CN111411075A - 一种构建人心肌细胞凋亡模型的方法 - Google Patents

一种构建人心肌细胞凋亡模型的方法 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种构建人心肌细胞凋亡模型的方法。发明人在研究过程中意外发现,一定浓度之上的血管紧张素Ⅱ处理hiPSC‑CM一定时间后,可以有效诱导hiPSC‑CM凋亡。本发明一些实例,使用血管紧张素Ⅱ诱导人心肌细胞的凋亡,构建与人体更加接近的心肌细胞凋亡模型,为后续的药理实验提供有力的工具和方法。

Description

一种构建人心肌细胞凋亡模型的方法
技术领域
本发明涉及一种细胞模型的构建方法,特别涉及一种构建人心肌细胞凋亡模型的方法。
背景技术
心力衰竭是在老年人中非常流行的慢性病,且它的患病率和发病率正逐年上涨。全球接近2600万人次正在遭受心力衰竭的痛苦,5年内的存活率少于53%。每年全球因慢性心力衰竭治疗而造成的经济负担超过1080亿美元。心力衰竭是很多心血管疾病的末期表现,例如,缺血性心脏病,风湿性心脏病。由于个体差异,使得心力衰竭的治疗难以达到满意的效果。十分迫切建立评估不同药物对每个心力衰竭病人的效果的方法。
随着iPS(诱导多能干细胞)技术的发展、心肌细胞分化及纯化方法的建立,使得我们可以在体外制备来自患者的心肌细胞。这些心肌细胞已经协助我们研究心血管疾病,(如:长QT间期综合征,心律不齐,肥厚型心肌病,扩张型心肌病,线粒体心肌病,等)以及进行治疗心血管疾病药物的药理实验和心脏毒性试验(如:醛固酮拮抗剂,血管紧张素转化酶抑制剂,血管紧张素II受体阻断剂,β受体阻滞剂,血管紧张素脑啡肽酶受体抑制剂,等)。
建立人心肌细胞凋亡模型的方法对后续的研究十分重要,现有技术一般使用双氧水(过氧化氢)诱导细胞的凋亡。而过氧化氢并不是正常情况下导致人心力衰竭的原因,应用范围及其有限。
作为RAS系统(肾素-血管紧张素系统,能调节心血管疾病的病理过程,例如心力衰竭和高血压)的主要效应因子,血管紧张素II(Angiotensin II)通过激活血管紧张素II受体引起细胞凋亡,细胞肥大和心肌重构。因此,由血管紧张素II诱导的心肌细胞凋亡更加贴合和反映真实情况下的心力衰竭,在心力衰竭的病例机制中扮演着决定性角色。有研究显示,血管紧张素II可诱导hiPSC(人诱导多能干细胞)和hESC(人胚胎干细胞)来源的心肌细胞肥大,也有报道显示血管紧张素II的处理组和未处理组的细胞死亡和存活率无显著性差异。然而,没有研究表明血管紧张素II可以引起hiPSC-CM(人诱导多能干细胞分化的心肌细胞)凋亡。血管紧张素II受体有两种类型:AT1和AT2。一般认为,AT1参与血管紧张素II的主要作用,如增殖、肥大和纤维化,而血管紧张素II通过与AT2结合而引起细胞凋亡和心脏重构。对hiPSC-CM的基因表达分析,显示hiPSC-CM的AT2表达缺失,这可能是导致以前报道的血管紧张素II未能引起hiPSC-CM细胞凋亡的原因。
构建一种能更为有效反应真实心血管的hiPSC-CM细胞凋亡模型,具有非常重要的意义。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的不足,提供一种构建可以更为有效反应真实心血管的hiPSC-CM细胞凋亡模型的方法。
本发明所采取的技术方案是:
本发明的第一个方面,提供:
血管紧张素Ⅱ在制备hiPSC分化而来的心肌细胞凋亡诱导剂中的应用。
在一些实例中,血管紧张素Ⅱ的使用终浓度为100μM~1mM。
在一些实例中,血管紧张素Ⅱ的使用终浓度为150μM~1mM。
在一些实例中,血管紧张素Ⅱ的诱导时间不少于6天。
在一些实例中,血管紧张素Ⅱ的诱导时间为6~10天。
血管紧张素Ⅱ的使用终浓度大于100μM时,诱导培养超过6天即可有效诱导hiPSC-CM凋亡。
本发明的第二个方面,提供:
血管紧张素Ⅱ在构建hiPSC分化而来的心肌细胞凋亡模型中的应用。
在一些实例中,血管紧张素Ⅱ的使用终浓度为100μM~1mM。
在一些实例中,血管紧张素Ⅱ的使用终浓度为150μM~1mM。
在一些实例中,血管紧张素Ⅱ的诱导时间不少于6天。
在一些实例中,血管紧张素Ⅱ的诱导时间为6~10天。
本发明的第三个方面,提供:
一种构建hiPSC分化而来的心肌细胞凋亡模型的方法,包括在hiPSC分化而来的心肌细胞的培养液中添加终浓度为100μM~1mM的血管紧张素Ⅱ,继续培养得到获得凋亡的hiPSC-CM。
在一些实例中,所述培养液中hiPSC-CM的浓度为(2~10)×104/mL。
在一些实例中,所述继续培养的时间不少于6天。
在一些实例中,所述继续培养的时间为6~10天。
在一些实例中,所述培养液中血管紧张素Ⅱ的终浓度为150μM~1mM。
实验结果表明,更高浓度(1mM)的血管紧张素Ⅱ诱导,细胞凋亡的比例更高。可以根据需要调节血管紧张素Ⅱ的使用浓度。
本发明的有益效果是:
发明人在研究过程中意外发现,一定浓度之上的血管紧张素Ⅱ处理hiPSC-CM一定时间后,可以有效诱导hiPSC-CM凋亡。
本发明一些实例,使用血管紧张素Ⅱ诱导人心肌细胞的凋亡,构建与人体更加接近的心肌细胞凋亡模型,为后续的药理实验提供有力的工具和方法。
附图说明
图1是不同浓度AngⅡ短期处理对hiPSC-CM活力的影响;
图2是不同浓度AngⅡ长期处理对hiPSC-CM活力的影响;
图3是不同浓度AngⅡ处理2天对hiPSC-CM各基因表达的影响;
图4是不同浓度AngⅡ处理10天对hiPSC-CM各基因表达的影响;
图5是不同浓度AngⅡ处理10天的流式细胞分析结果。
具体实施方式
下面结合实验,进一步说明本发明的技术方案。
1、按常规的,公认的方法获得iPS细胞。
2、按常规的,公认的方法将iPS细胞分化成心肌细胞并进行纯化。
或具体的,可参照如下方法获得纯化的hiPSC-CM。
hiPSC-CM的获得
1.1hiPSC细胞的培养:将人诱导多能干细胞DYR0100(ATCC)接种于Matrigel基质(康宁,354277)包被的平板上,然后用Stemflex培养基(Gibco,A3349401)进行培养。StemFlex培养基每两天更换一次。iPSC每隔3天传代一次,或在细胞培养达到80-90%汇合度时传代。传代过程中用1×DPBS(Gibco,14040133)冲洗1次,然后在室温下用使用1×DPBS(Gibco,14190144)稀释的0.5mM EDTA(Invitgen,15575020)在中处理10min。传代比为1:3-1:6。
1.2hiPSC细胞的分化:在RPMI-BSA培养基[RPMI1640培养基(HyClone,SH30027.01)+213μg/mL AA2P(l-抗坏血酸2-磷酸镁)(A8960,Sigma)和0.1%牛血清白蛋白(A1470,Sigma)]中,加入CHIR99021(Tcriis4423,终浓度为10mmol M)处理iPSC 24小时,然后换RPMI-BSA培养基静止培养。在分化第4天,在RPMI-BSA培养基中加入IWP2(Tcriis3533,终浓度5μM)处理细胞。48h后换用RPMI-BSA培养基。在随后的实验中,用RPMI1640培养基加3%的血清替代物(Gibco,10828-028)培养心肌细胞。
1.3hiPSC-CM细胞的纯化:使用代谢选择方法纯化hiPSC-CM。代谢选择培养基为添加0.1%牛血清白蛋白(SIGMA,A1470)和1×亚油酸-油酸-白蛋白(SIGMA,L9655)的DMEM培养基(无葡萄糖)(Gibco,11966-025)。用代谢选择培养基处理细胞3~6d。培养基每2天更换一次。心肌细胞纯度可高达99%。
血管紧张素Ⅱ诱导hiPSC-CM凋亡
2.1血管紧张素Ⅱ诱导hiPSC-CM细胞凋亡:
纯化后用添加不同量(1nM,10nM,100nM,1μM,10μM,100μM,1mM)血管紧张素Ⅱ的心肌细胞培养液(MedChemExpress,HY-13948)进行血管紧张素Ⅱ处理,每隔2天更换一次血管紧张素Ⅱ培养液。
2.2hiPSC-CM凋亡验证:
2.2.1不同浓度和不同培养时间AngⅡ处理对hiPSC-CM的活性影响
按说明书用PrestoBlue细胞活性检测试剂(Invitgen,A13261)检测心肌细胞活性,结果如图1和图2所示。
2.2.2AngⅡ对hiPSC-CM细胞凋亡和增殖相关基因表达水平的影响
用UNLQ-10柱Trizol总RNA分离试剂盒(Sangon Biotech,B511321-0100)提取总RNA,然后用DNase I(Sangon Biotech,B618252)处理30min。mRNA使用iScript ReverseTranscription Supermix(Bio-Rad,1708841)进行逆转录。使用PikoReal-time PCRsystem(Thermo Fisher)和Sso AdvancedTMUniversal
Figure BDA0002405681440000041
Green SuperMix(BioRad,1725271)进行定量聚合酶链反应。定量PCR的引物来自先前报告,具体如下(从5‘到3’):
Figure BDA0002405681440000042
结果如图3和图4所示。
2.2.3长时间(6d和10d)高浓度(100μM和1mM)AngⅡ处理诱导hiPSC-CM细胞凋亡
从细胞活性检测结果看,仅长期AngⅡ处理使hiPSC-CM得活性下降。
因此,为了研究细胞凋亡率,我们对AngⅡ处理10天的hiPSC-CM细胞进行凋亡分析。
应用凋亡检测试剂盒Annexin V,Alexa FluorTM488conjugate(InvitgenV13201)检测AngⅡ处理和未处理心肌细胞的凋亡情况。心肌细胞用凋亡标记物Annexin V标记后,用FACSAriaTMII流式细胞分析仪(BD)进行分析。结果如图5所示,图中,经0nM(未处理)、100μM和1mM AngⅡ处理10天的hiPSC-CM用凋亡标记物Annexin V标记,使用流式细胞分析仪进行分析。未染色组用DPBS缓冲液代替Annexin V染色试剂。
实验结果:
通过测试hiPSC-CM在不同浓度和培养时间,包括8个浓度(0nM(未经处理)、1nM、10nM、100nM、1μM、10μM、100μM an和1mM))和4个处理时间(24小时、48小时、6天和10天)确定血管紧张素Ⅱ的促凋亡作用。在AngⅡ短期处理(24小时和48小时),无论浓度高低,对照组hiPSC-CM和AngⅡ处理组hiPSC-CM在细胞活性上,均无显著差异(图1)。相反的,经过6天处理AngⅡ100μM组和1mM组的hiPSC-CM细胞活性显著降低(细胞活力差异倍数,100μM对比未处理对照组为0.763;1mM比未处理对照组为0.762。p<0.001极显著差异)。经过10天处理,10μM AngⅡ甚至导致细胞活性急下降20%(细胞活力差异倍数,10μM对比未处理对照组为0.795;100μM对比未处理对照组为0.638;1mM对比未处理对照组为0.590.10μM组p<0.05有统计学差异;100μM和1mM组,p<0.001极显著差异)。其他浓度AngⅡ细胞活性似乎略有下降但无统计学意义(图2)。
在血管紧张素Ⅱ处理2天的hiPSC-CM中,1nM和1μM血管紧张素Ⅱ没有改变BCL2、TP53和GADD45A的表达水平,而1mM(1mM)血管紧张素Ⅱ使BAX表达增加1.2 5倍,BCL2表达下调。3种浓度的AngⅡ处理后,MKI67的表达均降低。1mM AngⅡ作用10天后,BAX、TP53、GADD45A和MKI67的表达明显上调(分别为2.25、1.81、1.83和2.53倍),而BLD2的表达下降了70%。与2天处理相反,10天处理使MKI67在所有三个浓度下的表达均升高。BAX编码促凋亡蛋白,在凋亡途径中起凋亡激活剂的作用。相反,BCL2是一种抗凋亡分子,可以促进细胞存活,阻止细胞程序性死亡。TP53和GADD45A是细胞周期调控基因,也被报道介导细胞凋亡。MKI67和PCNA是细胞增殖的标志。值得注意的是,1mM AngⅡ在短期内已引起BAX表达上调,BCL2表达下调,且随着孵育时间的延长,作为细胞凋亡指标的BAX/BCL2比值急剧升高。此外,1mM AngⅡ还可增加TP53和GADD45A的表达,表明心肌细胞处于凋亡状态。
收集10天处理的hiPSC-CM,用结合了绿色荧光基团Alexa Fluor 488的Annexin V染料染色,然后用流式细胞术分析。如图5所示,未处理的hiPSC-CM组平均凋亡率为4.1%,而100μM和1mM AngⅡ处理组hiPSC-CM平均细胞凋亡率分别为12.7%和15.6%(图5)。这表明100μM AngⅡ处理组的细胞凋亡率为未处理组的3.08倍,1mM AngⅡ处理组的凋亡率为未处理组的3.74倍。
SEQUENCE LISTING
<110> 广东源心再生医学有限公司
<120> 一种构建人心肌细胞凋亡模型的方法
<130> Ang Ⅱ
<160> 14
<170> PatentIn version 3.5
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Claims (10)

1.血管紧张素Ⅱ在制备hiPSC分化而来的心肌细胞凋亡诱导剂中的应用。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于:血管紧张素Ⅱ的使用终浓度为100μM~1mM。
3.血管紧张素Ⅱ在构建hiPSC分化而来的心肌细胞凋亡模型中的应用。
4.根据权利要求3所述的应用,其特征在于:血管紧张素Ⅱ的使用终浓度为100μM~1mM。
5.根据权利要求1~4任一项所述的应用,其特征在于:血管紧张素Ⅱ持续处理hiPSC分化而来的心肌细胞的时间不少于6天。
6.一种构建hiPSC分化而来的心肌细胞凋亡模型的方法,包括在hiPSC分化而来的心肌细胞的培养液中添加终浓度为100μM~1mM的血管紧张素Ⅱ,继续培养得到获得凋亡的hiPSC-CM。
7.根据权利要求6所述的方法,其特征在于:所述培养液中hiPSC-CM的浓度为(2~10)×104/mL。
8.根据权利要求6或7所述的方法,其特征在于:所述继续培养的时间不少于6天。
9.根据权利要求8所述的方法,其特征在于:所述继续培养的时间为6~10天。
10.根据权利要求6或7所述的方法,其特征在于:所述培养液中血管紧张素Ⅱ的终浓度为150μM~1mM。
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