CN110352955B

CN110352955B - 复合光源以及鲜花保鲜方法

Info

Publication number: CN110352955B
Application number: CN201910801117.2A
Authority: CN
Inventors: 彭学文; 丁慧霞; 彭旭
Original assignee: Zhongshan Badou Agricultural Technology Co ltd
Current assignee: Zhongshan Badou Agricultural Technology Co ltd
Priority date: 2019-08-28
Filing date: 2019-08-28
Publication date: 2021-09-28
Anticipated expiration: 2039-08-28
Also published as: CN110352955A

Abstract

本发明涉及一种复合光源以及鲜花保鲜方法。该复合光源包括红光光源、蓝光光源以及白光光源。在额定工作模式下红光光源、蓝光光源、白光光源的光照强度的比例为1：1：1，复合光源的光照强度为28μmol·m^‑2·s^‑1～32μmol·m^‑2·s^‑1。该复合光源能够降低鲜花的生理代谢，减小鲜花内部可溶性糖和水分的消耗，减缓鲜花内部蛋白质的降解速率，抑制鲜花叶片黄化和花朵失色的现象，对鲜花具有良好的保鲜效果。利用该复合光源对鲜花进行保鲜，只需要将待保鲜的鲜花置于复合光源形成的复合光下就能对鲜花起到良好的保鲜作用，不需要制造保鲜气体氛围、不需要使用保鲜营养液，操作简单；不需要在特定的空间下进行保鲜，不会给消费者观赏鲜花带来不便。

Description

复合光源以及鲜花保鲜方法

技术领域

本发明涉及鲜花保鲜技术领域，尤其是涉及一种复合光源以及鲜花保鲜方法。

背景技术

鲜花是一种对环境条件有一定要求的花卉产品，如果在采摘、运输或存储的过程中不能做到良好的保鲜，那么鲜花很容易变色或者凋谢。因此，如何提高鲜花的保鲜效果是制约花卉市场发展的瓶颈之一。

目前对鲜花的保鲜方法通常是采用分级采摘、预冷、制造保鲜气体氛围、营养液保鲜等方法，这些方法能够在一定程度上起到鲜花保鲜的作用，但是这些方法需要引入保鲜气体或营养液，操作复杂。同时，这些保鲜方法通常是在特定的空间内完成的，这样会给消费者观赏鲜花带来不便。

发明内容

基于此，有必要提供一种对鲜花具有保鲜效果的复合光源以及鲜花保鲜方法。利用该复合光源对鲜花进行保鲜，操作简单、便于消费者观赏鲜花。

一种复合光源，包括红光光源、蓝光光源以及白光光源；在额定工作模式下，所述红光光源、所述蓝光光源、所述白光光源的光照强度的比例为1:1:1；所述复合光源的光照强度为25μmol·m^-2·s^-1～32μmol·m^-2·s^-1。

在其中一个实施例中，在额定工作模式下，所述复合光源的光照强度为28μmol·m^-2·s^-1～32μmol·m^-2·s^-1。

在其中一个实施例中，在额定工作模式下，所述复合光源的光照强度为30μmol·m^-2·s^-1。

在其中一个实施例中，所述红光光源、所述蓝光光源、所述白光光源各自独立地选自半导体发光二极管光源或有机发光二极管光源。

在其中一个实施例中，所述红光光源包括多个子红光光源，所述蓝光光源包括多个子蓝光光源，所述白光光源包括多个子白光光源。

在其中一个实施例中，所述复合光源由多个所述子红光光源、多个所述子蓝光光源、多个所述子白光光源排列而成，并且任意相邻的子光源不同。

在其中一个实施例中，在额定工作模式下，所述红光光源的波长为650nm～670nm，和/或；

在额定工作模式下，所述蓝光光源的波长为460nm～475nm，和/或；

在额定工作模式下，所述白光光源的色温为3800K～4000K。

一种鲜花保鲜方法，包括如下步骤：

对待保鲜的鲜花进行保鲜前处理；

将经过所述保鲜前处理之后的鲜花插花；

将所述插花之后的鲜花置于红蓝白复合光中；

所述红蓝白复合光为由包括红光光源、蓝光光源以及白光光源的复合光源产生的复合光；

在额定工作模式下，所述红光光源、所述蓝光光源、所述白光光源的光照强度的比例为1:1:1；所述复合光源的光照强度为25μmol·m^-2·s^-1～32μmol·m^-2·s^-1。

在其中一个实施例中，上述鲜花保鲜方法还包括在所述保鲜前处理之后、所述插花之前将经过所述保鲜前处理之后的鲜花的花茎的底部置于90℃～100℃的水中进行处理的步骤。

在其中一个实施例中，所述将经过所述保鲜前处理之后的鲜花的花茎的底部置于90℃～100℃的水中的处理时间为2s～3s。

上述复合光源包括红光光源、蓝光光源以及白光光源。在额定工作模式下，红光光源、蓝光光源、白光光源的光照强度的比例为1:1:1，复合光源的光照强度为25μmol·m^-2·s^-1～32μmol·m^-2·s^-1。该复合光源能够降低鲜花的生理代谢，减小鲜花内部可溶性糖和水分的消耗，减缓鲜花内部蛋白质的降解速率，抑制鲜花叶片黄化和花朵失色的现象，对鲜花具有良好的保鲜效果。

上述鲜花保鲜方法，只需要将待保鲜的鲜花置于复合光源形成的复合光下就能对鲜花起到良好的保鲜作用，不需要制造保鲜气体氛围、不需要使用保鲜营养液，操作简单；不需要在特定的空间下进行保鲜，不会给消费者观赏鲜花带来不便。

附图说明

图1为实施例1中A组复合光源的子光源排列图。

图2为实施例1中玫瑰的花径随时间的变化关系图。

图3为实施例1中玫瑰的鲜重随时间的变化关系图。

图4为实施例2中玫瑰的花径随时间的变化关系图。

图5为实施例2中玫瑰的鲜重随时间的变化关系图。

图6为实施例3中玫瑰的可溶性糖含量随时间的变化关系图。

图7为实施例3中玫瑰的可溶性蛋白含量随时间的变化关系图。

图8为实施例3中玫瑰的脯氨酸含量随时间的变化关系图。

图9为实施例3中玫瑰的丙二醛含量随时间的变化关系图。

图10为实施例3中玫瑰的花色苷含量随时间的变化关系图。

具体实施方式

为了便于理解本发明，下面将参照相关附图对本发明进行更全面的描述。附图中给出了本发明的较佳实施例。但是，本发明可以以许多不同的形式来实现，并不限于本文所描述的实施例。相反地，提供这些实施例的目的是使对本发明的公开内容的理解更加透彻全面。

需要说明的是，当元件被称为“固定于”另一个元件，它可以直接在另一个元件上或者也可以存在居中的元件。当一个元件被认为是“连接”另一个元件，它可以是直接连接到另一个元件或者可能同时存在居中元件。

除非另有定义，本文所使用的所有的技术和科学术语与属于本发明的技术领域的技术人员通常理解的含义相同。本文中在本发明的说明书中所使用的术语只是为了描述具体的实施例的目的，不是旨在于限制本发明。本文所使用的术语“和/或”包括一个或多个相关的所列项目的任意的和所有的组合。

本发明一实施例提供了一种复合光源，该复合光源包括红光光源、蓝光光源以及白光光源。在额定工作模式下，红光光源、蓝光光源、白光光源的光照强度的比例为1:1:1。复合光源的光照强度为25μmol·m^-2·s^-1～32μmol·m^-2·s^-1。该复合光源对鲜花具有良好的保鲜作用，能够降低鲜花的生理代谢，减小鲜花内部可溶性糖和水分的消耗，减缓鲜花内部蛋白质的降解速率，抑制鲜花叶片黄化和花朵失色的现象。额定工作模式，即红光光源、蓝光光源、白光光源在组合成复合光源之后的应用过程中，红光光源、蓝光光源、白光光源各自在其额定功率、额定电压等条件下工作，防止红光光源、蓝光光源、白光光源损坏。

在一个具体的示例中，在额定工作模式下，复合光源的光照强度为28μmol·m^-2·s^-1～32μmol·m^-2·s^-1。

在一个具体的示例中，在额定工作模式下，复合光源的光照强度为30μmol·m^-2·s^-1。

在一个具体的示例中，红光光源、蓝光光源、白光光源各自独立地选自半导体发光二极管光源或有机发光二极管光源。

在一个具体的示例中，红光光源包括多个子红光光源，蓝光光源包括多个子蓝光光源，白光光源包括多个子白光光源。

在一个具体的示例中，复合光源由多个子红光光源、多个子蓝光光源、多个子白光光源排列而成，并且任意相邻的子光源不同。

复合光源通过多个子红光光源、多个子蓝光光源、多个子白光光源错排形成，在配制复合光源时，任意相邻的子光源不同，使得复合光源产生均匀的复合光。

在一个具体的示例中，在额定工作模式下，红光光源的波长为650nm～670nm。

在一个具体的示例中，在额定工作模式下，蓝光光源的波长为460nm～475nm。

在一个具体的示例中，在额定工作模式下，白光光源的色温为3800K～4000K。

本发明一实施例还提供了一种鲜花保鲜方法，该鲜花保鲜方法包括如下步骤：

对待保鲜的鲜花进行保鲜前处理；

将经过保鲜前处理之后的鲜花插花；

将插花之后的鲜花置于红蓝白复合光中；

红蓝白复合光为由包括红光光源、蓝光光源以及白光光源的复合光源产生的复合光；

在额定工作模式下，红光光源、蓝光光源、白光光源的光照强度的比例为1:1:1；复合光源的光照强度为25μmol·m^-2·s^-1～32μmol·m^-2·s^-1。

优选地，待保鲜的鲜花为玫瑰、桔梗、康乃馨、绣球。可以理解的是，待保鲜的鲜花可以是市面上常见的鲜花。该鲜花保鲜方法的适用范围广，对市面上常见的鲜花均具有良好的保鲜效果。

优选地，保鲜前处理包括对鲜花进行整理。鲜花采摘下来以后，鲜花上会带有一些多余的叶片和多余的枝干，比如烂叶、烂枝等，这些多余的叶片和多余的枝干会降低鲜花的观赏价值，并且会消耗鲜花的养分。因此，需要通过保鲜前处理将这部分多余的叶片和多余的枝干去除，以提高鲜花的保鲜效果。同时，将鲜花底部进行裁剪，去除鲜花底部的部分枝干，有利于提高插花之后鲜花的吸水效率。

在一个具体的示例中，该鲜花保鲜方法还包括在保鲜前处理之后、插花之前将经过保鲜前处理之后的鲜花的花茎的底部置于90℃～100℃的水中进行处理的步骤。在保鲜前处理之后，插花之前将鲜花的花茎的底部置于90℃～100℃的水中进行处理，能够防止空气进入鲜花的枝干内部，降低鲜花的吸水效率。

在一个具体的示例中，将经过保鲜前处理之后的鲜花的花茎的底部置于90℃～100℃的水中的处理时间为2s～3s。鲜花的底部置于90℃～100℃的水中需要控制适当的时间，时间太短处理效果不佳，会有部分空气进入鲜花的枝干内部；处理时间太长则会破坏鲜花的枝干结构，导致鲜花的吸水能力降低，甚至会导致鲜花的死亡。

以下为具体实施例。

实施例中的测量项目以及所用的测量方法：

1、花径：以游标卡尺作为测量工具，采用十字交叉法测量花朵直径，以每次测得的两个值的平均值作为该花朵直径的测量值。

2、鲜重：采用称重法测量鲜量，每次测量三次取平均值。

3、可溶性糖含量：采用蒽酮比色法测量。具体测量步骤如下：

(1)获取花瓣，剪碎混匀。然后取3份，每份0.1g，分别放入3支试管中，加入10mL的蒸馏水，加塞，沸水中提取30min，4000r/min离心10min，吸取上清液到25mL容量瓶中。然后重新加入10mL蒸馏水，沸水中再次提取30min，4000r/min离心10min，吸取上清液到25mL的容量瓶中，定容至刻度，得到提取液。

(2)取提取液0.5mL于20mL的试管中，加1.5mL蒸馏水、0.5mL蒽酮乙酸乙酯以及5mL浓硫酸，将试管放在振荡器上充分振荡混匀，然后立即将试管放入沸水浴中，准确保温1min，取出后自然冷却至室温，在630nm波长下测其吸光度。对照管加入2mL蒸馏水、0.5mL蒽酮乙酸乙酯和5mL浓硫酸。按照下面公式计算可溶性糖含量：

可溶性糖的含量(mg/g)＝C·V_t/(W·V_s·1000)

式中：C为查标准曲线值(μg)；V_t为提取液总体积(mL)；V_S为测定时的加样量(mL)；W为样品鲜重(g)。

4、可溶性蛋白含量：采用考马斯亮蓝法，具体步骤如下：

(1)获取花瓣，洗净擦干，用电子天平准确称取0.5g样品，用5mL蒸馏水或缓冲液研磨成匀浆后，3000r/min离心10min，上清液备用。

(2)吸取样品提取液1.0mL，放入试管中，加入5mL考马斯亮蓝试剂，摇匀，放置2min后在595nm下比色，测定吸光度，并通过标准曲线查得蛋白质含量。按照下面公式计算可溶性蛋白含量：

可溶性蛋白的含量(mg/g)＝C·V_t/(W_F·V_s·1000)

式中：C为查标准曲线值(μg)；V_T为样品提取液总体积(mL)；W_F为样品鲜重(g)；V_S为测定时加样量(mL)。

5、脯氨酸含量：采用茚三铜法，具体步骤如下：

(1)获取花瓣，剪碎混匀，然后称取0.5g花瓣放入具塞试管中，加入5mL3％的磺基水杨酸溶液，加塞后于沸水浴中提取15min。冷却后过滤，得到提取液。

(2)取2mL提取液置于试管中，再加入2mL冰醋酸和2mL茚三酮试剂，加盖密封，在沸水浴上加热15min，溶液即成红色。冷却后加入5mL甲苯，充分摇匀萃取，避光静置待完全分层，用吸管吸取甲苯层于比色皿中，在分光光度计上测520nm处样品的吸光度，从标准曲线上求出样品溶液中脯氨酸含量。按照下面公式计算可溶性蛋白含量：

脯氨酸含量(mg/g)＝C·Vt/(W·Vs)

式中：C为查标准曲线值(μg)；V_t为样品提取液总体积(mL)；W为样品鲜重(g)；V_S为测定时加样量(mL)。

6、丙二醛(MDA)含量：采用硫代巴比妥酸(TBA)法，具体操作步骤如下：

(1)称取新鲜花瓣1g，剪碎，加入2mL5％的三氯乙酸(TCA)和少量石英砂，研磨至匀浆，再加8mLTCA进一步研磨，匀浆在4000r/min离心10min，上清液为样品提取液。

(2)取提取液2mL(对照组加2mL蒸馏水)，加入2mL0.6％TBA溶液，摇匀。将试管放入沸水浴中煮沸10min(自试管内溶液中出现小气泡开始计时)，取出试管并冷却，3000r/min离心15min，取上清液以对照组为空白测定532nm，600nm和450nm处的吸光度值。植物组织中糖类物质对MDA-TBA反应有干扰作用。为消除这种干扰，可用下列公式消除由糖类引起的误差。C(μmol/L)＝6.45(A₅₃₂-A₆₀₀)-0.56A₄₅₀；

式中：A₅₃₂、A₆₀₀、A₄₅₀分别为测试样品在532nm，600nm和450nm处的吸光度值；C为MDA浓度，μmol/L。

丙二醛(MDA)含量的测量公式：

MDA含量(μmol/g)＝C·V_t·V₁/1000·W·V₂)

式中：C为MDA浓度，μmol/L；V_t为样品提取液的总体积，mL；V₁为样品提取液和TBA溶液总反应液体积，mL；V₂为与TBA反应的样品提取液体积，mL；W为样品鲜重，g；1000为将mL换算成L的系数。

7、花色苷含量：测量步骤为：

(1)称取1.000g花瓣，在pH值为3的条件下，用20ml60％的乙醇为提取溶剂在60℃水浴中提取2h，然后过滤，得到提取液。

(2)测量提取液在535nm处的吸光度值。

花色苷含量(mg/g)＝A₅₃₅·V/(N·98.2·m)；

式中：A₅₃₅为提取液在535nm处的吸光度值；V为定容体积(mL)；N为稀释倍数；98.2为花色苷在535nm处的平均消光系数；m为样品质量(g)。

实施例1

本实施例中待保鲜的鲜花为购买至岭南花卉市场的“艾莎”玫瑰。本实施例中鲜花的保鲜方法为：

(1)对待保鲜的鲜花进行保鲜前处理：剪去玫瑰上多余的叶片和多余的枝干，去除玫瑰底部2cm的枝干。

(2)将经过保鲜前处理之后的玫瑰的花茎的底部放入100℃的水中2.5s。

(3)插花：将花泥吸满水，然后将吸满水的花泥放入水槽中，水槽中注入花泥体积1/5的水，将经过步骤(2)处理之后的玫瑰插入花泥中。

(4)将所述插花之后的玫瑰分为A、B、C、D四组，然后将四组玫瑰分别置于不同的光照环境中。其中A组的光照环境为红蓝白复合光源(其中红光光源、蓝光光源、白光光源的光照强度的比例为1:1:1)、B组为红光光源、C组为蓝光光源、D组为白光光源；A、B、C、D四组的光照强度均为30μmol·m^-2·s^-1。

其中A组复合光源的错排图如图1所示。图1中，LW代表LED白光光源、LR代表LED红光光源、LB代表LED蓝光光源，数字代表序号。R₄、R₅代表限流电阻。

分别测量A、B、C、D四组中玫瑰在不同时间的花径(cm)和鲜重(g)。花径随时间的变化关系如图2所示；鲜重随时间的变化关系如图3所示。

由图2可知，A、B、C、D四组玫瑰在保鲜过程中花朵逐渐绽放，花径也相应地增大，其中A组玫瑰在保鲜前期花径的增幅最小，绽放程度最慢；而在后期玫瑰凋落的时候，A组玫瑰的花径最大，说明A组的红蓝白复合光源对玫瑰的花径变化的改善作用最佳。

由图3可知，A、B、C、D四组玫瑰在保鲜过程中的鲜重的变化趋势基本一致，都是先上升后下降。与B、C、D三组相比，在保鲜的过程中，A组玫瑰的鲜重保持的最稳定，在玫瑰凋落的时候，A组玫瑰的鲜重最大，说明A组的红蓝白复合光源对玫瑰鲜重变化改善作用最佳。

实施例2

(4)将所述插花之后的玫瑰分为A、B、C、D四组，然后将四组玫瑰分别置于不同的光照环境中。其中A组的光照环境为红蓝白复合光源(其中红光光源、蓝光光源、白光光源的光照强度的比例为1:1:1)，复合光源的光照强度为30μmol·m^-2·s^-1；B组的光照环境为红蓝白复合光源(其中红光光源、蓝光光源、白光光源的光照强度的比例为1:1:1)，复合光源的光照强度为20μmol·m^-2·s^-1；C组的光照环境为红蓝白复合光源(其中红光光源、蓝光光源、白光光源的光照强度的比例为1:1:1)光，复合光源的光照强度为40μmol·m^-2·s^-1；D组为无光照。

分别测量A、B、C、D四组中玫瑰在不同时间的花径(cm)和鲜重(g)。花径随时间的变化关系如图4所示；鲜重随时间的变化关系如图5所示。

由图4可知，A、B、C、D四组玫瑰在保鲜过程中花朵逐渐绽放，花径也相应地增大，其中A组玫瑰在保鲜前期花径的增幅最小，绽放程度最慢；而在后期玫瑰凋落的时候，A组玫瑰的花径最大，说明光照强度为30μmol·m^-2·s^-1时，对玫瑰的花径变化的改善作用最佳。。

由图5可知，A、B、C、D四组玫瑰在保鲜过程中的鲜重的变化趋势基本一致，都是先上升后下降。与B、C、D三组相比，在保鲜的过程中，A组玫瑰的鲜重保持的最稳定，在玫瑰凋落的时候，A组玫瑰的鲜重最大，说明光照强度为30μmol·m^-2·s^-1时，对玫瑰鲜重变化改善作用最佳。

实施例3

(2)将经过保鲜前处理之后的玫瑰的底部放入100℃的水中2.5s。

分别测量A、B、C、D四组中玫瑰在不同时间的可溶性糖含量(图6所示)、可溶性蛋白含量(图7所示)、脯氨酸含量(图8所示)、丙二醛含量(图9所示)以及花色苷含量(图10所示)。

由图6可知，玫瑰在保鲜过程中，可溶性糖含量总体呈下降趋势，与B、C、D三组相比，A组玫瑰的可溶性糖含量下降幅度最小并且在相同的时间段，A组玫瑰的可溶性糖含量均为最高，说明A组的光照强度和复合光配比对减缓可溶性糖的消耗的效果最佳，能够延缓玫瑰的衰老，延长玫瑰的保鲜时间。

由图7可知，玫瑰在保鲜过程中，可溶性蛋白含量总体呈下降趋势，与B、C、D三组相比，A组玫瑰的可溶性蛋白含量下降幅度最小，并且A组玫瑰的可溶性蛋白含量保持较高的水平，说明A组的光照强度和复合光配比对减缓可溶性蛋白的消耗的效果最佳，能够延缓玫瑰的衰老，延长玫瑰的保鲜时间。

由图8可知，玫瑰在保鲜过程中，脯氨酸含量总体呈上升趋势，这一结果与水分平衡值的下降密切相关，因为水分的缺失会造成脯氨酸量的升高。脯氨酸是玫瑰花受到外界环境胁迫时发生变化较大的物质之一，是目前研究植物逆境生理经常采用的一个指标。与B、C、D三组相比，在相同的时间段，A组玫瑰的脯氨酸含量处于最低的水平，说明A组的光照强度和复合光配比对减缓玫瑰水分的缺失的效果最佳，能够延缓玫瑰的衰老，延长玫瑰的保鲜时间。

由图9可知，玫瑰在保鲜过程中，丙二醛含量总体呈上升趋势。在花器官衰老过程中会发生膜脂过氧化，其产物丙二醛会严重损伤细胞膜，通常利用丙二醛作为细胞膜脂过氧化程度和玫瑰衰老指标。与B、C、D三组相比，A组玫瑰的丙二醛含量的上升幅度最小，并且在相同的时间段，A组玫瑰的丙二醛含量处于最低的水平，说明A组的光照强度和复合光配比对维持玫瑰细胞膜的完整的效果最佳，能够延缓玫瑰的衰老，延长玫瑰的保鲜时间。

由图10可知，玫瑰在保鲜过程中，花色苷含量总体呈下降趋势。与B、C、D三组相比，A组玫瑰的花色苷含量的下降幅度最小，并且在相同的时间段，A组玫瑰的花色苷含量处于最高的水平，说明A组的光照强度和复合光配比对减缓花色苷的降解的效果最佳，能够保持玫瑰的花色，延缓衰老，延长玫瑰的保鲜时间。

以上所述实施例的各技术特征可以进行任意的组合，为使描述简洁，未对上述实施例中的各个技术特征所有可能的组合都进行描述，然而，只要这些技术特征的组合不存在矛盾，都应当认为是本说明书记载的范围。

以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式，其描述较为具体和详细，但并不能因此而理解为对发明专利范围的限制。应当指出的是，对于本领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改进，这些都属于本发明的保护范围。因此，本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。

Claims

1.一种玫瑰鲜花保鲜方法，其特征在于：包括如下步骤：

对待保鲜的鲜花进行保鲜前处理；

将经过所述保鲜前处理之后的鲜花插花；

将所述插花之后的鲜花置于红蓝白复合光中；

在额定工作模式下，所述红光光源、所述蓝光光源、所述白光光源的光照强度的比例为1:1:1；所述复合光源的光照强度为25μmol·m^-2·s^-1~32μmol·m^-2·s^-1；

所述红光光源包括多个子红光光源，所述蓝光光源包括多个子蓝光光源，所述白光光源包括多个子白光光源；所述复合光源由多个所述子红光光源、多个所述子蓝光光源、多个所述子白光光源排列而成，并且任意相邻的子光源不同。

2.如权利要求1所述的保鲜方法，其特征在于：还包括在所述保鲜前处理之后、所述插花之前将经过所述保鲜前处理之后的鲜花的花茎的底部置于90℃~100℃的水中处理2s~3s的步骤。

3.如权利要求1所述的保鲜方法，其特征在于：在额定工作模式下，所述复合光源的光照强度为28μmol·m^-2·s^-1~32μmol·m^-2·s^-1。

4.如权利要求1所述的保鲜方法，其特征在于：在额定工作模式下，所述复合光源的光照强度为30μmol·m^-2·s^-1。

5.如权利要求1~4中任一项所述的保鲜方法，其特征在于：所述红光光源、所述蓝光光源、所述白光光源各自独立地选自半导体发光二极管光源或有机发光二极管光源。

6.如权利要求1~4中任一项所述的保鲜方法，其特征在于：在额定工作模式下，所述红光光源的波长为650nm~670nm。

7.如权利要求1~4中任一项所述的保鲜方法，其特征在于：在额定工作模式下，所述蓝光光源的波长为460nm~475nm。

8.如权利要求1~4中任一项所述的保鲜方法，其特征在于：在额定工作模式下，所述白光光源的色温为3800K~4000K。