CN103983621A - 一种山楂中黄酮成分的荧光检测方法 - Google Patents
一种山楂中黄酮成分的荧光检测方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103983621A CN103983621A CN201410126992.2A CN201410126992A CN103983621A CN 103983621 A CN103983621 A CN 103983621A CN 201410126992 A CN201410126992 A CN 201410126992A CN 103983621 A CN103983621 A CN 103983621A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- kaempferol
- capillary electrophoresis
- hawthorn
- typical curve
- buffer solution
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
Abstract
本发明提供了一种山楂中黄酮成分的荧光检测方法：先用甲醇提取山楂得到山楂提取液，稀释后作为样品液，进行毛细管电泳荧光检测，毛细管柱中填充微乳缓冲溶液，所述微乳缓冲溶液的成分为：两性离子表面活性剂3～12mg/mL、助表面活性剂55～70mg/mL、乙酸乙酯4.5～6mg/mL、2.5～10mmol/L的缓冲盐、pH值为8～10。然后根据对照品的标准曲线计算得到山楂中各黄酮成分的含量。本发明针对现有色谱技术的不足，提供了一种制备简单、溶解能力好、粘度低、稳定性好的微乳缓冲液，并在缓冲液中创新使用中性两性离子表面活性剂；同时，本发明优先使用灵敏度高、重复性好的发光二极管诱导荧光检测器，并在黄酮检测方面取得了显著的效果。
Description
技术领域
本发明涉及一种利用发光二极管诱导荧光器的中药检测方法，可实现对山楂中不同黄酮成分的品质检测，属于中药分析检测技术领域。
背景技术
山楂，蔷薇科植物山里红Crataegus pinnatifida Bge.var.major N.E.Br.或山楂Crataeguspinnatifida Bge.的干燥成熟果实。山楂果中含糖类、蛋白质、黄酮类化合物、胡萝卜素、淀粉、苹果酸、钙、铁等物质，但以黄酮类化合物含量最高。山楂入药已久，据药典记载，山楂具有消积化滞、活血化淤、扩张血管、增加冠脉血流量、改善心脏活力、兴奋中枢神经系统、软化血管及利尿和镇静等作用。最新研究还发现山楂果中的牡荆素化合物对癌细胞体内生长、增殖和浸润转移有一定的抑制作用。
当今社会，高血压、高血脂等心脑血管疾病已严重影响人类的身体健康，因此，对具有降压、降脂功效的药物的开发变得越来越重要；研究表明，黄酮类化合物在这方面具有较好的疗效，而黄酮类物质广泛存在于自然界的某些植物和浆果中，且具有多种结构；许多年前，科学家在银杏树中提取出了黄酮，现主要在银杏叶和山楂叶中提取，但是含量相对较低，提取工艺还存在限制。而山楂果实中含有丰富的黄酮，具有很高的利用价值。
近年来，以色谱为主的现代分析技术已广泛应用于山楂体系,并且获得了一定的效果。但是,荧光分析特别是对发光二极管诱导荧光检测分析的报道并不多见。荧光是一种自然发光反应，它是利用频率相同的光照射样品，使样品中的电子吸收能量后发生跃迁，从而释放出光。目前对山楂成分的研究表明，具有多个共轭结构或刚性的平面结构的物质能产生荧光。而黄酮类物质作为这样的存在能在检测器下被检测。同时，发光二极管诱导荧光检测法是一种高效、快速、微量的检测方法，而LED作为光源具有结构简单、性能稳定、造价低廉的优点。
微乳电动色谱应用广泛，能同时分离水溶性的、脂溶性的、带电的和不带电的物质，微乳液是由表面活性剂、助表面活性剂、油相和盐溶液所形成的稳定透明液体。微乳的种类按表面活性剂可分为阴离子表面活性剂微乳、阳离子表面活性剂微乳、两性离子表面活性剂微乳和非离子表面活性剂微乳。目前，还未见有关使用中性两性离子表面活性剂形成的微乳来作为固定相的报导。
基于上述背景，有效检测山楂中各种黄酮成分将有助于山楂分析工作的开展。目前，已有较多文献报导对山楂中黄酮成分的检测，但检测的方法以及仪器的选择和使用较为单一，基本是以高效液相色谱作为主要的检测体系，但HPLC成本高，需要各种填料柱，流动相消耗大且有毒性的居多。鉴于上述问题，本发明提供了一种方便，安全且检测准确度稳定的一种荧光检测方法。
发明内容
本发明的目的在于提供一种快速、方便、准确进行山楂黄酮检测的方法。该技术针对现有色谱技术的不足，提供了一种制备简单、溶解能力好、粘度低、稳定性好的微乳缓冲液，并在缓冲液中创新使用两性离子表面活性剂；同时，本发明优先使用灵敏度高、重复性好的发光二极管诱导荧光检测器，并在黄酮检测方面取得了显著的效果。
本发明采用的技术方案是：
一种山楂中黄酮成分的荧光检测方法，所述方法包括以下步骤：
（1）山楂粉末加入甲醇溶剂，甲醇的体积用量以山楂粉末的质量计为10～30mL/g（优选15mL/g），称定重量为M，密闭后加热超声提取30～60分钟，冷却后加入甲醇补足至重量M，混匀后用0.22μm规格的有机膜过滤，离心，取续滤液制得山楂提取液；
（2）取步骤（1）所得山楂提取液，用甲醇稀释10～15体积倍后作为样品液进样，进行毛细管电泳荧光检测，毛细管柱中填充微乳缓冲溶液，所述微乳缓冲溶液的成分为：两性离子表面活性剂3～12mg/mL、助表面活性剂55～70mg/mL、乙酸乙酯4.5～6mg/mL、2.5～10mmol/L的缓冲盐、pH值为8～10，25～30℃下超声20～30分钟，过滤、制得微乳缓冲溶液；
以发光二极管光诱导荧光检测器进行检测，检测波长480nm，得到样品液的毛细管电泳荧光光谱图；
（3）以山奈素的对照品配制不同浓度的对照品溶液，按照步骤（2）同样条件进行毛细管电泳色谱检测，获得山奈素对照品的毛细管电泳荧光光谱图，以山奈素对照品的浓度为横坐标，以山奈素对照品溶液的毛细管电泳荧光光谱图中色谱峰的峰面积为纵坐标制作山奈素标准曲线，按同样方法制作芹菜素标准曲线、槲皮素标准曲线、异牡荆素标准曲线、牡荆素标准曲线、异槲皮素标准曲线、金丝桃苷标准曲线；根据样品液的毛细管电泳荧光光谱图中相应色谱峰的峰面积及各个标准品的标准曲线计算样品液中山奈素、芹菜素、槲皮素、异牡荆素、牡荆素、异槲皮素、金丝桃苷含量，相应换算得到山楂中山奈素、芹菜素、槲皮素、异牡荆素、牡荆素、异槲皮素、金丝桃苷含量。
所述两性离子表面活性剂为3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱、3-磺丙基十四烷基二甲基甜菜碱或3-磺丙基十六烷基二甲基甜菜碱，优选为3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱。
所述助表面活性剂为异丙醇、正丁醇、戊醇或环己醇，优选为正丁醇。
所述缓冲盐为tris或硼砂，优选为硼砂。
进一步，优选硼砂在缓冲液中的浓度为5mmol/L。
所述微乳缓冲溶液的pH值为8～10，优选为9。
进一步，优选所述微乳缓冲溶液的成分为：两性离子表面活性剂6mg/mL、助表面活性剂60mg/mL、乙酸乙酯5mg/mL、5mmol/L的缓冲盐、pH值为9；
更优选的，优选所述微乳缓冲溶液的成分为：3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱6mg/mL、正丁醇60mg/mL、乙酸乙酯5mg/mL、5mmol/L的硼砂、pH值为9。
所述步骤（1）中，所述毛细管电泳条件为:分离电压：30KV，柱温：35℃。
所述步骤（2）中，所述过滤优选用0.22μm规格的有机膜过滤。
所述步骤（1）中，所述加热超声提取优选加热至40～50℃，在100W,40kHz的条件下超声提取。
所述步骤（2）中，所述超声优选在100W,40kHz的条件下进行。
所述毛细管电泳可采用常规毛细管电泳设备，使用未涂层熔融石英毛细管柱，进样可采用压力进样或电压进样。
所述步骤（1）中，所述山楂提取液优选按以下步骤制得：山楂粉末（过三号筛）约1.0g，精密称定，置具塞广口瓶中，精密加入甲醇15mL，称定重量，加热40～50℃超声40分钟，放冷，再称定重量，用甲醇补足减失的重量，摇匀，用0.22μm规格的有机膜过滤，离心，取续滤液，即得山楂提取液。
较为具体的，推荐本发明所述方法按以下步骤进行：
（1）过三号筛的山楂粉末1.0g，精密称定，置具塞广口瓶中，精密加入甲醇15mL，称定重量M，加热40～50℃超声40分钟，放冷，再称定重量，用甲醇补足减失的重量至重量M，摇匀，用0.22μm规格的有机膜过滤，离心，取续滤液，即得山楂提取液；
（2）取步骤（1）所得山楂提取液，用甲醇稀释10～15体积倍后作为样品液进样，进行毛细管电泳荧光检测，毛细管电泳条件为：分离电压：30KV，柱温：35℃，毛细管柱中填充微乳缓冲溶液，所述微乳缓冲溶液的成分为：3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱6mg/mL、正丁醇60mg/mL、乙酸乙酯5mg/mL、5mmol/L的硼砂、pH值为9，25～30℃下超声20～30分钟，过滤、制得微乳缓冲溶液；
以发光二极管光诱导荧光检测器进行检测，检测波长480nm，得到样品液的毛细管电泳荧光光谱图；
（3）以山奈素的对照品配制不同浓度的对照品溶液，按照步骤（2）同样条件进行毛细管电泳色谱检测，获得山奈素对照品的毛细管电泳荧光光谱图，以山奈素对照品的摩尔浓度为横坐标，以山奈素对照品溶液的毛细管电泳荧光光谱图中色谱峰的峰面积为纵坐标制作山奈素标准曲线，按同样方法制作芹菜素标准曲线、槲皮素标准曲线、异牡荆素标准曲线、牡荆素标准曲线、异槲皮素标准曲线、金丝桃苷标准曲线；根据样品液的毛细管电泳荧光光谱图中相应色谱峰的峰面积及各个标准品的标准曲线计算样品液中山奈素、芹菜素、槲皮素、异牡荆素、牡荆素、异槲皮素、金丝桃苷含量，相应换算得到山楂中山奈素、芹菜素、槲皮素、异牡荆素、牡荆素、异槲皮素、金丝桃苷含量。
本发明的优点在于：
1.本发明方法创意新颖，思路巧妙。首次将两性离子表面活性剂加入到溶液中，形成溶解能力好、粘度低、稳定性好的微乳缓冲液，对黄酮物质能起到很好的分离效果。
2.本发明中首次使用发光二极管光诱导荧光检测器(LED)。该检测器是通过创新的共线光路设计，把分散的LED光聚集在检测器的毛细管窗口，从而获得和激光诱导荧光检测器同等的灵敏度。同时，LED光源在使用寿命以及价格方面都有了很大的突破，和激光光源相比，LED的寿命更长，而价格只有激光光源的一半左右，大大降低了生产成本。
3.本方法应用范围广泛，无论是山楂的原料药材还是山楂食品诸如开胃山楂、铁山楂等，均能用本检测方法进行检测分析。且本发明所述的检测山楂药材和山楂食品中黄酮成分这方面的应用应属首例。
4.本发明提供的实验检测效果显著，且操作环境安全，步骤简单，快速。
附图说明
图1为考察不同种类的表面活性剂的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c分别代表表面活性剂的不同种类，分别为：a为3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱；b为3-磺丙基十四烷基二甲基甜菜碱；c为3-磺丙基十六烷基二甲基甜菜碱。
图2为考察不同浓度的表面活性剂的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c、d分别代表表面活性剂的不同浓度，分别为：a为3mg/mL；b为6mg/mL；c为9mg/mL；d为12mg/mL。
图3为考察不同种类的助表面活性剂的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c分别代表助表面活性剂的不同种类，分别为：a为异丙醇；b为戊醇；c为环己醇。
图4为考察不同浓度的助表面活性剂的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c、d分别代表助表面活性剂的不同浓度，分别为：a为55mg/mL；b为60mg/mL；c为65mg/mL；d为70mg/mL。
图5为考察不同种类的缓冲液的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c分别代表缓冲液的不同种类，分别为：a为tris；b为磷酸氢二钠；c为乙酸钠。
图6为考察不同浓度的缓冲液的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c、d分别代表缓冲液的不同浓度，分别为：a为2.5mmol/L；b为5.0mmol/L；c为7.5mmol/L；d为10mmol/L。
图7为考察不同的pH值的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c、d、e分别代表微乳缓冲溶液不同的pH值，分别为：a为pH8；b为pH8.5；c为pH9；d为pH9.5；e为pH10。
图8为山楂提取液的样品液的荧光光谱图。图中，1、2、3、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。
具体实施方式
由于此荧光检测方法应用范围广，故具体实施方案较多，下面结合实施例对本发明山楂黄酮的质量检测方法作进一步详细的描述。
本发明涉及的黄酮对照品溶液，其制备方法参照药典2010版，具体步骤为：分别取山奈素、芹菜素、槲皮素、异牡荆素、牡荆素、异槲皮素、金丝桃苷的对照品适量，精密称定，混合置容量瓶中，加甲醇制成每lml含山奈素0.1μg、含芹菜素0.3μg、含槲皮素0.5μg、含异牡荆素0.5μg、牡荆素0.5μg、异槲皮素10μg、金丝桃苷10μg的溶液，即得对照品溶液。
实施例1.表面活性剂种类的考察
1.1取3只干净的30ml广口瓶，编号1、2、3，其中1号瓶中加入18mg3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱，2号瓶中加入18mg3-磺丙基十四烷基二甲基甜菜碱、3号瓶中加入18mg3-磺丙基十六烷基二甲基甜菜碱，后分别在三只瓶中加入222μL正丁醇、16.6μL乙酸乙酯、750μL20mM硼砂水溶液、2.037ml水，30℃下超声（100W,40kHz）20分钟，配成微乳缓冲溶液。
1.2取3个0.22μm规格的有机膜过滤器，对应1-3号注射器编号为1、2、3、并根据对应的编号，用过滤器将注射器内的缓冲液过滤，一种缓冲液对应两个进样瓶，共装入6个进样瓶中。进样瓶中的缓冲液冲入毛细管柱中作为毛细管电泳的缓冲液，取对照品溶液进样。
毛细管电泳(安捷伦7100)条件为：未涂层熔融石英毛细管柱65cm×75μm i.d.，有效柱长44cm，分离电压：30KV，柱温：35℃，进样压力：50mbar，进样时间：5s。
荧光检测器（ZETALIFTM LED，皮克公司）条件为：检测波长480nm，Rise time A：0.1s，PM supply A：650V
图1显示了在不同种类表面活性剂下检测的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c分别代表表面活性剂的不同种类，分别为：a为3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱；b为3-磺丙基十四烷基二甲基甜菜碱；c为3-磺丙基十六烷基二甲基甜菜碱。
从上图可以发现，当表面活性剂从十二烷基变到十六烷基时，电流不变，μEOF从6.62*10-4变到6.45*10-4（cm2.V-1.s-1），分析物的迁移时间总体趋势变慢。而且，十六烷基缓冲液在室温下比较浑浊，需要在加热情况下才能澄清，可能原因为，随着两性离子表面活性剂中碳原子数目的增加，表面活性剂形成微乳的稳定性逐渐减弱，故3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱为最佳表面活性剂。
实施例2.表面活性剂浓度的考察
2.1取4只干净的30ml广口瓶，编号1、2、3、4，其中1号瓶中加入9mg3-磺丙基十二烷基二甲甜菜碱和2.046mL水，2号瓶加入入18mg3-磺丙基十二烷基二甲甜菜碱和2.037mL水，3号瓶中加入27mg3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱和2.028mL水、4号瓶中加入36mg3-磺丙基十二烷基二甲甜菜碱和2.019mL水，后分别在四只瓶中加入222μL正丁醇、16.6μL乙酸乙酯、750μL20mM硼砂水溶液，30℃下超声（100W,40kHz）20分钟，配成微乳缓冲溶液。
2.2取4个0.22μm规格的有机膜过滤器，对应1-4号注射器编号为1、2、3、4，并根据对应的编号，用过滤器将注射器内的缓冲液过滤，一种缓冲液对应两个进样瓶，共装入8个进样瓶中。进样瓶中的缓冲液冲入毛细管柱中作为毛细管电泳的缓冲液，取对照品溶液进样。
毛细管电泳条件为：未涂层熔融石英毛细管柱65cm×75μm i.d.，有效柱长44cm，分离电压：30KV，柱温：35℃，采用压力进样，进样压力：50mbar，进样时间：5s。
荧光检测器条件为：Rise time A：0.1s，PM supply A：650V
实验结果如下表1，表1中的数据为有效迁移率（单位：cm2.V-1.s-1）。
表1
图2显示了在不同浓度表面活性剂下检测的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c、d分别代表表面活性剂的不同浓度，分别为：a为3mg/mL；b为6mg/mL；c为9mg/mL；d为12mg/mL。
从上述数据可以发现，随着两性离子表面活性剂浓度的增加，分析物的迁移时间总体趋势变慢。可能原因是，随着表面活性剂用量的增加，表面活性剂中的疏水基、亲水基与分析物的相互作用越来越大，表面活性剂形成微乳的稳定性逐渐减弱，故而迁移时间变慢。所以浓度为6mg/mL的两性离子表面活性剂为最佳条件。
实施例3.助表面活性剂种类考察
3.1取3只干净的30ml广口瓶，编号1、2、3，其中1号瓶中加入229μL异丙醇，2号瓶中加入221μL戊醇、3号瓶中加入190μL环己醇，后分别在三只瓶中加入18mg3-磺丙基十二烷基二甲甜菜碱、16.6μL乙酸乙酯、750μL20mM硼砂水溶液、2.037ml水，30℃下超声（100W,40kHz）20分钟，配成微乳缓冲溶液。
3.2取3个0.22μm规格的有机膜过滤器，对应1-3号注射器编号为1、2、3、并根据对应的编号，用过滤器将注射器内的缓冲液过滤，一种缓冲液对应两个进样瓶，共装入6个进样瓶中。进样瓶中的缓冲液冲入毛细管柱中作为毛细管电泳的缓冲液，取对照品溶液进样。
毛细管电泳条件为：未涂层熔融石英毛细管柱65cm×75μm i.d.，有效柱长44cm，分离电压：30KV，柱温：35℃，进样压力：50mbar，进样时间：5s。
荧光检测器条件为：Rise time A：0.1s，PM supply A：650V。
图3显示了在不同种类助表面活性剂下检测的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c分别代表助表面活性剂的不同种类，分别为：a为异丙醇；b为戊醇；c为环己醇。
上图说明，异丙醇作为助表面活性剂时分离效果最差，且峰的对称性和响应度都不好；戊醇和环己醇作为助表面活性剂时，部分分析物达不到很好的分离，同时戊醇和环己醇在配成缓冲溶液时，微乳液混浊,需要较高温度才能澄清，这说明它们的乳化力比较弱。其可能原因为，随着碳原子数目的增加，醇分子的体积逐渐增大，嵌入油水界面膜的阻力依次增大，从而导致界面膜的刚性增强，不易形成微乳。故正丁醇为最佳助表面活性剂。
实施例4.助表面活性剂浓度的考察
4.1取4只干净的30ml广口瓶，编号1、2、3、4，其中1号瓶中加入204μL正丁醇和2.052mL水，2号瓶中加入222μL正丁醇和2.037mL水，3号瓶中加入241μL正丁醇和2.022mL水，4号瓶中加入259μL正丁醇和2.007mL水，后分别在四只瓶中加入18mg3-磺丙基十二烷基二甲甜菜碱、16.6μL乙酸乙酯、750μL20mM硼砂水溶液，30℃下超声（100W,40kHz）20分钟，配成微乳缓冲溶液。
4.2取4个0.22μm规格的有机膜过滤器，对应1-4号注射器编号为1、2、3、4，并根据对应的编号，用过滤器将注射器内的缓冲液过滤，一种缓冲液对应两个进样瓶，共装入8个进样瓶中。进样瓶中的缓冲液冲入毛细管柱中作为毛细管电泳的缓冲液，取对照品溶液进样。
毛细管电泳条件为：未涂层熔融石英毛细管柱65cm×75μm i.d.，有效柱长44cm，分离电压：30KV，柱温：35℃，进样压力：50mbar，进样时间：5s。
荧光检测器条件为：Rise time A：0.1s，PM supply A：650V
实验结果如下表2，表2中的数据为有效迁移率（单位：cm2.V-1.s-1）。
表2
图4显示了在不同浓度助表面活性剂下检测的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c、d分别代表助表面活性剂的不同浓度，分别为：a为55mg/mL；b为60mg/mL；c为65mg/mL；d为70mg/mL。
上述数据说明，随着助表面活性剂（正丁醇）浓度的增加，分析物的迁移时间总体趋势变慢，但异槲皮素与金丝桃苷的分离度随浓度的增大而缓慢变大。其可能的原因为，助表面活性剂能改变表面活性剂的表面活性及亲水亲油平衡性，调整水和油的极性。当正丁醇浓度增加时，醇稀释了水油界面的表面活性分子，减弱了表面活性剂分子之间的相互作用，从而使迁移时间依次变慢。综合考虑，故浓度为60mg/mL的正丁醇是最优条件。
实施例5.缓冲液种类考察
5.1取3只干净的30ml广口瓶，编号1、2、3，其中1号瓶中加入1.5mL5mM乙酸钠水溶液，2号瓶中加入1.5mL5mM Na2HPO4水溶液，3号瓶中加入1.5mL5mM tris-HCl水溶液，后分别在三只瓶中加入18mg3-磺丙基十二烷基二甲甜菜碱、16.6μL乙酸乙酯、222μL正丁醇、1.287ml水，30℃下超声（100W,40kHz）20分钟，配成微乳缓冲溶液。
5.2取3个0.22μm规格的有机膜过滤器，对应1-3号注射器编号为1、2、3、并根据对应的编号，用过滤器将注射器内的缓冲液过滤，一种缓冲液对应两个进样瓶，共装入6个进样瓶中。进样瓶中的缓冲液冲入毛细管柱中作为毛细管电泳的缓冲液，取对照品溶液进样。
毛细管电泳条件为：未涂层熔融石英毛细管柱65cm×75μm i.d.，有效柱长44cm，分离电压：30KV，柱温：35℃，进样压力：50mbar，进样时间：5s。
荧光检测器条件为：Rise time A：0.1s，PM supply A：650V
图5显示了在不同种类缓冲液下检测的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c分别代表缓冲液的不同种类，分别为：a为tris-HCl；b为磷酸氢二钠；c为乙酸钠。
电泳数据表明，当以tris-HCl溶液作为缓冲液时，电流为7μA，它能使分析物达到基本分离，但物质响应很低；而当以磷酸氢二钠和乙酸钠溶液作为缓冲液时，分析物无法分离。故以硼砂溶液作为缓冲液是最佳条件。
实施例6.缓冲液浓度考察
61取4只干净的30ml广口瓶，编号1、2、3、4，其中1号瓶中加入0375mL20mM硼砂溶液和2.412mL水，2号瓶中加入0.750mL20mM硼砂溶液和2.037mL水，3号瓶中加入1.125mL20mM硼砂溶液和1.662mL水，4号瓶中加入1.5mL20mM硼砂溶液和1.287mL水，后分别在四只瓶中加入18mg3-磺丙基十二烷基二甲甜菜碱、16.6μL乙酸乙酯、222μL正丁醇，30℃下超声（100W,40kHz）20分钟，配成微乳缓冲溶液。
6.2取4个0.22μm规格的有机膜过滤器，对应1-4号注射器编号为1、2、3、4，并根据对应的编号，用过滤器将注射器内的缓冲液过滤，一种缓冲液对应两个进样瓶，共装入8个进样瓶中。进样瓶中的缓冲液冲入毛细管柱中作为毛细管电泳的缓冲液，取对照品溶液进样。
毛细管电泳条件为：未涂层熔融石英毛细管柱65cm×75μm i.d.，有效柱长44cm，分离电压：30KV，柱温：35℃，进样压力：50mbar，进样时间：5s。
荧光检测器条件为：Rise time A：0.1s，PM supply A：650V
实验结果如下表3，表3中的数据为有效迁移率（单位：cm2.V-1.s-1）。
表3
图6显示了在不同浓度缓冲液下检测的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c、d分别代表缓冲液的不同浓度，分别为：a为2.5mmol/L；b为5.0mmol/L；c为7.5mmol/L；d为10mmol/L。
上述数据可知，当缓冲液中硼砂浓度逐渐增加时，电流量从10μA升至41μA，分析物的荧光响应度依次升高，但迁移时间相应变慢。可能的原因为，电泳缓冲溶液具有一定的导电性，当缓冲液浓度较低时，Na+离子的浓度太低，导电能力弱，荧光响应变低；相应的，当缓冲液浓度升高时，导电能力强，荧光响应高，但浓度太高时会造成电流过大，从而使胶发热甚至熔化。综合考虑，故选择浓度为5.0mmol/L的缓冲液为最佳条件。
实施例7.pH值考察
7.1取4只干净的30ml广口瓶，编号1、2、3、4，其中1号瓶中加入200μL的1mol/L硼酸和1.837mL水，2号瓶中加入100μL的1mol/L硼酸和1.937mL水，3号瓶中加入2.037mL水，4号瓶中加入12.5μL的1mol/L氢氧化钠和2.0245mL水，5号瓶中加入25μL的1mol/L氢氧化钠和2.012mL水，后分别在五只瓶中加入18mg3-磺丙基十二烷基二甲甜菜碱、16.6μL乙酸乙酯、222μL正丁醇，0.75mL20mM硼砂水溶液，30℃下超声（100W,40kHz）20分钟，配成微乳缓冲溶液，1、2、3、4、5号瓶的pH值分别为8.0，,8.5，9.0，9.5，10.0。
7.2取5个0.22μm规格的有机膜过滤器，对应1-5号注射器编号为1、2、3、4、5，并根据对应的编号，用过滤器将注射器内的缓冲液过滤，一种缓冲液对应两个进样瓶，共装入10个进样瓶中。进样瓶中的缓冲液冲入毛细管柱中作为毛细管电泳的缓冲液，取对照品溶液进样。
毛细管电泳条件为：未涂层熔融石英毛细管柱65cm×75μm i.d.，有效柱长44cm，分离电压：30KV，柱温：35℃，进样压力：50mbar，进样时间：5s。
荧光检测器条件为：Rise time A：0.1s，PM supply A：650V
实验结果如下表4，表4中的数据为有效迁移率（单位：cm2.V-1.s-1）。
表4
图7显示了在不同pH下检测的荧光光谱图。图中，1、2、3、4、5、6、7分别代表山楂黄酮中不同的有效成分，分别为：1为山奈素；2为芹菜素；3为槲皮素；4为异牡荆素；5为牡荆素；6号为异槲皮素；7号为金丝桃苷。a、b、c、d、e分别代表不同的pH，分别为：a为pH8；b为pH8.5；c为pH9；d为pH9.5；e为pH10。
从图中可知，在pH8和pH8.5时，槲皮素与异牡荆素的峰部分重叠，分离效果较差，在pH9时，分析物达到完全分离，且迁移时间随着pH的增大而变快；但是当pH>9时，牡荆素与异槲皮素的峰部分重叠，在pH10时，达到完全重叠，且迁移时间随pH的增大而变慢。可能原因为，pH值是CE分离的重要参数之一，它能通过调解电渗流的速率以及分析物的电荷来影响分析物的迁移速率。故pH9为最佳条件。
实施例8
8.1取1只干净的30ml广口瓶,加入18mg3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱，后在瓶中加入222μL正丁醇、16.6μL乙酸乙酯、750μL20mM硼砂水溶液、2.037ml水，30℃下超声（100W,40kHz）20分钟，配成微乳缓冲溶液。
8.2取1个0.22μm规格的有机膜过滤器，用过滤器将注射器内的缓冲液过滤，一种缓冲液对应两个进样瓶。进样瓶中的缓冲液冲入毛细管柱中作为毛细管电泳的缓冲液，取样品液进样。
山楂提取液按以下步骤制得：山楂粉末（过三号筛）约1.0g，精密称定，置具塞广口瓶中，精密加入甲醇15mL，称定重量，加热50℃下超声（100W,40kHz）40min，放冷，再称定重量，用甲醇补足减失的重量，摇匀，0.22μm规格的有机膜过滤，离心，取续滤液，即得山楂提取液。取30μL山楂提取液，加入370μL甲醇，定容后作为样品液。
毛细管电泳条件为：未涂层熔融石英毛细管柱65cm×75μm i.d.，有效柱长44cm，分离电压：30KV，柱温：35℃，进样压力：50mbar，进样时间：5s。
荧光检测器条件为：Rise time A：0.1s，PM supply A：650V.
图8为山楂提取液样品液的荧光光谱图。
以山奈素的对照品配制不同浓度的对照品溶液，按照步骤（2）同样条件进行毛细管电泳色谱检测，获得山奈素对照品的毛细管电泳荧光光谱图，以山奈素对照品的摩尔浓度为横坐标，以山奈素对照品溶液的毛细管电泳荧光光谱图中色谱峰的峰面积为纵坐标制作山奈素标准曲线，按同样方法制作芹菜素标准曲线、槲皮素标准曲线、异牡荆素标准曲线、牡荆素标准曲线、异槲皮素标准曲线、金丝桃苷标准曲线；根据样品液的毛细管电泳荧光光谱图中相应色谱峰的峰面积及各个标准品的标准曲线计算样品液中山奈素、芹菜素、槲皮素、异牡荆素、牡荆素、异槲皮素、金丝桃苷含量，相应换算得到山楂中山奈素、芹菜素、槲皮素、异牡荆素、牡荆素、异槲皮素、金丝桃苷含量，实验结果如下表5，表5中的数据为山楂中各成分的含量（单位：μg g-1）。
表5
从图8可以看出，大多数目标产物可以在5分钟内准确测得，基质对物质的分离影响不大。
日内精密度
1.取1只干净的30ml广口瓶，加入18mg3-磺丙基十二烷基二甲甜菜碱，后在瓶中加入222μL正丁醇、16.6μL乙酸乙酯、750μL20mM硼砂、2.037ml水，30℃下超声20分钟，配成微乳缓冲溶液。
2.取1个0.22μm规格的有机膜过滤器，用注射器吸取一定体积，再用过滤器将注射器内的缓冲液过滤，装入2个进样瓶中。
3.取对照品溶液用毛细管电泳（CE）进样，荧光检测器分析，在同一天内不同的时间段进样6次。
日间精密度
1.取1只干净的30ml广口瓶，加入18mg3-磺丙基十二烷基二甲甜菜碱，后在瓶中加入222μL正丁醇、16.6μL乙酸乙酯、750μL20mM硼砂、2.037ml水，30℃下超声20分钟，配成微乳缓冲溶液。
2.取1个0.22μm规格的有机膜过滤器，用注射器吸取一定体积，再用过滤器将注射器内的缓冲液过滤，装入2个进样瓶中。
3.取对照品溶液用毛细管电泳（CE）进样，荧光检测器分析，在三天内相同的时间点进样，每天进两次。
重复性
1.取5只干净的30ml广口瓶，编号1、2、3、4、5，其中1号瓶中加入0.5001mg山楂粉末，2号瓶中加入0.5001mg山楂粉末、3号瓶中加入0.5001mg山楂粉末，4号瓶中加入0.4999mg山楂粉末，5号瓶中加入0.5002mg山楂粉末，后分别在五只瓶中加入15mL甲醇，50℃下超声40min，过滤，取滤液，离心，取续滤液。
2.取五个进样瓶，编号1、2、3、4、5，分别取70μL编号相对应的滤液，再加入330μL甲醇，摇匀。
3.取1只干净的30ml广口瓶，在瓶中加入18mg3-磺丙基十二烷基二甲甜菜碱、222μL正丁醇、16.6μL乙酸乙酯、750μL20mM硼砂、2.037ml水，30℃下超声20分钟，配成微乳缓冲溶液。
4.取1个0.22μm规格的有机膜过滤器，用注射器吸取一定体积，再用过滤器将注射器内的缓冲液过滤，装入2个进样瓶中。
5.用毛细管电泳（CE）进样，荧光检测器分析。
加样回收率
1.取编号为3的山楂粉末样品瓶，弃去100μL溶液，再在样品瓶中加入100μL对照品，摇匀。
2.用毛细管电泳（CE）进样，荧光检测器分析。
上述精密度、重复性、回收率结果见下表6。
表6
结果表明，本发明对山楂黄酮的检测准确度高，重复性好。
Claims (10)
1.一种山楂中黄酮成分的荧光检测方法，其特征在于所述方法包括以下步骤：
（1）山楂粉末加入甲醇溶剂，甲醇的体积用量以山楂粉末的质量计为10～30mL/g，称定重量为M，密闭后加热超声提取30～60分钟，冷却后加入甲醇补足至重量M，混匀后用0.22μm规格的有机膜过滤，离心，取续滤液制得山楂提取液；
（2）取步骤（1）所得山楂提取液，用甲醇稀释10～15体积倍后作为样品液进样，进行毛细管电泳荧光检测，毛细管柱中填充微乳缓冲溶液，所述微乳缓冲溶液的成分为：两性离子表面活性剂3～12mg/mL、助表面活性剂55～70mg/mL、乙酸乙酯4.5～6mg/mL、2.5～10mmol/L的缓冲盐、pH值为8～10，25～30℃下超声20～30分钟，过滤、制得微乳缓冲溶液；
以发光二极管光诱导荧光检测器进行检测，检测波长480nm，得到样品液的毛细管电泳荧光光谱图；
所述两性离子表面活性剂为3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱、3-磺丙基十四烷基二甲基甜菜碱或3-磺丙基十六烷基二甲基甜菜碱；
所述助表面活性剂为异丙醇、正丁醇、戊醇或环己醇；
所述缓冲盐为tris或硼砂；
（3）以山奈素的对照品配制不同浓度的对照品溶液，按照步骤（2）同样条件进行毛细管电泳色谱检测，获得山奈素对照品的毛细管电泳荧光光谱图，以山奈素对照品的摩尔浓度为横坐标，以山奈素对照品溶液的毛细管电泳荧光光谱图中色谱峰的峰面积为纵坐标制作山奈素标准曲线，按同样方法制作芹菜素标准曲线、槲皮素标准曲线、异牡荆素标准曲线、牡荆素标准曲线、异槲皮素标准曲线、金丝桃苷标准曲线；根据样品液的毛细管电泳荧光光谱图中相应色谱峰的峰面积及各个标准品的标准曲线计算样品液中山奈素、芹菜素、槲皮素、异牡荆素、牡荆素、异槲皮素、金丝桃苷含量，相应换算得到山楂中山奈素、芹菜素、槲皮素、异牡荆素、牡荆素、异槲皮素、金丝桃苷含量。
2.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述两性离子表面活性剂为3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱。
3.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述助表面活性剂为正丁醇。
4.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述缓冲盐为硼砂。
5.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述毛细管电泳条件为：分离电压：30KV，柱温：35℃。
6.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述微乳缓冲溶液的成分为：两性离子表面活性剂6mg/mL、助表面活性剂60mg/mL、乙酸乙酯5mg/mL、5mmol/L的缓冲盐、pH值为9。
7.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述微乳缓冲溶液的成分为：3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱6mg/mL、正丁醇60mg/mL、乙酸乙酯5mg/mL、5mmol/L的硼砂、pH值为9。
8.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述步骤（2）中，所述过滤用0.22μm规格的有机膜过滤。
9.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述步骤（1）中，所述山楂提取液按以下步骤制得：过三号筛的山楂粉末1.0g，精密称定，置具塞广口瓶中，精密加入甲醇15mL，称定重量M，加热40～50℃超声40分钟，放冷，再称定重量，用甲醇补足减失的重量至重量M，摇匀，用0.22μm规格的有机膜过滤，离心，取续滤液，即得山楂提取液。
10.如权利要求1所述的方法，其特征在于所述方法按以下步骤进行：
（1）过三号筛的山楂粉末1.0g，精密称定，置具塞广口瓶中，精密加入甲醇15mL，称定重量M，加热40～50℃超声40分钟，放冷，再称定重量，用甲醇补足减失的重量至重量M，摇匀，用0.22μm规格的有机膜过滤，离心，取续滤液，即得山楂提取液；
（2）取步骤（1）所得山楂提取液，用甲醇稀释10～15体积倍后作为样品液进样，进行毛细管电泳荧光检测，毛细管电泳条件为：分离电压：30KV，柱温：35℃，毛细管柱中填充微乳缓冲溶液，所述微乳缓冲溶液的成分为：3-磺丙基十二烷基二甲基甜菜碱6mg/mL、正丁醇60mg/mL、乙酸乙酯5mg/mL、5mmol/L的硼砂、pH值为9，25～30℃下超声20～30分钟，过滤、制得微乳缓冲溶液；
以发光二极管光诱导荧光检测器进行检测，检测波长480nm，得到样品液的毛细管电泳荧光光谱图；
（3）以山奈素的对照品配制不同浓度的对照品溶液，按照步骤（2）同样条件进行毛细管电泳色谱检测，获得山奈素对照品的毛细管电泳荧光光谱图，以山奈素对照品的摩尔浓度为横坐标，以山奈素对照品溶液的毛细管电泳荧光光谱图中色谱峰的峰面积为纵坐标制作山奈素标准曲线，按同样方法制作芹菜素标准曲线、槲皮素标准曲线、异牡荆素标准曲线、牡荆素标准曲线、异槲皮素标准曲线、金丝桃苷标准曲线；根据样品液的毛细管电泳荧光光谱图中相应色谱峰的峰面积及各个标准品的标准曲线计算样品液中山奈素、芹菜素、槲皮素、异牡荆素、牡荆素、异槲皮素、金丝桃苷含量，相应换算得到山楂中山奈素、芹菜素、槲皮素、异牡荆素、牡荆素、异槲皮素、金丝桃苷含量。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201410126992.2A CN103983621B (zh) | 2014-03-31 | 2014-03-31 | 一种山楂中黄酮成分的荧光检测方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201410126992.2A CN103983621B (zh) | 2014-03-31 | 2014-03-31 | 一种山楂中黄酮成分的荧光检测方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN103983621A true CN103983621A (zh) | 2014-08-13 |
| CN103983621B CN103983621B (zh) | 2016-04-20 |
Family
ID=51275679
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN201410126992.2A Active CN103983621B (zh) | 2014-03-31 | 2014-03-31 | 一种山楂中黄酮成分的荧光检测方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN103983621B (zh) |
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN104406947A (zh) * | 2014-11-21 | 2015-03-11 | 南京林业大学 | 利用槲皮素作为荧光探针在测定f-中的应用及其测定方法 |
| CN105675554A (zh) * | 2015-12-30 | 2016-06-15 | 谱尼测试科技(天津)有限公司 | 一种检测保健食品中总黄酮的荧光光度法 |
| CN106770839A (zh) * | 2017-03-02 | 2017-05-31 | 浙江工业大学 | 一种山豆根中黄酮类化合物的提取检测方法 |
| CN106770217A (zh) * | 2017-03-30 | 2017-05-31 | 陕西理工大学 | 一种黄酮类化合物的毛细管电泳电化学发光检测方法 |
| CN108593641A (zh) * | 2018-04-09 | 2018-09-28 | 桂林优利特医疗电子有限公司 | 一种定量检测全血样品中待测物质的试剂盒及方法 |
| CN114235766A (zh) * | 2021-12-14 | 2022-03-25 | 泸州品创科技有限公司 | 检测牡荆素的方法 |
| CN114935622A (zh) * | 2022-05-05 | 2022-08-23 | 杭州师范大学 | 一种采用两相亲和预浓缩法对丹参中酚类化合物同时在线富集、分离方法 |
Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1772018A (zh) * | 2005-10-21 | 2006-05-17 | 云南白药集团股份有限公司 | 虎尾草黄酮胶囊的质量控制方法 |
| CN1850138A (zh) * | 2006-03-03 | 2006-10-25 | 中国科学院长春应用化学研究所 | 注射用刺五加叶总黄酮提取物冻干粉针的质量检测方法 |
| CN101152222A (zh) * | 2006-09-28 | 2008-04-02 | 浙江大学宁波理工学院 | 一种超声波辅助提取银杏叶中总黄酮的方法 |
| CN101306081A (zh) * | 2008-06-26 | 2008-11-19 | 广州奇星药业有限公司 | 一种心舒宁片的质量控制方法 |
| US20100179435A1 (en) * | 2009-01-13 | 2010-07-15 | Mohsen Sharifzadeh | Noninvasive measurement of flavonoid compounds in biological tissue |
| CN102890124A (zh) * | 2011-07-20 | 2013-01-23 | 北京北大维信生物科技有限公司 | 桑葛制剂中总黄酮类和总生物碱类成分的指纹图谱构建方法及质量检测方法 |
-
2014
- 2014-03-31 CN CN201410126992.2A patent/CN103983621B/zh active Active
Patent Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN1772018A (zh) * | 2005-10-21 | 2006-05-17 | 云南白药集团股份有限公司 | 虎尾草黄酮胶囊的质量控制方法 |
| CN1850138A (zh) * | 2006-03-03 | 2006-10-25 | 中国科学院长春应用化学研究所 | 注射用刺五加叶总黄酮提取物冻干粉针的质量检测方法 |
| CN101152222A (zh) * | 2006-09-28 | 2008-04-02 | 浙江大学宁波理工学院 | 一种超声波辅助提取银杏叶中总黄酮的方法 |
| CN101306081A (zh) * | 2008-06-26 | 2008-11-19 | 广州奇星药业有限公司 | 一种心舒宁片的质量控制方法 |
| US20100179435A1 (en) * | 2009-01-13 | 2010-07-15 | Mohsen Sharifzadeh | Noninvasive measurement of flavonoid compounds in biological tissue |
| CN102890124A (zh) * | 2011-07-20 | 2013-01-23 | 北京北大维信生物科技有限公司 | 桑葛制剂中总黄酮类和总生物碱类成分的指纹图谱构建方法及质量检测方法 |
Non-Patent Citations (3)
| Title |
|---|
| C.DELGADO ET AL.: "Capillary electrophoresis as an alternative to HPLC for determination of honey flavonoids", 《CHROMATOGRAPHIA》 * |
| MANDAKINI DANTULURI ET AL.: "Capillary electrophoresis of highly sulfated flavanoids and flavonoids", 《ANALYTICAL BIOCHEMISTRY》 * |
| 周一鸣 等: "高效毛细管电泳法在黄酮类化合物分析检测中的应用", 《食品科学》 * |
Cited By (11)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN104406947A (zh) * | 2014-11-21 | 2015-03-11 | 南京林业大学 | 利用槲皮素作为荧光探针在测定f-中的应用及其测定方法 |
| CN105675554A (zh) * | 2015-12-30 | 2016-06-15 | 谱尼测试科技(天津)有限公司 | 一种检测保健食品中总黄酮的荧光光度法 |
| CN106770839A (zh) * | 2017-03-02 | 2017-05-31 | 浙江工业大学 | 一种山豆根中黄酮类化合物的提取检测方法 |
| CN106770839B (zh) * | 2017-03-02 | 2019-04-09 | 浙江工业大学 | 一种山豆根中黄酮类化合物的提取检测方法 |
| CN106770217A (zh) * | 2017-03-30 | 2017-05-31 | 陕西理工大学 | 一种黄酮类化合物的毛细管电泳电化学发光检测方法 |
| CN106770217B (zh) * | 2017-03-30 | 2019-07-02 | 陕西理工大学 | 一种黄酮类化合物的毛细管电泳电化学发光检测方法 |
| CN108593641A (zh) * | 2018-04-09 | 2018-09-28 | 桂林优利特医疗电子有限公司 | 一种定量检测全血样品中待测物质的试剂盒及方法 |
| CN114235766A (zh) * | 2021-12-14 | 2022-03-25 | 泸州品创科技有限公司 | 检测牡荆素的方法 |
| CN114235766B (zh) * | 2021-12-14 | 2024-02-23 | 泸州品创科技有限公司 | 检测牡荆素的方法 |
| CN114935622A (zh) * | 2022-05-05 | 2022-08-23 | 杭州师范大学 | 一种采用两相亲和预浓缩法对丹参中酚类化合物同时在线富集、分离方法 |
| CN114935622B (zh) * | 2022-05-05 | 2023-06-16 | 杭州师范大学 | 一种采用两相亲和预浓缩法对丹参中酚类化合物同时在线富集、分离方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CN103983621B (zh) | 2016-04-20 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN103983621B (zh) | 一种山楂中黄酮成分的荧光检测方法 | |
| Gu et al. | Analysis of resveratrol in wine by capillary electrophoresis | |
| Qi et al. | Rapid and sensitive determination of anthraquinones in Chinese herb using 1-butyl-3-methylimidazolium-based ionic liquid with β-cyclodextrin as modifier in capillary zone electrophoresis | |
| Kuban et al. | New interface for coupling flow-injection and capillary electrophoresis | |
| Sun et al. | Capillary electrophoresis with amperometric detection of curcumin in Chinese herbal medicine pretreated by solid-phase extraction | |
| Palmarsdottir et al. | Determination of a basic drug, bambuterol, in human plasma by capillary electrophoresis using double stacking for large volume injection and supported liquid membranes for sample pretreatment | |
| Breadmore et al. | Recent advances in enhancing the sensitivity of electrophoresis and electrochromatography in capillaries and microchips (2008–2010) | |
| Koeber et al. | Evaluation of a multidimensional solid-phase extraction platform for highly selective on-line cleanup and high-throughput LC− MS analysis of triazines in river water samples using molecularly imprinted polymers | |
| Huie | Recent applications of microemulsion electrokinetic chromatography | |
| McEvoy et al. | Recent advances in the development and application of microemulsion EKC | |
| Kostel et al. | Evaluation of capillary electrophoresis with post-column derivatization and laser-induced fluorescence detection for the determination of substance P and its metabolites | |
| Yang et al. | Twenty‐one years of microemulsion electrokinetic chromatography (1991–2012): A powerful analytical tool | |
| Qi et al. | Simultaneous determination of bioactive flavone derivatives in Chinese herb extraction by capillary electrophoresis used different electrolyte systems—Borate and ionic liquids | |
| Shi et al. | Micelle-mediated extraction and cloud point preconcentration for the analysis of aesculin and aesculetin in Cortex fraxini by HPLC | |
| Cui et al. | Determination of p-tyrosol and salidroside in three samples of Rhodiola crenulata and one of Rhodiola kirilowii by capillary zone electrophoresis | |
| Gillott et al. | Separation of pharmaceutical bases from neutral and acidic components by capillary electrochromatography | |
| CN109709198B (zh) | 一种毛细管电泳的在线富集方法 | |
| Dong-Wei et al. | Progress in pretreatment and analytical methods of coumarins: an update since 2012–a review | |
| Cao et al. | Highly sensitive analysis of flavonoids by zwitterionic microemulsion electrokinetic chromatography coupled with light-emitting diode-induced fluorescence detection | |
| Chen et al. | CE and CEC analysis of phytochemicals in herbal medicines | |
| Wu et al. | Minireview: Recent advances in the determination of flavonoids by capillary electrophoresis | |
| Sander et al. | Separation of carotenoid isomers by capillary electrochromatography with C30 stationary phases | |
| Xu et al. | Ionic liquids used in and analyzed by capillary and microchip electrophoresis | |
| Liu et al. | Separation and determination of three water-soluble compounds in Salvia miltiorrhiza Bunge and two related traditional medicinal preparations by flow injection-capillary electrophoresis | |
| Yu et al. | Recent progress for capillary electrophoresis with electrochemical detection |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| C14 | Grant of patent or utility model | ||
| GR01 | Patent grant |