CN109863154A - 用于膀胱癌成像和光动力治疗的多模态生物探针 - Google Patents

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Abstract

本文提供了基于具有特定官能团的卟啉‑镧系元素配合物的新一代PDT剂，其可以特异性地定位于具体肿瘤上，并且可以通过铒的NIR发射来监控它们的PDT过程。特别是，本文提供了多模态镧系元素‑卟啉PDT剂(Er‑R3)，其能够在Er‑R3与膀胱癌细胞中的整联蛋白αvβ3同种型结合后通过来自卟啉部分的1O2杀伤膀胱肿瘤细胞选择性，并同时提供荧光成像。

Description

用于膀胱癌成像和光动力治疗的多模态生物探针
对相关申请的交叉引用
本申请要求于2016年11月15日提交的美国专利申请号15/352,561和2016年10月5日提交的美国临时申请号62/404,222的权益，据此通过引用并入这两件申请的全部内容。
技术领域
本发明涉及基于卟啉-镧系元素配合物的新一代光动力治疗剂，以及可通过铒的NIR发射监控的光动力治疗过程。特别是，本发明提供了能够杀伤膀胱肿瘤细胞的多模态镧系元素-卟啉光动力治疗剂。
背景技术
光动力疗法(PDT)正在作为新型癌症治疗方式出现，以帮助患者延长寿命并改善其生活质量而不会引起长期副作用。由于目前的技术限制和缺乏实际进步，PDT仍然未能在社会中得到应有的普及，因为它仅提供于一些治疗中心中，并且在很少的临床试验中进行研究。最近，在三种PDT光增敏剂，例如氨基乙酰丙酸(ALA)，获得美国食品和药品管理局(FDA)批准后，随着对PDT作为局部癌症(即非转移性癌症)以及皮肤和口腔癌前病变的有价值的治疗选项的广泛认可，PDT的复兴已经开始。然而，传统的PDT仍具有若干限制和缺点：(i)它只能治疗光线能够到达的患病区域，即皮肤上或皮肤下；(ii)目前使用的PDT药物可使人们对光线非常敏感，因此在将药物放入身体中或放在身体上后必须采取特别的预防措施；(iii)由于生理条件的变化和细胞毒性单线态氧的缺口分布而发生不利的体外/体内反应；(iv)非特异性治疗性质可能在PDT治疗期间危害正常细胞。
在这方面，另一类新的有前途的PDT剂——基于卟啉的部分已经得到了全世界科学家的广泛研究，以开发对其他类型的癌症和疾病(特别是皮肤、膀胱、口腔和大脑的癌症和疾病)有用且有效的光动力疗法。就单线态氧(1O2)产生的光穿透深度而言，若干卟啉部分已经成功地显示出实现近红外(NIR)激发(通过多光子/二次谐波产生)的可能性。NIR光子可以穿透深层并迅速从组织中发射而不会导致细胞损伤，其中其强的双光子吸收特性在约860nm处。在文献和参考专利申请中，公开了卟啉(porphyrinato)金属配合物，其可用作体内抗癌鱼雷和1O2爆炸性弹药，该体内抗癌鱼雷配备有用于成像和辨别肿瘤细胞特异性的雷达的可见光至NIR发射。然而，这些PDT剂的癌症选择性仍未得到解决，因此需要提供具有更好的癌症选择性的PDT剂。
本发明的目的是提供可以特异性定位于具体肿瘤的PDT探针，并且可以通过NIR发射监控它们的PDT过程。
发明概述
在本发明的第一方面，提供了用于癌细胞的光动力治疗和成像的组合物，其包含式(I)的卟啉钆(gadolinium porphyrinate)配合物(Gd-N)或其药学上可接受的盐：
其中Ln＝Gd。
在本发明第一方面的第一实施方案中，提供了用于癌细胞的光动力治疗和成像的组合物，其中癌细胞具有阴离子细胞膜。
在本发明的第二方面，提供了癌细胞的光动力治疗和成像的方法，包括向有需要的受试者施用根据本发明第一方面的组合物并向所述有需要的受试者的癌细胞辐射辐射源。
在本发明第二方面的第一实施方案中，通过静脉内或通过注射将所述组合物施用到所述癌细胞部位。
在本发明第二方面的第二实施方案中，提供了癌细胞的光动力治疗和成像的方法，包括向有需要的受试者施用根据本发明第一方面的组合物，并用辐射源辐射所述有需要的受试者的癌细胞，其中所述辐射源是波长为约860nm的光源。
在本发明的第三方面，提供了合成式(I)的化合物的方法，包括根据反应方案1的步骤：
其中，
步骤a)：从Gd[N(SiMe3)2]3·[Li(THF)3Cl]x的溶液中除去溶剂，以形成LiCl的沉淀物；向LiCl的沉淀物中加入二氯甲烷(CH2Cl2)以形成第一混合物，其中将第一混合物离心，以从所述第一混合物中分离出透明层；将透明层转移到溶解于甲苯溶液中的卟啉游离碱(porphyrin free base)三氟丙基-三甲氧基硅烷(TFP-TMS)中，以形成第二混合物；回流第二混合物直至卟啉游离碱与金属离子配位形成回流的第二混合物；将回流的第二混合物冷却至室温，以形成冷却的回流的第二混合物；向冷却的回流的第二混合物中加入无水Na{(η5-C5H5)Co[P(＝O)(OMe)2]3}，以形成第三混合物；搅拌第三混合物；从第三混合物中除去溶剂，以形成第一残余物；将第一残余物溶解于CH2Cl2中，以形成第四混合物；用CH2Cl2/己烷作为洗脱液将第四混合物过滤并进行柱层析，以产生Gd-TMS；
步骤b)：向Gd-TMS在CH2Cl2中的溶液中加入四丁基氟化铵，并搅拌Gd-TMS溶液以产生化学反应；在化学反应完成后，使溶液通过柱层析以形成第五混合物；从第五混合物中除去溶剂，以获得中间体；将中间体和4-碘苯酚溶于无水四氢呋喃和三乙胺中，以形成第六混合物；将第六混合物与氮混合，以形成氮化的第六混合物；向所述氮化的第六混合物中加入Pd(PPh3)4和CuI，以形成第七混合物；在氮气氛下将第七混合物在至少35℃搅拌至少10小时，以产生搅拌的第七混合物；从搅拌的第七混合物中除去溶剂，以产生第二残余物；用CH2Cl2/甲醇作洗脱液，用柱层析法纯化第二残余物，以产Gd-OH；
步骤c)：向Gd-OH和四乙二醇二碘化物在无水N,N-二甲基甲酰胺中的溶液中加入无水K2CO3，以形成第八混合物；在氮气氛下将所述第八混合物加热至至少80℃，持续至少8小时，以形成加热的第八混合物；从加热的第八混合物中除去溶剂，以形成第一粗产物；利用柱层析法，通过二氯甲烷/甲醇的溶析来纯化第一粗产物，以产生Gd-I；和
步骤d)：向Gd-I在无水DMF中的溶液中加入无水Net3，以形成第九混合物；在氮气氛下将第九混合物加热至至少85℃，持续至少24小时，以形成加热的第九混合物；从加热的第九混合物中除去溶剂，以获得第二粗产物；以CH2Cl2/CH3OH作为洗脱液，利用柱层析法纯化第二粗产物，以除去未反应的Gd-I和其他杂质，并用CH2Cl2/CH3OH作为洗脱液进一步纯化，以获得Gd-N。
在本发明的第四方面，提供了多模态镧系元素-卟啉PDT剂(Er-R3)，当Er-R3与膀胱癌细胞中的整联蛋白αvβ3同种型结合后，能够通过来自卟啉部分的1O2杀伤膀胱肿瘤细胞选择性且同时提供荧光成像。
在本发明的第五方面，提供了用于癌细胞的光动力治疗和成像的组合物，其包含由以下分子式所表示的铒卟啉基配合物或镱卟啉基配合物或钆卟啉基配合物或其药学上可接受的盐：
其中Ln是Er、Yb或Gd；且
Rn是多肽，其具有选自SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2以及SEQ ID NO:3的氨基酸序列；或
由选自Gd1、Gd2、Gd3、Gd4以及Gd5的分子式所表示的水溶性卟啉基钆配合物：
其中，
Rn是
具有选自SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2以及SEQ ID NO:3的氨基酸序列的多肽。
在本发明第五方面的第一实施方案中，提供了一种组合物，其中铒卟啉基配合物与整联蛋白αvβ3同种型特异性肽缀合。
在本发明第五方面的第二实施方案中，提供了一种组合物，其中铒卟啉基配合物与肽RrRk(SEQ ID NO:4)缀合。
在本发明第五方面的第三实施方案中，提供了一种组合物，其中铒卟啉基配合物与整联蛋白αvβ3同种型特异性肽序列(-cGRLKEKKc-)(SEQ ID NO:5)缀合。
在本发明第五方面的第四实施方案中，提供了一种组合物，其中铒卟啉基配合物与肽RrRk(SEQ ID NO:4)和整联蛋白αvβ3同种型特异性肽序列(-cGRLKEKKc-)(SEQ ID NO:5)两者缀合。
在本发明第五方面的第五实施方案中，提供了包含铒卟啉基配合物的组合物，所述铒卟啉基配合物由下述分子式表示：
其中Ln是Er，且Rn是具有SEQ ID NO:3的氨基酸序列的多肽。
在本发明第五方面的第六实施方案中，提供了一种组合物，其中癌细胞包括膀胱癌细胞、宫颈癌细胞和肺癌。
在本发明的第六方面，提供了癌细胞的光动力治疗和成像的方法，包括向有需要的受试者施用所述组合物，并用辐射源辐射有需要的受试者的癌细胞。
在本发明第六方面的第一实施方案中，提供了一种方法，其中通过静脉内或通过注射将所述组合物施用到所述癌细胞的部位。
在本发明第六方面的第二实施方案中，提供了一种方法，其中所述辐射源是波长在卟啉的Q带中的光源。
在本发明第六方面的第三实施方案中，提供了一种方法，其中所述辐射源是波长超过550nm或者为860nm的光源。
在本发明第六方面的第四实施方案中，提供了一种方法，其中使用荧光成像、NIR成像或MRI成像来进行成像。
在本发明第六方面的第五实施方案中，提供了一种方法，其中当Ln为Gd或Ln是Gd1、Gd2、Gd3、Gd4或Gd5时，使用MRI成像进行成像。
在本发明的第七方面，提供了合成根据权利要求1所述组合物的方法，其中Ln＝Er或Ln＝Yb，所述方法包括下述反应方案的步骤：
其中，
通过以下步骤合成所述化合物Por(THP-TMS)，所述步骤包括：
在氩气氛下，将吡咯、五氟苯甲醛和4-[2-(三甲基硅烷基)乙炔基]苯甲醛6溶解于CH2Cl2中，以产生第一溶液；
使第一溶液静置至少10分钟；
向第一溶液中加入BF3.O(Et)2；
在室温将第一溶液搅拌至少1小时；
向第一溶液中加入DDQ(2,3-二氯-5,6-二氰基-1,4-苯醌)；
在室温将第一溶液搅拌至少另外1小时；
在真空下从第一溶液中除去溶剂，以产生第一混合物；
使第一混合物通过硅胶柱(己烷-二氯甲烷)，在减压下浓缩，以产生5,10,15-三(五氟苯基)-20-[4-{2-(三甲基硅烷基)乙炔基}苯基卟啉]或Por(THP-TMS)；
通过以下步骤合成所述化合物Ln-1，所述步骤包括：
在约0℃将Ln[N(SiMe3)2]3·x[LiCl(THF)3]:HN(SiMe3)2溶解于THF中，以产生第二溶液；
在至少30分钟时间段内将n-BuLi缓慢加入第二溶液中；
将第二种溶液搅拌至少12小时；
将第二溶液转移到具有悬浮于THF中的LnCl3的Schlenk烧瓶中，以产生第二混合物；
将第二混合物搅拌至少24小时，直至所有固体LnCl3消失而产生Ln[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl](x＝3～5)，其中Ln＝Er或Ln＝Yb；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Yb-1，所述步骤包括：
将Yb[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl](x＝3～5)转移到Schlenk烧瓶；
在真空下从Yb[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl](x＝3～5)中除去溶剂，以产生第一残余物；
向第一残余物中加入CH2Cl2，用于沉淀LiCl，以产生第三混合物；
将第三混合物离心，直至产生透明层；
将透明层转移到另一个具有溶解于甲苯中的无水Por(THP-TMS)游离碱的Schlenk烧瓶中，以产生第三溶液；
回流第三溶液，直至大部分游离碱与金属离子配位；
向第三溶液中加入无水NaLOMe[LOMe-((环戊二烯基)三(二甲基亚磷酸酰氧基(dimethylphosphito))-钴酸盐或阴离子三足配体)，以产生第四混合物；
将第四混合物搅拌至少另外12小时；
将第四混合物冷却至室温；
在真空下从第四混合物中除去溶剂，以产生第二残余物；
将第二残余物溶解于CHCl3中；
用CHCl3/石油醚作为洗脱液在硅胶上过滤并层析溶解的第二残余物；
进一步将层析产物溶解于CH2Cl2中；并过滤溶液以产生化合物Yb-1。
通过以下步骤进一步合成所述化合物Er-1，所述步骤包括：
与Yb-1的步骤相同，用Er[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl](x＝3～5)代替Yb[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl](x＝3～5)；
通过以下步骤合成所述化合物Ln-2，其中Ln＝Yr，所述步骤包括：
向Yb-1的CH2Cl2溶液中加入TBAF，以产生第五溶液；
将第五溶液搅拌至少30分钟；
通过TLC监控第五溶液的反应进程；
反应完成后，使第五溶液通过短硅胶柱；
从第五溶液中除去溶剂，以产生Yr-2；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Er-2，所述步骤包括：
与Yb-2的步骤相同，用Er-1代替Yb-1；
通过以下步骤合成所述化合物Ln-4，其中Ln＝Yr，所述步骤包括：
在氮气下在干燥的烧瓶中混合Pd(PPh3)4、CuI、Yb-2以及4-碘苯甲酸，以产生第五混合物；
向第五混合物中加入THF和Net3，并用氮气使所述第五混合物脱气；
将所述第五混合物在至少40℃搅拌至少12小时；
在减压下从所述第五混合物中除去溶剂，以产生第三残余物；
通过层析法纯化第三残余物；
用CH2Cl2/甲醇洗脱纯化的第三残余物，以产生洗脱的化合物；
将洗脱的化合物、EDCI、NHS在干燥的烧瓶中并在氮气下混合，以产生第六混合物；
向第六混合物中加入无水DMF；
在室温将第六混合物搅拌至少48小时；
从搅拌的第六混合物中除去溶剂，以产生第四残余物；
用二乙醚重结晶第四残余物并干燥晶体，以产生Yb-4；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Er-4，所述步骤包括：
与Yb-4的步骤相同，用Er-2代替Yb-2；
通过以下步骤合成所述化合物Yb-R1，所述步骤包括：
将Yb-4在无水DMF中的搅拌溶液与N,N’-二异丙基乙胺(DIPEA)混合，以产生第七混合物；
向第七混合物中加入肽R1；
使第七混合物在室温反应至少24小时；
在真空下从第七混合物中除去溶剂，以产生干燥的第五残余物；
用二乙醚使干燥的第五残余物重结晶至少三次；
干燥重结晶的干燥第五残余物，以产生Yb-R1；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Yb-R2，所述步骤包括：
与Yb-R1的步骤相同，用R2代替R1；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Yb-R3，所述步骤包括：
与Yb-R1的步骤相同，用R3代替R1；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Er-R1，所述步骤包括：：
与Yb-R1的步骤相同，用Er-4代替Yb-4；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Er-R2，所述步骤包括：：
与Yb-R2的步骤相同，用Er-4代替Yb-4；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Er-R3，所述步骤包括：：
与Yb-R3的步骤相同，用Er-4代替Yb-4。
在本发明的第八方面，提供了合成根据权利要求1所述组合物的方法，包括以下反应方案的步骤：
其中，
通过以下步骤合成所述化合物Por-TMS，所述步骤包括：
将4-((三甲基硅烷基)乙炔基)苯甲醛与吡啶-4-甲醛在丙酸中混合，以产生第八混合物；
将第八混合物在至少130℃搅拌至少半小时；
将吡咯滴加到第八混合物中，同时将温度升至至少140℃；
在露天环境将第八混合物搅拌至少30分钟；
将第八混合物冷却至室温；
在减压下从第八混合物中除去溶剂，以产生粗产物；
将粗产物溶解于CH2Cl2中，以产生第六溶液；
通过柱层析法在硅胶柱CH2Cl2/甲醇上纯化第六溶液，以产生Por-TM；通过以下步骤合成所述化合物Gd[N(SiMe3)2]3·x[LiCl(THF)3]，所述步骤包括：
将HN(SiMe3)2在约0℃溶解于THF中，以产生第七溶液；
在至少30分钟的时间内向第七溶液中加入n-BuLi；
将第七溶液搅拌至少12小时，直至获得澄清的浅黄色溶液；
将第七溶液转移到具有悬浮于THF中的GdCl3的Schlenk烧瓶中，以产生第九混合物；
将第九混合物搅拌至少24小时，直至所有固体GdCl3消失，以产生所得溶液Gd[N(SiMe3)2]3·x[LiCl(THF)3](x＝3～5)；
通过以下步骤合成所述化合物Gd-1-L1，所述步骤包括：
将Gd[N(SiMe3)2]3·x[LiCl(THF)3](x＝3～5)转移到Schlenk烧瓶中，并在真空下除去其中的溶剂，以产生第六残余物；
向第六残余物中加入CH2Cl2以沉淀LiCl，从而产生第十混合物；
将第十混合物离心，直至产生透明层；
将透明层转移到另一个具有溶解于甲苯中的无水Por-TMS游离碱的Schlenk烧瓶中，以产第八溶液；
回流第八溶液，直至大部分游离碱与金属离子配位；
向第八溶液中添加无水NaL1(0.1g,0.22mmol)[L1 _((环戊二烯基)三(二甲基亚磷酸酰氧基)-钴酸盐，阴离子三足配体)，以产生第十一混合物；
将第十一混合物搅拌至少另外12小时；
将第十一混合物冷却至室温；
在真空下从第十一混合物中除去溶剂，以产生第七残余物；
将第七残余物溶解于三氯甲烷中；
使用三氯甲烷/甲醇醚作为洗脱液在硅胶上过滤并层析所述溶解的第二残余物；
将层析产物进一步溶解于CH2Cl2中；并过滤溶解的产物，以产生化合物Gd-1-L1。
通过以下步骤合成所述化合物Gd-1-L2，所述步骤包括：
与Gd-1-L1的步骤相同，用KL2(三(1-吡唑基)硼氢化钾)代替NaL1；
通过以下步骤合成所述化合物Gd-3，所述步骤包括：
向Gd-1-L1的DCM溶液中加入TBAF，以产生第九溶液；
将第九溶液搅拌至少30分钟；
通过TLC监控第九溶液的反应；
使用DCM使第九溶液通过短硅胶柱以除去其中的溶剂，从而产生纯产物；
将纯产物和Pd(PPh3)4、CuI、4-碘苯甲酸置于干燥的烧瓶中和氮气下，以产生第十二混合物；
向第十二混合物中加入THF和Net3；
用氮气使第十二混合物脱气；
将第十二混合物在至少40℃的温度搅拌至少12小时；
在减压下从第十二混合物中除去溶剂，以产生第八残余物；
通过层析法纯化第八残余物；
用CH2Cl2/甲醇洗脱纯化的第八残余物；
将洗脱的纯化的第八残余物、EDCI、NHS置于干燥的烧瓶中和氮气下，以产生第十三混合物；
向第十三混合物中加入无水DMF；
将第十三混合物在室温搅拌至少48小时；
从第十三混合物中除去溶剂，以产生第九残余物；
用二乙醚重结晶第九残余物，并干燥所述晶体，以产生Gd-3；
将Gd-3溶解于DMF中；
向溶解的Gd-3中加入CH3I；
将溶解的Gd-3搅拌至少5小时；
从搅拌的溶解的Gd-3中除去溶剂，以产生第十残余物；
用醚DCM洗涤第十残余物，以产生纯Gd-3；
通过以下步骤合成所述化合物Gd-4，所述步骤包括：
与Gd-3的步骤相同，用Gd-1-L2代替Gd-1-L1；
通过以下步骤合成所述化合物Gd-3-Rn，所述步骤包括：
将Gd-3在无水DMF中的搅拌溶液与N,N'-二异丙基乙胺(DIPEA)混合，以产生第十四混合物；
向第十四混合物中添加肽Rn；
使第十四混合物在室温反应至少24小时；
在真空下从第十四混合物中除去溶剂，以产生干燥的第十一残余物；
用二乙醚重结晶干燥的第十一残余物至少三次，并进一步干燥所得产物，以产生Gd-3-Rn；
通过以下步骤合成所述化合物Gd-4-Rn，所述步骤包括：
与Gd-3-Rn的步骤相同，用Gd-4代替Gd-3。
结合本发明的具体方面、实施方案或实施例描述的特征、整体、特性、化合物、化学部分或组应理解为适用于本文描述的任何其他方面、实施方案或实施例，除非与其不相容。
本领域技术人员应当理解，除了具体描述的那些之外，本文描述的本发明易于进行变化和修改。
本发明包括所有这些变化和修改。本发明还包括说明书中单独或统一提及或指出的所有步骤和特征，以及所述步骤或特征的任何和所有组合或任何两个或更多个所述步骤或特征。
在整个说明书中，除非上下文另有要求，否则词语“包括/包含(comprise)”或诸如“包括/包含(comprises、comprising)”等变型应理解为暗示包括所述整数或整数组，但不排除任何其他整数或整数组。还应注意，在本公开中，特别是在权利要求和/或段落中，诸如“包括/包含(comprises、comprised、comprising)”等术语可以具有美国专利法赋予它的含义；例如，它们可以表示“包括(includes、included、including)”等；并且诸如“基本上由…组成(consisting essentially of、consists essentially of)”等术语具有美国专利法赋予它们的含义，例如，它们允许未明确列举的元素，但排除现有技术中发现的或影响本发明的基本或新颖特征的元素。
此外，在整个说明书和权利要求书中，除非上下文另有要求，否则词语“包括(include)”或诸如“包括(includes、including)”等变型应理解为暗示包括所述整数或整数组，但是不排除任何其他整数或整数组。
本文使用的所选术语的其他定义可以在本发明的详细描述中找到，所述其他定义适用于全文。除非另有定义，否则本文所用的所有其他技术术语具有与本发明所属领域的普通技术人员通常理解的含义相同的含义。
通过审阅随后的描述，本发明的其他方面和优势对于本领域技术人员而言将是显而易见的。
附图简述
结合附图，根据本发明的以下描述，本发明的上述和其他目的以及特征会变得显而易见，在所述附图中：
图1A显示了癌细胞特异性光动力治疗剂(Gd-N)及其对照类似物Yb-N、Gd-RhB和Yb-RhB的分子结构。
图1B是在HeLa细胞中孵育15小时后的Gd-N的3D体外成像。
图1C和图1D分别显示了Gd-N在癌细胞(HeLa)和正常细胞(WPMY-1)中的亚细胞定位的差异。
图2显示了Gd-N(HEPES缓冲溶液，10μM,λex＝430nm,pH＝7.4)的发射光谱和1O2量子产率测量结果(1O2CHCl3的近IR磷光光谱，10μM,λex＝430nm,abs(λex)＝0.03)。以相似的方式测量Yb-N和H2TPP作为对照。
图3显示了在孵育2小时后，肿瘤细胞HeLa和正常细胞MRC5(作为对照)中的Gd-N和Gd-RhB的体外成像。在860nm激发后触发PDT效应。A)HeLa中的Gd-RhB；b)MRC-5中的Gd-RhB；c)HeLa中的Gd-N；d)MRC-5中的Gd-N(1μM)。
图4显示了Gd-N、Gd-RhB(对照)和Yb-N(对照)对(A)癌细胞(HeLa)和(B)正常细胞(QSG 7701)的光细胞毒性。Gd-N(1O2可用，肿瘤特异性，在癌细胞中强光细胞毒性，但在正常细胞中没有光细胞毒性)，Gd-RhB(对照-1O2可用，非肿瘤特异性，强癌细胞和正常细胞光细胞毒性)和Yb-N(对照，1O2不可用，在癌细胞和正常细胞无光细胞毒性。使用1μM缀合物和0-1J/cm2的各种光剂量获得光细胞毒性曲线；在孵育24小时后进行MTT测定。(37℃,5％CO2)。
图5显示了在四种肿瘤细胞系(HeLa、SK-N-SH、HK-1和A549)和三种正常细胞系(QSG 7701、MRC-5、WPMY-1)中肿瘤特异性Gd-N以及两个对照Yb-N和Gd-RhB的体外光细胞毒性(λex＝430nm)。
图6显示了Gd-N作为癌细胞特异性PDT剂的体内研究。A)使用860nm激光激发PDT后肿瘤的代表性总图像，并将候选物分成四组(第1组：Yb-N；第2组：Gd-N；第3组：Yb-RhB；第4组：Gd-RhB)；b)a)中肿瘤体积的测量结果；c)通过ICP-MS研究，Gd-N的体内生物分布；d)c)中肿瘤样品的双光子显微镜图像；e)Gd-N的体内肿瘤抑制试验；f)通过尾静脉注射，经由Gd-N诱导的1O2的体内肿瘤抑制。
图7显示了Gd-N和Gd-RhB诱导的1O2激活了凋亡蛋白家族抑制剂和mTOR通路。(A)HeLa细胞的蛋白质印迹，所述细胞被给予1μM Gd-N或Gd-RhB并用0.5J/cm2辐射。未处理的样品或不含化学品的样品作为对照。(B)使用Gel-Pro Analyzer软件半定量测量(A)中的蛋白质印迹条带的细胞蛋白质变化，并显示为与β-肌动蛋白的比率(总蛋白质的加载对照)。通过单因素方差分析计算未处理的组和Gd-N或Gd-RhB加激光组之间的P值。
图8显示了A)Gd-N的高分辨率MALDI-TOF质谱；B)分子离子Gd-N的同位素模式；C)分子离子Gd-N的计算的MS模式(使用软件：IsoPro 3.0)。
图9显示了Gd-N和Gd-RhB的吸收光谱。
图10显示了(A)卟啉钆配合物(Gd-N)和(B)卟啉镱配合物(Yb-N)中能量吸收、迁移和发射过程的示意图。
图11显示了在DMSO(5μM)中在800nm激发的Gd-N(351GM)和Gd-RhB(418GM)的开孔Z扫描迹线。激光束的平均功率为0.271mW。
图12显示了(a)Ln-Rn的分子结构，(b)Ln-Rn在430nm激发的情况下在水溶液中的可见光光谱(浓度＝1M，Ln＝Er或Yb，n＝1、2和3)和(c)Ln-Rn在430nm激发的情况下在水溶液中的近红外发射光谱(浓度＝1M，Ln＝Er或Yb，n＝1、2和3)。
图13显示了人膀胱癌(T24和5637)细胞、正常肺成纤维细胞(MRC-5)和人宫颈癌细胞(HeLa)中Er-Rn和Yb-Rn卟啉配合物的亚细胞定位。
图14显示了通过流式细胞术分析的Er-Rn和Yb-Rn卟啉配合物在孵育0、3、6和24小时的5637、T24、HeLa和MRC-5细胞中的细胞摄取，如箭头所示。y轴和x轴对应于FL3通道中的细胞计数和荧光强度(波长>650nm)。
图15显示了Er-Rn和Yb-Rn卟啉配合物与ALA在用550nm长通滤波器以10J cm-2辐射的(A)T24、(B)HeLa和(C)MRC-5细胞中的体外光细胞毒性比较，D)在T24、HeLa和MRC-5细胞中，在存在和不存在辐射的情况下Er-Rn和Yb-Rn卟啉配合物和ALA的IC50值的总结。
图16显示了配合物的HPLC色谱图。洗脱条件：柱，Agilent ZORBAXSB-C18(4.6×150mm，粒径5；流速，1.0mL/min；梯度洗脱；检测波长，430nm。保留时间：(A)Yb-4，7.24min(分钟)；(B)Er-4，7.23min；(C)Yb-R1，10.00min；(D)Yb-R2，10.21min；(E)Yb-R3，10.01min；(F)Er-R1，9.66min；(G)Er-R2，10.09min；和(H)Er-R3，9.80min。
图17显示了Por(THP-TMS)的MHz-1H-NMR(CDCl3)光谱。
图18显示了Por(THP-TMS)的MALDI-TOF光谱(THP-TMS)。
图19显示了Yb-1的400MHz-1H-NMR(CDCl3)光谱。
图20显示了Yb-1的MALDI-TOF光谱。
图21显示了Er-1的400MHz-1H-NMR(CDCl3)光谱。
图22显示了Er-1的MALDI-TOF光谱。
图23显示了Yb-2的400MHz-1H-NMR(CDCl3)光谱。
图24显示了Yb-2的MALDI-TOF光谱。
图25显示了Er-2的400MHz-1H-NMR(CDCl3)光谱。
图26显示了Er-2的MALDI-TOF光谱。
图27显示了Yb-4的400MHz-1H-NMR(CDCl3)光谱。
图28显示了Yb-4的MALDI-TOF光谱。
图29显示了Er-4的400MHz-1H-NMR(CDCl3)光谱。
图30显示了Er-4的MALDI-TOF光谱。
图31显示了Yb-R1的MALDI-TOF光谱。
图32显示了Yb-R2的MALDI-TOF光谱。
图33显示了Yb-R3的MALDI-TOF光谱。
图34显示了Er-R1的MALDI-TOF光谱。
图35显示了Er-R2的MALDI-TOF光谱。
图36显示了Er-R3的MALDI-TOF光谱。
图37通过用溶酶体示踪剂(Lyso Tracker)绿染色显示了Er-Rn和Yb-Rn卟啉配合物在(A)5637细胞、(B)T24细胞、(C)HeLa细胞和(D)MRC-5细胞中的亚细胞定位。
图38A显示了现有细胞器/DNA特异性镧系元素配合物的NIR发射。间-吡啶鎓-取代的卟啉基镱配合物在加入DNA后显示出响应性NIR发射；图38B显示了水溶性和线粒体特异性卟啉基Yb(III)配合物(Yb-2)的NIR发射。
图39A显示了Yb-N对磷脂酰丝氨酸和癌细胞的亲和力；与磷脂酰丝氨酸的强结合和通过靶向阴离子磷脂膜分化癌细胞的能力；图39B显示了作为体外和体内肿瘤特异性PDT剂作为PDT剂的有机金属配合物的开发。
图40显示了用作PDT剂、光学试剂以及MRI剂的多模态卟啉基金属配合物A)Gd-1、B)Gd-2、C)Gd-3-R1以及D)Gd-3-N的分子结构。
图41显示了Gd-3-R1的细胞摄取的流式细胞术分析。在四种卟啉配合物中，Gd-3-R1在癌细胞中具有最快的摄取率，并且对(B)膀胱癌T24细胞而不是(A)正常的MRC-5细胞具有更好的选择性。
图42显示了在430nm激发下辐射的Gd-3-R1配合物和H2TPP的发射强度；与PNAS,2014,E5492–E5497报道的H2TPP相比，Gd-3-R1配合物质子化后类似的1O2和发射量子产率，在430nm激发时其分别为约70％1O2量子产率和46％发射量子产率。
图43显示了各种浓度的Gd-3-R1和Gd-DOTA的t1弛豫率；Gd-3-R1的t1弛豫率是Gd-DOTA的3倍。
图44显示了以每克不同组织的ppm水平表示的Gd-1、Gd-2、Gd-3-R1和Gd-3-N的浓度。
图45显示了随不同取代基的变化(改善水溶性)和有机金属/分子帽(用于稳定性/弛豫率)的变化，结构(A)Gd-3-Rn、(B)Gd-4-Rn和(C)Gd-5-Rn。
图46显示了图40和45的配合物Gd-3-Rn和Gd-4-Rn中间体的反应方案。
图47显示(A)Gd-5-Rn、(B)Gd-3-Rn、(C)Gd-4-Rn、(D)Gd-6-Rn的结构实现了更好的MRI和PDT效果。(具有更好的细胞渗透性、t1弛豫率以及用于光学成像的NIR发射)。
图48显示了用于光学成像和膀胱癌抑制的多模态水溶性镧系元素基PDT剂的开发。
图49A通过比较Gd-DOTA和Gd-3-R1(图49B)的体内磁共振图像显示了对(T24膀胱癌，异种移植肿瘤)的选择性。
发明详述
本发明的范围不限于本文所述的任何具体实施方案。提供以下实施方案仅用于举例说明。
在不希望受理论约束的情况下，本发明的发明人已经开发了卟啉钆(Gd-N；图1A)，其是基于Yb-N合成的一种PDT剂，并且，其在光激发下显示出51％的单线态氧量子产率伴随卟啉的特征性NIR发射。(图1B-D)综合研究揭示，Gd-N能够在给药后的前6小时通过肿瘤细胞的阴离子磷脂酰丝氨酸膜识别肿瘤细胞。在施用Gd-N、某些波长下的激光辐射后，Gd-N进入肿瘤细胞，并且除了表现出TP诱导的NIR发射之外还产生1O2。体内小鼠模型和生物分布测定的结果进一步说明，在将Gd-N简单注射到血管中后，发现Gd-N位于肿瘤中。在1O2从卟啉释放后，发现实体瘤在24小时处理后减小。就本领域当前所知，缺乏体内镧系元素基PDT剂。本发明提供了新的PDT剂Gd-N及其在实际癌症追踪、成像和治疗中的用途。
结果和讨论
反应方案1和图8显示了Gd-N的详细合成和表征，Gd-N是本发明人先前工作中报道的镱配合物(Yb-N)的模体(motif)结构。Gd-N和Yb-N的存在于配合物中的镧系元素离子的结构不同(与Gd-N连接的载体也与Yb-N相同)。不言而喻，卟啉与不同镧系元素的配位不仅可以引起NIR发射的变化，而且可以引起1O2产生的变化。(图2和图9)这种现象原则上是起因于金属中心和配体之间更好的轨道重叠导致更好的能量转移(即Yb的成键轨道因此更优选且更相容地与卟啉的轨道重叠，Yb由比Gd更小的原子半径组成)这一事实。由镧系元素施加的重原子效应也能增加三线态衰变速率并导致卟啉系统的更高的三线态量子产率。根据光谱研究，Yb-N的单线态氧量子产率经测量为0％，而Gd-N经测定为51％。计算分别基于(i)由两种配合物产生的1O2(在1270nm处)的NIR磷光强度和(ii)镱2F5/2(约10200cm-1)和钆6P7/2(约32000cm-1)的最低激发态。应当注意，后面的6P7/2的能级远高于卟啉单元的单线态/三线态能级(单线态＝约23200和15300cm-1；三线态＝12500cm-1)。卟啉和Gd之间存在大的能隙，没有能量从卟啉转移到Gd；因此，所获得的能量可仅仅以光的形式消散或用于形成单线态氧，使得可以直接测定1O2量子产率。(图10(A))Yb的情况完全不同。由于卟啉和Yb之间的能隙较小，卟啉单元吸收的大部分能量只会简单地被有效地转移到镱(通过重原子效应)并且仅仅提供特征性的f-f发射。(图10(B))这两个百分比已经清楚地表明，Gd-N的卟啉吸收的能量中有近一半会参与1O2的产生，而其余的能量通常用于卟啉的NIR发射；相比之下，对于Yb-N，在相同的光激发下，镱在1.08μm处的f-f发光是主要的能量消耗过程。(分别在430nm和860nm处的线性和双光子激发；Gd-N和Yb-N的双光子吸收截面类似，为约351GM(图11)。
在肿瘤选择性、细胞毒性和光细胞毒性、成像、PDT功效以及生物分布方面，已经完成了有关体外，特别是体内Gd-N的真实PDT应用的研究。Gd-N对肿瘤和正常细胞的选择性明显不同。如图1B-1D所示，在HeLa癌细胞中，在孵育2小时后，可以在周围，即膜表面上观察到来自Gd-N的卟啉的强红色发射。在孵育超过15小时后，几次红色发射进入并在内部散射到细胞质中。然而，在正常细胞MRC-5中，即使在孵育12小时后，也不能在细胞表面上或细胞内检测到发射。为了进行公平的比较，已经合成了Gd-RhB，用于对照实验。罗丹明B(RhB)是众所周知的通常用于缀合的线粒体载体。在相同的实验条件下(孵育时间、浓度、细胞系和激光功率)，本发明人发现在正常细胞和癌细胞的线粒体中的Gd-RhB发射，并且这一观察结果成为Gd-N的肿瘤特异性性质的明确认知的和令人信服的证据。(图3)通过MTT测定，随后可以针对两种细胞系测定三种配合物即Gd-N、Yb-N和Gd-RhB在黑暗中的细胞毒性。它们的IC50值在癌细胞(HeLa)中分别为0.78、0.80和0.65mM，在正常细胞(MRC-5)中分别为0.70、0.70和0.45mM。与Gd-N和Yb-N相比，Gd-RhB对癌细胞/正常细胞的暗细胞毒性的巨大差异的根本原因在很大程度上可能是由于Gd-RhB的非选择性。再一次，本发明的Gd-N表现出重要的肿瘤选择性。使用体外共聚焦显微镜和光细胞毒性测定评估三种配合物的体外PDT效应。将Gd-N、Yb-N和Gd-RhB配合物施用在HeLa细胞和MRC-5细胞中6小时，然后使其经受860nm下的激发以触发任何PDT效应。(三种配合物均可用于TP诱导的体外成像，其中TP截面为约351GM；鉴于共聚焦光谱仪的局限性，仅监控了卟啉在600nm至750nm之间的发射)。在图3中，可以注意到Gd-RhB在线粒体中的发射。在适当的激光诱导后，仅产生少量的1O2，但癌细胞在几分钟内被杀伤；实际上，正常细胞在相同条件下也会迅速被杀伤。因此，Gd-RhB的PDT效应足够有效，但显然是非选择性的，因此不是期望的；它在癌细胞和正常细胞的线粒体内积聚，非选择性地消灭它们。尽管Yb-N是癌症特异性的，但它不能产生任何1O2，这限制了任何PDT实践。红色发射性Gd-N不仅识别并定位于肿瘤细胞的阴离子膜上，而且还进入细胞质的某些部分，并在每分钟闪烁5秒的9分钟光剂量下通过1O2诱导癌细胞凋亡。在一定的激光照射后，Gd-N触发癌细胞死亡需要更多的时间；然而，正常细胞中没有明显的细胞死亡，远远胜过其缓慢响应的缺点。
在0.25-1J/cm2的不同光剂量下，测量剂量范围为0.2-1μM的Gd-N、Yb-N和Gd-RhB在癌细胞和正常细胞中的浓度依赖性光细胞毒性。获得的光剂量响应曲线显示在图4中。在HeLa癌细胞中，Gd-RhB和Gd-N表现出强的光细胞毒性，而Yb-N(没有单线态氧)没有光细胞毒性(图4(A))。根据图4(B)，在正常细胞QSG 7701中，没有从Gd-N发现光细胞毒性，而Gd-RhB产生与其在癌细胞中表现的结果非常相似的结果。这种趋势与癌细胞和正常细胞对Gd-N的选择性细胞摄取相关。本发明人已经使用更多的癌细胞系和正常细胞系扩展了该研究，结果如图5所示——Gd-N对总计7种细胞系(4种癌细胞和3种正常细胞)保持良好的肿瘤选择性，从而充当出色的特异性PDT剂。
为了证明本发明配合物的体内摄取，通过异种移植小鼠模型和ICP-MS进行有关这些配合物对具体器官感染的特异性的生物分布的研究。将四种配合物分为四组。将HeLa细胞分别与Gd-N、Yb-N、Gd-RhB和Yb-RhB预孵育，并皮下注射到BALB/c裸鼠中，然后用860nm激光辐射注射部位。两周后，为小鼠拍照并测量肿瘤体积(小鼠的图片和肿瘤体积的测量结果分别显示在图6a)和6b)中)。与其相对物Yb-N和Yb-RhB相比，在Gd-N和Gd-RhB组中发现肿瘤被有效抑制；在四种配合物中，Gd-N是最好的体内PDT剂，其以100％的效率破坏肿瘤。在生物分布研究中，肿瘤异种移植物达到大约0.1cm3的BALB/c裸鼠接受Gd-N(1.0mg/kg)尾静脉注射。给药后两天，使用ICP-MS检验不同组织或循环血液中Gd-N和Gd-RhB的浓度。如图6c)所示，肿瘤具有最大的Gd-N富集(4.84ppm/g)，这表明Gd-N对肿瘤细胞的特异性识别。
从施用Gd-N的BALB/c裸鼠提取的肿瘤组织的双光子显微镜成像也证实了这一结果。存在来自Gd-N的明显的双光子显微信号(Gd-N图像，圆圈点)，而对照图像(显示为背景，由明视场成像，没有显示特定信号。合并图像是背景和Gd-N的重叠光子，如图6d)所示。通过以下方式进一步验证Gd-N和Gd-RhB对荷瘤小鼠肿瘤生长的抑制作用：用Gd-N(2.0mg/kg)、Gd-RhB(2.0mg/kg)和ALA(60mg/kg)(5-氨基乙酰丙酸，其可在活细胞中产生原卟啉，并在本文中作为对照PDT化学品)肿瘤内注射BALB/c裸鼠(其具有大约0.3cm3的HeLa异种移植肿瘤)，并在注射后用860nm光辐射3小时。对肿瘤的总光剂量为50J/cm2。然后使肿瘤再生长7天，并进行最终提取和拍照。如图6e)所示，Gd-N能够在短时间内极大地抑制甚至将实体瘤的大小减半，从2cm减小到1cm。
可选地，用Gd-N和Gd-RhB(2.0mg/kg体重)尾静脉注射具有异种移植肿瘤的小鼠，并允许完全循环6小时。然后，类似于上文所述，用860nm光辐射肿瘤。未经光处理的肿瘤用作对照。在接下来的几天中，以一天一次的方式重复处理三次。一致地，发现与肿瘤的相对侧对照或Gd-RhB组相比，Gd-N加光处理的肿瘤受到抑制。药代动力学分析还表明，Gd-N在动物体内存留的时间较长，具有较大的MRT(mean resistance time，平均滞留时间)值(12.50小时)，而Gd-RhB被快速清除(MRT为5.04小时)(结果如图6f)和表1所示)。
表1.在向BALB/c裸鼠(n＝3)尾静脉分别注射20nmol Gd-N(37.34μg)或Gd-RhB(44.28μg)后，血浆中Gd-N和Gd-RhB的药代动力学参数。AUC为浓度-时间曲线下面积；MRT为平均滞留时间；t1/2为统计半衰期；Vd为分布容量(volume of distribution)。
还研究了PDT处理的HeLa细胞的蛋白质裂解物中PDT的分子机制、细胞存活的蛋白质水平和凋亡蛋白家族(IAP)的抑制剂。存活蛋白(Survivin)和IAP家族成员c-IAP1、c-IAP2和XIAP均在Gd-N加激光处理的样品中显著表达。发现mTOR途径参与对癌细胞的PDT处理的响应。在Gd-N或Gd-RhB诱导的1O2应激刺激后，两个关键成员即mTOR和GβL的水平明显升高。这些结果在分子水平上证明了Gd-N促进的光动力疗法的成功细胞杀伤作用，并且还可以为当前PDT剂的设计和改进提供新的启示(图7)。
结论
本发明提供了用作抗癌剂的治疗诊断性钆配合物Gd-N，其配备有用于成像、肿瘤细胞选择性和1O2产生的可见光至NIR发射。通过一系列体外和体内研究，证明了本发明的Gd-N用作灵巧的双功能PDT剂的有效性和优点。本发明还提供了一种使用Gd-N追踪长期活癌细胞和使之成像的方法，以及选择性光动力疗法。
实验方法
线性诱导的光物理性质
用HP UV-8453分光光度计和Edinburgh Instrument FLS920联合荧光寿命和稳态分光光度计(Combined Fluorescence Lifetime and Steady state spectrophotometer)记录UV-可见光吸收光谱(范围从200-1100nm)和单光子发光光谱，后一种分光光度计在氮气流冷却的外壳内配备了UV至NIR敏感的光电倍增管。本发明人已经校正了探测器响应和杂散背景光磷光的所有光谱，通过可拆卸的142nm(内)直径硫化钡涂覆的积分球测量镧系元素配合物的量子产率，所述积分球与Edinburgh Instrument FLS920中的两个进入端口一起提供。
单线态氧量子产率
利用1270nm的磷光，在PTI QM4发光光谱仪上，用InGaAs检测器检测单线态氧，并通过比较样品溶液的1O2发射强度与参照材料[4](H2TPP，在CHCl3中ΦΔ＝0.55)的1O2发射强度，确定CHCl3中所有化合物的量子产率(ФΔ)，如下述方程式所示：
其中ФΔ表示单线态氧量子产率，GΔ表示积分发射强度，A表示在操作激发波长处的吸光度，n表示溶剂的折射率，假定上标REF和S分别代表参照和样品。在所有情况下，本发明人测量了在适当激发后的1O2发射光谱。为了减少发射光重吸收的影响，所有吸光度也设定为0.05。
细胞培养
使人HeLa(宫颈癌)和WPMY-1(正常前列腺基质永生细胞)细胞在DMEM培养基中生长；将A549(肺腺瘤)维持在Ham's F12K培养基和L-谷氨酰胺(N3520,Sigma,St.Louis,MO,USA)的混合物中；使QSG 7701(正常肝细胞)、HK-1、HONE1(鼻咽癌)在RMPI-1640培养基中生长；使MRC-5(正常肺成纤维细胞)和SK-N-SH(神经母细胞瘤)细胞在MEM培养基中生长。还在所有培养基中加入(i)10％(v/v)胎牛血清(FBS)、(ii)100μg/ml链霉素和(iii)100单位/ml青霉素。
体外成像
为了测试本发明的水溶性配合物作为生物探针的适用性，使用配备有Ti:Sapphire激光器(Libra II,Coherent)以及用于激发的980nm波长激光器的商业共聚焦激光扫描显微镜Leica TCS SP5来使经本发明的五种配合物孵育的HeLa/WPMY-1/MRC-5细胞体外成像。
MTT细胞存活率测定
24小时后，将水溶性配合物和处理过的细胞进一步用3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基四唑溴化物(MTT)(0.5mg/ml)孵育4小时，以便随着细胞的代谢途径形成甲瓒。然后，提取甲瓒并通过二甲基亚砜(DMSO)溶解，在Bio-Rad iMark酶标仪(490nm)中测量随后溶液的吸光度。一式四份进行，并使用GraphPad Prism 5软件通过绘图解释和分析数据。
光动力治疗(PDT)测定
在96孔板上，首先将癌细胞(2x 104/孔)孵育过夜，然后用本发明的配合物和对照类似物避光处理6小时。在用新鲜培养基替换旧培养基之后，细胞因此暴露于黄光(1-8J/cm2)下，所述黄光由配备了隔热滤波器(heat-isolation filter)和500nm长通滤波器的400W钨灯以mW/cm2的流畅率(fluency rate)产生。24小时后，通过MTT测定检验PDT后的细胞存活率。在用250μg/mL MTT溶液在37℃孵育3小时之前，用PBS冲洗细胞单层。形成并溶解于DMSO中的甲瓒晶体然后通过96孔酶标仪(Elx800Absorbance Microplate Reader)在540和690nm处进行吸光度测量。
动物：所有需要动物模型的实验均在无胸腺裸鼠(BALB/c-nu/nu)上进行，所有裸鼠均来自广东省医学实验动物中心(许可证号：SCXK-2008-0002)。根据国家动物护理和使用程序标准(National Standard of Animal Care and Use Procedures，20080820)的严格规程饲养和操作小鼠。
药代动力学分析：将Gd-N和Gd-RhB(各1.0μmol/kg体重)尾静脉注入小鼠中。然后如所示在0-20小时的不同时间点收集血清。通过PerkinElmer EnVision MultilabelReader 2104，在570nm测量Gd-N和Gd-RhB的浓度，并利用标准吸收(standard absorption)通过浓度曲线计算。通过拟合一室模型(one compartment model)计算药代动力学参数(t1/2、Vd、MRT、AUC)。
通过ICP-MS的体内生物分布
通过ICP-MS完成本发明的配合物在特定器官/细菌感染中的体内摄取的生物分布研究。当肿瘤异种移植物达到约0.1cm3的大小时，以1.0μmol/kg体重的剂量向小鼠施用Gd-N和Gd-PhB。2天后，在肿瘤、肝、肺、肾、脾、脑、前列腺、皮肤和血液(80-90μL)中收集约0.02-0.04克样品组织。除溶解干扰性有机分子外，所有样品均在37℃与500μL硝酸一起孵育，以释放金属离子，用于进一步的ICP-MS检验。
体内光动力治疗研究
为了建立小鼠肿瘤异种移植模式，将细胞用胰蛋白酶消化、收获并悬浮在培养基中。将100μL体积的1×106个细胞皮下注射到雌性无胸腺裸鼠(5周龄)的侧腹，并等待10-15天。当肿瘤体积达到100-150mm3的大小时，将动物随机分成不同组，用于进一步实验。通过卡尺(精确度为0.02mm)测量肿瘤体积，然后基于方程式V＝(L×W2)/2独立计算肿瘤体积，其中L和W分别对应于较大和较小的尺寸。通过GraphPad Prism 5.0软件评估组间统计学显著性的单向方差分析。
材料和方法
所用的所有化学品均为试剂级，且购自Sigma-Aldrich，无需进一步纯化即可使用。根据文献程序制备中间体Yb[N(SiMe3)2]3·[LiCl(THF)3]1和起始卟啉游离碱TFP-TMS2。根据本发明人先前的方法完成对照化合物Gd-RhB、Yb-RhB4和Yb-N5的制备。使用前所有分析级溶剂均通过标准程序干燥、蒸馏并脱气。在Bruker Autoflex MALDI-TOF质谱仪上获得以m/z报告的高分辨率质谱。在中国西北大学化学工程学院完成元素分析。中间体和Gd-N的合成路线如反应方案1所示：
反应方案1.Gd-NGd-TMS的合成路线：将Gd[N(SiMe3)2]3·[Li(THF)3Cl]x(5.0ml,0.6mmol Gd)的溶液转移至Schlenk烧瓶中并在真空下除去溶剂。然后加入10ml二氯甲烷(CH2Cl2)用于沉淀LiCl。将混合物离心，并将透明层转移到另一个具有溶解于20ml甲苯中的卟啉游离碱TFP-TMS(196mg,0.2mmol)的Schlenk烧瓶中。将所得溶液回流12小时，直至大部分游离碱与金属离子配位。将反应溶液冷却至室温。然后将无水Na{(η5-C5H5)Co[P(＝O)(Ome)2]3}(104mg，0.22mmol)加入到该混合物中，将其磁力搅拌另外1小时。反应完成后，在真空下除去溶剂，将残余物溶解于CH2Cl2中，并使用CH2Cl2/己烷作为洗脱液在硅胶上过滤和层析，得到为红色固体的纯产物。产率：86％；MALDI-TOF MS：对于[M+]是计算值：M.p.>300℃；1587.1965，实测值：1587.2154；对于[C60H44CoF15N4O9P3SiGd]的分析计算值(Anal.Calc.)：C，45.40；H，2.79；N，3.53％，实测值：C，45.46；H，2.83；N，3.51％；UV/Vis(DMSO，25℃)：λmax(logε)＝427(5.68)，558(4.34)，597(3.29dm3mol–1cm–1)。
Gd-OH：将四丁基氟化铵(TBAF，在THF中1.0M，200μL，0.2mmol)加入到Gd-TMS(182mg，0.1mmol)在10ml CH2Cl2中的溶液中，并将溶液搅拌30分钟。通过TLC监控反应进程。反应完成后，使混合物通过短硅胶柱。除去溶剂后，得到中间体，且不经进一步纯化即用于下一步。然后将所得中间体和4-碘苯酚(33mg，0.15mmol)溶于无水四氢呋喃(THF，15ml)和三乙胺(Net3，5mL)中，并将混合物用氮气鼓泡30分钟。之后，将Pd(PPh3)4(12mg，0.01mmol)和CuI(3.8mg,0.02mmol)加入上述溶液中。在氮气氛下将反应混合物在至少35℃搅拌至少10小时。然后在减压下除去溶剂。使用CH2Cl2/甲醇(50:1)作为洗脱液，通过柱层析在硅胶上纯化残余物，得到为红色固体的纯产物。产率：73％(表2)；M.p.>300℃；MALDI-TOF MS：对于[M+]的计算值：1607.0291，实测值：1608.0308；对于[C63H40CoF15N4O10P3Gd]的分析计算值：C，47.08；H，2.51；N，3.49％，实测值：C，47.10；H，2.49；N，3.51％；UV/Vis(DMSO,25℃)：λmax(logε)＝426(5.70)，555nm(4.48dm3mol–1cm–1)。
表2不同交叉偶联反应条件下的产率(％)。考虑到时间和温度，选择40℃和12小时作为主要反应条件。
Gd-I：向Gd-OH(161mg,0.1mmol)和四乙二醇二碘化物(207mg,0.5mmol)的无水N,N-二甲基甲酰胺(DMF，10ml)溶液中加入无水K2CO3(69mg,0.5mmol)，并在氮气氛下将混合物加热至80℃，持续8小时。然后在减压下除去溶剂。在用CH2Cl2/CH3OH(v/v,100:1)洗脱的硅胶上通过柱层析纯化粗产物，得到为红色固体的纯产物。产率：82％；M.p.>300℃；MALDI-TOF MS：对于[M+]的计算值：1893.2210，实测值1893.1038；对于[C71H55CoF15IN4O13P3Gd]的分析计算值：C，45.04；H，2.94；N，3.11％，实测值：C，45.21；H，2.99；N，3.06％；UV/Vis(DMSO,25℃)：λmax(logε)＝425(5.71)，555nm(4.50dm3mol–1cm–1)。
Gd-N：向Gd-I(95mg,0.05mmol)的无水(DMF,10ml)溶液中加入无水Net3(1ml,过量)，在氮气氛下将混合物加热至85℃，持续24h。然后在减压下除去溶剂。使用CH2Cl2/CH3OH(v/v,80:1)作为洗脱液，通过硅胶柱层析法纯化获得的粗产物，以除去未反应的Gd-I和其他杂质，然后使用CH2Cl2/CH3OH(v/v,10:1)，以获得为红色固体的纯产物。产率：80％；M.p.>300℃；MALDI-TOF MS：对于[M+]的计算值：1867.5095，实测值1867.2538；对于[C99H85CoF15N6O16P3Gd]的分析计算值：C，46.37；H，3.54；N，3.51％，实测值：C，46.40；H，3.59；N，3.48％；UV/Vis(DMSO,25℃)：λmax(logε)＝426(5.74)，555nm(4.53dm3mol–1cm–1)。
双光子吸收测量
通过开孔Z扫描方法，使用100fs激光脉冲，在800n m处测量双光子吸收光谱(即，Z扫描迹线)，其中来自以Ti:sapphire再生放大器系统产生的1kHz的重复频率运行的光学参量放大器的峰值功率为276GWcm-2。激光束由分束器分成两部分。一部分由光电二极管(D1)监控，作为入射强度参考I0，而另一部分由另一个光电二极管(D2)检测，作为透射强度。在通过f＝20cm的透镜后，激光束聚焦并通过石英池。样品池z的位置通过计算机控制的可平移台沿着激光束的方向(z轴)移动，使得样品池内的局部功率密度可以在恒定的入射强度激光功率水平下改变。最后，利用光电二极管D2检测来自样品池的透射强度。光电二极管D2连接到计算机以进行信号采集和平均化。每个透射强度数据均代表超过100次测量值的平均值。假设高斯光束剖面(profile)，即非线性吸收系数β可以通过曲线拟合到观察到的开口孔迹线T(z)用方程式(1)6得到，其中a0是线性吸收系数，l是样品长度(1mm石英池)，z0是入射光束的衍射长度。在获得非线性吸收系数β后，样品分子的2PA横截面σ(2)(单位为：1GM＝10-50cm4光子-1)可以通过使用方程式(2)来确定，其中NA是Avogadro常数，d是溶液中样品化合物的浓度，h是普朗克常数，且v是入射激光束的频率。
本发明的其他实施方案
在本发明的另一个实施方案中，提供了基于具有特定官能团的卟啉-镧系元素配合物的新一代PDT剂，其可以特异性地定位于具体肿瘤，并且可以通过铒(Er)的NIR发射来监控它们的PDT过程。新开发的铒卟啉配合物与整联蛋白αvβ3同种型特异性肽缀合。来自Er-R3的卟啉和铒发射表明，特异性结合“整联蛋白αvβ3同种型”并具有用于成像的响应性发射的Er-R3能够显著中断膀胱癌肿瘤生长。
相比先前报道的与亲水性肽RrRk(SEQ ID NO:4)缀合的类似物，Er卟啉配合物的水溶性得到改善。选择整联蛋白αvβ3同种型特异性肽序列(-cGRLKEKKc-)(SEQ ID NO：5)与RrRk(SEQ ID NO：4)在不同位置缀合，用于估计对膀胱癌细胞中整联蛋白αvβ3同种型的结合选择性(方案3)。用亲水性RrRk(SEQ ID NO:4)和疏水性cGRLKEKKc(SEQ ID NO：5)的组合合成肽的两亲特性，以改善细胞渗透性。Er-R1、Er-R2和Er-R3的吸收系数(卟啉：430nm处的索雷谱带(Soret band)，199,526cm-1)和发射量子产率(卟啉：索雷谱带和Er：2F5/2→2F7/2)类似。表3显示了Ln-Rn的光物理测量的详情。由于从卟啉Yb到f-f发射的能量转移(这比从卟啉到Er f-f发射好得多)，Er部分表现出比Yb部分更强的单线态氧量子效率。通过1H NMR和质谱法表征所有Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物(图17-36)。
表3.Ln-Rn(Ln＝Yb、Er，n＝1,2,3)的光物理性质概述
[a]在室温下在水(3％DMSO)中测量吸收和发射。[b]本研究所用的发射量子产率标准是无水DCM中的四苯基卟啉(H2TPP)(在298K时，Φem＝0.120)。[c]在室温下在水(3％DMSO)中测量寿命[d]。本研究所用的单线态氧量子产率标准是在无水DCM中的四苯基卟啉(H2TPP)(在298K时，Φ△＝0.62)。
在图12中，Er或Yb卟啉基配合物的光物理性质是相似的。然而，由于肽的缀合，体外亚细胞定位、摄取和毒性(光和暗)是不同的。首先，Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物(Ln＝Er或Yb；n＝1、2和3；R1＝cQDGRMGFc＝{Ahx}-(D-Cys)-Gln-Asp-Gly-Arg-Met-Gly-Phe-(D-Cys)(SEQ ID NO:1)；R2＝cGRLKEKKc＝{Ahx}-(D-Cys)-Gly-Arg-Leu-Lys-Glu-Lys-Lys-(D-Cys)(SEQ ID NO:2)；R3＝RrRkcGRLKEKKc＝{Ahx}-Arg-Arg-(D-Arg)-Lys-{Ahx}-(D-Cys)-Gly-Arg-Leu-Lys-Glu-Lys-Lys-(D-Cys)(SEQ ID NO:3)在膀胱癌细胞-T24和-5637、宫颈癌细胞-HeLa和正常肺细胞-MRC5中的亚细胞定位是不同的(图13，剂量浓度＝5μM，孵育时间＝6小时)。由于从卟啉分子到Yb3+离子的有效能量转移，三种铒卟啉配合物的体外荧光强度高于其镱模体类似物，并发射Yb近红外荧光。在膀胱癌细胞T24和5637中，仅在细胞膜上发现Er-R1的红色卟啉发射，然而，在细胞内发现Er-R2和Er-R3的红色发射。镱类似物也表现出相同的亚细胞定位；在细胞膜中发现卟啉Yb-R1的发射。已使用绿色溶酶体示踪剂进行共定位实验，在图37中，在T24和5637细胞中，来自Er-R2、Er-R3、Yb-R2和Yb-R3的红色发射与来自溶酶体示踪剂的绿色荧光重叠良好，但Er-R1和Yb-R1不是这样，这表明Er-R2卟啉配合物、Er-R3卟啉配合物、Yb-R2卟啉配合物和Yb-R3卟啉配合物主要位于T24细胞和5637细胞的溶酶体中，而Er-R1和Yb-R1位于T24和5637细胞膜中。为了进一步证实，SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2和SEQ ID NO:3中的肽序列能识别αvβ3整联蛋白。在相同的实验条件下，在非膀胱癌细胞HeLa和MRC-5中对Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物(n＝1、2和3)进行体外成像。在HeLa细胞和MRC-5中均未检测到红色发射信号。HeLa和MRC-5细胞中αvβ3整联蛋白的缺乏应限制Er-Rn和Yb-Rn的摄取。卟啉配合物Er-Rn和Yb-Rn(n＝1、2和3)不会与HeLa和MRC-5细胞结合，因此在荧光染色实验中仅显示来自溶酶体示踪剂的绿色发射信号(图37)。
为了进一步证明通过定制的环肽R1、R2和R3识别T24表面上的αvβ3整联蛋白诱导膀胱癌细胞中Er-Rn和Yb-Rn(n＝1、2和3)卟啉配合物的选择性摄取，在三种细胞系中对铒(Er)和镱(Yb)配合物进行流式细胞术分析，结果如图14所示。
分子对接模拟本发明的卟啉配合物，并为肽提供了很大的空间位阻，而且促进了与αvβ3整联蛋白的相互作用。Zhang等人(Urologic Oncol.2012,30,635-645)已经在不同细胞系中测试了本发明配合物的肽R1和R2，并通过OBOC组合文库筛选，以证明对膀胱癌的结合特异性。两亲性肽R3是通过添加RrRk(SEQ ID NO:4)而对R2的修饰，以改善水溶性和细胞摄取。因此，如图14所示，在FL3通道(发射滤波器：670长通滤波器)中，在孵育Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物6小时内，T24细胞显示出明显的荧光，而用Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物孵育的HeLa和MRC-5(细胞表面αvβ3整联蛋白受体阴性)在相似的实验条件下显示出很少的荧光信号。此外，细胞摄取随着T24细胞中的孵育时间而增加，其在24小时后定量为中值荧光强度(表4)。
表4.在T24、HeLa和MRC-5细胞中孵育24小时的Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物中值荧光强度的总结。
在验证Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物特异性摄取到T24细胞中后，在各种细胞系中进行体外PDT。低暗和高光细胞毒性是光敏剂在PDT中应用的必要特性。在存在辐射(550nm长通滤波器，6mW cm-2，28分钟)和不存在辐射的情况下，使用MTT测定，检验Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物对T24、HeLa和MRC-5细胞的细胞毒性。Er-Rn和Yb-Rn在Jcm-2的辐射下表现出高光细胞毒性。而且，在孵育24小时后，光细胞毒性随着Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物的浓度增加，在图15中计算了半致死剂量(IC50)。Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物对T24的IC50是HeLa和MRC-5的八分之一至十分之一，这证明Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物选择性地杀伤膀胱癌。归因于Er-R3卟啉配合物和Yb-R3卟啉配合物中的RrRK(SEQ ID NO:4)肽序列，对它们的细胞摄取高于导致更高的光细胞毒性的Er-R1卟啉配合物、Er-R2卟啉配合物、Yb-R1卟啉配合物和Yb-R2卟啉配合物。此外，激发波长550nm位于卟啉的Q带中，其在实践中会提供更好的组织穿透。然而，它不能触发与FDA批准的氨基乙酰丙酸(ALA)相当的有效PDT效应。ALA在400-450nm受到激发。在本发明的一些实施方案中，当超过550nm激发时，Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物相比ALA引起更强的光细胞毒性作用。在所有Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物中，由于最明亮的体外荧光和最高的细胞摄取，Er-R3卟啉配合物最有效地杀伤膀胱癌细胞(可达到低至31μM的IC50)。然而，在没有光的情况下，所有Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物基本上都是非细胞毒性的。(IC50超过1000μM)基于上述结果，Er-R3卟啉配合物是选择性杀伤膀胱癌的PDT剂的优选实施方案。
总之，本发明提供了多模态镧系元素-卟啉PDT剂，其能够通过来自卟啉部分的1O2杀伤肿瘤细胞同时提供荧光成像。合成Er-R3卟啉配合物，并且其通过以强的NIR和1O2发射特异性靶向膀胱癌细胞中的整联蛋白αvβ3同种型而被证明对膀胱癌细胞具有高度选择性。通过流式细胞术和体外成像证实了本发明的卟啉配合物的癌细胞选择性摄取特性，并且其能够通过与膀胱癌细胞的“整联蛋白αvβ3同种型”的特异性结合而显著中断膀胱癌细胞的生长。
化合物合成的一般信息
所用的所有化学品均为试剂级，且购自Sigma-Aldrich，无需进一步纯化即可使用。所有分析级溶剂在使用前均按标准程序干燥、蒸馏和脱气。在Bruker Ultra shield400Plus NMR光谱仪上记录NMR光谱。1H NMR化学位移参考四甲基硅烷，TMS(d＝0.00)。在Bruker Autoflex MALDI-TOF质谱仪上获得以m/z报告的高分辨率质谱。中间体和Ln-Rn(Ln＝Yb、Er，n＝1、2、3)的合成路线如反应方案2所示。通过高效液相色谱法纯化所有Ln-Rn(Ln＝Yb或Er，n＝1、2、3)配合物。溶剂体系如表5所示。
反应方案3.膀胱癌肽的分子结构
中间体和Ln-Rn(Ln＝Yb或Er，n＝1、2、3)的合成
化合物Por(THP-TMS)的制备
在氩气氛下，将吡咯(280uL,4.0mmol)、五氟苯甲醛(588mg,3.0mmol)和4-[2-(三甲基硅烷基)乙炔基]苯甲醛6(202mg,1.0mmol)溶解于410mL CH2Cl2中。10分钟后，在剧烈搅拌下通过注射器加入BF3O(Et)2(0.60mL的2.65M储备溶液，1.32mmol)。添加完成后，将反应在室温下搅拌1小时。加入DDQ(2,3-二氯-5,6-二氰基-1,4-苯醌)(0.68g,3.0mmol)，并且，在室温下搅拌1小时后，在真空下除去溶剂。使粗反应混合物通过短二氧化硅柱(己烷-CH2Cl2(9:1))，在减压下浓缩，得到为粉红色/紫色固体的产物5,10,15-三(五氟苯基)-20-[4-{2-(三甲基硅烷基)乙炔基}苯基卟啉](238mg,22.8％)1HNMR(CDCl3):-2.87(2H,s,NH),7.91(2H,d,J 8.1Hz,Ar-H),8.17(2H,d,J 8.1Hz,Ar-H),8.89(2H,d,J4.7Hz,P-吡咯),8.932(4H,s,P-吡咯),8.94(2H,d,J 4.7Hz,P-吡咯)；0.387(9H,s)对于[M]+的MS(MALDI),对于C49H23F15N4Si的计算值980.1513,实测值981.1519。
化合物Ln-1的制备
将Ln[N(SiMe3)2]3·x[LiCl(THF)3]:HN(SiMe3)2(Ln＝Yb或Er，10.8ml，0.050mol)溶解于冰浴中的20ml THF中，然后在30分钟时间段内缓慢添加n-BuLi(在己烷中的1.6M)。将所得溶液磁力搅拌12小时，直至获得澄清的浅黄色溶液。然后将溶液缓慢转移至具有悬浮于20ml THF中的LnCl3(Ln＝Yb或Er，4.74g，0.017mol)的Schlenk烧瓶中。将所得混合物磁力搅拌24小时，直至所有固体LnCl3(Ln＝Yb或Er)消失。所得的溶液Ln[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl](Ln＝Yb或Er，x＝3～5)用于下一合成步骤。
Yb-1：将上文制备的Yb[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl](2.5ml,0.52mmol Yb)转移到Schlenk烧瓶中并在真空下除去溶剂。然后加入10ml CH2Cl2，用于沉淀LiCl。将混合物离心，并将透明层转移到另一个具有溶解于15ml甲苯中的无水Por(THP-TMS)(0.1g,0.16mmol)的Schlenk烧瓶中。回流所得溶液，直至大部分游离碱与金属离子配位。然后，加入无水NaLOMe(0.1g,0.22mmol)[LOMe-((环戊二烯基)三(二甲基亚磷酸酰氧基)-钴酸盐，阴离子三足配体)并磁力搅拌另外12小时，之后将反应溶液冷却至室温。反应完成后，在真空下除去溶剂，并将残余物溶解于CHCl3中，用CHCl3/石油醚(V/V 1:1)作为洗脱液在硅胶上过滤并进层析。将产物溶解于CH2Cl2(5ml)中，并过滤溶液。
Yb-1:产率：81％；1HNMR(CDCl3):δ-5.02(s,5H),0.93(s,9H),6.37(s,18H),8.70(s,1H),8.97(d,J＝4.96Hz,1H),10.88(s,1H),14.65(s,2H),14.89(s,2H),15.18(s,2H),15.58(s,2H),17.40(s,1H)；MALDI-TOF MS:针对C60H44CoF15N4O9P3SiYb[M]+的计算值1603.0571,实测值：1603.0556。
Er-1:与Yb-1的程序相同，用Er[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl]代替Yb[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl]；产率：80％.1HNMR(CDCl3):δ-35.54(s,5H),3.48(s,9H),14.09(s,1H),13.50(s,1H),21.73(s,18H),21.16(s,1H),31.22(s,2H),32.93(s,2H),36.37(s,2H),37.76(s,2H),46.77(s,1H)；MALDI-TOF MS:对于C60H44CoErF15N4O9P3Si[M]+的计算值1597.1878，实测值1597.2927。
制备Ln-2的一般程序
Yb-2：将TBAF(1.0M，在THF中，0.2mL,0.2mmol)加入到Yb-1(0.05mmol，76.55mg,)在10ml CH2Cl2的溶液中，并将溶液搅拌30min。通过薄层层析(TLC)监控反应进程。反应完成后，使混合物通过短硅胶柱。除去溶剂后，获得纯产物。
Yb-2:产率：92％；1HNMR(CDCl3):δ-4.82(s,5H),4.13(s,1H),6.30(s,18H),8.63(s,1H),8.95(d,J＝4.44Hz,1H),10.83(s,1H),14.51(s,2H),14.90(s,2H),15.08(s,2H),15.44(s,2H),17.21(s,1H)；MALDI-TOF MS:对于C57H36CoF15N4O9P3Yb[M+Na+Cl]+的计算值1587.0176,实测值1587.0514。
Er-2：与Yb-2的程序相同，用Er-1代替Yb-1；产率：92％；1HNMR(CDCl3):δ-35.05(s,5H),13.94(s,1H),13.19(s,1H),20.56(s,18H),21.02(s,1H),30.97(s,2H),32.77(s,2H),36.44(s,2H),37.36(s,2H),46.20(s,1H)；MALDI-TOF MS:对于C57H36CoErF15N4O9P3[M+H]+的计算值：1525.0067,实测值：1525.0143。
制备Ln-4的一般程序
Yb-4：在氮气下将Pd(PPh3)4(22.16mg,0.08mmol)、CuI(7.65mg,0.04mmol)、Yb-2(30.62.mg,0.02mmol)和4-碘苯甲酸5.087mg置于干燥烧瓶中。加入THF(15mL)和Net3(5mL)并将反应混合物用氮脱气。将反应混合物在40℃搅拌12小时。之后，在减压下除去溶剂。通过层析法纯化残余物。用CH2Cl2/甲醇(12:1)洗脱。将洗脱的化合物(26mg,0.0157mmol)、EDCI(6.04mg,0.031mmol)、NHS(3.57mg,0.031mmol)置于干燥的烧瓶中，且置于氮气下，加入10mL无水DMF。在室温搅拌48小时，然后除去溶剂。残余物用二乙醚重结晶并干燥，得到Yb-4。
Yb-4：产率：72％；1HNMR(CDCl3):δ-4.82(s,5H),4.16(s,1H),6.39(s,18H),8.68(s,1H),8.98(d,J＝4.44Hz,1H),8.47(s,J＝4.44Hz,2H),8.45(s,J＝4.44Hz,2H)10.91(s,1H),14.63(s,2H),14.92(s,2H),15.24(s,2H),15.61(s,2H),17.39(s,1H)；MALDI-TOF MS:对于C68H43CoF15N5O13P3Yb[M]+的计算值1748.0176，实测值1748.0460。HPLC表征：保留时间＝7.24min(图16(A))。
Er-4:与Yb-4的程序相同，仅用Er-2代替Yb-2；产率：80％；1HNMR(CDCl3):δ-35.94(s,5H),6.04(s,1H),8.64(d,J＝7.96Hz,2H),10.80(d,J＝5.12Hz,2H),13.12(s,1H),13.76(s,1H),20.67(s,18H),20.90(s,1H),31.06(s,2H),32.94(s,2H),36.39(s,2H),37.62(s,2H),46.54(s,1H)；MALDI-TOF MS:对于C68H43CoErF15N5O13P3[M+Cl-]的计算值：1777.2035,实测值：1777.4591。HPLC表征：保留时间＝7.23min(图16(B))。
制备Ln-Rn的一般程序
Yb-R1：将Yb-4(16mg,1当量)在无水DMF中的搅拌溶液与N,N'-二异丙基乙胺(DIPEA)(1当量)混合。将混合物溶液加入含有肽R1(1.3当量)的小瓶中。然后使其在室温反应过夜，之后，在真空下除去溶剂，得到干燥的化合物。将残余物用二乙醚重结晶三次并干燥，得到Yb-R1。
Yb-R1：产率：69％。MALDI-TOF MS:C109H109CoF15N19O23P3S3Yb[M+H]+的计算值：2760.4878，实测值：2760.6458。HPLC表征：保留时间＝10.00min(图16(C))。
Yb-R2:与Yb-R1的程序相同，使用肽R2；产率：69％MALDI-TOF MS:C113H129CoF15N21O22P3S2Yb[M+H]+的计算值2808.6835，实测值：2808.6715。HPLC表征：保留时间＝10.21min(图16(D))。
Yb-R3：与Yb-R1的程序相同，使用肽R3；产率：65％MALDI-TOF MS:C143H187CoF15N35O28P3S2Yb[M+H]+的计算值3520.2985，实测值：3520.2543。HPLC表征：保留时间＝10.01min(图16(E))。
Er-R1：与Yb-R1的程序相同，用Er-4代替Yb-4；产率：75％MALDI-TOF MS：C109H109CoErF15N19O23P3S3[M+K]+的计算值2791.4826。实测值：2791.3747。HPLC表征：保留时间＝9.66min(图16(F))。
Er-R2：与Yb-R2的程序相同，用Er-4代替Yb-4；产率：72％。MALDI-TOF MS：C113H129CoErF15N21O22P3S2[M+K]+的计算值：2839.6015，实测值：2839.2967。HPLC表征：保留时间＝10.09min(图16(G))。
Er-R3：与Yb-R3的程序相同，用Er-4代替Yb-4；产率：70％MALDI-TOF MS：C143H187CoErF15N35O28P3S2[M]+的计算值：3511.4955，实测值：3511.5162。HPLC表征：保留时间＝9.80min(图16(H))。
细胞培养
将人膀胱癌(T24)和(5637)细胞培养于补充有10％胎牛血清(FBS,Gibco)和抗生素(青霉素，50gmL-1；链霉素，50gmL-1)的RPMI 1640培养基(Gibco)中。将人宫颈癌(HeLa)细胞培养于补充有10％FBS(Gibco)和抗生素(青霉素，50gmL-1；链霉素，50gmL-1)的DMEM(Gibco)中。将人正常肺成纤维细胞(MRC-5)维持在补充有10％FBS和1％50gmL-1青霉素、50gmL-1链霉素的极限必需培养基(MEM)中。将所有细胞在37℃在含有5％CO2的潮湿环境中孵育。
暗细胞毒性
用Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物以6种浓度(1、5、10、50、100、500M)将T24细胞、HeLa细胞和MRC-5细胞(1x 105)处理24小时。细胞单层用磷酸盐缓冲盐水(PBS)冲洗一次，并与500gmL-1 3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2和5-二苯基四唑溴化物(MTT)溶液一起孵育。通过用MTT将细胞处理3小时以允许在细胞代谢过程中产生甲瓒来检验配合物的细胞抑制效力。之后，在振荡的情况下将甲瓒晶体完全溶解于DMSO中。最后，使用BiotekPowerWave XS酶标仪在570nm和690nm的波长下测量溶液的吸光度。
光细胞毒性
用Er-Rn卟啉配合物和Yb-Rn卟啉配合物以4种浓度(1、5、10、50M)将T24细胞、HeLa细胞和MRC-5细胞(1x 105)处理24小时。然后，将细胞以6mWcm-2(配备550nm长通滤波器)辐射约27分钟，并进一步孵育24小时。然后根据与先前的MTT测定相同的方案处理细胞。
体外共聚焦显微术
为了研究所获得的配合物作为生物探针的适合性，使T24细胞、5637细胞、HeLa细胞和MRC-5细胞(1x 105)成像。在用5M的配合物孵育24小时后，在成像前用PBS洗涤细胞三次。溶酶体示踪剂Green DND-26用作共染染料。在Leica TCS SPE共聚焦激光扫描显微镜上获得图像。分别在561nm和488nm的波长下激发样品和溶酶体示踪剂。
细胞摄取的流式细胞术测量
将5637细胞、T24细胞、HeLa细胞和MRC-5细胞(每个样品1x 105)接种到35mm有盖培养皿上并孵育过夜。然后将细胞用Er-Rn和Yb-Rn卟啉配合物(5M)孵育3小时、6小时和24小时。用胰蛋白酶收获细胞并用PBS洗涤两次。通过流式细胞术分析5637细胞、T24细胞、HeLa细胞和MRC-5细胞对配合物的摄取。用488nm氩激光器激发细胞，并在FL-3通道中收集发射(用650nm长通滤波器)；分析了10000个事件。
配合物的HPLC表征
表5.用于HPLC的溶剂梯度
本发明的另外的实施方案。
i.用于生物研究的各种有机金属/镧系配合物的开发和综合研究
本发明提供了另一系列有机金属配合物，并研究了它们在多光子和非线性过程中的结构-光物理性质关系。这些配合物适用于生物成像。通过用甲基碘甲基化相应的吡啶基配合物获得水溶性镧系元素(III)卟啉配合物和内消旋吡啶鎓取代的卟啉，并且明确表征。研究了这些水溶性镧系元素(III)卟啉酯配合物对DNA的结合相互作用和光切割活性(图38A)。此外，发明人报道了一种新的、用三足[(η5-C5H5)Co{(MeO)2P＝O}3]-阴离子封端的水溶性线粒体特异性卟啉Yb(III)配合物(图38B)，其在水中表现出显著的NIR发射量子产率。
ii.作为体内肿瘤特异性PDT剂的有机金属配合物的开发
本发明提供了另一组新的细胞器特异性标记物(用于溶酶体、线粒体、高尔基体)。这些体外配合物同时在体外触发1O2产生，并在通过可见光/NIR激发进行辐射时产生细胞器的发光图像。这种行为利用双激光激发来破坏所选择的细胞室/组件而提供空间控制。此前，本发明人报道了显示出与磷脂酰丝氨酸的强结合和通过靶向阴离子磷脂膜来区分癌细胞的能力的卟啉镱配合物(图39A)，而最近，其模体结构(Gd-N)已证明了作为体内肿瘤特异性PDT剂的有效性(图39B)。
在本发明中，提供了另一组用于生物成像——NIR光学成像和t1磁共振成像——的多模态卟啉基镧系元素基配合物，所述配合物与靶标磷酸化阴离子膜/整联蛋白αvβ3同种型强结合，并且产生作为抗癌剂的1O2。本发明提供了(1)用作双探针的配合物，其通过与已知官能团和肽的生物缀合和来自卟啉部分的1O2用于光学成像和MRI成像以及癌症特异性PDT效应；(2)通过光学成像和其他典型方案的体外抗癌作用；(3)通过MRI成像/ICPMS，这些配合物(具有抗癌作用)的体内药代动力学和生物分布。
在本文中，本发明人设计并合成了4种水溶性、可透过细胞的卟啉基钆配合物，即Gd-1、Gd-2、Gd-3-R1、Gd-3-N(图40)，其具有与图12a)相同的化学通式。研究了这些用作多模态PDT剂的配合物(1.生物稳定性——PM；2.PDT和原位成像——1O2和发射量子产率；3.MR成像——t1弛豫率；以及4.癌细胞或膀胱细胞特异性体外毒性)
(a)钆配合物Gd-1、Gd-2、Gd-3-R1、Gd-3-N的稳定性、溶解性以及摄取曲线
Gd-1、Gd-2、Gd-3-R1、Gd-3-N的卟啉上的取代基的质子化证明了水溶性的改善。已经通过HPLC纯化了所有配合物。有机金属体系Gd-2、Gd-3-R1和Gd-3-N表现出比Gd-1更好的稳定性，其中Gd-2、Gd-3-R1和Gd-3-N的Pm值约为8.15。Pm值是给定螯合剂未复合的游离金属离子浓度的负对数，pM＝-log[M]游离。流式细胞术的细胞摄取曲线也表明在癌细胞中Gd-3-R1的摄取率在四种配合物中最快，并且对膀胱癌T24细胞而不是正常MRC-5细胞的选择性更好(图41)。
(b)1O2和NIR发射量子产率
在配合物质子化后，显示了类似的1O2和发射量子产率，并将其与现有的配合物H2TPP进行了比较，其在430nm激发的情况下，分别为约70％1O2量子产率(图42)和46％发射量子产率。
(c)Gd-1、Gd-2、Gd-3-R1、Gd-3-N的t1弛豫率和离体毒性/分布
为了将它们开发为MR造影剂，配合物的水交换速率是关键的初步研究之一。评估Gd-1、Gd-2、Gd-3-R1、Gd-3-N的t1弛豫率，并且Gd-3-R1的t1弛豫率是Gd-DOTA的三倍(图43)。已经将Gd-3-R1的有效离体肿瘤毒性与对照(Gd-2)进行了比较(图44)。
(d)体内磁共振成像(MRI)
在将Gd-3-R1和Gd-DOTA尾静脉注射到小鼠中后，立即进行MRI实验。如图49A和49B所示，Gd-3-R1对异种移植肿瘤(T24膀胱癌细胞)的造影效果显著且特异性地增强，而Gd-DOTA则增强全身信号而对肿瘤没有选择性。
具有整联蛋白αvβ3同种型特异性肽涂层的多模态镧系元素基生物探针，作为在体 外和体内同时成像(光学和MR)剂和抗癌剂。
任务1-能够选择性地区分肿瘤细胞的、用于有效PDT并可用于MR和光学成像的“智能(smart)”有机金属配合物的合成
在光动力学治疗中存在两个与商业或文献可获得的光敏剂相关的主要问题：(i)癌细胞的识别和(ii)其有效性的监控。研究表明，新开发的镧系元素配合物Gd-3-R1能够通过其阴离子PS膜识别癌细胞，在一定激光波长下生成1O2，并显示双光子诱导的NIR发射和MR可用性。本发明人扩展了其之前的发现，并开展了一项综合项目，以获得新的镧系元素配合物(癌细胞选择性好，具有更好的1O2产率)，作为特别用于癌症，尤其是用于膀胱癌的新一代PDT剂。新开发的试剂能够治疗在皮肤下面较深处的肿瘤或身体组织中的肿瘤，对癌细胞而不是正常细胞更具选择性，更快地从体内除去，从而减少了人们需要担心光敏反应的时间。最佳光敏剂的选择标准。有许多选择光敏剂的标准。首先，它必须是水溶性的。光敏剂应该能够在近红外区域中，特别是在800nm至900nm之间被激发。此外，最佳光敏剂的1O2量子产率应>20％，并具有特异性线粒体亚细胞定位。有效的膀胱癌特异性光敏剂的暗细胞毒性必须是光细胞毒性(即1J激光剂量中的LC50为1M)的光细胞毒性低100倍。(IC50必须>0.1mM)。
卟啉基化合物的吸收和荧光详情
卟啉是具有11个离域双键的高度共轭分子。金属卟啉的电子吸收带位于约410-430nm(索雷谱带或B带)和550-650nm(Q带)，具有强的单光子吸收系数(>100K M-1cm-1)。卟啉的发射带总是位于约650-700nm。结果，金属卟啉的发射带和激发带总是位于生物窗内。此外，金属卟啉的强双光子吸收截面记录为>100GM，这表明卟啉可以在860nm处被激发，并在650nm至700nm处产生双光子诱导的发射，用于分子成像以及生成1O2和PDT。
1.1合成靶向阴离子磷脂膜的水溶性、高发射性MR和1O2可用的卟啉基钆(III)配合物
水溶性卟啉基钆配合物(Gd-N)对癌细胞膜表现出强的选择性，发射强的可见光到NIR发射，并且经历可以快速从体内除去的高代谢。为了改善作为多模态试剂的配合物的弛豫率和稳定性，本发明又提供了两类有机金属配合物，其中Gd离子通过其他有机金属化合物(Gd-4-Rn)或羧基悬臂(pendant arm)(Gd-5-Rn)稳定。(图45和46)。
1.2合成靶向膀胱癌细胞/肿瘤的水溶性、高发射性、MR和1O2可用的卟啉基钆(III)配合物
对于膀胱癌诊断，检测膀胱癌的身体检查具有损害膀胱功能的高风险。当涉及具体治疗时，PDT是一种较新的治疗方法，目前正在研究它是否可用于治疗特别是早期膀胱癌。使用传统PDT的局限性在于光的穿透能力差，并且难以实时监控性能。本发明提供了用于综合诊断和治疗膀胱癌的多模态PDT剂——用于诊断的MR，用于PDT的NIR诱导的1O2和用于实时监控PDT效力的NIR诱导的NIR发射。在发明人的出版物(PNSA,2014,E5492–E5497)和上述实施例中，证明了本发明的卟啉基配合物在癌细胞中的稳定性、弛豫率、NIR诱导的发射、1O2能力和选择性。靶向膀胱癌的治疗诊断配合物的设计显示在图45(Gd-3-R1/Gd-4-R1/Gd-5-R1)中，并且在图47中的针对整联蛋白αvβ3同种型的若干膀胱癌特异性肽作为载体(Gd-3-Rn/Gd-4-Rn/Gd-5-Rn/Gd-6-Rn)将与1.1节中的多模态配合物缀合。
化合物Por-TMS的制备
将4-((三甲基硅烷基)乙炔基)苯甲醛(2.02g,10mmol)与吡啶-4-甲醛(3.21g，30mmol)在丙酸(700mL)中混合，并将混合物在130℃搅拌半小时。然后将吡咯(2.64g,40mmol)滴加到反应混合物中，同时将温度升至140℃。然后将混合物继续在露天环境搅拌30分钟。冷却至室温后，在减压下除去溶剂，得到黑色固体。将粗产物溶于最少量的CH2Cl2中，并在硅胶柱CH2Cl2/甲醇(12:1)上通过柱层析纯化，得到紫色固体。产率8％。
Gd[N(SiMe3)2]3·x[LiCl(THF)3]：在冰浴中将HN(SiMe3)2(10.8ml,0.050mol)溶解于20ml THF中，然后在30分钟时间段内缓慢加入n-BuLi(1.6M，在己烷溶液中)。将所得溶液磁力搅拌12小时，直至获得澄清的浅黄色溶液。然后将溶液缓慢转移到具有悬浮于20mlTHF中的GdCl3(4.47g,0.017mol)的Schlenk烧瓶中。将所得混合物磁力搅拌24小时，直至所有固体GdCl3消失。得到的溶液Gd[N(SiMe3)2]3·x[LiCl(THF)3](x＝3～5)称为溶液C。
Gd-1-L1：将上文制备的溶液C(2.5ml,0.52mmol Gd)转移到Schlenk烧瓶中并在真空下除去溶剂。然后加入10ml CH2Cl2用于沉淀LiCl。将混合物离心，将透明层转移到另一个具有溶解于15ml甲苯中的无水Por-TMS(0.099g,0.14mmol)的Schlenk烧瓶中。回流所得溶液直至大部分游离碱与金属离子配位。然后加入无水NaL1(0.1g,0.22mmol)[L1 _((环戊二烯基)三(二甲基亚磷酸酰氧基)-钴酸盐，阴离子三足配体)，并磁力搅拌另外12小时，之后将反应溶液冷却至室温。反应完成后，在真空下除去溶剂，将残余物溶解于CHCl3中，用CHCl3/CH3OH醚(V/V 200:1)作为洗脱液在硅胶上过滤并层析。将产物溶解于CH2Cl2(5ml)中并过滤溶液。产率：61％。
Gd-1-L2：与Gd-1-L1的程序类似，用KL2(三(1-吡唑基)硼氢化钾，0.055g，0.22mmol)代替NaL1。产率：50％。
Gd-3：将TBAF(1.0M，在THF中，0.2mL，0.2mmol)加入到Gd-1-L1(0.133mg,0.1mmol)在10ml DCM的溶液中，并将溶液搅拌30min。通过TLC监控反应进程。反应完成后，使用DCM使混合物通过短硅胶柱。除去溶剂后，获得纯产物，将纯产物(33.2.mg,0.02mmol)和Pd(PPh3)4(2.2mg,0.008mmol)、CuI(0.77mg,0.004mmol)、4-碘苯甲酸5.1mg置于干燥的烧瓶中和氮气下。加入THF(15mL)和Net3(5mL)，并将反应混合物用氮气脱气。将反应混合物在40℃搅拌12h(小时)。之后，在减压下除去溶剂。通过层析法纯化残余物。用CH2Cl2/甲醇(10:1)进行的洗脱得到纯产物，将纯产物(30mg,23.75mmol)、EDCI(9.02g,0.048mmol)、NHS(5.52mg,0.048mmol)置于干燥的烧瓶中和氮气下，加入10mL无水DMF。在室温下搅拌48h。然后除去溶剂，将残余物用二乙醚重结晶、干燥，得到标题产物，将产物(33.37mg，0.025mol)溶于DMF(10ml)中，然后加入CH3I(0.25mmol)并搅拌5h。在反应完成后，除去溶剂。将残余物用醚DCM洗涤，得到纯产物。产率52％。
Gd-4：与Gd-3的程序类似，用Gd-1-L2代替Gd-1-L1。产率50％。
Gd-3-Rn：将Gd-3(20mg，1当量)在无水DMF中的搅拌溶液与N,N’-二异丙基乙胺(DIPEA)(1当量)混合。将混合物溶液加入到含有肽(1.3当量)(Rn)的小瓶中。然后在室温下使其反应过夜，之后，在真空下除去溶剂，得到干燥的化合物。将残余物用二乙醚重结晶三次并干燥，得到标题产物。产率70％。
Gd-4-Rn：与Gd-3-Rn的程序相同，用Gd-4代替Gd-3。产率68％。
任务2：用膀胱癌检验Gd-3-R1的选择性和弛豫率
考察了一般的光物理性质，例如发射量子效率和发射寿命。测量这些钆卟啉配合物的磁性。αvβ3同种型与本发明的卟啉配合物Gd-3-R1之间的结合亲和力是开发用于监控αvβ3同种型膀胱癌的多模态探针的主要因素。本发明的配合物对αvβ3同种型膀胱癌的结合亲和力通过焓变和静电相互作用测定。细胞可渗透性和水溶性卟啉基钆卟啉配合物会与癌症特异性载体(肽)生物缀合。定制的肽可用于追踪膀胱癌细胞膜中的整联蛋白αvβ3同种型。研究膀胱癌(T24)模型，并且用其他癌细胞模型如HeLa、SK-N-SH、A549、C666-1和正常细胞MRC-5作为对照(图48)。
2.1新合成的钆(III)配合物Gd-3-R1的光物理性质和稳定性
根据文献的实验方案，测量Gd-3-R1的线性多光子光物理性质(即发射光谱、发射寿命、量子产率和双光子吸收截面)和1O2产率以及光漂白量子产率(photo-bleachingquantum yield)(与标准品例如尿卟啉相比)。进行滴定实验以研究合成的卟啉配合物对几种常见生物阴离子和人血清白蛋白(HSA)的稳定性；测定PM和PKa。将每种阴离子的液体浓缩储备溶液以及HSA分别逐渐加入到有关配合物的溶液中。吸收、荧光以及31P NMR光谱用于监控添加各种生物小分子(如HAS、柠檬酸盐等)后配合物在水溶液中的稳定性。
2.2通过凝胶迁移滞后实验分析的结合亲和力
凝胶迁移滞后实验是用于确定本发明人的对膀胱癌具有特异性的钆卟啉配合物与αvβ3同种型癌细胞的结合亲和力的有效方法。αvβ3同种型细胞在大肠杆菌(E.coli)系统中表达，并在进行琼脂糖凝胶电泳之前通过谷胱甘肽亲和层析进一步纯化。实验用来证实αvβ3同种型的物理结构不会由于镧系元素生物探针的结合而改变。
2.3通过发射和等温滴定量热法评估结合亲和力
通过等温滴定量热法(ITC)研究配合物和αvβ3同种型的结合亲和力，等温滴定量热法是测量分子例如大蛋白和配体间相互作用的溶液状态法。结合亲和力(Ka)、结合化学计量(N)和相互作用的焓变(H)都可以通过ITC实验直接测定。根据焓变，吉布斯能和熵变由已建立定的方程测定。ITC的优点包括实时观察分子间相互作用，而不限制分子量，最重要的是，以非破坏性方式不限制分子量。
2.4钆卟啉配合物Gd-3-R1的弛豫率测定
本发明人的合成的配合物的弛豫率将由Bruker DPX300NMR光谱仪在D2O溶液中获得的弛豫时间计算。使用反转恢复脉冲序列，并且在连续脉冲之间保持10x T1延迟。通过纵向时间(1/T1)与Gd浓度的倒数的曲线获得弛豫率(r1)：
其中T1obs和T1b分别是样品和溶剂背景的纵向弛豫时间。
2.5使用肿瘤模型或细胞系，以及生物学研究详情
研究了膀胱癌(T24)模型，并且其他癌细胞模型如HeLa、SK-N-SH、A549、C666-1和正常细胞：MRC-5用作对照。将癌细胞/正常细胞(癌细胞：T24-膀胱癌、HeLa、SK-N-SH、A549、C666-1，和正常细胞：MRC-5，(2x104/孔)在96孔板中孵育过夜。针对选择性结合的体外成像-细胞用Gd-3-R1(任务1)避光处理6、12和24小时。培养基用新鲜培养基替换，将细胞暴露于由多光子共聚焦显中的微镜激光器(线性和多光子飞秒Ti:sapphire激光器)产生的光(1-8J/cm2)下。在细胞中完成Gd-3-R1的延时共聚焦图像并比较它们的体外亚细胞定位。在膀胱细胞T24和其他非膀胱癌细胞系如HeLa、C666-1和SK-N-SH中，Gd-3-R1的亚细胞定位是不同的。
体外光细胞毒性-用几种浓度的配合物处理膀胱癌T24细胞并孵育12小时。通过数次更换培养基来去除培养基中的游离配合物。通过激光辐射细胞来引发1O2从配合物中的释放，并且在多个孵育时间点之后进行MTT测定以测量细胞存活率。在相同的实验条件下进行对照实验，所述实验条件例如在非膀胱癌细胞系中的光剂量、孵育时间和所提出的配合物的浓度。
测试了本发明配合物的体外暗毒性。24小时后，将水溶性配合物和靶细胞用3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基四唑溴化物(也称为MTT)(0.5mg/ml)进一步孵育4小时，从而甲瓒可以随细胞的代谢途径而形成。然后，用二甲基亚砜(DMSO)萃取并溶解甲烷，其中在Bio-Rad iMark酶标仪(490nm)中测量后续溶液的吸光度。执行一式四份，并使用GraphPad Prism 5软件解释和分析数据。
有效的膀胱癌特异性光敏剂的暗细胞毒性必须是其光细胞毒性(即1J激光剂量中的LC50为1M)的100倍。(IC50必须>0.1mM)。
任务3-结构和生物活性(体外/体内成像和具体PDT效应)
在本部分中，评估了体内Gd-3-R1的效力。采用全面的体外和体内检验，例如多共聚焦体内实时研究、MR成像和代谢研究(图49B)。
3.1确定用于生物测定的镧系元素配合物的稳定性
对于细胞研究，存在镧系元素配合物配位稳定性的巨大挑战。因此，必须进行含水培养基/组织培养基的稳定性。通过简单的紫外-可见光吸收/荧光滴定，经上述程序，检验本发明配合物在各种生物分子存在下和在不同pH下的水稳定性，所述生物分子包括柠檬酸盐和人血清白蛋白(HSA)。将每种阴离子的液体浓缩储备溶液以及HSA单独地逐渐添加到有关配合物的溶液中。当加入的阴离子的体积总计为配合物溶液的5％或对配合物吸收/发光的影响饱和时，停止添加。
3.2体外细胞毒性研究和细胞摄取速率
为了建立小鼠肿瘤异种移植模式，将膀胱癌细胞(T24)或非膀胱癌细胞(HeLa)用胰蛋白酶消化、收获并悬浮在无血清培养基中。将100μL体积的5×106个细胞皮下注射到雌性无胸腺裸鼠(5周龄)的侧腹中。当肿瘤体积达到约100mm3的大小时，将动物随机分成四个实验组，其中每组7只小鼠，各组如下：第1组，媒介对照组；第2组，顺铂处理组；第3组，Gd-N低剂量处理组；第4组，Gd-N高剂量处理组。通过瘤内注射施用处理，每5天一次，持续21-28天。该实验重复三次。使用电子卡尺(精确度为0.02mm)每2天测量肿瘤体积，然后基于方程式V＝(L×W2)/2独立计算肿瘤体积，其中L和W分别对应于更大和更小的尺寸。所有动物实验均按照香港浸会大学教学及研究人类及动物对象使用委员会(Committee on Use ofHuman and Animal Subjects in Teaching and Research)的指引进行。通过GraphPadPrism 5.0软件评估针对组间统计学显著性的单向方差分析。
3.3，实时分析αvβ3同种型并评估肿瘤抑制的效力(肿瘤发生测定)——通过用于药代动力学研究的多光子共聚焦和磁共振成像，异种移植小鼠肿瘤发展的天/周追踪
通过将人膀胱肿瘤细胞(T24)移植到允许其生长的小鼠中来实现异种移植小鼠的发育。在尾静脉注射配合物、腹膜或口腔递送，24-48小时后，异种移植物经手术取出，用于双光子共聚焦显微镜和MRI实验，其中提取的瘤周细胞为对照(不应该获得镧系元素配合物信号)。使用Bruker Biospec 4.7T/30cm扫描仪(Bruker Inc.,MA)在Co-I研究所，对异种移植物进行体内MRI实验。此外，每周测量肿瘤大小。
3.4提出的钆配合物的体内生物分布评估
将Gd-3-R1静脉内注射到携带异种移植癌肿瘤的BALB/c无胸腺小鼠中。孵育24小时后，处死小鼠并取出包括肿瘤在内的主要器官，然后用10％PBS缓冲的福尔马林固定。对照模型是仅注射缓冲福尔马林的无胸腺小鼠。将组织样品冷冻并冻干24小时，然后用浓HNO3在70℃消化4小时。通过ICP-MS测定钆含量，其反映了配合物的量。评估小鼠尿中的钆含量以确认这些配合物的体内代谢。3.3和3.4中的结果应该是相关的(图44)。
工业实用性
本发明涉及基于具有特定官能团的卟啉-镧系元素配合物的新一代PDT剂，其可以特异性地定位于具体肿瘤上，并且可以通过铒的NIR发射来监控它们的PDT过程。特别是，本发明提供了多模式镧系元素-卟啉PDT试剂(Er-R3)，其能够在Er-R3与膀胱癌细胞中的整联蛋白αvβ3同种型结合后，通过来自卟啉部分的1O2杀伤膀胱肿瘤细胞选择性，并同时提供荧光成像。
如果需要，本文讨论的不同功能可以以不同顺序执行和/或彼此同时执行。此外，如果需要，上述功能中的一个或多个可以是可选的或可以组合。
尽管已经针对各种实施方案和实施例描述了前述发明，但是应该理解，其他实施方案也在所附权利要求及其等同物表示的本发明的范围内。而且，以上具体实施例应被解释为仅是说明性的，并且不以任何方式限制本公开的其余部分。无需进一步详细说明，相信本领域技术人员基于本文的描述可以最大程度地利用本发明。本文引用的所有出版物均通过引用整体并入本文。
序列表
<110> 香港浸会大学
黄嘉良
<120> 用于膀胱癌成像和光动力治疗的多模态生物探针
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<170> PatentIn版本3.5
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<212> PRT
<213> 人工序列
<220>
<223> 在实验室合成的并入非天然存在的氨基酸的肽序列
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (1)..(1)
<223> 在位置1的Xaa是 6-氨基己酸
<220>
<221> 二硫键
<222> (2)..(10)
<223> 在位置2的C的侧链与在位置10的C的侧链一起形成二硫键
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (2)..(2)
<223> 在位置2的C是D-氨基酸
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (10)..(10)
<223> 在位置10的C是D-氨基酸
<400> 1
Xaa Cys Gly Asp Gly Arg Met Gly Phe Cys
1 5 10
<210> 2
<211> 10
<212> PRT
<213> 人工序列
<220>
<223> 在实验室合成的并入非天然存在的氨基酸的肽序列
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (1)..(1)
<223> 在位置1的Xaa是6-氨基己酸
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (2)..(2)
<223> 在位置2的C是D-氨基酸
<220>
<221> 二硫键
<222> (2)..(10)
<223> 在位置2的C的侧链与在位置10的C的侧链一起形成二硫键
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (10)..(10)
<223> 在位置10的C是D-氨基酸
<400> 2
Xaa Cys Gly Arg Leu Lys Glu Lys Lys Cys
1 5 10
<210> 3
<211> 15
<212> PRT
<213> 人工序列
<220>
<223> 在实验室合成的并入非天然存在的氨基酸的肽序列
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (1)..(1)
<223> 在位置1的Xaa是6-氨基己酸
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (4)..(4)
<223> 在位置4的R是D-氨基酸
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (6)..(6)
<223> 在位置6的Xaa是6-氨基己酸
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (7)..(7)
<223> 在位置7的C是D-氨基酸
<220>
<221> 二硫键
<222> (7)..(15)
<223> 在位置7的C的侧链与在位置15的C的侧链一起形成二硫键
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (15)..(15)
<223> 在位置15的C是D-氨基酸
<400> 3
Xaa Arg Arg Arg Lys Xaa Cys Gly Arg Leu Lys Glu Lys Lys Cys
1 5 10 15
<210> 4
<211> 4
<212> PRT
<213> 人工序列
<220>
<223> 在实验室合成的并入非天然存在的氨基酸的肽序列
<220>
<221> MISC_FEATURE
<223> 第二位置中的R是D-氨基酸
<220>
<221> MISC_FEATURE
<223> 第二位置中的R是D-氨基酸
<400> 4
Arg Arg Arg Lys
1
<210> 5
<211> 9
<212> PRT
<213> 人工序列
<220>
<223> 在实验室合成的并入非天然存在的氨基酸的肽序列
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (1)..(1)
<223> 在位置1的C是D-氨基酸
<220>
<221> 二硫键
<222> (1)..(9)
<223> 在位置1的C的侧链与在位置9的C的侧链一起形成二硫键
<220>
<221> MISC_FEATURE
<222> (9)..(9)
<223> 在位置9的C是D-氨基酸
<400> 5
Cys Gly Arg Leu Lys Glu Lys Lys Cys
1 5

Claims (18)

1.用于癌细胞的光动力治疗和成像的组合物，所述组合物包含下述分子式所表示的铒卟啉基配合物、镱卟啉基配合物或钆卟啉基配合物：
其中Ln是Er、Yb或Gd；且
Rn是具有选自SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2和SEQ ID NO:3的氨基酸序列的多肽；或者，
所述组合物包含由选自Gd1、Gd2、Gd3、Gd4和Gd5的分子式所表示的水溶性卟啉基钆配合物或其药学上可接受的盐：
其中
Rn是
或
Rn是具有选自SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4和SEQ ID NO:5的氨基酸序列的多肽。
2.根据权利要求1所述的组合物，其中所述铒卟啉基配合物与整联蛋白αvβ3同种型特异性肽缀合。
3.根据权利要求1所述的组合物，其中所述组合物包含铒卟啉基配合物且Rn是SEQ IDNO:4。
4.根据权利要求1所述的组合物，其中所述组合物包含铒卟啉基配合物且Rn是SEQ IDNO:5。
5.根据权利要求1所述的组合物，其中所述组合物包含铒卟啉基配合物且Rn是SEQ IDNO:3。
6.根据权利要求1所述的组合物，其中所述组合物包含下述分子式所表示的铒卟啉基配合物：
其中Ln是Er，且Rn是具有SEQ ID NO:3的氨基酸序列的多肽。
7.根据权利要求1所述的组合物，其中所述癌细胞包括膀胱癌细胞、宫颈癌细胞和肺癌。
8.一种癌细胞的光动力治疗和成像的方法，所述方法包括向有需要的受试者施用权利要求1所述的组合物，并用辐射源辐射所述有需要的受试者的癌细胞。
9.根据权利要求8所述的方法，其中通过静脉内或通过注射将所述组合物施用于所述癌细胞的部位。
10.根据权利要求8所述的方法，其中所述辐射源是波长在卟啉的Q带中的光源。
11.根据权利要求8所述的方法，其中所述辐射源是波长超过550nm的光源。
12.根据权利要求8所述的方法，其中所述辐射源是波长为860nm的光源。
13.根据权利要求8所述的方法，其中使用荧光成像进行所述成像。
14.根据权利要求8所述的方法，其中使用NIR成像进行所述成像。
15.根据权利要求8所述的方法，其中使用MRI成像进行所述成像。
16.根据权利要求8所述的方法，其中所述组合物包含所述钆卟啉基配合物，且Ln是Gd；或所述组合物包含选自Gd1、Gd2、Gd3、Gd4和Gd5的化合物。
17.一种合成权利要求1所述的组合物的方法，其中Ln是Er或Yb，所述方法包括根据下述反应方案的步骤：
其中：
通过以下步骤合成所述化合物Por(THP-TMS)，所述步骤包括：
在氩气氛下，将吡咯、五氟苯甲醛和4-[2-(三甲基硅烷基)乙炔基]苯甲醛6溶解于CH2Cl2中，以产生第一溶液；
使所述第一溶液静置至少10分钟；
向所述第一溶液中加入BF3.O(Et)2；
在室温下将所述第一溶液搅拌至少1小时；
向所述第一溶液中加入DDQ(2,3-二氯-5,6-二氰基-1,4-苯醌)；
在室温下将所述第一溶液搅拌至少另外1小时；
在真空下从所述第一溶液中除去溶剂，以产生第一混合物；
使所述第一混合物通过硅胶柱(己烷-CH2Cl2)，在减压下浓缩，以产生5,10,15-三(五氟苯基)-20-[4-{2-(三甲基硅烷基)乙炔基}苯基卟啉]或Por(THP-TMS)；
通过以下步骤合成所述化合物Ln-1，所述步骤包括：
在约0℃将Ln[N(SiMe3)2]3·x[LiCl(THF)3]:HN(SiMe3)2溶解于THF中，以产生第二溶液；
在至少30分钟的时间段内将n-BuLi缓慢加入所述第二溶液中；
将所述第二溶液搅拌至少12小时；
将所述第二溶液转移到具有悬浮于THF中的LnCl3的Schlenk烧瓶中，以产生第二混合物；
将所述第二混合物搅拌至少24小时，直至所有固体LnCl3消失而产生Ln[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl](x＝3～5)，其中Ln＝Er或Ln＝Yb；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Yb-1，所述步骤包括：
将Yb[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl](x＝3～5)转移至Schlenk烧瓶中；
在真空下从Yb[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl](x＝3～5)中除去溶剂，以产生第一残余物；
向所述第一残余物中加入CH2Cl2，用于沉淀LiCl，以产生第三混合物；
将所述第三混合物离心，直至产生透明层；
将所述透明层转移到另一个具有溶解于甲苯中的无水Por(THP-TMS)游离碱的Schlenk烧瓶中，以产生第三溶液；
回流所述第三溶液，直至大部分所述游离碱与金属离子配位；
向所述第三溶液中加入无水NaLOMe[LOMe-((环戊二烯基)三(二甲基亚磷酸酰氧基)-钴酸盐或阴离子三足配体)，以产生第四混合物；
将所述第四混合物搅拌至少另外12小时；
将所述第四混合物冷却至室温；
在真空下从所述第四混合物中除去溶剂，以产生第二残余物；
将所述第二残余物溶解于CHCl3中；
用CHCl3/石油醚作为洗脱液在硅胶上过滤并层析所述溶解的第二残余物；
进一步将层析产物溶解于CH2Cl2中；并过滤所述溶液以产生化合物Yb-1；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Er-1，所述步骤包括：
与Yb-1的步骤相同，用Er[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl](x＝3～5)代替Yb[N(SiMe3)2]3·x[Li(THF)3Cl](x＝3～5)；
通过以下步骤合成所述化合物Ln-2，其中Ln＝Yr，所述步骤包括：
向Yb-1的CH2Cl2溶液中加入TBAF，以产生第五溶液；
将所述第五溶液搅拌至少30分钟；
通过TLC监控所述第五溶液的反应进程；
所述反应完成后，使所述第五溶液通过短硅胶柱；
从所述第五溶液中除去溶剂，以产生Yr-2；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Er-2，所述步骤包括：
与Yb-2的步骤相同，用Er-1代替Yb-1；
通过以下步骤合成所述化合物Ln-4，其中Ln＝Yr，所述步骤包括：
在氮气下在干燥的烧瓶中混合Pd(PPh3)4、CuI、Yb-2以及4-碘苯甲酸，以产生第五混合物；
向所述第五混合物中加入THF和Net3，并用氮气将所述第五混合物脱气；
将所述第五混合物在至少40℃搅拌至少12小时；
在减压下从所述第五混合物中除去溶剂，以产生第三残余物；
通过层析法纯化所述第三残余物；
用CH2Cl2/甲醇洗脱所述纯化的第三残余物，以产生洗脱的化合物；
将所述洗脱的化合物、EDCI、NHS在干燥的烧瓶中并在氮气下混合，以产生第六混合物；
向所述第六混合物中加入无水DMF；
在室温下将所述第六混合物搅拌至少48小时；
从所述搅拌的第六混合物中除去溶剂，以产生第四残余物；
用二乙醚重结晶所述第四残余物并干燥所述晶体，以产生Yb-4；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Er-4，所述步骤包括：
与Yb-4的步骤相同，用Er-2代替Yb-2；
通过以下步骤合成所述化合物Yb-R1，所述步骤包括：
将Yb-4在无水DMF中的搅拌溶液与N,N’-二异丙基乙胺(DIPEA)混合，以产生第七混合物；
向所述第七混合物中加入肽R1；
使所述第七混合物在室温下反应至少24小时；
在真空下从所述第七混合物中除去溶剂，以产生干燥的第五残余物；
用二乙醚重结晶所述干燥的第五残余物至少三次；
干燥所述重结晶的干燥的第五残余物，以产生Yb-R1；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Yb-R2，所述步骤包括：
与Yb-R1的步骤相同，用R2代替R1；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Yb-R3，所述步骤包括：
与Yb-R1的步骤相同，用R3代替R1；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Er-R1，所述步骤包括：
与Yb-R1的步骤相同，用Er-4代替Yb-4；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Er-R2，所述步骤包括：
与Yb-R2的步骤相同，用Er-4代替Yb-4；
通过以下步骤进一步合成所述化合物Er-R3，所述步骤包括：
与Yb-R3的步骤相同，用Er-4代替Yb-4。
18.一种合成权利要求1所述的组合物的方法，所述方法包括下述反应方案的步骤：
其中
通过以下步骤合成所述化合物Por-TMS，所述步骤包括：
将4-((三甲基硅烷基)乙炔基)苯甲醛与吡啶-4-甲醛在丙酸中混合，以产生第八混合物；
将所述第八混合物在至少130℃搅拌至少半小时；
将吡咯滴加到所述第八混合物中，同时将温度升至至少140℃；
在露天环境将所述第八混合物搅拌至少30分钟；
将所述第八混合物冷却至室温；
在减压下从所述第八混合物中除去溶剂，以产生粗产物；
将所述粗产物溶解于CH2Cl2中，以产生第六溶液；
通过柱层析法在硅胶柱CH2Cl2/甲醇上纯化所述第六溶液，以产生Por-TMS；
通过以下步骤合成所述化合物Gd[N(SiMe3)2]3·x[LiCl(THF)3]，所述步骤包括：
将HN(SiMe3)2在约0℃溶解于THF中，以产生第七溶液；
在至少30分钟的时间段内向所述第七溶液中加入n-BuLi；
将所述第七溶液搅拌至少12小时，直至获得澄清的浅黄色溶液；
将所述第七溶液转移到具有悬浮于THF中的GdCl3的Schlenk烧瓶中，以产生第九混合物；
将所述第九混合物搅拌至少24小时，直至所有固体GdCl3消失，以产生所得溶液Gd[N(SiMe3)2]3·x[LiCl(THF)3](x＝3～5)；
通过以下步骤合成所述化合物Gd-1-L1，所述步骤包括：
将Gd[N(SiMe3)2]3·x[LiCl(THF)3](x＝3～5)转移到Schlenk烧瓶中，并在真空下除去其中的溶剂，以产生第六残余物；
向所述第六残余物中加入CH2Cl2以沉淀LiCl，以产生第十混合物；
将所述第十混合物离心，直至产生透明层；
将所述透明层转移到另一个具有溶解于甲苯中的无水Por-TMS游离碱的Schlenk烧瓶中，以产第八溶液；
回流所述第八溶液，直至大部分所述游离碱与金属离子配位；
向所述第八溶液中加入无水NaL1(0.1g,0.22mmol)[L1 _((环戊二烯基)三(二甲基亚磷酸酰氧基)-钴酸盐，阴离子三足配体)，以产生第十一混合物；
将所述第十一混合物搅拌至少另外12小时；
将所述第十一混合物冷却至室温；
在真空下从所述第十一混合物中除去溶剂，以产生第七残余物；
将所述第七残余物溶解于CHCl3中；
使用三氯甲烷/甲醇醚作为洗脱液在硅胶上过滤并层析所述溶解的第二残余物；
将层析产物进一步溶解于CH2Cl2中；并过滤所述溶解的产物，以产生化合物Gd-1-L1；
通过以下步骤合成所述化合物Gd-1-L2，所述步骤包括：
与Gd-1-L1的步骤相同，用KL2(三(1-吡唑基)硼氢化钾)代替NaL1；
通过以下步骤合成所述化合物Gd-3，所述步骤包括：
向Gd-1-L1的DCM溶液中加入TBAF，以产生第九溶液；
将所述第九溶液搅拌至少30分钟；
通过TLC监控所述第九溶液的反应；
使用DCM使所述第九溶液通过短硅胶柱以除去其中的溶剂，从而产生纯产物；
将所述纯产物和Pd(PPh3)4、CuI、4-碘苯甲酸置于干燥的烧瓶中和氮气下，以产第十二混合物；
向所述第十二混合物中加入THF和Net3；
用氮气将所述第十二混合物脱气；
将所述第十二混合物在至少40℃的温度搅拌至少12小时；
在减压下从所述第十二混合物中除去溶剂，以产生第八残余物；
通过层析法纯化所述第八残余物；
用CH2Cl2/甲醇洗脱所述纯化的第八残余物；
将所述洗脱的纯化的第八残余物、EDCI、NHS置于干燥的烧瓶中和氮气下，以产生第十三混合物；
向所述第十三混合物中加入无水DMF；
将所述第十三混合物在室温下搅拌至少48小时；
从所述第十三混合物中除去溶剂，以产生第九残余物；
用二乙醚重结晶所述第九残余物，并干燥所述晶体，以产生Gd-3；
将所述Gd-3溶解于DMF中；
向所述溶解的Gd-3中加入CH3I；
将所述溶解的Gd-3搅拌至少5小时；
从所述搅拌的溶解的Gd-3中除去溶剂，以产生第十残余物；
用醚DCM洗涤所述第十残余物，以产生纯Gd-3；
通过以下步骤合成所述化合物Gd-4，所述步骤包括：
与Gd-3的步骤相同，用Gd-1-L2代替Gd-1-L1；
通过以下步骤合成所述化合物Gd-3-Rn，所述步骤包括：
将Gd-3在无水DMF中的搅拌溶液与N,N'-二异丙基乙胺(DIPEA)混合，以产生第十四混合物；
向所述第十四混合物中加入肽Rn；
使所述第十四混合物在室温下反应至少24小时；
在真空下从所述第十四混合物中除去溶剂，以产生干燥的第十一残余物；
用二乙醚重结晶所述干燥的第十一残余物至少三次，并进一步干燥所得产物，以产生Gd-3-Rn；
通过以下步骤合成所述化合物Gd-4-Rn，所述步骤包括：
与Gd-3-Rn的步骤相同，用Gd-4代替Gd-3。
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