CA2542928A1 - Use of metallic cations to improve functional activity of antibodies - Google Patents
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Abstract
La présente invention concerne l'utilisation de cations métalliques, notamment du Zinc, pour cristalliser le fragment Fc d~un anticorps anti Rhésus D.
Mutagnèse dirigée des histidines situées aux residus 310 et 435. The present invention relates to the use of metal cations, in particular Zinc, to crystallize the Fc fragment of an anti Rhesus D.
Directed mutagenesis of histidines at residues 310 and 435.
Description
DEMANDES OU BREVETS VOLUMINEUX
LA PRÉSENTE PARTIE I)E CETTE DEMANDE OU CE BREVETS
COMPRI~:ND PLUS D'UN TOME.
CECI EST ~.E TOME 1 DE 2 NOTE: Pour les tomes additionels, veillez contacter le Bureau Canadien des Brevets.
JUMBO APPLICATIONS / PATENTS
THIS SECTION OF THE APPLICATION / PATENT CONTAINS MORE
THAN ONE VOLUME.
NOTE: For additional vohxmes please contact the Canadian Patent Oi~ice.
UTILISATION DE CATIONS MÉTALLIQUES POUR L'AMÉLIORATION
.
DE L'ACTIVITÉ FONCTIONNELLE DES ANTICORPS
La présente invention concerne l'utilisation de cations métalliques, notamment divalents ou trivalents, et plus particulièrement de Zinc, de Cuivre, de Cadmium ou de Fer, pour améliorer l'activité fonctionnelle d'anticorps. Plus particulièrement, l'invention a pour objet des compositions pharmaceutiques d'anticorps comprenant des cations métalliques divalents ou trivalents.
Introduction et art antérieur L'immunothérapie passive, très répandue, est fondée sur l'administration d'anticorps, par exemple des anticorps monoclonaux dirigés contre une cellule ou une substance donnée. L'immunothérapie passive au moyen d'anticorps monoclonaux a donné des résultats encoûrageants. Toutefois, si l'utilisation d'anticorps monoclonaux possède plusieurs avantages, comme par exemple une assurance de sécurité du produit quant à
l'absence de contamination infectieusë, il peut en revanche s'avérer difficile d'obtenir un anticorps monoclonal efficace.
En effet, le risque est de développer un anticorps monoclonal qui s'avère peu efficace et pour lequel on observe des effets secondaires incompatibles avec une utilisation en thérapie clinique. Ces deux aspects sont étroitement liés sachant que des anticorps peu actifs sont administrés à fortes doses pour compenser leur faible activité et obtenir une réponse thérapeutique. L'administration de fortes doses non seulement induit des effets secondaires mais est économiquement peu rentable.
Cés problèmes sont majeurs dans le développement industriel des anticorps monoclonaux, chimériques, humanisés ou humains. A titre d'exemple, la société VOLUMINOUS REQUESTS OR PATENTS
THIS PART I) THIS APPLICATION OR PATENTS
COMPRI ~: ND MORE THAN A TOME.
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JUMBO APPLICATIONS / PATENTS
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THAN ONE VOLUME.
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USE OF METALLIC CATIONS FOR IMPROVEMENT
.
FUNCTIONAL ACTIVITY OF ANTIBODIES
The present invention relates to the use of metal cations, in particular divalent or trivalent, and more particularly Zinc, Copper, Cadmium or Iron, to improve the functional activity of antibodies. More particularly, The subject of the invention is pharmaceutical compositions of antibodies including divalent or trivalent metal cations.
Introduction and prior art Passive immunotherapy, which is widely used, is based on administration antibodies, for example monoclonal antibodies directed against a cell or a substance given. Passive immunotherapy with monoclonal antibodies has resulted in inconclusive results. However, if the use of monoclonal antibodies possesses several benefits, such as product safety assurance as for the absence of infectious contamination, it can however be difficult get an effective monoclonal antibody.
Indeed, the risk is to develop a monoclonal antibody which proves to be effective and for which side effects are observed which are incompatible with a use in clinical therapy. These two aspects are closely linked, knowing that little antibody active ingredients are given in large doses to compensate for their low activity and get a therapeutic response. The administration of high doses not only induced effects but is economically unprofitable.
These problems are major in the industrial development of antibodies monoclonal, chimeric, humanized or human. For example, the company
2 Protein Design Labs a suspendu les essais cliniques en phase I/II du Remitogen0, qui est un anticorps anti-HLA-DR pouvant être utilisé pour traiter les cancers de cellules MHC dë classe II positives, notamment les leucémies des. lymphocytes B et T.
Ainsi, un des objets de l'invention est de fournir de nouveaux produits ou procédés permettant de pallier les inconvénients rencontrés lors du développement industriel d'anticorps, à savoir leur faible efficacité et leur coût élevé. ..
Aujourd'hui, la recherche est orientée sur la région Fc de l'immunoglobuline (Ig) afin d'améliorer les propriétés fonctionnelles des anticorps. A terme, cela devrait permettre l'obtention d'anticorps qui se lient et activent les récepteurs des cellules effectrices (monocytes /macrophages, lymphocytes B, cellules NK et dendritiques) de manière plus efficace. La région Fc des IgG est constituée de 2 domaines globulaires nommés CH2 et CH3. Les 2 chaînes lourdes interagissent étroitement au niveau des domaines CH3 tandis qu'au niveau des domaines CH2, la présence, sur chacune des 2 chaînes, d'un oligosaccharide lié à l'Asn 297 (numérotation de Kabat) contribue à
l'écartement des 2 domaines CH2. Par ailleurs, les domaines CH2 et CH3 d'une même chaîne sont séparés par une région flexible définissant une interface entre les 2 domaines.
L'interface entre les domaines CH2-CH3 a été décrite comme étant un site commun de fixation de nombreuses (glyco)protéines comme le FcRn, les facteurs rhumatoïdes (Corper et al., 1997) et certaines protéines bactériennes et virales, pare exemple la protéine A de Staplzylococcus aic~~eus (Deisenhofer, 1981), la protéine G de Stf~eptococcus de groupe G (Sauer-Eriksson et al., 1995), le complexe gE-gI du virus Herpes simplex 1 (Chapman et al., 1999) ) et la protéine « tore » du virus de l'hépatite C (Maillard et al., 2004).
Par ailleurs, il a été démontré qué certains résidus d'acides aminés, localisés au niveau de cette interface dans le domaine CH2 ou le domaine CH3, étaient impliqués dans la fixation au FcRn, à la protéine A, etë. Ainsi, les IgG1 humaines mutées au niveau du 2 Protein Design Labs has suspended clinical trials in Phase I / II of Remitogen0, who is an anti-HLA-DR antibody that can be used to treat cancer cell MHC class II positive, including leukemias. B and T lymphocytes Thus, one of the objects of the invention is to provide new products or processes to overcome the disadvantages encountered during the development industrial antibodies, namely their low efficiency and high cost. ..
Today, research is focused on the Fc region of immunoglobulin (Ig) so to improve the functional properties of the antibodies. Ultimately, this should to permit Obtaining antibodies that bind and activate cell receptors effector (monocytes / macrophages, B cells, NK cells and dendritics) of way more efficient. The Fc region of IgG consists of 2 globular domains appointed CH2 and CH3. The 2 heavy chains interact closely at the level of areas CH3 whereas at the level of the domains CH2, the presence, on each of the 2 chains, of an oligosaccharide linked to Asn 297 (Kabat numbering) contributes to spacing of the 2 CH2 domains. Moreover, the domains CH2 and CH3 of the same chain are separated by a flexible region defining an interface between the two areas.
The interface between the CH2-CH3 domains has been described as a site common fixing many (glyco) proteins like FcRn, the factors rheumatoid (Corper et al., 1997) and some bacterial and viral proteins, example the Staplzylococcus aic protein A (Deisenhofer, 1981), G protein Stf ~ eptococcus group G (Sauer-Eriksson et al., 1995), the gE-gI complex of virus Herpes simplex 1 (Chapman et al., 1999)) and the protein "torus" of the hepatitis C (Maillard et al., 2004).
In addition, it has been shown that certain amino acid residues, located at the level of this interface in the CH2 domain or the CH3 domain, were involved in the binding to FcRn, protein A, ete. Thus, human IgG1 mutated at level of
3 résidu d'histidine 435 (His 435, numérotation de Kabat) perdent leur capacité
à fixer le FcRn et la. protéine A mais conservent leur capacité à fixer le FcyRIII.
(Firam et..r~l,~
2001 ; Shields et a1.,~2001).
Par contre, aucune des études notifiant, des modifications de l'interface CH2-d'IgG humaines ou marines, ne montre une relation quelconque entre la structure de cette partie de la molécule d'IgG et les capacités effectrices de ces IgG via les récepteurs FcyR (FcyRI, FcyRII, FcyRIII).
Dans le cadre de l'invention, nous avons déterminé la structure tridimensionnelle des régions Fc de différents anticorps monoclonaux présentant des activités fonctionnelles différentes; notamment l'activité ADCC et l'induction de la production de cytokines.
Nous avons découvert la présence d'un ion zinc situé entre les domaines CH2 et CH3, plus précisément, lié à des , résidûs localisés . à l'interface des doniairies 1 S impliquée dans la reconnaissance de la région Fc de l'anticorps par le récepteur FcRn ainsi que dans la fixation de la protéine A, issue de la paroi bactérienne de Staplaylococcus auf°eus.
De part sa localisation à l'interface des domaines CH2 et CH3, cet atome de zinc joue un rôle impôrtant dans la conformation générale du Fc, et par là même permet l'amélioration de la liaison du Fc à ses récepteurs FcyRs.
Nos études de la structure tridimensionnelle de la région Fc de ces anticorps ont révélé
que la présence dé cations métalliques tels que le Zinc, le Cuivre, le Cadmium ou le Fer, dans la solution de cristallisation était toujours associée à la conformation dite ouverte de la région Fc des IgG (Radaev et al., 2001). Cette conformation ouverte favorise ~la fixation aux récepteurs FcyR, notamment au FcyRIII. Ainsi, il est désormais pbssible ~ de potentialiser l'activité fonctionnelle des anticorps monoclonaux ou polycloriaux au moyen de cations métalliques. A l'opposé, l'abolitiôn de la fixation de cations métalliques tels qne le zinc, le cuivre, le cadmium ou le fer aux anticorps, plus particulièrement à l'.intexface CH2-CH3, par utilisation de mutants de la séquence peptidique oû de.substances chimiqûes appropriées, conduit à l'obtentiôn d'anticôrps aux propriétés fonctionnelles abrogées ou fortement diminuées.
Ainsi, (invention apporte une solution économique et universelle pour résoudre les problèmes liés à la faible efficacité des anticorps monoclonaux disponibles ou en cours de développement par (utilisation de cations métalliques qui améliorent l'activité
fonctionnelle d'anticorps. A cet effet, nous proposons une méthode pour potentialiser l'activité fonctionnelle des anticorps au moyen de cations métalliques. Enfin, par la modification du site de liaison aux cations métalliques, l'invention fournit également des anticorps de classe IgGl possédant une capacité d'activation du récepteur FcyRIII
diminuée, ainsi que des anticorps de classe IgG3 possédant artificiellement un site de fixation pour un cation métallique.
Description Ainsi, un premier objet de l'invention est l'utilisation de cations métalliques divalents ou trivalents pour améliorer l'activité fonctionnelle d'anticorps.
Nos études tridimensionnelles de la région Fc des anticorps ont révélé que la présence de cations métalliques tels que le Zinc, le Fer, le Cuivre ou le Cadmium, était toujours associée à la conformation dite ouverte de la région Fc des IgG. Cette conformation ouverte favorise la fixation des anticorps aux récepteurs FcyR, notamment au FcyRIII.
Ainsi, il est désormais possible de potentialiser l'activité fonctionnelle des anticorps monoclonaux ou polyclonaux au moyen de tels cations métalliques.
De manière préférentielle, le cation métallique utilisé est le zinc. En effet;
nos analyses ont permis de mettre en évidence la présence d'un ion zinc lié aux résidus d'histidine 310 et d'histidine 435 (dans la présente demande, la numérotation~est celle de Kabat, Kabat database, http://immuno.bme.nwu.edu): ~ ~ .
De part sa localisation sur la région Fc, cet atome de zinc joue un rôle important dans la conformation générale de la région Fc, et par là même permet l'axilélioration de la 5 liaison de la région Fc à ses récepteurs.
Ainsi, de manière avantageuse, on utilise ces cations pour interragir avec la région Fc des anticorps afin de participer à la stâbilisation de cette région.
Plus particulièrement, on les utilise afin dé participer au contrôle de l'ouverture de la région Fc des anticorps et ainsi de favoriser le maintien de la conformation dite « ouverte » des anticorps, c'est-à-dire le maintien d'un certain écartement entre les domaines CH2 favorisant lâ fixation de la région Fc sur ses récepteurs. La présence des cations métalliques permet d'induire une ouverture de la région Fc, même si le cation métallique ne se maintient pas dans sori site.
Ainsi, de manière avantageuse, cés cations métalliques favorisént la fixation des anticôrps aux récepteurs FcyR, notamment au récepteur Fc~yRIII.
De plus, le cation métallique peut, dans un autre aspect de l'invention, favoriser le rapprochement de plusieurs régions Fc d'anticorps, via un deuxième site de fixation impliquant les résidus d'histidine 268 et 285 (numérotation de Kabat), facilitant l' activation des FcyRs, plus particulièrement des FcyRIII et la transduction des la signalisation par l'intermédiaire de ces récepteurs.
Par « activité fonctionnelle » on entend, de manière non limitative, l'activité ADCC
(Antibody-Dependent Cell-mediatéd ~ Cytotoxicity), l'activité CDC (Complement Dependent Cytotoxicity), l'activité de phagocytose, l'activité d'endocytose ou encore l'induction de, la sécrétion de cytokines. Ainsi, l'utilisation de cations métâlliques tels que décrit dans~l'invention permet d'améliorer l'activité fonctionnelle d'au moins 50%, préférentiellement 60%, ou 70%, 80%, 100%, et préférentiéllement 200% ou 300%.
De plus, on entend par « récepteurs » non seulement les molécules de FcyR, telles que Fc~yRIII, présentes sur les cellules du système immunitaire telles les monôcytes, les macrophages, les lymphocytes B et T, les cellules NR et les cellulés dendritiques mais également le FcRn, les molécules du complément cbmme le C1q et celles des parois bactériennes comme la protéine A.
Par « anticorps », on entend tout anticorps polyclonal ou monoclonal. Si l'anticorps est un anticorps monoclonal, il peut êire chimériquë, humanisé ou humain.
Avantageusement, cet anticorps est une IgG, par exemple une IgGl ou une IgG3, notamment humaine. De plus, le terme anticorps inclut également toute glycoprotéine comportant une région Fc, par exemple humaine, et un ou plusieurs fragments, domaines ou dérivés d'anticorps. On entend par « domaine d'anticorps » l'un quelconque des domaines VL, CL, VH , CH1, CH2, CH3, CH4 ; par « fragment d'anticorps » tout fragment qui contient un site de fixation complet pour un antigène, choisi parmi les fragments Fv, scFv, Fab, Fab', F(ab')2, et par « dérivé
d'anticorps »
tout anticorps pouvant comprendre une ou plusieurs mutations, substitutions, délétions et/ou additions d'un ou plusieurs résidus d' acides aminés, ainsi que les anticorps multi-spécifiques et polyfonctionnels.
Par « cation métallique divalent ou trivalent» ou par « cation métallique » on entend tout cation métalliqué ayant un degré d'oxydation +2 ou +3 et plus parüculièrement le zinc, le fer, le cuivre, le cadmium, le cobalt, le nickel, le manganèse, le gallium, le gadolinium, le sélénium, l'or, le platine ou le palladium ou un analogue.
Préférentiellement, ces cations métalliques sont le zinc, le fer, le cuivre ou le cadmium, et de manière particulièrement avantageuse il s'agit du zinc. Par « analogue »
on entend tout ion libre ou lié susceptible de se lier au niveau de la région Fc des anticorps, et plus particulièrement aux résidus His 310, His 435, les résidus Asn 434 et His (numérotation de Rabat) pouvant également participer à la fixation.
Un deuxième objet de l'invention concerne une méthode pour potentialiser l'activité
. fonctionnelle des anticorps via la région Fc, comprenant une étape consistant à ajouter une quantité appropriée d'au moins ûn cation métallïque dâns le système biologiqûe produisant les anticorps ou dans une solution comprenant des anticorps avant et/ou après purification ou encore dans la solution de conservation ou dans la formulation finale sous la forme d'une solution injectable des anticorps.
De manière avantageuse, ces cations métalliques sont le zznc, le fer, le cuivre ou le cadmium.
On entend par « système biologique » des lignées cellulaires, dés plantes ou animaux transgéniques non humains. Parmi les cellules, on peut choisir des cellules provenant de lignées cellulaires, transfectées à l'aide d'un vecteur comportant le gène codant pour Iedit anticorps, par exemple des cellules eucaryotes ou procaryotes, notamment des çellules de mammifères, d'insectes, de plantes, de bactéries ou de levures.
Plus spécifiquement, on peut utiliser des cellules de myélome de rat telle que YB2/0.
On peut également utiliser des cellules CHO, notamment CHO-K, CHO-LeclO, CHO-Lecl, CHO Pro-5, CHO dhfr- ou d'autres lignées cellulaires paxmi Wil-2, Jurkat, Vero, Molt-4, COS-7, 293-HEK, K6H6, NSO, SP2/0-Ag 14 et P3X63Ag8.653, PERCE ou BHK.
De manière préférentielle, on ajoute une concentration molaire en zinc au moins égale à la concentration molaire en anticorps.
Eventuellement, on ajoute une concentration molaire en zinc au moins égale à 2 fois, et préférentiellement à 3 fois ou à 4 fois la concentration molaire en anticorps:
. Alternativement, on ajoute une concentration molaire en cations métalliques permettant d'améliorer l'açtivité fonctionnelle de l'anticorps ~ d'au moins 25%, préférentiellement 50% ou 60%, 70%, 80%, 100%, et préférentiellement 200 ou 300%.
Avantageusement, les. cations rriétalliques existent sous différentes formes.
Dans un aspect particulier de l'inventiona les ions zinc peuvent être sous forme d'acétate de zinc; dé bromure de zinc, de ,chlôrhydrate de zinc, de chlorixre de zinc, de citrate de w zinc, dé gluconate de zinc; d'hydroxycarbonate de zinc, d'iodure de zinc, de L-lactate de zinc, de nitrate de zinc, de stéarate de zinc, ou de sulfate de zinc.
Un autre objet de l'invention se rapporte à des anticorps de classe IgG3, et plus particulièrement les allotypes G3m(b)et G3m(g), possédant un site de fixation pbur un cation métallique comprenant les résidus His 310 et His 435 sur sa région Fc créé par ingénierie moléculaire.
Dans le cadre de l'invention, nous avons mis en évidence que des cations métalliques se fixent sur l'es anticorps de classe IgGl sur un site comprenant les résidus.His 310 et His 435, les résidus His 433 et Asn 434 pouvant eux aussi être impliqués dans cette fixation. Or, les anticorps de clâsse IgG3 d'allotype G3m(b) ou G3m(g) ne comportent pas un tel site de fixation à l'état naturel. En effet, ils possèdent un résidus arginine (Arg) en position 435. Ainsi, dans le cadre de l'invention, nous créons, par mutagenèse dirigée, des anticorps de classe IgG3 présentant une fixation de cations métalliques améliorée par rapport aux anticorps non modifiés, de par la création d'un site de fixation impliquant un résidu His 435 en substitution du résidu Arg 435.
Ainsi, ces anticorps IgG3 comportent un site de fixation pour un cation métallique, notamment le zinc, le fer, le cuivre, le' cadmium, le cobalt, le nickel, le manganèse, le gallium, le sélénium, l'or, le platine ou le palladium, comprenant les résidus His 310 et His 435, et de manière âvantageuse comprenant aussi le résidus Asn 434 ét/ou His 433.
De manière avantageuse, l'un au moins de ces résidus histidine est remplacé
par un au moins des résidus choisis parmi la cystéine, l'acide aspartique et l'acide glutamique.
En effet, ces résidus possèdent aussi la capacité de fixer de tels.cations métalliques.
Préférentiellement, le cation métallique ést le zinc, lé fer, le cuivre ou le cadmium, et de manière préférée le zinc. ~ .
Dans un aspect particulier dé l'invention, l'anticorps possède un cation métallique;.~et plus particulièremént un atone de zinc, lié à un ou plusieurs résidus de la région Fc. v De manière particulièrement avantageuse, cet anticorps IgG3 possède une capacité de fixation au FcyRIII et une activité fonctionnelle améliorées par rapport à
l'anticorps natif.
Un objet de l'invention est ainsi~l'utilisation de l'anticorps IgG3 possédant un site de fixation pour un cation métallique précédemment décrit pour la préparatibn d'un médicament destiné au traitement d'une pathologie comme la maladie hémolytique du nouveau-né, une pathologie virale, bactérienne ou parasitaire, une pathologie liée aux agents pathogènes ou toxines dérivées, listés comme étant particulièrement dangereux dans les cas de bioterrorisme (classification des Centers for Disease Control, CDC), notamment l'anthrax (Bacillus aiathf°acis), le botulisme (Clostridium botulium), la peste (Yef siuia pestis), la variole (Variola major), la tularémie (FYahcisella tula~ehsis), les fièvres hémorragiques virales (liées aux filovirus -Ebola, Marburg et aux arenavirus -Lassa, Machupo), la toxine epsilon de Clost~idiuyrz pef°fi~ingehs, la brucellose (B~~ûcella species), la melioidose (Bm°kholdey°ia mallei), la toxine de ricin (Ricinus com~zuhis).
Un autre objet de l'invention est une composition pharmaceutique d'anticorps thérapeutiques comprenant des cations divalents ou trivalents et au moins un excipient.
De manière préférée, ces cations métalliques sont le zinc, le fer, le cuivre ou le cadmium, ou un mélange de plusieurs d'entre eux. De manière particulièrement avantageuse, on choisit le zinc, qui peut être sous forme d'acétate de zinc, de bromure de zinc, de chlorhydrate de zinc, de chlorure de zinc, de citraté de zinc, de gluconate de zinc, d'hydroxycarbonate de zinc, d'iodure de zinc, de L-lactate de zinc,de nitrate de zinc, de stéarate de zinc, ou de sulfate de zinc. .
Dans un aspect particulier,.les ànticorps .contenus dans la composition possèdent un cation métallique selon l'invention lié aux résidus His 310 et His 435, les résidus His 433 et Asn 434 pouvant également.pârticiper à la fixatiôn. .
5 Dans un autre aspect particulier de l'invention, les anticorps de la composition pharmaceutique ont les anticorps de classe IgG3 créés par ingénierie moléculaire décrits précédemment. Dans un autre aspect préféré de l'invention, ce sont des IgG
humaines ou ayant une région Fc humaine.
Ainsi, la présence de tels cations métalliques dans la composition améliore la fixation 10 des anticorps thérapeutiques qu'elle contient à ses récepteurs, notamment les Fc~yRIII, la composition possédant ainsi une meilleure activité thérapeutique.
Un autre objet de l'invention est une composition pharmacéutique dans laquelle au moins 50%, 60%, 70%, 80%, 90%, ou encore 99% des anticorps possèdent un cation métallique divalent ou trivalent, notamment un ion zinc, lié à un site se trouvant dans la région Fc. Il peut s'agir de manière préférentielle du site de fixation comprenant les acidés aminés His 310 et His 435, l'acide aminé Asn 434 et/ou His 433 étant susceptibles) de participer à la fixation. Dans un autre aspect de l'invention, .il peut s'agir du site de fixation comprenant les acides aminés His 268 et His 285.
Dans un autre aspect de l'invention, les 2 sites peuvent être occupés par un cation métalliquetel que décrit dans l'invention.
Le cation métallique est de manière préférentielle un de ceux déjà cités précédemment, notamment le zinc, le fer, le cuivre ou le cadmium, ou un mélange de plusieurs d'entre eux, éventuellement sous les formes déjà évoquées.
Un aùtre objet de l'invention est une solution comprenant un anticorps monoclonal ou des anticorps monoclonaux et une quantité appropriéé de cations métalliques divalents ou trivalents, en particulier d'ions zinc au moins égale à la concentration molaire en anticorps, cette solution étant adaptée pour une injection par voie intraveineuse, sous-cutanée ou intramusculaire.
Les cations métalliques peuvent . être tbut cation métallique divalent ou trivalent, . notamment du zinc, du fer, du cuivre, du cadmium, du cobalt, du nickel, du manganèse, du gallium, du sélénium, du or, du platine ou du palladium ou un analôgue.
De manière préférée, le cation est un ion zinc ou d'acétate de zinc, de bromure de zinc, de chlorhydrate de zinc, de chlorure de zinc, de citrate de zinc, de gluconate de zinc, d'hydroxycarbonate de zinc, d'iodure de zinc, de L-lactate de zinc,de nitrate.
de zinc, de stéarate de zinc, ou de sulfate de zinc.
Un autre objet de l'invention est l'utilisation d'ions zinç pour améliorer la cristallisation d'anticorps thérapeutiques, et plus particulièrement d'IgG
monoclonaux, les ions zinc stabilisant la région Fc des anticorps. L'ajout de cations divalents et plus particulièrement de zinc, augmente significativement la solubilité des Fc des IgGs, en favorisant les contacts cristallins ce qui facilite l'obtention des cristaux nécessaires aux études structurales.
L'invention a également pour objet de fournir un test permettant d'évaluer l'efficacité
d'un anticorps comprenant l'étude de la conformation 3D, notamment du domaine impliquant les résidus His 310, His 435, Hïs 433 et/ou Asn 434 de la région Fc telle que montrée à la figure 1 ou 2 ou encore un dosage de la teneur en zinc desdits anticorps, la présence de zinc étant une indication de l'efficacité de l'anticorps.
Un autre objet de l'invention se rapporte à Lin anticorps possédant l'un au moins de ses résidus His 310 et His 435 modifié.
Dans un aspect particulier de l'invention, la modification de l'anticorps est une mutation, notamment une substitution par un acide aminé possédant une faible affinité
pour les cations métalliques divalents ou trivalents. Par exemple, le résidu His 310 etlou le résidu Iüs 435 peu(ven)t êiré substitués) par un résidu de lysine, d'alanine, de gl~ciné, de valine, de léucine, d'isoleùcine, de proline, de méthionine, de tr~ptophane, de phénylalanine, de sérine ou de thréonine.
De manière parüculièrement avantageuse, les résidus His 310 et His 435 sont substitués tous les deux par des résidus de lysine.
Ces mùtants peuvent être réalisés à partir de tout anticorps possédant , à
l'état « naturel », c'est-à-dire non muté, un site de fixation pour les cations métalliques comprenâr~.t les résidus His 310 et His 435. Il peut s'agir notamment d'IgGl, d'IgG3 allotypes G3m(s) ou G3m(st), IgG2 ou IgG4.
Ces mutants possédent une capacité d'activation du FcyRIII diminuée de façon significative.
Dans un deuxième mode de réalisation, la modification peut être réalisée ~pax le DEPC
(diéthyl pyrocarbonate), un agent modifiant les histidines.
Avantageusement, ces anticorps sont des IgGI, ou en tout état de cause des anticorps possédant à l'état « naturel », c'est-à-dire non muté, un site de fixation pour les cations métalliques comprenant les résidus His 310 et His 435.
Ces anticorps possèdent une activité fonctionnelle diminuée par rapport au même anticorps non modifié. Toutefois, ils conservent leur capâcité à fixer l'antigène et le Fc~yRIII.
Ainsi, l'invention fournit des anticorps possédant une faible activité ADCC, présentant un intérêt particulier en thérapie en remplacement des IgG4, ou pour prévenir les rejets de greffe. On peut encore utiliser les anticorps double mutants selon l'invention comme anti-tétaniques, anti-diphtériques ou dirigés contre des agents pathôgènes ou toxines dérivées, listés comme étant particulièrement dangereux dans les cas de bioterrorisme (classification des Centers for Disease Control, CDC), notamment l'anthrax (Bacillus anth~acis), le botulisme (Clost~~idium botulium), la peste (Yersinia pastis), la variole (Variola major), la tularémié (F~ancisella tularensis), les fièvres hémôrrâgiques virales (liées aux filovirus -Ebola, Marburg et aizx arenavirus -Lassa, Machupb), la toxine epsilon de Clostridium perf~ingerïs, la: brucellose (B~ucella speciës), la melioidose (Bu~kholde~ia mallei), la toxine de ricin (Ricinus communis).
Ainsi, un autre objet de l'invention concerne l'utilisation d'anticorps modifiés comme décrit ci-dessus, et possédant donc une activité fonctionnelle faiblé, pour la préparation d'un médicament destiné à la prévention du rejet de greffe ou au traitement d'une pathologie choisie parmi le tétanos, la diphtérie, ou provoquée par un agent pathogène ou toxine dérivée, listé comme étant particulièrement dangereux dans les cas de bioterrorisme -(classification des Canters for Disease Control, CDC), notamment l'anthrax (Bacillus anthracis), le botulisme (Clostridium botulium), la peste (Yersinia pastis), la variole (Variola major), la tularémie (FYancisella tulaf°ensis), les fièvres hémorragiques virales (liées aux filovirus -Ebola, Marburg et aux arenavirus.-Lâssa, . Machupo), la toxine epsilovi de Closts~idium perf~ingefzs, la brucellose (BYUCeIIa species), la melioidose (BuYkholdeYia mallei), la toxine de ricin (Ricinus communis).
Enfin, des anticorps possédant une activité fonctionnelle altérée comme précédemment décrits sont aussi utilisés pour la préparation d'un médicament en remplacement des IgG4.
A titre d'exemple, les anticorps décrits dans l'invention, notamment les anticorps possédant une activité fonctionnelle améliorée due aux cations métalliques, ou les anticorps modifiés dont l'activité fonctionnelle est altérée, ou encore les compositions ou solutions de l'invention, peuvent être choisis parmi les anti ~Ep-CAM, anti-KIR3DL2, anti-EGFR, anti-VEGFR, anti HERl, anti HER2, anti GD, anti GD2, anti GD3, anti-CD20, anti CD-23, anti CD-25, anti-ÇD30, anti-CD33, ânti-CD38, anti-CD44, anti CD52, anti CA125 et anti PrôteinC, anti-HLA-DR, les anti-viraux:
HBV, HCV, H1V et RSV, et plus particulièrement pai~ni les anticorps du Tableau I ci-après Tableau I : ' Nom et marquSocit cible indication .
commerciale de l'anticorps Edrecolomab Centocor anti Ep-CAMcancer colorectal PANOREX
Rituximab Idec anti CD20 B cell lymphoma RITUXAN ~ Licensi thrombocytopenia purpura Genentech/
Hoffinan la roche Trastuzumab Cienentech anti HER2 cancer ovarien HERCEPTIN Licensi Hoffinari la roche/Immunogn Palivizumab Medimmune . RSV
SYNAGIS Licensi Abott Alemtuzumab BTG anti CD52 leukemia CAMPATH Licensi Schering ibritumomab IDEC anti CD20 NHL
tiuxetan Licensi Schering ZEVALIN
Cetuximab Merck /BMS / anti EGFR cancers IMC-C225 Imclone Bevacizumab Genentech/ anti VEGFR cancers ATjASTIN Hoffinan la roche WO 2005/040216 . PCT/FR2004/002687 Epratuzumab hnmumedicsl anti CD22 cancers:
~
-Amgeri ~ lyinphme non hogkinien Hu M195Mab Protein Design Anti CD33 cancrs Labs MDX-210 Tmmuno-DesignedND cancers Molcules BEC2 Imclone anti GD3 cancers Mitumomab Oregovomab Altarex anti CA125cancer ovarien OYAREX
Ecromeximab Kyowa-Hakko anti GD3 melanome malin ABX-EGF Abgenix EGF cancers MDXOlO Medarex Anti CD4R Cancers XTL 002 XTL ND anti-viral : HCV
biopharmaceuticals H11 SCFV viventia biotechND cancers 4B5 viventia biotechanti GD2 Cancers XTL 001 XTL ND anti-viral : HBV
biopharmaceuticals MDX-070 MEDAREX Anti-PSMA cancer de la Prostate TNX-901 TANOX ariti IgE Allergies IDEC-114 IDEC inhibitionl~nphome non-Hodgkinien ProteinC ~ .
Par exemple, finventiôn porte sur une solution se trouvant sous la forme d'un concentré
à une concentration d'anticorps allant de 0,1 à 50 rrig/mL, ou 1. à 25 mg/mL
qui peut être formulé pour une administration 1V. Le séluté peut contenir à titré
d'exemple : 9,0 mg/mL chlorure de sodium, 7;35 mg/mL citrate de sodium dihydraté, et 0,7 mg/mL
polysorbate-80 dans de Peau stérile. Dans ce soluté ou concentré, on rajoute en outre de 0,1 à 50 mg/mL, .ou l, à 20 mg/mL, d'un cation, la concentration dudit cation étant égale à 1, 2, 3, 4 ou 5 fois la concentration en anticorps soit de 0,1 à 250 mglmL
ou de 1 à.
100 mg/mL. Ce concentré peut être injecté dans une poche de sérum ou de liquide de perfusion de sorte à obtenir la dose que fon souhaite administrer, tout en maintenant la même teneur en cation par rapport à la teneur en anticorps.
L'invention porte également sur une poudre lyophilisée, stérile dans un containeur et qui peut. être reconstituée avec de Peau stérile juste avant injection comprenant la quantité appropriée d'anticorps et la quantité dudit cation selon (invention 1~ 2, 3, 4 ou 5 fois supérieure à celle de (anticorps.
On peût reconstituer cette poudre pour une injection IV ou sous-cutanée. Dans ce dernier. cas, la poudre peut comprendre de 10 à 500 mg d'anticorps et une quantité
dudit cation selon (invention 1, 2, 3, 4 ou 5 fois supérieure à celle de (anticorps, soit par exemple de 10 à 500 mg. On peut rajouter les excipients tels que le sucrose, un acide aminé, du polysorbate:
Il faut comprendre que (invention concerne préférentiellement les compositions décrites ci-dessus dans lesquelles la teneur en cation est au moins égale à la teneur en anticorps, mais vise également toute composition dans laquelle on rajoute une quantité
de cation (zinc, fer, cuivre, cadmium, ou un analogue, ou leur mélange) inférieure à
ladite quantité équimolaire, par exemple de 0,1 à 0,99 molaire (0,1, 0,2, 0,3, 0,4, 0,5, 0,6, 0,7, 0,8 ou 0,9 molaire), mais toujours suffisante pour améliorer d'au moins 10%
ou 25%, ou 50% ou encore 100% (efficacité et/~u les propriétés fonctionnelles de (anticorps. . ~ . ..
D'autres aspects et avantages de l'invention seront décrits dans les 'exemples qui:
suivent, qui doivent êtré considérés comme illustratifs et ne limitent pas l' étendue de l'invention.
Afin d'acquérir des données nouvelles sur les relations structure-fonction de la région Fc des anticorps, le demandeur a cristallisé les fragments Fc de l'antiçorps monoclonal EMABS, exprimé dans la lignée cellulaire YB2/0, en présence ou en absence de zinc.
Une étude par diffraction des rayons X (RX) des fragments Fc cristallisés a été
entreprise ; une partie de cette étude est présentée dans les exemples 1 et 2 qui suivent.
L'exemple 3 montre l'effet d'une modification chimique des histidines sur l'activité Fc et l' exemple 4 l' effet d'une double mutation des résidus histidine 310 et 43 5 en lysines.
Descripüon des figures Figure 1 : Schéma montrant la position des ions Zn2+ au voisinage du fragment Fc de l'anticorps monoclonal EMABS (21~).
Figure Z : Détail de la carte de densité électronique au voisinage dés résidus d'histidine 310 et 435.
Figure 3: Superposition des structures du fragment Fc de l'anticorps EMABS
bbtenues en absence (gris) et en présence (blanc) d'ion Zn2+.
Figure 4 : Fixation de l'anticorps EMABS modifié par le DEPC au récepteur FcyRQI.
Cette figure présente en abscisse ,la fixation des anticorps sur les hématies ét en ordonnée la fixation du CD 16 (FcyRIII) présent à la surface des cellules Jurkat CD 16.
r.
(~) anticorps témoin AD1 ; (~) EMABS témoin ; (1) EMABS FNR ; (~) EMABS
Flt.
Figure 5 : Activation par l'anticorps EMABS modifié par le DEPC du récepteur FcyRIII présent sur les cellules Jurkat CD 16.
Cette figure représente la quantité, exprimée en pg/ml, d'IL-2 sécrétée par les cellules Jurkat CD16 dont le récepteur CD16 a été activé par l'anticorps EMABS témoin (~) et les fractions séparées sur protéine A après modification de l'anticorps EMABS
par le DEPC : FNR (~), FR (~).
Figure 6 :.Effet de la modification par le DEPC sur l'activité ADCC de l'anticorps monoclonal EMABS.
Cette figure représente . le pourcentage de lyse des hématies Rh(D+) induite par l'anticorps monoclonal EMABS témoin et par les 2 fractions FR et FNR, séparées sur gel de Sépharose-protéine A, de l'anticorps modifié par le DEPC.
Figure 7 : Mésure de la fixation du Fc des antiéorps doublement mutés His310-435Lys au récepteur FcyRIII. Les anticorps 1C7, 2H11, 4G5 et 4H10 sont les anticorps mutés.
Les anticorps 16D11, 1165 et 6H11 ne sont pas mutés. Cette figure présente en abscisse, la fixation des anticorps sur les hématies et en ordonnée la fixaüon du CD16 (FcyRIII) présent à la surface des cellules Jurkat CD 16. La figure regroupe les résultats obtenus avec les surnageants contenant les anticorps doublement mutés (courbes en trait plein) et ceux contenant des anticorps non mutés (courbes en pointillés).
Figure 8 : Etude de la sécrétion d'IL-2 induite par des anticorps monoclonaux anti-Rh(D) mutés ou non. Cétte figure représente le pourcentage d'IL-2 sécrété par des anticorps monoclonaux anti-Rh(D) natifs (n = 3 clones) et portant la double mutation His310-435Lys (n = 4 clones). Les résultats sont exprimés en pourcentage par rapport à
un anticorps témoin purifié, EMABS.
Figure 9 : Influence de l'imidazole sur la fixâtion de l'anticorps monoclonal EMABS
au récepteur CD16 (Fc~yRIl1).
Figure 10 : Etude par c~tométrie en flux de la fixation des anticorps portant la double mutation His310-435Lys au récepteur CD16 EXEMPLES
Afin d'acquérir des données nouvelles sur les relations structure-fonction de la région Fc des anticorps, le demandeur a cristallisé les fragments Fc de l'anticorps monoclonal EMABS, exprimé dans la lignée cellulaire YB2/0, en présence ou en absence de zinc.
Une étude par diffraction des rayons X des fragments Fc cristallisés a été
entreprise ;
une partie de cette étude est présentée dans les éxemples 1 et 2 qui suivent.
L'exemple 3 montre l'effet d'une modification' chimique des histidines sur l'activité Fc et l'exemple ~4 l'éffét d'une double.mutatiori des résidus histidine 310 et 435 en lysines. , Anticorps monoclonal EMABS. Il s'agit d'une IgG1(K) humaine, dirigée contre l'antigène Rh(D), produite dans la lignée cellulaire YB2/0 (myélome de rat, lignée ATCC n° CRT., 1662) adaptée à
la culture en milieu sans sérum.
- Purification : EMABS a été purifié par chromatographie d'affinité sur Sépharose-protéine A:
- Analyse glycannique : par HPCE-LIF, il a été montré que la structure majoritaire est un oligosaccharide de type biantenné, contenant environ 25 % de fucose.
- Activité biologique : l'activité ADCC de EMABS est au moins égale à celle de l'anticorps polyclonal anti-Rh(D) de référence, WinRho (Cangène).
Préparation du fragmént Fc = Conditions d'hydrolyse : L'anticorps purifié EMäBS est diàlysé une nuit contre du tampon Tris 50 mM, pH 8,0. La solution d'anticorps, ajustée à 50 mM CaCl2 et 5 mM cystéine, est incubée 30 min. à. 37°C avant d'ajouter la solution de trypsine (1 mg/ml) dans un rapport enzyrne/substrat de 1/25. Après 5 h. d'incubation à
37°C, la réaction est arrêtée par l'addition de düsopropyl fluorophosphate (1 mM
final).
L'hydrolysat est dialysé une nuit contre du tampon flnida.zole 50 mM, pH 7,8.
10 - Purification du fragment Fc : L'hydrolysat dialysé est' mis en contact avec de l'Affarose-protéine L à raison de 1 ml de gel pour. 3,6 mg d'anticorps. Après 3 Histidine residue 435 (His 435, Kabat numbering) loses their capacity to fix the FcRn and the. Protein A but retain their ability to bind FcγRIII.
(Firam and..r ~ l, ~
2001; Shields et al., 2001).
On the other hand, none of the notifying studies, modifications of the CH2-of human or marine IgG, does not show any relation between the structure of this part of the IgG molecule and the effector abilities of these IgGs via the FcγR receptors (FcγRI, FcγRII, FcγRIII).
In the context of the invention, we have determined the structure three-dimensional Fc regions of different monoclonal antibodies with activities functional different; in particular the ADCC activity and the induction of the production of cytokines.
We discovered the presence of a zinc ion located between the CH2 and CH3, more precisely, linked to localized residues. at the interface of doniairies 1 S involved in the recognition of the Fc region of the antibody by the FcRn receiver as well as in the binding of protein A, derived from the bacterial wall of Staplaylococcus auf ° eus.
Because of its location at the interface of the CH2 and CH3 domains, this atom of zinc plays an important role in the general conformation of the Fc, and thereby allows improving the binding of Fc to its FcγRs receptors.
Our studies of the three-dimensional structure of the Fc region of these antibodies have revealed that the presence of metal cations such as Zinc, Copper, Cadmium where the Iron in the crystallization solution was always associated with the so-called conformation open IgG Fc region (Radaev et al., 2001). This conformation opened favors fixation to FcγR receptors, especially to FcγRIII. So, he is from now on able to potentiate the functional activity of monoclonal antibodies or polyclonal by means of metal cations. In contrast, the abolition of fixing of metal cations such as zinc, copper, cadmium or iron antibodies, more particularly in the CH2-CH3 interface, using mutants of the sequence peptide or appropriate chemical substances, leads to obtaining antibody with abrogated or greatly diminished functional properties.
Thus, (invention provides an economical and universal solution to solve the problems related to the low effectiveness of available monoclonal antibodies or In progress development by (use of metal cations which improve the activity functional antibody. For this purpose, we propose a method for potentiate the functional activity of the antibodies by means of metal cations. Finally, over there modification of the binding site to metal cations, the invention provides also IgG1 class antibodies possessing receptor activation capacity RIII
decreased, as well as class IgG3 antibodies artificially site of fixation for a metal cation.
Description Thus, a first object of the invention is the use of cations divalent metal or trivalent to improve the functional activity of antibodies.
Our three-dimensional studies of the Fc region of antibodies revealed that presence metallic cations such as Zinc, Iron, Copper or Cadmium, was always associated with the so-called open conformation of the Fc region of IgG. This conformation The open method favors the binding of antibodies to FcγR receptors, particularly RIII.
Thus, it is now possible to potentiate the functional activity of antibody monoclonal or polyclonal by means of such metal cations.
Preferably, the metal cation used is zinc. Indeed;
our analyzes revealed the presence of a zinc ion bound to residues histidine 310 and histidine 435 (in the present application, the numbering ~ is that of Kabat, Kabat database, http://immuno.bme.nwu.edu): ~ ~.
Due to its location in the Fc region, this zinc atom plays a role important in the general conformation of the Fc region, and thereby allows the improvement of the Linking the Fc region to its receptors.
Thus, advantageously, these cations are used to interact with the region Fc antibodies to participate in the stabilization of this region.
In particular, they are used to participate in the control of the opening of the Fc region of the antibodies and thus to promote the maintenance of the conformation called "Open" antibodies, that is to say, maintaining a certain spacing between the CH2 domains favoring the fixation of the Fc region on its receptors. The presence of metal cations can induce an opening of the Fc region, even if the cation metal does not stay in sori site.
Thus, advantageously, these metal cations favor the fixation of the antibodies to the FcγR receptors, in particular to the FcγRIII receptor.
In addition, the metal cation may, in another aspect of the invention, promote approximation of several Fc antibody regions, via a second site of fixation involving histidine residues 268 and 285 (Kabat numbering), facilitating activation of FcyRs, more particularly FcγRIII and transduction from the signaling via these receivers.
"Functional activity" means, in a non-limiting way, ADCC activity (Antibody-Dependent Cell-mediatéd ~ Cytotoxicity), CDC activity (Complement Dependent Cytotoxicity), phagocytosis activity, endocytosis activity or again induction of secretion of cytokines. So, the use of cations metallic such described in ~ the invention makes it possible to improve the functional activity of minus 50%, preferably 60%, or 70%, 80%, 100%, and preferably 200% or 300%.
In addition, "receptors" are understood to mean not only FcγR molecules, as Fc ~ yRIII, present on the cells of the immune system such as monocytes, macrophages, B and T lymphocytes, NR cells and cells dendritic but also FcRn, complement molecules such as C1q and those of walls bacterial as protein A.
By "antibodies" is meant any polyclonal or monoclonal antibody. Yes the antibody is a monoclonal antibody, it can be chimeric, humanized or human.
Advantageously, this antibody is an IgG, for example an IgG1 or an IgG3, especially human. In addition, the term antibody also includes any glycoprotein having an Fc region, for example human, and one or more fragments, domains or derivatives of antibodies. The term "antibody domain" is understood to mean one any of the VL, CL, VH, CH1, CH2, CH3, CH4 domains; by "fragment any fragment that contains a complete binding site for a particular antigen, selected from the fragments Fv, scFv, Fab, Fab ', F (ab') 2, and by "derivative of antibodies »
any antibody that may include one or more mutations, substitutions, deletions and / or additions of one or more amino acid residues, as well as multi-antibody specific and polyfunctional.
By "divalent or trivalent metal cation" or "metal cation"
hears any metallized cation having a degree of oxidation of +2 or +3 and more parculularly zinc, iron, copper, cadmium, cobalt, nickel, manganese, gallium, the gadolinium, selenium, gold, platinum or palladium or an analogue.
Preferably, these metal cations are zinc, iron, copper or cadmium, and particularly advantageously it is zinc. By "analogous"
we hear any free or bound ion that can bind at the Fc region of the antibodies, and more particularly to the residues His 310, His 435, the residues Asn 434 and His (Rabat numbering) can also participate in fixing.
A second object of the invention relates to a method for potentiating the activity . of the antibodies via the Fc region, comprising a step to add an appropriate amount of at least one metal cation in the system organic producing antibodies or in a solution comprising antibodies before and or after purification or in the preservation solution or in the formulation final in the form of an injectable solution of the antibodies.
Advantageously, these metal cations are zznc, iron, copper or cadmium.
The term "biological system" refers to cell lines, plants or animals non-human transgenic. Among the cells, one can choose cells from of cell lines, transfected with a vector containing the gene coding for Said antibody, for example eukaryotic or prokaryotic cells, in particular of the cells of mammals, insects, plants, bacteria or yeasts.
More specifically, one can use rat myeloma cells such as YB2 / 0.
It is also possible to use CHO cells, in particular CHO-K, CHO-LeclO, CHO-Lecl, CHO Pro-5, CHO dhfr- or other paxmi Wil-2 cell lines, Jurkat, Vero, Molt-4, COS-7, 293-HEK, K6H6, NSO, SP2 / O-Ag 14 and P3X63Ag8.653, PERCE or BHK.
Preferably, a molar concentration of zinc is added to the less equal at the molar concentration of antibodies.
Optionally, a molar concentration of zinc at least equal to 2 is added times, and preferably 3 times or 4 times the molar concentration of antibodies:
. Alternatively, a molar concentration of metal cations is added to improve the functional efficiency of the antibody ~ of at least 25%
preferably 50% or 60%, 70%, 80%, 100%, and preferentially 200 or 300%.
Advantageously, the. There are different forms of metallurgical cations.
In one particular aspect of the invention, the zinc ions can be in the form acetate zinc; zinc bromide, zinc hydrochloride, zinc chloride, citrate of w zinc, zinc gluconate; of zinc hydroxycarbonate, zinc iodide, L-lactate zinc, zinc nitrate, zinc stearate, or zinc sulphate.
Another subject of the invention relates to class IgG3 antibodies, and more particularly the G3m (b) and G3m (g) allotypes, having a binding site pbur a metal cation comprising the residues His 310 and His 435 on its region Fc created by molecular engineering.
In the context of the invention, we have shown that cations metal bind to the IgG1 class antibody at a site comprising the residues.His 310 and His 435, the residues His 433 and Asn 434 may also be involved in this fixation. However, the IgG3 clone antibodies of allotype G3m (b) or G3m (g) do not behave not such a fixation site in the natural state. Indeed, they have a arginine residues (Arg) in position 435. Thus, in the context of the invention, we create, by mutagenesis directed, class IgG3 antibodies with cation binding metal improved compared to unmodified antibodies, by creating a site of binding involving a His 435 residue in substitution for the Arg 435 residue.
Thus, these IgG3 antibodies have a binding site for a cation metallic, zinc, iron, copper, cadmium, cobalt, nickel, manganese, the gallium, selenium, gold, platinum or palladium, including residues His 310 and His 435, and advantageously also including the residues Asn 434 and / or His 433.
Advantageously, at least one of these histidine residues is replaced by a to less residues selected from cysteine, aspartic acid and acid glutamic.
Indeed, these residues also have the capacity to fix such metal.
Preferably, the metal cation is zinc, iron, copper or cadmium, and preferably zinc. ~.
In a particular aspect of the invention, the antibody has a cation metal;. and ~
more particularly a zinc atone, linked to one or more residues of the region Fc. v Particularly advantageously, this IgG3 antibody has a ability to improved FcyRIII binding and functional activity compared to antibody native.
An object of the invention is thus the use of the IgG3 antibody possessing a site of fixation for a metal cation previously described for the preparation a drug for treating a condition such as hemolytic disease of neonate, a viral, bacterial or parasitic pathology, a pathology related to pathogens or toxins derived, listed as being particularly dangerous in the case of bioterrorism (classification of Centers for Disease Control, CDC) including anthrax (Bacillus aiathf ° acis), botulism (Clostridium botulium), the plague (Yef siuia pestis), smallpox (Variola major), tularemia (Fyahcisella tula ~ ehsis), viral haemorrhagic fevers (related to filoviruses -Ebola, Marburg and arenavirus -Lassa, Machupo), the epsilon toxin of Clost ~ idiuyrz pef ° fi ~ ingehs, the brucellosis (B ~~ úcella species), melioidosis (Bm ° kholdey ° ia mallei), castor toxin (Ricinus com ~ zuhis).
Another subject of the invention is a pharmaceutical composition of antibodies therapeutics comprising divalent or trivalent cations and at least one excipient.
Preferably, these metal cations are zinc, iron, copper where the cadmium, or a mixture of several of them. In particular advantageously, zinc is chosen, which may be in the form of zinc acetate, bromide of zinc, zinc hydrochloride, zinc chloride, zinc citrate, zinc gluconate zinc, zinc hydroxycarbonate, zinc iodide, zinc L-lactate, zinc nitrate zinc, zinc stearate, or zinc sulphate. .
In a particular aspect, the .bodies contained in the composition have a metal cation according to the invention linked to the residues His 310 and His 435, the His residues 433 and Asn 434 can also be used for fixation. .
In another particular aspect of the invention, the antibodies of composition pharmaceutical have engineered IgG3 class antibodies molecular previously described. In another preferred aspect of the invention, these are IgG
human or having a human Fc region.
Thus, the presence of such metal cations in the composition improves the fixation Therapeutic antibodies it contains to its receptors, in particular the Fc ~ yRIII, the composition thus having a better therapeutic activity.
Another subject of the invention is a pharmaceutical composition in which at less than 50%, 60%, 70%, 80%, 90%, or 99% of antibodies have a cation divalent or trivalent metal, in particular a zinc ion, bound to a site finding in the region Fc. It can be preferentially the fixing site including amino acids His 310 and His 435, the amino acid Asn 434 and / or His 433 being likely to participate in the fixation. In another aspect of the invention, it can this is the binding site comprising amino acids His 268 and His 285.
In one Another aspect of the invention, the two sites may be occupied by a cation métalliquetel described in the invention.
The metal cation is preferably one of those already mentioned previously, zinc, iron, copper or cadmium, or a mixture of several of they, possibly in the forms already mentioned.
Another subject of the invention is a solution comprising an antibody monoclonal or monoclonal antibodies and an appropriate amount of metal cations divalent or trivalents, in particular zinc ions at least equal to the concentration molar in antibody, this solution being adapted for one injection intravenous cutaneous or intramuscular.
Metallic cations can. to be divalent metal cation tbut or trivalent, . zinc, iron, copper, cadmium, cobalt, nickel, manganese, gallium, selenium, gold, platinum or palladium or similar.
Preferably, the cation is a zinc ion or zinc acetate, zinc bromide, zinc hydrochloride, zinc chloride, zinc citrate, gluconate zinc, zinc hydroxycarbonate, zinc iodide, zinc L-lactate, nitrate.
zinc, zinc stearate, or zinc sulphate.
Another object of the invention is the use of zinç ions to improve the crystallization of therapeutic antibodies, and more particularly of IgG
monoclonal, zinc ions stabilizing the Fc region of the antibodies. The addition of cations divalent and more particularly zinc, significantly increases the solubility of Fc IgGs, in favoring crystalline contacts which facilitates obtaining crystals necessary for structural studies.
Another object of the invention is to provide a test for evaluating effectiveness of an antibody comprising the study of the 3D conformation, in particular the domain involving the residues His 310, His 435, 433 and / or Asn 434 of the Fc region such as shown in Figure 1 or 2 or a dosage of the zinc content said antibodies, the presence of zinc being an indication of the efficacy of the antibody.
Another subject of the invention relates to Lin antibody having one to less of his His 310 and His 435 residues modified.
In a particular aspect of the invention, the modification of the antibody is a mutation, in particular a substitution with an amino acid having a weak affinity for divalent or trivalent metal cations. For example, the residue His 310 and / or residue 435 may be substituted with a lysine residue, alanine, glycine, valine, leprin, isoleicin, proline, methionine, tr ~ ptophane, phenylalanine, serine or threonine.
In a particularly advantageous manner, the residues His 310 and His 435 are both substituted with lysine residues.
These mutants can be made from any antibody possessing the state "Natural", that is to say, not mutated, a binding site for cations metal include the residues His 310 and His 435. It can be in particular IgG1, IgG3 allotypes G3m (s) or G3m (st), IgG2 or IgG4.
These mutants possess a decreased activation capacity of FcγRIII.
significant.
In a second embodiment, the modification can be performed ~ pax the DEPC
(diethyl pyrocarbonate), a histidine modifying agent.
Advantageously, these antibodies are IgGI, or in any case antibody possessing in the "natural" state, that is to say not mutated, a fixation site for cations metal comprising the residues His 310 and His 435.
These antibodies have a decreased functional activity compared to even unmodified antibody. However, they retain their capacity to set antigen and Fc ~ yRIII.
Thus, the invention provides antibodies having low ADCC activity, with interest in therapy to replace IgG4, or to prevent the rejects of transplant. The double mutant antibodies can also be used according to the invention as anti-tetanus, anti-diphtheria or against agents pathogenes or derived toxins listed as particularly dangerous in of bioterrorism (Classification of Centers for Disease Control, CDC), anthrax (Bacillus anth ~ acis), botulism (Clost ~~ idium botulium), plague (Yersinia pastis), smallpox (Variola major), tularemia (F ~ ancisella tularensis), fevers viral hemorrhagic diseases (filovirus-related -Ebola, Marburg and aizx arenavirus -Lassa Machupb), the epsilon toxin of Clostridium perf ~ ingeries, the: brucellosis (B ~ ucella speciës), melioidose (Bu ~ kholde ~ ia mallei), castor toxin (Ricinus communis).
Thus, another subject of the invention relates to the use of antibodies modified as described above, and therefore having a weakened functional activity, for the preparation a drug for the prevention of transplant rejection or treatment a pathology selected from tetanus, diphtheria, or caused by an agent pathogenic derived toxin, listed as being particularly dangerous in cases of bioterrorism - (classification of Canters for Disease Control, CDC), especially anthrax (Bacillus anthracis), botulism (Clostridium botulium), plague (Yersinia pastis), smallpox (Variola major), tularemia (FYancisella tulaf ° ensis), fevers viral haemorrhagic infections (related to filoviruses -Ebola, Marburg and arenavirus.-Lassa . Machupo), epsilovi toxin of Closts ~ idium perf ~ ingefzs, brucellosis (BYUCeIIa species), melioidosis (BuYkholdeYia mallei), castor toxin (Ricinus communis).
Finally, antibodies with impaired functional activity such as previously described are also used for the preparation of a medicament replacement of IgG4.
By way of example, the antibodies described in the invention, in particular the antibody possessing improved functional activity due to metal cations, or the modified antibodies whose functional activity is impaired, or compositions or solutions of the invention, may be chosen from anti-Ep-CAM, anti-KIR3DL2, anti-EGFR, anti-VEGFR, anti HER1, anti HER2, anti GD, anti GD2, anti GD3, anti-CD20, anti CD-23, anti CD-25, anti-CD30, anti-CD33, anti-CD38, anti CD44, anti CD52, anti CA125 and anti ProteinC, anti-HLA-DR, anti-virals:
HBV
HCV, H1V and RSV, and more particularly by ~ ni antibodies Table I ci-after Table I:
Name and markerSocit target indication .
commercial of antibody Edrecolomab Centocor anti Colorectal Ep-CAMcancer panorex Rituximab Idec anti CD20 B cell lymphoma RITUXAN ~ Licensi thrombocytopenia purpura Genentech /
Hoffinan rock Trastuzumab Cienentech anti HER2 ovarian cancer HERCEPTIN Licensi Hoffinari the rock / Immunogn Palivizumab Medimmune. RSV
SYNAGIS Licensi Abott Alemtuzumab BTG anti CD52 leukemia CAMPATH Licensi Schering ibritumomab IDEC anti CD20 NHL
tiuxetan Licensi Schering ZEVALIN
Cetuximab Merck / BMS / anti EGFR cancers IMC-C225 Imclone Bevacizumab Genentech / anti VEGFR cancers ATjASTIN Hoffinan the rock WO 2005/040216. PCT / FR2004 / 002687 Epratuzumab hnmumedicsl anti CD22 cancers:
~
-Amgeri ~ non-Hogkinian lyinph Hu M195Mab Design Protein Anti CD33 cancrs Labs MDX-210 Tmmuno-DesignedND Cancers molecules BEC2 Imclone anti GD3 cancers Mitumomab Oregovomab Altarex anti CA125 ovarian cancer OYAREX
Ecromeximab Kyowa-Hakko anti GD3 malignant melanoma ABX-EGF Abgenix EGF cancers MDXOlO Medarex Anti CD4R Cancers XTL 002 XTL ND anti-viral: HCV
biopharmaceuticals H11 SCFV viventia biotechND cancers 4B5 viventia biotechanti GD2 Cancers XTL 001 XTL ND anti-viral: HBV
biopharmaceuticals MDX-070 MEDAREX Anti-PSMA Prostate Cancer TNX-901 TANOX ariti IgE Allergies IDEC-114 IDEC inhibitionl ~ non-Hodgkin's nphoma ProteinC ~.
For example, finventiôn is about a solution in the form of a concentrated at an antibody concentration ranging from 0.1 to 50 μg / ml, or 1. at 25 mg / ml that can be formulated for a 1V administration. The selected can contain titrated example: 9.0 mg / mL sodium chloride, 7; 35 mg / mL sodium citrate dihydrate, and 0.7 mg / mL
polysorbate-80 in sterile water. In this solute or concentrate, we add in addition to 0.1 to 50 mg / ml, or 1 to 20 mg / ml of a cation, the concentration of said cation being equal at 1, 2, 3, 4 or 5 times the antibody concentration is 0.1 to 250 mglmL
or from 1 to.
100 mg / mL. This concentrate can be injected into a pocket of serum or liquid from infusion so as to obtain the desired dose, while now the same cation content relative to the antibody content.
The invention also relates to a freeze-dried powder, sterile in a container and that can. be reconstituted with sterile water just before injection including the appropriate amount of antibody and the amount of said cation according to 1 ~ 2, 3, 4 or 5 times higher than that of (antibodies.
This powder could be reconstituted for IV or subcutaneous injection. In this latest. In this case, the powder may comprise from 10 to 500 mg of antibody and quantity said cation according to (invention 1, 2, 3, 4 or 5 times higher than that of (antibodies, either for example from 10 to 500 mg. We can add the excipients such as sucrose, a amino acid, polysorbate:
It should be understood that (invention relates preferentially to the compositions described above in which the cation content is at least equal to the content antibodies, but also aims at any composition in which we add a quantity cation (zinc, iron, copper, cadmium, or an analogue, or a mixture thereof) lower than said equimolar amount, for example from 0.1 to 0.99 molar (0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5, 0.6, 0.7, 0.8 or 0.9 molar), but still sufficient to improve from less 10%
or 25%, or 50% or even 100% (efficiency and / ~ u the functional properties of (Antibodies.
Other aspects and advantages of the invention will be described in the examples who:
follow, which should be considered illustrative and do not limit the extent of the invention.
In order to acquire new data on the structure-function relationships of the region Fc antibodies, the applicant crystallized the Fc fragments of the antibody monoclonal EMABS, expressed in the YB2 / 0 cell line, in the presence or absence of zinc.
X-ray diffraction (X-ray) study of the crystallized Fc fragments summer business ; part of this study is presented in examples 1 and 2 that follow.
Example 3 shows the effect of a chemical modification of histidines on Fc activity and Example 4 the effect of a double mutation of histidine residues 310 and 43 5 in lysines.
Description of the figures Figure 1: Schematic showing the position of Zn2 + ions in the vicinity of the fragment Fc of the monoclonal antibody EMABS (21 ~).
Figure Z: Detail of the electronic density map near residues of histidine 310 and 435.
Figure 3: Superimposition of the structures of the Fc fragment of the EMABS antibody in absence (gray) and presence (white) of Zn2 + ion.
Figure 4: Attachment of DEPC-modified EMABS antibody to the receptor FcyRQI.
This figure shows on the abscissa, the fixation of the antibodies on the red blood cells and in ordered the fixation of CD 16 (FcγRIII) present on the surface of the cells Jurkat CD 16.
r.
(~) control antibody AD1; (~) EMABS witness; (1) EMABS FNR; (~) EMABS
Flt.
Figure 5: Activation by EMABS antibody modified by the DEPC of the receptor FcyRIII present on the Jurkat CD 16 cells.
This figure represents the quantity, expressed in μg / ml, of IL-2 secreted by cells Jurkat CD16 whose CD16 receptor was activated by the control EMABS antibody (~) and the separated fractions on protein A after modification of the EMABS antibody speak DEPC: FNR (~), FR (~).
Figure 6: .Effect of the DEPC modification on the ADCC activity of antibody monoclonal EMABS.
This figure represents. the percentage of lysis of Rh (D +) red blood cells induced by the monoclonal antibody EMABS control and by the two fractions FR and FNR, separated sure Protein A Sepharose gel, DEPC modified antibody.
FIG. 7: Measurement of the Fc binding of the double mutated anti-bodies His310-435Lys to the FcyRIII receptor. The antibodies 1C7, 2H11, 4G5 and 4H10 are the antibodies transferred.
The antibodies 16D11, 1165 and 6H11 are not mutated. This figure presents in abscissa, fixation of antibodies on red blood cells and on the ordinate fixation from CD16 (FcyRIII) present on the surface of Jurkat CD 16 cells. The figure groups together the results obtained with the supernatants containing the doubly mutated antibodies (curves in solid line) and those containing non-mutated antibodies ( dotted line).
Figure 8: Study of the IL-2 secretion induced by monoclonal antibodies anti-Rh (D) mutated or not. This figure represents the percentage of IL-2 secreted by of the Native anti-Rh (D) monoclonal antibodies (n = 3 clones) and carrying the double mutation His310-435Lys (n = 4 clones). The results are expressed as a percentage report to a purified control antibody, EMABS.
Figure 9: Influence of Imidazole on the Fixation of the Monoclonal Antibody EMABS
to the CD16 receptor (Fc ~ yRIl1).
Figure 10: Flow cytometry study of antibody binding the double His310-435Lys mutation at the CD16 receptor EXAMPLES
In order to acquire new data on the structure-function relationships of the region Fc antibodies, the applicant crystallized the Fc fragments of the antibody monoclonal EMABS, expressed in the YB2 / 0 cell line, in the presence or absence of zinc.
X-ray diffraction study of crystallized Fc fragments was business ;
part of this study is presented in the following examples 1 and 2.
The example 3 shows the effect of a chemical modification of histidines on Fc activity.
and the example ~ 4 the effect of a double.mutatiori of histidine residues 310 and 435 in lysines. , Monoclonal antibody EMABS. It is a human IgG1 (K), directed against the Rh (D) antigen, produced in the YB2 / 0 cell line (rat myeloma, ATCC line No. CRT., 1662) adapted to culture in serum-free medium.
- Purification: EMABS was purified by affinity chromatography on Sepharose protein A:
- Glycan analysis: by HPCE-LIF, it has been shown that the structure majority is an oligosaccharide of biantenné type, containing about 25% of fucose.
- Biological activity: the ADCC activity of EMABS is at least equal to that of the reference anti-Rh (D) polyclonal antibody, WinRho (Cangene).
Preparation of fragmént Fc = Hydrolysis conditions: The purified antibody EMäBS is diálysé one night against 50 mM Tris buffer, pH 8.0. The antibody solution, adjusted to 50 mM CaCl2 and 5 mM cysteine is incubated 30 min. at. 37 ° C before adding the solution trypsin (1 mg / ml) in an enzyrne / substrate ratio of 1/25. After 5 hours. incubation at 37 ° C, the reaction is stopped by the addition of düsopropyl fluorophosphate (1 mM
final).
The hydrolyzate is dialyzed overnight against 50 mM flnida.zole buffer, pH 7.8.
10 - Purification of the Fc fragment: The dialysed hydrolyzate is brought into contact with Affarose-protein L at a rate of 1 ml of gel for. 3.6 mg of antibody. After
4 h.
d'incubation à température ambiante sous agitation,.le gel est monté en colonne et lavé
par le tampon Imidazole 50 mM, pH 7,8. L'effluent et le tampon de lavage qui contiennent les fragments Fc sont réunis, concentrés pax centrifugation sur Vivaspin 20 15 en utilisant les conditions décrites par le fabricant.
EXEMPLE 1. Présence d'ions zinc liés aux fragments Fc.
Cristallogénése : Après mise au point, les conditions de cristallisation retenues 20 sont les suivantes : la solution de fragments Fc, à 2 mg/ml en tampon imidazole 50 mM, pH 7.8, est amenée à 10% de monométhyl polyéthylène glycol 5 000, 100 mM
cacodylate de sodium, 0.1 mM chlorure de zinc, pH 5,1 par diffusion de vapeur en gouttes assies à 17°C.
Collection des données de diffraction et détermination de la structure : Le cristal obtenu est soumis aux RX à l'ESRF de Grenoble et les informations collectées sont traitées par les programmes DENZO et SCALEPACK (Otwinowski and Minor, 1997).
La~structure est résolue et affinée à 2.3 ~ (Fig.l) en.utilisant la suite des programmes CCP4. . ~ . .
Résultats : Ce cristal du fragment Fc de EMABS appartient au groupe spatial avec un fragment par unité asymétrique, Les paramètres de maille sont les suivants : a =
~. 50.2ä;b= 147,.71; c=75.6t~; a=(3=y=90°.
La structure tridimensionnelle (schématisée à la figure 1) permet de mettre en évidence la présence d'ions zinc (en blanc) près des domaines CH2 et CH3 (en gris). La carte de densité électronique présentée figure 2 montre l'ion zinc lié aux résidus d'histidine 310 (CH2) et 435 (CH3). Un autre ion zinc est lié à l'histidine 268 d'un Fc et à
l'histidine 285 d'un Fc symétrique. Le troisième se trouve près de l'histidine 433.
EXEMPLE 2. Effet des cations métalliques sur la conformation des fragments Fc.
Dans cet exemple, les cristaux obtenus appartiennent tous au groupe d'espace P2(1)2(1)2(1) avec deux châînes par unité asymétrique et on caractérise l'ouverture des Fc par les distances entre les résidus de proline 329 des chaînes A et B et entre les résidus de mannose 4 des chaînes A et B.
Cristallisés en absence d'ion métallique, les fragments Fc de l'anticorps EMABS sont caractérisés par une distance entre prolines 329 de 32,53 ~ et une distance entre mannoses 4 de 17,61 1~. Lorsque l'on ajoute un ion métallique à la solution de cristallisation (voir Tableau I~, ces distances caractéristiques augmentent.
Tableau II : Principales caractéristiques des cristaux du fragment Fc de l'anticorps monoclonal EMABS dans le groûpe d'espaçe P2(1)2(1)2(1).
Code Mtal dans "' ~ D Pro D Man 801.
RsolutionParamtres de maille Cristal. 329 4 (A) (~. ~gles=90~) (A) (A) Fcl Non 48,982 75,498 nat 3,29 ~ 32,53 17,61 ... 145,032 Fcl 0,3mM ZnCl2 49,716 75,516 Zn - 3,2 37,12 20,34 150,298 Fc1-Gd 2mM GdCl3 49,816 76,068 2,7 ~ 37,4 20,75 151,156 Fcl 0,3mM 49,462 74,985 Cu - 3,15 35,87 19,79 Cu++Ac 148,928 Fcl O,imM Fe3+ 49,056 74,937 Fe - 3,475 35,78 19,61 148,148 Fcl 0,2mM CdCl2 49,253 75,079 Cd 2,894 36,18 19,2 147,93 La figure 3 montre la superposition des chaînes principales des structures ôbtenues en absence (en gris) et en présence de zinc (blanc) dans la solution de cristallisation.
L'addition d'un sel métallique à la solution de Fc favorise donc une conformation dite ouverte, conformation proche de celle du Fc lié au récepteur FcyRIII.
EXEMPLE 3 : Modification des résidus histidine par le DEPC
Le diéthylpyrocarbonate (DEPC) est un réactif qui a été très utilisé pour modifier et étudier le rôle des résidus d'histidine présents dans les protéines (Miles, 1977). Firan et al.(2001) ônt montré que des IgG1 humaines iraitées par le DEPC perdaient leur capacité à fixer le récepteur:FcRn qui est impliqué dans le transfert des IgG
maternelles vers le foetus. Le DEPC agit pâr substitûtion d'un ,groupement nitrogène présént sur le cycle imidazole de l'histidine, transformant ainsi le résidu d'histidiné en 3-carboéthôxy histidine.
1. Modification par le DEPC
L'anticorps monoclonal EMABS, dialysé contre du tampon acétate de sodium O,1M, pH 6,0, est mis en contact avec du DEPC à raison de 70 ~.g de DEPC/mg d'IgG.
Après 30 minutes d'incubation à température ambiante, la réaction est arrêtée par l'addition d'imidazole (0,2 rng/ml final).
Après dessalage en tampon phosphate de sodium 20 mM, NaCl 50 mM, pH 7,2, l'anticorps monoclonal modifié est fractionné par chromatographie d'affinité
sur Sépharose-protéine A. Une fraction de l'anticorps monoclonal modifié n'est pas retenue sur le gel d'affinité et constitue la fraction non retenue ou FNR. La fraction retenue sur le gel et appelée FR est éluée par du tampon Glycine-HCl O,1M, pH
2,8.
Les deux fractions ainsi obtenues sont dialysées contre du tampon Phosphate de sodium 20mM, NaCl 50 mM, pH 7,2; concentrées sur Vivaspin selon les recommandations du fabricant et conservées à 4°C pendant 15 jours maximum.
L'anticorps témoin, qui nous sert de référence, a subi le méme traitement hormis le DEPC qui a été remplacé par un volume identique d'éthanol.
2. Mesure de la fixation du Fc des anticorps au récepteur FcyRIII par test CFC.
Afin de vérifier l'intégrité des anticorps traités par le DEPC, les anticorps sont soumis à un test, appelé CFC, qui estime la capacité des anticorps à fixer, dans un premier .
temps, l'antigëne contre lequel ils sont dirigés puis, dans un second temps, le récepteur ~FcyRIII (CD16) exprimé à la surface de la lignée cellulaire Jurkat CD16.
Les puits d'une plaque de microtitratiôn sont recouverts par des hématies Rh(D+) papaïnées. Les antiçorps anti-Rh(D), dilués à des concentrations variant de 7,8 à 500 ng/ml en IMDM + 2,5% sérum de veau foetal (SVF) sont déposés en parallèle sur deux plaques de microtitration préalablement « coatées » par les hématies. Après 90 min.
d'incubatidn à 37°C, les puits sont lavés.
L'une des plaques, utilisée pour détecter les IgG fixées sur les hématies, est incubée en présence d'un anticorps de souris anti-Fcy humain marqué à la phosphatase alkaline (Jackson ZrnmunoResearch Laboratories).
Dans l'autre plaque, les cellules Jurkat CD16, diluées à la concentration de 2 x 106 cellules/ml en IMDM + 1% SVF, sont ajoutées. Après 15 min. de contact à
37°C, la plaque est centrifugée en augmentant progressivement la vitesse et la durée de centrifugation jusqu'à négatives les témoins négatifs. On entend par témoin négatif des anticorps qui se fixent aux hématies immobilisées dans les puits de la plaque de microtitration mais qui ne fixent pas le récepteur FcyRIII présent à la surface des cellules Jurkat CD 16. Dans les puits contenant le témoin négatif, les cellules Jurkat CD16, après centrifugation, forment un amas au centre du puits alors que dans les puits contenant un témoin positif, les cellules Jurkat, CD 16 tapissent le puits.
Après centrifugation, la lecture des puits est effectuée et un score est donné
en fonction de l'étalement de cellules Jurkat CD16 dans le puits.
3. Mesure de l'activation du récepteur FcyRIII
Le test d'activation des cellules Jurkat CD16 mesure la sécrétion de l'interleukine-2 (IL-2) induite par la fixation du Fc des anticorps sur le récepteur FcyRIII
(CD16) après liaison du Fab à son antigène, présent sur la cellule cible. Le taux d'IL,-2 sécrétée par les cellules Jurkat CD 16 est proportionnel à l' activation du récepteur CD
16.
Dans une plaque de microtitration de 96 puits, on dépose successivement 50 ~.1 de dilutions d'anticorps, 50 ~,1 d'une suspension d'hématies à 6.105/ml, 50 ~,1 d'une .suspension de cellules Jurkat CD16 à 1.106/ml et 50 ~1 d'une solution de PMA
à 40 ng/ml. Toutes les dilutions ont été réalisées en milieu de culture I1VIDM
contenant 5%
de SVF.
Après 16 heures d'incubation à 37°C et 7% de C02, la plaque de microtitration est centrifugée et la quantité d'IL-2 contenue dans ,le surnageant est dosée par un kit com~.nerciâ.l (Duoset, R&b). Les taux d'IL-2 sécrétée sont exprimés en pg/ml.
Les résultats sont exprimés en % d'activation CD16, le taux d'IL-2 sécrétée en 4 hrs.
incubation at room temperature with stirring, the gel is mounted in column and washed with the 50 mM Imidazole buffer, pH 7.8. The effluent and wash buffer that contain the Fc fragments are brought together, concentrated pax centrifugation on Vivaspin 20 Using the conditions described by the manufacturer.
EXAMPLE 1 Presence of zinc ions bound to Fc fragments Crystallogenesis: After development, crystallization conditions deductions The following are the following: Fc fragment solution, 2 mg / ml buffer imidazole 50 mM, pH 7.8, is brought to 10% of monomethyl polyethylene glycol 5000, 100 mM
sodium cacodylate, 0.1 mM zinc chloride, pH 5.1 by vapor diffusion in drops at 17 ° C.
Collection of diffraction data and determination of structure: The obtained crystal is submitted to the RX at ESRF Grenoble and the information collected are treated by the DENZO and SCALEPACK programs (Otwinowski and Minor, 1997).
The structure is solved and refined to 2.3 ~ (Fig.l) using the following programs CCP4. . ~. .
Results: This EMABS Fc fragment crystal belongs to the space group with a fragment per asymmetric unit, the mesh parameters are the following:
~. 50.2, b = 147, 71; ~ c = 75.6t; a = (3 = y = 90 °.
The three-dimensional structure (shown schematically in Figure 1) makes it possible to evidence the presence of zinc ions (in white) near the CH2 and CH3 domains (in gray). The card of electron density shown in Figure 2 shows the zinc ion bound to residues histidine 310 (CH2) and 435 (CH3). Another zinc ion is linked to the histidine 268 of an Fc and to histidine 285 of a symmetrical Fc. The third is near histidine 433.
EXAMPLE 2 Effect of Metallic Cations on the Conformation of Fc Fragments In this example, the resulting crystals all belong to the space group P2 (1) 2 (1) 2 (1) with two strings per asymmetric unit and is characterized the opening of Fc by the distances between proline residues 329 of chains A and B and between the mannose residues 4 of chains A and B.
Crystallized in the absence of a metal ion, the Fc fragments of the antibody EMABS are characterized by a distance between prolines 329 of 32.53 ~ and a distance enter mannoses 4 of 17.61 1 ~. When adding a metal ion to the solution of crystallization (see Table I ~, these characteristic distances increase.
Table II: Main characteristics of crystals of the Fc fragment of antibody monoclonal EMABS in the spacing grove P2 (1) 2 (1) 2 (1).
Metal Code in "'~ D Pro D Man 801.
ResolutionParameters of stitch Crystal. 329 4 (A) (~. ~ Gles = 90 ~) (A) (A) Fcl No 48,982 75,498 nat 3.29 ~ 32.53 17.61 ... 145,032 0.3mM Fcl ZnCl2 49.716 75.516 Zn - 3.2 37.12 20.34 150.298 Fc1-Gd 2mM GdCl3 49.816 76.068 2.7 ~ 37.4 20.75 151.156 0.3mM Fcl 49.462 74.985 Cu - 3.15 35.87 19.79 Cu ++ Ac 148.928 Fcl O, imM Fe3 + 49.056 74.937 Fe - 3,475 35.78 19.61 148.148 Fcl 0.2mM CdCl2 49.253 75.079 CD
2,894 36.18 19.2 147,93 Figure 3 shows the superposition of the main strings of the structures held in absence (in gray) and in the presence of zinc (white) in the solution of crystallization.
The addition of a metal salt to the Fc solution therefore promotes a so-called conformation open, conformation close to that of Fc linked to FcγRIII receptor.
EXAMPLE 3 Modification of histidine residues by the DEPC
Diethylpyrocarbonate (DEPC) is a reagent that has been widely used for edit and to study the role of histidine residues in proteins (Miles, 1977). Firan and al (2001) showed that human IgG1 induced by DEPC lost their ability to bind the receptor: FcRn that is involved in IgG transfer nursery to the fetus. DEPC acts as a substitute for a nitrogen group present on the imidazole cycle of histidine, thus transforming the residue of histidine into 3-carboethoxy histidine.
1. Modification by the DEPC
The monoclonal antibody EMABS, dialyzed against 0.1M sodium acetate buffer, pH 6.0, is contacted with DEPC at 70 ~ .g of DEPC / mg of IgG.
After 30 minutes of incubation at room temperature, the reaction is stopped by the bill imidazole (0.2 mg / ml final).
After desalting in 20 mM sodium phosphate buffer, 50 mM NaCl, pH 7.2, the modified monoclonal antibody is fractionated by affinity chromatography sure Protein-Sepharose A. A fraction of the modified monoclonal antibody is not retained on the affinity gel and constitutes the non-retained fraction or FNR. The fraction retained on the gel and called FR is eluted with 0.1 M glycine-HCl buffer, pH
2.8.
The two fractions thus obtained are dialysed against phosphate buffer.
20mM sodium, 50mM NaCl, pH 7.2; concentrated on Vivaspin according to manufacturer's recommendations and stored at 4 ° C for 15 days maximum.
The control antibody, which serves as our reference, has undergone the same treatment except the DEPC which has been replaced by an identical volume of ethanol.
2. Measurement of Fc binding of antibodies to the receptor FcyRIII by CFC test.
In order to verify the integrity of antibodies treated with DEPC, antibodies are subject to a test, called CFC, which estimates the ability of antibodies to bind, in a first.
time, the antigen against which they are directed then, in a second step, the receiver ~ FcγRIII (CD16) expressed on the surface of the Jurkat CD16 cell line.
The wells of a microtitre plate are covered by red blood cells Rh (D +) papain. Anti-Rh (D) antibodies, diluted at concentrations varying from 7.8 to 500 ng / ml in IMDM + 2.5% fetal calf serum (FCS) are deposited in parallel on two microtiter plates previously "coated" with red blood cells. After 90 min.
incubated at 37 ° C, the wells are washed.
One of the plates, used to detect IgG attached to red blood cells, is incubated in presence of a phosphatase-labeled human anti-Fcy mouse antibody alkaline (Jackson ZrmunoResearch Laboratories).
In the other plate, the Jurkat CD16 cells, diluted at a concentration of 2 x 106 cells / ml in IMDM + 1% FCS, are added. After 15 min. from contact to 37 ° C, the plate is centrifuged by gradually increasing the speed and duration of centrifugation until negative the negative controls. Witness negative of antibodies that attach to immobilized red blood cells in plate wells of microtiter but do not fix the FcγRIII receptor present at the surface of Jurkat CD 16 cells. In wells containing the negative control, the Jurkat cells CD16, after centrifugation, form a cluster in the center of the well whereas in the wells containing a positive control, Jurkat cells, CD 16 lined the well.
After centrifugation, the wells are read and a score is given according to spreading Jurkat CD16 cells in the well.
3. Measurement of activation of the FcγRIII receptor The activation test of Jurkat CD16 cells measures the secretion of interleukin-2 (IL-2) induced by binding of Fc antibodies to the FcγRIII receptor (CD16) after Fab binding to its antigen, present on the target cell. IL level, -2 secreted by Jurkat CD 16 cells is proportional to activation of the CD receptor 16.
In a microtiter plate of 96 wells, one successively deposits 50 ~ .1 of Antibody dilutions, 50 ~, 1 of a suspension of red blood cells at 6.105 / ml, 50 ~, 1 a .suspension of Jurkat CD16 cells at 1.106 / ml and 50 ~ 1 of a PMA solution at 40 ng / ml. All dilutions were carried out in I1VIDM culture medium containing 5%
of SVF.
After 16 hours of incubation at 37 ° C. and 7% of CO 2, the microtitration is centrifuged and the amount of IL-2 contained in, the supernatant is assayed by a kit com ~ .nerciâ.l (Duoset, R & b). The levels of secreted IL-2 are expressed in μg / ml.
The results are expressed in% CD16 activation, the level of IL-2 secreted in
5 présence de l'anticorps monoclonal témoin étant considéré égal à 100%.
4. Mesure de l'activité ADCC
La technique ADCC (Antibody-Dependent Cell-mediated Cytotoxicity) permet d'évaluer la capacité des anticorps à induire la lyse des hématies Rh(D+), en présence 10 de cellules efFectrices (cellules mononucléées ou lymphocytes).
Brièvement, les hématies d'un concentré globulaire RhD(+) sont traitées à la papaïne (lmg/ml, 10 min à 37°C) puis lavées en NaCl 0,9%. Les cellules effectrices sont isolées à partir d'un pool d'au moins 3 buffy-coat, par centrifugation sur Ficoll (Amersham Siosciences), suivi d'une étape d'adhérence en présence de 25% de SVF, 15 de façon à obtenir un ratio lymphocytes/monocytes de l'ordre de 9. Dans une plaque de microtitration (96 puits) on dëpose par puits : 100 ~,l d'une dilution d'anticorps anti-Rh(D) purifié (de 9,3 à 150 ng/ml), 25 ~,l d'hématies papa,'inées Rh(D+) à 4 x 10~, 25 ~.l de cellules effectrices à 8 x .10' et 50 ~.l d'IgG polyvalentés (Tégéline, LFB) aux concentrations usuelles de 2 et 10 mg/ml. Les dilutions sont faites en IMDM
contenant 20 0,25% de SVF. Après incubation 1 nuit à 37°C, les plaques sont centrifugées, puis l'hémoglobine libérée dans le surnâgeant est mesurée par l'intermédiaire de son activité peroxydasique en présence d'un substrat chromogénique, le 2,7-diaminofluorène (DAF). Les résultats sont exprimés en pourcentage de lyse, 100%
correspondant à lâ lyse totale des hématies en NH4Cl (témoin 100%) et 0% au mélange 25 réactionnel sans anticorps (témoin 0%). La lyse spécifique est calculée en pourcentage selon la formule suivante (DO échantillon DO témoin 0%) X100 - % ADCC
DO témoin 100% - DO témoin 0%
WO 2005/04021The presence of the control monoclonal antibody being considered equal to 100%.
4. Measurement of ADCC activity The Antibody-Dependent Cell-mediated Cytotoxicity (ADCC) technique to evaluate the ability of antibodies to induce lysis of Rh (D +) red cells, by presence 10 cells efFectrices (mononuclear cells or lymphocytes).
Briefly, red blood cells of RhD (+) globular concentrate are treated at the papain (1 mg / ml, 10 min at 37 ° C.) and then washed with 0.9% NaCl. Cells effector are isolated from a pool of at least 3 buffy-coat, by centrifugation on Ficoll (Amersham Siosciences), followed by an adhesion step in the presence of 25% of FCS, To obtain a lymphocyte / monocyte ratio of the order of 9. In a plate of microtitration (96 wells) is deposited per well: 100 ~, 1 of a dilution anti-antibodies Rh (D) purified (from 9.3 to 150 ng / ml), 25 ~, 1 of red blood cells, Rh (D +) ines at 4 x 10 ~ 25 ~ .l effector cells at 8 x 10 'and 50 ~ .l polyvalent IgG (Tegeline, LFB) usual concentrations of 2 and 10 mg / ml. Dilutions are made in IMDM
containing 0.25% FCS. After incubation overnight at 37 ° C, the plates are centrifuged and then the hemoglobin released in the supernatant is measured via his peroxidase activity in the presence of a chromogenic substrate, the 2,7-diaminofluorene (DAF). The results are expressed as a percentage of lysis, 100%
corresponding to the total lysis of red blood cells to NH4Cl (100% control) and 0%
mixed Reaction without antibody (control 0%). The specific lysis is calculated in percentage according to the following formula (DO sample DO control 0%) X100 -% ADCC
100% control OD - 0% control OD
WO 2005/04021
6 PCT/FR2004/002687 Résultats Après traitement par le DEPC suivant les conditions décrités ci-dessus, environ 20%~
des molécules de l'anticorps monoclonal EMABS, constituant la fraction FNR, perdent leur capacité à se fixer au gel de Sépharose-protéine A. Sachant que l'histidine 435 est wn acide aminé essentiel de la fixation des IgG à la protéine A, il paraît vraisemblable que les IgG de la fraction FNR se différencient de la fraction FR, retenue sur le gel de Sépharose-protéine A, par la môdification du résidu His435.
Dans le test de mesure de la fixation au récepteur CD 16 en présence d' antigène, la fraction FNR présente les mêmes capacités que la fraction FR, capacités qui sont identiques à celles de l'anticorps témoin (Fig. 4). Dé plus, la fixation des différentes fractions de l'anticorps monoclonal EMABS, modifié ou non par le DEPC, est très supérieure à celle de l'anticorps monoclonal ADl, utilisé dans ce test comme témoin négatif. Ainsi, la modification des résidus d'histidine par le DEPC n'induit pas de changement dans la capacité de l'anticorps monoclonal EMABS à se fixer aux hématies Rh(D+) ni au récepteur CD 16 présent à la surface de la lignée cellulaire Jurkat CD 16.
Par contre, l'activité fonctionnelle de l'anticorps monoclonal EMABS modifié
par le DEPC est très diminuée. Ainsi, la sécrétion d'IL-2 de la lignée Jurkat CD16 induite par les fractions FR et FNR de l'anticorps monoclônal EMABS modifié par le DEPC
représente, respectivement, 42,8% et 19.5% de la sécrétion induite par l'anticorps témoin (Fig. 5). Les résultats de l'activité ADCC, exprimés en % de lyse réelle, montrent qué l'activité de la fraction FNR est inférieure à celle de la fraction FR
(Fig.6). D'autre part, la fraction FR présenté une diminution de l'activité
ADCC par rapport à l'anticorps.témoin, lorsque la quantité d'anticorps ajoutée dans le puits est plus faible (< 20 ng/ml) et que la quantité d'IgG polyvalentes est de 2,5 mg/ml.
En conclusion, bien qu'ayant conservé leur capacité à fixer l' antigène et le récepteur FcyRIII (CD16), les fractions d'anticorps rriorloclonal EMABS modifiées par le DEPC
présentent une activité forictionnellé (ADCC, inductiôn de la sécrétion de cytokine) diminuée. Cette diminution d'activité est plus marquée pour la fraction FNR, fraction qui présente vraisemblablement une modification du résidu His435.
Ces résultats montrent donc que la conservation du résidu His435 est.
importante pour la préservation de l'activité fonctionnelle des anticorps de typè IgGl.
EXEMPLE 4 : Activité fonctionnelle 'des anticorps portant la double mutation His310-435Lys La modification des résidus d'histidine pax un agent chimique (DEPC ou autre) ne permet de maîtriser ni le degré, ni la localisation des modifications. Ainsi, les deux résidus d'histidine, His310 et His435, qui jouent un rôle essentiel dans la liaison du cation zinc à l'interface CH2-CH3 des IgGl, sont substituées par des résidus de lysine, par mutagénèse dirigée.
1. Obtention d'un anticorps anti-Rh(D) portant la double ~ mutation His310-43 SLys Le vecteur d'expression contenant le cDNA codant la séquence d'acides aminés de la chaîne lourde de l'anticorps anti-Rh(D) EMABS, a servi de matrice pour la réalisation d'une double mutagénèse dirigée réalisée par PCR (« PCR-based site-directed mutagenesis »). Les quatre substitutions nucléotidiques suivantes ont été
introduites:
- ~ C1229A et C1301G pour le changement du résidu His338 en Lys (position 310 selon la numérotation de Kabat), soit CAC-i AAG;
- C1674A et C1676G pour la mutation du résidu His463 en Lys (position .435 selôn la nuinérotatiôn de Kabat), soit CAC ~
AAG. .
La séquence mutée a été séquencée et les résultats du séquençage sont donnés à
le Tableau III.
Tableau III : Séquences oligonucléotidique et polypeptidique de la chaîne lourde doublement mutée de l'anticorps monoclonal. EMABS
Les résidus His338 et His461 de la chaîne lourde de l'anticorps monoclonal EMABS, qui correspondent aux résidus His310 et His435 selon la numérotation de Kabat, ont été substitués par des résidus de lysine.
Séquence du cDNA du double mutant His310-435Lys (SEQ ID No 1) atggagtttgggctgagctgggttttcctcgttgctcttttaagaggtgtccagtgtcaggtgcagctggtggagtctg ggggag gcgtggtccagcctgggaggtccctgagactctcctgtacagcctctggattcaccttcaaaaactatgctatgcattg ggtcc gccaggctccagccaaggggctggagtgggtggcaactatatcatatgatggaaggaatatacaatatgcagactccgt gaa gggccgatgcaccttctccagagacaattctcaggacaccctgtatctgcaactgaacagcctcagaccggaggacacg gct gtgtattactgtgcgagacccgtaagaagccgatggctgcaattaggtcttgaagatgcttttcatatctggggccagg ggaca atggtcaccgtctcttcagcctccaccaagggcccatcggtcttccccctggcaccctcctccaagagcacctctgggg gcac agcggccctgggctgcctggtcaaggactacttccccgaaccggtgacggtgtcgtggaactcaggcgccctgaccagc gg cgtgcacaccttcccggctgtcctacagtcctcaggactctactccctcagcagcgiggtgaccgtgccctccagcagc ttgg gcacccagacctacatctgcaacgtgaatcacaagcccagcaacaccaaggtggacaagaaagttgagcccaaatcttg tg acaaaactcacacatgcccaccgtgcccagcacctgaactcctggggggaccgtcagtcttcctcttccccccaaaacc caa ggacaccctcatgatctcccggacccctgaggtcacatgcgtggtggtggacgtgagccacgaagaccctgaggtcaag ttc aactggtacgtggacggcgtggaggtgcataatgccaagacaaagccgcgggaggagcagtacaacagcacgtaccgtg t ggtcagcgtcctcaccgtcctgaagcaggactggctgaatggcaaggagtacaagtgcaaggtctccaacaaagccctc cc agcccccatcgagaaaaccatctccaaagccaaagggcagccccgagaaccacaggtgtacaccctgcccccatcccgg g atgagctgaccaagaaccaggtcagcctgacctgcctggtcaaaggcttctatcçcagcgacatcgccgtggagtggga ga gcaatgggcagccggagaacaactacaagaccacgcctcccgtgctggactccgacggctccttcttcctctacagcaa gct , WO 2005/040216 _ _ PCT/FR2004/002687 _ caçcgtggacaagagcaggtggcagcaggggaacgtcttctcatgctccgtgatgcatgaggctctgcacaacaagtac ac gcagaagagcctçtccctgtctccgggtâaatag Séquence peptidique du double mutant His310-H435Lys (SEQ ID No 2) S
351 VSNKALPAP~I EKTISKAKGQ PREPQVYTLP PSRDELTKNQ VSLTCLVKGF
1S 451 FSCSVMHEAL HNKYTQKSLS LSPGK*
Les cellules YB2/0, co-transfectées par électroporation avec le vecteur muté
EMABS-H-K338-K463-1 et le vecteur EMABS- dhfr-K- SpeI codant pour la chaine légère de _ l'anticorps EMABS; sont cultivées en milieu RPMI additionné de S% de SVF
dialysé, O,S% de 6418 et 25 nM de Méthotrexate (MTX). Les clones sécrétant les plus forts taux d'IgG humaines sont cultivés en plaques de 24 puits en milieu sans MTX.
Les _ surnageants, récoltés après 7 jours de culture, sont utilisés pour faire les essais décrits ci-dessous.
2S 2. Mesure de la fixation du Fc des anticorps au récepteur FcyRIII (CFC) Ce test est réalisé sur les surnageants de culture, le.taux d'IgG humaines contenu dans les surnageants.étant déterminé par dosage ELISA.
Les puits d'une plaque de microtitration sont recouverts par des. hématies Rh(D+) pâpa.'inées. Les surnageants de culture contenant les anticorps anti-Rh(D).
natifs ou mutés et dilués à des concentrations variant de 7,8 à S00 ng/ml en IIVVIDM +
2,S% SVF.
sont déposés en parallèle sur deux plaques de microtitration préalablement «
coatées »
par les hématies. Après,90, min. d'incubation à 37°C, les puits sont lavés.
L'une des plaques, utilisée pour détecter les IgG fixées sur les hématies, est incubée en présence d'un anticorps de souris anti-Fcy humain marqué à la phosphatâse alkaline 5 (Jackson T_m__munoReaserch Laboratories).
Dans l'autre plaque, les cellules Jurkat CD16 sont ajoutées après 15 min. de contact à
37°C, la plaque est centrifugée en augmentant progressivement la vitesse et la durée de centrifugation jusqu'à négativer les témoins négatifs. Après centrifugation, la lecture des puits est effectuée et un score est donné en fonction de l'étalement de cellules 10 Jurkat CD 16 dans le puits.
3. Mesure de l' activation du récepteur CD 16 Dans une plaque de microtitration de 96 puits, on dépose successivement 50 ~,1 de dilutions de surnageants de culture contenant des anticorps anti-.Rh(D) natifs ou mutés, 15 50 ~,l d'une suspension d'hématies à 6.105/ml, 50 ~,l d'une suspension de cellules Jurkat CD16 à 1.106/ml et 50 ~.1 d'une solution de PMA à 40 ng/ml. Toutes les dilutions ont été réalisées en milieu de culture IMDM contenant 5% de SVF.
Après 16 heures d'incubation à 37°C et 7% de C02, la plaque de microtitration est centrifugée et la quantité d'IL-2 contenûe dans le surnageant est dosée par un kit 20 commercial (Duoset, R&D). Les tain d'IL-2 sécrétés sont exprimés en pg/ml.
Les résultats sont exprimés en % d'activation CD16, le taux d'IL-2 sécrétée en présence de l'anticorps monoclonal témoin étant considéré égal à 100%
Les différents tests ont été réalisés sur les surnageants de culture contenant les 25 anticorps monoclonaux anti-Rh(D) mutés ou non. Les résultats du test CFC
montrent que la double mutation His310-435Lys n'induit pas de modification de la fixation de l'anticorps au récepteur FcyRIII, porté par la lignée cellulaire Jurkat CD16 (Fig.7).
Alôrs que le clone non muté 6H11 (témoin négatif) présente W e fixation au récepteur FcyRIiI diminuée, les clones mutés 1C7, 2H11, 4G5 et 4H10 fixent le récepteur FcyRIII de manière similaire aux clones non mutés 16D 11 et 11 GS (témoins positifs).
L'activation CD16 a été réalisée sur les surnageants de culture~de 4 clones mutés cités ci-dessus et de 3 clones non mutés (16D11, 1165 et 24G9). Les résultats représentent la moyenne (+/- écart-type) des taux d'IL-2 sécrétée par les cellules Jurkat CD16 en présence des clones non mutés (Natif et des clones mutés (His310-435Lys). Les anticorps mutés induisent une sécrétion d'IL-2 très dminuée par rapport à~celle induite par les anticorps natifs (Fig.B). Ainsi, les anticorps mutés présentent une baisse de capacité à activer le récepteur FcyRIll de 50%.
EXEMPLE 5 : Etude de la fixation des anticorps monoclonaux mutés ou non sur le récepteur FcyRIII par cytométrie en flux.
L'influence de l'imidazole ainsi que l'impact des mutations His310-435Lys sur la fixation des anticorps au récepteur FcyRIII (CD 16) présent à la surface des cellules Jurkat CD16 ont été évalués par cytométrie en flux.
1. Effet de l'imidazole 5.105 cellules Jurkat CD16 sont incubées pendant 30 minutes en présence de différentes concentrations de l'anticorps monoclonal EMABS dilué en tampon PBS
contenant 0,5% d'albumine bovine (SAB) ou en tampon PBS-SAB 0,5% supplémenté
à 50 mM en imidazole. Puis les cellules sont lavées en tampon PBS-SAB 0,5% et incubées en présence de F(ab')2 de souris anti-IgG humaine (H+L) marquée au FITC
(Jackson IlnmunoResearch Laboratories). Après 30 minutes d'incubation, les cellules sont lavées comme précédemment et la fixation de l'anticorps EMABS est analysée par cytométrie en flux en utilisant un FACScalibur 4CA et le programme Cell Quest Pro . (Becton Dickinson).
2. Fixâtion dé l'anticorps doublement muté
5.'105 cellules Jurkat CD16 sont incubées pendant 3.0 minutes dans du tampon PBS-SAB 0,5% en présençe de différentes concentrations. d'anticorps monoclonaûx contenus dans des surnageants de culture. Puis les cellules sont lavées en tampon PBS-SAB 0,5% et incubées en présence de F(ab')2 de souris anti-IgG humaine (H+L) marquée au FITC . Après 30 minutes d'incubation, les cellules sont lavées comme précédemment et la fixation dés anticorps est analysée par cytométrie en flux en utilisant un FACScalibur 4CA et le programme Cell Quest Pro (Becton Dickinson).
Les résultats de la fixation de l'anticorps EMABS. sur le récepteur CD16 (FcyRIIl) présent à la surface des cellules Jurkat CD16 en présence ou non d'imidazole sont présentés en Fig.9.
Ainsi, l'addition de 50 mM d'imidazole dans le tâmpon d'incubation de l'anticorps avec les cellules provoque une diminution de fixation de l'anticorps qui se traduit par une baisse significative du pourcentage de cellules marquées ; à la concentration en anticorps de 1,5 ~.g/ml, la présence d'imidazole induit une diminution de 40%
du nombre de cellules marquées.
L'imidazole est un réactif qui a la propriété de fixer les cations. Ainsi, en déprivant le milieu d'incubation des cations s par addition d'imidazole, la fixation de l'anticorps sur le récepteur CD 16 est diminué.
La fixation sur le récepteur FcyRIII des cellules Jurkat CD 16 de 3 anticorps monoclonaux contenus dans des surnageants de culture est présentée à la Fig.lO.
Ainsi, les résultats exprimés en pourcentage de cellules marquées en fonction de la quantité d'anticorps ajoutée, montrent que les anticorps 4G5 et 4H10, qui ont la double mutation His310-435Lys, se fixent significativement moins bién aux cellules Jurkat CD16 que le clone 2469, qui est l'anticorps témoin non muté.
Ces expériences illustrent bien qué la fixation des anticorps au récepteur CD16 est affectée par l'absence de cations: Inversement, la présence de cations devrait améliorer la fiXation de l'anticorps sûr le réceptei~i et de ce faitc améliorer l'activité cytotoxique de l'anticorps.
10 .
REFERENCES
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DEMANDES OU BREVETS VOLUMINEUX
LA PRÉSENTE PARTIE DE CETTE DEMANDE OU CE BREVETS
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CECI EST L,E TOME 1 DE 2 NOTE: Pour les tomes additionels, veillez contacter le Bureau Canadien des Brevets.
JUMBO APPLICATIONS / PATENTS
TRIS SECTION OF THE APPLICATION / PATENT CONTAINS MORE
THAN ONE VOLUME.
NOTE: For additional valumes please contact the Canadian Patent Office. 6 PCT / FR2004 / 002687 Results After treatment with DEPC following the conditions described above, about 20% ~
molecules of the monoclonal antibody EMABS, constituting the FNR fraction, lose their ability to bind to protein-A Sepharose gel.
histidine 435 is wn essential amino acid from the binding of IgG to protein A, it seems likely that the IgGs of the FNR fraction differ from the FR fraction, retained on the gel of Protein A Sepharose, by the fermentation of the residue His435.
In the test for measuring the attachment to the CD16 receptor in the presence of antigen, the fraction FNR has the same capabilities as the fraction FR, capacities which are identical to those of the control antibody (Fig. 4). Moreover, the fixing of different fractions of the EMABS monoclonal antibody, modified or not by DEPC, is very greater than that of the monoclonal antibody AD1, used in this test as witness negative. Thus, the modification of the histidine residues by the DEPC induces no change in the ability of the EMABS monoclonal antibody to bind to Rh (D +) red blood cells nor to the CD 16 receptor present on the surface of the cellular Jurkat CD 16.
On the other hand, the functional activity of the modified EMABS monoclonal antibody speak DEPC is very diminished. Thus, the secretion of IL-2 from the Jurkat CD16 line induced by the fractions FR and FNR of the DEPC-modified EMCDS monoclonal antibody represents, respectively, 42.8% and 19.5% of the secretion induced by antibody control (Fig. 5). The results of the ADCC activity, expressed as% lysis real show that the activity of the FNR fraction is lower than that of the FR fraction (Fig.6). On the other hand, the fraction FR presented a decrease in activity ADCC by compared to the antibody.Temoin, when the amount of antibody added in the well is lower (<20 ng / ml) and the amount of polyvalent IgG is 2.5 mg / ml.
In conclusion, although having retained their ability to fix antigen and receiver FcγRIII (CD16), the rriorloclonal antibody fractions EMABS modified by the DEPC
have a fornictionnelle activity (ADCC, inductio of the secretion of cytokine) decreased. This decrease in activity is more marked for the FNR fraction, fraction which presumably shows a modification of the His435 residue.
These results therefore show that the conservation of the His435 residue is.
important for preserving the functional activity of IgG1 type antibodies.
EXAMPLE 4: Functional Activity of Antibodies Bearing the Double Mutation His310-435Lys Modification of histidine residues pax a chemical agent (DEPC or other) born allows you to control neither the degree nor the location of the modifications. So, both Histidine residues, His310 and His435, which play a vital role in link from zinc cation at the CH2-CH3 interface of IgG1 are substituted by residues lysine, by directed mutagenesis.
1. Obtaining an anti-Rh (D) antibody carrying the double ~ mutation His310-43 SLys The expression vector containing the cDNA encoding the amino acid sequence of the heavy chain of the anti-Rh (D) antibody EMABS, served as a template for the production of a double directed mutagenesis performed by PCR ("PCR-based site-directed mutagenesis "). The following four nucleotide substitutions were introduced:
- ~ C1229A and C1301G for the change of the residue His338 in Lily (position 310 according to the Kabat numbering), ie CAC-i AAG;
C1674A and C1676G for the mutation of the residue His463 in Lys (position .435 selon the Kabat nuinérotatiôn), or CAC ~
AAG. .
The mutated sequence was sequenced and the results of the sequencing are given at the Table III.
Table III: Oligonucleotide and Polypeptide Chain Sequences heavy doubly mutated monoclonal antibody. EMABS
His338 and His461 residues of the heavy chain of the monoclonal antibody EMABS, which correspond to the residues His310 and His435 according to the Kabat numbering, have have been substituted with lysine residues.
His310-435Lys double mutant cDNA sequence (SEQ ID No 1) atggagtttgggctgagctgggttttcctcgttgctcttttaagaggtgtccagtgtcaggtgcagctggtggagtctg ggggag gcgtggtccagcctgggaggtccctgagactctcctgtacagcctctggattcaccttcaaaaactatgctatgcattg ggtcc gccaggctccagccaaggggctggagtgggtggcaactatatcatatgatggaaggaatatacaatatgcagactccgt gaa gggccgatgcaccttctccagagacaattctcaggacaccctgtatctgcaactgaacagcctcagaccggaggacacg gct gtgtattactgtgcgagacccgtaagaagccgatggctgcaattaggtcttgaagatgcttttcatatctggggccagg ggaca atggtcaccgtctcttcagcctccaccaagggcccatcggtcttccccctggcaccctcctccaagagcacctctgggg CCGA
agcggccctgggctgcctggtcaaggactacttccccgaaccggtgacggtgtcgtggaactcaggcgccctgaccagc gg cgtgcacaccttcccggctgtcctacagtcctcaggactctactccctcagcagcgiggtgaccgtgccctccagcagc ttgg gcacccagacctacatctgcaacgtgaatcacaagcccagcaacaccaaggtggacaagaaagttgagcccaaatcttg tg acaaaactcacacatgcccaccgtgcccagcacctgaactcctggggggaccgtcagtcttcctcttccccccaaaacc caa ggacaccctcatgatctcccggacccctgaggtcacatgcgtggtggtggacgtgagccacgaagaccctgaggtcaag ttc aactggtacgtggacggcgtggaggtgcataatgccaagacaaagccgcgggaggagcagtacaacagcacgtaccgtg t ggtcagcgtcctcaccgtcctgaagcaggactggctgaatggcaaggagtacaagtgcaaggtctccaacaaagccctc CC
agcccccatcgagaaaaccatctccaaagccaaagggcagccccgagaaccacaggtgtacaccctgcccccatcccgg boy Wut atgagctgaccaagaaccaggtcagcctgacctgcctggtcaaaggcttctatcçcagcgacatcgccgtggagtggga ga gcaatgggcagccggagaacaactacaagaccacgcctcccgtgctggactccgacggctccttcttcctctacagcaa gct, WO 2005/040216 _ _ PCT / FR2004 / 002687 _ caçcgtggacaagagcaggtggcagcaggggaacgtcttctcatgctccgtgatgcatgaggctctgcacaacaagtac ac gcagaagagcctçtccctgtctccgggtâaatag Peptide sequence of His310-H435Lys double mutant (SEQ ID No. 2) S
351 VSNKALPAP ~ I EKTISKAKGQ PREPQVYTLP PSRDELTKNQ VSLTCLVKGF
1S 451 FSCSVMHEAL HNKYTQKSLS LSPGK *
YB2 / 0 cells, co-transfected by electroporation with the mutated vector EMABS-H-K338-K463-1 and the EMABS-dhfr-K-SpeI vector encoding the light chain of the EMABS antibody; are cultured in RPMI medium supplemented with S% FCS
dialysis, 0.5% of 6418 and 25 nM of methotrexate (MTX). Clones secreting the most strong Human IgG levels are grown in 24-well plates in medium without MTX.
The _ supernatants, harvested after 7 days of culture, are used to make the described tests below.
2S 2. Measurement of Fc binding of antibodies to FcγRIII receptor (CFC) This test is carried out on the culture supernatants, the human IgG level.
contained in the supernatants being determined by ELISA assay.
The wells of a microtiter plate are covered by. erythrocytes Rh (D +) pâpa.'inées. Culture supernatants containing anti-Rh (D) antibodies.
native or mutated and diluted at concentrations ranging from 7.8 to 500 ng / ml in IIVVIDM +
2, S% SVF.
are deposited in parallel on two microtiter plates previously "
coated »
by the red blood cells. After, 90, min. incubation at 37 ° C, the wells are washed.
One of the plates, used to detect IgG attached to red blood cells, is incubated in presence of a phosphatase-labeled human anti-Fcy mouse antibody alkaline (Jackson TmmunoReaserch Laboratories).
In the other plate, Jurkat CD16 cells are added after 15 min. of contact to 37 ° C, the plate is centrifuged by progressively increasing the speed and duration of centrifugation until negativer negative controls. After centrifugation, reading wells is performed and a score is given according to the spread of cell 10 Jurkat CD 16 in the well.
3. Measurement of the activation of the CD receiver 16 In a microtiter plate of 96 wells, one successively deposited 50 ~, 1 of dilutions of culture supernatants containing native anti-Rh (D) antibodies or mutated, 50 ~, l of a suspension of red blood cells at 6.105 / ml, 50 ~, l of a suspension of cell Jurkat CD16 at 1.106 / ml and 50 ~ .1 of a PMA solution at 40 ng / ml. All the Dilutions were carried out in an IMDM culture medium containing 5% FCS.
After 16 hours of incubation at 37 ° C. and 7% of CO 2, the microtitration is centrifuged and the amount of IL-2 contained in the supernatant is assayed by a kit 20 commercial (Duoset, R & D). Secreted IL-2 taines are expressed in μg / ml.
The results are expressed in% CD16 activation, the level of IL-2 secreted in presence of the control monoclonal antibody being considered equal to 100%
The different tests were carried out on the culture supernatants containing the 25 monoclonal antibodies against Rh (D) mutated or not. The results of the CFC test show that the His310-435Lys double mutation does not induce a modification of the fixing of the antibody to the FcγRIII receptor carried by the Jurkat CD16 cell line (Fig.7).
Whereas the non-mutated clone 6H11 (negative control) has W e attachment to receiver Decreased FcγRIiI, mutated 1C7, 2H11, 4G5 and 4H10 clones secure the receptor FcγRIII similarly to non-mutated clones 16D 11 and 11 GS (controls positive).
The CD16 activation was carried out on culture supernatants of 4 clones mutated cities above and 3 unmutated clones (16D11, 1165 and 24G9). The results represent the mean (+/- standard deviation) of IL-2 levels secreted by Jurkat cells CD16 in presence of non-mutated clones (Native and mutated clones (His310-435Lys).
mutated antibodies induce IL-2 secretion very at ~ the induced one by native antibodies (Fig.B). Thus, the mutated antibodies have a drop of ability to activate the FcyRIll receptor by 50%.
EXAMPLE 5 Study of the binding of the monoclonal antibodies mutated or not on the FcyRIII receptor by flow cytometry.
The influence of imidazole and the impact of His310-435Lys mutations on the antibodies to the FcγRIII receptor (CD 16) present on the surface of the cell Jurkat CD16 were evaluated by flow cytometry.
1. Effect of imidazole 5.105 Jurkat CD16 cells are incubated for 30 minutes in the presence of different concentrations of the EMABS monoclonal antibody diluted in PBS buffer containing 0.5% bovine albumin (BSA) or 0.5% PBS-BSA buffer supplemented to 50 mM imidazole. The cells are then washed in 0.5% PBS-BSA buffer and incubated in the presence of mouse F (ab ') 2 anti-human IgG (H + L) labeled with FITC
(Jackson IlmunoResearch Laboratories). After 30 minutes of incubation, the cell are washed as before and the binding of the EMABS antibody is analyzed by flow cytometry using a FACScalibur 4CA and the Cell Quest program Pro . (Becton Dickinson) 2. Fixation of the double mutated antibody 5.'105 Jurkat CD16 cells are incubated for 3.0 minutes in buffer PBS
SAB 0.5% in the presence of different concentrations. monoclonal antibodies contained in culture supernatants. Then the cells are washed in PBS buffer 0.5% BSA and incubated in the presence of mouse F (ab ') 2 anti-human IgG (H + L) marked in FITC. After 30 minutes of incubation, the cells are washed as previously and antibody binding is analyzed by flow cytometry in using a FACScalibur 4CA and the Cell Quest Pro program (Becton Dickinson).
The results of the binding of the EMABS antibody. on the CD16 receiver (FcyRIIl) present on the surface of Jurkat CD16 cells with or without imidazole are presented in Fig.9.
Thus, the addition of 50 mM imidazole to the incubation stain of antibody with the cells causes a decrease in binding of the antibody that is translated by a significant decrease in the percentage of labeled cells; to the concentration in antibody of 1.5 ~ .g / ml, the presence of imidazole induces a 40% decrease of number of labeled cells.
Imidazole is a reagent that has the property of fixing the cations. So, in describing the cation incubation medium by addition of imidazole, fixation of antibody on the CD 16 receiver is decreased.
FcγRIII receptor binding of Jurkat CD16 cells of 3 antibodies monoclonals contained in culture supernatants is presented at Fig.lO.
Thus, the results expressed as a percentage of cells labeled according of the amount of antibody added, show that the 4G5 and 4H10 antibodies, which the double His310-435Lys mutation, bind significantly less to cells Jurkat CD16 than clone 2469, which is the unmutated control antibody.
These experiments illustrate that the binding of antibodies to the receptor CD16 is affected by the absence of cations: Conversely, the presence of cations should improve the fiXation of the antibody is safe and therefore better cytotoxic activity of the antibody.
10.
REFERENCES
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Maillard P, Lavergne JP, Siberil S, Faure G, Roohvand F, Petres S, Teillaud JL,.
Budkowska A. Fcgamma receptor-liter activity of hepatitis C virus core protein. (2004) J. Biol. Chem. 279, 2430-7.
Miles EW. Modification of histidyl residues in proteins by diethylpyrocarbonate.
~, (1977) Methods Enzymol. 47, 431-42.
Otwinowski Z, Minor W. Processing of X-ray diffraction data collected in oscillation mode. (1997) Methods Enzymol. 276, 307-26.
Sauer-Eriksson AE, Kleywegt GJ, Uhlen M, Jones TA. Crystal structure of the C2 Fragment of streptococcal protein G in complex with the Fc domain of human IgG.
(1995) Structure. 3, 265-78.
Shields RL, Namenuk AK, Hong I ~, Meng .YG, Rae J, Briggs J, Xie D, Lai J, Stadlen A, Li B, JA Fox, Presta LG. High resolution mappirig human IgG1 for Fc gamma R1, Fc gamma RII, Fc gamma RIII, and FcRn and design of IgGl Variants with Fc Gamma R (2001) J. Biol Chem. 276, 604).
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Claims (40)
fonctionnelle d'anticorps. 1. Use of divalent or trivalent metal cations to improve the activity functional antibody.
en ce que ledit site de fixation est créé par substitution de l'Arg 435 par l'His 435. An antibody according to any of claims 11 or 12, characterized in that said binding site is created by substitution of Arg 435 with His 435.
en ce que l'un au moins desdits résidus histidine est remplacé par un au moins des résidus choisis parmi la cystéine, l'acide aspartique et l'acide glutamique. Antibody according to one of Claims 11 to 12, characterized in that at least one of said histidine residues is replaced by at least one of selected residues among cysteine, aspartic acid and glutamic acid.
en ce qu'il possède un cation métallique divalent ou trivalent fixé sur ledit site de fixation. Antibody according to one of Claims 11 to 14, characterized in this that it has a divalent or trivalent metal cation attached to said site of fixation.
en ce que ledit cation est le zinc, le fer, le cuivre ou le cadmium. Antibody according to one of Claims 11 to 15, characterized in that said cation is zinc, iron, copper or cadmium.
en ce que .
l'allotype dudit anticorps est G3m(b) ou G3m(g). Antibody according to one of claims 11 to 16, characterized in that .
the allotype of said antibody is G3m (b) or G3m (g).
en ce qu'il possède une fixation au Fc.gamma.RIII améliorée et une activité
fonctionnelle améliorée par rapport à l'anticorps natif. Antibody according to one of claims 11 to 17, characterized in this that it has an improved Fc.gamma.RIII attachment and an activity improved functional compared to the native antibody.
18 pour la préparation d'un médicament pour le traitement des pathologies comme la maladie hémolytique du nouveau-né, une pathologie virale, bactérienne ou parasitaire, une pathologie liée aux agents pathogènes ou toxines dérivées, listés comme étant particulièrement dangereux dans les cas de bioterrorisme (classification des Centers for Disease Control, CDC), notamment l'anthrax (Bacillus anthracis), le botulisme (Clostridium botulium), la peste (Yersinia pestis), la variole (Variola major), la tularémie (Francisella tularensis), les fièvres hémorragiques virales (liées aux filovirus -Ebola, Marburg et aux arenavirus-Lassa, Machupo), la toxine epsilon de Clostridium perfringens, la brucellose (Brucella species), la melioidose (Burkholderia mallei), la toxine de ricin (Ricinus communis). 19. Use of the antibody according to any one of claims 11 to 18 for the preparation of a medicament for the treatment of pathologies such as sickness haemolytic disease of the newborn, a viral, bacterial or parasitic disease, a Pathology related to pathogens or toxins derived, listed as particularly dangerous in the case of bioterrorism (classification of Centers for Disease Control, CDC), including anthrax (Bacillus anthracis), botulism (Clostridium botulium), plague (Yersinia pestis), smallpox (Variola major), the tularemia (Francisella tularensis), viral haemorrhagic fevers (related filovirus -Ebola, Marburg and arenavirus-Lassa, Machupo), the epsilon toxin of Clostridium perfringens, brucellosis (Brucella species), melioidosis (Burkholderia mallei), the castor toxin (Ricinus communis).
21, caractérisée en ce que lesdits anticorps sont les anticorps des revendications 11 à 18 ou des IgG humaines ou ayant une région Fc humaine. 22. Pharmaceutical composition according to any one of claims 20 to characterized in that said antibodies are the antibodies of the claims 11 to 18 or human IgGs or having a human Fc region.
22, caractérisée en ce que les cations métalliques sont le zinc, le fer, le cuivre ou le cadmium, ou un mélange de plusieurs d'entre eux. 23. Pharmaceutical composition according to any one of claims 20 to characterized in that the metal cations are zinc, iron, copper where the cadmium, or a mixture of several of them.
de l'anticorps. 30. Test to evaluate the efficacy of an antibody comprising the study of the 3D conformation of the domain involving His 310, His 435, His 433 and / or Asn 434 (Kabat numbering) as shown in Figure 1 or 2 or a dosage of the Zinc content of said antibodies, the presence of zinc being an indication of effectiveness of the antibody.
(numérotation de Kabat). 31. Antibodies possessing at least one of His residues His 310 and His 435 amended (Kabat numbering).
en ce que les résidus His 310 et His 435 sont substitués par des résidus lysine. Antibody according to one of claims 32 to 34, characterized in that His 310 and His 435 residues are substituted with lysine residues.
en ce qu'ils appartiennent à la sous-classe des IgG1. 37. Antibody according to any one of claims 31 to 36, characterized in this that they belong to the subclass of IgG1.
en ce qu'ils possèdent une activité fonctionnelle diminuée par rapport au même anticorps non modifié. 38. Antibody according to any one of claims 31 to 37, characterized in this that they have a diminished functional activity compared to the same antibody not modified.
comme étant particulièrement dangereux dans les cas de bioterrorisme (classification des Centers for Disease Control, CDC), notamment l'anthrax (Bacillus anthracis), le botulisme (Clostridium botulium), la peste (Yersinia pestis), la variole (Variola major), la tularémie (Francisella tularensis), les fièvres hémorragiques virales (liées aux filovirus -Ebola, Marburg et aux arenavirus -Lassa, Machupo), la toxine epsilon de Clostridium perfringens, la brucellose (Brucella species), la melioidose (Burkholderia mallei), la toxine de ricin (Ricinus communis).. 39. Use of antibodies 31 to 38 for the preparation of a medicament intended for prevention of transplant rejection or treatment of a selected pathology the tetanus, diphtheria, or caused by a pathogen or derived toxin, listing as particularly dangerous in cases of bioterrorism (classification Centers for Disease Control (CDC), including anthrax (Bacillus anthracis), the botulism (Clostridium botulium), plague (Yersinia pestis), smallpox (Variola major), tularemia (Francisella tularensis), viral haemorrhagic fevers (related to filovirus -Ebola, Marburg and arenavirus -Lassa, Machupo), the toxin epsilon of Clostridium perfringens, brucellosis (Brucella species), melioidosis (Burkholderia mallei), castor toxin (Ricinus communis) ..
38 pour la préparation d'un médicament en remplacement des IgG4. 40. Use of the antibody according to any one of claims 31 to 38 for the preparation of a drug to replace IgG4.
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
FR0312228A FR2861079B1 (en) | 2003-10-20 | 2003-10-20 | USE OF DIVALENT METAL CATIONS FOR ENHANCING THE FUNCTIONAL ACTIVITY OF ANTIBODIES. |
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Publications (1)
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Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
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JP (1) | JP2007537990A (en) |
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Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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