CN102755633A - 人重组蛋白pdcd5在治疗自身免疫病中的应用 - Google Patents

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Abstract

本发明提供一种人重组蛋白PDCD5在治疗自身免疫病中的应用。人重组蛋白PDCD5能够诱导CD4+CD25+Foxp3+调节性T细胞分化、抑制Th17细胞的分化、抑制炎症细胞因子IL-17A和TNF-α的产生,具有免疫抑制作用。因此人重组蛋白PDCD5在诱导自身免疫抑制,应用于治疗自身免疫性疾病如多发性硬化症和/或其他脱髓鞘疾病、迟发型超敏反应、类风湿关节炎、系统性红斑狼疮、胰岛素依赖性的糖尿病、自身免疫性心肌炎、桥本氏病、Grave’s病、重症肌无力等具有广阔的前景。

Description

人重组蛋白PDCD5在治疗自身免疫病中的应用
技术领域
本发明涉及生物制品以及免疫学领域,尤其涉及人重组蛋白PDCD5在诱导CD4+CD25+Foxp3+调节性T细胞分化、抑制Th17细胞的分化,抑制炎症细胞因子IL-17A和TNF-α的产生,预防和/或治疗自身免疫病中的应用。
背景技术
PDCD5(程序性细胞死亡分子5,programmed cell death 5),以前被称为TFAR19(TF-1细胞凋亡相关基因19,TF-1cell apoptosis-related gene 19),是一种新的程序性细胞死亡调控基因(中国专利98101869.6;BiochemBiophy Res Comm,1999,254:203-210)。该基因进化保守,表达广泛,其编码的PDCD5蛋白由125个氨基酸组成。前期的功能研究证明PDCD5在多种肿瘤组织中表达下调,人重组蛋白PDCD5可以利用窖蛋白(caveolae)/脂筏介导的胞吞作用进入细胞(J.Biol.Chem.2006,281:24803-24817),加入外源性人重组PDCD5蛋白,细胞内吞后还可到达细胞核。进入细胞的重组人PDCD5能够增强多种肿瘤细胞对多种化疗药的敏感性,促进化疗药引起的肿瘤细胞的死亡(Chinese Science Bulletin,2009,54(21):3981-3989;BiochemBiophys Res Commun,2010,96(2):224-230;中国实验血液学杂志,2010;18(2):277-281;Apoptosis,2010,15:805-813),是一种潜在的新的抑癌基因,其效应机制是通过结合组蛋白乙酰转移酶Tip60(Tat Interactive Protein 60kD,Tip60)发挥促进肿瘤细胞凋亡的作用(Neoplasia,2009,10(4):345-354)。
Tip60是进化上保守的组蛋白乙酰化转移酶,其在转录调控、DNA损伤修复、细胞周期阻滞和凋亡等过程中发挥重要作用。最近的研究发现Tip60能够与FOXP3相互作用,促进FOXP3的乙酰化,从而介导FOXP3的转录抑制活性(Proc Natl Acad Sci USA,2007,104(11):4571-4576)。Foxp3分子是赋予调节T细胞细胞免疫抑制功能的主要分子,也是其最具特异性的标志分子。
FOXP3+调节性T细胞(FOXP3+Tregs)属于T淋巴细胞中表达CD4、CD25及转录因子FOXP3的一类T细胞亚型,其正常功能对于人体免疫稳态的动态调节必不可少。调节性T细胞的发育及功能失调,与多种重大免疫相关性疾病,包括自身免疫性疾病、炎症反应、急性及慢性传染性疾病、肿瘤免疫耐受、移植排斥以及过敏性疾病的生理病变进程密切相关(Cell,2008,133(5):775-87,Cell,2010,140(6):845-58)。FOXP3+Tregs主要可分为两类:自然性FOXP3+Treg(natural Treg,nTre g)和诱导性FOXP3+Treg(induced Treg,iTreg)。nTreg免疫调节功能的发挥与Foxp3分子的持续表达密切相关。这些胸腺产生的nTreg细胞释放到外周后能够保持Foxp3分子的稳定表达,在特异性抗原的刺激下,此群细胞被激活,从而发挥免疫抑制作用。iTreg稳定发挥免疫抑制作用也需要维持Foxp3分子的稳定表达。Treg细胞抑制免疫反应的调节作用的机制包括分泌细胞因子(如IL-10,TGF-β,IL-35等)和细胞接触抑制。
多发性硬化(Multiple Sclerosis,MS)是一种以血脑屏障遭破坏,伴有炎症、髓鞘损害为特征的中枢神经系统慢性自身免疫性疾病。好发于青壮年,发病年龄多在20~40岁,女性多见,具有高致残率、高复发性的特点,部分患者病情呈进行性加重,甚至死亡,对社会和家庭造成严重的影响。数据显示,在西方一些国家,该病患病率高达十万分之一百到三百;而在我国,据不完全统计,该病患病率也已达约十万分之五,并呈逐年上升趋势。MS的病理学改变由于自身反应性效应CD4+T细胞透过血-脑屏障,在中枢神经系统中浸润,诱发组织损伤。自身反应性效应T细胞(Th1和Th17)既存在于MS患者血液中,也存在于健康人群的血液中。调节T细胞(Regulatory T cell,Treg)在控制自身抗原反应性T细胞以及介导外周耐受过程中起着非常关键的作用。Treg与MS的免疫病理学改变相关,成为治疗MS潜在的靶标。
实验性自身免疫性脑脊髓炎(experimental autoimmune encephalomyelitis,EAE)是发生在动物中枢神经系统内,由CD4+T淋巴细胞所介导的自身免疫性疾病,是目前被公认为人类多发性硬化症(MS)的理想动物模型,EAE与MS在临床、生化、免疫及病理等方面具有相同的特征,在研究MS的发病机制、治疗和预防复发中具有重要意义。
类风湿性关节炎(Rheumatoid Arthritis,RA)是一种慢性反复发作的系统性的自身免疫性疾病。该病在世界范围内普遍存在,其病理机制目前还不清楚,许多研究已经表明淋巴细胞、中性粒细胞、巨噬细胞、滑膜细胞等多种炎症细胞介导的异常细胞免疫、体液免疫,导致关节局部和全身的免疫功能紊乱,在RA的病理中起着重要作用。为了进一步探讨RA的病因、病理、免疫学、临床等方面的机制,以便寻找更有效的治疗RA的方案,国内外学者进行了大量的动物实验,并建立了一些比较成熟的整体动物病理模型,目前应用较广泛的且较成熟的整体动物实验模型主要有II型胶原诱导的关节炎(Type II collagen induced arthritis,ClA)模型。这些动物模型在临床表现、病理学、免疫学改变和病理机制等方面与人RA有许多相似特征,目前国际上广泛用于RA发病机制的研究以及创新药物的研发。
发明内容
本发明的目的在于提供一种人重组PDCD5蛋白在促进CD4+CD25+Foxp3+调节性T细胞分化,免疫抑制中的应用。
上述所说的人重组PDCD5蛋白具有增强CD4+CD25+Foxp3+调节性T细胞抑制效应的作用,可在制备增强CD4+CD25+Foxp3+调节性T细胞抑制效应的药物中应用。
上述所说的人重组PDCD5蛋白具有促进抑制性细胞因子IL-10和TGF-β产生的作用,可在制备促进抑制性细胞因子IL-10和TGF-β产生的的药物中应用。
上述所说的人重组PDCD5蛋白具有抑制炎症性Th17细胞分化的作用,可在制备抑制炎症性Th17细胞分化的药物中应用。
上述所说的人重组PDCD5蛋白具有抑制炎症性细胞因子IL-17、IFN-γ和TMF-α产生的作用,可在制备抑制炎症性细胞因子IL-17、IFN-γ和TMF-α产生的药物中应用。
上述所说的人重组PDCD5蛋白具有预防和治疗多发性硬化症和/或其他脱髓鞘疾病的药物中的应用。
上述所说的人重组PDCD5蛋白具有预防和治疗类风湿关节炎的药物中的应用。
上述所说的人重组PDCD5蛋白在制备预防和治疗自身免疫病的药物中的应用。
人重组PDCD5蛋白可用于治疗Foxp3+调节性T细胞失调介导的自身免疫疾病EAE,人重组PDCD5蛋白在预防和治疗上都是有效的。因此人重组PDCD5蛋白可用于治疗的Foxp3+调节性T细胞介导的自身免疫病的实例包括多发性硬化症和/或其他脱髓鞘疾病、迟发型超敏反应、类风湿关节炎、系统性红斑狼疮、胰岛素依赖性的糖尿病、自身免疫性心肌炎、桥本氏病、Grave’s病、重症肌无力等。
发明人经过研究表明,髓鞘少突胶质细胞糖蛋白(MOG35-55)成功诱导了小鼠EAE模型,腹腔注射人重组蛋白PDCD5能够延缓EAE模型小鼠的发病,减轻病情;组织病理学分析发现,人重组蛋白PDCD5处理能够减少炎性细胞在中枢神经系统的浸润,减少脊髓的脱髓鞘病变;进一步研究显示人重组蛋白PDCD5在小鼠体内能够上调抑制性细胞因子IL-10和TGF-β的产生,增加CD4+CD25+Foxp3+调节性T细胞的数量,减少Th17的数量,降低炎症细胞因子IL-17、IFN-γ和TNF-α的产生。体外实验的结果证明,人重组蛋白PDCD5处理的小鼠淋巴细胞和脾细胞对自身抗原MOG35-55的增殖能力显著低于对照小鼠;人重组蛋白PDCD5体外处理naive小鼠的淋巴结细胞,能够促进CD4+CD25+Foxp3+调节性T细胞的分化。研究还发现,在II型胶原诱导的关节炎(CIA)大鼠模型中,腹腔注射人重组蛋白PDCD5能够减轻CIA模型大鼠的病情;进一步研究显示人重组蛋白PDCD5在大鼠体内能够增加CD4+CD25+Foxp3+调节性T细胞的数量,抑制炎症细胞因子IL-17A和TNF-α的产生。体外实验的结果证明,人重组蛋白PDCD5处理的大鼠淋巴细胞和脾细胞对II型胶原的增殖能力显著低于对照小鼠。
附图说明
以下,结合附图来详细说明本发明的实施方案,其中:
图1显示人重组蛋白PDCD5和阴性对照PBS处理的EAE小鼠临床评分。
图2显示人重组蛋白PDCD5和阴性对照PBS处理的EAE小鼠的发病率。
图3显示人重组蛋白PDCD5和阴性对照PBS处理的EAE小鼠脊髓的H&E染色。
图4显示人重组蛋白PDCD5和阴性对照PBS处理的EAE小鼠脊髓的luxol fast blue染色。
图5显示ELISA方法检测人重组蛋白PDCD5和阴性对照PBS处理的EAE小鼠血清的细胞因子水平。
图6显示流式细胞术分析人重组蛋白PDCD5和阴性对照PBS处理的EAE小鼠淋巴结和脾细胞中CD4+CD25+Foxp3+细胞的数目。
图7显示流式细胞术分析人重组蛋白PDCD5和阴性对照PBS处理的EAE小鼠淋巴结细胞中CD4+IL-17A+细胞的数目。
图8显示[3H]掺入法检测人重组蛋白PDCD5和阴性对照PBS处理的EAE小鼠脾细胞和淋巴结细胞对MOG35-55的反应性。
图9显示ELISA方法检测人重组蛋白PDCD5和阴性对照PBS处理的EAE小鼠淋巴结细胞与MOG35-55反应的培养上清中细胞因子的水平。
图10显示ELISA方法检测人重组蛋白PDCD5和阴性对照PBS处理的EAE小鼠脾细胞与MOG35-55反应的培养上清中细胞因子的水平。
图11显示流式细胞术分析人重组蛋白PDCD5对小鼠淋巴结细胞中CD4+CD25+Foxp3+细胞的诱导分化作用。
图12显示人重组蛋白PDCD5、卵白蛋白(OVA)处理的CIA大鼠以及生理盐水对照大鼠的发病情况。A:人重组蛋白PDCD5组、OVA对照组和生理盐水组大鼠的足跖肿胀程度;B:人重组蛋白PDCD5组、OVA对照组和生理盐水组大鼠的临床评分;C:人重组蛋白PDCD5组、OVA对照组和生理盐水组大鼠的足部图片。
图13显示[3H]掺入法检测人重组蛋白PDCD5和OVA处理的CIA大鼠脾细胞和淋巴结细胞对胶原的反应性。
图14显示ELISA方法检测人重组蛋白PDCD5、OVA处理的CIA大鼠以及生理盐水对照大鼠的炎性细胞因子的水平。A:人重组蛋白PDCD5组、OVA对照组和生理盐水组大鼠血清和关节液中TNF-α的水平;B:人重组蛋白PDCD5组、OVA对照组和生理盐水组大鼠血清和关节液中IL-17A的水平。
图15显示流式细胞术分析人重组蛋白PDCD5和OVA处理的CIA大鼠大鼠的淋巴结、外周血以及脾细胞中CD4+CD25+Foxp3+细胞的数目。
具体实施方式
在本发明中所使用的术语,除非有另外说明,一般具有本领域普通技术人员通常理解的含义。
下面结合具体的制备实施例和应用实施例,并参照数据进一步详细地描述本发明。这些实施例只是为了举例说明本发明,而非以任何方式限制本发明的范围。
实施例1、人重组蛋白PDCD5(rhPDCD5)作为蛋白重组药物,可延缓EAE 模型小鼠的发病,减轻病情,减少发病率
方法:EAE模型的建立与临床评分
6-8周的雌性C57BL/6小鼠,饲养于北京大学医学部实验动物部,SPF级饲养,所用垫木、饮水、饲料及其与动物接触的物品均经高压灭菌处理。所有的动物实验操作和流程都符合北京大学实验动物管理制度。实验时,每只小鼠给予用完全弗氏佐剂乳化的MOG35-55抗原200μl(1.5mg/ml)背部皮下三点免疫,同时尾静脉注射200μl(1μg/ml)百日咳毒素(PT),第2天,再次尾静脉注射200μl PT。同时将小鼠随机分成2组,每组8-10只小鼠。
rhPDCD5处理组:第0、2、4、6、8、10天腹腔注射200μg的rhPDCD5;
阴性对照PBS组:第0、2、4、6、8、10天腹腔注射200μL的PBS。
第6天开始观察EAE临床体征的严重性,给出临床评分,观察发病率。
临床评分标准:0分:无症状;1分:尾部无力;2分:前肢或后肢中度瘫痪和运动失调;4分:前肢或后肢严重瘫痪或运动失调,人为翻转不能恢复;5分:濒死状态或者死亡。
结果如图1所示,阴性对照PBS组小鼠在第9天开始发病,症状呈进行性加重;而在rhPDCD5处理组,小鼠在第12天发病,发病时间明显延迟,症状减轻;同时如图2所示,rhPDCD5处理小鼠的发病率明显低于PBS阴性对照组,因此,给小鼠施用rhPDCD5能够延缓小鼠诱发的EAE。
实施例2、rhPDCD5作为蛋白重组药物,能够减少炎症细胞在中枢神经系 统的浸润,减少脊髓白质脱髓鞘病变
方法:
1:EAE模型的建立与临床评分同见实施例1。
2:组织化学染色
实验小鼠麻醉后打开胸腔,PBS心脏灌注,用4%多聚甲醛灌注内固定,再取出脊髓,放入装有4%多聚甲醛的玻璃瓶中固定,再将标本做脱水、透明、浸蜡、包埋、切片、展片、捞片、烘片。然后进行H&E染色和勒克索尔固蓝(Luxol Fast Blue)染色,封片进行观察。
H&E染色结果如图3所示,rhPDCD5处理的小鼠脊髓白质区炎性细胞浸润要比阴性对照PBS组轻;说明施用rhPDCD5减少炎症细胞在EAE小鼠中枢神经系统的浸润。
Luxol Fast Blue染色如图4所示,在rhPDCD5处理组脊髓的白质区致密,脱髓鞘现象很轻,而在PBS阴性对照组脊髓的白质区脱髓鞘现象明显。说明施用rhPDCD5减少EAE小鼠的脊髓脱髓鞘反应。
实施例3、rhPDCD5作为蛋白重组药物,能够减少EAE小鼠Th17细胞的 数目,减少血清中炎症细胞的水平;同时促进调节性T细胞 (CD4 + CD25 + FoxP3)的分化,增加抑制性细胞因子的水平
方法:
1:EAE模型的建立与临床评分同实施例1。
2:ELISA方法检测血清中的细胞因子:rhPDCD5和PBS处理的EAE小鼠,行麻醉处死,收集血清,按照Biolegend公司的说明书操作。
3:流式细胞术分析T细胞亚群:rhPDCD5和PBS处理的EAE小鼠,行麻醉处死,分别摘取体内淋巴结和脾脏,制成细胞悬液,加入合适浓度抗鼠CD16/32抗体,封闭免疫球蛋白Fc受体,4℃10min。1200rpm,离心洗一遍。细胞重悬100μl PBS,分别加入合适浓度的抗CD4和抗CD25表面荧光抗体,4℃,避光孵育20min。PBS洗两遍,加1ml Fix/Perm buffer重悬细胞,混匀,避光20min,离心,弃上清。用1ml perm buffer洗一遍。重悬1ml perm buffer,避光15min。离心,加100μl perm buffer,加入合适浓度抗IL-17A抗体或抗FOXP3抗体,避光30min。PBS洗两遍。重悬于400μlPBS中,流式细胞计进行分析。
ELISA分析的结果如图5所示,rhPDCD5处理的EAE小鼠血清中炎性细胞因子如IL-17A和IFN-γ含量明显低于PBS阴性处理组;同时,rhPDCD5处理的EAE小鼠血清中抑制性细胞因子如IL-10和TGF-β含量明显高于PBS阴性处理组。说明施用rhPDCD5减少EAE小鼠炎症细胞因子水平。
流式细胞计的分析结果如图6所示,rhPDCD5处理的EAE小鼠淋巴结中CD4+CD25+Poxp3+的细胞为26.9%,PBS阴性处理组则为7.4%,在小鼠脾细胞中,rhPDCD5处理组CD4+CD25+Poxp3+的细胞为14.9%,PBS阴性处理组则为9.1%。因此,rhPDCD5处理小鼠外周免疫器官CD4+CD25+Poxp3+细胞数目显著高于PBS阴性处理组;说明施用rhPDCD5能够增加外周免疫器官CD4+CD25+Foxp3+细胞的数目。另外如图7所示,rhPDCD5处理的EAE小鼠淋巴结中CD4+IL-17A+的细胞为8.5%,PBS阴性处理组则为14.62%,rhPDCD5处理小鼠Th17细胞数目显著低于PBS阴性处理组。说明施用rhPDCD5能够减少外周免疫器官CD4+IL-17A+细胞的数目。
实施例4、rhPDCD5作为蛋白重组药物,能够抑制MOG 35-55 特异性脾细胞 和淋巴细胞增殖
方法:
1:EAE模型的建立与临床评分同实施例1。
2:[3H-TdR]掺入法检测细胞的增殖
RhPDCD5和PBS处理的EAE小鼠,行麻醉处死,分别摘取体内淋巴结和脾脏,制成细胞悬液。将小鼠脾细胞或者淋巴结细胞重悬于10%FBS-RPMI 1640中,加200μl细胞悬液于96孔板中(每孔4×105的细胞),每个标本三个复孔,细胞培养液中加入20μg/ml的MOG35-55。在含有5%CO2的37℃培养箱中培养40小时,在培养时间到达40小时每孔加入1μCi 3H-甲基胸腺嘧啶([3H]-TdR)。培养时间到达48h时,将细胞摄取的同位素转移到玻璃纤维素膜。膜烘干后加入闪烁液,计数仪上读取cpm值,检测3H的掺入量。
结果如图8所示,rhPDCD5处理的EAE小鼠淋巴结细胞对MOG35-55的反应性明显低于PBS阴性处理组,显示[3H]-TdR掺入量的明显降低,两者有显著性差异;同时,rhPDCD5处理的EAE小鼠脾细胞对MOG35-55的反应性明显低于PBS阴性处理组,两者有显著性差异。说明施用rhPDCD5能够抑制MOG35-55特异的淋巴细胞增殖反应。
实施例5、rhPDCD5作为蛋白重组药物,能够促进MOG 35-55 特异性脾细胞 和淋巴结细胞产生抑制性细胞因子,抑制MOG 35-55 特异性脾细胞和淋巴结 细胞产生炎症性细胞因子
方法
1:EAE模型的建立与临床评分同实施例1。
2:ELISA方法检测细胞培养上清中的细胞因子:RhPDCD5和PBS处理的EAE小鼠,行麻醉处死,分别摘取体内淋巴结和脾脏,制成细胞悬液。将小鼠脾细胞或淋巴结细胞重悬于10%FBS-RPMI 1640中,加200μl细胞悬液于96孔板中(每孔4×105的细胞),每个标本三个复孔,细胞培养液中加入20μg/ml的MOG35-55。在含有5%CO2的37℃培养箱中培养48小时,收集细胞上清,Flow Cytomix(按照e Bioscience公司的说明书操作)方法或ELISA(按照Biolegend公司的说明书操作)方法检测培养上清中的细胞因子。
结果如图9所示,MOG35-55与淋巴结细胞一起培养的上清中,与PBS处理组相比较,RhPDCD5处理组的细胞因子如IL-2、IL-17A以及IFN-γ的水平明显下调,甚至检测不到,而抑制性细胞因子IL-10明显上调。说明施用rhPDCD5能够抑制MOG35-55特异的淋巴结细胞分泌炎症因子。在MOG35-55与脾细胞一起培养的上清中,与PBS处理组相比较,RhPDCD5处理组的细胞因子如TNF-α、IL-17A以及IFN-γ的水平明显下调(图10),说明施用rhPDCD5能够抑制MOG35-55特异的脾细胞分泌炎症因子。
实施例6、rhPDCD5作为蛋白重组药物,能够促进小鼠CD4 + CD25 + Foxp3 + 细胞的分化
方法:
1:细胞培养:用160μl的抗-CD3抗体(10μg/ml)包被48孔板,4℃过夜,用PBS洗两遍;麻醉处死的6-8周雌性C57BL/6小鼠,摘取体内淋巴结,制成细胞悬液(含10%FBS-RPMI 1640),加500μl培养液于预先包被抗-CD3抗体的48孔板,每孔为1×106的细胞,同时加入抗CD28抗体(5μg/ml)、TGF-β(5ng/ml)、IL-2(2ng/ml)以及加入不同浓度的rhPDCD5蛋白,在含有5%CO2的37℃培养箱中培养72小时,收集细胞。
2:流式细胞分析:收集不同处理的培养细胞,加入合适浓度的抗鼠CD16/32抗体,封闭免疫球蛋白Fc受体,4℃10min。1200rpm,离心洗一遍。细胞重悬100μl PBS,分别加入合适浓度的抗CD4和抗CD25表面荧光抗体,4℃,避光孵育20min。PBS洗两遍,加1ml Fix/Perm buffer重悬细胞,混匀,避光20min,弃上清。用1ml perm buffer洗一遍。重悬1ml permbuffer,避光15min,弃上清。加入合适浓度抗FOXP3抗体,避光30min。PBS洗两遍。重悬于400μl PBS中,流式细胞计进行分析。
结果如图11所示,rhPDCD5后以浓度依赖的方式增加CD4+CD25+Foxp3+细胞数目。说明施用rhPDCD5能够体外增加
Figure BDA0000077194340000091
淋巴结细胞分化为CD4+CD25+Foxp3+细胞的数目。
实施例7、rhPDCD5作为蛋白重组药物,可延缓CIA模型大鼠的发病,减轻 病情。
方法:CIA大鼠模型的建立与临床评分
6-8周的雌性SD大鼠,饲养于北京大学医学部实验动物部,SPF级饲养,所用垫木、饮水、饲料及其与动物接触的物品均经高压灭菌处理。所有的动物实验操作和流程都符合北京大学实验动物管理制度。实验时,将胶原醋酸溶液与不完全佐剂4℃过夜充分溶解后1∶1均质混合,于大鼠尾根部皮下注射0.2ml/只,7天后避开上次注射部位强化免疫一次。同时将大鼠随机分成3组,每组8只大鼠。
CIA大鼠rhPDCD5处理组:从模型制备当天起,腹腔注射rhPDCD5(14mg/kg),隔日一次,第30天结束。
CIA大鼠OVA无关蛋白对照组:从模型制备当天起,腹腔注射卵白蛋白(OVA)(14mg/kg),隔日一次,第30天结束。
阴性对照生理盐水组:从模型制备当天起,腹腔注射生理盐水,隔日一次,第30天结束。
足跖肿胀度测量:采用容积法测定大鼠膝关节容积。测量前于每只大鼠膝关节上0.5cm作一标记线,每次测定以标记线为标准,每只大鼠每次测量3次取其平均值为当前容积。在造模前1天测定双侧后足爪容积,以后每周对大鼠双侧足爪容积进行测量,记录容积值。肿胀程度用当前容积减去造模前容积的差值表示。
临床评分:按照关节炎指数评分办法进行评估病变程度多发性关节炎评分如下:0分,无肿胀;1分,1个趾关节受累;2分,多趾关节受累;3分,踝关节以下受累;4分:全爪受累。造模1天后,隔日评分。
结果如图12A所示,阴性对照生理盐水组大鼠不出现足跖肿胀,OVA无关蛋白对照组大鼠的足跖肿胀明显,而在rhPDCD5处理组,大鼠的足跖肿胀度明显减轻,在第三和第四周,比较OVA无关蛋白对照组和rhPDCD5处理组大鼠的足跖肿胀度,两者有明显的差异,*P<0.05。同时如图12B所示,与OVA无关蛋白对照组相比,rhPDCD5处理组大鼠的临床症状明显减轻,有统计学意义。*P<0.05,**P<0.01。图12C是分别代表生理盐水组、OVA无关蛋白对照组和rhPDCD5处理组大鼠的足部照片。
实施例8、rhPDCD5作为蛋白重组药物,能够抑制胶原(collagen)特异性 脾细胞和淋巴细胞增殖
方法:
1:CIA大鼠模型的建立与临床评分同实施例7。
2:[3H-TdR]掺入法检测细胞的增殖同实施例4。
结果如图13所示,在体外的培养体系中,rhPDCD5处理的CIA大鼠淋巴结细胞对胶原的反应性明显低于OVA处理组,显示[3H]-TdR掺入量的明显降低,两者有显著性差异,*P<0.05;同时,rhPDCD5处理的CIA大鼠脾细胞对胶原的反应性明显低于OVA处理组。说明施用rhPDCD5能够抑制胶原特异的淋巴细胞增殖反应。
实施例9、rhPDCD5作为蛋白重组药物,能够减少血清和关节滑液中 炎症细胞的水平;同时增加调节性T细胞(CD4 + CD25 + FoxP3 + )的数量
方法:
1:CIA大鼠模型的建立与临床评分同实施例7。
2:ELISA方法检测血清和关节液中的细胞因子:rhPDCD5和OVA处理的CIA大鼠,以及生理盐水(空白)对照组大鼠,行麻醉处死,收集血清和关节液,按照Biolegend公司的说明书操作。
3:流式细胞术分析T细胞亚群:rhPDCD5和OVA处理的CIA大鼠,行麻醉处死,分别摘取体内淋巴结和脾脏,制成细胞悬液,同时制备外周血淋巴细胞,加入合适浓度抗鼠CD16/32抗体,封闭免疫球蛋白Fc受体,4℃10min。1200rpm,离心洗一遍。细胞重悬100μl PBS,分别加入合适浓度的抗CD4和抗CD25表面荧光抗体,4℃,避光孵育20min。PBS洗两遍,加1ml Fix/Perm buffer重悬细胞,混匀,避光20min,离心,弃上清。用1ml perm buffer洗一遍。重悬1ml perm buffer,避光15min。离心,加100μlperm buffer,加入合适浓度抗FOXP3抗体,避光30min。PBS洗两遍。重悬于400μl PBS中,流式细胞计进行分析。
ELISA分析的结果如图14A所示,rhPDCD5处理的CIA大鼠血清以及关节滑液中TNF-α含量明显低于OVA处理组,**P<0.01,***P<0.001;同时如图14B所示,rhPDCD5处理的CIA大鼠血清以及关节滑液中IL-17A含量明显低于OVA处理组,*P<0.05,**P<0.01。说明施用rhPDCD5减少CIA大鼠炎症细胞因子水平。
流式细胞计的分析结果如图15所示,rhPDCD5处理的CIA大鼠淋巴结、外周血以及脾脏中CD4+CD25+Poxp3+的细胞均高于OVA处理组,说明施用rhPDCD5能够增加外周免疫器官以及外周血中CD4+CD25+Foxp3+细胞的数目。

Claims (8)

1.人重组PDCD5蛋白在制备增强CD4+CD25+Foxp3+调节T细胞免疫抑制效应的药物中的应用。
2.人重组PDCD5蛋白在制备促进抑制性细胞因子IL-10和TGF-β产生的药物中的应用。
3.人重组PDCD5蛋白在制备抑制炎症性Th17细胞分化的药物中的应用。
4.人重组PDCD5蛋白在制备抑制炎症性细胞因子IL-17、IFN-γ和TNF-α产生的药物中的作用。
5.人重组PDCD5蛋白在制备预防和治疗多发性硬化症和/或其他脱髓鞘疾病的药物中的应用。
6.人重组PDCD5蛋白在制备预防和治疗类风湿关节炎的药物中的应用。
7.人重组蛋白PDCD5在制备预防和治疗自身免疫病的药物中的应用。
8.根据权利要求7所述的应用,其特征在于:所述自身免疫病为迟发型超敏反应、类风湿关节炎、系统性红斑狼疮、胰岛素依赖性的糖尿病、自身免疫性心肌炎、桥本氏病、Grave’s病或重症肌无力。
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