CN102890085B - 一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液及其在固相合成比伐芦定中的应用 - Google Patents

一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液及其在固相合成比伐芦定中的应用 Download PDF

Info

Publication number
CN102890085B
CN102890085B CN201110460739.7A CN201110460739A CN102890085B CN 102890085 B CN102890085 B CN 102890085B CN 201110460739 A CN201110460739 A CN 201110460739A CN 102890085 B CN102890085 B CN 102890085B
Authority
CN
China
Prior art keywords
solution
solid
detection
detection solution
solvent
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
CN201110460739.7A
Other languages
English (en)
Other versions
CN102890085A (zh
Inventor
谭端明
田茂奎
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shenzhen Salubris Pharmaceuticals Co Ltd
Original Assignee
Shenzhen Salubris Pharmaceuticals Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shenzhen Salubris Pharmaceuticals Co Ltd filed Critical Shenzhen Salubris Pharmaceuticals Co Ltd
Priority to CN201110460739.7A priority Critical patent/CN102890085B/zh
Publication of CN102890085A publication Critical patent/CN102890085A/zh
Application granted granted Critical
Publication of CN102890085B publication Critical patent/CN102890085B/zh
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analyzing Non-Biological Materials By The Use Of Chemical Means (AREA)

Abstract

本发明提供一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液,由水合茚三酮、铁氰化钾和苯甲酸的溶液组成,溶液的溶剂为水、乙醇、或水和乙醇的混合溶剂。该检测溶液应用在检测树脂上的游离氨基时,比传统的Kaiser检测溶液具有更高的灵敏度和准确度。该检测溶液避免使用剧毒的氰化钾和具有恶臭味的吡啶。在固相法合成抗凝药物比伐芦定的缩合反应中,应用本发明检测反应终点可以明显提高合成收率。

Description

一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液及其在固相合成比伐芦定中的应用
技术领域
本发明涉及一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液及其用于固相合成多肽反应终点的检测方法,尤其是固相合成多肽药物比伐芦定的反应终点的检测。
背景技术
比伐芦定(Bivalirudin)是一种人工合成的由20个氨基酸组成的多肽,其氨基酸序列为D-Phe-Pro-Arg-Pro-Gly-Gly-Gly-Gly-Asn-Gly-Asp-Phe-Glu-Glu-Ile-Pro-Glu-Glu-Tyr-Leu-OH,化学名称为:D-苯丙氨酰-L-脯氨酰-L-精氨酰-L-脯氨酰-甘氨酰-甘氨酰-甘氨酰-甘氨酰-L-天冬酰胺酰-甘氨酰-天冬氨酰-L-苯丙氨酰-L-谷氨酰-L-谷氨酰-L-异亮氨酰-L-脯氨酰-L-谷氨酰-L-谷氨酰-L-酪氨酰-L-亮氨酸,分子式C98H138N24O33,CAS号128270-60-0。它是水蛭素的衍生物,具有抑制凝血酶的活性。比伐芦定最早由Biogen公司研发,后由美国The MedicinesCompany公司开发作为经皮冠状动脉成形术(PCI)中的抗凝剂,美国上市产品商品名为
美国专利US5196404和中国专利申请CN200580043573.1、CN200610024611.5、CN200810008131.9、CN200910051311.X分别报道了利用固相多肽合成法制备比伐芦定的技术。
在固相合成法制备比伐芦定过程中,每一步各氨基酸缩合反应的完全转化对收率有重要的影响。因为多步的串联反应中,每步收率的微小下降会导致最终收率的大幅下降。但如果在反应终点后继续延长反应时间,有可能导致消旋等副反应的增加,同样影响最终的收率。因此,监控和判断缩合反应的终点是固相合成比伐芦定以及其他氨基酸较多的多肽的关键之一。
在判断固相多肽合成的缩合反应终点时,使用最广的是Kaiser检测溶液测试法(王德心编,化学工业出版社,《固相有机合成:原理及应用指南》,第三章第五节,2004年9月出版;田少雷等,多肽固相合成中茚三酮定量监测法的改进,化学通报,1991年04期,38-39;E.Kaiser等,Color test for detection of freeterminal amino groups in the solid-phase synthesis of peptides,Anal.Biochem.1970,34,595-598)。水合茚三酮可与游离氨基发生一系列反应,生成有颜色的化合物。该方法灵敏度较高,大多数情况下仅凭肉眼观察,就可以达到定量判断缩合反应终点的效果。
在利用显色反应检测氨基的文献中,实际上常使用的是水合茚三酮(ninhydrin)。在强化脱水的条件下,水合茚三酮可以转化为茚三酮(1,2,3-indantrione)。本发明所使用的化合物均是水合茚三酮(ninhydrin)。
茚三酮(1,2,3-indantrione)    水合茚三酮(ninhydrin)
经典的Kaiser检测溶液包括以下三种溶液:(1)5克水合茚三酮与100mL乙醇的混合溶液;(2)80克苯酚与20mL乙醇的混合溶液;(3)2mL 0.001mol/L氰化钾的水溶液与98mL吡啶的混合溶液。使用时各取三种溶液2至3滴溶液,与待测样品混合,在100至120℃之间加热约5分钟。不存在游离氨基时,样品保持原来的颜色,如果存在很少量的游离氨基,大部分氨基酸会出现明显的蓝色,少数氨基酸呈现其他颜色,凭肉眼即可观察。
上述的茚三酮检测试剂,根据文献报道其作用机理为,氰化钾提供的氰离子作为还原剂,催化有色物质的生成(Hyman Rosen,Archives of Biochemistry andBiophysics,1957,Volume 67,Issue 1,Pages 10-15;Walter Troll等,The Journal ofBiological Chemistry,1953,Volume 200,Issue 2,Pages 803-811)。
发明内容
本发明的目的在于提供一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液,由水合茚三酮、铁氰化钾和苯甲酸的溶液组成。当用于监测固相合成多肽的反应终点时,其检测游离氨基的灵敏度和准确度高于传统Kaiser检测溶液(由水合茚三酮、苯酚、氰化钾和吡啶组成),更易于判断各氨基酸在缩合反应中的完全转化,对提高固相合成多肽的收率具有显著的作用。
本发明的一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液,由水合茚三酮、铁氰化钾和苯甲酸的溶液组成。
上述溶液的溶剂为乙醇、水、或水和乙醇的混合溶剂,优选水和乙醇的混合溶剂。
上述检测溶液中,水合茚三酮的浓度为0.5%~10%(w/v,g/mL),即1mL溶剂中含有0.005g~0.1g的水合茚三酮;铁氰化钾的浓度为0.1%~2%(w/v,g/mL),即1mL溶剂中含有0.001g~0.02g的铁氰化钾;苯甲酸的浓度为0.001%~1%(w/v,g/mL),即1mL溶剂中含有1×10-5g~1×10-2g的苯甲酸。
上述检测溶液中,水合茚三酮的浓度优选为4%~5%(w/v,g/mL),即1mL溶剂中含有0.04g~0.05g的水合茚三酮。
上述检测溶液中,铁氰化钾的浓度优选为0.4%~0.5%(w/v,g/mL),即1mL溶剂中含有0.004g~0.005g的铁氰化钾。
上述检测溶液中,苯甲酸的浓度优选为0.01%~0.1%(w/v,g/mL),即1mL溶剂中含有1×10-4g~1×10-3g的苯甲酸。
一种上述检测溶液的制备方法:将一定重量的水合茚三酮溶于一定体积的溶剂中,制得溶液A;将一定重量的铁氰化钾溶于一定体积的溶剂中,制得溶液B;将一定重量苯甲酸溶于一定体积的溶剂中,制得溶液C;取一定体积溶液A、溶液B和溶液C混合均匀,得到上述浓度的检测溶液;其中,溶液A和溶液C的溶剂优选为乙醇,溶液B的溶剂优选为水,所得检测溶液的溶剂优选为水和乙醇的混合溶剂。
其中,水合茚三酮,英文名:Ninhydrin,分子式:C9H6O4,CAS号为485-47-2;铁氰化钾,英文名:Potassium Ferricyanide,分子式:C6FeK3N6,其CAS号为13746-66-2;苯甲酸,英文名:Benzoic Acid,分子式:C7H6O2,其CAS号为65-85-0。
w/v是指溶质的重量(w)与溶剂的体积(v)之比,其中w的单位为“克”,简写为“g”;v的单位为“毫升”,简写为“mL”;如浓度为1%(w/v)的溶液,是指1g溶质溶解于100mL的溶剂中形成的溶液,本发明的溶质包含水合茚三酮、铁氰化钾和苯甲酸等,溶剂包含乙醇、水、或水和乙醇的混合溶剂等。
固相合成多肽是指将单个氨基酸或者多个氨基酸组成的多肽片段连在固相载体上,通过化学合成的方法,进行氨基酸缩合反应,以最终得到目标多肽的方法,所述的固相载体通常是指各种树脂,如Wang树脂等。本发明的检测溶液用于氨基酸缩合反应中,判断树脂上各氨基酸在合成多肽或多肽片段过程中的缩合反应是否进行完全。
一种监测固相合成多肽反应终点的检测方法:取少量载有多肽的树脂到容器中,加入一定量的检测溶液,置于100℃~110℃中加热5分钟,取出观察,若溶液和/或树脂呈现蓝色(个别多肽呈现红棕色或其他颜色),表明缩合反应未完全,如果树脂和溶液呈现无色或树脂本身的颜色,如淡黄色,表示缩合反应完全。
待测树脂上的游离氨基与水合茚三酮反应生成有色物质的反应,需要适当加热才会发生,常用的加热温度为90℃~120℃,为了实现快速检测,通常选择100℃以上,升温时间和保温时间合计仅需几分钟,即可达到满意的显色效果,为了方便操作,推荐的加热温度范围100℃~110℃,升温时间和保温时间共计4~6分钟。
本发明所述检测溶液相对于现有技术具有如下的优点及有益效果:
发明人在固相多肽合成的研究中通过大量的实验意外的发现,得到一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液,由水合茚三酮、铁氰化钾和苯甲酸的溶液组成,溶液的溶剂选择为水、乙醇,或水和乙醇的混合溶剂等常规溶剂即可,避免了毒性物质KCN和具有恶臭味溶剂吡啶的使用;在固相合成多肽实践中发现,该检测溶液比传统的Kaiser检测溶液更灵敏,能够更准确地反映缩合反应的终点。
本发明提供的检测溶液可以避免使用剧毒的氰化钾试剂。根据2011年03月02日颁布的国务院令第591号《危险化学品安全管理条例》修订版的规定,氰化钾的购买、运输、保存和使用需要特殊的专业资格,并受到严格的管制。这导致使用氰化钾需要付出额外的审批时间和管理成本。而氰化钾本身在水溶液或者潮湿的空气中容易发生复分解反应、水解反应和氧化反应,长期存放容易变质。本发明使用的铁氰化钾的稳定性相对提高,而且毒性很低,属非管制危险化学品。
本发明检测溶液,经发明人用于大量固相合成多肽实践中予以筛选和验证,优选得到检测溶液中水合茚三酮的浓度为0.5%~10%(w/v,g/mL),特别是4%~5%(w/v,g/mL);铁氰化钾的浓度为0.1%~2%(w/v,g/mL),特别是0.4%~0.5%(w/v,g/mL);苯甲酸的浓度为0.001%~1%(w/v,g/mL),特别是0.01%~0.1%(w/v,g/mL);将优选得到的检测溶液用于固相合成多肽比伐芦定的缩合反应中发现,比传统的Kaiser检测溶液更灵敏,能够更准确地反映缩合反应的终点,对比实验结果显示,应用本发明的检测试剂能够显著提高比伐芦定的合成收率。
本发明检测溶液可有效用于监测固相合成多肽反应终点的检测,提高固相合成多肽产品的收率,降低生产成本,可以广泛用于多肽及其他含有氨基酸的物质的工业化生产,具有重要意义。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明作进一步详细的描述,但发明的实施方式不限于此。
实施例1检测溶液的组成及配制方法
检测溶液的组成及配制方法:称取2.5g分析纯水合茚三酮到125mL棕色试剂瓶内,加入50mL乙醇,摇匀溶解,得A溶液;称取2.5g分析纯铁氰化钾到125mL棕色试剂瓶内,加入50mL蒸馏水,摇匀溶解,得B溶液;称取0.15g分析纯苯甲酸到125mL棕色试剂瓶内,加入100mL乙醇,摇匀溶解,得C溶液。
使用前取A溶液0.5mL,B溶液和C溶液各0.05mL进行混合,得到检测溶液;该检测溶液中:水合茚三酮的浓度为4.17%(w/v);铁氰化钾的浓度为0.42%(w/v);苯甲酸的浓度为1.25×10-2%(w/v)。
实施例2检测溶液的组成及配制方法
检测溶液的组成及配制方法:称取3.0g分析纯水合茚三酮到125mL棕色试剂瓶内,加入50mL乙醇,摇匀溶解,得A溶液;称取3.0g分析纯铁氰化钾到125mL棕色试剂瓶内,加入50mL蒸馏水,摇匀溶解,得B溶液;称取1.2g分析纯苯甲酸到125mL棕色试剂瓶内,加入100mL乙醇,摇匀溶解,得C溶液。
使用前取A溶液0.5mL,B溶液和C溶液各0.05mL进行混合,得到检测溶液;该检测溶液中:水合茚三酮的浓度为5.0%(w/v);铁氰化钾的浓度为0.5%(w/v);苯甲酸的浓度为0.1%(w/v)。
实施例3检测溶液的组成及配制方法
检测溶液的组成及配制方法:称取2.4g分析纯水合茚三酮到125mL棕色试剂瓶内,加入50mL乙醇,摇匀溶解,得A溶液;称取2.4g分析纯铁氰化钾到125mL棕色试剂瓶内,加入50mL蒸馏水,摇匀溶解,得B溶液;称取0.12g分析纯苯甲酸到125mL棕色试剂瓶内,加入100mL乙醇,摇匀溶解,得C溶液。
使用前取A溶液0.5mL,B溶液和C溶液各0.05mL进行混合,得到检测溶液;该检测溶液中:水合茚三酮的浓度为4.0%(w/v);铁氰化钾的浓度为0.4%(w/v);苯甲酸的浓度为1.0×10-2%(w/v)。
实施例4固相合成比伐芦定及Kaiser检测溶液在固相合成比伐芦定中的应用
参照CN200810008131.9实施例1固相合成比伐芦定的方法制备比伐芦定,具体制备步骤如下:
(1)、C端第1个氨基酸对-烷氧基苯甲醇(Fmoc-Leu-Wang)树脂的脱保护
(a)称取Fmoc-Leu-Wang树脂置于硅烷化的玻璃反应器中,每1g树脂加DMF 3mL~7mL,使树脂完全浸入其中,溶胀25~60分钟;
(b)抽滤掉DMF,在树脂中加入3mL~7mL浓度为15%~25%哌啶/溶剂,轻微振荡下反应3~10分钟,抽滤掉反应液后,再加入3mL~7mL浓度为15%~25%哌啶/溶剂,轻微振荡下反应10~20分钟,抽去反应液;
(c)用DMF×2、MeOH×2、DMF×2洗涤树脂,取出约10mg树脂放入小玻璃试管中,用乙醇洗涤2~3遍,倾去乙醇,加入一定量检测溶液(Kaiser检测溶液,加入量为下述组成Kaiser试液的溶液A′、溶液B′和溶液C′各2~3滴),100℃~110℃下加热4~6分钟,溶液和树脂呈深蓝色,说明脱除Fmoc完全;
(2)、C端第二个氨基酸Fmoc-Tyr(tBu)-OH与H2N-Leu-Wang树脂的偶联
反应式如下:
称取原料:Fmoc-Tyr(tBu)-OH:是树脂负载量的2~5倍;
DIC:是树脂负载量的2~5倍;
HOBt:是树脂负载量的2~5倍;
(a)将称取的Fmoc-Tyr(tBu)-OH和HOBt溶于3~7mL DMF中,加入到反应管中,然后加入DIC,室温下振荡反应30~60分钟;
(b)用DMF×2、MeOH×2、DMF×2洗涤树脂,取出约10mg树脂放入小玻璃试管中,用乙醇洗涤2~3遍,倾去乙醇,加入一定量检测溶液(Kaiser检测溶液,加入量为下述组成Kaiser试液的溶液A′、溶液B′和溶液C′各2~3滴),100℃~110℃下加热4~6分钟,溶液和树脂呈无色或树脂本身的淡黄色,说明缩合反应完全后,按照多肽氨基酸连接顺序,进行下一个氨基酸的缩合;
(3)、C端第3~20个氨基酸的依次缩合
按照上述步骤1、2的方法,分别将第3~20个氨基酸依次缩合,完成20个氨基酸的缩合反应;
第3~20个氨基酸的称取量均为树脂负载量的2~5倍;
(4)、最终产物20个氨基酸肽Fmoc保护剂的脱除
裂解干燥至恒重的肽树脂10g,加入100mL裂解液(95%TFA:2.5%TIS:2.5%H2O),室温下反应2h,将裂解液滴入到1000mL冰冷的乙醚中沉淀,离心洗涤几遍粗品,真空干燥至恒重,得比伐芦定粗品,粗品进行进样分析。比伐芦定粗品的分析采用CN200810008131.9公开的HPLC方法。
采用Kaiser检测溶液用于缩合反应的终点判断,所得比伐芦定粗品收率约68%,纯度80%。
Kaiser检测溶液的组成及配制方法:(1)称取5克水合茚三酮到125mL棕色试剂瓶内,与50mL乙醇,摇匀溶解,得溶液A′;(2)称取80克苯酚到125mL棕色试剂瓶内,加入20mL乙醇,摇匀溶解,得溶液B′;(3)量取2mL的0.001mol/L氰化钾的水溶液,加入到98mL吡啶,得溶液C′。
其中,上述固相合成方法中,,各试剂及载体的缩写为如下定义:
  Fmoc   9-芴甲氧羰基
  DMF   N,N-二甲基甲酰胺
  HOBt   1-羟基苯并三唑
  DIC   N,N-二异丙基碳二亚胺
  tBu   叔丁基
  TFA   三氟醋酸
  TIS   三异丙基硅烷
  MeOH   甲醇
  ●   Wang树脂
实施例5本发明的检测试剂在固相合成比伐芦定中的应用
按照实施例4的方法合成比伐芦定,在实施例4步骤(1)(c)、(2)(b)和(3)分别取出约10mg树脂放入小试管里,用乙醇洗涤2~3遍,倾去乙醇,加入一定量检测溶液(实施例4的Kaiser检测溶液用本发明实施例1的检测溶液代替,加入量约0.6mL),置于100~110℃中加热5分钟,当溶液和树脂呈现无色或树脂本身的淡黄色,表示缩合反应完全。采用该检测溶液用于缩合反应的终点判断,所得比伐芦定粗品收率为92%,纯度91%。
实施例6本发明的检测试剂在固相合成比伐芦定中的应用
按照实施例4的方法合成比伐芦定,在实施例4步骤(1)(c)、(2)(b)和(3)分别取出约10mg树脂放入小试管里,用乙醇洗涤2~3遍,倾去乙醇,加入一定量检测溶液(实施例4的Kaiser检测溶液用本发明实施例2的检测溶液代替,加入量约0.6mL),置于100~110℃中加热5分钟,取出小试管观察,当溶液和树脂呈现无色或树脂本身的淡黄色,表示缩合反应完全。采用该检测溶液用于缩合反应的终点判断,所得比伐芦定粗品收率为90%,纯度89%。
实施例7本发明的检测试剂在固相合成比伐芦定中的应用
按照实施例4的方法合成比伐芦定,在实施例4步骤(1)(c)、(2)(b)和(3)分别取出约10mg树脂放入小试管里,用乙醇洗涤2~3遍,倾去乙醇,加入一定量检测溶液(实施例4的Kaiser检测溶液用本发明实施例3的检测溶液代替,加入量约0.6mL),置于100~110℃中加热5分钟,取出小试管观察,当溶液和树脂呈现无色或树脂本身的淡黄色,表示缩合反应完全。采用该检测溶液用于缩合反应的终点判断,所得比伐芦定粗品收率为92%,纯度90%。
实施例8“铁氰化钾替换氰化钾的Kaiser试液”在固相合成比伐芦定中的应用
按照实施例4的方法合成比伐芦定,在实施例4步骤(1)(c)、(2)(b)和(3)分别取出约10mg树脂放入小试管里,用乙醇洗涤2~3遍,倾去乙醇,加入一定量检测溶液(实施例4的Kaiser检测溶液用“铁氰化钾替换氰化钾的Kaiser试液”代替,加入量为下述组成“铁氰化钾替换氰化钾的Kaiser试液”的溶液A″、溶液B″和溶液C″各2~3滴),置于100~110℃中加热5分钟,取出小试管观察,当溶液和树脂呈现无色或树脂本身的淡黄色,表示缩合反应完全。采用该检测溶液用于缩合反应的终点判断,所得比伐芦定粗品收率约65%,纯度79%。
“铁氰化钾替换氰化钾的Kaiser试液”的组成及配制方法:(1)称取5克水合茚三酮到125mL棕色试剂瓶内,与50mL乙醇,摇匀溶解,得溶液A″;(2)称取80克苯酚到125mL棕色试剂瓶内,加入20mL乙醇,摇匀溶解,得溶液B″;(3)量取2mL的0.001mol/L铁氰化钾的水溶液,加入到98mL吡啶,得溶液C″。
从上述实施例发现,实施例5~7实验结果证明当本发明实施例1~3的检测溶液分别用于固相合成比伐芦定缩合反应终点的检测时,因该检测溶液判断缩合反应终点灵敏度和准确度明显高于Kaiser试液,显著提高了比伐芦定粗品收率和纯度;从实施例4和8实验结果可以得出,用铁氰化钾简单替换氰化钾后,用于固相合成比伐芦定缩合反应终点的检测时,比伐芦定粗品收率和纯度相当,说明铁氰化钾替换氰化钾的Kaiser试液与Kaiser试液的检测结果基本一致,其灵敏度和准确度明显差于本发明的检测溶液。
上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。

Claims (8)

1.一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液,其特征在于,由水合茚三酮、铁氰化钾和苯甲酸的溶液组成,溶液的溶剂为乙醇、水、或水和乙醇的混合溶剂,1mL溶剂中含有0.005g~0.1g的水合茚三酮;1mL溶剂中含有0.001g~0.02g的铁氰化钾;1mL溶剂中含有1×10-5g~1×10-2g的苯甲酸。
2.如权利要求1所述的一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液,其特征在于,1mL溶剂中含有0.04g~0.05g的水合茚三酮。
3.如权利要求1~2任一权利要求所述的一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液,其特征在于,1mL溶剂中含有0.004g~0.005g的铁氰化钾。
4.如权利要求1~2任一权利要求所述的一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液,其特征在于,1mL溶剂中含有1×10-4g~1×10-3g的苯甲酸。
5.如权利要求3所述的一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液,其特征在于,1mL溶剂中含有1×10-4g~1×10-3g的苯甲酸。
6.一种监测固相合成多肽反应终点的检测方法,其特征在于:取固相合成中载有多肽的树脂到容器中,加入如权利要求1~5任一权利要求所述的检测溶液,置于100℃~110℃中加热5分钟,如果溶液和树脂呈现无色或树脂本身的颜色,表示缩合反应完全。
7.如权利要求6所述的一种监测固相合成多肽反应终点的检测方法,其特征在于:所述多肽为比伐芦定。
8.一种固相合成比伐芦定的方法,其特征在于:使用权利要求1~5任一权利要求所述的检测溶液用于检测氨基酸缩合反应是否进行完全。
CN201110460739.7A 2011-12-31 2011-12-31 一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液及其在固相合成比伐芦定中的应用 Active CN102890085B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201110460739.7A CN102890085B (zh) 2011-12-31 2011-12-31 一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液及其在固相合成比伐芦定中的应用

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN201110460739.7A CN102890085B (zh) 2011-12-31 2011-12-31 一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液及其在固相合成比伐芦定中的应用

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CN102890085A CN102890085A (zh) 2013-01-23
CN102890085B true CN102890085B (zh) 2014-11-19

Family

ID=47533658

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN201110460739.7A Active CN102890085B (zh) 2011-12-31 2011-12-31 一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液及其在固相合成比伐芦定中的应用

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN102890085B (zh)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104111231A (zh) * 2013-04-18 2014-10-22 申联生物医药(上海)有限公司 一种快速检测n-甲基-2-吡咯烷酮中游离胺的方法

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101880311A (zh) * 2010-05-28 2010-11-10 吉林大学 提高多肽固相合成效率的二甲苯溶剂配方及应用
CN102072846A (zh) * 2010-12-06 2011-05-25 贵州神奇药业股份有限公司 复方氨基酸(8)维生素(11)胶囊的质量检测方法

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101880311A (zh) * 2010-05-28 2010-11-10 吉林大学 提高多肽固相合成效率的二甲苯溶剂配方及应用
CN102072846A (zh) * 2010-12-06 2011-05-25 贵州神奇药业股份有限公司 复方氨基酸(8)维生素(11)胶囊的质量检测方法

Non-Patent Citations (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
A Qualitative Test For Monitoring Coupling Completeness in Solid Phase Pepride Synthesis Using Chliranil;Thorkild Christensen;《Acta Chemica Scandinavica》;19791231(第33期);第763-766页 *
Method and Protocols of Modern Solid Phase Peptide Synthesis;Muriel Amblard等;《Molecular Biotechnolugy》;20061231;第33卷;第239-254页 *
Muriel Amblard等.Method and Protocols of Modern Solid Phase Peptide Synthesis.《Molecular Biotechnolugy》.2006,第33卷第239-254页. *
Thorkild Christensen.A Qualitative Test For Monitoring Coupling Completeness in Solid Phase Pepride Synthesis Using Chliranil.《Acta Chemica Scandinavica》.1979,(第33期),第763-766页. *
刑书霞等.水合茚三酮法对医疗器械清洗效果的监测研究.《中国消毒学杂志》.2010,第27卷(第5期),第527-529页. *
坝上油菜蜂花粉中游离氨基酸的含量测定;梁惠花等;《张家口医学院学报》;20040228;第21卷(第2期);第16-17页(具体参见"2.1显色剂的配制"、"2.4标准曲线配制") *
多肽合成中几种形成二硫键方法的介绍;王良友等;《有机化学》;19980630;第18卷(第6期);第576-580页 *
张晓溪等.果糖与氨基酸美拉德反应产物的抗氧化性研究.《食品工业科技》.2011,第32卷(第6期),第175-178页. *
抗真菌多肽APS-1的分离纯化与特性;裴炎等;《微生物学报》;19990831;第39卷(第4期);第344-349页(具体参见"1.6.3抗真菌物质的官能团") *
果糖与氨基酸美拉德反应产物的抗氧化性研究;张晓溪等;《食品工业科技》;20110630;第32卷(第6期);第175-178页 *
梁惠花等.坝上油菜蜂花粉中游离氨基酸的含量测定.《张家口医学院学报》.2004,第21卷(第2期),第16-17页. *
水合茚三酮法对医疗器械清洗效果的监测研究;刑书霞等;《中国消毒学杂志》;20100531;第27卷(第5期);第527-529页 *
王良友等.多肽合成中几种形成二硫键方法的介绍.《有机化学》.1998,第18卷(第6期),第576-580页. *
裴炎等.抗真菌多肽APS-1的分离纯化与特性.《微生物学报》.1999,第39卷(第4期),第344-349页. *

Also Published As

Publication number Publication date
CN102890085A (zh) 2013-01-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Pandey et al. Proline editing: A general and practical approach to the synthesis of functionally and structurally diverse peptides. Analysis of steric versus stereoelectronic effects of 4-substituted prolines on conformation within peptides
Dailler et al. Divergent Synthesis of Aeruginosins Based on a C (sp3) H Activation Strategy
Hu et al. Solid-phase synthesis of water-soluble helically folded hybrid α-amino acid/quinoline oligoamides
Giuliano et al. A synergistic combinatorial and chiroptical study of peptide catalysts for asymmetric Baeyer–Villiger oxidation
Botta et al. Design and development of stapled transmembrane peptides that disrupt the activity of G-protein–coupled receptor oligomers
Schmuck et al. One‐Armed Artificial Receptors for the Binding of Polar Tetrapeptides in Water: Probing the Substrate Selectivity of a Combinatorial Receptor Library
CN102890085B (zh) 一种监测固相合成多肽反应终点的检测溶液及其在固相合成比伐芦定中的应用
Kajihara et al. Homogeneous Human Complex‐Type Oligosaccharides in Correctly Folded Intact Glycoproteins: Evaluation of Oligosaccharide Influence On Protein Folding, Stability, and Conformational Properties
Corvaglia et al. Optimization and Automation of Helical Aromatic Oligoamide Foldamer Solid‐Phase Synthesis
Camacho III et al. Deprotection strategies for thioimidates during Fmoc solid-phase peptide synthesis: A safe route to thioamides
Schneggenburger et al. Azide reduction during peptide cleavage from solid support—the choice of thioscavenger?
US7384790B2 (en) Method of analyzing peptide for determining C-terminal amino acid sequence
Biscaglia et al. Linker dependent chirality of solvent induced self-assembled structures of porphyrin–α-helical peptide conjugates
Sun et al. Expanding the Toolbox for Peptide Disulfide Bond Formation via L-Methionine Selenoxide Oxidation
Ito et al. Tag‐Reporter and Resin Capture–Release Strategy in Oligosaccharide Synthesis
Dognini et al. Using 19F NMR and two‐level factorial design to explore thiol‐fluoride substitution in hexafluorobenzene and its application in peptide stapling and cyclisation
Michaelis et al. Ring‐Opening Cross‐Metathesis (ROCM) as a Novel Tool for the Ligation of Peptides
Horsfall et al. Approaches to Introduce Helical Structure in Cysteine‐Containing Peptides with a Bimane Group
Angelici et al. Synthesis and Secondary Structure of Alternate α, β‐Hybrid Peptides Containing Oxazolidin‐2‐one Moieties
Reddy et al. Large scale solid phase synthesis of peptide drugs: use of commercial anion exchange resin as quenching agent for removal of iodine during disulphide bond formation
Montanari et al. A Fluorous Capping Strategy for Fmoc‐Based Automated and Manual Solid‐Phase Peptide Synthesis
Montanari et al. Enabling routine fluorous capping in solid phase peptide synthesis
Pazderková et al. Electronic and vibrational optical activity of several peptides related to neurohypophyseal hormones: Disulfide group conformation
Verlinden et al. The 1, 3‐diyne linker as a rigid “i, i+ 7” staple for α‐helix stabilization: Stereochemistry at work
Chen et al. Versatile on-resin synthesis of high mannose glycosylated asparagine with functional handles

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C14 Grant of patent or utility model
GR01 Patent grant
CP02 Change in the address of a patent holder

Address after: Area A, 4th Floor, Digital Peninsula, No. 2, Hongliu Road, Fubao Community, Fubao Street, Futian District, Shenzhen, Guangdong, 518017

Patentee after: SHENZHEN SALUBRIS PHARMACEUTICALS Co.,Ltd.

Address before: 518040 37th floor, chegongmiao Lvjing Plaza, 6009 Shennan Avenue, Futian District, Shenzhen City, Guangdong Province

Patentee before: SHENZHEN SALUBRIS PHARMACEUTICALS Co.,Ltd.

CP02 Change in the address of a patent holder