CN108728404B - 牛活体或离体采集卵母细胞体外受精胚胎培养的方法 - Google Patents

牛活体或离体采集卵母细胞体外受精胚胎培养的方法 Download PDF

Info

Publication number
CN108728404B
CN108728404B CN201810576806.3A CN201810576806A CN108728404B CN 108728404 B CN108728404 B CN 108728404B CN 201810576806 A CN201810576806 A CN 201810576806A CN 108728404 B CN108728404 B CN 108728404B
Authority
CN
China
Prior art keywords
sodium
culture
vitro
embryo
hydrochloride
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201810576806.3A
Other languages
English (en)
Other versions
CN108728404A (zh
Inventor
王小武
郭晶
王娜
郝少强
赵明礼
马毅
郭春明
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Tianjin Limu Biotechnology Co.,Ltd.
Original Assignee
Tianjin Boyu Limu Technology Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tianjin Boyu Limu Technology Co ltd filed Critical Tianjin Boyu Limu Technology Co ltd
Priority to CN201810576806.3A priority Critical patent/CN108728404B/zh
Publication of CN108728404A publication Critical patent/CN108728404A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN108728404B publication Critical patent/CN108728404B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0608—Germ cells
    • C12N5/0609—Oocytes, oogonia
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02—Preservation of living parts
    • A01N1/0205—Chemical aspects
    • A01N1/021—Preservation or perfusion media, liquids, solids or gases used in the preservation of cells, tissue, organs or bodily fluids
    • A01N1/0221—Freeze-process protecting agents, i.e. substances protecting cells from effects of the physical process, e.g. cryoprotectants, osmolarity regulators like oncotic agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N1/00—Preservation of bodies of humans or animals, or parts thereof
    • A01N1/02—Preservation of living parts
    • A01N1/0205—Chemical aspects
    • A01N1/021—Preservation or perfusion media, liquids, solids or gases used in the preservation of cells, tissue, organs or bodily fluids
    • A01N1/0226—Physiologically active agents, i.e. substances affecting physiological processes of cells and tissue to be preserved, e.g. anti-oxidants or nutrients
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61D—VETERINARY INSTRUMENTS, IMPLEMENTS, TOOLS, OR METHODS
    • A61D19/00—Instruments or methods for reproduction or fertilisation
    • A61D19/02—Instruments or methods for reproduction or fertilisation for artificial insemination
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/10—Growth factors
    • C12N2501/11—Epidermal growth factor [EGF]
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2501/00—Active agents used in cell culture processes, e.g. differentation
    • C12N2501/30—Hormones
    • C12N2501/31—Pituitary sex hormones, e.g. follicle-stimulating hormone [FSH], luteinising hormone [LH]; Chorionic gonadotropins
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2509/00—Methods for the dissociation of cells, e.g. specific use of enzymes

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明涉及牛活体或离体采集卵母细胞体外受精胚胎培养的方法。该方法包括如下步骤：卵母细胞的采集和体外成熟，其中的卵母细胞采集可以采用离体采集或者活体采集；体外受精，成熟的COCs在受精培养液中培养箱后与精子悬液共孵育培养；胚胎体外培养及液氮中冷冻保存。本发明方法呈现如说明书所述优异技术效果。

Description

牛活体或离体采集卵母细胞体外受精胚胎培养的方法
技术领域
本发明属于动物繁殖技术领域，涉及一种用于农业-畜牧兽医繁殖的技术，具体涉及一种牛体外受精胚胎培养的方法，另外，本发明还涉及牛体外受精胚胎培养的相关培养液在牛体外受精胚胎培养中的应用。进一步的，本发明还涉及使用该牛体外受精胚胎培养的相关培养液进行牛体外受精胚胎培养的方法。特别是，本发明牛体外受精胚胎培养的方法具有优异的技术效果。特别是，本发明涉及一种从牛进行活体或离采集体卵母细胞进而进行体外受精以及胚胎培养的方法。
背景技术
体外受精(In Vitro Fertilization)或(external fertilization)是指哺乳动物的精子和卵子在体外人工控制的环境中完成受精过程的技术，英文简称为IVF。由于它与胚胎移植技术(ET)密不可分，又简称为IVF-ET。在生物学中，把体外受精胚胎移植到母体后获得的动物称试管动物(test-tube animal)。这项技术成功于20世纪50年代，在最近20年发展迅速，现已日趋成熟而成为一项重要而常规的动物繁殖生物技术。
体外受精技术对动物生殖机理研究、畜牧生产、医学和濒危动物保护等具有重要意义。如用小鼠、大鼠或家兔等作实验材料，体外受精技术可用于研究哺乳动物配子发生、受精和胚胎早期发育机理。在家畜品种改良中，体外受精技术为胚胎生产提供了廉价而高效的手段，对充分利用优良品种资源，缩短家畜繁殖周期，加快品种改良速度等有重要价值。在人类，IVF-ET技术是治疗某些不孕症和克服性连锁病的重要措施之一。体外受精技术还是哺乳动物胚胎移植、克隆、转基因和性别控制等现代生物技术不可缺少的组成部分。
随着现代农业科技的发展，为了更充分利用良种母牛的繁殖潜力，加速遗传育种进程，在生产实践中应用高效的繁殖新技术成为必然。活体采卵(Ovum pick UP，OPU)和体外受精技术(In Vitro Fertilization，IVF)是二十世纪八十年代快速发展起来的胚胎工程新技术，二者相结合可获得大量遗传系谱明确的胚胎，从而缩短世代间隔。目前，这两种技术已经成为欧美和大洋洲等畜牧业发达国家的农场主为扩大良种母牛群而采用的重要繁殖技术。然而，采用常规的牛胚胎培养体系(CR1aa和SOF液)，牛体外受精的囊胚发育率较低，而且胚胎质量也远不及体内胚胎，导致胚胎移植受体后的妊娠率低，因此如何提高囊胚发育率及胚胎质量成为体外受精胚胎生产的重点和研究的焦点。
早在1878年，德国人Scnenk就以家兔和豚鼠为材料，开始探索哺乳动物的体外受精技术。但直到1951年，美籍华人张民觉和Austin分别发现精子体外获能现象后，体外受精技术才获得了突破性进展。牛体外受精技术受到卵母细胞的体外成熟、精子的体外获能、受精卵的体外培养环境等多个方面的影响。
胚胎的体外培养是IVF技术的一个关键环节，亦是卵母细胞体外成熟和体外受精技术最终效果的体现和检验。在体外受精后，受精卵在向囊胚发育过程中将需经历一系列重要的变化，包括合子的形成、第一次卵裂、胚胎基因组的激活、致密化以及形成囊胚。这一过程中，外界环境的变化会导致基因表达发生改变，从而影响胚胎的正常发育及质量。目前，哺乳动物早期胚胎的体外培养研究主要集中在改善培养液成分以满足不同发育阶段的胚胎营养需求。基于Rosenkrans等(Rosenkrans，C.F.，Jr.and N.L.First，Effect of freeamino acids and vitamins on cleavage and developmental rate of bovine zygotesin vitro.J Anim Sci，1994.72(2):p.434-7)开发的Charles Rosenkrans 1(CR1)培养液和Tervit等(Tervit，H.R.，D.G.Whittingham，and L.E.Rowson,Successful culture invitro of sheep and cattle ova.J Reprod Fertil,1972.30(3):p.493-7)开发的合成输卵管液(Synthetic Oviductal Fluid，SOF)，经多年不断改进逐步形成了两种培养体系。据Hakan Sagirkaya等(Sagirkaya,H.,et al.,Developmental potential of bovineoocytes cultured in different maturation and culture conditions.Anim ReprodSci,2007.101(3-4):p.225-40)和Somfai等(Somfai,T.,et al.,Development of bovineembryos cultured in CR1aa and IVD101media using different oxygen tensions andculture systems.Acta Vet Hung,2010.58(4):p.465-74)研究成果表明，CR1aa培养液用于牛胚胎培养有较好的效果，可以广泛应用于牛的胚胎培养；Thompson,J.G.等(Thompson,J.G.,et al.,Effect of inhibitors and uncouplers of oxidative phosphorylationduring compaction and blastulation of bovine embryos cultured in vitro.JReprod Fertil,2000.118(1):p.47-55)和Jean M.Feugang等(Feugang,J.M.,O.Camargo-Rodriguez,and E.Memili,Culture systems for bovine embryos.Livestock Science,2009.121(2-3):p.141-149)的研究结果显示，SOF培养液也是一种适合于牛胚胎培养的培养体系。张志平等(张志平,安志兴,张锈,张涌,牛胚胎培养体系的优化.西北农林科技大学学报,2006.34)和桑国俊等(桑国俊,牛卵母细胞及体外胚培养技术研究.2008)研究结果也显示，经过优化的CR1aa和SOF培养液均适合于牛的体外胚胎培养，均取得良好的培养效果。哺乳动物早期胚胎发育是一个高度协调且精确调节的过程。在进化过程中，配子细胞逐步形成了一系列的分子级联网络，以保证胚胎发育周期系统地进行。在发育过程中，胚胎的内外活性氧自由基(Reactive Oxygen Species，ROS)与抗氧化剂的平衡对早期胚胎发育起着决定性作用。
大多生化反应均产生ROS，其在细胞内、外均有着重要的作用，一部分ROS起着信号分子的作用，但是大多数ROS对机体是有害的。Brooker,R.J.等(Brooker,R.J.,Genetics:analysis and principles(4th ed.).McGraw-Hill Science,2011)报道，ROS可以引起细胞DNA损伤、不饱和脂肪酸的氧化、蛋白质中氨基酸的氧化甚至可以导致某些酶的失活。一般来说，ROS以四种形式存在，其中H2O2氧化作用较强，是引起氧化伤害的最主要因素。
大量研究表明，谷胱甘肽(GSH)是以非蛋白质形式存在的一种抗氧化剂，能够清除多种自由基：超氧阴离子自由基、羟基自由基、过氧化氢、次氯酸和脂氧自由基，并且能够维持细胞内外氧化还原平衡。细胞内外环境GSH和ROS水平是影响受精卵发育过程中的两个重要因素。早在2000年，de Matos等(de Matos,D.G.and C.C.Furnus,The importance ofhaving high glutathione(GSH)level after bovine in vitro maturation on embryodevelopment effect of beta-mercaptoethanol,cysteine andcystine.Theriogenology,2000.53(3):p.761-71)曾通过在体外胚胎培养过程中添加β-巯基乙醇、半胱氨酸和胱氨酸来提高囊胚率。
尽管体外受精技术能成功应用于许多哺乳动物，但由于体外受精的囊胚率低而导致体外受精胚胎的生产成本高、效率低，限制了该技术在牛快速扩繁实践中的广泛应用。因此，如何能够降低成本并提高牛IVF胚胎生产效率和胚胎质量成为亟待解决的问题。
目前，牛体外受精的技术体系中主要以CR1aa和SOF液为胚胎体外培养液，并在此基础上进行改进，囊胚发育率均有不同程度的提高，囊胚发育率平均为30％-40％。对于囊胚质量，可以通过囊胚细胞总数、ICM细胞数/总细胞数比例、细胞凋亡率来评估。囊胚细胞总数根据囊胚所处阶段的不同而不同，S.Iwasaki等(Iwasaki,S.and T.Nakahara,Cellnumber and incidence of chromosomal anomalies in bovine blastocystsfertilized in vitro followed by culture in vitro or in vivo in rabbitoviducts.Theriogenology,1990.33(3):p.669-75)获得的牛早期囊胚总细胞数平均为44，ICM细胞数/囊胚总细胞数比例为15.8％左右；Andrew J.Watson等(Watson,A.J.,et al.,Impact of bovine oocyte maturation media on oocyte transcript levels,blastocyst development,cell number,and apoptosis.Biol Reprod,2000.62(2):p.355-64)统计牛囊胚细胞凋亡率约为7.7％-13％。
CN103898046B(中国专利申请号201410073635.4)公开了一种专用于牛体外受精胚胎的培养液，所述培养液配方为：NaCl 109.5mM、KCl 3.1mM、NaHCO3 26.2mM、MgCl2·6H2O 0.8mM、KH2PO31.19mM、丙酮酸钠0.4mM、葡萄糖1.5mM、半乳糖酸钙5mM、10v/v％胎牛血清、L-谷氨酰胺1mM、2v/v％必需氨基酸、1v/v％非必须氨基酸和谷胱甘肽3mM，以水配制；所述必需氨基酸为以下氨基酸按比例混合后配制的水溶液，其中，各氨基酸含量为：L-盐酸精氨酸6.32g/L、L-胱氨酸二盐酸盐1.564g/L、L-盐酸组氨酸一水物2.1g/L、L-异亮氨酸2.625g/L、L-亮氨酸2.62g/L、L-赖氨酸盐酸盐3.625g/L、L-蛋氨酸0.755g/L、L-苯丙氨酸1.65g/L、L-苏氨酸2.38g/L、L-色氨酸0.51g/L、L-酪氨酸1.8g/L和L-缬氨酸2.34g/L；所述非必须氨基酸为以下氨基酸按比例混合后配制的水溶液，其中，各氨基酸含量为：L-丙氨酸0.89g/L、L-天门冬酰胺一水物1.5g/L、L-天冬氨酸1.33g/L、L-谷氨酸1.47g/L、甘氨酸0.75g/L、L-脯氨酸1.15g/L和L-丝氨酸1.05g/L。将牛体外受精胚胎置于上述培养液中进行体外培养，据信结果显示明显优于未添加GSH的对照组，提高了囊胚发育率及胚胎质量，降低体外生产胚胎的成本，为牛IVF技术应用于实践提供实验基础，可大大加速遗传育种进程。
其他参考文献：
陈大元.受精生物学.2003,北京:科学出版社；
方俊顺.牛胚胎体外生产技术研究.《中国优秀硕士学位论文全文数据库.农业科技辑》.2007,(第4期)；
曹海清.卵丘细胞和培养条件对牛体外胚胎生产效率的影响.《中国优秀硕士学位论文全文数据库.农业科技辑》.2008,(第9期)；
I.H.KIM et al.Effect of exogenous glutathione on the in vitrofertilization of bovine oocytes.Theriogenology.1999,Vol.52(3)。
然而，本领域仍然期待有性能改进的牛体外受精胚胎的培养的方法，例如仍然期待有提高牛体外受精胚胎培养效率的方法，例如有具有优异的成本优势的牛体外受精胚胎培养的方法。
发明内容
本发明的目的在于提供一种性能改进的牛体外受精胚胎培养的方法，特别是期待提高牛IVF胚胎生产效率和胚胎质量。更具体的，本发明为达成上述目的而需要提供一种专用于牛体外受精胚胎的相关培养液和以及使用该培养液进行牛体外受精胚胎培养的方法。本发明人已经出人意料的发现，使用本发明方法呈现优异的技术效果，本发明因此发现而得以完成。
为此，本发明第一方面提供了一种牛体外受精胚胎培养的方法，其包括如下步骤：
(1)卵母细胞的采集和体外成熟
离体采集：取屠宰场卵巢盛放于加双抗生理盐水的保温桶中，31-33℃条件下，3h内运回实验室；抽取表面2-8mm的卵泡，收集沉淀，在体视显微镜下捡出至少含有3层卵丘细胞包裹的卵母细胞COCs(即，卵丘-卵母细胞复合体)，在洗卵液中洗涤2遍，去除多余杂质；
活体采集：对牛进行活体采卵，将所得卵泡液在体视显微镜下捡出至少含3层卵丘细胞包裹的卵丘-卵母细胞复合体(COCs)，放入包含HEPES的成熟培养液中38.8℃、3h内运回实验室；
将以上离体采集或者活体采集所得COCs在卵母细胞成熟培养液中洗涤1次，再转移到新的成熟培养液中培养22-24h，培养条件为38.8℃、5.5-6.5％CO2、饱和湿度；
(2)体外受精
将成熟的COCs在受精培养液中洗涤1次，再转移到受精培养液中，放入培养箱中，备用；
从液氮中取一支冻精细管，37℃水浴解冻；无菌操作剪开细管两端，使精液注入盛有精液制备培养液的15mL离心管中，328×g离心2次，每次5min，离心后弃上清；将300μL精液制备培养液加入上述离心管，重悬精子沉淀，取适当的精子悬液进行精子计数；
将计算好体积的精子悬液加入盛有卵母细胞的受精培养液滴中，并将培养盘放入培养箱，使精卵共孵育16-20h，培养条件为38.8℃、5.5-6.5％CO2、饱和湿度；
(3)胚胎体外培养及保存
体外受精操作完毕后，将胚胎周围的颗粒细胞用剥卵针去除干净，放入胚胎培养液中培养，此时记为胚胎培养的第1天，培养条件为38.8℃、6％O2、88％N2、饱和湿度，第3天记录卵裂率；第7天记录囊胚率，至第9天时统计囊胚孵化率(其为孵化囊胚数除以囊胚数所得百分数)，并进行质量鉴定；
将可用胚胎在保存液中洗涤3次，在平衡液中平衡10min后转移入冷冻液，按5段装液法装入胚胎，做好标记，再放入程序降温仪中按照0.5℃/min的速度降至-35℃后，将胚胎细管迅速取出，置入液氮中冷冻保存。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(1)中，所述加双抗生理盐水是包含青霉素400IU/mL、链霉素400μg/mL的生理盐水。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(1)中，所述洗卵液是添加了3mg/mL牛血清白蛋白的BY基础培养液。
本发明的洗卵液或者其它培养液的配制方法是本领域技术人员容易实现的，例如对于洗卵液而言，通常是在预先配制好的本发明BY基础培养液中添加牛血清白蛋白至其相应要求的浓度，这种配制方法也是本领域技术人员常用的。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(1)中，所述成熟培养液是添加了100mL/LFBS、10μg/mL FSH、10μg/mL LH、1μg/mL E2、20ng/mL EGF的BY基础培养液。
根据本发明第一方面的方法，其中HEPES即4-羟乙基哌嗪乙磺酸在所述成熟培养液中的浓度为10～20mmol/L，例如15mmol/L。在本发明中，EGF——表皮生长因子，FSH——卵泡刺激素，FBS——胎牛血清，E2——雌二醇，LH——促黄体生成素。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(2)中，所述受精培养液是包含112.0mM氯化钠、4.02mM氯化钾、2.25mM的氯化钙二水合物、0.52mM六水氯化镁、0.83mM磷酸二氢钾、37.0mM碳酸氢钠、1.25mM丙酮酸钠、10μg/ml肝素、4mg/ml牛血清白蛋白(BSA)、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素的水溶液。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(2)中，所述精液制备培养液是包含112.0mM氯化钠、4.02mM氯化钾、2.25mM的氯化钙二水合物、0.52mM六水氯化镁、0.83mM磷酸二氢钾、37.0mM碳酸氢钠、1.25mM丙酮酸钠、10μg/ml肝素、4mg/ml牛血清白蛋白(BSA)、10mM咖啡因、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素的水溶液。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(3)中，所述胚胎培养液包含：109.5mM氯化钠、3.1mM氯化钾、26.2mM碳酸氢钠、0.8mM六水氯化镁、1.19mM磷酸二氢钾、0.4mM丙酮酸钠、1.5mM葡萄糖、5mM半乳糖酸钙、2.5v/v％胎牛血清(FBS)、L-谷氨酰胺1mM、2v/v％必需氨基酸、1v/v％非必须氨基酸、3mM的谷胱甘肽、枸橼酸钠0.04w/v％、麦芽糖0.02w/v％的水溶液；所述必需氨基酸为以下氨基酸按重量比例添加：L-盐酸精氨酸6.32g、L-胱氨酸二盐酸盐1.564g、L-盐酸组氨酸一水物2.1g、L-异亮氨酸2.625g、L-亮氨酸2.62g、L-赖氨酸盐酸盐3.625g、L-蛋氨酸0.755g、L-苯丙氨酸1.65g、L-苏氨酸2.38g、L-色氨酸0.51g、L-酪氨酸1.8g和L-缬氨酸2.34g，所述非必须氨基酸为以下氨基酸按重量比例添加：L-丙氨酸0.89g、L-天门冬酰胺一水物1.5g、L-天冬氨酸1.33g、L-谷氨酸1.47g、甘氨酸0.75g、L-脯氨酸1.15g和L-丝氨酸1.05g。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(1)中，所述BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙180～220mg/L、九水硝酸铁0.70～0.75mg/L、氯化钾380～420mg/L、硫酸镁90～100mg/L、氯化钠6500～7000mg/L、一水磷酸二氢钠130～150mg/L、碳酸氢钠2000～2500mg/L、醋酸钠40～60mg/L、L-丙氨酸20～30mg/L、L-精氨酸盐酸盐60～80mg/L、L-天冬氨酸25～35mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.10～0.12mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐20～30mg/L、L-谷氨酸70～80mg/L、甘氨酸40～60mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物20～25mg/L、L-羟脯氨酸8～12mg/L、L-异亮氨酸15～25mg/L、L-亮氨酸50～70mg/L、L-赖氨酸盐酸盐60～80mg/L、L-蛋氨酸10～20mg/L、L-苯丙氨酸20～30mg/L、L-脯氨酸30～50mg/L、L-丝氨酸20～30mg/L、L-苏氨酸25～35mg/L、L-色氨酸8～12mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物55～60mg/L、L-缬氨酸20～30mg/L、抗坏血酸0.04～0.06mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.008～0.012mg/L、生物素0.008～0.012mg/L、骨化醇0.08～0.12mg/L、D-泛酸钙0.008～0.012mg/L、氯化胆碱0.4～0.6mg/L、叶酸0.008～0.012mg/L、肌醇0.04～0.06mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.015～0.025mg/L、烟酸0.02～0.03mg/L、烟酰胺0.02～0.03mg/L、p-氨基苯甲酸0.04～0.06mg/L、盐酸吡哆辛0.04～0.06mg/L、核黄素0.008～0.012mg/L、盐酸硫胺素0.008～0.012mg/L、维生素A乙酸酯0.1～0.2mg/L、硫酸腺嘌呤8～12mg/L、腺嘌呤0.15～0.25mg/L、腺苷三磷酸二钠0.8～1.2mg/L、胆固醇0.15～0.25mg/L、2-脱氧-D-核糖0.4～0.6mg/L、D-葡萄糖800～1200mg/L、谷胱甘肽0.04～0.06mg/L、盐酸鸟嘌呤0.25～0.35mg/L、次黄嘌呤钠0.3～0.4mg/L、核糖0.4～0.6mg/L、胸腺素0.25～0.35mg/L、吐温804～6mg/L、尿嘧啶0.25～0.35mg/L、黄嘌呤钠0.3～0.4mg/L、酚红8～12mg/L。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(1)中，所述BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙200mg/L、九水硝酸铁0.72mg/L、氯化钾400mg/L、硫酸镁97.7mg/L、氯化钠6800mg/L、一水磷酸二氢钠140mg/L、碳酸氢钠2200mg/L、醋酸钠50mg/L、L-丙氨酸25mg/L、L-精氨酸盐酸盐70mg/L、L-天冬氨酸30mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.11mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐26mg/L、L-谷氨酸75mg/L、甘氨酸50mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物21.88mg/L、L-羟脯氨酸10mg/L、L-异亮氨酸20mg/L、L-亮氨酸60mg/L、L-赖氨酸盐酸盐70mg/L、L-蛋氨酸15mg/L、L-苯丙氨酸25mg/L、L-脯氨酸40mg/L、L-丝氨酸25mg/L、L-苏氨酸30mg/L、L-色氨酸10mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物57.66mg/L、L-缬氨酸25mg/L、抗坏血酸0.05mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.01mg/L、生物素0.01mg/L、骨化醇0.1mg/L、D-泛酸钙0.01mg/L、氯化胆碱0.5mg/L、叶酸0.01mg/L、肌醇0.05mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.019mg/L、烟酸0.025mg/L、烟酰胺0.025mg/L、p-氨基苯甲酸0.05mg/L、盐酸吡哆辛0.05mg/L、核黄素0.01mg/L、盐酸硫胺素0.01mg/L、维生素A乙酸酯0.14mg/L、硫酸腺嘌呤10mg/L、腺嘌呤0.2mg/L、腺苷三磷酸二钠1mg/L、胆固醇0.2mg/L、2-脱氧-D-核糖0.5mg/L、D-葡萄糖1000mg/L、谷胱甘肽0.05mg/L、盐酸鸟嘌呤0.3mg/L、次黄嘌呤钠0.354mg/L、核糖0.5mg/L、胸腺素0.3mg/L、吐温805mg/L、尿嘧啶0.3mg/L、黄嘌呤钠0.34mg/L、酚红10mg/L。
根据本发明第一方面的方法，其中步骤(1)中，所述BY基础培养液中还包括亚硒酸钠，其浓度为0.2～0.3mg/L，例如0.25mg/L；和/或，所述BY基础培养液中还包括硫酸铜，其浓度以无水物计为0.05～0.1mg/L，例如0.075mg/L。
在本发明中，例如在步骤(3)中，胚胎所用的保存液、平衡液、冷冻液等均是本领域公知的并且是可以容易从市售途径获得的，例如冷冻液可以是瑞典Vitrolife公司在国内销售的FreezeKitTMCleave。
进一步的，本发明第二方面提供了一种洗卵液，其是添加了3mg/mL牛血清白蛋白的BY基础培养液。
根据本发明第二方面的洗卵液，其中所述BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙180～220mg/L、九水硝酸铁0.70～0.75mg/L、氯化钾380～420mg/L、硫酸镁90～100mg/L、氯化钠6500～7000mg/L、一水磷酸二氢钠130～150mg/L、碳酸氢钠2000～2500mg/L、醋酸钠40～60mg/L、L-丙氨酸20～30mg/L、L-精氨酸盐酸盐60～80mg/L、L-天冬氨酸25～35mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.10～0.12mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐20～30mg/L、L-谷氨酸70～80mg/L、甘氨酸40～60mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物20～25mg/L、L-羟脯氨酸8～12mg/L、L-异亮氨酸15～25mg/L、L-亮氨酸50～70mg/L、L-赖氨酸盐酸盐60～80mg/L、L-蛋氨酸10～20mg/L、L-苯丙氨酸20～30mg/L、L-脯氨酸30～50mg/L、L-丝氨酸20～30mg/L、L-苏氨酸25～35mg/L、L-色氨酸8～12mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物55～60mg/L、L-缬氨酸20～30mg/L、抗坏血酸0.04～0.06mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.008～0.012mg/L、生物素0.008～0.012mg/L、骨化醇0.08～0.12mg/L、D-泛酸钙0.008～0.012mg/L、氯化胆碱0.4～0.6mg/L、叶酸0.008～0.012mg/L、肌醇0.04～0.06mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.015～0.025mg/L、烟酸0.02～0.03mg/L、烟酰胺0.02～0.03mg/L、p-氨基苯甲酸0.04～0.06mg/L、盐酸吡哆辛0.04～0.06mg/L、核黄素0.008～0.012mg/L、盐酸硫胺素0.008～0.012mg/L、维生素A乙酸酯0.1～0.2mg/L、硫酸腺嘌呤8～12mg/L、腺嘌呤0.15～0.25mg/L、腺苷三磷酸二钠0.8～1.2mg/L、胆固醇0.15～0.25mg/L、2-脱氧-D-核糖0.4～0.6mg/L、D-葡萄糖800～1200mg/L、谷胱甘肽0.04～0.06mg/L、盐酸鸟嘌呤0.25～0.35mg/L、次黄嘌呤钠0.3～0.4mg/L、核糖0.4～0.6mg/L、胸腺素0.25～0.35mg/L、吐温804～6mg/L、尿嘧啶0.25～0.35mg/L、黄嘌呤钠0.3～0.4mg/L、酚红8～12mg/L。
根据本发明第二方面的洗卵液，其中所述BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙200mg/L、九水硝酸铁0.72mg/L、氯化钾400mg/L、硫酸镁97.7mg/L、氯化钠6800mg/L、一水磷酸二氢钠140mg/L、碳酸氢钠2200mg/L、醋酸钠50mg/L、L-丙氨酸25mg/L、L-精氨酸盐酸盐70mg/L、L-天冬氨酸30mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.11mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐26mg/L、L-谷氨酸75mg/L、甘氨酸50mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物21.88mg/L、L-羟脯氨酸10mg/L、L-异亮氨酸20mg/L、L-亮氨酸60mg/L、L-赖氨酸盐酸盐70mg/L、L-蛋氨酸15mg/L、L-苯丙氨酸25mg/L、L-脯氨酸40mg/L、L-丝氨酸25mg/L、L-苏氨酸30mg/L、L-色氨酸10mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物57.66mg/L、L-缬氨酸25mg/L、抗坏血酸0.05mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.01mg/L、生物素0.01mg/L、骨化醇0.1mg/L、D-泛酸钙0.01mg/L、氯化胆碱0.5mg/L、叶酸0.01mg/L、肌醇0.05mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.019mg/L、烟酸0.025mg/L、烟酰胺0.025mg/L、p-氨基苯甲酸0.05mg/L、盐酸吡哆辛0.05mg/L、核黄素0.01mg/L、盐酸硫胺素0.01mg/L、维生素A乙酸酯0.14mg/L、硫酸腺嘌呤10mg/L、腺嘌呤0.2mg/L、腺苷三磷酸二钠1mg/L、胆固醇0.2mg/L、2-脱氧-D-核糖0.5mg/L、D-葡萄糖1000mg/L、谷胱甘肽0.05mg/L、盐酸鸟嘌呤0.3mg/L、次黄嘌呤钠0.354mg/L、核糖0.5mg/L、胸腺素0.3mg/L、吐温805mg/L、尿嘧啶0.3mg/L、黄嘌呤钠0.34mg/L、酚红10mg/L。
根据本发明第二方面的洗卵液，其中所述BY基础培养液中还包括亚硒酸钠，其浓度为0.2～0.3mg/L，例如0.25mg/L；和/或，所述BY基础培养液中还包括硫酸铜，其浓度以无水物计为0.05～0.1mg/L，例如0.075mg/L。
进一步的，本发明第三方面提供了一种成熟培养液，其是添加了100mL/L FBS、10μg/mL FSH、10μg/mL LH、1μg/mL E2、20ng/mL EGF的BY基础培养液。
根据本发明第三方面的成熟培养液，其中所述BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙180～220mg/L、九水硝酸铁0.70～0.75mg/L、氯化钾380～420mg/L、硫酸镁90～100mg/L、氯化钠6500～7000mg/L、一水磷酸二氢钠130～150mg/L、碳酸氢钠2000～2500mg/L、醋酸钠40～60mg/L、L-丙氨酸20～30mg/L、L-精氨酸盐酸盐60～80mg/L、L-天冬氨酸25～35mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.10～0.12mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐20～30mg/L、L-谷氨酸70～80mg/L、甘氨酸40～60mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物20～25mg/L、L-羟脯氨酸8～12mg/L、L-异亮氨酸15～25mg/L、L-亮氨酸50～70mg/L、L-赖氨酸盐酸盐60～80mg/L、L-蛋氨酸10～20mg/L、L-苯丙氨酸20～30mg/L、L-脯氨酸30～50mg/L、L-丝氨酸20～30mg/L、L-苏氨酸25～35mg/L、L-色氨酸8～12mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物55～60mg/L、L-缬氨酸20～30mg/L、抗坏血酸0.04～0.06mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.008～0.012mg/L、生物素0.008～0.012mg/L、骨化醇0.08～0.12mg/L、D-泛酸钙0.008～0.012mg/L、氯化胆碱0.4～0.6mg/L、叶酸0.008～0.012mg/L、肌醇0.04～0.06mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.015～0.025mg/L、烟酸0.02～0.03mg/L、烟酰胺0.02～0.03mg/L、p-氨基苯甲酸0.04～0.06mg/L、盐酸吡哆辛0.04～0.06mg/L、核黄素0.008～0.012mg/L、盐酸硫胺素0.008～0.012mg/L、维生素A乙酸酯0.1～0.2mg/L、硫酸腺嘌呤8～12mg/L、腺嘌呤0.15～0.25mg/L、腺苷三磷酸二钠0.8～1.2mg/L、胆固醇0.15～0.25mg/L、2-脱氧-D-核糖0.4～0.6mg/L、D-葡萄糖800～1200mg/L、谷胱甘肽0.04～0.06mg/L、盐酸鸟嘌呤0.25～0.35mg/L、次黄嘌呤钠0.3～0.4mg/L、核糖0.4～0.6mg/L、胸腺素0.25～0.35mg/L、吐温804～6mg/L、尿嘧啶0.25～0.35mg/L、黄嘌呤钠0.3～0.4mg/L、酚红8～12mg/L。
根据本发明第三方面的成熟培养液，其中所述BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙200mg/L、九水硝酸铁0.72mg/L、氯化钾400mg/L、硫酸镁97.7mg/L、氯化钠6800mg/L、一水磷酸二氢钠140mg/L、碳酸氢钠2200mg/L、醋酸钠50mg/L、L-丙氨酸25mg/L、L-精氨酸盐酸盐70mg/L、L-天冬氨酸30mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.11mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐26mg/L、L-谷氨酸75mg/L、甘氨酸50mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物21.88mg/L、L-羟脯氨酸10mg/L、L-异亮氨酸20mg/L、L-亮氨酸60mg/L、L-赖氨酸盐酸盐70mg/L、L-蛋氨酸15mg/L、L-苯丙氨酸25mg/L、L-脯氨酸40mg/L、L-丝氨酸25mg/L、L-苏氨酸30mg/L、L-色氨酸10mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物57.66mg/L、L-缬氨酸25mg/L、抗坏血酸0.05mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.01mg/L、生物素0.01mg/L、骨化醇0.1mg/L、D-泛酸钙0.01mg/L、氯化胆碱0.5mg/L、叶酸0.01mg/L、肌醇0.05mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.019mg/L、烟酸0.025mg/L、烟酰胺0.025mg/L、p-氨基苯甲酸0.05mg/L、盐酸吡哆辛0.05mg/L、核黄素0.01mg/L、盐酸硫胺素0.01mg/L、维生素A乙酸酯0.14mg/L、硫酸腺嘌呤10mg/L、腺嘌呤0.2mg/L、腺苷三磷酸二钠1mg/L、胆固醇0.2mg/L、2-脱氧-D-核糖0.5mg/L、D-葡萄糖1000mg/L、谷胱甘肽0.05mg/L、盐酸鸟嘌呤0.3mg/L、次黄嘌呤钠0.354mg/L、核糖0.5mg/L、胸腺素0.3mg/L、吐温805mg/L、尿嘧啶0.3mg/L、黄嘌呤钠0.34mg/L、酚红10mg/L。
根据本发明第三方面的成熟培养液，其中所述BY基础培养液中还包括亚硒酸钠，其浓度为0.2～0.3mg/L，例如0.25mg/L；和/或，所述BY基础培养液中还包括硫酸铜，其浓度以无水物计为0.05～0.1mg/L，例如0.075mg/L。
进一步的，本发明第四方面提供了一种成熟培养液，其是添加了10～20mmol/L(例如15mmol/L)4-羟乙基哌嗪乙磺酸、100mL/L FBS、10μg/mL FSH、10μg/mL LH、1μg/mL E2、20ng/mL EGF的BY基础培养液。
根据本发明第四方面的成熟培养液，其中所述BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙180～220mg/L、九水硝酸铁0.70～0.75mg/L、氯化钾380～420mg/L、硫酸镁90～100mg/L、氯化钠6500～7000mg/L、一水磷酸二氢钠130～150mg/L、碳酸氢钠2000～2500mg/L、醋酸钠40～60mg/L、L-丙氨酸20～30mg/L、L-精氨酸盐酸盐60～80mg/L、L-天冬氨酸25～35mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.10～0.12mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐20～30mg/L、L-谷氨酸70～80mg/L、甘氨酸40～60mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物20～25mg/L、L-羟脯氨酸8～12mg/L、L-异亮氨酸15～25mg/L、L-亮氨酸50～70mg/L、L-赖氨酸盐酸盐60～80mg/L、L-蛋氨酸10～20mg/L、L-苯丙氨酸20～30mg/L、L-脯氨酸30～50mg/L、L-丝氨酸20～30mg/L、L-苏氨酸25～35mg/L、L-色氨酸8～12mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物55～60mg/L、L-缬氨酸20～30mg/L、抗坏血酸0.04～0.06mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.008～0.012mg/L、生物素0.008～0.012mg/L、骨化醇0.08～0.12mg/L、D-泛酸钙0.008～0.012mg/L、氯化胆碱0.4～0.6mg/L、叶酸0.008～0.012mg/L、肌醇0.04～0.06mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.015～0.025mg/L、烟酸0.02～0.03mg/L、烟酰胺0.02～0.03mg/L、p-氨基苯甲酸0.04～0.06mg/L、盐酸吡哆辛0.04～0.06mg/L、核黄素0.008～0.012mg/L、盐酸硫胺素0.008～0.012mg/L、维生素A乙酸酯0.1～0.2mg/L、硫酸腺嘌呤8～12mg/L、腺嘌呤0.15～0.25mg/L、腺苷三磷酸二钠0.8～1.2mg/L、胆固醇0.15～0.25mg/L、2-脱氧-D-核糖0.4～0.6mg/L、D-葡萄糖800～1200mg/L、谷胱甘肽0.04～0.06mg/L、盐酸鸟嘌呤0.25～0.35mg/L、次黄嘌呤钠0.3～0.4mg/L、核糖0.4～0.6mg/L、胸腺素0.25～0.35mg/L、吐温804～6mg/L、尿嘧啶0.25～0.35mg/L、黄嘌呤钠0.3～0.4mg/L、酚红8～12mg/L。
根据本发明第四方面的成熟培养液，其中所述BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙200mg/L、九水硝酸铁0.72mg/L、氯化钾400mg/L、硫酸镁97.7mg/L、氯化钠6800mg/L、一水磷酸二氢钠140mg/L、碳酸氢钠2200mg/L、醋酸钠50mg/L、L-丙氨酸25mg/L、L-精氨酸盐酸盐70mg/L、L-天冬氨酸30mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.11mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐26mg/L、L-谷氨酸75mg/L、甘氨酸50mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物21.88mg/L、L-羟脯氨酸10mg/L、L-异亮氨酸20mg/L、L-亮氨酸60mg/L、L-赖氨酸盐酸盐70mg/L、L-蛋氨酸15mg/L、L-苯丙氨酸25mg/L、L-脯氨酸40mg/L、L-丝氨酸25mg/L、L-苏氨酸30mg/L、L-色氨酸10mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物57.66mg/L、L-缬氨酸25mg/L、抗坏血酸0.05mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.01mg/L、生物素0.01mg/L、骨化醇0.1mg/L、D-泛酸钙0.01mg/L、氯化胆碱0.5mg/L、叶酸0.01mg/L、肌醇0.05mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.019mg/L、烟酸0.025mg/L、烟酰胺0.025mg/L、p-氨基苯甲酸0.05mg/L、盐酸吡哆辛0.05mg/L、核黄素0.01mg/L、盐酸硫胺素0.01mg/L、维生素A乙酸酯0.14mg/L、硫酸腺嘌呤10mg/L、腺嘌呤0.2mg/L、腺苷三磷酸二钠1mg/L、胆固醇0.2mg/L、2-脱氧-D-核糖0.5mg/L、D-葡萄糖1000mg/L、谷胱甘肽0.05mg/L、盐酸鸟嘌呤0.3mg/L、次黄嘌呤钠0.354mg/L、核糖0.5mg/L、胸腺素0.3mg/L、吐温805mg/L、尿嘧啶0.3mg/L、黄嘌呤钠0.34mg/L、酚红10mg/L。
根据本发明第四方面的成熟培养液，其中所述BY基础培养液中还包括亚硒酸钠，其浓度为0.2～0.3mg/L，例如0.25mg/L；和/或，所述BY基础培养液中还包括硫酸铜，其浓度以无水物计为0.05～0.1mg/L，例如0.075mg/L。
本发明任一方面或该任一方面的任一实施方案所具有的任一技术特征同样适用其它任一实施方案或其它任一方面的任一实施方案，只要它们不会相互矛盾，当然在相互之间适用时，必要的话可对相应特征作适当修饰。下面对本发明的各个方面和特点作进一步的描述。
本发明所引述的所有文献，它们的全部内容通过引用并入本文，并且如果这些文献所表达的含义与本发明不一致时，以本发明的表述为准。此外，本发明使用的各种术语和短语具有本领域技术人员公知的一般含义，即便如此，本发明仍然希望在此对这些术语和短语作更详尽的说明和解释，提及的术语和短语如有与公知含义不一致的，以本发明所表述的含义为准。
本发明使用的胎牛血清可以容易的从市场购得其标准化商品形式，例如可以从各种代理商处购得Gibco公司的澳洲胎牛血清(货号：10099141)、新西兰胎牛血清(货号：10091148)、北美胎牛血清(货号：16000044)、墨西哥胎牛血清(货号：10437028)等，这些商品化胎牛血清的价格500ml大多在8000元以上，用于本发明牛体外受精胚胎培养液中时胎牛血清是成本主要贡献者。在本发明上下文的试验中，如未特别说明，所用的胎牛血清是Gibco公司的澳洲胎牛血清(货号：10099141)。
具体实施方式
通过下面的实施例可以对本发明进行进一步的描述，然而，本发明的范围并不限于下述实施例。本领域的专业人员能够理解，在不背离本发明的精神和范围的前提下，可以对本发明进行各种变化和修饰。本发明对试验中所使用到的材料以及试验方法进行一般性和/或具体的描述。虽然为实现本发明目的所使用的许多材料和操作方法是本领域公知的，但是本发明仍然在此作尽可能详细描述。若未特别指明，实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段，所用原料均为市售商品。
实施例1：牛体外受精胚胎的培养方法(离体采集)
一、试剂
本发明的具体试验中，如未另外说明，使用的相关试剂详述如下：
加双抗生理盐水：包含青霉素400IU/mL、链霉素400μg/mL的生理盐水。
洗卵液：添加了3mg/mL牛血清白蛋白的BY基础培养液。
成熟培养液：添加了100mL/L FBS、10μg/mL FSH、10μg/mL LH、1μg/mL E2、20ng/mLEGF的BY基础培养液。
HEPES成熟培养液：添加了15mmol/L HEPES、100mL/L FBS、10μg/mL FSH、10μg/mLLH、1μg/mL E2、20ng/mL EGF的BY基础培养液。
其中，EGF——表皮生长因子，FSH——卵泡刺激素，FBS——胎牛血清，E2——雌二醇，LH——促黄体生成素。
受精培养液：包含112.0mM氯化钠、4.02mM氯化钾、2.25mM的氯化钙二水合物、0.52mM六水氯化镁、0.83mM磷酸二氢钾、37.0mM碳酸氢钠、1.25mM丙酮酸钠、10μg/ml肝素、4mg/ml牛血清白蛋白(BSA)、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素的水溶液。
精液制备培养液：包含112.0mM氯化钠、4.02mM氯化钾、2.25mM的氯化钙二水合物、0.52mM六水氯化镁、0.83mM磷酸二氢钾、37.0mM碳酸氢钠、1.25mM丙酮酸钠、10μg/ml肝素、4mg/ml牛血清白蛋白(BSA)、10mM咖啡因、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素的水溶液。
胚胎培养液：包含：109.5mM氯化钠、3.1mM氯化钾、26.2mM碳酸氢钠、0.8mM六水氯化镁、1.19mM磷酸二氢钾、0.4mM丙酮酸钠、1.5mM葡萄糖、5mM半乳糖酸钙、2.5v/v％胎牛血清(FBS)、L-谷氨酰胺1mM、2v/v％必需氨基酸、1v/v％非必须氨基酸、3mM的谷胱甘肽、枸橼酸钠0.04w/v％、麦芽糖0.02w/v％的水溶液；所述必需氨基酸为以下氨基酸按重量比例添加：L-盐酸精氨酸6.32g、L-胱氨酸二盐酸盐1.564g、L-盐酸组氨酸一水物2.1g、L-异亮氨酸2.625g、L-亮氨酸2.62g、L-赖氨酸盐酸盐3.625g、L-蛋氨酸0.755g、L-苯丙氨酸1.65g、L-苏氨酸2.38g、L-色氨酸0.51g、L-酪氨酸1.8g和L-缬氨酸2.34g，所述非必须氨基酸为以下氨基酸按重量比例添加：L-丙氨酸0.89g、L-天门冬酰胺一水物1.5g、L-天冬氨酸1.33g、L-谷氨酸1.47g、甘氨酸0.75g、L-脯氨酸1.15g和L-丝氨酸1.05g。
BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙200mg/L、九水硝酸铁0.72mg/L、氯化钾400mg/L、硫酸镁97.7mg/L、氯化钠6800mg/L、一水磷酸二氢钠140mg/L、碳酸氢钠2200mg/L、醋酸钠50mg/L、L-丙氨酸25mg/L、L-精氨酸盐酸盐70mg/L、L-天冬氨酸30mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.11mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐26mg/L、L-谷氨酸75mg/L、甘氨酸50mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物21.88mg/L、L-羟脯氨酸10mg/L、L-异亮氨酸20mg/L、L-亮氨酸60mg/L、L-赖氨酸盐酸盐70mg/L、L-蛋氨酸15mg/L、L-苯丙氨酸25mg/L、L-脯氨酸40mg/L、L-丝氨酸25mg/L、L-苏氨酸30mg/L、L-色氨酸10mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物57.66mg/L、L-缬氨酸25mg/L、抗坏血酸0.05mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.01mg/L、生物素0.01mg/L、骨化醇0.1mg/L、D-泛酸钙0.01mg/L、氯化胆碱0.5mg/L、叶酸0.01mg/L、肌醇0.05mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.019mg/L、烟酸0.025mg/L、烟酰胺0.025mg/L、p-氨基苯甲酸0.05mg/L、盐酸吡哆辛0.05mg/L、核黄素0.01mg/L、盐酸硫胺素0.01mg/L、维生素A乙酸酯0.14mg/L、硫酸腺嘌呤10mg/L、腺嘌呤0.2mg/L、腺苷三磷酸二钠1mg/L、胆固醇0.2mg/L、2-脱氧-D-核糖0.5mg/L、D-葡萄糖1000mg/L、谷胱甘肽0.05mg/L、盐酸鸟嘌呤0.3mg/L、次黄嘌呤钠0.354mg/L、核糖0.5mg/L、胸腺素0.3mg/L、吐温805mg/L、尿嘧啶0.3mg/L、黄嘌呤钠0.34mg/L、酚红10mg/L。
二、牛体外受精和胚胎培养：
步骤(1)、卵母细胞的采集和体外成熟
取屠宰场卵巢盛放于加双抗生理盐水的保温桶中，31-33℃条件下，3h内运回实验室；抽取表面2-8mm的卵泡，收集沉淀，在体视显微镜下捡出至少含有3层卵丘细胞包裹的卵母细胞COCs(即，卵丘-卵母细胞复合体)，在洗卵液中洗涤2遍，去除多余杂质；
将所得COCs在卵母细胞成熟培养液中洗涤1次，再转移到新的成熟培养液中培养22-24h(实际操作24小时)，培养条件为38.8℃、5.5-6.5％CO2、饱和湿度；
步骤(2)、体外受精
将成熟的COCs在受精培养液中洗涤1次，再转移到受精培养液中，放入培养箱中，备用；
从液氮中取一支冻精细管，37℃水浴解冻；无菌操作剪开细管两端，使精液注入盛有精液制备培养液的15mL离心管中，328×g离心2次，每次5min，离心后弃上清；将300μL精液制备培养液加入上述离心管，重悬精子沉淀，取适当的精子悬液进行精子计数；
将计算好体积的精子悬液加入盛有卵母细胞的受精培养液滴中，并将培养盘放入培养箱，使精卵共孵育16-20h(实际操作18小时)，培养条件为38.8℃、5.5-6.5％CO2、饱和湿度；
步骤(3)、胚胎体外培养及保存
体外受精操作完毕后，将胚胎周围的颗粒细胞用剥卵针去除干净，放入胚胎培养液中培养，此时记为胚胎培养的第1天，培养条件为38.8℃、6％O2、88％N2、饱和湿度，第3天记录卵裂率；第7天记录囊胚率，至第9天时统计囊胚孵化率(其为孵化囊胚数除以囊胚数所得百分数)，并进行质量鉴定；
将可用胚胎在保存液中洗涤3次，在平衡液中平衡10min后转移入冷冻液，按5段装液法装入胚胎，做好标记，再放入程序降温仪中按照0.5℃/min的速度降至-35℃后，将胚胎细管迅速取出，置入液氮中冷冻保存。
三、胚胎差异染色的方法
1.选取体外培养第7天的囊胚，使用2％多聚甲醛固定20min。
2.使用含0.5％BSA的磷酸盐缓冲液(PBS-BSA)洗两次，放入透化液(50μl Triton、5μl吐温80和9.945ml PBS)中，室温放置30min。
3.使用2M盐酸室温处理20min，然后使用100mM的Tris-HCl室温处理10min，使CDX2蛋白能够与一抗结合。
4.使用PBS-BSA清洗三次，将囊胚放入封闭液(1ml山羊血清、5μl吐温80和8.995mlPBS)中，室温封闭1h，然后转入4℃冰箱封闭过夜。
5.弃去封闭液，CDX2一抗用封闭液按1:200稀释，室温孵育2h，弃去一抗稀释液，用PBS-BSA清洗3次，每次5min。
6.caspase-3一抗(购自Cell Signaling Technology公司)用封闭液按1:200稀释，室温孵育2h，弃去一抗稀释液，用PBS-BSA清洗3次，每次5min。
7.在避光条件下用封闭液按1:200稀释CDX2特异性二抗(购自Sigma公司)，室温下避光放置1h。避光条件下弃去二抗稀释液，用PBS清洗3次，每次5min。
8.在避光条件下用封闭液按1:200稀释caspase-3特异性二抗(购自LifeTechnologies公司)，室温下避光放置1h。避光条件下弃去二抗稀释液，用PBS清洗3次，每次5min。
9.加入10μg/mL的Hochest 33342染液染细胞核，室温作用5min，在荧光显微镜下观察并拍照。
10.实验重复三次，每次随机选取10个囊胚，计算凋亡率、ICM细胞数/总细胞数来评估囊胚质量。
数据统计方法：实验数据采用统计软件SAS V8中的ANOVA程序进行分析，Duncan’smultiple-range检验方法判定处理间的差异显著性，当p<0.05时认为差异显著。
在本发明中，卵裂率＝受精卵裂数/受精卵数。在本发明中，囊胚率＝囊胚数/卵裂胚胎数。
四、卵母细胞的体外成熟(IVM)效果——成熟率
在本实施例的步骤(1)中，经体外成熟培养完毕后，在倒置显微镜下观察，将卵母细胞有第一极体释放、保持卵丘细胞间分泌粘稠的基质、细胞层显著膨大，细胞以卵子为中心，大体呈放射状向四周扩散者判定为已成熟，记录成熟的卵母细胞数，计算成熟率。
五、结果
本实施例对中国黄牛(南阳牛，役用品种)进行试验。结果，卵裂率88.7％、桑葚胚率为63.7％、囊胚率为51.2％、凋亡率5.1％；另外，在第9天时囊胚孵化率达72.3％。卵母细胞体外成熟的成熟率达75.6％。
在一个补充试验中，参照本实施例1的方法，分别针对荷斯坦牛(乳牛品种)、西门塔尔牛(肉牛品种)、中国水牛(役用品种)三种牛进行试验，结果：卵裂率均在84～89％范围内、桑葚胚率均在62～65％范围内、囊胚率均在50～53％范围内、凋亡率均在4～7％范围内、第9天囊胚孵化率均在71～75％范围内；荷斯坦牛、西门塔尔牛、中国水牛三种牛的卵母细胞体外成熟的成熟率分别为69.3％、65.6％、57.8％。
实施例2：牛体外受精胚胎的培养方法(活体采集)
一、试剂
本发明的具体试验中，如未另外说明，使用的相关试剂详述如下：
加双抗生理盐水：包含青霉素400IU/mL、链霉素400μg/mL的生理盐水。
洗卵液：添加了3mg/mL牛血清白蛋白的BY基础培养液。
成熟培养液：添加了100mL/L FBS、10μg/mL FSH、10μg/mL LH、1μg/mL E2、20ng/mLEGF的BY基础培养液。
HEPES成熟培养液：添加了15mmol/L HEPES、100mL/L FBS、10μg/mL FSH、10μg/mLLH、1μg/mL E2、20ng/mL EGF的BY基础培养液。
其中，EGF——表皮生长因子，FSH——卵泡刺激素，FBS——胎牛血清，E2——雌二醇，LH——促黄体生成素。
受精培养液：包含112.0mM氯化钠、4.02mM氯化钾、2.25mM的氯化钙二水合物、0.52mM六水氯化镁、0.83mM磷酸二氢钾、37.0mM碳酸氢钠、1.25mM丙酮酸钠、10μg/ml肝素、4mg/ml牛血清白蛋白(BSA)、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素的水溶液。
精液制备培养液：包含112.0mM氯化钠、4.02mM氯化钾、2.25mM的氯化钙二水合物、0.52mM六水氯化镁、0.83mM磷酸二氢钾、37.0mM碳酸氢钠、1.25mM丙酮酸钠、10μg/ml肝素、4mg/ml牛血清白蛋白(BSA)、10mM咖啡因、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素的水溶液。
胚胎培养液：包含：109.5mM氯化钠、3.1mM氯化钾、26.2mM碳酸氢钠、0.8mM六水氯化镁、1.19mM磷酸二氢钾、0.4mM丙酮酸钠、1.5mM葡萄糖、5mM半乳糖酸钙、2.5v/v％胎牛血清(FBS)、L-谷氨酰胺1mM、2v/v％必需氨基酸、1v/v％非必须氨基酸、3mM的谷胱甘肽、枸橼酸钠0.04w/v％、麦芽糖0.02w/v％的水溶液；所述必需氨基酸为以下氨基酸按重量比例添加：L-盐酸精氨酸6.32g、L-胱氨酸二盐酸盐1.564g、L-盐酸组氨酸一水物2.1g、L-异亮氨酸2.625g、L-亮氨酸2.62g、L-赖氨酸盐酸盐3.625g、L-蛋氨酸0.755g、L-苯丙氨酸1.65g、L-苏氨酸2.38g、L-色氨酸0.51g、L-酪氨酸1.8g和L-缬氨酸2.34g，所述非必须氨基酸为以下氨基酸按重量比例添加：L-丙氨酸0.89g、L-天门冬酰胺一水物1.5g、L-天冬氨酸1.33g、L-谷氨酸1.47g、甘氨酸0.75g、L-脯氨酸1.15g和L-丝氨酸1.05g。
BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙200mg/L、九水硝酸铁0.72mg/L、氯化钾400mg/L、硫酸镁97.7mg/L、氯化钠6800mg/L、一水磷酸二氢钠140mg/L、碳酸氢钠2200mg/L、醋酸钠50mg/L、L-丙氨酸25mg/L、L-精氨酸盐酸盐70mg/L、L-天冬氨酸30mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.11mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐26mg/L、L-谷氨酸75mg/L、甘氨酸50mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物21.88mg/L、L-羟脯氨酸10mg/L、L-异亮氨酸20mg/L、L-亮氨酸60mg/L、L-赖氨酸盐酸盐70mg/L、L-蛋氨酸15mg/L、L-苯丙氨酸25mg/L、L-脯氨酸40mg/L、L-丝氨酸25mg/L、L-苏氨酸30mg/L、L-色氨酸10mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物57.66mg/L、L-缬氨酸25mg/L、抗坏血酸0.05mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.01mg/L、生物素0.01mg/L、骨化醇0.1mg/L、D-泛酸钙0.01mg/L、氯化胆碱0.5mg/L、叶酸0.01mg/L、肌醇0.05mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.019mg/L、烟酸0.025mg/L、烟酰胺0.025mg/L、p-氨基苯甲酸0.05mg/L、盐酸吡哆辛0.05mg/L、核黄素0.01mg/L、盐酸硫胺素0.01mg/L、维生素A乙酸酯0.14mg/L、硫酸腺嘌呤10mg/L、腺嘌呤0.2mg/L、腺苷三磷酸二钠1mg/L、胆固醇0.2mg/L、2-脱氧-D-核糖0.5mg/L、D-葡萄糖1000mg/L、谷胱甘肽0.05mg/L、盐酸鸟嘌呤0.3mg/L、次黄嘌呤钠0.354mg/L、核糖0.5mg/L、胸腺素0.3mg/L、吐温805mg/L、尿嘧啶0.3mg/L、黄嘌呤钠0.34mg/L、酚红10mg/L。
二、牛体外受精和胚胎培养：
步骤(1)、卵母细胞的采集和体外成熟
对牛进行活体采卵，将所得卵泡液在体视显微镜下捡出至少含3层卵丘细胞包裹的卵丘-卵母细胞复合体(COCs)，放入包含HEPES的成熟培养液中38.8℃、3h内运回实验室；
将所得COCs在卵母细胞成熟培养液中洗涤1次，再转移到新的成熟培养液中培养22-24h(实际操作24小时)，培养条件为38.8℃、5.5-6.5％CO2、饱和湿度；
步骤(2)、体外受精
将成熟的COCs在受精培养液中洗涤1次，再转移到受精培养液中，放入培养箱中，备用；
从液氮中取一支冻精细管，37℃水浴解冻；无菌操作剪开细管两端，使精液注入盛有精液制备培养液的15mL离心管中，328×g离心2次，每次5min，离心后弃上清；将300μL精液制备培养液加入上述离心管，重悬精子沉淀，取适当的精子悬液进行精子计数；
将计算好体积的精子悬液加入盛有卵母细胞的受精培养液滴中，并将培养盘放入培养箱，使精卵共孵育16-20h(实际操作18小时)，培养条件为38.8℃、5.5-6.5％CO2、饱和湿度；
步骤(3)、胚胎体外培养及保存
体外受精操作完毕后，将胚胎周围的颗粒细胞用剥卵针去除干净，放入胚胎培养液中培养，此时记为胚胎培养的第1天，培养条件为38.8℃、6％O2、88％N2、饱和湿度，第3天记录卵裂率；第7天记录囊胚率，至第9天时统计囊胚孵化率(其为孵化囊胚数除以囊胚数所得百分数)，并进行质量鉴定；
将可用胚胎在保存液中洗涤3次，在平衡液中平衡10min后转移入冷冻液，按5段装液法装入胚胎，做好标记，再放入程序降温仪中按照0.5℃/min的速度降至-35℃后，将胚胎细管迅速取出，置入液氮中冷冻保存。
三、胚胎差异染色的方法
1.选取体外培养第7天的囊胚，使用2％多聚甲醛固定20min。
2.使用含0.5％BSA的磷酸盐缓冲液(PBS-BSA)洗两次，放入透化液(50μl Triton、5μl吐温80和9.945ml PBS)中，室温放置30min。
3.使用2M盐酸室温处理20min，然后使用100mM的Tris-HCl室温处理10min，使CDX2蛋白能够与一抗结合。
4.使用PBS-BSA清洗三次，将囊胚放入封闭液(1ml山羊血清、5μl吐温80和8.995mlPBS)中，室温封闭1h，然后转入4℃冰箱封闭过夜。
5.弃去封闭液，CDX2一抗用封闭液按1:200稀释，室温孵育2h，弃去一抗稀释液，用PBS-BSA清洗3次，每次5min。
6.caspase-3一抗(购自Cell Signaling Technology公司)用封闭液按1:200稀释，室温孵育2h，弃去一抗稀释液，用PBS-BSA清洗3次，每次5min。
7.在避光条件下用封闭液按1:200稀释CDX2特异性二抗(购自Sigma公司)，室温下避光放置1h。避光条件下弃去二抗稀释液，用PBS清洗3次，每次5min。
8.在避光条件下用封闭液按1:200稀释caspase-3特异性二抗(购自LifeTechnologies公司)，室温下避光放置1h。避光条件下弃去二抗稀释液，用PBS清洗3次，每次5min。
9.加入10μg/mL的Hochest 33342染液染细胞核，室温作用5min，在荧光显微镜下观察并拍照。
10.实验重复三次，每次随机选取10个囊胚，计算凋亡率、ICM细胞数/总细胞数来评估囊胚质量。
数据统计方法：实验数据采用统计软件SAS V8中的ANOVA程序进行分析，Duncan’smultiple-range检验方法判定处理间的差异显著性，当p<0.05时认为差异显著。
在本发明中，卵裂率＝受精卵裂数/受精卵数。在本发明中，囊胚率＝囊胚数/卵裂胚胎数。
四、卵母细胞的体外成熟(IVM)效果——成熟率
在本实施例的步骤(1)中，经体外成熟培养完毕后，在倒置显微镜下观察，将卵母细胞有第一极体释放、保持卵丘细胞间分泌粘稠的基质、细胞层显著膨大，细胞以卵子为中心，大体呈放射状向四周扩散者判定为已成熟，记录成熟的卵母细胞数，计算成熟率。
五、结果
本实施例对中国黄牛(南阳牛，役用品种)进行试验。结果，卵裂率87.4％、桑葚胚率为64.2％、囊胚率为51.8％、凋亡率4.8％；另外，在第9天时囊胚孵化率达71.1％。卵母细胞体外成熟的成熟率达76.3％。
在一个补充试验中，参照上文实施例2的方法，分别针对荷斯坦牛(乳牛品种)、西门塔尔牛(肉牛品种)、中国水牛(役用品种)三种牛进行试验，结果：卵裂率均在83～89％范围内、桑葚胚率均在61～65％范围内、囊胚率均在50～54％范围内、凋亡率均在4～6％范围内、第9天囊胚孵化率均在72～75％范围内；荷斯坦牛、西门塔尔牛、中国水牛三种牛的卵母细胞体外成熟的成熟率分别为68.8％、66.3％、58.3％。
实施例3：牛体外受精胚胎的培养方法(离体采集)
本实施例与上文实施例1的主要区别是在BY基础培养液中还额外添加0.25mg/L亚硒酸钠和0.075mg/L无水硫酸铜。
一、试剂
本发明的具体试验中，如未另外说明，使用的相关试剂详述如下：
加双抗生理盐水：包含青霉素400IU/mL、链霉素400μg/mL的生理盐水。
洗卵液：添加了3mg/mL牛血清白蛋白的BY基础培养液。
成熟培养液：添加了100mL/L FBS、10μg/mL FSH、10μg/mL LH、1μg/mL E2、20ng/mLEGF的BY基础培养液。
HEPES成熟培养液：添加了15mmol/L HEPES、100mL/L FBS、10μg/mL FSH、10μg/mLLH、1μg/mL E2、20ng/mL EGF的BY基础培养液。
其中，EGF——表皮生长因子，FSH——卵泡刺激素，FBS——胎牛血清，E2——雌二醇，LH——促黄体生成素。
受精培养液：包含112.0mM氯化钠、4.02mM氯化钾、2.25mM的氯化钙二水合物、0.52mM六水氯化镁、0.83mM磷酸二氢钾、37.0mM碳酸氢钠、1.25mM丙酮酸钠、10μg/ml肝素、4mg/ml牛血清白蛋白(BSA)、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素的水溶液。
精液制备培养液：包含112.0mM氯化钠、4.02mM氯化钾、2.25mM的氯化钙二水合物、0.52mM六水氯化镁、0.83mM磷酸二氢钾、37.0mM碳酸氢钠、1.25mM丙酮酸钠、10μg/ml肝素、4mg/ml牛血清白蛋白(BSA)、10mM咖啡因、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素的水溶液。
胚胎培养液：包含：109.5mM氯化钠、3.1mM氯化钾、26.2mM碳酸氢钠、0.8mM六水氯化镁、1.19mM磷酸二氢钾、0.4mM丙酮酸钠、1.5mM葡萄糖、5mM半乳糖酸钙、10v/v％胎牛血清(FBS)、L-谷氨酰胺1mM、2v/v％必需氨基酸、1v/v％非必须氨基酸、3mM的谷胱甘肽、枸橼酸钠0.04w/v％、麦芽糖0.02w/v％的水溶液；所述必需氨基酸为以下氨基酸按重量比例添加：L-盐酸精氨酸6.32g、L-胱氨酸二盐酸盐1.564g、L-盐酸组氨酸一水物2.1g、L-异亮氨酸2.625g、L-亮氨酸2.62g、L-赖氨酸盐酸盐3.625g、L-蛋氨酸0.755g、L-苯丙氨酸1.65g、L-苏氨酸2.38g、L-色氨酸0.51g、L-酪氨酸1.8g和L-缬氨酸2.34g，所述非必须氨基酸为以下氨基酸按重量比例添加：L-丙氨酸0.89g、L-天门冬酰胺一水物1.5g、L-天冬氨酸1.33g、L-谷氨酸1.47g、甘氨酸0.75g、L-脯氨酸1.15g和L-丝氨酸1.05g。
BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙200mg/L、九水硝酸铁0.72mg/L、氯化钾400mg/L、硫酸镁97.7mg/L、氯化钠6800mg/L、一水磷酸二氢钠140mg/L、碳酸氢钠2200mg/L、醋酸钠50mg/L、L-丙氨酸25mg/L、L-精氨酸盐酸盐70mg/L、L-天冬氨酸30mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.11mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐26mg/L、L-谷氨酸75mg/L、甘氨酸50mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物21.88mg/L、L-羟脯氨酸10mg/L、L-异亮氨酸20mg/L、L-亮氨酸60mg/L、L-赖氨酸盐酸盐70mg/L、L-蛋氨酸15mg/L、L-苯丙氨酸25mg/L、L-脯氨酸40mg/L、L-丝氨酸25mg/L、L-苏氨酸30mg/L、L-色氨酸10mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物57.66mg/L、L-缬氨酸25mg/L、抗坏血酸0.05mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.01mg/L、生物素0.01mg/L、骨化醇0.1mg/L、D-泛酸钙0.01mg/L、氯化胆碱0.5mg/L、叶酸0.01mg/L、肌醇0.05mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.019mg/L、烟酸0.025mg/L、烟酰胺0.025mg/L、p-氨基苯甲酸0.05mg/L、盐酸吡哆辛0.05mg/L、核黄素0.01mg/L、盐酸硫胺素0.01mg/L、维生素A乙酸酯0.14mg/L、硫酸腺嘌呤10mg/L、腺嘌呤0.2mg/L、腺苷三磷酸二钠1mg/L、胆固醇0.2mg/L、2-脱氧-D-核糖0.5mg/L、D-葡萄糖1000mg/L、谷胱甘肽0.05mg/L、盐酸鸟嘌呤0.3mg/L、次黄嘌呤钠0.354mg/L、核糖0.5mg/L、胸腺素0.3mg/L、吐温805mg/L、尿嘧啶0.3mg/L、黄嘌呤钠0.34mg/L、酚红10mg/L、0.25mg/L亚硒酸钠和0.075mg/L无水硫酸铜。
二、牛体外受精和胚胎培养：
步骤(1)、卵母细胞的采集和体外成熟
取屠宰场卵巢盛放于加双抗生理盐水的保温桶中，31-33℃条件下，3h内运回实验室；抽取表面2-8mm的卵泡，收集沉淀，在体视显微镜下捡出至少含有3层卵丘细胞包裹的卵母细胞COCs(即，卵丘-卵母细胞复合体)，在洗卵液中洗涤2遍，去除多余杂质；
将所得COCs在卵母细胞成熟培养液中洗涤1次，再转移到新的成熟培养液中培养22-24h(实际操作24小时)，培养条件为38.8℃、5.5-6.5％CO2、饱和湿度；
步骤(2)、体外受精
将成熟的COCs在受精培养液中洗涤1次，再转移到受精培养液中，放入培养箱中，备用；
从液氮中取一支冻精细管，37℃水浴解冻；无菌操作剪开细管两端，使精液注入盛有精液制备培养液的15mL离心管中，328×g离心2次，每次5min，离心后弃上清；将300μL精液制备培养液加入上述离心管，重悬精子沉淀，取适当的精子悬液进行精子计数；
将计算好体积的精子悬液加入盛有卵母细胞的受精培养液滴中，并将培养盘放入培养箱，使精卵共孵育16-20h(实际操作18小时)，培养条件为38.8℃、5.5-6.5％CO2、饱和湿度；
步骤(3)、胚胎体外培养及保存
体外受精操作完毕后，将胚胎周围的颗粒细胞用剥卵针去除干净，放入胚胎培养液中培养，此时记为胚胎培养的第1天，培养条件为38.8℃、6％O2、88％N2、饱和湿度，第3天记录卵裂率；第7天记录囊胚率，至第9天时统计囊胚孵化率(其为孵化囊胚数除以囊胚数所得百分数)，并进行质量鉴定；
将可用胚胎在保存液中洗涤3次，在平衡液中平衡10min后转移入冷冻液，按5段装液法装入胚胎，做好标记，再放入程序降温仪中按照0.5℃/min的速度降至-35℃后，将胚胎细管迅速取出，置入液氮中冷冻保存。
三、胚胎差异染色的方法
1.选取体外培养第7天的囊胚，使用2％多聚甲醛固定20min。
2.使用含0.5％BSA的磷酸盐缓冲液(PBS-BSA)洗两次，放入透化液(50μl Triton、5μl吐温80和9.945ml PBS)中，室温放置30min。
3.使用2M盐酸室温处理20min，然后使用100mM的Tris-HCl室温处理10min，使CDX2蛋白能够与一抗结合。
4.使用PBS-BSA清洗三次，将囊胚放入封闭液(1ml山羊血清、5μl吐温80和8.995mlPBS)中，室温封闭1h，然后转入4℃冰箱封闭过夜。
5.弃去封闭液，CDX2一抗用封闭液按1:200稀释，室温孵育2h，弃去一抗稀释液，用PBS-BSA清洗3次，每次5min。
6.caspase-3一抗(购自Cell Signaling Technology公司)用封闭液按1:200稀释，室温孵育2h，弃去一抗稀释液，用PBS-BSA清洗3次，每次5min。
7.在避光条件下用封闭液按1:200稀释CDX2特异性二抗(购自Sigma公司)，室温下避光放置1h。避光条件下弃去二抗稀释液，用PBS清洗3次，每次5min。
8.在避光条件下用封闭液按1:200稀释caspase-3特异性二抗(购自LifeTechnologies公司)，室温下避光放置1h。避光条件下弃去二抗稀释液，用PBS清洗3次，每次5min。
9.加入10μg/mL的Hochest 33342染液染细胞核，室温作用5min，在荧光显微镜下观察并拍照。
10.实验重复三次，每次随机选取10个囊胚，计算凋亡率、ICM细胞数/总细胞数来评估囊胚质量。
数据统计方法：实验数据采用统计软件SAS V8中的ANOVA程序进行分析，Duncan’smultiple-range检验方法判定处理间的差异显著性，当p<0.05时认为差异显著。
在本发明中，卵裂率＝受精卵裂数/受精卵数。在本发明中，囊胚率＝囊胚数/卵裂胚胎数。
四、卵母细胞的体外成熟(IVM)效果——成熟率
在本实施例的步骤(1)中，经体外成熟培养完毕后，在倒置显微镜下观察，将卵母细胞有第一极体释放、保持卵丘细胞间分泌粘稠的基质、细胞层显著膨大，细胞以卵子为中心，大体呈放射状向四周扩散者判定为已成熟，记录成熟的卵母细胞数，计算成熟率。
五、结果
本实施例对中国黄牛(南阳牛，役用品种)进行试验。结果，卵裂率88.2％、桑葚胚率为64.2％、囊胚率为50.8％、凋亡率5.6％；另外，在第9天时囊胚孵化率达73.4％。卵母细胞体外成熟的成熟率达88.3％，相对于实施例1方法的成熟率增加约13个百分点。
在一个补充试验中，参照上文实施例3的方法，分别针对荷斯坦牛(乳牛品种)、西门塔尔牛(肉牛品种)、中国水牛(役用品种)三种牛进行试验，结果：卵裂率均在84～90％范围内、桑葚胚率均在61～65％范围内、囊胚率均在50～54％范围内、凋亡率均在3～6％范围内、第9天囊胚孵化率均在71～76％范围内；荷斯坦牛、西门塔尔牛、中国水牛三种牛的卵母细胞体外成熟的成熟率分别为84.5％、79.5％、73.2％，相对于实施例1方法的成熟率均分别增加约14～15个百分点。上述结果，尽管本发明实施例1方法能够获得完全令人满意的结果，然而，出人意料的发现是，当在本发明BY基础培养液中添加微量硒化物和硫酸铜时能够显著增加卵母细胞体外成熟的成熟率，这是非常有意义的，特别是没有任何现有技术教导上述硒化物和硫酸铜的添加能够显著增加卵母细胞体外成熟的成熟率的技术教导。
在一个补充试验中，参考本实施例3，在BY基础培养基中不添加亚硒酸钠(而仅增补相应量的硫酸铜)或者不添加硫酸铜(而仅增补相应量的亚硒酸钠)时，在四种牛种中，卵裂率、桑葚胚率、囊胚率、凋亡率四参数在两种情况下与实施例3结果基本一致，对四种牛种的卵裂率均在84～89％范围内、桑葚胚率均在63～65％范围内、囊胚率均在52～55％范围内、凋亡率均在3～6％范围内、第9天囊胚孵化率均在70～75％范围内，例如针对中国黄牛的卵裂率分别为87.7％和88.5％；但是卵母细胞体外成熟的成熟率相对于实施例1结果未见有增加，两种情况下对中国黄牛、荷斯坦牛、西门塔尔牛、中国水牛的卵母细胞体外成熟的成熟率分别为73～75％、67～70％、65～66％、55～57％。这表明BY基础培养基中硒化物和硫酸铜的添加与否不会影响卵裂率、桑葚胚率、囊胚率、凋亡率四参数，但是只有同时添加硒化物和硫酸铜时才能有效的提高卵母细胞体外成熟的成熟率。
实施例4：牛体外受精胚胎的培养方法(活体采集)
本实施例与上文实施例2的主要区别是在BY基础培养液中还额外添加0.25mg/L亚硒酸钠和0.075mg/L无水硫酸铜。
一、试剂
本发明的具体试验中，如未另外说明，使用的相关试剂详述如下：
加双抗生理盐水：包含青霉素400IU/mL、链霉素400μg/mL的生理盐水。
洗卵液：添加了3mg/mL牛血清白蛋白的BY基础培养液。
成熟培养液：添加了100mL/L FBS、10μg/mL FSH、10μg/mL LH、1μg/mL E2、20ng/mLEGF的BY基础培养液。
HEPES成熟培养液：添加了15mmol/L HEPES、100mL/L FBS、10μg/mL FSH、10μg/mLLH、1μg/mL E2、20ng/mL EGF的BY基础培养液。
其中，EGF——表皮生长因子，FSH——卵泡刺激素，FBS——胎牛血清，E2——雌二醇，LH——促黄体生成素。
受精培养液：包含112.0mM氯化钠、4.02mM氯化钾、2.25mM的氯化钙二水合物、0.52mM六水氯化镁、0.83mM磷酸二氢钾、37.0mM碳酸氢钠、1.25mM丙酮酸钠、10μg/ml肝素、4mg/ml牛血清白蛋白(BSA)、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素的水溶液。
精液制备培养液：包含112.0mM氯化钠、4.02mM氯化钾、2.25mM的氯化钙二水合物、0.52mM六水氯化镁、0.83mM磷酸二氢钾、37.0mM碳酸氢钠、1.25mM丙酮酸钠、10μg/ml肝素、4mg/ml牛血清白蛋白(BSA)、10mM咖啡因、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素的水溶液。
胚胎培养液：包含：109.5mM氯化钠、3.1mM氯化钾、26.2mM碳酸氢钠、0.8mM六水氯化镁、1.19mM磷酸二氢钾、0.4mM丙酮酸钠、1.5mM葡萄糖、5mM半乳糖酸钙、10v/v％胎牛血清(FBS)、L-谷氨酰胺1mM、2v/v％必需氨基酸、1v/v％非必须氨基酸、3mM的谷胱甘肽、枸橼酸钠0.04w/v％、麦芽糖0.02w/v％的水溶液；所述必需氨基酸为以下氨基酸按重量比例添加：L-盐酸精氨酸6.32g、L-胱氨酸二盐酸盐1.564g、L-盐酸组氨酸一水物2.1g、L-异亮氨酸2.625g、L-亮氨酸2.62g、L-赖氨酸盐酸盐3.625g、L-蛋氨酸0.755g、L-苯丙氨酸1.65g、L-苏氨酸2.38g、L-色氨酸0.51g、L-酪氨酸1.8g和L-缬氨酸2.34g，所述非必须氨基酸为以下氨基酸按重量比例添加：L-丙氨酸0.89g、L-天门冬酰胺一水物1.5g、L-天冬氨酸1.33g、L-谷氨酸1.47g、甘氨酸0.75g、L-脯氨酸1.15g和L-丝氨酸1.05g。
BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙200mg/L、九水硝酸铁0.72mg/L、氯化钾400mg/L、硫酸镁97.7mg/L、氯化钠6800mg/L、一水磷酸二氢钠140mg/L、碳酸氢钠2200mg/L、醋酸钠50mg/L、L-丙氨酸25mg/L、L-精氨酸盐酸盐70mg/L、L-天冬氨酸30mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.11mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐26mg/L、L-谷氨酸75mg/L、甘氨酸50mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物21.88mg/L、L-羟脯氨酸10mg/L、L-异亮氨酸20mg/L、L-亮氨酸60mg/L、L-赖氨酸盐酸盐70mg/L、L-蛋氨酸15mg/L、L-苯丙氨酸25mg/L、L-脯氨酸40mg/L、L-丝氨酸25mg/L、L-苏氨酸30mg/L、L-色氨酸10mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物57.66mg/L、L-缬氨酸25mg/L、抗坏血酸0.05mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.01mg/L、生物素0.01mg/L、骨化醇0.1mg/L、D-泛酸钙0.01mg/L、氯化胆碱0.5mg/L、叶酸0.01mg/L、肌醇0.05mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.019mg/L、烟酸0.025mg/L、烟酰胺0.025mg/L、p-氨基苯甲酸0.05mg/L、盐酸吡哆辛0.05mg/L、核黄素0.01mg/L、盐酸硫胺素0.01mg/L、维生素A乙酸酯0.14mg/L、硫酸腺嘌呤10mg/L、腺嘌呤0.2mg/L、腺苷三磷酸二钠1mg/L、胆固醇0.2mg/L、2-脱氧-D-核糖0.5mg/L、D-葡萄糖1000mg/L、谷胱甘肽0.05mg/L、盐酸鸟嘌呤0.3mg/L、次黄嘌呤钠0.354mg/L、核糖0.5mg/L、胸腺素0.3mg/L、吐温805mg/L、尿嘧啶0.3mg/L、黄嘌呤钠0.34mg/L、酚红10mg/L、0.25mg/L亚硒酸钠和0.075mg/L无水硫酸铜。
二、牛体外受精和胚胎培养：
步骤(1)、卵母细胞的采集和体外成熟
对牛进行活体采卵，将所得卵泡液在体视显微镜下捡出至少含3层卵丘细胞包裹的卵丘-卵母细胞复合体(COCs)，放入包含HEPES的成熟培养液中38.8℃、3h内运回实验室；
将所得COCs在卵母细胞成熟培养液中洗涤1次，再转移到新的成熟培养液中培养22-24h(实际操作24小时)，培养条件为38.8℃、5.5-6.5％CO2、饱和湿度；
步骤(2)、体外受精
将成熟的COCs在受精培养液中洗涤1次，再转移到受精培养液中，放入培养箱中，备用；
从液氮中取一支冻精细管，37℃水浴解冻；无菌操作剪开细管两端，使精液注入盛有精液制备培养液的15mL离心管中，328×g离心2次，每次5min，离心后弃上清；将300μL精液制备培养液加入上述离心管，重悬精子沉淀，取适当的精子悬液进行精子计数；
将计算好体积的精子悬液加入盛有卵母细胞的受精培养液滴中，并将培养盘放入培养箱，使精卵共孵育16-20h(实际操作18小时)，培养条件为38.8℃、5.5-6.5％CO2、饱和湿度；
步骤(3)、胚胎体外培养及保存
体外受精操作完毕后，将胚胎周围的颗粒细胞用剥卵针去除干净，放入胚胎培养液中培养，此时记为胚胎培养的第1天，培养条件为38.8℃、6％O2、88％N2、饱和湿度，第3天记录卵裂率；第7天记录囊胚率，至第9天时统计囊胚孵化率(其为孵化囊胚数除以囊胚数所得百分数)，并进行质量鉴定；
将可用胚胎在保存液中洗涤3次，在平衡液中平衡10min后转移入冷冻液，按5段装液法装入胚胎，做好标记，再放入程序降温仪中按照0.5℃/min的速度降至-35℃后，将胚胎细管迅速取出，置入液氮中冷冻保存。
三、胚胎差异染色的方法
1.选取体外培养第7天的囊胚，使用2％多聚甲醛固定20min。
2.使用含0.5％BSA的磷酸盐缓冲液(PBS-BSA)洗两次，放入透化液(50μl Triton、5μl吐温80和9.945ml PBS)中，室温放置30min。
3.使用2M盐酸室温处理20min，然后使用100mM的Tris-HCl室温处理10min，使CDX2蛋白能够与一抗结合。
4.使用PBS-BSA清洗三次，将囊胚放入封闭液(1ml山羊血清、5μl吐温80和8.995mlPBS)中，室温封闭1h，然后转入4℃冰箱封闭过夜。
5.弃去封闭液，CDX2一抗用封闭液按1:200稀释，室温孵育2h，弃去一抗稀释液，用PBS-BSA清洗3次，每次5min。
6.caspase-3一抗(购自Cell Signaling Technology公司)用封闭液按1:200稀释，室温孵育2h，弃去一抗稀释液，用PBS-BSA清洗3次，每次5min。
7.在避光条件下用封闭液按1:200稀释CDX2特异性二抗(购自Sigma公司)，室温下避光放置1h。避光条件下弃去二抗稀释液，用PBS清洗3次，每次5min。
8.在避光条件下用封闭液按1:200稀释caspase-3特异性二抗(购自LifeTechnologies公司)，室温下避光放置1h。避光条件下弃去二抗稀释液，用PBS清洗3次，每次5min。
9.加入10μg/mL的Hochest 33342染液染细胞核，室温作用5min，在荧光显微镜下观察并拍照。
10.实验重复三次，每次随机选取10个囊胚，计算凋亡率、ICM细胞数/总细胞数来评估囊胚质量。
数据统计方法：实验数据采用统计软件SAS V8中的ANOVA程序进行分析，Duncan’smultiple-range检验方法判定处理间的差异显著性，当p<0.05时认为差异显著。
在本发明中，卵裂率＝受精卵裂数/受精卵数。在本发明中，囊胚率＝囊胚数/卵裂胚胎数。
四、卵母细胞的体外成熟(IVM)效果——成熟率
在本实施例的步骤(1)中，经体外成熟培养完毕后，在倒置显微镜下观察，将卵母细胞有第一极体释放、保持卵丘细胞间分泌粘稠的基质、细胞层显著膨大，细胞以卵子为中心，大体呈放射状向四周扩散者判定为已成熟，记录成熟的卵母细胞数，计算成熟率。
五、结果
本实施例对中国黄牛(南阳牛，役用品种)进行试验。结果，卵裂率88.4％、桑葚胚率为64.7％、囊胚率为50.3％、凋亡率5.1％；另外，在第9天时囊胚孵化率达74.4％。卵母细胞体外成熟的成熟率达89.6％，相对于实施例2方法的成熟率增加约13个百分点。
在一个补充试验中，参照上文实施例4的方法，分别针对荷斯坦牛(乳牛品种)、西门塔尔牛(肉牛品种)、中国水牛(役用品种)三种牛进行试验，结果：卵裂率均在85～90％范围内、桑葚胚率均在62～65％范围内、囊胚率均在51～54％范围内、凋亡率均在4～6％范围内、第9天囊胚孵化率均在71～75％范围内；荷斯坦牛、西门塔尔牛、中国水牛三种牛的卵母细胞体外成熟的成熟率分别为85.2％、79.1％、74.32％，相对于实施例2方法的成熟率均分别增加约14～15个百分点。上述结果，尽管本发明实施例2方法能够获得完全令人满意的结果，然而，出人意料的发现是，当在本发明BY基础培养液中添加微量硒化物和硫酸铜时能够显著增加卵母细胞体外成熟的成熟率，这是非常有意义的，特别是没有任何现有技术教导上述硒化物和硫酸铜的添加能够显著增加卵母细胞体外成熟的成熟率的技术教导。
在一个补充试验中，参考本实施例4，在BY基础培养基中不添加亚硒酸钠(而仅增补相应量的硫酸铜)或者不添加硫酸铜(而仅增补相应量的亚硒酸钠)时，在四种牛种中，卵裂率、桑葚胚率、囊胚率、凋亡率四参数在两种情况下与实施例4结果基本一致，对四种牛种的卵裂率均在84～89％范围内、桑葚胚率均在63～66％范围内、囊胚率均在53～55％范围内、凋亡率均在3～5％范围内、第9天囊胚孵化率均在70～74％范围内，例如针对中国黄牛的卵裂率分别为88.4％和88.1％；但是卵母细胞体外成熟的成熟率相对于实施例2结果未见有增加，两种情况下对中国黄牛、荷斯坦牛、西门塔尔牛、中国水牛的卵母细胞体外成熟的成熟率分别为72～74％、67～71％、65～67％、55～58％。这表明BY基础培养基中硒化物和硫酸铜的添加与否不会影响卵裂率、桑葚胚率、囊胚率、凋亡率四参数，但是只有同时添加硒化物和硫酸铜时才能有效的提高卵母细胞体外成熟的成熟率。
虽然，上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述，但在本发明基础上，可以对之作一些修改或改进，这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此，在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进，均属于本发明要求保护的范围。

Claims (12)

1.一种牛体外受精胚胎培养的方法，其包括如下步骤：
(1)卵母细胞的采集和体外成熟
离体采集：取屠宰场卵巢盛放于加双抗生理盐水的保温桶中，31-33℃条件下，3h内运回实验室；抽取表面2-8mm的卵泡，收集沉淀，在体视显微镜下捡出至少含有3层卵丘细胞包裹的卵母细胞COCs即卵丘-卵母细胞复合体，在洗卵液中洗涤2遍，去除多余杂质；
活体采集：对牛进行活体采卵，将所得卵泡液在体视显微镜下捡出至少含3层卵丘细胞包裹的卵丘-卵母细胞复合体即COCs，放入包含HEPES的成熟培养液中38.8℃、3h内运回实验室；
将以上离体采集或者活体采集所得COCs在卵母细胞成熟培养液中洗涤1次，再转移到新的成熟培养液中培养22-24h，培养条件为38.8℃、5.5-6.5% CO2、饱和湿度；
(2)体外受精
将成熟的COCs在受精培养液中洗涤1次，再转移到受精培养液中，放入培养箱中，备用；
从液氮中取一支冻精细管，37℃水浴解冻；无菌操作剪开细管两端，使精液注入盛有精液制备培养液的15mL离心管中，328×g离心2次，每次5min，离心后弃上清；将300µL精液制备培养液加入上述离心管，重悬精子沉淀，取适当的精子悬液进行精子计数；
将计算好体积的精子悬液加入盛有卵母细胞的受精培养液滴中，并将培养盘放入培养箱，使精卵共孵育16-20h，培养条件为38.8℃、5.5-6.5% CO2、饱和湿度；
(3)胚胎体外培养及保存
体外受精操作完毕后，将胚胎周围的颗粒细胞用剥卵针去除干净，放入胚胎培养液中培养，此时记为胚胎培养的第1天，培养条件为38.8℃、6% O2、88% N2、饱和湿度，第3天记录卵裂率；第7天记录囊胚率，至第9天时统计囊胚孵化率，并进行质量鉴定；
将可用胚胎在保存液中洗涤3次，在平衡液中平衡10min后转移入冷冻液，按5段装液法装入胚胎，做好标记，再放入程序降温仪中按照0.5℃/min的速度降至-35℃后，将胚胎细管迅速取出，置入液氮中冷冻保存，
其中：
步骤(1)中，所述洗卵液是添加了3mg/mL牛血清白蛋白的BY基础培养液；
步骤(1)中，所述成熟培养液是添加了100mL/L FBS、10μg/mL FSH、10μg/mL LH、1μg/mLE2、20ng/mL EGF的BY基础培养液；
所述BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙180~220mg/L、九水硝酸铁0.70~0.75mg/L、氯化钾380~420mg/L、硫酸镁90~100mg/L、氯化钠6500~7000mg/L、一水磷酸二氢钠130~150mg/L、碳酸氢钠2000~2500mg/L、醋酸钠40~60mg/L、L-丙氨酸20~30mg/L、L-精氨酸盐酸盐60~80mg/L、L-天冬氨酸25~35mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.10~0.12mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐20~30mg/L、L-谷氨酸70~80mg/L、甘氨酸40~60mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物20~25mg/L、L-羟脯氨酸8~12mg/L、L-异亮氨酸15~25mg/L、L-亮氨酸50~70mg/L、L-赖氨酸盐酸盐60~80mg/L、L-蛋氨酸10~20mg/L、L-苯丙氨酸20~30mg/L、L-脯氨酸30~50mg/L、L-丝氨酸20~30mg/L、L-苏氨酸25~35mg/L、L-色氨酸8~12mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物55~60mg/L、L-缬氨酸20~30mg/L、抗坏血酸0.04~0.06mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.008~0.012mg/L、生物素0.008~0.012mg/L、骨化醇0.08~0.12mg/L、D-泛酸钙0.008~0.012mg/L、氯化胆碱0.4~0.6mg/L、叶酸0.008~0.012mg/L、肌醇0.04~0.06mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.015~0.025mg/L、烟酸0.02~0.03mg/L、烟酰胺0.02~0.03mg/L、p-氨基苯甲酸0.04~0.06mg/L、盐酸吡哆辛0.04~0.06mg/L、核黄素0.008~0.012mg/L、盐酸硫胺素0.008~0.012mg/L、维生素A乙酸酯0.1~0.2mg/L、硫酸腺嘌呤8~12mg/L、腺嘌呤0.15~0.25mg/L、腺苷三磷酸二钠0.8~1.2mg/L、胆固醇0.15~0.25mg/L、2-脱氧-D-核糖0.4~0.6mg/L、D-葡萄糖800~1200mg/L、谷胱甘肽0.04~0.06mg/L、盐酸鸟嘌呤0.25~0.35mg/L、次黄嘌呤钠0.3~0.4mg/L、核糖0.4~0.6mg/L、胸腺素0.25~0.35mg/L、4~6mg/L吐温80、尿嘧啶0.25~0.35mg/L、黄嘌呤钠0.3~0.4mg/L、酚红8~12mg/L。
2.根据权利要求1的方法，其中步骤(1)中，所述加双抗生理盐水是包含青霉素400IU/mL、链霉素400μg/mL的生理盐水。
3.根据权利要求1的方法，其中HEPES即4-羟乙基哌嗪乙磺酸在所述成熟培养液中的浓度为10~20mmol/L。
4.根据权利要求1的方法，其中HEPES即4-羟乙基哌嗪乙磺酸在所述成熟培养液中的浓度为15mmol/L。
5.根据权利要求1的方法，其中步骤(2)中，所述受精培养液是包含112.0mM氯化钠、4.02mM氯化钾、2.25mM氯化钙二水合物、0.52mM六水氯化镁、0.83mM磷酸二氢钾、37.0mM碳酸氢钠、1.25mM丙酮酸钠、10μg/ml肝素、4mg/ml牛血清白蛋白、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素的水溶液。
6.根据权利要求1的方法，其中步骤(2)中，所述精液制备培养液是包含112.0mM氯化钠、4.02mM氯化钾、2.25mM氯化钙二水合物、0.52mM六水氯化镁、0.83mM磷酸二氢钾、37.0mM碳酸氢钠、1.25mM丙酮酸钠、10μg/ml肝素、4mg/ml牛血清白蛋白、10mM咖啡因、100U/ml青霉素、100μg/ml链霉素的水溶液。
7.根据权利要求1的方法，其中步骤(3)中，所述胚胎培养液包含：109.5mM氯化钠、3.1mM氯化钾、26.2mM碳酸氢钠、0.8mM六水氯化镁、1.19mM磷酸二氢钾、0.4mM丙酮酸钠、1.5mM葡萄糖、5mM半乳糖酸钙、2.5v/v%胎牛血清、L-谷氨酰胺1mM、2v/v%必需氨基酸、1v/v%非必须氨基酸、3mM的谷胱甘肽、枸橼酸钠0.04w/v%、麦芽糖0.02w/v%的水溶液；所述必需氨基酸为以下氨基酸按重量比例添加：L-盐酸精氨酸6.32g、L-胱氨酸二盐酸盐1.564g、L-盐酸组氨酸一水物2.1g、L-异亮氨酸2.625g、L-亮氨酸2.62g、L-赖氨酸盐酸盐3.625g、L-蛋氨酸0.755g、L-苯丙氨酸1.65g、L-苏氨酸2.38g、L-色氨酸0.51g、L-酪氨酸1.8g和L-缬氨酸2.34g，所述非必须氨基酸为以下氨基酸按重量比例添加：L-丙氨酸0.89g、L-天门冬酰胺一水物1.5g、L-天冬氨酸1.33g、L-谷氨酸1.47g、甘氨酸0.75g、L-脯氨酸1.15g和L-丝氨酸1.05g。
8.根据权利要求1的方法，其中步骤(1)中，所述BY基础培养液是包含如下组分的水溶液：氯化钙200mg/L、九水硝酸铁0.72mg/L、氯化钾400mg/L、硫酸镁97.7mg/L、氯化钠6800mg/L、一水磷酸二氢钠140mg/L、碳酸氢钠2200mg/L、醋酸钠50mg/L、L-丙氨酸25mg/L、L-精氨酸盐酸盐70mg/L、L-天冬氨酸30mg/L、L-半胱氨酸盐酸盐一水合物0.11mg/L、L-胱氨酸二盐酸盐26mg/L、L-谷氨酸75mg/L、甘氨酸50mg/L、L-组氨酸盐酸盐一水合物21.88mg/L、L-羟脯氨酸10mg/L、L-异亮氨酸20mg/L、L-亮氨酸60mg/L、L-赖氨酸盐酸盐70mg/L、L-蛋氨酸15mg/L、L-苯丙氨酸25mg/L、L-脯氨酸40mg/L、L-丝氨酸25mg/L、L-苏氨酸30mg/L、L-色氨酸10mg/L、L-酪氨酸二钠二水合物57.66mg/L、L-缬氨酸25mg/L、抗坏血酸0.05mg/L、α-D-生育酚磷酸酯0.01mg/L、生物素0.01mg/L、骨化醇0.1mg/L、D-泛酸钙0.01mg/L、氯化胆碱0.5mg/L、叶酸0.01mg/L、肌醇0.05mg/L、三水合甲萘醌亚硫酸氢钠0.019mg/L、烟酸0.025mg/L、烟酰胺0.025mg/L、p-氨基苯甲酸0.05mg/L、盐酸吡哆辛0.05mg/L、核黄素0.01mg/L、盐酸硫胺素0.01mg/L、维生素A乙酸酯0.14mg/L、硫酸腺嘌呤10mg/L、腺嘌呤0.2mg/L、腺苷三磷酸二钠1mg/L、胆固醇0.2mg/L、2-脱氧-D-核糖0.5mg/L、D-葡萄糖1000mg/L、谷胱甘肽0.05mg/L、盐酸鸟嘌呤0.3mg/L、次黄嘌呤钠0.354mg/L、核糖0.5mg/L、胸腺素0.3mg/L、5mg/L吐温80、尿嘧啶0.3mg/L、黄嘌呤钠0.34mg/L、酚红10mg/L。
9.根据权利要求1的方法，步骤(1)中，所述BY基础培养液中还包括亚硒酸钠，其浓度为0.2~0.3mg/L。
10.根据权利要求1的方法，步骤(1)中，所述BY基础培养液中还包括亚硒酸钠，其浓度为0.25mg/L。
11.根据权利要求1的方法，所述BY基础培养液中还包括硫酸铜，其浓度以无水物计为0.05~0.1mg/L。
12.根据权利要求1的方法，所述BY基础培养液中还包括硫酸铜，其浓度以无水物计为0.075mg/L。
CN201810576806.3A 2018-06-07 2018-06-07 牛活体或离体采集卵母细胞体外受精胚胎培养的方法 Active CN108728404B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810576806.3A CN108728404B (zh) 2018-06-07 2018-06-07 牛活体或离体采集卵母细胞体外受精胚胎培养的方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201810576806.3A CN108728404B (zh) 2018-06-07 2018-06-07 牛活体或离体采集卵母细胞体外受精胚胎培养的方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN108728404A CN108728404A (zh) 2018-11-02
CN108728404B true CN108728404B (zh) 2021-09-10

Family

ID=63932545

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201810576806.3A Active CN108728404B (zh) 2018-06-07 2018-06-07 牛活体或离体采集卵母细胞体外受精胚胎培养的方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN108728404B (zh)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN111254109B (zh) * 2020-02-06 2022-07-08 天津力牧生物科技有限公司 牛卵母细胞的体外受精和胚胎培养的方法和运输培养液
CN112322579B (zh) * 2021-01-06 2021-03-12 天津博裕力牧科技有限公司 牛体外受精使用的培养液和提高牛体外受精的方法
CN112914784B (zh) * 2021-05-11 2023-08-15 天津力牧生物科技有限公司 牛胚胎分割的方法

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101225373A (zh) * 2008-01-23 2008-07-23 北京锦绣大地农业股份有限公司 一种牛卵母细胞体外成熟无血清培养基
CN103898046A (zh) * 2014-02-28 2014-07-02 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所 牛体外受精胚胎培养液和培养方法
CN107034173A (zh) * 2017-06-09 2017-08-11 英科博雅基因科技（天津）有限公司 牛体外受精胚胎培养的方法和使用的培养液
CN107142239A (zh) * 2017-06-09 2017-09-08 英科博雅基因科技（天津）有限公司 提高牛体外受精胚胎培养效率的方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101225373A (zh) * 2008-01-23 2008-07-23 北京锦绣大地农业股份有限公司 一种牛卵母细胞体外成熟无血清培养基
CN103898046A (zh) * 2014-02-28 2014-07-02 中国农业科学院北京畜牧兽医研究所 牛体外受精胚胎培养液和培养方法
CN107034173A (zh) * 2017-06-09 2017-08-11 英科博雅基因科技（天津）有限公司 牛体外受精胚胎培养的方法和使用的培养液
CN107142239A (zh) * 2017-06-09 2017-09-08 英科博雅基因科技（天津）有限公司 提高牛体外受精胚胎培养效率的方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Protective effects of antioxidants on linoleic acid–treated bovine oocytes during maturation and subsequent embryo development;Wael A. Khalil等;《Theriogenology》;20131231;第80卷;161-168 *

Also Published As

Publication number Publication date
CN108728404A (zh) 2018-11-02

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN111254109B (zh) 牛卵母细胞的体外受精和胚胎培养的方法和运输培养液
CN112501114B (zh) 提高牛体外受精效率的方法
CN111269876A (zh) 活体采集牛卵母细胞进行体外受精和胚胎培养的方法
CN107142239B (zh) 提高牛体外受精胚胎培养效率的方法
Wang et al. Melatonin improves the quality of in vitro produced (IVP) bovine embryos: implications for blastocyst development, cryotolerance, and modifications of relevant gene expression
CN107034173B (zh) 牛体外受精胚胎培养的方法和使用的培养液
CN108728404B (zh) 牛活体或离体采集卵母细胞体外受精胚胎培养的方法
CN108753689B (zh) 牛体外受精胚胎培养的方法
Tibary et al. Update on reproductive biotechnologies in small ruminants and camelids
CN108728401B (zh) 牛卵母细胞体外受精胚胎培养的方法和所用的培养基
Anchordoquy et al. Influence of vascular endothelial growth factor and Cysteamine on in vitro bovine oocyte maturation and subsequent embryo development
CN112980778B (zh) 牛体外受精胚胎培养和冻存的方法
Balasubramanian et al. Effect of cysteamine supplementation of in vitro matured bovine oocytes on chilling sensitivity and development of embryos
CN110066763A (zh) 促进牛体外胚胎培养受精卵发育的方法
CN112322579B (zh) 牛体外受精使用的培养液和提高牛体外受精的方法
Herrick et al. Effect of macromolecule supplementation during in vitro maturation of goat oocytes on developmental potential
Choi et al. Effect of medium variations (zinc supplementation during oocyte maturation, perifertilization pH, and embryo culture protein source) on equine embryo development after intracytoplasmic sperm injection
Sjunnesson et al. Single layer centrifugation-selected boar spermatozoa are capable of fertilization in vitro
CN110066764A (zh) 促进牛体外胚胎培养卵母细胞体外成熟的方法
CN113151160B (zh) 提高牛体外受精效率的方法和所用的冻存液和解冻液
De et al. In vitro development of goat (Capra hircus) embryos following cysteamine supplementation of the in vitro maturation and in vitro culture media
CN113201484B (zh) 改进牛体外受精囊胚冻存和解冻的方法
CN109943522A (zh) 一种哺乳动物体外受精胚胎培养方法
Jochems et al. Effect of two ‘progressively motile sperm–oocyte’ratios on porcine in vitro fertilization and embryo development
Dattena et al. Lambing rate using vitrified blastocysts is improved by culture with BSA and hyaluronan

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
TA01 Transfer of patent application right

Effective date of registration: 20190916

Address after: 300457 A building, Alexander center, 3 Haitong street, Tianjin Binhai New Area.

Applicant after: Tianjin Bo Yu Li Husbandry Technology Co., Ltd.

Address before: 300457 Tianjin Binhai New Area Development Zone Haitong Street No. 3 Alexander A building - Boya company

Applicant before: Tianjin Bo Yu Li Husbandry Technology Co., Ltd.

Applicant before: Tianjin Zhongke Boya biological Breeding Research Co Ltd

Applicant before: Tianjin Li Mu Ding Feng Biotechnology Co., Ltd.

TA01 Transfer of patent application right
GR01 Patent grant
GR01 Patent grant
CP03 Change of name, title or address

Address after: 300457 building a, Alexandria, No.3 Haitong street, Binhai New Area Development Zone, Tianjin Boya company

Patentee after: Tianjin Limu Biotechnology Co.,Ltd.

Address before: 300457 A building, Alexander center, 3 Haitong street, Tianjin Binhai New Area.

Patentee before: TIANJIN BOYU LIMU TECHNOLOGY CO.,LTD.

CP03 Change of name, title or address