CN111699897A - 一种防控梨叶片异常脱落的方法 - Google Patents

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Abstract

本发明公开了一种防控梨叶片异常脱落的方法，即对梨树喷施外源赤霉素溶液就可有效防控梨叶片异常脱落。本发明研究发现，发生异常落叶树的叶柄离区中，有生理活性的GA3和GA4，以及赤霉素合成关键中间产物GA12含量均显著下降；喷施0.5～1.0mg/L赤霉素均可提高叶片保留率，而喷施1.0mg/L赤霉素后叶片保留的时间更长。喷施赤霉素30‑40d时，梨树叶片的保留率增加最为显著，在两年的重复实验中分别增加1023.08％和65.56％。适宜浓度的赤霉素处理可以提高抗氧化酶活性，降低活性氧含量，延缓落叶的发生，能够有效防控梨异常落叶。

Description

一种防控梨叶片异常脱落的方法
技术领域
本发明涉及一种防控梨异常落叶的方法，更具体的说涉及一种通过赤霉素处理延缓衰老，防止梨异常落叶发生的方法。
背景技术
梨是我国第三大果树，产量和栽培面积约占世界的70％，在国民经济中有重要的作用。但近些年，梨异常落叶问题较为严重，一直影响梨的产量和品质，使果农每年遭受着很大损失。梨异常落叶是指梨正常生长期内出现的叶片大量脱落现象，也称早期落叶。异常落叶会严重影响树体营养累积，造成第二年梨果产量和品质下降。在我国各产梨区均有不同程度的发生大量异常落叶现象，尤其以长江以南砂梨产区发生范围较广、危害较重。梨树花芽为混合芽，分化属夏秋分化型，花芽在8月已完成分化，具备开花能力。梨早期异常大量落叶后，若遇到水分、温度适宜，树体则打破休眠，部分花芽和叶芽萌发，出现二次开花和抽梢现象，导致树势减弱，严重影响梨的产量和品质。
植物激素在调节植物叶片脱落过程中起着重要作用，是脱落的重要信号之一。赤霉素是一类化合物的总称，目前已鉴定出100多种，其中GA12是赤霉素合成过程中重要的中间体，GA1，GA3，GA4等具有较强生物活性，在果树上的应用广泛，可诱导无核果实，打破休眠，延缓果实脱落等。另外，赤霉素在植物体中，可能作为活性氧的清除剂，可以促进抗氧化酶如CAT、SOD、POD等活性的提高，使组织细胞有较强的活性氧清除能力，减少活性氧在体内的积累，增强自身的防御能力，减轻对细胞的损害，以推迟植物细胞程序性死亡过程，延缓叶片脱落。
然而，赤霉素在梨落叶方面的研究较晚，目前还缺乏简单有效的防止梨异常落叶的方法。
发明内容
本发明的目的是为防控梨异常落叶的发生，提供了一种运用赤霉素处理简便防控梨异常落叶的方法，从而提高果实的产量和品质。
本发明的目的可以通过以下技术方案实现：
赤霉素在防控梨叶片异常脱落中的应用。
上述的应用，其在于对梨树枝条外源喷施赤霉素溶液。作为一种优选技术方案，所述赤霉素溶液的浓度为0.5～1.0mg/L；最优选为1.0mg/L。
一种防控梨叶片异常脱落的方法，对梨树枝条外源喷施赤霉素溶液。作为一种优选技术方案，所述赤霉素溶液的浓度为0.5～1.0mg/L；最优选为1.0mg/L。
一种筛选防控梨叶片异常脱落的方法，该方法包括以下步骤：
(1)测定梨叶柄离区中的赤霉素含量：取梨叶柄离区，液氮速冻，放置于-80℃超低温冰箱保存，用于测定叶柄离区中的赤霉素含量；
(2)外源喷施赤霉素与其他植物生长调节剂，观察赤霉素与其他植物生长调节剂对梨落叶情况的影响；
(3)外源喷施不同浓度赤霉素处理，测定叶柄离区的生理变化，确定最佳赤霉素处理浓度。
作为一种优选技术方案，步骤(1)中测定叶柄离区中的赤霉素含量的过程为：
选材：在梨正常生长期间，将采样地点的正常生长区与落叶严重区随机挑选3株果树，每株果树选取3支带有叶片的果枝整枝采下放于采集样品袋中，为了消除生理影响，选择生长相似的枝条带回实验室进行仔细彻底的清洗。
取样：使用洁净的刀片从枝条样本中手工解剖叶柄离区组织，其中包含离区细胞及邻近的细胞，置于液氮中，保存于-80℃冰箱。
测定：50mg的叶柄离区样品在液氮中研磨成粉末后，同时加入0.5mL提取液(甲醇/水，80/20，v/v)并在4℃下避光提取12h。离心(10,000g，20min，4℃)后，收集上清液，将所得到的粗提液经过HiCapt-C18/SAX固相萃取柱串联的装置，以除去色素和酯类杂质。HiCapt-C18/SAX串联的固相萃取小柱需先预处理，清洗(8mL水，8mL甲醇)与活化(8mL甲醇/水，80/20，v/v)。上样后，取下上端的HiCapt-C18固相萃取柱(1mL，50mg)，采用2mL甲醇/水(80/20，v/v)对SAX萃取小柱(3mL，200mg)进行清洗，再用3mL乙腈/甲酸(ACN/FA)(99/1，v/v)对SAX萃取小柱上保留的目标酸性植物激素进行解吸。解吸液在40℃下恒定氮气流吹干，并用100μL水(H2O)重新溶解。在所得到的100μL溶液中加入10μL甲酸(FA)，使得酸性植物激素呈分子状态。然后用乙醚进行萃取(2×1mL)。将2次萃取的有机相进行合并后在室温下氮气吹干，并重新溶解于100μL乙腈(ACN)中。在所得到的乙腈(ACN)溶液中加入10μL×20μmol/mL三乙胺(TEA)和10μL×20μmol/mL 3-溴代丙烯酰基三甲基溴化铵(BTA)，在室温下涡旋35min后氮气吹干，然后用200μL的H2O/ACN(90/10，v/v)重新溶解，以供随后的UPLC-MS/MS分析。
优选的，步骤(2)中所述赤霉素与其他植物生长调节剂的处理浓度为：赤霉素(GA3)0.5mg/L，1.0mg/L；乙烯利(ETH)0.04％，0.08％；脱落酸(ABA)0.3mg/L，1.0mg/L；生长素(IAA)0.3mg/L，0.6mg/L，以清水为对照。
优选的，步骤(2)中取材为取长势一致、同一品种(例如‘丰水’)的梨树，喷施时选择晴天上午，将植物生长调节剂在叶片正面与反面以及与叶柄连接处喷洒均匀。
优选的，步骤(2)处理方法为各浓度的试剂重复三株果树，每6～8天(优选为7天左右)喷施一次。处理前统计每个枝条的叶片数，以便之后进行叶片保留率的统计，每隔6～8天(优选7天左右)统计一次叶片数。叶片保留率的计算方法为：叶片保留率＝目前叶片数/最初叶片总数。
优选的，步骤(2)中0.5mg/L和1.0mg/L赤霉素处理均可提高叶片保留率，而1.0mg/L赤霉素处理效果更好。
优选的，步骤(3)中所述的喷施的赤霉素浓度为0.5mg/L和1.0mg/L。
优选的，步骤(3)处理方法为选取生长势一致的健壮枝条，枝条长度约40cm，放置于含清水的烧杯中，每4h进行赤霉素(0.5mg/L，1.0mg/L)处理，喷施清水为对照，共28h。同样将叶片正反面及与叶柄连接部位喷施均匀。处理完成6h后采集枝条叶柄离区置于-80℃保存，用于测定叶柄离区的生理变化，包括活性氧相关物质含量及抗氧化酶活的测定。
优选的，步骤(3)的测定的叶柄离区的生理指标为过氧化氢(H2O2)和超氧阴离子(OFR)含量以及过氧化氢酶(CAT)和超氧化物歧化酶(SOD)的活性。
过氧化氢(H2O2)含量的测定方法为分光光度法，测定原理是H2O2与硫酸钛生成黄色的过氧化钛复合物，在415nm有特征吸收。
超氧阴离子(OFR)含量的测定方法为分光光度法，测定原理是超氧阴离子与盐酸羟胺反应生成NO2 －，NO2 －在对氨基苯磺酸和α－萘胺的作用下，生成红色的偶氮化合物，在530nm处有特征吸收峰，根据ΔA值可以计算样品中·O2 －含量，反应式为NH2OH+2O2 －+H+→NO2 －+H2O2+H2O。
过氧化氢酶(CAT)活性的测定方法为分光光度法，测定原理是H2O2在240nm下有特征吸收峰，CAT能够分解H2O2，使反应溶液240nm下的吸光度随反应时间而下降，根据吸光度的变化率可计算出CAT活性。
超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定方法为分光光度法，测定原理是通过黄嘌呤及黄嘌呤氧化酶反应系统产生超氧阴离子(·O2 －)，·O2 －可还原氮蓝四唑生成蓝色甲臜，后者在560nm处有吸收；SOD可清除·O2 －，从而抑制了甲臜的形成；反应液蓝色越深，说明SOD活性愈低，反之活性越高。
步骤(3)中0.5mg/L和1.0mg/L赤霉素处理使SOD和CAT活性增加，H2O2和OFR含量降低，1.0mg/L赤霉素处理效果更好。
本发明所述的室温为25±5℃。
本发明的优点如下：
本发明通过检测梨树叶柄离区中赤霉素的含量，连续两年喷施赤霉素观察统计叶片保留率以及测定相关生理指标，获得了一种处理简单方便、防治效率高、容易操作的一种有效防控梨异常落叶的方法，为防治砂梨异常落叶提供理论依据和实践经验，为其他果树和作物防止植株衰老和脱落提供参考，应用前景非常广阔。
附图说明
图1为正常组和落叶组中赤霉素含量变化，相比正常组，落叶组赤霉素合成途径中关键中间体GA12含量显著下调，下降了55.38％。GA1在落叶组样品中含量低于检测限，未能检出。具有生物活性的GA3和GA4含量也有所减少，分别降低了83.78％和43.59％，且GA3含量与对照组相比达显著水平。**表示α＝0.01水平上差异显著。
图2为赤霉素及其他植物生长调节剂对落叶的影响，GA3表示赤霉素，ETH表示乙烯利，ABA表示脱落酸，IAA表示生长素。连续两年喷施激素表明外源喷施赤霉素可延迟叶片脱落进程，1.0mg/L赤霉素处理与对照相比呈显著差异，与对照相比，喷施赤霉素30-40d时，梨树叶片的保留率明显增加。
图3为赤霉素处理对超氧化物歧化酶和过氧化氢酶活性的影响，CAT表示过氧化氢酶，SOD表示超氧化物歧化酶。随着喷施赤霉素浓度的增加，SOD及CAT活性也增加。0.5mg/L赤霉素处理对SOD和CAT活性影响较小，而用1.0mg/L赤霉素处理后，SOD与CAT活性均显著高于对照组，分别提高45.96％和119.41％。不同字母表示处理间在α＝0.05水平上差异显著。
图4为赤霉素处理对过氧化氢和超氧阴离子含量的影响，H2O2表示过氧化氢，超氧阴离子表示OFR含量通过赤霉素处理后，观察到叶柄离层中，随着赤霉素浓度的增加H2O2和OFR含量降低的越多。
具体实施方式
下面结合具体实施例，进一步阐明本发明。
(1)测定叶柄离区中的赤霉素含量：
选材：在梨正常生长期内，将采样地点的正常生长区与落叶严重区随机挑选3株果树，每株果树选取3支带有叶片的果枝整枝采下放于采集样品袋中，为了消除生理影响，选择生长相似的枝条带回实验室进行仔细彻底的清洗。
取样：使用洁净的刀片从枝条样本中手工解剖叶柄离区组织，其中包含离区细胞及邻近的细胞，置于液氮中，保存于-80℃冰箱。
测定：50mg的叶柄离区样品在液氮中研磨成粉末后，同时加入0.5mL提取液(甲醇/水，80/20，v/v)并在4℃下避光提取12h。离心(10,000g，20min，4℃)后，收集上清液，将所得到的粗提液经过HiCapt-C18/SAX固相萃取柱串联的装置，以除去色素和酯类杂质。HiCapt-C18/SAX串联的固相萃取小柱需先预处理，清洗(8mL水，8mL甲醇)与活化(8mL甲醇/水，80/20，v/v)。上样后，取下上端的HiCapt-C18固相萃取柱(1mL，50mg)，采用2mL甲醇/水(80/20，v/v)对SAX萃取小柱(3mL，200mg)进行清洗，再用3mL乙腈/甲酸(ACN/FA)(99/1，v/v)对SAX萃取小柱上保留的目标酸性植物激素进行解吸。解吸液在40℃下恒定氮气流吹干，并用100μL水(H2O)重新溶解。在所得到的100μL溶液中加入10μL FA，使得酸性植物激素呈分子状态。然后用乙醚进行萃取(2×1mL)。将2次萃取的有机相进行合并后在室温下氮气吹干，并重新溶解于100μL ACN中。在所得到的ACN溶液中加入10μL×20μmol/mL三乙胺(TEA)和10μL×20μmol/mL 3-溴代丙烯酰基三甲基溴化铵(BTA)，在室温下涡旋35min后氮气吹干，然后用200μL的H2O/ACN(90/10,v/v)重新溶解，以供随后的UPLC-MS/MS分析。
结果表明(图1)相比正常组，落叶组赤霉素合成途径中关键中间体GA12含量显著下调，下降了55.38％。GA1在落叶组样品中含量低于检测限，未能检出。具有生物活性的GA3和GA4含量也有所减少，分别降低了83.78％和43.59％，且GA3含量与对照组相比达显著水平。
(2)外源喷施赤霉素与其他植物生长调节剂
选材：为取长势一致、同一品种(‘丰水’)的梨树，喷施时选择晴天上午，将赤霉素和其他植物生长调节剂在叶片正面与反面以及与叶柄连接处喷洒均匀。
所述赤霉素与其他植物生长调节剂的处理浓度为：赤霉素(GA3)0.5mg/L，1.0mg/L；乙烯利(ETH)0.04％，0.08％；脱落酸(ABA)0.3mg/L，1.0mg/L；生长素(IAA)0.3mg/L，0.6mg/L，以清水为对照。
处理方法：各浓度的试剂重复三株果树，每7天左右喷施一次。处理前统计每个枝条的叶片数，以便之后进行叶片保留率的统计，每隔7天左右统计一次叶片数。叶片保留率＝目前叶片数/最初叶片总数。
观察赤霉素与其他植物生长调节剂对梨落叶情况的影响，结果如图2所示，连续两年喷施激素表明外源喷施赤霉素可延迟叶片脱落进程，0.5mg/L和1.0mg/L赤霉素处理均可提高叶片保留率，1.0mg/L赤霉素处理效果后叶片保留的时间更长。与对照相比，喷施赤霉素30-40d时，梨树叶片的保留率增加最为明显，两年分别增加1023.08％和65.56％。
(3)外源喷施不同浓度赤霉素处理，检测叶柄离区的生理变化。
进一步确定哪一种赤霉素浓度处理效果更好，选取生长势一致的健壮枝条，枝条长度约40cm，放置于含清水的烧杯中，每4h进行赤霉素(0.5mg/L，1.0mg/L)处理，喷施清水为对照，共28h。同样将叶片正反面及与叶柄连接部位喷施均匀。处理完成6h后采集枝条叶柄离区置于-80℃保存。测定的叶柄离区的生理指标为过氧化氢(H2O2)和超氧阴离子(OFR)含量以及过氧化氢酶(CAT)和超氧化物歧化酶(SOD)的活性。
结果显示，0.5mg/L和1.0mg/L赤霉素处理使SOD和CAT活性增加，H2O2和OFR含量降低，1.0mg/L赤霉素处理效果更好。1.0mg/L赤霉素处理后，SOD与CAT活性均显著高于对照组，分别提高45.96％和119.41％，H2O2含量降低10.28％，OFR含量降低28.94％(图3和图4)。

Claims (10)

1.赤霉素在防控梨叶片异常脱落中的应用。
2.根据权利要求1所述的应用，其特征在于，对梨树枝条外源喷施赤霉素溶液。
3.根据权利要求2所述的应用，其特征在于，所述赤霉素溶液的浓度为0.5～1.0mg/L；优选为1.0mg/L。
4.一种防控梨叶片异常脱落的方法，其特征在于，对梨树枝条外源喷施赤霉素溶液。
5.根据权利要求4所述的应用，其特征在于，所述赤霉素溶液的浓度为0.5～1.0mg/L；优选为1.0mg/L。
6.一种筛选防控梨叶片异常脱落的方法，其特征在于，该方法包括以下步骤：
(1)测定梨叶柄离区中的赤霉素含量：取梨叶柄离区，液氮速冻，放置于-80℃超低温冰箱保存，用于测定叶柄离区中的赤霉素含量；
(2)外源喷施赤霉素与其他植物生长调节剂，观察赤霉素与其他植物生长调节剂对梨落叶情况的影响；
(3)外源喷施不同浓度赤霉素处理，测定叶柄离区的生理变化，确定最佳赤霉素处理浓度。
7.根据权利要求1所述的筛选防控梨叶片异常脱落的方法，其特征在于，步骤(1)中测定叶柄离区中的赤霉素含量的过程为：
选材：在采样地点的正常生长区与早期落叶严重区随机挑选3株果树，每株果树选取3支带有叶片的果枝整枝采下放于采集样品袋中，为了消除生理影响，选择生长相似的枝条带回实验室进行仔细彻底的清洗；
取样：使用洁净的刀片从枝条样本中手工解剖叶柄离区组织，其中包含离区细胞及邻近的细胞，置于液氮中，保存于-80℃冰箱；
测定：50mg的叶柄离区样品在液氮中研磨成粉末后，同时加入0.5mL体积比为80:20的甲醇/水提取液并在4℃下避光提取12h，10,000g，20min，4℃离心后，收集上清液，将所得到的粗提液经过HiCapt-C18/SAX固相萃取柱串联的装置，以除去色素和酯类杂质，HiCapt-C18/SAX串联的固相萃取小柱需先预处理，清洗与活化；上样后，取下上端的HiCapt-C18固相萃取柱，采用2mL体积比为80:20的甲醇/水对SAX萃取小柱进行清洗，再用3mL体积比为99:1的乙腈/甲酸对SAX萃取小柱上保留的目标酸性植物激素进行解吸；解吸液在40℃下恒定氮气流吹干，并用100μL水重新溶解；在所得到的100μL溶液中加入10μL甲酸，使得酸性植物激素呈分子状态；然后用乙醚进行萃取；将2次萃取的有机相进行合并后在室温下氮气吹干，并重新溶解于100μL乙腈中；在所得到的乙腈溶液中加入10μL×20μmol/mL三乙胺和10μL×20μmol/mL 3-溴代丙烯酰基三甲基溴化铵，在室温下涡旋35min后氮气吹干，然后用200μL体积比为90：10的水/乙腈重新溶解，以供随后的UPLC-MS/MS分析。
8.根据权利要求1所述的防控梨早期落叶的方法，其特征在于，步骤(2)中所述赤霉素与其他植物生长调节剂的处理浓度为：赤霉素0.5mg/L和1.0mg/L；乙烯利0.04％和0.08％；脱落酸0.3mg/L和1.0mg/L；生长素0.3mg/L和0.6mg/L，以清水为对照。
9.根据权利要求1所述的筛选防控梨叶片异常脱落的方法，其特征在于，步骤(2)中所述的处理方法为选取长势一致、同一品种的梨树做好标记，喷施时选择晴天上午，将植物生长调节剂在叶片正面与反面以及与叶柄连接处喷洒均匀；各浓度的试剂重复三次，每6～8天喷施一次。处理前统计每个枝条的叶片数，以便之后进行叶片保留率的统计，每隔6～8天统计一次叶片数；叶片保留率＝目前叶片数/最初叶片总数。
10.根据权利要求1所述的筛选防控梨叶片异常脱落的方法，其特征在于，步骤(3)中喷施的赤霉素浓度为0.5mg/L和1.0mg/L，处理方法为选取生长势一致的健壮枝条，放置于含清水的烧杯中，每4h进行赤霉素处理，喷施清水为对照，共28h；处理完成后采集枝条叶柄离区置于-80℃保存，用于测定叶柄离区的生理变化，包括活性氧相关物质含量及抗氧化酶活的测定。
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Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104402595A (zh) * 2014-11-06 2015-03-11 江苏省农业科学院 预防梨树早期落叶的液体肥料及其制备方法和应用
CN105830842A (zh) * 2016-03-31 2016-08-10 新疆农业大学 一种采用外源脱落酸处理提高库尔勒香梨抗寒性的方法
CN106258724A (zh) * 2016-08-05 2017-01-04 湖北省农业科学院果树茶叶研究所 一种提高梨果实商品性的方法
CN106396889A (zh) * 2016-08-29 2017-02-15 安徽省司尔特肥业股份有限公司 一种预防梨树早期落叶水溶肥

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104402595A (zh) * 2014-11-06 2015-03-11 江苏省农业科学院 预防梨树早期落叶的液体肥料及其制备方法和应用
CN105830842A (zh) * 2016-03-31 2016-08-10 新疆农业大学 一种采用外源脱落酸处理提高库尔勒香梨抗寒性的方法
CN106258724A (zh) * 2016-08-05 2017-01-04 湖北省农业科学院果树茶叶研究所 一种提高梨果实商品性的方法
CN106396889A (zh) * 2016-08-29 2017-02-15 安徽省司尔特肥业股份有限公司 一种预防梨树早期落叶水溶肥

Non-Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
于利国: "果树防寒综合技术", 《河北果树》 *
段志坤: "赤霉素在果树生产上的应用及其注意事项", 《栽培技术》 *
沈兆敏: "《中国柑桔技术大全》", 30 September 1992 *
王一静: "不同外源激素处理对库尔勒香梨抗寒生理变化的研究", 《中国优秀硕士学位论文全文数据库（电子期刊）农业科技辑》 *
王中原: "赤霉素，2,4-D对金水一号梨推迟物候期、提高座果率的试验", 《落叶果树》 *
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