BR112019025548B1 - Uso de uma mistura capaz de biocimentação, e método para inibir ou reduzir o crescimento de plantas, ou o crescimento de ervas daninhas, sobre/em um substrato - Google Patents

Uso de uma mistura capaz de biocimentação, e método para inibir ou reduzir o crescimento de plantas, ou o crescimento de ervas daninhas, sobre/em um substrato Download PDF

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Martin SPITZNAGEL
Saskia PAZUR
Philipp SPRAU
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Abstract

A presente invenção refere-se principalmente à utilização de uma mistura, que é capaz de biocimentação, como um agente para a inibir ou reduzir o crescimento de plantas, de preferência o crescimento de ervas daninhas. A invenção também se refere a um método para inibir ou reduzir o crescimento de plantas, de preferência o crescimento de ervas daninhas, sobre / em um substrato.

Description

[0001] A presente invenção se refere principalmente à utilização de uma mistura, que é capaz de biocimentação, como um agente para inibir ou reduzir o crescimento de plantas, de preferência o crescimento de ervas daninhas, sobre/em um substrato. A invenção se refere, além disso, a um processo para inibir ou reduzir o crescimento de plantas, de preferência o crescimento de ervas daninhas, sobre/em um substrato.
[0002] Outros aspectos e formas de realização preferidas da presente invenção resultam dos seguintes modos de execução dos exemplos anexos e, mais particularmente, das reivindicações de patentes anexas.
[0003] O crescimento incontrolado de ervas daninhas na agricultura, nas cidades e comunas, assim como no âmbito de jardins de casa, são um constante problema, já que na agricultura ele acarreta perdas e, por exemplo, em caminhos e outras superfícies é percebido como muito perturbador e não estético. Por este motivo, ervas daninhas são controladas e/ou dizimadas por processos térmicos como, por exemplo, por chamas, por remoção manual, com as mãos ou com o auxílio de diferentes ferramentas, ou com o auxílio de substâncias químicas. No entanto, observa-se atualmente que muitos dos produtos existentes estão se tornando cada vez mais resistentes e precisam ser usados repetidamente, aumentando ainda mais o custo de seu uso. Além disso, há uma recolonização rápida das áreas tratadas por infestação descontrolada de sementes.
[0004] Foi portanto o principal objetivo da presente invenção, preparar um agente para inibição ou redução do crescimento indesejado de plantas, que supere os problemas acima mencionados.
[0005] De acordo com a invenção, esse objetivo primário é solucionado por uma mistura, que é capaz de biocedimentação, como agente para evitar ou reduzir (respectivamente pelos processos de biocimentação) o crescimento de plantas, de preferência o crescimento de ervas daninhas.
[0006] O termo biocimentação no contexto do presente texto representa uma solidificação e/ou endurecimento substancialmente natural de substratos (permeáveis) (como definido abaixo no contexto do processo de acordo com a invenção). Nesses substratos, o crescimento das plantas é inibido ou reduzido. No contexto deste texto, biocimento é o produto da biocimentação definido aqui.
[0007] De acordo com uma forma de realização preferida, a referida solidificação e/ou endurecimento substancialmente natural se trata de um processo, no qual partes do substrato sobre o qual/no qual o crescimento da planta deve ser reduzido ou inibido, são unidas entre si, por um ou mais ligantes que está contido/estão contidos na mistura a ser empregada de acordo com a invenção, e/ou é formada ou são formadas a partir de seus componentes, e deste modo é efetuada uma solidificação e/ou endurecimento (biocimentação) do substrato ou de partes do substrato. De acordo com uma forma de execução particularmente preferida, a solidificação e/ou o endurecimento natural mencionado se trata de um processo no qual organismos (vivos), suas partes ou enzimas, que de preferência são obtidas e/ou produzidas pelos organismos mencionados ou partes deles, são empregados para formar carbonato, para induzir e/ou para catalisar a formação de carbonato. Os carbonatos formados deste modo conectam as partes do substrato, nas quais o crescimento das plantas deve ser reduzido ou inibido, com o que ocorre uma solidificação e/ou endurecimento do substrato ou partes deles. Os carbonatos formados no contexto desse texto, portanto, unem as partes do substrato ou o substrato, sobre o qual/no qual o crescimento das plantas deve ser reduzido ou inibido, com o que ocorre uma solidificação e/ou endurecimento do substrato ou partes deles. Os carbonatos formados, no contexto deste texto apresentam, portanto, de preferência, um componente mínimo do biocimento. Opcionalmente ou alternativamente, através da adição de determinados aditivos (como abaixo definido), o substrato ou as partes do substrato sobre as quais/nas quais o crescimento das plantas é reduzido ou inibido, pode ser (adicionalmente) solidificado e/ou endurecido.O biocimento, portanto, pode consistir de ou abranger, de acordo com uma outra forma de execução, também aditivos a serem empregados de acordo com a invenção ou as substâncias obtidas deles (conforme abaixo definido).
[0008] Portanto, de acordo com uma forma de execução preferida, a remoção do substrato sobre o qual/no qual o crescimento de plantas, preferentemente o crescimento de ervas daninhas, deve ser reduzido ou inibido, não é necessário para inibir ou reduzir o crescimento de plantas, e com isso, de preferência, também não faz parte de um uso de acordo com a invenção, especialmente já que a solidificação e/ou endurecimento do substrato (respectivamente pelos processos de biocimentação) causa a inibição ou redução do crescimento das plantas, de preferência o crescimento de ervas daninhas.
[0009] De acordo com um outro modo de execução preferido, após uma remoção do substrato de sua localização original, no qual/sobre o qual deve ser reduzido ou inibido um crescimento das plantas, de preferência um crescimento das ervas daninhas, uma mistura do referido substrato com a mistura capaz de biocimentar (conforme descrito aqui), é efetuada em um outro local (por exemplo, em um misturador) e ocorre uma (re) aplicação da mistura resultante no local original (ou alternativamente em um outro local) no qual deve ser realizada uma biocimentação.
[00010] Além disso, no contexto do uso de acordo com a invenção como descrito aqui, vantajosamente não é necessária nenhuma compactação do substrato, sobre o qual/no qual o crescimento da planta deve ser reduzido ou inibido, ou da mistura de substrato e mistura, capaz de biocimentar (como descrito aqui), ou da camada de biocimento formada, para obter a inibição ou redução do crescimento das plantas, preferencialmente do crescimento de ervas daninhas, e assim preferencialmente também não faz parte de um uso de acordo com a invenção.
[00011] O termo plantas no contexto do presente texto significa plantas terrestres, isto é, o grupo monofilético de embriófitas caracterizado por um complexo conjunto de características compreendidas como funcionais, de várias sinapomorfias. Seus grupos mais importantes são: as marchantiopsidas, anthocerotopsidas e bryopsidas, que frequentemente são agrupados no grupo parafilético dos musgos, as equisetopsidas e as samambaias i.e. (filicopsidas), assim como as plantas com sementes monofiléticas (espermatófitas), com as sementes cobertas (angiospermas), e as diversas linhas de desenvolvimento das sementes nuas (gimnospermas).
[00012] O termo erva daninha, no contexto do presente texto, representa todas as plantas (incluindo musgos e samambaias) da vegetação que acompanha espontaneamente ou indesejadamente as plantas cultivadas, as pastagens ou as plantas de jardim (doméstica), a partir do potencial de sementes do solo (como emergência inicial ou reemergência) nos rebentos de raízes, partes de plantas ou expulsão inicial das sementes, as sementes começam a se desenvolver e, de preferência, não são cultivadas nesse local. Sinônimos para ervas daninhas são ervas daninhas associadas, ervas daninhas selvagens e plantas selvagens. O termo culturas, no contexto do presente texto, significa plantas cujo crescimento é desejado.
[00013] O processo da biocimentação microbiana é descrito, por exemplo, no pedido de divulgação WO 2006/066326 A1. O pedido de patente publicado divulga um processo para formar um biocimento de alta resistência, em um material de partida permeável, sendo que o material de partida é reagido com uma quantidade eficaz de (i) um microrganismo produtor de urease, (ii) ureia e (iii) íons de cálcio. Através da conversão catalisada por urease de ureia para formar carbonato, e sua reação com os ións cálcio disponibilizados, origina-se carbonato de cálcio que solidifica o material de partida. Entre outros é descrito que o processo lá divulgado é apropriado para usos na mineração, em engenharia civil ou para a produção de materiais especiais.
[00014] A WO 2016/010434 A1 descreve um processo para a produção de um material cimentíceo de auto-cura compreendendo a misturação de um material cimentício de partida, uma substância curativa e um material de reforço formador de fibras, sendo que a substância curativa compreende um material bacteriano e o material de reforço fibroso compreende um polímero biodegradável decomponível. As bactérias lá utilizadas são capazes de fornecer carbonatos ou fosfatos e, de acordo com uma forma de execução, podem ser bactérias desnitrificantes.
[00015] O preparado de solução da presente invenção é baseado na utilização da biocimentação para supressão mecânica, isto é, inibição ou redução do crescimento de plantas, de preferência do crescimento de ervas daninhas, por solidificação biológica do substrato, sobre o/no qual a planta cresce. A mistura a ser empregada de acordo com a invenção é referida daqui em diante como supressor de ervas daninhas. Dependendo dos constituintes individuais da mistura a ser utilizada de acordo com a invenção (ver abaixo), além da supressão mecânica, isto é, inibição ou redução do crescimento das plantas, também outros processos (como descrito mais abaixo) desempenham um papel na supressão do crescimento das plantas.
[00016] De acordo com uma forma de execução, um uso da mistura de acordo com a invenção, conforme aqui descrito, pode ser efetuado em uma área localmente limitada, de modo que na área não tratada com a mistura (conforme aqui descrito) na qual não haja solidificação e/ou endurecimento do substrato no qual/sobre o qual as plantas crescem, (além disso) as plantas de cultura podem ser cultivadas.
[00017] De acordo com uma outra forma de execução é cogitável tratar o substrato a ser tratado, no qual as plantas crescem, com uma certa quantidade ou tipo de mistura (conforme aqui descrito), de modo que a solidificação e/ou endurecimento resultantes do referido substrato possibilite o crescimento de culturas, mas que o crescimento de ervas daninhas seja inibido ou reduzido. Neste caso - mas também geralmente em conexão com a presente invenção - a mistura a ser usada de acordo com a invenção também pode conter fertilizantes que estimulam o crescimento das referidas culturas.
[00018] Uma forma de execução preferida se refere, portanto, a um uso de acordo com a invenção de uma mistura conforme aqui descrito, em que a solidificação e/ou endurecimento resultantes do substrato, no qual a planta cresce, permite o crescimento de uma ou mais plantas de cultura, mas inibe ou reduz o crescimento de erva daninhas.
[00019] Em um experimento exemplar, um campo de cultivo foi arado e fertilizado, plantas jovens de couve-rábano foram usadas no solo do campo e irrigadas intensamente no solo do campo. No dia seguinte, uma mistura de biocimentação (conforme aqui descrito, ver, por exemplo, a parte de exemplos abaixo) foi aplicada ao solo do campo manualmente, ou como uma mistura de sólidos ou como uma mistura líquida utilizando um pulverizador para proteção de culturas. Em contraste com um controle, no qual ao invés de uma cultura que é capaz da biocimentação (conforme aqui descrito) foi aplicada apenas água, resultou uma boa supressão de ervas daninhas com apenas algumas brotações de ervas daninhas, enquanto a cultura (couve- rábano) continuou a crescer.
[00020] Vantajosamente, um uso da mistura de acordo com a invenção leva a uma espessura particularmente apropriada para um propósito aqui descrito da camada de biocimento. Preferencialmente, neste caso é obtida uma camada de biocimento com uma espessura de pelo menos 1 mm, de preferência de pelo menos 3 mm, ainda mais preferido pelo menos 10 mm. É ainda preferido que a espessura da camada não seja superior a 100 mm, preferivelmente não superior a 50 mm, mais preferivelmente não superior a 35, mais preferivelmente não superior a 30 mm. Como resultado, é particularmente preferível que a espessura de camada da camada de biocimento total formada esteja na faixa de 1 mm a 100 mm, preferivelmente 10 mm a 50 mm, mais preferivelmente 10 mm a 35 mm, ainda mais preferivelmente 10 a 30 mm. A espessura de camada da camada de biocimento compreende a área do substrato que é solidificada pela adição da mistura. A espessura da camada de biocimento pode ser determinada por medição manual, após ruptura mecânica da camada, usando um paquímetro. Alternativamente, dependendo da espessura da consolidação, podem ser utilizados diferentes métodos de medição (não destrutivos) da construção, agricultura, geologia ou outros campos de uso (por exemplo, MIT-SCAN-T2 portátil).
[00021] De acordo com uma forma de execução preferida, um uso de acordo com a invenção da mistura, conforme aqui descrito, leva a uma camada de biocimento que é permeável a água, isto é, permeável a água ou semipermeável a água. Isso é particularmente vantajoso, já que, por exemplo, água da chuva na região externa também pode penetrar na camada de biocimento formada, mesmo na área biocimentada, e pode fluir sem impedimento. A permeabilidade à água de uma amostra é convencionalmente relatada como o fluxo de água através da amostra em um período de tempo definido. Ela pode ser expressa como taxa de permeabilidade (em cm/h, mm/h ou cm/dia) ou, alternativamente, na forma do coeficiente de permeabilidade, em m/s. Uma indicação do coeficiente de permeabilidade permite a classificação de uma amostra, de preferência uma amostra de solo, por exemplo nas categorias permeável (à água), semipermeável (à água) e impermeável (à água).
[00022] No contexto do presente texto, o termo "camada de biocimento permeável à água" representa uma camada de biocimento com um coeficiente de permeabilidade à água maior que 10-5 a 100 m/s, e o termo "camada de biocimento semipermeável à água" representa uma camada de biocimento com um coeficiente de permeabilidade (à água) superior a 10-9 a 10-5 m/s, e o termo "camada de biocimento impermeável à água" representa uma camada de biocimento com um coeficiente de permeabilidade (à água) de 10-11 (ou menos) até 10-9 m/s. Métodos comuns para a determinação do coeficiente de permeabilidade incluem métodos de laboratório (por exemplo, sondagem por compressão e determinação subsequente da permeabilidade saturada por água em laboratório) e métodos de campo (por exemplo, determinação da taxa de infiltração com um infiltrômetro de anel duplo).
[00023] Uma forma de execução preferida se refere ao uso de uma mistura como aqui definida, em que a camada de biocimento formada tem um coeficiente de permeabilidade (à água) maior que 10-9 a 100 m/s, preferencialmente maior que 10-9 a 10-3 m/s, mais preferencialmente maior que 10-8 a 10-3 m/s.
[00024] O uso de acordo com a invenção mostra funcionalidade robusta sob condições reais (ambientais), é fácilmente aplicável (geralmente por uma única aplicação) e permite a dispensa ou por exemplo a redução de agente(s) químico(s) de controle de ervas daninhas. Além disso, ele também pode ser utilizado em combinação com produtos ou métodos existentes para o controle de ervas daninhas. Vantajosamente, o uso de acordo com a invenção também é reversível, isto é, a biocimentação do substrato ou de partes do substrato pode ser revertida, se necessário, por exemplo, pela aplicação de ácidos adequados ou por ruptura mecânica e por intemperismo e degradação natural. O substrato ou partes do substrato, deste modo, podem ser novamente acessíveis para o cultivo de culturas.
[00025] Uma forma de execução preferida, se refere, portanto, ao uso de uma mistura conforme definido aqui, sendo que a biocimentação do substrato ou de partes do substrato pode ser revertida ou de preferência é revertida.
[00026] Uma outra forma de execução se refere ao uso de uma mistura como aqui definida, sendo que a mistura compreende um ou mais organismos e/ou enzimas ou consiste deles. De preferência, o uso de acordo com a invenção se refere a um uso conforme anteriormente descrito, sendo que a mistura compreende ou consiste dos seguintes componentes: (i) um ou mais organismos e/ou enzimas que, por exemplo, é capaz/são capazes de formar carbonato, de induzir ou catalisar a formação de carbonato, (ii) uma ou mais substâncias para a formação de carbonato, (iii) opcionalmente: uma ou mais fontes de cátions, e (iv) opcionalmente: um ou mais aditivos.
[00027] De acordo com uma forma de execução preferida, o organismo ou os organismos no componente (i) da mistura a ser empregada de acordo com a invenção é um organismo/são vários organismos que, na execução de um ensaio A, compreende(m) as seguintes etapas Ensaio A (i) Disponibilização e contactação de um organismo a ser caracterizado ou uma mistura de organismos a ser caracterizada, com uma ou mais substâncias para formação de carbonato (e opcionalmente outras substâncias) e opcionalmente um substrato, (ii) Disponibilização de uma substância para determinação de uma ureólise e/ou formação de carbonato, (iii) Combinação da mistura resultante na etapa (i) com o agente da etapa (ii), e (iv) Determinação com base no agente da etapa (ii), se está presente uma formação de ureólise e/ou uma formação de carbonato,
[00028] A etapa (iv) leva à detecção de uma ureólise e/ou formação de carbonato, de preferência - desde que um substrato tenha sido disponibilizado - à detecção de uma biocimentação, de preferência de uma suficiente para impedir ou reduzir o crescimento das plantas, de preferência o crescimento de ervas daninhas (para maiores detalhes sobre o controle da inibição ou redução do crescimento das plantas, ver abaixo, parte do exemplo).
[00029] Vantajosamente no contexto do ensaio A, podem ser examinados tanto organismos ureolíticos, como também não ureolíticos, quanto à sua capacidade para uma biocimentação suficiente.
[00030] Os seguintes modos de execução podem ser úteis na seleção dos organismos adequados para uso no contexto de acordo com a invenção.
[00031] A(s) substância(s) para formação de carbonato a ser(em) fornecida(s) na etapa (i) do ensaio A, conforme aqui definido, e o substrato opcionalmente fornecido, que é solidificado ou endurecido pela biocimentação, são mais detalhadamente definidos abaixo no texto, também por meio de exemplos selecionados e preferidos. As outras substâncias opcionais podem ser, por exemplo, meios nutrientes, fontes de nutrientes, fontes de cátions (como descrito mais abaixo no texto) e/ou aditivos (como descrito mais abaixo no texto).
[00032] Na etapa (i) do ensaio A, conforme aqui definido, podem ser preparadas por exemplo culturas puras do organismo a ser caracterizado (por exemplo, a partir de coleções de cepas), e/ou o organismo a ser caracterizado ou a mistura de organismos a ser caracterizada, por exemplo, podem ser isolados de uma amostra apropriada (por exemplo amostra de solo) por meio de um nutriente (por exemplo ureia-agar de Christensen, meio B-4, ou meio M-3P) e para uma pesquisa posterior pode ser cultivada uma cultura de células apropriada. O meio nutriente usado para isolamento e cultivo pode ser líquido ou sólido. É do conhecimento dos especialistas na matéria que o meio nutriente pode variar de acordo com os requisitos do organismo/dos organismos. O (s) organismo (s) é(são) de preferência cultivado(s) a uma densidade celular entre 1 x 107 até 1 x 1012 células/mL. É do conhecimento dos especialistas na matéria que, por exemplo, a temperatura de cultivo e a composição do meio são selecionadas de acordo com as necessidades do organismo ou da mistura de organismos. A cultura celular fornecida ou preparada é então colocada em contato com a(s) substância(s) para formação de carbonato (e opcionalmente outras substâncias) e opcionalmente um substrato para obter uma mistura que é então combinada na etapa (iii) com o agente da etapa (ii).
[00033] O agente para detecção de uma ureólise e/ou formação de carbonato na etapa (ii) do ensaio A, conforme aqui definido, é por exemplo um indicador de pH, um dispositivo e/ou uma ou mais substância(s) para medição da atividade de urease, um dispositivo e/ou uma ou mais substância(s) para medição da quantidade de carbonato formada por biocimentação, ou um dispositivo para medição do grau da solidificação do substrato (pela biocimentação).
[00034] A determinação de se uma ureólise e/ou a formação de carbonato está presente na etapa (iv) do ensaio A, conforme definido aqui, em particular a detecção de uma biocimentação, de preferência uma biocimentação suficiente para inibir ou reduzir o crescimento das plantas, de preferência o crescimento de ervas daninhas, pode ocorrer qualitativamente ou de preferência quantitativamente.
[00035] Um método preferido para a referida determinação é, por exemplo, a adição de um indicador de pH apropriado (p. ex. vermelho de fenol, de preferência em uma concentração de 15 mg/L) à mistura resultante na etapa (i). No caso da presença de uma ureólise e/ou formação de carbonato, o pH da mistura aumenta, o que resulta em uma mudança de cor do indicador (por exemplo, no caso de fenol vermelho para a cor rosa).
[00036] Quando uma fonte de cátions (adicionalmente a uma ou mais substâncias para formação de carbonato) é adicionada à mistura da etapa (i), de preferência uma fonte de cálcio, no caso da presença de uma ureólise e/ou da formação de carbonato em meios sólidos, ocorre em regra a formação de crostas de cal em torno das colônias ou sobre as colônias do organismo ou dos organismos. Em meios nutrientes líquidos, com disponibilidade suficiente de uma fonte de cátions, de preferência uma fonte de cálcio (p. ex. CaCl2) e uma fonte de carbonato (por exemplo, ureia), ocorrem em regra precipitações de cal. Essa formação de crostas de cal ou precipitação de cal também pode servir como evidência visual para uma ureólise e/ou formação de carbonato, ou as mencionadas formações de crostas de cal ou precipitações de cal podem ser analisadas por uma determinação qualitativa e/ou quantitativa de carbonato, de preferência com o auxíio da determinação (semi)quantitativa de carbonato segundo Scheibler, ou um desenvolvimento desse método (por exemplo, como descrito em Horváth, B. et al., A Simple Method for Measuring the Carbonate Content of Soils, Soil Science Society of America Journal 2005, 69, 1066-1068).
[00037] Um outro método preferido para a mencionada determinação é, por exemplo, uma medição da atividade de urease do organismo ou da mistura de organismos. Neste caso, o organismo a ser analisado ou a mistura de organismos a serem analisados, entre outros, é misturada com ureia em pó (p. ex., 1,5 M ureia em 0,1 M tris- HCl, pH 7,5) e a formação de íons amônio originados é medida condutometricamente como um aumento do sinal de medição em função do tempo e a atividade urease é calculada (como descrito, por exemplo, em V. S. Whiffin, Microbial CaCO3 Precipitation for the production of Biocement, Dissertação, 2004, Murdoch University, Western Australia). A atividade urease está de preferência entre 1 x 10-7 até 1 x 10-11 mM de ureia hidrolisada/min/cm/células/mL, ainda mais preferido entre 1 x 10-8 até 1 x 10-10 mM de ureia hidrolisada/ min/ cm/ células/ mL, ainda mais preferido entre 1 x 10-8 até 1 x 10-9 mM de ureia hidrolisada/ min/ cm/ células/ mL. A primeira corresponde aproximadamente a uma taxa de hidrólise da ureia de 0 - 300 mM de ureia hidrolisada/min, dependendo do número de células utilizadas. Um outro método preferido para a mencionada determinação descreve, por exemplo, a medição da quantidade de carbonato formada pela biocimentação, de preferência por meio da determinação (semi)quantitativa de carbonato segundo Scheibler. A mistura a ser verificada é de preferência incubada por 48 h aberta à temperatura ambiente (25°C). Em seguida pode-se obter por centrifugação e secagem uma pelota precipitada para uma outra utilização. Com a pelota seca é possível realizar a detecção (semi-) quantitativa do carbonato de cálcio formado, de preferência por determinação do carbonato segundo Scheibler. Opcionalmente, o precipitado seco anteriormente pesado e a eficácia da precipitação podem ser calculados. Opcionalmente, paralelo a isso, pode ser realizada uma determinação qualitativa adicional, da presença de ureólise e/ou formação de carbonato. Para isso, pode ser adicionada à mistura da etapa (i) vermelho de fenol (15 mg/L). O sobrenadante a ser descartado na obtenção da pelota é então tingido de rosa na presença de uma ureólise e/ou formação de carbonato.
[00038] Um outro método para a mencionada determinação apresenta por exemplo a medição do grau da solidificação do substrato (pelo carbonato formado durante a biocimentação). Um substrato adequado para isso é p. ex. areia de quartzo, de preferência com granulometria de 0 a 2 mm (como substrato modelo). Os demais componentes da mistura da etapa (i) são de preferência aplicados/introduzidos no substrato em uma quantidade resultante de 5 l/m2 (no caso de uma mistura líquida) a saber no substrato. A incubação subsequente deve ser aberta e ocorrer à temperatura ambiente ou acima da temperatura ambiente por pelo menos 2 dias (de preferência por pelo menos 10 dias). Em seguida, a resistência da camada de biocimento formada é determinada por análise de ruptura mecânica com o auxílio de um aparelho medidor da força (de ruptura) digital com base em DIN EN 196-1:2005-05. Em comparação com o controle (aplicando uma mistura de comparação sem organismo ou organismos no substrato) devem ser detectáveis diferenças na força de ruptura > 3 N (ou > 0,01 MPa), de preferência > 30 N (ou > 0,1 MPa).
[00039] No contexto do ensaio A, a espessura da camada de biocimento pode ser determinada também com o auxílio de um paquímetro; na solidificação com bom êxito, essa, em média, deve ser > 3 mm na área examinada.
[00040] De acordo com um modo de execução preferido, o organismo ou os organismos, no componente (i) da mistura a ser empregada de acordo com a invenção, é um organismo/ são vários organismos que compreende(m) na etapa (iv) do ensaio A, conforme aqui definido, em relação a dois ou mais dos itens acima, particularmente preferido três ou mais, mais particularmente preferido, quatro ou mais, muito particularmente preferido todos os métodos de determinação, resultam na determinação de uma ureólise e/ou formação de carbonato, de preferência um biocimento, de preferência um que seja suficiente para inibir ou reduzir o crescimento das plantas, de preferência o crescimento de ervas daninhas (para detalhes acerca do controle da inibição ou redução do crescimento das plantas, veja abaixo, na parte dos exemplos)
[00041] É preferido o uso, conforme anteriormente descrito, em que a mistura está presente na forma líquida, como gel, pasta ou como pó.
[00042] A mistura a ser empregada de acordo com a invenção pode estar presente ou ser empregada na forma de uma mistura líquida, gelatinosa, pastosa ou em pó, ou na forma de duas, três, quatro ou mais pré-misturas líquidas e/ou gelatinosas e/ou pastosas e/ou em pó, que são misturadas entre si antes ou durante o uso.
[00043] Em particular, a mistura ou as pré-misturas em pó apresentam vantajosamente uma estabilidade de armazenamento particularmente longa, preferencialmente de pelo menos 12 a 24 meses.
[00044] Uma mistura ou pré-mistura em pó pode ser obtida por métodos padrão conhecidos pelo especialista na técnica, por exemplo por secagem por pulverização, liofilização, secagem a vácuo (baixa temperatura), secagem em leito fluidizado e/ou com o auxílio de uma filtração com adjuvantes de filtração.
[00045] No contexto deste texto, em pó significa que o teor de componentes líquidos, de preferência de água, na mistura é de 10% em peso ou menos, de preferência 5% em peso ou menos, de preferência 2,5% em peso ou menos, preferencialmente 1,0% em peso ou menos, ainda mais preferido de 0,1% em peso ou menos, com base no peso total da mistura ou pré-mistura a ser utilizada de acordo com a invenção.
[00046] O teor de componentes líquidos, de preferência água, na mistura ou na pré-mistura pode ser determinado por métodos padrão conhecidos pelo especialista na técnica. Por exemplo, uma análise gravimétrica dos componentes líquidos pode ser realizada pesando a amostra extraída, depois aquecendo-a a uma temperatura acima do ponto de ebulição dos componentes líquidos por um período de tempo suficiente para a secagem, e pesando-a novamente. A partir da diferença de peso antes e após a secagem determina-se o teor em % em peso de componentes líquidos, preferencialmente de água.
[00047] De acordo com uma outra forma de execução, a mistura a ser utilizada de acordo com a invenção também pode estar presente ou ser utilizada na forma de uma mistura gelatinosa ou pastosa ou na forma de duas, três, quatro ou mais pré-misturas sólidas e/ou líquidas e/ou gelatinosas e/ou pastosas, separadas umas das outras, que são misturadas entre si antes ou durante o uso.
[00048] É preferido um uso como descrito acima, em que um ou mais, ou todos os organismos, é/são selecionado(s) a partir do grupo que consiste em microrganismos, de preferência selecionados a partir do grupo que consiste em microrganismos do filo Firmicutes, de preferência da classe Bacilli, de preferência da ordem Bacillales, de preferência das famílias Planococcaceae ou Bacillaceae, de preferência dos gêneros Sporosarcina, Lysinibacillus ou Bacillus, de preferência selecionado das espécies Sporosarcina pasteurii, Sporosarcina ureae, Lysinibacillus sphaericus, Lysinibacillus fusiformis, Bacillus megaterium, Lysinibacillus sp., Bacillus pseudofirmus, Bacillus halodurans ou Bacillus cohnii; e microrganismos do filo Proteobacteria, de preferência das classes Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Deltaproteobacteria ou Epsilonproteobacteria, de preferência das ordens das Enterobacteriales, Myxococcales, Campylobacterales, Pseudomonadales ou Caulobacterales, de preferência das famílias Enterobacteriaceae, Myxococcaceae, Helicobacteraceae, Pseudomonadaceae ou Caulobacteraceae, de preferência dos gêneros Proteus, Myxococcus, Helicobacter, Pseudomonas oder Brevundimonas, de preferência selecionado das espécies Proteus vulgaris, Proteus mirabilis, Myxococcus xanthus, Helicobacter pylori, Pseudomonas aeruginosa ou Brevundimonas diminuta; e microrganismos do filo Actinobacteria, de preferência da classe Actinobacteria, de preferência da ordem Actinomycetales, de preferência das famílias Brevibacteriaceae ou Micrococcineae, de preferência dos gêneros Brevibacterium ou Micrococcaceae, de preferência selecionados das espécies Brevibacterium linens ou Arthrobacter crystallopoietes; e microrganismos do filo Cyanobacteria, de preferência da classe Cyanobacteria, de preferência da ordem Synechococcales, de preferência da família Synechococcaceae, de preferência do gênero Synechococcus, de preferência da espécie Synechococcus; e bactérias aeróbicas, bactérias anaeróbicas, facultativamente bactérias anaeróbicas e suas etapas intermediárias.
[00049] Isso também inclui todas as variantes, sorotipos, mutantes e esporos, bem como quaisquer microrganismos geneticamente modificados derivados.
[00050] O(s) organismo(s) acima mencionado(s), de preferência microrganismos, pode(m) estar presente(s) (em conjunto ou separadamente) em líquido(s), como soluções tampão, solventes, meios nutrientes e/ou suas misturas, sendo que essas misturas também podem estar congeladas, ou em pó.
[00051] De acordo com a presente invenção, o(s) organismo(s) capaz(es) de formar carbonato, induzir e/ou catalisar a formação de carbonato, faz(em) parte da mistura utilizada.
[00052] Alternativamente, é concebível e também divulgado no contexto deste texto, que organismos (indígenas) presentes no substrato, de preferência no solo, no qual/sobre o qual ocorre o crescimento das plantas, ou isolados do substrato mencionado, cultivados em laboratório e depois novamente introduzidos sobre/no substrato, é capaz/são capazes de formar carbonato, induzir a formação de carbonato e/ou catalisá-lo. Neste caso, são concebíveis formas de execução alternativas ou equivalentes (e, portanto, incluídas aqui de acordo com a invenção), nas quais os organismos da mistura a serem utilizados de acordo com a invenção e os organismos (indígenas) formam o carbonato no substrato/sobre o substrato, induzindo a formação de carbonato e/ou catalizando-a, ou nas quais a mistura a ser utilizada ela própria não contém organismos que são capazes de formar carbonato, induzir a formação de carbonato e/ou catalisá-lo. De acordo com uma forma de execução preferida, o componente (i) da mistura a ser empregada de acordo com a invenção compreende ou consiste em uma combinação de um ou mais organismos capazes de formar carbonato, induzir a formação de carbonato e/ou catalisá-lo, e aqueles que não podem.
[00053] De acordo com uma forma de execução preferida, o componente (i) da mistura a ser usada de acordo com a invenção compreende ou consiste em uma combinação de bactérias aeróbicas, bactérias anaeróbicas e/ou opcionalmente bactérias anaeróbicas e/ou seus intermediários.
[00054] De acordo com uma outra forma de execução preferida, o componente (i) da mistura a ser usada de acordo com a invenção compreende ou consiste em uma combinação de um ou mais organismos que é/são capaz(es) de formar carbonato ureoliticamente, de induzir a formação de carbonato ureoliticamente e/ou de catalisá-la, e aqueles que por exemplo não são capazes de ureólise ou não são capazes de formar carbonato para induzir e/ou para catalisar a formação de carbonato.
[00055] É do conhecimento do especialista na técnica que a biocimentação (como aqui definido) utilizando uma mistura de acordo com a invenção (como aqui definido) procede de maneira particularmente eficiente em um espectro específico de número de células dos organismos utilizados. De acordo com nossas próprias investigações, o número de células do organismo ou dos organismos na mistura a ser usada de acordo com a invenção é de preferência de pelo menos 107 células/mL, mais preferentemente pelo menos 108 células/mL, e/ou de preferência no máximo 1012 células/mL, de preferência no máximo 1010 células/mL, mais preferentemente no máximo 109 células/mL. De acordo com uma forma de execução preferida, o número de células do organismo ou dos organismos na mistura a ser usada de acordo com a invenção é de 108 a 109 células/mL.
[00056] É preferido um uso como descrito acima, em que uma ou mais ou todas as enzimas é selecionada/são selecionadas do grupo que consiste em urease, asparaginase, anidrase carbônica e enzimas metabólicas.
[00057] Enzimas metabólicas no contexto do presente texto são de preferência enzimas do metabolismo de um ou mais (micro)organis- mos como aqui descritos que, por exemplo com a reação de acetato e/ou lactato, são capazes de formar carbonato, de induzir a formação de carbonato e/ou de catalisá-lo. De preferência é/são empregado(s) no componente (i) da mistura a ser empregada de acordo com a invenção, um organismo ou mais organismos (como definido acima), que pode(m) produzir uma ou mais das enzimas acima mencionadas, ou de preferência as enzimas acima mencionadas dos organismos acima mencionados são obtidas ou liberadas.
[00058] Se o organismo utilizado for um organismo patogênico ou os organismos utilizados forem organismos patogênicos, é preferido no contexto do presente texto, que no componente (i) da mistura a ser usada de acordo com a invenção, sejam usadas apenas as enzimas não patogênicas obtidas ou liberadas a partir deles.
[00059] De acordo com uma outra forma de execução preferida, no componente (i) da mistura a ser empregada de acordo com a invenção, combinações de enzimas, que são obtidas ou liberadas dos organismos acima mencionados, podem ser empregadas com enzimas de origem não microbiana (por exemplo enzimas vegetais). A enzima urease pode ser obtida, por exemplo, a partir de grãos de soja e utilizada de acordo com a invenção.
[00060] De acordo com um outro modo de execução preferido, no componente (i) da mistura a ser usada de acordo com a invenção podem ser empregadas combinações de um ou mais dos organismos acima mencionados, que é (são) capaz(es) de formar carbonato, de induzir e/ou catalisar a formação de carbonato, com uma ou mais das enzimas mencionadas acima, que é(são) capaz(es) de formar carbonato, de induzir e/ou catalisar a formação de carbonato.
[00061] Os carbonatos podem ser gerados por meio das enzimas acima mencionadas, através de vários processos metabólicos. Por exemplo, pelo metabolismo aeróbico de fontes de carbono orgânico pode ocorrer amonificação (por exemplo, enzima asparaginase) ou pode ocorrer metabolismo heterotrófico de fontes de carbono orgânico (por exemplo, lactato de cálcio ou acetato de cálcio). Ambos os processos fornecem carbonatos. A fotossíntese aeróbica e anaeróbica também pode ser usada para a formação de carbonatos, bem como a desnitrificação anaeróbica, redução de sulfato anaeróbico e oxidação (an)aeróbica do metano.
[00062] A biocimentação com o auxílio da mistura a ser utilizada de acordo com a invenção pode, portanto, basear-se em um ou mais dos processos metabólicos acima mencionados.
[00063] É portanto preferido um uso como acima descrito, em que uma ou mais, ou todas ou várias substâncias para a formação de carbonato é/são selecionadas do grupo que consiste em ureia e seus sais, ácidos orgânicos como ácido lático e seus sais, de preferência carboxilatos e seus ésteres, ácido glucônico e seus sais, de preferência carboxilatos, e seus ésteres, ácido acético e seus sais, de preferência carboxilatos, e seus ésteres, ácido fórmico e seus sais, de preferência carboxilatos, e seus ésteres, peptídeos, de preferência contendo asparagina, glutamina e/ou ácido glutâmico, aminoácidos, de preferência asparagina, glutamina e ácido glutâmico, e seus sais, de preferência carboxilatos e seus ésteres, substratos vegetais e animais complexos, em particular peptona, extrato de levedura, extrato de carne, caldo nutritivo e ácido casamino, fluxos de resíduos industriais, em especial licor de maceração de milho, licor mãe de lactose, lisados proteicos, de preferência feito de ervilhas, carnes ou tomates, substratos anaeróbicos, de preferência dióxido de carbono e metano.
[00064] Além disso, é preferido um uso como descrito acima, em que uma ou mais, ou todas as fontes de cátions são selecionadas do grupo que consiste em sais de cálcio orgânicos e inorgânicos, de preferência nitrato de cálcio, acetato de cálcio, lactato de cálcio e cloreto de cálcio, sais de magnésio, sais de manganês, sais de zinco, sais de cobalto, sais de níquel, sais de cobre, sais de chumbo, sais de ferro, sais de cádmio, polímeros, de preferência polímeros catiônicos, cátions de metais pesados, cátions de metais leves, cátions radioativos, assim como suas misturas.
[00065] De acordo com a presente invenção, a(s) fonte(s) de cátions pode(m) ou não ser incluída(s) na mistura a ser utilizada na presente invenção. Se ela(s) não estiver(em) contida(s) na mistura, ela(s) pode(m) estar presente(s) ou adicionada(s) ao substrato em que a planta cresce para facilitar a biocimentação.
[00066] Além disso, é preferido um uso como acima descrito, em que um ou mais ou todos os aditivos é(são) selecionado(s) do grupo que consiste nas seguintes substâncias/misturas de substâncias (de preferência, desde que ela(s) ainda não esteja(m) contida(s) no componente (ii)) nutrientes; (bio-)polímeros, de preferência poli- hidroxibutirato (PHB), polilactídeo (PLA), succinato de polibutileno (PBS), ácido poliacrílico (PAA), polimetacrilato (PMA), poli (2-hidroxietil metacrilato) (PHEMA), álcool polivinílico (PVOH), polivinila (PVOH), álcool polivinílico (PVOH) PVAC), polivinilpirrolidona (PVP), poli (2-etil- 2-oxazolina), poliestireno (PS), poliamida, copolímeros, poliaminoácidos, celulose e seus derivados, amido e seus derivados, ligninas e seus derivados, pectinas e seus derivados, adesivos naturais, em particular goma arábica, látex, borracha e seus derivados, quitina, e seus derivados, quitosana e seus derivados, ciclodextrinas e seus derivados, dextrinas e seus derivados; formadores de hidrogel, de preferência goma xantana, alginatos e agar-agar; colas solúveis a frio ou solúveis a quente (vegetais); carbonatos de cálcio e misturas contendo carbonatos de cálcio, de preferência madrepérola, carbonatos de cálcio amorfos, carbonato de cálcio precipitado, aragonita, calcita, vaterita e formas mistas e seus derivados; polissacarídeos e substâncias poliméricas extracelulares (EPS), de preferência exopolissacarídeos microbianos, de preferência contendo ou consistindo em ácido maleico, ácido acético, ácido lático, lactose, sacarose, glicose, frutose e/ou inulina; fontes de proteínas, fibras e materiais fibrosos, de preferência caseína, albumina, extratos de leveduras, peptonas, fibras de celulose, fibras de madeira, fibras de celulose de madeira; materiais residuais e industriais, de preferência licor de maceração de milho, licor mãe de lactose, lisados proteicos, melaços, resíduos de proteínas, de preferência oriundos da produção de leveduras, da preparação de carnes, da indústria de laticínios e da fabricação de papel; silicatos e seus derivados; acrilatos e seus derivados; silicatos de potássio e aglutinantes semelhantes a silicatos de potássio; cimentos e aditivos para cimento, de preferência areia, cal e seus derivados, óxido de alumínio, óxido de cálcio, hidróxido de cálcio, hidróxidos de alumínio, cinzas, cinzas volantes e cinzas ósseas, microssílica, caulins, bentonitas, materiais de preenchimento, de preferência cal branca (hidrato), areia britada de calcário e farinha de calcário; resinas e epóxidos; herbicidas naturais e químicos; fungicidas; moluscicidas; inseticidas; hidrofobizantes e emulsões de cera; auxiliares de emulsificação; aglutinantes; agentes tixotrópicos; núcleos de cristalização e modificadores de cristalização; ácidos graxos; minerais e elementos traço; sais, de preferência fosfatos e sulfatos; rochas, preferência pedras pome e ardósia; bactérias capazes de formar polímeros; e substância(s) que modifica(m) a biocimentação.
[00067] No contexto da presente invenção, os aditivos são preferencialmente substâncias que ou influenciam o próprio processo de biocimentação (por exemplo, nutrientes) ou substâncias que influenciam o produto originado da biocimentação, isto é, as propriedades do biocimento (por exemplo, sua resistência a água), ou substâncias que afetam as plantas, cujo crescimento é inibido (por exemplo, herbicidas).
[00068] Exemplos de substâncias que podem afetar as propriedades do biocimento são de preferência os aditivos a serem usados de acordo com a invenção, que são capazes de (adicionalmente) solidificar e/ou endurecer o substrato ou as partes do substrato no qual/sobre o qual o crescimento das plantas deve ser reduzido ou inibido. Estes podem ser, por exemplo, moléculas de açúcar (como definido acima) ou polímeros que são formados por bactérias. Conforme descrito acima, os referidos aditivos a serem utilizados de acordo com a invenção, neste caso, são um componente do biocimento - opcionalmente sozinho - (alternativamente ao(s), ou ao lado do(s) carbonato(s) preferentemente formados).
[00069] De acordo com a presente invenção, o(s) aditivo(s) pode(m) estar presente(s) na mistura a ser utilizada de acordo com a invenção (ou seja, fazer parte da mistura a ser usada) ou ser(em) incluído(s) sobre o substrato/ no substrato em que ocorre o crescimento da planta. Alternativamente, eles podem não estar presentes.
[00070] No contexto do presente texto, os monômeros dos aditivos acima mencionados, em particular os (bio-)polímeros mencionados, também valem como aditivos a serem utilizados de acordo com a invenção.
[00071] É do conhecimento do especialista que a quantidade de uso e modo de ação do aditivo ou dos aditivos é fortemente dependente de sua(s) própria(s) propriedade(s) ou das propriedades dos outros componentes da mistura a ser empregada de acordo com a invenção, ou das propriedades do substrato e, consequentemente, serão selecionadas combinações e quantidades adequadas de uso do aditivo ou dos aditivos.
[00072] Além disso, também é preferido o uso conforme descrito acima, em que a planta ou a erva daninha é selecionada do grupo que consiste de dicotiledôneas dos gêneros: Abutilon, Aegopodium, Aethusa, Amaranthus, Ambrosia, Anachusa, Anagallis, Anoda, Anthemis, Aphanes, Arabidopsis, Atriplex, Barbarea, Bellis, Bidens, Bunias, Capsella, Carduus, Cassia, Centaurea, Chenopodium, Chrysanthemum, Cirsium, Conium, Conyza, Consolida, Convolvulus, Datura, Descurainia, Desmodium, Emex, Equisetum, Erigeron, Erodium, Erysimum, Euphorbia, Fumaria, Galeopsis, Galinsoga, Galium, Geranium, Heracleum, Hibiscus, Ipomoea, Kochia, Lamium, Lapsana, Lathyrus, Lepidium, Lithoserpermum, Linaria, Lindernia, Lycopsis, Malva, Matricaria, Mentha, Mercurialis, Mullugo, Myosotis, Papaver, Pharbitis, Plantago, Polygonum, Portulaca, Ranunculus, Raphanus, Rorippa, Rotala, Rumex, Salsola, Senecio, Sesbania, Sida, Sinapis, Sisymbrium, Solanum, Sonchus, Sphenoclea, Stachys, Stellaria, Taraxacum, Thlaspi, Trifolium, Tussaligo, Urtica, Veronica, Viola, Xanthium; dicotiledôneas dos gêneros: Arachis, Beta, Brassica, Cucumis, Cucurbita, Helianthus, Daucus, Glycine, Gossypium, Ipomoea, Lactuca, Linum, Lycopersicon, Nicotiana, Phaseolus, Pisum, Solanum, Vicia; monocotiledôneas dos gêneros: Aegilops, Agropyron, Agrostis, Alopecurus, Apera, Avena, Brachiaria, Bromus, Cenchrus, Commelina, Cynodon, Cyperus, Dactyloctenium, Digitaria, Echinochloa, Eleocharis, Eleusine, Eragrostis, Eriochloa, Festuca, Fimbristylis, Heteranthera, Imperata, Ischaemum, Juncus, Leptochloa, Lolium, Monochoria, Panicum, Paspalum, Phalaris, Phleum, Poa, Rottboellia, Sagittaria, Scirpus, Setaria, Sorghum; e monocotiledôneas dos gêneros: Allium, Ananas, Asparagus, Avena, Hordeum, Oryza, Panicum, Saccharum, Secale, Sorghum, Triticale, Triticum, Zea; musgos das linhagens do musgos hepáticos, Marchantiosida, musgos antroceróticos (Anthocerotopsida), musgos decíduos (Bryopsida);
[00073] preferentemente sendo que é inibido ou reduzido o crescimento de pelo menos duas, três, quatro, cinco, seis, sete, oito, nove, dez, mais do que dez ou todas as essas plantas.
[00074] De acordo com uma modalidade preferida do uso de acordo com a invenção, uma, várias ou todas as plantas são um ou mais musgos (s) hepático(s) selecionado(s) do grupo que consiste nos gêneros: Acolea, Acrobolbus, Acrochila, Acromastigum, Acroscyphella, Acroscyphus, Acrostolia, Adelocolia, Aitchisoniella, Alicularia, Allisonia, Allisoniella, Alobiella, Alobiellopsis, Amazoopsis, Amphicephalozia, Amphilophocolea, Andrewsianthus, Aneura, Anomacaulis, Anomoclada, Anomylia, Anthelia, Anthelis, Aphanolejeunea, Aplozia, Apomarsupella, Apometzgeria, Apotreubia, Arachniopsis, Arctoscyphus, Arnellia, Ascidiota, Asterella, Athalamia, Austrofossombronia, Austrolembidium, Austrolophozia, Austrometzgeria, Austroscyphus, Balantiopsis, Bazzania, Blasia, Blepharidophyllum, Blepharostoma, Brevianthus, Calycularia, Calypogeia, Calyptrocolea, Campanocolea, Castanoclobos, Cavicularia, Cephalojonesia, Cephalolobus, Cephalomitrion, Cephalozia, Cephaloziella, Cephaloziopsis, Ceratolejeunea, Cesius, Chaetophyllopsis, Chiastocaulon, Chiloscyphus, Chloranthelia, Chonecolea, Cladomastigum, Cladopodiella, Clandarium, Clasmatocolea, Cololejeunea, Colura, Conocephalum, Conoscyphus, Corsinia, Cronisia, Crossogyna, Cryptochila, Cryptocolea, Cryptocoleopsis, Cryptomitrium, Cryptostipula, Cryptothallus, Cuspidatula, Cyanolophocolea, Cyathodium, Cylindrocolea, Delavayella, Dendrobazzania, Dendromastigophora, Denotarisia, Dichiton, Dinckleria, Diplocolea, Diplophyllum, Douinia, Drepanolejeunea, Drucella, Dumortiera, Dumortieropsis, Enigmella, Eocalypogeia, Eoisotachis, Eopleurozia, Eotrichocolea, Eremonotus, Eucalyx, Evansia, Evansianthus, Exormotheca, Fossombronia, Frullania, Fuscocephaloziopsis, Gackstroemia, Geocalyx, Geothallus, Gerhildiella, Goebeliella, Goebelobryum, Gongylanthus, Gottschea, Gottschelia, Greeneothallus, Grollea, Gymnanthe, Gymnocoleopsis, Gymnomitrion, Gymnoscyphus, Gyrothyra, Haesselia, Haplomitrium, Harpalejeunea, Harpanthus, Hattoria, Hattorianthus, Hattoriella, Hepatostolonophora, Herbertus, Herpetium, Herpocladium, Herzogianthus, Herzogobryum, Heterogemma, Heteroscyphus, Horikawaella, Hyalolepidozia, HygrobiellaIwatsukia, Hygrolembidium, Hygrophila, Hymenophyton, Hypoisotachis, Isolembidium, Isotachis, Jamesoniella, Jensenia, Jubula, Jubulopsis, Jungermannia, Jungermannites, Krunodiplophyllum, Kurzia, Kymatocalyx, Lamellocolea, Leiocolea, Leiomitra, Leiomylia, Leioscyphus, Lejeunea, Lembidium, Lepidogyna, Lepidolaena, Lepidozia, Leptolejeunea, Leptophyllopsis, Leptoscyphopsis, Leptoscyphus, Lethocolea, Liochlaena, Lobatiriccardia, Lophocolea, Lophonardia, Lophozia, Lophoziopsis, Lunularia, Macrodiplophyllum, Maculia, Makinoa, Mannia, Marchantia, Marchesinia, Marsupella, Marsupidium, Massula, Massularia, Mastigobryum, Mastigopelma, Mastigophora, Mastigopsis, Mesoptychia, Metacalypogeia, Metahygrobiella, Metzgeria, Metzgeriopsis, Micrisophylla, Microlejeunea, Microlepidozia, Micropterygium, Mizutania, Mnioloma, Moerckia, Monocarpus, Monoclea, Monodactylopsis, Monosolenium, Mytilopsis, Nanomarsupella, Nardia, Neesioscyphus, Neogrollea, Neohodgsonia, Neotrichocolea, Noteroclada, Nothogymnomitrion, Nothostrepta, Notoscyphus, Nowellia, Obtusifolium, Odontolejeunea, Odontoschisma, Oleolophozia, Oxymitra, Pachyglossa, Pachyschistochila, Pallavicinia, Paracromastigum, Paraschistochila, Patarola, Pedinophyllopsis, Pedinophyllum, Pellia, Peltolepsis, Perdusenia, Perssoniella, Petalophyllum, Phycolepidozia, Phyllothallia, Physiotium, Physotheca, Pisanoa, Plagiochasma, Plagiochila, Plagiochilidium, Plagiochilion, Platycaulis, Plectocolea, Pleuranthe, Pleuroclada, Pleurocladopsis, Pleurocladula, Pleurozia, Podanthe, Podomitrium, Porella, Prasanthus, Preissia, Prionolobus, Protolophozia, Protomarsupella, Protosyzgiella, Protosyzygiella, Pseudocephalozia, Pseudocephaloziella, Pseudolophocolea, Pseudolophozia, Pseudomarsupidium, Pseudoneura, Pseudotritomaria, Psiloclada, Pteropsiella, Ptilidium, Radula, Reboulia, Rhizocaulia, Rhodoplagiochila, Riccardia, Riccia, Ricciella, Ricciocarpos, Riella, Roivainenia, Ruizanthus, Ruttnerella, Saccobasis, Saccogyna, Sandeothallus, Sarcocyphos, Sarcomitrium, Sauteria, Scapania, Scaphophyllum, Schiffneria, Schisma, Schistochila, Schistochilaster, Schistochilopsis, Schofieldia, Sendtnera, Seppeltia, Sewardiella, Simodon, Solenostoma, Southbya, Sphaerocarpos, Sphagnoecetis, Sprucella, Steereella, Steereocolea, Stenorrhipis, Stephandium, Stephaniella, Stephaniellidium, Stephensoniella, Symphyogyna, Symphyogynopsis, Symphyomitra, Synhymenium, Syzygiella, Taeniolejeunea, Targionia, Tegulifolium, Telaranea, Thallocarpus, Treubia, Triandrophyllum, Trichocolea, Trichocoleopsis, Trichostylium, Trichotemnoma, Trilophozia, Tritomaria, Tylimanthus, Vanaea, Vandiemenia, Verdoornia, Vetaforma, Wettsteinia, Wiesnerella, Xenochila, Xenothallus, Zoopsidella, Zoopsis.
[00075] Segundo uma outra forma de execução preferida de acordo com a invenção, uma, várias ou todas as plantas são um ou mais musgo(s) decíduo(s) selecionado(s) do grupo que consiste nos gêneros: Abietinella, Acanthocladiella, Acanthocladium, Acanthodium, Acanthorrhynchium, Acaulon, Acaulonopsis, Achrophyllum, Acidodontium, Acrocladium, Acroporium, Acroschisma, Actinodontium, Actinothuidium, Adelothecium, Aequatoriella, Aerobryidium, Aerobryopsis, Aerobryum, Aerolindigia, Algaria, Aligrimmia, Alleniella, Allioniellopsis, Aloina, Aloinella, Alophosia, Alsia, Amblyodon, Amblyodum, Amblystegiella, Amblystegium, Amblytropis, Ambuchanania, Amphidium, Amphoridium, Amphoritheca, Anacalypta, Anacamptodon, Anacolia, Ancistrodes, Andoa, Andreaea, Andreaeobryum, Anictangium, Anisothecium, Anodon, Anodontium, Anoectangium, Anomobryum, Anomodon, Antitrichia, Aongstroemia, Aongstroemiopsis, Apalodium, Aphanorrhegma, Apiocarpa, Aplodon, Apterygium, Aptychella, Aptychopsis, Aptychus, Arbuscula, Arbusculohypopterygium, Archephemeropsis, Archidium, Arctoa, Argyrobryum, Arthrocormus, Aschisma, Aschistodon, Asteriscium, Astomiopsis, Astomum, Astrodontium, Astrophyllum, Atractylocarpus, Atrichopsis, Atrichum, Aulacomitrium, Aulacomnium, Aulacopilum, Austinella, Austrohondaella, Austrophilibertiella, Baldwiniella, Barbella, Barbellopsis, Barbula, Bartramia, Bartramiopsis, Beeveria, Bellibarbula, Benitotania, Bestia, Bissetia, Blindia, Boulaya, Brachelyma, Brachydontium, Brachymenium, Brachymitrion, Brachyodus, Brachysteleum, Brachytheciastrum, Brachytheciella, Brachythecium, Brachytrichum, Braithwaitea, Braunfelsia, Braunia, Breidleria, Breutelia, Brothera, Brotherella, Brotherobryum, Bruchia, Bryhnia, Brymela, Bryoandersonia, Bryobeckettia, Bryobrittonia, Bryobrothera, Bryoceuthospora, Bryochenea, Bryocrumia, Bryodixonia, Bryodusenia, Bryoerythrophyllum, Bryohaplocladium, Bryohumbertia, Bryomaltaea, Bryomanginia, Bryomnium, Bryonoguchia, Bryonorrisia, Bryophixia, Bryosedgwickia, Bryostreimannia, Bryotestua, Bryum, Buckiella, Bucklandiella, Burnettia, Buxbaumia, Callialaria, Callicladium, Callicosta, Callicostella, Callicostellopsis, Calliergidium, Calliergon, Calohypnum, Calymperastrum, Calymperes, Calymperidium, Calymperopsis, Calyptopogon, Calyptothecium, Calyptrochaeta, Camptochaete, Camptodontium, Camptothecium, Campyliadelphus, Campylidium, Campylium, Campylodontium, Campylophyllum, Campylopodiella, Campylopodium, Campylopus, Campylostelium, Canalohypopterygium, Cardotia, Cardotiella, Caribaeohypnum, Catagoniopsis, Catagonium, Catharinea, Catharinella, Catharomnion, Catoscopium, Cecalyphum, Ceratodon, Ceuthospora, Ceuthotheca, Chaetomitrella, Chaetomitriopsis, Chaetomitrium, Chaetophora, Chamaebryum, Chamberlainia, Chameleion, Cheilothela, Chenia, Chileobryon, Chionoloma, Chionostomum, Chorisodontium, Chryso- hypnum, Chrysoblastella, Chrysocladium, Chrysohypnum, Cinclidium, Circulifolium, Cirriphyllum, Cladastomum, Cladomnion, Cladophascum, Cladopodanthus, Cladopodanthus, Claopodium, Clasmatodon, Clastobryella, Clastobryophilum, Clastobryopsis, Clastobryum, Clavitheca, Cleistocarpidium, Cleistostoma, Climacium, Cnestrum, Codonoblepharon, Codonoblepharum, Codriophorus, Coelidium, Coleochaetium, Colobodontium, Conardia, Conomitrium, Conostomum, Coscinodon, Coscinodontella, Costesia, Craspedophyllum, Cratoneurella, Cratoneuron, Cratoneuropsis, Crosbya, Crossidium, Crossomitrium, Crumia, Crumuscus, Cryhphaea, Cryphaeadelphus, Cryptocarpon, Cryptodicranum, Cryptogonium, Cryptoleptodon, Cryptopapillaria, Cryptopodia, Cryptopodium, Cryptotheca, Ctenidiadelphus, Ctenidium, Ctenium, Cupressina, Curvicladium, Curviramea, Cyathophorella, Cyathophorum, Cyclodictyon, Cygniella, Cylicocarpus, Cynodon, Cynodontiella, Cynodontium, Cynontodium, Cyrto-hypnum, Cyrtomnium, Cyrtopodendron, Daltonia, Dasymitrium, Dawsonia, Dendro-hypnum, Dendroalsia, Dendrocyathophorum, Dendrohypopterygium, Dendroligotrichum, Dermatodon, Desmatodon, Desmotheca, Dialytrichia, Diaphanophyllum, Dichelodontium, Dichelyma, Dichodontium, Dicladiella, Dicnemoloma, Dicranella, Dicranodon, Dicranodontium, Dicranoloma, Dicranoweisia, Dicranum, Didymodon, Dimerodontium, Dimorphocladon, Diobelon, Diobelonella, Diphascum, Diphyscium, Diplocomium, Diploneuron, Diplostichum, Discelium, Discophyllum, Dissodon, Distichia, Distichium, Distichophyllidium, Distichophyllum, Ditrichopsis, Ditrichum, Dixonia, Dolichomitra, Dolichomitriopsis, Dolotortula, Donnellia, Donrichardsia, Dorcadion, Dozya, Drepanium, Drepano-hypnum, Drepanocladus, Drepanophyllaria, Drepanophyllum, Drummondia, Dryptodon, Dusenia, Duthiella, Eccremidium, Echinodiopsis, Echinodium, Echinophyllum, Ectropotheciella, Ectropotheciopsis, Ectropothecium, Eleutera, Elharveya, Elmeriobryum, Elodium, Encalypta, Endotrichella, Endotrichellopsis, Endotrichum, Entodon, Entosthodon, Entosthymenium, Eobruchia, Eohypopterygiopsis, Eoleucodon, Eosphagnum, Ephemerella, Ephemeridium, Ephemeropsis, Ephemerum, Epipterygium, Eremodon, Eriodon, Eriopus, Erpodium, Erythrobarbula, Erythrodontium, Erythrophyllastrum, Erythrophyllopsis, Erythrophyllum, Esenbeckia, Eucamptodontopsis, Eucatagonium, Eucladium, Euephemerum, Eumyurium, Euptychium, Eurhynchiadelphus, Eurhynchiastrum, Eurhynchiella, Eurhynchium, Eurohypnum, Eustichia, Euzygodon, Exodictyon, Exostratum, Exsertotheca, Fabroleskea, FabroniaIschyrodon, Fabronidium, Fallaciella, Fauriella, Felipponea, Fiedleria, FifeaIsotheciadelphus, Fissidens, Flabellidium, Fleischerobryum, Floribundaria, Florschuetziella, Flowersia, Fontinalis, Foreauella, Forsstroemia, Frahmiella, Funaria, Funariella, Gammiella, Ganguleea, Garckea, Garovaglia, Gasterogrimmia, Geheebia, Gemmabryum, Georgia, Gertrudia, Gertrudiella, Gigaspermum, Giraldiella, Globulina, Globulinella, Glossadelphus, Glyphomitrium, Glyphomitrium, Glyphothecium, Glyptothecium, Gollania, Gongronia, Goniobryum, Goniomitrium, Gradsteinia, Grimmia, Groutiella, Guembelia, Guerramontesia, Gymnostomiella, Gymnostomum, Gyroweisia, Habrodon, HabrodonIshibaeaIwatsukiella, Hageniella, Hamatocaulis, Hampeella, Hampeohypnum, Handeliobryum, Haplocladium, Haplodon, Haplodontium, Haplohymenium, Haptymenium, Harpidium, Harpophyllum, Harrisonia, Harveya, HebantiaItatiella, Hedenaesia, Hedenasiastrum, Hedwigia, Hedwigidium, Helicoblepharum, Helicodontiadelphus, Helicodontium, Heliconema, Helicophyllum, Helodium, Hemiragis, Henicodium, Hennediella, Herpetineuron, Herzogiella, Heterocladium, Heterodon, Heterophyllium, Hildebrandtiella, Hilpertia, Himantocladium, Holoblepharum, Holodontium, Holomitriopsis, Holomitrium, Homalia, Homaliadelphus, Homaliodendron, Homaliopsis, Homalotheciella, Homalothecium, Homomallium, Hondaella, Hookeria, Hookeriopsis, Horikawaea, Horridohypnum, Husnotiella, Hyalophyllum, HydrocryphaeaIsodrepanium, Hydrogonium, Hydropogon, Hydropogonella, Hygroamblystegium, Hygrodicranum, Hygrohypnella, Hygrohypnum, Hylocomiadelphus, Hylocomiastrum, Hylocomiopsis, Hylocomium, Hymenodon, Hymenodontopsis, Hymenoloma, Hymenostomum, Hymenostyliella, Hymenostylium, Hyocomium, Hyophila, Hyophiladelphus, Hyophilopsis, Hypnella, Hypnites, Hypnobartlettia, Hypnodendron, Hypnum, Hypodontium, Hypopterygium, Imbribryum, Indopottia, Indothuidium, Indusiella, Inouethuidium, Isopterygiopsis, Isopterygium, Isotheciopsis, Isothecium, Jaegerina, Jaegerinopsis, Jaffueliobryum, Juratzkaeella, Kiaeria, Kindbergia, Kingiobryum, Kleioweisiopsis, Koponenia, Kurohimehypnum, Lamprophyllum, Leersia, Leiodontium, Leiomela, Leiomitrium, Leiotheca, Lembophyllum, Lepidopilidium, Lepidopilum, Leptangium, Leptobarbula, Leptobryum, Leptocladiella, Leptocladium, Leptodictyum, Leptodontiella, Leptodontiopsis, Leptodontium, Leptohymenium, Leptophascum, Leptopterigynandrum, Leptostomopsis, Leptostomum, Leptotheca, Leptotrichella, Leptotrichum, Lepyrodon, Lepyrodontopsis, Leratia, Leratiella, Lescuraea, Leskea, Leskeadelphus, Leskeella, Leskeodon, Leskeodontopsis, Lesquereuxia, Leucobryum, Leucodon, Leucodontella, Leucolepis, Leucoloma, Leucomium, Leucoperichaetium, Leucophanella, Leucophanes, Levierella, Limbella, Limnobium, Limprichtia, Lindbergia, Lindigia, Loeskeobryum, Loeskypnum, Loiseaubryum, Looseria, Lophiodon, Lopidium, Lorentzia, Lorentziella, Loxotis, Ludorugbya, Luisierella, Lyellia, Macgregorella, Macouniella, Macrocoma, Macrodictyum, Macrohymenium, Macromitrium, Macrosporiella, Macrothamniella, Macrothamnium, Mamillariella, Mandoniella, Maschalanthus, Maschalocarpus, Mastopoma, Matteria, Meesia, Meiotheciella, Meiotheciopsis, Meiothecium, Meiotrichum, Merceya, Merceyopsis, Mesochaete, Mesonodon, Mesotus, Metadistichophyllum, Metaneckera, Meteoridium, Meteoriella, Meteoriopsis, Meteorium, Metzlerella, Metzleria, Micralsopsis, Microbryum, Microcampylopus, Microcrossidium, Microctenidium, Microdus, Microeurhynchium, Micromitrium, Micropoma, Microthamnium, Microtheciella, Microthuidium, Miehea, Mielichhoferia, Mildea, Mildeella, Mitrobryum, Mittenia, Mittenothamnium, Mitthyridium, Mniadelphus, Mniobryum, Mniodendron, Mniomalia, Moenkemeyera, Molendoa, Mollia, Morinia, Moseniella, Muelleriella, Muellerobryum, Muscoflorschuetzia, Muscoherzogia, Myrinia, Myurella, Myuriopsis, Myurium, Myuroclada, Nanobryum, Nanomitriopsis, Nanomitrium, Neckera, Neckeradelphus, Neckerites, Neckeropsis, Nematocladia, Neodolichomitra, Neomacounia, Neorutenbergia, Nogopterium, Ochrobryum, Oedipodium, Neobarbella, Neohyophila, Neomeesia, Neosharpiella, Noguchiodendron, Neocardotia, Neolescuraea, Neonoguchia, Niphotrichum, Notoligotrichum, Ochyraea, Octodiceras, Oedicladium, Okamuraea, Oligotrichum, Neodicladiella, Neolindbergia, Neophoenix, Nobregaea, Ochiobryum, Oedipodiella, Oncophorus, Oreas, Oreoweisia, Orontobryum, Orthoamblystegium, Orthodicranum, Orthodon, Orthodontium, Orthodontopsis, Orthogrimmia, Orthomitrium, Orthomnion, Orthomniopsis, Orthopus, Orthopyxis, Orthorrhynchidium, Orthorrhynchium, Orthostichella, Orthostichidium, Orthostichopsis, Orthotheciella, Orthothecium, Orthothecium, Orthothuidium, Orthotrichum, Osterwaldiella, Oticodium, Oxyrrhynchium, Oxystegus, Pachyneuropsis, Pachyneurum, Palaeocampylopus, Palamocladium, Palisadula, Paludella, Palustriella, Panckowia, Pancovia, Papillaria, Papillidiopsis, Paraleucobryum, Paramyurium, Pararhacocarpus, Parisia, Pelekium, Pendulothecium, Pentastichella, Penzigiella, Peromnion, Pharomitrium, Phasconica, Phascopsis, Phascum, Philibertiella, Philonotis, Philophyllum, Photinophyllum, Phyllodon, Phyllodrepanium, Phyllogonium, Physcomitrella, Physcomitrium, Physedium, Picobryum, Pictus, Piloecium, Pilopogon, Pilopogonella, Piloseriopus, Pilotrichella, Pilotrichidium, Pilotrichum, Pinnatella, Pirea, Pireella, Plagiobryoides, Plagiobryum, Plagiomnium, Plagiopus, Plagioracelopus, Plagiothecium, Plasteurhynchium, Platydictya, Platygyriella, Platygyrium, Platyhypnidium, Platyhypnum, Platyloma, Platylomella, Platyneuron, Plaubelia, Pleuriditrichum, Pleuridium, Pleurochaete, Pleurophascum, Pleuropus, Pleurorthotrichum, Pleuroweisia, Pleurozium, Pleurozygodon, Pocsiella, Podperaea, Poecilophyllum, Pogonatum, Pohlia, Polla, Polymerodon, Polypodiopsis, Polytrichadelphus, Polytrichastrum, Polytrichites, Polytrichum, Porothamnium, Porotrichella, Porotrichodendron, Porotrichopsis, Porotrichum, Potamium, Pottia, Pottiopsis, Powellia, Powelliopsis, Pringleella, Prionidium, Prionodon, Pseudatrichum, Pseudephemerum, Pseudisothecium, Pseudoamblystegium, Pseudobarbella, Pseudobraunia, Pseudobryum, Pseudocalliergon, Pseudocampylium, Pseudochorisodontium, Pseudocrossidium, Pseudodimerodontium, Pseudodistichium, Pseudoditrichum, Pseudohygrohypnum, Pseudohyophila, Pseudohypnella, Pseudoleskea, Pseudoleskeella, Pseudoleskeopsis, Pseudopiloecium, Pseudopilotrichum, Pseudopleuropus, Pseudopohlia, Pseudopterobryum, Pseudoracelopus, Pseudorhynchostegiella, Pseudoscleropodium, Pseudosymblepharis, Pseudotimmiella, Pseudotrismegistia, Psilopilum, Pterigynandrum, Pterobryella, Pterobryidium, Pterobryon, Pterobryopsis, Pterogoniadelphus, Pterogonidium, Pterogoniella, Pterogonium, Pterygoneurum, Pterygophyllum, Ptilium, Ptychodium, Ptychomitriopsis, Ptychomitrium, Ptychomniella, Ptychomnion, Ptychostomum, Puiggaria, Puiggariella, Puiggariopsis, Pulchrinodus, Pungentella, Pursellia, Pylaisia, Pylaisiadelpha, Pylaisiella, Pylaisiobryum, Pyramidula, Pyramitrium, Pyromitrium, Pyrrhobryum, Quaesticula, Racelopodopsis, Racelopus, Racomitrium, Racopilum, Radulina, Raineria, Rauia, Rauiella, Regmatodon, Reimersia, Remyella, Renauldia, Rhabdodontium, Rhabdoweisia, Rhacocarpus, Rhacopilopsis, Rhamphidium, Rhaphidorrhynchium, Rhaphidostegium, Rhaphidostichum, Rhexophyllum, Rhizofabronia, Rhizogonium, Rhizohypnum, Rhizomnium, Rhizopelma, Rhodobryum, Rhyncho-hypnum, Rhynchostegiella, Rhynchostegiopsis, Rhynchostegium, Rhystophyllum, Rhytidiadelphus, Rhytidiastrum, Rhytidiopsis, Rhytidium, Richardsiopsis, Rigodiadelphus, Roellia, Rosulabryum, Rottleria, Rutenbergia, Saelania, Sagenotortula, Sainthelenia, Saitoa, Saitobryum, Saitoella, Sanionia, Saproma, Sarconeurum, Sarmentypnum, Sasaokaea, Sauloma, Scabridens, Schimperella, Schimperobryum, Schistidium, Schistomitrium, Schistophyllum, Schistostega, Schizomitrium, Schizymenium, Schliephackea, Schlotheimia, Schraderobryum, Schwetschkea, Schwetschkeopsis, Sciadocladus, Sciaromiella, Sciaromiopsis, Sciaromium, Sciuro- hypnum, Sclerodontium, Sclerohypnum, Scleropodiopsis, Scleropodium, Scopelophila, Scorpidium, Scorpiurium, Scouleria, Scytalina, Sebillea, Sehnemobryum, Sekra, Seligeria, Sematophyllites, Sematophyllum, Semibarbula, Serpoleskea, Serpotortella, Sharpiella, Shevockia, Sigmatella, Simophyllum, Simplicidens, Sinocalliergon, Sinskea, Skitophyllum, Skottsbergia, Solmsia, Solmsiella, Sorapilla, Sphaerangium, Sphaerocephalus, Sphaerothecium, Sphagnum, Spiridentopsis, Spirula, Splachnum, Sporledera, Spruceella, Squamidium, Stableria, Steerecleus, Steereobryon, Stegonia, Stellariomnium, Stenocarpidiopsis, Stenodesmus, Stenodictyon, Stenotheciopsis, Stenothecium, Steppomitra, Stereodon, Stereodontopsis, Stereohypnum, Steyermarkiella, Stokesiella, Stonea, Stoneobryum, Straminergon, Straminergon, Streblopilum, Streblotrichum, Streimannia, Strephedium, Streptocalypta, Streptocolea, Streptopogon, Streptotrichum, Stroemia, Strombulidens, Struckia, Struckia, Stylocomium, Swartzia, Symblepharis, Symphyodon, Symphysodon, Symphysodontella, Syntrichia, Syrrhopodon, Systegium, Taiwanobryum, Takakia, Tamariscella, Taxicaulis, Taxiphyllum, Taxithelium, Tayloria, Teichodontium, Teniolophora, Teretidens, Terrestria, Tetracoscinodon, Tetraphidopsis, Tetraphis, Tetraplodon, Tetrapterum, Tetrastichium, Tetrodontium, Thamniella, Thamniopsis, Thamnium, Thamnobryum, Thamnomalia, Thelia, Thiemea, Thuidiopsis, Thuidium, Thyridium, Thysanomitrion, Timmia, Timmiella, Timokoponenia, Toloxis, Tomentypnum, Tortella, Tortula, Touwia, Touwiodendron, Trachybryum, Trachycarpidium, Trachycladiella, Trachycystis, Trachyloma, Trachymitrium, Trachyodontium, Trachyphyllum, Trachythecium, Trachyxiphium, Trematodum, Trichodon, Trichodontium, Tricholepis, Trichosteleum, Trichostomopsis, Trichostomum, Tridontium, Trigonodictyon, Tripterocladium, Triquetrella, Trismegistia, Tristichium, Tuerckheimia, Uleastrum, Uleobryum, Ulota, Unclejackia, Valdonia, Venturiella, Verrucidens, Vesicularia, Vesiculariopsis, Vetiplanaxis, Viridivellus, Vittia, Voitia, Vrolijkheidia, Warburgiella, Wardia, Warnstorfia, Webera, Weisiodon, Weisiopsis, Weissia, Weissiodicranum, Werneriobryum, Weymouthia, Wijkia, Wildia, Willia, Wilsoniella, Yunnanobryon, Zelometeorium, Zygodon, Zygotrichia.
[00076] De acordo com um outro modo de execução preferido do uso de acordo com a invenção, uma, várias ou todas as plantas são um ou mais musgos antroceróticos selecionados do grupo que consiste nos gêneros: Anthoceros, Dendroceros, Folioceros, Hattorioceros, Leiosporoceros, Megaceros, Mesoceros, Nothoceros, Notothylas, Paraphymatoceros, Phaeoceros, Phaeomegaceros, Phymatoceros, Sphaerosporoceros.
[00077] Um modo de execução preferido se refere a um uso como aqui descrito, em que a reação de biocimentação não é uma reação exotérmica. No contexto deste texto, uma reação exotérmica é uma reação na qual, sob pressão constante, a energia na forma de calor é liberada no ambiente, de preferência uma reação na qual, à pressão constante, a temperatura dos edutos, das etapas intermediárias e/ou dos produtos aumenta durante a reação de biocimentação em mais de 5°C, mais preferentemente em mais de 10, 20, 30, 40, 50, 60, 70, 80, 90 ou 100 ° C (em relação à temperatura inicial antes do início da reação de biocimentação.
[00078] Um outro aspecto da presente invenção se refere a um método para inibir ou reduzir o crescimento de plantas, de preferência o crescimento de ervas daninhas, sobre/em um substrato que consiste em ou compreende as seguintes etapas: (a) Identificação de um substrato a ser tratado, sobre o qual/no qual um crescimento de plantas, de preferência um crescimento de ervas daninhas, deve ser inibido ou impedido, (b) Preparação de uma mistura (como acima definida), (c) Aplicação e/ou introdução da mistura preparada na etapa (b) sobre/no substrado a ser tratado, em uma quantidade suficiente para permitir uma biocimentação, e (d) Formação de uma camada de biocimento (conforme definido acima), de modo a inibir ou reduzir o crescimento de plantas ou o crescimento de ervas daninhas sobre o substrato/no substrato.
[00079] De acordo com um modo de execução preferido do método de acordo com a invenção, na etapa (c) ocorre (apenas) uma aplicação da mistura fornecida na etapa (b) sobre/no substrato a ser tratado. De acordo com um outro modo de execução preferido do método de acordo com a invenção, na etapa (c) ocorre uma aplicação e depois introdução, por exemplo por misturação, da mistura fornecida na etapa (b) sobre o/no substrato a ser tratado.
[00080] De acordo com um outro modo de execução preferido do método de acordo com a invenção, na etapa (c) ocorre (apenas) uma aplicação da mistura fornecida na etapa (b) sobre o/no substrato a ser tratado.
[00081] De acordo com um outro modo de execução preferido do método de acordo com a invenção, o substrato ou partes dele identificados na etapa (a) são removidos do local original, misturados com a mistura fornecida na etapa (b) em uma quantidade que é suficiente para permitir a biocimentação (por exemplo, um misturador), a mistura resultante é retornada ao local original do substrato (ou alternativamente movida para um outro local onde uma camada de biocimento deve ser formada), seguida pela etapa (d) conforme descrito aqui. Em um tal modo de execução preferido, é omitida a etapa (c) do processo como aqui descrito.
[00082] Dependendo da forma (sólida, ou em pó, ou líquida, ou gelatinosa, ou pastosa) da mistura fornecida na etapa (b) do processo de acordo com a invenção (comparar aqui com as instruções acima), a aplicação e/ou introdução na etapa (c) pode ser feita de diferentes maneiras. As misturas em pó podem, por exemplo, ser espalhadas no substrato a ser tratado e/ou incorporadas ao substrato. As misturas líquidas, por exemplo, são vertidas ou pulverizadas sobre o substrato a ser tratado e, opcionalmente, subsequentemente incorporadas ao substrato. Vantajosamente, normalmente uma única aplicação e/ou introdução da mistura fornecida na etapa (b) sobre o/no substrato a ser tratado é suficiente para formar uma camada de biocimento, conforme definido na etapa (d) do método de acordo com a invenção. De preferência, uma única aplicação da mistura fornecida na etapa (b) sobre o substrato/ no substrato a ser tratado é suficiente para formar uma camada de biocimento, conforme definido na etapa (d) do método de acordo com a invenção.
[00083] É do conhecimento de um especialista na técnica que uma biocimentação (conforme aqui definido) no processo de acordo com a invenção decorre de maneira particularmente eficiente a um volume de aplicação específico ou a uma concentração específica da mistura da etapa (b) (ver também os números de células preferidos do organismo ou dos organismos na mistura a ser empregada de acordo com a invenção como acima definido). De acordo com nossas próprias investigações, o volume de aplicação da mistura a ser usada de acordo com a invenção (conforme definido acima) de preferência é de pelo menos 0,1 l/m2, mais preferencialmente de pelo menos 0,5 l/m2, mais preferencialmente de pelo menos 1,0 l/m2, mais preferencialmente de pelo menos 2,0 l/m2, pelo menos 3,0 l/m2, pelo menos 4,0 l/m2 ou pelo menos 5,0 l/m2, e/ou de preferência no máximo 20,0 l/m2, ainda mais preferido, no máximo 10,0 l/m2.
[00084] Para um processo de biocimentação eficaz na etapa (d) do processo de acordo com a invenção, é vantajoso que o sistema da mistura e do substrato a ser utilizado de acordo com a invenção (conforme aqui definido) tenha um teor de água superior a 10% em peso, com base no peso total do referido sistema. Se a mistura a ser utilizada de acordo com a invenção for usada na etapa (b) do processo de acordo com a invenção na forma de pó (conforme definido acima), e também se o substrato na etapa (a) ou (c) do processo de acordo com a invenção for essencialmente anidro, de modo a resultar em um teor de água do referido sistema de 10% em peso ou menos, com base no peso total do sistema, então é vantajoso quando o processo de acordo com a invenção compreende uma outra etapa, na qual ou é adicionada água ou uma solução aquosa suficiente à mistura da etapa (b) do processo, antes ou após a aplicação ou a introdução sobre o substrato/ no substrato a ser tratado, de modo que resulte um teor de água do mencionado sistema superior a 10 % em peso com base no peso total do referido sistema. Alternativamente ou simultaneamente, uma quantidade apropriada de água ou de solução aquosa pode ser adicionada ao substrato a ser tratado antes ou após a aplicação ou introdução da mistura fornecida na etapa (b) do processo de acordo com a invenção.
[00085] Além disso, ao se utilizar o método de acordo com a invenção na área externa, por exemplo, é vantajoso não executar o método em caso de chuva ou ventos fortes. A chuva ou o vento forte, sob certas circunstâncias, podem levar a uma perda ou diluição considerável da mistura a ser usada de acordo com a invenção, mesmo antes da formação da camada de biocimento (etapa (d), o que poderia impedir a formação da camada de biocimento ou influenciar negativamente sua resistência. Após a aplicação ou incorporação da mistura preparada na etapa (b) do processo de acordo com a invenção sobre/no substrato a ser tratado, isto é, na etapa (d) do processo de acordo com a invenção, ocorre a formação da camada de biocimento, de preferência por um espaço de tempo de incubação de pelo menos 6 horas, de preferência de pelo menos 24 horas, ainda mais preferido de pelo menos 48 horas, durante as quais de preferência não ocorre nenhuma quantidade de chuva, ou vento, ou irrigação artificial, o que levaria a uma significativa perda da mistura utilizada de acordo com a invenção. O período de incubação necessário para a formação da camada de biocimento na etapa (d) do processo de acordo com a invenção depende de vários parâmetros ambientais, como por exemplo a temperatura ambiente ou externa e a umidade, e o volume de aplicação da mistura utilizado. Caso, durante o referido período de incubação de pelo menos 6 horas, de preferência de pelo menos 24 horas, ainda mais preferido de pelo menos 48 horas, ocorrer, por chuva ou vento, uma perda significativa da mistura utilizada de acordo com a invenção, é vantajoso repetir as etapas (b) a (d) do processo de acordo com a invenção quantas vezes for necessário, de preferência uma, duas, três ou mais vezes, até que seja alcançada uma espessura e resistência suficientes da camada de biocimento para inibir ou reduzir o crescimento das plantas, de preferência o crescimento de ervas daninhas sobre/no substrato. Além disso, ou alternativamente, pode ser vantajoso repetir as etapas (b) até (d) do processo de acordo com a invenção, de preferência repetir uma, duas, três ou mais vezes, caso a espessura e/ou a resistência da camada de biocimento formada sobre/no substrato ao longo do tempo diminua devido ao intemperismo e/ou à degradação natural do substrato, e por isso não sendo mais suficiente para impedir ou reduzir o crescimento das plantas, de preferência o crescimento de ervas daninhas, sobre o substrato/no substrato.
[00086] A espessura da camada de biocimento pode ser determinada por medição manual com o auxílio de um paquímetro após fratura mecânica da camada. Alternativamente, dependendo da espessura da solidificação, podem ser usados diferentes métodos de medição (não destrutivos) na construção, agricultura, geologia ou outros campos de aplicação (por exemplo, MIT-SCAN-T2 portátil). A espessura da camada de biocimento compreende a área do substrato que é solidificada pela adição da mistura.
[00087] A resistência da camada de biocimento corresponde à força de ruptura (em Newtons (N)) que deve ser usada para romper a camada de biocimento. A ruptura da camada de biocimentação é o ponto em que não ocorre mais nenhuma deformação (plástica) da camada sob atuação de força, mas por ruptura da camada (de biocimentação). Reconhece-se a ruptura por uma redução da força medida. A força de ruptura (valor máximo da medição da força) pode ser determinada com o auxílio do seguinte método: O método baseia- se no método de teste padronizado para a determinação da resistência no cimento DIN EN 196-1: 2005-05. A força de ruptura pode ser medida por meio de um dispositivo de medição de força digital (fracionário) de acordo com o fabricante. Um espécime de teste é pressionado na amostra (até a quebra) por meio de um equipamento de teste de manivela e a força aplicada é medida continuamente. A partir de várias medições (> 3), é calculada a força de ruptura média. A força de ruptura média está de preferência entre 0,5 e 1000 N, mais preferivelmente entre 3 e 300 N.
[00088] Além disso, é preferido um método como o aqui descrito, em que a camada de biocimento formada (na etapa (d) do processo de acordo com a invenção) possui um coeficiente de permeabilidade (à água) superior a 10-9 até 100 m/s, de preferência superior a 10-9 até 103 m/s, mais preferencialmente maior que 10-8 até 10-3 m/s.
[00089] Opcionalmente, após a etapa (d) do método de acordo com a invenção, pode ocorrer uma outra etapa (e), que compreende ou consiste, preferentemente, no controle de se o crescimento das plantas, de preferência de ervas daninhas, foi inibido ou reduzido. O referido controle pode, por exemplo, ser realizado determinando o grau de cobertura do crescimento da planta ou da erva daninha por avaliação visual manual, conforme descrito nos exemplos a seguir. A etapa (e) do método de acordo com a invenção pode ser repetida em intervalos regulares, por exemplo a cada 24 ou 48 horas, se necessário.
[00090] É preferido um método como descrito acima, em que o substrato é selecionado do grupo que consiste em areia, terra, de preferência terra de solo, e terra de plantio, húmus, brita, cascalho, barro, argila, silte, serragem, papel, papelão, cartão, madeira macia, calcário, carvão e suas misturas.
[00091] Mais preferentemente, o substrato usado no método de acordo com a invenção é selecionado do grupo que consiste em material orgânico e inorgânico, assim como de formas misturadas dos mesmos, nos quais é possível o crescimento de plantas, de preferência areia para cabos, areia fina, areia natural, areia de quartzo, areia de cristal de quartzo, areia para pássaros, areia de cascalho, areia para juntas, areia triturada, pó de quartzo, mistura mineral (pedra, areia, cascalho), Triple Hell, farinha de pedra Savonniere, gesso, loess (sedimento amarelo), solo mãe ou solo superficial, areia britada de calcário, pó de calcário, carbonato de cálcio (incluindo polimorfos, derivados e formas mistas, bem como (carbonato de cálcio moído do GCC) de base natural), e PCC sintético (carbonato de cálcio precipitado) talco, dolomita, cal branca (hidrato), trass, cimentos e misturas, microssilicatos, giz (mistura), mármore, perlita, sais de abraum, halde (monte de materiais), hematita, ocre vermelho, magnesita, minério de ferro, esteatita, pedra sabão, caulim, marga, argila, atapulgita, minerais argilosos, bentonita, zeólito, estuque (calco), gravilha (decomposição), farinha de vidro, óxido de alumínio, hidróxido de alumínio, óxido de magnésio, óxido de cálcio, hidróxido de cálcio, magnesita, pó de ardósia, pedras-pome, cristobalita (areia), cimento romano, bauxita, pirita, esfalerita, silicatos, óxidos, carbonatos, aparas de madeira, cobertura para solo, solo aluvial, laterita, hematita, cinzas (cinzas de madeira, cinzas volantes, cinzas ósseas), solo (para suínos), solos padrão LUFA (ver p.ex. http://www.lufa-speyer.de, ou suas misturas.
[00092] Mais preferentemente, um método como descrito acima, em que o substrato é um terreno ou superfície útil, de preferência no campo, como por exemplo uma área de jardim (residencial), uma superfície conjunta de terraços ou entradas e saídas, terras aráveis, um pomar, uma área para viticultura, uma área aberta recreativa de escolas, um parque, uma parte de uma propriedade urbana ou área urbana, uma entrada de automóveis, uma rua, uma calçada, uma linha ferroviária ou uma área que é utilizada industrialmente.
[00093] Dependendo das propriedades do substrato a ser tratado, pode ser vantajoso adicionar ao substrato (ou componente (i), (ii) e/ou (iii) da mistura fornecida na etapa (b)) um ou mais dos aditivos acima, por exemplo para melhorar a reatividade do substrato com o biocimento formado durante o processo de acordo com a invenção. Isso vantajosamente leva a uma camada de biocimento particularmente dura ou estável que inibe o crescimento de ervas daninhas de maneira particularmente eficaz.
[00094] O processo de acordo com a invenção permite, por exemplo, fechar as áreas de terraços, entradas e saídas de carros, calçadas, ruas ou calçadas ou áreas abertas com o auxílio de biocimento, e assim inibir efetivamente o crescimento de plantas, de preferência de ervas daninhas, nesses substratos. Também é possível uma aplicação do processo de acordo com a invenção para a supressão de ervas daninhas na agricultura, por exemplo em áreas utilizáveis no cultivo de grãos ou frutas.
[00095] Um modo de execução preferido se refere, portanto, a um processo de acordo com a invenção, como descrito aqui, em que a camada de biocimento formada na etapa (d) permite o crescimento (adicional) de plantas de cultura, mas inibe ou reduz o crescimento de novas ervas daninhas.
[00096] É preferido um processo como descrito acima, em que a planta ou a erva daninha é selecionada do grupo que consiste em dicotiledôneas dos gêneros: Abutilon, Aegopodium, Aethusa, Amaranthus, Ambrosia, Anachusa, Anagallis, Anoda, Anthemis, Aphanes, Arabidopsis, Atriplex, Barbarea, Bellis, Bidens, Bunias, Capsella, Carduus, Cassia, Centaurea, Chenopodium, Chrysanthemum, Cirsium, Conium, Conyza, Consolida, Convolvulus, Datura, Descurainia, Desmodium, Emex, Equisetum, Erigeron, Erodium, Erysimum, Euphorbia, Fumaria, Galeopsis, Galinsoga, Galium, Geranium, Heracleum, Hibiscus, Ipomoea, Kochia, Lamium, Lapsana, Lathyrus, Lepidium, Lithoserpermum, Linaria, Lindernia, Lycopsis, Malva, Matricaria, Mentha, Mercurialis, Mullugo, Myosotis, Papaver, Pharbitis, Plantago, Polygonum, Portulaca, Ranunculus, Raphanus, Rorippa, Rotala, Rumex, Salsola, Senecio, Sesbania, Sida, Sinapis, Sisymbrium, Solanum, Sonchus, Sphenoclea, Stachys, Stellaria, Taraxacum, Thlaspi, Trifolium, Tussaligo, Urtica, Veronica, Viola, Xanthium; Dicotiledôneas dos gêneros: Arachis, Beta, Brassica, Cucumis, Cucurbita, Helianthus, Daucus, Glycine, Gossypium, Ipomoea, Lactuca, Linum, Lycopersicon, Nicotiana, Phaseolus, Pisum, Solanum, Vicia; Monocotiledôneas dos gêneros: Aegilops, Agropyron, Agrostis, Alopecurus, Apera, Avena, Brachiaria, Bromus, Cenchrus, Commelina, Cynodon, Cyperus, Dactyloctenium, Digitaria, Echinochloa, Eleocharis, Eleusine, Eragrostis, Eriochloa, Festuca, Fimbristylis, Heteranthera, Imperata, Ischaemum, Juncus, Leptochloa, Lolium, Monochoria, Panicum, Paspalum, Phalaris, Phleum, Poa, Rottboellia, Sagittaria, Scirpus, Setaria, Sorghum; e monocotiledôneas dos gêneros: Allium, Ananas, Asparagus, Avena, Hordeum, Oryza, Panicum, Saccharum, Secale, Sorghum, Triticale, Triticum, Zea; Musgos das linhas hereditárias musgos hepáticos (Marchantiosida), musgos antoceróticos (Anthocerotopsida), musgos decíduos (Bryopsida).
[00097] De acordo com um modo de execução preferido do processo de acordo com a invenção, uma, várias ou todas as plantas se tratam de uma ou mais erva(s) hepática(s) selecionada(s) do grupo que consiste nos gêneros: Acolea, Acrobolbus, Acrochila, Acromastigum, Acroscyphella, Acroscyphus, Acrostolia, Adelocolia, Aitchisoniella, Alicularia, Allisonia, Allisoniella, Alobiella, Alobiellopsis, Amazoopsis, Amphicephalozia, Amphilophocolea, Andrewsianthus, Aneura, Anomacaulis, Anomoclada, Anomylia, Anthelia, Anthelis, Aphanolejeunea, Aplozia, Apomarsupella, Apometzgeria, Apotreubia, Arachniopsis, Arctoscyphus, Arnellia, Ascidiota, Asterella, Athalamia, Austrofossombronia, Austrolembidium, Austrolophozia, Austrometzgeria, Austroscyphus, Balantiopsis, Bazzania, Blasia, Blepharidophyllum, Blepharostoma, Brevianthus, Calycularia, Calypogeia, Calyptrocolea, Campanocolea, Castanoclobos, Cavicularia, Cephalojonesia, Cephalolobus, Cephalomitrion, Cephalozia, Cephaloziella, Cephaloziopsis, Ceratolejeunea, Cesius, Chaetophyllopsis, Chiastocaulon, Chiloscyphus, Chloranthelia, Chonecolea, Cladomastigum, Cladopodiella, Clandarium, Clasmatocolea, Cololejeunea, Colura, Conocephalum, Conoscyphus, Corsinia, Cronisia, Crossogyna, Cryptochila, Cryptocolea, Cryptocoleopsis, Cryptomitrium, Cryptostipula, Cryptothallus, Cuspidatula, Cyanolophocolea, Cyathodium, Cylindrocolea, Delavayella, Dendrobazzania, Dendromastigophora, Denotarisia, Dichiton, Dinckleria, Diplocolea, Diplophyllum, Douinia, Drepanolejeunea, Drucella, Dumortiera, Dumortieropsis, Enigmella, Eocalypogeia, Eoisotachis, Eopleurozia, Eotrichocolea, Eremonotus, Eucalyx, Evansia, Evansianthus, Exormotheca, Fossombronia, Frullania, Fuscocephaloziopsis, Gackstroemia, Geocalyx, Geothallus, Gerhildiella, Goebeliella, Goebelobryum, Gongylanthus, Gottschea, Gottschelia, Greeneothallus, Grollea, Gymnanthe, Gymnocoleopsis, Gymnomitrion, Gymnoscyphus, Gyrothyra, Haesselia, Haplomitrium, Harpalejeunea, Harpanthus, Hattoria, Hattorianthus, Hattoriella, Hepatostolonophora, Herbertus, Herpetium, Herpocladium, Herzogianthus, Herzogobryum, Heterogemma, Heteroscyphus, Horikawaella, Hyalolepidozia, HygrobiellaIwatsukia, Hygrolembidium, Hygrophila, Hymenophyton, Hypoisotachis, Isolembidium, Isotachis, Jamesoniella, Jensenia, Jubula, Jubulopsis, Jungermannia, Jungermannites, Krunodiplophyllum, Kurzia, Kymatocalyx, Lamellocolea, Leiocolea, Leiomitra, Leiomylia, Leioscyphus, Lejeunea, Lembidium, Lepidogyna, Lepidolaena, Lepidozia, Leptolejeunea, Leptophyllopsis, Leptoscyphopsis, Leptoscyphus, Lethocolea, Liochlaena, Lobatiriccardia, Lophocolea, Lophonardia, Lophozia, Lophoziopsis, Lunularia, Macrodiplophyllum, Maculia, Makinoa, Mannia, Marchantia, Marchesinia, Marsupella, Marsupidium, Massula, Massularia, Mastigobryum, Mastigopelma, Mastigophora, Mastigopsis, Mesoptychia, Metacalypogeia, Metahygrobiella, Metzgeria, Metzgeriopsis, Micrisophylla, Microlejeunea, Microlepidozia, Micropterygium, Mizutania, Mnioloma, Moerckia, Monocarpus, Monoclea, Monodactylopsis, Monosolenium, Mytilopsis, Nanomarsupella, Nardia, Neesioscyphus, Neogrollea, Neohodgsonia, Neotrichocolea, Noteroclada, Nothogymnomitrion, Nothostrepta, Notoscyphus, Nowellia, Obtusifolium, Odontolejeunea, Odontoschisma, Oleolophozia, Oxymitra, Pachyglossa, Pachyschistochila, Pallavicinia, Paracromastigum, Paraschistochila, Patarola, Pedinophyllopsis, Pedinophyllum, Pellia, Peltolepsis, Perdusenia, Perssoniella, Petalophyllum, Phycolepidozia, Phyllothallia, Physiotium, Physotheca, Pisanoa, Plagiochasma, Plagiochila, Plagiochilidium, Plagiochilion, Platycaulis, Plectocolea, Pleuranthe, Pleuroclada, Pleurocladopsis, Pleurocladula, Pleurozia, Podanthe, Podomitrium, Porella, Prasanthus, Preissia, Prionolobus, Protolophozia, Protomarsupella, Protosyzgiella, Protosyzygiella, Pseudocephalozia, Pseudocephaloziella, Pseudolophocolea, Pseudolophozia, Pseudomarsupidium, Pseudoneura, Pseudotritomaria, Psiloclada, Pteropsiella, Ptilidium, Radula, Reboulia, Rhizocaulia, Rhodoplagiochila, Riccardia, Riccia, Ricciella, Ricciocarpos, Riella, Roivainenia, Ruizanthus, Ruttnerella, Saccobasis, Saccogyna, Sandeothallus, Sarcocyphos, Sarcomitrium, Sauteria, Scapania, Scaphophyllum, Schiffneria, Schisma, Schistochila, Schistochilaster, Schistochilopsis, Schofieldia, Sendtnera, Seppeltia, Sewardiella, Simodon, Solenostoma, Southbya, Sphaerocarpos, Sphagnoecetis, Sprucella, Steereella, Steereocolea, Stenorrhipis, Stephandium, Stephaniella, Stephaniellidium, Stephensoniella, Symphyogyna, Symphyogynopsis, Symphyomitra, Synhymenium, Syzygiella, Taeniolejeunea, Targionia, Tegulifolium, Telaranea, Thallocarpus, Treubia, Triandrophyllum, Trichocolea, Trichocoleopsis, Trichostylium, Trichotemnoma, Trilophozia, Tritomaria, Tylimanthus, Vanaea, Vandiemenia, Verdoornia, Vetaforma, Wettsteinia, Wiesnerella, Xenochila, Xenothallus, Zoopsidella, Zoopsis.
[00098] De acordo com um outro modo preferido do processo de acordo com a invenção, uma, várias ou todas as plantas se tratam de um ou mais musgos decíduos selecionados do grupo que consiste nos gêneros: Abietinella, Acanthocladiella, Acanthocladium, Acanthodium, Acanthorrhynchium, Acaulon, Acaulonopsis, Achrophyllum, Acidodontium, Acrocladium, Acroporium, Acroschisma, Actinodontium, Actinothuidium, Adelothecium, Aequatoriella, Aerobryidium, Aerobryopsis, Aerobryum, Aerolindigia, Algaria, Aligrimmia, Alleniella, Allioniellopsis, Aloina, Aloinella, Alophosia, Alsia, Amblyodon, Amblyodum, Amblystegiella, Amblystegium, Amblytropis, Ambuchanania, Amphidium, Amphoridium, Amphoritheca, Anacalypta, Anacamptodon, Anacolia, Ancistrodes, Andoa, Andreaea, Andreaeobryum, Anictangium, Anisothecium, Anodon, Anodontium, Anoectangium, Anomobryum, Anomodon, Antitrichia, Aongstroemia, Aongstroemiopsis, Apalodium, Aphanorrhegma, Apiocarpa, Aplodon, Apterygium, Aptychella, Aptychopsis, Aptychus, Arbuscula, Arbusculohypopterygium, Archephemeropsis, Archidium, Arctoa, Argyrobryum, Arthrocormus, Aschisma, Aschistodon, Asteriscium, Astomiopsis, Astomum, Astrodontium, Astrophyllum, Atractylocarpus, Atrichopsis, Atrichum, Aulacomitrium, Aulacomnium, Aulacopilum, Austinella, Austrohondaella, Austrophilibertiella, Baldwiniella, Barbella, Barbellopsis, Barbula, Bartramia, Bartramiopsis, Beeveria, Bellibarbula, Benitotania, Bestia, Bissetia, Blindia, Boulaya, Brachelyma, Brachydontium, Brachymenium, Brachymitrion, Brachyodus, Brachysteleum, Brachytheciastrum, Brachytheciella, Brachythecium, Brachytrichum, Braithwaitea, Braunfelsia, Braunia, Breidleria, Breutelia, Brothera, Brotherella, Brotherobryum, Bruchia, Bryhnia, Brymela, Bryoandersonia, Bryobeckettia, Bryobrittonia, Bryobrothera, Bryoceuthospora, Bryochenea, Bryocrumia, Bryodixonia, Bryodusenia, Bryoerythrophyllum, Bryohaplocladium, Bryohumbertia, Bryomaltaea, Bryomanginia, Bryomnium, Bryonoguchia, Bryonorrisia, Bryophixia, Bryosedgwickia, Bryostreimannia, Bryotestua, Bryum, Buckiella, Bucklandiella, Burnettia, Buxbaumia, Callialaria, Callicladium, Callicosta, Callicostella, Callicostellopsis, Calliergidium, Calliergon, Calohypnum, Calymperastrum, Calymperes, Calymperidium, Calymperopsis, Calyptopogon, Calyptothecium, Calyptrochaeta, Camptochaete, Camptodontium, Camptothecium, Campyliadelphus, Campylidium, Campylium, Campylodontium, Campylophyllum, Campylopodiella, Campylopodium, Campylopus, Campylostelium, Canalohypopterygium, Cardotia, Cardotiella, Caribaeohypnum, Catagoniopsis, Catagonium, Catharinea, Catharinella, Catharomnion, Catoscopium, Cecalyphum, Ceratodon, Ceuthospora, Ceuthotheca, Chaetomitrella, Chaetomitriopsis, Chaetomitrium, Chaetophora, Chamaebryum, Chamberlainia, Chameleion, Cheilothela, Chenia, Chileobryon, Chionoloma, Chionostomum, Chorisodontium, Chryso- hypnum, Chrysoblastella, Chrysocladium, Chrysohypnum, Cinclidium, Circulifolium, Cirriphyllum, Cladastomum, Cladomnion, Cladophascum, Cladopodanthus, Cladopodanthus, Claopodium, Clasmatodon, Clastobryella, Clastobryophilum, Clastobryopsis, Clastobryum, Clavitheca, Cleistocarpidium, Cleistostoma, Climacium, Cnestrum, Codonoblepharon, Codonoblepharum, Codriophorus, Coelidium, Coleochaetium, Colobodontium, Conardia, Conomitrium, Conostomum, Coscinodon, Coscinodontella, Costesia, Craspedophyllum, Cratoneurella, Cratoneuron, Cratoneuropsis, Crosbya, Crossidium, Crossomitrium, Crumia, Crumuscus, Cryhphaea, Cryphaeadelphus, Cryptocarpon, Cryptodicranum, Cryptogonium, Cryptoleptodon, Cryptopapillaria, Cryptopodia, Cryptopodium, Cryptotheca, Ctenidiadelphus, Ctenidium, Ctenium, Cupressina, Curvicladium, Curviramea, Cyathophorella, Cyathophorum, Cyclodictyon, Cygniella, Cylicocarpus, Cynodon, Cynodontiella, Cynodontium, Cynontodium, Cyrto-hypnum, Cyrtomnium, Cyrtopodendron, Daltonia, Dasymitrium, Dawsonia, Dendro-hypnum, Dendroalsia, Dendrocyathophorum, Dendrohypopterygium, Dendroligotrichum, Dermatodon, Desmatodon, Desmotheca, Dialytrichia, Diaphanophyllum, Dichelodontium, Dichelyma, Dichodontium, Dicladiella, Dicnemoloma, Dicranella, Dicranodon, Dicranodontium, Dicranoloma, Dicranoweisia, Dicranum, Didymodon, Dimerodontium, Dimorphocladon, Diobelon, Diobelonella, Diphascum, Diphyscium, Diplocomium, Diploneuron, Diplostichum, Discelium, Discophyllum, Dissodon, Distichia, Distichium, Distichophyllidium, Distichophyllum, Ditrichopsis, Ditrichum, Dixonia, Dolichomitra, Dolichomitriopsis, Dolotortula, Donnellia, Donrichardsia, Dorcadion, Dozya, Drepanium, Drepano-hypnum, Drepanocladus, Drepanophyllaria, Drepanophyllum, Drummondia, Dryptodon, Dusenia, Duthiella, Eccremidium, Echinodiopsis, Echinodium, Echinophyllum, Ectropotheciella, Ectropotheciopsis, Ectropothecium, Eleutera, Elharveya, Elmeriobryum, Elodium, Encalypta, Endotrichella, Endotrichellopsis, Endotrichum, Entodon, Entosthodon, Entosthymenium, Eobruchia, Eohypopterygiopsis, Eoleucodon, Eosphagnum, Ephemerella, Ephemeridium, Ephemeropsis, Ephemerum, Epipterygium, Eremodon, Eriodon, Eriopus, Erpodium, Erythrobarbula, Erythrodontium, Erythrophyllastrum, Erythrophyllopsis, Erythrophyllum, Esenbeckia, Eucamptodontopsis, Eucatagonium, Eucladium, Euephemerum, Eumyurium, Euptychium, Eurhynchiadelphus, Eurhynchiastrum, Eurhynchiella, Eurhynchium, Eurohypnum, Eustichia, Euzygodon, Exodictyon, Exostratum, Exsertotheca, Fabroleskea, FabroniaIschyrodon, Fabronidium, Fallaciella, Fauriella, Felipponea, Fiedleria, FifeaIsotheciadelphus, Fissidens, Flabellidium, Fleischerobryum, Floribundaria, Florschuetziella, Flowersia, Fontinalis, Foreauella, Forsstroemia, Frahmiella, Funaria, Funariella, Gammiella, Ganguleea, Garckea, Garovaglia, Gasterogrimmia, Geheebia, Gemmabryum, Georgia, Gertrudia, Gertrudiella, Gigaspermum, Giraldiella, Globulina, Globulinella, Glossadelphus, Glyphomitrium, Glyphomitrium, Glyphothecium, Glyptothecium, Gollania, Gongronia, Goniobryum, Goniomitrium, Gradsteinia, Grimmia, Groutiella, Guembelia, Guerramontesia, Gymnostomiella, Gymnostomum, Gyroweisia, Habrodon, HabrodonIshibaeaIwatsukiella, Hageniella, Hamatocaulis, Hampeella, Hampeohypnum, Handeliobryum, Haplocladium, Haplodon, Haplodontium, Haplohymenium, Haptymenium, Harpidium, Harpophyllum, Harrisonia, Harveya, HebantiaItatiella, Hedenaesia, Hedenasiastrum, Hedwigia, Hedwigidium, Helicoblepharum, Helicodontiadelphus, Helicodontium, Heliconema, Helicophyllum, Helodium, Hemiragis, Henicodium, Hennediella, Herpetineuron, Herzogiella, Heterocladium, Heterodon, Heterophyllium, Hildebrandtiella, Hilpertia, Himantocladium, Holoblepharum, Holodontium, Holomitriopsis, Holomitrium, Homalia, Homaliadelphus, Homaliodendron, Homaliopsis, Homalotheciella, Homalothecium, Homomallium, Hondaella, Hookeria, Hookeriopsis, Horikawaea, Horridohypnum, Husnotiella, Hyalophyllum, HydrocryphaeaIsodrepanium, Hydrogonium, Hydropogon, Hydropogonella, Hygroamblystegium, Hygrodicranum, Hygrohypnella, Hygrohypnum, Hylocomiadelphus, Hylocomiastrum, Hylocomiopsis, Hylocomium, Hymenodon, Hymenodontopsis, Hymenoloma, Hymenostomum, Hymenostyliella, Hymenostylium, Hyocomium, Hyophila, Hyophiladelphus, Hyophilopsis, Hypnella, Hypnites, Hypnobartlettia, Hypnodendron, Hypnum, Hypodontium, Hypopterygium, Imbribryum, Indopottia, Indothuidium, Indusiella, Inouethuidium, Isopterygiopsis, Isopterygium, Isotheciopsis, Isothecium, Jaegerina, Jaegerinopsis, Jaffueliobryum, Juratzkaeella, Kiaeria, Kindbergia, Kingiobryum, Kleioweisiopsis, Koponenia, Kurohimehypnum, Lamprophyllum, Leersia, Leiodontium, Leiomela, Leiomitrium, Leiotheca, Lembophyllum, Lepidopilidium, Lepidopilum, Leptangium, Leptobarbula, Leptobryum, Leptocladiella, Leptocladium, Leptodictyum, Leptodontiella, Leptodontiopsis, Leptodontium, Leptohymenium, Leptophascum, Leptopterigynandrum, Leptostomopsis, Leptostomum, Leptotheca, Leptotrichella, Leptotrichum, Lepyrodon, Lepyrodontopsis, Leratia, Leratiella, Lescuraea, Leskea, Leskeadelphus, Leskeella, Leskeodon, Leskeodontopsis, Lesquereuxia, Leucobryum, Leucodon, Leucodontella, Leucolepis, Leucoloma, Leucomium, Leucoperichaetium, Leucophanella, Leucophanes, Levierella, Limbella, Limnobium, Limprichtia, Lindbergia, Lindigia, Loeskeobryum, Loeskypnum, Loiseaubryum, Looseria, Lophiodon, Lopidium, Lorentzia, Lorentziella, Loxotis, Ludorugbya, Luisierella, Lyellia, Macgregorella, Macouniella, Macrocoma, Macrodictyum, Macrohymenium, Macromitrium, Macrosporiella, Macrothamniella, Macrothamnium, Mamillariella, Mandoniella, Maschalanthus, Maschalocarpus, Mastopoma, Matteria, Meesia, Meiotheciella, Meiotheciopsis, Meiothecium, Meiotrichum, Merceya, Merceyopsis, Mesochaete, Mesonodon, Mesotus, Metadistichophyllum, Metaneckera, Meteoridium, Meteoriella, Meteoriopsis, Meteorium, Metzlerella, Metzleria, Micralsopsis, Microbryum, Microcampylopus, Microcrossidium, Microctenidium, Microdus, Microeurhynchium, Micromitrium, Micropoma, Microthamnium, Microtheciella, Microthuidium, Miehea, Mielichhoferia, Mildea, Mildeella, Mironia, Mitrobryum, Mittenia, Mittenothamnium, Mitthyridium, Miyabea, Mniadelphus, Mniobryum, Mniodendron, Mniomalia, Mnium, Moenkemeyera, Molendoa, Mollia, Morinia, Moseniella, Muelleriella, Muellerobryum, Muscoflorschuetzia, Muscoherzogia, Myrinia, Myurella, Myuriopsis, Myurium, Myuroclada, Nanobryum, Nanomitriopsis, Nanomitrium, Neckera, Neckeradelphus, Neckerites, Neckeropsis, Nematocladia, Neobarbella, Neocardotia, Neodicladiella, Neodolichomitra, Neohyophila, Neolescuraea, Neolindbergia, Neomacounia, Neomeesia, Neonoguchia, Neophoenix, Neorutenbergia, Neosharpiella, Niphotrichum, Nobregaea, Nogopterium, Noguchiodendron, Notoligotrichum, Ochiobryum, Ochrobryum, Ochyraea, Octodiceras, Oedicladium, Oedipodiella, Oedipodium, Okamuraea, Oligotrichum, Oncophorus, Oreas, Oreoweisia, Orontobryum, Orthoamblystegium, Orthodicranum, Orthodon, Orthodontium, Orthodontopsis, Orthogrimmia, Orthomitrium, Orthomnion, Orthomniopsis, Orthopus, Orthopyxis, Orthorrhynchidium, Orthorrhynchium, Orthostichella, Orthostichidium, Orthostichopsis, Orthotheciella, Orthothecium, Orthothecium, Orthothuidium, Orthotrichum, Osterwaldiella, Oticodium, Oxyrrhynchium, Oxystegus, Pachyneuropsis, Pachyneurum, Palaeocampylopus, Palamocladium, Palisadula, Paludella, Palustriella, Panckowia, Pancovia, Papillaria, Papillidiopsis, Paraleucobryum, Paramyurium, Pararhacocarpus, Parisia, Pelekium, Pendulothecium, Pentastichella, Penzigiella, Peromnion, Pharomitrium, Phasconica, Phascopsis, Phascum, Philibertiella, Philonotis, Philophyllum, Photinophyllum, Phyllodon, Phyllodrepanium, Phyllogonium, Physcomitrella, Physcomitrium, Physedium, Picobryum, Pictus, Piloecium, Pilopogon, Pilopogonella, Piloseriopus, Pilotrichella, Pilotrichidium, Pilotrichum, Pinnatella, Pirea, Pireella, Plagiobryoides, Plagiobryum, Plagiomnium, Plagiopus, Plagioracelopus, Plagiothecium, Plasteurhynchium, Platydictya, Platygyriella, Platygyrium, Platyhypnidium, Platyhypnum, Platyloma, Platylomella, Platyneuron, Plaubelia, Pleuriditrichum, Pleuridium, Pleurochaete, Pleurophascum, Pleuropus, Pleurorthotrichum, Pleuroweisia, Pleurozium, Pleurozygodon, Pocsiella, Podperaea, Poecilophyllum, Pogonatum, Pohlia, Polla, Polymerodon, Polypodiopsis, Polytrichadelphus, Polytrichastrum, Polytrichites, Polytrichum, Porothamnium, Porotrichella, Porotrichodendron, Porotrichopsis, Porotrichum, Potamium, Pottia, Pottiopsis, Powellia, Powelliopsis, Pringleella, Prionidium, Prionodon, Pseudatrichum, Pseudephemerum, Pseudisothecium, Pseudoamblystegium, Pseudobarbella, Pseudobraunia, Pseudobryum, Pseudocalliergon, Pseudocampylium, Pseudochorisodontium, Pseudocrossidium, Pseudodimerodontium, Pseudodistichium, Pseudoditrichum, Pseudohygrohypnum, Pseudohyophila, Pseudohypnella, Pseudoleskea, Pseudoleskeella, Pseudoleskeopsis, Pseudopiloecium, Pseudopilotrichum, Pseudopleuropus, Pseudopohlia, Pseudopterobryum, Pseudoracelopus, Pseudorhynchostegiella, Pseudoscleropodium, Pseudosymblepharis, Pseudotimmiella, Pseudotrismegistia, Psilopilum, Pterigynandrum, Pterobryella, Pterobryidium, Pterobryon, Pterobryopsis, Pterogoniadelphus, Pterogonidium, Pterogoniella, Pterogonium, Pterygoneurum, Pterygo- phyllum, Ptilium, Ptychodium, Ptychomitriopsis, Ptychomitrium, Ptychomniella, Ptychomnion, Ptychostomum, Puiggaria, Puiggariella, Puiggariopsis, Pulchrinodus, Pungentella, Pursellia, Pylaisia, Pylaisiadelpha, Pylaisiella, Pylaisiobryum, Pyramidula, Pyramitrium, Pyromitrium, Pyrrhobryum, Quaesticula, Racelopodopsis, Racelopus, Racomitrium, Racopilum, Radulina, Raineria, Rauia, Rauiella, Regmatodon, Reimersia, Remyella, Renauldia, Rhabdodontium, Rhabdoweisia, Rhacocarpus, Rhacopilopsis, Rhamphidium, Rhaphidorrhynchium, Rhaphidostegium, Rhaphidostichum, Rhexophyllum, Rhizofabronia, Rhizogonium, Rhizohypnum, Rhizomnium, Rhizopelma, Rhodobryum, Rhyncho-hypnum, Rhynchostegiella, Rhynchostegiopsis, Rhynchostegium, Rhystophyllum, Rhytidiadelphus, Rhytidiastrum, Rhytidiopsis, Rhytidium, Richardsiopsis, Rigodiadelphus, Roellia, Rosulabryum, Rottleria, Rutenbergia, Saelania, Sagenotortula, Sainthelenia, Saitoa, Saitobryum, Saitoella, Sanionia, Saproma, Sarconeurum, Sarmenty- pnum, Sasaokaea, Sauloma, Scabridens, Schimperella, Schimperobryum, Schistidium, Schistomitrium, Schistophyllum, Schistostega, Schizomitrium, Schizymenium, Schliephackea, Schlotheimia, Schraderobryum, Schwetschkea, Schwetschkeopsis, Sciadocladus, Sciaromiella, Sciaromiopsis, Sciaromium, Sciuro- hypnum, Sclerodontium, Sclerohypnum, Scleropodiopsis, Scleropodium, Scopelophila, Scorpidium, Scorpiurium, Scouleria, Scytalina, Sebillea, Sehnemobryum, Sekra, Seligeria, Sematophyllites, Sematophyllum, Semibarbula, Serpoleskea, Serpotortella, Sharpiella, Shevockia, Sigmatella, Simophyllum, Simplicidens, Sinocalliergon, Sinskea, Skitophyllum, Skottsbergia, Solmsia, Solmsiella, Sorapilla, Sphaerangium, Sphaerocephalus, Sphaerothecium, Sphagnum, Spiridentopsis, Spirula, Splachnum, Sporledera, Spruceella, Squamidium, Stableria, Steerecleus, Steereobryon, Stegonia, Stellariomnium, Stenocarpidiopsis, Stenodesmus, Stenodictyon, Stenotheciopsis, Stenothecium, Steppomitra, Stereodon, Stereodontopsis, Stereohypnum, Steyermarkiella, Stokesiella, Stonea, Stoneobryum, Straminergon, Straminergon, Streblopilum, Streblotrichum, Streimannia, Strephedium, Streptocalypta, Streptocolea, Streptopogon, Streptotrichum, Stroemia, Strombulidens, Struckia, Struckia, Stylocomium, Swartzia, Symblepharis, Symphyodon, Symphysodon, Symphysodontella, Syntrichia, Syrrhopodon, Systegium, Taiwanobryum, Takakia, Tamariscella, Taxicaulis, Taxiphyllum, Taxithelium, Tayloria, Teichodontium, Teniolophora, Teretidens, Terrestria, Tetracoscinodon, Tetraphidopsis, Tetraphis, Tetraplodon, Tetrapterum, Tetrastichium, Tetrodontium, Thamniella, Thamniopsis, Thamnium, Thamnobryum, Thamnomalia, Thelia, Thiemea, Thuidiopsis, Thuidium, Thyridium, Thysanomitrion, Timmia, Timmiella, Timokoponenia, Toloxis, Tomentypnum, Tortella, Tortula, Touwia, Touwiodendron, Trachybryum, Trachycarpidium, Trachycladiella, Trachycystis, Trachyloma, Trachymitrium, Trachyodontium, Trachyphyllum, Trachythecium, Trachyxiphium, Trematodum, Trichodon, Trichodontium, Tricholepis, Trichosteleum, Trichostomopsis, Trichostomum, Tridontium, Trigonodictyon, Tripterocladium, Triquetrella, Trismegistia, Tristichium, Tuerckheimia, Uleastrum, Uleobryum, Ulota, Unclejackia, Valdonia, Venturiella, Verrucidens, Vesicularia, Vesiculariopsis, Vetiplanaxis, Viridivellus, Vittia, Voitia, Vrolijkheidia, Warburgiella, Wardia, Warnstorfia, Webera, Weisiodon, Weisiopsis, Weissia, Weissiodicranum, Werneriobryum, Weymouthia, Wijkia, Wildia, Willia, Wilsoniella, Yunnanobryon, Zelometeorium, Zygodon, Zygotrichia.
[00099] De acordo com um outro modo de execução preferido do processo de acordo com a invenção, uma, várias ou todas as plantas se tratam de um ou mais musgos antroceróticos selecionados do grupo que consiste nos gêneros: Anthoceros, Dendroceros, Folioceros, Hattorioceros, Leiosporoceros, Megaceros, Mesoceros, Nothoceros, Notothylas, Paraphymatoceros, Phaeoceros, Phaeomegaceros, Phymatoceros, Sphaerosporoceros.
[000100] Ainda mais preferido é um processo como descrito acima, em que a mistura está na forma líquida, como um gel, pasta ou como um pó (ver acima).
[000101] A mistura fornecida na etapa (b) do processo de acordo com a invenção, portanto, pode estar na forma de uma mistura, de preferência em pó, ou na forma de duas, três, quatro ou mais pré- misturas separadas umas das outras, líquidas e/ou gelatinosas, e/ou pastosas, e/ou em pó, que são misturadas antes ou durante a aplicação ou introdução sobre o/no substrato a ser tratado na etapa (c).
[000102] Vantajosamente, uma única implementação das etapas (b) até (d) do método de acordo com a invenção é, geralmente, suficiente para garantir uma inibição satisfatória de ervas daninhas.
[000103] No entanto, de acordo com um outro modo de execução, as etapas (b) até (d) ou (b) até (c) podem ser repetidas uma vez, duas vezes, três vezes ou mais, se necessário, para garantir uma biocimentação particularmente eficaz do substrato a ser tratado e, portanto, a inibição particularmente eficaz de ervas daninhas.
[000104] Opcionalmente, de acordo com um outro modo de execução, antes da aplicação ou introdução da mistura fornecida na etapa (b) sobre o/no substrato a ser tratado (conforme identificado na etapa (a) do processo de acordo com a invenção), ocorrem uma ou mais etapas adicionais do processo, como por exemplo a remoção de plantas por chama, de preferência ervas daninhas que estão sobre o substrato/no substrato, a remoção manual (catação de ervas daninhas) de plantas, de preferência de ervas daninhas, que estão localizadas sobre o/ no substrato, e/ou o tratamento de plantas, de preferência de ervas daninhas,que se encontram sobre/no substrato, com herbicidas químicos. Essas etapas prévias, também podem ser repetidas uma vez, duas, três vezes ou mais.
[000105] Um modo de execução preferido se refere a um processo como aqui descrito, em que a formação de uma camada de biocimento na etapa (d) do processo não envolve uma reação exotérmica (como aqui definido).
[000106] De acordo com modo de execução preferido do processo de acordo com a invenção, uma etapa de remoção do substrato identificado na etapa (a) sobre o/no qual um crescimento de plantas, de preferência um crescimento de ervas daninhas, deve ser inibido ou reduzido, não é necessária para inibir ou reduzir o crescimento de plantas e deste modo, de preferência, não faz parte de um processo de acordo com a invenção, especialmente porque a solidificação e/ou endurecimento do substrato durante a formação da camada de biocimento na etapa (d) do processo causa a inibição ou redução do crescimento das plantas, de preferência do crescimento de ervas daninhas.
[000107] Além disso, no contexto do processo de acordo com a invenção, como descrito aqui vantajosamente, nenhuma etapa de compactação do substrato sobre o/no qual o crescimento da planta deve ser reduzido ou inibido, ou da camada de biocimento formada, é necessária para conseguir uma inibição ou redução do crescimento da planta, de preferência o crescimento de ervas daninhas e, portanto, de preferência não faz parte de um método de acordo com a invenção.
[000108] As declarações aqui feitas para uso de acordo com a invenção também se aplicam a um método de acordo com a invenção aqui descrito e vice-versa. Isso se aplica em particular aos modos de execução (preferidos) do uso de acordo com a invenção, que (de preferência) correspondem a modos de execução do processo de acordo com a invenção ou podem ser derivados deles e vice-versa.
[000109] A seguir a invenção é mais minuciosamente esclarecida por meio de exemplos selecionados. Todos os dados são em peso, desde que nada diferente seja mencionado.
[000110] Figuras: Figura 1: Inibição do crescimento de ervas daninhas por biocimentação não-ureolítica com ajuda da cepa de bactérias B. pseudofirmus: Efeito contra monocotiledôneas (Poa annua) e dicotiledôneas (Plantago lanceolata). Grau de cobertura médio do crescimento de ervas daninhas no período de documentação de 42 dias com controle semanal do controle (acima) em comparação com a amostra tratada com a mistura de biocimentação 1 (meio). Apresentação visual (abaixo) do crescimento de ervas daninhas na aplicação de controle (abaixo à esquerda) em comparação com o tratamento com a mistura de biocimentação 1 (abaixo à direita) após 42 dias de crescimento. Figura 2: Inibição do crescimento de ervas daninhas por biocimentação não ureolítica com ajuda das cepas de bactérias A. crystallopoietes, B. cohnii, B. halodurans, e B. pseudofirmus: Efeito contra monocotiledôneas (Poa annua) e dicotiledôneas (Plantago lanceolata). Grau de cobertura médio do crescimento de ervas daninhas no período de documentação de 42 dias com medição semanal do controle em comparação com a da amostra com a mistura de biocimentação 1. Figura 3: Uso da biocimentação ureolítica com L. sphaericus para inibição do crescimento de ervas daninhas em areia de quartzo: Efeito contra ervas daninhas monocotiledôneas (Poa annua) e dicotiledôneas (Plantago lanceolata). Grau de cobertura médio do crescimento de ervas daninhas (acima) no período de documentação de 42 dias com avaliação semanal de controle em comparação com a mistura de biocimentação 2 e a mistura de biocimentação 3. Apresentação visual (meio) do crescimento de ervas daninhas na aplicação de controle (meio à esquerda) em comparação com a amostra tratada com a mistura de biocimentação 2 (meio meio) e com a mistura de biocimentação 3 (meio à direita) após 42 dias de crescimento em laboratório. Apresentação gráfica da solidificação das camadas de biocimentação (abaixo) por pesquisa da força de ruptura média da amostra. Figura 4: Uso da biocimentação ureolítica com L. sphaericus para inibição do crescimento de ervas daninhas em terra de solo: Efeito contra ervas daninhas monocotiledôneas (Poa annua) e dicotiledôneas (Plantago lanceolata). Grau de cobertura médio do crescimento de ervas daninhas (acima) no período de documentação de 42 dias com avaliação semanal do controle em comparação com a mistura de biocimentação 2 e a mistura de biocimentação 3. Apresentação visual (meio) do crescimento de ervas daninhas na aplicação de controle (meio à esquerda) em comparação com a amostra tratada com mistura de biocimentação 2 (meio meio) e com a mistura de biocimentação 3 (meio à direita) após 42 dias de crescimento em laboratório. Apresentação gráfica da solidificação das camadas de biocimentação (abaixo) por meio da pesquisa da força de ruptura média da amostra. Figura 5: Uso da biocimentação ureolítica com Sp. pasteurii para inibição do crescimento de ervas daninhas em areia de quartzo: Efeito contra ervas daninhas monocotiledôneas (Poa annua) e dicotiledôneas (Plantago lanceolata). Grau de cobertura médio do crescimento de ervas daninhas (acima) no período de documentação de 42 dias com avaliação semanal do controle em comparação com a mistura de biocimentação 4 e com a mistura de biocimentação 5. Apresentação visual (meio) do crescimento de ervas daninhas na aplicação de controle (meio à esquerda) em comparação com o tratamento com a mistura de biocimentação 4 (meio meio) e com a mistura de biocimentação 5 (meio à direita) após 42 dias de crescimento em laboratório. Apresentação gráfica da solidificação das camadas de biocimentação (abaixo) por pesquisa da força de ruptura média da amostra. Figura 6: Uso da biocimentação ureolítica com Sp. pasteurii para inibição do crescimento de ervas daninhas em terra solo: Efeito contra ervas daninhas monocotiledôneas (Poa annua) e dicotiledôneas (Plantago lanceolata). Grau de cobertura médio do crescimento de ervas daninhas (acima) no período de documentação de 42 dias com avaliação semanal do controle em comparação com a mistura de biocimentação 4 e com a mistura de biocimentação 5. Apresentação visual (meio) do crescimento de ervas daninhas na aplicação de controle (meio à esquerda) em comparação com o tratamento com a mistura de biocimentação 4 (meio meio) e com a mistura de biocimentação 5 (meio à direita) após 42 dias de crescimento em laboratório. Apresentação gráfica da solidificação das camadas de biocimentação (abaixo) por pesquisa da força de ruptura média da amostra. Figura 7: Uso de biocimentação para inibição do crescimento de ervas daninhas em terra livre: Efeito contra ervas daninhas não germinadas e ervas daninhas recém germinadas sobre superfícies de terras agricultáveis. Grau de cobertura médio do controle de água (acima) em comparação com a superfície tratada com mistura de biocimentação 6 (meio) no período de documentação de 42 dias com avaliação semanal. Apresentação visual do crescimento de ervas daninhas na aplicação de controle (abaixo à esquerda) em comparação com a tratada com mistura de biocimentação 6 (abaixo à direita) após 42 dias de crescimento em terra livre. Figura 8: Uso de biocimentação para inibição do crescimento de ervas daninhas em terra livre: Efeito contra ervas daninhas não germinadas e ervas daninhas recém germinadas em juntas de pavimento. Grau de cobertura médio do controle de água (acima) em comparação com superfície tratada com mistura de biocimentação 6 (meio) no período de documentação de 42 dias com avaliação semanal. Apresentação visual do crescimento de ervas daninhas na aplicação de controle (abaixo à esquerda) em comparação com a tratada com mistura de biocimentação 6 (abaixo à direita) após 42 dias de crescimento em terra livre. Exemplos: Exemplo 1: Biocimentação não ureolítica com B. pseudofirmus - Inibição do crescimento de ervas daninhas monocotiledôneas e dicotiledôneas
Material e métodos:
[000111] A pesquisa foi realizada em laboratório em vasos de plantas com um volume de 450 cm3. A superfície de aplicação foi respectivamente de 78,5 cm2. Foram tratadas 6 amostras no total.
[000112] O substrato de solo na pesquisa consistiu em uma areia de quartzo com uma granulação de 0-2 mm. A areia foi lavada pelo fornecedor assim como secada e foi empregada diretamente. Foram empregados 300 g de areia de quartzo por vaso de planta como substrato de solo.
[000113] A areia de quartzo antes do tratamento estava livre de crescimento de ervas daninhas e continha somente restos de sementes de ervas daninhas endêmicas ou sementes voadoras. Elas não foram, entretanto, suficientes para um crescimento eficiente de ervas daninhas. Foi executada uma semeadura de ervas daninhas com respectivamente 0,2 g de Plantago lanceolata e 0,1 g de Poa annua por vaso. Para isso as sementes de ervas daninhas foram tratadas na primeira camada superior de solo em uma profundidade de 2-4 mm.
[000114] Foi empregada uma mistura de biocimentação 1 líquida, a qual consistiu nos seguintes componentes nas concentrações seguintes: 20,0 g/l Extrato de levedura 0,2 M Acetato de cálcio 0,2 M Lactato de cálcio 6,0 g/l Ureia 5 x 108 células/mL B. pseudofirmus
[000115] Além disso estão contidos na mistura elementos traço e traços de sais e açúcares exemplares (<1 % em peso). Ureia serviu nesse meio principalmente como fonte de nitrogênio (e não como fonte de carbonato).
[000116] Todos os componentes da mistura presente, que é capaz de biocimentação, até mesmo as bactérias da cepa B. pseudofirmus, estavam presentes na forma sólida. As bactérias estavam presentes como cultura líquida em um meio de cultura conhecido do estado da técnica, como descrito por exemplo em Jonkers H. M. et al., Tailor Made Concrete Structures - Walraven & Stoelhorst (eds), 2008, Taylor & Francis Group, London, ISBN 978-0-415-47535-8, Seção 2.1, sendo que no âmbito da presente invenção foram empregados 5 g/L de extrato de levedura. Os componentes sólidos e as bactérias na cultura líquida foram misturadas diretamente antes da utilização, sendo que os componentes sólidos se dissolveram.
[000117] A mistura de biocimentação 1 assim como um controle de água foram aplicados respectivamente em duas réplicas sobre as superfícies de pesquisa. A quantidade aplicada por metro quadrado foi no total 5 litros por réplica. Para aplicação foi empregada uma pipeta.
[000118] Após a aplicação da mistura de biocimentação 1 ocorreu uma incubação ao longo de 48 horas, na qual não ocorreu nenhuma rega. Nesse período reinou uma temperatura mínima de 14,2°C e uma temperatura máxima de 25,2°C.
[000119] O crescimento de ervas daninhas foi documentado ao longo de 42 dias após a aplicação. A temperatura mínima e a temperatura máxima se situaram durante esse período em 10,7°C e 34,0°C, respectivamente. Os vasos foram regados de acordo com a necessidade uma até três vezes por semana. Os vasos de plantas foram submetidos a uma iluminação natural com ritmos diurnos e noturnos.
[000120] A documentação do crescimento de ervas daninhas ocorreu semanalmente. Aqui foi determinada tanto a camada de biocimentação (espessura de camada, resistências) quanto também o assim chamado grau de cobertura. Os graus de cobertura dos crescimentos de ervas daninhas foram determinados por avaliação visual manual dos vasos de plantas nos horários indicados. O grau de cobertura descreve percentualmente a superfície que é acometida de ervas daninhas. Daí calcula-se por sua vez o grau de eficácia segundo Abbott como a seguir: Grau de eficicácia = (grau de cobertura do controledia xy - grau de cobertura do produtodia xy)/grau de cobertura do controledia xy
[000121] Para verificação da formação de carbonato incubou-se em ambiente aberto além disso 10 mL da mistura de biocimentação 1 em um vaso de reação por 24 horas à temperatura ambiente. Em seguida o sedimento precipitado foi recuperado por centrifugação e secagem. Com o sedimento seco ocorreu uma prova de carbonato segundo Scheibler.
Resultados:
[000122] O crescimento de ervas daninhas foi quase totalmente reduzido em comparação com o controle (fig. 1). O grau de cobertura médio após 42 dias sobre a superfície tratada se situou em 2% (fig. 1, meio) e sobre a superfície de controle se situou em 60% (fig. 1, acima). Com o tratamento com a mistura de biocimentação 1 acima dada formou-se uma camada de biocimentação. O crescimento de ervas daninhas ocorreu preponderantemente nos locais onde a camada de biocimentação estava danificada (por exemplo em fissuras de secagem). O decurso no tempo dos 42 dias pode ser visto na figura 1 (acima e meio). No curso do tempo, é visível um efeito de biocimentação na inibição das ervas daninhas. A figura 1 ilustra a comparação direta entre uma amostra de controle (abaixo à esquerda) e uma amostra de aplicação (abaixo à direita) após 42 dias de crescimento. O grau de eficácia do produto de biocementação foi, ao final, de 96,7%.
[000123] A mistura de biocimentação é vantajosamente semelhantemente efetiva como diversos agentes de inibição de ervas daninhas disponíveis comercialmente (dados não mostrados), sendo que podem ser evitadas diversas desvantagens de tais agentes de inibição de ervas daninhas.
[000124] A análise qualitativa da formação de carbonato segundo Scheibler deu uma reação positiva à mistura de biocimentação. O controle não mostrou nenhuma formação de carbonato (dados não mostrados)
[000125] Também foram obtidos efeitos comparáveis no crescimento de ervas daninhas em formulações levemente modificadas de mistura de biocimentação 1 contendo acetato de cálcio, lactato de cálcio e/ou cloreto de cálcio em uma concentração de cada 0,05 a 0,3 M e não excedeu uma concentração total de cálcio na mistura de 0,4 M (dados não mostrados). Uma variação na concentração de ureia (0,0 a 0,2 M) ou na quantidade de extrato de levedura (0,1 a 30 g/l) também levou a boas eficácias. A inibição de ervas daninhas dependia em cada caso das concentrações dos constituintes da mistura de biocimentação (dados não mostrados).
[000126] Toda a pesquisa descrita acima foi realizada alternativamente com sementes de ervas daninhas, que já haviam germinado 24 horas antes da aplicação da mistura de biocimentação. Para isso, a aplicação da mistura de biocimentação 1 ocorreu 24 horas após o início da germinação. Os resultados obtidos foram comparáveis aos descritos no presente exemplo. Uma redução quase completa do crescimento de ervas daninhas por uso da mistura foi alcançada (dados não mostrados).
[000127] Além disso, na mistura de biocimentação 1 descrita acima, a cepa de bactérias B. pseudofirmus foi substituída pela mesma concentração de número de células respectivamente de B. cohnii, B. halodurans ou A. crystallopoietes, sendo que a pesquisa foi realizada respectivamente como acima. B. cohnii e B. halodurans se apresentaram aqui no mesmo meio de cultura como B. pseudofirmus (ver acima) e A. crystallopoietes se situou em um meio de cultura conhecido, como descrito por exemplo em Hamilton, R. W. et al., Journal of Bacteriology 1977, 129(2), 874-879 (ver seção ”Materials and Methods", págs. 874-875). Os resultados dos testes de inibição de ervas daninhas com essas misturas de biocimentação alternativas são mostrados na figura 2. Exemplo 2: Biocimentação ureolítica com L. sphaericus - Inibição do crescimento de ervas daninhas monocotiledôneas e dicotiledôneas
Material e métodos:
[000128] Na presente pesquisa foram pesquisadas duas misturas de biocimentação com respectivamente a mesma cepa de bactérias sobre dois substratos de solo diferentes.
[000129] A pesquisa foi executada em laboratório em vasos de plantas com um volume de 450 cm3. A superfície de aplicação por vaso foi de respectivamente 78,5 cm2. Um total de 9 vasos de plantas por substrato foi tratado com as duas diferentes misturas de biocimentação (ver abaixo).
[000130] O primeiro solo de substrato pesquisado consiste em uma areia de quartzo com granulação de 0-2 mm. A areia de quartzo foi lavada pelo fabricante, bem como secada, e foi usada diretamente. Foram utilizados como substrato apenas 300 gramas de areia de quartzo por vaso de plantas. Em outra série, um solo peneirado foi usado como o segundo substrato de solo. Aqui foram utilizados 250 g de terra por vaso de aplicação.
[000131] Os dois substratos de solo estavam livres de crescimento de ervas daninhas antes do tratamento. Nos dois solos, no entanto, estavam presentes restos mínimos de sementes de ervas daninhas endêmicas ou sementes volantes. No entanto, estas não foram suficientes para um crescimento de ervas daninhas eficiente. Foi executada uma semeadura de ervas daninhas com 0,2 g de Plantago lanceolata e 0,1 g de Poa annua por cada vaso produzido. Para este fim, as ervas daninhas foram incorporadas na camada superior do solo a uma profundidade de 2-4 mm.
[000132] Na pesquisa foram empregadas duas misturas de biocimentação diferentes.
[000133] A mistura 2 foi composta pelos seguintes ingredientes nas seguintes concentrações: 20,0 g/l Extrato de levedura 0,25 M Cloreto de cálcio 18,0 g/l Ureia 4 x 108 células/mL L. sphaericus
[000134] Além disso, a mistura continha elementos traço e quantidades traço de sais e açúcares (<1%). Ureia serviu neste meio primariamente como fonte de carbono e secundariamente como fonte de nitrogênio.
[000135] Na mistura 3 foram adicionados adicionalmente 50 mL/l de silicade 8 (dispersão acrílica de solo silicoso) como aditivo. O aditivo foi utilizado para obter uma estabilidade mais duradoura da camada de biocimentação.
[000136] Os componentes das misturas de biocimentação 2 e 3 (sem bactérias) estavam cada um na forma sólida. As bactérias estavam cada uma na forma de uma cultura líquida em um meio de cultura conhecido da técnica anterior, conforme descrito de uma maneira exemplar em Dick, J. et al., Biodegradation 2006, 17, 357-367 (consulte a seção "Materials and Methods", página 359). Os componentes sólidos e as bactérias na cultura líquida foram misturados imediatamente antes do uso, sendo que os componentes sólidos se dissolveram. Silicade 8 estava na forma líquida e foi adicionado apenas à mistura 3.
[000137] As misturas de biocimentação 2 e 3, assim como um controle de água, foram aplicadas em três réplicas lado a lado sobre ambos os solos pesquisados. A quantidade aplicada por metro quadrado foi no total 5 litros por réplica. Para aplicação foi empregada uma pipeta.
[000138] Após a aplicação das misturas de biocimentação ocorreu uma incubação ao longo de 48 horas, durante a qual não ocorreu nenhuma rega. Nesse período reinou uma temperatura mínima de 12,4°C e uma temperatura máxima de 24,2°C.
[000139] O crescimento de ervas daninhas foi documentado ao longo de 42 dias após a aplicação. A temperatura mínima e a temperatura máxima se situaram nesse período em 9,7°C e 27,9°C. Os vasos foram regados uma a três vezes por semana conforme necessário. Os vasos de planta foram submetidos a uma iluminação natural com ritmo diurno e noturno.
[000140] A documentação do crescimento de ervas daninhas ocorreu semanalmente. Aqui, tanto a camada de biocimentação (espessura da camada, resistência) quanto o chamado grau de cobertura foram determinados. Os graus de cobertura dos crescimentos de ervas daninhas foram monitorados por avaliação visual manual dos vasos de plantas nos horários indicados. O grau de cobertura descreve em porcentagem a área coberta por ervas daninhas. Por sua vez, o grau de eficácia foi calculado de acordo com Abbott como segue: Grau de eficácia = (grau de cobertura do controledia xy - grau de cobertura do produtodia xy)/grau de cobertura do controledia xy
[000141] Para verificação da formação de carbonato, além disso, incubou-se abertamente respectivamente 10 mL das misturas de biocimentação 2 e 3 em vasos de reação por 24 horas à temperatura ambiente. Em seguida, cada um dos sedimentos precipitados foi recuperado por centrifugação e secagem. Com os sedimentos secos ocorreu uma detecção de carbonato segundo Scheibler.
Resultados:
[000142] O crescimento de ervas daninhas sobre a areia de quartzo tratada com ambas as misturas de biocimentação 2 e 3, em comparação com o controle, foi totalmente reduzido para ambas (fig. 3). O grau de cobertura médio após 42 dias se situou em 0% sobre a superfície tratada com a mistura de biocimentação 2, em 0% sobre a superfície tratada com a mistura de biocimentação 3, e a 31% sobre a superfície de controle. Em ambos os tratamentos (com mistura de biocimentação 2 e 3) foi formada uma camada de biocimentação. O crescimento de ervas daninhas ocorreu preponderantemente nos locais onde a camada de biocimentação estava danificada (por exemplo em fissuras de secagem). As curvas temporais ao longo de 42 dias podem ser vistas na figura 3 (acima). O efeito de biocimentação na inibição das ervas daninhas é mostrado na figura 3 (meio) e demonstra a comparação direta entre um controle (meio à esquerda), a mistura de biocimentação 2 (meio meio) e a mistura de biocimentação 3 (meio à direita). A eficácia de ambas as misturas de biocimentação ao final foi de respectivamente 100%. Após 42 dias foram determinadas as resistências das camadas de biocimentação (como descrito acima). As amostras de biocimentação com mistura 2 mostraram uma camada com uma força de ruptura média de 4,3 N, entretanto esta é inferior àquela com a mistura 3 com 19,1 N (ver figura 3 (abaixo)). Através da introdução do aditivo Silicade 8 na camada de biocimentação (por mistura de biocimentação 3) dessa forma foi possível alcançar uma resistência elevada contras parâmetros ambientais e com isso alcançar um tempo eficaz previsivelmente mais longo. No caso da amostra de controle não estava presente nenhuma camada de biocimento.
[000143] Sobre a terra solo, o crescimento de ervas daninhas, em comparação com o controle, foi quase completamente reduzido (figura 4). O grau de cobertura médio após 42 dias sobre as superfícies tratadas com a mistura de biocimentação 2 foi de 0%, sobre as superfícies tratadas com a mistura de biocimentação 3 foi de 2%, e sobre a superfície de controle foi de 50%. Em ambos os tratamentos (com mistura de biocimentação 2 e 3) formou-se uma camada de biocimentação. O crescimento de ervas daninhas ocorreu preponderantemente nas regiões em que a camada de biocimentação estava danificada (por exemplo fendas de secagem). As curvas temporais ao longo de 42 dias podem ser verificados na figura 4 (acima). O efeito da biocimentação na inibição das ervas daninhas é mostrado na figura 4 (meio) e demonstra a comparação direta entre uma amostra de controle (meio à esquerda), a mistura de biocimentação 2 (meio meio) e a mistura de biocimentação 3 (meio à direita). O grau de eficácia de ambas as misturas de biocimentação 2 e 3 ao final foi de 100% e 96%, respectivamente. Após 42 dias foram verificadas as resistências das camadas de biocimentação formadas (como acima descrito). As amostras de biocimentação com mistura 2 apresentaram uma camada com uma força de ruptura média de 20,5 N, entretanto esta é inferior àquela com a mistura 3, com 84,3 N. Através da introdução do aditivo Silicade 8 na camada de biocimentação (pela mistura de biocimentação 3) pode ser alcançada uma elevada resistência contra parâmetros ambientais e com isso alcançar um tempo útil efetivo mais longo. No caso da amostra de controle, não estava presente nenhuma camada de biocimento.
[000144] A análise qualitativa da formação de carbonato segundo Scheibler resultou numa reação positiva, para as misturas de biocimentação 2 e 3. Os controles não mostraram nenhuma formação de carbonato (dados não mostrados).
[000145] Efeitos comparáveis sobre o crescimento de ervas daninhas foram mostrados também para formulações levemente diferentes das misturas de biocimentação 2 e 3, que continham acetato de cálcio, lactato de cálcio e/ou cloreto de cálcio em uma concentração de respectivamente 0,05 até 0,3 M e não excederam uma concentração total de cálcio de 0,4 M (dados não mostrados). Uma variação mais forte na concentração de ureia (por exemplo 0,1 até 1,0 M) ou na quantidade de extrato de levedura (por exemplo 0,1 até 30 g/l) gerou igualmente bons graus de eficácia. A inibição de ervas daninhas foi respectivamente dependente das concentrações empregadas de constituintes das respectivas misturas de biocimentação (dados não mostrados).
[000146] Todas as pesquisas anteriormente descritas foram alternativamente executadas com sementes de ervas daninhas, que já haviam germinado 24 horas antes da aplicação da respectiva mistura de biocimentação. Para isso, a aplicação da respectiva mistura de biocimentação ocorreu 24 horas após o início da germinação. Os resultados alcançados foram comparáveis com os descritos nos exemplos apresentados e foi alcançada uma quase total redução do crescimento de ervas daninhas através do uso da respectiva mistura (dados não mostrados). Exemplo 3: Biocimentação ureolítica com Sp. pasteurii - inibição do crescimento de ervas daninhas monocotiledôneas e dicotiledôneas
Material e métodos:
[000147] Na presente pesquisa foram pesquisadas duas misturas de biocimentação cada qual com a mesma cepa de bactérias sobre dois substratos de solo diferentes.
[000148] A pesquisa foi executada em laboratório em vasos de plantas com um volume de 450 cm3. A superfície de aplicação foi de respectivamente 78,5 cm2. Foram tratados no total 9 vasos de planta para cada substrato de solo com ambas as misturas de biocimentação diferentes (ver abaixo). A superfície de aplicação por vaso foi de respectivamente 78,5 cm2.
[000149] O primeiro substrato de solo na pesquisa consistiu em uma areia de quartzo com uma granulação de 0-2 mm. A areia de quartzo foi lavada pelo fabricante assim como secada e foi empregada diretamente. Foram empregados 300 g de areia de quartzo por vaso de planta como substrato de solo. Em uma outra série foi empregada, como segundo substrato de solo, uma terra solo peneirada. Aqui foram empregados 250 g de terra solo por vaso de aplicação.
[000150] Ambos os substratos de solo estavam livres de crescimento de ervas daninhas antes do tratamento. Em ambos os solos estavam contidos resíduos mínimos de sementes de ervas daninhas endêmicas bem como sementes volantes. Essas não foram, entretanto, suficientes para gerar um crescimento eficiente de ervas daninhas. Foi executada uma semeadura de ervas daninhas com respectivamente 0,2 g de Plantago lanceolata e 0,1 g de Poa annua por vaso. Para isso as ervas daninhas foram aplicadas na camada superior do solo em uma profundidade de 2-4 mm.
[000151] Para essa pesquisa foram empregadas duas misturas de biocimentação líquidas diferentes.
[000152] A mistura 4 foi composta pelos seguintes constituintes nas seguintes concentrações: 20,0 g/l Extrato de levedura 0,25 M Cloreto de cálcio 18,0 g/l Ureia 4 x 108 células/mL Sp. Pasteurii
[000153] Além disso estavam contidos na mistura elementos traço e traços de por exemplo sais e açúcares (<1%). Ureia serviu nesse meio primariamente como fonte de carbonato e secundariamente como fonte de nitrogênio.
[000154] Na mistura 5 adicionalmente foi adicionado 50 mL/l de Silicade 8 (dispersão acrílica de solo silicoso) como aditivo. O aditivo foi utilizado para obter uma estabilidade mais duradoura da camada de biocimentação.
[000155] Os constituintes das misturas de biocimentação 4 e 5 (sem bactérias) estavam respectivamente na forma de sólido. As bactérias estavam respectivamente como cultura líquida em um meio de cultura conhecido do estado da técnica, como descrito por exemplo em Cuthbert, M. O. et al., Ecological Engineering 2012, 41, 32-40 (ver seção 2.2, pág. 33). Os constituintes sólidos e as bactérias na cultura líquida foram misturados respectivamente diretamente antes da utilização, sendo que os constituintes sólidos se dissolveram. Silicade 8 estava na forma líquida e só foi misturado com a mistura 5.
[000156] As misturas de biocimentação 4 e 5 assim como um controle de água foram aplicados em respectivamente três réplicas lado a lado sobre ambos os solos pesquisados. A quantidade aplicada por metro quadrado no total foi de 5 litros por cada réplica. Para aplicação foi empregada uma pipeta.
[000157] Após a aplicação das respectivas misturas de biocimentação ocorreu uma incubação ao longo de 48 horas, durante a qual não ocorreu nenhuma rega. Nesse período de tempo reinou uma temperatura mínima de 12,4°C e uma temperatura máxima de 24,2°C.
[000158] O crescimento de ervas daninhas foi documentado ao longo de 42 dias após a aplicação. A temperatura mínima e a temperatura máxima nesse período de tempo foi de 9,7°C e 27,9°C, respectivamente. Os vasos foram regados conforme necessário de uma a três vezes por semana. Os vasos de plantas foram submetidos a uma iluminação natural com ritmos diurno e noturno.
[000159] A documentação do crescimento de ervas daninhas ocorreu semanalmente. Aqui foram determinados tanto a camada de biocimentação (espessura de camada, resistência) quanto também o assim chamado grau de cobertura. O grau de cobertura do crescimento de ervas daninhas foi determinado por avaliação manual e visual dos vasos de plantas nos horários indicados. O grau de cobertura descreve percentualmente a superfície que está coberta por ervas daninhas. A partir disso por sua vez é calculado o grau de eficácia segundo Abbott, como a seguir: Grau de eficácia = (grau de cobertura do controledia xy - grau de cobertura do produtodia xy)/grau de cobertura do controledia xy
[000160] Para verificação da formação de carbonato além disso foram incubadas abertamente respectivamente 10 mL de mistura de biocimentação 4 e 5 em um vaso de reação por 24 horas à temperatura ambiente. Em seguida, o sedimento precipitado foi recuperado por centrifugação e secagem. Com os sedimentos secos ocorreu uma detecção de carbonato segundo Scheibler.
Resultados:
[000161] O crescimento de ervas daninhas sobre a areia de quartzo, em comparação com o controle, foi totalmente reduzido (fig. 5). O grau de cobertura médio após 42 dias sobre a superfície tratada com a mistura de biocimentação 4 foi de 0%, sobre a superfície tratada com a mistura de biocimentação 5 foi de 0%, e sobre a superfície de controle foi de 40%. No tratamento com as misturas formou-se uma camada de biocimentação. O crescimento de ervas daninhas ocorreu preponderantemente nas regiões em que a camada de biocimentação estava danificada (por exemplo em fendas de secagem). As curvas temporais ao longo de 42 dias podem ser verificados na figura 5 (acima). O efeito de biocimentação na inibição de ervas daninhas é mostrado na figura 5 (meio) e demonstra a comparação direta entre um controle (meio à esquerda), a mistura de biocimentação 4 (meio meio) e a mistura de biocimentação 5 (meio à direita). O grau de eficácia de ambas misturas de biocimentação ao final foi de respectivamente quase 100%. Após 42 dias, as resistências das camadas de biocimentação foram determinadas (como acima descrito). A amostra de biocimentação com mistura 4 mostrou uma camada com uma força de ruptura média de 4,1 N, a amostra com mistura 5 mostrou uma força de ruptura média de 19,3 N (ver fig. 5 (abaixo)). Através da introdução do aditivo Silicade 8 na camada de biocimentação (através da mistura de biocimentação 5) pode ser alcançada uma resistência elevada contra parâmetros ambientais e com isso alcançar uma eficácia previsivelmente mais longa. No caso do controle, não estava presente nenhuma camada de biocimento.
[000162] Sobre a terra solo o crescimento de ervas daninhas, em comparação com o controle, foi quase totalmente reduzido (fig. 6). O grau de cobertura médio após 42 dias sobre a superfície tratada com a mistura de biocimentação 4 foi de 0%, sobre a superfície tratada com a mistura de biocimentação 5 foi de 0%, e sobre a superfície de controle foi de 50%. No tratamento com as misturas foi formada uma camada de biocimentação. O crescimento de ervas daninhas ocorreu preponderantemente nas regiões em que a camada de biocimentação estava danificada (por exemplo fendas de secagem). As curvas temporais ao longo de 42 dias podem ser verificadas na figura 6 (acima). O efeito da biocimentação na inibição de ervas daninhas é mostrado na figura 6 (meio) e demonstra a comparação direta entre uma amostra de controle (meio à esquerda), mistura 4 (meio meio) e mistura 5 (meio à direita). O grau de eficácia de ambas as misturas de biocimentação ao final foi de respectivamente 100%. Após 42 dias as resistências das camadas de biocimentação formadas foram determinadas. A amostra de biocimentação com mistura 4 apresentou uma camada com uma força de ruptura média de 20,8 N, a amostra com mistura 5 tinha uma força de ruptura média de 66,8 N. Através da introdução do aditivo Silicade 8 na camada de biocimentação (através da mistura de biocimentação 5) pode ser alcançada uma resistência elevada contra parâmetros ambientais e com isso alcançar uma atuação previsivelmente mais longa. No caso do controle, não estava presente nenhuma camada de biocimento.
[000163] A análise qualitativa da formação de carbonato segundo Scheibler resultou em reação positiva para as misturas de biocimentação 4 e 5 respectivamente. Os controles não apresentaram nenhuma formação de carbonato (dados não mostrados).
[000164] Efeito comparável sobre o crescimento de ervas daninhas foi mostrado mesmo para formulações levemente diferentes das misturas de biocimentação 4 e 5, que continham acetato de cálcio, lactato de cálcio e/ou cloreto de cálcio em uma concentração de respectivamente 0,05 até 0,3 M e não ultrapassaram uma concentração total de cálcio de 0,4 M (dados não mostrados). Uma variação mais forte na concentração de ureia (por exemplo 0,1 até 1,0 M) resultou igualmente em boas eficácias. A inibição de ervas daninhas foi respectivamente dependente das concentrações empregadas de constituintes da respectiva mistura de biocimentação (dados não mostrados).
[000165] Todas as pesquisas anteriormente descritas foram alternativamente executadas com sementes de ervas daninhas, que tinham germinado 24 horas antes do tratamento com a respectiva mistura de biocimentação. Para isso a aplicação da respectiva mistura de biocimentação ocorreu 24 horas após o início da germinação. Os resultados alcançados foram comparáveis com os descritos nos exemplos presentes e foi alcançada uma redução quase total do crescimento de ervas daninhas pelo uso da respectiva mistura (dados não mostrados). Exemplo 4: Espaços abertos - Inibição de Ervas Daninhas sobre superfícies de terras agricultáveis e em rejuntes de pavimentos
Material e métodos:
[000166] O experimento foi realizado em uma área agrícola e em uma calçada rejuntada. A área de aplicação foi respectivamente de 6 m2 cada.
[000167] O substrato do solo da área agrícola útil consistiu em terra natural. Antes da aplicação da mistura de acordo com a invenção (ver acima), a área agrícola útil foi liberada de ervas daninhas estabelecidas por meio de um tratamento químico com glifosato (cerca de 6 meses antes da presente experiência). Após esse pré-tratamento, nenhum resíduo de planta estava presente na superfície.
[000168] O material de rejunte da entrada da garagem consistiu principalmente de rejunte e areia comum. Essas superfícies foram mecanicamente livradas das ervas daninhas estabelecidas por meio de uma roçadeira antes da aplicação. Após esse pré-tratamento, não havia mais resíduos de plantas na superfície.
[000169] Ambos os solos continham as sementes de plantas daninhas, lá existentes, sementes volantes e possivelmente mudas frescas ou restos de plantas. Nenhuma remoção artificial de ervas daninhas foi realizada, pois havia ervas daninhas endêmicas suficientes nos dois locais.
[000170] No experimento, foi utilizada uma mistura líquida de biocimentação 6, que se compõe dos seguintes constituintes e concentrações: 18,0 g/l ureia 62,5 g/l sulfonato de lignina 5 x 10A8 células/mL Sporosarcina pasteurii
[000171] Além disso, elementos traços e traços de, por exemplo, sais, açúcares e extrato de levedura estão contidos na solução (<1%).
[000172] As bactérias estavam presentes como cultura líquida em meio de cultura (ver descrição no exemplo anterior 3). A ureia e o sulfonato de lignina estavam originalmente na forma sólida. Eles foram dissolvidos em água imediatamente antes do uso e misturados com a cultura líquida das bactérias.
[000173] A mistura de biocimento 6 e um controle de água foram aplicados em três réplicas nas duas áreas de teste. A quantidade de aplicação por metro quadrado foi no total de 4 litros por réplica. Para aplicação, foi utilizado um regador comercialmente disponível (de 5 l de volume).
[000174] Após a aplicação da mistura de biocimentação 6, foi realizada uma incubação por 48 horas, na qual não houve chuva ou irrigação artificial. Durante este período, houve uma temperatura mínima de 5 ° C e uma temperatura máxima de 25 ° C.
[000175] O crescimento de plantas daninhas foi documentado ao longo de 42 dias após a aplicação. As temperaturas mínima e máxima foram de 5°C e 33°C, respectivamente. A precipitação total durante o período de documentação foi de 91 mm (l/m2). Devido às condições atmosféricas, não foi necessária uma rega adicional.
[000176] A documentação do crescimento das plantas daninhas era realizada semanalmente. Aqui, foram determinadas a camada de biocimentação (espessura da camada, resistência) e o chamado grau de cobertura. Os graus de coberturas do crescimento das plantas daninhas foram determinados por avaliação visual manual dos vasos de plantas nos horários indicados. O grau de cobertura descreve em termos percentuais a área na qual crescem as ervas daninhas. A partir disso, o grau de eficácia de acordo com Abbott foi calculada da seguinte forma: Grau de eficácia = (Grau de cobertura Tag xy - Grau de cobertura do produto Tag xy)/grau de cobertura do controle Tag xy
Resultados:
[000177] Nas terras agrícolas úteis, o crescimento de plantas daninhas foi reduzido significativamente em comparação com o controle. O grau de cobertura após 42 dias foi de 3,3% nas áreas tratadas e 70,0% na área de controle. Uma camada de biocimentação foi formada. O crescimento de plantas daninhas ocorreu principalmente nas áreas onde a camada de biocimentação foi danificada (por exemplo, em rachaduras de secagem). As curvas temporais ao longo dos 42 dias podem ser deduzidas da Figura 7 (acima, controle de água) e da Figura 7 (meio, tratamento com mistura de biocimentação 6). A Figura 7 (abaixo) ilustra (em cada caso dentro da marcação) a comparação direta entre o controle e a aplicação. O grau de eficácia da mistura de biocimentação 6 foi finalmente de 95,2%.
[000178] Na entrada de automóveis rejuntada, o crescimento de plantas daninhas também foi significativamente reduzido em comparação com o controle. O grau de cobertura após 42 dias foi de 3,7% nas áreas tratadas e de 40,0% nas áreas de controle. Aqui também ocorreu a formação de uma camada de biocimentação. As curvas temporais ao longo dos 42 dias podem ser deduzidas da Figura 8 (acima, controle de água) e da Figura 8 (meio, tratamento com mistura de biocimentação 6). A Figura 8 (abaixo) ilustra a comparação direta entre o controle e a aplicação (dentro dos rejuntes). O grau de eficácia do produto de biocementação foi finalmente de 90,8%.
[000179] A mistura de biocimentação é vantajosamente similarmente eficaz a muitos supressores de ervas daninhas disponíveis comercialmente (dados não mostrados) sendo que várias desvantagens de tais supressores de ervas daninhas podem ser evitadas.
[000180] Efeitos comparáveis no crescimento de ervas daninhas no campo também foram mostrados em formulações de mistura alternativas que adicionalmente (com base na mistura 6) também continham CaCl2 0,1 M a 0,3 M (dados não mostrados). Uma maior variação na concentração de ureia (1,0 a 0,15 M) também proporcionou bons grau de eficácia de supressão de ervas daninhas (dados não mostrados).

Claims (13)

1. Uso de uma mistura capaz de biocimentação, caracterizado pelo fato de que é como um meio para inibir ou reduzir o crescimento de plantas, ou o crescimento de ervas daninhas; sendo que que a referida mistura compreende ou consiste nos seguintes componentes: (i) um ou mais organismos e/ou enzimas, que é/são capaz(es) de formar carbonato, e/ou de induzir e/ou catalisar a formação de carbonato, (ii) uma ou mais substâncias para formação de carbonato, (iii) opcionalmente, uma ou mais fontes de cátions, e (iv) opcionalmente, um ou mais aditivos.
2. Uso, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado pelo fato de que que o organismo ou os organismos, no componente (i) da mistura, é/são um organismo/vários organismos, os quais, quando é conduzido o Ensaio A compreende as seguintes etapas: Ensaio A (i) Disponibilizar e contatar um organismo a ser definido ou uma mistura de organismos a ser definida, uma ou mais substâncias para formação de carbonato, e, opcionalmente, outras substâncias e, opcionalmente, um substrato; (ii) Disponibilizar um meio para determinar uma ureólise e/ou formação de carbonato; (iii) Combinar a mistura resultante da etapa (i) com o meio da etapa (ii); e (iv) Determinar a partir do meio da etapa (ii), se está presente uma ureólise e/ou uma formação de carbonato; leva à detectação de uma ureólise e/ou uma formação de carbonato, na etapa (iv), ou, se um substrato tenha sido disponibilizado - à detecção de biocementação, ou uma que seja suficiente para inibir ou reduzir o crescimento de plantas, ou o crescimento de ervas daninhas.
3. Uso, de acordo com a reivindicação 1 ou 2, caracterizado pelo fato de que a mistura está presente na forma líquida, como um gel, pasta ou pó.
4. Uso, de acordo com qualquer uma das reivindicações 1 a 3, caracterizado pelo fato de que um ou os vários ou todos organismos é/são selecionado(s) do grupo que consiste em microrganismos, selecionados do grupo que consiste em microrganismos do filo Firmicutes, ou da classe Bacilli, ou da ordem Bacillales, ou das famílias Planococcaceae ou Bacillaceae, ou dos gêneros Sporosarcina, Lysinibacillus ou Bacillus, ou selecionados das espécies Sporosarcina pasteurii, Sporosarcina ureae, Lysinibacillus sphaericus, Lysinibacillus fusiformis, Bacillus megaterium, Lysinibacillus sp., Bacillus pseudofirmus, Bacillus halodurans ou Bacillus cohnii; e microrganismos do filo Proteobacteria, ou das classes Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Deltaproteobacteria ou Epsilonproteobacteria, ou das ordens Enterobacteriales, Myxococcales, Campylobacterales, Pseudomonadales ou Caulobacterales, ou das famílias Enterobacteriaceae, Myxococcaceae, Helicobacteraceae, Pseudomonadaceae ou Caulobacteraceae, ou dos gêneros Proteus, Myxococcus, Helicobacter, Pseudomonas ou Brevundimonas, ou selecionados das espécies Proteus vulgaris, Proteus mirabilis, Myxococcus xanthus, Helicobacter pylori, Pseudomonas aeruginosa ou Brevundimonas diminuta; e microrganismos do filo Actinobacteria, ou da classe Actinobacteria, ou da ordem Actinomycetales, ou das famílias Brevibacteriaceae ou Micrococcineae, ou dos gêneros Brevibacterium ou Micrococcaceae, ou selecionados das espécies Brevibacterium linens ou Arthrobacter crystallopoietes; e microrganismos do filo Cyanobacteria, ou da classe Cyanobacteria, ou da ordem Synechococcales, ou da família Synechococcaceae, ou do gênero Synechococcus, ou da espécie Synechococcus; e bactérias aeróbicas, bactérias anaeróbicas, facultativamente bactérias anaeróbicas e seus intermediários.
5. Uso, de acordo com qualquer uma das reivindicações 1 a 4, caracterizado pelo fato de que uma ou várias ou todas enzimas é/são selecionada(s) do grupo que consiste em urease, asparaginase, carboanidrase e enzimas metabólicas.
6. Uso, de acordo com qualquer uma das reivindicações 1 a 5, caracterizado pelo fato de que uma ou mais ou todas as substâncias para formação de carbonato é/são selecionada(s) do grupo que consiste em ureia e seus sais, ácidos orgânicos como ácido lático e seus sais, ou carboxilatos, e seus ésteres, ácido glucônico e seus sais, ou carboxilatos, e seus ésteres, ácido acético e seus sais, ou carboxilatos, e seus ésteres, ácido fórmico e seus sais, ou carboxilatos, e seus ésteres, peptídeos, ou contendo asparagina, glutamina e/ou ácido glutamínico, aminoácidos, ou asparagina, glutamina e ácido glutamínico, e seus sais, ou carboxilatos, e seus ésteres, substratos complexos de origem vegetal e animal, em particular peptona, extrato de levedura, extrato de carne, caldo de nutrientes e casamino ácido, fluxos de resíduos industriais, em especial licor de maceração de milho, licor mãe de lactose, lisados proteicos, de preferência de ervilhas, carne ou tomate, substratos anaeróbicos, ou de dióxido de carbono e metano.
7. Uso de acordo com qualquer uma das reivindicações 1 a 6, caracterizado pelo fato de que uma ou mais ou todas as fontes de cátions é/são selecionada(s) do grupo que consiste em sais de cálcio orgânicos e inorgânicos, ou nitrato de cálcio, acetato de cálcio, lactato de cálcio e cloreto de cálcio, sais de magnésio, sais de manganês, sais de zinco, sais de cobalto, sais de níquel, sais de cobre, sais de chumbo, sais de ferro, sais de cádmio, polímeros, ou polímeros catiônicos, cátions de metal pesado, cátions de metal leve, cátions radioativos, assim como suas misturas.
8. Uso, de acordo com qualquer uma das reivindicações 1 a 7, caracterizado pelo fato de que um ou os mais ou todos aditivos é/são selecionado(s) do grupo que consiste em nutrientes; (bio- )polímeros, preferencialmente polihidroxibutirato, polilactídeo, ácido poliacrílico, polimetacrilato, poli (metacrilato de 2-hidroxietila), álcool polivinílico, acetato de polivinila, polivinilpirrolidona, poli (2-etil-2- oxazolina), poliestireno, copolímeros, poliaminoácidos, celulose e seus derivados, amido e seus derivados, lignina e seus derivados, pectina e seus derivados, adesivos naturais, em particular goma arábica, látex, quitina e seus derivados, quitosana e seus derivados, ciclodextrina e seus derivados, dextrina e seus derivados; monômeros de (bio- )polímeros, de preferência monômeros de celulose e monômeros de amido; formador de hidrogel, preferencialmente goma xantana, alginatos; colas solúveis a frio e/ou solúveis a quente (vegetais); carbonato de cálcio, preferencialmente madrepérola, carbonatos amorfos de cálcio, carbonato de cálcio precipitado, aragonita, calcita, vaterita e misturas e seus derivados; polissacarídeos e substâncias poliméricas extracelulares, preferencialmente exopolissacarídeos microbianos, preferencialmente contendo ou que consistem em ácido maleico, ácido acético, ácido lático, lactose, sacarose, glicose, frutose e/ou inulina; monômeros de polissacarídeos, de preferência lactose, sacarose, glicose, frutose e/ou inulina; fontes de proteínas, fibras, materiais fibrosos, preferencialmente caseína, albumina, extrato de levedura, peptonas, fibras de celulose, fibras de madeira, fibras de celulose de madeira; monômeros de caseína; monômeros de albumina; resíduos e tecidos industriais, de preferência licor de maceração de milho, licor mãe de lactose, lisados proteicos, melaços, resíduos de proteínas, de preferência da produção de leveduras, produção de carne, indústria de laticínios e fabricação de papel; silicatos e seus derivados; acrilatos e seus derivados; silicato de sódio e aglutinantes em forma de silicato de sódio; aditivos para cimento, óxido de alumínio, óxido de cálcio, hidróxido de cálcio, hidróxido de alumínio, cinzas, preferencialmente cinzas volantes e cinzas ósseas, microssílica, caulins, bentonitas; resinas e epóxidos; herbicidas naturais e químicos; fungicidas; moluscicidas; insecticidas; hidrofobizantes e emulsões de cera; auxiliares de emulsão; agentes tixotrópicos; sementes de cristalização e modificadores de cristalização; ácidos graxos; elementos traço; sais, preferencialmente fosfatos e sulfatos; bactérias capazes de formar polímeros; e substância(s) que modifica/modificam a biocimentação.
9. Uso, de acordo com qualquer uma das reivindicações 1 a 8, caracterizado pelo fato de que as plantas e as ervas daninhas são selecionadas do grupo que consiste em dicotiledôneas dos gêneros: Abutilon, Aegopodium, Aethusa, Amaranthus, Ambrosia, Anachusa, Anagallis, Anoda, Anthemis, Aphanes, Arabidopsis, Atriplex, Barbarea, Bellis, Bidens, Bunias, Capsella, Carduus, Cassia, Centaurea, Chenopodium, Chrysanthemum, Cirsium, Conium, Conyza, Consolida, Convolvulus, Datura, Descurainia, Desmodium, Emex, Equisetum, Erigeron, Erodium, Erysimum, Euphorbia, Fumaria, Galeopsis, Galinsoga, Galium, Geranium, Heracleum, Hiatécus, Ipomoea, Kochia, Lamium, Lapsana, Lathyrus, Lepidium, Lithoserpermum, Linaria, Lindernia, Lycopsis, Malva, Matricaria, Mentha, Mercurialis, Mullugo, Myosotis, Papaver, Pharbitis, Plantago, Polygonum, Portulaca, Ranunculus, Raphanus, Rorippa, Rotala, Rumex, Salsola, Senecio, Sesbania, Sida, Sinapis, Sisymbrium, Solanum, Sonchus, Sphenoclea, Stachys, Stellaria, Taraxacum, Thlaspi, Trifolium, Tussaligo, Urtica, Veronica, Viola, Xanthium; Dicotiledôneas dos gêneros: Arachis, Beta, Brassica, Cucumis, Cucurbita, Helianthus, Daucus, Glycine, Gossypium, Ipomoea, Lactuca, Linum, Lycopersicon, Nicotiana, Phaseolus, Pisum, Solanum, Vicia; Monocotiledôneas dos gêneros: Aegilops, Agropyron, Agrostis, Alopecurus, Apera, Avena, Brachiaria, Bromus, Cenchrus, Commelina, Cynodon, Cyperus, Dactyloctenium, Digitaria, Echinochloa, Eleocharis, Eleusine, Eragrostis, Eriochloa, Festuca, Fimbristylis, Heteranthera, Imperata, Ischaemum, Juncus, Leptochloa, Lolium, Monochoria, Panicum, Paspalum, Phalaris, Phleum, Poa, Rottboellia, Sagittaria, Scirpus, Setaria, Sorghum; e monocotiledôneas dos gêneros: Allium, Ananas, Asparagus, Avena, Hordeum, Oryza, Panicum, Saccharum, Secale, Sorghum, Triticale, Triticum, Zea; musgos das linhagens dos musgos hepáticos, dos musgos antroceróticos, dos musgos decíduos (Bryopsida), ou sendo que o crescimento de pelo menos duas, três, quatro, cinco, seis, sete, oito, nove, dez, mais que dez ou todas essas plantas é inibido ou reduzido.
10. Método para inibir ou reduzir o crescimento de plantas, ou o crescimento de ervas daninhas, sobre/em um substrato, caracterizado pelo fato de que consiste em ou compreende as seguintes etapas: (a) Identificar um substrato a ser tratado, sobre o/no qual um crescimento de plantas, ou um crescimento de ervas daninhas, deve ser inibido ou reduzido; (b) Disponibilizar uma mistura, como definida em qualquer uma das reivindicações 1 a 8; (c) Aplicar e/ou introduzir a mistura disponibilizada na etapa (b) sobre o/no substrato a ser tratado, em uma quantidade suficiente para possibilitar uma biocimentação; e (d) Formar uma camada de biocimento, de modo que o crescimento de plantas ou o crescimento de ervas daninhas sobre o/no substrato é inibido ou reduzido.
11. Método, de acordo com a reivindicação 10, caracterizado pelo fato de que o substrato é selecionado do grupo que consiste em areia, terra, de preferência terra de solo e terra de plantio, húmus, brita, cascalho, barro, argila, silte, serragem, papel, papelão, aglomerado, madeira macia, calcário, carvão, assim como suas misturas.
12. Método, de acordo com a reivindicação 10 ou 11, caracterizado pelo fato de que as plantas ou as ervas daninhas são selecionadas do grupo que consiste em dicotiledôneas dos gêneros: Abutilon, Aegopodium, Aethusa, Amaranthus, Ambrosia, Anachusa, Anagallis, Anoda, Anthemis, Aphanes, Arabidopsis, Atriplex, Barbarea, Bellis, Bidens, Bunias, Capsella, Carduus, Cassia, Centaurea, Chenopodium, Chrysanthemum, Cirsium, Conium, Conyza, Consolida, Convolvulus, Datura, Descurainia, Desmodium, Emex, Equisetum, Erigeron, Erodium, Erysimum, Euphorbia, Fumaria, Galeopsis, Galinsoga, Galium, Geranium, Heracleum, Hiatécus, Ipomoea, Kochia, Lamium, Lapsana, Lathyrus, Lepidium, Lithoserpermum, Linaria, Lindernia, Lycopsis, Malva, Matricaria, Mentha, Mercurialis, Mullugo, Myosotis, Papaver, Pharbitis, Plantago, Polygonum, Portulaca, Ranunculus, Raphanus, Rorippa, Rotala, Rumex, Salsola, Senecio, Sesbania, Sida, Sinapis, Sisymbrium, Solanum, Sonchus, Sphenoclea, Stachys, Stellaria, Taraxacum, Thlaspi, Trifolium, Tussaligo, Urtica, Veronica, Viola, Xanthium; Dicotiledôneas dos gêneros: Arachis, Beta, Brassica, Cucumis, Cucurbita, Helianthus, Daucus, Glycine, Gossypium, Ipomoea, Lactuca, Linum, Lycopersicon, Nicotiana, Phaseolus, Pisum, Solanum, Vicia; monocotiledôneas dos gêneros: Aegilops, Agropyron, Agrostis, Alopecurus, Apera, Avena, Brachiaria, Bromus, Cenchrus, Commelina, Cynodon, Cyperus, Dactyloctenium, Digitaria, Echinochloa, Eleocharis, Eleusine, Eragrostis, Eriochloa, Festuca, Fimbristylis, Heteranthera, Imperata, Ischaemum, Juncus, Leptochloa, Lolium, Monochoria, Panicum, Paspalum, Phalaris, Phleum, Poa, Rottboellia, Sagittaria, Scirpus, Setaria, Sorghum; e monocotiledôneas dos gêneros: Allium, Ananas, Asparagus, Avena, Hordeum, Oryza, Panicum, Saccharum, Secale, Sorghum, Triticale, Triticum, Zea; musgos das linhagens musgos hepáticos, musgos antroceróticos, musgos decíduos.
13. Método, de acordo com qualquer uma das reivindicações 10 a 12, caracterizado pelo fato de que a mistura está presente na forma líquida, como um gel, pasta ou pó.
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