CN112206323A - USP9x抑制剂在制备治疗骨肉瘤药物中的应用 - Google Patents

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Abstract

本发明公开USP9x抑制剂在制备治疗骨肉瘤药物中的应用。通过发现在骨肉瘤中降低USP9x的表达或抑制其活性,可以有效的促进促增殖因子SOX2的降解,为临床上开发新的针对骨肉瘤的化疗药物提供了新的靶点,同时,我们研究也发现NGA可以有效的抑制USP9x的去泛素化酶活性,从而间接促进SOX2的泛素化降解,抑制肿瘤的发生与发展,这也就为临床发现新的药物提供的新的分子结构。

Description

USP9x抑制剂在制备治疗骨肉瘤药物中的应用
技术领域
本发明属于药物化学领域,更具体地讲,涉及USP9x抑制剂在制备治疗骨肉瘤药物中的应用。
背景技术
骨肉瘤(Osteosarcoma)与肉瘤一样,是来源于间充质的一种恶性肿瘤,因其可产生不成熟类骨质而得名。原发性骨肉瘤主要见于儿童,特别是骨骼快速生长期—青春期(10-14岁),且男性多于女性。骨肉瘤好发于四肢长骨的干骺端,其它如骼骨、脊柱等部位也可发生,其进展快、恶性程度高,易出现远处转移,远期生存率低,特别是发生转移的患者,其5年生存率大概在11%-29%之间,同时临床上确诊为骨肉瘤的患者中有10%-25%发生肿瘤转移,其中90%的患者转移至肺。骨肉瘤的危险因素主要包括身高、出生体重以及生殖系统遗传变异等,青春期激素水平以及其他与骨骼生长相关的因素也是骨肉瘤的病因。在20世纪七十年代,骨肉瘤的主要治疗手段是外科截肢,但5年生存率仅为20%,后来随着化疗辅助治疗的引进,局限性肿瘤患者(主要是儿童和青少年)的5年生存率达到了50%-70%;目前骨肉瘤患者的标准治疗手段为术前辅助化疗,手术和术后辅助化疗。但对于骨肉瘤转移患者,经过上述治疗之后的5年生存率也仅有25%。究其原因,是我们对骨肉瘤的发生机制缺乏准确的认识,因此,彻底阐明骨肉瘤的发生机制,并筛选特异、高效的靶向药物已迫在眉睫。
新藤黄酸(Neogambogic acid,NGA)是藤黄中的活性成分之一,在多种癌症中具有显著的抗肿瘤潜能。但目前对藤黄提取物NGA的临床应用报道较少。近年来研究发现,NGA通过抑制HMGB1和MCPIP1,可以阻止硅诱导的巨噬细胞活化、凋亡和肺纤维化。此外,NGA可以降低乳腺癌中癌细胞的增殖能力。
发明内容
本发明的第一个目的在于提供USP9x抑制剂在制备治疗骨肉瘤药物中的应用。
本发明的第二个目的在于提供新藤黄酸在制备USP9x抑制剂中的应用。
为实现以上目的,本发明公开以下技术方案:USP9x抑制剂在制备治疗骨肉瘤药物中的应用。
作为一个优选方案,所述抑制剂是新藤黄酸和WP1130。
为实现本发明第二个目的,本发明公开以下技术方案:新藤黄酸在制备USP9x抑制剂中的应用。
本发明的优点在于:通过研究发现在骨肉瘤中降低USP9x的表达或抑制其活性,可以有效的促进促增殖因子SOX2的降解,这为临床上开发新的针对骨肉瘤的化疗药物提供了新的靶点,同时,我们研究也发现NGA可以有效的抑制USP9x的去泛素化酶活性,从而间接促进SOX2的泛素化降解,抑制肿瘤的发生与发展,这为发展USP9x抑制剂提供了新的分子结构。新藤黄酸作为植物中药藤黄的有效提取物,具有一定的临床治疗背景,避免了应用于临床时所带来的不可预知的不良反应,在前期的实验研究中NGA可以有效的抑制细胞的增殖,促进细胞的凋亡,在动物实验中,同样验证了其体内效应,发现NGA可明显抑制体内骨肉瘤的增殖与进展,但其毒副反应并不明显,这也就证明了NGA具有临床应用价值。
附图说明
图1.NGA显著抑制骨肉瘤细胞的增殖。A.NGA的化学结构式。B,C,D.分别用不同浓度的NGA处理U2OS,MG63,143B细胞24h或48h后,用CCK8试剂检测NGA对骨肉瘤细胞增殖的抑制作用。
图2.NGA诱导骨肉瘤细胞凋亡,抑制细胞克隆形成。A.分别用0.25,0.5,1.0,1.5,2.0μM的NGA处理U2OS细胞24h,Western Blot检测PARP与C-PARP,Caspase 3与C-Caspase 3(A左);用1.5μM的NGA处理U2OS细胞0,6,9,12,18,24,36h后检测PARP与C-PARP,Caspase 3与C-Caspase3(A右)。B.143B细胞中重复上述实验。C.AnnexinⅤ-APC和PI双染结合流式细胞技术分析不同浓度NGA处理U2OS和143B细胞24h后所致的凋亡情况,*p<0.05。D.用0.5或1μM的NGA预处理骨肉瘤细胞24h后进行克隆形成实验,在六孔板中接种2×103个细胞,培养10天左右,结晶紫染色计数克隆。
图3.NGA有效促进SOX2通过蛋白酶体的降解,从而发挥抗肿瘤效应。
A.分别用0,0.25,0.5,1,1.5,2.0μM的NGA处理U2OS,143B细胞12h后收细胞提取蛋白后检测细胞中SOX2的水平,发现SOX2表达明显降低(A左);用1μM的NGA处理U2OS细胞0,3,6,9,12,24h后收细胞,提取蛋白后检测SOX2的水平,发现SOX2在12h就出现明显下降(A右)。B.用1μM的NGA处理U2OS细胞12h,在收细胞前5h用5μg/mL的MG132处理,提取蛋白后检测SOX2的表达,发现NGA所致的SOX2蛋白水平下降可被蛋白酶体抑制剂MG132所逆转。C.用1μM的NGA处理U2OS细胞12h后收细胞,提取RNA后,检测SOX2的mRNA水平,发现NGA并不能降低SOX2的mRNA水平。D.在2组融合率为60%-80%的HEK 293T细胞中外源性转入SOX2-HA质粒His-Ub质粒。瞬转48h后收细胞,在收细胞前12h用1μM的NGA处理细胞,用RIPA裂解细胞后,用HA-Beads进行IP实验,Weaternblot检测与SOX2结合的Ub以及K48-Ub的蛋白水平。E-F.在U2OS以及143B细胞中过表达SOX2之后,分别用1.5,2.0μM的NGA处理24h之后,检测细胞的生存率,进行统计。
图4.体内实验证明NGA抑制骨肉瘤生长的,同时抑制SOX2的表达。A.用骨肉瘤细胞143B进行裸鼠的移植瘤实验,用2*106个细胞重悬于100μL PBS中进行皮下成瘤,待移植瘤生长至一定程度时,进行NGA的处理,NGA溶解在含有7.5%聚乙二醇,以及7.5%石油醚的生理盐水中,进行腹腔注射,剂量为6mg/kg,每隔一天打一次,一共处理15天同时进行移植瘤大小的测量,之后进行移植瘤的剥离,进行拍照,称重。A.处理过程中移植瘤大小变化。B.即为剥离的移植瘤的直观图。C.最后移植瘤剥离之后称重两组的重量比较。D.免疫组化检测两组移植瘤中增殖(Ki-67),凋亡(TUNEL),以及SOX2的表达变化。E.处理过程中小鼠的体重变化。
图5.USP9x可以稳定SOX2的表达。A.在293T细胞中瞬时过表达一系列USP家族的成员,48小时后收集细胞裂解液,进行Western blot检测细胞内SOX2的表达情况。B.在293T细胞中分别梯度增加地转入USP9x质粒,同时共转入SOX2质粒,瞬转完48h收取蛋白,Westernblot检测USP9x的过表达情况以及SOX2的表达变化。C.在293T细胞中共同过表达USP9x以及SOX2之后,用10μg/mL的CHX分别处理3,6,9,12h后收集细胞,Western blot检测SOX2的变化(左),检测SOX2的表达相对于内参的变化,统计图如右,*,P<0.05。D.在U2OS以及143B骨肉瘤细胞中利用shRNA敲低USP9x的表达后,Western blot检测发现SOX2的表达水平降低。E.在U2OS以及143B细胞中敲低USP9x之后,再用5μg/mL的MG132处理5h,收取蛋白,Weaternblot方法检测SOX2表达的恢复情况,结果发现敲低USP9x所致的SOX2表达降低可被蛋白酶体抑制剂MG132所逆转。F.用3μM的WP1130处理U2OS以及143B细胞12h,在收蛋白前5h用5μg/mL的MG132处理,然后检测细胞中SOX2的表达情况。
图6.USP9x与SOX2可发生相互作用,同时去泛素化SOX2。A.在HEK293T细胞中外源性转SOX2过表达质粒,用USP9x的抗体或Flag-M2进行IP实验,检测SOX2与USP9x的相互作用。B.在HEK 293T细胞中分别转入质粒Flag-USP9x和SOX2-HA质粒,瞬转结束后,用Flag抗体或者HA抗体进行IP实验,检测与USP9x与SOX2的相互作用。C.在U2OS以及143B细胞中进行免疫荧光染色,显示SOX2(红光)与USP9x(绿光)的共定位情况,DAPI指示细胞核;D.在HEK293T细胞转入shUSP9x,Flag-SOX2以及HA-Ub,在收集细胞前5h用5μg/mL的MG132处理,瞬转48h后收集1×107个细胞,用RIPA裂解后用Flag-Beads进行IP实验,将SOX2IP下来之后检测HA,即与SOX2蛋白连接的泛素量的变化。E.在HEK 293T细胞中分别瞬时转入质粒SOX2-HAHis-Ub与质粒Flag-USP9x,在收集细胞前5h用5μg/mL的MG132处理,瞬转48h后收集1×107个细胞,用RIPA裂解后用HA-Beads进行IP实验,将SOX2IP下来之后分别检测His-Ub/K48-Ub/K63-Ub,即与SOX2蛋白连接的泛素量的变化。
图7.NGA与USP9x而不是SOX2发生相互作用。A-B.CETSA实验,NGA在温度变化(A)与浓度变化(B)下对USP9x的热稳定性的影响。C.U2OS与143B细胞用NGA处理之后,Westernblot检测USP9x的表达量变化。
图8.敲低USP9x可抑制骨肉瘤细胞增殖。A.Western blot方法验证U2OS与143B细胞中USP9x的敲除情况。B-E.U2OS/143B细胞敲低USP9x之后,进行胎盼蓝染色实验(B),显微镜下拍摄细胞形态(C),流式检测细胞周期分布变化(D),结晶紫染色检测细胞克隆形成能力的变化。E.在143B细胞中稳定敲低USP9x之后,再次稳定过表达或者不过表达SOX2,Western blot检测USP9x的敲除效率以及SOX2的过表达水平,结晶紫染色检测细胞克隆形成能力变化。
图9.敲低USP9x降低骨肉瘤细胞的致瘤性。A.Western blot实验验证143B细胞中USP9x的敲除的效率。B-E.用骨肉瘤细胞143B(pGIPz,shUSP9x-1#,shUSP9x-5#)进行裸鼠的移植瘤实验,用2×106个细胞重悬100μLPB中进行皮下成瘤,待移植瘤生长至100mm3时,每隔一天进行移植瘤的测量(B),待成瘤27天之后,进行裸鼠的处理,进行移植瘤的剥离,统计以及称重(C),D为移植瘤的直观图。E.移植瘤免疫组化结果,检测移植瘤的增殖(Ki-67)与凋亡情况(TUNEl),同时检测肿瘤中SOX2的表达变化。
具体实施方式
下面结合具体实施例,进一步阐述本发明。下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。应理解,这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。
细胞处理
人骨肉瘤细胞U2OS,MG63,143B细胞均在含有10%热灭活胎牛血清(FBS,GibcoBRL,Gaithersburg,ML)、青霉素(100U/ml)和链霉素(100μg/ml)的DMEM培养基(Sigma-Aldrich,St Louis,MO)中培养,放置于37℃,含有5%CO2的恒温培养箱中。在实验中,细胞均在细胞密度为70-80%时用相应浓度的药物NGA处理。NGA溶于DMSO,其储存浓度为50mM。细胞活率用台盼蓝排斥测试法检测。
蛋白印迹分析
不同浓度的NGA处理细胞特定的或者不同的时间后,将U2OS,143B,MG63细胞通过离心收集起来并裂解提取蛋白。将蛋白等量上样至6-12%SDS-PAGE胶,进行电泳,并转移印迹至NC膜上(Amersham Biosciences,Piscataway,NJ,USA)。用5%脱脂牛奶封闭膜之后,4℃孵育一抗USP9x(Santa Cruz Biotech,sc-365353),SOX2(Abcam,ab97959),Caspase 3(CST,#9662),PARP(CST,#9532),Flag(Sigma),HA(Sigma),IκBα(CST,#9242),USP2(Abcam,ab66556),USP7(Santa Cruz Biotech,sc-133204),USP14(Santa Cruz Biotech,sc-398009),USP24(Abcam,ab129064)。接着孵育辣根过氧化物酶连接的二抗(CellSignaling,Beverly,MA)。并采用化学底物发光(Cell Signaling Technology)检测。β-actin抗体(Merck,Darmstadt,Germany)用于检测蛋白的上样量。
RNA抽提分析
收集处理好的细胞2×106个,用预冷的PBS缓冲液洗涤两次后,2500rpm,4℃离心5min后用1mL TRIzol重悬细胞,在震荡仪上剧烈震荡30s使细胞充分混匀然后在室温静置5min;在每毫升TRIzol中加入200μL氯仿,反复混匀,至液体沿管壁顺利流下,且液体不凝滞后,室温静置10min;12000g,4℃离心15min后将分离得到的上清(约500μL)移至另一无RNA酶的EP管中,加入等体积的异丙醇,震荡5s或者上下颠倒混匀后在室温静置5min,12000g,4℃离心10min后RNA沉淀在管底,弃上清,加入1mL 75%乙醇(由DEPC水现配)颠倒重悬RNA沉淀后7500g,4℃离心5min,弃上清,可重复此操作以保证将沉淀洗涤干净;在超净台中将其吹干后(至RNA沉淀呈现半透明)用DEPC水溶解,然后再将抽提的RNA定量、用于逆转录,如暂时不需使用可放于-80℃中保存。
逆转录:
利用全式金反转录试剂盒进行RNA的逆转录
Figure BDA0002125322610000061
轻轻混匀后,42℃孵15min;85℃加热5s失活TransScript RT/RI gRNA Remover。反转录结束后,得到的cDNA可放置于-20℃保存。将上述得到的cDNA进行荧光定量PCR,每个处理组均为三复孔,每复孔10μL体系:5μL SYBR Green PCR Master Mix,正反向引物各0.1μL,cDNA 1μL,ddH2O 3.8μL,加于96孔板后用封口膜封好后,于常温,2000rpm离心2min,使得孔壁上的样品流至底部。在7300Real time PCR System仪器中进行RT-PCR,Ct值为达到设定的阈值所需要的循环次数,应用“ΔΔCt法”,GAPDH作为内参基因计算mRNA水平。检测的GAPDH,USP9x和SOX2基因的引物如下表所示。
Figure BDA0002125322610000071
骨肉瘤细胞内USP9x的敲除实验
在骨肉瘤细胞内进行USP9x的敲除实验,首先进行慢病毒的包装,在六孔板中进行,当六孔板中HEK 293T细胞融合率达到60–80%时,进行病毒的包装,每孔的体系为:两个EP管每一个EP管中加入100μL opti-MEM培养液,其中一管中加入包装质粒psPAX2 0.75μg,pMD2G 0.5μg,与目的质粒pGIPz/pGIPz-shUSP9x-1#/5#0.75μg后混匀,另一管中加入100μLopti-MEM培养液后按PEI:质粒总量比例为6:1加入PEI转染试剂12μL,混匀后将转染试剂混合物加入到质粒混合物中,混匀后静置10min,逐滴加入到293T细胞中,混匀后培养6h后换新鲜的培养液,每孔2.5mL。48h后用0.45μm的滤头过滤病毒,病毒上清感染骨肉瘤细胞,同时加入polybren至终浓度为8μg/mL,6h后换液,48h后进行筛选,puromycin筛选浓度均为1μg/mL。筛选结束后得到敲除USP9x的稳转株。敲除USP9x靶向片段为1#:5’-CTTAAATCCTCATTGCAA A-3’;5#:5’-GATGTATTCTCAATCGTAT-3’。
统计分析
用于统计的数据均来自于每次3个样本共3次试验的结果,Student’s t-test用于评价两组之间的差异,p<0.05被认为具有显著性统计学差异。
实施例1.NGA可抑制骨肉瘤细胞增殖,促进细胞发生凋亡。
通过一系列的CCK8实验与凋亡检测筛选我们发现NGA可引起骨肉瘤细胞U2OS和143B细胞发生明显的增殖抑制以及凋亡,并且呈现时间依赖的方式。同时可以有效地抑制肿瘤细胞的克隆形成能力。
实验过程:分别用不同浓度的NGA处理U2OS,143B以及MG63细胞24h或者48h之后,CCK8实验检测细胞的增殖情况发现,NGA可以明显抑制细胞的增殖(见图1)。而后我们分别用0.25,0.5,1.0,1.5,2.0μM的NGA处理U2OS细胞24h,Western Blot检测发现NGA可明显诱导细胞发生凋亡,出现PARP与Caspase3的活化(见图2A-B),进一步用AnnexinⅤ-APC和PI双染技术,流式细胞分析发现NGA确实可以明显诱导细胞发生凋亡(见图2C),而在NGA处理细胞后,用结晶紫染色发现,其同样可以明显抑制细胞的克隆形成能力,抑制细胞的增殖(见图2D)。
实施例2.NGA有效促进SOX2的降解,从而发挥抗肿瘤效应。
由于有文献报道过SOX2的高表达有效地促进了肿瘤细胞的增殖,肿瘤的快速进展,但是根据文献报道SOX2可被泛素结合酶Ube2s泛素化,而后通过蛋白酶体途径降解,这也就预示着我们可以通过调控SOX2的降解这一过程,来调控肿瘤大的进程。在这里我们检测发现NGA可以有效的,呈时间与浓度依赖性地促进SOX2通过蛋白酶体途径降解,同时并不改变其mRNA水平,而蛋白酶体抑制剂MG132可以逆转这一现象。进一步通过免疫沉淀检测SOX2的泛素化水平以及类型发现,SOX2在NGA的影响下,泛素化水平显著增高,而且是与蛋白酶体降解相关的K48-Ub的明显上升。为了进一步检测SOX2的降解是否参与了NGA的抗肿瘤效应,我们在细胞中过表达SOX2之后,发现这一处理可以明显减弱NGA抑制骨肉瘤细胞增殖的影响,这也就说明SOX2的泛素化降解参与了NGA所诱导的抗肿瘤过程。
实验过程:首先我们分别用0,0.25,0.5,1,1.5,2.0μM的NGA处理U2OS,143B细胞12h后收细胞提取蛋白后检测细胞中SOX2的水平,发现SOX2表达明显降低(见图3A左);用1μM的NGA处理U2OS细胞0,3,6,9,12,24h后收细胞,提取蛋白后检测SOX2的水平,发现SOX2在12h就出现明显下降(A右),可见NGA可成时间与浓度依赖性的降低SOX2的表达。为了进一步验证泛素-蛋白酶体系统在SOX2的表达下降中的作用,我们用1μM的NGA处理U2OS细胞12h,在收细胞前5h用5μg/mL的MG132处理,提取蛋白后检测SOX2的表达,发现NGA所致的SOX2蛋白水平下降可被蛋白酶体抑制剂MG132所逆转,可见SOX2的降解是通过蛋白酶体系统的(见图3B)。而这一结果同样在转录水平得到验证,我们用1μM的NGA处理U2OS细胞12h后收细胞,提取RNA后,检测SOX2的mRNA水平,发现NGA并不能降低SOX2的mRNA水平(见图3C)。既然NGA是通过泛素-蛋白酶体系统讲解SOX2,那么其应可以改变SOX2的泛素化水平,在两组融合率为60%-80%的HEK 293T细胞中外源性转入SOX2-HA质粒His-Ub质粒。瞬转48h后收细胞,在收细胞前12h用1μM的NGA处理细胞,用RIPA裂解细胞后,用HA-Beads进行IP实验,Weaternblot检测与SOX2结合的Ub以及K48-Ub的蛋白水平,发现NGA可以明显增加SOX2的泛素化水平,特别是K48-Ub(见图3D)。所以当我们在U2OS以及143B细胞中过表达SOX2之后,分别用1.5,2.0μM的NGA处理24h之后,检测细胞的生存率发现,细胞中过表达的SOX2可以部分逆转NGA所产生的细胞增殖抑制的效应(见图3E-F),这也就进一步验证了NGA可以通过降低SOX2的水平,从而产生细胞抑制的作用。
实施例3.体内实验证明NGA抑制骨肉瘤生长的,同时抑制SOX2的表达。
经过裸鼠移植瘤模型,用143B细胞在裸鼠皮下进行成瘤实验,待移植瘤生长至一定程度时,用6mg/kg的NGA进行腹腔注射,处理15天之后,与对照组进行比较发现,NGA组小鼠所成移植瘤的大小明显小于对照组,同时组化结果显示处理之后移植瘤中增殖相关指标Ki-67表达明显降低,而凋亡指标TUNEL阳性的细胞明显增加,同时伴随着SOX2的表达的下降。这也就验证了NGA在体内可以有效的抑制骨肉瘤的进程,同时降低促进肿瘤发展的SOX2的表达。
实验过程:裸鼠移植瘤模型验证NGA的抑制骨肉瘤增殖的能力,我们用骨肉瘤细胞143B进行裸鼠的移植瘤实验,用2*106个细胞重悬于100μL PBS中进行皮下成瘤,待移植瘤生长至一定程度时,进行NGA的处理,NGA溶解在含有7.5%聚乙二醇,以及7.5%石油醚的生理盐水中,进行腹腔注射,剂量为6mg/kg,每隔一天打一次,一共处理15天同时进行移植瘤大小的测量,之后进行移植瘤的剥离,进行拍照,称重。处理过程中我们发现移植瘤在NGA的作用下明显减小(见图4A-B),重量也明显减轻(见图4C)。最后我们用免疫组化检测两组移植瘤中增殖(Ki-67),凋亡(TUNEL),以及SOX2的表达变化,发现NGA明显抑制肿瘤的增殖,促进细胞的凋亡,同时肿瘤中的SOX2的表达水平下降(见图4D)。而在NGA处理过程中NGA对小鼠体重的影响不是很大(见图4E)。
实施例4.USP9x可以稳定SOX2的表达。
通过以上实验我们验证了NGA可以通过改变DUBs的活性来调控SOX2的表达,而USP家族是DUBs中成员最多的家族,我们通过检测在过表达USPs家族成员的293T细胞中SOX2的表达情况发现,USP9x可以明显稳定SOX2的表达。同时我们利用不同的去泛素化酶抑制剂也验证了这一现象,如b-AP15(USP14和UCHL5的抑制剂),P5091(USP7和USP47的抑制剂)和ML364(USP2的抑制剂),WP1130(USP9x的抑制剂),发现只有WP1130可以有效的促进SOX2的下调。所以我们在骨肉瘤细胞中进行USP9x的敲除实验发现,降低USP9x的表达水平同样可以下调SOX2的表达(不改变SOX2的mRNA水平),而这种SOX2的下调可以被蛋白酶体抑制剂MG132所逆转。
实验过程:首先我我们在293T细胞中瞬时过表达一系列USP家族的成员,48小时后收集细胞裂解液,进行Western blot检测细胞内SOX2的表达情况,发现USP9x过表达之后可以明显上调SOX2的表达水平(见图5A)。所以进一步地我们在293T细胞中分别梯度增加地转入USP9x质粒,同时共转入SOX2质粒,瞬转完48h收取蛋白,Western blot检测USP9x的过表达情况以及SOX2的表达变化,发现随着USP9x的表达量的增加,SOX2的表达也得到逐步的稳定(如图5B)。所以既然USP9x可以稳定SOX2的表达,那么USP9x是否是通过改变SOX2的半衰期来实现的呢?所以我们在293T细胞中共同过表达USP9x以及SOX2之后,用10μg/mL的CHX分别处理3,6,9,12h后收集细胞,Western blot检测SOX2的变化发现,过表达USP9x之后,SOX2的半衰期得到明显的延长(见图5C左),检测SOX2的表达相对于内参的变化,统计图如图5C右,*,P<0.05。接着我们在U2OS以及143B骨肉瘤细胞中利用shRNA敲低USP9x的表达后,Western blot检测发现SOX2的表达水平降低(见图5D)。而在U2OS以及143B细胞中敲低USP9x之后,再用5μg/mL的MG132处理5h,收取蛋白,Weatern blot方法检测SOX2表达的恢复情况,结果发现敲低USP9x所致的SOX2表达降低可被蛋白酶体抑制剂MG132所逆转(见图5E)。为了验证这一结果,我们同样利用了USP9x的抑制剂WP1130来验证这一结果,我们用3μM的WP1130处理U2OS以及143B细胞12h,在收蛋白前5h用5μg/mL的MG132处理,然后检测细胞中SOX2的表达情况,同样发现WP1130可以降低SOX2的表达,而其这一降低可被蛋白酶体抑制剂所逆转(见图5F)。
实施例5.USP9x与SOX2可发生相互作用,同时去泛素化SOX2
既然USP9x可以稳定SOX2的表达,降低USP9x的表达可以下调SOX2的水平,而这一现象可被蛋白酶体抑制剂所逆转,那么SOX2是否就是USP9x的经典底物之一呢?首先我们通过免疫共沉淀实验证明了两者之间的相互作用,同时通过改变细胞内USP9x的表达,检测SOX2的泛素化状态时发现,USP9x的低表达使得SOX2的泛素化水平明显增高,而高表达时,SOX2的泛素化水平下降,而主要改变的泛素类型是K48-Ub,可见SOX2是USP9x的底物之一,USP9x可以与SOX2发生相互作用,是的SOX2发生去泛素化,而避免其通过蛋白酶体途径降解。
实验过程:我们在HEK 293T细胞中外源性转SOX2过表达质粒,用USP9x的抗体或Flag-M2进行IP实验,检测SOX2与USP9x的相互作用,发现USP9x与SOX2存在明显的相互作用(见图6A)。反向地,在HEK 293T细胞中分别转入质粒Flag-USP9x和SOX2-HA质粒,瞬转结束后,用Flag抗体或者HA抗体进行IP实验,同样检测出这一相互作用(见图6B)。免疫荧光同样验证了这一点,在U2OS以及143B细胞中进行免疫荧光染色,显示SOX2(红光)与USP9x(绿光)的共定位情况,DAPI指示细胞核,在共聚焦显微镜下可以明显发现这一共定位情况(见图6C),可见USP9x与SOX2的相互作用确实存在;所以我们接着检测USP9x对SOX2的泛素化水平的影响,首先在HEK 293T细胞转入shUSP9x,Flag-SOX2以及HA-Ub,在收集细胞前5h用5μg/mL的MG132处理,瞬转48h后收集1×107个细胞,用RIPA裂解后用Flag-Beads进行IP实验,将SOX2IP下来之后检测HA,即与SOX2蛋白连接的泛素量的变化,发现USP9x的表达降低之后,SOX2的泛素化水平明显上升(见图6D)。而在HEK 293T细胞中分别瞬时转入质粒SOX2-HA、His-Ub与质粒Flag-USP9x,在收集细胞前5h用5μg/mL的MG132处理,瞬转48h后收集1×107个细胞,用RIPA裂解后用HA-Beads进行IP实验,将SOX2IP下来之后分别检测泛素化类型的改变,发现过表达USP9x之后,SOX2的泛素化水平明显下降,而且是K48-Ub的变化,K63-Ub没有明显改变(见图6D)。
实施例6.NGA与USP9x发生相互作用
通过以上的实验我们发现NGA可以促进SOX2的泛素化降解,而SOX2又是USP9x的底物,所以我们猜想USP9x与NGA是否能发生相互作用。细胞热力学迁移实验(CETSA)是验证小分子化合物与其靶标相互作用的方法之一,通过CETSA实验我们发现NGA可以增强USP9x在不同温度下的热稳定性,且呈浓度依赖性,并且NGA与USP9x的这种相互作用并不影响其蛋白水平。
实验过程:首先我们通过CETSA实验来验证USP9x与NGA的相互关系,分别检测NGA在温度变化(见图7A)与浓度变化(见图7B)下对USP9x的热稳定性的影响,发现NGA可呈温度与时间梯度地稳定USP9x。而当我们用NGA处理U2OS与143B细胞后用NGA处理之后,Westernblot检测USP9x的表达量变化发现,NGA并不影响USP9x的蛋白水平的表达(见图7C),这也就说明了NGA可作用于USP9x,但并不影响USP9x的蛋白水平的表达。
实施例7.敲低USP9x可诱导骨肉瘤细胞增殖能力下降
以上实验我们已经验证了NGA在骨肉瘤细胞中的肿瘤抑制作用,NGA可以通过与去泛素化酶USP9x的作用,从而促进促癌因子SOX2的泛素化降解,继而抑制肿瘤的增殖和进展,但是USP9x是否在骨肉瘤中是一个促癌因子的作用,还需进一步的验证,所以我们在接下去的实验中验证了在骨肉瘤中USP9x的作用。在骨肉瘤细胞中敲低USP9x的表达,可以有效地抑制细胞的增殖。通过克隆形成实验发现其又可明显抑制克隆形成能力,我们通过流式检测发现,敲低USP9x可明显的诱导细胞发生S期的阻滞。
实验过程:首先看我们在骨肉瘤细胞中降低USP9x的表达水平,来验证其对骨肉瘤细胞的影响,Western blot方法验证U2OS与143B细胞中USP9x的敲除情况(见图8A)。U2OS/143B细胞敲低USP9x之后,进行胎盼蓝染色实验(见图8B),显微镜下拍摄细胞形态(见图8C),流式检测细胞周期分布变化(见图8D),结晶紫染色检测细胞克隆形成能力的变化(见图8E),发现USP9x表达降低之后,细胞的增殖能力下降,同时周期发生阻滞,克隆形成能力明显下降。进一步地,以上我们验证了SOX2是USP9x的底物,所以当我们在143B细胞中稳定敲低USP9x之后,再次稳定过表达或者不过表达SOX2,来验证SOX2是否可以逆转USP9x表达降低所产生的生物学效应,首先Western blot检测USP9x的敲除效率以及SOX2的过表达水平(见图8E上),再而通过结晶紫染色检测细胞克隆形成能力变化,发现SOX2的过表达可明显逆转USP9x表达降低所产生的增殖抑制效应。
实验例8.敲低USP9x在体内抑制骨肉瘤细胞增殖
进一步在裸鼠身上进行皮下成瘤实验发现,降低USP9x的表达,可明显降低骨肉瘤细胞的致瘤性,敲低USP9x之后,移植瘤的体积和重量明显减小,免疫组化同样发现在USP9x的表达降低的所成移植瘤中,细胞凋亡增加,增殖减慢,SOX2的表达同样下降。可见USP9x可在体内抑制骨肉瘤的发展,同时降低肿瘤中SOX2的表达。
实验过程:以上我们在细胞中验证了USP9x的效应,进一步地我们在动物水平进行验证,首先Western blot实验验证143B细胞中USP9x的敲除的效率(见图9A)。然后我们进行移植瘤实验,用骨肉瘤细胞143B(pGIPz,shUSP9x-1#,shUSP9x-5#)进行裸鼠的移植瘤实验,用2×106个细胞重悬100μLPBS中进行皮下成瘤,待移植瘤生长至100mm3时,每隔一天进行移植瘤的测量并记录(见图9B),待成瘤27天之后,进行裸鼠的处理,进行移植瘤的剥离,统计以及称重(见图9C),图9D为移植瘤的直观图,从统计结果来看NGA可明显抑制体内骨肉瘤地生长,进而通过移植瘤免疫组化结果,检测发现移植瘤的增殖能力下降(Ki-67表达减少)与凋亡增加(TUNEL表达增加),同时检测肿瘤中SOX2发现SOX2的表达同样下降(见图9E)。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
Figure IDA0002125322670000011
Figure IDA0002125322670000021

Claims (4)

1.USP9x抑制剂在制备治疗骨肉瘤药物中的应用。
2.根据权利要求1所述的USP9x抑制剂在制备治疗骨肉瘤药物中的应用,其特征在于,所述抑制剂是新藤黄酸。
3.根据权利要求1所述的USP9x抑制剂在制备治疗骨肉瘤药物中的应用,其特征在于,所述抑制剂是WP1130。
4.新藤黄酸在制备USP9x抑制剂中的应用。
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