CN111748644A - 低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a及其应用 - Google Patents

低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a及其应用 Download PDF

Info

Publication number
CN111748644A
CN111748644A CN202010769620.7A CN202010769620A CN111748644A CN 111748644 A CN111748644 A CN 111748644A CN 202010769620 A CN202010769620 A CN 202010769620A CN 111748644 A CN111748644 A CN 111748644A
Authority
CN
China
Prior art keywords
rice
loc
seq
root
gene
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN202010769620.7A
Other languages
English (en)
Inventor
程式华
吴玮勋
曹立勇
伊斯兰·阿诺额鲁
张迎信
沈希宏
占小登
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
China National Rice Research Institute
Original Assignee
China National Rice Research Institute
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by China National Rice Research Institute filed Critical China National Rice Research Institute
Priority to CN202010769620.7A priority Critical patent/CN111748644A/zh
Publication of CN111748644A publication Critical patent/CN111748644A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6888Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms
    • C12Q1/6895Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for detection or identification of organisms for plants, fungi or algae
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8241Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
    • C12N15/8261Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/82Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for plant cells, e.g. plant artificial chromosomes (PACs)
    • C12N15/8241Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology
    • C12N15/8261Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield
    • C12N15/8271Phenotypically and genetically modified plants via recombinant DNA technology with agronomic (input) traits, e.g. crop yield for stress resistance, e.g. heavy metal resistance
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/13Plant traits
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2600/00Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/156Polymorphic or mutational markers

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

本发明提供低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a及其应用。本发明利用以中恢9308为受体,协青早B为供体得到的CSSL35与ZH9308回交所建BC5F2∶3群体为材料,将水稻苗期缺钾条件下影响根系发育的QTL qRN5a精细定位到标记A99和A139之间48.8kb的区间内。qRN5a包含3个可能的候选基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和LOC_Os05g28000。此外,在低钾条件下,qRN5a能够促进根组织中OsIAA23的表达,并抑制OsHAK5的表达,以促进CSSL35的根数。本发明为克隆水稻根系耐低钾胁迫基因座,改善缺钾条件下的水稻根系结构奠定基础。

Description

低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a及其应用
技术领域
本发明涉及分子生物学和植物遗传育种领域,具体地说,涉及低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a及其应用。
背景技术
水稻(Oryza sativa L.)是世界上最重要的粮食作物之一,尤其是在亚洲,是粮食安全的主要支柱。钾(K)是一种必需的矿质元素,是细胞膨胀的主要渗透介质,参与植物生长发育所需的许多生理过程(Leigh and Jones 1984;Amtmann et al.2005)。钾还参与许多细胞和组织过程,如蛋白质合成、碳水化合物代谢、酶激活、气孔调节和离子稳态(Clarkson and Hanson 1980;Amtmann et al.2005)。此外,钾是限制农业生态系统中植物生长和发育的主要营养元素之一(Rengel and Damon 2008)。在作物中,水稻是对钾需求量最大的作物之一,其对钾的需求量是氮的1.2倍和磷的7倍(Dobermann et al.1998)。
目前种植的水稻品种和杂交水稻的肥料利用率较低,营养元素的利用效率至关重要。发展中国家的农民通常使用较少的钾肥,因为其成本高,这会导致土壤中的钾缺乏(Hoaet al.2006;Andrist-Rangel et al.2007)。大部分可耕种土地缺乏钾,包括中国约75%的水稻种植区(Rengel and Damon 2008)。钾缺乏是限制作物产量的主要因素,因为它被土壤颗粒强烈吸附和固定,也是土壤中的低流动性养分(Amtmann et al.2005;Rengel andDamon 2008)。因此,施用钾肥是农民增产的有效途径。但是,高施肥量和低钾利用效率增加了农民的生产成本和环境污染(Laegreid et al.1999)。
作物钾利用效率的遗传改良(即使用耐低钾品种)已成为农业可持续发展的一个良好策略,同时也降低了农民的生产成本,并将生产损失降至最低(Pettigrew 2008)。植物的钾利用效率受根系吸钾能力的控制。通过优化根系结构,可以提高植物根系的钾吸收能力。不同物种间以及同一物种不同品种(基因型)的钾获取和利用效率不同(Glass andPerley 1980;Pettersson and Jensen 1983)。植物对养分的吸收和利用取决于植物根系结构(
Figure BDA0002614401760000011
-Jensen and Pedersen 2003;Kellermeier et al.2013)。根系结构改良是植物适应营养不良土壤的关键途径(Dorlodot et al.2007;Shin 2014)。
植物耐低钾性是一个复杂的数量性状,基因型与环境关系密切。数量性状基因座(QTL)分析是揭示数量性状相关基因的有效途径(Paterson et al.1988)。在大多数情况下,传统的QTL定位群体是双亲群体,如F2、重组自交系(RILs)或双单倍体(DH)。在这些群体中,由于背景复杂,可能无法确定效应较小的QTL。相比之下,染色体片段置换系(CSSLs)或近等基因系(NILs)等高级定位群体更适合QTL鉴定(Nadeau and Frankel 2000)。在这些群体中,每一个品系都带有一个小片段,提供了一个更为均匀的遗传背景,从而增加了找到效应较小QTL的可能性(Tanksley and Nelson 1996,Septiningsih et al.2003)。此外,来自于目标CSSL或NIL与轮回亲本进一步回交产生的次级F2或F3群体,是进一步精细定位QTL的更好选择(Yano 2001)。
前人的研究利用DH、BIL或RIL定位群体发现了几个在低钾条件下和苗期性状相关的QTL(Wu et al.1998;Miyamoto et al.2012;Fang et al.2015;Wang et al.2015)。在不同生长条件下的不同根系性状中,很少有QTL被精细定位,同时也没有在缺钾条件下水稻根数QTL的报道。Obara等(2010)在水培系统中,在水稻苗期鉴定出根长QTL qRL6.1,并将其缩小到水稻第6染色体上337kb的基因组区域。Anis等(2019)在低氮条件下,将控制水稻苗期根干重的主要QTL RDWN6XB被缩小到水稻6号染色体上的52.3kb区域。
迄今为止,共有53个控制水稻根系生长发育的基因被鉴定和克隆(Meng etal.2019)。大多数已鉴定的基因在生长素或细胞分裂素信号中起作用,并参与根系发育过程。第一个与根发育相关的基因是ARL1/CRL1(Inukai et al.2005;Liu et al.2005),它编码一个LOB结构域蛋白。随后,OsIAA13/23、OsAUX1和OsPIN2等调控水稻根系伸长和不定根形成的基因也陆续被克隆(Ni et al.2011;Kitomi et al.2012;Yu et al.2015;Zhao etal.2015;Inahashi et al.2018)。近年来,在水稻中发现了编码与冠根形成有关的SBP结构域蛋白的OsSPL3(Shao et al.2019)。此外,在水稻中还发现了27种高亲和力K+(HAK)转运蛋白(Yang et al.2009),在低钾条件下,对钾离子运输、植物生长发育起着重要作用。在不同供钾水平下,水稻根中存在3种钾离子转运体,OsHAK1/5/21(Yang et al.2014;Chen etal.2015b;Shen et al.2015)。这些发现大大提高了人们对钾利用效率和钾缺乏耐受机制的认识,但具体机制尚未完全阐明。
发明内容
本发明的目的是提供低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a及其应用。
本发明利用以中恢9308(低钾敏感型)为受体,协青早B(低钾耐受型)为供体构建得到的CSSL35(染色体片段置换系,用“协青早B”5号染色体上的7853948~17620241bp替代“中恢9308”5号染色体上的7854125~17620455bp)与ZH9308回交所构建的BC5F2:3群体为材料,进行了水稻苗期缺钾条件下根系性状的QTL定位。
为了实现本发明目的,第一方面,本发明提供低钾条件下影响水稻苗期根数的QTLqRN5a,所述qRN5a位于水稻5号染色体InDel标记A99和A139之间48.8-kb的区间内。其中,InDel标记A99和A139见表1。
以上物理位置所基于的水稻基因组版本号为Rice Annotation ProjectDatabase (RAP-DB,https://rapdb.dna.affrc.go.jp/)和Rice Genome AnnotationProject Database (RGAP,http://rice.plantbiology.msu.edu/)。
上述QTL qRN5a位点包含3个可能的候选基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和LOC_Os05g28000,所述的3个候选基因在中恢9308(ZH9308)和协青早B(XQZB)中的CDS序列分别如SEQ ID NO:1-6所示,启动子序列分别如SEQ ID NO:7-12所示。其中,Os05g0346700在中恢9308和协青早B中的CDS序列分别如SEQ ID NO:1-2所示,LOC_Os05g27980在中恢9308和协青早B中的CDS序列分别如SEQ ID NO:3-4所示,LOC_Os05g28000在中恢9308和协青早B中的CDS序列分别如SEQ ID NO:5-6所示;Os05g0346700的启动子序列在中恢9308和协青早B中的CDS序列分别如SEQ ID NO:7-8所示,LOC_Os05g27980的启动子序列在中恢9308和协青早B中的CDS序列分别如SEQ ID NO:9-10所示,LOC_Os05g28000的启动子序列在中恢9308和协青早B中的CDS序列分别如SEQ ID NO:11-12所示。
在之前研究中,从一个CSSL群体中鉴定了几个与苗期性状相关的QTL,这些QTL来自于供体亲本协青早B(XQZB)和轮回亲本中恢9308(ZH9308)。在已鉴定的QTL中,在BC5F2群体中验证了qRN5a在5号染色体长臂上的作用。为进一步阐明qRN5a(在LK条件下增加RN)的分子基础,我们通过将携带该基因座的CSSL35与ZH9308杂交,构建了一个较大的次级F2:3(BC5F2:3)群体,并最终用纯合交换单株将qRN5a基因定位到InDel标记A99和A139之间48.8kb的区段上,并对该区段中7个假定候选基因进行了分析,其中3个基因(Os05g0346700、LOC_Os05g27980和LOC_Os05g28000)在双亲之间的编码区域中具有非同义的单核苷酸多态性。分析结果表明,LOC_Os05g27980编码一个LATERAL ORGAN BOUNDARIES域包含蛋白,是根数低钾耐受性的正调控因子,是qRN5a最可能的候选基因。此外,通过qRT-PCR检测,在低钾条件下,qRN5a促进根组织中OsIAA23基因的表达,并抑制根组织中OsHAK5基因的表达,以促进CSSL35的根数。
第二方面,本发明提供与所述qRN5a紧密连锁的分子标记,包括15个SNP标记SNP1~SNP15和3个InDel标记InDel1~InDel3。
其中,SNP1位于水稻基因Os05g0346700 CDS序列第142bp,多态性为A/G;SNP2位于水稻基因LOC_Os05g27980 CDS序列第442bp,多态性为G/T;SNP3位于水稻基因LOC_Os05g28000 CDS序列第347bp,多态性为A/G;SNP4位于水稻基因LOC_Os05g28000 CDS序列第409bp,多态性为T/C;
SNP5~SNP13分别位于水稻基因Os05g0346700 ATG起始密码子上游第-115、-186、-194、-405、-436、-589、-599、-714和-770bp,多态性分别为C/T、A/G、A/G、T/C、G/A、T/C、G/A、G/A和C/T;SNP14位于水稻基因LOC_Os05g27980 ATG起始密码子上游第-1054bp,多态性为T/A;SNP15位于水稻基因LOC_Os05g28000 ATG起始密码子上游第-586bp,多态性为A/G;
InDel1位于水稻基因Os05g0346700 ATG起始密码子上游第-515~-500bp,多态性为TATGGCAGGATTGTCC/-;
InDel2位于水稻基因LOC_Os05g27980 ATG起始密码子上游第-4~-5bp,多态性为--/AG;
InDel3位于水稻基因LOC_Os05g27980 ATG起始密码子上游第-1109bp,多态性为-/A。
第三方面,本发明提供用于扩增上述分子标记的引物,扩增各分子标记的引物如下:
扩增SNP1的正向引物和反向引物序列分别为SEQ ID NO:13和14;
扩增SNP2的正向引物和反向引物序列分别为SEQ ID NO:15和16;
扩增SNP3和SNP4的正向引物和反向引物序列分别为SEQ ID NO:17和18;
扩增SNP5~SNP1 3和InDel1的正向引物和反向引物序列分别为SEQ ID NO:19和20、SEQ ID NO:21和22以及SEQ ID NO:23和24;
扩增SNP14、InDel2和InDel3的正向引物和反向引物序列分别为SEQ ID NO:25和26、SEQ ID NO:27和28以及SEQ ID NO:29和30;
扩增SNP1 5的正向引物和反向引物序列分别为SEQ ID NO:31和32、SEQ ID NO:33和34以及SEQ ID NO:35和36。
第四方面,本发明提供上述分子标记或其检测试剂的以下任一应用:
(1)用于低钾条件下水稻苗期根系性状的鉴定;
(2)用于耐低钾胁迫水稻材料的早期预测;
(3)用于鉴定低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a位点;
(4)用于水稻基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和LOC_Os05g28000的基因分型;
(5)用于耐低钾水稻种质资源鉴定或分子标记辅助育种。
第五方面,本发明提供源自籼稻品种‘协青早B’的QTL位点qRN5a的以下任一应用:
(1)调控植物根系生长发育;
(2)调控植物苗期低钾条件下根系性状;
(3)植物品种改良;
(4)制备转基因植物;
(5)促进水稻根组织中OsIAA23基因的表达;
(6)抑制水稻根组织中OsHAK5基因的表达。
所述调控为正调控。
所述根系性状为根数。
优选地,所述植物为禾本科植物,更优选水稻。
第六方面,本发明提供源自籼稻品种‘协青早B’的水稻基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和LOC_Os05g28000:
水稻基因Os05g0346700的CDS序列为:
i)SEQ ID NO:2所示的核苷酸序列;
ii)SEQ ID NO:2所示的核苷酸序列经取代、缺失和/或增加一个或多个核苷酸且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列;
iii)在严格条件下与SEQ ID NO:2所示序列杂交且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列,所述严格条件为在含0.1%SDS的0.1×SSPE或含0.1%SDS的0.1×SSC溶液中,在65℃下杂交,并用该溶液洗膜;或
iv)与i)、ii)或iii)的核苷酸序列具有90%以上同源性且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列。
水稻基因Os05g0346700的启动子序列如SEQ ID NO:8所示。
水稻基因LOC_Os05g27980的CDS序列为:
a)SEQ ID NO:4所示的核苷酸序列;
b)SEQ ID NO:4所示的核苷酸序列经取代、缺失和/或增加一个或多个核苷酸且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列;
c)在严格条件下与SEQ ID NO:4所示序列杂交且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列,所述严格条件为在含0.1%SDS的0.1×SSPE或含0.1%SDS的0.1×SSC溶液中,在65℃下杂交,并用该溶液洗膜;或
d)与a)、b)或c)的核苷酸序列具有90%以上同源性且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列。
水稻基因LOC_Os05g27980的启动子序列如SEQ ID NO:10所示。
水稻基因LOC_Os05g28000的CDS序列为:
A)SEQ ID NO:6所示的核苷酸序列;
B)SEQ ID NO:6所示的核苷酸序列经取代、缺失和/或增加一个或多个核苷酸且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列;
C)在严格条件下与SEQ ID NO:6所示序列杂交且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列,所述严格条件为在含0.1%SDS的0.1×SSPE或含0.1%SDS的0.1×SSC溶液中,在65℃下杂交,并用该溶液洗膜;或
D)与A)、B)或C)的核苷酸序列具有90%以上同源性且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列。
水稻基因LOC_Os05g28000的启动子序列如SEQ ID NO:12所示。
第七方面,本发明提供含有所述水稻基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和/或LOC_Os05g28000的生物材料,所述生物材料包括但不限于重组DNA、表达盒、转座子、质粒载体、噬菌体载体、病毒载体、工程菌或非可再生的植物部分。
第八方面,本发明提供水稻基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和/或LOC_Os05g28000,或者含有所述基因的生物材料的以下任一应用:
(1)调控植物根系生长发育;
(2)调控植物苗期低钾条件下根系性状;
(3)植物品种改良;
(4)制备转基因植物;
(5)促进水稻根组织中OsIAA23基因的表达;
(6)抑制水稻根组织中OsHAK5基因的表达。
所述调控为正调控。
所述根系性状为根数。
优选地,所述植物为禾本科植物,更优选水稻。
第九方面,本发明提供一种促进水稻苗期低钾条件下根系生长发育的方法,包括:
1)使水稻包含基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和/或LOC_Os05g28000;或
2)使水稻过表达基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和/或LOC_Os05g28000。
其中,基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和LOC_Os05g28000的CDS序列分别如SEQ ID NO:2、4、6所示,它们的启动子序列分别如SEQ ID NO:8、10、12所示。
前述方法包括但不限于转基因、杂交、回交、自交或无性繁殖。
本发明中,所述低钾条件是指培养环境中的供钾(K+)水平为5mg/L。
借由上述技术方案,本发明至少具有下列优点及有益效果:
本发明首次发现了低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a,本发明提供的源自籼稻品种‘协青早B’的QTL位点qRN5a对培育耐低钾水稻品种的分子标记辅助选择具有重要意义,为最终克隆水稻根系耐低钾胁迫基因座,改善缺钾条件下的水稻根系结构奠定了坚实的基础。
附图说明
图1为本发明较佳实施例中XQZB、CSSL35和ZH9308的遗传背景。在CSSL35染色体图谱中,黑色区域表示ZH9308背景中的XQZB等位基因,红色区域表示主要qRN5a位点。
图2为本发明较佳实施例中水稻导入系CSSL35和轮回亲本ZH9308的根系表型。其中,a为两个亲本在LK和NK下的根系表型。b-d为两个亲本在LK和NK下的其他根部表型,包括根数(b)、根长(c)和根干重(d)。用12株植物测定生长参数,数据用平均值±标准差表示。*,**和***分别表示5%,1%和0.1%水平上的显著性。
图3为本发明较佳实施例中qRN5a在5号染色体上的精细定位。其中,a为基于75个CSSLs的qRN5a遗传连锁图谱。b为验证BC5F2群体中的qRN5a位点。c为使用2962个单株精细定位qRN5a区间的高分辨率连锁图。d为用于精细定位的11个纯合重组家系和两亲本(ZH9308和CSSL35)的基因型和表型。白条和黑条分别表示ZH9308和CSSL35的标记基因型;RN、RL和RDW表示为平均值±标准差。肩标字母(a,b,c)表明重组体与双亲相比在性状上存在显著差异。e为7个预测靶区基因。f为候选基因的结构和突变位点;黑匣子代表外显子。
图4为本发明较佳实施例中三个候选基因在35日龄苗LK条件下的ZH9308和CSSL35的地上部(a)和根部(b)组织中的表达模式。数据表示为平均值±标准差,并根据3个技术重复和3个生物重复进行计算。**和***分别在1%和0.1%水平上表示显著性。
图5为本发明较佳实施例中目的候选基因LOC_Os05g27980在35天苗期的两个亲本在NK和LK条件下的表达(a),以及纯合重组系在LK条件下的表达(b)。数据以平均值±标准差表示,并根据3个技术重复和2个生物重复进行计算。**和***分别表示1%和0.1%的显著性。
图6为本发明较佳实施例中LK处理后14日龄幼苗根组织两个亲本中LOC_Os05g27980(a)、OsIAA23(b)、OsAUX1(c)、OsSPL3(d)、OsCRL1(e)、OsIAA13(f)、OsPIN2(g)、OsDRO1(h)和K转运体基因OsAKT1(i)、OsHAK1(j)、OsHAK5(k)和OsHAK21(1)的节律表达。数据(以平均值±标准差表示)由3个qRT-PCR技术重复和3个生物学重复计算得出。
具体实施方式
本发明中涉及的术语:
LK:低钾(low potassium),K+浓度为5mg/L。
NK:正常钾(normal potassium),K+浓度为87mg/L。
RN:根数(Root number)。
RL:根长(Root length)。
RDW:根干重(Root dry weight)。
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。若未特别指明,实施例均按照常规实验条件,如Sambrook等分子克隆实验手册(Sambrook J&Russell DW,Molecular Cloning:a LaboratoryManual,2001),或按照制造厂商说明书建议的条件。
实施例1 qRN5a的表型
在之前研究中,利用具有ZH9308遗传背景且携带来自XQZB的第5染色体片段的染色体片段置换系CSSL35为起始材料,利用CSSL35和受体亲本ZH9308进行回交,构建了次级F2(BC5F2)群体,将控制水稻根数的QTL qRN5a定位于第5染色体长臂上标记InD78和RM18472之间。进一步发现,CSSL35是以ZH9308为遗传背景,在qRN5a区域及第5染色体长臂末端插入XQZB染色体片段,并且在插入片段中不存在其他根数QTL(图1)。两亲本的表型结果表明,ZH9308和CSSL35的表型在根数(RN)、根长(RL)和根干重(RDW)方面存在显著差异,并且CSSL35在NK和LK下的根数高于ZH9308(图2,a和b),根长和根干重也高于ZH9308(图2,c和d)。以上结果表明,qRN5a是控制水稻苗期LK条件下根数的QTL,是一个稳定的位点,可以精细定位和克隆。
实施例2 qRN5a的精细定位
qRN5a位点先前被定位在5号染色体长臂上标记InD78到RM18472之间的1023kb基因组区域(图3,a和b)。为进一步缩小qRN5a的位置,我们构建了一个较大的F2:3(BC5F2:3)群体,其中包含从CSSL35和ZH9308杂交获得的2962个植株个体。然后利用新开发的具有InD78到RM18472的双亲之间多态性的InDel标记筛选群体(图3c),并使用纯合重组植株精细定位qRN5a。
利用13个标记对BC5F2:3群体的2962个单株进行基因分型,从BC5F2:3群体中发现118个交换单株,根据基因型将纯合交换单株分为11组(图3d)。利用纯合交换单株,将每个重组家系的平均表型值与ZH9308或CSSL35进行比较,以定位qRN5a。L8(其中,L为重组家系,8为重组家系的编号)的根数显著高于ZH9308,而L3的基因型与L8相反,L3的平均根数与CSSL35显著不同。因此,qRN5a被限定在标记A26的上游侧(图3d)。同样,L5和L10将qRN5a划定到标记A145的下游区域。在另一个实例中,与含有qRN5aZH9308等位基因的L4和L9相比,含有qRN5aXQZB等位基因的L8表现出更高的根数。相反,L4和L9与CSSL35差异显著,与ZH9308相似。通过定位其他重组家系,qRN5a最终缩小到第5染色体上标记A99和A139之间的48.8kb基因组区域(图3d)。在标记A99和A139之间含有qRN5aXQZB等位基因的纯合重组体的根数均显著高于ZH9308。精细定位所用引物见表1。
表1用于扩增精细定位qRN5a的标记的引物序列
Figure BDA0002614401760000091
实施例3 qRN5a的候选基因分析
利用日本晴基因组序列做参考,将qRN5a定位在5号染色体长臂上标记A99和A139之间48.8kb的物理位置(www.gramene.org/)(图3c)。根据水稻注释项目数据库(RAP-DB,https://rapdb.dna.affrc.go.jp/)以及水稻基因组注释项目数据库(RGAP,http://rice.plantbiology.msu.edu/),qRN5a定位包括7个预测基因,分别是Os05g0346700、LOC_Os05g27980、LOC_Os05g27990、LOC_Os05g28000、LOC_Os05g28010、LOC_Os05g28020和LOC_Os05g28040(图3e,表2)。根据预测结果,这7个基因中没有一个与增加根数相关。因此,qRN5a可能是一个LK条件下增加根数的新QTL。
表2 qRN5a候选基因在双亲间的突变
Figure BDA0002614401760000092
然后对候选基因进行了测序,由于LOC_Os05g27990编码转座子蛋白,未对其进行测序。对其余6个基因在两亲本间的序列比较显示,Os05g0346700的编码序列(CDS)中有一个非同义SNP,LOC_Os05g27980中有一个非同义SNP,LOC_OS05G2800中有两个非同义SNP(表3,图3f)。在另外三个基因(LOC_Os05g28010、LOC_Os05g28020和LOC_Os05g28040)中,两亲本间没有差异。我们还对在双亲之间有SNPs的三个基因的启动子区进行了测序,Os05g0346700在双亲之间有9个SNP和1个InDel,LOC_Os05g27980有1个SNP和2个InDel,LOC_Os05g28000有1个SNP。这三个基因的编码区和启动子区在两亲本间的序列分别如SEQID NO:1-12所示。用于对qRN5a候选基因CDS区测序的引物如表4所示,用于对qRN5a在双亲间有差异基因的启动子区测序的引物表5所示。
表3 qRN5a候选基因在双亲间有差异基因的核苷酸及氨基酸差异
Figure BDA0002614401760000101
表4用于对qRN5a候选基因CDS区测序的引物
Figure BDA0002614401760000102
表5用于对qRN5a在双亲间有差异基因的启动子区测序的引物
Figure BDA0002614401760000103
实施例4 qRN5a候选基因的表达模式分析
为进一步确定qRN5a的候选基因,首先搜索RiceXPro数据库,研究三个具有非同义SNPs的候选基因(Os05g0346700、LOC_Os05g27980和LOC_Os05g28000)的表达模式。结果发现只有LOC_Os05g27980在水稻根中表达,另外两个位点在水稻根组织中没有表达(http://ricexpro.dna.affrc.go.jp/RXP_0007/gene-search.php)。因此,LOC_Os05g27980可能在根组织中表达,并在LK条件下诱导根的生长。
然后对这三个基因进行qRT-PCR检测。我们分析了在LK条件下生长的35天幼苗的两个亲本的叶片和根中的基因表达模式。在叶片中,我们发现Os05g0346700和LOC_Os05g27980在ZH9308中的表达都比CSSL35高一些,LOC_Os05g28000的转录在双亲之间没有显著差异(图4a)。在根中,两个亲本的Os05g0346700和LOC_Os05g28000的转录水平相似(图4b)。然而,与ZH9308相比,LOC_Os05g27980在CSSL35中的转录显著提高(图4b),这一结果在根中24小时节律表达分析中得到进一步证实(图5a)。综上,LOC_Os05g27980在两个亲本的根之间的表达差异最大。
我们还观察了目标候选基因(LOC_Os05g27980)在NK和LK下生长35天幼苗的两个亲本的根组织中的表达模式(图5a),以及在LK条件下生长35天幼苗的根组织中的纯合重组系(L1~L11)的表达模式(图5b)。结果发现,在NK和LK条件下,在CSSL35中LOC_Os05g27980的表达高于ZH9308(图5a),并且携带XQZB等位基因(L5~L8)的交换单株中的qRN5a表达水平显著高于携带ZH9308等位基因的交换单株(图5b)。
实施例5 qRN5a与其它根系生长调控基因及K转运蛋白的关系
LOC_Os05g27980在促进缺钾条件下根系形成中的作用及其在根组织中的表达差异表明,它是qRN5a最可能的候选基因,qRN5a参与了水稻根系的生长调节。为了研究qRN5a对根生长调节基因和K转运蛋白的影响,我们采用qRT-PCR技术比较了7个与根系结构相关的基因(OsCRL1、OsDRO1、OsPIN2、OsAUX1、OsSPL3、OsIAA13和OsIAA23)和4个K转运蛋白基因(OsHAK1、OsHAK5、OsHAK21和OsAKT1)在LK条件下14天幼苗的双亲根组织中的表达水平。
OsIAA23在CSSL35的根组织中的表达水平在各阶段都比ZH9308高,并且表现出与LOC_Os05g27980相似的表达模式(图6,a和b)。根据此前研究,qRN5a的XQZB等位基因对ZH9308等位基因表现为显性,以上结果表明,qRN5a促进OsIAA23在根组织中的表达,并且OsIAA23基因的上调可能对CSSL35的根系形成起重要作用。Ni等人(2011)观察到OsIAA23直接作用于根系发育。相反,在LK条件下,与ZH9308相比,OsHAK5在CSSL35根部的表达下调,这表明OsHAK5的表达被qRN5a抑制(图6k)。此外,其他根生长调节基因(OsAUX1、OsSPL3、OsCRL1、OsIAA13、OsPIN2和OsDRO1)和K转运蛋白基因(OsAKT1、OsHAK1和OsHAK21)在两个亲本之间的表达水平没有显著差异(图6,c-j和1),表明qRN5a不影响它们的转录。综上所述,基于基因表达的结果,我们可以推测qRN5a是根数的正调节因子,上调OsIAA23的表达,下调OsHAK5的表达,促进LK条件下CSSL35的根系形成。
虽然,上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之做一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。
参考文献:
[1]Amtmann A,Hammond JP,Armengaud P,White PJ(2005)Nutrient sensingand signalling in plants:potassium and phosphorus.Adv Bot Res 43:209-257.
[2]Andrist-Rangel Y,Edwards A,Hillier S,
Figure BDA0002614401760000133
I(2007)Long-term Kdynamics in organic and conventional mixed cropping systems as related tomanagement and soil properties.Agr Ecosyst Environ 122(4):413-426.
[3]Anis GB,Zhang Y,Islam A,Zhang Y,Cao Y,Wu W,Cao L,Cheng S(2019)RDWN6 XB,a major quantitative trait locus positively enhances root systemarchitecture under nitrogen deficiency in rice.BMC Plant Biol 19(1):12.
[4]Chen G,Hu Q,Luo L,Yang T,Zhang S,Hu Y,Yu L,Xu G(2015b)Ricepotassium transporter OsHAK1 is essential for maintaining potassium-mediatedgrowth and functions in salt tolerance over low and high potassiumconcentration ranges.Plant Cell Environ 38:2747-2765.
[5]Clarkson DT,Hanson JB(1980)The mineral nutrition ofhigherplants.Annu Rev Plant Physiol 31(1):239-298.
[6]Dobermann A,Cassman K,Mamaril C,Sheehy J(1998)Management ofphosphorus,potassium,and sulfur in intensive,irrigated lowland rice.FieldCrop Res 56(1-2):113-138.
[7]Dorlodot S,Forster B,Pagès L,Price A,Tuberosa R,Draye X(2007)Rootsystem architecture:opportunities and constraints for genetic improvement ofcrops.Trends Plant Sci 12(10):474-481.
[8]Fang Y,Wu W,Zhang X,Jiang H,Lu W,Pan J,Hu J,Guo L,Zeng D,Xue D(2015)Identification of quantitative trait loci associated with tolerance tolow potassium and related ions concentrations at seedling stage in rice(Oryzasativa L.)Plant Growth Regul 77(2):157-166.
[9]Glass AD,Perley JE(1980)Varietal differences in potassium uptakeby barley.Plant Physiol 65(1):160-164.
[10]Hoa NM,Janssen BH,Oenema O,Dobermann A(2006)Comparison of partialand complete soil K budgets under intensive rice cropping in the MekongDelta,Vietnam.Agr Ecosyst Environ 116(1-2):l21-131.
[11]
Figure BDA0002614401760000131
-Jensen H,Pedersen MB(2003)Morphological plasticity by cropplants and their potassium use efficiency.J Plant Nutr 26(5):969-984.
[12]Inahashi H,Shelley IJ,Yamauchi T,Nishiuchi S,Nosaka MT,MatsunamiM,Ogawa A,Noda Y,Inukai Y(2018)OsPIN2,which encodes a member of the auxinefflux carrier proteins,is involved in root elongation growth and lateralroot formation patterns via the regulation of auxin distribution inrice.Physiol Plant 164(2):216-225.
[13]Inukai Y,Sakamoto T,Ueguchi-Tanaka M,Shibata Y,Gomi K,Umemura I,Hasegawa Y,Ashikari M,Kitano H,Matsuoka M(2005)Crown rootlessl,which isessential for crown root formation in rice,is a target of an AUXIN RESPONSEFACTOR in auxin signaling.Plant Cell 17:1387-1396.
[14]Kellermeier F, Chardon F,Amtmann A(2013)Natural variation ofArabidopsis root architecture reveals complementing adaptive strategies topotassium starvation.Plant Physiol 161(3):1421-1432.
[15]Kitomi Y,Inahashi H,Takehisa H,Sato Y,Inukai Y(2012)OsIAA13-mediated auxin signaling is involved in lateral root initiationin rice.PlantSci 190:116-122.
[16]
Figure BDA0002614401760000132
M,Bockman OC,Kaarstad O(1999)Agriculture,fertilizers andthe environment:CABI publishing.
[17]Leigh RA,Jones RW(1984)A hypothesis relating critical potassiumconcentrations for growth to the distribution and functions ofthis ion in theplant cell.New Phytol 97(1):1-13.
[18]Liu HJ,Wang SF,Yu X,Yu J,He Xw,Zhang SL,Shou HX,Wu P(2005)ARL1,aLOB-domain protein required for adventitious root formation in rice.PlantJ.43:47-56.
[19]Meng F, Xiang D,Zhu J,Li Y,Mao C(2019)Molecular Mechanisms ofRoot Development in Rice.Rice,12:1.
[20]Miyamoto T,Ochiai K,Takeshita S,Matoh T(2012)Identification ofquantitative trait loci associated with shoot sodium accumulation under lowpotassium conditions in rice plants.Soil Sci Plant Nutr 58(6):728-736.
[21]Nadeau JH,Frankel WN(2000)The roads from phenotypic variation togene discovery:mutagenesis versus QTLs.Nat Genet 25(4):381.
[22]Ni J,Wang G,Zhu Z,Zhang H,Wu Y,Wu P(2011)OsIAA23-mediated auxinsignaling defines postembryonic maintenance of QC in rice.Plant J.68,433-442.
[23]Obara M,Tamura W,Ebitani T,Yano M,Sato T,Yamaya T(2010)Fine-mapping of qRL6.1,a major QTL for root length of rice seedlings grown under awide range of NH4+ concentrations in hydroponic conditions.Theor Appl Genet121(3):535-547.
[24]Paterson AH,Lander ES,Hewitt JD,Peterson S,Lincoln SE,Tanksley SD(1988)Resolution of quantitative traits into Mendelian factors by using acomplete linkage map of restriction fragment length polymorphisms.Nature 335(6192):721.
[25]Pettersson S,Jensen P(1983)Variation among species and varietiesin uptake and utilization of potassium.Plant Soil 72(2-3):231-237.
[26]Pettigrew WT(2008)Potassium influences on yield and qualityproduction for maize,wheat,soybean and cotton.Physiol Plant 133(4):670-681.
[27]Rengel Z,Damon PM(2008)Crops and genotypes differ in efficiencyof potassium uptake and use.Physiol Plant 133(4):624-636.
[28]Septiningsih E,Trijatmiko K,Moeljopawiro S,McCouch S(2003)Identification of quantitative trait loci for grain quality in an advancedbackcross population derived from the Oryza sativa variety IR64 and the wildrelative O.rufipogon.Theor Appl Genet 107(8):1433-1441.
[29]Shao Y,Zhou HZ,Wu Y,Zhang H,Lin J,Jiang X,He Q,Zhu J,Li Y,Yu H,Mao C(2019)OsSPL3,an SBP-Domain Protein,Regulates Crown Root Development inRice.Plant Cell 31(6),1257-1275.
[30]Shen Y,Shen L,Shen Z,Jing W,Ge H,Zhao J,Zhang W(2015)Thepotassium transporter OsHAK21 functions in the maintenance of ion homeostasisand tolerance to salt stress in rice.Plant Cell Environ 38:2766-2779.
[31]Shin R(2014)Strategies for Improving Potassium Use Efficiency inPlants.Mol Cells 37(8):575-584.
[32]Tanksley S,Nelson J(1996)Advanced backcross QTL analysis:a methodfor the simultaneous discovery and transfer of valuable QTLs from unadaptedgermplasm into elite breeding lines.Theor Appl Genet 92(2):191-203.
[33]Wang G, Lu W,Chen H,Zhang X,Xue D(2015)Seedling screening of ricegermplasm resources with low potassium tolerance.J.Hangzhou Norm.Univ 1:44_48.
[34]Wu P,Ni J,Luo A(1998)QTLs underlying rice tolerance to low-potassium stress in rice seedlings.Crop Sci 38(6):1458-1462.
[35]Yang ZF,Gao QS,Sun CS,Li WJ,Gu SL,Xu CW(2009)Molecular evolutionand functional divergence of HAK potassium transporter gene family in rice(Oryza sativa L.).J Genet Genomics 36(3):161-72.
[36]Yang T,Zhang S,Hu Y,Wu F, Hu Q,Chen G,Cai J,Wu T,Moran N,Yu L,XuG(2014)The role of a potassium transporter OsHAK5 in potassium acquisitionand transport from roots to shoots in rice at low potassium supplylevels.Plant Physiol 166:945-959.
[37]Yu C,Su,C,Shen C,Wang S,Liu F, Liu Y,Chen YL,Li C,Qian Q,Aryal B,Geisler M,Jiang D,Qi YH(2015).The auxin transporter,OsAUX1,is involved inprimary root and root hair elongation and in Cd stress responses in rice(Oryza sativa L.).Plant J.83(5),818-830.
[38]Zhao H,Ma T,Wang X,Deng Y,Ma H,Zhang R,Zhao J(2015)OsAUX1controls lateral root initiation in rice(Oryza sativa L.).P1ant Cell Environ38(1):2208-2222.
序列表
<110> 中国水稻研究所
<120> 低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a及其应用
<130> PI202010654
<160> 36
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 288
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa)
<400> 1
atggtgttcg gccccgccgc cgtgcagagg tacggccccg acatgacgct gcgggaggca 60
ctggacggga ggggagacat ctaccggacg ctgctgtggg aggccacggc ggtgctcctc 120
aacgcctact acaacactcc cagcgtcgca gccgccgccg ccaccgcgct cgcccgccga 180
cgccgcctcg ccccgccgca gcgcgggagc aggagggcgt cagcggcagg atggcggctt 240
atagggacat tgacgcggtc gtggctgctg gggaagaaga acatgtag 288
<210> 2
<211> 288
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa)
<400> 2
atggtgttcg gccccgccgc cgtgcagagg tacggccccg acatgacgct gcgggaggca 60
ctggacggga ggggagacat ctaccggacg ctgctgtggg aggccacggc ggtgctcctc 120
aacgcctact acaacactcc cggcgtcgca gccgccgccg ccaccgcgct cgcccgccga 180
cgccgcctcg ccccgccgca gcgcgggagc aggagggcgt cagcggcagg atggcggctt 240
atagggacat tgacgcggtc gtggctgctg gggaagaaga acatgtag 288
<210> 3
<211> 603
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa)
<400> 3
atgggcggtg ggtcgccgtg cgcgtcgtgc aagctgctgc ggcggcggtg caccaaggac 60
tgcatcttcg cgcccttctt ccccgccgac gacccccaca agttcgccat cgtccacaag 120
gtcttcggcg ccagcaatgt cagcaagatg ctccaggagc tgccggcgca gcagcgaggc 180
gacgcggtga gcagcctggt gtacgaggcg aacgcccgga tgcgggaccc cgtctacggc 240
tgcgtcgggg ccatctcctt cctccagaac caggtgtcgc agctgcagat gcagctcgcc 300
gtcgcgcagg ccgagatcct ctgcatccag atgcagcacc gcgacgacgg cgccgcccac 360
cagctggacg ccgccgccga ccaccacccg ctgctggatc agcagcagca acagcagatg 420
gtcgtggacg ccgccgacgc ggccgcctcc ttcctcgtgc agaacggtgg cggaggcgga 480
ggccccgcgg cgcagctgat aagcggctac ggctcgccgg cggccggcgg cggcggtggc 540
catggcgtgg tgcactacgc ggcggcgcag gagcatctca agagggagtc gctctggacg 600
tag 603
<210> 4
<211> 603
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa)
<400> 4
atgggcggtg ggtcgccgtg cgcgtcgtgc aagctgctgc ggcggcggtg caccaaggac 60
tgcatcttcg cgcccttctt ccccgccgac gacccccaca agttcgccat cgtccacaag 120
gtcttcggcg ccagcaatgt cagcaagatg ctccaggagc tgccggcgca gcagcgaggc 180
gacgcggtga gcagcctggt gtacgaggcg aacgcccgga tgcgggaccc cgtctacggc 240
tgcgtcgggg ccatctcctt cctccagaac caggtgtcgc agctgcagat gcagctcgcc 300
gtcgcgcagg ccgagatcct ctgcatccag atgcagcacc gcgacgacgg cgccgcccac 360
cagctggacg ccgccgccga ccaccacccg ctgctggatc agcagcagca acagcagatg 420
gtcgtggacg ccgccgacgc gtccgcctcc ttcctcgtgc agaacggtgg cggaggcgga 480
ggccccgcgg cgcagctgat aagcggctac ggctcgccgg cggccggcgg cggcggtggc 540
catggcgtgg tgcactacgc ggcggcgcag gagcatctca agagggagtc gctctggacg 600
tag 603
<210> 5
<211> 474
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa)
<400> 5
atggaaggag gcgacaaggg ggtaggggag gaggtcgtcg ccattgagga ggaggttggt 60
gcccatgagc acctatggtc ccttgtgctt gctagcagct ccacctccgc cttgatgtcg 120
gtgtggcgga tgccgagcac aagaaggttg gggaagatgt cagcgcgcgg ggcgaaggtg 180
gtcgatgttg aggaacaact tctagtgacc aaggtagagg cggtggagga acatgacact 240
gaggacatag atccagcttg gctagaatgg gaaccaccac caaaactcat aggtggtgcg 300
gctagtgaca aagaagtggc tgtagctgcc catggcttgc cactccagtc accggtggtg 360
ggagagggtc accggggcga gggagagaag gaaattgtcg atagcgcgtg cgaagaagaa 420
gataaggttg gggaagacaa gataaatgga cagggtattt tggtccatat ataa 474
<210> 6
<211> 474
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa)
<400> 6
atggaaggag gcgacaaggg ggtaggggag gaggtcgtcg ccattgagga ggaggttggt 60
gcccatgagc acctatggtc ccttgtgctt gctagcagct ccacctccgc cttgatgtcg 120
gtgtggcgga tgccgagcac aagaaggttg gggaagatgt cagcgcgcgg ggcgaaggtg 180
gtcgatgttg aggaacaact tctagtgacc aaggtagagg cggtggagga acatgacact 240
gaggacatag atccagcttg gctagaatgg gaaccaccac caaaactcat aggtggtgcg 300
gctagtgaca aagaagtggc tgtagctgcc catggcttgc cactccggtc accggtggtg 360
ggagagggtc accggggcga gggagagaag gaaattgtcg atagcgcgcg cgaagaagaa 420
gataaggttg gggaagacaa gataaatgga cagggtattt tggtccatat ataa 474
<210> 7
<211> 934
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa)
<400> 7
cagcgtttga caggacttct agaaattata aaaacgaaac acaatgagac aataaattct 60
aaaaactaca agatctaatt ttaaatggtt acaaggagaa tgaatagaat tagtggtaga 120
tcgagcaagc aaataaataa tgatatgaca gaagtaaggg gtagcagctg gtgtgacttt 180
taaaaactat ataattagaa atacggggat gataaggttt gatctttcaa agtcttaaga 240
caacgagata gctatttaat aaattttaga gtaattttaa gtaaaatcat actgaaaaat 300
atatgatttt gtttgggggc tagccgcgca attgcgcggg gcacctagca agtttgttag 360
aagtagaaaa taaactattc aatggttttt tatacttgtg gactatggca ggattgtcct 420
atggcaggat tgtccgtttg catttggaaa aagtacactg aaggtccctc aacttgtcat 480
cgagttacaa aatcatccgc aaaccgcaaa accggataca acgcatccct caacttataa 540
aaccagtgca aatccttcag cggttttgac cctggttttg gccgacgtgg cagctaagtc 600
agcgtgggac ccacgcgggc cccacatgtt aggatggcac gtcagcctct cccttcctct 660
cctttcctcc ccacgtgact gtgatcgcgg cgccgctgag gtgaaggcgg cggtcgatgc 720
gcgtggcggc gccgacgccc acgccaccac ggccagtgct gggcgggttc gagaaggagc 780
aggaggacgt cgcgctcgcc ccctcctcct ctccgactcc aatcatcgcg ccgcccccct 840
gtcctctcca actccccctt tcccgcccct ctggcgccgc aggcctcgcc gcctgccgcc 900
catctggcgc cgctcaccct cgccgcctgt ggcc 934
<210> 8
<211> 918
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa)
<400> 8
cagcgtttga caggacttct agaaattata aaaacgaaac acaatgagac aataaattct 60
aaaaactaca agatctaatt ttaaatggtt acaaggagaa tgaatagaat tagtggtaga 120
tcgagcaagc aaataaataa tgatatgaca gaagtaaggg gtagtagctg gtgtgacttt 180
taaaaactat ataattagaa atacggggat gataaggttt aatctttcaa agtcttaaga 240
caacgagata gctatttaat aaattttaga gtaattttaa gtaaaatcat actgaaaaat 300
atatgatttt gtttgggggc tagccgcgca attgcacggg gcacccagca agtttgttag 360
aagtagaaaa taaactattc aatggttttt tatacttgtg gactatggca ggattgtccg 420
tttgcatttg gaaaaagtac actgaaggtc cctcaacttg tcatcgagtt acaaaatcat 480
ccacaaaccg caaaaccgga tacaacgcat cccccaactt ataaaaccag tgcaaatcct 540
tcagcggttt tgaccctggt tttggccgac gtggcagcta agtcagcgtg ggacccacgc 600
gggccccaca tgttaggatg gcacgtcagc ctctcccttc ctctcctttc ctccccacgt 660
gactgtgatc gcggcgccgc tgaggtgaag gcggcggtcg atgcgcgtgg cggcgccgac 720
gcccgcgcca ccgcggccag tgctgggcgg gttcgagaag gagcaggagg acgtcgcgct 780
cgccccctcc tcctctccga ctctaatcat cgcgccgccc ccctgtcctc tccaactccc 840
cctttcccgc ccctctggcg ccgcaggcct cgccgcctgc cgcccatctg gcgccgctca 900
ccctcgccgc ctgtggcc 918
<210> 9
<211> 1417
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa)
<400> 9
tcatgttctg gtagaactag tagaaggtga ggcctaacta aacttgaggt gatatattaa 60
tacagtttgt ttgtatatgc tcatccttac catgcattat aaaaaaaaca aatctaggta 120
aaacataaaa atacatcttg attaatccag aaagttgaga aactaaaaat ttaagttgca 180
ttaaatttac atatattaaa aaattctagc ctatatatgt ggcaaaagat atatcatgaa 240
aaacattggt ctcgggagaa gggaattctg gagggtcctt gccacagcag caaactcata 300
aaaaaaaact atatatcata tatatttgta tagttaatta gcactactgc agtctgcagc 360
ttctcgcacg tacccttggt atcacgcgac ggggaggagt aaactctaca ctgctccatc 420
gattctttgc ttcaagtcca cgatatacta tagtaatttg tttgcatccc tagctagtac 480
acataattaa tccagaatat taattataac tagtctgttt tatctttcct taattatata 540
tctttcaccg atcacctcta ttattccata tagcacgagt caaatccgac catcgatcac 600
atgcatgaat gcatatggtg catgctgcaa ccaattaatc ctcctgtcgt cgatcgcaaa 660
gaaattattg atcaaaatct gacaggaatt aatggtttgg cgtttgtact gataagattc 720
ttccttagct aattgacggt gactttgatg atgcccttgt gtccaatgga aacatcgcac 780
ctgtgcccat ctccatagct tggttaatct ctaatttaac taattagagc cgatctgaaa 840
ccgtactagt cccctttgtc ttgcagctgt cagtgacaga ttatatggga gaaagcgcta 900
gcatgtagta tcgttcagat taagttaggt ttacttttta ccctgttacc agattaactt 960
ttgttagttt ttattaatta acctctctct cctggtcagg ggggttggca tctcttgaga 1020
agctaaccaa cagcagcaag tgattaatta cccctctcgc ctcgtgtctc aacaccaggc 1080
aggcatgcct tgtcgtcgtc gttgtcctcc gttaattagt ttctactata ccctaccgtg 1140
tctgtgtgta catgtgtcgc tgtttaggtt ataaatatag ctcgtttcac actctcatgg 1200
cgattccttc atattcttaa gctcaagctg atcaagtgtg tactagctag taattagtcc 1260
tatcctatat actatagtag ctgggttgct cggctcgccg gagatctccg gccggctgcc 1320
ggcggcggtg agccggtgac actaatcaca tatcgatcgt acacgcgcgc gtattacgtg 1380
tgtgaaggaa cattagatag atagagagag agagggg 1417
<210> 10
<211> 1420
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa)
<400> 10
tcatgttctg gtagaactag tagaaggtga ggcctaacta aacttgaggt gatatattaa 60
tacagtttgt ttgtatatgc tcatccttac catgcattat aaaaaaaaca aatctaggta 120
aaacataaaa atacatcttg attaatccag aaagttgaga aactaaaaat ttaagttgca 180
ttaaatttac atatattaaa aaattctagc ctatatatgt ggcaaaagat atatcatgaa 240
aaacattggt ctcgggagaa gggaattctg gagggtcctt gccacagcag caaactcata 300
aaaaaaaaac tatatatcat atatatttgt atagttaatt agcactactg cagtctgcag 360
cttcacgcac gtacccttgg tatcacgcga cggggaggag taaactctac actgctccat 420
cgattctttg cttcaagtcc acgatatact atagtaattt gtttgcatcc ctagctagta 480
cacataatta atccagaata ttaattataa ctagtctgtt ttatctttcc ttaattatat 540
atctttcacc gatcacctct attattccat atagcacgag tcaaatccga ccatcgatca 600
catgcatgaa tgcatatggt gcatgctgca accaattaat cctcctgtcg tcgatcgcaa 660
agaaattatt gatcaaaatc tgacaggaat taatggtttg gcgtttgtac tgataagatt 720
cttccttagc taattgacgg tgactttgat gatgcccttg tgtccaatgg aaacatcgca 780
cctgtgccca tctccatagc ttggttaatc tctaatttaa ctaattagag ccgatctgaa 840
accgtactag tcccctttgt cttgcagctg tcagtgacag attatatggg agaaagcgct 900
agcatgtagt atcgttcaga ttaagttagg tttacttttt accctgttac cagattaact 960
tttgttagtt tttattaatt aacctctctc tcctggtcag gggggttggc atctcttgag 1020
aagctaacca acagcagcaa gtgattaatt acccctctcg cctcgtgtct caacaccagg 1080
caggcatgcc ttgtcgtcgt cgttgtcctc cgttaattag tttctactat accctaccgt 1140
gtctgtgtgt acatgtgtcg ctgtttaggt tataaatata gctcgtttca cactctcatg 1200
gcgattcctt catattctta agctcaagct gatcaagtgt gtactagcta gtaattagtc 1260
ctatcctata tactatagta gctgggttgc tcggctcgcc ggagatctcc ggccggctgc 1320
cggcggcggt gagccggtga cactaatcac atatcgatcg tacacgcgcg cgtattacgt 1380
gtgtgaagga acattagata gatagagaga gagagagggg 1420
<210> 11
<211> 795
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa)
<400> 11
tcatattaga aagatatcat tactattcac ctatttagaa ccataccatt acaattcttt 60
ctttatgcta gaaaaaatgt ccgtacattg caacaggtga atgctatttt aatcttatta 120
ttgttatacg gtttagctat aatcaaattc accgtgggaa ttcagttgga tatttttttt 180
agaaaatcat gagctgcaat taggaatcca actttcatct caagttagca tgtgagttat 240
tttaaagaga tttcttatac gactcctttt gtatttccaa aagcaaacga atttaaaatc 300
tgactcaaac aagtatctgt atttccaaaa gtgaacaaac ttaaaaaccc gactcaaata 360
cggatgatgt accaaaatac cggtaaaaac atcttcaatt ttttataata gtagagataa 420
tatatgacat tttgtacacc ttggccgcta ttggacccac gagcatgcaa ttgtattttt 480
gaatcaccca aaatgcccct gcaacatatt tatctccacc agctaacttg tgggccccac 540
gcccttcctc gggatgagct gctcgaggca cgacaaccac tgtgagctcc tccgtgatgg 600
acatccaaaa gagtgtggtg tagctaaacg atgaaagaga gcttctccaa cgcagggttg 660
tattggaggt caaggtcctt ggccttgatg tgggtgcgaa agatgtcgag ctcggtgagg 720
ttggatgaag atgtcagcgc gagggcggag gtagtcggtg tcaggaaatg acttcccgag 780
atcaagatag aggcg 795
<210> 12
<211> 795
<212> DNA
<213> 水稻(Oryza sativa)
<400> 12
tcatattaga aagatatcat tactattcac ctatttagaa ccataccatt acaattcttt 60
ctttatgcta gaaaaaatgt ccgtacattg caacaggtga atgctatttt aatcttatta 120
ttgttatacg gtttagctat aatcaaattc accgtgggaa ttcagttgga tatttttttt 180
agaaaatcat gagctgcaat taggaatccg actttcatct caagttagca tgtgagttat 240
tttaaagaga tttcttatac gactcctttt gtatttccaa aagcaaacga atttaaaatc 300
tgactcaaac aagtatctgt atttccaaaa gtgaacaaac ttaaaaaccc gactcaaata 360
cggatgatgt accaaaatac cggtaaaaac atcttcaatt ttttataata gtagagataa 420
tatatgacat tttgtacacc ttggccgcta ttggacccac gagcatgcaa ttgtattttt 480
gaatcaccca aaatgcccct gcaacatatt tatctccacc agctaacttg tgggccccac 540
gcccttcctc gggatgagct gctcgaggca cgacaaccac tgtgagctcc tccgtgatgg 600
acatccaaaa gagtgtggtg tagctaaacg atgaaagaga gcttctccaa cgcagggttg 660
tattggaggt caaggtcctt ggccttgatg tgggtgcgaa agatgtcgag ctcggtgagg 720
ttggatgaag atgtcagcgc gagggcggag gtagtcggtg tcaggaaatg acttcccgag 780
atcaagatag aggcg 795
<210> 13
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 13
ctcctctgtc ctctcccaag 20
<210> 14
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 14
acccagcaag tttgttagaa gt 22
<210> 15
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 15
tacacgtacg ccaagctaac 20
<210> 16
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 16
cactctcatg gcgattcctt 20
<210> 17
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 17
ctcggtgagg ttggatgaag 20
<210> 18
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 18
ttcgaagggt gtcgttatgc 20
<210> 19
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 19
aaatgcaaac ggacaatcct g 21
<210> 20
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 20
ctgaccgcaa agcaaaacaa 20
<210> 21
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 21
cgtaaaggag taatggcagc g 21
<210> 22
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 22
gcgatgattg gagtcggaga 20
<210> 23
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 23
aatcatccgc aaaccgca 18
<210> 24
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 24
agtaggcgtt gaggagcacc 20
<210> 25
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 25
gtgattagtg tcaccggctc 20
<210> 26
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 26
agaagggaat tctggagggt 20
<210> 27
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 27
ccctctcgcc tcgtgtctc 19
<210> 28
<211> 19
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 28
gtggacgatg gcgaacttg 19
<210> 29
<211> 26
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 29
tgaatgatct actttaaact gggtca 26
<210> 30
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 30
gcatcatcaa agtcaccgtc aa 22
<210> 31
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 31
ctgtaagacg cggtacgttt 20
<210> 32
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 32
cgcctctacc ttggtcacta 20
<210> 33
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 33
atactgtaag acgcggtacg 20
<210> 34
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 34
tcttccccaa ccttcttgtg 20
<210> 35
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 35
tgccattaca attctttctt tatgc 25
<210> 36
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 36
tcgtgggtcc aatagcgg 18

Claims (10)

1.低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a,其特征在于,所述qRN5a位于水稻5号染色体InDel标记A99和A139之间48.8-kb的区间内。
2.与权利要求1所述qRN5a紧密连锁的分子标记,其特征在于,包括15个SNP标记SNP1~SNP15和3个InDel标记InDel1~InDel3;
其中,SNP1位于水稻基因Os05g0346700CDS序列第142bp,多态性为A/G;SNP2位于水稻基因LOC_Os05g27980CDS序列第442bp,多态性为G/T;SNP3位于水稻基因LOC_Os05g28000CDS序列第347bp,多态性为A/G;SNP4位于水稻基因LOC_Os05g28000CDS序列第409bp,多态性为T/C;
SNP5~SNP13分别位于水稻基因Os05g0346700ATG起始密码子上游第-115、-186、-194、-405、-436、-589、-599、-714和-770bp,多态性分别为C/T、A/G、A/G、T/C、G/A、T/C、G/A、G/A和C/T;SNP14位于水稻基因LOC_Os05g27980ATG起始密码子上游第-1054bp,多态性为T/A;SNP15位于水稻基因LOC_Os05g28000ATG起始密码子上游第-586bp,多态性为A/G;
InDel1位于水稻基因Os05g0346700ATG起始密码子上游第-515~-500bp,多态性为TATGGCAGGATTGTCC/-;
InDel2位于水稻基因LOC_Os05g27980ATG起始密码子上游第-4~-5bp,多态性为--/AG;
InDel3位于水稻基因LOC_Os05g27980ATG起始密码子上游第-1109bp,多态性为-/A。
3.用于扩增权利要求2所述分子标记的引物,其特征在于,扩增各分子标记的引物如下:
扩增SNP1的正向引物和反向引物序列分别为SEQ ID NO:13和14;
扩增SNP2的正向引物和反向引物序列分别为SEQ ID NO:15和16;
扩增SNP3和SNP4的正向引物和反向引物序列分别为SEQ ID NO:17和18;
扩增SNP5~SNP13和InDel1的正向引物和反向引物序列分别为SEQ ID NO:19和20、SEQID NO:21和22以及SEQ ID NO:23和24;
扩增SNP14、InDel2和InDel3的正向引物和反向引物序列分别为SEQ ID NO:25和26、SEQ ID NO:27和28以及SEQ ID NO:29和30;
扩增SNP15的正向引物和反向引物序列分别为SEQ ID NO:31和32、SEQ ID NO:33和34以及SEQ ID NO:35和36。
4.权利要求2所述分子标记或其检测试剂的以下任一应用:
(1)用于低钾条件下水稻苗期根系性状的鉴定;
(2)用于耐低钾胁迫水稻材料的早期预测;
(3)用于鉴定低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a位点;
(4)用于水稻基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和LOC_Os05g28000的基因分型;
(5)用于耐低钾水稻种质资源鉴定或分子标记辅助育种。
5.权利要求1所述qRN5a的以下任一应用:
(1)调控植物根系生长发育;
(2)调控植物苗期低钾条件下根系性状;
(3)植物品种改良;
(4)制备转基因植物;
(5)促进水稻根组织中OsIAA23基因的表达;
(6)抑制水稻根组织中OsHAK5基因的表达;
所述调控为正调控;
所述根系性状为根数;
优选地,所述植物为禾本科植物,更优选水稻。
6.水稻基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和LOC_Os05g28000,其特征在于,水稻基因Os05g0346700的CDS序列为:
i)SEQ ID NO:2所示的核苷酸序列;
ii)SEQ ID NO:2所示的核苷酸序列经取代、缺失和/或增加一个或多个核苷酸且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列;
iii)在严格条件下与SEQ ID NO:2所示序列杂交且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列,所述严格条件为在含0.1%SDS的0.1×SSPE或含0.1%SDS的0.1×SSC溶液中,在65℃下杂交,并用该溶液洗膜;或
iv)与i)、ii)或iii)的核苷酸序列具有90%以上同源性且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列;
水稻基因LOC_Os05g27980的CDS序列为:
a)SEQ ID NO:4所示的核苷酸序列;
b)SEQ ID NO:4所示的核苷酸序列经取代、缺失和/或增加一个或多个核苷酸且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列;
c)在严格条件下与SEQ ID NO:4所示序列杂交且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列,所述严格条件为在含0.1%SDS的0.1×SSPE或含0.1%SDS的0.1×SSC溶液中,在65℃下杂交,并用该溶液洗膜;或
d)与a)、b)或c)的核苷酸序列具有90%以上同源性且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列;
水稻基因LOC_Os05g28000的CDS序列为:
A)SEQ ID NO:6所示的核苷酸序列;
B)SEQ ID NO:6所示的核苷酸序列经取代、缺失和/或增加一个或多个核苷酸且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列;
C)在严格条件下与SEQ ID NO:6所示序列杂交且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列,所述严格条件为在含0.1%SDS的0.1×SSPE或含0.1%SDS的0.1×SSC溶液中,在65℃下杂交,并用该溶液洗膜;或
D)与A)、B)或C)的核苷酸序列具有90%以上同源性且表达相同功能蛋白质的核苷酸序列。
7.含有权利要求6所述水稻基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和/或LOC_Os05g28000的生物材料,所述生物材料为重组DNA、表达盒、转座子、质粒载体、噬菌体载体、病毒载体、工程菌或非可再生的植物部分。
8.权利要求6所述水稻基因或权利要求7所述生物材料的以下任一应用:
(1)调控植物根系生长发育;
(2)调控植物苗期低钾条件下根系性状;
(3)植物品种改良;
(4)制备转基因植物;
(5)促进水稻根组织中OsIAA23基因的表达;
(6)抑制水稻根组织中OsHAK5基因的表达;
所述调控为正调控;
所述根系性状为根数;
优选地,所述植物为禾本科植物,更优选水稻。
9.促进水稻苗期低钾条件下根系生长发育的方法,其特征在于,包括:
1)使水稻包含基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和/或LOC_Os05g28000;或
2)使水稻过表达基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和/或LOC_Os05g28000;
其中,基因Os05g0346700、LOC_Os05g27980和LOC_Os05g28000的CDS序列分别如SEQ IDNO:2、4、6所示,它们的启动子序列分别如SEQ ID NO:8、10、12所示。
10.根据权利要求9所述的方法,其特征在于,所述方法包括转基因、杂交、回交、自交或无性繁殖。
CN202010769620.7A 2020-08-03 2020-08-03 低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a及其应用 Pending CN111748644A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010769620.7A CN111748644A (zh) 2020-08-03 2020-08-03 低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a及其应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202010769620.7A CN111748644A (zh) 2020-08-03 2020-08-03 低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a及其应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN111748644A true CN111748644A (zh) 2020-10-09

Family

ID=72712845

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202010769620.7A Pending CN111748644A (zh) 2020-08-03 2020-08-03 低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a及其应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN111748644A (zh)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114350836A (zh) * 2021-12-30 2022-04-15 中国水稻研究所 促进水稻抽穗的QTL qHD1b及其应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104341522A (zh) * 2013-08-02 2015-02-11 中国农业科学院作物科学研究所 水稻转录因子Os05g27980基因CDS序列的应用
CN107287321A (zh) * 2017-07-13 2017-10-24 中国水稻研究所 水稻柱头外露率主效qtl及其定位方法
CN107435066A (zh) * 2017-07-13 2017-12-05 中国水稻研究所 水稻柱头外露率主效qtl及其定位方法和应用

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104341522A (zh) * 2013-08-02 2015-02-11 中国农业科学院作物科学研究所 水稻转录因子Os05g27980基因CDS序列的应用
CN107287321A (zh) * 2017-07-13 2017-10-24 中国水稻研究所 水稻柱头外露率主效qtl及其定位方法
CN107435066A (zh) * 2017-07-13 2017-12-05 中国水稻研究所 水稻柱头外露率主效qtl及其定位方法和应用

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ANOWERUL ISLAM等: "Mapping and validation of a major quantitative trait locus qRN5a associated with increasing root number under low potassium in rice", 《PLANT GROWTH REGULATION》 *
吴平等: "应用分子标记研究水稻耐低钾胁迫数量性状位点", 《植物营养与肥料学报》 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114350836A (zh) * 2021-12-30 2022-04-15 中国水稻研究所 促进水稻抽穗的QTL qHD1b及其应用
CN114350836B (zh) * 2021-12-30 2023-12-12 中国水稻研究所 促进水稻抽穗的QTL qHD1b及其应用

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN108239647B (zh) 一种控制油菜株型的基因、分子标记及应用
CN106470544A (zh) 果实产量提高的瓜植株
CN101880671B (zh) 一种控制水稻谷粒粒宽和粒重的主效基因gs5的克隆与应用
US10590431B2 (en) Drought tolerant plants produced by modification of the stay-green STGX locus
CN109068605B (zh) 单性结实植物及其产生方法
Greiner Plastome mutants of higher plants
Capel et al. The res (restored cell structure by salinity) tomato mutant reveals the role of the DEAD‐box RNA helicase SlDEAD39 in plant development and salt response
Wang et al. Natural variation MeMYB108 associated with tolerance to stress-induced leaf abscission linked to enhanced protection against reactive oxygen species in cassava
Hagiwara et al. Diversification in flowering time due to tandem FT‐like gene duplication, generating novel Mendelian factors in wild and cultivated rice
CN111748644A (zh) 低钾条件下影响水稻苗期根数的QTL qRN5a及其应用
CN114891809B (zh) 谷胱甘肽s转移酶基因在提高芒果维生素c含量中的应用
US11840693B2 (en) Restorer plants
Islam et al. Fine mapping and candidate gene analysis of qRN5a, a novel QTL promoting root number in rice under low potassium
Zhong et al. Fine mapping of a minor-effect QTL, DTH12, controlling heading date in rice by up-regulation of florigen genes under long-day conditions
Wiebe Molecular characterization of Cdu-B1, a major locus controlling cadmium accumulation in durum wheat (Triticum turgidum L. var durum) grain
Xue et al. Identification and utilization of elite genes from elite germplasms for yield improvement
Lv et al. BOS1 is a basic helix–loop–helix transcription factor involved in regulating panicle development in rice
CA3009426C (en) Restorer plant
Ying et al. Functional characterization of genes/QTLs for increasing rice yield potential
Sen et al. Genetic and functional mechanisms of yield-related genes in rice
US20190194684A1 (en) Parthenocarpy regulation gene and use thereof
WO2024037338A1 (zh) 一种植株籽粒大小调控基因及其应用
Fridman et al. Cytonuclear diversity underlying clock adaptation to warming climate in wild barley (Hordeum vulgare ssp. spontaneum)
Babu et al. Marker aided selection of yield-enhancing QTL yld2. 1 into restorer KMR3 and fine mapping a genomic region on chromosome 2
Onda et al. Genetic and molecular analysis of fasciation mutation in Japanese soybeans

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
RJ01 Rejection of invention patent application after publication
RJ01 Rejection of invention patent application after publication

Application publication date: 20201009