CN112795549A

CN112795549A - 一种逆转录酶突变体

Info

Publication number: CN112795549A
Application number: CN201911105038.4A
Authority: CN
Inventors: 蒋析文; 刘霭珊; 赵继光
Original assignee: Daan Gene Co Ltd of Sun Yat Sen University
Current assignee: Daan Gene Co Ltd of Sun Yat Sen University
Priority date: 2019-11-13
Filing date: 2019-11-13
Publication date: 2021-05-14
Anticipated expiration: 2039-11-13
Also published as: CN112795549B

Abstract

本发明提供了一种逆转录酶突变体，具体地，本发明构建了逆转录酶(M‑MLV)突变库，通过逐步筛选，最终筛选出了热稳定性提高且扩增效率较高的突变体(逆转录酶突变体Mu_15)。在高温条件下(58℃)，与野生型相比，本发明的逆转录酶突变体Mu_15的逆转录效率提高了39.67倍。

Description

一种逆转录酶突变体

技术领域

本发明属于生物技术领域，具体地说，本发明涉及一种逆转录效率显著提高的耐热逆转录酶突变体。

背景技术

鼠白血病逆转录酶(M-MLV)是一种以RNA为模板的DNA聚合酶，具有RNase H活性，不具有3’-5’外切酶活性，可用于逆转录合成cDNA。由于RNA具有较复杂的二级结构，对M-MLV酶的逆转录效率影响较大。打开RNA二级结构最简单的方法是通过高温使二级结构的氢键打开，RNA变为线性单链。但野生型的M-MLV酶最适反应温度为37℃，高温下稳定性下降并且活性降低。因此通过突变使M-MLV酶的热稳定性提高，使其适应高温下的反应是M-MLV酶的主要改造方向。

M-MLV酶的突变改造有以下的途径：

1、随机突变。对M-MLV全长序列或者某一结构域进行随机突变，然后进行筛选。此方法可筛选出高活性和高热稳定性的MMLV突变体，但技术过程繁复，随机突变产生的突变库容量可达到10⁷，伴随大量的无活性突变，筛选难度极大。(参考文献：Arezi B,HogrefeH.Novel mutations in Moloney Murine Leukemia Virus reverse transcriptaseincrease thermostability through tighter binding to template-primer[J].Nucleic Acids Research,2008,37(2):473-481.)

2、对特定活性位点进行定点突变。此方法针对性较强，通过增加核酸结合位点、金属离子结合位点等关键活性位点氨基酸与底物的亲和力，提高酶活。但此方法缺乏对酶整体结构的分析，不能从整体上提高酶的稳定性。(参考文献：Yasukawa K,Mizuno M,KonishiA,et al.Increase in thermal stability of Moloney murine leukaemia virusreverse transcriptase by site-directed mutagenesis[J].Journal ofBiotechnology,2010,150(3):299-306.)

总体而言，由于蛋白质结构的复杂性，不仅是位于活性位点的氨基酸甚至一些远离活性位点的氨基酸都可能对酶的整体结构及性能产生影响，因此酶的改造存在极大的不确定性。

发明内容

本发明的目的在于提供一种耐高温且具有高逆转录效率的逆转录酶突变体。

在本发明的第一方面，提供了一种逆转录酶突变体，所述逆转录酶突变体在对应于野生型鼠白血病逆转录酶(M-MLV)的氨基酸序列的第446位的氨基酸残基位点发生突变，其中，氨基酸残基编号采用SEQ ID NO.1所示的编号。

在另一优选例中，所述逆转录酶突变体中，第446位的氨基酸残基位点突变为Cys。

在另一优选例中，所述逆转录酶突变体的氨基选序列与SEQ ID NO.3相比具有至少约80％的同源性；更优选地，具有至少约90％的同源性；最优选地，具有至少约95％的同源性；如具有至少约96％、97％、98％、99％的同源性。

在另一优选例中，所述逆转录酶突变体的氨基酸序列如SEQ ID NO.:3所示。

本发明的第二方面，提供了一种多核苷酸分子，所述多核苷酸分子编码本发明第一方面所述的逆转录酶突变体。

本发明的第三方面，提供了一种载体，所述载体含有本发明第二方面所述的核酸分子。

本发明的第四方面，提供了一种宿主细胞，所述宿主细胞含有本发明第一方面所述的载体或染色体整合有本发明第二方面所述的核酸分子。

在另一优选例中，所述宿主细胞为原核细胞、或真核细胞。

在另一优选例中，所述原核细胞为大肠杆菌。

在另一优选例中，所述真核细胞为酵母细胞。

本发明的第五方面，提供了一种制备本发明第一方面所述的逆转录酶突变体的方法，包括步骤：

(i)在适合的条件下，培养本发明第四方面所述的宿主细胞，从而表达出所述的逆转录酶突变体；和

(ii)分离所述的逆转录酶突变体。

在另一优选例中，所述步骤(i)中培养所述宿主细胞的温度为20℃-40℃；优选为25℃-37℃，如35℃。

本发明的第六方面，提供了一种试剂盒，所述试剂盒包含本发明第一方面所述的逆转录酶突变体。

在另一优选例中，所述试剂盒还包含选自下组的一种或多种组分：

dNTP、缓冲液、随机引物、和纯水。

本发明的第七方面，提供了本发明第一方面所述的逆转录酶突变体在制备逆转录检测试剂或逆转录试剂盒中的用途。

本发明的第八方面，提供了一种RNA逆转录方法，所述方法包括步骤：

(1)提供含有RNA的样品；

(2)逆转录反应

使用本发明第一方面所述的逆转录酶突变体对步骤(1)提供的含有RNA的样品进行逆转录。

在另一优选例中，所述步骤(2)中，逆转录反应温度为55℃以上，优选地为58℃以上。

应理解，在本发明范围内中，本发明的上述各技术特征和在下文(如实施例)中具体描述的各技术特征之间都可以互相组合，从而构成新的或优选的技术方案。限于篇幅，在此不再一一累述。

具体实施方式

本发明人通过广泛而深入的研究，构建了逆转录酶(M-MLV)突变库，通过逐步筛选，最终筛选出了热稳定性提高且扩增效率较高的突变体。在此基础上，完成了本发明。

在描述本发明之前，应当理解本发明不限于所述的具体方法和实验条件，因为这类方法和条件可以变动。还应当理解本文所用的术语其目的仅在于描述具体实施方案，并且不意图是限制性的，本发明的范围将仅由所附的权利要求书限制。

除非另外定义，否则本文中所用的全部技术与科学术语均具有如本发明所属领域的普通技术人员通常理解的相同含义。如本文所用，在提到具体列举的数值中使用时，术语“约”意指该值可以从列举的值变动不多于1％。例如，如本文所用，表述“约100”包括99和101和之间的全部值(例如，99.1、99.2、99.3、99.4等)。

虽然在本发明的实施或测试中可以使用与本发明中所述相似或等价的任何方法和材料，本文在此处例举优选的方法和材料。

逆转录酶

逆转录酶(reverse transcriptase,成转录酶)又称为依赖RNA的DNA聚合酶。该酶以RNA为模板，以dNTP为底物，tRNA(主要是色氨酸tRNA)为引物，在tRNA 3'-OH末端上，根据碱基配对的原则，按5'-3'方向合成一条与RNA模板互补的DNA单链，这条DNA单链叫做互补DNA(complementaryDNA，CDNA)。

逆转录酶(M-MLV)可用于合成第一链cDNA、制作cDNA探针、RNA转录、测序和RNA的逆转录反应。

在本发明的一个优选地实施方式中，本发明野生型MMLV蛋白质序列如下：

TLNIEDEHRLHETSKEPDVSLGSTWLSDFPQAWAETGGMGLAVRQAPLIIPLKATSTPVSIKQYPMSQEARLGIKPHIQRLLDQGILVPCQSPWNTPLLPVKKPGTNDYRPVQDLREVNKRVEDIHPTVPNPYNLLSGLPPSHQWYTVLDLKDAFFCLRLHPTSQPLFAFEWRDPEMGISGQLTWTRLPQGFKNSPTLFDEALHRDLADFRIQHPDLILLQYVDDLLLAATSELDCQQGTRALLQTLGNLGYRASAKKAQICQKQVKYLGYLLKEGQRWLTEARKETVMGQPTPKTPRQLREFLGTAGFCRLWIPGFAEMAAPLYPLTKTGTLFNWGPDQQKAYQEIKQALLTAPALGLPDLTKPFELFVDEKQGYAKGVLTQKLGPWRRPVAYLSKKLDPVAAGWPPCLRMVAAIAVLTKDAGKLTMGQPLVILAPHAVEALVKQPPDRWLSNARMTHYQALLLDTDRVQFGPVVALNPATLLPLPEEGLQHNCLDILAEAHGTRPDLTDQPLPDADHTWYTDGSSLLQEGQRKAGAAVTTETEVIWAKALPAGTSAQRAELIALTQALKMAEGKKLNVYTDSRYAFATAHIHGEIYRRRGLLTSEGKEIKNKDEILALLKALFLPKRLSIIHCPGHQKGHSAEARGNRMADQAARKAAITETPDTSTLL(SEQID NO.:1)

在本发明的一个优选地实施方式中，经密码子优化的野生型MMLV DNA序列(WT)如下：

ACGCTGAATATCGAGGACGAACACCGTCTGCACGAAACCAGCAAGGAGCCGGACGTTAGTCTGGGTAGCACGTGGCTGAGCGATTTTCCACAAGCGTGGGCGGAAACCGGTGGTATGGGTCTCGCCGTTCGCCAAGCCCCACTCATTATCCCACTGAAAGCCACGAGCACGCCGGTGAGCATCAAGCAGTACCCGATGAGCCAAGAAGCCCGCCTCGGCATTAAACCGCATATTCAGCGTCTGCTGGACCAAGGCATTCTGGTGCCGTGCCAGAGTCCGTGGAATACGCCACTGCTCCCGGTTAAGAAGCCGGGCACCAACGATTATCGCCCGGTTCAAGACCTCCGCGAAGTGAACAAGCGCGTGGAAGATATCCATCCGACCGTGCCAAATCCGTACAATCTGCTGAGTGGCCTCCCGCCGAGTCATCAATGGTACACCGTGCTGGATCTCAAGGATGCGTTTTTCTGCCTCCGTCTGCATCCAACCAGCCAGCCACTCTTTGCGTTTGAGTGGCGCGACCCAGAAATGGGTATCAGCGGTCAACTGACGTGGACGCGTCTGCCGCAAGGCTTCAAAAACAGCCCGACGCTGTTCGATGAGGCCCTCCATCGCGATCTGGCGGATTTCCGTATCCAGCATCCAGATCTGATTCTGCTGCAGTACGTTGACGATCTGCTCCTCGCGGCCACCAGTGAACTGGATTGCCAGCAAGGTACCCGTGCGCTGCTGCAGACGCTGGGCAATCTGGGCTACCGTGCCAGCGCGAAAAAGGCGCAAATCTGCCAGAAGCAAGTTAAGTACCTCGGTTATCTGCTGAAAGAGGGTCAACGCTGGCTGACCGAGGCGCGTAAAGAGACCGTTATGGGTCAGCCAACGCCAAAGACGCCACGCCAGCTCCGCGAATTTCTGGGTACCGCCGGCTTCTGTCGTCTGTGGATTCCGGGCTTCGCGGAAATGGCGGCGCCACTCTACCCGCTGACCAAAACCGGTACCCTCTTCAATTGGGGCCCAGATCAGCAGAAGGCCTACCAAGAAATTAAACAAGCGCTGCTCACCGCGCCGGCCCTCGGTCTCCCAGATCTGACCAAACCGTTTGAGCTGTTCGTGGACGAGAAGCAAGGCTACGCCAAAGGCGTGCTGACCCAGAAACTCGGTCCATGGCGTCGTCCGGTGGCCTACCTCAGTAAGAAACTGGATCCAGTTGCGGCGGGTTGGCCGCCATGTCTCCGTATGGTGGCGGCGATTGCCGTTCTGACCAAAGACGCCGGCAAACTCACCATGGGTCAGCCGCTGGTTATTCTCGCCCCACATGCGGTGGAAGCGCTGGTTAAACAACCGCCAGACCGCTGGCTGAGCAATGCCCGCATGACCCATTATCAAGCGCTGCTGCTGGACACCGACCGCGTTCAGTTCGGTCCGGTGGTTGCGCTGAATCCAGCGACGCTGCTGCCGCTGCCAGAAGAAGGTCTGCAGCACAACTGTCTGGACATTCTGGCCGAGGCCCATGGCACCCGTCCAGATCTCACCGATCAGCCACTGCCAGACGCCGATCATACGTGGTACACCGATGGTAGTAGTCTGCTGCAAGAAGGTCAACGTAAAGCGGGTGCCGCGGTGACGACGGAAACCGAGGTGATCTGGGCCAAAGCGCTGCCAGCGGGTACCAGCGCGCAACGTGCGGAACTGATCGCGCTGACCCAAGCGCTCAAAATGGCCGAGGGCAAGAAACTCAACGTGTACACCGACAGTCGCTACGCGTTTGCGACCGCGCACATCCACGGTGAGATTTATCGCCGCCGTGGTCTGCTCACGAGCGAAGGTAAGGAGATCAAGAATAAGGACGAGATCCTCGCGCTGCTGAAAGCCCTCTTTCTGCCGAAACGTCTGAGCATCATCCATTGCCCGGGTCACCAGAAGGGCCACAGTGCGGAAGCGCGCGGTAATCGCATGGCCGATCAAGCCGCGCGCAAAGCGGCGATTACGGAAACCCCGGATACGAGCACGCTGCTG(SEQ ID NO.:2)

在本发明的一个优选地实施方式中，本发明的逆转录酶突变体的氨基酸序列如下：

TLNIEDEHRLHETSKEPDVSLGSTWLSDFPQAWAETGGMGLAVRQAPLIIPLKATSTPVSIKQYPMSQEARLGIKPHIQRLLDQGILVPCQSPWNTPLLPVKKPGTNDYRPVQDLREVNKRVEDIHPTVPNPYNLLSGLPPSHQWYTVLDLKDAFFCLRLHPTSQPLFAFEWRDPEMGISGQLTWTRLPQGFKNSPTLFDEALHRDLADFRIQHPDLILLQYVDDLLLAATSELDCQQGTRALLQTLGNLGYRASAKKAQICQKQVKYLGYLLKEGQRWLTEARKETVMGQPTPKTPRQLREFLGTAGFCRLWIPGFAEMAAPLYPLTKTGTLFNWGPDQQKAYQEIKQALLTAPALGLPDLTKPFELFVDEKQGYAKGVLTQKLGPWRRPVAYLSKKLDPVAAGWPPCLRMVAAIAVLTKDAGKLTMGQPLVILAPHAVEALVKCPPDRWLSNARMTHYQALLLDTDRVQFGPVVALNPATLLPLPEEGLQHNCLDILAEAHGTRPDLTDQPLPDADHTWYTDGSSLLQEGQRKAGAAVTTETEVIWAKALPAGTSAQRAELIALTQALKMAEGKKLNVYTDSRYAFATAHIHGEIYRRRGLLTSEGKEIKNKDEILALLKALFLPKRLSIIHCPGHQKGHSAEARGNRMADQAARKAAITETPDTSTLL(SEQID NO.:3)

其中，下划线的氨基酸残基为突变后的位点。

突变体的筛选和制备

本发明计算单点突变后酶分子的吉布斯自由能变的变化值(DDG)，以此衡量突变后分子稳定性的变化。DDG值(Delta Delta G)是分子的吉布斯自由能变的变化值，蛋白质分子从正常的折叠状态向无规则卷曲状态转变的过程需要消耗能量，此能量的值为ΔG值，ΔG值的高低可用于衡量蛋白质的稳定性，ΔG值越高，蛋白质变性所需要消耗的能量越多，使蛋白发生变性的温度越高，蛋白越稳定。

蛋白质经过定点突变，各氨基酸相互作用发生变化，使ΔG值发生改变，野生型蛋白的ΔG值与突变体的ΔG值的差值即为DDG值。DDG值>0，说明突变后蛋白的ΔG值比野生型降低，蛋白更不稳定；DDG值<0，说明突变后蛋白ΔG值比野生型升高，蛋白更稳定。因此DDG值可用于预测蛋白质发生定点突变后结构的稳定性变化。从一系列的突变体中选出DDG值较高的突变，构建MMLV蛋白突变库，经过表达纯化，测定突变后MMLV的活性及热稳定性，筛选出具有高活性高热稳定性的单点突变体。但是由于蛋白结构地复杂性，不可能仅通过预测来获得符合实际应用需求的突变体，而且在大多数情况下模拟预测出的突变体均会导致酶活性的显著降低。

本领域的普通技术人员可以使用的常规方法获得本发明的M-MLV酶基因序列，例如全人工合成或PCR法合成。一种优选的合成法为不对称PCR法。不对称PCR法是用不等量的一对引物，PCR扩增后产生大量的单链DNA(ssDNA)。这对引物分别称为非限制引物与限制性引物，其比例一般为50-100∶1。在PCR反应的最初10-15个循环中，其扩增产物主要是双链DNA，但当限制性引物(低浓度引物)消耗完后，非限制性引物(高浓度引物)引导的PCR就会产生大量的单链DNA。用于PCR的引物可根据本文所公开的本发明的序列信息适当地选择，并可用常规方法合成。可用常规方法如通过凝胶电泳分离和纯化扩增的DNA/RNA片段。

本发明的M-MLV酶突变体可以通过常规的重组DNA技术进行表达或生产，包括步骤：

(1)用编码本发明蛋白的多核苷酸，或用含有该多核苷酸的重组表达载体转化或转导合适的宿主细胞；

(2)在合适的培养基中培养宿主细胞；

(3)从培养基或细胞中分离、纯化目的蛋白质，从而获得M-MLV酶突变体。

本领域的技术人员熟知的方法能用于构建含本发明M-MLV酶的编码DNA序列和合适的转录/翻译控制信号的表达载体，优选市售的载体：pET28。这些方法包括体外重组DNA技术、DNA合成技术、体内重组技术等。所述的DNA序列可有效连接到表达载体中的适当启动子上，以指导mRNA合成。表达载体还包括翻译起始用的核糖体结合位点和转录终止子。此外，表达载体优选包含一个或多个选择性标记基因，以提供用于选择转化的宿主细胞的表型性状。

所述重组载体在5'到3'方向上包括：启动子，目的基因和终止子。如果需要，所述重组载体还可以包括以下元件：蛋白纯化标签；3'多聚核苷酸化信号；非翻译核酸序列；转运和靶向核酸序列；选择标记(抗生素抗性基因、荧光蛋白等)；增强子；或操作子。

用于制备重组载体的方法是本领域普通技术人员所熟知的。表达载体可以是细菌质粒、噬菌体、酵母质粒、植物细胞病毒、哺乳动物细胞病毒或其他载体。总之，只要其能够在宿主体内复制和稳定，任何质粒和载体都可以被采用。

本领域普通技术人员可以采用熟知的方法构建含有本发明启动子和/或目的基因序列的载体。这些方法包括体外重组DNA技术、DNA合成技术、体内重组技术等。

本发明的表达载体，可以用于转化适当的宿主细胞，以使宿主转录目的RNA或表达目的蛋白质。宿主细胞可以是原核细胞，如大肠杆菌、谷氨酸棒杆菌、黄色短杆菌、链霉菌属、农杆菌：或是低等真核细胞，如酵母细胞；或是高等真核细胞，如植物细胞。本领域一般技术人员都清楚如何选择适当的载体和宿主细胞。用重组DNA转化宿主细胞可用本领域技术人员熟知的常规技术进行。当宿主为原核生物(如大肠杆菌)时，可以用CaCl₂法处理，也可用电穿孔法进行。当宿主是真核生物，可选用如下的DNA转染方法：磷酸钙共沉淀法，常规机械方法(如显微注射、电穿孔、脂质体包装等)。转化植物也可使用农杆菌转化或基因枪转化等方法，例如叶盘法、幼胚转化法、花芽浸泡法等。对于转化的植物细胞、组织或器官可以用常规方法再生成植株，从而获得转基因的植物。

术语“可操作连接”是指将准备转录表达的目的基因以一种本领域的常规方式连接到它的控制序列以被表达。

工程菌的培养和目的蛋白发酵生产

在获得工程细胞后，便可在适合的条件下培养工程细胞，表达本发明的基因序列所编码的蛋白。根据宿主细胞的不同，培养中所用的培养基可选自各种常规培养基，在适于宿主细胞生长的条件下进行培养。当宿主细胞生长到适当的细胞密度后，用合适的方法(如温度转换或化学诱导)诱导选择的启动子，将细胞再培养一段时间。

在本发明中，可采用常规的发酵条件。代表性的条件包括(但并不限于)：

(a)就温度而言，M-MLV酶的发酵及诱导温度保持在25-37℃；

(b)就诱导期的pH值而言，诱导期pH控制在3-9；

(c)就溶氧(DO)而言，DO控制在10-90％，溶氧的维持可以用氧气/空气混合气体的通入来解决；

(d)就补料而言，补料种类宜包括甘油、甲醇、葡萄糖等碳源，可单独补料或混合补料；

(e)就诱导期IPTG浓度而言，常规诱导浓度都可用于本发明，通常IPTG浓度控制在0.1-1.5mM；

(f)就诱导时间而言，没有特别限制，通常为2-20小时，较佳地为5-15小时。

本发明的目的蛋白M-MLV酶存在大肠杆菌细胞胞内，通过离心机收集宿主细胞，然后通过高压、机器力、酶解细胞被或其他细胞破碎方法破碎宿主细胞，释放重组蛋白，优选的是高压法。宿主细胞裂解液可通过絮凝、盐析、超滤等方法进行初步纯化后再进行层析、超滤等纯化，也可直接进行层析纯化。

层析技术包括阳离子交换层析、阴离子交换层析、凝胶过滤层析、疏水层析、亲和层析等技术。常用的层析方法包括：

1.阴离子交换层析：

阴离子交换层析介质包括(但不限于)：Q-Sepharose、DEAE-Sepharose。如果发酵样品的盐浓度较高，影响与离子交换介质的结合，则在进行离子交换层析前需降低盐浓度。样品可以用稀释、超滤、透析、凝胶过滤层析等手段进行平衡缓冲液的更换，直至与对应的离子交换柱平衡液系统相似，然后上样，进行盐浓度或pH的梯度洗脱。

2.疏水层析：

疏水层析介质包括(但不限于)：Phenyl-Sepharose、Butyl-Sepharose、Octyle-Sepharose。样品通过添加NaCl、(NH₄)₂SO₄等方式提高盐浓度，然后上样，通过降低盐浓度方法洗脱。通过疏水层析除去疏水性有较大差异的杂蛋白。

3.凝胶过滤层析

疏水层析介质包括(但不限于)：Sephacryl、Superdex、Sephadex类。通过凝胶过滤层析更换缓冲体系，或进一步精纯。

4.亲和层析

亲和层析介质包括(但不限于)：HiTrap^TMHeparinHPColumns。

5.膜过滤

超滤介质包括：有机膜如聚砜膜、无机膜如陶瓷膜、金属膜类。通过膜过滤可以达到纯化和浓缩的目的。

本发明的主要优点在于：

(1)本发明提供了耐高温且具有高逆转录效率的逆转录酶突变体。

(2)本发明的具有高逆转录效率的逆转录酶突变体在同等条件下扩增效率比野生型M-MLV酶有显著的提高，因此能够显著提高检测效率。

(3)本发明从数十个突变体中进行多轮筛选，最终筛选出了6株耐高温的逆转录酶突变体，在58℃的逆转录温度下仍然能够保持较高的逆转录效率。而且，其中3株耐高温的逆转录酶突变体在1分钟反应时间内即可达到反应平衡。因此，本发明筛选获得的各逆转录酶突变体具有出乎意料的优异技术效果。

(4)在高温条件下(58℃)，与野生型相比，本发明的逆转录酶突变体Mu_15的逆转录效率提高了39.67倍，取得了预料不到的技术效果。

下面结合具体实施例，进一步详陈本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明详细条件的实验方法，通常按照常规条件如美国Sambrook.J等著《分子克隆实验室指南》(黄培堂等译，北京：科学出版社，2002年)中所述的条件，或按照制造厂商所建议的条件。除非另外说明，否则百分比和份数按重量计算。以下实施例中所用的实验材料和试剂如无特别说明均可从市售渠道获得。

实施例1各位点DDG值的计算及筛选

将MMLV蛋白质序列输入Rosetta算法软件Cyrus Bench(Cyrus Biotechnology)，对0～100，101～200，201～300，301～400，401～500，501～600，601～671位氨基酸分段进行全位点全突变的DDG值计算，得到DDG值显著降低(DDG值<-2)的突变位点信息如下：

表1

实施例2构建MMLV突变库

根据以上蛋白质序列，由苏州金唯智生物科技有限公司进行密码子优化，编译出DNA序列(SEQ ID NO.:2)。

由苏州金唯智生物科技有限公司根据以上DNA序列进行基因合成，添加5'(NheI)及3'(XhoI)限制性酶切位点，将基因通过5'NheI and 3'XhoI克隆至载体pET28a，构建质粒WT-pET28a，制备重组质粒DNA和含有该重组质粒的甘油菌，并根据实施例1所涉及的突变位点对质粒WT-pET28a进行定点突变，构建出突变库Mu1-pET28a～Mu40-pET28a。

实施例3 MMLV突变体的表达及纯化

将WT-pET28a，Mu1～40-pET28a质粒转化至BL21(DE3)感受态细胞，得到37个表达宿主菌，然后转接3ml LB培养基，37℃震荡培养5小时，然后加入0.1Mm IPTG 18℃诱导培养过夜。收集诱导后菌体，加入裂解液(50Mm Tris、50Mm NaCl、pH7.5)，超声裂解，离心分离上清液。取上清液，经Ni NTA金属离子螯合填料纯化，得到野生型和40种突变MMLV蛋白

实施例4突变体的筛选

A：第一轮筛选(筛选保持活性的突变)

从Hela细胞中提取总RNA为模板，按以下体系进行逆转录反应

将野生型和36个突变体MMLV蛋白按以上体系进行反应，42℃15分钟，75℃5分钟灭活。然后取逆转录后产物，按以下体系进行荧光定量PCR检测

Q-PCR程序：95℃3分钟，(95℃15秒，60℃15秒，72℃15秒读取荧光信号)X 40个循环。

各突变体逆转录产物荧光定量PCR结果见下表：

表2

下划线标记的14个突变体ct值低于野生型，即逆转录效率高于野生型。选择这些突变体进行第二轮筛选

B：第二轮筛选(筛选耐高温突变)

选第一轮筛选选出的突变体，按第一轮筛选的逆转录反应体系，提高逆转录反应温度至50、55、58℃，然后按第一轮筛选的荧光定量PCR体系进行逆转录效率检测，结果如下：

表3

备注：以野生型逆转录酶效率为100％，与野生型逆转录酶的反应效率对比，突变型的逆转录效率计算公式如下：

从第二轮筛选结果看，Mu_15、16、26、36、38、40，6个突变体58℃下逆转录效率不低于50℃逆转录。选这6个突变体进行第三轮筛选。

C：第三轮筛选(筛选高合成速率突变)

选第二轮筛选选出的突变体，按第一轮筛选的逆转录反应体系，逆转录反应温度55℃，反应时间1分钟、2分钟、5分钟，然后按第一轮筛选的荧光定量PCR体系进行逆转录效率检测，结果如下：

表4

组别	1min/ct mean	2min/ct mean	5min/ct mean
				WT	24.88	22.99	21.85
15	22.24	20.28	19.17
				16	20.01	19.25	19.47
26	21.17	20.79	17.72
				36	17.64	17.92	17.93
38	21.15	20.73	20.14
				40	18.95	19.00	18.34

从第三轮筛选的结果看，Mu_16、36、40逆转录反应1分钟与5分钟的差异不大，证明反应1分钟后反应即达到平衡。

在本发明提及的所有文献都在本申请中引用作为参考，就如同每一篇文献被单独引用作为参考那样。此外应理解，在阅读了本发明的上述讲授内容之后，本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改，这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。

序列表

<110> 中山大学达安基因股份有限公司

<120> 一种逆转录酶突变体

<130> 020041

<160> 3

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 671

<212> PRT

<213> 小鼠白血病病毒（Murine leukaemia virus）

<400> 1

Thr Leu Asn Ile Glu Asp Glu His Arg Leu His Glu Thr Ser Lys Glu

1 5 10 15

Pro Asp Val Ser Leu Gly Ser Thr Trp Leu Ser Asp Phe Pro Gln Ala

20 25 30

Trp Ala Glu Thr Gly Gly Met Gly Leu Ala Val Arg Gln Ala Pro Leu

35 40 45

Ile Ile Pro Leu Lys Ala Thr Ser Thr Pro Val Ser Ile Lys Gln Tyr

50 55 60

Pro Met Ser Gln Glu Ala Arg Leu Gly Ile Lys Pro His Ile Gln Arg

65 70 75 80

Leu Leu Asp Gln Gly Ile Leu Val Pro Cys Gln Ser Pro Trp Asn Thr

85 90 95

Pro Leu Leu Pro Val Lys Lys Pro Gly Thr Asn Asp Tyr Arg Pro Val

100 105 110

Gln Asp Leu Arg Glu Val Asn Lys Arg Val Glu Asp Ile His Pro Thr

115 120 125

Val Pro Asn Pro Tyr Asn Leu Leu Ser Gly Leu Pro Pro Ser His Gln

130 135 140

Trp Tyr Thr Val Leu Asp Leu Lys Asp Ala Phe Phe Cys Leu Arg Leu

145 150 155 160

His Pro Thr Ser Gln Pro Leu Phe Ala Phe Glu Trp Arg Asp Pro Glu

165 170 175

Met Gly Ile Ser Gly Gln Leu Thr Trp Thr Arg Leu Pro Gln Gly Phe

180 185 190

Lys Asn Ser Pro Thr Leu Phe Asp Glu Ala Leu His Arg Asp Leu Ala

195 200 205

Asp Phe Arg Ile Gln His Pro Asp Leu Ile Leu Leu Gln Tyr Val Asp

210 215 220

Asp Leu Leu Leu Ala Ala Thr Ser Glu Leu Asp Cys Gln Gln Gly Thr

225 230 235 240

Arg Ala Leu Leu Gln Thr Leu Gly Asn Leu Gly Tyr Arg Ala Ser Ala

245 250 255

Lys Lys Ala Gln Ile Cys Gln Lys Gln Val Lys Tyr Leu Gly Tyr Leu

260 265 270

Leu Lys Glu Gly Gln Arg Trp Leu Thr Glu Ala Arg Lys Glu Thr Val

275 280 285

Met Gly Gln Pro Thr Pro Lys Thr Pro Arg Gln Leu Arg Glu Phe Leu

290 295 300

Gly Thr Ala Gly Phe Cys Arg Leu Trp Ile Pro Gly Phe Ala Glu Met

305 310 315 320

Ala Ala Pro Leu Tyr Pro Leu Thr Lys Thr Gly Thr Leu Phe Asn Trp

325 330 335

Gly Pro Asp Gln Gln Lys Ala Tyr Gln Glu Ile Lys Gln Ala Leu Leu

340 345 350

Thr Ala Pro Ala Leu Gly Leu Pro Asp Leu Thr Lys Pro Phe Glu Leu

355 360 365

Phe Val Asp Glu Lys Gln Gly Tyr Ala Lys Gly Val Leu Thr Gln Lys

370 375 380

Leu Gly Pro Trp Arg Arg Pro Val Ala Tyr Leu Ser Lys Lys Leu Asp

385 390 395 400

Pro Val Ala Ala Gly Trp Pro Pro Cys Leu Arg Met Val Ala Ala Ile

405 410 415

Ala Val Leu Thr Lys Asp Ala Gly Lys Leu Thr Met Gly Gln Pro Leu

420 425 430

Val Ile Leu Ala Pro His Ala Val Glu Ala Leu Val Lys Gln Pro Pro

435 440 445

Asp Arg Trp Leu Ser Asn Ala Arg Met Thr His Tyr Gln Ala Leu Leu

450 455 460

Leu Asp Thr Asp Arg Val Gln Phe Gly Pro Val Val Ala Leu Asn Pro

465 470 475 480

Ala Thr Leu Leu Pro Leu Pro Glu Glu Gly Leu Gln His Asn Cys Leu

485 490 495

Asp Ile Leu Ala Glu Ala His Gly Thr Arg Pro Asp Leu Thr Asp Gln

500 505 510

Pro Leu Pro Asp Ala Asp His Thr Trp Tyr Thr Asp Gly Ser Ser Leu

515 520 525

Leu Gln Glu Gly Gln Arg Lys Ala Gly Ala Ala Val Thr Thr Glu Thr

530 535 540

Glu Val Ile Trp Ala Lys Ala Leu Pro Ala Gly Thr Ser Ala Gln Arg

545 550 555 560

Ala Glu Leu Ile Ala Leu Thr Gln Ala Leu Lys Met Ala Glu Gly Lys

565 570 575

Lys Leu Asn Val Tyr Thr Asp Ser Arg Tyr Ala Phe Ala Thr Ala His

580 585 590

Ile His Gly Glu Ile Tyr Arg Arg Arg Gly Leu Leu Thr Ser Glu Gly

595 600 605

Lys Glu Ile Lys Asn Lys Asp Glu Ile Leu Ala Leu Leu Lys Ala Leu

610 615 620

Phe Leu Pro Lys Arg Leu Ser Ile Ile His Cys Pro Gly His Gln Lys

625 630 635 640

Gly His Ser Ala Glu Ala Arg Gly Asn Arg Met Ala Asp Gln Ala Ala

645 650 655

Arg Lys Ala Ala Ile Thr Glu Thr Pro Asp Thr Ser Thr Leu Leu

660 665 670

<210> 2

<211> 2013

<212> DNA

<213> 人工序列（Artificial sequence）

<400> 2

acgctgaata tcgaggacga acaccgtctg cacgaaacca gcaaggagcc ggacgttagt 60

ctgggtagca cgtggctgag cgattttcca caagcgtggg cggaaaccgg tggtatgggt 120

ctcgccgttc gccaagcccc actcattatc ccactgaaag ccacgagcac gccggtgagc 180

atcaagcagt acccgatgag ccaagaagcc cgcctcggca ttaaaccgca tattcagcgt 240

ctgctggacc aaggcattct ggtgccgtgc cagagtccgt ggaatacgcc actgctcccg 300

gttaagaagc cgggcaccaa cgattatcgc ccggttcaag acctccgcga agtgaacaag 360

cgcgtggaag atatccatcc gaccgtgcca aatccgtaca atctgctgag tggcctcccg 420

ccgagtcatc aatggtacac cgtgctggat ctcaaggatg cgtttttctg cctccgtctg 480

catccaacca gccagccact ctttgcgttt gagtggcgcg acccagaaat gggtatcagc 540

ggtcaactga cgtggacgcg tctgccgcaa ggcttcaaaa acagcccgac gctgttcgat 600

gaggccctcc atcgcgatct ggcggatttc cgtatccagc atccagatct gattctgctg 660

cagtacgttg acgatctgct cctcgcggcc accagtgaac tggattgcca gcaaggtacc 720

cgtgcgctgc tgcagacgct gggcaatctg ggctaccgtg ccagcgcgaa aaaggcgcaa 780

atctgccaga agcaagttaa gtacctcggt tatctgctga aagagggtca acgctggctg 840

accgaggcgc gtaaagagac cgttatgggt cagccaacgc caaagacgcc acgccagctc 900

cgcgaatttc tgggtaccgc cggcttctgt cgtctgtgga ttccgggctt cgcggaaatg 960

gcggcgccac tctacccgct gaccaaaacc ggtaccctct tcaattgggg cccagatcag 1020

cagaaggcct accaagaaat taaacaagcg ctgctcaccg cgccggccct cggtctccca 1080

gatctgacca aaccgtttga gctgttcgtg gacgagaagc aaggctacgc caaaggcgtg 1140

ctgacccaga aactcggtcc atggcgtcgt ccggtggcct acctcagtaa gaaactggat 1200

ccagttgcgg cgggttggcc gccatgtctc cgtatggtgg cggcgattgc cgttctgacc 1260

aaagacgccg gcaaactcac catgggtcag ccgctggtta ttctcgcccc acatgcggtg 1320

gaagcgctgg ttaaacaacc gccagaccgc tggctgagca atgcccgcat gacccattat 1380

caagcgctgc tgctggacac cgaccgcgtt cagttcggtc cggtggttgc gctgaatcca 1440

gcgacgctgc tgccgctgcc agaagaaggt ctgcagcaca actgtctgga cattctggcc 1500

gaggcccatg gcacccgtcc agatctcacc gatcagccac tgccagacgc cgatcatacg 1560

tggtacaccg atggtagtag tctgctgcaa gaaggtcaac gtaaagcggg tgccgcggtg 1620

acgacggaaa ccgaggtgat ctgggccaaa gcgctgccag cgggtaccag cgcgcaacgt 1680

gcggaactga tcgcgctgac ccaagcgctc aaaatggccg agggcaagaa actcaacgtg 1740

tacaccgaca gtcgctacgc gtttgcgacc gcgcacatcc acggtgagat ttatcgccgc 1800

cgtggtctgc tcacgagcga aggtaaggag atcaagaata aggacgagat cctcgcgctg 1860

ctgaaagccc tctttctgcc gaaacgtctg agcatcatcc attgcccggg tcaccagaag 1920

ggccacagtg cggaagcgcg cggtaatcgc atggccgatc aagccgcgcg caaagcggcg 1980

attacggaaa ccccggatac gagcacgctg ctg 2013

<210> 3

<211> 671

<212> PRT

<213> 人工序列（Artificial sequence）

<400> 3

Thr Leu Asn Ile Glu Asp Glu His Arg Leu His Glu Thr Ser Lys Glu

1 5 10 15

Pro Asp Val Ser Leu Gly Ser Thr Trp Leu Ser Asp Phe Pro Gln Ala

20 25 30

Trp Ala Glu Thr Gly Gly Met Gly Leu Ala Val Arg Gln Ala Pro Leu

35 40 45

Ile Ile Pro Leu Lys Ala Thr Ser Thr Pro Val Ser Ile Lys Gln Tyr

50 55 60

Pro Met Ser Gln Glu Ala Arg Leu Gly Ile Lys Pro His Ile Gln Arg

65 70 75 80

Leu Leu Asp Gln Gly Ile Leu Val Pro Cys Gln Ser Pro Trp Asn Thr

85 90 95

Pro Leu Leu Pro Val Lys Lys Pro Gly Thr Asn Asp Tyr Arg Pro Val

100 105 110

Gln Asp Leu Arg Glu Val Asn Lys Arg Val Glu Asp Ile His Pro Thr

115 120 125

Val Pro Asn Pro Tyr Asn Leu Leu Ser Gly Leu Pro Pro Ser His Gln

130 135 140

Trp Tyr Thr Val Leu Asp Leu Lys Asp Ala Phe Phe Cys Leu Arg Leu

145 150 155 160

His Pro Thr Ser Gln Pro Leu Phe Ala Phe Glu Trp Arg Asp Pro Glu

165 170 175

Met Gly Ile Ser Gly Gln Leu Thr Trp Thr Arg Leu Pro Gln Gly Phe

180 185 190

Lys Asn Ser Pro Thr Leu Phe Asp Glu Ala Leu His Arg Asp Leu Ala

195 200 205

Asp Phe Arg Ile Gln His Pro Asp Leu Ile Leu Leu Gln Tyr Val Asp

210 215 220

Asp Leu Leu Leu Ala Ala Thr Ser Glu Leu Asp Cys Gln Gln Gly Thr

225 230 235 240

Arg Ala Leu Leu Gln Thr Leu Gly Asn Leu Gly Tyr Arg Ala Ser Ala

245 250 255

Lys Lys Ala Gln Ile Cys Gln Lys Gln Val Lys Tyr Leu Gly Tyr Leu

260 265 270

Leu Lys Glu Gly Gln Arg Trp Leu Thr Glu Ala Arg Lys Glu Thr Val

275 280 285

Met Gly Gln Pro Thr Pro Lys Thr Pro Arg Gln Leu Arg Glu Phe Leu

290 295 300

Gly Thr Ala Gly Phe Cys Arg Leu Trp Ile Pro Gly Phe Ala Glu Met

305 310 315 320

Ala Ala Pro Leu Tyr Pro Leu Thr Lys Thr Gly Thr Leu Phe Asn Trp

325 330 335

Gly Pro Asp Gln Gln Lys Ala Tyr Gln Glu Ile Lys Gln Ala Leu Leu

340 345 350

Thr Ala Pro Ala Leu Gly Leu Pro Asp Leu Thr Lys Pro Phe Glu Leu

355 360 365

Phe Val Asp Glu Lys Gln Gly Tyr Ala Lys Gly Val Leu Thr Gln Lys

370 375 380

Leu Gly Pro Trp Arg Arg Pro Val Ala Tyr Leu Ser Lys Lys Leu Asp

385 390 395 400

Pro Val Ala Ala Gly Trp Pro Pro Cys Leu Arg Met Val Ala Ala Ile

405 410 415

Ala Val Leu Thr Lys Asp Ala Gly Lys Leu Thr Met Gly Gln Pro Leu

420 425 430

Val Ile Leu Ala Pro His Ala Val Glu Ala Leu Val Lys Cys Pro Pro

435 440 445

Asp Arg Trp Leu Ser Asn Ala Arg Met Thr His Tyr Gln Ala Leu Leu

450 455 460

Leu Asp Thr Asp Arg Val Gln Phe Gly Pro Val Val Ala Leu Asn Pro

465 470 475 480

Ala Thr Leu Leu Pro Leu Pro Glu Glu Gly Leu Gln His Asn Cys Leu

485 490 495

Asp Ile Leu Ala Glu Ala His Gly Thr Arg Pro Asp Leu Thr Asp Gln

500 505 510

Pro Leu Pro Asp Ala Asp His Thr Trp Tyr Thr Asp Gly Ser Ser Leu

515 520 525

Leu Gln Glu Gly Gln Arg Lys Ala Gly Ala Ala Val Thr Thr Glu Thr

530 535 540

Glu Val Ile Trp Ala Lys Ala Leu Pro Ala Gly Thr Ser Ala Gln Arg

545 550 555 560

Ala Glu Leu Ile Ala Leu Thr Gln Ala Leu Lys Met Ala Glu Gly Lys

565 570 575

Lys Leu Asn Val Tyr Thr Asp Ser Arg Tyr Ala Phe Ala Thr Ala His

580 585 590

Ile His Gly Glu Ile Tyr Arg Arg Arg Gly Leu Leu Thr Ser Glu Gly

595 600 605

Lys Glu Ile Lys Asn Lys Asp Glu Ile Leu Ala Leu Leu Lys Ala Leu

610 615 620

Phe Leu Pro Lys Arg Leu Ser Ile Ile His Cys Pro Gly His Gln Lys

625 630 635 640

Gly His Ser Ala Glu Ala Arg Gly Asn Arg Met Ala Asp Gln Ala Ala

645 650 655

Arg Lys Ala Ala Ile Thr Glu Thr Pro Asp Thr Ser Thr Leu Leu

660 665 670

Claims

1.一种逆转录酶突变体，其特征在于，所述逆转录酶突变体在对应于野生型鼠白血病逆转录酶(M-MLV)的氨基酸序列的第446位的氨基酸残基位点发生突变，其中，氨基酸残基编号采用SEQ ID NO.1所示的编号。

2.如权利要求1所述的逆转录酶突变体，其特征在于，所述逆转录酶突变体中，第446位的氨基酸残基位点突变为Cys。

3.如权利要求1所述的逆转录酶突变体，其特征在于，所述逆转录酶突变体的氨基选序列与SEQ ID NO.3相比具有至少80％的同源性；更优选地，具有至少90％的同源性；最优选地，具有至少95％的同源性；如具有至少96％、97％、98％、99％的同源性。

4.如权利要求1所述的逆转录酶突变体，其特征在于，所述逆转录酶突变体的氨基酸序列如SEQ ID NO.:3所示。

5.一种多核苷酸分子，其特征在于，所述多核苷酸分子编码权利要求1所述的逆转录酶突变体。

6.一种载体，其特征在于，所述载体含有权利要求5所述的核酸分子。

7.一种宿主细胞，其特征在于，所述宿主细胞含有权利要求6所述的载体或染色体整合有权利要求5所述的核酸分子。

8.一种制备权利要求1所述的逆转录酶突变体的方法，其特征在于，包括步骤：

(i)在适合的条件下，培养权利要求7所述的宿主细胞，从而表达出所述的逆转录酶突变体；和

(ii)分离所述的逆转录酶突变体。

9.一种试剂盒，其特征在于，所述试剂盒包含权利要求1所述的逆转录酶突变体。

10.如权利要求9所述的试剂盒，其特征在于，所述试剂盒还包含选自下组的一种或多种组分：

dNTP、缓冲液、随机引物、和纯水。