BR102017004615A2 - oligonucleotídeos e método para detecção e tipagem do papilomavírus humano - Google Patents

oligonucleotídeos e método para detecção e tipagem do papilomavírus humano Download PDF

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Abstract

oligonucleotídeos e método para detecção e tipagem do papilomavírus humano. a presente invenção se refere ao uso da tecnologia de amplificação de ácidos nucleicos pela reação em cadeia da polimerase em duas etapas (duplicada) com múltiplos marcadores, também chamada em pgr-nested multiplex, utilizando oligonucleotídeos gerais consensuais seguidos por múltiplos oligonucleotídeos específicos e seus componentes (reagentes e condições de reação) para detectar simultaneamente 40 tipos de papilomavírus humano presentes em fluídos e amostras de tecidos humanos, bem como realizar uma análise semi-quantitativa entre os tipos virais determinando a relação de dominância viral (carga viral) em infecções múltiplas. as seqüências dos primers (iniciadores específicos ou oligonucleotídeos, sequências id no. 1 a 93) gerais de consenso degenerados (1ª reação de pcr) e combinados, bem como os primers específicos combinados (2ª reação de pcr - nested) para os tipos virais, que englobam não-oncogênicos, indeterminados e oncogênicos.

Description

(54) Título: OLIGONUCLEOTÍDEOS E MÉTODO PARA DETECÇÃO E TIPAGEM DO PAPILOMAVÍRUS HUMANO (51) Int. Cl.: C12Q 1/6888; C12Q 1/6886; C12Q 1/686; C12Q 1/70.
(71) Depositante(es): UNIVERSIDADE FEDERAL DE UBERLÂNDIA; FUNDAÇÃO DE AMPARO À PESQUISA DO ESTADO DE MINAS GERAIS - FAPEMIG; CIRINO ALBERTO GOULART EIRELI - EPP (LABORATÓRIO BIOGENETICS).
(72) lnventor(es): LUIZ RICARDO GOULART FILHO.
(57) Resumo: OLIGONUCLEOTÍDEOS E MÉTODO PARA DETECÇÃO E TIPAGEM DO PAPILOMAVÍRUS HUMANO. A presente invenção se refere ao uso da tecnologia de amplificação de ácidos nucleicos pela reação em cadeia da polimerase em duas etapas (duplicada) com múltiplos marcadores, também chamada em PGR-nested multiplex, utilizando oligonucleotídeos gerais consensuais seguidos por múltiplos oligonucleotídeos específicos e seus componentes (reagentes e condições de reação) para detectar simultaneamente 40 tipos de papilomavírus humano presentes em fluídos e amostras de tecidos humanos, bem como realizar uma análise semi-quantitativa entre os tipos virais determinando a relação de dominãncia viral (carga viral) em infecções múltiplas. As seqüências dos primers (iniciadores específicos ou oligonucleotídeos, sequências ID No. 1 a 93) gerais de consenso degenerados (Ia reação de PCR) e combinados, bem como os primers específicos combinados (2a reação de PCR nested) para os tipos virais, que englobam não-oncogênicos, indeterminados e oncogênicos.
Figure BR102017004615A2_D0001
r itt it /8 “OLIGONUCLEOTIDEOS E MÉTODO PARA DETECÇÃO E TIPAGEM DO PAPILOMAVÍRUS HUMANO” [1] Campo da invenção [2] A presente invenção se refere a identificação de oligonucleotideos e método para detecção e tipagem do papilomavírus humano. O presente método refere-se ao uso da tecnologia de amplificação de ácidos nucleicos pela reação em cadeia da polimerase em duas etapas (duplicada) com múltiplos marcadores, também chamada em PCR-nested multiplex, utilizando oligonucleotideos gerais consensuais seguidos por múltiplos oligonucleotideos específicos e seus componentes (reagentes e condições de reação) para detectar simultaneamente 40 tipos de papilomavírus humano presentes em fluídos e amostras de tecidos humanos, bem como realizar uma análise semi-quantitativa entre os tipos virais determinando a relação de dominância viral (carga viral) em infecções múltiplas. As seqüências dos primers (iniciadores específicos ou oligonucleotideos) gerais de consenso degenerados (1a reação de PCR) e combinados, bem como os primers específicos combinados (2a reação de PCR - nested) para os tipos virais, que englobam não-oncogênicos, indeterminados e oncogênicos (6,11,16, 18, 26, 30, 31, 33, 34, 35, 39, 42, 43, 44, 45, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 61,62, 64, 66, 67, 68, 69, 70, 71,72, 73, 74, 81, 82, MM7, e MM8), são descritas e fazem parte da invenção que utiliza a PCR-nested multiplex para a tipagem simultânea de 40 tipos virais em um único tubo. O processo de detecção é realizado por fluorescência em sequenciadores por eletroforese capilar, os quais também permitem a determinação semi-quantitativa da carga viral dos tipos virais em infecções múltiplas. A invenção também pode ser utilizada para o monitoramento do tratamento das infecções por HPV tanto em homens quanto em mulheres.
[3] Estado da Técnica [4] O HPV tem sido implicado na gênese de várias lesões pré-cancerosas e neoplásicas, particularmente carcinomas do colo uterino, região anogenital, pele,
2/8 trato respiratório e digestivo. Recomenda-se a pesquisa do HPV nos seguintes casos: mulheres com colpocitologia atípica ou borderline”, pacientes de alto risco (início sexual precoce com vários parceiros), indivíduos imunocomprometidos e parceiros de pacientes infectados pelo HPV.
[5] O HPV pode ser classificado em aproximadamente 100 tipos epiteliotrópicos diferentes, sendo que cerca de 40 tipos são exclusivamente mucosotrópicos. Aproximadamente um terço destes tipos mucosotrópicos de HPV foram isolados de carcinomas cervicais (HO GYF, BIRMAN R, BEARDSLAY L et al. 1998. New England J. Med. 338, p.423-428).
[6] O método de PCR (Patentes US 4,683,195 e 5,639,871) foi introduzido como o método mais sensível para a detecção do DNA (ácido desoxirribonucleico) de HPV em espécimes clínicos. Os primeiros diagnósticos moleculares, utilizando a Reação em Cadeia da Polimerase (PCR), foram desenvolvidos no final da década de 80 (MANOS MM, TING Y, WRIGHT DK et al. 1989. Câncer Cell 7, p.209-214). Poucos HPVs tinham seus genomas sequenciados e, apesar disso, observou uma ampla variabilidade genética, o que implica no fato de que, mesmo utilizando regiões conservadas entre os vírus, há dificuldade na detecção. Esta variabilidade viral tem estimulado o desenvolvimento de testes simples e universais usando a PCR (reação em cadeia de polimerase) permitindo a detecção de um largo espectro dos principais genótipos de HPV (MANOS MM, TING Y, WRIGHT DK et al. 1989. Câncer Cell 7, p.209-214; SNIJDERS PJF., VAN DE BRULE AJF, SCHRIJNEMAKERS HJF et al. 1990. J. Gen. Virol. 71, p173-181).
[7] Muitas patentes têm sido descritas procurando a tipagem do HPV, usando regiões genômicas distintas ou similares, ou ainda usando mistura de técnicas como a PCR e hibridações, e também usando alvos diferenciados, podendo ser DNA ou RNA. Dentre as várias publicações e patentes relevantes citam-se algumas a seguir, fazendo um comparativo com a presente invenção:
[8] A JP2012075437A refere-se à descrição de 13 pares de primers (sondas)
3/8 para detecção multiplex de 13 tipos virais de alto risco apenas. A detecção ocorre por eletroforese convencional e não utiliza o PCR nested (duplicado). A diferença com a presente invenção está na detecção de 40 tipos virais com 40 pares de primers diferentes em PCR nested, que inclui uma primeira amplificação geral e uma segunda amplificação específica duplicada multiplex. Além do mais a detecção proposta nessa invenção é muito superior por ser simultânea em uma única reação com eletroforese capilar por fluorescência à laser.
[9] A patente DE19903056A1 refere-se à detecção de tipos virais por PCR nested. Utiliza 4 primers na primeira reação e 8 sondas na segunda e reivindicam que detectam aproximadamente 30 tipos virais, especificando apenas 6 tipos virais (6, 11, 16, 18, 31, 33), sendo os últimos 4 classificados como de alto risco. A detecção é feita por hibridação com duas sondas específicas em blots de membrana (strips). Diferentemente da presente invenção que utiliza uma amplificação primária com vários primers gerais degenerados (10), além de mais três primers como controle interno (beta-globina). A segunda reação ocorre simultaneamente com mais 40 pares de primers específicos com detecção por fluorescência à laser em eletroforese capilar, e não por hibridação, o que torna a presente tecnologia mais competitiva e de alto desempenho, com menos manipulações.
[10] A patente KR2004047238A reivindica apenas as sequências de três conjuntos de pares de primers, 6 ao todo, para detecção geral de vários tipos de HPV de forma inespecífica por PCR convencional, sendo que existem amplificações comuns entre eles, provavelmente devido à grande variabilidade viral. O método de detecção não é explorado. Não existe qualquer similaridade com a presente invenção.
[11] A patente CN102229930A utiliza uma tecnologia de PCR em tempo real multiplex para detecção de 18 tipos virais de alto risco. A patente descreve 18 pares de primers e suas sondas associadas, sendo uma tecnologia diferente da PCR nested com detecção simultânea de 40 tipos virais por fluorescência
4/8 reivindicadas na presente invenção, com sensibilidade comparável. Contudo a referida patente necessita de vários multiplex, pois a PCR em tempo real possui no máximo até 4 fluoróforos possíveis, o que permite a detecção simultânea de somente 4 tipos de cada vez, portanto não apresentando o alto desempenho reivindicado pela presente invenção que realiza o teste em um único tubo para tipagem siul de 40 tipos virais.
[12] A patente US 6,482,588 B1 descreve duas regiões amplificadas com 3 primers (SGP1, SGp2 e SGP3), sendo o último comum à extremidade da região amplificada pelos primers MY11/MY09, ou seja, fora da região da presente invenção, além de usar uma plataforma diferente conhecida como LiPA, ou também slot-blot reverso. As sondas usadas nesse sistema são menores e muito diferentes da presente invenção.
[13] A patente WO 2008/089519 A1 reivindica a detecção de 17 tipos virais por PCR em tempo real com multiplex de 4 conjuntos de primers. A patente também reivindica dois primers para detecção geral (screening), demonstrando ser superior ao sistema de diagnóstico “Captura Híbrida 2”. Nenhuma sequência dos primers reinvindicados coincide com os primers da presente invenção, contudo a tecnologia reivindicada naquela patente requer múltiplos painéis de primers, enquanto que a presente invenção propõe a amplificação em um único tubo de 40 tipos virais.
[14] Um outro sistema semelhante à patente anterior foi desenvolvido para quantificação de sete tipos virais de alto risco por PCR em tempo real em multiplex (SCHMITZ M, SCHEUNGRABER C, HERRMANN J et al. 2009. J. Clin. Virol, 44, p.302-307). Esta técnica utiliza 7 pares de primer e sete sondas, os quais possuem sequências bem diferentes da presente invenção que detecta 40 tipos virais por outra tecnologia.
[15] A patente WO 2011/088573 A1 é um deposito recente, depositada nove anos mais tarde que a patente que originou a presente invenção, a qual detectava 32 tipos virais com 32 pares de primers (PI0302987-5 de 16/07/2003).
5/8
O depósito WO 2011 /088573 A1 baseia-se na amplificação com o par de primers GP5+/GP6+ (SNIJDERS PJF, VAN DE BRULE AJF, SCHRIJNEMAKERS HJF et al. 1990. J. Gen. Virol. 71, p.173-181; Patente WO 91/10675), mas com detecção por hibridação com 46 sondas no sistema Luminex, que se baseia em citometria de fluxo com microesferas fluorescentes. A presente invenção baseiase na amplificação por PCR nested com detecção fluorescente em sistema de eletroforese capilar. É importante enfatizar que estas sequências funcionam como sondas de hibridação no equipamento Luminex, enquanto que na presente invenção se refere a um dos primers do par que reconhece o tipo viral por PCR nested e detecção por fluorescência em eletroforese capilar.
[16] Contudo, a freqüência de lesões com resultados falso-negativos para a presença de HPV tem aumentado, sugerindo que uma parte substancial de tipos virais não está sendo detectada e conseqüentemente os estudos epidemiológicos bem como as ações para a prevenção e tratamento têm sido prejudicadas.
[17] Com o intuito de buscar uma metodologia capaz de realizar a tipagem rápida, eficiente e mais sensível dos papilomavírus humanos que englobam pelo menos os 40 tipos virais mais freqüentes associados a lesões do colo uterino e pênis, dentre os mais de 100 tipos já descritos, desenvolveu-se uma técnica variante da PCR (Patente US 4,683,195 e 5,639,871), a PCR Nested, com múltiplos primers simultâneos (também chamada de PCR Multiplex), descrita pela primeira vez em 1994 (Patente US 5,364,759) para a genotipagem simultânea de STRs (repetições curtas consecutivas de DNA). A presente invenção apresenta essa técnica associada a um equipamento de eletroforese capilar com detecção por fluorescência foi aplicada para a detecção simultânea de 40 tipos do vírus HPV em um único tubo, englobando os tipos mais freqüentes em amostras frescas ou conservadas em parafina do colo uterino, região anogenital, pele, trato respiratório e digestivo.
[18] Importante enfatizar que a presente invenção também propiciou a
6/8 η
determinação da carga viral relativa entre os vírus infectantes em uma amostra, após a realização de uma série de diluições da mesma, permitindo, assim, a verificação da dominância viral na lesão, propiciando a adoção de critérios específicos para o tratamento e observações clínicas conforme o tipo de vírus dominante. Caso o tipo dominante seja de alto risco, como o HPV16, o risco de câncer in situ é muitas vezes aumentado, subsidiando as medidas terapêuticas e profiláticas a serem adotadas.
[19] Listagem de figuras [20] A invenção poderá ser melhor compreendida por meio da descrição detalhada, em consonância com as figuras em anexo, onde:
[21] FIGURA 1 representa esquematicamente a plataforma comercial de larga escala da PCR Nested Multiplex utilizada para detectar simultaneamente os 40 tipos do HPV em uma única amostra, em um ensaio realizado em duas etapas com duração média de 6 horas.
[22] FIGURA 2 demonstra os dados utilizados para a construção de um novo Peak Filter no software Fragment Profiler do sequenciador automático capilar (MegaBace 1000) específico para cada tipo de HPV.
[23] Referente à FIGURA 1, a plataforma comercial de PCR Nested Multiplex é extremamente específica, dispondo-se da utilização de prímers específicos marcados, onde os 40 tipos de HPV amplificados isoladamente são submetidos à corrida eletroforética em um sequenciador automático. Utiliza-se o padrão interno de peso molecular ETRox-550 (GE Healthcare) para a análise das amostras. Como controle da amplificação é utilizado o gene Beta-Globina, presente em todos os ensaios.
[24] Referente à FIGURA 2, construiu-se um novo Peak Filter no software Fragment Profiler para permitir a leitura eletroforética e análise dos dados, contemplando as três marcações fluorescentes (FAM, HEX e TAMRA).
7/8
Ί 3 [25] Descrição da invenção [26] Para melhor compreensão do método proposto segue abaixo uma descrição detalhada da invenção.
[27] O DNA viral é obtido a partir de células do colo cervical, raspado peniano, ânus, boca, pele, blocos de parafina entre outras amostras de origem humana (GRIFFITH et al. 2001. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, vols. 1, 2 and
3). O fragmento da 1a reação de PCR que amplifica uma região genômica específica do HPV (L1) é usado como base para a degeneração e o desenho e síntese de novos marcadores, seqüência esta amplificada pelos primers degenerados MY09 e MY11 que constituem parte da Patente US 5,364,758. Neste sentido, foram desenvolvidos 10 primers, 5 no sentido de leitura do DNA e 5 no anti-sentido, formando 25 combinações de pares de primers. Estas combinações de primers podem detectar a presença de vírus em células descarnadas de qualquer amostra orgânica a ser testada, podendo detectar todos os tipos de HPV descritos na literatura, baseando-se nas seqüências depositadas no GenBank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/GenBank). A tipagem do vírus é obtida a partir de uma segunda reação chamada nested (ou duplicada), a qual é executada a partir de 40 pares de primers específicos. Os primers foram combinados em uma reação multiplex em um tubo único possibilitando a análise específica de 40 tipos de virais do HPV.
[28] As reações de amplificação do HPV foram realizadas em duas etapas, a primeira com a utilização de dez primers degenerados e modificados (ID Sequências n2 01, 02, 03, 04, 05, 06, 07, 08, 09 e 10) gerando um fragmento de 450 pares de bases (PCR-OUT). Esta reação é realizada para detecção do vírus nos pacientes, amplificando uma região comum aos 40 tipos de papilomavírus. É composta de 1X tampão Taq Platinum, 25-30 pmoles de cada primer degenerado e modificado de consenso, 1,5 U Taq DNA polimerase, 200 μΜ de dNTPs, 2 pmoles de cada primer do gene de controle interno da beta globina (ID Sequências n2 11 e 12) e 7 pL de DNA para um volume final de 30 μΙ_. As
8/8 condições da reação foram: 40 ciclos de 94°C por 1 min., 50°C por 1 min., 72°C por 2 min., e extensão final a 72°C por 5 min. e 4°C por 5 min.
[29] Na segunda etapa, 2 μι. do produto amplificado na primeira reação foram usados como template em cada mix, de acordo com a reação Multiplex-Nested previamente padronizada. Esta reação consiste de 1X tampão taq Phoneutria, 0,5 pmol de prímers específicos (ID Sequências n2 14 a 93) para os 40 tipos de papilomavírus, 0,2 pmol de cada primer do gene constitutivo da beta-globina (ID Sequências n2 12 e 13), 1,0 U Taq DNA polimerase, 200 μΜ de dNTPs, 1X de enhancer para um volume final de 15 μΙ_. As condições da reação foram: 95°C por 1 min., 36 ciclos de 95°C por 1 min., 56°C por 1 min., 72°C por 40 s., e extensão final a 72°C por 5 min. e 4°C por 5 min. Dois microlitros do produto amplificado são submetidos à corrida eletroforética em capilar no sequenciador MegaBace 1000® (GE Healthcare), sendo utilizado o padrão interno de peso molecular ET550-R (GE Healthcare) para a análise das amostras. Como controle da amplificação é utilizado o gene da Beta-Globina, presente em todos os ensaios.
[30] A seguir encontram-se a identidade e as seqüências dos oligonucleotídeos (direção 5’-3’) usados para a amplificação nas duas reações sequenciais de PCR (Nested Multiplex). As seqüências estão divididas em oligonucleotídeos gerais (1a reação) e específicos (2a reação), totalizando as Seq. ID N° 01 a Seq. ID N° 93.
/2

Claims (9)

  1. REIVINDICAÇÕES
    1. OLIGONUCLEOTÍDEOS caracterizados por compreender as sequências Seq ID N2 01 a Seq ID N2 93.
  2. 2. OLIGONUCLEOTÍDEOS de acordo com a reivindicação 1, caracterizados pelas Seq ID N2 01 a Seq ID N2 13 participarem da primeira etapa da reação de PCR, gerando um fragmento de 450 pares de bases.
  3. 3. OLIGONUCLEOTÍDEOS de acordo com a reivindicação 1, caracterizados pelas Seq ID N2 14 a Seq ID N2 93 participarem da segunda etapa da reação de PCR Nested Multiplex em tubo único de reação para detecção por eletroforese capilar.
  4. 4. MÉTODO PARA DETECÇÃO E TIPAGEM DO PAPILOMAVÍRUS HUMANO caracterizado pelo uso combinado da técnica PCR Nested Multiplex em duas etapas (duplicada) com múltiplos marcadores utilizando oligonucleotídeos gerais consensuais (primeira etapa) seguidos por múltiplos oligonucleotídeos específicos (segunda etapa) e seus componentes (reagentes e condições de reação) para detectar simultaneamente 40 tipos de papilomavírus humano presentes em fluídos e amostras de tecidos humanos, em tubo único de reação para detecção por eletroforese capilar.
  5. 5. MÉTODO de acordo com a reivindicação 4, caracterizado pela detecção do(s) tipo(s) viral(is) ser em sistema simples de agarose corado com brometo de etídio, em sistema de acrilamida corado com prata, ou ainda em sistema de fluorescência múltipla ou simples em sistema de eletroforese capilar para detecção simultânea de amplicons obtidos com primers marcados com fluoróforos.
  6. 6. MÉTODO de acordo com a reivindicação 4, caracterizado pela detecção de pelo menos 40 tipos virais mais frequentes com amplificação inicial por
    2/2
    PCR de uma sequência da região genômica L1 do HPV contendo 10 (dez) prímers gerais com sequências de consenso representativas de HPV descritos pelas Seq. ID n2 01 a Seq. ID 10, que também servirá de molde para a segunda etapa da reação de PCR (PCR Nested).
  7. 7. MÉTODO de acordo com a reivindicação 4, caracterizado pela reamplificação específica de 40 tipos virais simultâneos com oligonucleotídeos internos (PCR Nested Multiplex) homólogos às sequências de amplicons específicos geradas na 1a reação de PCR.
  8. 8. MÉTODO de acordo com a reivindicação 4, caracterizado pelas sondas ou prímers descritos pelas Seq ID N2 01 a Seq ID N2 93 poderem detectar os tipos oncogênicos, não-oncogênicos e indeterminados quanto ao risco de desenvolver lesão neoplásica.
  9. 9. MÉTODO de acordo com a reivindicação 4, caracterizado pelos oligonucleotídeos gerais e específicos, descritos nas reivindicações 1, 2, 3 e pelos métodos de detecção descritos na reivindicação 5, para serem utilizados na detecção isolada ou múltipla dos tipos de HPV em qualquer combinação dos prímers.
    1 /2
    FIGURA 1
    Ptdrfotnftrrwdt ρ«» mtkculv CTPo»$50 $<qu«nctad«r , , mtomttKo
    M*p0«c«lOOO
    ΓΓΊΓΊΓΓ·
    KEKK*
    2/2
    FIGURA 2
    HPVOÍ Pamell FAM 321 325 300 65535 PeMernT-me 2 1 SisBnleFDtae HPV11 Pamell FAM 291 295 100 «5535 1 Rwwnl«Fítaf 2 HPV1Í Paiaell FAM 175 178 100 «5535 1 RiwwJeFitar 2 HPV18 FAM 240 242 100 «5535 1 2 HPV3O Pandl FAM 171 174 100 65535 1 Riwwil«Fítaf 2 HPV42 hàdl FAM 2S3 287 100 «5535 1 2 HPV43 NmII FAM 244 247 100 65535 1 RiwwJmFÍHwr 2 HPV44 IW1 FAM 207 210 100 65535 1 Riwml*Fitar 2 ΗΡνη MmU FAM 337 341 100 65535 1 RiwwnÍ«F>tar 2 HPV52 n»ii FAM 191 195 100 «5535 1 Ri>ml«Filtar 2 HPV53 Paiaell FAM 126 130 100 65535 1 SinslefihK 2 HPV54 Pamell FAM 213 216 100 «5535 1 RiwwJ «Fitar 2 HPV5Í Painell FAM 277 281 100 «5535 1 RimlrFitar 2 HPVS« Pamell FAM 270 273 100 65535 1 SimlifiltK 2 HPV57 Nndl FAM 237 239 100 «5535 1 Riwd«Fttar 2 HPV62 RümII FAM 248 252 100 «5535 1 «Fitar 2 HPV64 Pamell FAM 107 111 100 «5535 1 RiwwJaFitar 2 HPVÍ7 Pamell FAM 139 143 100 «5535 1 RifMrJaKtar 2 HPV72 Painell FAM 72 76 100 65535 1 RtwalmFiHar 2 HPV73 Pamell FAM 179 183 100 «5535 1 SlBBalflFihK 2 HPV74 Pamell FAM 327 331 100 «5535 1 Ri—ilaFítar 2 HPV82 Pam41 FAM 266 269 100 «5535 1 SimleFitar 2 HPVMM7 Pamell FAM 304 308 100 «5535 1 SinuiaEihK 2 HPVMM8 Pamell FAM 84 88 100 «5535 1 2 HP\T4 PaMl HEX 289 292 100 «5535 1 Stwa4«Fttar 2 HPV31 Pamell HEX 307 311 100 «5535 1 fliwwJJiltMt 2 HPV33 Pamell HEX 315 319 100 «5535 1 2 HPV34 M-ril HEX 169 173 100 «5535 1 Sôml«Fitar 2 HPV35 Paiaell HEX 275 279 100 «5535 1 SneolflRteK 2 HPV45 Pamell HEX 193 197 100 «5535 1 2 HPV58 Pamell HEX 123 127 100 «5535 1 StanleKtae 2 HPV59 Pamell HEX 215 219 100 «5535 1 RimmUíhf 2 HPVÍ1 Painel 1 HEX 176 180 100 «5535 1 RínndeFíHm· 2 HPV66 M-ll HEX 285 287 100 65535 1 SineileFílter 2 hpvm Paiaell HEX 233 237 100 «5535 1 Riwml «Fitar· 2 HPVÍ» Pamell HEX 238 242 100 65535 1 RinutaFitar 2 HPV70 Rãmll HEX 210 214 100 65535 1 Ri—wJ«FiW«r 2 HPV71 Painell HEX 203 207 100 «5535 1 RimnlaFitar 2 HPvn Pimall HEX 138 142 100 65535 1 RíiwrltFihw 2 _ Painel 1 HEX 368 372 100 «5535 1 Sumi «Fitar 2 P*··11________ TAMRA J49 244 12Q -S2525 J SimalJiltet 2
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