CN109432098B - 化合物ps-341在制备小rna病毒科肠道病毒属病毒抑制剂的应用 - Google Patents
化合物ps-341在制备小rna病毒科肠道病毒属病毒抑制剂的应用 Download PDFInfo
- Publication number
- CN109432098B CN109432098B CN201811386987.XA CN201811386987A CN109432098B CN 109432098 B CN109432098 B CN 109432098B CN 201811386987 A CN201811386987 A CN 201811386987A CN 109432098 B CN109432098 B CN 109432098B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- cells
- virus
- compound
- cell
- enterovirus
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/33—Heterocyclic compounds
- A61K31/395—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
- A61K31/495—Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having six-membered rings with two or more nitrogen atoms as the only ring heteroatoms, e.g. piperazine or tetrazines
- A61K31/4965—Non-condensed pyrazines
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/12—Antivirals
- A61P31/14—Antivirals for RNA viruses
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Virology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Communicable Diseases (AREA)
- Oncology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
技术领域
本发明涉及化合物PS-341的新用途,特别是涉及化合物PS-341在制备小RNA病毒科肠道病毒属病毒抑制剂的应用。
背景技术
肠道病毒(Enterovirus,小RNA病毒科,肠道病毒属)为无包膜单股正链RNA病毒,是常见的人类病原体,可引起从轻微的发热到致死性脑膜炎和病毒性脑炎等一系列广泛的临床症状。VP1基因,作为四种衣壳蛋白之一的VP1蛋白的编码基因,广泛被用来区分不同血清型的肠道病毒。现在公认有四种肠道病毒:A、B、C、D。
人肠道病毒D68型(Human Enterovirus D68,EV D68)作为EV D组病毒五种血清型(D70、D94、D111、D68、D120)中的一种,最初于1962年在加利福尼亚州四名儿童呼吸系统疾病患者咽拭子中分离。与其他肠道病毒不同,EV D68与鼻病毒(Rhinovirus)有相似的生物学特性。2002年报道的Fermon的两个亚系(VR-561、VR-1076)是酸敏感性的。2004年的报道结果与2002年的报道结果相一致,并增加测试了其他五个临床分离株:MN89、MN98、MD02-1、TX01、TX02均为酸敏感型。Oberste发现EV D68在33℃比在37℃增殖得更快。酸敏感型和较低的最适生长温度与鼻病毒的生物学特征相同,这些共享的特征可能是它们都为呼吸道病毒的基础。
自1962年首次发现后,该病毒的分离鉴定罕有报道。在1970-2005年间,只有26例临床分离株在美国被报道,占所有报道的EV家族病例的0.1%,流行病学数据极其有限。然而,近年来该病毒在全球多个地区频繁爆发。EV D68感染的临床并发症包括呼吸道感染、支气管炎及肺炎、手足口病、松弛性瘫痪和新生儿败血症等。有研究证明EV D68能够引起严重的呼吸系统疾病并加剧哮喘及肺炎的临床症状,诱发致死性神经系统感染,严重病例出现心肺功能衰竭,最终导致死亡。EV D68主要在病人的呼吸道分泌物中潜伏存活,病人在咳嗽、打喷嚏或接触物体表面时都会传播病毒。患病的主要年龄群集中在一岁到四岁的儿童,但有接近四分之一的感染者为成年人。因此推断,随着检测数据的增加,EV D68病毒最终可能被认定为全年龄组的呼吸系统病原体。尽管对其生物学特征的了解有所深入,但病毒的流行病学特征及致病机制仍然所知甚少。因此,当前迫切需要发展特异有效的预防及治疗药物和手段来遏制病毒的危害。
化合物PS-341是一种20S蛋白酶体抑制剂,分子式为C19H25BN4O4,是美国千年制药公司(MilIennium Pharmaceuticals)开发的一种二肽硼酸衍生物。化合物PS-341作为一种蛋白酶体抑制剂使用,可以强烈而可逆地抑制蛋白酶体的功能,导致一些本应被清除的蛋白质在细胞内大量堆积,进而引起细胞凋亡。目前,化合物PS-341通过诱导细胞凋亡而发挥的抗肿瘤作用备受瞩目。然而,化合物PS-341能否抑制小RNA病毒科肠道病毒属病毒复制,目前尚未见报道。
发明内容
本发明的目的是提供一种化合物PS-341在制备小RNA病毒科肠道病毒属病毒抑制剂的应用。
本发明的技术方案是:化合物PS-341在制备小RNA病毒科肠道病毒属病毒抑制剂的应用,所述化合物PS-341为式(I)所示结构:
所述小RNA病毒科肠道病毒属病毒为EV D68病毒、CV A16病毒。
本发明的有益效果是:实验证明,化合物PS-341抑制肠道病毒EV D68、CV A16复制的功能,为预防和治疗肠道病毒EV D68、CV A16提供有效方案。
附图说明
图1:MTT实验检测细胞存活率;
图2:不同浓度PS-341对肠道病毒EV D68复制的影响;
(A)RD细胞(B)Hela细胞,PS-341药物在其终浓度为50nM、100nM、200nM时,对肠道病毒EV D68病毒的复制均有抑制作用,并且随着PS-341的工作浓度的升高,其抑制功能逐渐增强;
图3:小分子PS-341药物处理时间补偿
RD细胞,实验中分别按照(1)病毒与PS-341共孵育后感染细胞(2)病毒侵染细胞同时在培养液中加入PS-341(3)病毒吸附完成后加入PS-341处理细胞,药物终浓度均为100nM;结果表明,PS-341均能够显著抑制病毒EV D68的复制;图4:小分子PS-341对CV A16复制影响
(A)柯萨奇A16型病毒感染RD细胞后,以药物终浓度分别为10nM、20nM、100nM处理细胞(B)PS-341以100nM处理细胞,检测24h、48h后细胞内病毒增值情况;结果表明,PS-341可以显著抑制CV A16在细胞内的复制。
具体实施方式
下面结合附图和实施例对本发明作进一步的详细说明,但本发明的实施方式不限于此。
Hela细胞(人宫颈癌细胞)购于美国ATCC
RD细胞(横纹肌瘤细胞)购于美国ATCC
实施例1
化合物PS-341在制备小RNA病毒科肠道病毒属病毒抑制剂的应用,所述化合物PS-341为式(I)所示结构:
所述小RNA病毒科肠道病毒属病毒为EV D68病毒、CV A16病毒。
实施例2.PS-341对Hela细胞和RD细胞活力的影响。
在96孔板中准备RD细胞和Hela细胞,调整细胞悬液浓度,分于96孔板,3000-10000个细胞/孔。细胞生长密度适中,PS-341药物浓度梯度设置为0nM、6.25nM、12.5nM、25nM、50nM、100nM、200nM、400nM,每组设置药物对照以及细胞对照,药物对照组为浓度为1%的DMSO,细胞对照组不做任何处理,每组为3个复孔。利用MTT细胞活力测定方法,检测各个处理组的细胞活性。
病毒培养
选择肠道病毒D68易感细胞横纹肌肉瘤细胞(RD)作为接种对象。将RD细胞接种于T75培养瓶中,细胞密度为80%-90%时,去细胞培养基,加入DMEM,取适量病毒原液,以MOIO.1侵染细胞4-6h后,弃掉DMEM,加入含2%FBS的细胞维持液,细胞继续培养48-72h。观察细胞80%-90%出现病变,用细胞刮板收集上清和细胞。反复冻融3次,离心后上清即为培养后的病毒液,直接用于实验。
细胞的复苏
液氮中冻存的细胞取出,迅速置于37℃恒温水浴锅中,缓慢摇晃至细胞冻存液融化,取出液体置于15ml离心管中,加入5ml新鲜培养基,800rpm,离心5min,弃掉上清,加入适量新鲜培养基反复吹匀,将细胞置于T25培养瓶中,于37℃,5%CO2培养箱中培养。
细胞的冻存
取长满细胞的T25培养瓶,弃掉培养液,用PBS漂洗一次,加入1ml胰酶,于37℃5%CO2培养箱中消化1min,加入5ml新鲜培养液来终止消化,轻轻反复吹匀细胞,将细胞转移至15ml离心管中,800rpm,离心5min,弃掉上清,加入预先配好的细胞冻存液(90%FBS,10%DMSO),用移液管轻轻吹打混匀,分装入冻存管中,做好标记包括细胞代数,冻存日期,细胞种类,将冻存管放入冻存盒,置于-80℃冰箱保存,24h后转移至液氮中长期保存。
细胞培养
1)RD细胞的培养
RD细胞培养于含有10%FBS,1%青-链霉素的DMEM液体培养基,置于37℃,含5%C02的培养箱中孵育培养。约48h后,用含0.25%EDTA的胰酶消化,约3-5min后,加入10%FBS的新鲜培养基终止,室温离心800rpm,5min,弃上清,取适量新鲜培养基重悬后,三分之一置于培养瓶中继续培养,剩余传至96孔细胞培养板。
2)HeLa细胞的培养
HeLa细胞培养于含有10%FBS,1%青-链霉素的DMEM液体培养基,置于37℃,含5%C02的培养箱中孵育培养。约48h后,用含0.25%EDTA的胰酶消化,约3-5min后,加入10%FBS的新鲜培养基终止,室温离心800rpm,5min,弃上清,取适量新鲜培养基重悬后,三分之一置于培养瓶中继续培养,剩余传至96孔细胞培养板。
MTT实验检测细胞存活率
细胞按照如上处理方式,处理24h后,按如下步骤进行检测。
1.小心吸去上清,加入90μl新鲜培养液,再加入10μl MTT溶液,继续培养4h。
2.然后弃掉上清,每孔加入110μl Formazan溶解液,置摇床上低速振荡10min,使结晶物充分溶解。在酶联免疫检测仪490nm处测量各孔的吸光值。
3.同时设置调零孔(培养基、MTT、Formazan溶解液),每组设定3复孔。
4.MTT结果分析
计算IC50
1、公式法:lgIC50=Xm-I(P-(3-Pm-Pn)/4)
Xm:lg最大剂量
I:lg(最大剂量/相临剂量)P:阳性反应率之和
Pm:最大阳性反应率Pn:最小阳性反应率
实施例3.不同浓度PS-341对肠道病毒EV D68复制的影响。
本实验在RD细胞和Hela细胞中进行。
细胞复苏具体实施步骤同实施例2.
细胞培养
1)RD细胞的培养
RD细胞培养于含有10%FBS,1%青-链霉素的DMEM液体培养基,置于37℃,含5%C02的培养箱中孵育培养。约48h后,用含0.25%EDTA的胰酶消化,约3-5min后,加入10%FBS的新鲜培养基终止,室温离心800rpm,5min,弃上清,取适量新鲜培养基重悬后,三分之一置于培养瓶中继续培养,剩余传至96孔细胞培养板。
2)HeLa细胞的培养
HeLa细胞培养于含有10%FBS,1%青-链霉素的DMEM液体培养基,置于37℃,含5%C02的培养箱中孵育培养。约48h后,用含0.25%EDTA的胰酶消化,约3-5min后,加入10%FBS的新鲜培养基终止,室温离心800rpm,5min,弃上清,取适量新鲜培养基重悬后,三分之一置于培养瓶中继续培养,剩余传至96孔细胞培养板。
细胞处理
在24孔板中准备Hela细胞和RD细胞,用MOI=0.1的EV D68病毒感染Hela细胞和RD细胞,病毒吸附完成后,用不同浓度的PS-341处理细胞,浓度为50nM、100nM、200nM,药物对照处理组为1%DMSO。
细胞样品收集
细胞加药处理24h后,弃掉细胞上清,用PBS缓冲液漂洗细胞两次,取500μl PBS将细胞收集到1.5ml离心管中,5000rpm离心5min,弃掉上清,置于-20℃备用。
RNA提取
细胞样品用作RNA提取,350μL RLT裂解液裂解细胞,上下吹打细胞沉淀直至沉淀消失;加入等体积的70%乙醇溶液,吹打混匀,迅速转移到2ml吸附柱中,12000rpm离心15s,弃掉废液;向吸附柱中加入700μl RW1buffer,12000rpm离心15s,弃掉废液;加入500μl RPEbuffer(已加入四倍体积44ml无水乙醇),12000rpm离心15s;再加入500μl RPE buffer,12000rpm离心2min,弃掉废液,将吸附柱放入干净的2ml收集管中14000rpm离心1min;将吸附柱放入1.5ml离心管中,用30μl无RNA酶水将吸附柱中的RNA洗脱下来,-80℃备用。
RNA逆转录成cDNA
利用cDNA第一条链合成试剂盒进行RNA反转录。反应体系为20μl。
逆转录体系如下:
Total RNA/mRNA 50ng-5ng/5-500ng
Anchored-oligo(dT)0.5ng/ml 1μl
RNAse-free Water 适量
将模板、引物、RNAse-free Water混合均匀,置于PCR仪中,65℃孵育5min。再将该体系放置在冰上两分钟。再按照如下体系配制反转录成分:
2×TS Rection Mix 10μl
TranScriptor RT/RI Enzyme Mix 1μl
将配好的20μl体系混匀,置于PCR仪中42℃孵育15min;85℃,5s灭活TranScriptorRT/RI。反转录后的cDNA保存在-40℃备用。
实时定量PCR(Real-time PCR)
利用SYBER GreenI染料进行实时定量PCR检测细胞中肠道病毒EV D68结构蛋白VP1含量来间接监测病毒RNA的水平。反应体系为20μl,体系配制如下:
所用引物序列
VP1-F 5GGCAGCCTATCAGGTGGAGAG3 2412-2432
VP1-R 5GAGTTTGTATGGCTTCTTCTGGTTC3 2536-2560
GAPDH-F 5CCCACTCCTCCACCTTTGAC3
GAPDH-R 5CATACCAGGAAATGAGCTTGA3
实验结果:如图2所示,PS-341药物在其终浓度为50nM、100nM、200nM时,对肠道病毒EV D68病毒的复制均有抑制作用,并且随着PS-341的工作浓度的升高,其抑制功能逐渐增强。
实施例4.PS-341药物处理时间补偿实验
处理方式
1)100nM PS-341加入细胞培养基中,于37℃孵育2h后,病毒EV D68以MOI=0.1侵染细胞;
2)细胞感染病毒EV D68(MOI=0.1)的同时补加100nM PS-341处理细胞;
3)细胞感染病毒EV D68(MOI=0.1)1h后,用100nM PS-341处理细胞;
4)细胞感染病毒EV D68(MOI=0.1),用1%DMSO处理细胞。
细胞样品收集
分别在病毒吸附完成后12h、24h收集细胞样品。弃掉细胞上清,用PBS缓冲液漂洗细胞两次,取500μl PBS将细胞收集到1.5ml离心管中,5000rpm离心5min,弃掉上清,置于-20℃备用。
RNA提取
细胞样品用作RNA提取,350μL RLT裂解液裂解细胞,上下吹打细胞沉淀直至沉淀消失;加入等体积的70%乙醇溶液,吹打混匀,迅速转移到2ml吸附柱中,12000rpm离心15s,弃掉废液;向吸附柱中加入700μl RW1buffer,12000rpm离心15s,弃掉废液;加入500μl RPEbuffer(已加入四倍体积44ml无水乙醇),12000rpm离心15s;再加入500μl RPE buffer,12000rpm离心2min,弃掉废液,将吸附柱放入干净的2ml收集管中14000rpm离心1min;将吸附柱放入1.5ml离心管中,用30μl无RNA酶水将吸附柱中的RNA洗脱下来,-80℃备用。
RNA逆转录成cDNA
利用cDNA第一条链合成试剂盒进行RNA反转录,反应体系为20μl。
具体实施步骤参见实施例3。
反转录后的cDNA保存在-40℃备用。
实时定量PCR(Real-time PCR)
利用SYBER GreenI染料进行实时定量PCR检测细胞中肠道病毒EV D68结构蛋白VP1含量来间接监测病毒RNA的相对含量。反应体系为20μl。
具体实施步骤参见实施例3。
实验结果:如图3所示,病毒与PS-341共孵育后感染细胞、病毒侵染细胞同时在培养液中加入PS-341、病毒吸附完成后加入PS-341,PS-341均能够显著抑制病毒EV D68的复制。
实施例5.PS-341对CV A16在细胞内复制影响。
处理方式
(A)在细胞感染病毒CV A16(MOI=0.1)后,加入终浓度为10nM、20nM、100nM PS-341对细胞进行处理;
(B)在细胞感染病毒CV A16(MOI=0.1)后,加入终浓度为100nM PS-341对细胞进行处理。
细胞样品收集
药物处理细胞24h、48h后收集细胞样品。弃掉细胞上清,用PBS缓冲液漂洗细胞两次,取500μl PBS将细胞收集到1.5ml离心管中,5000rpm离心5min,弃掉上清,置于-20℃备用。
RNA提取
细胞样品用作RNA提取,350μL RLT裂解液裂解细胞,上下吹打细胞沉淀直至沉淀消失;加入等体积的70%乙醇溶液,吹打混匀,迅速转移到2ml吸附柱中,12000rpm离心15s,弃掉废液;向吸附柱中加入700μl RW1buffer,12000rpm离心15s,弃掉废液;加入500μl RPEbuffer(已加入四倍体积44ml无水乙醇),12000rpm离心15s;再加入500μl RPE buffer,12000rpm离心2min,弃掉废液,将吸附柱放入干净的2ml收集管中14000rpm离心1min;将吸附柱放入1.5ml离心管中,用30μl无RNA酶水将吸附柱中的RNA洗脱下来,-80℃备用。
RNA逆转录成cDNA
利用cDNA第一条链合成试剂盒进行RNA反转录,反应体系为20μl。
具体实施步骤参见实施例3。
反转录后的cDNA保存在-40℃备用。
实时定量PCR(Real-time PCR)
利用SYBER GreenI染料进行实时定量PCR检测细胞中肠道病毒CV A16的相对含量。反应体系为20μl。
具体实施步骤参见实施例3。
结果表明,如图4所示,以药物终浓度分别为10nM、20nM、100nM处理细胞和PS-341以100nM处理细胞,检测24h、48h后细胞内病毒增值情况,PS-341均可以显著抑制CV A16在细胞内的复制。
以上所述仅为本发明的优选实施方式,凡是利用本发明说明书及附图内容所作的若干改进或变形,或直接或间接运用在其他相关的技术领域,也应视为在本发明的专利保护范围内。
序列表
<110> 天津大学
<120> 化合物 PS-341在制备小RNA病毒科肠道病毒属病毒抑制剂的应用
<130> 111
<160> 4
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成()
<400> 1
ggcagcctat caggtggaga g 21
<210> 2
<211> 25
<212> DNA
<213> 人工合成()
<400> 2
gagtttgtat ggcttcttct ggttc 25
<210> 3
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工合成()
<400> 3
cccactcctc cacctttgac 20
<210> 4
<211> 21
<212> DNA
<213> 人工合成()
<400> 4
cataccagga aatgagcttg a 21
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201811386987.XA CN109432098B (zh) | 2018-11-20 | 2018-11-20 | 化合物ps-341在制备小rna病毒科肠道病毒属病毒抑制剂的应用 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201811386987.XA CN109432098B (zh) | 2018-11-20 | 2018-11-20 | 化合物ps-341在制备小rna病毒科肠道病毒属病毒抑制剂的应用 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN109432098A CN109432098A (zh) | 2019-03-08 |
CN109432098B true CN109432098B (zh) | 2021-04-13 |
Family
ID=65553334
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201811386987.XA Expired - Fee Related CN109432098B (zh) | 2018-11-20 | 2018-11-20 | 化合物ps-341在制备小rna病毒科肠道病毒属病毒抑制剂的应用 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN109432098B (zh) |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
BR112015015045A8 (pt) * | 2012-12-21 | 2018-01-23 | Ottawa Hospital Res Inst | partículas derivadas de vírus não replicante e respectivos usos. |
-
2018
- 2018-11-20 CN CN201811386987.XA patent/CN109432098B/zh not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN109432098A (zh) | 2019-03-08 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Dias et al. | The application of bacteriophages as novel indicators of viral pathogens in wastewater treatment systems | |
Rao et al. | Antigenic diversity of enteroviruses associated with nonpolio acute flaccid paralysis, India, 2007–2009 | |
Rahamat-Langendoen et al. | Upsurge of human enterovirus 68 infections in patients with severe respiratory tract infections | |
Wong et al. | Human enterovirus 71 and hand, foot and mouth disease | |
Shih et al. | Mutation in enterovirus 71 capsid protein VP1 confers resistance to the inhibitory effects of pyridyl imidazolidinone | |
Chansaenroj et al. | Epidemic outbreak of acute haemorrhagic conjunctivitis caused by coxsackievirus A24 in Thailand, 2014 | |
Yang et al. | Neuropathology in 2 cases of fatal enterovirus type 71 infection from a recent epidemic in the People's Republic of China: a histopathologic, immunohistochemical, and reverse transcription polymerase chain reaction study | |
Pham et al. | Detection of human parechovirus in stool samples collected from children with acute gastroenteritis in Japan during 2007–2008 | |
Velu et al. | BPR-3P0128 inhibits RNA-dependent RNA polymerase elongation and VPg uridylylation activities of Enterovirus 71 | |
Yu et al. | Distribution of enterovirus 71 RNA in inflammatory cells infiltrating different tissues in fatal cases of hand, foot, and mouth disease | |
El-Senousy et al. | Coxsackievirus B4 as a causative agent of diabetes mellitus type 1: is there a role of inefficiently treated drinking water and sewage in virus spreading? | |
Xu et al. | The complete genome analysis of two enterovirus 96 strains isolated in China in 2005 and 2009 | |
Song et al. | Complete sequence analysis and antiviral screening of medicinal plants for human coxsackievirus a16 isolated in Korea | |
CN108030785B (zh) | 白头翁皂苷b5用于预防和/或治疗肠病毒感染 | |
Sousa Jr et al. | Echovirus 30 detection in an outbreak of acute myalgia and rhabdomyolysis, Brazil 2016–2017 | |
Alam et al. | Identification of human parechovirus genotype, HPeV-12, in a paralytic child with diarrhea | |
CN109432098B (zh) | 化合物ps-341在制备小rna病毒科肠道病毒属病毒抑制剂的应用 | |
Yee et al. | Identification of molecular determinants of cell culture growth characteristics of Enterovirus 71 | |
Baek et al. | Molecular and epidemiological characterization of enteroviruses isolated in Chungnam, Korea from 2005 to 2006 | |
de Souza Luna et al. | Identification of a contemporary human parechovirus type 1 by VIDISCA and characterisation of its full genome | |
Hong et al. | Pathogenesis of coxsackievirus B2 in mice: characterization of clinical isolates of the coxsackievirus B2 from patients with myocarditis and aseptic meningitis in Korea | |
Rahimi et al. | Direct identification of non-polio enteroviruses in residual paralysis cases by analysis of VP1 sequences | |
Tao et al. | Genomic characterization of an enterovirus 97 strain isolated in Shandong, China | |
CN111773234B (zh) | 淫羊藿次苷ⅱ在制备抗肠道病毒71型药物中的应用 | |
CN101781651B (zh) | 用于抑制ⅰ型登革病毒复制的靶向小干扰rna序列 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PB01 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
GR01 | Patent grant | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20210413 Termination date: 20211120 |
|
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |