CN109310077B - 利用变化的外部压力用于离体肺通气的装置和方法 - Google Patents

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Abstract

本公开涉及一种使被切除肺通气的方法。通气气体被施加到肺的气道并且在肺周围形成真空。在调节供应到气道的通气气体的压力以维持肺气道中有正气道压力的同时，将该真空的真空度在一较低水平和一较高水平之间进行改变以引起肺呼吸。该真空的真空度在所述两个真空水平之间进行周期性改变。该水平可以在一段时间内被保持基本不变，在通气期间对所述较低或者所述较高水平中的一个或两个进行调节。肺可以被放置在一个密封腔室中，所述真空在该腔室中肺的周围形成。

Description

利用变化的外部压力用于离体肺通气的装置和方法
相关申请的交叉引用
本申请要求2016年5月30日申请的美国临时专利申请编号为62/343,076的优先权和权益，其全部内容通过引用并入本发明。
技术领域
本公开通常涉及肺通气的装置和方法，尤其涉及通过变化的外部压力用于被切除肺的通气的装置和方法。
背景技术
为了使用被切除的供体肺用于移植，被切除的肺(excised lung)在进行移植手术之前可能需要进行离体灌注和通气以恢复或保持其功能，或评估或评价它们的用于移植的质量或适宜性。
对于被切除肺(excised lung)的离体通气，常见的传统的机械通气技术是利用正压施加到气管支气管树(tracheobronchial tree)。这就在气管支气管树和肺泡之间的形成压力梯度，这使得气流沿着压力梯度进入肺泡。
已经认识到了被切除的肺也可以通过负压进行离体通气。例如，肺可以利用肺周围的负压(即，低于大气压)通气以允许肺自然地充满处于或接近大气压的通气气体。一些作者提出了可以通过向肺供应正压(高于大气压)的通气气体和利用肺周围的负压相结合的不同策略。然而，这些作者尚未公开利用正压和负压使肺进行离体通气的有效策略的任何具体细节。
发明内容
本公开的一个方面涉及一种使被切除的肺通气的方法。在该方法中，通气气体被供应到肺的气道并且在肺周围形成真空。当供应到气道的通气气体的压力被调节以维持肺的气道中的正的气道压力的同时，真空度在一较低水平和一较高水平之间进行改变以引起肺呼吸。该真空的真空度可在所述两个真空水平之间进行周期性改变。该水平可在一段时间内被保持基本不变，或者在通气期间对所述较低和所述较高水平中的一个或两个进行调整。肺可以被放置在一个密封的腔室中，所述真空在该腔室中肺的周围形成。
方便地，在一些实施方式中可以使用单个泵来施加气道压力和肺周围的真空。
在改进的实施方式中，通过在一高于大气压的较高压力和一低于大气压的较低压力之间改变的外部压力(施加到肺的外表面的压力)来影响通气。换句话说，可以通过在一正压力和一真空压力之间变化的外部压力来引起肺呼吸。
本公开的另一方面涉及使肺通气的方法，其包括向肺的气道施加第一压力(P1)，并且向肺的外表面施加第二压力(P2)。压差(pressure differential)，PD＝P1-P2，被保持为正并且被改变以引起肺呼吸。
在一个实施方式中，气道压力P1被保持高于大气压力，并且外部压力P2在一较高压力水平和一较低压力水平之间改变，其中较低压力水平低于大气压力。在一个具体实施方式中，P1可以被保持在不变值(constant value)，例如所述不变值在约5至约10cmH2O之间。压力差PD可在约7至约30cmH2O之间改变。例如，当P1在5cmH2O不变时，P2可以在-25至-2cmH2O之间改变。当P1在10cmH2O不变时，P2可在-20至3cmH2O之间变化。
在一个实施方式中，再生真空泵(regenerative vacuum pump)，例如再生涡轮机(regenerative turbine)，可被用于施加和控制P1和P2。P1可以被泵的排气侧的排气压力所调节，并且P2可以被泵的真空(吸气)侧的真空压力所调节。方便地，单个涡轮机足以用来施加和控制P1和P2。
本公开的另一方面涉及使肺通气的方法，其包括利用气泵(gas pump)提供的流体连通(fluid communication)中的气体在肺周围施加外部压力，并操作气泵来改变肺周围的外部压力以使肺通气。气泵可以是再生泵(regenerative pump)，例如涡轮泵(turbinepump)。肺周围的气体可以被局限在一固定体积之内，可以使用所述气泵改变该固定体积中的气量(例如，气体的摩尔数)以改变施加到肺的外部压力。
通过阅读下面具体实施方式的描述并结合附图，本公开的其他方面，特点，实施方式对于本领域普通技术人员是显而易见的。
附图说明
在图中，仅通过示例对本发明实施方式进行说明。
图1是使肺通气的示例性装置的示意性框图；
图2是图1的装置的示例性实施的示意性框图；
图3是使肺通气的另一个示例性装置的示意性框图；
图4是图3的装置的示意图，展示了吸气过程中的气流；
图5是图3的装置的示意图，展示了呼气过程中的气流；
图6是说明图3的装置中的使用控制比例阀的控制逻辑的示意图；
图7是用于图1或图3的装置应用的计算机框图；
图8是说明被图7的计算机装置所执行的用于控制图3的装置的操作的算法的流程图；
图9A和9B是肺实质中的肺泡网络的示意图；
图10是说明获自本发明实施方式中通气的猪肺样品的4秒期间的代表性胸内压(ITP)，气道压力(Paw)和跨肺压梯度(TPG)轮廓线的线状图；
图11是说明来自图10相同实验的压力-体积轮廓线的线状图；
图12是说明获自本发明实施方式中通气的猪肺样品的在4秒期间内的代表性胸内压(ITP)，气道压力(Paw)和TPG轮廓线的线状图；
图13是说明来自与图12相同实验的压力-体积轮廓线的线状图；
图14A显示了说明代表性胸内压(ITP)随时间的轮廓线，和其中一部分在底部以时间轴放大示出的线状图(顶部)；
图14B是图14A相同实验期间测量的气道压力随时间的线状图；
图14C是图14A相同实验期间的跨肺压梯度随时间的线状图；
图15是说明获自本发明实施方式中通气的猪肺样品的随时间的代表性肺顺应性轮廓线的线状图；
图16是说明获自本文所公开的示例性通气装置和方法通气猪肺样品的随时间的代表性肺血管阻力(PVR)轮廓线的线状图；
图17是说明猪肺样品的离体肺灌注(EVLP)期间水肿的形成的柱状图，其中使用去细胞混合物，全血和溶液的混合物，浓缩红细胞(pRBC)和溶液的混合物的三种不同灌注液，比较联合的负压和正压通气策略(NPV/PPV，使用此公开的示例性通气装置和方法)与典型的正压通气策略(PPV)；
图18和19是说明获自本发明示例性通气装置和方法中的通气的人肺样品的代表性的流量-体积轮廓线的线状图；
图20和21是说明获自本发明示例性通气装置和方法中的通气的人肺样品的代表性的压力-体积轮廓线的线状图；和
图22是离体肺负压通气对照装置的示意图；
图23是说明获自根据图22所示的装置利用负压使容器中储存的猪肺样品通气的随时间的代表性胸内压(ITP)轮廓线的线状图；
图24是说明使用图22所示装置在使猪肺样品负压通气期间的滚柱泵的步阶位置(step position)随时间的线状图。
图25A，25B和25C是说明使用联合的NPV/PPV或PPV的灌注肺样品的肺氧合作用随时间的测量的代表性结果的柱状图；
图26A，26B和26C是说明使用联合的NPV/PPV或PPV的灌注肺样品的平均肺动脉压随时间的的测量的代表性结果的线状图；
图27A，27B和27C是说明使用联合的NPV/PPV或PPV的灌注肺样品的肺血管阻力随时间的测量的代表性结果的线状图；
图28A，28B和28C是说明使用联合的NPV/PPV或PPV的灌注肺样品的气道压力峰值随时间的测量结果的线状图；
图29A，29B和29C是说明使用联合的NPV/PPV或PPV的灌注样品肺的动态顺应性随时间的测量的代表性结果的线状图；
图30A，30B，30C，30D，30E和30F是说明使用联合的NPV/PPV或PPV的灌注样品猪肺的炎性细胞因子随时间的测量的代表性结果的线状图；和
图31A，31B和31C是说明使用联合的NPV/PPV或PPV的的灌注样品人肺的炎性细胞因子随时间的测量的代表性结果的线状图。
具体实施方式
已经认识到，当通过改变肺周围的压力对被切除肺进行离体通气以使肺呼吸时，在呼气过程中，肺可以仍然得益于所压施加到气道中的可调节正压以防止肺泡萎陷(alveolar collapse)。例如，正的气道压力结合肺外部周围的压力的振荡以驱动呼吸的应用可以允许便利地调节肺中的肺动脉压力梯度(transpulmonary pressure gradient，TPG)以使肺实质的肺泡节段(alveolar segments)有效的复张(recruitment)，同时减小，最小化或甚至是避免了复张节段(recruited segments)的过度膨胀。
相应地，本公开的一个实施方式涉及使被切除肺通气的方法。在该方法中，将通气气体供应到肺的气道(例如，气管或支气管)并在肺周围形成真空。在调节供应至气道的通气气体的压力以维持肺的气道中有正气道压力的同时，真空度在一个较低水平和一个较高水平之间进行改变(例如，周期地)以引起肺呼吸，其中所述气道压力可以不变或持续地为正压。代表性地，真空可以在两个真空水平之间周期性改变。该真空的真空水平可以在一段时间内被保持基本不变，或者在通气期间对所述较低水平和所述较高水平中的一个或两个进行调节。在供应到肺之前通气气体可利用微生物过滤器和湿度-水分-交换器(HME)过滤器进行过滤。肺可以被放置在密封的腔室中，所述真空在该腔室中肺的周围形成。
图1中示意性地说明了用于体被切除通气的示例性的装置10。
如所示的，装置10包括容器12，容器12具有用于安置肺50的可密封腔室14。为清晰可见，应注意术语“肺(a lung)”可指单肺(single lung)，多重肺(multiple lungs)或单肺或多个肺(lungs)的一部分。本文中连接到相同气管的两叶肺有时统称为“肺(a lung)”或“肺(the lung)”。
通气气体源16被提供用以供应可变化的正压的通气气体。
这里所用的，正的压力指的是高于肺和通气设备的直接环境(immediateenvironment)中的大气压的压力，除非另有明确说明。
第一导管18延伸穿过容器12的壁并且连接通气气体源16到肺50的气道52，以用于供应通气气体到肺的气道。导管18被密封不与腔室14中的内部空间压力连通。下面将进一步描述，通气气体可以是空气或任何含有氧气的合适的气体混合物。通气气体源16可包含空气泵(air pump)或电动涡轮机的输出端(图1中未示出，但可参见图2)用于以正压向肺供应空气。可以控制空气泵(air pump)或涡轮机的操作速度来调节肺的气道压力。
第二导管20将真空源22连接到腔室14以在腔室14中形成真空。用来供应通气气体的相同的涡轮机可被用于提供真空源22(例如参见图2)。
控制系统24被连接到通气气体源16和真空源22上。如下面将进一步更详细描述的，控制系统24可包括压力传感器，流量传感器，流量调节阀和一个或者更多的控制器(图1中未示出，但参见图2)，其被配置且适于在一较低真空水平和一较高真空水平之间改变腔室14中的真空度以引起肺50呼吸，并且通过调节由通气气体源16供应的通气气体的压力以在肺50的气道52中维持一个连续的正的气道压力。
例如，如图2所示，其示出了装置10的示例性实施方式10A，电动涡轮机30可以用作通气气体源16用以从涡轮机30的输出端口向肺50供应空气，并且用作真空源22用以从腔室14吸入空气进入涡轮机30的进气口以形成或者改变腔室14中的真空状态。在示例性实施例10A中，在选定的时间腔室14中的压力也可以是正的(即，高于大气压力)。
控制系统24可包括一个连接到导管18上的第一比例阀(proportional valve)32用于选择性地将导管18中的一部分空气释放到大气中(如图2中的阀32上方的箭头所示)，和连接到导管20上的第二比例阀34用于选择性地将空气从大气中添加到导管20中(如图2中的阀34上方的箭头所示)。在不同的实施方式中如果使用不同的通气设备气体源来代替大气中的空气是可以理解的。
控制系统24还可以包括用于控制第一比例阀32操作的第一比例-积分-微分(proportional-integral-derivative，PID)控制器36，以及用于控制第二比例阀34操作的第二PID控制器38。
第三导管40可被提供用以使导管18和20相互连接，并且第三比例阀42可连接到涡轮机30的输出端口并且连接到导管18和40用以选择性地以不同的比例从涡轮机30的输出端口输送空气进入导管18和40。第二PID控制器38可被连接以控制第三比例阀42的操作。
控制系统24还可进一步包括：用于传感第一导管18中第一压力的第一压力传感器44，和用于传感腔室14中第二压力的第二压力传感器46。第一压力传感器44被连接以向第一PID控制器36提供输入，并且第二压力传感器46被连接以向第二PID控制器38的提供输入。
控制系统24还可进一步包括中央处理器(central processing unit)或控制器(controller)48以电通信(electrical communication)的形式与PID控制器36和38以及涡轮机30相联系，用以控制PID控制器36和38的操作和涡轮机30的操作。控制器48可以是一个微处理器(microprocessor)，并且可以以计算机的形式被提供(参见图7)。
虽然未在图1和图2中示出，一个或多个微生物和HME过滤器(参见图3)可以被连接到一个或多个导管18和20以过滤和加湿待供应到腔室14和肺50的气道52中的空气。
本文所述的方法和装置的实施方式可方便地用于离体地肺灌注(ex vivo lungperfusion，EVLP)过程或系统中的负压通气。施加正压到肺气道中，当与这种负压通气相结合时，可以实现较高TPG而无需在对肺的外部施加过大的负压。
本文公开的实施方式还考虑到肺膨胀不全(atelectatic alveoli)的恢复，从而促进EVLP的扩展。更为方便的是利用至少一些公开的实施方式来测量并且获得离体通气的肺的功能性属性。
单个合适的涡轮机就能够产生足够的压力梯度和气流以满足具有各种尺寸的肺的通气的需求。单个涡轮机就可以提供真空源(例如，用于对肺外部施加负压力)和正压力源(例如，用于对同一肺的气道施加正压力，并且可选地对肺外部施加正压力)。因此，在本公开的一个实施方式中，单个涡轮机可足以驱动通气系统中的气流。这种实施方案的优点在于它是高能效的(energy efficient)，正如用于产生真空的相同能量也可用于产生正压。这种实施方式的另一个优点是其相对简单的构造和小的占地面积。
在另一个实施方式中，一个结合通气和灌注的装置100可以如图3所示被构造。
如图所示，供体肺150放置在刚性或耐压容器110内。在容器110内，肺可以被支撑在柔性多孔表面上，例如硅树脂或塑料网，或肺可以靠浮力放置在覆盖有软塑料膜的液体表面上(未示出)。可选择地，肺可以被支撑在类似于后胸部(posterior chest)形状的半刚性的塑料造型上，这样肺位于解剖学上熟悉的位置上(未示出)。
灌注装置160被提供以用于灌注肺150。连接到灌注装置160的导管162还可以任选地通过插管(cannula)被连接到肺150的肺动脉(pulmonary artery)154。连接到灌注装置160的导管164还与肺静脉(pulmonary vein)156相连接，可能通过左心房的附件(attachment to the left atrium)，并且任选地与肺150的插管相连接。以本领域技术人员所熟知的方式，通过导管162和164，灌注装置160可以被配置以循环灌注通过肺150的脉管系统(vasculature)。
肺150的气管支气管树152可通过气管内导管(endotracheal tube)144连接到导管142。对于本领域技术人员显而易见的是，当单肺或单肺的一部分被安装到该装置中时，气管内导管或类似装置可以被插入附属于肺(或肺的一部分(lung portion))的气管中或直接插入肺(或肺的一部分)的支气管(bronchus)中。在这种情况下，小儿气管内导管应具有合适的尺寸以连接到支气管。
容器110用盖子(lid)112密封以将容器110中的内部空间与大气隔绝。导管142(或气管内导管144)通过端口114穿过盖子112。导管162通过端口116穿过盖子112。导管164通过端口118穿过盖子112。当导管162，164和142(或气管内导管144)被安装就位时，所有的端口114,116和118相对于大气都是密封的。这样，容器110中的内部空间与大气相隔离，并且施加在肺150的外表面上的压力不再依赖于大气压力并且可以被独立地控制和调节。
导管136连接容器110到导管134。容器110内的气体压力依赖于导管136内的压力，和导管134中的压力。导管134与比例阀(proportioning valves)104和106相连，其通过导管130和132依次连接到涡轮机102的输入端口和输出端口。
阀104具有开放的入口138其允许大气的空气进入阀104，并且可以被操作以允许来自大气(“大气(atm)”)和导管134的空气以选定比例进入导管130。
阀106被连接到导管132,134和140上，并且是可操作的允许来自导管132的空气以选定比例进入导管134或导管140。
可以理解，涡轮机102在相连到导管132的输出端口输出正压力，并在连接到导管130的输入端口形成负压力。
在通过阀104之前大气中的微生物和其他颗粒被过滤器(未示出)滤除。
任选地，处于或者接近大气压力的气体混合物源(例如，氧气/空气)可以被连接到阀104的入口138，以提供代替大气空气的通气气体，以便于将肺暴露于所希望的或受控的气体混合物中。
在图3的示例性装置中，涡轮机102的旋转速度可以被改变以控制在涡轮机102的输出端口所施加的空气压力，尽管在一段时间内以不变的速度操作涡轮机102是可能的。可以理解，当涡轮机102处于正常操作时导管130内的气体压力是负压(即，低于大气压力)，并且导管132内的空气压力是正压(即，高于大气压)。
阀104和106可以被控制，例如通过控制器170尤其是控制器170中的子控制器172，以调节导管134和136中的压力，并因此调节容器110的内部空间的压力，真空在容器110中肺150的周围形成。阀104和106可被控制使容器110内的压力在一较低(真空)压力和一较高压力(真空或正压)之间振荡，这将引起肺呼吸(即，通过气管内导管144吸入和排出空气)。应当理解的是，在这里所使用的术语“真空”是指部分真空(partial vacuum)，真空度是指该真空有多接近完全真空。换句话说，真空度与真空压力有关，以及真空压力是如何地接近绝对零度。容器110中的空气压力的变化导致肺150相应地膨胀或收缩。即使当气管内导管144中的气道压力高于容器110中的瞬时气压时肺也可以收缩，只要压差不是太高以便压力差可以通过肺的弹性回缩(elastic recoil)来克服。肺150的膨胀和收缩可以被控制以模拟或者模仿体内正常呼吸期间肺的膨胀和收缩，并通过气管内导管144将空气移入和移出肺泡。利用所述的控制器，装置100允许精确控制和调节容器110和气管内导管144中的压力和压力变化比率，并且压力振荡的波形或者轮廓线可以被用户方便地设定和改变，例如使用计算机200。
涡轮机102通过系统被可用于产生基础水平的气流，产生压力梯度。通过调节比例阀104，106和108可以改变气管支气管树和肺的浆膜表面之间的压力梯度以改变TPG以致肺周期性地吸气和呼气。仅在需要时可以改变涡轮速度以确保压力梯度足够贯穿每个通气循环。
尽管对于负压通气不是必需的，如上所述，在气管内导管144中保持正的气道压力可提供某些益处和优点。就这一点而言，导管140通过带有开放出口146的第三比例阀108被连接到导管142。阀108被操作以将来自导管140选定部分的空气供应到导管142中，并且剩余部分的空气通过出口146释放到大气中(atm)。可以理解，在不同的实施式中当使用除了大气之外的通气气体时，出口146可以连接到通气气体源以再循环或使通气设备气体循环回到其来源。
作为一个实施方案，在离体通气期间通过向气道中施加连续或不变的正压力来获得正的气道压力，例如与一些人类失调症(例如阻塞性睡眠呼吸暂停)的治疗中被称为持续正的气道压力(continuous positive airway pressure，CPAP)的治疗技术中所施加的气道压力相类似的方式。为清楚起见，这里使用的术语“连续的(continuous)”和“连续地(continuously)”不与术语“不变的(contant)”同义。
阀108由控制器170控制，特别是控制器170中的子控制器174，以调节导管142中的压力和流量，并因此调节气管内导管144中的气道压。当容器110中高压导致肺150要从肺150中排出气体时，阀108也可以允许导管142中的空气被释放到大气中。阀108可以被控制以维持所希望的气道压力，其中所希望的压力可以由使用者设定以处于大气压力到一个上限(例如，10cm水柱)范围之内。
为了避免肺150的干燥，HME过滤器124可以被连接到导管136上，并且HME过滤器126可以被连接到导管142。任选地，微生物过滤器也可以被连接到导管136和142上(未示出)。
如前所述，阀104,106和108的操作被控制器170控制，基于从连接到导管142上的压力传感器122接收的信号，其检测表示肺150中的气道压力(PAW)的压力信号，而连接到容器110上的压力传感器120是为了检测表示容器110中的压力(被称为“胸内”压力或PIT或ITP)的信号。控制器170可以采用的一种形式为计算机200(图3中未示出)。
控制器170还可以连接到流量传感器128，所述流量传感器128检测表示气管内导管144中空气流量的信号(air flow rate)。任选地，阀104,106和108可以部分地基于从流量传感器128接收的信号而被操作。
基于检测到的信号和用户设定的一个或多个参数，涡轮机102的旋转速度可以被控制器170或计算机200。
用于控制器170或计算机200的用户设定点(set-points)可包括在容器110中的吸气末压(end inspiratory pressure，EIP)，在容器110中的呼气末压(end expiratorypressure，EEP)，吸气时间(Ti)，呼气时间(Te)，潮气量(Vt)和气道压力(PAW)。对本领域技术人员显而易见的是，当通气受到肺周围的外部压力改变的影响，EIP和EEP指的是外部压力的压力水平(例如，图1-2中的容器14内或图3-5中的容器110内的压力)，该压力在本发明中也称为“胸内”压力(缩写为PIT或ITP)。相比之下，在传统的机械通气技术中，向气道施加变化的正压以引起通气，EIP和EEP通常是在通气循环中不同位置的气道压力水平的测量值。
控制器170或计算机200可利用胸内气压(PIT)，气道压力(PAW)和气管内导管气流(V)作为输入。控制器170或计算机200可以输出用于控制这三个比例阀104,106和108的控制信号以及涡轮机102的马达或涡轮速度(例如，以每分钟的转数测量)。
可以理解，控制器170和计算机200可以接收来自图中所示的或未示出的其他组件的附加的输入，并且可以被用来控制装置100的附加的组件。例如，温度传感器(未示出)和温度控制装置(未示出)被使用并且连接到计算机200或控制器170用来控制容器110中的温度。此外，计算机200或控制器170可被用于控制灌注液(perfusate)经过肺脉管系统的流量。
图中的虚线或短划线(例如图1，2和3)表示通信连接，其可以是电力的或其他方式，并且可以是如本领域技术人员悉知的有线连接或无线连接。
控制器170可包括一个或多个比例-积分-微分(PID)控制器，尽管在图3中显示了两个PID子控制器172和174。
图3中描绘的具体的示例性实施方式中，控制器170中的PID子控制器172以容器110中的压力(通过压力传感器120检测)作为输入(Ia)，并输出用于控制比例阀104和106的信号(Ob,Oc)。控制器170中的PID子控制器174用压力传感器122检测的气道压力(Ix)(且任选地由流量传感器128测量的的气管内空气流量(Iy))作为输入，并输出用于控制比例阀108的信号(Oz)。
涡轮机102任选地被连接到计算机200或控制器170并被其控制。
用户可将控制器170配置以不同的用户选定的参数设置或不同系列的参数设置(例如，随时间的所希望的容器压力)，其可以由用户利用例如图形用户界面(GUI)(未示出)的用户界面输入到控制器170中，或者可以从存储在计算机存储器中的配置文件中加载。参数设置可以包括控制器170中的一个或多个PID的设定点。
例如，通过适当地设定PID子控制器174设定点的参数在气管支气管树152中维持正的气道压力以控制气管导管流量和气道压力。这些设定点可以随时间变化或不变化。
方便地，本发明公开的装置例如装置100还可被用于测量和保护肺150的功能属性，例如一对通气肺的流量-体积轮廓线(flow-volume profile)或压力-体积轮廓线(pressure-volume profile)。可以基于由流量传感器128检测到的气流来测量或计算体积。可以利用本公开的装置和方法测量的其他功能属性包括动态顺应性(dynamiccompliance)，弹回性(elastance)和气道阻力(airway resistance)。
合适的涡轮机的示例包括在Philips Respironics Duet LXTM CPAP Pro机器中使用的涡轮机，并且可以包括适用于完整肺的常规CPAP治疗中其他已知的涡轮机(例如在2004年12月22日公布的EP 1488743中的公开或2003年3月4日Brydon等人发布的US6526974)。
以下URLs描述的其他示例性涡轮机：
-http://mag.ebmpapst.com/en/industries/medical/the-secret-of-the- turtle_2433/
-https://www.bedek.de/en/blowers-and-fans-in-medical-filed.html
-http://www.micronel.com/products/micronel-inside-medical/
比例阀合宜的实例包括在PhilipsTM Respironics BiPAP机器中使用的那些，还可包括具有音圈马达(voicecoil actuator)的那些。
任何合宜的微生物过滤器，例如本领域技术人员已知的高效微粒捕集(high-efficiency particulate arresting，HEPA)过滤器和HME过滤器可以用于本发明的实施方式中。市场上有些产品同时具有HME和HEPA特性。
图4中示出了吸气过程中装置100中的气流。导管旁边的箭头表示气流的方向。阀被配制使得空气从容器110内部，流入导管136，然后在通过涡轮机102之前先进入导管134。以这种方式，容器110内的压力减小并且施加负压于肺150的外部。气流从涡轮机出口流入导管132，经过阀106，进入导管140，经过阀门108，进入导管142和气管内导管144。以这种方式，正压力施加到肺150的气道152。负压和正压的组合形成了从气管支气管树到肺泡的压力梯度，以致于气流沿着压力梯度进入肺泡。
图5说明了呼气过程中装置100中的气流。阀被配置使得空气从入口138，经过阀104，进入导管130，经过涡轮机102，并进入导管132。当阀106打开时，以适当的比例，同时进入导管134和导管140，气体流入室110并流向阀108。增加室110内的压力，当与肺的弹性回缩结合时，导致了从肺泡到气管支气管树的压力梯度，这样气流就沿着压力梯度流入气管支气管树152，离开气管内导管144，流入导管142，然后进入比例阀108，通过出口146呼气从装置排出。阀108允许气流以适当的比例从导管140进入导管142和出口146以致于正压进入气管内导管144不会阻止呼气。
图6示出了控制阀104,106和108的控制逻辑。控制可以使用比例-积分-微分(PID)控制器而被实施，尽管PID控制器被用于提供P-I控制，P-D控制，P控制或I控制。如本领域技术人员所理解的，PID控制器可以连续地计算出所希望的设定点与所测量的变量或多个检测变量之间差异的误差值。通过调整所控制的变量，PID控制器会尝试随时间最小化误差值或者多种误差值的组合。或通过手动或通过从存储设备中下载设定点的方式由用户输入设定点。图6为顶部PI的控制逻辑，其由图3中的子控制器172提供，其被用于控阀104和106的成比例的开放。在该逻辑中，将容纳肺150的容器110内检测到的压力(“胸内压力”或PIT)被与所需PIT的设定点比较，并且实际PIT和设定点之间的差值作为调整阀104和阀106的反馈。底部PI控制逻辑，其由图3中的子控制器174提供，被用于控制阀108成比例的开放。在该逻辑中，检测到的肺的气道内的压力(PAW)和测量或计算的气管导管气流体积(V)与它们各自的设定点进行比较，并且各自的误差值用于调节阀108中的配比。
图7是计算装置200的高级的框图，其可以被用于与其他控制器组合或代替控制器170。计算装置200可以包括或者成为便携式计算机的一部分(例如，移动电话(mobilephone)，上网本(netbook)，笔记本电脑(laptop)，个人数据助理(personal dataassistant，PDA)或平板电脑设备(tablet device))或固定计算机(例如台式电脑(desktopcomputer)或机顶盒(set-top box))。显而易见的是，计算装置200包括允许用户控制和监视在离体肺通气设备的软件，例如图3中的设备100。如所示的，计算装置200包一个或多个处理器202，存储器206，网络接口(network interface)208和一个或多个I/O接口(I/Ointerfaces)204通过总线(bus)210进行通信。一个或多个处理器202可以是一个或多个诸如Intel x86，Intel x64，AMD x86-64，PowerPC，ARM处理器或类似的。存储器206可以包括随机存取存储器(random-access memory)，只读存储器(read-only memory)，或硬盘等的永久存储器(persistent storage)，固态驱动器(a solid-state drive)等等。只读存储器或永久存储器是计算机可读介质。计算机可读介质可以被文件系统(file system)组织，被操作系统控制和管理，所述操作系统管控计算机的所有操作。网络接口208作为通信装置以将计算装置200与一个或多个计算机网络相连例如，局域网(LAN)或因特网。网络接口208被配置以使计算机200能够经由一个或多个网络与外部设备通信。网络接口208可以一个网络接口卡，例如以太网卡(Ethernet card)，光端机(optical transceiver)，射频收发机(radio frequency transceiver)，或者其他类型的能够发送和接收信息的设备。一个或多个I/O接口204可用于将计算装置200与外围设备互连，比如，例如，键盘，鼠标，视频显示器，诸如此类(未示出)。任选地，网络接口208可以经由一个或多个I/O接口204被访问。一个或多个I/O接口204可以用于收集来自本公开装置的控制元件的信息，图3中的装置100是一个例子。例如，I/O接口204可以通过有线或无线方式与阀，压力传感器，流量传感器和涡轮机通信。I/O接口204可以被配置接收来自用户的输入。来自用户的输入可以被生成为用户运行的一个或多个软件应用程序的一部分。
包含指令的软件被一个或多个来自计算机可读介质的处理器202所执行。例如，软件可以被下载到随机存取存储器中以被一个或多个处理器202所执行的，所述随机存取存储器来自存储器206的永久存储器或者来自经由I/O接口204的一个或多个设备。作为另一个例子，软件可通过一个或多个直接地来自只读存储器的处理器202而被下载或执行。
存储器206存储操作系统212，应用程序(applications)214和通气应用程序(ventilation application)216。操作系统212被配置用以促进应用程序的交互，例如应用程序214和通气应用程序216，和处理器202，存储器206，I/O接口204，和计算设备200的网络接口208。
操作系统212可以是操作程序旨在可以被安装在笔记本和台式机上。例如，操作系统212可以是Windows操作系统，Linux或Mac OS。在另一示例中，如果计算机200是移动装置，诸如智能电话或平板电脑，操作系统212可以是Android，iOS或Windows移动操作系统之一。
应用程序214可以是在计算装置200内部被实现或执行的任何的应用程序，并可以被实现或者包含在其中，被操作，被执行，和/或可操作的/通讯结合到计算装置200的组件上。应用程序214可包括可以使计算机200的处理器202执行特定功能的指令。应用程序214可包括用计算机程序设计语句(computer programming statements)表达的算法，例如，for循环(for loops)，while循环(while loops)，if语句(if-statements)，do循环(doloops)等。应用程序可被开发使用编程语言(programming languages)。编程语言的示例包括超文本标记语言(Hypertext Markup Language，HTML)，动态HTML(Dynamic HTML)，可扩展标记语言(Extensible Markup Language，XML)，可扩展样式表语言(ExtensibleStylesheet Language，XSL)，文档风格语义和规范语言(Document Style Semantics andSpecification Language，DSSSL)，层叠样式表(Cascading Style Sheets，CSS)，同步多媒体集成语言(Synchronized Multimedia Integration Language，SMIL)，无线置标语言(Wireless Markup Language，WML)，JavaTM，JiniTM，C，C++，Perl，Python，UNIX Shell，Visual Basic或Visual Basic脚本，虚拟现实标记语言(Virtual Reality MarkupLanguage，VRML)，ColdFusionTM和其他编译工具(compilers)，汇编程序(assemblers)和解释器(interpreters)。
通气应用程序216是被配置用于根据本文所述技术的离体肺通气的应用程序的示例。如上所述，控制器170或计算装置200可以包括使用户能够监视和/或控制一个或多个通气参数(例如，PIT)的GUIs。通气应用程序216可被配置使用户能够使用一个或多个GUIs来监视和/或控制通气参数。
应当注意是尽管示例性的计算装置200被描述为具有明确的功能模块，这样的说明是出于描述的目的并且不将计算装置200限定为特定的硬件架构。可以利用任意硬件，固件和/或软件的组合来实现计算装置200的功能。
图8是可被一个或多个处理器202所执行的算法S300的流程图以监视和控制本公开的装置，例如图3中的装置100。
软件在框S302中可以通过用户或自动化程序所提供的信号启动，在框S304中，一个或多个处理器202接收初始设置用以配置装置100。
在框S306，一旦肺150被连接并且容器110被密封一个或多个处理器202将与一个或多个I/O接口204相互通信以启动设备100的控制。
在框S308中，一个或多个处理器202与一个或多个I/O接口204通信用以从装置100中的传感器接收信息(例如，PIT，PAW，V)。来自传感器的这些信息中的一些或全部被显示在框S310中，并且显示可被传感器接收的信息连续地或周期性地更新。在框S312，用户或通过手动或通过存储在存储器206中(例如，通过下载的配置文件)输入时，软件及时确定在该时刻所希望的设定点。设定点可随时间变化以产生压力振荡导致肺的离体呼吸。然后软件在框S314中确定是否需要调整，如果是，则在框S316中对装置100的组件进行调整(例如，阀104和106以改变PIT)。框S314和框S316可以包括PID计算器，如图3和图6所讨论的。
在框S318中，通过更新显示将装置100的状态传达给用户，并且在框S320中软件检查用户输入(例如，改变设定点)。在框S322中，根据预定设置或通过与用户的实时接口来确定通气是否完成。如果通气没有被完成，则软件返回到框S308再次采样传感。
如果完成通气，在框S322中，确定该操作设置是否应该重新配置，例如通过下载一个新的配置文件。当希望不同的操作模式时，需要进行重新配置。如果设置被重新配置，则软件返回框S304以接收新的初始设置(未示出)。如果设置不被重新配置，通气则在框S324中停止。
软件S300的另一方面可记录信息，所述信息来自在设备中传感器信息和由软件生成的调整S316。该信息可以存储在存储器206中。
本公开的实施方式可以提供改进的性能。
例如，应注意的时当正压体外被施加到离体肺的气道时并且存在着从气管支气管树到肺泡的压力梯度，如果肺泡群表面张力之间存在大的差异，气管支气管树的高压优先进入膨胀压力较低的肺泡，可能导致肺泡过度膨胀，而膨胀压力较高的肺泡则不通气。这可能导致健康肺泡过度扩张，伴随不能完全恢复肺膨胀不全(萎缩肺泡具有高表面张力)的肺段。由于被设定试图恢复膨胀不全肺泡的高压引起了肺泡破裂，在肺表面形成肺大泡后，破裂导致了漏气，并进一步损伤了肺。
还应注意通过增加肺浆膜表面的负压肺在体内自然进行体内通气。两层浆膜围绕着每个肺，壁层胸膜线(parietal pleura line)，胸腔(thoracic cavity)壁和脏胸膜(visceral pleura)覆盖肺。两个胸膜之间的胸膜腔含有少量润滑液。在正常呼吸期间，胸膜腔内的压力，称为胸内压，总是低于大气压。在吸气期间，肌肉收缩增加了胸腔的整体尺寸，降低了胸腔内压。这种负压在整个肺实质和肺泡网络(alveolar network)中传输，从而产生从气管支气管树到肺泡的压力梯度。结果是，吸气时空气流入肺泡。在体内正常呼气时，吸气肌肉放松。呼气是由胸壁和肺的弹性回缩引起的，其中大部分由于肺泡液膜中的表面张力引起的向内的拉力。这种弹性回缩产生了从肺泡到气管支气管树的压力梯度，使得空气流出肺泡。在体内强力呼气时，呼气肌肉收缩，主动增加胸内压。在强力呼气，例如在咳嗽时，胸内压可能短暂地超过大气压。
在吸气期间负压对肺泡的“拉力”效应提供了整个肺泡群中的扩张力的平等分布。图9A和9B示出了这种效应，展示了肺实质中的肺泡网络(alveolar network)的示意图。
在图9A和9B中，中心圆形502表示气道周围的细支气管，外圈的圆形503表示肺的外表面，并且每个六边形504,506或508代表一个肺泡。每个肺泡的开放程度由其阴影表示，例如白色阴影表示开放的肺泡504，具线纹的阴影表示部分闭合的肺泡506，黑色阴影表示完全闭合的肺泡508。此外，图9A和图9B中每个肺泡周围线的厚度表示肺泡表面张力(即膨胀压)，这样较粗的线表示较高的表面张力，较细的线表示相对较低的表面张力。图9A示出了指向气道的正压发挥着推力作用(由箭头512指示)其被不均匀地传递到肺泡，这样一些肺泡506和508保持部分或完全闭合。图9B示出了施加在肺的外表面上的负压发挥着拉力作用(由箭头510指示)其被均匀传递到肺泡。
换句话说，在每个图9A和图9B中的中心圆形表示气道(例如，细支气管)的壁502，外圈的圆形503表示肺的外表面，并且每个六边形表示肺泡，其中每个肺泡可以是开放的(显示为白色肺泡，例如，肺泡504，505)，部分闭合(由散列线表示，例如，肺泡506)，或完全闭合(显示为黑色肺泡，例如肺泡508)。肺泡从肺表面503(未示出)到气道是相互联通的。在完整的生物体中，负压被作用于肺503的表面上以拉开肺泡(图9B)。这种拉力，如方框箭头所示(例如，510)，被均匀地从整个肺实质递到气道，产生开放的肺泡群(例如，505)。相反，对于传统的正压通气，气道被加压以强力地用空气填充肺泡(图9A)。气压的传递，如方框箭头所示(例如，512)，将顺着最小阻力的路径使顺应性肺泡的过度膨胀(例如，504)，留下较少的部分未充气(例如，506)或完全未充气(例如，508)的顺应性肺泡。
此外，肺泡的运动刺激II型肺泡细胞的表面活性剂产生，这有助于降低肺泡内的表面张力，促进吸气过程中的膨胀。没有表面活性剂，肺泡中的表面张力非常高，导致了非常高的膨胀压，这将阻碍了气流。
即使在体内强制呼气后，相当量的空气仍留在健康的肺中，原因是低于大气压的胸内压使肺泡保持轻微地膨胀。然而，在某些失调症的患者中，在呼气结束时发生了明显的肺泡闭合，这在随后的吸气过程中降低了肺顺应性。在肺泡扩张之前打开闭合的肺泡需要获得一个临界压力。这些患者可以从呼气末正压通气(positive end-expiratorypressure，PEEP)或CPAP的应用中获益，这避免了呼气过程中的肺泡闭合。
在肺移植过程中肺泡闭合的发生是更加极端的问题。当肺从供体内移除时，肺外部暴露于大气压力中将导致广泛的肺膨胀不全。
然而，如本公开中的实施方式所述的，当肺通气时，可获得肺实质肺泡节段的有效复张，并且可以方便地减少或避免复张节段的过度膨胀。特别地，通过调节肺外部的压力(或通气容器中的压力)和肺气道中的正压可方便地提供肺中所希望的压力梯度。
在一个实施方式中，肺通气的方法可包括施加一个第一压力(P1)到肺的气道，和施加一个第二压力(P2)到肺的外表面。压力差(pressure differential)，PD＝P1-P2，被保持为正并且被改变以导致肺呼吸。PD可被认为等同于TPG。气道压力P1可保持高于大气压，并且外部压力P2可以在一较高水平和一较低水平之间进行以导致肺通气，其较低水平低于大气压。P1可被保持在一个不变值，例如在约5至约10cmH2O的之间的不变值。PD可以在约7至约30cmH2O之间改变。例如，当P1在5cmH2O不变时，P2可以在-25到-2cmH2O之间改变。当P1在10cmH2O不变时，P2可在-20至3cmH2O之间改变。再生真空泵，例如再生涡轮机，可用于施加并且控制P1和P2。可用泵的排气侧的排气压力来调节P1，并用泵的真空侧(进气)的真空压力来调节P2。方便地，单个涡轮机足以施加并且控制P1和P2。
相比之下，正位移泵(positive displacement pumps)，例如滚轮泵(rollerpumps)或者渗透泵(peristaltic pumps)，在本公开的一些实施方式中不方便用于控制气道和外部的压力。其中的一个原因是，如本领域技术人员所理解的，与再生泵相比，通过调节泵速很难精确地控制在正位移泵的入口(进气口)和出口(排气口)处的流体压力。例如，利用正位移泵，入口压力(或泵的入口和出口之间的压力差)可以在相同的给定泵速下变化，以便改变泵速不会提供可预期的压力变化。使用再生泵，泵速更加可预期地与入口(进口)和出口(输出)两端的压差相关。
正常生理学提示了可以提供有效的离体肺通气的压力等级(magnitude)。正常生理学显示在静息时PAW和肺泡内的压力为0cmH2O(即，在大气压下)，大致相同等级的肺弹性回缩力可以抵抗约-7cmH2O的胸腔内EEP。深度吸气可以引起-30cmH2O的胸腔内EIP，而咳嗽或Valsalva动作时可以引起100至200cmH2O的胸腔内压力。由于肺泡网络同样适用从肺表面到中央气道的牵引力(如图9A和9B所示)，向肺外部施加的负压是用于引起空气进入肺的所希望的生理学方法。然而为了减少施加到离体通气的肺的真空量，小的正的气压被施加到气道以产生能维持在生理范围内的TPG。例如，向气道施加5至10cmH2O之间的正压可以等值的减小施加到肺外表面的所需真空。气道压力高于上述数量被认为较少的生理学作用且可能是不希望的。
在另一个实施方式中，对肺进行通气的方法包括改变肺周围的外部压力以使肺通气。通过用气泵以流体连通形式的气体施加外部压力来改变外部压力。气泵可以是再生泵，例如涡轮泵。肺周围的气体被局限在一固定体积之内(例如在固定壁之间)但是利用泵来改变固定体积中的气量(例如，气体的摩尔数)以改变施加到肺外部的压力。
已经认识到当利用被局限在肺周围的确定量的气体通过压缩或减压固定的气量将不同的压力施加到肺外表面，例如通过改变气体占用的体积，压力控制的问题可能出现。例如，由于通过肺的空气泄露，局限在肺周围的气量可能随着时间而增加。结果，为了达到相同的压力必须重新校准气体体积的控制，或者必须重新调整气量，这可能会打断正常的通气循环，或者需要手动重新调整设备或控制设置(control settings)。
相比之下，当利用改变外部压力的气泵以流体连通形式的气体而施加气压以改变肺周围的外部压力时，通过自动地调节泵速，外部压力可以长期被方便地连续控制而不会被中断，如图所示可选地在一个或多个被配置的比例阀的帮助下更灵活的控制压力和流体流动。通过肺的空气泄漏将不会影响压力控制设置，因此不会导致通气过程的干扰或不需要重新设置控制参数。
体内肺生理学分析表明在离体NPV期间，肺实质肺泡区段的有效复张要求的TPG总是高于零，包括高于约7cmH2O。该后面的值类似于体内呼气结束时，肺内气道压力(大气压)与胸腔内压力(约-7cmH2O)之间的差异；这种TPG抵抗肺泡的弹性回缩并防止肺泡萎陷。通常，在本文中，离体NPV期间的TPG是肺的气道内的压力与容纳肺的容器内的压力之间的差值；当气道压力高于容器压力时，它将是正值。TPG在离体NPV期间总是大于零的结果可能是空气连续泄漏进入到容纳肺的容器中，例如，如果容器和盖子之间的密封不完美，气管内导管与肺的气道(例如，气管)之间的密封并不完美，或者例如肺有显微结构破裂，例如支气管胸膜瘘(bronchopleural fistulae)。
实施例
实施例Ⅰ
本公开中描述的示例性装置和方法(例如，如图3-8中所示)被用于EVLP并且联合负压和正压通气(NPV/PPV)在猪肺进行的一系列实验。对于每个实验，在适宜的安乐死和放血后从40-50kg猪中快速切除一对肺。将肺安装在此设备中的可密封容器中。气管内导管被连接到肺的气管上。肺的脉管系统被连接到灌注系统上，并开始灌注。灌注液包括去细胞白蛋白溶液，全血和白蛋白溶液的混合物，或浓缩红细胞(packed red blood cells，pRBC)和白蛋白溶液的混合物。白蛋白溶液的组成列于表1中。
表1：用于肺灌注的白蛋白溶液的组成
成份 mmol/L g/4L
葡萄糖 10 7.20
氯化钠 117 27.35
氯化钾 5.9 1.76
碳酸氢钠 25 8.40
磷酸二氢钠 1.2 0.66
氯化钙 1.12 0.66
氯化镁 0.512 0.42
丙酮酸钠 1 0.44
牛血清白蛋白 160
调节pH至7.4
计算机利用来自用于测定PIT和PAW的压力传感器的输入来控制设备中的比例阀和涡轮机，如图3-6所示。计算机记录来自气道流量传感器的数据，如图3-5中的位置，但不可以利用此信息来控制设备。通过向计算机输入所需的设定点：吸气时间(ti)，呼气时间(te)，在密封容器内的吸气末压力(EIP)，在密封容器内的呼气末压力(EEP)，和不变的气道正压，计算机被指示以产生吸气和呼气的循环。
将肺灌注并通气12小时。在12小时内连续地收集呼吸力学(lung mechanics)和血管功能(vascular function)的数据。定期收集灌注液样品以测量溶解的气体含量和炎性标记物(inflammatory marker)水平。
图10至17展示了使用该NPV/PPV装置和方法在猪肺实验中得到的数据。在所有这些图中，压力均为相对于大气压值(即，大气压为0cmH2O)。
此外，作为对照，猪肺经受了相同的实验方案，所述方案根据实际情况作了适当变动，由标准ICU呼吸机提供的无NPV而有PPV。图17比较了从NPV/PPV方案和该对照实验中获得的数据。
TPG可随时间精确地变化以响应用户输入的设定点来驱动离体呼吸。
在图10中，不变的气道正压的设定点为10cmH2O，EIP的设定点为-10cmH2O，EEP的设定点为4cmH2O。图10展示了在这些设置下的一次吸气和呼气期间测量的容器压力(ITP)，气道压力(Paw)和TPG的数据。在每个时间点，TPG被计算为(Paw-ITP)。TPG最小值约为6cmH2O；TPG最大值约为20cmH2O。
图11显示了来自与图10相同的实验的压力-体积环(pressure-volume loop)。
图12提供了与图10相同类型的数据，但在本实验中，不变的气道正压的设定点为4cmH2O，EIP的设定点为-30cmH2O，EEP的设定点为4cmH2O。TPG最小值约为0cmH2O；TPG最大值约为32cmH2O。
图13显示与来自图12相同的实验的压力-体积环。
图14A至14C显示了在实验中获得的代表性压力轮廓线，根据本公开的实施方式对样品猪肺进行通气，其中不变的气道正压被引进肺气道且在容器中肺周围的气体压力(ITP)在一较高压力(略微正压)和一较低压力(负压)之间振荡。图14A中的不同线表示呼气末压(EEP)和吸气末压(EIP)的设定点。图14A中的下图是14A上图中的初始时间段的放大图。上图的时间周期约为6小时，且下图的时间周期约为50分钟。在图14的两组(bothpanels)中，每10秒对ITP进行采样，这样在整个实验中ITP振荡导致了肺呼吸，图14中ITP的表观振荡(apparent oscillation)不是ITP的实际振荡。然而，图14A所示的振荡频率与呼气和吸气的实际时间成负相关。
对于在图14A至14C中显示数据的实验，EEP和EIP被用户及时设定为不同的值，如图14A所示。图14A展示了在密封容器(ITP)内测定的压力随时间变化以响应用户设定的EIP，EEP，ti，te和不变的气道正压的设定点。EIP，EEP，ti和te的设定点在实验期间被连续改变以考验设备。CPAP设定点仅改变一次：在零点后约15-20分钟时，CPAP设定点被用户增加至约9cmH2O。在图14A的两个组中，每10秒对ITP进行采样，以致尽管实际的ITP在整个实验中振荡以引起肺呼吸，在图14A中显示的“观测到的ITP振荡”不是ITP的实际振荡。图14A所示的“观测到的ITP振荡”的频率与呼气和吸气的频率成负相关。图14A的下组是初始时间段的放大图，持续约50分钟，来源于图14的上组。放大图显示了更加紧密间隔(tightly-spaced)的“观测到的ITP振荡”，其反映了在轮廓线的初始阶段较低ti和te的设定点导致了较短周期的实际ITP振荡。另外，图14A中的两组均展示了当用户改变设定点时，系统快速地调整。图14B展示了在整个实验过程中测量的气道压力(PAW)保持基本不变，或许随着时间的推移逐渐减少，除了轮廓线的初始部分，其中气道压力快速增加以响应上述CPAP设定点的增加。图14C展示了在整个实验中测量的TPG，计算为PAW-ITP，对于大多数实验其保持在约5cmH2O至约26cmH2O之间。
图15展示了在灌注和通气期间猪肺顺应性(以mL/cmH2O测量)随时间(10秒)增加。顺应性计算为吸入空气量除以吸气开始和结束时TPG之间的差值。
图16展示了在灌注和通气期间猪肺的肺血管阻力(pulmonary vascularresistance，PVR，dyn s/cm 5)随时间(10秒)而减少。如本领域技术人员所知，当肺泡中空气的氧浓度降低低于正常水平时，相邻血管收缩，从而增加血管阻力。因此，PVR可以提供肺泡复张的间接测量，更概括地，提供离体肺的健康的测量。
图17显示了对于三种不同的灌注液，与在标准PPV装置相比，本公开的NPV/PPV装置的通气过程中猪肺EVLP期间的水肿形成较少。如本领域技术人员已知，正常人肺在体内，在肺毛细血管膜处存在一个平均过滤压，其导致持续的从肺毛细血管到间质空间(interstitial spaces)的流体流动。该流体通过肺淋巴系统被泵回循环中。在间质空间中的轻微的负流体压力防止流体进入到肺泡中。任何导致了该间质流体压力升高到正值范围的因素都会导致肺泡充满自由流体。因此，在肺的离体维护期间减少肺水肿是有益的。
实施例Ⅱ
通过适当的方法获得的六个人供体肺并将其安装在如图3所示的示例性装置中并且接受NPV/PPV(N＝6)的EVLP。
图18和19展示了样本人肺的代表性流量-体积轮廓线。流量以mL/s表示，体积以mL表示。图18展示了在初始通气期间获得的轮廓线，其中EIP设定点为-15cmH2O以为了保护肺。继续通气以允许膨胀不全的肺泡复张。在复张完成后，在EIP设定点为-18cmH2O下通气以用以评估，且图19展示了在评估期间获得的轮廓线。
流量-体积轮廓线展示了在最大强制吸气和呼气期间的吸气和呼气流量相对于肺容积的关系。在呼气时，气流为正。在吸气期间，气流为负。在轮廓线上数据点随时间顺时针移动。
图18和19表明在本公开的NPV/PPV装置中离体通气期间的肺泡复张导致了流量和肺活量增加(即，最大吸气后呼出的最大体积)。
实施例Ⅲ
图20和21展示了如实施例II的样品人肺的离体通气的代表性压力-体积轮廓线。图20展示了在保护(preservation)期间初始通气中获得的轮廓线，且图21展示了在后来的评估期间获得的轮廓线。
图20和21还展示了在本公开的NPV/PPV装置中离体通气期间的肺泡复张。
在实验期间观察到，包括在实施例I，II和III中所描述的，本公开的NPV/PPV装置和方法相对于标准PPV装置和方法具有优势。NPV/PPV装置和方法导致了肺实质的更快的复张(即，解决肺膨胀不全)，具有更低或相等的TPG。在供体肺中肺大疱(bullae)形成较少，支气管胸膜瘘(broncho-pleural fistula)形成较少，并且因此从肺中漏气较少。支气管胸膜瘘被当作肺外表面上的局部鼓泡来观察。并且在灌注液中较低的炎症标志物表达被观察到。肺水肿的发生程度较轻。
在实验期间还观察到相对于可比较的NPV装置和方法，本公开的NPV/PPV装置和方法在EVLP和离体通气期间使肺具有更好的生理学特性能。
实施例IV(对照)
图22说明了用于负压通气的示例性对照装置400，用三个猪肺(N＝3)进行测试。装置400被用来在器官室410内施加负压。在该实例中，装置400不被用于在肺气道中输送正的气道压力。
在测试中，供体肺450被放置在一个装置400中的硬壳密封容器410中。容器410部分地填充有盐性液体480。肺450浮在柔性塑料膜482的上面，液体480使其浮起。
肺450的气管支气管树452通过气管内导管444被连接到导管432上。导管462将灌注装置460连接到肺450的肺动脉454上。导管464将灌注装置460连接到肺450的肺静脉456。
容器410通过盖子412被密封于大气中。导管432通过端口414延伸穿过盖子412。导管462通过端口416延伸穿过盖子412。导管464通过端口418延伸穿过盖子412。
导管430在液面下方的开口处连接容器410连接到闭塞滚柱泵402(occlusiveroller pump)(COBETM灌注泵)。容器410中的内部空间与导管430之间流体连通。导管434连接滚柱泵402到流体池(fluid reservoir)490。
容器410内的气体压力通过从容器410中泵出液体480而被降低，进入导管430，经过滚柱泵402，进入导管434，并从那里进入池490。容器410内的气体压力通过沿相反的方向泵送液体被升高。通过来回驱动液体480，通过气管内导管444和向大气开口的导管432，使肺450呼吸。
HME过滤器426被连接到导管432以避免肺450的气道干燥。
控制器470，是一个计算机，通过滚柱泵402控制泵送的速度和方向。通过任选地的指定的从容器410中移除的体积(例如，潮气量)或容器410中的目标压力(即，真空压力)以实施该控制。
在后一种选择中，容器410中的压力(“胸内”压力或PIT)通过压力传感器420被测量。压力传感器420是控制器470的一个输入。与在实施例I-III和图2-6中的装置不同，气道压力(PAW)未被测定并且不是控制输入。用户指定EIP，EEP，ti和te的设定点指示控制器470以满足通气循环。控制器470比较压力传感器420的输入与每个给定时间的用户自定义的设定点来控制滚柱泵402。
气管内导管的气流(V)被流量传感器428所测量。该数据被控制器470所记录，但是不用于控制该装置。
普遍认为对照实施例IV中的NPV装置400是麻烦的。与在实施例I-III中测试的本公开装置相比，NPV装置400不允许TPG精确和有效的控制。尤其地，相对于在实施例I-III中结合NPV和PPV的装置，需要更高的负压以导致有效的吸气。另外，通过调节本公开的装置中的比例阀来改变负压比在对照实施例IV的装置中通过调节滚柱泵402的速度和方向更精确和快速。
图23展示了图22中的NPV装置400的密封容器内的压力(ITP，以cmH2O测量)可以随时间而振荡。
通过滚柱泵402的步阶位置(step position)指示滚柱泵402将所述体积的液体480被从容器410抽取，或者供应到容器410中。理想地，人们可能已经预料到在每个通气循环期间从容器410中抽取或者重新供应到容器410中的所述体积的液体480应该大致相同的，并且这样滚柱泵402的中间步阶位置应该随时间保持稳定。然而，如图24所示，实验结果表明滚柱泵402的中间步阶位置随时间改变。围绕在中间步阶位置的步阶位置的振荡导致了液体480进入和移出容器410以导致肺450吸气和呼气。
可以认为由于空气轻微泄漏到容器410中导致了如图24所示的一些或所有周期的稳定地增加的中间步阶梯位，对于NPV装置400这造成了长期离体通气的一个重大的障碍。
可以认为这种空气泄漏是由于容器410和盖子412(或其端口414,416,418)之间的密封缺陷，气管内导管444和肺气道452之间的密封缺陷，和/或在肺壁450上的显微破裂(例如，支气管胸膜瘘)。这种破裂，事实上，是从肺表面的局部的气泡的出现推断出来的。据观察，通常，被切除的肺经常有一个或多个这样的破裂。
轻微的空气泄漏到容器410中具有明显的后果，在每个呼吸循环中，从容器410中移除的液体480的量可略微大于返回到容器410的液体480的量。结果，容器410中的液体480的水平可随时间缓慢降低，这要求停止呼吸循环，导管432被夹紧(以避免肺的萎陷)，容器410被打开相对于大气开放来添加更多液体480，并且泵402的步阶位置被归零。这是对应图24中约3.5小时的两个峰值的每个峰的时间期间所遵循的程序，其中间步阶位置的稳定上升对应所观察到的从容器410中流失的液体480，并且急剧的下降对应重置步阶位置归零，打开容器后并向回添更多液体480。
在图22至24中实验的其他部分，不清楚图24中的中间步阶位置为什么上升和下降。
相比之下，在本公开的NPV系统中，没有这种泵或空气泄露的问题被遇到，无论是否施加PPV到气道中。
实施例Ⅴ
本发明所描述的装置和方法(例如，如图3-8所示)被用于具有正压通气的EVLP(称为“NPV/PPV-EVLP”平台)在16个猪肺和3个人肺上进行一系列实验。如前所述，NPV/PPV-EVLP平台使用定制涡轮机驱动通气机来改变器官腔内的气压。涡轮机和所附随的阀门装置引起器官腔内的负压并且还能输送正的气道压力，通过呼气末正压(PEEP)阀来调节。
作为对照，额外的16个猪和3个人的肺经受相同的实验操作，并根据实际情况作了适当变动，由标准ICU呼吸机(被称为“PPV-EVLP”平台)提供的仅有PPV(没有NPV)。使用的呼吸机是瑞典Solna的MaquetTM Critical Care AB提供的SERVO-ITM。
对于每个猪肺实验，在适当的安乐死和放血后，一对肺从37-47kg的雌性猪(约2至3个月龄)中被快速切除。灌注液包含去细胞灌注液或细胞灌注液。所使用的去细胞灌流液是含有8％牛血清白蛋白的2LKrebs-Henseleit缓冲液；且所使用的细胞灌流液是含有8％牛血清白蛋白的1.5L Krebs-Henseleit缓冲液+0.5L浓缩红细胞(packed red bloodcells，pRBC)。
将每组猪肺分成两个亚组，每个亚组中有八个肺。第一亚组(N＝8)用细胞灌注液联合NPV/PPV灌注；第二亚组(N＝8)用细胞灌注液和PPV灌注；第三亚组(N＝8)用去细胞灌注液联合NPV/PPV灌注；第四亚组(N＝8)用去细胞灌注液和PPV灌注。
对于每个人肺实验，在供体的脑干死亡后一对肺被快速地切除。每种人供体肺的特征示于表2中。灌注液由细胞灌注液(1.5L STEEN SolutionTM+0.5L pRBC的溶液被使用)组成。所有受测试的人肺都是边缘的(marginal)且被拒绝用于移植。将人肺分成两组，每组有三个肺。第一组(N＝3)用细胞灌注液联合NPV/PPV灌注，第二组(N＝3)用细胞灌注液和PPV灌注。
表2：人供体肺的特征
Figure BDA0001882771390000291
NPV/PPV-EVLP和PPV-EVLP平台各自配有2升的实验灌注液，10000IU肝素，500mg甲基强的松龙和3.375g哌拉西林/他唑巴坦。NPV/PPV-EVLP和PPV-EVLP平台都有离心泵(centrifugal pump)(MedtronicTM)，可以驱动灌注液连续的流动从池至肺动脉(PA)(对于NPV/PPV-EVLP平台，这被整合到器官腔室中，例如图3的腔室110)。灌注液首先经过一个M27PH.I.S.I.O成人动脉过滤器(arterial filte)(Sorin Group Canada IncTM)，然后通过膜脱氧器(membrane de-oxygenator)(Sorin PrimO2XTM)并用计算机控制加热器(PolyScienceTM)加热，然后经过PA回流到肺。两个平台都有微控制器，所述微控制器带有用于控制所需PA流量的定制软件，并使用流量探针(flow probe)(Medtronic的BIO-ProbeTransducer Model TX40TM)，压力传感器(Edwards LifesciencesTM)，气压传感器，和空气流量计(air flow meter)检测相应的生理学参数。以10s间隔搜集数据。两个平台都使用压缩医用空气，低氧尾气气体混合物(89％N2,8％CO2，3％O2)，来滴定肺前(pre-lung)(PA)灌注气体组合物。
对于NPV/PPV-EVLP平台，计算机利用来自PIT和PAW压力传感器的输入来控制设备中的比例阀和涡轮机，如图3-6所描述。计算机记录来自气道流量传感器的数据，如图3-5中的位置，但不使用此信息来控制该装置。通过输入计算机所希望的吸气时间(ti)，呼气时间(te)，密封容器内的吸气末压力(EIP)，密封容器内的呼气末压力(EEP)，和不变的气道正压的设定点，计算机被指示以引起吸气和呼气的循环。
对于PPV-EVLP平台，使用Drager EVITA XLTM呼吸机来设定和控制通气参数。
所有肺被灌注并通气12小时。呼吸力学和血管功能的数据在连续12小时期间被收集。灌注液样品被定期收集以测量溶解气体含量和炎性标记物水平。
为了启动在NPV/PPV-EVLP和PPV-EVLP平台中的每个实验，每个肺的肺动脉(PA)被插管，当打开左心房(LA)的同时，气管被气管内导管插入。在5％心输出量(CO)和20-25℃下灌注被启动(不考虑实验通气组)。顺行性灌注被增加至10％的预期心输出量(10％ofpredicted cardiac output)(CO；CO＝70mL/kg/min)，在60分钟期限内灌注液逐渐被加热至38℃。每20分钟灌注，灌注液PA流量被增加10％的CO；因此，通过T＝1(灌注1小时)，获得30％CO的所希望的流量(保护模式(perservation mode))。使用的启动参数如表3所示。
表3：灌注初始化参数
Figure BDA0001882771390000301
Figure BDA0001882771390000311
在NPV/PPV-EVLP和PPV-EVLP平台中的实验利用压力-控制通气和流量控制灌注。对于两个平台，一旦灌注液温度达到32℃保护模式的通气被启动。评估通气模式(提供更高的肺压力和体积)被用于数据采集，从而确保在肺完全通气时完成气体交换和顺应性数据的采集。保护和评估模式的通气和血管压力参数被列于表4中。
表4保护和评估模式
Figure BDA0001882771390000312
Figure BDA0001882771390000321
使用NPV/PPV-EVLP平台，为了获得期望的吸气潮气量，在负的吸气末压力(EIP)和略微大于气道压力(Paw)的呼气末压力(EEP)之间变化的胸膜压力(pleural pressure)。跨肺气压(TPG)被计算为：TPG＝Paw-EIP。每2小时评估被连续进行，将上峰值气道压力限制设定为25cmH2O。
通过中空纤维脱氧器的尾气气体被滴定维持7.35-7.45的生理pH和PCO2(35-50mmHg)。在EVLP的持续期间内胰岛素(2.0U/h)和葡萄糖(1.0g/h)被灌注。
对于EVLP的第一个3小时，PEEP被维持在7cmH2O，每30分钟进行吸气保持为了三次连续呼吸(5-10秒/呼吸)。
图25A至33F展示了来源于用NPV/PPV-EVLP和用PPV-EVLP灌注的肺的实验的数据。在所有这些图中，这些压力均相对于大气压(即，大气压为0cmH2O)。
在评估时间点测量平均肺动脉压力(mPAP)，肺血管阻力(PVR)，动态顺应性(Cdyn)，气道压峰值(PAWP)，以及氧气的动脉分压与吸入空气中的氧气分率的比率(PO2/FiO2或P/F比率)。
图25A，25B和25C说明了用联合的NPV/PPV灌注的肺和用PPV灌注的肺的肺氧合作用(即PO2/FiO2比率或P/F比率,以mmHg测量)随时间的测量结果。特别地，图25A说明了去细胞灌注液灌注的猪肺的结果；图25B说明了细胞灌注液灌注的猪肺的结果；和图25C说明了细胞灌注液灌注的人肺的结果。结果说明了在联合的NPV/PPV或PPV的对于猪和人的肺灌注的肺氧合作用均保持在超过400mmHg的可接受水平。用灌注液的肺灌注之间和用通气平台的肺灌注之间的肺氧合作用均没有统计学上显著的(即p>0.05)差异。然而，只有用细胞灌注液的肺灌注显示出了随时间推移的氧合作用具有统计学上显著改善。
图26A，26B和26C说明了用联合的NPV/PPV灌注的肺和用PPV肺灌注的灌注的平均肺动脉压(mPAP；以mmHg测量)随时间的测量结果。特别地，图26A说明了去细胞灌注液灌注的猪肺的结果；图26B说明了细胞灌注液灌注的猪肺的结果；和图26C说明了用细胞灌注液灌注的人肺的结果。同样地，图27A,27B,和27C举例说明了用联合的NPV/PPV灌注的肺和用PPV灌注的肺血管阻力(PVR；以dyn s/cm5测量)随时间的测量结果。特别地，图27A说明了去细胞灌注液灌注的猪肺的结果；图27B说明了细胞灌注液灌注的猪肺的结果；图27C说明了细胞灌注液灌注的人肺的结果。如图26A-27C所示，所有猪肺显示出了mPAP和PVR的统计学上的显著下降。然而，用联合的NPV/PPV灌注的肺和用PPV灌注的肺之间的结果没有统计学上的显著差异。此外，对于用PPV或联合NPV/PPV灌注的人肺的mPAP和PVR随时间没有统计学上显著的变化(分别参见图26C和27C)。
图28A，28B和28C说明了对于用联合NPV/PPV灌注的肺和用PPV灌注的肺的气道压峰值(PAWP；以cmH2O测量)随时间的测量结果。特别地，图28A说明了用去细胞灌注液灌注的猪肺的结果；图28B说明了用细胞灌注液灌注的猪肺的结果；和图28C说明了用细胞灌注液灌注的人肺的结果。在所有情况下(猪-细胞，猪-去细胞和人-细胞)，用联合NPV/PPV灌注的肺和用PPV灌注的肺之间的PAWP没有统计学上的显著差异。然而，如图28B所示，用细胞灌注液和联合NPV/PPV灌注的猪肺的PAWP表现出了随时间的统计学上的显著降低。
图29A，29B和29C说明了用联合NPV/PPV灌注的肺和用PPV灌注的肺的动态顺应性(Cdyn；以mL/cmH2O测量)随时间的测量结果。特别地，图29A说明了去细胞灌注液灌注的猪肺的结果；图29B说明了用细胞灌注液灌注的猪肺的结果；和图29C说明了用细胞灌注液灌注的人肺的结果。用细胞灌注液灌注的猪肺表现出了顺应性随时间的统计学上的显著改善(图29B)。例如，如图29B所示在T＝11时，用联合的NPV/PPV灌注的肺的Cdyn为29.3±1.6mL/cmH2O，用PPV肺灌注的Cdyn为24.5±1.5mL/cmH2O。然而，不论通气平台，用去细胞灌注液灌注的猪肺中均未观察到相同的趋势(图29C)。相反，灌注的人肺仅在用联合NPV/PPV灌注时表现出了随时间统计学上的显著地改善顺应性。
促炎细胞因子谱(包括肿瘤坏死因子-α(TNFα)，白细胞介素-6(IL-6)和白细胞介素-8(IL-8))使用由R&D SystemsTM提供的酶联免疫吸附测定(ELISA)试剂盒进行分析。
图30A-30F说明了用联合NPV/PPV灌注的肺和用PPV灌注的猪肺的炎性细胞因子的随时间的测量结果。图30A和30B分别地显示了用细胞灌注液灌注的肺和用去细胞灌注液灌注的肺的肿瘤坏死因子α(TNFα)的浓度，以pg/mL为单位；图30C和30D分别地显示了用细胞灌注液灌注的肺和用去细胞灌注液灌注的肺的白细胞介素6(IL-6)的浓度，以pg/mL为单位；图30E和30F分别地显示了用细胞灌注液灌注的肺和用去细胞灌注液灌注的肺的白细胞介素8(IL-8)的浓度，以pg/mL为单位；如图30A-30F所示，观察到了不考虑所用灌注液的采用联合NPV/PPV猪肺灌注中的促炎细胞因子的产生具有统计学上的显著降低。
类似地，图31A-31C说明了用联合的NPV/PPV灌注的肺和用PPV灌注的人肺的炎性细胞因子随时间的测量结果。图31A显示了肿瘤坏死因子α(TNFα)的浓度，以pg/mL为单位；图31B显示了白细胞介素6(IL-6)的浓度，以pg/mL为单位；图31C显示了白细胞介素8(IL-8)的浓度，以pg/mL为单位。如图31A和31B所示，所有时间都观察到了用联合NPV/PPV灌注的人肺中与用PPV灌注的人肺中相比具有统计学上显著更低的TNFα和IL-6的产生。然而，如图31C所示，仅在T＝3和T＝11时观察到了用联合NPV/PPV灌注的人肺比用PPV灌注的人肺具有统计学上显著更低的TNFα和IL-8的产生。
在EVLP期间T＝12时计算肺大疱形成。用PPV灌注的人肺和用联合NPV/PPV灌注的人肺没有形成大疱。对于猪肺，用联合的NPV/PPV灌注的肺肺大疱计为21.4％，和用PPV灌注的肺计为63.8％。因此，在猪肺的灌注中，与用PPV灌注的那些相比用联合的NPV/PPV灌注的肺中肺大疱形成的发生率低42％。观察到了与用PPV灌注的肺相比用联合的NPV/PPV灌注的猪肺更低的肺大泡的形成。
在EVLP之前和之后还对肺进行称重，以计算总体水肿(global edema)作为增重率(weight gain percentage)。在T＝12时，在两种灌注液中联合的NPV/PPV灌注的猪肺相对于PPV灌注的猪肺的肺水肿形成(即，体重增加)较少，(对于细胞灌注液，用联合NPV/PPV有20.1±4.1％的水肿形成相比于PPV有39.0±6.6％的水肿形成；和对于去细胞灌注液，联合的NPV/PPV有40.4±5.3％的水肿形成相比于PPV有88.1±11.0％的水肿形成)。
对于人肺，与用有水肿形成(即体重增加)的PPV灌注的肺相比，观察到用联合的NPV/PPV灌注的肺有干燥效果(即体重减轻)(对比联合的NPV/PPV为-8.0±2.1％与PPV的水肿形成为+39.4±5.7％)。肺重量从基线降低表明用联合的NPV/PPV灌注的人肺可帮助逆转在供体肺中已经发生的肺水肿的状态。特别地，由于实施例V中使用的人肺是脆弱的/边缘的(因为它们是从被拒绝的供体中获得的，并具有不同程度的肺损伤)，所以用联合NPV/PPV灌注可以将脆弱的/边缘的转变为合适的肺以用于捐赠。
在EVLP结束时收集人周围肺组织活检(T＝12)。活组织检查被安装在10％缓冲的福尔马林中24小时，包埋在石蜡中，切成5-μm厚度，用苏木精-伊红(H&E)染色，并用光学显微镜检查病理变化。在EVLP的T＝12小时后获得了人肺组织的代表性显微照片(未显示)。不知情的肺病理学家随机的方式对肺切片进行分级以评估急性肺损伤的组织病理学等级。急性肺损伤的组织病理学分级根据Mehaffey JH，Charles EJ，Sharma AK等人所述的方法估计，“Airway pressure release ventilation during ex vivo lung perfusionattenuates injury”，J Thorac Cardiovasc Surg 2017；153：197-204和Tane S，Noda K，Shigemura N，“Ex Vivo Lung Perfusion：A Key Tool for Translational Science inthe Lungs”,Chest 2017。
总体而言，与用PPV灌注的肺相比用联合的NPV/PPV灌注的人肺在组织病理学上观察到较低的急性肺损伤。例如，用联合的NPV/PPV灌注的肺的间质水肿的组织学评分被确定为1.5，而对于用PPV灌注的肺，组织学评分被确定为2.7。此外，用联合的NPV/PPV灌注的肺的肺泡炎症组织学评分被确定为1.5，而对于用PPV灌注的肺，组织学评分被确定为2.7。此外，用联合的NPV/PPV灌注的肺中性粒细胞浸润物的量在统计学上显著低于(观察到渗透密度为6.3)用PPV灌注的肺中性粒细胞浸润物的量(观察到渗透密度为14.8)。此外，用联合的NPV/PPV灌注的肺的间质炎症组织学评分被确定为1.2，而对于用PPV灌注的肺，组织学评分被确定为1.7(这没有统计学意义；p>0.05)。此外，用联合的NPV/PPV灌注的肺的出血组织学评分被确定为0.0，而对于用PPV灌注的肺，组织学评分被确定为0.7(这也没有统计学意义；p>0.05)。此外，对于用联合的NPV/PPV灌注的肺血管周围中性粒细胞浸润密度被观察为0.6，而对于用PPV灌注的肺为1.6。
从实施例V(上文概述)获得的结果表明用NPV/PPV-EVLP平台灌注的肺可能遭受较低比率的通气诱发肺损伤(ventilator induced lung injury，VILI)。观察到用联合的NPV/PPV灌注的肺具有超过12小时稳定的且可接受的EVLP的生理学参数。观察到用联合的NPV/PPV灌注的肺的生理参数与用PPV灌注的肺的生理参数相似(参见，例如，图25A-27C)。
此外，与用PPV灌注的肺相比，观察到用联合的NPV/PPV灌注的肺具有优异的结果。例如，与用PPV灌注的肺相比，观察到用联合的NPV/PPV灌注的肺减少促炎细胞因子的产生(图30A-31C)，与用PPV灌注的肺相比大疱形成的发生率降低，和与用PPV灌注的肺相比猪和人肺中的肺水肿减少。此外，与用PPV灌注的肺相比，观察到用联合的NPV/PPV灌注的人肺具有降低的急性肺损伤的组织病理学上的发现。因此，虽然联合的NPV/PPV灌注的肺的EVLP的超过12小时生理参数与PPV灌注的肺相似，但观察到PPV灌注的肺在质量上有亚临床退化(sub-clinical deterioration)。
最后的附注
本发明的所选实施方式可用于各种领域和应用中。例如，它们可以用于在移植手术和研究中。
根据本文的公开本领域技术人员可以理解本发明所描述的实施方式的其他特征，改良和应用。
这是可以被领会的的本文中任何数值范围旨明确地包括在给定范围内的任何中间值或子范围，并且所有这些中间值和子范围是单独地和明确地公开的。
单词“包括(include)”或其变型例如“包括(includes)”或“包括(including)”将被理解为提示包括所述整数或整数组，但不排除任何其他整数或整数组。
还应理解的是词语“一(a)”或“一个(an)”旨在表示“一个或多个”或“至少一个”，并且本文的任何单数形式旨在包括复数形式。
还应理解的是术语“包含(comprise)”，包括其任何变型，旨在是开放式的并且表示“包括(include)但不限于”，除非另有特别的说明与之相反。
当在此给出项目列表时在最后项目之前具有“或”，可以选择和使用所列项目中的任何一个或所列项目中的两个或更多个的任意合适的组合。
当然，本公开的上述实施方式仅旨在说明且不以任何形式限制。所描述的实施方式对于形式，零件的布置，操作的细节和顺序的多种修改都是易于接受的。本发明目的旨在将所有这样的修改包括在权利要求限定的范围内。

Claims (18)

1.一种利用设备(10)使离体肺通气的方法，包括：
施加第一压力(P1)到肺的气道，其中P1高于大气压；
施加第二压力(P2)到肺的外表面；和
改变P2以改变压力差(PD)以引起肺呼吸，其中PD＝P1-P2,
所述设备(10)包括：容器(12)，第一导管(18)，第二导管(20)，第三导管(40)，控制系统(24),涡轮机(30)；其中，
所述容器(12)具有用于可安置离体肺(50)的可密封腔室(14)；
所述第一导管(18)延伸穿过容器(12)的壁并且连接通气气体源(16)到肺(50)的气道(52)，以用于供应通气气体到肺的气道；
所述第二导管(20)将真空源(22)连接到腔室(14)以在腔室(14)中形成真空；
所述第三导管(40)连接所述涡轮机(30)的排气侧和第二导管(20)；
所述涡轮机(30)用于提供所述通气气体源(16)和所述真空源(22)；所述控制系统24包括中央处理器(48),压力传感器(44,46)，流量传感器，流量调节阀,和控制器；
所述流量调节阀包括第一比例阀(32),第二比例阀(34),和连接到涡轮机(30)、第一导管(18)及第三导管(40)的第三比例阀(42)，所述第一比例阀(32)用于调节第一导管(18)中通气气体的流动，所述第二比例阀(34)用于调节第二导管(20)中的气体流动，所述第三比例阀(42)用于选择性地以不同的比例从涡轮机(30)的排气侧输送气体进入第一导管(18)和第三导管(40)；
所述控制器包括用于控制第一比例阀(32)操作的第一控制器(36)；和用于控制第二比例阀(34)和第三比例阀(42)操作的第二控制器(38)；
所述中央处理器(48)以电通信的形式与控制器(36)和(38)以及涡轮机(30)相联系，用以控制控制器(36)和(38)的操作和涡轮机(30)的操作；
其中,所述设备(10)使用单个涡轮机(30)来施加并调节P1和P2，包括利用该泵的排气侧的排气压力来选择性地调节P1和P2，并利用该泵的真空侧的真空压力及排气侧的排气压力来调节P2。
2.权利要求1的方法，包括在一较高压力水平和一较低压力水平之间改变P2，其中所述较低压力水平低于所述大气压力。
3.权利要求1的方法，包括保持P1值不变。
4.权利要求3的方法，其中所述不变值在5至10cmH2O之间。
5.权利要求4的方法，其包括将PD在7至30cmH2O之间进行变化。
6.权利要求1至5中任一项的方法，包括使用再生真空泵来施加并控制P1和P2。
7.权利要求6的方法，其中所述再生真空泵是再生涡轮机。
8.权利要求1至5中任一项的方法，包括使用单个涡轮机来施加并控制P1和P2。
9.一种利用权利要求1中所述的设备(10)使离体肺通气的方法，该方法包括：
向肺的气道供应通气气体；
在肺周围形成真空；和
在调节供应到气道的通气气体的压力以维持肺的气道中有正气道压力的同时，将该真空的真空度在一较低水平和一较高水平之间进行改变以引起肺呼吸，
其中，使用单个泵的排气侧的排气压力来调节该通气气体的压力，并利用该泵的真空侧的真空压力来调节该真空度。
10.权利要求9的方法，其中该真空的真空度在所述较低水平和所述较高水平之间进行周期性改变。
11.权利要求9的方法，其中该真空的真空度水平在一段时间内被保持在基本不变。
12.权利要求9的方法，在通气期间对所述较低水平和所述较高水平中的一个或两个进行调节。
13.权利要求9至12中任一项的方法，其中肺被放置于密封腔室内，所述真空在该腔室中肺的周围形成。
14.权利要求13的方法，其中该单个泵为再生真空泵。
15.一种利用权利要求1中所述的设备(10)使离体肺通气的方法，包括在第一压力和第二压力之间改变肺的外部压力，其中第一压力高于大气压力并且第二压力低于大气压力，
其中,使用单个泵的吸气侧的压力来施加并调节该第一压力和第二压力，并利用该泵的排气侧的排气压力来调节该肺气道的压力。
16.一种利用权利要求1中所述的设备(10)使离体肺通气的方法，包括：
通过与气泵流体连通的气体在肺周围施加外部压力；和
操作该气泵以改变肺周围的外部压力以使肺通气，
包括利用所述气泵的排气侧的排气压力来调节该肺内部压力，并利用该泵的真空侧的真空压力来调节该外部压力。
17.权利要求16的方法，其中所述气泵是再生泵。
18.权利要求16或权利要求17的方法，其中肺周围的气体被局限在一固定体积之内，并使用所述泵来改变该固定体积中的气量以改变施加到肺的外部压力。
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