CN107841471A - 一种结晶紫降解菌及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明提供一种结晶紫降解菌,菌种为西地西菌(Cedeceadavisae),用于结晶紫染料脱色以及用于结晶紫染料降解。本发明获取结晶紫降解菌的方法简单,稳定,可操作性好。获得的西地西菌种能够快速对结晶紫染料进行脱色和降解,净化水质,比化学方法更安全,没有二次污染。
Description
技术领域
本发明涉及染料降解菌领域,尤其涉及一种结晶紫降解菌。
背景技术
随着印染工业的迅猛发展,染料废水污染日显严重,其碱性大、有机物含量高,甚至还含有重金属等特点,成为最难处理的环境污染问题之一。
结晶紫染料是继偶氮染料、蒽醌染料之后,使用最广泛的第三大类染料。其排放肯定会造成水体和土壤的严重污染,对人类健康造成重大的伤害。研究含结晶紫废水的降解对染料废水降解具有重要意义。
西地西菌是杆状细胞,0.5~0.6μm×1~2μm,符合肠杆菌一般属的定义。大多数菌株运动。兼性厌氧。发酵葡萄糖产酸,通常产气。硝酸盐还原到亚硝酸盐。大多数菌株脂酶阳性(玉米油)。DNA酶和明胶酶阴性。它对于粘菌素和先锋霉素有抗性。西地西菌在染料脱色和降解中的应用还未见报道。
发明内容
本发明目的一是提供一种结晶紫降解菌,菌种为西地西菌(Cedeceadavisae),用于结晶紫染料脱色。
本发明目的二是提供一种结晶紫降解菌,菌种为西地西菌(Cedeceadavisae),用于结晶紫染料降解。
本发明目的二是提供所述结晶紫降解菌的分离方法。
本发明是通过以下技术方案实现的:
一种结晶紫降解菌,菌种为西地西菌(Cedeceadavisae),用于结晶紫染料脱色。
一种结晶紫降解菌,菌种为西地西菌(Cedeceadavisae),用于结晶紫染料降解。
所述结晶紫为三苯甲烷类染料结晶紫,结构式为:
所述结晶紫降解菌的分离方法,其具体步骤为:
取受染料污染土壤样品3.0g置于100mL含初始结晶紫浓度为5mg/L的无机盐培养基中,于30℃、130r/min条件下振荡培养;每隔2d观察结晶紫脱色情况,取5ml脱色效果最好菌悬液转接至新鲜含结晶紫培养液,并逐渐提高结晶紫的质量浓度依次为10、20、40、60、80、100mg/L,进行菌种驯化,测定结晶紫的降解脱色效果;将能使100mg/L结晶紫溶液脱色的驯化菌悬液,涂布在含30mg/L结晶紫的固体染料平板上,进行结晶紫降解菌的分离,进行菌株鉴定,即得结晶紫降解菌。
所述无机盐培养基组分为:葡萄糖3g、MgSO40.3g、(NH4)2SO40.5g、NaCl0.3g、FeSO4.7H2O0.03g、K2HSO42g、MnSO40.03g、蒸馏水1L,将各组分混合后在121℃下灭菌2h即得无机盐培养基。
所述固体染料培养基为:葡萄糖3g、MgSO40.3g、(NH4)2SO40.5g、NaCl0.3g、FeSO4.7H2O0.03g、K2HSO42g、MnSO40.03g、结晶紫0.03g、琼脂10-12g、蒸馏水1L、分装后121℃灭菌2h。
本发明的优点是:本发明获取结晶紫降解菌的方法简单,稳定,可操作性好。获得的西地西菌种能够快速对结晶紫染料进行脱色和降解,净化水质,比化学方法更安全,没有二次污染。
附图说明
图1:LRJ菌株形态
图2:LRJ菌株的16SrRNA基因序列系统发育树
图3:LRJ菌株处理不同浓度的结晶紫染料
图4:LRJ菌株降解不同浓度结晶紫UV254变化
图5:不同碳源对结晶紫脱色率的影响
图6:不同葡萄糖浓度对结晶紫脱色率的影响
图7:不同氮源对结晶紫脱色率的影响
图8:温度对结晶紫脱色的影响
图9:不同pH对结晶紫脱色率的影响
图10:不同金属离子对结晶紫脱色率的影响
具体实施方式
下面通过具体实例和附图进一步对本发明进行阐述,但本发明的保护范围并不仅限于此。
实施例
结晶紫降解菌的驯化、分离
取长期受到染料的污染土壤样品3.0g置于100mL含初始结晶紫浓度为5mg/L的无机盐培养基中,于30℃、130r/min条件下振荡培养;每隔2d观察结晶紫脱色情况,取5ml脱色效果最好菌悬液转接至新鲜含结晶紫培养液,并逐渐提高结晶紫的质量浓度依次为10、20、40、60、80、100mg/L,进行菌种驯化,测定结晶紫的降解脱色效果;将能使100mg/L结晶紫溶液脱色的驯化菌悬液,涂布在含30mg/L结晶紫的固体染料平板上,进行结晶紫降解菌的分离,进行菌株鉴定,即得结晶紫降解菌。
所述无机盐培养基组分为:葡萄糖3g、MgSO40.3g、(NH4)2SO40.5g、NaCl0.3g、FeSO4.7H2O0.03g、K2HSO42g、MnSO40.03g、蒸馏水1L,将各组分混合后在121℃下灭菌2h即得无机盐培养基。
所述固体染料培养基为:葡萄糖3g、MgSO40.3g、(NH4)2SO40.5g、NaCl0.3g、FeSO4.7H2O0.03g、K2HSO42g、MnSO40.03g、结晶紫0.03g、琼脂10-12g、蒸馏水1L、分装后121℃灭菌2h。
所述结晶紫为三苯甲烷类染料结晶紫。
菌株鉴定
(1)革兰氏染色鉴定:取对数生长期的菌种,涂片、固定;在涂菌部位滴加结晶紫染液,1~2min,倾倒染液、用水清洗至流出水呈无色:用卢戈氏碘液媒染1min,洗净;用95%乙醇脱色,当流出液无色时立即用水洗去乙醇;再用番红复染2min,自然干燥镜检。
(2)生理生化特性鉴定:生理生化特性实验参照《Bergey’sManualofDeterminativeBacteriology》方法进行。
(3)16SrDNA分子鉴定:提取结晶紫脱色菌株基因组DNA,利用引物B101F(5'-TGGCGGACGGGTGAGTAA-3')和BA534R(5'-ATTACCGCGGCTGCTGG-3')。扩增菌株的16SrDNA。PCR程序如下:94预变性3min;94℃变性30s,56℃退火30s,72℃延伸90s,30个循环;72℃延伸10min。PCR产物经纯化后直接用ocr产物测序。基因测序由生工生物工程(上海)股份有限公司完成,测序结果在NCBI数据库的BLASR中进行同源性比较。经过分析、整理后,选用MEGA5.0软件构建系统发育树,创建方法选择邻接法(Neighbor-Joining),对菌株的序列进行同源性分析并构建其系统发育树。
所获菌株对结晶紫脱色效果
在无机盐培养基中分别加入5、20、40、60、100mg/L的结晶紫溶液,接种1ml菌悬液(处于对数生长期的菌株,OD600值为0.8),放在30℃、130rpm/min振荡培养箱中振荡培养,每隔2h取样一次,离心之后测其吸光度。
菌株对结晶紫溶液UV254变化及COD的去除
利用所获得LRJ菌株制成菌悬液来处理结晶紫溶液,测定其脱色率,具体方法:培养14h后,将菌悬液放在8000r/min离心机上,离心10min,取上清液,在最大吸收波长589nm处,测其吸光度值,按如下公式计算脱色率
式中A为未接种菌液的结晶紫培养基OD值;B为接种菌液的结晶紫培养基OD值。
COD值采用重铬酸钾法测定;COD去除率=(COD0-COD1)/COD0×100%,式中COD0为结晶紫染料溶液COD值;COD1为加入菌液反应一段时间后COD值。
在无机盐培养基中分别加入5、10、20、30、40mg/L的结晶紫溶液,在未接种菌株前,分别测不同浓度结晶紫溶液的UV254和COD的值。然后在接种5%的脱色菌,于30℃130rpm/min振荡培养箱中振荡培养反应,直至结晶紫完全脱色,取样离心,测定上清UV254和COD的值。
结晶紫降解菌的脱色、降解适宜条件
在250mL的三角瓶中分别加入100mL的无机盐培养液(灭菌后),再加入40mg/L的结晶紫,加入1ml菌悬液(处于对数生长期的菌株,OD600值为0.8),下振荡培养箱中振荡培养(pH=7,130rpm/min),利用不同环境因子,测定菌株脱色效果,每隔2h取样离心,测定其吸光度并记录。
(1)温度设定温度20℃、25℃、30℃、35℃、40℃。
(2)pH设定pH值为4、5、6、7、8。
(3)碳源设定碳源蔗糖、乳糖、葡萄糖,以不加碳源作对照,质量浓度为3.0g/L。另外,添加0.0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0g/L葡萄糖为碳源,研究碳源浓度对脱色效果的影响。
(4)氮源设定氮源为NaNO3、NH4SO4、NH4NO3、NH4Cl、乙胺四乙酸、尿素,以不加氮源作对照,各设三个重复,温度30℃、130rpm/min、pH为7。
(5)金属离子添加相同浓度的Mg2+、Mn2+、Cu2+、Zn2+、Ca2+,以不加金属离子的培养基作对照,设三个重复,于30℃、130rpm/min摇床上振荡培养,研究金属离子对脱色的影响。
结果和分析
结晶紫降解菌株的获得
菌株的形态及生理生化特征
将垃圾填埋场土壤样品放在含结晶紫的培养基中进行富集培养,进行驯化、分离,结果发现含结晶紫染料培养基能够明显脱色。对该菌群进行反复划线分离纯化后,发现其中一株菌株能够使结晶紫染料显著脱色,标记为LRJ。
菌株LRJ在染料培养基中生长24h后,其菌落乳白色、半透膜、光滑、圆形、表面湿润粘稠,直径为1~1.5mm。其革兰氏染色图片见图1,短杆状,革兰氏染色为阴性。
菌株的分子鉴定(16SrDNA测序分析)
LRJ菌株片段有1433bp,对其进行16SrDNA测序分析。将获得的序列在GenBank中使用Blast软件进行同源性分析,结果表明该序列与CedeceaneteriGTC1717(17)的16SrDNA序列的同源性高达99%。再将获得的序列与西地西菌属内及肠杆菌科内相关菌株的16SrDNA用MEGA5.0软件的MultiplesequenceAligment程序,选用ClustalW法进行多序列比对分析,然后采用邻近法构建系统发育树如图2,结果表明该菌在系统发育树上与Cedeceadavisae相似度达99%。所以LRJ菌株经16SrDNA鉴定为西地西菌(Cedeceadavisae)。
菌株LRJ对结晶紫脱色效果
菌株LRJ对不同浓度结晶紫脱色率变化
分别移取菌悬液1ml加入到结晶紫染料初始浓度分别为5、20、40、60、100mg/L的无机盐培养基中,在摇床上振荡培养14h(30℃、130rpm/min、pH=7),每隔2h取样离心测其吸光度,计算脱色率。另外选择40mg/L的结晶紫溶液,接入相同量的菌液,测定不同时段溶液中结晶紫的残留量,结果如图3。
从图3可以看出,菌株LRJ能够使40mg/L以内结晶紫染料脱色显著,脱色率能够达到95%。且随着染料的浓度增大,脱色率也逐渐增大。当染料浓度在40mg/L时,脱色率达到最大的97.2%,脱色效果最好。但是随着初始染料浓度的增高,脱色率不断的下降。染料初始浓度在60mg/L时,脱色率达到84.2%。而染料初始浓度达到100mg/L时,脱色率8.3%,说明高浓度的染料对菌株LRJ生长具有抑制作用。
菌株LRJ降解初始浓度为40mg/L的结晶紫,测定溶液中结晶紫的残留量。由图3可看出,降解3h、6h、9h、12h、15h后溶液中结晶紫的残留量分别为21mg/L、8.41mg/L、2.64mg/L、1.8mg/L、1.35mg/L,随着降解时间越长,溶液中结晶紫的残留量就越少,菌株LRJ可使40mg/L的结晶紫9h脱色完全。
LRJ菌株对结晶紫的降解效果
菌株LRJ降解不同浓度结晶紫溶液COD的去除
分别向0、10、20、30、40、50mg/L的结晶紫溶液中加入相同量的菌悬液,在摇床上振荡条件下培养(30℃、130rpm/min、pH=7)。
由表1可知,菌株LRJ对结晶紫溶液COD的去处效果较为显著。随着染料浓度的增加,结晶紫溶液中COD的值也逐渐增大。培养14h后,此时不同浓度的结晶紫溶液脱色率都达到了90%以上,但是此COD去除率达到了80%左右。此后COD去除趋于平缓,48h后测定不同浓度结晶紫溶液最终COD的值,COD最终去除率基本上达到了92%左右,而此时对照组(不加结晶紫)溶液COD最终去除率达到了99.73%。在降解的初始阶段,去除速率较快,说明一些中间产物能够被微生物所降解,或者说在染料分子中能够快速地加入氧元素,致使培养液中COD的值迅速降低。
表1LRJ菌株降解结晶紫前后COD的变化
LRJ菌株降解不同浓度结晶紫UV254的变化
UV254值表示的是水中一些有机物在254nm波长下的吸光度,反映的是水中存在的腐殖质类大分子有机物以及含有C=C双键和C=O双键的芳香族化合物。
图4是LRJ菌株降解不同浓度结晶紫14h后UV254的变化。LRJ菌株降解14h后,其结晶紫溶液中UV254的值显著下降。这说明LRJ菌株对结晶紫具有一定的降解作用,溶液中C=C双键和C=O双键的芳香族化合物显著降解。在供试浓度范围内其UV254可降至0.3。
LRJ菌株对结晶紫染料脱色的适宜环境因子
外加碳源对脱色效果的影响在结晶紫初始浓度为40mg/L时,以无外加碳源作为参考,外加碳源分别为葡萄糖、蔗糖、乳糖,在相同的培养条件下(30℃、130rpm/min、pH为7.0、装液量100mL)振荡培养14h。另外,选择葡萄糖为外加碳源,设计不同葡萄糖浓度,研究不同碳源对结晶紫脱色效果的影响,结果如图5所示。
由图5可知,不同外加碳源对菌株脱色效果产生显著影响,蔗糖效果没有显著作用,乳糖和葡萄糖对结晶紫脱色产生显著促进作用,特别是葡萄糖,对结晶紫可使脱色率达到97.84%,而乳糖脱色率达到46.68%。
不同葡萄糖浓度对脱色效果的影响
如图6所示,当体系中不加葡萄糖时,直接以结晶紫染料作为碳氮源时,此时脱色率才8.7%。当葡萄糖质量浓度为1g/L时,脱色率有明显上升,达到了76.1%。当葡萄糖质量浓度为2g/L时,脱色率达到了88.4%。当葡萄糖质量浓度为3g/L时,脱色率达到最高的97.5%。葡萄糖质量浓度逐渐增加到4g/L、5g/L、6g/L时,脱色率稳定在92%左右,可能是因为容易降解的葡萄糖添加过多,造成菌株对葡萄糖的依赖,反而影响了对结晶紫染料的代谢能力。由此,西地西菌(Cedeceadavisae)对结晶紫的脱色降解所需要的外加碳源以葡萄糖最好,浓度3g/L。
外加氮源对脱色效果的影响
在结晶紫初始浓度为40mg/L时,以无外加氮源作为对照,外加氮源分别为NaNO3、(NH4)2SO4、NH4NO3、二胺四乙酸、尿素和NH4Cl(含氮量相同)。在相同的培养条件下(30℃、130rpm/min、pH为7.0、锥形瓶装量100mL)振荡培养14h,研究不同氮源对结晶紫脱色效果的影响,结果如图7所示。
由图7可知,不同氮源对结晶紫的脱色具有不同的促进作用,具体顺序:(NH4)2SO4>NH4Cl>NH4NO3>NaNO3>尿素>二胺四乙酸>不加氮源。当外加氮源为二胺四乙酸时,与对照组(不加氮源)相比,差异不显著,此时菌株不能对结晶紫进行脱色。当外加氮源为二胺四乙酸时的脱色率为3.03%,对照组的脱色率为2.52%。当外加氮源为(NH4)2SO4时,脱色效果最好,达到97.84%。另外,铵态氮的脱色效果明显高于硝态氮。
不同温度对脱色效果的影响
结晶紫初始浓度为40mg/L,菌株分别在20℃、25℃、30℃、35℃、40℃温度下对结晶紫进行脱色反应14h(130rpm/min、pH为7.0、锥形瓶装量100mL)。研究不同温度对结晶紫脱色率的影响,结果如图8所示。
由图8可知,LRJ菌株在不同温度下对结晶紫的脱色较为显著。温度在20℃,脱色率为仅7.4%,温度在40℃时,脱色率为17.1%,而当温度在25℃~35℃时,脱色率能够达到92%以上,其中温度在30℃时,脱色率能够达到最高的97.5%。可见LRJ菌株适宜脱色温度范围为25℃~35℃,西地西菌(Cedecea davisae)对结晶紫的脱色降解所需的最适温度为30℃。
不同pH对脱色效果的影响
结晶紫初始浓度为40mg/L,菌株分别在pH为4、5、6、7、8、9下对结晶紫进行脱色反应14h(130rpm/min、30℃、锥形瓶装量100mL)。研究不同pH对结晶紫脱色率的影响,结果如图9所示。
由图9可知,LRJ菌株适合在中性条件下生长,中性条件下对结晶紫的脱色效果较为明显。当体系的pH值为4或9时,此时没有显著脱色效果。当体系的pH值为5时,此时脱色率有较大幅度的上升,达到了63.99%。当体系的pH值为6~8时,此时脱色率基本上都能达到90%以上,其中在pH值为7时,脱色率达到最高的97.62%。
菌株LRJ脱色适宜pH范围为6-8。
不同金属离子对脱色效果的影响
分别考察Mg2+、Mn2+、Cu2+、Zn2+、Ca2+对LRJ菌株脱色能力的影响,以不加金属离子的培养基作对照,结果如图10所示。
从图10可以看出,LRJ菌株降解结晶紫过程中,添加不同的金属离子对LRJ菌株脱色效果产生显著影响。Mg2+、Mn2+和Cu2+等对结晶紫的脱色作用显著促进LRJ菌株对结晶紫的脱色,其中,Mg2+对结晶紫的脱色效果最佳,脱色率达到了95.72%,而供试的Mn2+、Cu2+对结晶紫的脱色率分别达到了88.72%、92.13%。此时,对照组对结晶紫的脱色率达到了72.32%。供试金属离子中Zn2+对结晶紫的脱色没有显著作用,其中供试Zn2+对结晶紫的脱色率达到了74.56%。而供试金属离子中Ca2+对结晶紫的脱色作用与对照组(不加金属离子)相比,差异显著,脱色率达到了60.23%,Ca2+对LRJ菌株的脱色产生抑制作用。
Claims (6)
1.一种结晶紫降解菌,菌种为西地西菌(Cedeceadavisae),其特征在于:用于结晶紫染料脱色。
2.一种结晶紫降解菌,菌种为西地西菌(Cedeceadavisae),其特征在于:用于结晶紫染料降解。
3.如权利要求1或2所述的结晶紫降解菌,其特征在于:所述结晶紫为三苯甲烷类染料结晶紫,结构式为:
4.如权利要求3所述的所述结晶紫降解菌的分离方法,其特征在于:其具体步骤为:
取受染料污染土壤样品3.0g置于100mL含初始结晶紫浓度为5mg/L的无机盐培养基中,于30℃、130r/min条件下振荡培养;每隔2d观察结晶紫脱色情况,取5ml脱色效果最好菌悬液转接至新鲜含结晶紫培养液,并逐渐提高结晶紫的质量浓度依次为10、20、40、60、80、100mg/L,进行菌种驯化,测定结晶紫的降解脱色效果;将能使100mg/L结晶紫溶液脱色的驯化菌悬液,涂布在含30mg/L结晶紫的固体染料平板上,进行结晶紫降解菌的分离,进行菌株鉴定,即得结晶紫降解菌。
5.如权利要求3所述的西地西菌(Cedeceadavisae)的分离方法,其特征在于:所述无机盐培养基组分为:葡萄糖3g、MgSO4 0.3g、(NH4)2SO4 0.5g、NaCl0.3g、FeSO4.7H2O0.03g、K2HSO4 2g、MnSO4 0.03g、蒸馏水1L,将各组分混合后在121℃下灭菌2h即得无机盐培养基。
6.如权利要求3所述的西地西菌(Cedeceadavisae)的分离方法,其特征在于:所述固体染料培养基为:葡萄糖3g、MgSO4 0.3g、(NH4)2SO4 0.5g、NaCl0.3g、FeSO4.7H2O0.03g、K2HSO42g、MnSO4 0.03g、结晶紫0.03g、琼脂10-12g、蒸馏水1L、分装后121℃灭菌2h。
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CN201710810633.2A CN107841471A (zh) | 2017-09-11 | 2017-09-11 | 一种结晶紫降解菌及其应用 |
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Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN113403232A (zh) * | 2021-07-13 | 2021-09-17 | 重庆邮电大学 | 一种筛选菲类的多环芳烃降解菌的方法 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1996040861A1 (en) * | 1995-06-07 | 1996-12-19 | Biolog, Inc. | Microbiological media for isolation and identification of enteric pathogens such as e. coli and salmonella |
CN103380527A (zh) * | 2011-02-24 | 2013-10-30 | 索尼公司 | 微生物燃料电池、所述燃料电池的燃料和微生物、生物反应器和生物传感器 |
CN104114712A (zh) * | 2012-01-19 | 2014-10-22 | 生物梅里埃公司 | 具有偶氮还原酶活性的微生物的体外检测 |
-
2017
- 2017-09-11 CN CN201710810633.2A patent/CN107841471A/zh active Pending
Patent Citations (3)
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Title |
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