CN106604728A - 用于光动力学控制感染的组合物 - Google Patents

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Abstract

本发明涉及用于光动力控制微生物的组合物，其中该组合物包括光敏剂，所述光敏剂包括染料，并在光照射时产生用于被包括细菌、真菌、藻类、酵母、细菌孢子和真菌孢子的一种以上微生物污染的材料、商品和表面的消毒和灭菌的单线态氧。

Description

用于光动力学控制感染的组合物
相关申请的交叉引用
本申请发明要求于2014年9月9日提交的申请No.62/047,803的美国临时专利申请的优先权，将其内容通过引用并入本文以用于所有目的。
技术领域
本发明涉及用于光动力控制微生物的组合物，其中该组合物包括光敏剂，所述光敏剂包括染料，并在光照射时产生用于被包括细菌、真菌、藻类、酵母、细菌孢子和真菌孢子的一种以上微生物污染的材料、商品和表面的消毒和灭菌的单线态氧。
背景技术
古埃及和印度文化被认为已经使用基于香豆素的植物染料和阳光来治疗皮肤疾病，但是直到发明现代染料才真正形成了光疗法。
在大约80年前，染料如磺胺柯衣定(sulfonamidochrysoidine)(百浪多息(prontosil))的杀微生物活性被首次观察到，并导致了磺酰胺抗菌剂的发现。随后，还开发了光动力疗法(PDT)中某些染料的选择性结合的性质，光动力疗法(PDT)中施用特定的染料且该染料结合到选择的位点；然后施加高强光，杀死了包含结合染料的细胞。抗微生物作用的机理明显是由于单线态氧的形成，因为单线态氧捕获剂的加入完全使得该效应失效。在过去二十年中，在许多国家已批准将采用无毒染料和可见光的光动力学疗法用于癌症和其它疾病的治疗，其中染料作为产生长寿命三线态的光敏剂，与分子氧反应形成包括单线态氧、超氧化物和自由基的活性氧的物质。
在PDT发展早期，发现采用光敏染料和光的类似组合在体外可以杀死微生物，从而控制细菌、真菌和病毒。这使得对待确定的分子过程有了更好的理解并使得将此技术转化到被称为光动力灭活(PDI)的方案中控制感染，尤其是对局部病症的感染控制。正如在传统化学杀微生物剂的应用中，营养细胞比孢子更敏感，发现孢子对许多常用的光敏剂具有抗性。
过去使用了许多采用光动力技术的方法。例如Hamblin(2005)描述了通过吩噻嗪染料介导的芽孢杆菌(Bacillus)孢子的光动力灭活。其他已知的光敏剂如孟加拉玫瑰红和卟啉类仅对各种芽孢杆菌(Bacillus)属的营养细胞有效。报道的杀灭率约为99.999％，但是需要几个小时的孵育/接触时间。还发现白念珠菌(Candida albicans)对PDI的敏感性低于革兰氏阳性或阴性细菌；这可能是由于真菌细胞具有大约20至30倍的更大尺寸。
酞菁类是“第二代”光敏剂，其具有两个重要的限制，即聚集和低水溶性，二者都通过取代基的变化来调节。全氟化和磺化都导致了水溶性的增加。酞菁锌和酞菁铝优于顺磁性类似物，因为它们具有更高的三线态半衰期和产率以及单线态氧产率。
Nyokong(2007)发现，包含抗磁性金属如锌和铝的金属酞菁络合物是有效的光敏剂，并对光催化应用有效，因为它们产生高的三线态量子产率和长三线态寿命并且是热稳定和化学稳定的。特别地，酞菁锌络合物显示出更高的单线态氧量子产率，并且发现其比其取代衍生物对降解更稳定。
尽管上述酞菁类、特别是阳离子酞菁类对大多数微生物显示出非常高的效率，但是革兰氏阴性细菌仍然更难以灭活。即使采用了上述活性最高的化合物，通过采用相同的光敏剂和相同的实验条件，革兰氏阴性细菌的光灭活速率至少比革兰氏阳性细菌和酵母的灭活低一个数量级。
酞菁类的光物理性质受到取代基的影响，例如具有季铵或磺酰胺取代基的酞菁锌和具有脲基取代基的酞菁铝在三小时攻击试验中对革兰氏阴性和革兰氏阳性细菌均特别有效。Wilson(1997)发现，磺化酞菁铝的浓度(3-12ppm)和由9mW激光二极管产生的光剂量影响了杀灭率，而流行性耐甲氧西林金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)(EMRSA)生物体的生长期却没有受到影响。暴露于35mW HeNe激光的时间比吩噻嗪染料的浓度或预照射接触时间对杀灭率具有更大的影响-发现即使在低(ppm)浓度下15s足矣。
水溶性是PDT/PDI的基本要求，但是经常发生聚集，并且这种聚集随着亲脂性的增加而增加，造成了较低的效率。公开号2011/0052817的美国专利公开描述了采用瞬时(transient)水溶性聚乙二醇加合物从水性介质沉积不溶于水的铝-酞菁染料的方法。然而，当使用上述络合物的溶液来染色聚苯乙烯片，并将染色的片与未染色的片相比时，发现其显示出一些残留的杀微生物活性。
孢子形成是一种复杂的机制，通过产生包覆其脱水和缩合的基因组DNA的多层保护性胶囊，使得一些革兰氏阳性细菌如炭疽芽孢杆菌(Bacillus anthracis)和蜡状芽孢杆菌(Bacillus cereus)能够经受外部应激和营养缺乏的条件。当此类细菌孢子遇到有利的环境时，可以发芽，使细菌繁殖，并且在作为病原物种的情况下引起疾病。细菌孢子具有对大多数分子高度不可渗透的外壳和膜结构，这对休眠细菌是有毒的。因此，孢子对于热、照射和许多通常使用的抗菌剂的破坏具有高度耐受性，并且通常只能通过一些剧烈的化学过程(包括氧化蒸汽如过乙酸、二氧化氯和臭氧)来破坏。
Moir(2002)提供了以下信息：虽然孢子发芽的精确分子细节尚未完全确定，但该过程涉及膜渗透性改变、离子通量和降解孢子外层的酶的活化。发芽所需的成分包括受体蛋白、离子转运蛋白和皮质溶解酶；发芽体穿过外层，与内膜中的受体相互作用，以启动发芽过程的级联反应。
Collins(2006)描述了各种基于氧化的使孢子灭活的方法，包括使用二氧化氯、蒸发的过氧化氢和臭氧，然而过氧化物本身破坏了二硫化物交联，只是破环缓慢。通过阳离子表面活性剂和金属络合物的存在并使用有机过氧化物(如叔丁基过氧化氢)可以使过氧化物的杀孢子作用显著增强。
考虑到上述情况，需要具有光动力学增强的性质和增加的效率、特别针对由一种以上的微生物包括细菌、真菌、藻类、酵母、细菌孢子和真菌孢子引起的特定病理学的新型药物组合物和/或递送系统。此外，需要通过降低酞菁光敏剂的剂量来避免任何不期望的副作用，同时保持高的光活化效率。
发明内容
本发明提供了使用光敏剂组合物来破坏包括细菌、真菌、藻类、病毒、酵母、细菌孢子和真菌孢子的微生物的方法。本发明的方法可用于治疗和预防人和动物体内由病原微生物引起的感染性疾病。
一方面，本发明提供了水性组合物(PurePurge)，其包括酞菁锌或酞菁铝、作为游离酸或其碱金属盐的羧酸C6至C11和/或羟基酸C2至C6；二甲基亚砜和任选的选自噁嗪染料、噻嗪染料和/或包含三芳基甲基染料的生物染料。在优选的水性组合物中，其组分包括在约0.03％重量/体积至约0.5％重量/体积范围内的量的酞菁锌、在约0.01％重量/体积至约0.5％重量/体积范围内的量的辛酸钠、在约0.1％重量/体积至约0.5％重量/体积范围内的量的生物染料、在约20％重量/体积至约35％重量/体积范围内的量的二甲基亚砜和在约0.20％重量/体积至约1.5％重量/体积范围内的量的乳酸。
如果包括在内，生物染料可以包括但不限于苯并[a]吩噁嗪-7-鎓、5-氨基-9-(二乙氨基)-、硫酸盐(尼罗蓝)；3,7-双(二甲氨基)吩噻嗪-5-鎓氯化物(亚甲基蓝或甲基硫堇鎓氯化物)；8-二甲氨基-2,3-苯并吩噁嗪半(氯化锌)盐(麦尔多拉蓝)；吩嗪-5-鎓、3-氨基-7-(二乙氨基)-2-甲基-、氯锌酸盐(亮甲酚蓝)；吩噻嗪-5-鎓、3-氨基-7-(二甲氨基)-2-甲基-、氯化物(1:1)(甲苯胺蓝)；[7-(二甲氨基)-4-硝基吩噻嗪-3-亚基]-二甲基氯化铵(亚甲绿)；甲铵、N-[4-[[4-(二甲氨基)苯基]苯基亚甲基]-2,5-环己二烯-1-亚基]-N-甲基-、氯化物(1:1)(维多利亚绿)；乙铵、N-[4-[[4-(二乙氨基)苯基]苯基亚甲基]-2,5-环己二烯-1-亚基]-N-乙基-、硫酸盐(亮绿)；甲铵、N-[4-[[4-(二甲氨基)苯基]苯基亚甲基]-2,5-环己二烯-1-亚基]-N-甲基、氯化物(孔雀绿)；4-[(4-氨基苯基)-(4-亚氨基-1-环己-2,5-二烯基)甲基]苯胺盐酸盐(Fuschine)和4,4'-[(4-亚氨基-2,5-环己二烯-1-亚基)亚甲基]双苯胺单盐酸盐(碱性Fuschine)。
以下列出了Purepurge的优选水性组合物：
成分 CAS号 ％重量/体积
酞菁锌 14320-04-8 0.046
辛酸钠 1984-06-1 0.025
乳酸 50-21-5 0.5
碱性Fuschine 569-61-9 0.125
二甲基亚砜 67-68-5 27.5
另一方面，本发明提供了包括含有如上所述的氢氧化酞菁锌的2％的PurePurge溶液的组合物，并且将该2％的溶液与过氧化氢或叔丁基过氧化氢以及任选的至少一种阳离子杀微生物剂如季铵和/或季双胍化合物进行混合。
本发明的阳离子杀微生物剂可以选自(a)胍盐和(b)非金属正盐，优选季铵盐类。
本发明的胍盐可以是胍盐(guanidine salts)本身、双胍鎓盐、胍盐(guanidesalts)、双胍盐(biguanidine salts)或双胍盐(biguanide salts)，并且所有上述化合物都表示相同的分子。
本发明的胍盐(guanidine salts)可以选自以下盐类，然而它们不限于此：氯己定二葡萄糖酸盐、氯己定二盐酸盐和氯己定二乙酸盐；六亚甲基双(乙基己基)双胍二盐酸盐；氧代亚环己二烯基氨基胍缩氨硫脲；双(氯苯基脒基)哌嗪二甲脒二盐酸盐和聚六亚甲基双胍盐酸盐。
本发明的季铵盐可以选自以下盐类，然而它们不限于此：包含脂肪族或芳香族部分之一或包含两者的季盐；包括可以包含1至30个碳原子的直链或支化排列的烷氧基的脂肪族基团；可以为环己基和其烷基化和烷氧基化衍生物的脂环族基团。本发明优选的季铵盐是选自由烷基苄基二甲基氯化铵、烷基(C12-16)二甲基苄基氯化铵和任何其它阳离子表面活性剂组成的组的一者，优选地该季铵盐具有选自但不限于苄基己基二甲基氯化铵、苄基辛基二甲基氯化铵、苄基癸基二甲基氯化铵、苄基十二烷基二甲基氯化铵、苄基十四烷基二甲基氯化铵和苄基十八烷基二甲基氯化铵的芳香族部分。
任选地，该组合物可以进一步包括非离子表面活性剂来增强杀微生物剂，如烷基聚葡糖苷、烷基乙氧基化物；C9-C10烷基四葡糖苷、C9-C11烷基六乙氧基化物或C9-11醇乙氧基化物。
重要的是，本发明提供了由于光去活化，在氧和水的存在下以及在光照射(对微生物具有特别优异的作用)下的水溶性酞菁化合物的用途。
本发明的另一方面提供了用于表面清洁的试剂盒，所述试剂盒包括本文所述的抗微生物组合物和至少一个用于施用该组合物的敷抹器。优选地，该敷抹器包括吸收材料(如天然或合成的纺织品)和吸收在其中的抗微生物组合物。
本发明的另一方面涉及如上所述的新型抗微生物浓缩组合物，其能够被大部分水或其它水基液体稀释而形成使用溶液。本发明的另一方面是特别适合于“就地”清洁应用的水性抗微生物使用溶液。本发明的其它另一方面是使用本发明的组合物来减少各种被污染表面上的微生物群落的方法。本发明的另外一方面是使用本发明的组合物来减少各种设施或设备以及其它表面上的微生物群落的方法。
因此，本发明涉及用于对抗有机或无机基板中或有机或无机基板上的微生物并保护所述基板免受微生物攻击的方法，包括在氧和水的存在下，在施以可见光、紫外光和/或红外光照射的同时，采用本发明的组合物处理基板。
根据随后的公开内容和所附权利要求中，本发明的其它方面和优点将更加显而易见。
附图说明
图1总结了显示用于Meditex和PurePurge配方的不同浓度和测试生物体的其它测试数据。
具体实施方式
在详细描述本发明之前，应当理解的是，本发明不限于特定示例性的系统或工艺参数，它们当然可以进行改变。还应当理解的是，本文使用的术语仅用于描述本发明的具体实施方案的目的，并且不意图以任何方式限制本发明的范围。
本文中所引用的所有出版物、专利和专利申请(无论上文或下文)通过引用将其整体以相同的程度并入本文，犹如通过引用明确并且分别指出了待并入的每个出版物、专利或专利申请。
如本文和权利要求书中所使用的，术语“包括”是包括性的或开放式的，并且包括更具限制性的术语“基本上由……组成”和“由……组成”。
必须注意的是，除非内容另有明确指示，如本说明书和所附权利要求书中所使用的，单数形式的“一”、“一个”和“该”包括其复数个指示对象。因此，例如“表面活性剂”包括两种以上此类表面活性剂。
在本申请中，有效量通常是在下文描述中的成分的范围或水平所列出的量。除非另有说明，以百分比(“％”)列出的量是以重量百分比(基于100％活性物质)计的清洁组合物的量。
本发明的抗微生物清洁制剂可用于被一种以上微生物(包括革兰氏阴性细菌和革兰氏阳性细菌)污染的材料、商品和表面的消毒和灭菌，并且还能够提供对此类微生物的残余抗菌效果。本发明的组分可以用于杀死并使孢子无生命的灭菌组合物中，并且还可以以以下方式影响由此形成的坏死部分，该方式是使得其易于通过水冲洗而除去，从而降低了生物膜形成的可能性。
本发明提供了用于消毒的抗微生物组合物、用于卫生(消毒)的组合物、用于卫生(灭菌)的组合物、消毒剂、抗菌制剂、医用抗菌组合物、医用洗涤剂、具有抗菌性能的医用清洁剂、用于卫生目的的消毒剂、医用和兽医用的消毒剂、用于卫生目的或医用和兽医用的具有抗菌性的消毒剂、杀菌制剂、杀真菌制剂、杀结核菌制剂、杀孢子制剂、灭微生物剂、具有抗微生物性质的化学品(医疗或兽医)、医用清洁和消毒溶液和组合物、在医疗清洗应用中用于冲洗和干燥助剂、在医疗领域中用于净化、消毒和/或去污应用的化学品、医用医疗擦洗剂(灭菌或消毒、擦洗制剂)、表面卫生产品、药物抗菌洗涤剂、抗菌清洁剂。
本发明中所用的酞菁化合物需要氧和水的存在，还需要可见光、紫外光和/或红外光照射，以发挥其抗微生物活性。因此，该方法通常在水溶液中或在潮湿的基板上实施，且通常将大气氧作为氧源。
照明可以是提供红外和/或可见光范围内的光的人造光源，或可替代地是阳光。例如，通过约600至2,500nm的范围内的光实现了良好的效果。因此，例如可以通过商购的灯丝灯或借助λmax为约1,200至1,600nm的红外灯进行照射。照明的强度可以在较宽范围之间变化。这取决于活性物质的浓度和基板的性质以及存在的其它对发光效率具有影响的物质。曝光时间作为另一个参数是可以变化的，即对于相同的效果，在较低的光强下比在较高的光强下需要较长的曝光。通常，根据应用领域，可能需要几分钟至几小时的曝光时间。
如果该方法在水浴中进行(例如对纺织品进行消毒)，则光照射可以通过置于处理浴内或置于处理浴外的人工光源直接在处理浴中实施，或者处于潮湿状态的基板可以随后进行人工光源照射或暴露于阳光下。
在本发明的另一个选择中，制剂包括用于清洁的常规辅助物质，包括香料、芳香剂、染料、泡沫抑制剂、粘度调节剂和用于调节pH的试剂。该香料材料可以是任何商业材料，如0.1重量％至5重量％的任何所需量的Parfex S.A.的SAFA 30472。优选的pH试剂包括氢氧化钠和烷醇胺。
粘度剂可用于保留分散在组合物中的组分。合适的试剂的实例包括二氧化硅、植物胶(如黄原胶)、聚合物胶凝剂(如含有羧基基团的聚合物)。
如上所述，本发明的组合物可用于清洁和减少包括地板、柜台、家具、建筑表面、多孔表面(例如纺织品、墙纸、地毯等)、医疗工具和设备、食品服务器皿、皮肤、动物围栏、饲养站、兽医外科或检查区域等的各种表面的微生物群落。
优选地，本发明的组合物除了抗微生物功效外还具有几种性质。组合物优选在施用后不漂洗，并具有残留的抗微生物活性。残留活性意味着，在施用组合物之后的期间内如果处理的表面被微生物污染，消毒材料的膜将继续具有抗微生物作用。
减少表面的微生物群落的方法包括以下步骤。在约0至100℃的温度范围内、更优选地在约10至25℃的温度范围内，将本发明的组合物(其是为具体的表面和浓度而配制的溶液)引入到表面上。在引入组合物之后，在如上所述的照明源的存在下，使溶液在表面上保持足以有效减少表面的微生物群落(即杀死不需要的微生物)的时间。在使微生物减少的足够时间后，将使用溶液除去。优选地，在5至30分钟内，在处理温度下，本发明的组合物造成该微生物群体超过99％的减少(2个对数级减少)，更优选地超过99.99％的减少(4个对数级减少)。
通过以下非限制性示例说明本发明的实施。
示例1
用作擦拭物溶液的Meditex组合物。
将具有和不具有季铵/双胍消毒剂的PurePurge的溶液(2％水溶液)与过氧化氢、叔丁基过氧化氢混合，并研究其对艰难梭菌(Clostridium difficile)孢子的杀孢子活性(AOAC 961.02)。
下列测试示例中示出Meditex组合物的组成和微生物学结果。下表中的成分量的值是百分比(重量)。
缩写和脚注：
Al-pc-PEG根据美国专利2011/0052817，用甲氧基聚乙二醇(MW 2000Da，CAS RN＝9004-74-4)由氯化酞菁铝(CAS RN＝14154-42-8)制备的水溶液；2％的水溶液。
ADBAC烷基(C12-16)二甲基苄基氯化铵(CAS RN＝68424-85-1)的50％水溶液。
PHMB聚六亚甲基双胍盐酸盐(CAS RN＝27083-27-8)的20％水溶液。
HPx过氧化氢(CAS RN＝7722-84-1)的30％水溶液
TBHPx叔丁基过氧化氢(CAS RN＝75-91-2)的70％水溶液
QAC/BG可商购的季铵化合物和双胍杀微生物剂在异丙醇水溶液中的混合物(4％的总杀生物剂)
Irradn测试采用金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)和明亮光照下以24小时接触的定制设计的攻击测试中实现的对数减少值。参见Hamblin 2005关于光活化抗微生物效果的验证测试方案。
LgR在采用1和3分钟的接触时间的EN 13704和AOAC 2008.05测试中和采用1分钟的接触时间的消毒效果的AOAC 961.02测试中所达到的log10减少。
这些研究结果表明杀孢子活性显著增强：该杀微生物活性是针对孢子而不是针对营养细胞，与文献中所报道的光动力激活的几个小时相比，该杀微生物活性只需要一至三分钟的非常短的接触时间。令人惊讶的是，酞菁铝和/或酞菁锌络合物的水溶液的杀微生物效果、尤其是杀孢子效果可以通过将其与季铵、双胍杀微生物剂和过氧化氢结合来大大地并明显增强。
示例2
在几种不同类型的细菌或真菌上测试不同浓度的上述MEDITEX溶液，结果如下所示。
1、对须癣毛癣菌(Trichophyton mentagrophytes)ATCC#9533的参考菌株的杀真菌活性。
名称 浓度
MEDITEX擦拭物 10％
2、参考：
测试方法：根据AOAC国际，2000，官方分析方法。第1卷，第6章，955.17消毒剂的杀真菌活性。
3、介质：
a)培养基：
葡萄糖肉汤
具有0.07％卵磷脂、0.5％聚山梨醇酯80的葡萄糖肉汤
葡萄糖琼脂
b)测试生物体：须癣毛癣菌(Trichophyton mentagrophytes)ATCC#9533
4、介绍：
本报告详述了对消毒剂的杀真菌功效评价的评价程序。根据AOAC官方分析方法中所述的步骤，测试产品对抗须癣毛癣菌(Trichophyton mentagrophytes)#9533，消毒剂的杀真菌活性(955.17)。
5、步骤
接种物制备：
将须癣毛癣菌(Trichophyton mentagrophytes)ATCC#9533转移到5个葡萄糖琼脂的培养皿中，并在25-30℃孵育10-15天。孵育后，使用无菌刮刀从琼脂表面除去菌丝垫(mycelial mats)，并将其转移至无菌组织研磨器并使用25ml磷酸盐缓冲液进行浸渍。将悬浮液通过含有湿棉花的无菌漏斗进行过滤，并将悬浮液用磷酸盐缓冲液标准化，使其包含约106分生孢子/ml。对分生孢子悬浮液进行标准平皿计数以测定测试生物体的滴度。
测试性能：
将5ml的每种测试溶液置于60个25×150mm试管中，并将管置于20±1℃水浴中。使用校准的微量移液器，将0.5ml分生孢子悬浮液置于第一管的测试溶液中，摇动，并立即放回水浴。30秒的间隔后，将0.5ml分生孢子悬浮液加入第二管。以30秒的间隔重复这一过程，直到所有试管都被接种。10分钟后，用4mm接菌环从每个试管中取出样品并将其置于20ml葡萄糖肉汤中。将试管在27-29℃下孵育10天，然后检查攻击生物体的生长。
耐苯酚性：
根据1:60和1:70的苯酚稀释液测定测试培养基的耐苯酚性。将5％的苯酚原液(1：20)进一步稀释以制备所需的稀释液。将5毫升每种稀释液的等分试样置于无菌试管中，并使其在20±0.5℃水浴中平衡。准备其它管，将温度计放置在该管中以显示出何时苯酚稀释液已经平衡至测试温度。将一个半毫升的分生孢子悬浮液以30秒的间隔加入每个试管中。轻轻搅拌试管以分散培养基并将其放回水浴。曝光时间为5、10和15分钟。在适当的暴露时间后，从测定试管中取出充满的接菌环(以300°弯曲的4mm接菌环)并转移至LETH管中。将LETH管在27-29℃孵育4天。将攻击生物体的生长报告为阳性或阴性。
中和验证：
选择六个无生长的试管，并且向每个试管中加入适量的测试菌株培养物以传递5-100CFU/管。孵育该管并检查其生长/无生长。验收标准：所有管中生长。通过浇注平板法确认加入到每个试管中的CFU数量。
培养基的生长促进：
根据实验室质量保证实践。
无菌对照：
测试还包括两管葡萄糖肉汤作为介质对照。测试中孵育所有管以确认测试中使用的回收培养基的无菌性。
6、结果
须癣毛癣菌(Trichophyton mentagrophytes)的滴度为5.7×106分生孢子/ml。
分生孢子须要在1：70的苯酚稀释液而不是1：60的苯酚稀释液的暴露下存活10分钟。测试培养物在两种苯酚稀释液的暴露下存活10分钟，为测试提供了更严格的挑战。中和效果：对所有介质管在4天时显示出生长。
7、结论：
根据AOAC官方分析方法，消毒剂的杀真菌活性(955.17)产品：在10分钟接触时间下，10％的MEDITEX擦拭物对须癣毛癣菌(Trichophyton mentagrophytes)ATCC#9533的参照菌株具有令人满意的杀真菌活性。
示例3
对金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)ATCC 43300(MRSA)的消毒
试验样品的鉴定
产品名称 MEDITEX擦拭物
活性物质及其(它们)的 10％浓度
应用 消毒
2、参考
AOAC官方方法955.15。对金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的消毒剂测试采用稀释法。
3、目的：
确定对实际消毒剂有效的最大稀释度。
4、介质：
培养基：
营养肉汤
合成肉汤
Letheen肉汤
营养琼脂
TSA琼脂
Baird Parker琼脂
5、测试生物体
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)ATCC 43300(MRSA)
6、装置：
载体：抛光不锈钢圆筒(6x8x1mm)
玻璃器皿-一次性无菌体积计量的移液吸管、烧瓶、硼硅酸盐玻璃管。
玻璃管
培养皿。
接种环。
pH计。
毛细吸管-0.1ml，刻度至0.01ml。
显微镜载玻片。
水浴
超声仪
玻璃微珠。
孵育箱
涤纶拭子(swab)
无菌吸水垫
分光光度计
7、载体制备：
根据AOAC 955.15
8、测试培养物的制备：根据AOAC 955.15
9、消毒样品制备：
将即用型消毒剂置于25×10mm试管中，每试管10ml，每个载体一个试管。将试管置于平衡水浴中保持10分钟。
10、操作技术：
将每个不锈钢圆筒(“载体”)转移到包含测试培养物的管中。在15±2分钟后，从管中取出载体，摇动载体以除去过量的培养物，并将其置于培养皿滤纸上的垂直位置。将平板在36℃孵育箱中孵育40分钟。在所需的干燥时间后，将包含干燥生物膜的载体从培养皿中依次转移到包含消毒剂的试管中。曝光时间结束后(1分钟)，将载体依次转移到液体继代培养基(Letheen肉汤)管中。将包含载体的继代培养管在36℃下孵育48小时。对混浊度的有无进行目视检查(生长或不生长)。
11、存活率对照：
将2个干燥的接种载体置于包含10ml Letheen肉汤的单独的管中，并将管在36℃下孵育48h。
12、阳性载体的验证
通过在TSA琼脂和Baird Parker琼脂上接种对测试生物的阳性载体进行检测。
13、载体的存活细菌计数
将5个接种的干燥载体置于letheen肉汤管中，并在超声浴中超声处理1分钟。通过采用浇注平板法，用10倍稀释液和TSA琼脂平板的测定细菌计数。
14、中和确定：
用0.01ml的100-1000cfu/ml的测试微生物接种五个阴性管(无生长)
将管在36℃下孵育48h。
检查管的生长。
15、验收标准：
对于测试生物体，60个试管中的57个中没有生长。在每个中和确定管中生长。在每个存活对照管中生长。平均Log 10密度：6.0-7.0。在阳性管中没有非测试生物污染。
16、结论：
消毒剂Meditex擦拭物10％在1分钟接触时间内符合AOAC 955.15对金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)ATCC 43300(MRSA)进行消毒的要求。
示例4
重要的是，发现Meditex组合物在1％浓度下对金黄色葡萄球菌(Staphylococcusaureus)ATCC 43300(MRSA)的消毒是有效的，如下所示：
试验样品的鉴定
产品名称 Meditex
活性物质及其(它们)的 10％浓度
应用 消毒
2、参考
AOAC官方方法961.02。杀菌喷雾产品作为消毒剂。1961年第一行动方法。1964年最后一行动方法
3、目的：
确定喷雾和加压喷雾产品作为污染表面的点消毒剂的有效性。
4、介质
培养基：
营养肉汤
Bacto合成肉汤AOAC
Letheen肉汤
胰蛋白酶大豆琼脂
营养琼脂
甘露醇盐琼脂
生理盐水(0.85％NaCl)
无菌蒸馏水
5、测试生物体
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)ATCC 43300(耐甲氧西林)-MRSA
6、装置：
玻璃器皿-一次性无菌体积计量的移液吸管、烧瓶、硼硅酸盐玻璃管。
玻璃
管子
培养皿。
接种环。
pH计。
毛细吸管-0.1ml，刻度至0.01ml。
显微镜载玻片。
水浴
超声仪
玻璃微珠。
孵育箱
涤纶拭子(swab)
无菌吸收垫
分光光度计
7、操作技术：
充分振荡金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的18-48小时营养肉汤培养物。将0.01ml的测试悬浮液转移到培养皿中的无菌测试载玻片上，并立即将其铺展在整个区域上。将培养皿立即盖上。将在12个载玻片上重复进行该过程(其中2个用于对照)。所有载玻片在37℃下干燥30-40分钟。将10个载玻片在1ft的距离处喷涂10秒。将每个载玻片保持1分钟，排出过量液体，并转移到包含20ml适当的继代培养基的管中。将培养物充分振荡。将2个未喷涂的载玻片转移至单独的继代培养管中(存活对照)。将该过程重复5次。在37℃下将所有管孵育48h。将结果读为生长/无生长。
8、中和确定：
将3个喷雾载玻片转移到葡萄糖肉汤容器中保持30分钟。然后将载玻片取出并用0.01ml接种物接种，并转移至letheen肉汤中。
9、验收标准：
测试生物的60个试管中有58个没有生长。在中和确定管中生长。在阳性管中没有非测试生物污染。
10、结论：
消毒剂Meditex符合在1分钟接触时间AOAC 961.02对金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)ATCC 43300消毒的要求。
示例5
目的：评价硬表面上对猪霍乱沙门氏菌(Salmonella choleraesuis)的消毒剂的功效。
产品
名称 浓度
MEDITEX擦拭物 10％
参考：AOAC官方方法991.47。测试针对猪霍乱沙门氏菌(Salmonellacholeraesuis)的消毒剂。硬表面载体测试方法。1991年第一行动方法。
介质
培养基：
营养肉汤
Bacto合成肉汤AOAC
Letheen肉汤
胰蛋白酶大豆琼脂
营养琼脂
MacConkey琼脂
磷酸盐缓冲液稀释水(PBDW)
过滤灭菌的葡萄糖溶液，10％(重量/体积)
3、测试生物体：猪霍乱沙门氏菌(Salmonella choleraesuis)ATCC 10708
4、装置：
玻璃器皿-一次性无菌体积计量的移液吸管、烧瓶、硼硅酸盐玻璃管。
玻璃管
培养皿。
水浴，能够维持在20℃±0.5℃的温度.
试管架
接种环。
线钩。
温度计。
载体-一次性抛光硼硅酸盐玻璃，长度10±1mm，内径6±1mm，外径8±1mm。
涤纶拭子(swab)
带分配器的无菌吸收垫-直径47mm的纤维素纤维垫。
无菌过滤系统。
超声仪。
分光光度计。
pH计。
5、操作技术：
载体制备：根据AOAC 991.47C(a)。
培养物制备：根据AOAC 991.47C(d)。
标准曲线的绘制：根据AOAC 991.47C(c)。
6、培养物标准化：
测定根据段落b)制备的培养物的透射百分比。使用合成肉汤将培养物调节至5-10×109cfu/ml的浓度。
7、载体接种：
从制备的载体无菌地除去水，并加入24ml标准化培养物(每种载体1ml)(载体完全浸没)。将试管盖上并在室温下保持15分钟。然后将载体从悬浮液中取出，直到将12个载体置于具有滤纸的培养皿中。移动每个载体(在除去过量培养基之后)，使其分别直立在滤纸的干燥部分上。干燥每个载体的环内部。覆盖培养皿并将培养皿运送到孵育箱中，且使载体保持直立。将培养皿在37℃的孵育箱中干燥40分钟。将每种载体置于10ml的letheen肉汤中并超声处理10分钟。重复该过程以获得用于测试的60个载体。从每个平板的一个柱上计数负载的载体细菌。
8、测试产品制备：
将10ml测试溶液(从擦拭物中挤出)置于20个试管的每一个中。将管置于20±0.5℃的水浴中超过10分钟，直到其内容物达到水浴温度。将该过程重复，得到60个用于测试的管。
9、载体曝光：
每30秒将受污染和干燥的载体加入到1个测试产品管中。在第一载体时启动定时器。在1分钟时，按插入顺序每30秒将载体去除并转移至letheen肉汤管中。晃动管并在37℃下孵育48-54h。确认阳性管的测试生物的生长。
10、中和确定：
为每10个测试的管随机选择阴性管。用低于100cfu/管对其接种(确切的数字用浇注平板法测定)。将管在37℃下孵育48-54h并检查其生长。
11、验收标准：
平均细菌计数需要为0.5-2.0×106cfu/干载体。在60个所测试的载体中≤2阳性(生长)载体。在阳性管中没有非测试生物污染。所有中和确定管中生长。
12、结论：
消毒剂MEDITEX擦拭物10％在1分钟接触时间符合AOAC 991.47对猪霍乱沙门氏菌(Salmonella choleraesuis)感染的消毒的要求。
示例5
实施该测试是为了测试PurePurge的2％溶液的用抗微生物处理的检测手套评价微生物接触转移的效果。
1、试验样品的鉴定
2、参考：用抗微生物处理的检测手套评价微生物接触转移的标准测试方法
3、试剂和材料
牛血清白蛋白
Letheen肉汤
Letheen琼脂
PBS
不锈钢片
TSB
4、实验条件：
测试温度 20℃+0.5℃
测试产物的浓度 NA
接触时间 1min曝光，5min等待,1min再次曝光
干扰物质 5％牛血清白蛋白
中和剂 Letheen肉汤
稀释剂 标准硬度水
微生物 金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)ATCC
孵育温度 32℃+1℃
5、方法
介绍：该测试方法用于测量抗微生物处理的检测手套减少已知细菌群落从皮肤到表面和从表面到皮肤接触转移的能力
微生物原液悬浮液的制备
通过将微生物悬浮在TSB培养基中并在37±2℃下振荡孵育18±2小时对微生物进行两次回收。孵育之后，将微生物离心并用PBS洗涤3次。将微生物再次重悬于包含5％牛血清白蛋白的PBS中。
手套的制备
在开始测试之前将手套在光照中暴露1分钟。
原理：
将100μl制备的接种物放置在不锈钢片上并涂覆1分钟。使手套与不锈钢片接触1分钟。使手套在环境室内条件下静置5分钟。然后使手套与新的不锈钢片接触1分钟。在暴露期后，将不锈钢片放入包含25ml letheen肉汤的罐中。将该罐涡旋2min，然后以5×1分钟间隔、在每个间隔之间等待1分钟进行超声。将该罐再次涡旋1分钟。通过10倍连续稀释至10-6测定细菌计数。将所有稀释液一式两份地铺板。将平板在35±2℃下孵育48±4h。
6、结果：总结于以下表中
7、结论：根据用抗微生物处理的检测手套评价微生物接触转移的测试方法，产品：在外侧涂覆2％的PurePurge的不含腈粉末的3.0Mil White显示出减少了金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)ATCC 43300从皮肤到表面和从表面到皮肤接触转移的能力。值得注意的是，对肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumonia)ATCC 4352进行相同的测试，但发现其无效。
示例7
以下示例显示了以下组分在水溶液中的组合提供具有不同浓度的PurePurge配方的溶液的效果。
成分 CAS No ％重量/体积
酞菁锌 14320-04-8 0.046
辛酸钠 1984-06-1 0.025
氯化甲基硫堇鎓 7220-79-3 0.25
二甲基亚砜 67-68-5 27.5
在较脏的条件下用2％的PurePurge处理5分钟和24小时的手套。
1、参考：ISO 22196:2007(E)。塑料-测量塑料表面的抗菌活性。
2、介绍：
用该产品处理限定的表面区域，然后5分钟以后用所测试的微生物进行污染。
3、产品：
产品名称
采用2％的PurePurge处理的手套
4、验收标准：
平均U0为：6.2×103≤U0≤2.5×104。
平均Ut≥6.2×101。
5、测试生物体：
大肠杆菌(Esherichia coli)ATCC 8739
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)ATCC 6538
6、介质：
TSB(胰蛋白酶大豆肉汤)
PBS(磷酸盐缓冲盐水)
TSA(胰蛋白酶大豆琼脂)BP(Baird Parker琼脂)TBX培养基
中和剂：
LB(改性Letheen肉汤)
7、测试生物体的制备：
在37℃下，将每种靶生物体的过夜孵育的培养物在TSB中生长至少18小时。使用PBS将过夜培养物调整至细菌浓度为2.5×105cfu/ml至10×105cfu/ml。制备接种物的系列稀释液并将其涂覆在TSA上，得到初始接种物计数。将平板在37℃下孵育24小时。
8、测试试样：平的、50mm×50mm的产品片。
9、对照试样：来自匀浆袋(stomacher bag)的平的、50mm×50mm的剪出样(Cutouts)。膜：匀浆袋(stomacher bag)的剪出样(Cutouts)(40mm×40mm)
干扰物质：
10、较脏条件-3.0g/l牛血清白蛋白
11、测试操作：
测试以一式三份进行。
将9个测试试样分别放入单独的无菌培养皿中。
将3个试样作为测试试样。
将6个试样作为对照试样。
暴露期后，采用0.4ml所测试的微生物悬浮液接种每个试样。每个试样都用一片膜覆盖。轻轻地按下膜，使得测试接种物扩散到边缘。用盖子覆盖每个培养皿。将3个未处理和接种的试样保持5分钟，然后回收细菌。将其它培养皿(3个测试和3个对照试样)在35℃下孵育5分钟。
12、回收：将试样转移到包含10ml中和肉汤的单个容器中。充分振荡容器。通过使用标准微生物系列的稀释剂、浇注平板计数程序和选择性培养基平板(用于大肠杆菌(Esherichia coli)的TBX)测定孵育后微生物的存活率。将平板在37℃下孵育24小时。计算孵育后回收的微生物数量。
13、干扰物质无菌对照：
培养、孵育干扰物质，并目视检查干扰物质的生长。这项研究对照的验收标准是缺乏生长。
14、载体无菌对照：
将三种未接种的载体加入至TSB培养基中，孵育并目视检查其生长。这项研究对照的验收标准是缺乏生长。
15、结果：
缩写：
R-抗菌活性(对数减少)。
U0-在接种后立即从未处理的测试试样回收的存活细菌数目的常用对数(以细胞/cm2计)的平均值。
UT-5分钟后从未处理的测试试样回收的存活细菌数目的常用对数(以细胞/cm2计)的平均值。
At-5分钟后从处理的试样中回收的存活细菌数目的常用对数(以细胞/cm2计)的平均值。
对照 对照1 对照1
干扰物质无菌性 无生长 无生长
对照试样无菌性 无生长 无生长
16、结论：
参考ISO 22196，用2％的PurePurge(批号No.lab/281013/2)处理的产品手套在5分钟的较脏条件下，在表面对大肠杆菌(Escherichia coli)、金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的参考菌株具有杀菌活性。
值得注意的是，使用相同的条件在24小时后测试生长。下面显示了24小时的结果。
17、24小时的结果：
缩写：
R-抗菌活性(对数减少)。
U0-在接种后立即从未处理的测试试样回收的存活细菌数目的常用对数(以细胞/cm2计)的平均值。
UT-24小时后从未处理的测试试样回收的存活细菌数目的常用对数(以细胞/cm2计)的平均值。
At-24小时后从处理的试样中回收的存活细菌数目的常用对数(以细胞/cm2计)的平均值。
对照 对照1 对照1
干扰物质无菌性 无生长 无生长
对照试样无菌性 无生长 无生长
18、结论：
参考ISO 22196，用2％的PurePurge(批号No.lab/281013/2)处理的产品手套在24小时的较脏条件下，在表面对大肠杆菌(Escherichia coli)、金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的参考菌株具有杀菌活性。
示例8
在5分钟和24小时的较脏条件下采用5％的PurePurge处理的手套。
1、参考：ISO 22196:2007(E)。塑料-塑料表面抗菌活性的测量。
2、介绍：
采用所测试的微生物污染5分钟后，用该产品处理限定的表面区域。
3、产品：
产品名称
采用5％的PurePurge处理的手套
4、验收标准：
平均U0为：6.2×103≤U0≤2.5×104。
平均Ut≥6.2×101。
5、测试微生物：
大肠杆菌(Esherichia coli)ATCC 8739
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)ATCC 6538
6、介质：
TSB(胰蛋白酶大豆肉汤)
PBS(磷酸盐缓冲盐水)
TSA(胰蛋白酶大豆琼脂)BP(Baird Parker琼脂)TBX培养基
中和剂：
LB(改性Letheen肉汤)
7、测试生物体的制备：
在37℃下，将每种目标生物体的过夜孵育的培养物在TSB中生长至少18小时。使用PBS将过夜培养物调整至细菌浓度为2.5×105cfu/ml至10×105cfu/ml。制备接种物的系列稀释液并将其涂覆在TSA上，得到初始接种物计数。将平板在37℃下孵育24小时。
8、测试试样：平的、50mm×50mm片状产品。
9、对照试样：来自匀浆袋(stomacher bag)的平的、50mm×50mm的剪出样(Cutouts)。膜：匀浆袋(stomacher bag)的剪出样(Cutouts)(40mm×40mm)
10、干扰物质：
较脏条件-3.0g/l牛血清白蛋白
11、测试操作：
测试以一式三份进行。
将9个测试试样分别放入单独的无菌培养皿中。
将3个试样作为测试试样。
将6个试样作为对照试样。
暴露期后，采用0.4ml所测试的微生物悬浮液接种每个试样。每个试样都用一片膜覆盖。轻轻地按下膜，使得测试接种物扩散到边缘。用盖子覆盖每个培养皿。将3个未处理和接种的试样保持5分钟，然后回收细菌。将其它培养皿(3个测试和3个对照试样)在35℃下孵育5分钟。
12、回收：将试样转移到包含10ml中和肉汤的单个容器中。充分振荡容器。通过使用标准微生物系列稀释剂、浇注平板计数程序和选择性培养基平板(用于大肠杆菌(Esherichia coli)的TBX)测定孵育后微生物的存活率。将平板在37℃下孵育24小时。计算孵育后回收的微生物数量。结果示于下文。
13、研究对照：该结果也示于下文。干扰物质无菌对照：培养、孵育干扰物质，并目视检查干扰物质的生长。
这项研究对照的验收标准是缺乏生长。
14、载体无菌对照：
将三种未接种的载体加入至TSB培养基中，孵育并目视检查其生长。这项研究对照的验收标准是缺乏生长。
15、结果：
缩写：
R-抗菌活性(对数减少)。
U0-在接种后立即从未处理的测试试样回收的存活细菌数目的常用对数(以细胞/cm2计)的平均值。
UT-5分钟后从未处理的测试试样回收的存活细菌数目的常用对数(以细胞/cm2计)的平均值。
At-5分钟后从处理的试样中回收的存活细菌数目的常用对数(以细胞/cm2计)的平均值。
对照 对照1 对照1
干扰物质无菌性 无生长 无生长
对照试样无菌性 无生长 无生长
16、结论：
参考ISO 22196，用5％的PurePurge(批号No.lab/281013/5)处理的产品手套在5分钟的较脏条件下，在表面对大肠杆菌(Escherichia coli)、金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的参考菌株具有杀菌活性。
值得注意的是，使用相同的条件在24小时后测试生长。下面显示了24小时的结果。
17、结果：
缩写：
R-抗菌活性(对数减少)。
U0-在接种后立即从未处理的测试试样回收的存活细菌数目的常用对数(以细胞/cm2计)的平均值。
UT-24h后从未处理的测试试样回收的存活细菌数目的常用对数(以细胞/cm2计)的平均值。
At-24h后从处理的试样中回收的存活细菌数目的常用对数(以细胞/cm2计)的平均值。
对照 对照1 对照1
干扰物质无菌性 无生长 无生长
对照试样无菌性 无生长 无生长
18、结论：
参考ISO 22196，用5％的PurePurge(批号No.lab/281013/5)处理的产品手套在24h的较脏条件下，在表面对大肠杆菌(Escherichia coli)、金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)的参考菌株具有杀菌活性。
示例9
在另一个实施方案中，本发明的光动力组合物通过将以下组分进行组合来制备，如下表所示。数量以重量百分比表示。
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Claims (18)

1.一种水性组合物，其包括酞菁锌或酞菁铝、作为游离酸或其碱金属盐的羧酸C6至C11和/或羟基酸C2至C6；二甲基亚砜和任选地选自噁嗪染料、噻嗪染料和/或包含三芳基甲基染料的生物染料，其中所述组合物治疗或抑制人和动物体内由病原微生物引起的感染性疾病。
2.根据权利要求1所述的水性组合物，其中所述病原微生物选自细菌、真菌、藻类、酵母、细菌孢子或真菌孢子。
3.根据权利要求1所述的水性组合物，其中所述酞菁铝或酞菁锌的量在约0.03％至约0.5％范围内，所述辛酸钠的量在约0.01％至约0.5％范围内，所述生物染料的量在约0.1％至约0.5％范围内，所述二甲基亚砜的量在约20％至约30％范围内，并且乳酸的量在约0.20％重量/体积至约1.5％重量/体积范围内。
4.根据权利要求1所述的水性组合物，其中所述生物染料选自苯并[a]吩噁嗪-7-鎓、5-氨基-9-(二乙氨基)-、硫酸盐(尼罗蓝)；3,7-双(二甲氨基)吩噻嗪-5-鎓氯化物(亚甲基蓝或甲基硫堇鎓氯化物)；8-二甲氨基-2,3-苯并吩噁嗪半(氯化锌)盐(麦尔多拉蓝)；吩嗪-5-鎓、3-氨基-7-(二乙氨基)-2-甲基-、氯锌酸盐(亮甲酚蓝)；吩噻嗪-5-鎓、3-氨基-7-(二甲氨基)-2-甲基-、氯化物(1：1)(甲苯胺蓝)；[7-(二甲氨基)-4-硝基吩噻嗪-3-亚基]-二甲基氯化铵(亚甲绿)；甲铵、N-[4-[[4-(二甲氨基)苯基]苯基亚甲基]-2,5-环己二烯-1-亚基]-N-甲基-、氯化物(1：1)(维多利亚绿)；乙铵、N-[4-[[4-(二乙氨基)苯基]苯基亚甲基]-2,5-环己二烯-1-亚基]-N-乙基-、硫酸盐(亮绿)；甲铵、N-[4-[[4-(二甲氨基)苯基]苯基亚甲基]-2,5-环己二烯-1-亚基]-N-甲基、氯化物(孔雀绿)；4-[(4-氨基苯基)-(4-亚氨基-1-环己-2,5-二烯基)甲基]苯胺盐酸盐(Fuschine)和4,4'-[(4-亚氨基-2,5-环己二烯-1-亚基)亚甲基]双苯胺单盐酸盐(碱性Fuschine)。
5.根据权利要求1所述的水性组合物，还包括过氧化氢或叔丁基过氧化氢和任选地至少一种阳离子杀微生物剂。
6.根据权利要求5所述的水性组合物，其中所述阳离子杀微生物剂选自胍盐类或季铵盐类。
7.根据权利要求6所述的水性组合物，其中所述胍盐类选自氯己定二葡萄糖酸盐、氯己定二盐酸盐和氯己定二乙酸盐；六亚甲基双(乙基己基)双胍二盐酸盐；氧代亚环己二烯基氨基胍缩氨硫脲；双(氯苯基脒基)哌嗪二甲脒二盐酸盐或聚六亚甲基双胍盐酸盐。
8.根据权利要求6所述的水性组合物，其中所述季铵盐类为选自由烷基苄基二甲基氯化铵、烷基(C12-16)二甲基苄基氯化铵、苄基己基二甲基氯化铵、苄基辛基二甲基氯化铵、苄基癸基二甲基氯化铵、苄基十二烷基二甲基氯化铵、苄基十四烷基二甲基氯化铵和苄基十八烷基二甲基氯化铵组成的组的一者。
9.一种用于清洁表面的试剂盒，所述试剂盒包括根据权利要求1所述的水性组合物和至少一个用于施用该组合物的敷抹器。
10.根据权利要求9所述的试剂盒，其中所述敷抹器包括吸收材料和吸收在其中的所述组合物。
11.一种用于对抗在有机或无机基板中或在有机或无机基板上的微生物的方法，所述方法包括在氧和水的存在下，在可见光和/或红外光照射的同时，采用根据权利要求1所述的组合物处理所述基板。
12.根据权利要求11所述的方法，其中所述表面被一种以上微生物所污染，所述微生物包括细菌、真菌、藻类、酵母、细菌孢子和真菌孢子。
13.一种用于对抗在有机或无机基板中或在有机或无机基板上的微生物的方法，所述方法包括在氧和水的存在下，在可见光和/或红外光照射的同时，采用根据权利要求5所述的组合物处理所述基板。
14.根据权利要求13所述的方法，其中所述表面被一种以上微生物所污染，所述微生物包括细菌、真菌、藻类、酵母、细菌孢子和真菌孢子。
15.一种消毒表面的方法，所述方法包括施加根据权利要求1所述的组合物，并将该表面暴露于波长在紫外线至红外线范围内的电磁照射。
16.根据权利要求15所述的方法，其中所述水性组合物还包括过氧化氢、叔丁基过氧化氢和/或至少一种阳离子杀微生物剂。
17.根据权利要求16所述的方法，其中所述胍盐类选自氯己定二葡萄糖酸盐、氯己定二盐酸盐和氯己定二乙酸盐；六亚甲基双(乙基己基)双胍二盐酸盐；氧代亚环己二烯基氨基胍缩氨硫脲；双(氯苯基脒基)哌嗪二甲脒二盐酸盐或聚六亚甲基双胍盐酸盐。
18.根据权利要求16所述的方法，其中季铵盐类为选自由烷基苄基二甲基氯化铵、烷基(C12-16)二甲基苄基氯化铵、苄基己基二甲基氯化铵、苄基辛基二甲基氯化铵、苄基癸基二甲基氯化铵、苄基十二烷基二甲基氯化铵、苄基十四烷基二甲基氯化铵和苄基十八烷基二甲基氯化铵组成的组的一者。
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