CN111512819A - 一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法 - Google Patents

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CN111512819A CN202010372928.8A CN202010372928A CN111512819A CN 111512819 A CN111512819 A CN 111512819A CN 202010372928 A CN202010372928 A CN 202010372928A CN 111512819 A CN111512819 A CN 111512819A
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Abstract

本发明公开了一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，涉及红甜菜品质调控技术领域；为了利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分；具体包括LED光源；一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法包括如下步骤：将红甜菜种子播于海绵块3cm×3cm×3cm中，黑暗处理24h后自然光培养；待两叶一心时，选取长势一致的健壮幼苗于水培槽中定植待处理；利用LED光源调制蓝光B与紫外光UV‑A的比例。本发明蓝紫光耦合对红甜菜的生物量、可溶性糖、硝酸盐和维生素C无显著性影响；T5处理的类黄酮含量最大；T10处理的游离氨基酸含量最高；在T15时，红甜菜的叶绿素含量和花色苷含量最高。

Description

一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法
技术领域
本发明涉及红甜菜品质调控技术领域，尤其涉及一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法。
背景技术
光是影响植物生长发育最重要的环境因子之一，其对植物的光合作用、营养物质代谢等过程都有着显著的影响，LED光源与金卤灯、荧光灯和高压钠灯等光源相比因体积小、能耗低、寿命长、半波峰窄等优势，蓝光作为驱动植物光合作用的主要光谱之一，对植物株型调控、蛋白质代谢、植物细胞的氧化应激效应等生理生化反应影响效果显著，植物照射紫外光能够产生较多的自由基，进而刺激植物启动应急保护机制产生清除自由基的防御化合物，如：类胡萝卜素、维生素和酚类化合物等，红甜菜是藜科甜菜属的一个变种，又称甜菜头、火焰菜和食用甜菜等，红甜菜是一种两年生草本植物，叶子也是一种蔬菜，茎有1-2米高，叶长5-20厘米，叶形多变异，有长圆形，心脏形或舌形，叶面有皱纹或平滑，含有丰富的类胡萝卜素、总酚、类黄酮和花色苷等抗氧化活性物质，日常生活中通过补光来提高蔬菜的生长、产量和品质已经有许多报道，主要在单一蓝光或者是紫外光对植物生长代谢产物含量的研究，而蓝光耦合紫外光UV-A的光质配比对蔬菜营养品质的调控方面的研究鲜见报道，通过间断补光尤其是采收前通过蓝紫光间断补光来提升蔬菜的品质的技术尚未见报道。
经检索，中国专利申请号为CN201510374109.6的专利，公开了一种基于LED脉冲光增加蔬果营养成分的方法，采用光谱控制器调控LED发光体激发光波的波长，以及控制LED发光体闪烁的频率，所述LED发光体由所述光谱控制器调控的发光顺序为：红光、橙光、蓝光、紫光；远红外线；红光、橙光；蓝光、紫光；红光、橙光、蓝光、紫光；在一个扫描周期后全部光熄灭，再重复上述脉冲扫描。上述专利中的基于LED脉冲光增加蔬果营养成分的方法存在以下不足：采收前分别采用各颜色分别间断补光，未采用耦合技术，且是否增加蔬菜的品质并未有详细表明。
发明内容
本发明的目的是为了解决现有技术中存在的缺点，而提出的一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法。
为了实现上述目的，本发明采用了如下技术方案：
一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，包括LED光源，所述LED光源包括电路板、LED灯珠、驱动电源和定时器，所述电路板将0.2W的灯珠作0.15W降功率使用，并将3.0V的电压降到2.8V；所述LED灯珠设置于电路板上，LED灯珠包括至少一颗紫外光和一颗蓝光；所述驱动电源用于驱动LED光源；所述定时器用于定时开关。
优选地：包括如下步骤：
S1：将红甜菜种子播于海绵块3cm×3cm×3cm中，黑暗处理24h后自然光培养；
S2：待两叶一心时，选取长势一致的健壮幼苗于水培槽80cm×80cm×80cm中定植待处理；
S3：利用LED光源调制蓝光B与紫外光UV-A的比例，紫外光与蓝光B的光强比为0:50，总光强为50μmol·m2·s-1，光周期12h/d，环境温度25℃，湿度60％～80％，设3次重复于1/2Hoagland's营养液中栽培；
S4：根据S3中蓝紫光耦合光照处理7天后进行取样，随机选取5株红甜菜后立即进行测试，测试项目包括红甜菜的生物量、光合色素、可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C、游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响。
优选地：所述S3中LED光源调制的蓝光B发射波长为450nm。
优选地：所述S3中LED光源调制的紫外光UV-A发射波长为400nm。
优选地：所述S4中测试红甜菜的生物量的影响，包括如下步骤：
S11:用千分之一天平称量红甜菜的鲜重，得到地上部36.1±1.59a，地下部3.22±0.24a，全株39.32±1.81a；
S12:将植株放进105℃烘箱内杀青40min后，调节温度至75℃烘干至恒重；
S13:用万分之一天平称量其干重，得到地上部1.84±0.08a，地下部0.27±0.02a，全株2.11±0.09a。
优选地：所述S4中测试红甜菜的光合色素的影响，包括如下步骤：
S21:用无水乙醇提取光合色素；
S22:利用分光光度计测定吸光度，计算光合色素含量，得到叶绿素a0.71±0.007c,叶绿素b0.22±0.002b,总叶绿素0.93±0.008c,类胡萝卜素0.22±0.001a。
优选地：所述S4中测试红甜菜的可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C的影响，包括如下步骤：
S31：蒽酮比色法测定可溶性糖含量，得到1.4mg·g-1；
S32：考马斯亮蓝法测定可溶性蛋白含量,得到5.0mg·g-1；
S33：分光度光度法测定硝酸盐含量,得到260.0mg·g-1；
S34：钼蓝比色法测定维生素C含量，得到0.25mg·g-1。
优选地：所述S4中测试红甜菜的游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响，包括如下步骤：
S41：水合茚三酮法测定游离氨基酸含量，得到9.0mg·100g-1；
S42：参照Pirie等方法用1％盐酸-甲醇提取法测定总酚相对含量，得到3.35u·g-1；类黄酮相对含量，得到130u·g-1；花色苷相对含量，得到57u·g-1。
本发明的结果表明：蓝紫光对红甜菜的生物量、可溶性糖、硝酸盐和维生素C无显著性影响；T5处理的类黄酮含量最大，较对照增加了14.99％；T10处理的游离氨基酸含量最高，较对照增加了58.19％，在T15时，红甜菜的叶绿素含量和花色苷含量最高，较对照分别增加了33.33％和17.34％，因此，T15处理可以作为提高红甜菜色素的光照方案。
附图说明
图1为本发明提出的一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法的生物量的影响结构示意图；
图2为本发明提出的一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法的光合色素的影响结构示意图；
图3为本发明提出的一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法的可溶性糖含量、可溶性蛋白含量、硝酸盐含量、维生素C含量的影响结构示意图；
图4为本发明提出的一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法的游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响结构示意图。
具体实施方式
下面结合具体实施方式对本专利的技术方案作进一步详细地说明。
下面详细描述本专利的实施例，所述实施例的示例在附图中示出，其中自始至终相同或类似的标号表示相同或类似的元件或具有相同或类似功能的元件。下面通过参考附图描述的实施例是示例性的，仅用于解释本专利，而不能理解为对本专利的限制。
在本专利的描述中，需要理解的是，术语“中心”、“上”、“下”、“前”、“后”、“左”、“右”、“竖直”、“水平”、“顶”、“底”、“内”、“外”等指示的方位或位置关系为基于附图所示的方位或位置关系，仅是为了便于描述本专利和简化描述，而不是指示或暗示所指的装置或元件必须具有特定的方位、以特定的方位构造和操作，因此不能理解为对本专利的限制。
在本专利的描述中，需要说明的是，除非另有明确的规定和限定，术语“安装”、“相连”、“连接”、“设置”应做广义理解，例如，可以是固定相连、设置，也可以是可拆卸连接、设置，或一体地连接、设置。对于本领域的普通技术人员而言，可以根据具体情况理解上述术语在本专利中的具体含义。
实施例1：
一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，如图1-4所示，包括LED光源，所述LED光源包括电路板、LED灯珠、驱动电源和定时器，所述电路板将0.2W的灯珠作0.15W降功率使用，并将3.0V的电压降到2.8V，提高发光效率和灯珠寿命；所述LED灯珠设置于电路板上，LED灯珠包括至少一颗紫外光和一颗蓝光；所述驱动电源用于驱动LED光源；所述定时器用于定时开关。
一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，包括如下步骤：
S1：将红甜菜种子播于海绵块3cm×3cm×3cm中，黑暗处理24h后自然光培养；
S2：待两叶一心时，选取长势一致的健壮幼苗于水培槽80cm×80cm×80cm中定植待处理；
S3：利用LED光源调制蓝光B与紫外光UV-A的比例，紫外光与蓝光B的光强比为0:50，总光强为50μmol·m2·s-1，光周期12h/d，环境温度25℃，湿度60％～80％，设3次重复于1/2Hoagland's营养液中栽培；
S4：根据S3中蓝紫光耦合光照处理7天后进行取样，随机选取5株红甜菜后立即进行测试，测试项目包括红甜菜的生物量、光合色素、可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C、游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响。
所述S3中LED光源调制的蓝光B发射波长为450nm；
所述S3中LED光源调制的紫外光UV-A发射波长为400nm；
所述S4中测试红甜菜的生物量的影响，包括如下步骤：
S11:用千分之一天平称量红甜菜的鲜重，得到地上部36.1±1.59a，地下部3.22±0.24a，全株39.32±1.81a；
S12:将植株放进105℃烘箱内杀青40min后，调节温度至75℃烘干至恒重；
S13:用万分之一天平称量其干重，得到地上部1.84±0.08a，地下部0.27±0.02a，全株2.11±0.09a。
所述S4中测试红甜菜的光合色素的影响，包括如下步骤：
S21:用无水乙醇提取光合色素；
S22:利用分光光度计测定吸光度，计算光合色素含量，得到叶绿素a0.71±0.007c,叶绿素b0.22±0.002b,总叶绿素0.93±0.008c,类胡萝卜素0.22±0.001a。
所述S4中测试红甜菜的可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C的影响，包括如下步骤：
S31：蒽酮比色法测定可溶性糖含量，得到1.4mg·g-1；
S32：考马斯亮蓝法测定可溶性蛋白含量,得到5.0mg·g-1；
S33：分光度光度法测定硝酸盐含量,得到260.0mg·g-1；
S34：钼蓝比色法测定维生素C含量，得到0.25mg·g-1。
所述S4中测试红甜菜的游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响，包括如下步骤：
S41：水合茚三酮法测定游离氨基酸含量，得到9.0mg·100g-1；
S42：参照Pirie等方法用1％盐酸-甲醇提取法测定总酚相对含量，得到3.35u·g-1；类黄酮相对含量，得到130u·g-1；花色苷相对含量，得到57u·g-1。
实施例2：
一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，如图1-4所示，包括LED光源，所述LED光源包括电路板、LED灯珠、驱动电源和定时器，所述电路板将0.2W的灯珠作0.15W降功率使用，并将3.0V的电压降到2.8V，提高发光效率和灯珠寿命；所述LED灯珠设置于电路板上，LED灯珠包括至少一颗紫外光和一颗蓝光；所述驱动电源用于驱动LED光源；所述定时器用于定时开关。
一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，包括如下步骤：
S1：将红甜菜种子播于海绵块3cm×3cm×3cm中，黑暗处理24h后自然光培养；
S2：待两叶一心时，选取长势一致的健壮幼苗于水培槽80cm×80cm×80cm中定植待处理；
S3：利用LED光源调制蓝光B与紫外光UV-A的比例，紫外光与蓝光B的光强比为5:45，总光强为50μmol·m2·s-1，光周期12h/d，环境温度25℃，湿度60％～80％，设3次重复于1/2Hoagland's营养液中栽培；
S4：根据S3中蓝紫光耦合光照处理7天后进行取样，随机选取5株红甜菜后立即进行测试，测试项目包括红甜菜的生物量、光合色素、可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C、游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响。
所述S3中LED光源调制的蓝光B发射波长为450nm；
所述S3中LED光源调制的紫外光UV-A发射波长为400nm；
所述S4中测试红甜菜的生物量的影响，包括如下步骤：
S11:用千分之一天平称量红甜菜的鲜重，得到地上部36.76±1.83a，地下部3.05±0.33a，全株39.81±2.13a；
S12:将植株放进105℃烘箱内杀青40min后，调节温度至75℃烘干至恒重；
S13:用万分之一天平称量其干重，得到地上部1.84±0.11a，地下部0.26±0.03a，全株2.10±0.13a。
所述S4中测试红甜菜的光合色素的影响，包括如下步骤：
S21:用无水乙醇提取光合色素；
S22:利用分光光度计测定吸光度，计算光合色素含量，得到叶绿素a0.72±0.025c,叶绿素b0.23±0.003b,总叶绿素0.94±0.023c,类胡萝卜素0.18±0.002ab。
所述S4中测试红甜菜的可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C的影响，包括如下步骤：
S31：蒽酮比色法测定可溶性糖含量，得到1.9mg·g-1；
S32：考马斯亮蓝法测定可溶性蛋白含量,得到4.8mg·g-1；
S33：分光度光度法测定硝酸盐含量,得到255.0mg·g-1；
S34：钼蓝比色法测定维生素C含量，得到0.275mg·g-1。
所述S4中测试红甜菜的游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响，包括如下步骤：
S41：水合茚三酮法测定游离氨基酸含量，得到12.0mg·100g-1；
S42：参照Pirie等方法用1％盐酸-甲醇提取法测定总酚相对含量，得到2.8u·g-1；类黄酮相对含量，得到150u·g-1；花色苷相对含量，得到61u·g-1。
实施例3：
一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，如图1-4所示，包括LED光源，所述LED光源包括电路板、LED灯珠、驱动电源和定时器，所述电路板将0.2W的灯珠作0.15W降功率使用，并将3.0V的电压降到2.8V，提高发光效率和灯珠寿命；所述LED灯珠设置于电路板上，LED灯珠包括至少一颗紫外光和一颗蓝光；所述驱动电源用于驱动LED光源；所述定时器用于定时开关。
一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，包括如下步骤：
S1：将红甜菜种子播于海绵块3cm×3cm×3cm中，黑暗处理24h后自然光培养；
S2：待两叶一心时，选取长势一致的健壮幼苗于水培槽80cm×80cm×80cm中定植待处理；
S3：利用LED光源调制蓝光B与紫外光UV-A的比例，紫外光与蓝光B的光强比为10:40，总光强为50μmol·m2·s-1，光周期12h/d，环境温度25℃，湿度60％～80％，设3次重复于1/2Hoagland's营养液中栽培；
S4：根据S3中蓝紫光耦合光照处理7天后进行取样，随机选取5株红甜菜后立即进行测试，测试项目包括红甜菜的生物量、光合色素、可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C、游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响。
所述S3中LED光源调制的蓝光B发射波长为450nm；
所述S3中LED光源调制的紫外光UV-A发射波长为400nm；
所述S4中测试红甜菜的生物量的影响，包括如下步骤：
S11:用千分之一天平称量红甜菜的鲜重，得到地上部37.82±4.48a，地下部3.46±0.49a，全株41.28±4.96a；
S12:将植株放进105℃烘箱内杀青40min后，调节温度至75℃烘干至恒重；
S13:用万分之一天平称量其干重，得到地上部1.90±0.21a，地下部0.27±0.04a，全株2.16±0.25a。
所述S4中测试红甜菜的光合色素的影响，包括如下步骤：
S21:用无水乙醇提取光合色素；
S22:利用分光光度计测定吸光度，计算光合色素含量，得到叶绿素a0.81±0.035b,叶绿素b0.24±0.015b,总叶绿素1.06±0.050b,类胡萝卜素0.17±0.002ab。
所述S4中测试红甜菜的可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C的影响，包括如下步骤：
S31：蒽酮比色法测定可溶性糖含量，得到1.5mg·g-1；
S32：考马斯亮蓝法测定可溶性蛋白含量,得到4.05mg·g-1；
S33：分光度光度法测定硝酸盐含量,得到250.0mg·g-1；
S34：钼蓝比色法测定维生素C含量，得到0.24mg·g-1。
所述S4中测试红甜菜的游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响，包括如下步骤：
S41：水合茚三酮法测定游离氨基酸含量，得到14.0mg·100g-1；
S42：参照Pirie等方法用1％盐酸-甲醇提取法测定总酚相对含量，得到1.25u·g-1；类黄酮相对含量，得到120u·g-1；花色苷相对含量，得到63u·g-1。
实施例4：
一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，如图1-4所示，包括LED光源，所述LED光源包括电路板、LED灯珠、驱动电源和定时器，所述电路板将0.2W的灯珠作0.15W降功率使用，并将3.0V的电压降到2.8V，提高发光效率和灯珠寿命；所述LED灯珠设置于电路板上，LED灯珠包括至少一颗紫外光和一颗蓝光；所述驱动电源用于驱动LED光源；所述定时器用于定时开关。
一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，包括如下步骤：
S1：将红甜菜种子播于海绵块3cm×3cm×3cm中，黑暗处理24h后自然光培养；
S2：待两叶一心时，选取长势一致的健壮幼苗于水培槽80cm×80cm×80cm中定植待处理；
S3：利用LED光源调制蓝光B与紫外光UV-A的比例，紫外光与蓝光B的光强比为15:35，总光强为50μmol·m2·s-1，光周期12h/d，环境温度25℃，湿度60％～80％，设3次重复于1/2Hoagland's营养液中栽培；
S4：根据S3中蓝紫光耦合光照处理7天后进行取样，随机选取5株红甜菜后立即进行测试，测试项目包括红甜菜的生物量、光合色素、可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C、游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响。
所述S3中LED光源调制的蓝光B发射波长为450nm；
所述S3中LED光源调制的紫外光UV-A发射波长为400nm；
所述S4中测试红甜菜的生物量的影响，包括如下步骤：
S11:用千分之一天平称量红甜菜的鲜重，得到地上部36.54±14.54a，地下部3.48±0.48a，全株40.02±5.02a；
S12:将植株放进105℃烘箱内杀青40min后，调节温度至75℃烘干至恒重；
S13:用万分之一天平称量其干重，得到地上部1.88±0.21a，地下部0.27±0.03a，全株2.15±0.24a。
所述S4中测试红甜菜的光合色素的影响，包括如下步骤：
S21:用无水乙醇提取光合色素；
S22:利用分光光度计测定吸光度，计算光合色素含量，得到叶绿素a0.96±0.020a,叶绿素b0.29±0.007a,总叶绿素1.24±0.027a,类胡萝卜素0.13±0.003b。
所述S4中测试红甜菜的可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C的影响，包括如下步骤：
S31：蒽酮比色法测定可溶性糖含量，得到1.7mg·g-1；
S32：考马斯亮蓝法测定可溶性蛋白含量,得到4.0mg·g-1；
S33：分光度光度法测定硝酸盐含量,得到275.0mg·g-1；
S34：钼蓝比色法测定维生素C含量，得到0.225mg·g-1。
所述S4中测试红甜菜的游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响，包括如下步骤：
S41：水合茚三酮法测定游离氨基酸含量，得到9.3mg·100g-1；
S42：参照Pirie等方法用1％盐酸-甲醇提取法测定总酚相对含量，得到1.8u·g-1；类黄酮相对含量，得到122u·g-1；花色苷相对含量，得到66u·g-1。
实施例5：
一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，如图1-4所示，包括LED光源，所述LED光源包括电路板、LED灯珠、驱动电源和定时器，所述电路板将0.2W的灯珠作0.15W降功率使用，并将3.0V的电压降到2.8V，提高发光效率和灯珠寿命；所述LED灯珠设置于电路板上，LED灯珠包括至少一颗紫外光和一颗蓝光；所述驱动电源用于驱动LED光源；所述定时器用于定时开关。
一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，包括如下步骤：
S1：将红甜菜种子播于海绵块3cm×3cm×3cm中，黑暗处理24h后自然光培养；
S2：待两叶一心时，选取长势一致的健壮幼苗于水培槽80cm×80cm×80cm中定植待处理；
S3：利用LED光源调制蓝光B与紫外光UV-A的比例，紫外光与蓝光B的光强比为20:30，总光强为50μmol·m2·s-1，光周期12h/d，环境温度25℃，湿度60％～80％，设3次重复于1/2Hoagland's营养液中栽培；
S4：根据S3中蓝紫光耦合光照处理7天后进行取样，随机选取5株红甜菜后立即进行测试，测试项目包括红甜菜的生物量、光合色素、可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C、游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响。
所述S3中LED光源调制的蓝光B发射波长为450nm；
所述S3中LED光源调制的紫外光UV-A发射波长为400nm；
所述S4中测试红甜菜的生物量的影响，包括如下步骤：
S11:用千分之一天平称量红甜菜的鲜重，得到地上部34.22±4.88a，地下部3.08±0.50a，全株37.31±5.37a；
S12:将植株放进105℃烘箱内杀青40min后，调节温度至75℃烘干至恒重；
S13:用万分之一天平称量其干重，得到地上部1.73±0.23a，地下部0.26±0.04a，全株1.99±0.27a。
所述S4中测试红甜菜的光合色素的影响，包括如下步骤：
S21:用无水乙醇提取光合色素；
S22:利用分光光度计测定吸光度，计算光合色素含量，得到叶绿素a0.90±0.000a,叶绿素b0.27±0.002a,总叶绿素1.18±0.002a,类胡萝卜素0.13±0.003ab。
所述S4中测试红甜菜的可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C的影响，包括如下步骤：
S31：蒽酮比色法测定可溶性糖含量，得到1.6mg·g-1；
S32：考马斯亮蓝法测定可溶性蛋白含量,得到3.4mg·g-1；
S33：分光度光度法测定硝酸盐含量,得到260.0mg·g-1；
S34：钼蓝比色法测定维生素C含量，得到0.23mg·g-1。
所述S4中测试红甜菜的游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响，包括如下步骤：
S41：水合茚三酮法测定游离氨基酸含量，得到8.5mg·100g-1；
S42：参照Pirie等方法用1％盐酸-甲醇提取法测定总酚相对含量，得到2.75u·g-1；类黄酮相对含量，得到145u·g-1；花色苷相对含量，得到55u·g-1。
结果与分析，如图1-4所示以上五组实施例，不同蓝紫光比例处理对红甜菜的生物量和生长如形态、颜色无显著性变化，不同蓝紫光比例对红甜菜的光合色素含量影响较显著，红甜菜的叶绿素含量变化随紫外光UV-A的比例增加呈现先升高后降低的趋势，均在T15达到最高，相比于T0，分别增加了35.21％、31.82％和33.33％，红甜菜的类胡萝卜素含量在T0时最高，但随紫外光UV-A的比例增加而降低，其他处理相比于T0降低了18.18％～40.91％，不同蓝紫光比例对红甜菜的可溶性糖、硝酸盐和维生素C含量均无显著性变化，对红甜菜的可溶性蛋白含量有显著影响，红甜菜的可溶性蛋白含量在T0处理下最高，可溶性蛋白的含量随紫外光UV-A比例的增加而减小，在T20时达到最低，比T0降低了32.66％，不同蓝紫光比例对红甜菜的游离氨基酸含量影响显著，随UV-A比例的增加呈现先升高后降低的趋势，在T10处理下，红甜菜的游离氨基酸含量最高，与T0比较，增加了58.19％，其他处理与T0相比对红甜菜的总酚含量影响显著降低，分别降低了12.01％～60.06％，随紫外光UV-A的比例的增加呈降低趋势，不同蓝紫光比例对红甜菜的类黄酮含量影响显著，红甜菜的类黄酮随UV-A比例的增加呈先增加后减少的趋势，在T5时，红甜菜的类黄酮含量最高，较对照T0增加了14.99％，不同蓝紫光比例对红甜菜的花色苷含量影响随紫外光UV-A的比例增加呈先增后减的趋势，在T15时，花色苷含量最高，相比于T0，增加了17.34％，结果表明，蓝紫光对红甜菜的生物量、可溶性糖、硝酸盐和维生素C无显著性影响；T5处理的类黄酮含量最大，较对照增加了14.99％；T10处理的游离氨基酸含量最高，较对照增加了58.19％，在T15时，红甜菜的叶绿素含量和花色苷含量最高，较对照分别增加了33.33％和17.34％，因此，T15处理可以作为提高红甜菜色素的光照方案。
以上所述，仅为本发明较佳的具体实施方式，但本发明的保护范围并不局限于此，任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内，根据本发明的技术方案及其发明构思加以等同替换或改变，都应涵盖在本发明的保护范围之内。

Claims (8)

1.一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，包括LED光源，其特征在于，所述LED光源包括电路板、LED灯珠、驱动电源和定时器，所述电路板将0.2W的灯珠作0.15W降功率使用，并将3.0V的电压降到2.8V；所述LED灯珠设置于电路板上，LED灯珠包括至少一颗紫外光和一颗蓝光；所述驱动电源用于驱动LED光源；所述定时器用于定时开关。
2.根据权利要求1所述的一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，其特征在于，包括如下步骤：
S1：将红甜菜种子播于海绵块3cm×3cm×3cm中，黑暗处理24h后自然光培养；
S2：待两叶一心时，选取长势一致的健壮幼苗于水培槽80cm×80cm×80cm中定植待处理；
S3：利用LED光源调制蓝光B与紫外光UV-A的比例，紫外光与蓝光B的光强比为0:50，总光强为50μmol·m2·s-1，光周期12h/d，环境温度25℃，湿度60％～80％，设3次重复于1/2Hoagland's营养液中栽培；
S4：根据S3中蓝紫光耦合光照处理7天后进行取样，随机选取5株红甜菜后立即进行测试，测试项目包括红甜菜的生物量、光合色素、可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C、游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响。
3.根据权利要求2所述的一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，其特征在于，所述S3中LED光源调制的蓝光B发射波长为450nm。
4.根据权利要求3所述的一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，其特征在于，所述S3中LED光源调制的紫外光UV-A发射波长为400nm。
5.根据权利要求2所述的一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，其特征在于，所述S4中测试红甜菜的生物量的影响，包括如下步骤：
S11:用千分之一天平称量红甜菜的鲜重，得到地上部36.1±1.59a，地下部3.22±0.24a，全株39.32±1.81a；
S12:将植株放进105℃烘箱内杀青40min后，调节温度至75℃烘干至恒重；
S13:用万分之一天平称量其干重，得到地上部1.84±0.08a，地下部0.27±0.02a，全株2.11±0.09a。
6.根据权利要求5所述的一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，其特征在于，所述S4中测试红甜菜的光合色素的影响，包括如下步骤：
S21:用无水乙醇提取光合色素；
S22:利用分光光度计测定吸光度，计算光合色素含量，得到叶绿素a0.71±0.007c,叶绿素b0.22±0.002b,总叶绿素0.93±0.008c,类胡萝卜素0.22±0.001a。
7.根据权利要求6所述的一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，其特征在于，所述S4中测试红甜菜的可溶性糖、可溶性蛋白、硝酸盐、维生素C的影响，包括如下步骤：
S31：蒽酮比色法测定可溶性糖含量，得到1.4mg·g-1；
S32：考马斯亮蓝法测定可溶性蛋白含量,得到5.0mg·g-1；
S33：分光度光度法测定硝酸盐含量,得到260.0mg·g-1；
S34：钼蓝比色法测定维生素C含量，得到0.25mg·g-1。
8.根据权利要求7所述的一种利用蓝紫光耦合处理增加红甜菜营养成分含量的方法，其特征在于，所述S4中测试红甜菜的游离氨基酸和抗氧化活性成分的影响，包括如下步骤：
S41：水合茚三酮法测定游离氨基酸含量，得到9.0mg·100g-1；
S42：参照Pirie等方法用1％盐酸-甲醇提取法测定总酚相对含量，得到3.35u·g-1；类黄酮相对含量，得到130u·g-1；花色苷相对含量，得到57u·g-1。
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