BG64840B1 - Method for pleuromutiline preparation - Google Patents
Method for pleuromutiline preparation Download PDFInfo
- Publication number
- BG64840B1 BG64840B1 BG105424A BG10542401A BG64840B1 BG 64840 B1 BG64840 B1 BG 64840B1 BG 105424 A BG105424 A BG 105424A BG 10542401 A BG10542401 A BG 10542401A BG 64840 B1 BG64840 B1 BG 64840B1
- Authority
- BG
- Bulgaria
- Prior art keywords
- strain
- agar
- fermentation
- clitopilus
- glucose
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
Description
Изобретението се отнася до метод за получаване на плеуромутилин, който намира приложение във фармацевтичната промишленост .The invention relates to a method for the preparation of pleuromutilin, which is used in the pharmaceutical industry.
Предшестващо състояние на техникатаBACKGROUND OF THE INVENTION
Антибиотикът плеуромутилин е изолиран за първи път от Kavanagh et al., (Proc, Natl. Acad. Soc.1951, 37, 570-574). Той се продуцира като част от антибиотичен комплекс при дълбочинна ферментация на базидиомицетния щам Clitopilus pinsitus. Притежава изразено антибактериално действие срещу микоплазми и други бактерии, като особено ефективен е полусинтетичният му дериват тиамулин, който е в употреба от 1978 г.The pleuromutilin antibiotic was isolated for the first time by Kavanagh et al. (Proc, Natl. Acad. Soc. 1951, 37, 570-574). It is produced as part of an antibiotic complex during deep fermentation of the basidiomycetes strain Clitopilus pinsitus. It has a pronounced antibacterial action against mycoplasma and other bacteria, and its semi-synthetic derivative thiamulin, which has been in use since 1978, is particularly effective.
Известен е метод за получаване на плеуромутилин, при които щам продуцент на плеуромутилин Clitopilus passeckerianus (Pil.), NRRL 3100 или негови разновидности, Clitopilus passeckerianus NRRL 3279, Clitopilus prunulus NRRL 3473, Clitopilus pinsitus NRRL 3474, се култивира върху хранителна среда, съдържаща усвояеми източници на азот и въглерод и минерални соли. Ферментационният процес протича при температура 24-25°С , в аеробна среда, при непрекъснато разбъркване за около 120 h. (GB 1 111 010; US 3716579)A method is known for the preparation of pleuromutilin, wherein the pleuromutilin producer strain of Clitopilus passeckerianus (Pil.), NRRL 3100 or variants thereof, Clitopilus passeckerianus NRRL 3279, Clitopilus prunulus NRRL 3473, Clitopilus pinsitus culture media contains sources of nitrogen and carbon and mineral salts. The fermentation process was carried out at a temperature of 24-25 ° C, under aerobic conditions, with continuous stirring for about 120 hours. (GB 1 111 010; US 3716579)
Недостатъкът на този метод е ниският добив на получаване на целевия продукт.The disadvantage of this method is the low yield of the target product.
Известен е метод за получаване на плеуромутилин, включен в състава на антибиотичен комплекс, при който щам Clitopilus pseudopinsitus NRRL 11179 се култивира върху ферментационна среда, съдържаща усвояеми въглеродни и азотни източници и неорганични соли при аеробни условия при температура от 25 до 33°С за около 288 h .(US 4247542)A method for the preparation of pleuromutilin included in the composition of an antibiotic complex is known, wherein the strain Clitopilus pseudopinsitus NRRL 11179 is cultured on a fermentation medium containing absorbable carbon and nitrogen sources and inorganic salts at aerobic conditions at about 25 DEG C. 288 h. (US 4247542)
Недостатък на метода е получаването, в резултат на ферментационния процес, на антибиотичен комплекс, в състава на който плеуромутилинът е в незначително количество.The disadvantage of this method is the production, as a result of the fermentation process, of an antibiotic complex, in which pleuromutilin is present in a negligible amount.
Известен е метод за получаване на плеуромутилин, при който щам-продуцент Clitopilus pinsitus НБПМКК 3418, се култивира дълбочинно в аеробни условия, образува плеуромутилин и съпътстващия антибиотичен комплекс (BG 63800).A method for the preparation of pleuromutilin is known, in which the Clitopilus pinsitus strain strain NBPMCK 3418 is cultured deeply under aerobic conditions, forming pleuromutilin and the concomitant antibiotic complex (BG 63800).
Недостатъкът на този метод е, че целевият продукт не е краен продукт на ферментационния процес, което го прави неефективен за промишлено производство, както и самата продуктивност по отношение на плеуромутилина.The disadvantage of this method is that the target product is not the end product of the fermentation process, which makes it ineffective for industrial production, as well as the productivity itself with respect to pleuromutilin.
Техническа същност на изобретениетоSUMMARY OF THE INVENTION
Съгласно метода за получаване на плуеромутилин, щам Clitopilus pinsitus, регистриран в НБПМКК под № 3910, се култивира дълбочинно при аеробни условия, върху хранителна среда, съдържаща усвояеми източници на азот, въглерод и неорганични соли. Ферментационният процес се провежда при температура от 25 до 30°С, налягане 0,5-0,8 bar и pH от 6,0 до 8,0 за време 250-300 h.According to the method for the production of pluromutilin, the Clitopilus pinsitus strain registered in NBPMCC under No. 3910 is cultured deeply under aerobic conditions, on a culture medium containing absorbed nitrogen, carbon and inorganic salts. The fermentation process is carried out at a temperature of 25 to 30 ° C, a pressure of 0.5-0.8 bar and a pH of 6.0 to 8.0 for a time of 250-300 h.
Щам Clitopilus pinsitus НБПМКК № 3910 се получава от щам Clitopilus pinsitus НБПМКК 3418 чрез протопластиране на изходния и последващо облъчване с ултравиолетова светлина (К. R. Satewart, 1986, A method for generating protoplasts from Clitopilus pinsitus , J. Antib. v. 39, p. 1486-7). Полученият вариант на щама се стабилизира посредством естествена селекция.Clitopilus pinsitus strain NBPMCK No. 3910 was obtained from Clitopilus pinsitus strain NBPMCC 3418 by protoplastic initial and subsequent UV light irradiation (K. R. Satewart, 1986, A method for generating protoplasts from Clitopilus vinsibus. J., Ant. p. 1486-7). The resulting variant of the strain is stabilized by natural selection.
За охарактеризиране на изходния родителски щам Clitopilus pinsitus НБПМКК 3418 и полученият при селекцията подобрен щам са използвани следните хранителни среди:The following nutrient media were used to characterize the parent parent strain Clitopilus pinsitus NBPMKK 3418 and the improved strain obtained during selection:
1. Сабуро-десктрозен агар, със състав в тегловни %: глюкоза - 4.0; пептон 1.0; агар15.0; рН5.6±0.1.1. Saburo-desctrous agar, with a composition by weight: glucose - 4.0; peptone 1.0; agar15.0; pH 5.6 ± 0.1.
2. Малцово-царевичен агар, със състав в тегловни %: малцов екстракт - 2.0; царевичен екстракт- 1.0; агар- 1.5; pH 6.5±0.2.2. Malt-corn agar, with a composition by weight: malt extract - 2.0; corn extract - 1.0; agar 1.5; pH 6.5 ± 0.2.
3. Сабуро-малтозен агар, със състав в тегловни %: месен пептон - 0.5; казеин - 0.5; малтоза - 2.0; агар - 1.5; pH 5.6+0.1.3. Saburo-maltose agar, composition by weight: meat peptone - 0.5; casein - 0.5; maltose - 2.0; agar - 1.5; pH 5.6 + 0.1.
4. Комбиниран агар, със състав в тегловни %: малцов екстракт -1.5; пептон - 0.075; малтоза - 1.3; декстрин - 0.3; глицерол - 0.25; монокалиев фосфат - 0.1; амониев хлорид 0.1; агар - 1.5; pH 4.8+0.2.4. Combined agar, composition by weight: malt extract -1.5; peptone - 0.075; maltose - 1.3; dextrin - 0.3; glycerol - 0.25; monocotassium phosphate - 0.1; ammonium chloride 0.1; agar - 1.5; pH 4.8 + 0.2.
5. Малцов агар, със състав в тегловни %: малцов екстракт - 3.0; соев пептон - 0.3; агар 1.5; рН5.6±0.1.5. Malt agar, composition by weight: Malt extract - 3.0; soy peptone - 0.3; agar 1.5; pH 5.6 ± 0.1.
Морфолого-културалните характеристики на двата щама са направени на 14 ден от развитието им и са представени в Таблица!.The morphological and cultural characteristics of the two strains were made on day 14 of their development and are presented in Table !.
Табл.1 Сравнителна морфологична характеристика на щамове Clitopilus pinsitus НБПМКК 3418 и 3910Table 1 Comparative morphological characteristics of Clitopilus pinsitus strains NBPMCC 3418 and 3910
Цветът на въздушния мицел е определен по скалата на Бондарцев (Бондарцев А.С., Шкала цветов, Изд.АН СССР, 1954).The color of the aerial mycelium was determined on the Bondartsev scale (AS Bondartsev, The Color Scale, published in the USSR, 1954).
Данни за усвояване на различни въглехидратни източници от двата щама са представени в Табл.2. Анализът е извършен на среда с единствен въглехидратен източник в концентрация 1%, със състав в тегловни %: амониев сулфат - 0.026; монокалиев фосфатData for absorption of different carbohydrate sources from the two strains are presented in Table 2. The assay was performed on a single carbohydrate source medium at a concentration of 1%, with a composition in weight%: ammonium sulfate - 0.026; monocotassium phosphate
0.024; дикалиев фосфат - 0.56; магнезиев сулфат - 0.1; солев разтвор* - 0.1; агар - 1.5; pH 6.8±7.0.0.024; dicalium phosphate - 0.56; magnesium sulfate - 0.1; saline solution * - 0.1; agar - 1.5; pH 6.8 ± 7.0.
♦Солев разтвор: меден сулфат - 0,63 g; железен сулфат - 0.11 g; манганов сулфат - 0.79 g; цинков сулфат - 0.15 g; дестилирана вода до 100 ml. Захарите се добавят под формата на стерилни разтвори при температура на агара около 60°С.Раз Saline solution: copper sulphate - 0.63 g; ferrous sulfate - 0.11 g; manganese sulfate - 0.79 g; zinc sulfate - 0.15 g; distilled water to 100 ml. The sugars are added in the form of sterile solutions at an agar temperature of about 60 ° C.
Табл.2. Усвояване на въглехидратни източници от родителския щам Clitopilus pinsitusTable 2. Absorption of carbohydrate sources from the parent strain Clitopilus pinsitus
НБПМКК 3418 и шам Clitopilus pinsitus НБПМКК3910NBPMCK 3418 and Clitopilus pinsitus sham NBPMKK3910
... . . и . и.... . and. and
Означения в таблицата:”+” - положителен ръст;”++” - много добър ръст; “±” - съмнителен ръст;”-” - липса на ръст.Markings in the table: "+" - positive growth; "++" - very good growth; "±" - doubtful growth; "-" - lack of height.
Съхранението на щама върху скосен <и ар при температура до +4°С при запазване на свойствата му е в рамките на 3 месеца. За по-дълъг период от време щамът се съхранява при тем*>л пература под - 50°С при използване на глицериново-лактозна протектираща среда.Storage of the strain on bevel and ap at temperatures up to + 4 ° C while maintaining its properties is within 3 months. For a longer period, the strain was stored at a temperature of> 50 l below - 50 ° C using a glycerol lactose protection medium.
Свежа култура от щам Clitopilus pinsitus НБПМКК № 3910, израстнал върху епруветка скосен Сабуро-декстрозен агар, се смива съсFresh culture of Clitopilus pinsitus strain NBPMCC No. 3910 grown on a tube of beveled Saburo-dextrose agar is washed with
О £ стерилен физиологичен разтвор, хомогенизира се. С 0,5 ml от тази суспензия се инокулира върху 60 ml посевна хранителна среда със състав в тегловни %: глюкоза 1,0 до 6, профло 1-3, монокалиев фосфат 0,1-0,5, магнезиев сулфат 0,05-0,5, калиев нитрат 0,05-0,1, натриев хло- 40 рид 0,1 -0,5.рН се коригира в границите 5,4-5,8 и средата се стерилизира при температура 120 до 121 °C за 30 min. Процесът на инокулиране протича при температура 25°С, при непрекъснато разбъркване за време 120-168 h. 4$O sterile saline solution, homogenized. 0.5 ml of this suspension was inoculated onto 60 ml of the culture medium with a composition by weight: glucose 1.0 to 6, proflo 1-3, monocotassium phosphate 0.1-0.5, magnesium sulfate 0.05- 0.5, potassium nitrate 0.05-0.1, sodium chlorobenzyl chloride 40 0.1 -0,5.rN is adjusted in the range from 5.4 to 5.8 and the medium is sterilized at a temperature of 120 to 121 ° C in 30 min. The inoculation process takes place at 25 ° C, with continuous stirring for 120-168 h. $ 4
От 5 до 10 обемни % от посевния материал се добавят към ферментационна среда, съдържаща въглехидратен източник от 2 до 10 тегловни %, източници на органичен азот от 0,2 до 2% и минерални соли , в количество 0,12%. pH на ферментационната хранителна среда се поддържа в границите от 6 до 8. Вегетативната фаза може да бъде двустепенна. Ферментационния процес се провежда при температура 25 до 30°С за период от време 200 до 300 h.From 5 to 10% by volume of the seed is added to a fermentation medium containing a carbohydrate source of 2 to 10% by weight, organic nitrogen sources of 0.2 to 2% and mineral salts in an amount of 0.12%. The pH of the fermentation medium is maintained in the range of 6 to 8. The vegetative phase can be two-stage. The fermentation process is carried out at a temperature of 25 to 30 ° C for a period of 200 to 300 hours.
Като източници на въглерод във ферментационната среда могат да се използуват: въглехидрати, като глюкоза, фруктоза или захароза, и соево масло. Като източници на органичен азот могат да се използуват: сухи дрожди, соев шрот, царевичен екстракт, профло, фармамедия, пептон, триптон, казеин, самостоятелно или в комбинация , а като минерални соли - сулфати, фосфати, хлориди и нитрати на натрия, калия, магнезия и калция.Carbon sources such as glucose, fructose or sucrose, and soybean oil may be used as sources of carbon in the fermentation medium. The following may be used as sources of organic nitrogen: dried yeast, soybean meal, corn extract, proflo, pharmamedia, peptone, tryptone, casein, alone or in combination, and as mineral salts - sulfates, phosphates, chlorides and nitrates of sodium, potassium , magnesium and calcium.
Специфично за щам Clitopilus pinsitus НБПМКК № 3910 е, че от хранителните среди той усвоява по-добре глюкоза, соев шрот, царевичен екстракт и профло.Specific to strain Clitopilus pinsitus NBPMCC No. 3910 is that it better absorbs glucose, soybean meal, maize extract and proflo from nutrient media.
Предимство на метода е високият антибиотичен титър в културалната среда, както и сравнително малкото натрупване на странични продукти при ферментация на използувания щам мутант, в сравнение с родителския щам.The advantage of the method is the high antibiotic titer in the culture medium, as well as the relatively low accumulation of by-products in the fermentation of the mutant strain used compared to the parent strain.
Пояснение на приложените фигуриExplanation of the annexed figures
Плеуромутилинът, получен по метода, обект на изобретението е определен количествено чрез HPLC метод. Резултатите от анализа са показани, както следва:The pleuromutilin obtained by the method of the invention was quantified by HPLC method. The results of the analysis are shown as follows:
1. На фигура 1 са показани резултатите от HPLC анализ на стандартен разтвор плеуромутилин.1. Figure 1 shows the results of HPLC analysis of a standard solution of pleuromutilin.
2. На фигура 2 са показани резултатите от HPLC анализ на проба от културална течност плеуромутилин, получена по метода, описан в пример 1.2. Figure 2 shows the results of an HPLC analysis of a pleuromutilin culture fluid sample obtained by the method described in Example 1.
На фигура 3 са показани резултатите от биоавтографско проявяване на проби от културална течност при тест Micrococcus luteusFigure 3 shows the results of bioautographically showing samples of culture fluid in a Micrococcus luteus test
АТСС 9341, чрез който се проявяват резултати от тънкослойната хроматография.ATCC 9341, which results in thin layer chromatography.
Примери за изпълнение на изобретениетоExamples of carrying out the invention
Изобретението се илюстрира със следните примери:The invention is illustrated by the following examples:
Пример 1.Example 1.
Свежа култура от щам Clitopilus pinsitus НБПМКК 3910, израснал върху епруветка скосен Сабуро-декстрозен агар, се смива със стерилен физиологичен разтвор и се стрива в мелница на Потер за хомогенизиране. С 0.5 ml от тази суспензия се инокулира 500 ml Ерленмайерова колба, съдържаща 60 ml от посевна среда със следния състав:Fresh culture of Clitopilus pinsitus strain NBPMKK 3910 grown on a test tube of slanted Saburo-dextrose agar was washed with sterile saline and ground into a Potter mill for homogenization. 0.5 ml of this suspension is inoculated with a 500 ml Erlenmeyer flask containing 60 ml of the seed medium of the following composition:
PH се коригира до 5.6+0.2; стерилизация 30 min. При 121 °C; pH след стерилизация 5.7+0.2. Глюкозата се добавя отделно стерилизирана към всяка колба преди посев. Раз витае при 25°С на кръгова клатачка 120 до 168 h.The pH was adjusted to 5.6 + 0.2; sterilization 30 min. At 121 ° C; pH after sterilization 5.7 + 0.2. Glucose was added separately sterilized to each flask before sowing. It thrives at 25 ° C on a circular shaker for 120 to 168 h.
Подават се 5 до 10 об. % от посевния материал към ферментационната среда със следния състав:5 to 10 vol. % of the seed to the fermentation medium with the following composition:
Средата се разлива в Ерленмайерови колби от 500 ml по 50 ml, като глюкозата се добавя отделно стерилизирана към всяка колба преди посев. pH се коригира на 6.6±0.2.The medium is poured into 500 ml Erlenmeyer flasks of 50 ml each, with glucose added separately sterilized to each flask before sowing. The pH was adjusted to 6.6 ± 0.2.
Ферментацията продължава 250 до 300 h 5 при 25°С на кръгова клатачка с 250 оборота в минута и 5 cm отклонение. След завършване на ферментационния процес, всяка колба се анализира за количествено съдържание на плеуромутилин по HPLC метод и за качествено по 10 TLC метод, спрямо референтна субстанция. Активност 3-5 g/1.The fermentation was continued for 250 to 300 h 5 at 25 ° C in a circular shaker with 250 rpm and 5 cm deviation. After completion of the fermentation process, each flask was analyzed for quantitative content of pleuromutilin by HPLC method and qualitatively by 10 TLC method against the reference substance. Activity 3-5 g / l.
Пример 2.Example 2.
Свежа култура от щам Clitopiplus pinsitus НБПМКК №3910 израснал върху епруветка 15 скосен Сабуро-декстрозен агар се смива със стерилен физиологичен разтвор и се стрива в мелница на Потер за хомогенизиране. С 0.5 ml от тази суспензия се инокулира 500 ml Ерленмайлерова колба, съдържаща 60 ml от посевна среда с посочения по-горе състав. След развитие за около 120 до 168 h при 25°С на кръгова клатачна машина с 250 оборота в минута и 5 cm отклонение, 5 ml от развитата култура се прехвърлят към 200 ml от същата посевна среда в еднолитрова Ерленмайлерова колба. Развитието продължава при същите условия за около 72 до 96 h, след което така изготвеният материал служи за посев на 50-литров работен апарат със следната ферментационна среда:Fresh culture of Clitopiplus pinsitus strain NBPMCC No. 3910 grown on a 15-beaker test tube. Saburo-dextrose agar was washed with sterile saline and ground into a Potter mill for homogenization. 0.5 ml of this suspension is inoculated with a 500 ml Erlenmeyer flask containing 60 ml of the seed medium of the above composition. After developing for about 120 to 168 h at 25 ° C on a 250-rpm circular shake machine, 5 cm of deviation, 5 ml of the developed culture was transferred to 200 ml of the same seed medium in a one-liter Erlenmeyer flask. The development is continued under the same conditions for about 72 to 96 hours, after which the material thus prepared serves to sow a 50 liter working apparatus with the following fermentation medium:
pH на нативния разтвор се коригира с натриева основа до 6.6 - 6.8, средата се стерилизира при стандартни условия, след което се добавя отделно стерилизираният глюкозен раз- ^5 твор. Култивирането се провежда при температура 25°С, аерация 0.5:1=обем:обем среда, налягане 0.5 -0.8 bar за 250 - 300 h. По време на ферментационния процес се контролира pH, нивото на глюкозата, маслото, разтвореният кислород и натрупването на биомаса. Образуването на плеуромутилина започва след 40-тия h и се следи по HPLC метод до края на ферментацията.The pH of the native solution was adjusted with sodium hydroxide to 6.6-6.8, the medium was sterilized under standard conditions, and then the separately sterilized glucose solution was added. The cultivation was carried out at 25 ° C, aeration 0.5: 1 = volume: volume of medium, pressure 0.5 -0.8 bar for 250 - 300 h. The pH, glucose level, oil, dissolved oxygen and biomass accumulation are controlled during the fermentation process. The formation of pleuromutilin begins after 40 hours and is monitored by HPLC until the end of fermentation.
Натрупаният в края на процеса продукт е в количество 10-14 g/1.The product accumulated at the end of the process is in the amount of 10-14 g / l.
HPLC методът, чрез който се анализира количественото съдържание на плеуромутилина се провежда по следния начин:The HPLC method by which the quantitative content of pleuromutilin is analyzed is carried out as follows:
Стандартен разтвор на плеуромутилин се изготвя при разтваряне на 0.060 g стандартна субстанция в 100 ml подвижна фаза се анализира. Резултати от анализа на този разтвор по метод HPLC са показани на фиг. 1.A standard solution of pleuromutilin was prepared by dissolving 0.060 g of standard substance in 100 ml of mobile phase and analyzed. The results of the analysis of this solution by the HPLC method are shown in FIG. 1.
Проба от културалната течност, получена в резултат на ферментационния процес, се изготвя, като 10 g културална течност се прехвърля в мерителна колба, екстрахира се с 40 ml метанол в продължение на 30 min при температура 35°C. След като пробата се охлади до стайна температура, тя се долива до обем 50 ml с метанол и се филтрува. Полученият разтвор се хроматографира на колона Lichrosorb RP-8 (5 pm) 4 х 250 mm при подвижна фаза, съдържаща 0.02 М монокалиев фосфат, ацетонитрил и метанол, pH на разтвора - 7.5, скорост на потока 0,6 ml/min, детекция 205 nm и обем на въвеждане 20 μΐ. Резултати от анализа на този проба по метод HPLC са показани на фиг. 1.A sample of the culture fluid obtained as a result of the fermentation process was prepared by transferring 10 g of the culture fluid into a volumetric flask, extracting with 40 ml of methanol for 30 min at 35 ° C. After the sample was cooled to room temperature, make up to 50 ml with methanol and filter. The resulting solution was chromatographed on a Lichrosorb RP-8 column (5 pm) 4 x 250 mm in mobile phase containing 0.02 M mono-potassium phosphate, acetonitrile and methanol, solution pH 7.5, flow rate 0.6 ml / min, detection 205 nm and an injection volume of 20 μΐ. The results of the analysis of this sample by the HPLC method are shown in FIG. 1.
Продуктът е доказан качествено по TLC метод, спрямо референтна субстанция при използуване на сорбент хроматографски плакиThe product is qualitatively proven by the TLC method against the reference substance using sorbent chromatographic plates
Merck 5553, при подвижна фаза : дихлорметан : етилацетат : циклохексан = 70:20:10, насищане на камерата около 1 h, разстояние на придвижване 15 cm.Merck 5553, in mobile phase: dichloromethane: ethyl acetate: cyclohexane = 70:20:10, saturation of the chamber about 1 h, distance of travel 15 cm.
Разтвори за нанасяне:Application solutions:
Разтвор 1: 10 g културална течност се екстрахира с 20 ml метанол в продължение на 30 min. На стартова точка “а” се нанася от 1 до 5μ1 в зависимост от очакваната активност.A solution of 1: 10 g of culture fluid was extracted with 20 ml of methanol for 30 min. Starting point “a” is applied from 1 to 5μ1 depending on the expected activity.
Разтвор 2: 0.010 g сравнителна субстанция плеуромутилин се разтварят в 10 ml метанол. На стартова точка “б” се нанасят 5 μΐ от разтвора.Solution 2: 0.010 g of the comparative substance pleuromutilin is dissolved in 10 ml of methanol. At start point "b", 5 μΐ of the solution is applied.
Проявяване: след пълно отстраняване на разтворителите (2 min при 100°С) плаката се напръсква с етанолен разтвор на 5% сярна киселина и 1% ферихлорид. Нагрява се 5 min при 150°С.Manifestation: After complete removal of the solvents (2 min at 100 ° C), the plate is sprayed with ethanol solution of 5% sulfuric acid and 1% ferric chloride. Heat for 5 min at 150 ° C.
Оценка: наблюдаваното основно петно над стартова точка “а” трябва да бъде по Rf стойност, големина и интензитет еднакво с това над стартова точка “б”. Rf стойността е 0.5.Assessment: The observed spot above the starting point "a" must be of Rf value, magnitude and intensity equal to that above the starting point "b". The Rf value is 0.5.
За провеждане на биоавтографското изследване (фиг. 3) свежа култура от теста, израснал върху епруветка скосен агар от среда А се смивас 10 ml физиологичен разтвор. Разлива се агарова плака от 150 ml агарова среда A (Eur. Pharm. 2001, 2.7.2., Microbiological assay of antibiotics), заразена при 50°C c 3 ml от суспензията на теста. Развитата хроматограма се налага върху агара за 30 min, след което се отстранява и се култивира за 16 до 18 h при 37°С. След появата на зоните на инхибиция на ръста, съобразно активността на накапаните проби, агаровата плака се оцветява с 30 ml 0.3 % воден разтвор на метиленово синьо за 3 min, след което последователно се обработва с 30 ml 96% етанол, съдържащ 1 ml 6 N солна киселина за 3 min и 30 ml 96% ета нол, съдържащ 1 ml 10 N натриева основа, отново за 3 min. Копия от агаровата плака се правят върху филтърна хартия. Активността на накапаните проби се изчислява спрямо най-близкия по площ до пробата стандарт по формулата:To conduct the bioautograph study (Fig. 3), fresh test culture grown on a medium slanted agar tube from medium A was washed with 10 ml of saline. A 150 ml agar plate was poured into agar medium A (Eur. Pharm. 2001, 2.7.2., Microbiological assay of antibiotics) contaminated at 50 ° C with 3 ml of the test suspension. The developed chromatogram was applied to the agar for 30 min, then removed and cultured for 16 to 18 h at 37 ° C. After the emergence of growth inhibition zones according to the activity of the collected samples, the agar plate was stained with 30 ml of a 0.3% aqueous solution of methylene blue for 3 min and then sequentially treated with 30 ml of 96% ethanol containing 1 ml of 6 N hydrochloric acid for 3 min and 30 ml of 96% ethanol containing 1 ml of 10 N sodium hydroxide again for 3 min. Copies of the agar plate were made on filter paper. The activity of the collected samples shall be calculated from the standard nearest to the sample by the formula:
, nxd. xd, (A,/ Y, / Α· =— където As е активността на пробата в микрограми на грам културална течност; dj и d2 са диаметрите на елипсата, Ast е активността на стандарта, Sst е площта на съответния стандарт, изчислен по формулата, nxd. xd, (A, / Y, / Α · = - where As is the activity of the sample in micrograms per gram of culture fluid; dj and d 2 are the diameters of the ellipse, Ast is the activity of the standard, Sst is the area of the corresponding standard calculated by the formula
KXd,Xda 4KXd, Xd a 4
Методът е полуколичествен и дава до 10% грешка, която зависи преди всичко от точното сравнение на пробата със съответния найблизък стандарт.The method is semi-quantitative and gives up to 10% error, which depends primarily on the exact comparison of the sample with the corresponding nearest standard.
Патентни претенцииClaims
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
BG105424A BG64840B1 (en) | 2001-04-09 | 2001-04-09 | Method for pleuromutiline preparation |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
BG105424A BG64840B1 (en) | 2001-04-09 | 2001-04-09 | Method for pleuromutiline preparation |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
BG105424A BG105424A (en) | 2002-12-29 |
BG64840B1 true BG64840B1 (en) | 2006-06-30 |
Family
ID=3928359
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
BG105424A BG64840B1 (en) | 2001-04-09 | 2001-04-09 | Method for pleuromutiline preparation |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
BG (1) | BG64840B1 (en) |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB1111010A (en) * | 1964-04-17 | 1968-04-24 | Biochemie Gmbh | Process for the production of the antibiotic pleuromutilin |
US3716579A (en) * | 1969-07-21 | 1973-02-13 | Biochemie Gmbh | Ester derivatives of pleuromutilin |
US4247542A (en) * | 1978-06-22 | 1981-01-27 | Eli Lilly And Company | A-40104 Antibiotics and process for production thereof |
BG63800B1 (en) * | 2000-12-21 | 2003-01-31 | "Българска Фармацевтична Компания" Ад | Method for the preparation of pleuromutiline and its sulphoesters |
-
2001
- 2001-04-09 BG BG105424A patent/BG64840B1/en unknown
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB1111010A (en) * | 1964-04-17 | 1968-04-24 | Biochemie Gmbh | Process for the production of the antibiotic pleuromutilin |
US3716579A (en) * | 1969-07-21 | 1973-02-13 | Biochemie Gmbh | Ester derivatives of pleuromutilin |
US4247542A (en) * | 1978-06-22 | 1981-01-27 | Eli Lilly And Company | A-40104 Antibiotics and process for production thereof |
BG63800B1 (en) * | 2000-12-21 | 2003-01-31 | "Българска Фармацевтична Компания" Ад | Method for the preparation of pleuromutiline and its sulphoesters |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
BG105424A (en) | 2002-12-29 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JPS5898091A (en) | Triene antibiotic and preparation thereof | |
Boeck et al. | NEW AZASTEROIDAL ANTIFUNGAL ANTIBIOTICS FROM GEOTRICHU FLAVO-BRUNNEUM I. DISCOVERY AND FERMENTATION STUDIES | |
Yoshida et al. | Microbial production of pyrogallol through decarboxylation of gallic acid | |
CA2088667A1 (en) | Process for producing astaxanthin by fermentation | |
EP0842290B1 (en) | Process for the preparation of lovastatin | |
US3060104A (en) | Process for obtaining new alkaloid derivatives of lysergic acids | |
BG64840B1 (en) | Method for pleuromutiline preparation | |
DE2621690A1 (en) | NEW ANTIBIOTIC AND METHOD OF ITS MANUFACTURING | |
EP2032712B1 (en) | Regulation of acid metabolite production | |
US3975235A (en) | Process for the production of cephamycin type antibiotic substances | |
Bailey et al. | Use of mutagenic agents in improvement of α‐amylase production by bacillus subtilis | |
DD159645A5 (en) | PROCESS FOR THE PRODUCTION OF MAKROLIDES | |
US3598819A (en) | Quinoxaline derivatives and process for producing the same | |
Bacus et al. | Nitrite burn in fermented sausage | |
SI9600120A (en) | New and improved fermentative procedure for the production of clavulanic acid and its salts | |
US5397570A (en) | Antibiotics AB-023 and process for preparing them | |
EP0259778B1 (en) | Antibiotically effective gentisine acid derivative | |
SI9800144A (en) | New biotechnological process for producing of 3-hidroxy-ml-236b derivatives known as m-4 and m-4' | |
RU2679051C1 (en) | STREPTOMYCES HYGROSCOPICUS VKM Ac-2737D STRAIN - RAPAMYCIN ANTIBIOTIC PRODUCER AND METHOD FOR INCREASING PRODUCTIVITY THEREOF | |
BG108752A (en) | Fermentation method for compactine production | |
IE51169B1 (en) | Process for preparing polyether antibiotic | |
SE437917B (en) | ANIMAL FEEDS INCLUDING A NEW CHEMICAL SOCIETY THAT PROMOTES GROWTH AND IMPROVES ANIMAL FEEDING APPROPRIATE | |
Ali et al. | Optimization of Cephalosporin C Production by Cephalosporium acremonium C-10 using Stationary Culture | |
Šturdiková et al. | Production of 3‐methylthioacrylic acid by Streptomyces kasugaensis | |
JPH0515385A (en) | Novel antibiotic allithamycin and method for its production |