CN111718964A - 用于修复dmd基因突变的核酸序列及系统 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了用于修复DMD基因突变的核酸序列及系统,基因编辑系统可敲除X染色体第31792310位至第31854834位,或第31747866位至第31838091位,或第31747866位至第31854834位之间的Dystrophin基因组区域;优选的,所述基因编辑系统可敲除X染色体第31815201位至第31846518位、第31769972位至第31815200位,或第31769972位至第31846518位之间的Dystrophin基因组区域。本发明的基因编辑系统可针对>17%的DMD患者,包括EX51(缺失)4%、EX50(缺失)13%、EX45‑50(缺失)、EX48‑50(缺失)、EX50(缺失)、EX51(缺失)、EX52(缺失)以及EX50或EX51外显子区点突变及其他各种形式的突变,适应性更广。

Description

用于修复DMD基因突变的核酸序列及系统
技术领域
本发明涉及基因治疗领域,特别涉及用于修复DMD基因突变的核酸序列及系统。
背景技术
杜氏肌营养不良综合征(Duchenne muscular dystrophy,DMD),也称假肥大性肌营养不良,是一种X染色体隐性遗传的单基因遗传疾病,由抗肌萎缩蛋白基因(Dystrophin,Dys)突变所致。DMD发病率为1/3500,具有发病年龄小,起病隐袭,病程长,且病死率高的特点。患者因骨骼肌不断退化出现肌肉无力或萎缩,在7岁到12岁时便彻底丧失行走能力,至20岁左右死于呼吸衰竭或心力衰竭。目前该病没有切实有效的治愈方法,临床上以对症治疗及康复治疗为主。因此针对DMD突变基因做基因治疗是目前亟待进一步研究探索的方向。
2014经欧洲药品管理局(EMA)批准PTC Therepeutics公司研发的
Figure BDA0002603478870000011
(Ataluren)上市。DMD患者mRNA发生无意突变产生提前终止密码子,使mRNA翻译提前终止,不能产生完整的蛋白。
Figure BDA0002603478870000012
能使核糖体翻译含有提前终止密码子的mRNA,使含有提前终止密码子的mRNA能表达完整蛋白质。该技术仅适用于存在终止密码子突变且未发生移码的DMD患者,适用性窄;对于移码突变的患者,跳过终止密码子后,氨基酸表达序列并未被修正;且
Figure BDA0002603478870000013
为口服颗粒剂,推荐给药剂量每天3次,需终身服药。
2015年12月,RMGO Pharma公司开发的杜氏肌营养不良治疗药物ARM210/S48168获得美国食品与药品管理局孤儿药地位和罕见儿童疾病资格认定。ARM210靶向兰尼碱受体防止细胞内的钙渗漏,目前ARM210的Ⅰ期临床试验正在欧洲进行。其他一些研究比如成肌细胞移植、促进utrophin表达的SMT C1100、抗myostatin药物BMS-986089、PF-06252616、促结缔组织生长因子FG-3019、抗炎药物Givinostat以及CAT-1004等均处于临床Ⅰ/Ⅱ期研究阶段,这些研究和应用主要着眼点在于减轻其临床症状,缺乏实质性重大突破。
2016年美国FDA批准的Sarepta Therapeutics公司的DMD反义寡核苷酸药物Eteplirsen,通过改变mRNA剪接方式,跳过外显子51表达,从而修复特定的基因突变。产生一种较短、但仍具有功能的抗肌萎缩蛋白,从而稳定或显著减缓疾病的进程,延长并改善DMD患者的生活质量。该技术中,反义寡核苷酸需要反复定期注射以维持Dys基因外显子在翻译过程中产生跳读以修正读码框。且注射反义寡核苷酸后的Dys基因为瞬时表达,目前的临床研究数据表明,该方法治疗效果并不显著。另外,Dys基因是目前已知最大的人类基因,其突变种类和位点非常多,需要针对Dys基因上不同的突变位点来设计反义寡核苷酸,开发一系列的产品,研发成本和难度都较高,不利于罕见病药物的研发和推广。
基因编辑技术是目前全球研究DMD治疗方法的热点,其原理是通过精确识别目的细胞基因组中特定的核苷酸序列,利用核酸内切酶对靶序列进行切割,实现对目的细胞DNA的精准编辑,因此需要针对每位患者不同的突变对其进行个性化治疗,但这让在基因水平精确高效切除肌萎缩蛋白基因突变外显子成为可能。国内外已有多例基因编辑治疗基因病、癌症的例子。其中CRISPR-Cas9技术,被誉为“基因剪刀手”正带来全球科研和医疗领域的重大变革。CRISPR-Cas9的技术发明人张锋,正在密切关注CRISPR在单基因遗传病的临床应用,而DMD的基因疗法正是其中之一。
虽然人们对CRISPR/Cas9技术的研究已经比较深入,但是现有技术中,基于CRISPR/Cas9靶序列设计规则设计出来的gRNA,不能直接应用,并不是所有gRNA都能切割目的DNA序列,更不是所有gRNA都具有高效的切割效率。需要根据实际情况进行相应的设计。同时,CRISPR/Cas9技术的脱靶效应也需要特别关注。
AAV病毒具有不整合入宿主细胞,安全性好等优点;其次它在许多组织(肌肉、肝脏、视网膜、中枢神经等)中能介导外源基因长期表达;AAV具有多种血清型,能提供不同的组织特异性;这些特性使其成为基因治疗中最具吸引力的运载体。目前AAV已被用来参与Cas9介导的mdx小鼠dmd基因的有效编辑。AAV的基因组约4700bp,可装载外源核酸序列最大片段约4500bp。而SpCas9核酸序列全长(含核定位信号)4200bp,加上启动子和polyA后全长超过4500bp,不能进行AAV的有效包装。
在当前形势下,开发出一种覆盖率高(可针对不同DMD突变)的DMD基因修复系统,具有非常重要的意义,也是一项具有挑战性的工作。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的不足,提供一种覆盖率高(针对不同DMD突变)的DMD基因修复系统。
本发明所采取的技术方案是:
本发明的第一个方面,提供:
一种修复人Dystrophin蛋白表达的基因编辑系统,所述基因编辑系统可敲除X染色体第31792310位至第31854834位,或第31747866位至第31838091位,或第31747866位至第31854834位之间的Dystrophin基因组区域;优选的,所述基因编辑系统可敲除X染色体第31815201位至第31846518位、第31769972位至第31815200位,或第31769972位至第31846518位之间的Dystrophin基因组区域。
在一些基因编辑系统的实例中,所述基因编辑系统为CRISPR/Cas基因编辑系统,所述CRISPR/Cas基因编辑系统为酿脓链球菌(Streptococcus pyogenes)的CRISPR/Sp.Cas9基因编辑系统、金黄色酿脓葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的CRISPR/Sa.Cas9基因编辑系统、嗜热链球菌(Streptococcus thermophilus)的CRISPR/St.Cas9基因编辑系统,或脑膜炎双球菌(Neisseria meningitidis)的CRISPR/Nm.Cas9基因编辑系统;进一步的,所述CRISPR/Cas基因编辑系统为金黄色酿脓葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的CRISPR/Sa.Cas9基因编辑系统。
在一些基因编辑系统的实例中,所述CRISPR/Cas基因编辑系统的gRNA的核酸序列选自如下序列中的至少一条:
SEQ ID NO:1~SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:14、SEQ IDNO:17、SEQ ID NO:23、SEQ ID NO:24、SEQ ID NO:43、SEQ ID NO:48、SEQ ID NO:49、SEQ IDNO:57、SEQ ID NO:64~SEQ ID NO:69、SEQ ID NO:71、SEQ ID NO:72、SEQ ID NO:74~SEQID NO:77、SEQ ID NO:82~SEQ ID NO:89、SEQ ID NO:91~SEQ ID NO:94、SEQ ID NO:97~SEQ ID NO:100、SEQ ID NO:105、SEQ ID NO:107、SEQ ID NO:114、SEQ ID NO:115、SEQ IDNO:119、SEQ ID NO:121~SEQ ID NO:123、SEQ ID NO:125~SEQ ID NO:128、SEQ ID NO:130、SEQ ID NO:140~SEQ ID NO:142、SEQ ID NO:145、SEQ ID NO:150、SEQ ID NO:152~SEQ ID NO:160、SEQ ID NO:165~SEQ ID NO:168、SEQ ID NO:172、SEQ ID NO:178、SEQ IDNO:179、SEQ ID NO:184~SEQ ID NO:188、SEQ ID NO:195、SEQ ID NO:196、SEQ ID NO:199、SEQ ID NO:202、SEQ ID NO:203、SEQ ID NO:206~SEQ ID NO:209、SEQ ID NO:214、SEQ ID NO:219~SEQ ID NO:222、SEQ ID NO:224、SEQ ID NO:225、SEQ ID NO:229~SEQID NO:232、SEQ ID NO:236、SEQ ID NO:238、SEQ ID NO:241、SEQ ID NO:245、SEQ ID NO:247、SEQ ID NO:249~SEQ ID NO:251、SEQ ID NO:253、SEQ ID NO:254;
优选地,所述基因编辑系统中gRNA的核酸序列选自如下序列中的至少一条:SEQID NO:14、SEQ ID NO:17、SEQ ID NO:23、SEQ ID NO:24、SEQ ID NO:43、SEQ ID NO:48、SEQID NO:49、SEQ ID NO:57、SEQ ID NO:64~SEQ ID NO:69、SEQ ID NO:71、SEQ ID NO:72、SEQ ID NO:74~SEQ ID NO:77、SEQ ID NO:82~SEQ ID NO:89、SEQ ID NO:91~SEQ IDNO:94、SEQ ID NO:97~SEQ ID NO:100、SEQ ID NO:105、SEQ ID NO:107、SEQ ID NO:114、SEQ ID NO:115、SEQ ID NO:119、SEQ ID NO:121~SEQ ID NO:123、SEQ ID NO:125~SEQID NO:128、SEQ ID NO:130、SEQ ID NO:140~SEQ ID NO:142、SEQ ID NO:145、SEQ ID NO:150、SEQ ID NO:152~SEQ ID NO:160、SEQ ID NO:165~SEQ ID NO:168、SEQ ID NO:172、SEQ ID NO:178、SEQ ID NO:179、SEQ ID NO:184~SEQ ID NO:188、SEQ ID NO:195、SEQ IDNO:196、SEQ ID NO:199。
在一些基因编辑系统的实例中,所述CRISPR/Cas基因编辑系统包含第一gRNA和第二gRNA的组合:其中
(1)用于修复Dystrophin基因51号外显子突变或缺失的第一gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:17、SEQ ID NO:23或SEQ ID NO:24,第二gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:43、SEQ ID NO:48、SEQ ID NO:49、SEQ ID NO:57、SEQ ID NO:64~SEQ ID NO:69、SEQ ID NO:71、SEQ ID NO:72、SEQ ID NO:74~SEQ ID NO:77、SEQ ID NO:82~SEQ IDNO:89、SEQ ID NO:91~SEQ ID NO:94、SEQ ID NO:97~SEQ ID NO:100、SEQ ID NO:105、SEQ ID NO:107;
(2)用于修复Dystrophin基因50号外显子突变或缺失的第一gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:114、SEQ ID NO:115、SEQ ID NO:119、SEQ ID NO:121~SEQ ID NO:123、SEQ IDNO:125~SEQ ID NO:128、SEQ ID NO:130、SEQ ID NO:140、SEQ ID NO:141或SEQ ID NO:142,第二gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:145、SEQ ID NO:150、SEQ ID NO:152~SEQ IDNO:160、SEQ ID NO:165~SEQ ID NO:168、SEQ ID NO:172、SEQ ID NO:178、SEQ ID NO:179、SEQ ID NO:184~SEQ ID NO:188、SEQ ID NO:195、SEQ ID NO:196、SEQ ID NO:199;
(3)用于修复Dystrophin基因50号外显子或51号外显子突变或缺失的第一gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:17、SEQ ID NO:23或SEQ ID NO:24,第二gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:145、SEQ ID NO:150、SEQ ID NO:152~SEQ ID NO:160、SEQ ID NO:165~SEQ ID NO:168、SEQ ID NO:172、SEQ ID NO:178、SEQ ID NO:179、SEQ ID NO:184~SEQ ID NO:188、SEQ ID NO:195、SEQ ID NO:196、SEQ ID NO:199;
优选的,所述CRISPR/Cas基因编辑系统包含第一gRNA和第二gRNA的组合:其中
(1)用于修复Dystrophin基因51号外显子突变或缺失的第一gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:23,第二gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:43、SEQ ID NO:105或SEQ ID NO:107;
(2)用于修复Dystrophin基因50号外显子突变或缺失的第一gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:114、SEQ ID NO:115、SEQ ID NO:119、SEQ ID NO:121~SEQ ID NO:123、SEQ IDNO:125~SEQ ID NO:128、SEQ ID NO:130、SEQ ID NO:140、SEQ ID NO:141或SEQ ID NO:142,第二gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:152、SEQ ID NO:153或SEQ ID NO:167;
(3)用于修复Dystrophin基因50号外显子或51号外显子突变或缺失的第一gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:23,第二gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:152、SEQ ID NO:153或SEQ ID NO:167。
本发明的第二个方面,提供:
一种表达体系,所述表达体系可表达本发明第一个方面所述的基因编辑系统。
在一些表达体系的实例中,所述表达体系的载体为病毒载体;优选的,所述病毒为腺相关病毒AAV或腺病毒Adv或杆状病毒(Baculovirus);进一步的,所述AAV选自AAV2.5、AAV6、AAV8或AAV9。
在一些表达体系的实例中,所述表达体系包括gRNA序列表达系统和Cas9表达系统。
在一些表达体系的实例中,所述表达体系的载体为腺相关病毒AAV,所述Cas9为Sa.Cas9,表达Sa.Cas9的AAV和表达gRNA的AAV两种AAV的两者用量比为3:2~4:1。
在一些表达体系的实例中,所述表达体系还插入有肌肉组织特异性启动子。
在一些表达体系的实例中,所述肌肉组织特异性启动子的核酸序列如SEQ ID NO:447所示。
本发明的有益效果是:
本发明一些实例所筛选的gRNA靶序列,其打靶效率更高,脱靶效率低,从而对Dys基因读码框的纠正效率更高。
本发明一些实例选取的靶点在基因组中的特定位置,可有效避免切割时大片段缺失导致的二次移码发生,降低了基因编辑导致的风险,提高有效编辑效率。
本发明一些实例所采用的肌肉组织特异性启动子可在肌肉细胞中有效启动目的基因的表达,避免了目的基因在其它组织器官中的表达,从而降低了基因编辑过程中非靶组织的编辑风险,以及机体内的细胞和体液免疫反应。
本发明一些实例利用优化的AAV/Cas9:AAV/sgRNA比例(3:2)~(4:1),可实现体内最高基因编辑效率。
本发明一些实例所采用的Sa.Cas9核酸序列全长(含核定位信号)3258bp,可进行AAV(腺相关病毒)的有效包装,在治疗过程中采用肌肉局部注射更有优势。此外,Dys基因经基因编辑后的细胞在体内可稳定分化和扩增,一次注射,终身有效。且本发明的基因治疗技术可针对>17%的DMD患者,包括EX51(缺失)4%、EX50(缺失)13%、EX45-50(缺失)、EX48-50(缺失)、EX50(缺失)、EX51(缺失)、EX52(缺失)以及EX50或EX51外显子区点突变及其他各种形式的突变,适应性更广。
附图说明
图1是CRISPR/Cas9基因编辑系统通过非同源性末端连接修复断裂DNA的原理示意图;
图2是纠正Dys基因的读码框,使DMD患者向症状较轻的BMD转变的原理示意图;
图3是CRISPR/Sa.Cas9 AAV表达体系的结构示意图;
图4是商品化质粒pX601质粒的结构示意图;
图5~33是使用T7E1酶切分析不同gRNA突变效率的凝胶电泳结果;图中泳道编号与SEQ ID NO编号对应,其中,图5~图7为SEQ ID NO:1-SEQ ID NO:24检测结果,图8~图20为SEQ ID NO:25-SEQ ID NO:144检测结果,图21~图33为SEQ ID NO:145-SEQ ID NO:256检测结果;
图34~图42是不同菌落的突变类型分析,图中第一栏数字代表随机挑选的菌落编号,wild type或w为未经基因编辑处理的原始dystrophin基因序列,*表示gRNA识别靶定基因所必需的PAM区,灰色区域为gRNA识别的靶序列,-表示碱基缺失,□表示插入序列;Δ表示碱基替换突变;
图43是gRNA靶序列组合的设计结果;
图44是Group NO:1PCR检测结果;
图45是Group NO:2~Group NO:7PCR检测结果;
图46是Group NO:8PCR检测结果;
图47是exon50缺失DMD细胞疾病模型单克隆鉴定PCR检测结果;
图48是exon50缺失DMD细胞疾病模型单克隆鉴定测序检测结果;
图49是exon50缺失DMD细胞疾病模型修复mRNA测序检测结果;
图50是dystrophin跳跃式阅读western blot检测结果;
图51是使用T7E1酶切分析不同小鼠gRNA突变效率的凝胶电泳结果,图中泳道编号与SEQ ID NO编号对应;
图52是ssAAV-MCK-SaCas9质粒的结构示意图;
图53是ssAAV-439-CMV-EGFP-442质粒的结构示意图;
图54是dystrophin组织免疫荧光染色图;
图55是dystrophin组织免疫荧光染色相对荧光强度分析图。
具体实施方式
本发明采用来源于金黄色酿脓葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的CRISPR-Sa.Cas9基因编辑系统,设计多对gRNA组合以引导Sa.Cas9在Dys基因突变热点区域50号外显子、51号外显子或50-51号双外显子区的上游和下游分别进行双链切割,引起DNA双链断裂后,在不存在同源模板的情况下通过非同源性末端连接(Non-homologous end joining,NHEJ)修复断裂DNA(如图1)。通常在Cas9剪切位点附近造成小片段碱基的插入或缺失。最终使得50或51号外显子区的上下游之间产生缺失,从而纠正Dys基因的读码框,使DMD患者向症状较轻的BMD转变(如图2)。
本发明针对DMD各种突变,分别设计了三套方案:1)敲除51号外显子的方案,选取50号内含子和51号内含子的gRNA靶序列进行组合,可以治疗包括EX50缺失突变;2)敲除50号外显子的方案,选取49号内含子和50号内含子的gRNA靶序列进行组合,可以治疗包括EX51缺失突变;3)同时敲除50和51号外显子的方案,选取49号内含子和51号内含子的gRNA靶序列进行组合,可以治疗包括EX50、EX51缺失以及EX50或者EX51点突变、重复突变等突变类型。
本发明靶点主要选取在各内含子DNA序列特定区域,例如在EX50外显子上游内含子区的靶点,主要集中在靠近EX50的靶点。本研究发现,这样的靶点位置选择,在基因编辑时,可以有效避免切割时,导致的大片段缺失,(这种大片段缺失容易导致EX49发生突变),避免了基因编辑导致的二次移码,大大提高了有效切割效率,同时降低了二次移码的可能。
研究者发现使用通用型启动子(例如CMV)不能在机体内有效的表达目的基因,原因是CMV表达效率过高,缺乏组织特异性,容易引起机体产生细胞和体液免疫反应,从而沉默掉目的基因的表达。而降低载体的使用量,最直接的后果就是导致目的基因的表达量下降,甚至达不到治疗疾病的效果。本研究使用序列优化过的肌肉组织特异性启动子MCKpromoter表达Sa.Cas9蛋白,可以在肌肉细胞内有效表达目的基因,无需降低载体使用量。避免了Sa.Cas9在其它组织器官中的表达,可降低机体内的细胞和体液免疫反应。AAV血清型靶向感染能力与组织特异性启动子特异表达能力相结合,可以对目的基因进行更精准、更高效的基因编辑改造(如图3)。
CRISPR/Cas9包含cas9蛋白以及sgRNA两个部分,在体外细胞水平,两者的比例一般为1:1,可达到最佳切割效率。但是在动物体内条件下,由于涉及到免疫中和等复杂环境影响,该比率无法套用体外条件,通过本研究发现,当利用AAV为载体,注射病毒比例处于(3:2)~(4:1)之间,可以达到较高的切割效率。
本发明的技术方案是一种高覆盖率(>17%DMD突变)、低毒副作用的治疗技术,适用于Dys基因多种突变(适用不少于17%的DMD患者),使严重的DMD转变为非致死性的BMD。
为更好的说明本发明的目的、技术方案和优点,下面将结合具体实施例对本发明作进一步说明。
实施例1 Dys基因49、50、51号内含子gRNA靶序列筛选
1.1 gRNA准备
(1)参照Sa.CRISPR/Cas9靶位点设计规则,分别针对Dys基因49、50、51号内含子的序列设计21nt的gRNA靶序列,所述gRNA的靶序列如表1、表2、表3所示;
(2)按照表1分别合成gRNA靶序列的DNA序列正义链和反义链(正义链的5’-端加cacc,若正义链5’-端第一个核苷酸不是鸟嘌呤G,则在正义链的5’-端加caccG;在反义链的5’-端加aaac,若正义链5’-端第一个核苷酸不是鸟嘌呤G,则在反义链的3’-端加C);
(3)将上述gRNA正义链和反义链混合,90℃处理后自然冷却至室温进行退火处理,合成带粘性末端的双链gRNA。
表1针对Dys基因49号内含子所设计的gRNA靶序列的正义链及其检测引物
Figure BDA0002603478870000081
Figure BDA0002603478870000091
表2针对Dys基因50号内含子所设计的gRNA靶序列的正义链及其检测引物
Figure BDA0002603478870000092
Figure BDA0002603478870000101
Figure BDA0002603478870000111
Figure BDA0002603478870000121
表3针对Dys基因51号内含子所设计的Sa-gRNA的DNA序列正义链及其检测引物
Figure BDA0002603478870000122
Figure BDA0002603478870000131
Figure BDA0002603478870000141
Figure BDA0002603478870000151
1.2载体准备
(1)pX601质粒(商品化载体,如图4)扩增和提取,并测定质粒浓度;
(2)采用限制性内切酶Bsa I对pX601进行酶切,37℃酶切1h后加loading buffer终止反应;
(3)琼脂糖凝胶电泳后切胶回收线性化质粒pX601,并测定回收产物浓度,-20℃保存备用。
1.3连接转化
(1)将切胶回收的线性化pX601载体与退火后的gRNA双链进行连接反应;
(2)连接产物热击法转化大肠杆菌感受态细胞TOP10,转化后向每个离心管加入无菌的LB液体培养基(不含抗生素),混匀后置于恒温摇床37℃,200rpm振荡培养45min使菌体复苏。
(3)将复苏后的TOP10细胞涂布LB固体平板(Amp+),倒置于恒温培养箱37℃静置培养12-16h。
(4)从上述平板上分别挑取单菌落接种到LB液体培养基(Amp+)中扩大培养。
(5)使用引物601SaF-F(5’-TTCCTTgACCCTggAAggTg-3’)(SEQ ID NO:299),对上述菌液分别测序;
(6)将测序正确的菌液提取质粒并测定质粒浓度后至-20℃保存备用。
1.4细胞转染
(1)HEK293T细胞铺板;
(2)采用Lipofectamine 3000试剂盒将1.3(6)中提取的质粒分别转染HEK293T细胞;
(3)转染后的细胞培养48小时,离心收集细胞。
1.5 T7E1酶切分析突变效率
(1)将上述1.4(3)收集的细胞提取细胞基因组,并检测基因组浓度;
(2)分别在gRNA结合位点上下游设计PCR引物,如表1所示;
(3)分别使用PCR法扩增带有靶位点的目的片段;
(4)纯化回收PCR产物,并测定产物浓度;
(5)将上述纯化的PCR产物退火处理,即先加热至95℃,保温10min,然后以每30s下降2~3℃的速度降温至室温;
(6)上述每管退火产物分别加入T7核酸内切酶1(T7E1),设置mock组(未转化的细胞)和空白对照组(不加T7E1,用ddH2O代替),37℃酶切1h。
(7)2%琼脂糖凝胶电泳检测酶切效果,以Takara公司的DL 2,000DNAMarker作为参照(电泳条带从上至下依次为2000bp、1000bp、750bp、500bp、250bp、100bp(以下所有电泳图如无特别说明,均为使用TAKARADL2000 Marker)。
(8)结果如图5~33所示(图中泳道编号与SEQ ID NO编号对应),图5~图7为SEQID NO:1-SEQ ID NO:24检测结果,图8~图20为SEQ ID NO:25-SEQ ID NO:144检测结果,图21~图33为SEQ ID NO:145-SEQ ID NO:256检测结果。根据T7E1检测的原理,酶切条带越亮、酶切效率越高,表示该gRNA的突变效率越高。
在针对49号内含子的gRNA靶序列中,SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:17、SEQ ID NO:23、SEQ ID NO:24切割效率较高。
在针对50号内含子的gRNA靶序列中,SEQ ID NO:43、SEQ ID NO:48、SEQ ID NO:49、SEQ ID NO:57、SEQ ID NO:64、SEQ ID NO:65、SEQ ID NO:66、SEQ ID NO:67、SEQ IDNO:68、SEQ ID NO:69、SEQ ID NO:71、SEQ ID NO:72、SEQ ID NO:74、SEQ ID NO:75、SEQ IDNO:76、SEQ ID NO:77、SEQ ID NO:82、SEQ ID NO:83、SEQ ID NO:84、SEQ ID NO:85、SEQ IDNO:86、SEQ ID NO:87、SEQ ID NO:88、SEQ ID NO:89、SEQ ID NO:91、SEQ ID NO:92、SEQ IDNO:93、SEQ ID NO:94、SEQ ID NO:97、SEQ ID NO:98、SEQ ID NO:99、SEQ ID NO:100、SEQID NO:105、SEQ ID NO:107、SEQ ID NO:114、SEQ ID NO:115、SEQ ID NO:119、SEQ ID NO:121、SEQ ID NO:122、SEQ ID NO:123、SEQ ID NO:125、SEQ ID NO:126、SEQ ID NO:127、SEQID NO:128、SEQ ID NO:130、SEQ ID NO:140、SEQ ID NO:141、SEQ ID NO:142切割效率较高。
在针对51号内含子的gRNA靶序列中,SEQ ID NO:145、SEQ ID NO:150、SEQ ID NO:152、SEQ ID NO:153、SEQ ID NO:154、SEQ ID NO:155、SEQ ID NO:156、SEQ ID NO:157、SEQID NO:158、SEQ ID NO:159、SEQ ID NO:160、SEQ ID NO:165、SEQ ID NO:166、SEQ ID NO:167、SEQ ID NO:168、SEQ ID NO:172、SEQ ID NO:178、SEQ ID NO:179、SEQ ID NO:184、SEQID NO:185、SEQ ID NO:186、SEQ ID NO:187、SEQ ID NO:188、SEQ ID NO:195、SEQ ID NO:196、SEQ ID NO:199、SEQ ID NO:202、SEQ ID NO:203、SEQ ID NO:206、SEQ ID NO:207、SEQID NO:208、SEQ ID NO:209、SEQ ID NO:214、SEQ ID NO:219、SEQ ID NO:220、SEQ ID NO:221、SEQ ID NO:222、SEQ ID NO:224、SEQ ID NO:225、SEQ ID NO:229、SEQ ID NO:230、SEQID NO:231、SEQ ID NO:232、SEQ ID NO:236、SEQ ID NO:238、SEQ ID NO:241、SEQ ID NO:245、SEQ ID NO:247、SEQ ID NO:249、SEQ ID NO:250、SEQ ID NO:251、SEQ ID NO:253、SEQID NO:254切割效率较高。
由上述结果可见,根据Sa.CRISPR/Cas9靶序列设计规则设计出来的gRNA,不能直接应用,并不是所有gRNA都能切割目的DNA序列,更不是所有gRNA都具有高效的切割效率。通过本实施例的方法,可以有效筛选出效率较高的gRNA靶序列,以便进行进一步的筛选。
实施例2测序分析Dystrophin基因突变效率和突变类型
选取实施例1中突变效率较高的gRNA,进一步分析突变效率和突变类型。以SEQ IDNO:10、SEQ ID NO:23和SEQ ID NO:43;SEQ ID NO:105和SEQ ID NO:107;SEQ ID NO:152、SEQ ID NO:153、SEQ ID NO:167和SEQ ID NO:179为例进行以下实验操作。
2.1 T载体连接
(1)将实施例1中1.5(4)所得的纯化后的PCR产物,测定浓度备用;
(2)选用康为世纪Master PCR Mix给PCR产物3’-末端加一个腺嘌呤(A):取3.1中的PCR产物2μg按照1:1(V:V)比例与Master PCR Mix混合,72℃反应30min;
(3)用1%琼脂糖凝胶电泳4.2中的反应产物,切胶回收目的片段并测定回收产物浓度;
(4)用TaKaRa pMDTM18-T Vector Cloning Kit进行连接反应:按下表4配制反应体系,16℃反应30min;
表4连接pMDTM18-T载体的反应体系
ddH<sub>2</sub>O 补齐至10μL
pMD18-T Vector(5×) 1μL(10ng)
目的片段 0.1pmol~0.3pmol
Solution I 5μL
(5)上述连接产物热击法转化大肠杆菌感受态细胞TOP10,转化后向每个离心管加入无菌的LB液体培养基(不含抗生素),混匀后置于恒温摇床37℃200rpm振荡培养45min使菌体复苏;
(6)将复苏后的TOP10细胞涂布LB固体平板(Amp+),倒置于恒温培养箱37℃静置培养12-16h。
2.2 Sanger测序
(1)随机挑取4.1(6)中平板上长出来的单菌落,进行Sanger测序,确定载体自连的假阳性单菌落个数、阳性单菌落个数、发生突变的菌落个数及突变型,并计算突变效率。
突变效率=发生突变菌落数/阳性单菌落数×100%
结果如下表所示:
Figure BDA0002603478870000181
图34~图42中,第一栏数字代表随机挑选的菌落编号,wild type或w为未经基因编辑处理的原始dystrophin基因序列,*表示gRNA识别靶定基因所必需的PAM区,灰色区域为gRNA识别的靶序列,-表示碱基缺失,□表示插入序列;Δ表示碱基替换突变。
由图34可见,共有4个单菌落(3、11、12、15号菌)为缺失突变;1个单菌落(7号菌)为7个位点碱基替换突变。整体突变效率为31.25%,突变均发生在靶序列SEQ ID NO:10附近,判断为CRISPR-Cas9系统对Dystrophin基因内含子靶向切割引起。
由图35可见,共有3个单菌落(6、7、13号菌)为缺失突变;1个单菌落(1号菌)为4个位点碱基替换突变。整体突变效率为22.2%,突变均发生在靶序列SEQ ID NO:23附近,判断为CRISPR-Cas9系统对Dystrophin基因内含子靶向切割引起。
由图36可见,共有3个单菌落(6、8、26号菌)为缺失突变;2个单菌落(7、13号菌)同时存在缺失突变和碱基替换突变。整体突变效率为25%,突变均发生在靶序列SEQ ID NO:43附近,判断为CRISPR-Cas9系统对Dystrophin基因内含子靶向切割引起。
由图37可见,共有16个单菌落(2、5、10、12、16、22、23、31、34、36、38、39、43、50、51、53号菌)为缺失突变,其中22、50号菌为大片段缺失;2个单菌落(17、20号菌)同时存在缺失突变和碱基替换突变。整体突变效率为36%,突变均发生在靶序列SEQ ID NO:105附近,判断为CRISPR-Cas9系统对Dystrophin基因内含子靶向切割引起。
由图38可见,共有18个单菌落(1、4、5、11、16、20、21、25、26、28、30、32、35、39、45、49、54、55号菌)为缺失突变,其中26号菌为大片段缺失;2个单菌落(2、24号菌)同时存在缺失突变和碱基替换突变;1个单菌落(43号菌)为8个位点碱基替换突变;1个单菌落(53号菌)同时存在缺失突变和插入突变;2个单菌落(19、31号菌)为插入突变,其中31号菌为长片段插入。整体突变效率为46.2%,突变均发生在靶序列SEQ ID NO:107附近,判断为CRISPR-Cas9系统对Dystrophin基因内含子靶向切割引起。
由图39可见,共有24个单菌落(3、4、5、6、7、8、9、10、14、17、19、20、21、23、25、28、31、38、41、45、46、49、50、52号菌)为缺失突变,其中5、10、28、38号菌为大片段缺失;3个单菌落(32、34、37号菌)同时存在缺失突变和碱基替换突变;2个单菌落(15、44号菌)为插入突变,其中15号菌为长片段插入。整体突变效率为58%,突变均发生在靶序列SEQ ID NO:152附近,判断为CRISPR-Cas9系统对Dystrophin基因内含子靶向切割引起。
由图40可见,共有18个单菌落(5、6、9、11、12、18、19、26、28、29、30、32、37、41、45、49、50、54号菌)为缺失突变,其中32号菌为大片段缺失;2个单菌落(22、53号菌)同时存在缺失突变和碱基替换突变;1个单菌落(24号菌)为2个位点碱基替换突变;1个单菌落(27号菌)同时存在缺失突变和插入突变;5个单菌落(8、38、39、48、52号菌)为插入突变;2个单菌落(2、10号菌)同时存在缺失突变、插入突变和碱基替换突变。整体突变效率为56.86%,突变均发生在靶序列SEQ ID NO:153附近,判断为CRISPR-Cas9系统对Dystrophin基因内含子靶向切割引起。
由图41可见,共有26个单菌落(1、4、7、8、9、12、18、19、20、21、22、23、25、26、30、33、35、40、43、44、45、47、49、50、52、55号菌)为缺失突变,其中22号菌为大片段缺失;1个单菌落(36号菌)同时存在缺失突变和碱基替换突变;1个单菌落(29号菌)为插入突变;1个单菌落(6号菌)同时存在缺失突变、插入突变和碱基替换突变。整体突变效率为56.86%,突变均发生在靶序列SEQ ID NO:167附近,判断为CRISPR-Cas9系统对Dystrophin基因内含子靶向切割引起。
由图42可见,共有11个单菌落(4、6、7、18、24、26、38、40、42、44、47号菌)为缺失突变;1个单菌落(13号菌)为单位点碱基替换突变;1个单菌落(35号菌)同时存在缺失突变和插入突变;2个单菌落(3、48号菌)为插入突变。整体突变效率为30%,突变均发生在靶序列SEQ ID NO:179附近,判断为CRISPR-Cas9系统对Dystrophin基因内含子靶向切割引起。
实施例3 Dys基因49、50、51号内含子gRNA靶序列组合的筛选
3.1 gRNA靶序列组合的设计(图43)
针对50号外显子缺失的DMD突变型,可以采取敲除51号外显子的方案,选取50号内含子和51号内含子的gRNA靶序列进行组合;
针对51号外显子缺失的DMD突变型,可以采取敲除50号外显子的方案,选取49号内含子和50号内含子的gRNA靶序列进行组合;
针对50-51号外显子突变或缺失的DMD突变型,可以采取同时敲除50和51号外显子的方案,选取49号内含子和51号内含子的gRNA靶序列进行组合;
表5 Dys基因外显子50-51上下游Sa-gRNA组合
49号内含子区的gRNA 51号内含子区的gRNA
Group NO:1 SEQ ID NO:23 SEQ ID NO:153
表6 Dys基因51号外显子上下游Sa-gRNA组合
50号内含子区的gRNA 51号内含子区的gRNA
Group NO:2 SEQ ID NO:105 SEQ ID NO:152
Group NO:3 SEQ ID NO:105 SEQ ID NO:153
Group NO:4 SEQ ID NO:107 SEQ ID NO:152
Group NO:5 SEQ ID NO:107 SEQ ID NO:153
Group NO:6 SEQ ID NO:105 SEQ ID NO:167
Group NO:7 SEQ ID NO:107 SEQ ID NO:167
表7 Dys基因50号外显子上下游Sa-gRNA组合
49号内含子区的gRNA 50号内含子区的gRNA
Group NO:8 SEQ ID NO:23 SEQ ID NO:43
3.2细胞转染
(1)HEK293T细胞铺板;
(2)采用Lipofectamine 3000试剂盒将1.3(6)中提取的质粒按照3.1中的组合分别转染HEK293T细胞;
(3)转染后的细胞培养48小时,离心收集细胞。
3.3 PCR检测突变效果及测序分析
(1)将上述3.2(3)收集的细胞提取细胞基因组,并检测基因组浓度;
(2)分别在gRNA结合位点上下游设计PCR引物,如表8所示。
表8 PCR检测分析引物列表
Figure BDA0002603478870000211
(3)分别使用PCR法扩增带有靶位点的目的片段;
(4)1%琼脂糖凝胶电泳检测打靶敲除效果,以Takara公司的DL 2,000DNA Marker作为参照。
结果如图44~46所示(图中泳道编号与SEQ ID NO编号对应),图44为Group NO:1PCR检测结果;图45为Group NO:2~Group NO:7PCR检测结果;图46为Group NO:8PCR检测结果。
根据非同源末端连接修复原理,基因组断裂后,细胞会倾向于将两个DNA断端彼此连接在一起。按照3.1的组合设计在细胞中共转入1.3(6)中的载体后,两个Sa-gRNA之间的DNA片段被切除,DNA断端彼此连接修复。
通过在Dys基因49号内含子Sa-gRNA 5’端和Dys基因51号内含子Sa-gRNA 3’端设计引物进行PCR,根据PCR产物大小可以判断其发生非同源末端连接。图44中,泳道下方数字表示两个Sa-gRNA之间发生非同源末端连接修复后所得PCR产物大小,箭头指示前述PCR产物的位置,可见PCR产物大小符合预期,两个Sa-gRNA之间发生非同源末端连接。
通过在Dys基因50号内含子Sa-gRNA5’端和Dys基因51号内含子Sa-gRNA 3’端设计引物进行PCR,根据PCR产物大小可以判断是否发生非同源末端连接。图45中,泳道下方数字表示两个Sa-gRNA之间发生非同源末端连接修复后所得PCR产物大小,箭头指示前述PCR产物的位置,可见PCR产物大小符合预期,两个Sa-gRNA之间发生非同源末端连接。
通过在Dys基因49号内含子Sa-gRNA 5’端和Dys 50号内含子Sa-gRNA 3’端设计引物进行PCR,根据PCR产物大小可以判断是否发生非同源末端连接。图46中,泳道下方数字表示两个Sa-gRNA之间发生非同源末端连接修复后所得PCR产物大小,箭头指示前述PCR产物的位置,可见PCR产物大小符合预期,两个Sa-gRNA之间发生非同源末端连接。
实施例4 Dys基因修复检测
4.1载体准备
(1)以实施例1中提取的质粒为模板,SEQ ID NO:435和SEQ ID NO:436为引物扩增目的片段U6-43-gRNA、U6-167-gRNA,如表1%琼脂糖凝胶回收PCR产物。
(2)以实施例1中提取的质粒为模板,SEQ ID NO:433和SEQ ID NO:434为引物分别扩增目的片段U6-23-gRNA、U6-105-gRNA,如表1%琼脂糖凝胶回收PCR产物。
表9载体构建及检测引物列表
序列编号 具体序列
SEQ ID NO:433 aggaaggaggaggcctaaggGAGGTACCGAGGGCCTATTTC
SEQ ID NO:434 agaaaagccccatccttaggCAAAAATCTCGCCAACAAGTTGAC
SEQ ID NO:435 TGGGGAGGTACCGAttcgaaGAGGTACCGAGGGCCTATTTC
SEQ ID NO:436 tgatgacgtcagcgttcgaaCAAAAATCTCGCCAACAAGTTGAC
SEQ ID NO:289 TGACTGGCCTGTTTCTGTG
SEQ ID NO:290 TGATCTCCAGTTTCCCTCCT
SEQ ID NO:277 TGCCCAGTGAAGTGGAAC
SEQ ID NO:364 ACAGAGTTACACACAGGATG
SEQ ID NO:319 GTGGGTGATTTCACATGAGATC
SEQ ID NO:437 cttgaagaccttgaagagcag
SEQ ID NO:438 catgactcaagcttggctct
(3)采用限制性内切酶BstBI-HF对pFast-SaCas9-EGFP进行酶切,37℃酶切1h后加loading buffer终止反应。
(4)琼脂糖凝胶电泳后切胶回收线性化质粒pFast-SaCas9-EGFP,并测定回收产物浓度,-20℃保存备用。
(5)将(1)中回收的PCR产物U6-43-gRNA、U6-167-gRNA分别与(4)中的载体酶切产物进行重组反应。
(6)按照1.3(2)-(4)转化大肠杆菌感受态。
(7)挑取单克隆送艾基进行测序,测序序列及峰图经比对均正确。
(8)将测序正确的菌液提取质粒并测定质粒浓度后至-20℃保存备用,分别为pFast-43-SaCas9-EGFP和pFast-167-SaCas9-EGFP。
(9)采用限制性内切酶Bsu36I-HF分别对pFast-43-SaCas9-EGFP和pFast-167-SaCas9-EGFP进行酶切,37℃酶切1h后加loading buffer终止反应。
(10)将(1)中回收的PCR产物U6-23-gRNA分别与(9)中的载体酶切产物进行重组反应。将(1)中回收的PCR产物U6-105-gRNA与(9)中的载体酶切产物pFast-167-SaCas9-EGFP进行重组反应。
(11)按照1.3(2)-(4)转化大肠杆菌感受态。
(12)挑取单克隆送艾基进行测序,测序序列及峰图经比对均正确。
(13)将测序正确的菌液提取质并测定质粒浓度后至-20℃保存备用,分别为pFast-43-SaCas9-EGFP-23和pFast-167-SaCas9-EGFP-105、pFast-167-SaCas9-EGFP-23。
4.2 exon50缺失DMD细胞疾病模型建立
(1)将4.1(11)中提取的质粒pFast-43-SaCas9-EGFP-23转染RD细胞,敲除exon50。
(2)转染2天后,流式分选富集EGFP细胞。
(3)采用有限稀释法稀释富集的EGFP细胞,获得单克隆细胞。
(4)将单克隆细胞进行培养扩大。
(5)分别以SEQ ID NO:289和SEQ ID NO:290、SEQ ID NO:277和SEQ ID NO:290为引物扩增单克隆基因组,对单克隆进行鉴定。如果能扩增到两条带,则单克隆为杂合子,仅一条染色体exon50被敲除;如果仅SEQ ID NO:289和SEQ ID NO:290能扩增到条带,则单克隆未发生敲除;如果仅SEQ ID NO:277和SEQ ID NO:290能扩增到条带,则单克隆可作为为纯合子,两条染色体exon50均被敲除。
(6)结果如图47所示,6号单克隆为纯合子,可作为exon50缺失DMD细胞疾病模型。
(7)将6号单克隆PCR产物送测序。
(8)结果如图48所示,由于23和43靶点之间的内含子和50号外显子被敲除,49号内含子和50号内含子靶点位置发生非同源末端连接。
(9)将RD-6exon50缺失DMD细胞疾病模型扩大培养,冻存备用。
4.3 DMD细胞疾病模型修复验证
(1)将4.1(11)中提取的质粒pFast-167-SaCas9-EGFP-105转染RD-6exon50缺失DMD细胞疾病模型,敲除exon51,用于治疗任意由exon50缺失造成的DMD疾病。转染72h后,参照4.2实验方法,筛选并鉴定敲除后的单克隆。将单克隆细胞扩大培养后,分别提取基因组、RNA和蛋白质。
(2)将4.1(11)中提取的质粒pFast-167-SaCas9-EGFP-23转染RD细胞,敲除exon50和exon51,用于治疗任意由exon50和/或exon51缺失或突变造成的DMD疾病。转染72h后,参照4.2实验方法,筛选并鉴定敲除后的单克隆。将单克隆细胞扩大培养后,分别提取基因组、RNA和蛋白质。
(3)使用引物SEQ ID NO:319/SEQ ID NO:364对(1)中的基因组进行扩增,并将PCR产物送测序;使用引物SEQ ID NO:277/SEQ ID NO:364对(2)中的基因组进行扩增,并将PCR产物送测序。由此获得纯合的单克隆细胞
(4)将(1)和(2)中提取的RNA分别进行反转录,获得cDNA。
(5)以cDNA为模板,使用引物SEQ ID NO:437/SEQ ID NO:438进行扩增,并将PCR产物送测序。
(6)结果如图49所示,测序检测到mRNA包括exon48、exon49和exon52,说明dystrophin基因由exon49跳跃至exon52进行表达。
(8)使用western blot检测dystrophin蛋白恢复表达情况。
(9)结果如图50所示,RD-6exon50缺失DMD细胞疾病模型由于敲除了exon50,dystrophin表达发生移码,未能检测到dystrophin蛋白表达。RD细胞和作为阳性对照的成肌细胞均能检测到dystrophin蛋白表达。1号样品为使用105和167靶点敲除RD-6exon50缺失DMD细胞疾病模型的exon51,dystrophin蛋白恢复正常表达。2号样品为使用23和167靶点直接敲除RD细胞exon50和exon51,dystrophin蛋白仍能正常表达。由此可证明使用本专利中筛选的靶点,进行组合,对EX50、EX51缺失以及EX50或者EX51点突变、重复突变等突变类型均能进行有效修复,恢复dystrophin蛋白表达。
实施例5小鼠Dys基因23号内含子gRNA靶序列筛选
5.1小鼠gRNA准备
(1)参照Sa.CRISPR/Cas9靶位点设计规则,针对小鼠Dys基因23号内含子的序列设计21nt的gRNA靶序列,所述gRNA的靶序列如表10所示;
(2)按照表10合成gRNA靶序列的DNA序列正义链和反义链(正义链的5’-端加cacc,若正义链5’-端第一个核苷酸不是鸟嘌呤G,则在正义链的5’-端加caccG;在反义链的5’-端加aaac,若正义链5’-端第一个核苷酸不是鸟嘌呤G,则在反义链的3’-端加C);
(3)将上述gRNA正义链和反义链混合,90℃处理后自然冷却至室温进行退火处理,合成带粘性末端的双链gRNA。
表10针对小鼠Dys基因23号内含子所设计的gRNA靶序列的正义链及其检测引物
Figure BDA0002603478870000251
5.2载体准备
按照1.2进行载体准备。
5.3连接转化
按照1.3进行连接转化。
5.4细胞转染
(1)Hepa1-6细胞铺板;
(2)采用Lipofectamine 3000试剂盒将4.3中提取的质粒分别转染Hepa1-6细胞;
(3)转染后的细胞培养48小时,离心收集细胞。
5.5 T7E1酶切分析突变效率
(1)将上述5.4(3)收集的细胞提取细胞基因组,并检测基因组浓度;
(2)分别在gRNA结合位点上下游设计PCR引物,如表10所示;
(3)按照1.5(3)~(7)进行T7E1酶切分析。
结果如图51所示(图中泳道编号与SEQ ID NO编号对应),根据T7E1检测的原理,酶切条带越亮、酶切效率越高,表示该gRNA的突变效率越高。
在针对小鼠23号内含子的gRNA靶序列中,SEQ ID NO:439和SEQ ID NO:442切割效率较高。
实施例6 AAV载体改造及包装
6.1 ssAAV-MCK-EGFP载体改造
(1)委外合成SEQ ID NO:447MCK肌肉组织特异性启动子序列及载体改造引物,如表11所示。
表11 MCK启动子、载体构建及检测引物列表
Figure BDA0002603478870000261
(2)以已合成的MCK启动子序列为模板,SEQ ID NO:448和SEQ ID NO:449为引物扩增目的片段,1%琼脂糖凝胶回收PCR产物。
(3)采用限制性内切酶MluI-HF和AgeI-HF对ssAAV-CMV-EGFP进行酶切,37℃酶切1h后加loading buffer终止反应。
(4)琼脂糖凝胶电泳后切胶回收线性化质粒ssAAV-CMV-EGFP,并测定回收产物浓度,-20℃保存备用。
(5)将(2)中回收的PCR产物与(4)中的载体酶切产物进行重组反应。
(6)按照1.3(2)-(4)转化大肠杆菌感受态。
(7)挑取单克隆送艾基进行测序,测序序列及峰图经比对均正确。
(8)将测序正确的菌液提取质粒并测定质粒浓度后至-20℃保存备用。
6.2 ssAAV-MCK-SaCas9载体改造
(1)以pX601质粒为模板,SEQ ID NO:450和SEQ ID NO:451为引物增目的片段,1%琼脂糖凝胶回收PCR产物。
(2)采用限制性内切酶AgeI-HF和NotI-HF对6.1(8)中提取的质粒ssAAV-MCK-EGFP进行酶切,37℃酶切1h后加loading buffer终止反应。
(3)琼脂糖凝胶电泳后切胶回收线性化质粒ssAAV-MCK-EGFP,并测定回收产物浓度,-20℃保存备用。
(4)将(1)中回收的PCR产物与(3)中的载体酶切产物进行重组反应。
(5)按照1.3(2)-(4)转化大肠杆菌感受态。
(6)挑取单克隆送艾基进行测序,测序序列及峰图经比对均正确。
(7)将测序正确的菌液提取质粒并测定质粒浓度后至-20℃保存备用,载体图如图52所示。
(8)委外包装AAV9-MCK-SaCas9腺相关病毒。
6.3 ssAAV-439-CMV-EGFP载体改造
(1)以5.3中提取的pX601-439质粒为模板,SEQ ID NO:452和SEQ ID NO:453为引物增目的片段,1%琼脂糖凝胶回收PCR产物。
(2)采用限制性内切酶MluI-HF对ssAAV-CMV-EGFP进行酶切,37℃酶切1h后加loading buffer终止反应。
(3)琼脂糖凝胶电泳后切胶回收线性化质粒ssAAV-CMV-EGFP,并测定回收产物浓度,-20℃保存备用。
(4)将(1)中回收的PCR产物与(3)中的载体酶切产物进行重组反应。
(5)按照1.3(2)-(4)转化大肠杆菌感受态。
(6)挑取单克隆送艾基进行测序,测序序列及峰图经比对均正确。
(7)将测序正确的菌液提取质粒并测定质粒浓度后至-20℃保存备用。
6.4 ssAAV-439-CMV-EGFP-442载体改造
(1)以5.3中提取的pX601-442质粒为模板,SEQ ID NO:454和SEQ ID NO:455为引物增目的片段,1%琼脂糖凝胶回收PCR产物。
(2)采用限制性内切酶NotI-HF对6.3(7)中提取的质粒ssAAV-439-CMV-EGFP进行酶切,37℃酶切1h后加loading buffer终止反应。
(3)琼脂糖凝胶电泳后切胶回收线性化质粒ssAAV-439-CMV-EGFP,并测定回收产物浓度,-20℃保存备用。
(4)将(1)中回收的PCR产物与(3)中的载体酶切产物进行重组反应。
(5)按照1.3(2)-(4)转化大肠杆菌感受态。
(6)挑取单克隆送艾基进行测序,测序序列及峰图经比对均正确。
(7)将测序正确的菌液提取质粒并测定质粒浓度后至-20℃保存备用,载体图如图53所示。
(8)委外包装AAV9-439-CMV-EGFP-442腺相关病毒。
实施例7小鼠体内基因编辑效率检测
(1)准备4-6周龄mdx雄性小鼠15只,mdx雄性小鼠由于exon23上存在1bp碱基突变,使得小鼠dystrophin在23号外显子终止翻译。
(2)将6.4(8)中包装的AAV9-439-CMV-EGFP-442和6.2(8)中包装的AAV9-MCK-SaCas9腺相关病毒按照病毒滴度以1:1、3:2、2:1、3:1、4:1进行混合,配制四组注射剂。
(3)以4E+11vg/只分别注射mdx雄性小鼠左后肢胫骨前肌,每组注射3只小鼠。
(4)28天后处死小鼠,取小鼠左后肢胫骨前肌进行dystrophin蛋白组织免疫染色。
(5)使用image J对组织免疫染色图片进行荧光强度分析,计算相对于健康小鼠,实验组小鼠注射部位dystrophin蛋白恢复的相对荧光强度。相对荧光强度(%)=(实验组小鼠Integrated density/健康小鼠Integrated density)×100%。
(5)mdx小鼠在注射AAV9病毒后,敲除exon23,dystrophin mRNA由exon22跳跃至exon24,恢复正常表达。
结果如图54和图55所示,dystrophin蛋白在注射了AAV9病毒的mdx小鼠中均恢复表达。其中AAV9-439-CMV-EGFP-442:AAV9-MCK-SaCas9=3:1时,dystrophin蛋白恢复水平最高。
<110>广东赤萌医疗科技有限公司
<120>用于修复DMD基因突变的核酸序列及系统
<160>455
<210>1 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>1 tggcagcacaccaggacagaa21
<210>2 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>2 gatctccaagtggcccagtag21
<210>3 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>3 gggccacttggagatcagaac21
<210>4 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>4 tgcctcggcctcgcaaagtgc21
<210>5 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>5 cactttgcgaggccgaggcag21
<210>6 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>6 ggtccacagcaaaagttgtgc21
<210>7 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>7 ggacagacaggctgtctgatg21
<210>8 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>8 ctcctacgctcacctcccaag21
<210>9 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>9 agggagagagggagagaggga21
<210>10 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>10 gctaggccatgatggtcccag21
<210>11 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>11 ggggagcttgggagtgaggta21
<210>12 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>12 ctcactcccaagctccccact21
<210>13 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>13 gggactctaagtggggagctt21
<210>14 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>14 accgcgcccagccaaagcgtt21
<210>15 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>15 agccactgcgcccggccatgg21
<210>16 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>16 catgagccactgcgcccggcc21
<210>17 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>17 tacaggctcgcaccaccacac21
<210>18 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>18 gctaccgggaggctgaggcag21
<210>19 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>19 catcccagcctcccaaagcgc21
<210>20 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>20 aggctgggatgggcagatcac21
<210>21 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>21 actgctctcccgcctgggtga21
<210>22 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>22 ctgcatggtagccccggagtt21
<210>23 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>23 gggaggggctgcagtggacac21
<210>24 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>24 actgggggtgagccagtacat21
<210>25 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>25 agagcacaagggagattgtgg21
<210>26 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>26 ggctggctgtgcagagctgtc21
<210>27 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>27 tggccaatggctggctggatc21
<210>28 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>28 cagcccctggccaatggctgg21
<210>29 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>29 gccaggggctggctgctgcct21
<210>30 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>30 gaccacaagctgacttggggg21
<210>31 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>31 cagtgcatctcatgtgccctc21
<210>32 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>32 ctgggattactcggcagtcat21
<210>33 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>33 actggtgctgcgagtacagca21
<210>34 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>34 gaggcccctatcctagaccca21
<210>35 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>35 cagtgtgcacaggattcacct21
<210>36 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>36 gtggaggacataggagaagac21
<210>37 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>37 ctccacattgctgccagtatg21
<210>38 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>38 tgctgccagtatggagagtct21
<210>39 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>39 cttcctgcaagtcaggaagtc21
<210>40 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>40 atcttgctctgttgcccaggc21
<210>41 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>41 cactttgagaggctgaggcag21
<210>42 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>42 tgcctcagcctctcaaagtgc21
<210>43 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>43 cctctcttggaaaactgccct21
<210>44 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>44 gctcacagcaacctctgcctc21
<210>45 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>45 cggttctcctgcctcagcctc21
<210>46 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>46 cactatgggaggctgaggcag21
<210>47 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>47 tgcctcagcctcccatagtgc21
<210>48 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>48 tactccccatctccccacccc21
<210>49 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>49 catcctcggggtggggagatg21
<210>50 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>50 ctgcagagctgttcagtgttc21
<210>51 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>51 cccagcagcttgtggataaga21
<210>52 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>52 tgttctcaggcccagcagctt21
<210>53 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>53 ctacgggggaggctgaggcag21
<210>54 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>54 cactttggaaggccgaggcgg21
<210>55 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>55 cgcctcggccttccaaagtgc21
<210>56 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>56 cgtgagccaccgcgcccggcc21
<210>57 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>57 aggggaaatgggtagcccact21
<210>58 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>58 aaggctgagtgctaaggggaa21
<210>59 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>59 agctggggaggagattatctc21
<210>60 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>60 cctctccagccatgtggaact21
<210>61 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>61 gagggaccatgtgggaggtaa21
<210>62 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>62 atggtccctcccacaacacgt21
<210>63 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>63 cccacaacacgtggggattat21
<210>64 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>64 atatcccaccttcttctcccc21
<210>65 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>65 ctacccaaggggagaagaagg21
<210>66 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>66 tcaaactcaggagatgtgggg21
<210>67 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>67 ctcagaagtagaccctgagac21
<210>68 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>68 atcacacactggggcctgctg21
<210>69 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>69 aggccttgcagtatcttggga21
<210>70 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>70 ctccaaggccttgcagtatct21
<210>71 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>71 caaagtgcttgccagcccatg21
<210>72 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>72 gagaccttagagaccctccag21
<210>73 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>73 gggcacagcatggccttgaac21
<210>74 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>74 agcgtccccttcggccgtcaa21
<210>75 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>75 ccccttcggccgtcaaaaggg21
<210>76 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>76 aaacccagtgtgagcaaggcc21
<210>77 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>77 gcatccatggccttgctcaca21
<210>78 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>78 cacctcggccccccaaagtgt21
<210>79 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>79 ccaacactttggggggccgag21
<210>80 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>80 gtgggtggatcacctgaggtc21
<210>81 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>81 gctcaccgcaacctccacctc21
<210>82 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>82 cgattgtgctgtggggaacac21
<210>83 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>83 gtgctgtggggaacacaaggg21
<210>84 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>84 gtaacagattcccctggtgcc21
<210>85 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>85 gcgtgtgactccaggcaccag21
<210>86 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>86 agctgcagtggacagccctgt21
<210>87 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>87 aaccaatggagatgggagccc21
<210>88 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>88 actattccttccgggggcaag21
<210>89 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>89 agaattccccttgcccccgga21
<210>90 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>90 ggaagctgatccctaggaagc21
<210>91 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>91 aaacagggcctggatgaggac21
<210>92 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>92 tgggtcccctgaaaacagggc21
<210>93 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>93 gggaggtaaggagcgtctttc21
<210>94 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>94 attgtgtgtgtgttggggggg21
<210>95 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>95 tgggtccctcccacaacacat21
<210>96 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>96 gagggacccagggggaagtaa21
<210>97 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>97 cctctgaagccatgcggaact21
<210>98 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>98 agatttgggaggggccaggag21
<210>99 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>99 tgggtccctcccatgacacct21
<210>100 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>100 gagggacccagtgagaggtaa21
<210>101 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>101 cacagggtggcaggagggaga21
<210>102 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>102 tcttcacagggtggcaggagg21
<210>103 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>103 cctgaggcctccccagccatg21
<210>104 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>104 cctccccagccatgcagaatg21
<210>105 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>105 aggaacccttgagctggggat21
<210>106 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>106 gaagactctgatccccagctc21
<210>107 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>107 tgagagggttgcaagttgggc21
<210>108 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>108 agctcccctttgcccttcacc21
<210>109 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>109 aatgcccttcctgggggcagg21
<210>110 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>110 ggtcatgggggtggatccttc21
<210>111 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>111 gggaagtgtggggtcatgggg21
<210>112 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>112 ggtggggcttaacgggaagtg21
<210>113 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>113 gcttggtacacaaggccgttc21
<210>114 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>114 gcccagtgtcaccccaatgga21
<210>115 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>115 ttgggcccagtgtcaccccaa21
<210>116 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>116 aatcatcccgatcacagcccc21
<210>117 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>117 gcctcctgccgctatcagtac21
<210>118 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>118 aggatggggtggggtggggcc21
<210>119 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>119 gtcctgtctaccagctgagtc21
<210>120 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>120 taacacaccctctggggcttc21
<210>121 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>121 tctgcgacccctgaagcccca21
<210>122 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>122 gcaagcaaacgaggtgggaac21
<210>123 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>123 gcttgcacactccctccagtg21
<210>124 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>124 cccctttgtggaactcgcaac21
<210>125 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>125 cccctgttgcgagttccacaa21
<210>126 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>126 ctgggaaactactgggcaggg21
<210>127 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>127 gcacagtcagaactagtgtgc21
<210>128 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>128 ctccagcctgggagacaaagc21
<210>129 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>129 ggtggtagaacacctgaggtc21
<210>130 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>130 gtgggtgcatcgactccagaa21
<210>131 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>131 aagaccgtgtggcgattcctc21
<210>132 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>132 gggggattggggggcagaggg21
<210>133 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>133 gggagcaatgggagctcttca21
<210>134 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>134 gtgagggcctgacacatggta21
<210>135 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>135 ctcgatgaaccaagccccaag21
<210>136 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>136 ctaccagctgaccacgagtgc21
<210>137 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>137 gagtggctgtcctgtgcattg21
<210>138 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>138 atactcaggaggctgaggcag21
<210>139 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>139 cgattcccctgcctcagcctc21
<210>140 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>140 gctcactgcaatctctgcctc21
<210>141 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>141 agtgttgctctgttgccaggc21
<210>142 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>142 atgggtgtggaggagcctgga21
<210>143 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>143 ttatctgcccatgactggcgc21
<210>144 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>144 aaggagggagggagggaggga21
<210>145 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>145 tggctcccaagctgtgtgacc21
<210>146 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>146 gcctcagcctcccaaagcgct21
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<210>148 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>148 gcaggtggatcacttgaggtc21
<210>149 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>149 aggctgaggcaggagaatcac21
<210>150 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>150 agctcaatggaacctctggtc21
<210>151 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>151 gtctcactctgtcactcagtc21
<210>152 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>152 agcacagtctgttccctctgc21
<210>153 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>153 tacaggcagtggcaactctga21
<210>154 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>154 gacgcatgtggctcacaggcc21
<210>155 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>155 gcctgtgagccacatgcgtcc21
<210>156 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>156 cacatgcgtcccaggatggct21
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<210>158 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>158 tggcccagggaagccaaaaga21
<210>159 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>159 acccagacccccagacctctt21
<210>160 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>160 attcccaagaggtctgggggt21
<210>161 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>161 cgtgagctaccatgcccggcc21
<210>162 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>162 gcgggtgtatcacctgaggtc21
<210>163 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>163 ctactcctgaggctgaggcag21
<210>164 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>164 gctcactgcaacatctgcctc21
<210>165 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>165 gctcttgaacttctggcctca21
<210>166 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>166 agatcatgtcacctcagcctc21
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<210>172 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>172 atggagtctctgtcgccaggc21
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<210>174 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>174 aacctctgactccctggttca21
<210>175 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>175 gcaggagaatcccttgaacca21
<210>176 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>176 ggattctcctgcctcagcctc21
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<210>183 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>183 acgtggtttcaccgtgttagc21
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<210>231 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>231 ttgggaggcatcagcagatca21
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<210>246 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>246 gcattcggctgcctctccaaa21
<210>247 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>247 tttggagaggcagccgaatgc21
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<210>251 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>251 tagcagattgggggcagagaa21
<210>252 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>252 tctcatctgtgggtggctcga21
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<210>261 <211>20 <212>DNA <213>人工序列 <400>261 cacccacacactcaactact20
<210>262 <211>20 <212>DNA <213>人工序列 <400>262 agagcaatggagtgtccttc20
<210>263 <211>20 <212>DNA <213>人工序列 <400>263 tgtgtccaccgcttacaaac20
<210>264 <211>20 <212>DNA <213>人工序列 <400>264 ggtgctattgaggacctagt20
<210>265 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>265 agagctcatcaccttgctaag21
<210>266 <211>20 <212>DNA <213>人工序列 <400>266 gagttcgagaccagcttgac20
<210>267 <211>20 <212>DNA <213>人工序列 <400>267 gcagccacaattgtagctac20
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<210>269 <211>20 <212>DNA <213>人工序列 <400>269 tcaaccttgctgctcgttac20
<210>270 <211>22 <212>DNA <213>人工序列 <400>270 gctaagaggaaagttcatagtg22
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<210>281 <211>20 <212>DNA <213>人工序列 <400>281 ctactagcacctctccctgt20
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<210>286 <211>20 <212>DNA <213>人工序列 <400>286 gatagtgtaaagcacagcca20
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<210>447 <211>436 <212>DNA <213>人类 <400>447
tgcccatgtaaggaggcaaggcctggggacacccgagatgcctggttataattaacccag60
acatgtggctgcccccccccccccaacacctgctgcctgctaaaaataaccctatgttcc120
cggcgaagggccagctgtcccccgccagctagactcagcacttagtttaggaaccagtga180
gcaagtcagcccttggggcagcccatacaaggccatggggctgggcaagctgcacgcctg240
ggtccggggtgggcacggtgcccgggcaacgagctgaaagctcatctgctctcaggggcc300
cctccctggggacagcccctcctggctagtcacaccctgtaggctcctctatataaccca360
ggggcacaggggctgccccctcattctggtcaccaccacctccacagcacagacagacac420 tcaggagccagccagc436
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<210>455 <211>21 <212>DNA <213>人工序列 <400>455 tccatcactaggggttcctgc21

Claims (10)

1.一种修复人Dystrophin蛋白表达的基因编辑系统,其特征在于:所述基因编辑系统可敲除X染色体第31792310位至第31854834位,或第31747866位至第31838091位,或第31747866位至第31854834位之间的Dystrophin基因组区域;优选的,所述基因编辑系统可敲除X染色体第31815201位至第31846518位、第31769972位至第31815200位,或第31769972位至第31846518位之间的Dystrophin基因组区域。
2.根据权利要求1所述的基因编辑系统,其特征在于:所述基因编辑系统为CRISPR/Cas基因编辑系统,所述CRISPR/Cas基因编辑系统为酿脓链球菌(Streptococcus pyogenes)的CRISPR/Sp.Cas9基因编辑系统、金黄色酿脓葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的CRISPR/Sa.Cas9基因编辑系统、嗜热链球菌(Streptococcus thermophilus)的CRISPR/St.Cas9基因编辑系统,或脑膜炎双球菌(Neisseria meningitidis)的CRISPR/Nm.Cas9基因编辑系统;进一步的,所述CRISPR/Cas基因编辑系统为金黄色酿脓葡萄球菌(Staphylococcusaureus)的CRISPR/Sa.Cas9基因编辑系统。
3.根据权利要求2所述的基因编辑系统,其特征在于:所述CRISPR/Cas基因编辑系统的gRNA的核酸序列选自如下序列中的至少一条:
SEQ ID NO:1~SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:17、SEQ ID NO:23、SEQ ID NO:24、SEQ ID NO:43、SEQ ID NO:48、SEQ ID NO:49、SEQ IDNO:57、SEQ ID NO:64~SEQ ID NO:69、SEQ ID NO:71、SEQ ID NO:72、SEQ ID NO:74~SEQID NO:77、SEQ ID NO:82~SEQ ID NO:89、SEQ ID NO:91~SEQ ID NO:94、SEQ ID NO:97~SEQ ID NO:100、SEQ ID NO:105、SEQ ID NO:107、SEQ ID NO:114、SEQ ID NO:115、SEQ IDNO:119、SEQ ID NO:121~SEQ ID NO:123、SEQ ID NO:125~SEQ ID NO:128、SEQ ID NO:130、SEQ ID NO:140~SEQ ID NO:142、SEQ ID NO:145、SEQ ID NO:150、SEQ ID NO:152~SEQ ID NO:160、SEQ ID NO:165~SEQ ID NO:168、SEQ ID NO:172、SEQ ID NO:178、SEQ IDNO:179、SEQ ID NO:184~SEQ ID NO:188、SEQ ID NO:195、SEQ ID NO:196、SEQ ID NO:199、SEQ ID NO:202、SEQ ID NO:203、SEQ ID NO:206~SEQ ID NO:209、SEQ ID NO:214、SEQ ID NO:219~SEQ ID NO:222、SEQ ID NO:224、SEQ ID NO:225、SEQ ID NO:229~SEQID NO:232、SEQ ID NO:236、SEQ ID NO:238、SEQ ID NO:241、SEQ ID NO:245、SEQ ID NO:247、SEQ ID NO:249~SEQ ID NO:251、SEQ ID NO:253、SEQ ID NO:254;
优选地,所述基因编辑系统中gRNA的核酸序列选自如下序列中的至少一条:SEQ IDNO:14、SEQ ID NO:17、SEQ ID NO:23、SEQ ID NO:24、SEQ ID NO:43、SEQ ID NO:48、SEQ IDNO:49、SEQ ID NO:57、SEQ ID NO:64~SEQ ID NO:69、SEQ ID NO:71、SEQ ID NO:72、SEQID NO:74~SEQ ID NO:77、SEQ ID NO:82~SEQ ID NO:89、SEQ ID NO:91~SEQ ID NO:94、SEQ ID NO:97~SEQ ID NO:100、SEQ ID NO:105、SEQ ID NO:107、SEQ ID NO:114、SEQ IDNO:115、SEQ ID NO:119、SEQ ID NO:121~SEQ ID NO:123、SEQ ID NO:125~SEQ ID NO:128、SEQ ID NO:130、SEQ ID NO:140~SEQ ID NO:142、SEQ ID NO:145、SEQ ID NO:150、SEQ ID NO:152~SEQ ID NO:160、SEQ ID NO:165~SEQ ID NO:168、SEQ ID NO:172、SEQID NO:178、SEQ ID NO:179、SEQ ID NO:184~SEQ ID NO:188、SEQ ID NO:195、SEQ ID NO:196、SEQ ID NO:199。
4.根据权利要求2或3所述的基因编辑系统,其特征在于:所述CRISPR/Cas基因编辑系统包含第一gRNA和第二gRNA的组合:其中
(1)用于修复Dystrophin基因51号外显子突变或缺失的第一gRNA的核酸序列选自SEQID NO:14、SEQ ID NO:17、SEQ ID NO:23或SEQ ID NO:24,第二gRNA的核酸序列选自SEQ IDNO:43、SEQ ID NO:48、SEQ ID NO:49、SEQ ID NO:57、SEQ ID NO:64~SEQ ID NO:69、SEQID NO:71、SEQ ID NO:72、SEQ ID NO:74~SEQ ID NO:77、SEQ ID NO:82~SEQ ID NO:89、SEQ ID NO:91~SEQ ID NO:94、SEQ ID NO:97~SEQ ID NO:100、SEQ ID NO:105、SEQ IDNO:107;
(2)用于修复Dystrophin基因50号外显子突变或缺失的第一gRNA的核酸序列选自SEQID NO:114、SEQ ID NO:115、SEQ ID NO:119、SEQ ID NO:121~SEQ ID NO:123、SEQ ID NO:125~SEQ ID NO:128、SEQ ID NO:130、SEQ ID NO:140、SEQ ID NO:141或SEQ ID NO:142,第二gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:145、SEQ ID NO:150、SEQ ID NO:152~SEQ ID NO:160、SEQ ID NO:165~SEQ ID NO:168、SEQ ID NO:172、SEQ ID NO:178、SEQ ID NO:179、SEQ ID NO:184~SEQ ID NO:188、SEQ ID NO:195、SEQ ID NO:196、SEQ ID NO:199;
(3)用于修复Dystrophin基因50号外显子或51号外显子突变或缺失的第一gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:17、SEQ ID NO:23或SEQ ID NO:24,第二gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:145、SEQ ID NO:150、SEQ ID NO:152~SEQ ID NO:160、SEQ ID NO:165~SEQ ID NO:168、SEQ ID NO:172、SEQ ID NO:178、SEQ ID NO:179、SEQ ID NO:184~SEQID NO:188、SEQ ID NO:195、SEQ ID NO:196、SEQ ID NO:199;
优选的,所述CRISPR/Cas基因编辑系统包含第一gRNA和第二gRNA的组合:其中
(1)用于修复Dystrophin基因51号外显子突变或缺失的第一gRNA的核酸序列选自SEQID NO:23,第二gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:43、SEQ ID NO:105或SEQ ID NO:107;
(2)用于修复Dystrophin基因50号外显子突变或缺失的第一gRNA的核酸序列选自SEQID NO:114、SEQ ID NO:115、SEQ ID NO:119、SEQ ID NO:121~SEQ ID NO:123、SEQ ID NO:125~SEQ ID NO:128、SEQ ID NO:130、SEQ ID NO:140、SEQ ID NO:141或SEQ ID NO:142,第二gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:152、SEQ ID NO:153或SEQ ID NO:167;
(3)用于修复Dystrophin基因50号外显子或51号外显子突变或缺失的第一gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:23,第二gRNA的核酸序列选自SEQ ID NO:152、SEQ ID NO:153或SEQID NO:167。
5.一种表达体系,其特征在于:所述表达体系可表达权利要求1~4任一项所述的基因编辑系统。
6.根据权利要求5所述的表达体系,其特征在于:所述表达体系的载体为病毒载体;优选的,所述病毒为腺相关病毒AAV或腺病毒Adv或杆状病毒(Baculovirus);进一步的,所述AAV选自AAV2.5、AAV6、AAV8或AAV9。
7.根据权利要求5或6所述的表达体系,其特征在于:所述表达体系包括gRNA序列表达系统和Cas9表达系统。
8.根据权利要求7表达体系,其特征在于:所述表达体系的载体为腺相关病毒AAV,所述Cas9为Sa.Cas9,表达Sa.Cas9的AAV和表达gRNA的AAV两种AAV的两者用量比为3:2~4:1。
9.根据权利要求5~8所述的表达系统,其特征在于:所述表达体系还插入有肌肉组织特异性启动子。
10.根据权利要求9所述的表达系统,其特征在于:所述肌肉组织特异性启动子的核酸序列如SEQ ID NO:447所示。
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