CN103555656A - 同时分离肝星状细胞及成纤维母细胞的方法 - Google Patents
同时分离肝星状细胞及成纤维母细胞的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103555656A CN103555656A CN201310507049.1A CN201310507049A CN103555656A CN 103555656 A CN103555656 A CN 103555656A CN 201310507049 A CN201310507049 A CN 201310507049A CN 103555656 A CN103555656 A CN 103555656A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- cell
- hepatic stellate
- fibroblast
- cells
- mouse
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
本发明公开了一种同时分离肝星状细胞及成纤维母细胞的方法,其特征是,包括如下步骤:将小鼠麻醉处死后,U型剖开腹腔,经门静脉,以胶原酶、蛋白酶灌注,肝脏变软后剥离肝包膜制成细胞悬液,Nycodenze梯度离心分离;吸取细胞层,加入大鼠抗小鼠THY1抗体,该抗体为0.2-0.25μg/L×106细胞终浓度,4℃孵育25-30min;用PBS buffer洗涤细胞一次,并将细胞浓度定为1-2×106个/ml,然后加入山羊抗大鼠IgG Dynabeads免疫磁珠,混匀后置2-8℃孵育15-20min;将分离柱安装入磁场中1-2min分离出成纤维母细胞;吸取上清混悬后分离出肝星状细胞。
Description
技术领域
本发明涉及一种用于小型动物肝纤维化研究时肝星状细胞和成纤维母细胞的同时分离方法。
背景技术
肝纤维化是多种慢性肝病病情发展的共同病理基础,是临床肝硬化发展的必经中间环节。近年来研究认为肝纤维化经有效治疗,仍有逆转可能。目前认为肝星状细胞的激活及表型转化在肝纤维化过程中起关键作用,是肝纤维化发生的中心环节,是肝纤维化病理形成的细胞学基础。在正常情况下,肝星状细胞处于“静止状态”,受炎性细胞因子等病理因素刺激后活化,激活的肝星状细胞转分化为成纤维母细胞,成纤维母细胞的活化不仅表现为数量及表型的改变,更重要的是生物学功能发生很大变化,开始分泌大量的胶原,转变为肝纤维化甚至肝硬化。研究区别两种细胞间的差异、特性,进而阻断肝星状细胞向成纤维母细胞转化,成为针对性研究防治肝纤维化的靶标。如何高纯度、便捷的分离肝星状细胞和成纤维母细胞成为研究的难点。
发明内容
针对现有技术的上述不足,根据本发明的实施例,希望提供一种高效、便捷的同时分离肝星状细胞及成纤维母细胞的方法,既保证了细胞的高纯度,也能保障细胞的活力,为下一步研究提供了高质量的细胞。
根据实施例,本发明提供的一种同时分离肝星状细胞及成纤维母细胞的方法,其创新点在于,包括如下步骤:
将小鼠麻醉处死后,U型剖开腹腔,经门静脉,以胶原酶、蛋白酶灌注,肝脏变软后剥离肝包膜制成细胞悬液,Nycodenze梯度离心分离;
吸取细胞层,加入大鼠抗小鼠THY1抗体,该抗体为0.2-0.25μg/L×106细胞终浓度,4℃孵育25-30min;用PBS buffer洗涤细胞一次,并将细胞浓度定为1-2×106个/ml,然后加入山羊抗大鼠IgG Dynabeads免疫磁珠,混匀后置2-8℃孵育15-20min;将分离柱安装入磁场中1-2min分离成纤维母细胞;吸取上清混悬后分离出肝星状细胞。
根据一个实施例,本发明前述同时分离肝星状细胞及成纤维母细胞的方法中,分离出纤维母细胞和肝星状细胞后,加入适量含10%胎牛血清的DMEM,细胞悬液按1-2×105个/ml细胞接种至12孔细胞培养板上,37℃,5%CO2培养箱中培养。
相对于现有技术,本发明用于小动物,同时分离肝星状细胞中和成纤维母细胞的方法,Nycodenze梯度离心分离后的细胞悬液,进一步和包被THY1抗体的磁珠混合,在磁场中分离出成纤维母细胞,上清液洗涤后分离肝星状细胞。本发明方法具有高效高纯度分离两种细胞的特点,节省研究经费和时间,具有良好的推广应用价值。本发明具有如下优点:(1)从同一个体同时分离两种细胞,减少了细胞个体差异的影响,更接近体内细胞间的相互作用;(2)同时分离两种细胞,节约研究经费和时间;(3)操作简便,高效高纯度的分离细胞,能够用于研究细胞间表型转化,肝纤维化。
附图说明
图1为荧光显微镜观察到的细胞形态图(HSC分离培养1d)。
图2为荧光显微镜观察到的细胞形态图(HSC分离培养6d)。
图3为荧光显微镜观察到的细胞形态图(成纤维母细胞1d)。
图4为荧光显微镜观察到的细胞形态图(成纤维母细胞培养6d,DAPI染色)。
图5为荧光显微镜观察到的细胞形态图(肝星状细胞α-SMA染色)。
图6为荧光显微镜观察到的细胞形态图(成纤维母细胞THY1染色)。
具体实施方式
下面结合附图和具体实施例,进一步阐述本发明。这些实施例应理解为仅用于说明本发明而不用于限制本发明的保护范围。在阅读了本发明记载的内容之后,本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改,这些等效变化和修饰同样落入本发明权利要求所限定的范围。
一、主要试剂:
EGTA、Ⅰ型胶原酶、DNaseⅠ、链酶蛋白酶E、Nycodenz均购自美国Sigma公司,胎牛血清、DMEM培养基购自美国Gibco公司,免疫磁珠购自美国Invitrogen公司,大鼠抗小鼠α-SMA、THY1单克隆抗体购自美国eBioscience公司,SABC免疫组织化学染色试剂盒、DAB显色试剂盒均购自武汉博士德公司。其余试剂为国产分析纯产品。
二、主要仪器:
荧光显微镜、超速离心机、倒置显微镜、CO2培养箱、电子天平、水浴锅、恒流泵、磁力加热搅拌器。
三、主要灌流液:
HBSS液:NaCl8.0g/L,KCl0.4g/L,KH2PO40.06g/L,Na2HPO4·12H2O0.1344g/L,NaHCO30.35g/L。用双蒸水配置后,调整pH=7.4分装于洁净的250ml玻璃瓶中,过滤灭菌后低温保存。
DNaseⅠ溶液:DNaseⅠ25mg,加0.9%生理盐水2.5ml,过滤除菌,-20℃保存。悬浮缓冲液:HBSS液100ml,DNaseⅠ(10mg/ml)0.08ml。
8%Nycodenz溶液:Nyxodenz7.75g加入23ml左右HBSS最终27ml,0.22um滤器过滤除菌。
酶灌流液及消化液:DNA酶Ⅰ(10mg/ml)0.275ml,链酶蛋白酶E150mg。补充HBSS220ml,取140ml加入胶原酶Ⅰ75mg,作为酶灌注液;剩下的80ml加入80mg牛血清白蛋白,作为消化液,酶灌流液及消化液过滤除菌。
四、主要操作步骤:
试验例1
小鼠麻醉后,U型剖开腹腔,经门静脉,以胶原酶、蛋白酶灌注,肝脏变软后剥离肝包膜制成细胞悬液,Nycodenze梯度离心分离。吸取细胞层,加入加入大鼠抗小鼠THY1抗体(0.25μg/L×106细胞终浓度),4℃孵育30min;用PBS buffer洗涤细胞一次,并将细胞浓度定为1×106个/ml然后加入山羊抗大鼠IgG Dynabeads免疫磁珠,混匀后置2-8℃孵育20min;将分离柱安装入磁场中2min分离成纤维母细胞;吸取上清混悬后分离出肝星状细胞。加适量含10%胎牛血清的DMEM,细胞悬液按2×105个/ml细胞接种至12孔细胞培养板上,37℃,5%CO2培养箱中培养。
试验例2
小鼠麻醉后,U型剖开腹腔,经门静脉,以胶原酶、蛋白酶灌注,肝脏变软后剥离肝包膜制成细胞悬液,Nycodenze梯度离心分离。吸取细胞层,加入加入大鼠抗小鼠THY1抗体(0.2μg/L×106细胞终浓度),4℃孵育25min;用PBS buffer洗涤细胞一次,并将细胞浓度定为2×106个/ml然后加入山羊抗大鼠IgG Dynabeads免疫磁珠,混匀后置2-8℃孵育15-20min;将分离柱安装入磁场中1min分离成纤维母细胞;吸取上清混悬后分离出肝星状细胞。加适量含10%胎牛血清的DMEM,细胞悬液按1×105个/ml细胞接种至12孔细胞培养板上,37℃,5%CO2培养箱中培养。
五、试验结果:
细胞形态观察:实施例1和实施例2刚分离的HSC均为折光性很强的小圆细胞,形态均一;体外培养1d后HSC大多贴壁生长,光镜下可见脂肪颗粒(如图1所示);体外培养6d后,脂滴消失胞浆开始伸展,胞体变得伸展(如图2所示)。实施例1和实施例2刚分离的成纤维母细胞为多边形(如图3所示),培养6d后伸展成为梭形(如图4所示)。
六、成纤维母细胞及肝星状细胞的鉴定:
α-SMA、THY1细胞免疫荧光方法检测实施例1和实施例2分离出的肝星状细胞及成纤维母细胞。4℃预冷PBS缓冲液洗细胞爬片2min×2次,4%多聚甲醛室温固定15min,PBS缓冲液洗5min×2次;含0.03%Triton-X100的PBS室温孵育30min,室温PBS缓冲液洗5min×3次;3%羊血清室温下孵育1h封闭非特异性抗原;封闭液稀释的一抗(α-SMA,1:100;THY1,1∶200)4℃孵育过夜;室温PBS缓冲液洗5min×3次,PBS稀释相对应的荧光二抗(1∶100)避光室温孵育20min;室温PBS缓冲液洗5min×3次,DAPI复染细胞核,荧光显微镜下观察(如图5-6所示)。
Claims (2)
1.一种同时分离肝星状细胞及成纤维母细胞的方法,其特征是,包括如下步骤:
将小鼠麻醉处死后,U型剖开腹腔,经门静脉,以胶原酶、蛋白酶灌注,肝脏变软后剥离肝包膜制成细胞悬液,Nycodenze梯度离心分离;
吸取细胞层,加入大鼠抗小鼠THY1抗体,该抗体为0.2-0.25μg/L×106细胞终浓度,4℃孵育25-30min;用PBS buffer洗涤细胞一次,并将细胞浓度定为1-2×106个/ml,然后加入山羊抗大鼠IgG Dynabeads免疫磁珠,混匀后置2-8℃孵育15-20min;将分离柱安装入磁场中1-2min分离出成纤维母细胞;吸取上清混悬后分离出肝星状细胞。
2.根据权利要求1所述的同时分离肝星状细胞及成纤维母细胞的方法,其特征是,分离出成纤维母细胞和肝星状细胞后,加入适量含10%胎牛血清的DMEM,细胞悬液按1-2×105个/ml细胞接种至12孔细胞培养板上,37℃,5%CO2培养箱中培养。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310507049.1A CN103555656A (zh) | 2013-10-24 | 2013-10-24 | 同时分离肝星状细胞及成纤维母细胞的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310507049.1A CN103555656A (zh) | 2013-10-24 | 2013-10-24 | 同时分离肝星状细胞及成纤维母细胞的方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103555656A true CN103555656A (zh) | 2014-02-05 |
Family
ID=50010016
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201310507049.1A Pending CN103555656A (zh) | 2013-10-24 | 2013-10-24 | 同时分离肝星状细胞及成纤维母细胞的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103555656A (zh) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106947731A (zh) * | 2017-02-21 | 2017-07-14 | 广州柏赛柯生物技术有限公司 | 一种肝星状细胞分离制备方法 |
CN111876372A (zh) * | 2020-06-30 | 2020-11-03 | 段娟丽 | 一种小鼠肝实质细胞及非实质细胞的一步分离方法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101270349A (zh) * | 2008-03-20 | 2008-09-24 | 浙江大学 | 胎盘间充质干细胞分离和体外扩增培养方法 |
CN101553564A (zh) * | 2006-05-26 | 2009-10-07 | 北卡罗来纳大学教堂山分校 | 肝星状细胞前体及其分离方法 |
-
2013
- 2013-10-24 CN CN201310507049.1A patent/CN103555656A/zh active Pending
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101553564A (zh) * | 2006-05-26 | 2009-10-07 | 北卡罗来纳大学教堂山分校 | 肝星状细胞前体及其分离方法 |
CN101270349A (zh) * | 2008-03-20 | 2008-09-24 | 浙江大学 | 胎盘间充质干细胞分离和体外扩增培养方法 |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
THOMS D.SHUPE, ET AL.: "Isolation and Characterization of Hepatic Stem Cell,or"Oval cells"from Rat Livers", 《METHODS MOL BIOL》 * |
朱欣彦 等: "大鼠肝星状细胞的简易分离法", 《同济大学学报(医学版)》 * |
谢蜀生: "Thy-1抗原", 《生理科学进展》 * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106947731A (zh) * | 2017-02-21 | 2017-07-14 | 广州柏赛柯生物技术有限公司 | 一种肝星状细胞分离制备方法 |
CN111876372A (zh) * | 2020-06-30 | 2020-11-03 | 段娟丽 | 一种小鼠肝实质细胞及非实质细胞的一步分离方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Kegel et al. | Protocol for isolation of primary human hepatocytes and corresponding major populations of non-parenchymal liver cells | |
Teixeira et al. | Secretome of mesenchymal progenitors from the umbilical cord acts as modulator of neural/glial proliferation and differentiation | |
Li et al. | Adult bone-marrow-derived mesenchymal stem cells contribute to wound healing of skin appendages | |
Fong et al. | Human umbilical cord Wharton's jelly stem cells and its conditioned medium support hematopoietic stem cell expansion ex vivo | |
Mahmoudifar et al. | Mesenchymal stem cells derived from human adipose tissue | |
Zhang et al. | Hepatic stem cells: existence and origin | |
Cho et al. | Dual modulation of the mitochondrial permeability transition pore and redox signaling synergistically promotes cardiomyocyte differentiation from pluripotent stem cells | |
Han et al. | Human adipose-derived mesenchymal stem cells: a better cell source for nervous system regeneration | |
US20090124007A1 (en) | Method for the Simultaneous Primary-Isolation and Expansion of Endothelial Stem/Progenitor Cell and Mesenchymal Stem Cell Derived From Mammal Including Human Umbilical Cord | |
Damm et al. | Human parenchymal and non-parenchymal liver cell isolation, culture and characterization | |
KR20020013492A (ko) | 인간 간 프로제니터 | |
Xue et al. | Effect of microenvironment on differentiation of human umbilical cord mesenchymal stem cells into hepatocytes in vitro and in vivo | |
CN108330099A (zh) | 个性化肝细胞的培养和扩增方法及其应用 | |
CN104694466A (zh) | 间充质干细胞来源的胞外体制备及在急性肺损伤中的应用 | |
Fu et al. | Conditioned medium from human amnion‐derived mesenchymal stem cells regulates activation of primary hepatic stellate cells | |
CN104531611B (zh) | 肝干细胞的特异性表面分子标志物cd63及其应用 | |
Zhang et al. | Isolation and culture of single cell types from rat liver | |
US20090068153A1 (en) | Cell composition for tissue regeneration | |
Wu et al. | Isolation and myogenic differentiation of mesenchymal stem cells for urologic tissue engineering | |
Salerno et al. | Gas permeable membrane bioreactor for the co-culture of human skin derived mesenchymal stem cells with hepatocytes and endothelial cells | |
CN103555656A (zh) | 同时分离肝星状细胞及成纤维母细胞的方法 | |
Zavatti et al. | Development of a novel method for amniotic fluid stem cell storage | |
Van Pham et al. | Production of good manufacturing practice-grade human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells for therapeutic use | |
Yang et al. | An improved method for the isolation and culture of rat epidermal stem cells | |
BR112020004517A2 (pt) | células tronco derivadas de porco neonato e processo para sua preparação |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C02 | Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001) | ||
WD01 | Invention patent application deemed withdrawn after publication |
Application publication date: 20140205 |