不仅能够利用丙酸或非丙酸培养基环境生产奇数链脂肪酸,并且能够利用L-苏氨酸和(或)葡萄糖直接合成奇数链脂肪酸,发酵成本低,能够进一步通过基因改造的方法继续提高奇数链脂肪酸产量和比例。
为此,本发明提供了如下的技术方案:
一种用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合,包括至少一个表达质粒;所述表达质粒包括至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性、脂肪酸合成酶活性、丙酰辅酶A合成酶活性、醛脱氢酶活性或酮酸脱羧酶活性的多肽的多核苷酸。
优选的,所述醛脱氢酶活性为乙醛脱氢酶活性。
优选的,所述酮酸脱羧酶活性为α-酮酸脱羧酶活性。
优选的,所述表达质粒包括:
至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性的多肽的多核苷酸;和
至少一个编码具有脂肪酸合成酶活性、丙酰辅酶A合成酶活性、乙醛脱氢酶活性或α-酮酸脱羧酶活性的多肽的多核苷酸。
优选的,所述表达质粒包括:至少一个编码丙酰辅酶A合成酶的多肽的多核苷酸。
优选的,所述表达质粒包括:
至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性的多肽的多核苷酸;和
至少一个编码具有丙酰辅酶A合成酶活性的多肽的多核苷酸。
更优选的,所述表达质粒包括:
至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性的多肽的多核苷酸;
至少一个编码具有α-酮酸脱羧酶活性的多肽的多核苷酸;和
至少一个编码具有丙酰辅酶A合成酶活性的多肽的多核苷酸。
进一步的,所述表达质粒包括:
至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性的多肽的多核苷酸;
至少一个编码具有α-酮酸脱羧酶活性的多肽的多核苷酸;
至少一个编码具有乙醛脱氢酶活性的多肽的多核苷酸;和
至少一个编码具有丙酰辅酶A合成酶活性的多肽的多核苷酸。
进一步的,所述表达质粒还包括至少一个编码具有天冬氨酸激酶活性、高丝氨酸脱氢酶活性、苏氨酸合成酶活性、磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶活性或天冬氨酸转氨酶活性的多肽的多核苷酸;优选的,所述编码具有天冬氨酸激酶活性的多肽的多核苷酸为突变的多核苷酸。
进一步的,包括至少一个敲除质粒;所述敲除质粒是基于L-高丝氨酸-O-乙酰基转移酶基因、乙酰乳酸合成酶基因或苏氨酸醛缩酶基因设计的,用以敲除L-高丝氨酸-O-乙酰基转移酶基因、乙酰乳酸合成酶基因或苏氨酸醛缩酶基因。
进一步的,包括至少一个丙酮酸激酶活性减弱质粒;所述酶活性减弱质粒是基于丙酮酸激酶基因的强启动子设计的敲除质粒,用以敲除丙酮酸激酶基因的强启动子。
一种基因工程改造的酵母菌,包括至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性、脂肪酸合成酶活性、丙酰辅酶A合成酶、醛脱氢酶活性或酮酸脱羧酶的多肽的多核苷酸。
优选的,所述醛脱氢酶活性为乙醛脱氢酶活性。
优选的,所述酮酸脱羧酶活性为α-酮酸脱羧酶活性。
优选的,所述酵母菌包括如下所述的多核苷酸:
至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性的多肽的多核苷酸;和
至少一个编码具有脂肪酸合成酶活性、丙酰辅酶A合成酶活性、乙醛脱氢酶活性或α-酮酸脱羧酶活性的多肽的多核苷酸。
优选的,所述酵母菌包括至少一个编码丙酰辅酶A合成酶活性的多肽的多核苷酸。
优选的,所述基因工程改造的酵母菌包括:
至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性的多肽的多核苷酸;和
至少一个编码具有丙酰辅酶A合成酶的多肽的多核苷酸。
更优选的,所述基因工程改造的酵母菌包括:
至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性的多肽的多核苷酸;
至少一个编码具有酮酸脱羧酶活性的多肽的多核苷酸;和
至少一个编码具有丙酰辅酶A合成酶的多肽的多核苷酸。
进一步的,所述基因工程改造的酵母菌包括:
至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性的多肽的多核苷酸;
至少一个编码具有酮酸脱羧酶活性的多肽的多核苷酸;
至少一个编码具有乙醛脱氢酶活性的多肽的多核苷酸;和
至少一个编码具有丙酰辅酶A合成酶的多肽的多核苷酸。
进一步的,还包括至少一个编码具有天冬氨酸激酶活性、高丝氨酸脱氢酶活性、苏氨酸合成酶活性、磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶活性或天冬氨酸转氨酶活性的多肽的多核苷酸;优选的,所述编码具有天冬氨酸激酶活性的多肽的多核苷酸为突变的多核苷酸。
进一步的,还包括L-高丝氨酸-O-乙酰基转移酶基因、乙酰乳酸合成酶基因或苏氨酸醛缩酶基因被敲除。
进一步的,还包括丙酮酸激酶的表达水平被减弱。
进一步的,所述酵母菌包括但不限于酿酒酵母、乳酸克鲁维酵母或假丝酵母;优选的,为酿酒酵母或乳酸克鲁维酵母;更优选的,为酿酒酵母。
本发明提供了一种所述的重组质粒组合或所述基因工程改造的酵母菌在合成奇数链脂肪酸/脂或提高奇数链脂肪酸/脂比例的用途。
所述的奇数链脂肪酸/脂是指奇数链脂肪酸或奇数链脂肪酸脂。
优选的,所述奇数链脂肪酸包括C13:0、C15:0、C15:1、C17:0、C17:1、C19:0和C19:1中的至少一种;优选的,所述奇数链脂肪酸酯是指含有奇数链脂肪酸中的至少一种的甘油一酯、甘油二酯、甘油三酯和/或磷脂。
本发明提供了一种制备奇数链脂肪酸的方法,包括利用所述的重组质粒组合或所述基因工程改造的酵母菌。
进一步的,在所述的方法中,在制备过程中使用的培养基中:含有浓度为0.01-100g/L的丙酸或丙酸盐;优选的,丙酸或丙酸盐的浓度为1-10g/L;更优选的,丙酸或丙酸盐的浓度为1-4g/L;或
含有浓度为0.01-200g/L的L-苏氨酸或L-苏氨酸盐;优选的,L-苏氨酸或L-苏氨酸盐的浓度为1-20g/L;更优选的,L-苏氨酸或L-苏氨酸盐的浓度为10g/L;或
含有浓度为0.01-300g/L的葡萄糖;优选的,葡萄糖的浓度为10-100g/L;更优选的,葡萄糖的浓度为20g/L。
上述涉及的酶的国际酶学委员会编号为:
丙酰辅酶A合成酶为E.C.6.2.1.17;
苏氨酸脱氨酶为E.C.4.3.1.17或E.C.4.3.1.19;
丙酰辅酶A转移酶为E.C.2.8.3.1;
α-酮酸脱羧酶为E.C.4.1.1.1或E.C.4.1.1.43或E.C.4.1.1.72或E.C.4.1.1.74;
乙醛脱氢酶为E.C.1.2.1.3或E.C.1.2.1.4或E.C.1.2.1.5;
脂肪酸合成酶为E.C.1.3.1.9或E.C.2.3.1.38或E.C.2.3.1.39或E.C.2.3.1.86或E.C.3.1.2.14或E.C.4.2.1.59;
天冬氨酸激酶为E.C.2.7.2.4;
高丝氨酸脱氢酶为E.C.2.7.1.39;
苏氨酸合成酶为E.C.4.2.3.1;
丙酮酸羧化酶为E.C.6.4.1.1;
磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶E.C.4.1.1.31;
天冬氨酸转氨酶为E.C.2.6.1.1或E.C.2.6.1.27或E.C.2.6.1.3或E.C.2.6.1.7;
L-高丝氨酸-O-乙酰基转移酶为E.C.2.3.1.31;
乙酰乳酸合成酶为E.C.2.2.1.6;
苏氨酸醛缩酶为E.C.4.1.2.48;
丙酮酸激酶为E.C.2.7.1.40。
本发明技术方案,具有如下优点:
(1)本发明提供了一种用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合,包括至少一个表达质粒;所述表达质粒包括至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性、脂肪酸合成酶活性、丙酰辅酶A合成酶、醛脱氢酶活性或酮酸脱羧酶活性的多肽的多核苷酸;上述重组质粒组合可以对微生物如真核细胞生物酵母菌进行基因工程改造,使得改造的微生物内能够进行关键酶的表达调节,以建立奇数链脂肪酸的合成途径,可以利用丙酸或非丙酸培养基环境生产奇数链脂肪酸,并且能够利用L-苏氨酸和(或)葡萄糖直接合成奇数链脂肪酸,发酵成本低,能够进一步通过基因改造的方法继续提高奇数链脂肪酸产量和比例。
(2)本发明提供了一种用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合,所述表达质粒包括:至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性的多肽的多核苷酸;和至少一个编码具有丙酰辅酶A合成酶活性的多肽的多核苷酸;上述重组质粒组合可以对微生物如真核细胞生物酵母菌进行基因工程改造,改造后的微生物能够利用L-苏氨酸和(或)葡萄糖直接合成奇数链脂肪酸,增加奇数链脂肪酸产量和比例。
(3)本发明提供了一种用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合,所述表达质粒包括:至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性的多肽的多核苷酸;至少一个编码具有酮酸脱羧酶活性的多肽的多核苷酸;和至少一个编码具有丙酰辅酶A合成酶的多肽的多核苷酸;上述重组质粒组合可以对微生物如真核细胞生物酵母菌进行基因工程改造,改造后的微生物能够利用L-苏氨酸和(或)葡萄糖直接合成奇数链脂肪酸,增加奇数链脂肪酸产量和比例。
(4)本发明提供了一种用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合,所述表达质粒还包括至少一个编码具有天冬氨酸激酶活性、高丝氨酸脱氢酶活性、苏氨酸合成酶活性、磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶活性或天冬氨酸转氨酶活性的多肽的多核苷酸;上述重组质粒组合可以对微生物如真核细胞生物酵母菌进行基因工程改造,改造后的微生物内表达调节酶,进一步建立奇数链脂肪酸的合成途径,增加奇数链脂肪酸产量和比例。
(5)本发明提供了一种用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合,所述表达质粒还包括至少一个敲除质粒;所述敲除质粒是基于L-高丝氨酸-O-乙酰基转移酶基因、乙酰乳酸合成酶基因或苏氨酸醛缩酶基因设计的;上述重组质粒组合可以对微生物进行基因工程改造,失活微生物细胞内的L-高丝氨酸-O-乙酰基转移酶、乙酰乳酸合成酶或苏氨酸醛缩酶的表达,以减少代谢之路的通量的损失。
(6)本发明提供了一种用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合,包括至少一个丙酮酸激酶活性减弱质粒;上述重组质粒组合对微生物进行基因工程改造后,减少微生物细胞内的丙酮酸激酶的表达,以促使葡萄糖到丙酰辅酶A代谢通量的进一步提高。
(7)本发明提供了一种用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合,所述编码具有天冬氨酸激酶活性的多肽的多核苷酸为突变的多核苷酸;上述的目的在于,包含上述突变的多核苷酸的上述重组质粒组合对微生物进行基因工程改造后,可以去除苏氨酸对代谢途径的反馈抑制。
(8)本发明提供了一种基因工程改造的酵母菌,包括至少一个编码具有苏氨酸脱氨酶活性、脂肪酸合成酶活性、丙酰辅酶A合成酶活性、醛脱氢酶活性或酮酸脱羧酶活性的多肽的多核苷酸;上述基因工程改造的酵母菌,可以通过表达苏氨酸脱氨酶、丙酰辅酶A合成酶、脂肪酸合成酶、醛脱氢酶或酮酸脱羧酶等编码基因,在酵母中建立奇数链脂肪酸合成途径,实现以葡萄糖或苏氨酸为底物发酵合成奇数链脂肪酸(如图22所示),可以利用丙酸或非丙酸培养基环境生产奇数链脂肪酸,并且能够利用L-苏氨酸和(或)葡萄糖直接合成奇数链脂肪酸,发酵成本低,能够进一步通过基因改造的方法继续提高奇数链脂肪酸产量和比例,酵母菌是传统发酵微生物,具有生长快速、产出效率高,成本降低,安全且环保的优点。
(9)本发明提供了一种基因工程改造的酵母菌,还包括至少一个编码具有天冬氨酸激酶活性、高丝氨酸脱氢酶活性、苏氨酸合成酶活性、磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶活性或天冬氨酸转氨酶活性的多肽的多核苷酸;上述基因工程改造的酵母菌,通过过表达从磷酸烯醇式丙酮酸到丙酰辅酶A整个代谢途径(如图22)的全部或部分酶以增加代谢通量,进一步提高奇数链脂肪酸产量和比例。
(10)本发明提供了一种基因工程改造的酵母菌,还包括L-高丝氨酸-O-乙酰基转移酶基因、乙酰乳酸合成酶基因或苏氨酸醛缩酶基因被敲除;上述基因工程改造的酵母菌,可以减少代谢支路的通量损失。
(11)本发明提供了一种基因工程改造的酵母菌,还包括丙酮酸激酶的表达水平被减弱;上述目的在于,以促使葡萄糖到丙酰辅酶A代谢通量的进一步提高;进一步的,所述编码具有天冬氨酸激酶活性的多肽的多核苷酸为突变的多核苷酸,通过突变天冬氨酸激酶活性的多肽,以去除苏氨酸对代谢途径的反馈抑制,可以减少代谢支路的通量损失。
附图说明
为了更清楚地说明本发明具体实施方式或现有技术中的技术方案,下面将对具体实施方式或现有技术描述中所需要使用的附图作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的附图是本发明的一些实施方式,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些附图获得其他的附图。
图1是本发明实施例1中表达质粒Y33-prpE的图谱;
图2是本发明实施例1中表达质粒Y22-tdcB的图谱;
图3是本发明实施例1中表达质粒Y33-CpPCT的图谱;
图4是本发明实施例1中表达质粒Y33-PduP的图谱;
图5是本发明实施例1中表达质粒Y22-tdcB-kivD的图谱;
图6是本发明实施例1中表达质粒Y22-tdcB-kivD-ALD4的图谱;
图7是本发明实施例2中表达质粒Y33-thrAmu的图谱;
图8是本发明实施例2中表达质粒T4-thrBC的图谱;
图9是本发明实施例2中表达质粒Y33-thrABC的图谱;
图10是本发明实施例3中表达质粒Y33-HOM3mu的图谱;
图11是本发明实施例3中表达质粒T4-ppc-aspC的图谱;
图12是本发明实施例3中表达质粒Y33-HOM3mu-ppc-aspC的图谱;
图13是本发明实施例4中表达质粒Y33-Thrsix的图谱;
图14是本发明实施例5中表达质粒Y22-tdcB-kivD-V2的图谱;
图15是本发明实施例5中表达质粒Y22-tdcB-kivD-prpE的图谱;
图16是本发明实施例6中表达质粒pCas-MET2-del的图谱;
图17是本发明实施例6中表达质粒pCas-ILV6-del的图谱;
图18是本发明实施例6中表达质粒pCas-GLY1-del的图谱;
图19是本发明实施例7中表达质粒pCas-PYK1p-del的图谱;
图20是本发明实施例8中各个酵母菌所产生脂肪酸的种类柱状图;
图21是本发明实施例11中各重组菌株脂肪酸生产情况柱状图;
图22是本发明的以葡萄糖为底物发酵合成奇数链脂肪酸的路线图;
图23是本发明的丙醛到丙酰辅酶A的酶促转化路线图;
图24是本发明的以L-苏氨酸为底物prpE途径合成奇数链脂肪酸的路线图;
图25是本发明的表达质粒Y33-PGKCYC的图谱;
图26是本发明的表达质粒Y22-PGKCYC的图谱;
图27是本发明的表达质粒Y33-PGKCYC-Mss的图谱;
图28是本发明的表达质粒pT4的图谱;
图29是本发明的表达质粒pST1.G.Ura3的图谱。
具体实施方式
提供下述实施例是为了更好地进一步理解本发明,并不局限于所述最佳实施方式,不对本发明的内容和保护范围构成限制,任何人在本发明的启示下或是将本发明与其他现有技术的特征进行组合而得出的任何与本发明相同或相近似的产品,均落在本发明的保护范围之内。
实施例中未注明具体实验步骤或条件者,按照本领域内的文献所描述的常规实验步骤的操作或条件即可进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市购获得的常规试剂产品。
下述实施例中使用的培养基组方及发酵方法如下:
种子液培养使用YPD培养基,含有下列成分(g/L):20g/L蛋白胨,10g/L酵母提取物,20g/L葡萄糖。
发酵培养基为矿物质培养基,含有下列成分(g/L):3.5g/L KH2PO4,2g/L Na2HPO4(2),1.5g/L MgSO4.7 H2O,1.5g/L NH4Cl,1.5g/L酵母提取物;pH调整到6.0;灭菌后每升矿物质培养基还需加入微量营养液(含20g/L MnCl2.4H2O,20g/L CaCl2.2H2O,1g/LFeSO4.7H2O,1g/L NaMoO4.2H2O)1mL;灭菌后加入20g/L葡萄糖。也可根据实验需求在上述基础上添加丙酸钠或L-苏氨酸。
完全极限培养基(CM)含有下列成分:无氨基酵母氮源(不含硫酸铵)YNB w/o AA0.67%(w/v),葡萄糖2%(w/v),Dropout powder 0.083%(w/v),其它营养成分(mg/L):腺嘌呤50mg/L,尿嘧啶50mg/L,组氨酸100mg/L,亮氨酸100mg/L,色氨酸100mg/L。其中Dropoutpowder含(mg/L):
苏氨酸150mg/L,酪氨酸30mg/L,颉氨酸150mg/L,赖氨酸30mg/L,谷氨酸100mg/L,丝氨酸150mg/L,天冬氨酸100mg/L,甲硫氨酸20mg/L,苯丙氨酸50mg/L,异亮氨酸30mg/L,精氨酸20mg/L。
省却上述特定的成分可配制成省却特定成分的CM培养基,液体培养基pH5.6,固体培养基加1.5%的琼脂粉,pH6.5,在121℃下灭菌15min;然后再加入40%(w/v)葡萄糖使之终浓度为20g/L。
下述实施例中涉及的脂肪酸检测方法:
取1mL发酵液在微波消解内管(玻璃管)中冷冻干燥(-50℃,约36小时)。依次加入内标(C14:1,10mg/mL)5μL,正己烷2mL,BF3-甲醇溶液(14%)1mL,混合均匀后用氮气吹拂30秒,盖紧瓶盖。将准备好的盛有样品的微波消解内管装入盛有15mL蒸馏水的微波消解外管中,拧紧外管盖,放入微波消解仪(Milestone Start D,Sorisole Bergamo,Italy)中,120℃消解5分钟。待冷却后取出内管,加入1mL超纯水,混合均匀后,取200μL上层正己烷相进行气质联用仪(GC-MS)分析。
GC-MS分析方法:
所用仪器为岛津GCMS-QP2020,色谱柱为DB-5ms(30m×0.25mm I.D.,0.25-μmfilm thickness),载气为氦气。进样口温度280℃,总流量50mL/min,柱流量1.78mL/min,分流比9;柱温初始40℃持续2分钟,升温到130℃(速率30℃/分钟),再升温到280℃(速率5℃/分钟),保持3分钟。
下述实施例中涉及的基因、引物、质粒等由苏州泓迅生物科技股份有限公司合成。
下述实施例中涉及的质粒Y33-PGKCYC、Y22-PGKCYC、Y33-PGKCYC-Mss由北京化工大学软物质科学与工程高精尖创新中心史硕博课题组提供;
质粒Y33-PGKCYC的构建方法:
首先获取酿酒酵母PGK1启动子片段:以酿酒酵母基因组为模板,以如下引物进行聚合酶链式反应(PCR)
引物PGK1-F(5’-3’):
CAGGAAACAGCTATGACCATGATTACGCCAAGCTTTATTTTAGATTCCTGACTTCAACTC;
引物PGK1-R(5’-3’):
TGCGGCCCTCTAGATTCGAGGTCGACTGTTTTATATTTGTTGTAAAAAGTAGATAATTAC;
表1.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(酿酒酵母基因组) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表2.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000071
然后获取酿酒酵母CYC1终止子片段:以酿酒酵母基因组为模板,以如下引物进行聚合酶链式反应(PCR)
引物CYC1-F(5’-3’):
TATAAAACAGTCGACCTCGAATCTAGAGGGCCGCATCATGTAATTAGTTATGTCACGCTT;
引物CYC1-R(5’-3’):
ACGTTGTAAAACGACGGCCAGTGAATTCGAGCTCGGTACCGCAAATTAAAGCCTTCGAGC;
表3.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(酿酒酵母基因组) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表4.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000081
将载体YCplac33(ATCC87586)用HindⅢ和EcoRⅠ进行酶切(37℃,2小时),之后回收载体(5.5kb),并与上述2个PCR片段(PGK1启动子和CYC1终止子片段)利用NEBuilder高保真DNA组装克隆试剂盒(NEB公司#E5520S)进行组装(50℃,1小时),获得质粒Y33-PGKCYC,获得的质粒Y22-PGKCYC的图谱如图25所示。
质粒Y22-PGKCYC的构建方法:
质粒Y22-PGKCYC的构建方法与Y33-PGKCYC相同,只是出发质粒由YCplac33替换为YCplac22(ATCC87585),获得的质粒Y22-PGKCYC的图谱如图26所示。
质粒Y33-PGKCYC-Mss的构建方法:
以质粒Y33-PGKCYC为模板,Mss-F和Mss-R为引物进行PCR:
Mss-F(5’-3’):
TACCGAGCTCGAATTCGTTTAAACACTGGCCGTCGTTTTACA;
Mss-R(5’-3’):
GTTTAAACGAATTCGAGCTCGGTACCGCAAATTAAAG;
表5.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 1.5
下游引物 1.5
模板(Y33-PGKCYC) 0.1
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33.4
总体积 50
表6.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000091
PCR产物用DpnⅠ消化(37℃,2小时)后,直接转化大肠杆菌,即获得Y33-PGKCYC-Mss,质粒Y33-PGKCYC-Mss的图谱如图27所示。
质粒pT4构建方法
将含有RPS2终止子和TDH1终止子的DNA片段(SEQ ID NO.17)人工合成并插入到市售pUC57-Kan载体(BamHⅠ和XbaⅠ之间)中(苏州泓迅生物科技股份有限公司合成),所得质粒即为pT4,图谱如图28所示。
质粒pST1.G.Ura3构建方法
将含有gRNA scaffold、SNR52终止子、URA3基因和SNR52启动子的DNA片段(SEQ IDNO.18)人工合成,并插入到市售pUC18载体(HindⅢ和EcoRⅠ之间)中(苏州泓迅生物科技股份有限公司合成),所得质粒即为pST1.G.Ura3。
质粒pCas由北京化工大学软物质科学与工程高精尖创新中心Jens Nielsen实验室提供(Zhang Y,Wang J,Wang Z,Zhang Y,Shi S,Nielsen J,Liu Z:A gRNA-tRNA arrayfor CRISPR-Cas9 based rapid multiplexed genome editing in Saccharomycescerevisiae.Nat Commun 2019,10(1):1053)。
Saccharomyces cerevisiae W303-1A(ATCC 208352)、Pichia pastoris GS115(ATCC20864)、Kluyveromyces lactis(CBS2359)、Yarrowia lipolytica PO1f(ATCC MYA-2613);Torulaspora delbrueckii CICC 31863、Candida sp CICC 1785购买自中国工业微生物菌种保藏管理中心(CICC);Lipomyces starkeyi(2.2291)购买自中国普通微生物菌种保藏管理中心;酿酒酵母菌株YJZ45由北京化工大学软物质科学与工程高精尖创新中心Jens Nielsen实验室提供(Zhou YJ,Buijs NA,Zhu Z,Qin J,Siewers V,Nielsen J:Production of fatty acid-derived oleochemicals and biofuels by syntheticyeast cell factories.Nat Commun 2016,7:11709)。
实施例1表达质粒的构建
(1)丙酰辅酶A合成酶(prpE)表达质粒Y33-prpE的构建
选取沙门氏菌(Salmonella enterica)的丙酰辅酶A合成酶的多核苷酸序列(prpE)进行密码子优化,优化后的多核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。将SEQ ID NO.1所示核苷酸序列用SalI和XbaI酶切后,插入载体Y33-PGKCYC(SEQ ID NO.2所示)SalI和XbaI酶切位点之间,获得丙酰辅酶A合成酶表达质粒Y33-prpE.,其质粒图谱如图1所示。
(2)苏氨酸脱氨酶(tdcB)表达质粒Y22-tdcB构建
选取表达来自大肠杆菌(Escherichia coli)的苏氨酸脱氨酶tdcB基因(NC_000913.3(3265039..3266028),SEQ ID NO.3所示)。以大肠杆菌基因组为模板,以如下引物进行聚合酶链式反应(PCR)
引物tdcB-F(5’-3’):
CAACAAATATAAAAACAGTCGACATGCATATTACATACGATCTG;
引物tdcB-R(5’-3’):
AATTACATGATGCGGCCCTCTAGATTAAGCGTCAACGAAACC;
表7.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(大肠杆菌基因组) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表8.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000101
Figure BDA0002311198370000111
将上述扩增得到的基因片段用SalI和XbaI进行酶切,插入Y22-PGKCYC(SEQ IDNO.4所示)的SalI和XbaI酶切位点之间,获得苏氨酸脱氨酶(tdcB)表达质粒Y22-tdcB,其质粒图谱如图2所示。
(3)丙酰辅酶A转移酶(CpPCT)表达质粒Y33-CpPCT的构建
选取来自丙酸梭菌(Clostridium propionicum)的丙酰辅酶A转移酶,编码基因CpPCT针对酿酒酵母进行密码子优化(优化后的CpPCT的多核苷酸序列SEQ ID NO.5)后,在基因合成公司进行合成,用SalI和XbaI进行酶切,并插入载体Y33-PGKCYC上SalI和XbaI酶切位点之间,获得质粒Y33-CpPCT,其质粒图谱如图3所示。
(4)辅酶A酰化的丙醛脱氢酶(PduP)的表达质粒Y33-PduP构建
选取来自罗伊氏乳杆菌(Lactobacillus reuteri)的辅酶A酰化的丙醛脱氢酶,编码基因PduP针对酿酒酵母进行密码子优化(优化后的多核苷酸序列SEQ ID NO.6)后,在基因合成公司进行合成,用SalI和XbaI进行酶切,并插入载体Y33-PGKCYC上SalI和XbaI酶切位点之间,获得质粒Y33-PduP,其质粒图谱如图4所示。
(5)苏氨酸脱氨酶(tdcB)和酮酸脱羧酶(kivD)共表达质粒Y22-tdcB-kivD构建
选取表达来自乳酸链球菌(Lactococcus lactis)的酮酸脱羧酶,其编码基因kivD针对酿酒酵母进行密码子优化(优化后的基因kivD如SEQ ID NO.7所示)。kivD基因连同TEF1启动子、PGK1终止子经基因合成公司合成后,用KpnI和SacI酶切后,插入前述构建的质粒Y22-tdcB的KpnI和SacI酶切位点之间,获得苏氨酸脱氨酶(tdcB)和酮酸脱羧酶(kivD)共同表达质粒Y22-tdcB-kivD,其质粒图谱如图5所示。
(6)苏氨酸脱氨酶(tdcB)、酮酸脱羧酶(kivD)和乙醛脱氢酶(ALD4)共表达质粒Y22-tdcB-kivD-ALD4构建
在前述的共同表达质粒Y22-tdcB-kivD的基础上构建共表达质粒Y22-tdcB-kivD-ALD4.以酿酒酵母基因组为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物ALD4-F(5’-3’):AAACAGTCGACATGTTCAGTAGATCTACGCT;
引物ALD4-R(5’-3’):
TGCGGCCCTCTAGATTACTCGTCCAATTTGGCA;
表9.PCR反应体系:
Figure BDA0002311198370000112
Figure BDA0002311198370000121
表10.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000122
将上述获得的扩增片段用SalI和XbaI酶切后插入Y33-PGKCYC载体上的SalI和XbaI酶切位点之间,获得ALD4表达质粒Y33-ALD4;
以Y33-ALD4为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物ALD4-F2(5’-3’):
CAGTGAATTCTATTTTAGATTCCTGACTTCAACTCAAGAC;
引物ALD4-R2(5’-3’):
AGCTCGAGCTCGCAAATTAAAGCCTTCGAGC;
表11.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(Y33-ALD4) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表12.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000123
Figure BDA0002311198370000131
/>
将上述扩增的片段用SacI和EcoRI酶切后,插入到前述的质粒Y22-tdcB-kivD质粒的SacI和EcoRI酶切位点之间,获得苏氨酸脱氨酶(tdcB)、酮酸脱羧酶(kivD)和乙醛脱氢酶(ALD4)同时表达的质粒Y22-tdcB-kivD-ALD4,其质粒图谱如图6所示。
实施例2天冬氨酸激酶、高丝氨酸脱氢酶和苏氨酸合成酶共表达质粒Y33-thrABC构建
天冬氨酸激酶、高丝氨酸脱氢酶和苏氨酸合成酶均选自大肠杆菌来源,分别由thrA(NC_000913.3(337..2799)、thrB(NC_000913.3(2801..3733)和thrC(NC_000913.3(3734..5020)编码。
a.首先构建thrA表达质粒
1)以大肠杆菌基因组为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物ThrA-F(5’-3’):
TTATCTACTTTTTACAACAAATATAAAACAGTCGACATGCGAGTGTTGAAGTTCGGC;
引物ThrA-R(5’-3’):
TGACATAACTAATTACATGATGCGGCCCTCTAGATCAGACTCCTAACTTCCATGAGAGG;
表13.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(大肠杆菌基因组) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表14.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000132
Figure BDA0002311198370000141
将上述扩增的片段用SalI和XbaI酶切后插入到Y33-PGKCYC-Mss(SEQ ID NO.8)载体SalI和XbaI酶切位点之间,得到thrA表达质粒Y33-thrA。
2)然后对thrA基因进行点突变(C1034T)以去除苏氨酸对thrA的反馈抑制,以表达质粒Y33-thrA为模板,以如下引物进行PCR扩增:
引物ThrA-MuF(5’-3’):
CACGCGCCCGTATTTtCGTGGTGCTGATTACGC;
引物ThrA-MuR(5’-3’):
GAAAATACGGGCGCGTGACATCGCGGCA;
表15.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(Y33-ThrA) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表16.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000142
将上述扩增产物用内切酶DpnI消化后转化大肠杆菌,即获得带有目标突变的thrA表达质粒,命名为Y33-thrAmu,其质粒图谱如图7所示。
b.构建thrB和thrC表达质粒
1)thrB基因片段扩增
以大肠杆菌基因组为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物ThrB-GG1-F(5’-3’):
CCCGGTCTCAGAATGGTTAAAGTTTATGCCC;
引物ThrB-GG1-R(5’-3’):
CCCGGTCTCAAGGTTAGTTTTCCAGTACTCGT;
表17.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(大肠杆菌基因组) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表18.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000151
上述扩增反应得到thrB基因片段。
2)thrC基因片段扩增
以大肠杆菌基因组为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物ThrC-GG2-F(5’-3’):
CCCGGTCTCAGATGAAACTCTACAATCTGAAAGA;
引物ThrC-GG2-R(5’-3’):
CCCGGTCTCACGATTACTGATGATTCATCATCAATTTAC;
表19.PCR反应体系:
Figure BDA0002311198370000152
Figure BDA0002311198370000161
表20.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000162
上述扩增反应得到thrC基因片段。
3)启动子扩增
合成TDH3和ADH1双启动子多核苷酸片段(SEQ ID NO.9)作为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物P1-GGF(5’-3’):
CCCGGTCTCAATTCTGTATATGAGATAGTTGATTGTATGC;
引物P1-GGR(5’-3’):
CCCGGTCTCACATCTTTGTTTGTTTATGTGTGTTTATTC;
表21.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(TDH3-ADH1片段) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表22.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000171
/>
上述扩增反应得到TDH3和ADH1双启动子多核苷酸片段。
4)thrB和thrC共表达质粒T4-thrBC
将上述步骤1)-3)获得的thrB基因片段、thrC基因片段和TDH3和ADH1双启动子多核苷酸片段与载体pT4一起进行Golden gate克隆,获得thrB和thrC共表达质粒T4-thrBC,其质粒图谱如图8所示。
c.thrAmu、thrB和thrC同时表达的质粒Y33-thrABC构建
以T4-thrBC为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物T4-Mss-F(5’-3’):
GCTTTAATTTGCGGTACCGAGCTCGAATTCGTTTCTAAGACTACAGTAAGAGCAGT;
引物T4-Mss-R(5’-3’):
GTCACGACGTTGTAAAACGACGGCCAGTGTTTAAACAATCTGACTGGTTGGCTG;
表23.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(T4-thrBC) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表24.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000172
Figure BDA0002311198370000181
扩增得到thrB和thrC片段,质粒Y33-thrAmu用MssI酶切后与上述片段进行NEBuilder克隆,获得天冬氨酸激酶(thrAmu)、高丝氨酸脱氢酶(thrB)和苏氨酸合成酶(thrC)同时表达的质粒Y33-thrABC,其质粒图谱如图9所示。
实施例3天冬氨酸激酶、天冬氨酸转氨酶和磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶共表达质粒Y33-HOM3mu-ppc-aspC构建
天冬氨酸激酶来自酿酒酵母,由HOM3基因(NC_001137.3(256375..257958))编码;天冬氨酸转氨酶来自大肠杆菌,由aspC基因(NC_000913.3(984519..985709))编码;磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶来自大肠杆菌,由ppc基因(NC_000913.3(4150447..4153098))编码。
a.构建HOM3表达质粒Y33-HOM3mu
1)以酿酒酵母基因组为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物HOM3-F(5’-3’):
CTACTTTTTACAACAAATATAAAAACAGTCGACATGCCAATGGATTTCCAACCTA;
引物HOM3-R(5’-3’):
TGACATAACTAATTACATGATGCGGCCCTCTAGATTAAATTCCAAGTCTTTTCAATTGT;
表25PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(酿酒酵母基因组) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表26.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000182
Figure BDA0002311198370000191
将上述扩增得到的片段用SalI和XbaI酶切后插入到Y33-PGKCYC-Mss载体SalI和XbaI酶切位点之间,得到HOM3表达质粒Y33-HOM3。
2)然后对HOM3基因进行点突变(G1387A)以去除苏氨酸对HOM3的反馈抑制,以步骤1)获得的表达质粒Y33-HOM3为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物HOM3-MuF(5’-3’):
TTACTACTCTTGCTAAAGAAGGCATCAACATTG;
引物HOM3-MuR(5’-3’):
TAGCAAGAGTAGTAAACATGGTACCAGCA;
表27.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(Y33-HOM3) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表28.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000192
将上述扩增产物转化大肠杆菌,即获得带有目标突变的HOM3表达质粒,命名为Y33-HOM3mu,其质粒图谱如图10所示。
b.构建aspC和ppc同时表达的表达质粒
1)扩增ppc基因片段
以大肠杆菌基因组为模板,以如下引物进行PCR扩增:
引物ppc-GG1-F(5’-3’):
CCCGGTCTCAGAATGAACGAACAATATTCCGCAT;
引物ppc-GG1-R(5’-3’):
CCCGGTCTCAAGGTTAGCCGGTATTACGCATACC;
表29.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(大肠杆菌基因组) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表30.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000201
2)扩增aspC基因片段
以大肠杆菌基因组为模板,以如下引物进行PCR扩增:
引物aspC-GG2-F(5’-3’):
CCCGGTCTCAGATGTTTGAGAACATTACCGC;
引物aspC-GG2-R(5’-3’):
CCCGGTCTCACGATTACAGCACTGCCACAATC;
表31.PCR反应体系:
Figure BDA0002311198370000202
Figure BDA0002311198370000211
表32.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000212
3)合成TDH3和ADH1双启动子多核苷酸片段,与实施例2中的合成TDH3和ADH1双启动子多核苷酸片段的步骤相同。
4)ppc和aspC表达质粒T4-ppc-aspC构建
将上述步骤1)-3)获得的ppc基因片段、aspC基因片段和TDH3和ADH1双启动子多核苷酸片段与载体pT4一起进行Golden gate克隆,获得ppc和aspC共表达质粒T4-ppc-aspC,其质粒图谱如图11所示。
c.HOM3mu、ppc和aspC同时表达的质粒Y33-HOM3mu-ppc-aspC构建
以前述步骤获得的质粒T4-ppc-aspC为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物T4-Mss-F(5’-3’):
GCTTTAATTTGCGGTACCGAGCTCGAATTCGTTTCTAAGACTACAGTAAGAGCAGT;
引物T4-Mss-R(5’-3’):
GTCACGACGTTGTAAAACGACGGCCAGTGTTTAAACAATCTGACTGGTTGGCTG;
表33.PCR反应体系:
Figure BDA0002311198370000213
Figure BDA0002311198370000221
表34.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000222
上述扩增的ppc和aspC表达片段,质粒Y33-HOM3mu用MssI酶切后与上述片段进行NEBuilder克隆,获得天冬氨酸激酶(HOM3mu)、天冬氨酸转氨酶(aspC)和磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(ppc)同时表达的质粒Y33-HOM3mu-ppc-aspC,其质粒图谱如图12所示。
实施例4同时表达天冬氨酸激酶、天冬氨酸转氨酶、磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶、高丝氨酸脱氢酶、苏氨酸合成酶的质粒Y33-Thrsix的构建
以实施例2获得的Y33-thrABC为模板,利用如下引物进行PCR扩增:
引物PGTr-F(5’-3’):
CTGCCTTGAGCTCCAGCCAACCAGTCAGATTGTTTTATTTTAGATTCCTGACTTCAACTC;
引物TDTr-R(5’-3’):
GTCACGACGTTGTAAAACGACGGCCAGTGTTTAAACAAGGCAGCAATATATTGTTTACTT;
表35.PCR反应体系:
Figure BDA0002311198370000223
Figure BDA0002311198370000231
表36.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000232
上述扩增得到thrA、thrB和thrC表达的多核苷酸片段;将实施例3获得的质粒Y33-HOM3mu-ppc-aspC用MssI酶切后与上述片段进行NEBuilder组装,获得同时表达天冬氨酸激酶(HOM3mu)、天冬氨酸转氨酶(aspC)和磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(ppc)、天冬氨酸激酶(thrAmu)、高丝氨酸脱氢酶(thrB)和苏氨酸合成酶(thrC)的质粒Y33-Thrsix,其质粒图谱如图13所示。
实施例5同时表达苏氨酸脱氨酶(tdcB)、酮酸脱羧酶(kivD)和丙酰辅酶A合成酶(prpE)质粒Y22-tdcB-kivD-prpE的构建
a.表达质粒Y22-tdcB-kivD-V2的构建
1)kivD基因扩增
以kivD基因(SEQ ID NO.7)为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物kivD-F2(5’-3’):
ATAAACAAACAAAATGTACACCGTGGGTGACTACT;
引物kivD-R2(5’-3’):
ACACTTATTTTTTTTATAACTTTAGCTTTTGTTCTGCTCCGCAA;
表37.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(kivD合成序列) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表38.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000241
2)扩增TDH3启动子(SEQ ID NO.10)
以酵母基因组为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物TDH3p-F(5’-3’):
CACGACGTTGTAAAACGACGGCCAGTGAATTCGAGCTATACTAGCGTTGAATGTTAGC;
引物TDH3p-R(5’-3’):
TCACCCACGGTGTACATTTTGTTTGTTTATGTGTGTTTATTCG;
表39.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(酿酒酵母基因组) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表40.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000242
Figure BDA0002311198370000251
3)扩增ADH1终止子(SEQ ID NO.11)
以酵母基因组为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物ADH1t-F(5’-3’):
GAGCAGAACAAAAGCTAAAGTTATAAAAAAAATAAGTGTATACAAATT;
引物ADH1t-R(5’-3’):
GACGCTCGAAGGCTTTAATTTGCGGTACCGAGCTCTCGGCATGCCGGTAG;
表41PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(酿酒酵母) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表42.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000252
4)表达质粒Y22-tdcB-kivD-V2的获得
取实施例1中的质粒Y22-tdcB用SacI酶切后,与步骤1)-3)获得的kivD基因、TDH3启动子和ADH1终止子片段进行NEBuilder组装,获得tdcB和kivD同时表达的质粒Y22-tdcB-kivD-V2,其质粒图谱如图14所示。
b.表达质粒Y22-tdcB-kivD-prpE的构建
1)扩增prpE基因(连带终止子)
取实施例1的质粒Y33-prpE为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物prpE-F3(5’-3’):
ACATAAACAAACAAAATGTCCTTCTCCGAATTTTATC;
引物prpE-R3(5’-3’):
TTCCCAGTCACGACGTTG;
表43.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(Y33-prpE) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表44.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000261
2)扩增TDH3启动子
以酵母基因组为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物TDH3p-F2(5’-3’):
TTGACGCTAACATTCAACGCTAGTATAGCTCGAATTTCATTATCAATACTGCCATTTCA;
引物TDH3p-R2(5’-3’):
AAATTCGGAGAAGGACATTTTGTTTGTT TATGTGTGTTTATTCG;
3)Y22-tdcB-kivD-prpE构建
将上述获得的质粒Y22-tdcB-kivD-V2用EcoRI酶切后,与上述扩增的prpE基因(连带终止子)、TDH3启动子片段一起进行NEBuilder组装,获得同时表达苏氨酸脱氨酶(tdcB)、酮酸脱羧酶(kivD)和丙酰辅酶A合成酶(prpE)的质粒Y22-tdcB-kivD-prpE,其质粒图谱如图15所示。
实施例6L-高丝氨酸-O-乙酰基转移酶(MET2)、乙酰乳酸合成酶(ILV6)、苏氨酸醛缩酶(GLY1)基因敲除质粒的构建
利用CRISPR技术无痕敲除目标基因,针对每个欲敲除的基因构建敲除质粒。
a.MET2基因敲除质粒pCas-MET2-del
以质粒pST1.G.Ura3为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物MET2-del-F(5’-3’):
AAAGGTCTCAGATCGTAGAGGAGCAACCTGTGGCGTTTTAGAGCTAGAAATAGCAAGTTA;
引物MET2-del-R(5’-3’):
AAAGGTCTCTAAACGACTCAAGCACTAGTTCCGGGATCATTTATCTTTCACTGCGG;
表45.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(pST1.G.Ura3) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表46.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000271
将上述扩增的片段与质粒pCas进行Golden gate克隆,所得质粒命名为pCas-MET2-del,其质粒图谱如图16所示。
b.ILV6基因敲除质粒pCas-ILV6-del
以质粒pST1.G.Ura3为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物ILV6-del-F(5’-3’):
AAAGGTCTCAGATCATAGTCTAGGACGGCGTAGAGTTTTAGAGCTAGAAATAGCAAGTTA;
引物ILV6-del-R(5’-3’):
AAAGGTCTCTAAACGACCAATTCTTGGGAGTCAGGATCATTTATCTTTCACTGCGG;
表47.PCR反应体系:
成分 体积(微升)
上游引物 2.5
下游引物 2.5
模板(pST1.G.Ura3) 0.5
5×Q5 Reaction Buffer 10
dNTPs(10mM) 1
Q5 DNA polymerase(NEB公司) 0.5
超纯水 33
总体积 50
表48.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000281
将上述扩增得到的片段,与质粒pCas进行Golden gate克隆,所得质粒命名为pCas-ILV6-del,其质粒图谱如图17所示。
c.GLY1基因敲除质粒pCas-GLY1-del
以质粒pST1.G.Ura3为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物GLY1-del-F(5’-3’):
AAAGGTCTCAGATCCGAACAGACCGTTGCCCGCAGTTTTAGAGCTAGAAATAGCAAGTTA;
引物GLY1-del-R(5’-3’):
AAAGGTCTCTAAACGCACACAAACGCAAACATAAGATCATTTATCTTTCACTGCGG;
表49.PCR反应体系:
Figure BDA0002311198370000282
Figure BDA0002311198370000291
表50.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000292
将上述扩增得到片段,与质粒pCas进行Golden gate克隆,所得质粒命名为pCas-GLY1-del,其质粒图谱如图18所示。
实施例7丙酮酸激酶(PYK1)基因启动子敲除表达质粒pCas-PYK1p-del的构建
利用CRISPR技术无痕敲除目标基因,构建丙酮酸激酶(PYK1)基因启动子敲除表达质粒pCas-PYK1p-del。
PYK1启动子敲除质粒构建
利用CRISPR技术无痕敲除PYK1启动子,以实现弱启动子替换,以质粒pST1.G.Ura3为模板,以如下引物进行PCR反应:
引物PYK1p-del-F(5’-3’):
AAAGGTCTCAGATCCGATGGCAAAACGACCCACGGTTTTAGAGCTAGAAATAGCAAGTTA;
引物PYK1p-del-R(5’-3’):
AAAGGTCTCTAAACTATGATGCTAGGTACCTTTAGATCATTTATCTTTCACTGCGG;
表51.PCR反应体系:
Figure BDA0002311198370000293
Figure BDA0002311198370000301
表52.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000302
将上述扩增得到片段,与质粒pCas进行Golden gate克隆,所得质粒命名为pCas-PYK1p-del,其质粒图谱如图19所示。
实施例8野生型酵母菌以丙酸为底物合成奇数链脂肪酸
本实施例测试了酵母菌:Saccharomyces cerevisiae W303-1A、Pichia pastorisGS115、Kluyveromyces lactis CBS2359、Torulaspora delbrueckii CICC 31863、Yarrowia lipolytica op1f、Lipomyces starkeyi 2.2291、Candida sp.CICC 1785。各菌株基因型见下表53:
表53各菌株基因型
Figure BDA0002311198370000303
采用上述菌株,利用YPD培养基和矿物质培养基进行发酵,所述矿物质培养基中含有丙酸钠(4g/L,pH调整到6.0)和含有20g/L的葡萄糖。其中葡萄糖作为碳源,丙酸钠作为发酵底物合成奇数链脂肪酸。
发酵方法为:酵母菌株接种于5mL YPD培养基中,28℃、250rpm转速在摇床中培养24小时;用灭菌水洗涤1次,接种于15mL发酵培养基(矿物质培养基)中,初始菌株OD600值0.3,28℃、250rpm转速在摇床中培养60小时,得含有奇数链脂肪酸的发酵液。
将不同酵母菌上述合成的奇数链脂肪酸进行GC-MS分析,结果如下表54,各个酵母菌所产生脂肪酸的种类如图20所示。
表54不同酵母菌发酵产生的奇数链脂肪酸
菌株 总脂肪酸产量mg/L 奇数链脂肪酸产量mg/L 奇数链脂肪酸比例%
S.cerevisiae 88.5 12.6 14.2
P.pastoris 186.5 39.2 21.0
K.lactis 302.1 142.4 47.1
T.delbrueckii 57.5 10.5 18.2
Y.lipolytica 175.9 12.9 7.3
L.starkeyi 43.2 16.8 38.9
Candida sp. 35.3 6.2 17.4
由上表54和图20可知,不同的酵母菌在含有丙酸的培养基中均能合成奇数链脂肪酸。其中乳酸克鲁维酵母Kluyveromyces lactis CBS2359能够产生142.4mg/L奇数链脂肪酸,占总脂肪酸的47.1%。
实施例9表达丙酰辅酶A合成酶酵母菌株以丙酸为底物合成奇数链脂肪酸
(1)利用醋酸锂转化法将实施例1的质粒Y33-prpE转化酿酒酵母菌株。
所用酿酒酵母菌株为YJZ45(MATa MAL2-8c SUC2 hfd1Δpox1Δfaa1Δfaa4Δhis3Δ::HIS3+(TPIp-MmACL-FBA1t)+(TDH3p-RtME-CYC1t)+(tHXT7p-’MDH3-TDH2t)+(PGK1p-CTP1-ADH1t)+(TEF1p-‘tesA-HIS3t)ura3Δ::(TPIp-RtFAS1-FBA1t)+(TEF1p-RtFAS2-CYC1t)+amdSym acc1::KlURA3+TEF1p-ACC1)
获得基因工程改造菌株YJZ45-prpE(MATa MAL2-8c SUC2 hfd1Δpox1Δfaa1Δfaa4Δhis3Δ::HIS3+(TPIp-MmACL-FBA1t)+(TDH3p-RtME-CYC1t)+(tHXT7p-’MDH3-TDH2t)+(PGK1p-CTP1-ADH1t)+(TEF1p-‘tesA-HIS3t)ura3Δ::(TPIp-RtFAS1-FBA1t)+(TEF1p-RtFAS2-CYC1t)+amdSymacc1::KlURA3+TEF1p-ACC1PGK1p-prpE-CYC1t)。
(2)利用表达丙酰辅酶A合成酶酵母菌株YJZ45-prpE进行发酵
分别挑取酵母菌株YJZ45-prpE和对照的酵母菌株YJZ45的单菌落接种于5mL省却特定成分尿嘧啶的液体CM培养基中,30℃、250rpm摇床培养12-16小时,获得种子液。随后将所得种子液转接到10mL发酵培养基即省却特定成分尿嘧啶的液体CM培养基中,初始OD600=0.3,并加入丙酸钠(pH调整到6.0)使终浓度达到4g/L,30℃、250rpm摇床培养60小时,取样检测脂肪酸含量GC-MS分析,结果如下表55所示:
表55菌株YJZ45-prpE发酵产生的奇数链脂肪酸产量
Figure BDA0002311198370000311
由此可见,表达丙酰辅酶A合成酶的重组酿酒酵母菌株YJZ45-prpE在含有丙酸培养基中发酵产出的奇数链脂肪酸产量能够达到223.5mg/L,占总脂肪酸的21.6%。
实施例10以L-苏氨酸为底物合成奇数链脂肪酸
培养基中直接添加丙酸不仅对酵母菌生长产生抑制,而且还会提高发酵成本。因此,本实施例披露了利用基因改造酵母菌将苏氨酸转化为奇数链脂肪酸的方法。本发明提出了从丙醛到丙酰辅酶A的3种酶促转化方案(如图23所示):1)丙醛在醛脱氢酶(ALD)的催化下转化为丙酸,丙酸在丙酰辅酶A转移酶(PCT)的催化下与乙酰辅酶A反应生成丙酰辅酶A;2)丙醛在辅酶A酰化的丙醛脱氢酶(PduP)的催化下直接转化为丙酰辅酶A;3)丙醛在丙酰辅酶A合成酶(prpE)的催化下转化为丙酰辅酶A。但是丙醛在细胞内的含量也及其微少,为了在细胞内实现这些途径,本实施例通过表达苏氨酸脱氨酶和酮酸脱羧酶将L-苏氨酸转化为丙醛(如图23中的(4))。具体如下
(1)表达不同多肽组合酵母菌株的获得:
利用醋酸锂转化法将实施例1的质粒Y22-tdcB和Y33-CpPCT转化酿酒酵母菌株W303-1A,获得菌株W303-tdcB-PCT,即表达苏氨酸脱氨酶和丙酰辅酶A转移酶的重组菌株;
利用醋酸锂转化法将实施例1的质粒Y22-tdcB和Y33-PduP转化酿酒酵母菌株W303-1A,获得菌株W303-tdcB-PduP,即表达苏氨酸脱氨酶和辅酶A酰化的丙醛脱氢酶的重组菌株;
利用醋酸锂转化法将实施例1的质粒Y22-tdcB和Y33-prpE转化酿酒酵母菌株W303-1A,获得菌株W303-tdcB-prpE,即表达苏氨酸脱氨酶和丙酰辅酶A合成酶的重组菌株。
(2)表达不同多肽组合酵母菌株进行发酵
将上述步骤(1)的菌株和对照菌株进行发酵,发酵方法同实施例9,区别在于发酵培养基中不含有丙酸钠,而是含有10g/L的L-苏氨酸。
(3)产出脂肪酸含量分析
步骤(2)中利用表达不同多肽组合酵母菌株进行发酵产生的奇数链脂肪酸产量进行GC-MS分析,如下表56所示
表56各重组菌株脂肪酸生产情况
Figure BDA0002311198370000321
由上表可知,在表达苏氨酸脱氨酶(tdcB)同时表达丙酰辅酶A转移酶(CpPCT)、辅酶A酰化的丙醛脱氢酶(PduP)或者丙酰辅酶A合成酶(prpE)的情况下,能够显著提高重组酵母菌在含有L-苏氨酸的培养基中合成奇数链脂肪酸比例。其中苏氨酸脱氨酶(tdcB)和丙酰辅酶A合成酶(prpE)同时表达能够合成最高的奇数链脂肪酸,达到53.3mg/L,占总脂肪酸比例为33.6%。
实施例11以L-苏氨酸为底物prpE途径的表达优化合成奇数链脂肪酸
从实施例10中的L-苏氨酸到丙酰辅酶A的3种酶促催化方案在酵母中都可以实现,但是为了prpE途径获得最佳的奇数链脂肪酸转化效率,本实施例对prpE途径中各个步骤的催化酶进行了不同来源的挑选与表达(如图24),以获得最佳的奇数链脂肪酸合成效果。
(1)重组酵母菌株的构建
利用醋酸锂转化法将实施例1的质粒Y22-tdcB和Y33(YCplac33,ATCC87586)转化酿酒酵母菌株W303-1A,获得表达tdcB的酵母菌株W303-tdcB;
利用醋酸锂转化法将Y22(YCplac22,ATCC87585)和实施例1的Y33-prpE转化酿酒酵母菌株W303-1A,获得表达prpE的酵母菌株W303-prpE;
利用醋酸锂转化法将实施例1的质粒Y22-tdcB-kivD-ALD4和Y33转化酿酒酵母菌株W303-1A,获得同时表达tdcB、kivD和ALD4的酵母菌株W303-tdcB-kivD-ALD4;
利用醋酸锂转化法实施例1的Y22-tdcB-kivD-ALD4和Y33-prpE转化酿酒酵母菌株W303-1A,获得表达tdcB、kivD、ALD4和prpE的酵母菌株W303-tdcB-kivD-ALD4-prpE。
(2)发酵
将上述步骤(1)中的菌株进行发酵,发酵方法同实施例9,不同之处在于发酵培养基中不加丙酸钠,而是加入L-苏氨酸终浓度达到10g/L。
(3)脂肪酸含量GC-MS分析
各重组菌株脂肪酸生产情况如图21所示,由此可见,组合表达苏氨酸脱氨酶(tdcB)、酮酸脱羧酶(kivD)、乙醛脱氢酶(ALD4)以及丙酰辅酶A合成酶(prpE)能够增加酿酒酵母以L-苏氨酸为底物合成奇数链脂肪酸的产量。其中同时表达tdcB和prpE能够产生105mg/L奇数链脂肪酸,占总脂肪酸的37.2%。
实施例12以葡萄糖为底物基因过表达合成奇数链脂肪酸
在培养基中添加苏氨酸虽然对酵母生长没有明显的抑制现象,但却会提高发酵的成本,因此也存在一定的弊端。发明人研究发现酵母菌自身就能够以葡萄糖等常规碳源和氮源合成苏氨酸,进而合成奇数链脂肪酸。只是酵母细胞内苏氨酸浓度较低,合成奇数链脂肪酸产量也低。因此,本实施例披露了通过基因改造改变酵母菌代谢网络(如图22所示),进而提高从葡萄糖到奇数链脂肪酸转化效率的方法。
(1)重组酵母菌株的构建
利用醋酸锂转化法将实施例1的质粒Y22-tdcB-kivD-prpE和Y33转化酿酒酵母菌株W303-1A,获得tdcB、kivD和prpE同时表达的酵母菌株W303-tkp;
利用醋酸锂转化法将实施例5的质粒Y22-tdcB-kivD-prpE和实施例3的质粒Y33-HOM3mu转化酿酒酵母菌株W303-1A,获得表达tdcB、kivD、prpE和HOM3点突变基因的酵母菌株W303-tkp-HOM3mu;
利用醋酸锂转化法将实施例5的质粒Y22-tdcB-kivD-prpE和实施例2的质粒Y33-thrAmu转化酿酒酵母菌株W303-1A,获得表达tdcB、kivD、prpE和thrA点突变基因的酵母菌株W303-tkp-thrAmu;
利用醋酸锂转化法将实施例5的质粒Y22-tdcB-kivD-prpE和实施例3的质粒Y33-HOM3mu-ppc-aspC转化酿酒酵母菌株W303-1A,获得表达tdcB、kivD、prpE、HOM3点突变、ppc和aspC基因的酵母菌株W303-tkp-HOM3mu-ppc-aspC;
利用醋酸锂转化法将实施例5的质粒Y22-tdcB-kivD-prpE和实施例2的质粒Y33-thrABC转化酒酵母菌株W303-1A,获得表达tdcB、kivD、prpE、thrA点突变、thrB和thrC基因的酵母菌株W303-tkp-thrABC;
利用醋酸锂转化法将实施例5的质粒Y22-tdcB-kivD-prpE和实施例4的质粒Y33-Thrsix转化酿酒母菌株W303-1A,获得表达tdcB、kivD、prpE、HOM3点突变、ppc、aspC、thrA点突变、thrB和thrC基因的酵母菌株W303-tkp-Thrsix。
(2)发酵
将步骤(1)中的重组酵母菌株进行发酵,发酵方法同实施例9,不同之处在于发酵培养基中不加丙酸钠,而是只含有葡萄糖终浓度达到20g/L。
(3)脂肪酸含量GC-MS分析结果
各重组菌株脂肪酸生产情况如下表57所示:
表57各重组菌株脂肪酸生产情况
Figure BDA0002311198370000331
Figure BDA0002311198370000341
由上表可见,组合表达苏氨酸脱氨酶基因(tdcB)、酮酸脱羧酶基因(kivD)以及丙酰辅酶A合成酶基因(prpE)的重组酵母菌株能够以常规培养基(以葡萄糖为碳源)合成奇数链脂肪酸。此外,含有组合表达天冬氨酸激酶(thrA\HOM3,可带有点突变以使酶活力提高)、高丝氨酸脱氢酶(ThrB)、苏氨酸合成酶(ThrC)、天冬氨酸转氨酶(aspC)和磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶(ppc)中的1个或多个的菌株可以增加奇数链脂肪酸的产量和所占的比例。其中含有全部上述基因能够以20g/L葡萄糖为底物产生22.5mg/L奇数链脂肪酸,占总脂肪酸的21.8%。
实施例13以葡萄糖为底物基因敲除合成奇数链脂肪酸
(1)基因敲除donor制备
针对每个欲敲除的L-高丝氨酸-O-乙酰基转移酶(MET2)、乙酰乳酸合成酶(ILV2/ILV6)、苏氨酸醛缩酶(GLY1)基因分别合成donor引物:
引物MET2-donor1-F(5’-3’):
CTGGACATTGAGGAGATTAAGGAAACTAACCCATTGCTCAAACTAGTTCAAGGGCAGAGGATTACCGATGCC;
引物MET2-donor2-R(5’-3’):
CGTCTTCGTTTCATCGTTACCAACGTCACCTCCCCAAGCTCTTGGAGCGGCATCGGTAATCCTCTGCCCTTG;
引物ILV6-donor1-F(5’-3’):
TACATAGTTCGTATATACAGAATCTTTAGAACATCTGAGCTCACTAACCCAGTCTTTCTAGTTAGTCTCT;
引物ILV6-donor2-R(5’-3’):
TACGTTATATAGATGTATAGAGGAGAGTCCCGAGGGCGATCGCAAGGCCGAGAGACTAACTAGAAAGACT;
引物GLY1-donor1-F(5’-3’):
TGTTTCCGCTGGCTAGTTCGTAACCACCTCCTTTCCTAGGCTTACACTCACTTTTACTCCaTGGGACTTTG;
引物GLY1-donor2-R(5’-3’):
ATAGAGTATGGAGGTTGCATCAAGTGAGTTCTGATGGCAATCTGGTTGGACAAAGTCCCAtGGAGTAAAAG;
取上述引物按照下表58配制反应体系:
表58反应体系
组分 体积
上游引物(100μM) 10μL
下游引物(100μM) 10μL
Q5酶 1μL
Q5 buffer 10μL
dNTP 10μL
ddH2O 9μL
总体积 50μL
取上述反应体系按照下表59的反应程序进行PCR反应:
表59反应程序
Figure BDA0002311198370000351
上述反应程序结束后利用乙醇沉淀的方法回收多核苷酸,分别对应MET2、ILV6和GLY1的donor。
(2)敲除菌株的构建
2.1利用醋酸锂转化法分别将实施例6的3个敲除质粒500ng和10000ng donor片段转化酿酒酵母W303-1A,利用CM-Ura(CM培养基缺少尿嘧啶)平板进行筛选,即获得MET2、ILV6和GLY1分别敲除的酵母菌株。
2.2敲除质粒的丢失:将MET2、ILV6和GLY1分别敲除的酵母菌株接种于液体YPD中培养24小时,之后涂YPD平板。挑选单菌落分别涂布于YPD平板和CM-Ura平板,在YPD平板生长但在CM-Ura(CM培养基缺少尿嘧啶)平板上不能生长的单菌落即为丢失敲除质粒的酵母菌株。将MET2、ILV6和GLY1分别敲除且敲除质粒已丢失的酵母菌株命名为W303Δmet2、W303Δilv6和W303Δgly1。
2.3表达质粒的加入:将实施例5的质粒Y22-tdcB-kivD-prpE和实施例4的质粒Y33-Thrsix共同分别转化W303Δmet2、W303Δilv6和W303Δgly1,获得目标基因敲除且表达tdcB、kivD、prpE、HOM3(点突变)、ppc、aspC、thrA(点突变)、thrB和thrC基因的酵母菌株,分别命名为Δmet2-tkp-Thrsix、Δilv6-tkp-Thrsix和Δgly1-tkp-Thrsix。
(3)发酵
将步骤(2)中的菌株Δmet2-tkp-Thrsix、Δilv6-tkp-Thrsix和Δgly1-tkp-Thrsix进行发酵,发酵方法同实施例9,不同之处在于发酵培养基中不加丙酸钠,而是只含有葡萄糖终浓度达到20g/L。
(4)脂肪酸含量GC-MS分析结果
各重组菌株脂肪酸生产情况如下表60所示:
表60各重组菌株脂肪酸生产情况
Figure BDA0002311198370000352
由此可见,敲除酵母菌的L-高丝氨酸-O-乙酰基转移酶(MET2)、乙酰乳酸合成酶(ILV6)和苏氨酸醛缩酶(GLY1)中的任何一个都能够提高奇数链脂肪酸的产量和比例,奇数链脂肪酸产量最高达到38.1mg/L,奇数链脂肪酸比例最高达到28.4%。
实施例14以葡萄糖为底物限制丙酮酸激酶(PYK1)表达合成奇数链脂肪酸
PYK1是本发明奇数链脂肪酸合成的糖酵解途径中的关键酶,表达强度高。本发明通过降低PYK1的表达增加磷酸烯醇式丙酮酸的积累进而提高经由苏氨酸的奇数链脂肪酸的合成。为了降低PYK1表达,需用弱启动子替代PYK1自身启动子。
(1)弱启动子donor准备:选用酿酒酵母基因组为模板,分别以如下引物进行PCR,获得弱启动子片段COX9(SEQ ID NO.12)、QCR10(SEQ ID NO.13)、ATP14(SEQ ID NO.14)、ISU1(SEQ ID NO.15)、PFK1(SEQ ID NO.16):
引物COX9-P1(5’-3’):
TAATCCAGAAACTGGCACTTGACCCAACTCTGCCAGTACTTCAAATCTACGTCCAAG;
引物COX9-P2(5’-3’):
TAATCCAGAAACTGGCACTTGACCCAACTCTGCCAGTCTGTGTAAGTCGCTTGT;
引物QCR10-P1(5’-3’):
TAATCCAGAAACTGGCACTTGACCCAACTCTGCCAATTTACAAGCACATCCCTGA;
引物QCR10-P2(5’-3’):
ACGTTTAATGAGGTCAATCTTTCTAATCTAGACATTGAGGTTAGTTTTAAGTCTTATGG;
引物ATP14-P1(5’-3’):
TAATCCAGAAACTGGCACTTGACCCAACTCTGCCAGAAGAAAAAGCGGGAAACG;
引物ATP14-P2(5’-3’):
ATGTCTAGATTAGAAAGATTGACCTCATTAAACGTTTTTGATTAGGACTGGTACGC;
引物ISU1-P1(5’-3’):
TAATCCAGAAACTGGCACTTGACCCAACTCTGCCACTTGAAAAGAAAGAGAACAGC;
引物ISU1-P2(5’-3’):
ACGTTTAATGAGGTCAATCTTTCTAATCTAGACATCAGGTTAAATATGTGTTATGTGT;
引物PFK1-P1(5’-3’):
TAATCCAGAAACTGGCACTTGACCCAACTCTGCCATGTAAAAAATGCAATCACGTTTTC;
引物PFK1-P2(5’-3’):
ACGTTTAATGAGGTCAATCTTTCTAATCTAGACATCTTTGATATGATTTTGTTTCAGATT;
表61.PCR反应体系:
Figure BDA0002311198370000361
Figure BDA0002311198370000371
表62.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000372
以上述扩增获得的弱启动子分别作为模板,用以下引物进行PCR扩增,获得两端带有约70bp同源序列的弱启动子片段(donor):
引物PYK1-HF(5’-3’):
CCTCTATGGCGTGTGATGTCTGTATCTGTTACTTAATCCAGAAACTGGCACTTGACC;
引物PYK1-HR(5’-3’):
ATGATGGAGGTTCTTCTCAAGTCAGAACCAGCAACAACGTTTAATGAGGTCAATCTTTC;
表63.PCR反应体系:
Figure BDA0002311198370000373
表64.PCR反应程序:
Figure BDA0002311198370000381
(2)弱启动子菌株的构建
2.1利用醋酸锂转化法将实施例7的敲除质粒(pCas-PYK1p-del)500ng和3000ng步骤(1)的两端带有约70bp同源序列的弱启动子donor片段转化酿酒酵母W303-1A,利用CM-Ura(CM培养基缺少尿嘧啶)平板进行筛选,即获得弱启动子替换PYK1启动子的酵母菌株。
2.2敲除质粒的丢失:将弱启动子替换PYK1启动子的酵母菌株接种于液体YPD中培养24小时,之后涂YPD平板。挑选单菌落分别涂布于YPD平板和CM-Ura平板,在YPD平板生长但在CM-Ura平板上不能生长的单菌落即为丢失敲除质粒的酵母菌株。
将弱启动子COX9、QCR10、ATP14、ISU1、PFK1分别替换PYK1启动子、且丢失敲除质粒的酵母菌株分别命名为W303-COX9p、W303-QCR10p、W303-ATP14p、W303-ISU1p和W303-PFK1p。
2.3表达质粒的加入:将实施例5的质粒Y22-tdcB-kivD-prpE和实施例4的质粒Y33-Thrsix共同分别转化W303-COX9p、W303-QCR10p、W303-ATP14p、W303-ISU1p和W303-PFK1p,获得PYK1减少表达且表达tdcB、kivD、prpE、HOM3(点突变)、ppc、aspC、thrA(点突变)、thrB和thrC基因的酵母菌株,分别命名为COX9p-tkp-Thrsix、QCR10p-tkp-Thrsix、ATP14p-tkp-Thrsix、ISU1p-tkp-Thrsix和PFK1p-tkp-Thrsix。
(3)发酵
将上述菌株进行发酵,发酵方法同实施例9,不同之处在于发酵培养基中不加丙酸,而是加入葡萄糖终浓度达到20g/L。
(4)脂肪酸含量GC-MS分析结果
各重组菌株脂肪酸生产情况如下表65所示:
表65各重组菌株脂肪酸生产情况
Figure BDA0002311198370000382
由上表可知,用弱启动子替换PYK1启动子部分序列可以降低PYK1基因表达,并增加奇数链脂肪酸的产量和比例。其中,用弱启动子QCR10替换PYK1启动子的重组菌株可以产生38.7mg/L奇数链脂肪酸,占总脂肪酸比例达到29.4%。
显然,上述实施例仅仅是为清楚地说明所作的举例,而并非对实施方式的限定。对于所属领域的普通技术人员来说,在上述说明的基础上还可以做出其它不同形式的变化或变动。这里无需也无法对所有的实施方式予以穷举。而由此所引伸出的显而易见的变化或变动仍处于本发明创造的保护范围之中。
SEQUENCE LISTING
<110> 北京化工大学
<120> 重组质粒组合、基因改造酵母菌及生产奇数链脂肪酸方法
<130> HA201803820
<160> 18
<170> PatentIn version 3.3
<210> 1
<211> 1887
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 1
atgtccttct ccgaatttta tcagaggtcc atcaacgagc cagaagcatt ttgggccgaa 60
caagccagaa gaatcgattg gagacagcca ttcacccaaa ccttggatca ctccagacct 120
ccatttgcta ggtggttttg cggcggtact actaaccttt gccataacgc cgtcgatagg 180
tggagagata agcaaccaga ggctttggct ttgatcgcag tttcctccga aaccgacgaa 240
gaaagaacct tcaccttctc ccagttgcac gacgaagtca acatcgttgc cgctatgttg 300
ttgtccttgg gagttcaaag aggcgacaga gtcttggtct acatgccaat gatcgccgaa 360
gctcaaatca ccttgttggc ttgcgctaga attggtgcca tccattccgt cgttttcggt 420
ggtttcgctt ctcattccgt tgcagctaga atcgacgacg ctagaccagc tttgatcgtt 480
tcagcagacg caggagctag aggaggtaaa atcttgccat acaagaagtt gttggacgac 540
gccattgctc aagctcaaca ccaaccaaag cacgtcttgt tggtggatag aggtttggct 600
aagatggctt gggtggacgg tagagatttg gacttcgcta ccttgaggca gcaacatttg 660
ggagcttccg ttccagttgc ttggttagaa tccaacgaga cctcttgcat cttgtacacc 720
tccggtacta caggtaagcc aaaaggcgtt cagagagacg ttggaggtta cgcagttgct 780
ttggctacct ccatggatac cattttcggc ggtaaagcag gcggagtttt cttttgcgct 840
tccgatatcg gttgggttgt tggtcattcc tacatcgtct acgctccatt gttggcaggt 900
atggctacta tcgtctacga gggtttgcca acttacccag attgcggcgt ttggtggaaa 960
atcgtggaga agtaccaggt caacaggatg ttttccgctc caaccgccat tagagtcttg 1020
aagaagttcc caaccgccca aatcaggaac cacgatttgt cctccttgga ggctttgtac 1080
ttggcaggag aaccattgga cgaaccaaca gcttcttggg ttaccgaaac tttgggcgtt 1140
ccagtcatcg acaactattg gcagaccgaa tccggttggc caattatggc tttggcaaga 1200
gccttggacg atagaccatc aagattgggt tccccaggag ttccaatgta cggttacaac 1260
gtccagttgt tgaacgaagt taccggcgaa ccttgcggta ttaacgagaa gggcatgttg 1320
gttatcgaag gtccattgcc accaggttgt atccaaacca tttggggaga cgacgctaga 1380
ttcgtcaaga cctattggtc cttgttcaac agacaggtct acgctacttt cgattggggt 1440
atcagggacg cagagggtta ctacttcatc ttgggcagaa ccgacgacgt tatcaacatc 1500
gccggtcata gattgggtac tagagaaatc gaggaatcca tctcctccta cccaaacgtt 1560
gccgaagttg ccgttgttgg tattaaggac gctttgaagg gtcaagttgc agttgccttc 1620
gtcatcccaa agcaatccga tactttggcc gatagagaag ccgctagaga cgaagagaac 1680
gctattatgg ccttggttga taatcagatc ggacatttcg gtagaccagc tcacgtttgg 1740
ttcgtttccc aattgccaaa gaccaggtcc ggtaagatgt tgagaaggac catccaggct 1800
atttgcgaag gtagagaccc aggcgatttg actactatcg acgatccagc ctccttgcaa 1860
cagatcagac aggccatcga ggaataa 1887
<210> 2
<211> 6622
<212> DNA
<213> 人工合成
<400> 2
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ttagctcact cattaggcac cccaggcttt acactttatg cttccggctc gtatgttgtg 120
tggaattgtg agcggataac aatttcacac aggaaacagc tatgaccatg attacgccaa 180
gctttatttt agattcctga cttcaactca agacgcacag atattataac atctgcataa 240
taggcatttg caagaattac tcgtgagtaa ggaaagagtg aggaactatc gcatacctgc 300
atttaaagat gccgatttgg gcgcgaatcc tttattttgg cttcaccctc atactattat 360
cagggccaga aaaaggaagt gtttccctcc ttcttgaatt gatgttaccc tcataaagca 420
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aactgaaaaa acccagacac gctcgacttc ctgtcttcct attgattgca gcttccaatt 540
tcgtcacaca acaaggtcct agcgacggct cacaggtttt gtaacaagcg atcgaaggtt 600
ctggaatggc gggaaagggt ttagtaccac atgctatgat gcccactgtg atctccagag 660
caaagttcgt tcgatcgtac tgttactctc tctctttcaa acagaattgt ccgaatcgtg 720
tgacaacaac agcctgttct cacacactct tttcttctaa ccaagggggt ggtttagttt 780
agtagaacct cgtgaaactt acatttacat atatataaac ttgcataaat tggtcaatgc 840
aagaaataca tatttggtct tttctaattc gtagtttttc aagttcttag atgctttctt 900
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cagtcgacct cgaatctaga gggccgcatc atgtaattag ttatgtcacg cttacattca 1020
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tttctttttt ttctgtacag acgcgtgtac gcatgtaaca ttatactgaa aaccttgctt 1200
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cgtcgtttta caacgtcgtg actgggaaaa ccctggcgtt acccaactta atcgccttgc 1320
agcacatccc cctttcgcca gctggcgtaa tagcgaagag gcccgcaccg atcgcccttc 1380
ccaacagttg cgcagcctga atggcgaatg gcgcctgatg cggtattttc tccttacgca 1440
tctgtgcggt atttcacacc gcatatatcg ctgggccatt ctcatgaaga atatcttgaa 1500
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gacatgctgg ctagtcaaca ttgagccttt tgatcatgca aatatattac ggtattttac 1620
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tgctgtctca ccatagagaa tattacctat ttcagaatgt atgtccatga ttcgccgggt 1800
aaatacatat aatacacaaa tctggcttaa taaagtctat aatatatctc ataaagaagt 1860
gctaaattgg ctagtgctat atatttttaa gaaaatttct tttgactaag tccatatcga 1920
ctttgtaaaa gttcacttta gcatacatat attacacgag ccagaaattg taacttttgc 1980
ctaaaatcac aaattgcaaa atttaattgc ttgcaaaagg tcacatgctt ataatcaact 2040
tttttaaaaa tttaaaatac ttttttattt tttattttta aacataaatg aaataattta 2100
tttattgttt atgattaccg aaacataaaa cctgctcaag aaaaagaaac tgttttgtcc 2160
ttggaaaaaa agcactacct aggagcggcc aaaatgccga ggctttcata gcttaaactc 2220
tttacagaaa ataggcatta tagatcagtt cgagttttct tattcttcct tccggtttta 2280
tcgtcacagt tttacagtaa ataagtatca cctcttagag ttcgatgata agctgtcaaa 2340
catgagaatt aattccacat gttaaaatag tgaaggagca tgttcggcac acagtggacc 2400
gaacgtgggg taagtgcact agggtccggt taaacggatc tcgcattgat gaggcaacgc 2460
taattatcaa catatagatt gttatctatc tgcatgaaca cgaaatcttt acttgacgac 2520
ttgaggctga tggtgtttat gcaaagaaac cactgtgttt aatatgtgtc actgtttgat 2580
attactgtca gcgtagaaga taatagtaaa agcggttaat aagtgtattt gagataagtg 2640
tgataaagtt tttacagcga aaagacgata aatacaagaa aatgattacg aggatacgga 2700
gagaggtatg tacatgtgta tttatatact aagctgccgg cggttgtttg caagaccgag 2760
aaaaggctag caagaatcgg gtcattgtag cgtatgcgcc tgtgaacatt ctcttcaaca 2820
agtttgattc cattgcggtg aaatggtaaa agtcaacccc ctgcgatgta tattttcctg 2880
tacaatcaat caaaaagcca aatgatttag cattatcttt acatcttgtt attttacaga 2940
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atacttaaat aaatactact cagtaataac ctatttctta gcatttttga cgaaatttgc 3060
tattttgtta gagtctttta caccatttgt ctccacacct ccgcttacat caacaccaat 3120
aacgccattt aatctaagcg catcaccaac attttctggc gtcagtccac cagctaacat 3180
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caaaagttca cctgtcccac ctgcttctga atcaaacaag ggaataaacg aatgaggttt 3300
ctgtgaagct gcactgagta gtatgttgca gtcttttgga aatacgagtc ttttaataac 3360
tggcaaaccg aggaactctt ggtattcttg ccacgactca tctccatgca gttggacgat 3420
cgatgataag ctgtcaaaca tgagaattgg gtaataactg atataattaa attgaagctc 3480
taatttgtga gtttagtata catgcattta cttataatac agttttttag ttttgctggc 3540
cgcatcttct caaatatgct tcccagcctg cttttctgta acgttcaccc tctaccttag 3600
catcccttcc ctttgcaaat agtcctcttc caacaataat aatgtcagat cctgtagaga 3660
ccacatcatc cacggttcta tactgttgac ccaatgcgtc tcccttgtca tctaaaccca 3720
caccgggtgt cataatcaac caatcgtaac cttcatctct tccacccatg tctctttgag 3780
caataaagcc gataacaaaa tctttgtcgc tcttcgcaat gtcaacagta cccttagtat 3840
attctccagt agatagggag cccttgcatg acaattctgc taacatcaaa aggcctctag 3900
gttcctttgt tacttcttct gccgcctgct tcaaaccgct aacaatacct gggcccacca 3960
caccgtgtgc attcgtaatg tctgcccatt ctgctattct gtatacaccc gcagagtact 4020
gcaatttgac tgtattacca atgtcagcaa attttctgtc ttcgaagagt aaaaaattgt 4080
acttggcgga taatgccttt agcggcttaa ctgtgccctc catggaaaaa tcagtcaaga 4140
tatccacatg tgtttttagt aaacaaattt tgggacctaa tgcttcaact aactccagta 4200
attccttggt ggtacgaaca tccaatgaag cacacaagtt tgtttgcttt tcgtgcatga 4260
tattaaatag cttggcagca acaggactag gatgagtagc agcacgttcc ttatatgtag 4320
ctttcgacat gatttatctt cgtttcctgc atgtttttgt tctgtgcagt tgggttaaga 4380
atactgggca atttcatgtt tcttcaacac tacatatgcg tatatatacc aatctaagtc 4440
tgtgctcctt ccttcgttct tccttctgtt cggagattac cgaatcaaaa aaatttcaaa 4500
gaaaccgaaa tcaaaaaaaa gaataaaaaa aaaatgatga attgaattga aaagctaatt 4560
cttgaagacg aaagggcctc gtgatacgcc tatttttata ggttaatgtc atgataataa 4620
tggtttctta gacgtcaggt ggcacttttc ggggaaatgt gcgcggaacc cctatttgtt 4680
tatttttcta aatacattca aatatgtatc cgctcatgag acaataaccc tgataaatgc 4740
ttcaataata ttgaaaaagg aagagtatga gtattcaaca tttccgtgtc gcccttattc 4800
ccttttttgc ggcattttgc cttcctgttt ttgctcaccc agaaacgctg gtgaaagtaa 4860
aagatgctga agatcagttg ggtgcacgag tgggttacat cgaactggat ctcaacagcg 4920
gtaagatcct tgagagtttt cgccccgaag aacgttttcc aatgatgagc acttttaaag 4980
ttctgctatg tggcgcggta ttatcccgta ttgacgccgg gcaagagcaa ctcggtcgcc 5040
gcatacacta ttctcagaat gacttggttg agtactcacc agtcacagaa aagcatctta 5100
cggatggcat gacagtaaga gaattatgca gtgctgccat aaccatgagt gataacactg 5160
cggccaactt acttctgaca acgatcggag gaccgaagga gctaaccgct tttttgcaca 5220
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<212> DNA
<213> 人工合成
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<212> DNA
<213> 人工合成
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gctttatttt agattcctga cttcaactca agacgcacag atattataac atctgcataa 240
taggcatttg caagaattac tcgtgagtaa ggaaagagtg aggaactatc gcatacctgc 300
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tcgtcacaca acaaggtcct agcgacggct cacaggtttt gtaacaagcg atcgaaggtt 600
ctggaatggc gggaaagggt ttagtaccac atgctatgat gcccactgtg atctccagag 660
caaagttcgt tcgatcgtac tgttactctc tctctttcaa acagaattgt ccgaatcgtg 720
tgacaacaac agcctgttct cacacactct tttcttctaa ccaagggggt ggtttagttt 780
agtagaacct cgtgaaactt acatttacat atatataaac ttgcataaat tggtcaatgc 840
aagaaataca tatttggtct tttctaattc gtagtttttc aagttcttag atgctttctt 900
tttctctttt ttacagatca tcaaggaagt aattatctac tttttacaac aaatataaaa 960
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aatcaacttt tttaaaaatt taaaatactt ttttattttt tatttttaaa cataaatgaa 2100
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tttgtttgtt tatgtgtgtt tattcgaaac taagttcttg gtgttttaaa actaaaaaaa 60
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gagtatatac aaggtgatta catgtacgtt tgaagtacaa ctctagattt tgtagtgccc 1260
tcttgggcta gcggtaaagg tgcgcatttt ttcacaccct acaatgttct gttcaaaaga 1320
ttttggtcaa acgctgtaga agtgaaagtt ggtgcgcatg tttcggcgtt cgaaacttct 1380
ccgcagtgaa agataaatga tctagttttc acaagaaaac aagcgcaagt ggtttagtgg 1440
taaaatccaa cgttgccatc gttgggcccc cggttcgatt ccgggcttgc gcaaagctt 1499

Claims (12)

1.一种用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合,其特征在于,包括至少一个表达质粒;所述表达质粒包括编码具有丙酰辅酶A合成酶活性、苏氨酸脱氨酶活性、脂肪酸合成酶活性、醛脱氢酶活性、酮酸脱羧酶活性、天冬氨酸激酶活性、高丝氨酸脱氢酶活性、苏氨酸合成酶活性、磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶活性和天冬氨酸转氨酶活性的多肽的多核苷酸。
2.根据权利要求1所述的重组质粒组合,其特征在于,所述编码具有天冬氨酸激酶活性的多肽的多核苷酸为突变的多核苷酸。
3.根据权利要求1或2所述的重组质粒组合,其特征在于,包括至少一个敲除质粒;所述敲除质粒是基于L-高丝氨酸-O-乙酰基转移酶基因、乙酰乳酸合成酶基因或苏氨酸醛缩酶基因设计的。
4.根据权利要求1-3任一项所述的重组质粒组合,其特征在于,包括至少一个丙酮酸激酶活性减弱质粒;所述酶活性减弱质粒是基于丙酮酸激酶基因的强启动子设计的敲除质粒。
5.一种基因工程改造的酵母菌,其特征在于,所述酵母菌转化了权利要求1所述的用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合。
6.根据权利要求5所述的基因工程改造的酵母菌,其特征在于,所述酵母菌转化了权利要求2所述的用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合。
7.根据权利要求5或6所述的基因工程改造的酵母菌,其特征在于,所述酵母菌转化了权利要求3所述的用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合。
8.根据权利要求5或6所述的基因工程改造的酵母菌,其特征在于,所述酵母菌转化了权利要求4所述的用于奇数链脂肪酸合成的重组质粒组合。
9.权利要求1-4任一项所述的重组质粒组合或权利要求5-8任一项所述的酵母菌在合成奇数链脂肪酸/脂或提高奇数链脂肪酸/脂比例的用途。
10.根据权利要求9所述的用途,其特征在于,所述奇数链脂肪酸包括C13:0、C15:0、C15:1、C17:0、C17:1、C19:0和C19:1中的至少一种。
11.根据权利要求9所述的用途,其特征在于,所述奇数链脂肪酸酯是指含有奇数链脂肪酸中的至少一种的甘油一酯、甘油二酯、甘油三酯和/或磷脂。
12.一种制备奇数链脂肪酸的方法,其特征在于,包括利用权利要求1-4任一项所述的重组质粒组合或权利要求5-8任一项所述基因工程改造的酵母菌。
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