CN103421891B - 一种用于PCR检测的血浆miRNA制备方法 - Google Patents
一种用于PCR检测的血浆miRNA制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103421891B CN103421891B CN201310097478.6A CN201310097478A CN103421891B CN 103421891 B CN103421891 B CN 103421891B CN 201310097478 A CN201310097478 A CN 201310097478A CN 103421891 B CN103421891 B CN 103421891B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- blood plasma
- mirna
- preparation
- pcr
- extracting solution
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
Abstract
本发明属于生物医药技术领域,涉及一种制备血浆中小RNA分子的方法。该方法基于提取液与血浆混合、加热,在表面活性剂、中性盐和加热作用下,经高速离心,获取含有miRNA分子的上清液,用于miRNA的PCR检测。该技术方法适用于临床样品中miRNA制备,可用于疾病诊断分析。
Description
技术领域本发明涉及一种用于聚合酶链式反应(PCR)检测血浆中miRNA的血浆miRNA制备方法。
背景技术微小核糖核酸(microRNA,miRNA)是一类长度在22个核苷酸左右的非编码单链RNA分子,主要通过与靶mRNA的3′端非翻译区(UTR)结合,降解或者抑制mRNA翻译生成蛋白质,广泛参与基因表达调控。研究发现miRNA分子的表达异常与多种疾病的发生和发展密切相关,是包括肿瘤在内的多种疾病的诊断和治疗的靶分子。特别是miRNA分子在人血浆中能够稳定存在,现在已经成为疾病诊断的重要可选标志物分子。目前血浆miRNA分子的检测主要是采用实时定量PCR方法,因此需要制备血浆中的miRNA。现在通用的方法是利用胍类和酚试剂提取血浆中的miRNA,代表性的试剂包括Invitrogen公司的Trizol和Sigma公司的TRIReagent试剂。虽然这些试剂在制备血浆miRNA中得到了成功的应用,但是,存在操作步骤多、耗时长,血浆用量大、使用成本高的不足。为了满足临床检测要求操作简单、快速、准确、低成本的要求,本发明提供了一种操作简单快捷、成本低廉、耗时少、血浆用量少的适用于PCR法检测血浆中miRNA的血浆miRNA制备方法。
发明内容本发明的目的是建立一种用于PCR检测的血浆miRNA制备方法。该方法的特征是在制备血浆中的miRNA的提取液中加入表面活性剂和中性盐,该方法的主要原理是:提取液与血浆混合加热,在表面活性剂、中性盐和加热作用下,使血浆中的结合状态miRNA游离出来,经高速离心,获取含有miRNA分子的上清液,用于miRNA的PCR检测。该提取液的主要成分是壬基酚聚氧乙烯醚(NP-40)、氯化钠和水。在提取液中的浓度范围是0.5%~1.5%,中性盐在血浆miRNA提取液中的浓度范围是0.1mol/L~0.4mol/L。通常可以选用1%的NP-40浓度和0.3mol/L的NaCl浓度。在制备血浆中miRNA时,在制备血浆miRNA过程中提取液与血浆用量的比例为体积比1∶1,血浆的用量范围为20微升~200微升。通常使用20微升血浆即可得到预期的结果。血浆与提取液混合后,可在65℃~100℃范围内加热,加热时间为5分钟~10分钟,通常加热5分钟即可。加热后经12,000r/min离心15分钟,回收上清液。获得上清液即可以用于PCR方法检测miRNA分子。如用于基于poly(A)加尾的反转录PCR检测miRNA等方法。本方法的特点是简单、快速、成本低,临床采指血的血浆量就可以完成检测。本方法非常适用于临床血浆样本中miRNA的检测分析。
为了检测使用方便,可依据本方法组装试剂盒。试剂盒的组成包括NP-40、氯化钠和水。
附图说明
图1.同一样本不同血浆用量制备miRNA的检测结果。A和B代表不同的血浆样本。纵坐标是实时定量聚合酶链式反应的循环数(Ct值),横坐标是制备时不同血浆用量。
图2.不同样本血浆重复制备miRNA的检测结果。A和B代表检测相同样本中的不同miRNA。纵坐标是实时定量聚合酶链式反应的循环数(Ct值),横坐标是不同样本。
具体实施方式
本发明用以下实施例进行解释,这些实施例的目的只是为了解释而不是以任何方式限制本发明。
实施例1
检测不同血浆用量对血浆miRNA回收量的影响。
1.血浆miRNA制备:分别取2例样本血浆,血浆用量分别为20μl、40μl、60μl、80μl、100μl,相应加入miRNA提取液(提取液组成:NP-40含量为1%,氯化钠含量为0.3mol/L)20μl、40μl、60μl、80μl、100μl,混匀,100℃加热5分钟。加热后经12,000r/min离心15分钟,个样品管分别回收上清液20μl、40μl、60μl、80μl、100μl。获得上清液即可以用于PCR方法检测miRNA分子。
2.poly(A)加尾RT-PCR法检测制备miRNA:
A.miRNA加尾:miRNA加尾使用NEWENGLANDBioLabs公司E.colipoly(A)聚合酶试剂盒,将提取到的RNA取17.6μl按照试剂说明书配制20μl加尾体系,置于37℃水浴1h。
B.反转录:miRNA反转录使用PROMEGA公司ImProm-IITM反转录酶试剂盒试剂盒,在加尾后20μl体系中加入2μg反转录引物(5′-GCGAGCACAGAATTAATACGACTCACTATAGG(T)18VN-3′)(1μg/μl),70℃水浴5分钟,冰浴5分钟。加入8μl5×反转录缓冲液,4.8μlMgCl2(25mmol/L),2μldNTP(10mmol/L),0.2μlDEPC水,1μlRNase抑制剂(40u/μl),2μl反转录酶,配制40μl反应体系。反应条件为42℃1h,70℃15分钟,25℃5分钟,反转录所得cDNA可置于-20℃保存。
C.实时定量PCR:实时定量PCR使用QIAGEN公司QuantiTectTMSYBRGreenPCRMasterMix试剂,按照10μlMix、8μl水、1μlcDNA、1μl引物(反向公用引物5′-GCGAGCACAGAATTAATACGAC-3′;正向引物分别为:miR-21引物5′-TAGCTTATCAGACTGATGTTGA-3′,miR-25引物5′-CATTGCACTTGTCTCGGTCTGA-3′,miR-92引物5′-TATTGCACTTGTCCCGGCCTGT-3′)配制20μl实时定量反应体系。反应条件为95℃变性15分钟,(95℃10s,60℃30s,72℃30s)40个循环,进行熔解曲线分析,一个循环(95℃1分钟,55℃1分钟,95℃1分钟)。每个样品检测两个重复。
图1中A和B分别为检测两个血浆样本中三种不同miR-21、miR-25和miR-92的poly(A)加尾RT-PCR检测结果。在miRNA制备过程中分别取20μl、40μl、60μl、80μl、100μl的血浆样本,但在poly(A)加尾时加入的相对于血浆的量是相同的,结果表明本发明中的血浆RNA提取液在不同的血浆样本的miRNA制备中有很好的制备回收率。
实施例2
检测不同样本血浆制备miRNA的重复性。
血浆miRNA的制备、miRNA加尾、反转录和实时定量PCR方法同实施例1。取4例不同血浆样本,制备miRNA的血浆用量均为20μl,每个样本重复制备检测3次。图2中A和B为检测4例不同样本中miR-21和miR-25的结果。每个样本的三次重复制备检测结果表明本发明中的血浆RNA提取液提取血浆RNA具有很好的可重复性。
Claims (4)
1.一种血浆miRNA制备方法,其特征在于制备血浆中的miRNA提取液由1%的壬基酚聚氧乙烯醚(NP-40)、0.3mol/L氯化钠和水配制,将提取液与血浆混合、加热、离心,回收含有miRNA分子的上清液,用于miRNA的PCR检测。
2.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于:在制备血浆miRNA过程中加热温度为65℃~100℃,加热时间为5分钟~10分钟。
3.根据权利要求1所述的制备方法,其特征在于:在制备血浆miRNA过程中提取液与血浆用量的比例为体积比1∶1,血浆的用量范围为20微升~200微升。
4.一种用于制备血浆miRNA的试剂盒,其特征在于:试剂盒由1%的壬基酚聚氧乙烯醚(NP-40)、0.3mol/L氯化钠和水组成。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310097478.6A CN103421891B (zh) | 2013-03-26 | 2013-03-26 | 一种用于PCR检测的血浆miRNA制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN201310097478.6A CN103421891B (zh) | 2013-03-26 | 2013-03-26 | 一种用于PCR检测的血浆miRNA制备方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN103421891A CN103421891A (zh) | 2013-12-04 |
CN103421891B true CN103421891B (zh) | 2016-03-02 |
Family
ID=49647282
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN201310097478.6A Active CN103421891B (zh) | 2013-03-26 | 2013-03-26 | 一种用于PCR检测的血浆miRNA制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN103421891B (zh) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN104017860A (zh) * | 2014-04-11 | 2014-09-03 | 中国人民解放军军事医学科学院基础医学研究所 | 一种利用miR-152作为动脉粥样硬化血清标志物及检测试剂盒 |
CN107012199A (zh) * | 2016-01-28 | 2017-08-04 | 上海市东方医院 | 一种在血浆和血清中检测miRNA的方法 |
CN107326092B (zh) * | 2017-08-25 | 2021-07-20 | 深圳市恩普电子技术有限公司 | 大肠癌相关的miRNA作为生物标志物的应用及大肠癌检测试剂盒 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101395169A (zh) * | 2006-03-02 | 2009-03-25 | Bio-Rad实验室公司 | 用于在微流体装置中检测分离的mRNA的缓冲液 |
CN102140451A (zh) * | 2010-12-09 | 2011-08-03 | 中国农业大学 | 一种提取dna和rna的方法 |
CN102575220A (zh) * | 2009-09-03 | 2012-07-11 | 贝克顿·迪金森公司 | 用于直接化学裂解的方法和组合物 |
CN102884191A (zh) * | 2010-02-26 | 2013-01-16 | 凯杰有限公司 | 用于平行分离和/或纯化rna和dna的方法 |
-
2013
- 2013-03-26 CN CN201310097478.6A patent/CN103421891B/zh active Active
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101395169A (zh) * | 2006-03-02 | 2009-03-25 | Bio-Rad实验室公司 | 用于在微流体装置中检测分离的mRNA的缓冲液 |
CN102575220A (zh) * | 2009-09-03 | 2012-07-11 | 贝克顿·迪金森公司 | 用于直接化学裂解的方法和组合物 |
CN102884191A (zh) * | 2010-02-26 | 2013-01-16 | 凯杰有限公司 | 用于平行分离和/或纯化rna和dna的方法 |
CN102140451A (zh) * | 2010-12-09 | 2011-08-03 | 中国农业大学 | 一种提取dna和rna的方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN103421891A (zh) | 2013-12-04 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Ho et al. | MicroRNA-based diagnosis and therapy | |
Fiorino et al. | MicroRNAs as possible biomarkers for diagnosis and prognosis of hepatitis B-and C-related-hepatocellular-carcinoma | |
Yu et al. | Circulating microRNA biomarkers for lung cancer detection in Western populations | |
Borel et al. | Adenosine triphosphate‐binding cassette transporter genes up‐regulation in untreated hepatocellular carcinoma is mediated by cellular microRNAs | |
Li et al. | Method for microRNA isolation from clinical serum samples | |
Tölle et al. | Identification of microRNAs in blood and urine as tumour markers for the detection of urinary bladder cancer | |
Suzuki et al. | CD47 expression regulated by the miR-133a tumor suppressor is a novel prognostic marker in esophageal squamous cell carcinoma | |
Mostert et al. | Diagnostic applications of cell-free and circulating tumor cell-associated miRNAs in cancer patients | |
US20140243240A1 (en) | microRNA EXPRESSION PROFILING OF THYROID CANCER | |
US20100298407A1 (en) | Compositions and methods featuring micronas for treating neoplasia | |
Zhuang et al. | Serum miR-21, miR-26a and miR-101 as potential biomarkers of hepatocellular carcinoma | |
US20110160290A1 (en) | Use of extracellular rna to measure disease | |
Huang et al. | Frequent co-expression of miRNA-5p and-3p species and cross-targeting in induced pluripotent stem cells | |
Rabinowits et al. | Comparative analysis of microRNA expression among benign and malignant tongue tissue and plasma of patients with tongue cancer | |
Cai et al. | Expression of miR-221 in colon cancer correlates with prognosis | |
Madadi et al. | MicroRNA expression studies: challenge of selecting reliable reference controls for data normalization | |
El-Halawany et al. | Investigating the pretreatment miRNA expression patterns of advanced hepatocellular carcinoma patients in association with response to TACE treatment | |
He et al. | Next-generation sequencing of microRNAs reveals a unique expression pattern in different types of pituitary adenomas | |
Xu et al. | MicroRNAs: potential biomarkers for disease diagnosis | |
CN103421891B (zh) | 一种用于PCR检测的血浆miRNA制备方法 | |
Yuan et al. | Expressions of VEGF and miR-21 in tumor tissues of cervical cancer patients with HPV infection and their relationships with prognosis. | |
Kolenda et al. | cfRNAs as biomarkers in oncology–still experimental or applied tool for personalized medicine already? | |
D&aposAngelo et al. | MicroRNAs as tools and effectors for patient treatment in gastrointestinal carcinogenesis | |
Ziogas et al. | Role of microRNA in the diagnosis and management of hepatocellular carcinoma | |
Mlcochova et al. | Urinary microRNAs as a new class of noninvasive biomarkers in oncology, nephrology, and cardiology |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant |