BR102021011721A2 - Método de uso de modulação de fótons para regulação de hormônios em mamíferos - Google Patents

Abstract

As modalidades da presente divulgação fornecem sistemas, aparelhos e métodos para a produção de hormônio de regulação em mamíferos. Os exemplos incluem, mas não estão limitados a criar trens de pulso de emissão de onda eletromagnética (fótons) de espectros de cores individuais em intensidade suficiente para conduzir a produção de hormônio em um mamífero, bem como usar uma frequência característica ou padrão para minimizar a potência de entrada exigida necessária para regular a produção de hormônios, ao mesmo tempo também permitindo monitorar o consumo de energia e outras variáveis do sistema. Controlando o ciclo de trabalho, intensidade, banda de comprimento de onda e frequência de sinais de fótons para um mamífero, a produção de hormônios específicos pode ser regulada através de ciclagem entre modulação de fótons azul, verde, amarelo, de vermelho próximo, vermelho distante, infravermelho e ultravioleta.

Description

MÉTODO DE USO DE MODULAÇÃO DE FÓTONS PARA REGULAÇÃO DE HORMÔNIOS EM MAMÍFEROS SUMÁRIO

[0001] As seguintes modalidades e aspectos das mesmas são descritos e ilustrados juntamente com sistemas, ferramentas e métodos que são destinados a serem exemplificativos e ilustrativos, não limitativos do escopo.

[0002] Uma modalidade da presente invenção compreende um método de regulação de hormônios em mamíferos, o método compreendendo: fornecer um sistema para pulsar sinais de fótons para um mamífero compreendendo: pelo menos um emissor de fótons; pelo menos um controlador de modulação de emissão de fótons em comunicação com o emissor de fótons; onde pelo menos um emissor de fótons é configurado para produzir um sinal de fótons direcionado para o mamífero, onde o sinal de fótons compreende dois ou mais componentes independentes, onde os dois ou mais componentes independentes compreendem: um primeiro componente independente de um primeiro grupo de pulsos de fótons modulados repetitivos, onde o primeiro grupo de pulsos de fótons modulados tem uma ou mais durações do primeiro pulso de fótons LIGADOS com uma ou mais primeiras intensidades, tem uma ou mais durações do primeiro pulso de fótons DESLIGADOS, e uma primeira cor de comprimento de onda; onde uma ou mais durações do primeiro pulso de fótons LIGADOS estão entre 0,01 microssegundo e 5.000 milissegundos e onde uma ou mais durações do primeiro fóton DESLIGADO entre está entre 0,1 microssegundos e 24 horas; e um segundo componente independente de um segundo grupo de pulsos de fótons modulados repetitivos, onde o segundo grupo de pulsos de fótons modulados tem uma ou mais durações do segundo pulso de fótons LIGADOS com uma ou mais segundas intensidades, tem uma ou mais durações do segundo pulso de fótons DESLIGADOS e uma segunda cor do comprimento de onda; onde uma ou mais durações do segundo pulso de fótons LIGADOS estão entre 0,01 microssegundo e 5.000 milissegundos e onde uma ou mais durações do segundo fóton DESLIGADO estão entre estão entre 0,1 microssegundo e 24 horas; onde o primeiro componente independente e o segundo componente independente são produzidos dentro do sinal simultaneamente; onde o segundo grupo de pulsos de fótons modulados é diferente do primeiro grupo de pulsos de fótons modulados; e emitir o sinal para o mamífero; onde o efeito combinado do sinal é a regulação dos níveis de hormônio no mamífero quando comparado ao nível de hormônio da linha de base estabelecido do mamífero e / ou, a modificação do comportamento, ciclo de reprodução, crescimento do cabelo, taxas de acalmação ou metabolismo.

[0003] Uma modalidade da presente invenção compreende ainda um sistema para regular a produção de hormônio em um mamífero, compreendendo: pelo menos um emissor de fótons; pelo menos um controlador de modulação de emissão de fótons em comunicação com pelo menos um emissor de fótons; onde pelo menos um emissor de fótons é configurado para produzir um sinal de fótons para o mamífero, onde o sinal de fótons compreende dois ou mais componentes independentes, onde os dois ou mais componentes independentes compreendem: um primeiro componente independente de um primeiro grupo de pulsos de fótons modulados repetitivos, onde o primeiro grupo de pulsos de fótons modulados tem uma ou mais durações do primeiro pulso de fótons LIGADOS com uma ou mais primeiras intensidades, tem uma ou mais durações do primeiro pulso de fótons DESLIGADOS, e uma primeira cor de comprimento de onda; onde uma ou mais durações do primeiro pulso de fótons LIGADOS estão entre 0,01 microssegundo e 5.000 milissegundos e onde uma ou mais durações do primeiro fóton DESLIGADO estão entre estão entre 0,1 microssegundos e 24 horas; e um segundo componente independente de um segundo grupo de pulsos de fótons modulados repetitivos, onde o segundo grupo de pulsos de fótons modulados tem uma ou mais durações do segundo pulso de fótons LIGADOS com uma ou mais segundas intensidades, tem uma ou mais durações do segundo pulso de fóton, e cor do segundo comprimento de onda; onde uma ou mais durações do segundo pulso de fótons LIGADOS estão entre 0,01 microssegundo e 5.000 milissegundos e onde uma ou mais durações do segundo fóton DESLIGADO estão entre estão entre 0,1 microssegundo e 24 horas; onde o primeiro componente independente e o segundo componente independente são produzidos dentro do sinal simultaneamente; onde o segundo grupo de pulsos de fótons modulados é diferente do primeiro grupo de pulsos de fótons modulados; e onde o sinal para o mamífero tem o efeito combinado do primeiro grupo de pulsos de fótons e o segundo grupo de pulsos de fótons regula a produção de hormônio no mamífero e / ou, a modificação do comportamento, ciclo de reprodução, crescimento do cabelo, taxas de acalmação ou metabolismo.

BREVE DESCRIÇÃO DAS FIGURAS

[0004] Os desenhos anexos, que são aqui incorporados e fazem parte da especificação, ilustram algumas, mas não as modalidades e/ou características de exemplo, únicas ou exclusivas. Pretende-se que as modalidades e figuras divulgadas neste documento devam ser consideradas ilustrativas, em vez de limitativas.

[0005] A Figura 1 é um diagrama mostrando um exemplo de um sistema de crescimento de modulação de fótons para a regulação de hormônios em um mamífero.

[0006] A Figura 2 é um diagrama mostrando um exemplo de um sistema de crescimento de modulação de fótons de cor individual pulsando comprimentos de onda específicos diferentes de luz para regular a produção de hormônio em um mamífero.

[0007] A Figura 3 é um diagrama mostrando um controlador de modulação de emissão de fótons em comunicação com uma pluralidade de emissores de fótons com matrizes de LED de amostra.

[0008] A Figura 4 é um diagrama mostrando a modulação de emissão de fótons através de uma matriz de LED mestre/escravo.

[0009] A Figura 5 é um diagrama mostrando um controlador lógico mestre em comunicação e controle de uma série de emissores de fótons.

[0010] A Figura 6 é um diagrama mostrando um sistema de gerenciamento de modulação de fótons em comunicação com uma série de sensores de mamífero.

[0011] A Figura 7 é um diagrama mostrando uma matriz de LED de amostra em comunicação com vários SSRs (Relés de Estado Sólido), BJTs ou FETS.

[0012] A Figura 8a é uma foto mostrando o conversor de energia, o SPI e o microcontrolador de uma matriz colorida múltipla dentro de um único LED.

[0013] A Figura 8b é uma foto mostrando a parte de trás da matriz colorida múltipla dentro de um único LED da Figura 8a.

[0014] A Figura 8c é uma foto mostrando o circuito de comutação de alta velocidade para o piscar da matriz colorida múltipla dentro de um único LED da Figura 8a.

[0015] A Figura 8d é uma foto mostrando a parte de trás da matriz de LED da Figura 8c com um LED de matriz multicolorido substituível.

[0016] A Figura 9 é um layout de exemplo de LEDs dentro de uma matriz de LED.

[0017] A Figura 10 é um diagrama de fluxo mostrando um método de regulação de hormônios em um mamífero através de pulsação de vários comprimentos de onda para estimular opsinas específicas em um organismo.

[0018] A Figura 11 é um diagrama de fluxo mostrando um método de regulação de hormônios, comportamento, ciclo de reprodução, crescimento do cabelo, taxas de acalmação ou metabolismo em um mamífero através do uso de sensores de mamíferos.

[0019] A Figura 12 é um gráfico mostrando um exemplo de um sinal de fótons com um pulso de fótons vermelho próximo, com o sinal de fótons tendo uma taxa repetitiva de 400 µs para a regulação da produção de hormônio em mamíferos.

[0020] A Figura 13 é um gráfico mostrando um exemplo de um sinal de fótons com um pulso de fótons vermelho próximo e um pulso de fótons vermelho distante, com o sinal de fótons tendo uma taxa repetitiva de 600 µs para a regulação da produção de hormônio em mamíferos.

[0021] A Figura 14 é um segundo gráfico mostrando um exemplo de um sinal de fótons com um pulso de fótons vermelho próximo e um pulso de fótons vermelho distante, onde os dois pulsos de fótons têm uma duração LIGADO e duração DESLIGADO diferentes do exemplo mostrado na Figura 13, com o sinal de fótons tendo uma taxa repetitiva de 600 µs para a regulação de produção de hormônio em mamíferos.

[0022] A Figura 15 é um gráfico mostrando um exemplo de um sinal de fótons com um pulso de fótons de azul e um pulso de fótons de verde, com o sinal de fótons tendo uma taxa repetitiva de 600 µs para a regulação da produção de hormônio em mamíferos.

[0023] A Figura 16 é um gráfico mostrando um exemplo de um sinal de fótons com um pulso de fótons de azul, pulso de fótons de verde, e um pulso vermelho próximo com o sinal de fótons tendo uma taxa repetitiva de 800 µs para a regulação da produção de hormônio em mamíferos.

[0024] A Figura 17 é um gráfico mostrando um exemplo de um sinal de fótons com um pulso de fótons de azul, um pulso de fótons de ultravioleta, um pulso de fótons de laranja, um pulso de fótons de verde e um pulso vermelho próximo com o sinal de fótons tendo uma taxa repetitiva de 600 µs para a regulação da produção de hormônio em mamíferos.

[0025] A Figura 18 é um terceiro gráfico mostrando um exemplo de um sinal de fótons com um pulso de fótons vermelho próximo e um pulso de fótons vermelho distante, onde os dois pulsos de fótons têm uma duração LIGADO e duração DESLIGADO diferentes do exemplo mostrado na Figura 13 e Figura 14, com o sinal de fótons tendo uma taxa repetitiva de 400 µs para a regulação de produção de hormônio em mamíferos.

[0026] A Figura 19 é um quarto gráfico mostrando um exemplo de um sinal de fótons com um pulso de fótons vermelho próximo e um pulso de fótons vermelho distante, onde os pulsos de dois fótons têm uma duração LIGADO diferente com intensidades diferentes e duração DESLIGADO dos exemplos mostrados na Figura 13 e Figura 14, com o sinal de fótons tendo uma taxa repetitiva de 400 µs para a regulação de produção de hormônio em mamíferos.

[0027] A Figura 20 é uma Curva Padrão do Kit Elisa de Melatonina mostrando as concentrações que variam de 0,04 ng / mL a 50 ng / mL. A leitura do branco não é mostrada no gráfico por causa da escala logarítmica do eixo X.

[0028] A Figura 21 é um gráfico das concentrações de melatonina em ng / mL. A luz de controle é mostrada no "Indivíduo 1 sem" e as luzes, como descrito neste documento, são mostradas em "Indivíduo 1, w". Todas as concentrações foram calculadas com base nos padrões mostrados na Figura 20.

[0029] A Figura 22 é uma Curva Padrão do Kit Elisa de Melatonina mostrando as concentrações variando de 0,04 ng / mL a 50 ng / mL. A leitura do branco não é mostrada no gráfico por causa da escala logarítmica do eixo X.

[0030] A Figura 23 é um gráfico das concentrações de melatonina bovina em ng / mL com e sem iluminação. A luz de controle é mostrada no "Touro 1 sem" e as luzes, como descrito neste documento, são mostradas em "Touro 1, com". Todas as concentrações mostradas são calculadas a partir de amostras replicadas. Todas as concentrações foram calculadas com base nos padrões mostrados na Figura 22.

DESCRIÇÃO DETALHADA

[0031] As modalidades da presente divulgação fornecem sistemas, aparelhos e métodos para a regulação da produção de hormônios em mamíferos, onde os hormônios a serem regulados podem incluir, mas não estão limitados a, hormônios hipotalâmicos, como o hormônio liberador de corticotropina, fatores liberador de prolactina (serotonina, acetilcolina, opiáceos e estrogênios), somatostatina, fatores inibidores da prolactina (dopamina), hormônios hipofisários, como hormônio adrenocorticotrópico (ACTH), hormônio estimulador dos melanócitos, endorfinas, hormônio do crescimento, hormônio luteinizante (LH) e hormônio folículo-estimulante (FSH), hormônio estimulador da tireoide (TSH), prolactina, epinefrina, melatonina, leucotrienos, hormônio folículo-estimulante,hormônios de crescimento, insulina, fator de crescimento semelhante à insulina, oxitocina, hormônio paratireóideo, hormônio liberador de tirotropina, testosterona, estradiol e progesterona. Os sistemas e métodos aqui descritos incluem, mas não estão limitados a, criar trens de pulso de emissão de onda eletromagnética (fótons) de espectros de cores individuais em intensidade suficiente para conduzir a produção de hormônio em um mamífero, bem como usar uma frequência característica ou padrão para minimizar a potência de entrada exigida necessária para regular a produção de hormônios, ao mesmo tempo também permitindo monitorar o consumo de energia e outras variáveis do sistema. Como será discutido em mais detalhes, controlando o ciclo de trabalho, intensidade, banda de comprimento de onda e frequência de sinais de fótons para um mamífero, a produção de hormônios específicos pode ser regulada através de ciclagem entre modulação de fótons azul, verde, amarelo, de vermelho próximo, vermelho distante, infravermelho e ultravioleta.

[0032] Especificamente, combinando múltiplos comprimentos de onda repetitivos de pulsos de fótons em sinais de fótons em combinação específica de taxas de pulso, a produção de hormônios por mamíferos pode ser regulada e otimizada, incluindo permitir um aumento na produção de hormônios específicos de 0,1%, 1,0%, 5%, 7,5, 10%, 12,2%, 20%, 33,3%, 50%, 81,7%, 100%, 143,9%, 150%, 181,4%, 200%, 250%, 444,2%, 500% e 1.000% ou mais, e todos os números inteiros intermediários, acima do nível de hormônio da linha de base de um mamífero, ou uma diminuição na produção de hormônios específicos de 0,1%, 1,2%, 7,7%, 10%, 15,6, 20%, 47,2%, 50%, 74,5%, 100%, 150%, 200%, 250%, 500% e 1000% ou menos, e todos os números inteiros intermediários, abaixo do nível de hormônio da linha de base de um mamífero como no mamífero, junto com a regulação ou controle do humor de um mamífero, reduzindo o estresse ou acalmando o mamífero.

[0033] As modalidades da presente divulgação fornecidas neste documento regulam a produção de hormônios específicos. Cada “receita” ou opção de luz (um sinal de fótons com um ou mais grupos de pulsos de fótons modulados repetitivos com uma ou mais durações LIGADO de primeiro pulso de fótons com uma ou mais intensidades iniciais, com uma ou mais durações DESLIGADO de primeiro pulso de fóton, e uma primeira cor de comprimento de onda) pode ser otimizada para cada hormônio a ser regulado para cada espécie de mamífero.

[0034] Uma modalidade de exemplo adicional para os métodos, sistemas e aparelhos descritos neste documento pode incluir menos geração de calor: a iluminação LED intrinsecamente cria menos calor do que as luzes convencionais. Quando as luzes LED são usadas em uma aplicação de dosagem, elas estão LIGADOS menos tempo do que DESLIGADOS. Isso cria um ambiente com produção de calor nominal a partir das luzes LED. Isso não é apenas benéfico em termos de não ter de usar energia para evacuar o calor do sistema, mas é benéfico para o mamífero porque a iluminação também pode ser usada para reduzir o estresse do animal ou acalmá-lo.

Regulação de Hormônios

[0035] O hipotálamo funciona como o centro de coordenação do sistema endócrino. Entradas do sistema nervoso somático e autônomo, feedback endócrino periférico e estímulos ambientais, como luz e temperatura, são processadas no hipotálamo. O hipotálamo então afeta a função de múltiplos sistemas endocrinológicos por meio da interação hipotálamo-pineal (por meio de núcleo supraquiasmático) e do eixo hipotálamo-hipófise. O hipotálamo é responsável pelo controle do ritmo circadiano, regulação da temperatura e metabolismo. Os hormônios hipotalâmicos também afetam a produção de hormônios hipofisários. Os hormônios hipofisários controlam a função adrenal, tireóide e gonadal, além do equilíbrio hídrico, crescimento, modificação do comportamento, ciclo reprodutivo, crescimento do cabelo, taxas de acalmação ou metabolismo. e produção de leite.

[0036] O hipotálamo está localizado no meio da cabeça. É posterior aos olhos e fica logo abaixo do terceiro ventrículo e acima do quiasma óptico e da glândula hipófise. As entradas aferentes para o hipotálamo se originam do tronco encefálico, tálamo, gânglios basais, córtex cerebral, áreas olfatórias e nervo óptico. As vias eferentes vão para os centros reticulares do tronco encefálico, sistema nervoso autônomo, tálamo, glândula pineal, eminência mediana e trato hipotálamo-neurohipofisário que conecta os núcleos paraventricular e supraóptico ao terminal nervoso na hipófise posterior.

[0037] Em mamíferos, o olho funciona como a fonte primária de fotorreceptores e, subsequentemente, entrada de luz. Isso ocorre principalmente através dos bastonetes / cones na retina que utilizam proteínas com base em opsina (cromóforos). A rodopsina é o mais conhecido desses fotorreceptores em mamíferos. Um fotopigmento inédito, a melanopsina, também foi identificado em células ganglionares da retina chamadas ipRGCs (células ganglionares retinais intrinsecamente fotossensíveis), mas não têm tarefas fotorreceptivas clássicas. As Opsinas são conhecidas por serem amplamente expressas em outros tecidos de mamíferos, mas a utilidade e a função delas não estão bem documentadas. OPN3 é um exemplo de opsina extraocular. OPN3 é expressa no cérebro, testículos, fígado, placenta, coração, pulmão, músculo, rim, pâncreas, escroto e pele.

[0038] Os fotorreceptores visuais captam a entrada de luz do olho e a transformam em um impulso elétrico que é enviado através do nervo óptico. Muitas dessas células continuam no centro visual do cérebro no lobo occipital, mas alguns dos neurônios atravessam para o núcleo supraquiasmático (SCN) dentro do hipotálamo. O SCN atua como o principal controlador do ritmo circadiano em humanos através da expressão de “genes clock”. Esses “genes clock” transcrevem várias proteínas que resultam no controle de múltiplos ritmos comportamentais e fisiológicos, incluindo locomoção, ciclos de sono-vigília, termorregulação, função cardiovascular e muitos processos endócrinos.

[0039] Neurônios produtores de hipocretina adicionais no hipotálamo lateral respondem ao estado nutricional do organismo e aos sinais luminosos do SCN para estimular o estado de alerta, o apetite e os comportamentos alimentares. Perturbações desses ciclos podem resultar em anormalidades do metabolismo que levam à obesidade e à síndrome metabólica (diabetes tipo II, hiperlipidemia e hipertensão).

[0040] Uma via multi-sináptica que utiliza o sistema nervoso simpático do SCN para a glândula pineal controla a liberação de melatonina da glândula pineal. A melatonina é derivada da serotonina, que por sua vez é derivada do aminoácido triptofano. A melatonina está diretamente envolvida na regulação do ritmo circadiano, mas também tem um papel fundamental na fisiologia reprodutiva dos mamíferos. Os efeitos específicos incluem alterações na contagem de esperma, alterações nos níveis de progesterona, estradiol, hormônio luteinizante e tireóide. A melatonina também pode inibir o desejo sexual e alterar a menstruação. O fotoperíodo se correlaciona diretamente com a liberação de melatonina e o tempo resultante da estação de reprodução em mamíferos. A melatonina também afeta o ciclo sonovigília, pode diminuir a atividade motora, diminuir a temperatura corporal e induzir a fadiga.

[0041] A regulação e a liberação de outros hormônios do hipotálamo e da hipófise também podem ser afetadas por vias complexas que envolvem o SCN. O hipotálamo libera hormônios que viajam pela haste pituitária até a glândula pituitária. Esses hormônios, então, causam a liberação ou inibição dos hormônios hipofisários. Os hormônios hipofisários, então, expressam seus efeitos amplamente por todo o corpo. Exemplos de hormônios hipotalâmicos e hipofisários são mostrados na Tabela 1 abaixo:

[0042] A melatonina (N-acetil-5- metoxitriptamina) é o principal componente regulador do ritmo circadiano produzido na glândula pineal pelo aminoácido triptofano, por meio de uma série de reações de hidroxilação e metilação. Em resposta à luz reduzida, à noite, um sinal de secreção de melatonina é enviado pelo nervo óptico para a glândula pineal que intensifica a produção de melatonina. Após a produção, a melatonina é secretada na corrente sanguínea e carregada por todo o corpo. Ver Cassone, V M, et al. “Melatonin, the Pineal Gland, and Circadian Rhythms.” Journal of Biological Rhythms., U.S. National Library of Medicine, 1993, www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8274765. “The Human Suprachiasmatic Nucleus HHMI's BioInteractive.” HHMI BioInteractive, www.hhmi.org/biointeractive/humansuprachiasmatic-nucleus. Mure, L S, et al. “MelanopsinDependent Nonvisual Responses: Evidence for Photopigment Bistability in Vivo.” Journal of Biological Rhythms., U.S. National Library of Medicine, outubro de 2007, www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17876062. Musio, Carlo. “NONVISUAL PHOTORECEPTION in INVERTEBRATES.” Non-Visual Photoreception in Invertebrates, photobiology.info/Musio.html. The Pineal Gland and Melatonin, Richard Bowen, www.vivo.colostate.edu/hbooks/pathphys/endocrine/otherendo /pineal.html. Sargis, Robert M. “An Overview of the Pineal Gland.” EndocrineWeb, www.endocrineweb.com/endocrinology/overview-pineal-gland. Srour, Marc. “Photoreception in Animals.” Teaching Biology, 23 Jan. 2018, bioteaching.com/photoreception-inanimals/. Welt, Corrine. “Hypothalamic - Pituitary Axis.” UpToDate, abril de 2017, www.uptodate.com/contents/hypothalamic-pituitary-axis.

[0043] O hormônio estimulador de folículo (FSH) é uma gonadotrofina, um hormônio hipofisário de polipeptídeo de glicoproteína. O hormônio é sintetizado e secretado pelas células gonadotrópicas da glândula pituitária anterior e foi observado regular o desenvolvimento, crescimento, maturação puberal, e processos reprodutivos do corpo. Veja“Follicle-Stimulating Hormone". WebMD.

[0044] O hormônio luteinizante é um hormônio hipofisário produzido por células gonadotrópicas na glândula pituitária anterior. Nas fêmeas, descobriu-se que um aumento no hormônio desencadeia a ovulação e também o desenvolvimento do corpo lúteo. Nos machos, descobriu-se que o hormônio estimula a produção de testosterona. Ver ^ Ujihara M, Yamamoto K, Nomura K, Toyoshima S, Demura H, Nakamura Y, Ohmura K, Osawa T (junho de 1992). "Sulphation subunit-specific of oligosaccharides related to chargeheterogeneity in porcine lutrophin isoforms". Glycobiology. 2 (3): 225–31. doi: 10.1093/glycob / 2.3.225. PMID 1498420.

[0045] O hormônio liberador de corticotropina (CRH) é um peptídeo de 41 aminoácidos derivado de um prépró-hormônio de 196 aminoácidos. O CRH é secretado pelo hipotálamo em resposta ao estresse. Foi observado que o aumento da produção de CRH está associado à doença de Alzheimer e à depressão maior, e a deficiência de corticotropina hipotalâmica autossômica recessiva tem consequências metabólicas múltiplas e potencialmente fatais, incluindo hipoglicemia. Além de ser produzido no hipotálamo, o CRH também é sintetizado em tecidos periféricos, como os linfócitos T, e é altamente expresso na placenta. Na placenta, o CRH é um marcador que determina a duração da gestação e o momento do parturição e parto. Um rápido aumento dos níveis circulantes de CRH ocorre no início do parto, sugerindo que, além de suas funções metabólicas, o CRH pode atuar como um gatilho para o parto. Veja Entrez Gene: CRH corticotropin releasing hormone".

[0046] A hipófise posterior também funciona liberando hormônios sintetizados no hipotálamo. Esses neurônios hipotalâmicos produzem hormônios que são mobilizados abaixo no axônio da célula e terminam na hipófise posterior. Os principais hormônios neurohipofisários e seus efeitos são mostrados na Tabela 3:

[0047] Dadas as vias fotorreceptivas discutidas acima, fotorreceptores extraoculares, bem como as muitas interações complexas que envolvem o hipotálamo (hipófise, tronco cerebral, sistema nervoso autônomo e feedback endócrino periférico), inúmeros hormônios, incluindo aqueles nas Tabelas 1, 2 e 3, bem como aqueles listados abaixo, podem ser regulados pelos métodos e sistemas descritos neste documento através do uso de entradas de fótons pulsados.

[0048] Além dos hormônios fornecidos acima, inúmeros hormônios adicionais podem ser regulados em mamíferos usando os métodos e sistemas fornecidos neste documento, incluindo, mas não se limitando a:
A. Hormônios derivados de aminoácidos, como epinefrina, tri-idotuironina e tiroxina.
B. Hormônios eicosanóides como, mas não se limitando a leucotrienos.
C. Hormônios peptídicos como, mas não se limitando a amilina, insulina, fator de crescimento semelhante à insulina e hormônio da paratireóide.
D. Hormônios esteróides como testosterona, estradiol e progesterona. Determinação das concentrações de hormônio em mamíferos

[0049] Existem várias técnicas analíticas usadas para determinar a concentração de hormônio em mamíferos, como a melatonina incluindo, mas não se limitando a imunoensaio enzimático (ELISA), cromatografia líquida de alto desempenho (HPLC) e espectrometria de massa por cromatografia gasosa (GC-MS).

[0050] Os kits de imunoensaio enzimático (ELISA) foram desenvolvidos para determinar as concentrações de melatonina para muitas amostras biológicas, incluindo Homo sapiens. O ELISA envolve a detecção de um analito que é uma substância específica cuja presença está sendo analisada quantitativamente. No ELISA, uma amostra é adicionada a uma fase estacionária que contém propriedades de ligação específicas. Múltiplos reagentes líquidos são sequencialmente adicionados, incubados e lavados, seguido por uma reação enzimática que produz uma mudança óptica no líquido final no poço a partir do qual a concentração do analito é medida. As amostras são medidas qualitativamente com a detecção através de transmitância de luz por espectrofotometria. Isso envolve a transmissão quantificável de algum comprimento de onda específico de luz através da amostra e da placa do poço. A sensibilidade de detecção depende da amplificação do sinal durante as reações químicas. As enzimas que estão ligadas aos reagentes de detecção geram o sinal que permite uma quantificação precisa.

[0051] A cromatografia líquida de alto desempenho ou HPLC também pode ser usada para determinar as concentrações de hormônio em mamíferos. HPLC é uma técnica em química analítica usada para separar, identificar e quantificar cada componente de uma mistura. Ele se baseia em bombas para passar um solvente líquido pressurizado contendo a mistura de amostra através de uma coluna preenchida com um material adsorvente sólido. Cada componente na amostra interage de maneira ligeiramente diferente com o material adsorvente, causando diferentes vazões para os diferentes componentes e levando à separação dos componentes à medida que fluem para fora da coluna. HPLC tem sido usado para fabricação legal (por exemplo, durante o processo de produção de produtos farmacêuticos e biológicos), legal (por exemplo, detecção de drogas para melhorar o desempenho na urina), pesquisa (por exemplo, separar os componentes de uma amostra biológica complexa ou de produtos químicos sintéticos semelhantes uns dos outros), e para fins médicos (por exemplo, detectar os níveis de vitamina D no soro do sangue). Veja Gerber, F.; Krummen, M.; Potgeter, H.; Roth, A.; Siffrin, C.; Spoendlin, C. (2004). "Practical aspects of fast reversed-phase high-performance liquid chromatography using 3μm particle packed columns and monolithic columns in pharmaceutical development and production working under current good manufacturing practice". Journal of Chromatography A. 1036 (2): 127–133. doi: 10.1016/ j.chroma.2004.02.056. PMID 15146913.

[0052] Cromatografia gasosa - espectrometria de massa (GC-MS) é um método analítico que combina as características da cromatografia gasosa e espectrometria de massa para identificar diferentes substâncias em uma amostra de teste. Veja O. David Sparkman; Zelda Penton; Fulton G. Kitson (17 de maio de 2011). Gas Chromatography and Mass Spectrometry: A Practical Guide. Academic Press. ISBN 978-0-08-092015-3.

Regulação de hormônio em mamíferos através da estimulação de opsinas

[0053] Uma modalidade neste documento inclui a regulação de hormônios em mamíferos através da emissão de um ou mais grupos de pulsos de fótons modulados repetitivos dentro de um sinal de fótons para o mamífero, onde cada grupo de pulsos repetitivos tem espectros de cores individuais ou faixas de espectros de cores, incluindo azul, verde e / ou espectros de vermelho, em uma frequência, intensidade e ciclo de trabalho, que podem ser customizados, monitorados e otimizados para o hormônio específico a ser regulado no mamífero, minimizando a energia utilizada no sistema. Ao suprir controle sobre as taxas e eficiências de energia de fótons moduladas para o mamífero, diferentes partes da fotoestimulação das opsinas do mamífero localizadas no hipotálamo e na retina (como opsinas vermelhas e opsinas verdes) fotorreceptores são maximizados, permitindo a regulação de hormônios, incluindo um aumento na produção de hormônios específicos de 0,1% 10%, 20%, 50%, 100%, 150%, 200%, 250%, 500% e 1.000% ou mais e todos os números inteiros intermediários, acima do nível de hormônio da linha de base de um mamífero, uma diminuição na produção de hormônios específicos de 0,1% 10%, 20%, 50%, 100%, 150%, 200%, 250%, 500% e 1.000% ou menos e todos os números inteiros intermediários, abaixo do nível de hormônio da linha de base de um mamífero como no mamífero, bem como a regulação ou controle do humor de um mamífero, reduzindo o estresse ou acalmando o mamífero.

[0054] As opsinas são um tipo de receptores de fitocromo ligados à membrana encontrados na retina e na região do hipotálamo de mamíferos. As opsinas medeiam uma variedade de funções em mamíferos, incluindo a produção de hormônios, através da conversão de fótons de luz em um sinal eletroquímico.

[0055] No gado leiteiro, a glândula pineal está envolvida na síntese e na secreção do hormônio melatonina. Essa síntese é iniciada em mamíferos por meio de informações luminosas recebidas nos núcleos supraquiasmáticos por meio do trato retinohipotálmico. Acredita-se que a melanopsina, que é um fotopigmento, desempenhe um papel importante nessa cascata de sinalização de luz. A melanopsina está nas células ganglionares, como bastonetes e cones, e também é encontrada em muitas estruturas do cérebro. Os fotorreceptores de melanopsina têm um pico de absorção de luz em 480 nanômetros. Adicionalmente, estudos demonstraram que quando a melanopsina é pré-estimulada com luz de 620 nm, respostas à luz de 480 nm são aumentadas. Esta eficiência também foi comprovada ser dependente do comprimento de onda, irradiância e duração.

[0056] Acredita-se que a estimulação da melanopsina inibe a produção de melatonina pela glândula pineal. A produção de melatonina está diretamente relacionada à produção de leite em vacas leiteiras, pois é um inibidor da prolactina, o hormônio responsável pela produção de leite. Estudos demonstraram que vacas que estão entre os ciclos de produção de leite e que apresentam níveis mais elevados de melatonina, produzirão mais leite quando retornadas ao ciclo de produção. Os baixos níveis de melatonina também são importantes durante o ciclo de produção de leite, pois permitem níveis máximos de prolactina.

[0057] Em uma modalidade da divulgação atual, ao regular os níveis de melatonina em gado leiteiro por meio de comprimentos de onda alternados de luz, como a pulsação simultânea de comprimento de onda vermelho próximo e vermelho distante, em um padrão de deslocamento dentro de um sinal (como o sinal padrão mostrado na Figura 13, Figura 14 ou Figura 18), a produção de leite em gado pode ser controlada diretamente. Acredita-se que esse mesmo mecanismo exista em todas as espécies de mamíferos.

[0058] A melatonina também é um elemento importante de um sentido de fotoperíodo do mamífero, que está diretamente relacionado hormonalmente ao ciclo de ovulação do animal. Ao regular os níveis de melatonina em mamíferos por meio de comprimentos de onda de luz alternantes (como o padrão de sinal mostrado na Figura 13, Figura 14 e Figura 18), a ovulação de mamíferos pode ser regulada.

[0059] Os fótons são, partículas elementares sem massa, sem carga elétrica. Fótons são emitidos a partir de uma variedade de fontes, como processos moleculares e nucleares, a quantum da luz e todas as outras formas de radiação eletromagnética. A energia dos fótons pode ser absorvida pelos fitocromos em animais vivos e convertê-los em um sinal eletroquímico que manipula um metabólito.

[0060] Este fenômeno pode ser visto no cromóforo de opsina de visão em humanos. A absorção de um fóton de luz resulta na fotoisomerização do cromóforo a partir da conformação 11-cis para um todo-trans. A fotoisomerização induz uma mudança conformacional na proteína opsina, causando a ativação da cascata de fototransdução. O resultado é a conversão da rodopsina em prelumirodopsina com um cromóforo todo-trans. A opsina permanece insensível à luz na forma trans. A mudança é seguida por várias alterações rápidas na estrutura da opsina e também mudanças na relação do cromóforo com a opsina. Isso é regenerado pela substituição do todo-trans retinal por um 11-cis-retinal recém-sintetizado, fornecido a partir das células epiteliais da retina. Este ciclo químico reversível e rápido é responsável pela identificação e recepção da cor em humanos. Processos bioquímicos semelhantes existem em mamíferos. Os fitocromos e feofitinas se comportam de maneira muito semelhante às opsinas, pois podem ser rapidamente regulados para alternar entre as configurações cis e trans pela dosagem com diferentes comprimentos de onda da luz.

[0061] As respostas de mamíferos às variações na duração do dia e noite envolvem mudanças moleculares na absorção de fótons que se assemelham às envolvidas no ciclo da visão em humanos.

[0062] As respostas dos mamíferos a um sinal de fótons com uma ou mais modulações de fótons específicas podem ser monitoradas dependendo do hormônio desejado a ser regulado. Quando o hormônio desejado é a produção de melatonina, o mamífero pode ser monitorado quanto à estimulação da glândula pineal para a expressão ou liberação de melatonina ou a liberação de hormônios luteinizantes, uma glicoproteína heterodimérica para indicar ovulação iminente em mamíferos fêmeas. Hormônios de melatonina ou luteinizantes podem ser monitorados pro meio de amostras de sangue ou urinárias. As amostras podem ser coletadas diariamente ou em vários momentos durante o dia para identificar a reação do animal à modulação de fótons para garantir a ovulação eficiente ou produção de leite.

[0063] A presente divulgação também fornece métodos e sistemas para a quantidade de energia elétrica usada no processo de produção de hormônio de mamífero, onde a quantidade de energia distribuída pode ser definida pelo cálculo da área total sob o gráfico de energia ao longo do tempo. A presente divulgação fornece ainda métodos e sistemas que permitem o monitoramento, o relatório e o controle da quantidade de energia elétrica usada para regular um hormônio desejado em um animal, permitindo que um usuário final ou fornecedor de energia identifique tendências no uso de energia.

[0064] Uma modalidade do sistema da presente divulgação compreende pelo menos um emissor de fótons com pelo menos uma fonte de fótons, tal como um LED ou matriz de LEDs em comunicação com um controlador de modulação de emissão de fótons incluindo, mas não limitado a um sinal de saída digital, transistor de efeito de campo BJT ou FET, ou conversor de energia. Os emissores de fótons são modulados para enviar um impulso repetitivo, onde cada impulso individual compreende pelo menos um espectro de cor, comprimento de onda ou múltiplos espectros de cor ou comprimentos de onda, e é capaz de variar intensidades. Cada pulso de fótons é direcionado para um mamífero por uma duração de tempo LIGADO, como dois milissegundos com uma ou mais intensidades, com uma duração de atraso ou tempo DESLIGADO entre pulsos de fótons, como duzentos milissegundos ou até 24 horas.

[0065] Como usado neste documento, "mamífero" inclui vertebrados de sangue quente possuindo pelo e glândulas mamárias, incluindo, mas não se limitando a mamíferos das ordens dos primatas, incluindo, mas não se limitando a humanos, ungulados, incluindo, mas não se limitando a gado, cavalos, camelos, porcos, veados, alces, alpacas, lhamas e alces, carnívoros, incluindo, mas não se limitando a, ursos, a família da doninha, cães, gatos, lobos, leões, tigres, gambás, roedores, incluindo, mas não se limitando a, ratos, camundongos e castores, quirópteros, incluindo mas não se limitando a morcegos, marsupiais, incluindo, mas não se limitando a cangurus e gambás e cetáceos, incluindo baleias e golfinhos.

[0066] Como usado neste documento, “ciclo de trabalho” é o tempo que um dispositivo leva para passar por um ciclo completo de LIGADO/DESLIGADO ou sinal de fóton. Ciclo de trabalho é a porcentagem de tempo que uma entidade gasta em um estado ativo como uma fração do tempo total considerado. A expressão ciclo de trabalho é frequentemente usada em relação a dispositivos elétricos, como comutação de fontes de alimentação. Em um dispositivo elétrico, um ciclo de trabalho de 60% significa que a energia está ligada em 60% do tempo e em 40% do tempo. Um exemplo de ciclo de trabalho da presente divulgação pode variar de 0,01% a 90%, incluindo todos os números inteiros entre eles.

[0067] Como usada neste documento "frequência" é o número de ocorrências de um evento repetido por tempo de unidade e qualquer frequência pode ser usada no sistema da presente divulgação. Frequência também pode se referir a uma frequência temporal. O período repetido é a duração de um ciclo em um evento de repetição, então o período é a recíproca da frequência.

[0068] Como usada neste documento, a expressão "forma de onda" refere-se ao formato de um gráfico da quantidade variável em relação ao tempo ou distância.

[0069] Como usado neste documento, a expressão "onda de pulso" ou "trem de pulso" é um tipo de forma de onda não sinusoidal que é semelhante a uma onda quadrada, mas não tem o formato simétrica associado a uma onda quadrada perfeita. É um termo comum para a programação de sintetizador, e é uma forma de onda típica disponível em muitos sintetizadores. O formato exato da onda é determinado pelo ciclo de trabalho do oscilador. Em muitos sintetizadores, o ciclo de trabalho pode ser modulado (às vezes chamado de modulação de largura de pulso) para um timbre mais dinâmico. A onda de pulso também é conhecida como onda retangular, a verão periódica da função retangular.

[0070] Em uma modalidade da presente divulgação e como será descrito em mais detalhes abaixo, a emissão de um ou mais pulsos de fótons repetitivos dentro de um sinal de fótons do sistema de crescimento descrito neste documento, onde cada pulso de fótons repetitivo tem uma duração LIGADO com uma ou mais intensidades e uma duração DESLIGADO, uma faixa de comprimento de onda e ciclo de trabalho induzem uma eficiência de ganho maior que 1 onde Ganho = Amplitude fora/Amplitude dentro.

[0071] A Figura 1 fornece um diagrama de blocos mostrando um exemplo de um sistema de gerenciamento de modulação de fótons 100 para uso na regulação de hormônios em mamíferos. Como mostrado na Figura 1, um emissor de fótons 106, 108, 110, 112, 114 e 116 é mostrado ao longo de um período de tempo em comunicação com um controlador de modulação de emissão de fótons 104 com a finalidade de modular a emissão de fótons para um mamífero para estimular opsinas para regular a produção de hormônios, bem como para controlar o estresse e o humor dos animais. A aplicação modulada de fótons a um mamífero fornecendo pulsos de fótons de uma ou mais frequências seguidos por pulsos de uma ou mais outras frequências por uma duração, junto com um atraso entre os pulsos, permite a estimulação / modulação de pico de componentes biológicos de mamíferos (receptores de opsinas) e respostas biológicas, incluindo a produção de hormônio como a pulsação de um ou mais espectros de luz específicos para induzir um sinal eletroquímico específico para a produção de um hormônio específico, ou a pulsação de dois ou mais comprimentos de onda específicos dentro de um sinal, (como o padrão de sinal mostrado nas Figuras 13-19) para produzir um hormônio específico, permitindo um aumento na produção de hormônios específicos de 0,1%, 1,0%, 5%, 7,5, 10%, 12,2%, 20%, 33,3%, 50%, 81,7%, 100%, 143,9%, 150%, 181,4%, 200%, 250%, 444,2%, 500% e 5000% ou mais e todos os números inteiros entre eles, acima do nível de hormônio da linha de base de um mamífero, ou um queda na produção de hormônios específicos de 0,1%, 1,2%, 7,7%, 10%, 15,6, 20%, 47,2%, 50%, 74,5%, 100%, 150%, 200%, 250%, 500% e 5.000% ou menos e todos os números inteiros intermediários, acima do nível de hormônio da linha de base de um mamífero como no mamífero, junto com a regulação ou controle do humor de um mamífero, reduzindo o estresse ou acalmando o mamífero. Além disso a modulação de fótons para um mamífero permitir a otimização da absorção de fótons pelos receptores da opsina sem supersaturação dos receptores do mamífero. Como descrito abaixo, a modulação dos pulsos de fótons aumenta a eficiência de energia e calor dos atuais sistemas de iluminação de produção de leite reduzindo o consumo de energia global pelo sistema da presente divulgação tanto quanto 99% ou mais da fonte de fótons quando comparado com sistemas convencionais de iluminação de produção de carne bovina ou leite, como uma luz de 60 watts, reduzindo por meio disso a quantidade e custo de energia usados para facilitar a produção de hormônio em um mamífero. Em um exemplo da economia de energia potencial do sistema da presente divulgação, o sistema pulsa 49,2 watts de fótons durante dois microssegundos por 200 microssegundos, criando um consumo de energia eficaz de 0,49 watt-horas/h no medidor de pagamento de energia ou 0,82% da energia em uma lâmpada incandescente padrão de 60 watts. Além disso, em virtude de o emissor de fótons não emitir continuamente fótons, a quantidade de calor produzida pelo emissor de fótons será significativamente reduzida, reduzindo significativamente o custo de resfriamento de uma instalação para compensar o aumento de calor da iluminação. O sistema da presente divulgação pode ser customizado com base em requisitos específicos de mamíferos para intensidade de fóton, duração de pulso LIGADO, pulso DESLIGADO (ou ciclo de trabalho), o espectro de luz do pulso incluindo, mas não se limitando a branco, vermelho próximo, amarelo, verde e azul, laranja, vermelho distante, infravermelho e ultravioleta para estimular a produção ideal de hormônios, bem como o controlador do estresse e do humor do animal.

[0072] Como mostrado na Figura 1, um controlador lógico principal (MLC) 102, como um circuito de estado sólido com controle de saída digital ou uma unidade de processamento central (CPU) está em comunicação com um controlador de modulação de emissão de fótons 104 por meio de um sinal de comunicação 134. O MLC 102 fornece o sistema da presente divulgação com entrada/saída dos parâmetros e as instruções apropriadas ou as funções especializadas para a modulação de fótons dentro de um sinal a partir de emissor de fótons 106 e 108.

[0073] Em uma modalidade adicional, o MLC 102 pode ser ligado por fio ou sem fios a uma fonte externa, como um hospedeiro, permitindo o acesso externo ao MLC 102 por um hospedeiro. Isso permite o acesso remoto por um usuário para monitorar a entrada e a saída do MLC 102, fornece instruções ou controle aos sistemas e, ao mesmo tempo, permite a programação remota e o monitoramento do MLC 102.

[0074] Em uma modalidade adicional, um sensor de medição de energia ou de consumo de energia pode ser integrado ou embutido no MLC 102 na forma de um circuito integrado, permitindo a medição e comunicação do consumo de energia do sistema com base na tensão e na corrente de consumo do sistema da presente divulgação. O consumo de energia do sistema pode então ser comunicado tanto sem fio quanto por fio do MLC 102 para um hospedeiro. Os dados, incluindo o consumo de energia, também podem ser enviados para um receptor externo, como um banco de dados que não esteja conectado ao sistema.

[0075] O controlador de modulação de emissão de fótons 104 recebe comandos e instruções do MLC 102 incluindo, mas não se limitando a duração LIGADO e a intensidade, o ciclo de trabalho de duração DESLIGADO, a intensidade, a banda de comprimento de onda e a frequência de cada pulso de fótons repetitivos dentro de um sinal de fótons 118 de um emissor de fótons 106. O controlador de modulação de emissão de fótons 104 pode ser qualquer dispositivo que modula os quanta e fornece o controlador e comando para a duração LIGADO e intensidade, duração DESLIGADO, banda de comprimento de onda e frequência de cada pulso de fótons repetitivo de um emissor de fótons 106 e 108. Uma variedade de dispositivos pode ser usada como o controlador de modulação de emissão de fótons 104 incluindo, mas não limitado a um relé de estado sólido (SSR), como o relé de estado sólido Magnacraft 70S2 3V da Magnacraft Inc., helicópteros ópticos, conversores de potência e outros dispositivos que induzem a modulação de um pulso de fótons. Uma variedade de emissores de fótons 106 e 108 pode ser usada incluindo, mas não se limitando a uma descarga incandescente (Tungstênio-halogênio e Xenônio), Fluorescente (CFL's), de alta intensidade (Heltos Metálico, Sódio de Alta Pressão, Sódio de Baixa Pressão, Vapor de Mercúrio), luz solar, diodos emissores de luz (LEDs). Deve ser entendido que esta descrição é aplicável a quaisquer tais sistemas com outros tipos de controladores de modulação de emissão de fótons, incluindo outros métodos para ciclar uma fonte de luz ou fóton LIGADO e DESLIGADO, ciclar uma ou mais cores ou espectros de luz em diferentes tempos, durações e intensidades, como vermelho próximo, verde, azul e vermelho distante, permitindo múltiplos pulsos de um espectro antes de pulsar outro espectro, como será entendido por um versado na técnica, uma vez que eles compreendam os princípios das modalidades.

[0076] Como mostrado na Figura 1, com base nas instruções do MLC 102, o controlador de modulação de emissão de fótons 104 envia um sinal de controle de emissão de fótons 136 para um emissor de fótons 106. Quando o sinal de controle de emissão de fótons 136 é enviado para o emissor de fótons 106 fica LIGADO, o emissor de fótons 106 emite pelo menos um sinal de fótons 118 onde cada sinal de fótons compreende um ou mais pulsos de fótons repetitivos, onde cada pulso de fótons repetitivo tem duração LIGADO separada com uma ou mais intensidades, uma banda de comprimento de onda e frequência, que é transmitido para uma mamífero 122. Então, com base nas instruções do MLC 102, quando o sinal de controle do emissor de fótons 136 enviado para o emissor de fótons 108 fica DESLIGADO, o emissor de fótons 108 não emite um pulso de fótons e, portanto, nenhum fóton é transmitido para um mamífero 122. Como mostrado na Figura 1, começando do lado esquerdo da Figura 1, a emissão de fótons 118, como um pulso de fótons de vermelho próximo, e a produção 124 de hormônio de mamífero 122 é mostrada ao longo de um período de tempo 120. O exemplo da Figura 1 fornece um sinal de fótons 118, ultravioleta, violeta, vermelho próximo, verde, amarelo, laranja, azul e vermelho distante, permitindo múltiplos pulsos de um espectro antes de pulsar outro espectro ou em combinação, como será entendido por um versado na técnica, uma vez que eles entendam os princípios das modalidades. Também deve ser entendido que este ciclo LIGADO e DESLIGADO pode ser na forma de um pulso digital, trem de pulso ou forma de onda variável.

[0077] Como será entendido por um versado na técnica, em uma modalidade adicional, o sistema para uso na regulação de hormônios, como descrito na Figura 1 pode ser completamente alojado em uma única unidade compreendendo múltiplos emissores de fótons criando uma matriz (mostrada na Figura 3, Figura 7, Figuras 8a, 8b, 8c, 8d e Figura 9), permitindo que cada unidade individual seja autossuficiente, sem a necessidade de um controle externo ou unidade lógica. Um exemplo de unidade autossuficiente com múltiplos emissores de fótons pode estar na forma de uma unidade que pode ser conectada a um soquete de luz, ou luminárias que podem ser suspensas acima de um ou mais mamíferos e conectadas a uma fonte de energia.

[0078] Os sistemas, como mostrado na Figura 1 também podem assumir a forma de um sistema mestre/escravo, como será discutido na Figura 4 onde, por exemplo, um emissor de fótons mestre contendo toda lógica e controles para a emissão de fótons de emissor de fótons mestre, bem como quaisquer emissores de fótons adicionais em comunicação com o emissor de fótons mestre.

[0079] Os sistemas como mostrado na Figura 1 e na Figura 2 também podem assumir a forma de uma série sincronizada de luzes ou cascatas de luzes, onde, por exemplo, dois ou mais emissores de fótons estão em comunicação um com o outro para sincronizar a emissão de sinais com dois ou mais componentes. Para esclarecer, cada emissor de fótons emitirá individualmente um sinal compreendendo pelo menos dois componentes, entretanto, o sistema, por exemplo, através de comandos de um controlador lógico mestre, permitirá que a emissão de sinais da série de emissores seja sincronizada.

[0080] Uma variedade de fontes de alimentação pode ser usada na presente divulgação. Estas fontes de energia podem incluir, mas não se limitam a baterias, conversores para energia de linha, energia solar e/ou eólica. A intensidade do pulso do fóton pode ser estática com ciclos distintos LIGADO/DESLIGADO ou a intensidade pode ser de 5% ou mais do quanta do pulso do fóton. A intensidade do pulso de fótons do emissor de fótons pode ser controlada pela variação de tensão e/ou corrente das fontes de alimentação e fornecida à fonte de luz. Será também apreciado por um versado na técnica como o circuito de suporte que será necessário para o sistema da presente divulgação, incluindo a unidade de controle de emissor de fótons e os emissores de fótons. Além disso, será apreciado que a configuração, instalação e operação dos componentes requeridos e circuitos de suporte são bem conhecidos na técnica. O código do programa, se for utilizado um código de programa, para realizar as operações divulgadas neste documento dependerá do processador particular e da linguagem de programação utilizada no sistema da presente divulgação. Consequentemente, será apreciado que a geração de um código de programa a partir da divulgação apresentada neste documento estaria dentro da habilidade de um versado na técnica.

[0081] A Figura 2 fornece diagramas de blocos que mostram um exemplo de um sistema de gerenciamento de modulação de fótons 200 para a regulação de hormônios em um mamífero. Como mostrado na Figura 2 e repetido a partir da Figura 1, um emissor de fótons 106 e 108 é mostrado durante um período de tempo em comunicação com um controlador de modulação de emissão de fótons 104 com o propósito de modular pulsos individuais de fótons compreendendo espectros de cor individuais para um mamífero (não mostrado) incluindo, mas não limitado a branco, verde, vermelho próximo, azul, amarelo alaranjado, vermelho distante, infravermelho e espectros de cor ultravioleta, comprimento de onda entre 0,1 nm e 1 cm. Como será entendido por um versado na técnica, a presente divulgação pode incluir espectros de cor de comprimentos de onda individuais específicos entre 0,1 nm e 1,0 cm, ou pode incluir uma gama ou banda de comprimentos de onda 0,1 a 200 nm de largura, neste documento "banda de comprimento de onda.

[0082] A modulação de espectros de cores individuais de fótons para um mamífero, fornecendo pulsos de espectro de cores específicos por uma duração junto com um atraso entre os pulsos (exemplos são mostrados nas Figuras 13-19), permite a estimulação de pico de componentes biológicos e respostas de um mamífero, como opsinas da retina de um mamífero e opsinas do hipotálamo para a ovulação, glândula pineal para regular a produção de hormônios. Esta estimulação de pico permite a regulação dos hormônios, aumentando a produção de hormônios específicos de 0,1%, 1,0%, 5%, 7,5, 10%, 12,2%, 20%, 33,3%, 50%, 81,7%, 100%, 143,9%, 150%, 181,4%, 200%, 250%, 444,2%, 500% e 1.000% e todos os números inteiros intermediários, acima do nível de hormônio da linha de base de um mamífero, ou diminuindo a produção de hormônios específicos de 0,1%, 1,2%, 7,7%, 10%, 15,6, 20%, 47,2%, 50%, 74,5%, 100%, 150%, 200%, 250%, 500% e 1.000% e todos os números inteiros intermediários, acima do nível de hormônio da linha de base de um mamífero como no mamífero, junto com a regulação ou controle do humor de um mamífero, reduzindo o estresse ou acalmando o mamífero.

[0083] Exemplos da capacidade de controlar aspectos específicos de componentes biológicos ou respostas de um mamífero através da pulsação de espectros de cor individuais, comprimentos de onda de cor específicos ou uma faixa de comprimentos de onda de cor podem incluir, mas não estão limitados a: produção de leite em mamíferos através da modulação de pulsos quando a melanopsina é pré-estimulada com respostas de luz de 620 nm à luz de 480 nm; uso de espectro azul entre 390 a 470 nm para tratar icterícia em mamíferos pré-natais, como bebês prematuros humanos; ovulação através da modulação de pulsos de um comprimento de onda vermelho distante específico (como 730 nm, um exemplo de faixa de comprimento de onda pode incluir 710 a 850 nm) por um período de tempo; apetite, crescimento, desenvolvimento sexual, bem como ajuda a controlar o humor dos mamíferos por pulsos de luz azul, bem como a regulação dos ritmos circadianos (uma faixa de exemplo pode incluir com uma faixa de 450 nm a 495 nm); luz ultravioleta ou violeta (por exemplo, 10 nm a 450 nm) pode ser usada para influenciar o comportamento social e o humor, bem como para facilitar a atualização de nutrientes, como o cálcio; e luz laranja adicional (590 nm a 620 nm) e/ou luz amarela (570 nm a 590 nm) também podem ser usadas para influenciar as respostas ao mamífero.

[0084] A modulação de espectros de cores individuais, o comprimento de onda específico e uma faixa de comprimentos de onda de fótons para um mamífero fornecendo pulsos de espectro de cor específicos durante um atraso entre pulsos, também permite o controle da produção e hormônio para humor, crescimento, ovulação, maturidade sexual e apetite nos mamíferos. Um exemplo pode incluir uma luz ou através da combinação de muitas luzes, acendendo e apagando as luzes para controlar ovulação, produção de leite e crescimento em um mamífero.

[0085] Como mostrado na Figura 2 e repetido a partir da Figura 1, um controlador lógico principal (MLC) 102 está em comunicação com um controlador de modulação de emissão de fótons 104 por meio de um sinal de comunicação 134. O MLC 102 fornece o sistema da presente divulgação com entrada/saída dos parâmetros e as instruções apropriadas ou as funções especializadas para a modulação de um espectro de cor individual específico de fótons de um emissor de fótons 106 e 108.

[0086] O controlador de modulação de emissão de fótons 104 recebe comandos e instruções do MLC 102 incluindo, mas não limitado à duração LIGADO e intensidade, a duração DESLIGADO, banda de comprimento de onda e frequência de cada pulso de fótons repetitivo 202 e 204 dentro de um sinal de fótons 118 ou uma pluralidade de pulsos de um espectro de cor específico de um emissor de fótons 106 e 108 dentro de um sinal de fóton. O controlador de modulação de emissão de fótons 104 fornece o controlador e comando para a duração LIGADO e intensidade, a duração DESLIGADO, banda de comprimento de onda e frequência de cada pulso de fótons repetitivo 202 e 204 dentro de um sinal de fótons 118 ou pluralidade de pulsos de um emissor de fótons 106 e 108.

[0087] Como mostrado na Figura 2, com base nas instruções do MLC 102, o controlador de modulação de emissão de fótons 104 envia um sinal de controle de emissão de fótons 136 para um emissor de fótons 106 e 108. Quando o sinal de controlador de emissão de fótons 136 enviado para o emissor de fótons 106 LIGADOS, o emissor de fótons 106 emite um ou mais pulsos de fótons repetitivos de um espectro de cor específico 202 ou 204, compreendendo o sinal de fótons 118, que é transmitido para um mamífero 122. Então, com base nas instruções do MLC 102, quando o sinal de controle do emissor de fótons 136 enviado para o emissor de fótons 108 fica DESLIGADO, o emissor de fótons 108 não emite um pulso de fótons e, portanto, nenhum fóton é transmitido para um mamífero 122. Como mostrado na Figura 2, começando do lado esquerdo da Figura 2, a emissão de um sinal de fótons 118 compreendendo pulsos de fótons repetitivos de um espectro de cor específico 202 (verde) e 204 (vermelho distante) e produção de hormônio de mamífero 122 é mostrada ao longo de um período de tempo 120. O exemplo da Figura 2 fornece um sinal de fótons 118 com pulso de fótons ou pluralidade de pulsos de um espectro de cor verde 202 emitido a partir de um emissor de fótons 106 por dois (2) milissegundos, seguido por um pulso de fótons ou pluralidade de pulsos de um espectro de cor vermelho distante 204 por uma duração de dois (2) milissegundos com uma duração de atraso de duzentos (200) milissegundos de cada pulso antes do sinal de fótons se repetir com um pulso de fótons ou pluralidade de pulsos 202 emitidos a partir do mesmo emissor de fótons 106 para dois milissegundos seguido por um segundo pulso de fótons ou pluralidade de pulsos de um espectro de cor vermelho distante 204 por uma duração de dois milissegundos do mesmo emissor de fótons 114 (observe que a Figura 2 é um exemplo descritivo de pulsos de fótons emitidos ao longo do tempo). A Figura 2 não é desenhada em escala e a quantidade de produção de hormônio pelo mamífero entre os pulsos na Figura 2 não é necessariamente em escala). Observe que os dois pulsos (verde e vermelho distante) dentro do sinal 118 são pulsados simultaneamente, mas com suas durações LIGADO e DESLIGADO compensadas neste exemplo. Embora dois pulsos de fótons sejam mostrados na Figura 2, como um versado na técnica entenderá quando entender a invenção, qualquer número de pulsos, de 1 a 15 ou até mais, pode estar dentro de um sinal de fótons.

[0088] O sistema da presente divulgação, como descrito nas Figuras 1 e 2, permite a regulação e controle da produção de vários hormônios em um mamífero através do ciclo de uma ou mais cores ou espectros de luz em diferentes momentos, durações e intensidades, como vermelho próximo, verde, azul e vermelho distante, permitindo pulsos únicos ou múltiplos pulsos de um espectro com um atraso antes de pulsar outro espectro (exemplos mostrados nas Figuras 13-19). A pulsação de espectros de cores individuais em uníssono ou individualmente deslocados por uma duração com um atraso entre os pulsos em um sinal permite maior eficiência na estimulação de opsinas para a regulação e produção de hormônios.

[0089] Uma variedade de fontes ou dispositivos pode ser utilizada para produzir fótons dos emissores de fótons, muitos dos quais são conhecidos na técnica. No entanto, um exemplo de dispositivo ou fontes adequados para a emissão ou produção de fótons de um emissor de fótons inclui um LED, que pode ser empacotado dentro de uma matriz de LED projetada para criar um espectro desejado de fótons. Embora LEDs sejam mostrados neste exemplo, será entendido por um versado na técnica que uma variedade de fontes pode ser usada para a emissão de fótons incluindo, mas não limitado a luz de haleto de metal, luz fluorescente, luz de sódio de alta pressão, luz incandescente e LEDs. Observe que se uma luz de haleto de metal, luz fluorescente, luz de sódio de alta pressão, luz incandescente for usada com os métodos, sistemas e aparelhos descritos neste documento, o uso apropriado dessas formas de emissores de fótons seria para modular e filtrar a luz para controlar o comprimento de onda para o qual a duração é passada.

[0090] Modalidades da presente divulgação podem ser aplicadas a LEDs com várias durações de emissões de fótons, incluindo durações de emissões de fótons de espectros e intensidade de cor específicos. As emissões de fótons pulsados de espectros de cores específicos dentro de um sinal de fótons podem ser mais longas ou mais curtas dependendo do mamífero em questão, da idade do mamífero e como a emissão será usada para facilitar a regulação de hormônios e controle de estresse ou humor.

[0091] O uso de uma matriz de LEDs pode ser controlado para fornecer o pulso de fótons ideal de um ou mais espectros de cores para ovulação de mamífero específico, produção de leite e crescimento, como na carne bovina. O usuário pode simplesmente selecionar a intensidade do pulso de fótons, o espectro de cores, a frequência e o ciclo de trabalho para um tipo específico de mamífero para incentivar respostas biológicas eficientes em mamíferos. Pacotes de LED podem ser customizados para atender às necessidades específicas de cada mamífero. Usando matrizes de LED empacotadas com a emissão de fótons pulsada customizada, como discutido acima, podem ser usadas modalidades descritas neste documento para controlar a luz para alterar a espessura da casca, o peso do mamífero e a maturidade sexual dentro do mamífero alvo.

[0092] A Figura 3 é um diagrama de um exemplo de uma pluralidade de emissores de fótons com matrizes de LED 300 como a fonte de fótons do emissor de fótons. Como mostrado na Figura 3, um controlador 104 de modulação de emissão de fótons está em comunicação por meio de uma pluralidade de sinais 136 de controle de emissor de fótons com uma pluralidade de emissores de fótons. Como adicionalmente mostrado na Figura 3, cada emissor de fótons compreende uma matriz de LEDs 302, 304, 306 e 308. Cada matriz de LEDs 302, 304, 306 e 308 e os circuitos para permitir que a matriz de LEDs se comunique com o controlador de modulação de emissão de fótons 104 estão contidos em um alojamento de matriz de LED 310, 312, 314 e 316.

[0093] Como mostrado na Figura 3, o formato da matriz de LED é um círculo, no entanto, como será entendido por um versado na técnica, o formato da matriz pode assumir uma variedade de formatos com base na resposta biológica necessária do mamífero. O formato da matriz pode incluir, mas não está limitado a iluminação circular, quadrada, linear, retangular, triangular, octogonal, pentagonal, e uma variedade de outros formatos.

[0094] O alojamento de matriz de LED 310, 312, 314 e 316 para cada emissor de fótons pode ser feito de uma variedade de materiais adequados incluindo, mas não se limitando a materiais plásticos, termoplásticos e outros tipos de materiais poliméricos. Materiais compósitos ou outros materiais de engenharia também podem ser usados. Em algumas modalidades, o alojamento pode ser feito por um processo de fabricação de plástico, alumínio, liga de alumínio, zinco, liga de zinco, zinco, fundição ou moldagem por injeção. Em algumas modalidades, o alojamento pode ser transparente ou semitransparente e em qualquer cor.

[0095] A Figura 4 é um diagrama de um exemplo de uma pluralidade de emissores de fótons com um emissor de fótons mestre em comunicação e controle de um ou mais emissores de fótons escravo, 400. Como mostrado na Figura 4, um emissor de fótons mestres 402 está em comunicação por meio de um sinal de controle de fótons 136 com uma série de emissores de fótons escravos 404, 406 e 408. O emissor de fótons mestre 402 contém um controlador, como o MLC (102 da Figura 1 e 2), bem como controlador de modulação de emissão de fótons (mostrado como 104 Figuras 1 e 2) que controla a duração LIGADO e intensidade, a duração DESLIGADO e a frequência de cada pulso específico de fótons de espectro de cores dentro de cada sinal de fótons a partir de uma matriz de LEDs alojada dentro do emissor de fótons mestre 402 enquanto também permite que o emissor de fótons mestre controlador a duração LIGADO e intensidade, a duração DESLIGADO e a frequência de cada pulso de fótons de espectro de cor específico dentro de cada sinal de fótons de cada emissor de fótons escravo 404, 406 e 408.

[0096] Ao contrário, cada emissor de fótons escravo 404, 406 e 408 contém os circuitos para receber os sinais de comando 136 do emissor de fótons mestre 402 e os circuitos necessários para emitir um pulso de fótons de um espectro específico de uma matriz de LEDs (como vermelho próximo, vermelho distante, azul, verde ou laranja) alojados dentro de cada emissor de fótons escravo 404, 406 e 408. Para clareza, cada emissor de fótons escravo não contém um controlador como o MLC nem o emissor de fótons escravo 404, 406 e 408 contém um controlador de modulação de emissão de fótons. Todos os comandos e controles para o emissor de fótons escravo 404, 406 e 408 são recebidos do emissor de fótons mestre 402. Este sistema mestre/escravo permite o compartilhamento de uma única fonte de alimentação e microcontrolador. O mestre tem a fonte de energia e essa energia também é transferida para os escravos. Adicionalmente, o sistema mestre / escravo pode ser utilizado para pulsar fótons em padrões para ajudar a regular a produção de hormônios em outros mamíferos.

[0097] Um sistema de barramento (com fio ou sem fio) pode ser incluído no MLC do emissor de fótons mestre 402 ou em cada emissor de fótons escravo 404, 406 e 408 para permitir o controle específico pelo emissor de fótons mestre 402 de cada emissor de fótons escravo 404, 406 e 408. A título de exemplo, o emissor de fótons mestre 402 pode enviar um sinal 136 para um emissor 404 de fótons escravo específico comandando o emissor de fótons escravo 404 para emitir sinal de fótons com um pulso de vermelho distante durante uma duração específica, enquanto o emissor de fótons mestre 402 simultaneamente envia um sinal de comando 136 para um segundo emissor de fótons escravo 406 para emitir um sinal de fótons com pulso de verde durante um período de tempo específico. Embora este exemplo descritivo mostre uma matriz, pluralidade ou cadeia de três emissores de fótons escravos 404, 406 e 408 em com um emissor de fótons mestre 402, deve ser entendido que esta descrição é aplicável a qualquer sistema com qualquer número de emissores de fótons escravos em comunicação e sob o controle de um emissor de fótons mestre, como será entendido por um versado na técnica, uma vez que eles entendem os princípios das modalidades.

[0098] Em uma modalidade adicional, o emissor de fótons mestre 402 pode ser com fio ou sem fio para permitir acesso externo ao emissor de fótons mestre 402 por um hospedeiro, permitindo acesso remoto para monitorar a entrada e a saída do emissor de fótons mestre 402 enquanto também permite programação remota do emissor de fótons mestre.

[0099] A Figura 5 é um diagrama de um exemplo de um controlador lógico mestre em comunicação e controle de um ou mais emissores de fótons, 500. Como mostrado na Figura 5, um controlador lógico principal 102 está em comunicação por meio de um sinal de controle de emissão de fótons 136 com uma série de emissores de fótons 106, 502, 504 e 506 localizados acima de quatro mamíferos diferentes 512, 514, 516 ou 518. Neste exemplo, o controlador lógico principal ou o MLC 102 (como discutido anteriormente nas Figuras 1, 2 e 3) também contém um controlador de modulação de emissão de fótons 104 (mostrado discutido nas Figuras 1, 2 e 3) que permite ao MLC 102 controlar a duração LIGADO e a intensidade, a duração DESLIGADO, e a frequência de cada pulso de fótons de espectro de cor específico dentro de um sinal de fótons de uma matriz de LEDs alojada dentro de cada emissor de fótons 106, 502, 504 e 506.

[0100] Através do controlador de modulação de emissão de fótons 104, o MLC 102 comunica comandos e instruções para cada emissor de fótons 106, 502, 504 e 506 incluindo, mas não limitado a duração LIGADO, intensidade, duração DESLIGADO e frequência de cada pulso de fótons de espectro de cor específico dentro de cada sinal de fótons 508 e 510 de cada emissor de fótons 106, 502, 504 e 506. O MLC 102 também mantém o controle da fonte de alimentação no sistema e controla a transferência de energia para cada emissor de fótons individuais 106, 502, 504 e 506.

[0101] Como mostrado na Figura 5, com base nas instruções do MLC 102, o controlador de modulação de emissão de fótons 104 envia um sinal de controle de emissão de fótons 136 para um emissor de fótons 106, 502, 504 e 506. Com base nas instruções específicas enviadas para cada emissor de fótons 106, 502, 504 e 506, os emissores de fótons individuais 106 ou 506 podem ser um sinal de fótons compreendendo pulsos de fótons repetitivos de um ou mais espectros de cor específicos 508 e 510 para um mamífero 512, 514, 516 ou 518 (como um sinal de fótons com um pulso vermelho distante e um pulso vermelho próximo 508 com várias durações LIGADO e DESLIGADO ou um sinal de fótons com pulso de vermelho distante, um pulso de vermelho próximo e um pulso de azul em várias durações LIGADO e DESLIGADO 510). Como mostrado adicionalmente na Figura 5, com base nas instruções do MLC 102, outros emissores de fótons individuais 502 ou 504 podem não emitir um sinal de fótons em direção a um mamífero 122 por um período de tempo.

[0102] A capacidade de o MLC 102 controlar os fótons produzidos ou emitidos de cada emissor de fótons individual 106, 502, 504 e 506 permite que o sistema da presente divulgação modifique a emissão de fótons para um mamífero com base nas necessidades ou requisitos específicos de um mamífero. Como discutido em associação com a Figura 2, a título de exemplo, o MLC pode ser programado para emitir um sinal para um emissor específico para modulação de pulsos de luz de vermelho distante por um período de tempo seguido por pulsos de luz azul em combinação com luz de vermelha próximo para o controle de respostas biológicas em mamíferos, e humor/apetite.

[0103] No exemplo mostrado na Figura 5, todos os comandos e controles para cada emissor de fótons 106, 502, 504 e 506 são recebidos externamente do MLC 102. No entanto, como será entendido por um versado na técnica, a lógica e o hardware associados ao MLC 102 e ao controlador de modulação de emissão de fótons 104 podem também ser alojados dentro de cada emissor de fótons individual, permitindo que cada emissor de fótons seja autossuficiente, sem a necessidade de um controle externo ou unidade lógica.

[0104] Em uma modalidade adicional, o MLC 102 pode ser ligado com fio ou sem fio, permitindo o acesso externo ao MLC 102 por um usuário. Isto permite acesso remoto por um usuário para monitorar a entrada e saída do MLC 102 enquanto também permite a programação remota do MLC 102.

[0105] A Figura 6 fornece um exemplo de uma outra modalidade, mostrando o sistema de modulação de fótons da presente divulgação, em que um ou mais sensores são usados para monitorar as condições ambientais de um mamífero, bem como as respostas do mamífero 600 ao sistema de fótons fornecido neste documento. Como mostrado na Figura 6, um ou mais sensores 602, 604, 606 e 608 estão associados a cada mamífero 618, 620, 622 e 624 a fim de monitorar várias condições associadas com os mamíferos 618, 620, 622 e 624. As condições associadas com o mamífero que podem ser monitoradas incluem, mas não estão limitadas a umidade, temperatura do ar, volume, movimento, O2, CO2, CO, pH e peso. Como será entendido por um versado na técnica, os sensores podem incluir, mas não se limitam a sensor de temperatura, um sensor de infravermelho, sensor de movimento, microfones, sensores de gás, câmeras e balanças.

[0106] Os sensores 602, 604, 606 e 608 monitoram uma ou mais condições associadas com o mamífero 618, 620, 622 e 624 e então transmitem os dados 610, 612, 614 ou 616 para o MLC 102. A transferência dos dados de um ou mais sensores 602, 604, 606 e 608 para o MLC 102 pode ser realizada em inúmeras maneiras, tanto sem fio quanto com fio. Como será entendido por um versado na técnica, uma variedade de sistemas de comunicação pode ser utilizada para a distribuição de informação derivada de sensor do mamífero 618, 620, 622 e 624 para o MLC 102.

[0107] Os dados de um ou mais sensores 602, 604, 606 e 608 são analisados pelo MLC 102. Com base nas informações dos sensores, o MLC 102, através do controlador de modulação de emissão de fótons 104, o MLC 102 é capaz de ajustar a duração LIGADO, a intensidade, a duração DESLIGADO, o ciclo de serviço e a frequência de cada pulso de fótons de espectro de cor específico 608 e 610 de cada sinal de fótons 118 de cada emissor de fótons individual 106, 602, 604 e 606, ou para ajustar a duração LIGADO, a intensidade, a duração DESLIGADO, o ciclo de trabalho e a frequência de um grupo de emissores de fótons com base nas necessidades dos mamíferos individuais 618, 620, 622 e 624 associado com um sensor específico 602, 604, 606 e 608 ou nas necessidades dos mamíferos como um todo. Um exemplo pode incluir o ajuste de um sinal para compreender tanto o azul quanto o vermelho distante 608 em vários períodos de tempo ou período de tempo de ajuste de um pulso de vermelho distante, verde e azul 610.

[0108] Em modalidades adicionais, o sistema da presente divulgação pode também incluir um sistema de irrigação, sistemas de alimentação, sistemas ambientais e de saúde (não mostrado na Figura 6) em comunicação e sob o controle do MLC 102 ou um controlador lógico separado. Com base nas informações dos sensores 602, 604, 606 e 608 associados com cada mamífero, o MLC 102 é capaz de se comunicar com um sistema de irrigação, sistema de alimentação, aquecimento e refrigeração, sistemas de medicação baseados nas necessidades dos mamíferos. Os dados, incluindo a energia, podem ser enviados para um receptor externo, como um banco de dados que não esteja conectado ao sistema.

[0109] A Figura 7 fornece um exemplo de uma modalidade de uma matriz de LEDs em comunicação com uma série de relés de estado sólido ou SSRs 700. Como mostrado na Figura 7 e repetido a partir da Figura 1, um MLC 102 está em comunicação por meio de um sinal de comunicação 134 com um controlador de modulação de emissão de fótons 104. O controlador de modulação de emissão de fótons 104 deste exemplo contém três SSRs. O MLC 102 envia um sinal para controlar os SSRs. O primeiro SSR controla uma matriz de LEDs vermelho próximo 702, o segundo SSR controla uma matriz de LEDs vermelho distante 704 e o terceiro SSR controla uma matriz de LEDs azul 706. Cada SSR 702, 704 e 706 está em comunicação com uma matriz de LEDs, 714, 716 e 718 por meio de um sinal de emissão de fótons 136. Como mostrado na Figura 7, o SSR 702 de vermelho próximo envia um sinal de emissão de fótons 136 para iniciar um pulso de fótons de LEDS vermelho próximo 714 compreendendo uma tensão de vermelho próximo 708 para uma matriz de LEDs vermelho próximo 714. A tensão de vermelho próximo 708 é então transmitida da matriz de LEDs vermelho próximo 714 para uma série de resistores 720, 742, 738, como um resistor de 68 ohm, com cada resistor 720, 742 e 738 conectado a um terra 744.

[0110] Como mostrado adicionalmente na Figura 7, o SSR 704 de vermelho distante envia um sinal de emissão de fótons 136 para iniciar um pulso de fótons de LEDs vermelho distante compreendendo uma tensão de vermelho distante 710 para uma matriz de LEDs vermelho 718. A tensão de vermelho 710 é então transmitida a partir da matriz de LED vermelho 718 e uma série de resistores 724, 728, 732 e 734, como um resistor de 390 ohm com cada resistor 724, 728, 732 e 734 conectado a um terra 744. A Figura 7 também mostra o SSR 706 azul enviando um sinal de emissão de fótons 136 para iniciar um pulso de fótons de LEDs azuis compreendendo uma voltagem azul 712 para uma matriz de LEDs azuis 716. A tensão azul 712 é então transmitida da matriz de LEDs azuis 716 e transmitida para uma série de resistores 722, 726, 730, 736 e 740, como um resistor de 150 ohm, com cada resistor 722, 726, 730, 736 e 740 conectado a um terra 744.

[0111] As Figuras 8a a 8d mostram vários aspectos de um exemplo de montagem de luz para a emissão de fótons dentro de um sinal para utilização em sistemas e métodos descritos neste documento. A Figura 8a é uma foto mostrando um conversor de energia, uma interface periférica serial (SPI) e um microcontrolador de uma matriz de múltiplas cores dentro de um conjunto de luz. A Figura 8b é uma foto mostrando a parte de trás da matriz de múltiplas cores dentro do conjunto de luz da Figura 8a. A Figura 8c é uma foto mostrando o circuito de comutação de alta velocidade para o piscar da matriz de múltiplas cores dentro do conjunto de luz da Figura 8a. A Figura 8d é uma foto mostrando a parte de trás do conjunto de luz da Figura 8c com um LED de matriz de múltiplas cores substituível.

[0112] O conjunto de luz das Figuras 8a a 8d pode ser usado em várias modalidades descritas neste documento, incluindo um sistema mestre/escravo, em que um emissor de fótons principal contém toda a lógica e controles para a emissão de fótons e sinais do emissor de fótons mestre, bem como quaisquer emissores de fótons adicionais em comunicação com o emissor de fótons mestre. O conjunto de luz das Figuras 8a - 8d também pode ser usado em um sistema de controle. Como discutido acima, o controlador está em comunicação com dois ou mais emissores de fótons.

[0113] A Figura 9 fornece um layout de exemplo de LEDs dentro de uma matriz de LED 900. Como mostrado na Figura 9, doze LEDs formam uma matriz de emissores de fótons 302 em um alojamento de emissor de fótons 310. O layout de amostra inclui 400 nm (violeta) 902, 436 nm (azul profundo) 904, 450 nm (azul real) 906, 460 nm (azul dental) 908, 490 nm (ciano) 910, 525 nm (verde) 912, 590 nm (âmbar) 914, 625 nm (vermelho) 916, 660 nm (vermelho profundo) 918 e 740 nm (vermelho distante) 920.

[0114] A Figura 10 é um diagrama de fluxo mostrando o método de modulação de espectros de cor individuais pulsados para produção de hormônio de mamífero 1000. Como mostrado na Figura 10, na etapa 1002, o controlador lógico mestre recebe instruções relativas a cada espectro de cor individual a ser pulsado dentro de um sinal, o período de tempo de cada pulso de cada espectro de cor dentro de um sinal, a combinação de cores a serem pulsadas e o período de tempo de atraso entre cada pulso de espectro de cor. As instruções e informações enviadas para o controlador lógico mestre podem estar relacionadas ao período de tempo do pulso de fótons de cada cor a ser pulsada, atraso de pulso de fóton, intensidade, frequência, ciclo de trabalho, tipo de mamífero, estado de maturidade do mamífero e o tipo de hormônio a ser produzido. Na etapa 1004, o controlador lógico mestre envia instruções para o controlador de modulação de emissão de fótons relativamente a cada espectro de cor a ser pulsada, o período de tempo de cada pulso de cada espectro de cor, combinação do pulso de cores e duração do atraso entre diferentes espectros de cores. Na etapa 1006, o controlador de modulação de emissão de fótons envia pelo menos um sinal para um ou mais emissores de fótons capazes de emitir pulsos de um ou mais espectros de cor individuais em direção a um mamífero, como LEDs verdes, LEDs vermelhos claros, LEDs azuis e LEDs laranjas. Na etapa 1008, um ou mais emissores de fótons emitem um ou mais pulsos de fótons de espectros de cores individuais direcionados a um mamífero, permitindo que opsinas específicas no mamífero sejam estimuladas para regular a produção de hormônios. Os métodos para a regulação da produção de hormônios permitem que os hormônios em um mamífero entrem em níveis de produção de 0,1%, 1,0%, 5%, 7,5, 10%, 12,2%, 20%, 33,3%, 50%, 81,7%, 100%, 143,9%, 150%, 181,4%, 200%, 250%, 444,2%, 500% e 1.000% e todos os números inteiros entre eles, acima do nível de hormônio da linha de base de um mamífero. Por outro lado, os métodos aqui descritos também permitem que a produção de níveis de hormônio diminua de 0,1%, 1,2%, 7,7%, 10%, 15,6, 20%, 47,2%, 50%, 74,5%, 100%, 150%, 200%, 250%, 500% e 1.000% e todos os números inteiros intermediários, acima do nível de hormônio da linha de base de um mamífero como no mamífero, como será entendido por um versado na técnica, uma vez que ele entende a divulgação fornecida neste documento.

[0115] A Figura 11 fornece uma modalidade adicional da presente divulgação, mostrando um diagrama de fluxo da regulação de hormônios em um mamífero com base em informações de sensores de mamífero 1100. Como mostrado na etapa 1102, um sensor de mamífero monitora uma ou mais condições associadas com o ambiente de um mamífero. As condições a serem monitoradas podem incluir, mas não são limitadas a temperatura do ar, umidade, temperatura do corpo do mamífero, peso, som, movimento do mamífero, infravermelho, O2, CO2 e CO. Na etapa 1104, o sensor de mamífero envia dados relativos às condições ambientais ou físicas associadas a um mamífero ao MLC. O MLC analisa então os dados enviados pelo sensor do mamífero ou a análise pode ser feita por um programa de software de terceiros que seja remoto ao sistema. Na etapa 1106, com base nas informações do sensor de mamífero, o MLC envia instruções para alterar uma modalidade do ambiente, como temperatura ou umidade do ar. Na etapa 1108, o sistema ambiental inicia um evento para um ou mais animais com base na análise dos dados do sensor. Como será entendido por um versado na técnica, o ajuste do evento pode ser em um nível micro, como um ajuste ao ambiente de um mamífero específico ou o ajuste pode ser em um nível macro como uma câmera ou operação de crescimento total. Na etapa 1110, com base na informação do sensor de mamífero, o MLC envia instruções para um sistema de alimentação, sistema de nutrientes ou fonte de nutrientes como um sistema de gotejamento, sistema de película de nutriente ou de injeção de nutriente, em relação ao tempo e/ou concentração do nutriente a ser distribuído a um mamífero durante um evento de nutriente. Na etapa 1112, o sistema de nutriente inicia um evento de nutriente onde os nutrientes são dirigidos a um mamífero com base na análise dos dados do sensor de mamífero. Como será entendido por um versado na técnica, o ajuste do evento de nutriente pode ser em um nível micro, como um ajuste aos nutrientes de um mamífero específico ou o ajuste pode ser em um nível macro como uma câmera ou operação de crescimento total. Na etapa 1114, com base na análise dos dados do sensor d mamífero, o MLC envia instruções para o controlador de modulação de emissão de fótons ajustando o período de tempo, intensidade, espectro de cor e/ou ciclo de serviço de cada impulso de fótons entre diferentes pulsos de espectros de cor para um animal específico ou para um grupo de animais. Na etapa 1116, o controlador de modulação de emissão de fótons envia um sinal a um ou mais emissores de fótons ajustando o período de tempo, intensidade, espectro de cor e/ou ciclo de atividade de cada pulso de fótons entre diferentes pulsos de espectros de cor para um animal específico ou para um grupo de animais. Na etapa 1118, com base no sinal recebido do controlador de modulação de emissão de fótons, um ou mais emissores de fótons emitem um ou mais pulsos de fótons de espectros de cor individuais dirigidos para um animal ou para um grupo de animais.

[0116] A Figura 12 é um gráfico mostrando um sinal de fótons de exemplo com um pulso de fótons repetitivo vermelho próximo, mostrando uma duração LIGADO e uma duração DESLIGADO para a regulação controlada de hormônios em mamíferos. Como mostrado na Figura 12 e anteriormente descrito nas Figuras 1-11, um exemplo do ciclo de um sinal de fótons com pulsos de fótons repetitivos de um espectro de cor dentro do sinal de fótons é fornecido onde um sinal de fótons com um pulso de fótons repetitivos vermelho próximo é emitido de um emissor de fótons. Como mostrado no gráfico, o espectro vermelho próximo é pulsado primeiro, seguido por um atraso. Em seguida, um segundo pulso compreendendo o espectro vermelho próximo é novamente pulsado seguido por um atraso. Este sinal de fótons pode ser repetido indefinidamente ou até que a produção de hormônio do mamífero sob e recebendo os pulsos de fótons tenha atingido sua quantidade de produção desejada. Embora neste exemplo descritivo de um sinal de fótons tendo um conjunto de pulsos de fótons repetitivos compreenda pulsos de deslocamento de espectro de uma cor, deve ser entendido que esta descrição é aplicável a qualquer sistema com outras emissões de pulsos de fótons durante um período de tempo, como várias combinações de pulsos de espectros de cores incluindo, mas não se limitando a vermelho próximo, vermelho distante, infravermelho, verde, azul, amarelo, laranja e ultravioleta, excluindo os padrões de emissão de iluminação de frequência analógica dos Estados Unidos de 60 Hz e Europa de 50 Hz. Exemplos do período de tempo do pulso de fótons entre pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor podem incluir, mas não estão limitados a 0,01 microssegundo a 5.000 milissegundos e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação também permite outros períodos de tempo entre os pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor incluindo, mas não se limitando a 0,1 microssegundo a 24 horas, e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação pode ser programado para permitir variações de emissão de fótons, bem como variações do atraso de emissão de fótons para permitir eventos como ciclos escuros estendidos.

[0117] A Figura 13 é um gráfico mostrando um exemplo de sinal de fótons contendo pulsos de fótons de dois espectros de cor, vermelho próximo e vermelho distante. A escala de tempo neste gráfico não está em escala, mas serve como modalidade de exemplo, exibindo a variação do espectro de cores, duração LIGADO, duração DESLIGADO e ciclo de trabalho dentro de um sinal de fótons que pode ser utilizado para produção de hormônio de regulação. Como mostrado na Figura 13 e anteriormente descrito nas Figuras 1-11, outro exemplo de um sinal que produz simultaneamente e ciclicamente pulsos de fótons de vários espectros de cor da presente divulgação é fornecido onde um sinal de fótons compreendendo pulsos de fótons de dois espectros de cores é emitido a partir de um emissor de fótons. Como mostrado no gráfico, sinal fornece um espectro vermelho distante que é pulsado primeiro seguido por um atraso e depois um pulso de um espectro vermelho próximo e, em então, seguido por um atraso. Em seguida, um segundo pulso de vermelho próximo é iniciado, seguido por um atraso, seguido por um pulso de vermelho distante individual. Este sinal de fótons pode ser repetido indefinidamente ou até que a resposta desejada do mamífero tenha sido iniciada e recebendo os pulsos de fótons. Como discutido acima, este exemplo também pode ser usado para estimular os hormônios para a ovulação ou para reiniciar o ritmo circadiano do mamífero. Embora neste exemplo descritivo de um conjunto de pulsos de fótons compreenda pulso de deslocamento de dois espectros de cor, deve ser entendido que esta descrição é aplicável a qualquer sistema com outras emissões de pulsos de fótons durante um período de tempo, como várias combinações de pulsos de espectros de cor incluindo, mas não se limitando a vermelho próximo, vermelho distante, infravermelho, verde, azul, amarelo, laranja e ultravioleta, excluindo os padrões de emissão de iluminação de frequência analógica dos Estados Unidos de 60 Hz e Europa de 50 Hz. Exemplos do período de tempo do pulso de fótons entre pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor podem incluir, mas não estão limitados a 0,01 microssegundo a 5.000 milissegundos e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação também permite outros períodos de tempo entre os pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor incluindo, mas não se limitando a 0,1 microssegundo a 24 horas, e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação pode ser programado para permitir variações de emissão de fótons, bem como variações do atraso de emissão de fótons para permitir eventos como ciclos escuros estendidos.

[0118] A Figura 14 é um gráfico que mostra um segundo exemplo de sinal de fótons contendo pulsos de fótons de dois espectros de cor, vermelho próximo e vermelho distante. Novamente, a escala de tempo neste gráfico não está em escala, mas serve como modalidade de exemplo, exibindo a variação do espectro de cores, duração LIGADO, duração DESLIGADO e ciclo de trabalho dentro de um sinal de fótons que pode ser utilizado para regular a produção de hormônio. Como mostrado na Figura 14 e anteriormente descrito nas Figuras 1-11, outro exemplo da ciclagem de pulsos de fótons de vários espectros de cor da presente divulgação é fornecido onde um sinal de fótons compreendendo pulsos de fótons de dois espectros de cores é emitido a partir de um emissor de fótons. Como mostrado no gráfico, um espectro vermelho distante é pulsado em uma série ou trem de pulsos de cinco pulsos seguidos por um pulso de um espectro vermelho próximo e, então, seguido por um atraso. Este sinal de fótons pode ser repetido indefinidamente ou até que o nível de hormônio de mamífero desejado seja alcançado. Como discutido acima, este exemplo também pode ser usado para regulação da produção de hormônio para estimular a ovulação ou para reiniciar o ritmo circadiano do mamífero. Embora neste exemplo descritivo de um conjunto de pulsos de fótons compreenda pulso de deslocamento de dois espectros de cor, deve ser entendido que esta descrição é aplicável a qualquer sistema com outras emissões de pulsos de fótons durante um período de tempo, como várias combinações de pulsos de espectros de cor incluindo, mas não se limitando a vermelho próximo, vermelho distante, infravermelho, verde, azul, amarelo, laranja e ultravioleta, excluindo os padrões de emissão de iluminação de frequência analógica dos Estados Unidos de 60 Hz e Europa de 50 Hz. Exemplos do período de tempo do pulso de fótons entre pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor podem incluir, mas não estão limitados a 0,01 microssegundo a 5.000 milissegundos e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação também permite outros períodos de tempo entre os pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor incluindo, mas não se limitando a 0,1 microssegundo a 24 horas, e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação pode ser programado para permitir variações de emissão de fótons, bem como variações do atraso de emissão de fótons para permitir eventos como ciclos escuros estendidos.

[0119] A Figura 15 é um gráfico que mostra um exemplo de sinal de fótons contendo pulsos de fótons de dois espectros de cor, azul e verde. A escala de tempo neste gráfico não está em escala, mas serve como modalidade e exemplo, exibindo a variação do espectro de cores, a frequência e o ciclo de trabalho que podem ser utilizados para estimular o apetite ou um humor específico e para reiniciar o ritmo circadiano do mamífero. Como mostrado na Figura 15 e anteriormente descrito nas Figuras 1-11, outro exemplo da ciclagem de pulsos de fótons de vários espectros de cor da presente divulgação é fornecido onde pulsos de fótons de dois espectros de cores são emitidos a partir de um emissor de fótons. Como mostrado no gráfico, pulsos de azul e verde são pulsados primeiro, seguidos por um atraso. Em seguida, um segundo pulso de azul é iniciado, seguido por um atraso, seguido por um pulso individual de verde. Este ciclo pode ser repetido indefinidamente ou até que a resposta desejada do mamífero tenha sido iniciada e recebendo os pulsos de fótons. Conforme discutido acima, este exemplo também pode ser usado para regular hormônios, apetite, humor ou mesmo para reiniciar o ritmo circadiano do mamífero. Embora neste exemplo descritivo de um conjunto de pulsos de fótons compreenda pulso de deslocamento de dois espectros de cor, deve ser entendido que esta descrição é aplicável a qualquer sistema com outras emissões de pulsos de fótons durante um período de tempo, como várias combinações de pulsos de espectros de cor incluindo, mas não se limitando a vermelho próximo, vermelho distante, infravermelho, verde, azul, amarelo, laranja e ultravioleta, excluindo os padrões de emissão de iluminação de frequência analógica dos Estados Unidos de 60 Hz e Europa de 50 Hz. Exemplos do período de tempo do pulso de fótons entre pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor podem incluir, mas não estão limitados a 0,01 microssegundo a 5.000 milissegundos e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação também permite outros períodos de tempo entre os pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor incluindo, mas não se limitando a 0,1 microssegundo a 24 horas, e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação pode ser programado para permitir variações de emissão de fótons, bem como variações do atraso de emissão de fótons para permitir eventos como ciclos escuros estendidos.

[0120] A Figura 16 é um gráfico mostrando um exemplo de sinal de fótons contendo pulsos de fótons de três espectros de cores, vermelho próximo, azul e verde. A escala de tempo neste gráfico não está em escala, mas serve como modalidade e exemplo, exibindo a variação do espectro de cores, a frequência e o ciclo de trabalho que podem ser utilizados para estimular ovulação, apetite ou um humor específico e para reiniciar o ritmo circadiano do mamífero. Como mostrado na Figura 16 e anteriormente descrito nas Figuras 1-11, outro exemplo da ciclagem de pulsos de fótons de vários espectros de cor da presente divulgação é fornecido onde pulsos de fótons de três espectros de cores são emitidos a partir de um emissor de fótons. Como mostrado no gráfico, um pulso de vermelho próximo é fornecido seguido de um atraso. Em seguida, um pulso de azul é iniciado, seguido por um atraso, seguido por um pulso individual de verde. Este sinal e ciclo podem ser repetidos indefinidamente ou até que a resposta desejada do mamífero tenha sido iniciada e recebendo os pulsos de fótons. Conforme discutido acima, este exemplo também pode ser usado para regular hormônios, ovulação apetite, humor ou mesmo para reiniciar o ritmo circadiano do mamífero. Embora neste exemplo descritivo de um conjunto de pulsos de fótons compreenda pulsos de deslocamento de três espectros de cor, deve ser entendido que esta descrição é aplicável a qualquer sistema com outras emissões de pulsos de fótons durante um período de tempo, como várias combinações de pulsos de espectros de cor incluindo, mas não se limitando a vermelho próximo, vermelho distante, infravermelho, verde, azul, amarelo, laranja e ultravioleta, excluindo os padrões de emissão de iluminação de frequência analógica dos Estados Unidos de 60 Hz e Europa de 50 Hz. Exemplos do período de tempo do pulso de fótons entre pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor podem incluir, mas não estão limitados a 0,01 microssegundo a 5.000 milissegundos e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação também permite outros períodos de tempo entre os pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor incluindo, mas não se limitando a 0,1 microssegundo a 24 horas, e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação pode ser programado para permitir variações de emissão de fótons, bem como variações do atraso de emissão de fótons para permitir eventos como ciclos escuros estendidos.

[0121] A Figura 17 é um gráfico mostrando um exemplo de sinal de fótons contendo pulsos de fótons de cinco espectros de cores, verde, ultravioleta, laranja, vermelho próximo e azul. A escala de tempo neste gráfico não está em escala, mas serve como modalidade e exemplo, exibindo a variação do espectro de cores, a frequência e o ciclo de trabalho que podem ser utilizados para regular os hormônios, ovulação, apetite ou um humor específico e para reiniciar o ritmo circadiano do mamífero. Como mostrado na Figura 17 e anteriormente descrito nas Figuras 1-11, outro exemplo da ciclagem de pulsos de fótons de vários espectros de cor da presente divulgação é fornecido onde pulsos de fótons de cinco espectros de cores são emitidos a partir de um emissor de fótons. Como mostrado no gráfico, os pulsos de verde e ultravioleta são fornecidos seguidos por um atraso. Em seguida, um pulso de vermelho próximo é iniciado, seguido por um atraso seguido de pulsos de verde e ultravioleta. Este ciclo pode ser repetido com cinco pulsos de verde e ultravioleta e três pulsos de vermelho próximo e depois um único pulso de azul e laranja. Este sinal de pulso pode ser repetido indefinidamente ou até que a resposta desejada do mamífero tenha sido iniciada e recebendo os pulsos de fótons. Conforme discutido acima, este exemplo também pode ser usado para regular hormônios, ovulação apetite, humor ou mesmo para reiniciar o ritmo circadiano do mamífero. Embora neste exemplo descritivo de um conjunto de pulsos de fótons compreenda pulsos de deslocamento de três espectros de cor, deve ser entendido que esta descrição é aplicável a qualquer sistema com outras emissões de pulsos de fótons durante um período de tempo, como várias combinações de pulsos de espectros de cor incluindo, mas não se limitando a vermelho próximo, vermelho distante, infravermelho, verde, azul, amarelo, laranja e ultravioleta, excluindo os padrões de emissão de iluminação de frequência analógica dos Estados Unidos de 60 Hz e Europa de 50 Hz. Exemplos do período de tempo do pulso de fótons entre pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor podem incluir, mas não estão limitados a 0,01 microssegundo a 5.000 milissegundos e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação também permite outros períodos de tempo entre os pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor incluindo, mas não se limitando a 0,1 microssegundo a 24 horas, e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação pode ser programado para permitir variações de emissão de fótons, bem como variações do atraso de emissão de fótons para permitir eventos como ciclos escuros estendidos.

[0122] A Figura 18 é um gráfico que mostra um exemplo de sinal de fótons contendo pulsos de fótons de espectros de duas cores, vermelho próximo e vermelho distante. A escala de tempo neste gráfico não está em escala, mas serve como modalidade de exemplo, exibindo a variação do espectro de cores, duração LIGADO, duração DESLIGADO e ciclo de trabalho dentro de um sinal de fótons que pode ser utilizado para regular hormônios. Como mostrado na Figura 18 e anteriormente descrito nas Figuras 1-11, outro exemplo da ciclagem de pulsos de fótons de vários espectros de cor da presente divulgação é fornecido onde um sinal de fótons compreendendo pulsos de fótons de dois espectros de cores é emitido a partir de um emissor de fótons. Como mostrado no gráfico, um espectro vermelho distante é pulsado primeiro seguido por um atraso e então um pulso de um espectro vermelho próximo e, então, seguido por um atraso. Em seguida, um segundo pulso de vermelho próximo é iniciado, seguido por um atraso, seguido por um pulso de vermelho distante individual. Este sinal de fótons pode ser repetido indefinidamente ou até que a resposta desejada do mamífero tenha sido iniciada e recebendo os pulsos de fótons. Conforme discutido acima, este exemplo também pode ser usado para regular hormônio, ovulação ou para reiniciar o ritmo circadiano do mamífero. Embora neste exemplo descritivo de um conjunto de pulsos de fótons compreenda pulso de deslocamento de dois espectros de cor, deve ser entendido que esta descrição é aplicável a qualquer sistema com outras emissões de pulsos de fótons durante um período de tempo, como várias combinações de pulsos de espectros de cor incluindo, mas não se limitando a vermelho próximo, vermelho distante, infravermelho, verde, azul, amarelo, laranja e ultravioleta, excluindo os padrões de emissão de iluminação de frequência analógica dos Estados Unidos de 60 Hz e Europa de 50 Hz. Exemplos do período de tempo do pulso de fótons entre pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor podem incluir, mas não estão limitados a 0,01 microssegundo a 5.000 milissegundos e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação também permite outros períodos de tempo entre os pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor incluindo, mas não se limitando a 0,1 microssegundo a 24 horas, e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação pode ser programado para permitir variações de emissão de fótons, bem como variações do atraso de emissão de fótons para permitir eventos como ciclos escuros estendidos.

[0123] A Figura 19 é um gráfico mostrando um exemplo de sinal de fótons contendo pulsos de fótons de dois espectros de cor, vermelho próximo e vermelho distante. A escala de tempo neste gráfico não está em escala, mas serve como modalidade de exemplo, exibindo a variação do espectro de cores, duração LIGADO com intensidades variadas, frequência de duração DESLIGADO e ciclo de trabalho dentro de um sinal de fótons que pode ser utilizado para regular hormônios. Como mostrado na Figura 19 e anteriormente descrito nas Figuras 1-11, outro exemplo da ciclagem de pulsos de fótons de vários espectros de cor da presente divulgação é fornecido onde um sinal de fótons compreendendo pulsos de fótons de dois espectros de cores é emitido a partir de um emissor de fótons. Como mostrado no gráfico, um espectro vermelho distante é pulsado primeiro seguido por um atraso e então um pulso de um espectro vermelho próximo e, então, seguido por um atraso. Em seguida, um segundo pulso de vermelho próximo é iniciado, seguido por um atraso, seguido por um pulso de vermelho distante individual. Este sinal de fótons pode ser repetido indefinidamente ou até que a resposta desejada do mamífero tenha sido iniciada e recebendo os pulsos de fótons. Como discutido acima, este exemplo também pode ser usado para estimular ovulação ou para reiniciar o ritmo circadiano do mamífero. Embora neste exemplo descritivo de um conjunto de pulsos de fótons compreenda pulsos de deslocamento de espectros de duas cores, deve ser entendido que esta descrição é aplicável a qualquer sistema com outras emissões de pulsos de fótons durante um período de tempo, como várias combinações de pulsos de espectros de cores incluindo, mas não se limitando a vermelho próximo, vermelho distante, infravermelho, verde, azul, amarelo, laranja e ultravioleta, excluindo os padrões de emissão de iluminação de frequência analógica dos Estados Unidos de 60 Hz e Europa de 50 Hz. Exemplos do período de tempo do pulso de fótons entre pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor podem incluir, mas não estão limitados a 0,01 microssegundo a 5.000 milissegundos e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação também permite outros períodos de tempo entre os pulsos de cada espectro de cor individual ou combinações de espectro de cor incluindo, mas não se limitando a 0,1 microssegundo a 24 horas, e todos os números inteiros intermediários. O sistema da presente divulgação pode ser programado para permitir variações de emissão de fótons, bem como variações do atraso de emissão de fótons para permitir eventos como ciclos escuros estendidos

[0124] A Tabela 4 abaixo fornece uma tabela de opções de iluminação. Conforme mostrado na Tabela 4, a coluna um fornece o nome ou designação da opção de iluminação ou sinal de pulso, a coluna dois fornece os pulsos de cores na opção de iluminação, a coluna três é a duração LIGADO de cada pulso dentro do sinal de pulso, a coluna quatro é a duração DESLIGADO de cada pulso dentro do sinal de pulso, a coluna cinco fornece o tempo de LIGADO até DESLIGADO.

Exemplos

[0125] Os exemplos seguintes são fornecidos para ilustrar adicionalmente as várias aplicações e não se destinam a limitar a invenção além das limitações estabelecidas nas reivindicações anexas.

Exemplo 1- Regulação da melatonina em humanos

[0126] Um homem adulto (Homo sapiens) foi exposto em 22 de março de 2018 e 23 de março de 2018 em Greeley, Colorado, a iluminação pulsada suplementar (Opção 15 na Tabela 4 a 600 Ma para vermelho próximo e 900 Ma para vermelho distante) aproximadamente seis horas durante a noite e oito horas durante o dia em um período de 24 horas para avaliar os níveis de melatonina em atividades diárias típicas. A iluminação suplementar foi adicionada à iluminação ambiental normal, como computadores, televisão, etc.

[0127] Sangue foi coletado de um homem caucasiano de 40 e poucos anos. As duas primeiras amostras foram coletadas em condições de iluminação ambiente às 9h e 17h. O sujeito foi então exposto a iluminação pulsada suplementar (Opção 15 na Tabela 4) por 14 horas, incluindo sono, ao longo das próximas 24 horas e seu sangue foi coletado às 9h e 17h. Um total de oito amostras foram retiradas. As amostras foram retiradas da área antecubital do braço. O sangue foi coletado usando agulhas de calibre 25 com seringas de 3 cc. As amostras foram imediatamente transferidas para um tubo de heparina-lítio e invertidas um total de dez vezes. As células do sangue foram centrifugadas durante 10 min a 3.200 rpm usando uma centrífuga Cole-Parmer para isolar o plasma. As amostras de plasma foram vertidas em tubos de centrífuga de 1,5 mL e colocadas no congelador a -17 ° C. As amostras foram preparadas usando o kit de ELISA de melatonina ab213978 da Abcam Labs. As amostras foram analisadas usando um Varioskan LUX da Thermo Scientific.

[0128] Todos os precipitados e sólidos foram removidos por meio de centrifugação. Volumes iguais (500 µL) de acetato de etila frio e amostra de plasma foram colocados em um tubo Eppendorf e agitados suavemente em vórtex. As camadas foram separadas sobre gelo. A amostra foi agitada com vórtice novamente e incubada sobre gelo por dois minutos. Em seguida, as amostras foram centrifugadas a 1.000 g por 10 min. A camada orgânica foi cuidadosamente pipetada para um novo tubo. Em seguida, foi seca sobre um fluxo de gás inerte (Argônio). Em seguida, o precipitado foi suspenso em 100 - 200 µL de estabilizador 1X. A amostra foi então mantida em gelo após a suspensão e o ensaio foi realizado imediatamente.

[0129] O kit ELISA foi adquirido como uma placa de 96 poços e pronto para uso na chegada. O imunoensaio foi armazenado em uma bolsa selada com dessecante no refrigerador a 8 ℃ até o dia de uso.

[0130] Todos os componentes do kit foram levados para temperatura ambiente. As amostras de plasma foram usadas diretamente sem nenhuma diluição. Em seguida, 100 µL de amostra foram adicionados a cada poço de uma placa de poço pré-revestida junto com 100 µL de estabilizador 1X adicionado aos poços em branco. Em seguida, 50 µL de marcador de melatonina 1X e 50 µL de anticorpo de melatonina 1X foram adicionados a cada poço de amostra, exceto aos poços em branco, respectivamente. A placa foi vedada e incubada à temperatura ambiente (RT) em uma placa agitadora durante 1 hora a cerca de 500 rpm. Após a incubação, as amostras foram lavadas com o tampão de lavagem um total de três vezes com 400 µL por poço. Após a última lavagem, a placa foi esvaziada e os conteúdos foram aspirados, e a placa foi seca por blot batendo em uma toalha de papel para remover qualquer tampão de lavagem remanescente. Em seguida, 200 µL de solução de conjugado de melatonina foram adicionados a cada poço esperado para os poços em branco. Novamente, a placa foi vedada e incubada à RT em um agitador de placas durante 30 minutos a cerca de 500 rpm. A placa foi lavada novamente da mesma maneira anterior e todo o tampão de lavagem foi removido. Neste ponto, 200 µL de solução de substrato de TMB foram adicionados a cada poço, e a placa foi incubada por 30 minutos a RT em uma placa agitadora na mesma taxa como realizado anteriormente. Em seguida, 50 µL da solução de parada foram adicionados a cada poço. As leituras de Densidade Óptica (OD) foram registradas em um comprimento de onda de 450 nm por um leitor de placas.

[0131] Todos os dados são apresentados como médias usando programas de ajuste de curva (4 parâmetros) do software do leitor de placa (Skanlt Software 5.0 para leitores de microplaca). Todas os gráficos foram criados em excel. As concentrações conhecidas de anticorpo de melatonina foram pré-imobilizadas nas placas. A Figura 20 mostra a curva de diluição para cada diluição préimobilizada (0, 50, 100, 250, 500, 1.000 pg / mL) de anticorpo de melatonina nas placas de poço.

[0132] Com padrões conhecidos, a mudança nas concentrações de melatonina em ng / mL foram obtidas sob luzes (Opção 15 na Tabela 4), conforme descrito neste documento, e em comparação com uma luz de controle (Figura 21). Sangue foi coletado de um sujeito humano durante um período de dois dias. O primeiro conjunto de amostras foi coletado com aproximadamente oito horas de intervalo em condições de luz padrão. O segundo conjunto de amostras foi coletado sob luzes como descrito neste documento (Opção 15 na Tabela 4) na mesma hora do dia que o primeiro conjunto de amostras, respectivamente. As amostras foram colocadas em tubos Eppendorf de 1,5 mL e armazenadas em refrigerador a -17 ° C até o dia do uso. Todos os padrões, brancos e amostras foram retirados em réplicas e as médias foram obtidas.

[0133] A melatonina é um fator importante no ritmo circadiano em mamíferos. Uma extensa pesquisa mostrou que diferentes ciclos de luz afetam a produção de melatonina. Este ensaio foi realizado para determinar o efeito das luzes, como descrito neste documento, nos níveis de melatonina humana.

[0134] Os dados na Figura 21 mostram que os níveis de melatonina humana aumentaram 24,79% após o primeiro e o segundo pontos de tempo de oito horas. Houve um aumento maior no nível de melatonina após uma exposição mais longa às luzes (Opção 15 na Tabela 4 a 600 Ma e 900 Ma), como descrito neste documento. Os dados indicariam que pulsação de iluminação, como descrito neste documento, resulta na regulação direta dos níveis de melatonina em humanos.

Exemplo 2 - Regulação da melatonina em gado

[0135] O touro angus preto de 10 meses de idade, criado em Yuma, Arizona, foi colocado em um painel agrícola de 12 x 12 pés sob iluminação normal. Depois que as amostras de sangue foram coletadas para os primeiros 3 pontos de tempo (1.400 horas, 2.200 horas e 700 horas), o touro foi alojado em um recinto coberto emoldurado pelos painéis agrícolas e a única fonte de luz foi um conjunto específico de luzes, como descrito neste documento (Opção 15 na Tabela 4 a 1100 Ma). O ar suplementar para a barraca foi fornecido por meio de um ventilador HVAC e foi alimentado com feno de grama ad libitum e 5 libras de grãos doces por dia, consistente com as rações normais. A intensidade da luz sob as luzes como descrito neste documento (Opção 15 na Tabela 4 a 1100 Ma) dentro do recinto variou de 52 a 1012 mW /m2. Se necessário, o touro era movido para uma rampa de compressão para coleta de sangue e, em seguida, devolvido ao recinto.

[0136] O sangue foi coletado do touro em intervalos de aproximadamente oito (8) horas. As três primeiras amostras foram coletadas em condições de iluminação ambiente de 1.400 horas, 2.200 horas e 700 horas, seguidas de uma exposição de 74 horas a uma receita de iluminação pulsada específica. Três amostras adicionais foram coletadas após a exposição à luz, aproximadamente na mesma hora do dia da coleta de sangue inicial (1.400 horas, 2.200 horas e 700 horas). As amostras foram retiradas da veia coccígea (cauda). Sangue foi coletado usando agulhas de calibre 23 com seringas de 3 cc. As amostras foram imediatamente transferidas para um tubo de heparina-lítio e invertidas um total de dez vezes. As amostras de sangue foram centrifugadas durante 10 min a 3.200 rpm usando uma centrífuga Cole-Parmer para isolar o plasma. As amostras de plasma foram colocadas em tubos de centrífuga de 1,5 mL e colocadas no refrigerador a -17 ᐤ C. As amostras foram preparadas usando o kit de ELISA de melatonina ab213978 da Abcam Labs. As amostras foram analisadas usando um Varioskan LUX da Thermo Scientific.

[0137] Todos os precipitados e sólidos foram removidos por meio de centrifugação. Volumes iguais (500 µL) de acetato de etila frio e amostra de plasma foram colocados em um tubo Eppendorf e agitados suavemente em vórtex. As camadas foram separadas sobre gelo. A amostra foi agitada com vórtice novamente e incubada sobre gelo por dois minutos. Em seguida, as amostras foram centrifugadas a 1.000 g por 10 min. A camada orgânica foi cuidadosamente pipetada para um novo tubo. Em seguida, foi seca sobre um fluxo de gás inerte (Argônio). Em seguida, o precipitado foi suspenso em 100 - 200 µL de estabilizador 1X. A amostra foi então mantida em gelo após a suspensão e o ensaio foi realizado imediatamente.

[0138] O kit ELISA foi adquirido como uma placa de 96 poços e pronto para uso na chegada. O imunoensaio foi armazenado em uma bolsa vedada com dessecante no refrigerador a 8 ℃ até o dia de uso.

[0139] Todos os componentes do kit foram levados para temperatura ambiente. As amostras de plasma foram usadas diretamente sem nenhuma diluição. Em seguida, 100 µL de amostra foram adicionados a cada poço de uma placa de poço pré-revestida junto com 100 µL de estabilizador 1X adicionado aos poços em branco. Em seguida, 50 µL de marcador de melatonina 1X e 50 µL de anticorpo de melatonina 1X foram adicionados a cada poço de amostra, exceto aos poços em branco, respectivamente. A placa foi vedada e incubada à temperatura ambiente (RT) em uma placa agitadora durante 1 hora a cerca de 500 rpm. Após a incubação, as amostras foram lavadas com o tampão de lavagem um total de três vezes com 400 µL por poço. Após a última lavagem, a placa foi esvaziada e os conteúdos foram aspirados, e a placa foi seca por blot batendo em uma toalha de papel para remover qualquer tampão de lavagem remanescente. Em seguida, 200 µL de solução de conjugado de melatonina foram adicionados a cada poço exceto aos poços em branco. Novamente, a placa foi vedada e incubada à temperatura ambiente em um agitador de placas durante 30 minutos a cerca de 500 rpm. A placa foi lavada novamente da mesma maneira anterior e todo o tampão de lavagem foi removido. Neste ponto, 200 µL de solução de substrato de TMB foram adicionados a cada poço, e a placa foi incubada por 30 minutos à temperatura ambiente em uma placa agitadora na mesma taxa como realizado anteriormente. Em seguida, 50 µL da solução de parada foram adicionados a cada poço. As leituras de Densidade Óptica (OD) foram registradas em um comprimento de onda de 450 nm por um leitor de placas.

[0140] Todos os dados são apresentados como médias usando programas de ajuste de curva (4 parâmetros) do software do leitor de placa (Skanlt Software 5.0 para leitores de microplaca). Todas os gráficos foram criados em excel. As concentrações conhecidas de anticorpo de melatonina foram pré-imobilizadas nas placas. A Figura 22 mostra a curva padrão para cada diluição pré-imobilizada (50, 10, 2, 0,4, 0,08 ng / mL) de anticorpo de melatonina nas placas de poços.

[0141] Com padrões conhecidos, a mudança nas concentrações de melatonina em ng / mL foi obtida sob luzes, como descrito neste documento, e em comparação com uma luz de controle (Figura 23). Sangue foi coletado de um touro durante um período de cinco dias. O primeiro conjunto de amostras foi coletado a cada oito horas por um total de três vezes sob a luz de controle. O segundo conjunto de amostras foi coletado de acordo com as luzes descritas neste documento, na mesma hora do dia que o primeiro conjunto de amostras, respectivamente. As amostras foram colocadas em tubos Eppendorf de 1,5 mL e armazenadas em refrigerador a -17 ° C até o dia do uso. Todos os padrões, brancos e amostras foram retirados em réplicas e as médias foram obtidas.

[0142] A melatonina é um fator importante no ritmo circadiano em mamíferos. Uma extensa pesquisa mostrou que diferentes ciclos de luz afetam a produção de melatonina. Este ensaio foi realizado para determinar o efeito das luzes, como descrito neste documento, nos níveis de melatonina bovina.

[0143] Os dados na Figura 23 mostram que os níveis de melatonina bovina aumentaram 20,79% com uma exposição mais longa às luzes, como descrito neste documento. Após a exposição às luzes como descrito neste documento (Opção 15 na Tabela 4 a 1100 Ma) por aproximadamente 92 horas, um aumento significativo de 20,79% foi observado. Os dados preliminares indicam que diferentes receitas de iluminação podem resultar na regulação direta sobre os níveis de melatonina em bovinos.

Exemplo 3 - Expressão genética e excreção hormonal encontradas em porcos

[0144] Em outro exemplo, as entradas de luz dos sistemas e métodos descritos neste documento afetam a expressão genética e a excreção hormonal encontradas em porcos. Tanto em leitoas quanto em porcas, a infertilidade sazonal tem muitos impactos econômicos importantes. As taxas de parição reduzidas são o resultado do aumento do número de leitoas e porcas que retornam ao estro e inseminação e a uma proporção maior de abortos espontâneos ocorridos em cruzamentos concluídos durante o final do verão e início do outono. Isso resulta no uso ineficaz das instalações e na diminuição do número de leitões produzidos. Adicionalmente, tamanhos menores de ninhadas, maior tempo do desmame ao estro e puberdade tardia em leitoas com maturação entre agosto e novembro no hemisfério norte foram associados a dias longos. Todos esses fatores contribuem para os dias não produtivos do animal.

Exemplo 4 - Regulação do ritmo circadiano em mamíferos

[0145] Ainda em outro exemplo de entradas de luz e ritmos circadianos que afetam a expressão genética humana e a excreção hormonal podem ser encontrados nos efeitos da primavera do horário de verão (DST). Esses efeitos são difundidos e a partir de pesquisas modernas mostram efeitos que variam de um aumento de 10% no risco de infarto do miocárdio, 8% no aumento do risco de acidentes cerebrovasculares, aumento de suicídios e diminuição do sucesso da fertilização in vitro.

Exemplo 5 - Regulação do ritmo circadiano em mamíferos

[0146] Em outro exemplo, gado leiteiro, bezerros crescidos sob fotoperíodos de dias longos produzem corpos maiores e mais magros na maturidade com maior crescimento do parênquima mamário. Gado em lactação exposto ao fotoperíodo de dia longo produziram maior rendimento de leite devido às menores concentrações de melatonina e maior concentração de prolactina, enquanto o fotoperíodo de dia curto durante o período seco de vacas multíparas aumenta a produção de leite na lactação seguinte. Esses itens significam a importância da exposição à luz em gado leiteiro para uma produção otimizada. As somatotropinas bovinas são uma substância que de ocorrência natural em bovinos para maximizar a produção de leite pós-parto. Na década de 1970, o rBST foi criado usando e-coli para criar um hormônio de crescimento artificial em gado leiteiro. Infelizmente, estudos descobriram que esse hormônio artificial causa muitos efeitos na saúde em gado, incluindo aumento de 24% nos casos de mastite (impacto econômico de $ 1,4 a $ 2,0 bilhões de dólares por ano), redução de 40% na fertilidade e aumento de 55% na claudicação. Esses efeitos colaterais não são vistos no BST de ocorrência natural, que é criado usando as sugestões de foto da luz existente.

[0147] A descrição anterior de uma modalidade da invenção foi apresentada para fins de ilustração e descrição. Não se pretende que ela exaustiva ou limite a invenção à forma precisa divulgada, e outras modificações e variações podem ser possíveis à luz dos preceitos acima. A modalidade foi escolhida e descrita de modo a melhor explicar melhor os princípios da invenção e a sua aplicação prática para desse modo permitir que outros versados na técnica utilizem melhor a invenção em várias modalidades e várias modificações que são adequadas para o uso particular contemplado. Pretende-se que as reivindicações anexas sejam interpretadas para incluir outras modalidades alternativas da invenção, exceto na medida em que sejam limitadas pela técnica anterior.

Claims (16)

1. Método não-terapêutico de regulação de hormônios em mamíferos, o método caracterizado por compreender: fornecer um sistema para pulsar sinais de fótons em direção a um mamífero, compreendendo: pelo menos um emissor de fótons; pelo menos um controlador de modulação de emissão de fótons em comunicação com o referido pelo menos um emissor de fótons; em que o referido pelo menos um emissor de fótons é configurado para produzir um sinal de fótons para o referido mamífero, em que o referido sinal de fótons compreende dois ou mais componentes independentes, em que os referidos dois ou mais componentes independentes compreendem: um primeiro componente independente de um primeiro grupo de pulsos de fótons modulados repetitivo, em que o referido primeiro grupo de pulsos de fótons modulados tem uma ou mais durações LIGADO do primeiro pulso de fótons com uma ou mais primeiras intensidades, tem uma ou mais durações DESLIGADO do primeiro pulso de fótons e uma primeira cor de comprimento de onda; em que a referida uma ou mais durações do referido primeiro pulso de fótons LIGADO é entre 0,01 microssegundo e 5000 milissegundos e em que uma ou mais durações do primeiro fóton DESLIGADO está entre é entre 0,1 microssegundo e 24 horas; e um segundo componente independente de um segundo grupo de pulsos de fótons modulados repetitivo, em que o referido segundo grupo de pulsos de fótons modulados tem uma ou mais durações LIGADO de segundos pulsos de fótons com uma ou mais segundas intensidades, tem uma ou mais durações de segundos pulsos de fótons DESLIGADO e uma segunda cor de comprimento de onda; em que a referida uma ou mais durações do referido segundo pulso de fótons LIGADO é entre 0,01 microssegundo e 5000 milissegundos e em que uma ou mais durações do segundo fóton DESLIGADO é entre está entre 0,1 microssegundo e 24 horas; em que o primeiro componente independente e o segundo componente independente são produzidos dentro do referido sinal simultaneamente; em que o segundo grupo de pulsos de fótons modulados é diferente do primeiro grupo de pulsos de fótons modulados; e emitir o referido sinal em direção ao referido mamífero; em que o efeito combinado do sinal regula os níveis de hormônio no referido mamífero.
2. Método não-terapêutico, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado por compreender adicionalmente estabelecer um nível de hormônio de referência em um mamífero antes de emitir o referido sinal em direção ao referido mamífero, preferivelmente em que o referido nível de hormônio de referência é estabelecido usando uma técnica analítica escolhida de imunoensaio enzimático (ELISA), cromatografia líquida de alto desempenho (HPLC) e espectrometria de massa por cromatografia gasosa.
3. Método não-terapêutico, de acordo com a reivindicação 2, caracterizado pelo fato de que a referida regulação é um aumento ou uma diminuição na produção de hormônio no referido mamífero, preferivelmente em que a referida produção de hormônio é aumentada ou diminuída em relação ao referido nível de referência entre 0,1% e 5000%.
4. Método não-terapêutico, de acordo com qualquer uma das reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que o referido hormônio a ser regulado é escolhido a partir de hormônios hipotalâmicos e hormônios pituitários, preferivelmente em que os referidos hormônios hipotalâmicos são escolhidos a partir de hormônio liberador de corticotropina, fatores de liberação de prolactina, (serotonina, acetilcolina, opiáceos e estrogênios), somatostatina e fatores de inibição de prolactina (dopamina) e, preferivelmente, em que os referidos hormônios pituitários são escolhidos a partir de hormônio adrenocorticotrópico (ACTH), hormônio estimulador de melanócitos, endorfinas, hormônio do crescimento, hormônio luteinizante (LH) e hormônio folículo-estimulante (FSH), hormônio tireoide-estimulante (TSH) e prolactina, ou em que o referido hormônio é a melatonina.
5. Método não-terapêutico, de acordo com qualquer uma das reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que o referido hormônio é regulado no cérebro, testículos, fígado, placenta, coração, pulmão, músculo, rim, pâncreas ou pele do referido mamífero.
6. Método não-terapêutico, de acordo com qualquer uma das reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que a referida primeira cor de comprimento de onda do referido primeiro grupo de pulsos de fótons modulados tem um comprimento de onda entre 0,1 nm e 1 cm; e em que a referida segunda cor de comprimento de onda do referido segundo grupo de pulsos de fótons modulados tem um comprimento de onda entre 0,1 nm e 1 cm.
7. Método não-terapêutico, de acordo com qualquer uma das reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que a referida primeira cor de comprimento de onda do referido primeiro grupo de pulsos de fótons modulados tem um comprimento de onda próximo ao vermelho; e em que a referida segunda cor de comprimento de onda do referido segundo grupo de pulsos de fótons modulados tem um comprimento de onda vermelho distante.
8. Método não-terapêutico, de acordo com qualquer uma das reivindicações anteriores, caracterizado pelo fato de que o referido primeiro grupo de pulso modulado tem uma ou mais durações de pulso de fótons LIGADO entre 0,01 microssegundo e 999 microssegundos, preferivelmente entre 999 microssegundos e 99 milissegundos ou preferivelmente entre 99 milissegundos e 999 milissegundos; e o referido segundo grupo de pulsos modulados tem um ou mais pulsos de fótons com durações LIGADO entre 0,01 microssegundo e 999 microssegundos, preferivelmente entre 999 microssegundos e 99 milissegundos ou preferivelmente entre 99 milissegundos e 999 milissegundos.
9. Método não-terapêutico, de acordo com qualquer uma das reivindicações anteriores, caracterizado por compreender adicionalmente: fornecer um controlador de lógica mestre em comunicação com o referido pelo menos um controlador de emissão de fótons, em que o referido controlador de lógica mestre envia comandos para o referido pelo menos um controlador de modulação de emissão de fótons que controla a uma ou mais duração LIGADO do primeiro pulso de fótons, a uma ou mais duração DESLIGADO do primeiro pulso de fótons, a intensidade do primeiro pulso de fótons e a cor de comprimento de onda do primeiro pulso de fótons e a referida uma ou mais duração LIGADO do segundo pulso de fótons, a uma ou mais duração DESLIGADO de atraso do segundo pulso de fótons, a intensidade do segundo pulso de fótons e a cor de comprimento de onda do segundo pulso de fótons do referido pelo menos um emissor de fóton, o método preferível e adicionalmente compreendendo: fornecer um sensor de consumo de potência em comunicação com o referido controlador de lógica mestre; monitorar o uso de potência do referido pelo menos um emissor de fótons; comunicar o referido consumo de potência do referido sensor de consumo de potência a um hospedeiro externo ao controlador de lógica mestre.
10. Método não-terapêutico, de acordo com a reivindicação 9, caracterizado por compreender adicionalmente: fornecer pelo menos um sensor, preferivelmente em que o referido pelo menos um sensor é selecionado a partir do grupo que consiste em um sensor de temperatura do ar, sensor de umidade, sensor de temperatura corporal do mamífero, sensor de peso do mamífero, sensor de som, sensor de movimento, sensor infravermelho, sensor de O2, sensor de CO2 e sensor de CO e suas combinações; monitorar pelo menos uma condição associada ao referido mamífero, em que a referida pelo menos uma condição associada ao referido mamífero é uma condição ambiental associada ao referido mamífero ou uma condição fisiológica associada ao referido mamífero; e comunicar dados sobre a referida condição a partir do referido pelo menos um sensor para o referido controlador de lógica mestre, o método preferível e adicionalmente compreendendo: ajustar a referida duração, intensidade, banda de comprimento de onda e ciclo de trabalho do referido pelo menos primeiro grupo de pulso modulado e do referido segundo primeiro grupo de pulso modulado com base na informação do referido sensor de consumo de potência.
11. Método não-terapêutico, de acordo com qualquer uma das reivindicações anteriores, caracterizado por compreender adicionalmente obstruir toda a luz adicional ou suplementar do referido mamífero, ou em que a referida emissão do referido sinal é uma fonte suplementar de fótons.
12. Método não-terapêutico, de acordo com a reivindicação 1, caracterizado pelo fato de que o referido primeiro grupo de pulsos de fótons modulados e o referido segundo grupo de pulsos de fótons modulados tem uma mudança no quantum de luz de pelo menos 5%, e/ou em que o ciclo de trabalho dos referidos primeiro grupo de pulsos de fótons modulados e segundo grupo de pulsos de fótons modulados variam entre 0,1% a 93%.
13. Método não-terapêutico, de acordo com qualquer uma das reivindicações anteriores, caracterizado por adicionalmente regular uma resposta desejada do referido mamífero, em que a referida resposta desejada é escolhida dentre ovulação, fome e humor, ou em que a referida regulação dos hormônios regula o comportamento, ciclo de reprodução, crescimento do cabelo, calma ou taxas de metabolismo do referido mamífero.
14. Método não-terapêutico, de acordo com a reivindicação 13, caracterizado pelo fato de que a referida resposta desejada no referido mamífero é uma resposta mediada por opsinas no hipotálamo, ou pela opsina no cérebro, testículo, fígado, placenta, coração, pulmão, músculo, rim, pâncreas ou pele do referido mamífero, ou em que a referida resposta desejada é no referido mamífero é uma resposta mediada pela glândula pineal do referido mamífero.
15. Sistema para regulação da produção de hormônio em um mamífero caracterizado por compreender: pelo menos um emissor de fótons; pelo menos um controlador de modulação de emissão de fótons em comunicação com o referido pelo menos um emissor de fótons; em que o referido pelo menos um emissor de fótons é configurado para produzir um sinal de fótons para o referido mamífero, em que o referido sinal de fótons compreende dois ou mais componentes independentes, em que os referidos dois ou mais componentes independentes compreendem: um primeiro componente independente de um primeiro grupo de pulsos de fótons modulados repetitivo, em que o referido primeiro grupo de pulsos de fótons modulados tem uma ou mais durações LIGADO do primeiro pulso de fótons com uma ou mais primeiras intensidades, tem uma ou mais durações DESLIGADO do primeiro pulso de fótons e uma primeira cor de comprimento de onda; em que a referida uma ou mais durações do referido primeiro pulso de fótons LIGADO é entre 0,01 microssegundo e 5000 milissegundos e em que uma ou mais durações do primeiro fóton DESLIGADO está entre é entre 0,1 microssegundo e 24 horas; e um segundo componente independente de um segundo grupo de pulsos de fótons modulados repetitivo, em que o referido segundo grupo de pulsos de fótons modulados tem uma ou mais durações LIGADO de segundos pulsos de fótons com uma ou mais segundas intensidades, tem uma ou mais durações de segundos pulsos de fótons DESLIGADO e uma segunda cor de comprimento de onda; em que a referida uma ou mais durações do referido segundo pulso de fótons LIGADO é entre 0,01 microssegundo e 5000 milissegundos e em que uma ou mais durações do segundo fóton DESLIGADO é entre está entre 0,1 microssegundo e 24 horas; em que o primeiro componente independente e o segundo componente independente são produzidos dentro do referido sinal simultaneamente; em que o segundo grupo de pulsos de fótons modulados é diferente do primeiro grupo de pulsos de fótons modulados; e em que o efeito combinado do sinal regula os níveis de hormônio no referido mamífero.
16. Uso de pelo menos um emissor de fótons e pelo menos um controlador de modulação de emissão de fótons em comunicação com o referido pelo menos um emissor de fótons, o uso caracterizado por ser na fabricação de um sistema para pulsar sinais de fótons em direção a um mamífero para regulação de hormônios em mamíferos, em que: em que o referido pelo menos um emissor de fótons é configurado para produzir um sinal de fótons para o referido mamífero, em que o referido sinal de fótons compreende dois ou mais componentes independentes, em que os referidos dois ou mais componentes independentes compreendem: um primeiro componente independente de um primeiro grupo de pulsos de fótons modulados repetitivo, em que o referido primeiro grupo de pulsos de fótons modulados tem uma ou mais durações LIGADO do primeiro pulso de fótons com uma ou mais primeiras intensidades, tem uma ou mais durações DESLIGADO do primeiro pulso de fótons e uma primeira cor de comprimento de onda; em que a referida uma ou mais durações do referido primeiro pulso de fótons LIGADO é entre 0,01 microssegundo e 5000 milissegundos e em que uma ou mais durações do primeiro fóton DESLIGADO está entre é entre 0,1 microssegundo e 24 horas; e um segundo componente independente de um segundo grupo de pulsos de fótons modulados repetitivo, em que o referido segundo grupo de pulsos de fótons modulados tem uma ou mais durações LIGADO de segundos pulsos de fótons com uma ou mais segundas intensidades, tem uma ou mais durações de segundos pulsos de fótons DESLIGADO e uma segunda cor de comprimento de onda; em que a referida uma ou mais durações do referido segundo pulso de fótons LIGADO é entre 0,01 microssegundo e 5000 milissegundos e em que uma ou mais durações do segundo fóton DESLIGADO é entre está entre 0,1 microssegundo e 24 horas; em que o primeiro componente independente e o segundo componente independente são produzidos dentro do referido sinal simultaneamente; em que o segundo grupo de pulsos de fótons modulados é diferente do primeiro grupo de pulsos de fótons modulados; e em que o efeito combinado do sinal regula os níveis de hormônio no referido mamífero.

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