CN101724609B - 一种提高发酵法生产pva降解酶产量的方法 - Google Patents
一种提高发酵法生产pva降解酶产量的方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN101724609B CN101724609B CN2009102609920A CN200910260992A CN101724609B CN 101724609 B CN101724609 B CN 101724609B CN 2009102609920 A CN2009102609920 A CN 2009102609920A CN 200910260992 A CN200910260992 A CN 200910260992A CN 101724609 B CN101724609 B CN 101724609B
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- pva
- fermentation
- degrading enzyme
- butyleneglycol
- adds
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明公开了一种提高发酵法生产PVA降解酶产量的方法。通过在发酵过程中添加1,4-丁二醇,提高了PVA降解酶的产量。通过两步发酵法、三步发酵法,发酵结束后,PVA降解酶产量分别达到2.92U/mL和3.43U/mL,与不添加1,4-丁二醇相比,产量分别提高了2.6倍和3倍。本发明还具有操作简单、原料价格便宜等优点。
Description
技术领域
本发明涉及一种提高发酵法生产PVA降解酶产量的方法,属于发酵工程领域,具体来说是一种通过添加1,4-丁二醇提高发酵法生产PVA降解酶产量的方法。
背景技术
PVA降解酶是一个酶系,它们作用的共同效果是能降解PVA。目前已正式报道的PVA降解酶主要包含三个种类:PVA氧化酶(仲醇氧化酶)(EC1.1.3.30)、PVA脱氢酶(EC1.1.99.23)和氧化型PVA水解酶(β-双酮水解酶)(EC3.7.1.7)。近年还发现了专一性比较高的降解低醇解度PVA长链上残存乙酸酯键的PVA酯酶。目前对于PVA降解的研究主要集中在三个方面:1.筛选能够降解PVA的微生物;2.纯化PVA降解酶;3.克隆与PVA降解相关的基因。目前研究中的一个难点是PVA降解酶的酶活较低。现在主要有两种提高PVA降解酶产量的方法:1.筛选高产PVA降解酶的微生物;2.优化发酵条件。在PVA降解酶高产微生物的基础上,本技术通过一种特殊碳源(1,4-丁二醇)显著提高了PVA降解酶的产量,使其酶活水平达到了国内先进。
发明内容
本发明所解决的技术问题是提供一种提高发酵法生产PVA降解酶产量的方法。
为解决上述技术问题,本发明的技术方案如下:在微生物发酵生产PVA降解酶过程中,添加1,4-丁二醇。
所述1,4-丁二醇的添加方式为:以5.0g/L PVA和5.1g/L 1,4-丁二醇作为初始复合碳源。
所述1,4-丁二醇的添加方式为:以5.0g/L PVA作为唯一初始碳源,在发酵36h添加5.1g/L1,4-丁二醇;
所述1,4-丁二醇的添加方式为:以5.0g/L PVA作为唯一初始碳源,在发酵36h添加5.1g/L1,4-丁二醇,在发酵48h,添加5.0g/L PVA。
所述微生物为从无锡太平洋纺织厂PVA退浆车间下水道口筛选出一个可以彻底降解培养基中1g/L PVA的混合微生物体系(Chen J,Zhang Y,Du G-C,Hua Z-Z,Zhu Y,Biodegradation of polyvinyl alcohol by a mixed microbial culture,Enzyme Microb.Technol.,2007,40(7),1686-1691)。
微生物发酵产PVA降解酶的培养基组成为:
基础培养基(g/L):PVA 1799(平均分子量:113kDa,醇解度:99.0%)5.0,酵母粉2.0,K2HPO4 1.0,KH2PO4 0.125,MgSO4·7H2O 0.1,FeSO4·7H2O 0.05,CaCl2 0.025,NaCl 0.01,pH 7.5,121℃灭菌15min;
微生物发酵产酶的过程为:
液体种子培养方法:500mL三角瓶装50mL基础培养基,接种后在旋转式摇床上200r/min,30℃振荡培养36h;
两步发酵法:第一步,500mL三角瓶装50mL基础培养基,接种后在旋转式摇床上200r/min,30℃振荡培养;第二步,发酵36h添加5.1g/L 1,4-丁二醇;
三步发酵法:第一步,500mL三角瓶装50mL基础培养基,接种后在旋转式摇床上200r/min,30℃振荡培养;第二步,发酵36h添加5.1g/L 1,4-丁二醇;第三步,发酵48h添加5.0g/L PVA。
PVA含量测定采用Finley法,其具体方法为:
将发酵液离心(10000r/min,10min),弃去沉淀,收集上清液。将上清液经微孔滤膜(孔径0.45μm,直径50mm)过滤,然后用0.1mol/L磷酸钾缓冲液(pH 8.0)透析24h,即为粗酶液。在5×15试管中加入0.5mL粗酶液和0.5mL底物(1g/L PVA1799溶于pH 8.0的磷酸钾缓冲液中),将此混合体系于35℃反应6h,分别测定反应前后反应混合液所对应PVA含量的吸光度。每分钟吸光度下降0.001定义为一个酶活单位。
细胞干重测定方法为:
将每个三角瓶中的发酵液过滤,收集菌体于滤纸上,去离子水洗两次,在105℃烘箱中烘至恒重,称量所得数值减去预先称量好的滤纸的重量即为细胞干重。
发明的技术原理:
本发明采用的原料1,4-丁二醇是PVA的结构类似物,它在细胞内的代谢途径和PVA类似,因此它不会抑制PVA降解酶的产生;同时它作为一种小分子碳源容易被微生物吸收利用,能提高微生物的生物量。所以1,4-丁二醇通过提高微生物的生物量,从而显著提高PVA降解酶的产量。
本发明的有益效果:
本发明提高发酵法生产PVA降解酶的产量,PVA降解酶产量从1.11U/mL高到3.43U/mL,为PVA降解酶的工业化生产提供了一种方法。本发明还具有操作简单、原料价格便宜、效果明显等优点。
具体实施方式
对比例1
培养基组成:
基础培养基(g/L):PVA 1799(平均分子量:113kDa,醇解度:99.0%)5.0,酵母粉2.0,K2HPO4 1.0,KH2PO4 0.125,MgSO4·7H2O 0.1,FeSO4·7H2O 0.05,CaCl2 0.025,NaCl 0.01,pH 7.5,121℃灭菌15min。
微生物培养方法:
500mL三角瓶装50mL基础培养基,接种后在旋转式摇床上200r/min,30℃振荡培养36h。
结果见表1,在不添加1,4-丁二醇的情况下,混合体系发酵结束后,菌体干重达到1.17g/L,PVA降解酶活力为1.11U/mL。
表1混合碳源对混合微生物产PVA降解酶的影响
DCW:细胞干重,PVADE:PVA降解酶。
对比例2:
培养基组成:
PVA和葡萄糖培养基(g/L):PVA 1799(平均分子量:113kDa,醇解度:99.0%)5.0,葡萄糖6.8,酵母粉2.0,K2HPO4 1.0,KH2PO4 0.125,MgSO4·7H2O 0.1,FeSO4·7H2O 0.05,CaCl2 0.025,NaCl 0.01,pH 7.5,121℃灭菌15min。
微生物培养方法:
500mL三角瓶装50mL PVA和葡萄糖培养基,接种后在旋转式摇床上200r/min,30℃振荡培养36h。
结果见表1,在以PVA和葡萄糖作为复合碳源的情况下,混合体系发酵结束后,菌体干重达到0.98g/L,PVA降解酶活力为1.16U/mL。
对比例3:
培养基组成:
PVA和淀粉(g/L):PVA 1799(平均分子量:113kDa,醇解度:99.0%)5.0,可溶性淀粉6.2,酵母粉2.0,K2HPO4 1.0,KH2PO4 0.125,MgSO4·7H2O 0.1,FeSO4·7H2O 0.05,CaCl20.025,NaCl 0.01,pH 7.5,121℃灭菌15min。
微生物培养方法:
500mL三角瓶装50mL PVA和淀粉培养基,接种后在旋转式摇床上200r/min,30℃振荡培养36h。
结果见表1,在以PVA和可溶性淀粉作为复合碳源的情况下,混合体系发酵结束后,菌体干重达到0.99g/L,PVA降解酶活力为1.33U/mL。
实施例1:含有1,4-丁二醇的复合碳源培养基
培养基组成:
PVA和1,4-丁二醇培养基(g/L):PVA 1799(平均分子量:113kDa,醇解度:99.0%)5.0,1,4-丁二醇5.1,酵母粉2.0,K2HPO4 1.0,KH2PO4 0.125,MgSO4·7H2O 0.1,FeSO4·7H2O 0.05,CaCl2 0.025,NaCl 0.01,pH 7.5,121℃灭菌15min。
微生物培养方法:
培养方法:500mL三角瓶装50mL PVA和1,4-丁二醇培养基,接种后在旋转式摇床上200r/min,30℃振荡培养36h。
结果见表1,在以PVA和葡萄糖作为复合碳源的情况下,混合体系发酵结束后,菌体干重达到1.40g/L,PVA降解酶活力为2.12U/mL,相对于对比例,菌体干重与PVA降解酶活力均有较大幅度提高。
实施例2:
培养基组成:
基础培养基(g/L):PVA 1799(平均分子量:113kDa,醇解度:99.0%)5.0,酵母粉2.0,K2HPO4 1.0,KH2PO4 0.125,MgSO4·7H2O 0.1,FeSO4·7H2O 0.05,CaCl2 0.025,NaCl 0.01,pH 7.5,121℃灭菌15min。
微生物培养方法:
两步发酵法:第一步,500mL三角瓶装50mL基础培养基,接种后在旋转式摇床上200r/min,30℃振荡培养;第二步,发酵36h添加5.1g/L1,4-丁二醇。
结果见表1,发酵结束后,细胞干重和PVA降解酶的产量都得到了提高,菌体干重达到1.66g/L,PVA降解酶的活力达到2.92U/mL。
实施例3:
培养基组成:
基础培养基(g/L):PVA 1799(平均分子量:113kDa,醇解度:99.0%)5.0,酵母粉2.0,K2HPO4 1.0,KH2PO4 0.125,MgSO4·7H2O 0.1,FeSO4·7H2O 0.05,CaCl2 0.025,NaCl 0.01,pH 7.5,121℃灭菌15min。
微生物培养方法:
三步发酵法:第一步,500mL三角瓶装50mL基础培养基,接种后在旋转式摇床上200r/min,30℃振荡培养;第二步,发酵36h添加5.1g/L 1,4-丁二醇;第三步,发酵48h添加5.0g/L PVA。
结果见表1,发酵结束后,菌体干重达到1.88g/L,PVA降解酶酶活达到了3.43U/mL,与起始的1.11U/mL相比提高了3倍。
Claims (4)
1.一种提高发酵法生产PVA降解酶产量的方法,采用可以彻底降解培养基中1g/L PVA的混合微生物体系,其特征在于,以PVA为初始碳源在微生物发酵生产PVA降解酶过程中添加1,4-丁二醇。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述添加1,4-丁二醇的方法为:以5.0g/L PVA和5.1g/L 1,4-丁二醇作为初始碳源。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述添加1,4-丁二醇的方法为:以5.0g/L PVA作为唯一初始碳源,在发酵36h向发酵液中添加5.1g/L 1,4-丁二醇。
4.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述添加1,4-丁二醇的方法为:以5.0g/L PVA作为唯一初始碳源,在发酵36h向发酵液中添加5.1g/L 1,4-丁二醇,在发酵48h向发酵液中添加5.0g/L PVA。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2009102609920A CN101724609B (zh) | 2009-12-18 | 2009-12-18 | 一种提高发酵法生产pva降解酶产量的方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2009102609920A CN101724609B (zh) | 2009-12-18 | 2009-12-18 | 一种提高发酵法生产pva降解酶产量的方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN101724609A CN101724609A (zh) | 2010-06-09 |
CN101724609B true CN101724609B (zh) | 2012-05-30 |
Family
ID=42446161
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN2009102609920A Expired - Fee Related CN101724609B (zh) | 2009-12-18 | 2009-12-18 | 一种提高发酵法生产pva降解酶产量的方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN101724609B (zh) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105369583B (zh) * | 2015-12-18 | 2017-12-29 | 江南大学 | 一种基于混合菌群产粗酶液和淀粉酶复配的棉织物退浆方法 |
CN105462940B (zh) * | 2015-12-18 | 2019-01-04 | 江南大学 | 一种促进微生物产聚乙烯醇降解酶的方法 |
CN105369582B (zh) * | 2015-12-18 | 2017-09-26 | 江南大学 | 一种利用混合菌群产粗酶液降解聚乙烯醇浆料的方法 |
-
2009
- 2009-12-18 CN CN2009102609920A patent/CN101724609B/zh not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
CN101724609A (zh) | 2010-06-09 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Yahmed et al. | A biorefinery concept using the green macroalgae Chaetomorpha linum for the coproduction of bioethanol and biogas | |
Wu et al. | Sequential acid and enzymatic hydrolysis in situ and bioethanol production from Gracilaria biomass | |
Mu et al. | Simultaneous biohydrogen production from dark fermentation of duckweed and waste utilization for microalgal lipid production | |
Kolasa et al. | Co-cultivation of Trichoderma reesei RutC30 with three black Aspergillus strains facilitates efficient hydrolysis of pretreated wheat straw and shows promises for on-site enzyme production | |
Lee et al. | Bioethanol production from sweet potato by co-immobilization of saccharolytic molds and Saccharomyces cerevisiae | |
Kamat et al. | Coupled production of single cell oil as biodiesel feedstock, xylitol and xylanase from sugarcane bagasse in a biorefinery concept using fungi from the tropical mangrove wetlands | |
Alam et al. | Process optimization for the production of high-concentration ethanol with Scenedesmus raciborskii biomass | |
CN103740600B (zh) | 一种产纤维素酶的菌株 | |
CN102206689B (zh) | 一种在发酵过程中改性细菌纤维素的方法 | |
CN102660519B (zh) | 一种利用发酵废液制备生物酶的方法 | |
CN102864188A (zh) | 一种木质纤维素生产生物柴油的方法 | |
CN101724609B (zh) | 一种提高发酵法生产pva降解酶产量的方法 | |
CN110951819B (zh) | 一种提高hau-m1光合菌群利用玉米秸秆发酵产氢的方法 | |
CN103740680B (zh) | 里氏木霉发酵生产纤维素酶的方法及其菌株应用 | |
CN103060418A (zh) | 一种构建混合菌体系发酵稻草秸秆生产乙醇的方法 | |
CN114164124A (zh) | 一种青霉菌群复配协同降解纤维素复合酶制备方法 | |
CN105219665A (zh) | 一种低聚异麦芽糖的制造方法及其催化剂 | |
Sharma et al. | Utilization of agro-industrial residues for pectinase production by the novel strain Pseudozyma sp. SPJ under solid state cultivation | |
US9605247B2 (en) | Strain and a method to produce cellulase and its use | |
CN101173256A (zh) | 红薯生淀粉水解发酵的复合水解酶制备方法 | |
Jang et al. | Potential use of Gelidium amansii acid hydrolysate for lactic acid production by Lactobacillus rhamnosus | |
CN101492667B (zh) | 一种生产甘露聚糖酶的方法及其专用固定化生物膜 | |
CN103642890B (zh) | 载体发酵技术制备乙醇的方法 | |
CN113388525B (zh) | 红曲霉菌在处理超高浓度白酒废水中的应用 | |
CN109897869A (zh) | 一种高糖废水培养的以榕树叶为碳源载体的生物活性炭 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C14 | Grant of patent or utility model | ||
GR01 | Patent grant | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee | ||
CF01 | Termination of patent right due to non-payment of annual fee |
Granted publication date: 20120530 Termination date: 20171218 |