Cette invention concerne de nouveaux composés antifongiques semi-synthétiques que l'on prépare par acylation
de noyaux peptidiques cycliques obtenus par désacylation
enzymatique de l'antibiotique peptidique cyclique
correspondant.
L'antibiotique peptidique cyclique est un composé
<EMI ID=1.1>
<EMI ID=2.1>
<EMI ID=3.1>
Dans toute cette demande, les formules des peptides cycliques,
comme la formule I, supposent que les amino-acides représentés
sont en configuration L.
Les facteurs A, B, D et Il de A-30912 sont des
<EMI ID=4.1>
<EMI ID=5.1>
L'antibiotique S 31794/F-1 est un peptide cyclique
<EMI ID=6.1>
<EMI ID=7.1>
Chaque facteur est isolé du complexe A30912 qui contient les autres facteurs arbitrairement appelés facteurs B, C, D, E, F et G. Le complexe A-30912 et les facteurs A à
<EMI ID=8.1>
l'antibiotique A-30912 est identique à l'antibiotique A-22802 qui est décrit dans le brevet des E.U.A. N[deg.] 4.024.246. Il a. également été trouvé que le facteur A est identique à l'échinocandine B antibiotique [voir F. Benz et al., Helv.
<EMI ID=9.1>
à l'antibiotique SL 7810/F [voir C. Keller-Juslen et al. Tetrahedron Letters, 4147 (1976) et brevet belge N[deg.] 834.289].
Le facteur A de l'antibiotique A-30912 est préparé par fermentation aérobie en immersion en utilisant l'un de plusieurs organismes différents, à savoir : (a) Aspergillus rugulosus NRRL 8113 ; (b) Aspergillus nidulans NRRL 8112 ; <EMI ID=10.1>
3860 ; (d) Aspergillus rugulosus NRRL 8039 ; ou (e) Aspergillus nidulans var. roseus NRRL 11440.
On a également trouvé que le facteur B est identique à l'échinocandine C antibiotique [voir R. Traber et al., Helv. Chim. Acta, 62, 1252 (1979)] et à l'antibiotique SL 7810/F-II [voir le brevet belge N[deg.] 834.289].
On prépare le facteur B de l'antibiotique A-30912 par fermentation aérobie en immersion en utilisant l'un de plusieurs organismes différents, à savoir : (a) Aspergillus
<EMI ID=11.1>
(d) Aspergillus nidulans var. roseus NRRL 1440.
On a également trouvé que le facteur D est identique à l'échinocandine D antibiotique [voir R. Traber et al.,
<EMI ID=12.1>
7810/F-III Ivoir le brevet belge N[deg.] 834.2891.
On prépare le facteur D de l'antibiotique A-30912 par fermentation aérobie en immersion en utilisant l'un de plusieurs organismes différents, à savoir : (a) Aspergilius
<EMI ID=13.1>
NRRL 8039 (voir le brevet belge N[deg.] 834.289) ; ou (d) Aspergillus nidulans var. roseus NRRL 11440.
Le facteur H est un facteur de l'antibiotique A-30912 découvert plus tard, et il est décrit dans la demande de
<EMI ID=14.1>
ici par voie de référence.
<EMI ID=15.1>
fermentation en utilisant l'un de plusieurs organismes différents, à savoir : (a) Aspergillus rugulosus NRRL 8113 ; ou (b) Aspergillus nidulans var. roseus NRRL 11440.
Une sous-culture de A. nidulans var. roseus a été déposée et fait partie de la collection de cultures permanentes du Northern Regional Research Laboratory,
U.S. Departmcnt of Agriculture, Agricultural Research Service, Peoria, Illinois 61604, où elle est disponible au public
<EMI ID=16.1>
Quand on utilise une souche de A. nidulans var. roseus NRRL 11440 pour produire l'un quelconque des facteurs A-30912, on obtient un ensemble complexe de facteurs qui
pour des raisons de commodité est appelé complexe antibiotique A-42355. Le facteur A de A-30912 est le facteur principal du complexe antibiotique A-42355, tandis que les facteurs B, D et H sont des facteurs mineurs. Les préparations 2 à 7 suivantes illustrent la préparation du complexe A-42355 et l'isolement et la purification des différents facteurs de A-30912.
<EMI ID=17.1>
chaîne latérale linoléoyle (R) est fixée au noyau peptidique cyclique sur le groupement a-amino du reste ornithine. On a trouvé de façon surprenante que la chaîne latérale linoléoyle peut être coupée du noyau par une enzyme sans modifier l'intégrité chimique du noyau. L'enzyme utilisée pour effectuer la réaction de désacylation est produite par un micro-organisme de la famille Actinoplanaceae, de préférence le micro-organisme
<EMI ID=18.1>
<EMI ID=19.1>
<EMI ID=20.1>
cyclique ainsi obtenu est séparé du bouillon de fermentation par des procédés connus dans le domaine. Au contraire des facteurs A, B, D et H de l'antibiotique A-30912, le noyau cyclique (ne possédant pas la chaîne latérale linoléoyle)
est essentiellement exempt d'activité antifongique.
L'antibiotique S31794/F-1, qui est décrit dans la demande de brevet allemand publiée après examen N[deg.] 2.628.965 et dans le brevet des E.U.A. N[deg.] 4.173.629, est produit par
<EMI ID=21.1>
NRRL 8095. S31794/F-1 a les caractéristiques suivantes :
p.f. 178-180[deg.]C (avec décomposition) (amorphe) ou 181-183[deg.]C
(avec décomposition) (cristallisé) ; La]20 _ 24[deg.] (c 0,5,
<EMI ID=22.1>
étalon interne) ayant les caractéristiques suivantes (à l'état cristallisé) :
<EMI ID=23.1>
<EMI ID=24.1>
le diméthylsulfoxyde et faiblement soluble dans l'eau, le chloroforme, l'acétate d'éthyle, l'éther diéthylique, le .benzène et l'hexane ; et a une activité antifongique, en particulier contre Candida albicans.
On prépare l'antibiotique S31794/F-1 par culture aérobie en immersion de Acrophialophora limonispora NRRL
8095 comme décrit dans les préparations 8 et 9. Ce microorganisme fait partie de la collection de cultures permanentes du Northern Regional Research Center, U.S. Department of Agriculture, Agricultural Research Culture Collection, North Central Region, Peoria, Illinois 61604, où elle est disponible au public sous le numéro d'accès NRRL indiqué.
L'antibiotique S31794/F-1 a une activité antifongique, en particulier contre les souches Candida comme Candida albicans. Ainsi, la production et l'isolement de l'antibiotique peuvent être contrôlés par bioautographe en utilisant une espèce Candida comme Candida albicans.
Dans la molécule de l'antibiotique S31794/F-1
<EMI ID=25.1>
de façon surprenante que la chaîne latérale myristoyle peut être coupée du noyau par une enzyme sans nuire à l'intégrité chimique du noyau. L'enzyme utilisée pour effectuer la réaction de désacylation est produite par un micro-organisme de la famille Actinoplanaceae, de préférence le microorganisme Actinoplanes utahensis NRRL 12052 ou un de ses variants. Pour effectuer la désacylation, on ajoute l'antibiotique S31794/F-1 à une culture du micro-organisme ot on laisse la culture incuber avec le substrat jusqu'à ce
<EMI ID=26.1> <EMI ID=27.1>
d'activité antifongique.
Les noyaux peptidiques cycliques fournis par les réactions de désacylations enzymatiques susmentionnées des antibiotiques de formule 1 sont représentés par la formule générale II.
<EMI ID=28.1>
<EMI ID=29.1>
des groupements hydroxy et R est H est le noyau du facteur A de A-30912 et, pour des raisons de commodité, sera appelé ici "noyau de A-30912A". Le noyau de A-30912A a une formule
<EMI ID=30.1>
<EMI ID=31.1>
H et R3 et R 4 sont tous deux OH est le noyau du facteur B de A-309L2 et, pour des raisons de commodité, sera appelé
<EMI ID=32.1>
]
<EMI ID=33.1>
tous des atomes d'hydrogène est le noyau du facteur D de A-30912 et sera appelé ici pour des raisons de commodité "noyau de A -30912D". Le noyau de A-30912D a une formule
<EMI ID=34.1>
Le composé de formule II dans laquelle R , R et
<EMI ID=35.1>
<EMI ID=36.1>
un poids moléculaire de 840,87.
L'enlèvement de la chaine latérale fournit un groupement u-amino primaire libre dans le reste ornithine du peptide cyclique. Comme le verra l'homme de l'art, les noyaux peuvent être obtenus sous la forme de l'amine libre ou sous la forme d' un sel d'addition d'acide . Bien que l'on puisse utiliser un quelconque sel d'addition d'acide approprié, on préfère ceux qui sont non toxiques et acceptables sur le plan pharmaceutique.
Le procédé de préparation de chaque noyau à partir de l'antibiotique approprié à l'aide d'une fermentation utilisant Actinoplanes utahensis NRRL 12052 est décrit dans la demande de brevet déposée le môme jour que la présente demande de brevet sous le N[deg.]
Des cultures d'espèces représentatives d'Actinopnanaceae sont mises à la disposition du public au Northern Regional Research Laboratory sous les numéros d'accès suivants :
<EMI ID=37.1>
L'efficacité d'une quelconque souche donnée de micro-organismes appartenant à la famille des Actinoplanaceae pour la mise en oeuvre de la désacylation de cette invention est déterminée par le mode opératoire suivant. On inocule avec le micro-organisme un milieu de culture approprié. On
<EMI ID=38.1>
jours sur un agitateur rotatif. Puis on ajoute à la culture l'un des antibiotiques utilisés comme substrat. On maintient le pH du milieu de fermentation à environ 6,5. On contrôle
la culture pour son activité en utilisant une analyse par Candida albicans. La perte de l'activité antibiotique est une indication que le micro-organisme a produit l'enzyme nécessaire pour la désacylation. Ceci doit cependant être vérifié en utilisant l'un des procédés suivants : 1) analyse par chromatographie liquide sous pression élevée pour déterminer la présence du noyau intact ; ou 2) réacylation avec une chaîne latérale appropriée (par exemple linoléoyle, stéaroyle, palmitoyle ou myristoyle) pour rétablir l'activité.
On sait que d'autres substances antibiotiques possèdent le même noyau que celui de facteur A de l'antibiotique A-30912. Ces antibiotiques diffèrent du facteur A de l'antibiotique A-30912 en ce que des groupements acyle différents sont présents à la place du groupement linoléoyle
(R) de la formule I. De tels antibiotiques sont : (a) le
<EMI ID=39.1>
2459 (1974), composé qui est décrit par la formule 1 quand R est un groupement stéaroyle ; et (b) l'aculaécine A, qui est un composant du complexe d'aculaécine (préparée par fermentation en utilisant Aspergillus aculcatus NRRL 8075)
et est décrit dans le brevet des E.U.A. N[deg.] 3.978.210. Comme décrit dans le brevet belge N[deg.] 859.067, dans l'aculaécine A, la chaîne latérale palmitoyle est présente à la place du groupement linoléoyle. Le facteur A de A-30912 tétrahydrogéné peut être préparé à partir du facteur A de A-30912 par
<EMI ID=40.1>
<EMI ID=41.1> <EMI ID=42.1>
utilisés comme substrats pour la désacylation enzymatique en utilisant les modes opératoires décrits ici.
<EMI ID=43.1>
antibiotique possède le même noyau que le facteur B de l'antibiotique A-30912. Cette substance, qui diffère du facteur B de l'antibiotique A-30912 en ce qu'un groupement aayle différent est présent à la place du groupement linoléoyle R de la formule I, est le facteur B de A-30912 tétrahydrogéné (tétrahydro-SL 7810/F-II ; tétrahydro
<EMI ID=44.1>
groupement stéaroyle. Le facteur B de A-30912 tétrahydrogéné
<EMI ID=45.1>
hydrogénation catalytique en utilisant Pt02 dans l'éthanol sous pression positive. Le facteur B de A-30912 tétrahydrogéné peut être utilisé comme substrat à la place du facteur B de l'antibiotique A-30912 pour la désacylation enzymatique en utilisant les modes opératoires décrits ici.
On sait en outre qu'une autre substance antibiotique
<EMI ID=46.1>
substance, qui diffère du facteur D de l'antibiotique A-30912 en ce qu'un groupement acyle différent est présent à la place du groupement linoléoyle (R) de la formule I, est
<EMI ID=47.1>
de A-30912 tétrahydrogéné est décrit par la formule I quand R est un groupement stéaroyle. Le facteur D de A-30912 tétrahydrogéné peut être préparé à partir du facteur D de l'antibiotique A-30912 par hydrogénation catalytique en
<EMI ID=48.1>
facteur D de A-30912 tétrahydrogéné peut être utilisé comme substrat à la place du facteur D de A-30912 antibiotique pour la désacylation enzymatique en utilisant les modes opératoires décrits ici.
Dans le facteur Il de l'antibiotique A-30912, le groupement 5-hydroxy présent dans le reste dihydroxy-
<EMI ID=49.1>
le facteur A de l'antibiotique A-30912, le groupement 5hydroxy n'est pas substitué. On verra donc que l'on peut
<EMI ID=50.1>
facteur A selon des procédés classiques pour préparer un éther aliphatique à partir d'un alcool. On verra également que le facteur A peut être alkylé avec d'autres groupements alkyle inférieur pour former des homologues à groupements alkyloxy de la molécule du facteur H. Les homologues à groupements alkyloxy du facteur H que l'on peut préparer par synthèse à partir du facteur A, sont connus sous le nom d'homologues du type facteur H de A-30912. Les composés de
<EMI ID=51.1>
un groupement alkyloxy en C2-C6 sont ici appelés comme les
<EMI ID=52.1>
On verra également que la chaîne latérale linoléoyle du facteur Il de A-30912 ou des homologues de type facteur H de A-30912 peut être hydrogénée selon des techniques classiques pour former le facteur H de A-30912 tétrahydrogéné ou le dérivé tétrahydrogéné correspondant des homologues à
<EMI ID=53.1>
d'abord le facteur A de l'antibiotique A-30912 pour obtenir le facteur A de A-30912 tétrahydrogéné puis en formant le dérivé alkyloxy désiré.
<EMI ID=54.1>
A-30912, le facteur H de A-30912 tétrahydrogéné, un
<EMI ID=55.1>
groupement alkyloxy en C2-C6 peuvent être utilisés comme substrat pour la désacylation enzymatique en utilisant les modes opératoires décrits ici.
L'invention qui fait l'objet de la présente demande de brevet comprend de nouveaux composés obtenus par acylation d'un noyau de formule II. Les composés de la
<EMI ID=56.1>
la formule générale III
<EMI ID=57.1>
dans laquelle :
<EMI ID=58.1>
<EMI ID=59.1>
pas être un groupement n-tridécyle, n-tétradécyle, n-penta-
<EMI ID=60.1>
<EMI ID=61.1>
heptadécyle et, quand R est un groupement alcényle, R
<EMI ID=62.1>
<EMI ID=63.1>
pourvu que, quand R est un groupement alkyle, R ne puisse <EMI ID=64.1>
quand R <1> et R sont tous deux OH, R <2> est H et R est ur. groupement alkyloxy.en C -Cg (composé de type A-30912H), R est un groupement alkyle en C6 -C24 ou alcényle
<EMI ID=65.1>
que, quand R est un groupement alkyle et R un groupement méthoxy, R ne puisse pas être un groupement n-heptadécyle ;
<EMI ID=66.1>
(S31794/F-1), R 5 est un groupement alkyle en C6-C24 ou alcényle en C6-C24, pourvu que, quand R est un groupement
<EMI ID=67.1>
Par l'expression "alkyle", on désigne un radical hydrocarboné à chaîne droite ou ramifiée, saturé et monovalent. Par l'expression "alcényle", on désigne un radical hydrocarboné à chaîne droite ou ramifiée,insaturé et monovalent, ne contenant pas plus de trois doubles liaisons. Les doubles liaisons de la chaîne hydrocarbonée insaturée
<EMI ID=68.1>
on désigne un hydrocarbure (à chaîne droite ou ramifiée) contenant de 6 à 24 atomes de carbone.
Dans des aspects secondaires, en tenant compte des restrictions précédentes, l'invention envisage les composés préférés suivants de formule III : <EMI ID=69.1> <EMI ID=70.1>
entier de 5 à 23.
<EMI ID=71.1> alkyle de formule CH3(CH2)n-' où n est un entier de 10 à 20.
(c) Les composés où R est un groupement alkyle <EMI ID=72.1>
chacun indépendamment un entier de 0 à 21 pourvu que la somme n + m ne soit pas
<EMI ID=73.1> <EMI ID=74.1> alcényle contenant une double liaison cis ou trans.
(e) Les composés dans lesquels R est un groupement alcényle cis ou trans de formule
<EMI ID=75.1>
dans laquelle n et m sont indépendamment un entier de 0 à 21, pourvu que la somme n + m ne soit pas inférieure à 3 et pas supérieure à 21.
(f) Les composés dans lesquels R est un groupement alcényle contenant deux doubles liaisons cis ou trans.
(g) Les composés où R5 est un groupement alcényle
cis ou trans de formule
<EMI ID=76.1>
dans laquelle n et p sont indépendamment un entier de 0 à 18 et m est un entier de 1 à 19, pourvu que la somme m + n + p ne soit pas inférieure à 1 et pas supérieure à 19 et que RS ne puisse pas être un groupement linoléoyle.
(h) Les composés dans lesquels R est :
<EMI ID=77.1> <EMI ID=78.1>
t-butoxy, n-pentyloxy, n-hexyloxy, etc.
En particulier, l'invention fournit un composé peptidique cyclique de formule :
<EMI ID=79.1>
dans laquelle R est H ou OH et
<EMI ID=80.1>
ou tous deux OH,
et
<EMI ID=81.1>
groupement alkyloxy en C -Cg et R 4 est OH, ou R <2>
<EMI ID=82.1>
et
<EMI ID=83.1>
ne puisse pas être un groupement n-tridécyle,, <EMI ID=84.1>
123
deux OH, ou quand R , R , R et R sont tous H, ou
<EMI ID=85.1>
<EMI ID=86.1>
alkyle, R ne puisse pas être un groupement n-
<EMI ID=87.1>
<EMI ID=88.1>
<EMI ID=89.1>
-CO-NH2 et R un groupement alkyle, R ne puisse pas être un groupement n-tridécyle.
Les composés de formule III inhibent la croissance de champignons pathogènes comme le . mettent en évidence des modes opératoires d'essais biologiques classiques. Les composés sont donc utiles pour lutter contre la croissance des champignons sur des surfaces environnementales (en tant qu'antiseptique) ou dans le traitement d'infections causées par des champignons. L'activité antifongique des composés a été démontrée vis-à-vis de Candida albicans in vitro dans des essais de diffusion de disque sur plaque de gélose et des essais de dilution sur gélose, ou dans des essais in vivo sur des souris infectées par C. albicans. Les composés sont ainsi particulièrement utilisables pour le traitement d'infections provoquées par des souches de C. albicans
(candidose).
Les composés de formule III présentent également une activité in vitro dans les essais de diffusion sur disque sur plaque de gélose vis-à-vis de Tricophyton mentagrophytes, un organisme dermatophyte. On a également trouvé une activité dans les essais de diffusion sur disque sur plaque de gélose in vitro vis-à-vis de Saccharomyces pastorianus et Neurospora crassa. Certains composés (comme indiqué dans l'Exemple 27, Tableau V) donnent des taux dans le sang significatifs après administration par voie orale chez les souris.
Quand on administre à un chien par voie intraveineuse 100 mg/kg par jour pendant cinq jours du composé de
<EMI ID=90.1>
H et R5 est un groupement n-dodécyle (c'est-à-dire le dérivé n-tridécanoyle du noyau de A-30912A) , le chien ne présente aucun signe extérieur de toxicité, bien que l'on observe des ni .aaux accrus de transaminase glutamo-pyruvique sérique et une certaine hémolyse.
On prépare les composés de formule III en acylant le noyau approprié sur le groupement a-amino de l'ornithine par la chaine latérale alcanoyle ou alcénoyle appropriée en utilisant des procédés connus dans le domaine pour former une liaison amide. L'acylation est effectuée en général en faisant réagir le noyau avec un dérivé activé de l'acide alcanoique
<EMI ID=91.1>
acyle désirée (R 5 CO-). Par l'expression "dérivé activé", on désigne un dérivé qui rend la fonction carboxy de l'agent d'acylation réactive à la copulation avec le groupement aminé
primaire pour former la liaison amide qui lie la chaîne latérale acyle au noyau. Les dérivés activés appropriés, leurs procédés de préparation et leurs procédés d'utilisation comme agents d'acylation d'une amine primaire sont connus de l'homme de l'art. Les dérivés activés préférés sont : (a) un halogénure d'acide (par exemple un chlorure d'acide) ; (b) un anhydride d'acide (par exemple un anhydride d'acide alcoxyformique ou un anhydride d'acide aryloxyformique) ou (c) un ester activé (un ester 2,4,5-trichlorophénylique). D'autres
<EMI ID=92.1>
réaction de l'acide carboxylique avec un carbonyl-diimide
(par exemple le N,N-dicyclohexylcarbodiimide ou le N,N'diisopropylcarbodiimide) pour former un intermédiaire réactif qui en raison de son instabilité n'est pas isolé, la réaction avec l'amine primaire étant effectuée in situ.
Un procédé préféré de préparation des composés de formule III est le procédé par l'ester actif. L'utilisation de l'ester 2,4,5-trichlorophénylique de l'acide alcanoique ou alcénolque désiré, en tant qu'agent d'acylation, est nettement préférée. Dans ce procédé, on fait réagir un excès
<EMI ID=93.1>
dans un solvant organique non réactif comme le diméthylformamide (DMF). La durée de la réaction n'est pas déterminante, bien que l'on préfère un temps d'environ 6 à environ
20 heures. A la fin de la réaction, on chasse le solvant et
on purifie le résidu comme par chromatographie liquide sous pression élevée (CLPE) en phase inversée en utilisant LP-l/C.g comme phase fixe et un mélange d'eau, de méthanol et d'acétonitrile comme système solvant.
Un procédé d'acylation préféré est un mode opératoire Schotten-Baumann modifié dans lequel on traite le noyau par le chlorure d'acide de l'acide alcanolque ou alcénolque désiré
à un pH alcalin. Dans ce procédé, on ajoute lentement un
excès du chlorure d'acide dans un solvant organique non
réactif (comme l'acétone) à une solution du noyau dans un
<EMI ID=94.1>
produit de réaction brut du milieu réactionnel par extraction dans un solvant organique non miscible (chloroforme et
acétate d'éthyle). La purification finale se fait par CLPE
à phase inversée, comme décrit précédemment.
Un procédé de préparation des dérivés de type A-30912H de formule III est le suivant : (a) désacylation du facteur A de l'antibiotique A-30912 par voie enzymatique en utilisant Actinoplanes utahensis NRRL 12052 comme décrit dans la demande de brevet N[deg.] déposée le même jour que la présente demande de brevet dont la description est incorporée ici par voie de référence, (b) acylation du noyau de A-30912A ainsi produit avec le groupement acyle constituant la chaîne latérale appropriée en utilisant le procédé décrit ci-avant pour l'acylation du noyau de A-30912H, et (c) alkylation du dérivé acyle approprié du noyau de A-30912A pour former le dérivé alkyloxy désiré. L'alkylation (Etape C) peut être effectuée en utilisant des procédés qui sont classiques pour la préparation d'un éther aliphatique à partir d'un alcool.
Par exemple, le dérivé acylé approprié du noyau de A-30912A peut être méthylé par traitement d'une solution du dérivé dans un solvant organique <EMI ID=95.1>
en présence d'un acide (par exemple 3 % de HC1 dans du méthanol). Le produit peut être isolé par des procédés classiques et purifié par CLPE à phase inversée.
<EMI ID=96.1>
comme substances de départ pour la réaction d'acylation ainsi que leurs dérivés activés (en particulier les chlorures d'acide et les esters 2,4,5-trichlorophényliques) sont des composés connus ou peuvent être préparés à partir de composés connus par des procédés connus. Les esters 2,4,5trichlorophényliques sont commodément préparés en traitant le
<EMI ID=97.1>
trichlorophénol en présence de pyridine ou en traitant l'acide alcanolque ou alcénolque libre par le 2,4,5-trichlorophénol
<EMI ID=98.1>
agent de copulation. Le dérivé ester 2,4,5-trichlorophénylique peut être purifié par chromatographie sur colonne de gel de silice dans le toluène.
Quand on les utilise de façon systémique, la dose des composés de formule III variera selon le composé particulier que l'on utilise, la sévérité et la nature de l'infection et l'état physique du sujet que l'on traite. La thérapie doit être commencée à de faibles doses, la dose étant accrue jusqu'à ce que l'on obtienne l'effet antifongique désiré. Les composés peuvent être administrés par voie intraveineuse ou intramusculaire par injection sous forme d'une solution ou suspension aqueuse stérile à laquelle on peut ajouter, si on le désire, divers agents classiques pharmaceutiquement acceptables comme des agents de conservation, des tampons, des agents de solubilisation ou de mise en suspension. D'autres additifs, comme une solution saline ou le glucose, peuvent être ajoutés pour rendre les solutions isotoniques.
Les proportions et la nature de ces additifs seront évidentes pour l'homme de l'art.
Certains composés de formule III donnent des taux dans le sang significatifs après administration par voie orale (voir l'Exemple 27) et peuvent être administrés de façon systémique par voie orale. Pour l'utilisation par voie orale, de tels composés peuvent être administrés en combinaison avec des supports ou excipients pharmaceutiquement
<EMI ID=99.1>
La nature et la proportion de ces supports ou excipients seront connues de l'homme de l'art.
Quand on les utilise pour traiter des infections vaginales dues à Candida, les composés de formule III peuvent être administrés en combinaison avec des excipients classiques acceptables sur le plan pharmaceutique
convenant pour l'utilisation intravaginale. Des compositions conçues pour l'administration intravaginale sont connues de l'homme de l'art.
<EMI ID=100.1>
présente in vent ion sont illustrées dans les exemples suivais :
Préparation 1
Fermentation d'Actinoplanes utahensis NRRL 12052
On prépare une culture mère d'Actinoplanes
utahensis NRRL 12052 et on l'entretient sur une culture inclinée de gélose. Le milieu utilisé pour préparer la culture inclinée est choisi parmi l'un des suivants :
Milieu A
<EMI ID=101.1>
le pH avant passage à l'autoclave est environ 5,9 ; on ajuste le pli à 7,2 par addition de NaOH ; après passage à l'autoclave, le pH est d'environ 6,7.
<EMI ID=102.1>
<EMI ID=103.1>
Milieu B
<EMI ID=104.1>
<EMI ID=105.1>
<EMI ID=106.1>
Jersey, U.S.A.
On inocule la culture inclinée avec Actinoplanes utahensis NRRL 12052, et on fait incuber la culture inoculée à.30[deg.]C pendant environ 8 à 10 jours. On utilise à peu près la moitié de la culture pour inoculer 50 ml d'un milieu végétatif ayant la composition suivante :
<EMI ID=107.1>
ajuster à pH 7,4 avec NaOH ; après passage à l'autoclave. le pH est d'environ 6,8.
<EMI ID=108.1>
New York, U.S.A.
On fait incuber le milieu végétatif inoculé dans
<EMI ID=109.1>
pendant environ 72 heures sur un agitateur tournant sur un arc de 5 cm de diamètre à 250 tours par minute.
On peut utiliser ce milieu végétatif incubé directement pour inoculer un milieu végétatif de second stade.
<EMI ID=110.1>
ultérieur en maintenant la culture dans la phase vapeur de l'azote liquide. On prépare la culture pour une telle conservation dans de ^ombreuses petites ampoules comme suit :
dans chaque ampoule, on place 2 ml de milieu végétatif incubé et 2 ml d'une solution de glycérol et de lactose [voir W.A.
<EMI ID=111.1> .organisms in the Gas Phase of Liquid Nitrogen, Cryobiol 10,
364-367 (1973) pour les détails]. Les suspensions ainsi préparées sont conservées dans la phase vapeur de l'azote liquide.
On utilise une suspension conservée (1 ml) ainsi préparée: pour: inoculer 50 ml d'un milieu végétatif de premier
<EMI ID=112.1>
incuber comme décrit précédemment le milieu végétatif de premier stade inoculé.
Pour obtenir un plus grand volume d'inoculum, on
<EMI ID=113.1>
pour inoculer 400 ml d'un milieu végétatif de second stade ayant la même composition que le milieu végétatif de premier stade. On fait incuber le milieu de second stade dans un
<EMI ID=114.1>
environ 48 heures sur un agitateur tournant d'un arc de 5 cm de diamètre à 250 tours par minute.
On utilise le milieu végétatif de second stade incubé (800 ml), préparé comme décrit ci-dessus, pour inoculer
100 1 d'un milieu de production stérile choisi parmi l'un
des suivants :
Milieu 1
<EMI ID=115.1>
Le pH du milieu est environ 6,9 après stérilisation
<EMI ID=116.1>
pression d'environ 1,1 à 1,24 bar.
Milieu II
<EMI ID=117.1>
Eau désionisée q.s.p. 1 litre
<EMI ID=118.1>
<EMI ID=119.1>
Milieu III
<EMI ID=120.1>
<EMI ID=121.1>
Le pH final est d'environ 6,6.
On laisse le milieu de production inoculé fermenter <1> dans une cuve de fermentation de 165 1 à une température d'environ 30[deg.]C pendant environ 42 heures. On agite le milieu de fermentation avec des agitateurs classiques à environ 200 tours par minute et on l'aère avec de l'air stérile pour maintenir le taux d'oxygène dissous supérieur à 30 % à la saturation par l'air à la pression atmosphérique.
Préparation 2
Préparation du mélange antibiotique A-42355
A. Fermentation en flacon agité
On prépare une culture d'Aspergillus nidulans var. roseus NRRL 11440 et on la maintient sur une gélose inclinée de 18 x 150 ml, préparée avec un milieu ayant la composition suivante :
<EMI ID=122.1>
<EMI ID=123.1>
(pH initial 6,1)
<EMI ID=124.1>
La culture inclinée est inoculée avec Aspergillus nidulans var. roseus NRRL 11440 puis on fait incuber la culture à 25[deg.]C pendant environ sept jours. On recouvre d'eau la culture inclinée mûre et on la gratte avec une anse
stérile pour libérer les spores. La suspension résultante est ensuite mise en suspension dans 10 ml d'eau désionisée stérile.
On utilise 1 ml de la culture inclinée en suspension pour inoculer 55 ml de milieu végétatif dans un flacon de
250 ml. Le milieu végétatif a la composition suivante :
<EMI ID=125.1>
<EMI ID=126.1>
On fait incuber le milieu végétatif inoculé à 25[deg.]C pendant 48 heures, à 250 tours par minute, sur un agitateur
de type rotatif. Après 24 heures, on homogénéise le milieu pendant une minute à faible vitesse dans un mélangeur
(de type Waring), puis on le fait incuber à nouveau pendant les 24 heures restantes. Ou bien, on peut faire incuber le milieu végétatif inoculé pendant 48 heures puis l'homogénéiser pendant 15 secondes à faible vitesse.
Ce milieu végétatif incubé peut être utilisé pour inoculer un milieu de culture de fermentation en flacon agité ou pour inoculer un milieu végétatif de second stade. On peut également le conserver pour une utilisation ultérieure, en maintenant la culture dans la phase vapeur de l'azote
liquide. On prépare la culture pour cette conservation dans de nombreuses petites ampoules, comme suit :
On mélange les cultures végétatives volume/volume avec une solution de suspension ayant la composition suivante:
<EMI ID=127.1>
On répartit les suspensions préparées dans de petits tubes stériles à bouchon vissé (4 ml par tube). On conserve ces tubes dans la phase vapeur de l'azote liquide.
On peut utiliser une suspension conservée ainsi préparée pour inoculer des cultures inclinées ou des milieux d'ensemencement liquides. On fait incuber les cultures inclinées à 25[deg.]C à la lumière pendant 7 jours.
B. Fermentation en réservoir
Pour obtenir un plus grand volume d'inoculum, on utilise 10 ml de la culture végétative de premier stade incubé pour inoculer 400 ml d'un milieu de croissance végétatif de second stade ayant la même composition que celui du milieu végétatif. Le milieu de second stade est incubé dans un flacon Erlenmeyer à large ouverture de deux litres, à
25[deg.]C pendant 24 heures, sur un agitateur tournant d'un arc de 5 cm de diamètre à 250 tours par minute.
Le milieu de second stade incubé (800 ml), préparé comme décrit ci-dessus, est utilisé pour inoculer 100 litres d'un milieu de production stérile choisi parmi l'un des suivants :
Milieu IV
<EMI ID=128.1>
<EMI ID=129.1>
(pH initial 6,8-7,0)
<EMI ID=130.1>
<EMI ID=131.1>
Milieu V
<EMI ID=132.1>
On laisse le milieu de production inoculé fermenter dans un réservoir de fermentation de 165 1 à une température de 25[deg.]C pendant 7 jours. On aère le milieu de fermentation avec de l'air stérile, en maintenant le niveau d'oxygène dissous supérieur à environ 50 % de la saturation en air.
C. Milieu végétatif de troisième stade
Si l'on effectue la fermentation dans des réservoirs plus grands que ceux utilisés pour la fermentation par
100 litres, il est recommandé d'utiliser une culture végétative de troisième stade pour ensemencer le réservoir plus grand. Un milieu végétatif de troisième stade préféré
a la composition suivante :
<EMI ID=133.1>
<EMI ID=134.1>
Préparation 3.
Séparation du mélange antibiotique A-42355
On agite soigneusement le bouillon de fermentation entier (4127 litres), obtenu par le procédé décrit dans l'Exemple 1 en utilisant le milieu de production II, avec
4280 litres de méthanol pendant une heure, puis on filtre, en utilisant un adjuvant de filtration (Hyflo Supercel, une terre de diatomées, Johns-Manville Products Corp.). On ajuste le pH du filtrat à 4,0 par addition d'HCl 5 N. On extrait le filtrat acidifié deux fois avec des volumes égaux de chloroforme. On réunit les extraits chloroformiques et on les concentre sous vide jusqu'à un volume de 20 litres. On ajoute ce concentre 3 200 litres d'éther diéthylique pour faire précipiter le mélange A-42355. On sépare le précipité par filtration et l'on obtient 2775 g du mélange A-42355 sous forme d'une poudre blanc gris.
Séparation et identification des facteurs de A-30912
Préparation 4
Séparation du facteur A de A-30912
On dissout 1 g du mélange antibiotique A-423S5, préparé comme décrit dans les Préparations 2 et 3, dans 7 ml d'un mélange 7:2:1 de méthanol, d'eau et d'acétonitrile. On filtre cette solution et on l'introduit dans une colonne en verre de 3,7 cm de diamètre intérieur et de 35 cm de longueur [Colonne de Chromatographie CLFPCE :: (chromatographie liquide sous faible pression de caractéristiques élevées) MichelMiller, Ace Glass Incorporated, Vineland, NJ 08360] garnie de
<EMI ID=135.1>
microns), qui a été préparée comme décrit dans la Préparation <EMI ID=136.1>
à vannes. La colonne est garnie dans le système 7:2:1 de méthanol, d'eau et d'acétonitrile, à l'aide du mode opératoire de garnissage en suspension décrit dans la Préparation 11.
Une pompe F.M.I. avec une conception de piston sans vannes
(débit maximal 19,5 ml/minute) est utilisée pour déplacer le solvant dans la colonne à un débit de 9 ml/minute à 7 bars, des fractions étant recueillies toutes les minutes. L'élution de l'antibiotique est contrôlée à 280 nm en utilisant un appareil de contrôle UV (ISCO Model UA-5, Instrument Specialist Co., 4700 Superior Ave., Lincoln, Nebraska 68504) équipé d'une unité optique (ISCO Type 6).
Préparation 5
Séparation du facteur B de A-30912
On sépare le mélange A-42355 comme décrit dans la Préparation 3, mais on chromatographie les extraits chloroformiques concentrés (285 1) sur une colonne de gel de silice (150 1 de gel de silice Grace, qualité 62) à un débit de 2 1/minute. On lave la colonne avec 200 litres de chloroforme, on l'élue avec 500 litres d'acétonitrile, puis
on l'élue continuellement avec un mélange 98:2 d'acétonitrile et d'eau à un débit de 1 1/minute. On recueille des fractions ayant un volume de 200 litres et on les analysa séparément pour déterminer leur activité biologique. L'analyse. biologique est effectuée par une analyse sur disque de papier sur plaque de gélose, ensemencée par Candida albicans. On réunit les fractions 77 à 103 (1365 litres) et on les concentre sous vide. La solution concentrée (4,5 litres) contient un précipité qu'on enlève par filtration et l'on obtient 119 g de mélange A-42355 enrichi en facteur B. On concentre le filtrat à siccité. On redissout le résidu obtenu dans un volume approprié de méthanol. On ajoute la solution méthanolique à 10 volumes d'éther diéthylique pour faire précipiter le complexe antibiotique contenant le facteur B.
On sépare également ce précipité par filtration et on le sèche, et l'on obtient 24 g supplémentaires de mélange
A-42355 enrichi de facteur B sous forme d'une poudre grise.
Le mélange A-42355 enrichi en facteur B ainsi obtenu <EMI ID=137.1>
méthanol, d'eau et d'acétonitrile. On filtre cette solution et on l'introduit sur une colonne de gel de silice (Colonne Michel-Miller de 3,7 cm de diamètre intérieur x 33 cm) par ; l'intermédiaire d'une boucle à l'aide d'un système à vannes. La colonne est garnie d'une résine à phase inversée de gel de silice LP-1/C18 (10-20 microns) préparée comme décrit dans la Préparation 10, à l'aide du mélange 7:2:1 de méthanol, d'eau et d'acétonitrile, comme décrit dans la Préparation 11. ! Le solvant se déplace dans la colonne à un débit de 10 ml/ . minute à environ 7 bars, en utilisant une pompe FMI à piston sans vannes. On recueille une fraction toutes les minutes. On contrôle l'élution de l'antibiotique à 280 nm comme dans la Préparation 15. On réunit les fractions 102-110 et on les concentre sous vide pour obtenir une huile.
On dissout l'huile dans un petit volume de t-butanol et on la lyophilise, ce qui donne 22 mg du facteur B de A-30912.
Préparation 6
Isolement du facteur D de A-30912
On réunit et on chromatographie sur une colonne de gel de silice (Grace, qualité 62) les extraits chloroformiques concentrés de deux essais de fermentation (3800 1 et 4007 1) obtenus nar le procédé décrit dans la Préparation 3. On lave la colonne avec du chloroforme puis on élue avec de l'acéto-
<EMI ID=138.1>
recueille des fractions ayant un volume d'environ 200 1 et on les soumet à une analyse biologique sur disque de papier sur gélose ensemencée avec Candida albicans. On réunit les fractions
<EMI ID=139.1>
solution concentrée (0,7 1) à 10 volumes d'éther diéthylique pour faire précipiter le mélange A-42355 enrichi en facteur D. On enlève ce précipité par filtration et on le sèche, ce qui donne 32 g de mélange A-42355 enrichi en facteur D sous forme d'une poudre grise.
On dissout le mélange A-42355 enrichi en facteur D ainsi obtenu (1,0 g) dans 5 ml d'un mélange 7:2:1 de méthanol, d'eau et d'acétonitrile. On filtre cette solution et on l'introduit sur une colonne de gel de silice (colonne Michel- <EMI ID=140.1>
<EMI ID=141.1>
La colonne a été garnie de résine à phase inversée de gel de
<EMI ID=142.1>
Préparation 10. Le garnissage a été effectué dans un mélange 7:2:1 de méthanol, d'eau et d'acétonitrile, selon le mode opératoire de garnissage de la Préparation 11. Le solvant se déplace dans la colonne à un débit de 8 ml/minute à environ 3,1 bars, en utilisant une pompe FMI à conception de piston
<EMI ID=143.1>
L'élution de l'antibiotique est contrôlée à 280 nm comme décrit dans la Préparation 4. On réunit les fractions 96-108 et on les concentre sous vide pour obtenir une huile. On dissout cette huile dans un petit volume de t-butanol et on
<EMI ID=144.1>
Préparation 7
Séparation du facteur H de A-30912
On dissout 5,0 g du mélange antibiotique A-42355, préparé comme décrit dans les Préparations 2 et 3, dans 35 ml du mélange 7:2:1 de méthanol, d'eau et d'acétonitrile, on filtre la solution résultante et on l'introduit sur une colonne de verre de 3,7 cm de diamètre intérieur x 42 cm
(colonne Michel-Miller) par l'intermédiaire d'une boucle à l'aide d'un système de vannes. La colonne est garnie de
<EMI ID=145.1>
microns) (Préparation 10) dans un mélange 7:2:1 de méthanol, d'eau et d'acétonitrile comme décrit dans la Préparation 11. Le solvant se déplace dans la colonne à un débit de 13 ml/ minute à environ 8.3 bars, en utilisant une pompe FMI à conception de piston sans vannes, et l'on recueille une fraction toutes les deux minutes. On contrôle l'élution de l'antibiotique à 280 nm comme décrit dans la Préparation 19, paragraphe C. On réunit les fractions 112-132 avec les fractions 106-117 d'une seconde purification similaire. Les fractions réunies sont concentrées sous vide jusqu'à une huile. On dissout l'huile dans un petit volume de t-butanol
<EMI ID=146.1>
A-30912.
<EMI ID=147.1>
dans 8 ml d'un mélange 7:2:1 de méthanol, d'eau et
<EMI ID=148.1>
réintroduit sur une colonne de verre de 2,0 cm de diamètre intérieur x 32 cm, comme décrit ci-dessus. Le solvant se déplace dans la colonne à un débit de 8 ml/minute à environ 5,5 bars, et on recueille une fraction toutes les 3 minutes. On contrôle l'élution de l'antibiotique à 280 nm. On réunit les fractions 17 et 18 et on les concentre sous vide pour obtenir une huile. On dissout l'huile dans un petit volume de t-butanol et on lyophilise pour obtenir 29 mg du facteur 11 de A-30912. Identification des facteurs de A-30912
Les différents facteurs de A-30912 peuvent être identifié? par chromatographie sur couche mince (CCM) . Les Rf
<EMI ID=149.1>
silice (Merck, Darmstadt),un système solvant 7:3 3 de benzène et de méthanol et un bioautographe par Candida albicans sont indiqués dans le Tableau VII.
TABLEAU VII
<EMI ID=150.1>
<EMI ID=151.1>
A-30912 dans différents systèmes solvants, en utilisant une CCM sur gel de silice (plaques de gel de silice n[deg.] 60 de Merck Darmstadt, 20 x 20 cm) et un bioautographe par Candida albicans, sont donnés dans le Tableau VIII.
<EMI ID=152.1>
<EMI ID=153.1>
Systèmes solvants
a acétate d'éthyle:méthanol (3:2)
b : acétate d'éthyle:méthanol (7:3)
c acétonitrile:eau (95:5)
<EMI ID=154.1>
<EMI ID=155.1>
conditions suivantes :
<EMI ID=156.1>
Injection injection sur boucle
Les durées de rétention approximatives pour les facteurs A,
<EMI ID=157.1>
le Tableau IX.
TABLEAU IX
<EMI ID=158.1>
Préparation 8
Préparation de l'antibiotique S31794/F-1
<EMI ID=159.1>
en immersion d'Acrophialophora limonispora NRRL 8095, en agitant, remuant et/ou aérant à pH 3-8, de préférence 5-7,
<EMI ID=160.1>
heures, de préférence pendant 120 à 288 heures.
On isole l'antibiotique S31794/F-1 par traitement du bouillon de culture (90 L) avec un mélange 4:1 (90 L) d'acétate d'éthyle et d'isopropanol et en homogénéisant
<EMI ID=161.1>
phase organique et on l'évapore sous vide à environ 40[deg.]C. On chromatographie le résidu ainsi obtenu sur environ dix fois sa quantité de gel de silice, en utilisant des mélanges de chloroforme et de méthanol (95:5 à 60:40). On réunit les fractions qui ont une activité antifongique et on les chromatographie sur 100 fois leur quantité de "Sephadex LH-20" avec du méthanol. Les fractions provenant de la colonne de Sephadex et qui ont une activité antifongique sont réunies et rechromatographiées sur 100 fois leur quantité de gel de silice (0,05-0,2 mm) avec un système solvant
71:25:4 de chloroforme, de méthanol et d'eau. Les fractions éluées qui ont une activité antifongique sont réunies et évaporées sous vide pour obtenir l'antibiotique brut
<EMI ID=162.1>
de méthanol et on le précipite avec de l'éther diéthylique pour obtenir S3J794/F-1 sous forme d'une poudre amorphe
<EMI ID=163.1> vide pousse 3 25-30[deg.]C. La cristallisation dans dix fois son volume de mélange 80:12:8 d'acétate d'éthyle, de méthanol et d'eau donne S31794/F-1 cristallisé, p.f. 181-183[deg.]C avec décomposition après séchage sous vide poussé à 20[deg.]C.
Préparation 9
Séparation de l'antibiotique S31794/F-1
<EMI ID=164.1>
comme décrit dans la Préparation 8 après chromatographie sur Sephadex, sur une colonne de gel de silice (colonne Michel-
<EMI ID=165.1>
à vannes. On utilise le mode opératoire de garnissage en suspension décrit dans la Préparation 11. On déplace le solvant dans la colonne en utilisant une pompe FMI avec une conception de piston sans vannes. On contrôle l'élution de l'antibiotique en utilisant un appareil de contrôle UV à
280 nm comme dans la Préparation 22. On réunit les fractions ayant une activité antifongique et on les concentre sous vide pour obtenir l'antibiotique S31794/F-1.
S31794/F-1 a les Rf suivants par chrornatographie sur couche mince de gel de silice (Merck, 0,25 mm) :
<EMI ID=166.1>
S31794/F-1 peut également être détecté par de la vapeur d'iode.
Préparation 10
Préparation de la résine à hase inversée de gel de silice/
C18
Etape 1 : Hydrolyse
'On ajoute 1000 g de gel de silice LP-1 (Quantum Corp., maintenant Whatman) à un mélange de 1650 ml d'acide sulfurique concentré et de 1650 ml d'acide nitrique concentré dans un ballon à fond rond de 5 1 et on agite pour obtenir une suspension appropriée. On chauffe le mélange sur un bain de vapeur pendant une nuit (16 heures) avec un réfrigérant à refroidissement d'eau fixé sur le ballon.
On refroidit le mélange dans un bain de glace et on le filtre soigneusement en utilisant un entonnoir en verre fritte. On lave le gel de silice avec de l'eau désionisée
<EMI ID=167.1>
d'acétone et on le sèche sous vide à 100[deg.]C pendant deux jours.
Etape 2 : Première silylation
Le gel de silice sec de l'Etape 1 est transféré dans un ballon à fond rond et mis en suspension dans 3,5 1 de toluène. On chauffe le ballon au bain de vapeur pendant deux heures pour chasser toute l'eau résiduelle par distillation azéotrope. On ajoute 321 ml d'octadécyltrichlorosilane (Aldrich Chemical Company), et on chauffe le mélange réactionnel à reflux pendant une nuit (16 heures)
<EMI ID=168.1>
d'éviter que l'agitateur ne soit trop près de la partie inférieure du ballon, pour éviter un broyage des particules de gel de silice.
On laisse le mélange refroidir. On'recueille le gel de silice silanisé, on le lave avec 3 1 de toluène et 3 1 d'acétone, puis on le sèche à l'air pendant une nuit (16-20 heures). On met le gel de silice séché en suspension dans 3,5 1 d'un mélange 1:1 d'acétonitrile et d'eau dans un ballon de 5 1, on agite soigneusement à la température ambiante pendant deux heures, on filtre, on lave avec 3 1 d'acétone et on sèche à l'air pendant une nuit.
Etape 3 : Deuxième silylation
On répète le mode opératoire de la première silylation en utilisant 200 ml d'octadécyltrichlorosilane. On
<EMI ID=169.1>
tout en agitant soigneusement. On recueille le produit final par filtration, on lave avec 3 1 de toluène et 6 1 de
<EMI ID=170.1>
(16-20 heures).
Préparation 11
Mode opératoire de garnissage en suspension pour les colonnes Michel-Miller Renseignements généraux
On utilise ce mode opératoire pour garnir une
<EMI ID=171.1>
celle préparée par le procédé de la Préparation 10.
En général, une pression inférieure à 14 bars et des débits compris entre 5 et 40 ml/minute sont nécessaires pour cette technique de garnissage en suspension ; ceci dépend du volume et des dimensions de la colonne. La pression de garnissage doit être supérieure à la pression utilisée pendant la séparation réelle de 2 à 3,5 bars ; ceci assure qu'il ne se produit pas de tassement ultérieur de l'adsorbant pendant les séparations.
Une diminution soudaine de la pression peut provoquer des craquelures ou des canaux dans le matériau de garnissage, ce qui réduirait de façon importante l'efficacité de la colonne. Il est donc important de laisser la pression descendre lentement jusqu'à zéro chaque fois que l'on arrête la pompe.
Volume approximatif des colonnes (Colonnes en verre de Ace, Catégorie No., non garnies) : 5795-04, 12 ml ;
5795-10, 110 ml ; 5795-16, 300 ml ; 5795-24, 635 ml ; et 5796-
34, 34 ml.
Le temps nécessaire pour garnir une colonne en verre peut varier de quelques minutes à quelques heures, selon la dimension de la colonne et l'expérience de l'opérateur. Etapes :
1. Relier la colonne de verre à une colonne réservoir par un accouplement (le volume de la colonne réservoir doit être
<EMI ID=172.1>
verticalement avec la colonne réservoir au-dessus.
2. Peser le matériau de garnissage (100 g pour 200 ml de colonne).
3. Ajouter environ 5 volumes de solvant au matériau de garnissage ; utiliser un mélange de 70-80 % de méthanol et de 20-
30 % d'eau.
4.. Bien agiter jusqu'à ce que toutes les particules soient mouillées, laisser reposer pendant une nuit ou plus longtemps pour assurer une imprégnation complète des particules par le solvant. Décanter la liqueur surnageante.
5. Délayer la résine avec suffisamment de solvant pour remplir la colonne réservoir. Verser rapidement dans le réservoir. La colonne doit être préremplie avec le même solvant et la colonne réservoir doit être partiellement remplie du solvant avant de verser la suspension.
L'utilisation de volumes de suspension plus grands peut également donner de bons résultats ; cependant, ceci nécessite
(a) un réservoir plus grand ou (b) plusieurs remplissages du réservoir pendant l'opération de garnissage.
6. Fermer le réservoir avec le bouchon de Teflon en-dessous de la colonne (voir la Figure 1 du brevet des E.U.A.
N[deg.] 4.131.547, bouchon N[deg.] 3) ; relier à la pompe ; et commencer immédiatement le pompage du solvant dans les dispositifs au débit maximum si l'on utilise une pompe Ace Cat. No. 13625-25, ou un système de distribution de solvant similaire (20.ml/minute).
7. Continuer jusqu'à ce que la colonne soit complètement remplie de l'adsorbant. La pression ne doit pas dépasser la tolérance maximale de la colonne pendant cette opération
(14 bars pour les colonnes importantes et 21 bars pour les colonnes analytiques). Dans la plupart des cas, des pressions inférieures à 14 bars seront suffisantes.
8. Si la pression dépassait les valeurs maximales, réduire le débit et la pression diminuera.
9. Après remplissage de la colonne par l'adsorbant, arrêter la pompe ; laisser la pression tomber à zéro ; débrancher le réservoir ; remplacer le réservoir par une pré-colonne ; <EMI ID=173.1> d'adsorbant, et pomper à la pression maximale jusqu'à ce que la colonne soit complètement garnie. Pour une information supplémentaire, voir le mode opératoire général. Toujours laisser la pression descendre lentement après arrêt de la pompe ; ceci empêchera la formation de toutes craquelures ou canaux préférentiels dans le matériau de garnissage.
10. Supprimer la pression et débrancher soigneusement la pré-colonne. Avec une petite spatule, enlever quelques millimètres (2-4) de garnissage au sommet de la colonne ; placer 1 ou 2 filtres au sommet de la colonne ; appuyer doucement jusqu'au sommet du matériau de qarnissage, et placer un bouchon de Teflon au sommet de la colonne jusqu'à .confirmation de l'étanchéité. Relier la colonne à la pompe, introduire la pression (généralement moins de 14 bars) et observer par la paroi de verre au sommet de la colonne si la résine se tasse davantage. Si le matériau de garnissage doit continuer à se déposer (ceci peut être le cas avec les colonnes de dimensions importantes), un certain espace mort apparaîtra ou bien, il se formera des canaux préférentiels et l'étape 9 doit être répétée.
Préparation 12
Préparation du noyau de A-30912A
A. Désacylation du facteur A de l'antibiotique A-30912
On effectue une fermentation de A. utahensis comme décrit dans la Préparation 1, en utilisant le milieu de
<EMI ID=174.1>
incuber le milieu de production pendant environ 42 heures. On ajoute au milieu de fermentation une quantité de facteur A de A-30912 (340 g de substrat brut qui contient environ
19,7 g de facteur A de A-30912, dissous dans 1,5 1 d'éthanol) . On contrôle la désacylation du facteur A de A-
30912 par titrage vis-à-vis de Candida albicans. On laisse la fermentation se poursuivre jusqu'à désacylation complète comme le montre la disparition de l'activité vis-à-vis de C.
albicans .
B. Séparation du noyau de A-30912A
On filtre le bouillon de fermentation entier (100 litres), obtenu comme décrit dans le paragraphe A et contenant
<EMI ID=175.1>
limpide ainsi obtenu (environ 93 1) sur une colonne contenant 4,5 1 de résine HP (polymère très poreux DIAION, HP-Series, Mitsubishi Chemical Industries Limited, Tokyo, Japon) à un débit de 200 ml/minute. On rejette l'effluent ainsi obtenu. Puis on lave la colonne avec jusqu'à huit volumes (volume de
<EMI ID=176.1>
bouillon filtré résiduel. On rejette cette eau de lavage. Puis on élue la colonne avec une solution 7:3 d'eau et de méthanol (85 1) à un débit de 200-300 ml/minute.
On contrôle l'élution en utilisant le mode opératoire suivant : or. prélève deux parties aliquotes de chaque fraction éluée. On concentre l'une de ces parties jusqu'à un petit volume et on la traite par un chlorure d'acide comme le chlorure de myristoyle. Ce produit et l'autre partie non traitée sont testés pour déterminer leur activité vis-à-vis de Candida albicans. Si la partie aliquote
<EMI ID=177.1>
acylée a une activité, la fraction contient le noyau de A-30912A. On concentre l'éluat contenant le noyau de
<EMI ID=178.1>
pour obtenir environ 97 g du noyau brut.
C. Purification du noyau de A-30912A par chromatographie
liquide sur phase inversée
On dissout 25 g du noyau de A-30912A brut, obtenu comme décrit dans le paragraphe C, dans 300 ml d'un mélange
96:2:1:1 d'eau, d'acétonitrile, d'acide acétique et de pyridine. On chromatographie cette solution sur une colonne d'acier inoxydable de 4 1 (8 cm x 80 cm) remplie de Lichroprep RP-18, granulométrie 25-40 microns (MC/B Manufacturing
<EMI ID=179.1>
d'une unité Chromatospac Prep 100 (Jobin Yvon, 16-18 rue du Canal,91160 Longjumeau, France). On fait fonctionner la colonne à une pression de 6,2-6,9 bars, donnant un débit d'environ 60 ml/minute, en utilisant le même solvant. On contrôle la séparation à 280 nm en utilisant un appareil de contrôle UV (ISCO Absorption Monitor Model UA-5, Instrumention Specialties Co., 4700 Superior Ave. Lincoln, Nebraska 68504) avec une unité optique (ISCO Type 6). On recueille par minute des fractions ayant un volume d'environ 500 ml.
En se basant sur l'absorption à 280 nm, on réunit les fractions contenant le noyau de A-30912A, on les évapore sous vide et on les lyophilise, ce qui donne 2,6 g du noyau. La quantité de solvant nécessaire pour achever ce mode opératoire de séparation chromatographique varie de 7 à 8 1.
<EMI ID=180.1> <EMI ID=181.1>
(c) solide amorphe blanc, soluble dans l'eau, le diméthylformamide, le diméthylsulfoxyde et le méthanol ; insoluble dans le chloroforme, le toluène et l'éther diëthylique.
(d) Spectre d'absorption infrarouge (pastille de
KBr)
présente des maximas d'absorption à :
3340 large (OU, liaison hydrogène) ; 2970, 2930 et 2890
<EMI ID=182.1>
(c) le titrage électrométrique dans le dimêthylformamide aqueux à 66 % indique la présence d'un groupement titrable avec un pK d'environ 7,35 (pH initial 7,32).
(f) durée de rétention en chromatographie liquide sous pression élevée (K') : 11,52 minutes dans les conditions suivantes :
Colonne : 4 x 300 mm
<EMI ID=183.1>
Solvant : mélange 1:2:97 d'acétate d'ammonium, d'acétonitrile et d'eau
Débit : 3 ml/minute
Pression : 172,5 bars
Détecteur : UV à longueur d'onde variable,
à 230 nm
Sensibilité : 0-0,4 A.U.F.S.
Préparation 13
On prépare le noyau de A-30912A et on le purifie par le procédé de la Préparation 12, mais on utilise comme substrat A-30912A tétrahydrogéné.
Préparation 14
On prépare le noyau de A-30912A et on le purifie
par le procédé de la Préparation 12 mais en utilisant comme substrat l'aculéacine A.
Préparation 15
Préparation du noyau de A-30912B
A. Désacylation du facteur B de l'antibiotique A-30912
On effectue une fermentation de A. utahensis comme décrit dans la Préparation 1, en utilisant le milieu de production I. Après incubation de la culture pendant environ
48 heures, on ajoute au milieu de fermentation le facteur B de A-30912 dissous dans une petite quantité de méthanol.
On contrôle la désacylation du facteur B de A-
30912 par essai sur disque de papier vis-à-vis de Candida albicans ou de Neurospora crassa. On laisse la fermentatior. se poursuivre jusqu'à ce que la désacylation soit complète comme le montre la disparition de l'activité.
B. Séparation du noyau de A-30912B
On filtre le bouillon de fermentation ainsi obtenu comme décrit dans le paragraphe A. On rejette le gâteau mycélien. On fait passer le filtrat limpide ainsi obtenu dans une colonne contenant de la résine HP-20 (polymère très poreux DIAION, HP-Series, Mitsubishi Chemical Industries Limited, Tokyo, Japon). On rejette l'effluent ainsi obtenu. Puis on lave la colonne avec jusqu'à huit volumes d'eau désionisée à pH 6,5-7,5 pour enlever le bouillon filtré résiduel. On rejette cette eau de lavage. Puis on élue la colonne avec une solution 7:3 d'eau et de méthanol. On contrôle l'élution selon le mode opératoire suivant : on prélève deux parties aliquotes de chaque fraction éluée. On concentre l'une des parties aliquotes jusqu'à un petit volume et on la traite avec un chlorure d'acide comme le chlorure
de myristoyle. Ce produit et l'autre partie non traitée sont titrés pour déterminer leur activité vis-à-vis de Candida albicans. Si la partie non traitée n'a pas d'activité et que la partie aliquote acylée a une activité, la fraction contient le noyau de A-30912B. On concentre l'éluat contenant le
noyau de A-30912B sous.vide jusqu'à un petit volume et on le lyophilise pour obtenir le noyau brut.
C. Purification du noyau de A-30912B par chromatographie
liquide phase inversée
Un dissout le noyau de A-30912B brut, obtenu comme décrit dans le paragraphe C, dans un mélange 96:2:1:1 d'eau, d'acétonitrile, d'acide acétique et de pyridine. On
<EMI ID=184.1>
Lichroprep RP-18, granulométrie 25-40 microns (MC/B Manufacturing Chemists, Inc. E/M, Cincinnati, OH). La colonne fait partie d'une unité Chromatospac Prep 100 (Jobin Yvon, 16-
18 rue du Canal, Longjumeau, France). On fait fonctionner la colonne à une pression de 6,2-6,9 bars, donnant un débit d'environ GO ml par minute, en utilisant le môme solvant.
On contrôle la séparation à 280 nm en utilisant un appareil
<EMI ID=185.1>
Instrumentation Specialties Co., 4700 Superior Ave., Lincoln, Nebraska 68504) avec une unité optique (ISCO Type 6).
En se basant sur l'absorption à 280 nm, on réunit les fractions contenant le noyau de A-30912B, on les évapore sous vide et on les lyophilise pour obtenir le noyau de A-30912B purifié.
Préparation 16
On prépare le noyau de A-30912B et on le purifie par le procédé de la Préparation 15, mais on utilise comme
<EMI ID=186.1>
Préparation 17
Préparation du noyau de A-30912D
A. Désacylation du facteur D de A-30912
On effectue une fermentation de A. utahensis comme décrit dans la Préparation 1, en utilisant le milieu de production I. Après avoir fait incuber la culture pendant environ 48 heures, on ajoute au milieu de fermentation le facteur D de A-30912 dissous dans une petite quantité de méthanol.
On contrôle la désacylation du facteur D de A-30912 par essai sur disque de papier vis-à-vis de Candida albicans ou de Neurospora crassa. On laisse la fermentation se poursuivre jusqu'à ce que la désacylation soit complète comme le montre la disparition de l'activité.
<EMI ID=187.1>
On filtre le bouillon de fermentation entier obtenu comme décrit dans le paragraphe A. On rejette le gâteau <EMI ID=188.1>
sur une colonne contenant de la résine IIP-20 (polymère très poreux DIAION, HP-Series, Mitsubishi Chemical Industries Limited, Tokyo, Japon). On rejette l'effluent ainsi obtenu.
Puis on lave la colonne avec jusqu'à huit volumes d'eau
<EMI ID=189.1>
résiduel. On rejette cette eau de lavage. Puis on élue la colonne avec une solution 7:3 d'eau et de méthanol. On contrôle l'élution en utilisant le mode opératoire suivant :
on prélève deux parties aliquotes de chaque fraction éluée. On concentre l'une des parties aliquotes jusqu'à un petit volume et on la traite par un chlorure d'acide comme le chlorure de myristoyle. On titre ce produit et l'autre partie non traitée pour déterminer leur activité vis-à-vis de Candida albicans. Si la partie non traitée n'a pas d'activité et que la partie aliquote acylée a une activité, la fraction contient le noyau de A-30912D. L'éluat contenant le noyau
de A-30912D est concentré sous vide jusqu'à un petit volume et
<EMI ID=190.1>
C. Purification du noyau de A-30912D par chromatographie
liquide en phase inversée
On dissout dans un mélange 96:2:1:1 d'eau, d'acétonitrile, d'acide acétique et de pyridine le noyau de A-30912D brut obtenu comme décrit dans le paragraphe C. On chromatographie cette solution sur une colonne garnie de Lichroprep RP-18, granulométrie 25-40 microns (MC/B
<EMI ID=191.1>
fait partie d'une unité Chromatospac Prep 100 (Jobin Yvon,
16-18 rue du Canal, 91160 Longjumeau, France). On fait fonctionner la colonne à une pression de 6,2-6,9 bars., ce qui donne un débit d'environ 60 ml/minute, en utilisant le même solvant. On contrôle la séparation à 280 nm en utilisant un appareil de contrôle UV (ISCO Absorption Monitor Model UA-5, Instrumentation Specialties Co., 4700 Superior Ave., Lincoln, Nebraska 68504) avec une unité optique (ISCO Type 6).
En se basant sur l'absorption à 280 nm, on combine les fractions contenant le noyau de A-30912D, on les évapore sous vide et on les lyophilise pour obtenir le noyau de A-30912D purifie.
Préparation 18
On prépare le noyau de A-30912D et on le purifia par le procédé de la Préparation 17, Mais on utilise comme substrat A-30912D tétrahydrogéné.
Préparation 19
Préparation du noyau de A-30912H
A: Désacylation du facteur H de l'antibiotique A-30912
On effectue une fermentation de A. utahensis comme ) décrit dans la Préparation 1, en utilisant le milieu de production I. Après avoir fait incuber la culture pendant environ 48 heures, on ajoute au milieu de fermentation le facteur Il de A-30912 dissous dans une petite quantité de méthanol.
On contrôle la dësaçylation du facteur H de A-30912 par une analyse sur disque de papier vis-à-vis de
<EMI ID=192.1>
B. Séparation du noyau de A-30912H
On filtre le bouillon de fermentation entier obtenu comme décrit dans le paragraphe A. On rejette le gâteau mycélien. On fait passer le filtrat limpide ainsi obtenu dans une colonne contenant de la résine HP-20 (polymère très poreux DIAION, HP-Series, Mitsubishi Chemical Industries Limited, Tokyo, Japon). On rejette l'effluent ainsi obtenu. Puis on lave la colonne avec jusqu'à huit volumes d'eau
<EMI ID=193.1>
résiduel. On rejette cette eau de lavage. Puis on élue la colonne avec une solution 7:3 d'eau et de méthanol. On contrôle l'élution en utilisant le mode opératoire suivant :
on prélève deux parties aliquotes de chaque fraction éluée. On concentre l'une des parties aliquotes jusqu'à un petit volume et on la traite avec un chlorure d'acide comme le chlorure de myristoyle. On détermine l'activité de ce produit et de l'autre partie aliquote non traitée vis-à-vis de Candida albicans. Si la partie aliquote non traitée n'a pas d'activité et que la partie aliquote acylée a une activité, <EMI ID=194.1> l'éluat contenant le noyau de A-30912H sous vide jusqu'à
<EMI ID=195.1>
brut.
C. Purification du noyau de A-30912H par chromatographie
liquide en phase inversée
On dissout le noyau de A-30912H brut, obtenu
comme décrit dans le paragraphe C, dans un mélange 96:2:1:1 d'eau, d'acétonitrile, d'acide acétique et de pyridine. On chromatographie cette solution sur une colonne garnie de Lichroprep RP-18, granulométrie 25-40 microns (MC/B Manufacturing Chemists, Inc. E/M, Cincinnati, OH). La colonne fait partie d'une unité Chromatospac Prep 100 (Jobin Yvon,
16-18 rue du Canal 91160 Longjumeau, France). On fait fonctionner
la colonne à une pression de 6,2-6,9 bars, donnant un débit d'environ 60 ml/minute, en utilisant le même solvant.
On contrôle la séparation à 280 nm en utilisant un appareil
de contrôle UV (ISCO Absorption Monitor Model UA-5, Instrumentation Specialties Co., 4700 Superior Ave., Lincoln, Nebraska 68504) équipé d'une unité optique (ISCO Type 6).
Préparation 20
On prépare le noyau de A-30912H et on le purifie
par le procédé de la Préparation 19 mais on utilise comme substrat A-30912H tétrahydrogéné.
Préparation 21
Préparation du noyau S31794/F-1
A. Désacylation de l'antibiotique S31794/F-1
On effectue une fermentation de A. utahensis comme
<EMI ID=196.1>
production I. Après avoir fait incuber la culture pendant environ 48 heures, on ajoute au milieu de fermentation l'antibiotique S31794/F-1 dissous dans une petite quantité de méthanol.
On contrôle la désacylation de S31794/F-1 par analyse avec disque de papier vis-à-vis de Candida albicans. On laisse la fermentation se poursuivre jusqu'à ce que la désacylation soit complote comme le montre la disparition <EMI ID=197.1>
Lincoln, Nebraska 68504) équipé d'une unité optique (ISCO
<EMI ID=198.1>
<EMI ID=199.1>
les fractions contenant le noyau de S31794/F-1, on les évapore sous vide et on les lyophilise pour obtenir le noyau de S31794/F-1 purifié.
Préparation 22
Préparation de A-30912A tétrahydrogéné
On dissout le facteur A de A-30912 dans l'éthanol.
<EMI ID=200.1>
utilise à son tour pour réduire par voie catalytique le facteur A de A-30912, par hydrogénation sous pression positive jusqu'à ce que la réaction soit terminée (environ 2 à 3 heures). On filtre le mélange réactionnel et on le, concentre sous vide. On dissout le résidu dans une petite quantité de t-butanol et on le lyophilise pour obtenir A-30912A tétrahydrogéné.
Préparation 23
<EMI ID=201.1>
On dissout dans l'éthanol le facteur B de A-30912.
<EMI ID=202.1>
platine que l'on utilise à son tour pour réduire par voie catalytique le facteur B de A-30912 par hydrogénation sous pression positive jusqu'à ce que la réaction soit terminée
(environ 2 à 3 heures). On filtre le mélange réactionnel et on le concentre sous vide. On dissout le résidu dans une petite quantité de t-butanol et on le lyophilise pour obtenir
<EMI ID=203.1>
Préparation 24
Préparation de A-30912D tétrahydrogéné
On dissout dans de l'éthanol le facteur D de
<EMI ID=204.1>
Pt que l'on utilise à son.tour pour réduire par voie catalytique le facteur D de A-30912, par hydrogénation sous pression positive jusqu'à ce que la réaction soit terminée
<EMI ID=205.1> de l'activité.
<EMI ID=206.1>
On filtre le bouillon de fermentation entier obtenu comme décrit dans le paragraphe A. On rejette le gâteau mycélien, on fait passer le filtrat limpide ainsi obcenu dans une colonne contenant de la résine HP-20 (polymère
très poreux DIAION, HP-Series, Mitsubishi Chemical Industries Limited, Tokyo, Japon). On rejette l'effluent ainsi obtenu. On lave ensuite la colonne avec jusqu'à huit volumes d'eau
<EMI ID=207.1>
colonne avec une solution 7:3 d'eau et de méthanol . On contrôle l'élution en utilisant le mode opératoire suivant :
on prélève deux parties aliquotes à partir de chaque fraction éluée. On concentre l'une des parties aliquotes jusqu'à un petit volume et on la traite par un chlorure d'acide comme le chlorure de myristoyle. On titre ce produit et l'autre partie aliquote non traitée pour déterminer leur activité vis-à-vis de Candida albicans. Si la partie aliquote non traitée n'a pas d'activité et que la partie aliquote acylée a une activité, la fraction contient le noyau de S31794/F-1. On
<EMI ID=208.1>
jusqu'à un petit volume, et on le lyophilise pour obtenir le noyau brut.
C. Purification du noyau de S31794/F-1 par chromatographie
liquide en phase inversée
On dissout dans un mélange 96:2:1:1 d'eau, d'acétonitrile, d'acide acétique et de pyridine le noyau de S31794/F-1 brut obtenu comme décrit dans le paragraphe B.
On chromatographie cette solution sur une colonne garnie de Lichroprep RP-18, granulométrie 25-40 microns (MC/B
<EMI ID=209.1>
fait partie d'une unité Chromatospac Prep 100 (Jobin Yvon,
16-18 rue du Canal 91160 Longjumeau, France). On fait fonctionner la colonne à une pression de 6,2-6,9 bars, donnant un débit d'environ 60 ml/minute, en utilisant le même solvant. On contrôle la séparation à 280 nm en utilisant un appareil
<EMI ID=210.1>
on le concentre sous vide. On dissout le résidu dans une petite quantité de t-butanol et on le lyophilise pour obtenir A-30912D tétrahydrogéné.
Préparation 25
<EMI ID=211.1>
On dissout le facteur il de A-30912 dans de
<EMI ID=212.1>
Pt que l'on utilise à son tour pour réduire par voie catalytique le facteur H de A-30912, par hydrogénation sous pression positive jusqu'à ce que la réaction soit terminée
<EMI ID=213.1>
et on le concentre sous vide. On dissout le résidu dans une petite quantité de t-butanol et on le lyophilise pour obtenir A-30912H tétrahydrogéné.
EXEMPLES
On effectue la préparation de divers dérivés à groupements alcanoyle et alcénoyle par acylation du noyau approprié, soit par la réaction modifiée de Schotten-Bauman en utilisant un chlorure d'acide comme agent d'acylation
(Procédé A) soit par le procédé aax esters actifs utilisant l'ester 2,4,5-trichlorophénylique comme agent d'acylation
(Procédé B). Les modes opératoires généraux de mise en oeuvre des réactions d'acylation par le Procédé A ou le Procédé B sont indiqués ci-dessous :
Procédé A (Réaction modifiée de Schotten-Bauman).
Ce procédé comprend la réaction du noyau approprié avec le chlorure d'acide alcanolque ou alcénolque qui correspond à la chaîne latérale acyle désirée.
On dissout le noyau danr un mélange de tampon KHP04 0,1 M, pH 7,5 (5 à 10 ml) et d'acétone ou de méthanol
(5 à 10 ml). A la solution du noyau, refroidie par un bain de glace ou à la température ambiante, on ajoute lentement
<EMI ID=214.1>
<EMI ID=215.1>
Si on .le désire, on peut ajuster le pH du mélange réactionnel à 7,5-8,0 après chaque addition du chlorure d'acide ; cependant, cette étape n'est pas essentielle. On agite le mélange réactionnel à la température du bain de glace ou à la température ambiante pendant 1,5 à 3,0 heures. Pendant que la réaction se fait, il se forme un précipité qui est composé
<EMI ID=216.1>
la fin de la période de réaction, on centrifuge le mélange réactionnel pour enlever le précipité. Le précipité recueilli et la liqueur surnageante sont ensuite traités selon*l'un des modes opératoires de purification suivants.
. Mode opératoire (a) On lave le précipité une, deux ou trois fois avec 2 à 3 volumes de méthanol ou d'un mélange 1:1 de méthanol et d'eau. On centrifuge les produits de lavage au méthanol ou au méthanol-eau et on réunit les liqueurs surnageantes méthanoliques avec la liqueur surnageante obtenue après la centrifugation initiale du mélange réactionnel. Puis on concentre sous vide les liqueurs surnageantes réunies pour chasser le solvant organique. On combine ensuite le concentré aqueux avec un volume égal de méthanol et on extrait la solution résultante successivement avec du chloroforme et de l'acétate d'éthyle comme décrit ci-dessus dans le Procédé (a).
Mode opératoire (b) On rejette immédiatement le précipité et on extrait la liqueur surnageante
à pH 5,0-7,0 une ou deux fois avec de l'éther diéthylique (à volume égal) pour enlever l'acide alcanolque eu alcénolque n'ayant pas réagi. On rejette l'extrait d'éther diéthylique. On concentre la liqueur surnageante extraite sous vide pour chasser le solvant organique. Puis on combine le concentré aqueux avec un volume égal de méthanol et on extrait la solution résultante successivement avec du chloroforme et de l'acétate d'éthyle comme décrit précédemment dans le Procédé ta).
Après l'étape d'extraction par du chloroforme suivie par de l'acétate d'éthyle dans le mode opératoire (a) ou (b) précédent, toutes les phases d'extrait de solvant sont réunies et concentrées à siccité pour obtenir le dérivé à groupement alcanoyle ou alcénoyle brut du noyau de A-30912A.
On purifie le dérivé brut par CLPE à phase inversée comme suit : l'échantillon, dissous dans 5 à 6 ml de méthanol, est injecté dans une colonne en acier inoxydable
<EMI ID=217.1>
10) et on élue la colonne avec un système solvant comprenant de l'eau, du méthanol et de l'acétonitrile. On effectue
<EMI ID=218.1>
10 à 12 ml par heure en utilisant une pompe duplex LD-C
(Milton-Roy). On contrôle l'effluent avec un détecteur ISCOUA-5 à 280 nm. On réunit les fractions contenant le produit désiré et on les concentre à siccité sous vide pour obtenir le dérivé alcanoylé ou alcérioylé purifié du noyau correspondant.
Le produit purifié est analyse par chromatographie sur couche mince (CCM) en utilisant des plaques C18 à phase inversée
<EMI ID=219.1>
développement, on observe les plaques sous lumière UV pour détecter le produit. Les produits sont également analysés par spectrométrie de masse à désorption de champ.
Procédé B (Procédé par l'ester actif)
<EMI ID=220.1>
heures une solution du noyau approprié et de l'alcanoate ou alcénoate de 2,4,5-trichlorophényle approprié dans le diméthylformamide (DMF) (10-20 ml). On concentre le mélange réactionnel sous vide à siccité pour obtenir le dérivé alcanoylé ou alcénoylé brut du noyau correspondant. On purifie le produit brut par CLPE à phase inversée comme décrit ci-dessus dans le procédé A. Le produit purifié est également analysé par les procédés utilisés dans le Procédé A.
<EMI ID=221.1>
La préparation de divers dérivés alcanoylés et alcénoylés, obtenue par acylation du noyau de A-30912A, représentatif des composés de formule III, est donnée dans le Tableau 1 ci-dessous. Les dérivés du Tableau 1 sont préparés soit par la réaction modifiée de Schotten-Bauman utilisant un chlorure d'acide comme agent d'acylation
(Procédé A) soit par le procédé aux esters actifs utilisant l'ester 2,4,5-trichlorophénylique comme agent d'acylation
(Procédé B) décrits ci-dessus.
<EMI ID=222.1>
<EMI ID=223.1>
<EMI ID=224.1>
<EMI ID=225.1>
<EMI ID=226.1>
<EMI ID=227.1>
<EMI ID=228.1>
<EMI ID=229.1>
EXEMPLE 17
Dérivé n-tridécanoylé du noyau de A-30912A
Le mode opératoire suivant illustre la préparation à plus grande échelle des composés de formule III par le procédé aux esters actifs. Le composé particulier préparé par le mode opératoire donné ci-dessous est le composé de
<EMI ID=230.1>
A. Préparation du n-tridécanoate de 2,4,5-trichlorophényle.
On agite à la température ambiante pendant 16 heures une solution de 12,5 g d'acide n-tridécanoique
(Sigma Chemical Co.), de 11,5 g de 2,4,5-trichlorophénol et de 12,0 g de N,N-dicyclohexylcarbodiimide dans 650 ml de chlorure de méthylène. Puis on filtre le mélange réactionnel et on le sèche sous vide pour obtenir le n-tridécanoate de 2,4,5-trichlorophényle (22 g). On purifie le matériau par chromatographie sur colonne de gel de silice (Woelm) en utilisant du toluène comme éluant. On contrôle les fractions par CCM en utilisant une lumière UV à courte longueur d'onde pour la détection. On réunit les fractions contenant le produit désiré et on les concentre sous vide à siccité.
B. Acylation du noyau de A-30912A par le n-tridécanoate de
2,4,5-trichlorophényle
On agite à la température ambiante pendant 16 heures une solution de 6,0 g de n-tridécanoate de 2,4,5trichlorophényle et de 4,5 g du noyau de A-30912A dans 600 ml de diméthylformamide (DMF). L'élimination du solvant sous vide fournit un résidu (12 g). On délaie le résidu avec
500 ml de chlorure de méthylène pendant 45 minutes puis on filtre le mélange. On rejette le filtrat. On extrait les solides restants avec 500 ml de méthanol et on filtre l'extrait méthanolique et on le concentre sous vide pour obtenir un produit brut (5,0 g).
On purifie le produit brut par CLPE à phase inversée comme suit :
On injecte un échantillon du produit brut (1 g) dissous dans 5 ml de méthanol, dans une colonne en acier
<EMI ID=231.1>
La Préparation 10). On élue la colonne avec un système solvant comprenant un mélange 3:3:4 d'eau, de méthanol et d'acétonitrile. On effectue l'élution à une.pression de
69-103,5 bars avec un débit de 11-12 ml par minute en utilisant une pompe duplex LDC (Milton-Roy). On contrôle l'effluent avec un détecteur ultra-violet (ISCO-UA-5) à
280.nm. On réunit les fractions contenant le produit désiré et on les sèche sous vide. On obtient 550 mg de produit. On répète la chromatographie décrite précédemment quatre fois avec des échantillons de 1 g de produit brut pour obtenir d'autres échantillons purifiés comme suit :
620 mg, 520 mg, 670 mg et 490 mg. Poids total de produit du titre purifié : 2,8 g.
Selon les modes opératoires précédents, on fait réagir 4,0 g du noyau de A-30912A avec le n-tridécanoate de 2,4,5-trichlorophényle pour obtenir 2,6 g du produit cité en titre purifié. On réunit les matériaux des deux préparations (5,4 g). Ion masse par spectrométrie de masse à désorption de champ : (M + Na+) :
<EMI ID=232.1>
(Ce Micro Bondapak, Waters Co.) avec comme système éluant un mélange 2:1:2 d'eau, de méthanol et d'acétonitrile, ne présente qu'un pic.
EXEMPLE 18
Dérivé n-tridécanoylé du noyau de A-30912B
On agite à la température ambiante pendant 16 heures une solution du n-tridécanoate de 2,4,5-trichlorophényle (préparé comme dans l'Exemple 17, Etape A) (3,3 mmoles) et d'une mole du noyau de A-30912B (voir les Préparations 15 et 16) dans 200 ml de DMF. L'élimination du solvant sous vide fournit un résidu. On délaie le résidu avec 300 ml de chlorure de méthylène pendant 45 minutes et on filtre le mélange. On rejette le filtrat, on extrait les solides résultants avec 300 ml de méthanol et on filtre l'extrait méthanolique qu'on concentre sous vide pour obtenir un produit brut.
On purifie le produit brut par CLPE à phase inversée comme suit.
On injecte un échantillon du produit brut (1 g), dissous dans 5 ml de méthanol, dans une colonne en acier inoxydable de 2,5 x 81 cm garnie de résine LP-l/C (voir la Préparation 11). On élue la colonne avec un système solvant comprenant un mélange 3:3:4 d'eau, de méthanol et
<EMI ID=233.1>
103,5 bars avec un débit de 11-12 ml/minute en utilisant une pompe duplex LDC (Milton-Roy). On contrôle l'effilent par un détecteur ultra-violet (ISCO-UA 5) à 280 nm. On
<EMI ID=234.1>
On réunit les fractions contenant le produit désiré et on les sèche sous vide pour obtenir le produit cité en titre. On analyse le produit purifié par chromatographie sur couche mince en utilisant des plaques C18 à phase inversée
<EMI ID=235.1>
1:2:2 volume/volume d'eau, de méthanol et d'acétonitrile. Après développement, on observe les plaques sous la lumière UV pour détecter le produit,
EXEMPLE 19
En utilisant le procédé de l'Exemple 18 mais en
<EMI ID=236.1>
l'Etape A et l'ester 2,4,5-trichlorophénylique d'acide alcanolque ou alcénoique approprié dans l'Etape B, on obtient les dérivés du noyau de A-30912B indiqué ci-dessous :
Dérivés alcanoylés et alcénoylés du noyau de A-30912B
<EMI ID=237.1>
<EMI ID=238.1>
<EMI ID=239.1>
<EMI ID=240.1>
On agite à la température ambiante pendant 16 heures une solution de 3,3 mmoles de n-tridécanoate de
<EMI ID=241.1>
Etape A) et de Immole .du noyau de A-30912D (voir Préparations 17 et 18) dans 200 ml de DMF. L'élimination du solvant sous vide donne un résidu. On délaie le résidu avec
<EMI ID=242.1>
filtre le mélange. On rejette le filtrat. On extrait les solides résultants avec 300 ml de méthanol et on filtre l'extrait méthanolique qu'on concentre sous vide pour obtenir un produit brut.
On purifie le produit brut par CLPE à phase inversée comme décrit dans l'Exemple 18.
EXEMPLE 21
En utilisant le procédé de l'Exemple 20 mais en utilisant l'acide alcanoique ou l'acide alcénolque approprié
<EMI ID=243.1>
obtient les dérivés du noyau de A-30912D indiqué ci-dessous :
Dérivés alcanoylés et alcénoylés du noyau de A-30912D
<EMI ID=244.1>
<EMI ID=245.1>
EXEMPT 22
Dérivé n-tridécanoylé du noyau de A-30912H
On agite à la température ambiante pendant 16 heures une solution de 3,3 mmoles de n-tridécanoate de 2,4,5-trichlorophényle (préparé comme dans l'Exemple 17, Etape A) et de Immole du noyau de A-30912H (voir les
<EMI ID=246.1>
L'élimination du solvant sous vide donne un résidu. On délaie le résidu avec 300 ml de chlorure de méthylène pendant 45 minutes puis on filtre le mélange. On rejette le filtrat.
On extrait les solides résultants avec 300 ml de méthanol et on filtre l'extrait méthanolique qu'on concentre sous vide pour obtenir un produit brut.
Le produit brut est purifié par CLPE en phase inversée comme décrit dans l'Exemple 18.
EXEMPLE 23
En utilisant le procédé de l'Exemple 22 mais en utilisant l'acide alcanolque ou alcénoique approprié dans l'Etape A et l'ester 2,4,5-trichlorophénylique d'acide alcanoique ou alcénolque approprié dans l'Etape B, on obtient les dérivés du noyau de A-30912H indiqué ci-dessous:
Dérivés alcanoylés et alcénoylés du noyau de A-30912H
<EMI ID=247.1>
<EMI ID=248.1>
EXEMPLE 2 4
Le mode opératoire suivant illustre la préparation du dérivé N-n-tridécanoylé du noyau de A-30912H à partir du noyau de A-30912A.
On traite le noyau de A-30912A par le n-tridécanoate de 2,4,5-trichlorophényle selon le mode opératoire de l'Exemple 17. On méthyle le dérivé ainsi obtenu en traitant un échantillon (20 mg) par 0,06 ml de 3 % d'HCl dans du méthanol dans le diméthvlformamide. On laisse la solution reposer sous agitation pendant 16 heures, après quoi on chasse le solvant sous pression réduite et on obtient un résidu. On purifie le résidu par CLPE à phase inversée en
<EMI ID=249.1>
EXEMPLE 25
Dérivé n-tridécanoylé du noyau de S31794/F-1
On agite à la température ambiante pendant 16 heures une solution de 3,3 mmoles de n-tridécanoate de 2,4,5trichlorophényle (préparé comme dans l'Exemple 17, Etape A) et de 1 mmole de noyau de S31794/F-1 (voir la Préparation 21) dans 200 ml de DMF. L'élimination du solvant sous vide laisse un résidu. On délaie le résidu avec 300 ml de chlorure de méthylène pendant 45 minutes et on filtre le mélange. On rejette le filtrat. On extrait les solides restants avec
300 ml de méthanol et on filtre l'extrait méthanolique et on le concentre sous vide pour obtenir un produit brut. Le
<EMI ID=250.1>
décrit dans l'Exemple 18.
EXEMPLE 26
En utilisant le procédé de l'Exemple 25 mais en substituant l'acide alcanoique ou alcénolque approprié dans l'Etape A et l'ester 2,4,5-trichlorophénylique de l'acide
<EMI ID=251.1>
les dérivés du noyau de S31794/F-1 indiqué ci-dessous :
<EMI ID=252.1>
<EMI ID=253.1>
<EMI ID=254.1>
EXEMPLE 27
L'activité antifongique des composés de formule III peut être démontrée et étudiée in vitro dans des essais de diffusion sur disque et de dilution sur gélose classiques ou dans des essais classiques in vivo chez des souris qui. montrent l'efficacité vis-à-vis d'une infection fongique systémique. Les résultats des essais antifongiques pour des composés représentatifs de formule IV (Exemples 1 à 16) sont donnés dans les Tableaux II, III, IV et V.
<EMI ID=255.1>
l'essai in vitro des composés des Exemples 1 à 16 par des méthodes de diffusion sur disque sur plaque de gélose. Dans le Tableau II, l'activité est mesurée par la dimension
(diamètre en mm) de la zone d'inhibition du micro-organisme observée produite par le composé d'essai. Dans le Tableau III, l'activité est mesurée par la concentration inhibitrice
<EMI ID=256.1>
inhiber la croissance de l'organisme d'essai. Le Tableau IV donne les résultats de l'essai in vitro du dérivé ntridécanoylé du noyau de A-3Q912A (formule III, R5 est
<EMI ID=257.1>
la méthode de dilution sur gélose. Dans le Tableau III, l'activité est mesurée par la concentration inhibitrice minimale (CIM) de la substance (pg/ml) nécessaire pour inhiber l'organisme d'essai.
Les résultats d'essais in vivo destinés à évaluer l'efficacité du composé des Exemples 1 à 16 vis-à-vis
<EMI ID=258.1>
souris sont donnés dans le Tableau V, où l'activité est
<EMI ID=259.1>
pour guérir 50 % des animaux d'essai). Quand on n'obtient pas de DE 5,' l'activité est indiquée par la plus faible
dose à laquelle on observe un effet antifongique significatif. Dans cet essai, on infecte par voie intraveineuse par Candida albicans A-26 des groupes de souris albinos mâles (exemptes de pathogènes spécifiques) pesant de 18 à 20 g. On traite les animaux aux rayons X 24 heures avant l'infection à environ
50 roentgens par minute pendant 4 minutes (dose totale de
400) pour réduire les réactions immunologiques à l'organisme d'infection. A 0, 4 et 24 heures après l'infection, on
donne à chaque groupe de souris des doses progressives par voie sous-cutanée du composé d'essai sous forme d'une
<EMI ID=260.1>
l'eau. On note le jour de la mort pour chaque animal. Une comparaison statistique par l'essai "t" de Student du jour moyen de la mort est effectuée entre chaque groupe d'animaux infectés-traités à une dose particulière et un groupe de 10 animaux infectés non traités, pour déterminer si le traitement prolonge de façon significative la durée de.survie.
Le Tableau VI donne les résultats de l'essai des composés des Exemples 1 à 16 pour déterminer leur absorption après administration par voie orale. Dans cet essai, on
gave les souris avec une dose de 416 mg/kg du composé d'essai en suspension dans un mélange à 33 % de PEG 400 dans l'eau.
A des intervalles de temps, on prélève des échantillons de sang du sinus orbital et on détermine l'activité antibiotique comme suit : on place un disque de 7 mm contenant 20 ul de sang entier sur de la gélose ensemencée par Aspergillus
<EMI ID=261.1>
compare les zones d'inhibition provenant des échantillons de sang à une référence obtenue à partir du composé d'essai, et on calcule la quantité de composé dans l'échantillon de sang.
<EMI ID=262.1>
<EMI ID=263.1>
<EMI ID=264.1>
<EMI ID=265.1>
<EMI ID=266.1>
<EMI ID=267.1>
<EMI ID=268.1>
TABLEAU IV
Activité in vitro du dérivé n-tridécanoylé du noyau de A-30912A vis-à-vis de cinq souches de Candida albicans.
<EMI ID=269.1>
<EMI ID=270.1>
<EMI ID=271.1>
<EMI ID=272.1>
<EMI ID=273.1>
<EMI ID=274.1>
<EMI ID=275.1>
The present invention relates to novel semi-synthetic antifungal compounds which are prepared by acylation.
of cyclic peptide nuclei obtained by deacylation
cyclic peptide antibiotic enzyme
corresponding.
The cyclic peptide antibiotic is a compound
<EMI ID = 1.1>
<EMI ID = 2.1>
<EMI ID = 3.1>
Throughout this application, the formulas of the cyclic peptides,
like formula I, assume that the amino acids represented
are in L configuration.
Factors A, B, D and Il of A-30912 are
<EMI ID = 4.1>
<EMI ID = 5.1>
Antibiotic S 31794 / F-1 is a cyclic peptide
<EMI ID = 6.1>
<EMI ID = 7.1>
Each factor is isolated from the complex A30912 which contains the other factors arbitrarily called factors B, C, D, E, F and G. The complex A-30912 and the factors A to
<EMI ID = 8.1>
Antibiotic A-30912 is identical to Antibiotic A-22802 which is described in the U.S. patent. N [deg.] 4,024,246. He has. also found that factor A is identical to the antibiotic echinocandin B [see F. Benz et al., Helv.
<EMI ID = 9.1>
to the antibiotic SL 7810 / F [see C. Keller-Juslen et al. Tetrahedron Letters, 4147 (1976) and Belgian patent N [deg.] 834,289].
The factor A of the antibiotic A-30912 is prepared by aerobic immersion fermentation using one of several different organisms, namely: (a) Aspergillus rugulosus NRRL 8113; (b) Aspergillus nidulans NRRL 8112; <EMI ID = 10.1>
3860; (d) Aspergillus rugulosus NRRL 8039; or (e) Aspergillus nidulans var. roseus NRRL 11440.
Factor B has also been found to be identical to the antibiotic echinocandin C [see R. Traber et al., Helv. Chim. Acta, 62, 1252 (1979)] and the antibiotic SL 7810 / F-II [see Belgian patent N [deg.] 834,289].
The factor B of antibiotic A-30912 is prepared by aerobic immersion fermentation using one of several different organisms, namely: (a) Aspergillus
<EMI ID = 11.1>
(d) Aspergillus nidulans var. roseus NRRL 1440.
Factor D has also been found to be identical to the antibiotic echinocandin D [see R. Traber et al.,
<EMI ID = 12.1>
7810 / F-III See Belgian patent N [deg.] 834.2891.
The factor D of the antibiotic A-30912 is prepared by aerobic immersion fermentation using one of several different organisms, namely: (a) Aspergilius
<EMI ID = 13.1>
NRRL 8039 (see Belgian patent N [deg.] 834,289); or (d) Aspergillus nidulans var. roseus NRRL 11440.
Factor H is a factor of the antibiotic A-30912 discovered later, and it is described in the application for
<EMI ID = 14.1>
here by way of reference.
<EMI ID = 15.1>
fermentation using one of several different organisms, namely: (a) Aspergillus rugulosus NRRL 8113; or (b) Aspergillus nidulans var. roseus NRRL 11440.
A subculture of A. nidulans var. roseus was deposited and is part of the collection of permanent cultures of the Northern Regional Research Laboratory,
U.S. Departmcnt of Agriculture, Agricultural Research Service, Peoria, Illinois 61604, where it is available to the public
<EMI ID = 16.1>
When using a strain of A. nidulans var. roseus NRRL 11440 to produce any of the factors A-30912, we get a complex set of factors that
for convenience is called antibiotic complex A-42355. Factor A of A-30912 is the main factor in the antibiotic complex A-42355, while factors B, D and H are minor factors. The following preparations 2 to 7 illustrate the preparation of the A-42355 complex and the isolation and purification of the various factors of A-30912.
<EMI ID = 17.1>
Linoleoyl side chain (R) is attached to the cyclic peptide ring on the α-amino group of the ornithine residue. It has surprisingly been found that the linoleoyl side chain can be cut from the nucleus by an enzyme without changing the chemical integrity of the nucleus. The enzyme used to carry out the deacylation reaction is produced by a microorganism of the family Actinoplanaceae, preferably the microorganism
<EMI ID = 18.1>
<EMI ID = 19.1>
<EMI ID = 20.1>
cyclic thus obtained is separated from the fermentation broth by methods known in the art. Unlike the factors A, B, D and H of the antibiotic A-30912, the cyclic nucleus (not having the linoleoyl side chain)
is essentially free of antifungal activity.
The antibiotic S31794 / F-1, which is described in the German patent application published after examination N [deg.] 2,628,965 and in the US patent. N [deg.] 4.173.629, is produced by
<EMI ID = 21.1>
NRRL 8095. S31794 / F-1 has the following characteristics:
m.p. 178-180 [deg.] C (with decomposition) (amorphous) or 181-183 [deg.] C
(with decomposition) (crystallized); The] 20 _ 24 [deg.] (C 0.5,
<EMI ID = 22.1>
internal standard) having the following characteristics (in the crystallized state):
<EMI ID = 23.1>
<EMI ID = 24.1>
dimethyl sulfoxide and sparingly soluble in water, chloroform, ethyl acetate, diethyl ether, .benzene and hexane; and has antifungal activity, especially against Candida albicans.
The antibiotic S31794 / F-1 is prepared by aerobic culture in immersion of Acrophialophora limonispora NRRL
8095 as described in preparations 8 and 9. This microorganism is part of the permanent culture collection of the Northern Regional Research Center, US Department of Agriculture, Agricultural Research Culture Collection, North Central Region, Peoria, Illinois 61604, where it is available at public under the NRRL access number indicated.
The antibiotic S31794 / F-1 has an antifungal activity, in particular against Candida strains such as Candida albicans. Thus, the production and isolation of the antibiotic can be controlled by bioautograph using a Candida species such as Candida albicans.
In the antibiotic molecule S31794 / F-1
<EMI ID = 25.1>
surprisingly, the myristoyl side chain can be cut from the nucleus by an enzyme without harming the chemical integrity of the nucleus. The enzyme used to carry out the deacylation reaction is produced by a microorganism of the Actinoplanaceae family, preferably the microorganism Actinoplanes utahensis NRRL 12052 or one of its variants. To carry out the deacylation, the antibiotic S31794 / F-1 is added to a culture of the microorganism and the culture is allowed to incubate with the substrate until
<EMI ID = 26.1> <EMI ID = 27.1>
antifungal activity.
The cyclic peptide nuclei provided by the above-mentioned enzymatic deacylation reactions of the antibiotics of formula 1 are represented by the general formula II.
<EMI ID = 28.1>
<EMI ID = 29.1>
hydroxy groups and R is H is the nucleus of factor A of A-30912 and, for convenience, will be referred to herein as "nucleus of A-30912A". The core of A-30912A has a formula
<EMI ID = 30.1>
<EMI ID = 31.1>
H and R3 and R 4 are both OH is the nucleus of factor B of A-309L2 and, for convenience, will be called
<EMI ID = 32.1>
]
<EMI ID = 33.1>
all hydrogen atoms is the nucleus of factor D of A-30912 and will be called here for convenience "nucleus of A -30912D". The core of A-30912D has a formula
<EMI ID = 34.1>
The compound of formula II in which R, R and
<EMI ID = 35.1>
<EMI ID = 36.1>
a molecular weight of 840.87.
Removal of the side chain provides a free primary u-amino group in the ornithine residue of the cyclic peptide. As will be appreciated by those skilled in the art, the nuclei can be obtained in the form of the free amine or in the form of an acid addition salt. Although any suitable acid addition salt can be used, those which are non-toxic and pharmaceutically acceptable are preferred.
The process for preparing each nucleus from the appropriate antibiotic using a fermentation using Actinoplanes utahensis NRRL 12052 is described in the patent application filed the same day as the present patent application under N [deg. ]
Cultures of representative species of Actinopnanaceae are made available to the public at the Northern Regional Research Laboratory under the following access numbers:
<EMI ID = 37.1>
The effectiveness of any given strain of microorganisms belonging to the family of Actinoplanaceae for carrying out the deacylation of this invention is determined by the following procedure. An appropriate culture medium is inoculated with the microorganism. We
<EMI ID = 38.1>
days on a rotary shaker. Then one of the antibiotics used as a substrate is added to the culture. The pH of the fermentation medium is maintained at around 6.5. We control
culture for its activity using analysis by Candida albicans. The loss of antibiotic activity is an indication that the microorganism has produced the enzyme necessary for deacylation. This should however be checked using one of the following methods: 1) analysis by high pressure liquid chromatography to determine the presence of the intact nucleus; or 2) re-acylation with an appropriate side chain (eg linoleoyl, stearoyl, palmitoyl or myristoyl) to restore activity.
It is known that other antibiotic substances have the same nucleus as that of factor A of antibiotic A-30912. These antibiotics differ from factor A of antibiotic A-30912 in that different acyl groups are present in place of the linoleoyl group.
(R) of formula I. Such antibiotics are: (a)
<EMI ID = 39.1>
2459 (1974), a compound which is described by formula 1 when R is a stearoyl group; and (b) aculaecin A, which is a component of the aculaecin complex (prepared by fermentation using Aspergillus aculcatus NRRL 8075)
and is described in the U.S. patent. N [deg.] 3,978,210. As described in Belgian patent N [deg.] 859,067, in aculaecin A, the palmitoyl side chain is present in place of the linoleoyl group. Factor A of tetrahydrogenated A-30912 can be prepared from factor A of A-30912 by
<EMI ID = 40.1>
<EMI ID = 41.1> <EMI ID = 42.1>
used as substrates for enzymatic deacylation using the procedures described here.
<EMI ID = 43.1>
antibiotic has the same nucleus as factor B of antibiotic A-30912. This substance, which differs from factor B of antibiotic A-30912 in that a different aayle group is present in place of the linoleoyl group R of formula I, is factor B of tetrahydrogenated A-30912 (tetrahydro-SL 7810 / F-II; tetrahydro
<EMI ID = 44.1>
stearoyl group. Factor B of tetrahydrogenated A-30912
<EMI ID = 45.1>
catalytic hydrogenation using Pt02 in ethanol under positive pressure. Factor B of tetrahydrogenated A-30912 can be used as a substrate in place of factor B of antibiotic A-30912 for enzymatic deacylation using the procedures described herein.
We also know that another antibiotic substance
<EMI ID = 46.1>
substance, which differs from factor D of antibiotic A-30912 in that a different acyl group is present in place of the linoleoyl (R) group of formula I, is
<EMI ID = 47.1>
of tetrahydrogenated A-30912 is described by formula I when R is a stearoyl group. Factor D of tetrahydrogenated A-30912 can be prepared from factor D of antibiotic A-30912 by catalytic hydrogenation to
<EMI ID = 48.1>
tetrahydrogenated A-30912 factor D can be used as a substrate in place of the antibiotic factor D-A-30912 for enzymatic deacylation using the procedures described herein.
In factor II of antibiotic A-30912, the 5-hydroxy group present in the dihydroxy residue
<EMI ID = 49.1>
factor A of antibiotic A-30912, the 5hydroxy group is not substituted. So we will see that we can
<EMI ID = 50.1>
factor A according to conventional methods for preparing an aliphatic ether from an alcohol. It will also be seen that the factor A can be alkylated with other lower alkyl groups to form homologs with alkyloxy groups of the factor H molecule. The homologs with alkyloxy groups of factor H which can be synthesized from factor A, are known as factor H type homologs of A-30912. Compounds of
<EMI ID = 51.1>
a C2-C6 alkyloxy group are here called as
<EMI ID = 52.1>
It will also be seen that the linoleoyl side chain of factor Il of A-30912 or of factor H type homologs of A-30912 can be hydrogenated according to conventional techniques to form the H factor of A-30912 tetrahydrogen or the corresponding tetrahydrogen derivative of homologs at
<EMI ID = 53.1>
first the factor A of the antibiotic A-30912 to obtain the factor A of tetrahydrogenated A-30912 then by forming the desired alkyloxy derivative.
<EMI ID = 54.1>
A-30912, the H factor of tetrahydrogenated A-30912, a
<EMI ID = 55.1>
C2-C6 alkyloxy group can be used as substrate for enzymatic deacylation using the procedures described here.
The invention which is the subject of the present patent application comprises new compounds obtained by acylation of a nucleus of formula II. The compounds of the
<EMI ID = 56.1>
the general formula III
<EMI ID = 57.1>
in which :
<EMI ID = 58.1>
<EMI ID = 59.1>
not be an n-tridecyl, n-tetradecyl, n-penta- group
<EMI ID = 60.1>
<EMI ID = 61.1>
heptadecyl and, when R is an alkenyl group, R
<EMI ID = 62.1>
<EMI ID = 63.1>
provided that, when R is an alkyl group, R cannot <EMI ID = 64.1>
when R <1> and R are both OH, R <2> is H and R is ur. C -Cg alkyloxy group (compound of type A-30912H), R is a C6 -C24 alkyl or alkenyl group
<EMI ID = 65.1>
that, when R is an alkyl group and R a methoxy group, R cannot be an n-heptadecyl group;
<EMI ID = 66.1>
(S31794 / F-1), R 5 is a C6-C24 alkyl or C6-C24 alkenyl group, provided that, when R is a group
<EMI ID = 67.1>
The expression "alkyl" denotes a hydrocarbon radical with a straight or branched chain, saturated and monovalent. The expression "alkenyl" denotes a hydrocarbon radical with a straight or branched chain, unsaturated and monovalent, containing not more than three double bonds. The double bonds of the unsaturated hydrocarbon chain
<EMI ID = 68.1>
a hydrocarbon (straight or branched chain) containing from 6 to 24 carbon atoms is designated.
In secondary aspects, taking into account the preceding restrictions, the invention contemplates the following preferred compounds of formula III: <EMI ID = 69.1> <EMI ID = 70.1>
integer from 5 to 23.
<EMI ID = 71.1> alkyl of formula CH3 (CH2) n- 'where n is an integer from 10 to 20.
(c) Compounds where R is an alkyl group <EMI ID = 72.1>
each independently an integer from 0 to 21 provided that the sum n + m is not
<EMI ID = 73.1> <EMI ID = 74.1> alkenyl containing a cis or trans double bond.
(e) The compounds in which R is a cis or trans alkenyl group of formula
<EMI ID = 75.1>
where n and m are independently an integer from 0 to 21, provided that the sum n + m is not less than 3 and not more than 21.
(f) Compounds in which R is an alkenyl group containing two cis or trans double bonds.
(g) Compounds where R5 is an alkenyl group
cis or trans of formula
<EMI ID = 76.1>
where n and p are independently an integer from 0 to 18 and m is an integer from 1 to 19, provided that the sum m + n + p is not less than 1 and not more than 19 and that RS cannot be a linoleoyl group.
(h) The compounds in which R is:
<EMI ID = 77.1> <EMI ID = 78.1>
t-butoxy, n-pentyloxy, n-hexyloxy, etc.
In particular, the invention provides a cyclic peptide compound of formula:
<EMI ID = 79.1>
in which R is H or OH and
<EMI ID = 80.1>
or both OH,
and
<EMI ID = 81.1>
C -Cg alkyloxy group and R 4 is OH, or R <2>
<EMI ID = 82.1>
and
<EMI ID = 83.1>
cannot be an n-tridecyl group ,, <EMI ID = 84.1>
123
two OH, or when R, R, R and R are all H, or
<EMI ID = 85.1>
<EMI ID = 86.1>
alkyl, R cannot be an n- group
<EMI ID = 87.1>
<EMI ID = 88.1>
<EMI ID = 89.1>
-CO-NH2 and R an alkyl group, R cannot be an n-tridecyl group.
The compounds of formula III inhibit the growth of pathogenic fungi such as. highlight standard biological test procedures. The compounds are therefore useful for controlling the growth of fungi on environmental surfaces (as an antiseptic) or in the treatment of infections caused by fungi. The antifungal activity of the compounds has been demonstrated against Candida albicans in vitro in disk diffusion tests on agar plate and dilution tests on agar, or in in vivo tests on mice infected with C albicans. The compounds are thus particularly useful for the treatment of infections caused by strains of C. albicans
(candidiasis).
The compounds of formula III also exhibit in vitro activity in disk diffusion tests on agar plate with respect to Tricophyton mentagrophytes, a dermatophyte organism. Activity has also been found in disk diffusion tests on in vitro agar plates against Saccharomyces pastorianus and Neurospora crassa. Certain compounds (as shown in Example 27, Table V) give significant blood levels after oral administration in mice.
When a dog is administered intravenously 100 mg / kg daily for five days of the compound
<EMI ID = 90.1>
H and R5 is an n-dodecyl group (that is to say the n-tridecanoyl derivative of the nucleus of A-30912A), the dog shows no external signs of toxicity, although we observe ni. increased serum glutamo-pyruvic transaminase and some hemolysis.
The compounds of formula III are prepared by acylating the appropriate nucleus on the α-amino group of ornithine by the appropriate alkanoyl or alkenoyl side chain using methods known in the art to form an amide bond. The acylation is generally carried out by reacting the nucleus with an activated derivative of alkanoic acid
<EMI ID = 91.1>
desired acyl (R 5 CO-). The expression “activated derivative” denotes a derivative which makes the carboxy function of the acylating agent reactive to coupling with the amino group.
primary to form the amide bond which links the acyl side chain to the nucleus. Appropriate activated derivatives, their preparation methods and their methods of use as acylating agents of a primary amine are known to those skilled in the art. The preferred activated derivatives are: (a) an acid halide (for example an acid chloride); (b) an acid anhydride (for example an alkoxyformic acid anhydride or an aryloxyformic acid anhydride) or (c) an activated ester (a 2,4,5-trichlorophenyl ester). Others
<EMI ID = 92.1>
reaction of the carboxylic acid with a carbonyl-diimide
(for example N, N-dicyclohexylcarbodiimide or N, N'diisopropylcarbodiimide) to form a reactive intermediate which due to its instability is not isolated, the reaction with the primary amine being carried out in situ.
A preferred method of preparing the compounds of formula III is the active ester method. The use of the 2,4,5-trichlorophenyl ester of the desired alkanoic or alkenol acid as the acylating agent is much preferred. In this process, an excess is reacted
<EMI ID = 93.1>
in a non-reactive organic solvent such as dimethylformamide (DMF). The reaction time is not critical, although a time of about 6 to about 10 days is preferred.
20 hours. At the end of the reaction, the solvent is removed and
the residue is purified as by liquid chromatography under high pressure (CLPE) in reverse phase using LP-1 / C.g as fixed phase and a mixture of water, methanol and acetonitrile as solvent system.
A preferred acylation process is a modified Schotten-Baumann procedure in which the nucleus is treated with the acid chloride of the desired alkanol or alkenol acid.
at an alkaline pH. In this process, a
excess of acid chloride in a non organic solvent
reagent (like acetone) to a solution of the nucleus in a
<EMI ID = 94.1>
crude reaction product of the reaction medium by extraction in an immiscible organic solvent (chloroform and
ethyl acetate). Final purification is done by CLPE
reverse phase, as described above.
A process for the preparation of type A-30912H derivatives of formula III is as follows: (a) deacylation of factor A of the antibiotic A-30912 enzymatically using Actinoplanes utahensis NRRL 12052 as described in patent application N [ deg.] filed on the same day as the present patent application, the description of which is incorporated herein by reference, (b) acylation of the core of A-30912A thus produced with the acyl group constituting the appropriate side chain using the process described above for acylation of the core of A-30912H, and (c) alkylation of the appropriate acyl derivative of the core of A-30912A to form the desired alkyloxy derivative. The alkylation (Step C) can be carried out using methods which are conventional for the preparation of an aliphatic ether from an alcohol.
For example, the appropriate acyl derivative of the core of A-30912A can be methylated by treating a solution of the derivative in an organic solvent <EMI ID = 95.1>
in the presence of an acid (for example 3% HCl in methanol). The product can be isolated by conventional methods and purified by reverse phase CLPE.
<EMI ID = 96.1>
as starting materials for the acylation reaction and their activated derivatives (in particular acid chlorides and 2,4,5-trichlorophenyl esters) are known compounds or can be prepared from known compounds by methods known. 2,4,5-trichlorophenyl esters are conveniently prepared by treating the
<EMI ID = 97.1>
trichlorophenol in the presence of pyridine or by treating free alkanol or alkenol acid with 2,4,5-trichlorophenol
<EMI ID = 98.1>
copulation agent. The 2,4,5-trichlorophenyl ester derivative can be purified by chromatography on a column of silica gel in toluene.
When used systemically, the dose of the compounds of formula III will vary depending on the particular compound being used, the severity and nature of the infection and the physical condition of the subject being treated. Therapy should be started at low doses, the dose being increased until the desired antifungal effect is obtained. The compounds can be administered intravenously or intramuscularly by injection in the form of a sterile aqueous solution or suspension to which can be added, if desired, various conventional pharmaceutically acceptable agents such as preservatives, buffers, solubilization or suspension. Other additives, such as saline or glucose, can be added to make the solutions isotonic.
The proportions and the nature of these additives will be obvious to those skilled in the art.
Certain compounds of formula III give significant blood levels after oral administration (see Example 27) and can be administered systemically orally. For oral use, such compounds can be administered in combination with pharmaceutical carriers or excipients
<EMI ID = 99.1>
The nature and proportion of these supports or excipients will be known to those skilled in the art.
When used to treat vaginal infections caused by Candida, the compounds of formula III can be administered in combination with standard pharmaceutically acceptable excipients
suitable for intravaginal use. Compositions designed for intravaginal administration are known to those of skill in the art.
<EMI ID = 100.1>
present in vent ion are illustrated in the following examples:
Preparation 1
Fermentation of Actinoplanes utahensis NRRL 12052
We are preparing a mother culture of Actinoplanes
utahensis NRRL 12052 and maintained on an inclined agar culture. The medium used to prepare the tilted culture is chosen from one of the following:
Middle A
<EMI ID = 101.1>
the pH before autoclaving is approximately 5.9; the fold is adjusted to 7.2 by addition of NaOH; after autoclaving, the pH is approximately 6.7.
<EMI ID = 102.1>
<EMI ID = 103.1>
Middle B
<EMI ID = 104.1>
<EMI ID = 105.1>
<EMI ID = 106.1>
Jersey, U.S.A.
The tilted culture is inoculated with Actinoplanes utahensis NRRL 12052, and the inoculated culture is incubated at 30 [deg.] C for approximately 8-10 days. About half of the culture is used to inoculate 50 ml of a vegetative medium having the following composition:
<EMI ID = 107.1>
adjust to pH 7.4 with NaOH; after autoclaving. the pH is around 6.8.
<EMI ID = 108.1>
New York, U.S.A.
The inoculated vegetative medium is incubated in
<EMI ID = 109.1>
for approximately 72 hours on an agitator rotating on an arc 5 cm in diameter at 250 revolutions per minute.
This directly incubated vegetative medium can be used to inoculate a second stage vegetative medium.
<EMI ID = 110.1>
by maintaining the culture in the vapor phase of liquid nitrogen. The culture is prepared for such storage in shady small bulbs as follows:
2 ml of incubated vegetative medium and 2 ml of a glycerol and lactose solution are placed in each ampoule [see W.A.
<EMI ID = 111.1> .organisms in the Gas Phase of Liquid Nitrogen, Cryobiol 10,
364-367 (1973) for details]. The suspensions thus prepared are stored in the vapor phase of liquid nitrogen.
A conserved suspension (1 ml) thus prepared is used: for: inoculating 50 ml of a first vegetative medium
<EMI ID = 112.1>
incubate as previously described the first stage inoculated vegetative medium.
To obtain a larger volume of inoculum, we
<EMI ID = 113.1>
to inoculate 400 ml of a second stage vegetative medium having the same composition as the first stage vegetative medium. The second stage medium is incubated in a
<EMI ID = 114.1>
approximately 48 hours on an agitator rotating with an arc of 5 cm in diameter at 250 revolutions per minute.
The incubated second stage vegetative medium (800 ml), prepared as described above, is used to inoculate
100 1 of a sterile production medium chosen from one
of the following:
Middle 1
<EMI ID = 115.1>
The pH of the medium is approximately 6.9 after sterilization
<EMI ID = 116.1>
pressure of approximately 1.1 to 1.24 bar.
Middle II
<EMI ID = 117.1>
Deionized water q.s.p. 1 litre
<EMI ID = 118.1>
<EMI ID = 119.1>
Middle III
<EMI ID = 120.1>
<EMI ID = 121.1>
The final pH is around 6.6.
The inoculated production medium is left to ferment <1> in a 165 1 fermentation tank at a temperature of approximately 30 [deg.] C for approximately 42 hours. The fermentation medium is stirred with conventional stirrers at about 200 revolutions per minute and it is aerated with sterile air to maintain the dissolved oxygen level above 30% at air saturation at atmospheric pressure .
Preparation 2
Preparation of the antibiotic mixture A-42355
A. Fermentation in shaken flask
A culture of Aspergillus nidulans var. roseus NRRL 11440 and it is maintained on an inclined agar of 18 x 150 ml, prepared with a medium having the following composition:
<EMI ID = 122.1>
<EMI ID = 123.1>
(initial pH 6.1)
<EMI ID = 124.1>
The tilted culture is inoculated with Aspergillus nidulans var. roseus NRRL 11440 then the culture is incubated at 25 [deg.] C for about seven days. Cover the ripe slanted crop with water and scrape it off with a handle
sterile to release spores. The resulting suspension is then suspended in 10 ml of sterile deionized water.
1 ml of the tilted suspension culture is used to inoculate 55 ml of vegetative medium in a vial of
250 ml. The vegetative medium has the following composition:
<EMI ID = 125.1>
<EMI ID = 126.1>
The inoculated vegetative medium is incubated at 25 [deg.] C for 48 hours, at 250 revolutions per minute, on an agitator.
rotary type. After 24 hours, the medium is homogenized for one minute at low speed in a mixer
(Waring type), then incubate it again for the remaining 24 hours. Alternatively, the inoculated vegetative medium can be incubated for 48 hours and then homogenized for 15 seconds at low speed.
This incubated vegetative medium can be used to inoculate a fermentation culture medium in a shaken flask or to inoculate a second stage vegetative medium. It can also be stored for later use, keeping the culture in the vapor phase of nitrogen
liquid. The culture is prepared for this conservation in numerous small ampoules, as follows:
The volume / volume vegetative cultures are mixed with a suspension solution having the following composition:
<EMI ID = 127.1>
The prepared suspensions are distributed in small sterile tubes with screw caps (4 ml per tube). These tubes are kept in the vapor phase of liquid nitrogen.
A preserved suspension thus prepared can be used to inoculate tilted cultures or liquid seed media. The tilted cultures are incubated at 25 [deg.] C in the light for 7 days.
B. Fermentation in tanks
To obtain a larger volume of inoculum, 10 ml of the incubated first stage vegetative culture are used to inoculate 400 ml of a second stage vegetative growth medium having the same composition as that of the vegetative medium. The second stage medium is incubated in a two-liter wide-mouth Erlenmeyer flask, at
25 [deg.] C for 24 hours, on a stirrer rotating with an arc of 5 cm in diameter at 250 revolutions per minute.
The incubated second stage medium (800 ml), prepared as described above, is used to inoculate 100 liters of a sterile production medium chosen from one of the following:
Middle IV
<EMI ID = 128.1>
<EMI ID = 129.1>
(initial pH 6.8-7.0)
<EMI ID = 130.1>
<EMI ID = 131.1>
Middle V
<EMI ID = 132.1>
The inoculated production medium is left to ferment in a 165 l fermentation tank at a temperature of 25 [deg.] C for 7 days. The fermentation medium is aerated with sterile air, keeping the dissolved oxygen level above about 50% of the air saturation.
C. Third stage vegetative medium
If the fermentation is carried out in larger tanks than those used for fermentation by
100 liters, it is recommended to use a third stage vegetative culture to seed the larger tank. A preferred third stage vegetative environment
has the following composition:
<EMI ID = 133.1>
<EMI ID = 134.1>
Preparation 3.
Separation of the antibiotic mixture A-42355
The whole fermentation broth (4127 liters), obtained by the process described in Example 1, is carefully stirred using production medium II, with
4,280 liters of methanol for one hour, then filtered, using a filter aid (Hyflo Supercel, diatomaceous earth, Johns-Manville Products Corp.). The pH of the filtrate is adjusted to 4.0 by adding 5N HCl. The acidified filtrate is extracted twice with equal volumes of chloroform. The chloroform extracts are combined and concentrated in vacuo to a volume of 20 liters. This concentrate is added 3,200 liters of diethyl ether to precipitate the mixture A-42355. The precipitate is separated by filtration and 2775 g of mixture A-42355 are obtained in the form of a gray-white powder.
Separation and identification of factors of A-30912
Preparation 4
Separation of factor A from A-30912
1 g of the antibiotic mixture A-423S5, prepared as described in Preparations 2 and 3, is dissolved in 7 ml of a 7: 2: 1 mixture of methanol, water and acetonitrile. This solution is filtered and introduced into a glass column 3.7 cm in internal diameter and 35 cm in length [CLFPCE Chromatography Column :: (low pressure liquid chromatography with high characteristics) MichelMiller, Ace Glass Incorporated , Vineland, NJ 08360] topped with
<EMI ID = 135.1>
microns), which was prepared as described in Preparation <EMI ID = 136.1>
with valves. The column is packed in the 7: 2: 1 system with methanol, water and acetonitrile, using the suspension packing procedure described in Preparation 11.
An F.M.I. with piston design without valves
(maximum flow rate 19.5 ml / minute) is used to move the solvent in the column at a flow rate of 9 ml / minute at 7 bars, fractions being collected every minute. The elution of the antibiotic is controlled at 280 nm using a UV control device (ISCO Model UA-5, Instrument Specialist Co., 4700 Superior Ave., Lincoln, Nebraska 68504) equipped with an optical unit (ISCO Type 6).
Preparation 5
Separation of factor B from A-30912
The mixture A-42355 is separated as described in Preparation 3, but the concentrated chloroform extracts (285 1) are chromatographed on a column of silica gel (150 1 of Grace silica gel, quality 62) at a flow rate of 2 1 /minute. The column is washed with 200 liters of chloroform, eluted with 500 liters of acetonitrile, then
it is continuously eluted with a 98: 2 mixture of acetonitrile and water at a rate of 1 l / minute. Fractions having a volume of 200 liters are collected and analyzed separately to determine their biological activity. Analysis. biological is carried out by an analysis on paper disc on agar plate, seeded with Candida albicans. Fractions 77 to 103 (1365 liters) are combined and concentrated in vacuo. The concentrated solution (4.5 liters) contains a precipitate which is removed by filtration and 119 g of mixture A-42355 enriched in factor B are obtained. The filtrate is concentrated to dryness. The residue obtained is redissolved in an appropriate volume of methanol. The methanolic solution is added to 10 volumes of diethyl ether to precipitate the antibiotic complex containing factor B.
This precipitate is also separated by filtration and dried, and an additional 24 g of mixture is obtained
A-42355 enriched with factor B in the form of a gray powder.
The mixture A-42355 enriched in factor B thus obtained <EMI ID = 137.1>
methanol, water and acetonitrile. This solution is filtered and introduced on a column of silica gel (Michel-Miller column of 3.7 cm internal diameter x 33 cm) by; through a loop using a valve system. The column is packed with a reverse phase resin of silica gel LP-1 / C18 (10-20 microns) prepared as described in Preparation 10, using the 7: 2: 1 mixture of methanol, water and acetonitrile, as described in Preparation 11.! The solvent moves through the column at a flow rate of 10 ml /. minute at about 7 bar, using an FMI piston pump without valves. A fraction is collected every minute. The elution of the antibiotic is monitored at 280 nm as in Preparation 15. The fractions 102-110 are combined and concentrated in vacuo to obtain an oil.
The oil is dissolved in a small volume of t-butanol and lyophilized, giving 22 mg of factor B of A-30912.
Preparation 6
Isolation of factor D from A-30912
The concentrated chloroform extracts from two fermentation tests (3800 1 and 4007 1) obtained by the process described in Preparation 3 are combined and chromatographed on a column of silica gel (Grace, quality 62). The column is washed with chloroform and then eluted with aceto-
<EMI ID = 138.1>
collects fractions having a volume of approximately 200 l and they are subjected to a biological analysis on paper disc on agar seeded with Candida albicans. We join the fractions
<EMI ID = 139.1>
concentrated solution (0.7 1) containing 10 volumes of diethyl ether to precipitate the mixture A-42355 enriched in factor D. This precipitate is removed by filtration and dried, which gives 32 g of mixture A-42355 enriched in factor D in the form of a gray powder.
The A-42355 mixture enriched in factor D thus obtained (1.0 g) is dissolved in 5 ml of a 7: 2: 1 mixture of methanol, water and acetonitrile. This solution is filtered and introduced onto a column of silica gel (Michel column <EMI ID = 140.1>
<EMI ID = 141.1>
The column was packed with reverse phase gel resin.
<EMI ID = 142.1>
Preparation 10. The packing was carried out in a 7: 2: 1 mixture of methanol, water and acetonitrile, according to the packing procedure of Preparation 11. The solvent moves through the column at a flow rate of 8 ml / minute at approximately 3.1 bar, using an FMI pump with piston design
<EMI ID = 143.1>
The elution of the antibiotic is controlled at 280 nm as described in Preparation 4. The fractions 96-108 are combined and concentrated in vacuo to obtain an oil. We dissolve this oil in a small volume of t-butanol and
<EMI ID = 144.1>
Preparation 7
Separation of factor H from A-30912
5.0 g of the antibiotic mixture A-42355, prepared as described in Preparations 2 and 3, are dissolved in 35 ml of the 7: 2: 1 mixture of methanol, water and acetonitrile, the resulting solution is filtered and it is introduced on a glass column of 3.7 cm inside diameter x 42 cm
(Michel-Miller column) via a loop using a valve system. The column is lined with
<EMI ID = 145.1>
microns) (Preparation 10) in a 7: 2: 1 mixture of methanol, water and acetonitrile as described in Preparation 11. The solvent moves through the column at a flow rate of 13 ml / minute at approximately 8.3 bars , using an FMI pump with piston design without valves, and a fraction is collected every two minutes. The elution of the antibiotic is monitored at 280 nm as described in Preparation 19, paragraph C. Fractions 112-132 are combined with fractions 106-117 of a second similar purification. The combined fractions are concentrated in vacuo to an oil. The oil is dissolved in a small volume of t-butanol
<EMI ID = 146.1>
A-30912.
<EMI ID = 147.1>
in 8 ml of a 7: 2: 1 mixture of methanol, water and
<EMI ID = 148.1>
reintroduced onto a glass column of 2.0 cm internal diameter x 32 cm, as described above. The solvent moves through the column at a flow rate of 8 ml / minute at about 5.5 bar, and a fraction is collected every 3 minutes. The elution of the antibiotic is monitored at 280 nm. Fractions 17 and 18 are combined and concentrated in vacuo to obtain an oil. The oil is dissolved in a small volume of t-butanol and lyophilized to obtain 29 mg of factor 11 of A-30912. Identification of A-30912 factors
Can the different factors of A-30912 be identified? by thin layer chromatography (TLC). The Rf
<EMI ID = 149.1>
silica (Merck, Darmstadt), a 7: 3 3 solvent system of benzene and methanol and a bioautographer by Candida albicans are shown in Table VII.
TABLE VII
<EMI ID = 150.1>
<EMI ID = 151.1>
A-30912 in different solvent systems, using a TLC on silica gel (silica gel plates n [deg.] 60 from Merck Darmstadt, 20 x 20 cm) and a bioautograph by Candida albicans, are given in Table VIII .
<EMI ID = 152.1>
<EMI ID = 153.1>
Solvent systems
a ethyl acetate: methanol (3: 2)
b: ethyl acetate: methanol (7: 3)
c acetonitrile: water (95: 5)
<EMI ID = 154.1>
<EMI ID = 155.1>
following conditions:
<EMI ID = 156.1>
Injection loop injection
The approximate retention times for factors A,
<EMI ID = 157.1>
Table IX.
TABLE IX
<EMI ID = 158.1>
Preparation 8
Preparation of the antibiotic S31794 / F-1
<EMI ID = 159.1>
by immersion of Acrophialophora limonispora NRRL 8095, stirring, stirring and / or aerating at pH 3-8, preferably 5-7,
<EMI ID = 160.1>
hours, preferably 120 to 288 hours.
The antibiotic S31794 / F-1 is isolated by treating the culture broth (90 L) with a 4: 1 mixture (90 L) of ethyl acetate and isopropanol and homogenizing
<EMI ID = 161.1>
organic phase and evaporated under vacuum at about 40 [deg.] C. The residue thus obtained is chromatographed on approximately ten times its quantity of silica gel, using mixtures of chloroform and methanol (95: 5 to 60:40). The fractions which have an antifungal activity are combined and they are chromatographed on 100 times their quantity of "Sephadex LH-20" with methanol. The fractions coming from the Sephadex column and which have an antifungal activity are combined and rechromatographed on 100 times their quantity of silica gel (0.05-0.2 mm) with a solvent system
71: 25: 4 of chloroform, methanol and water. The eluted fractions which have an antifungal activity are combined and evaporated under vacuum to obtain the crude antibiotic
<EMI ID = 162.1>
methanol and precipitated with diethyl ether to obtain S3J794 / F-1 in the form of an amorphous powder
<EMI ID = 163.1> vacuum pushes 3 25-30 [deg.] C. Crystallization from ten times its 80: 12: 8 mixture volume of ethyl acetate, methanol and water gives crystallized S31794 / F-1, m.p. 181-183 [deg.] C with decomposition after drying under high vacuum at 20 [deg.] C.
Preparation 9
Separation of antibiotic S31794 / F-1
<EMI ID = 164.1>
as described in Preparation 8 after chromatography on Sephadex, on a silica gel column (Michel column
<EMI ID = 165.1>
with valves. The slurry packing procedure described in Preparation 11 is used. The solvent is moved through the column using an FMI pump with a piston design without valves. The elution of the antibiotic is monitored using a UV monitor at
280 nm as in Preparation 22. The fractions having an antifungal activity are combined and concentrated in vacuo to obtain the antibiotic S31794 / F-1.
S31794 / F-1 has the following Rf by chromatography on a thin layer of silica gel (Merck, 0.25 mm):
<EMI ID = 166.1>
S31794 / F-1 can also be detected by iodine vapor.
Preparation 10
Preparation of reverse silica gel resin /
C18
Step 1: Hydrolysis
'1000 g of LP-1 silica gel (Quantum Corp., now Whatman) is added to a mixture of 1650 ml of concentrated sulfuric acid and 1650 ml of concentrated nitric acid in a 5 l round bottom flask and the mixture is stirred to obtain an appropriate suspension. The mixture is heated on a steam bath overnight (16 hours) with a water-cooled refrigerant attached to the flask.
The mixture is cooled in an ice bath and carefully filtered using a sintered glass funnel. Wash the silica gel with deionized water
<EMI ID = 167.1>
of acetone and dried under vacuum at 100 [deg.] C for two days.
Step 2: First silylation
The dry silica gel from Step 1 is transferred to a round bottom flask and suspended in 3.5 1 of toluene. The flask is heated in a steam bath for two hours to remove all the residual water by azeotropic distillation. 321 ml of octadecyltrichlorosilane (Aldrich Chemical Company) is added, and the reaction mixture is heated at reflux overnight (16 hours)
<EMI ID = 168.1>
prevent the agitator from being too close to the bottom of the flask, to avoid crushing of the silica gel particles.
The mixture is allowed to cool. The silanized silica gel is collected, washed with 3 1 of toluene and 3 1 of acetone, then air-dried overnight (16-20 hours). The dried silica gel is suspended in 3.5 l of a 1: 1 mixture of acetonitrile and water in a 5 l flask, stirred carefully at room temperature for two hours, filtered, wash with 3 l of acetone and air dry overnight.
Step 3: Second silylation
The procedure for the first silylation is repeated using 200 ml of octadecyltrichlorosilane. We
<EMI ID = 169.1>
while shaking carefully. The final product is collected by filtration, washed with 3 1 of toluene and 6 1 of
<EMI ID = 170.1>
(16-20 hours).
Preparation 11
Suspension packing procedure for Michel-Miller columns General information
This procedure is used to garnish a
<EMI ID = 171.1>
that prepared by the process of Preparation 10.
In general, a pressure of less than 14 bars and flow rates of between 5 and 40 ml / minute are necessary for this suspended packing technique; this depends on the volume and dimensions of the column. The packing pressure must be higher than the pressure used during the actual separation by 2 to 3.5 bars; this ensures that no subsequent packing of the adsorbent occurs during the separations.
A sudden decrease in pressure can cause cracks or channels in the packing material, which would significantly reduce the efficiency of the column. It is therefore important to allow the pressure to slowly drop to zero each time the pump is stopped.
Approximate volume of columns (Ace glass columns, Category No., not filled): 5795-04, 12 ml;
5795-10, 110 ml; 5795-16, 300 ml; 5795-24, 635 ml; and 5796-
34, 34 ml.
The time required to garnish a glass column can vary from a few minutes to a few hours, depending on the size of the column and the operator's experience. Steps :
1. Connect the glass column to a tank column by a coupling (the volume of the tank column must be
<EMI ID = 172.1>
vertically with the tank column above.
2. Weigh the packing material (100 g for 200 ml of column).
3. Add approximately 5 volumes of solvent to the packing material; use a mixture of 70-80% methanol and 20-
30% water.
4 .. Shake well until all the particles are wet, leave to stand overnight or longer to ensure complete impregnation of the particles by the solvent. Decant the supernatant liquor.
5. Dissolve the resin with sufficient solvent to fill the tank column. Quickly pour into the tank. The column must be pre-filled with the same solvent and the reservoir column must be partially filled with the solvent before pouring the suspension.
The use of larger suspension volumes can also give good results; however, this requires
(a) a larger tank or (b) more than one filling of the tank during the filling operation.
6. Close the tank with the Teflon plug below the column (see Figure 1 of the U.S. Patent.
N [deg.] 4,131,547, plug N [deg.] 3); connect to the pump; and immediately begin pumping solvent into the devices at maximum flow if using an Ace Cat pump. No. 13625-25, or a similar solvent delivery system (20.ml/minute).
7. Continue until the column is completely filled with adsorbent. The pressure must not exceed the maximum tolerance of the column during this operation
(14 bars for large columns and 21 bars for analytical columns). In most cases, pressures below 14 bar will be sufficient.
8. If the pressure exceeds the maximum values, reduce the flow and the pressure will decrease.
9. After filling the column with adsorbent, stop the pump; let the pressure drop to zero; disconnect the tank; replace the tank with a pre-column; <EMI ID = 173.1> of adsorbent, and pump at maximum pressure until the column is completely packed. For additional information, see the general procedure. Always allow the pressure to drop slowly after stopping the pump; this will prevent the formation of any preferential cracks or channels in the packing material.
10. Remove the pressure and carefully disconnect the pre-column. With a small spatula, remove a few millimeters (2-4) of packing at the top of the column; place 1 or 2 filters at the top of the column; press gently to the top of the mating material, and place a Teflon plug at the top of the column until the seal is confirmed. Connect the column to the pump, introduce the pressure (generally less than 14 bars) and observe through the glass wall at the top of the column if the resin settles more. If the packing material must continue to deposit (this can be the case with large columns), a certain dead space will appear or else, preferential channels will form and step 9 must be repeated.
Preparation 12
Preparation of the core of A-30912A
A. Deacylation of factor A of antibiotic A-30912
Fermentation of A. utahensis is carried out as described in Preparation 1, using the medium of
<EMI ID = 174.1>
incubate the production medium for approximately 42 hours. A quantity of factor A of A-30912 is added to the fermentation medium (340 g of raw substrate which contains approximately
19.7 g of factor A of A-30912, dissolved in 1.5 l of ethanol). We control the deacylation of factor A of A-
30912 by titration against Candida albicans. The fermentation is allowed to continue until complete deacylation as shown by the disappearance of the activity vis-à-vis C.
albicans.
B. Separation of the core from A-30912A
The whole fermentation broth (100 liters) is filtered, obtained as described in paragraph A and containing
<EMI ID = 175.1>
clear thus obtained (approximately 93 1) on a column containing 4.5 1 of HP resin (very porous polymer DIAION, HP-Series, Mitsubishi Chemical Industries Limited, Tokyo, Japan) at a flow rate of 200 ml / minute. The effluent thus obtained is rejected. Then the column is washed with up to eight volumes (volume of
<EMI ID = 176.1>
residual filtered broth. This washing water is rejected. Then the column is eluted with a 7: 3 solution of water and methanol (85 l) at a flow rate of 200-300 ml / minute.
The elution is checked using the following procedure: or. take two aliquots of each eluted fraction. One of these parts is concentrated to a small volume and treated with an acid chloride such as myristoyl chloride. This product and the other untreated part are tested to determine their activity against Candida albicans. If the aliquot part
<EMI ID = 177.1>
acylated has an activity, the fraction contains the core of A-30912A. The eluate containing the nucleus of
<EMI ID = 178.1>
to obtain approximately 97 g of the raw core.
C. Purification of the nucleus of A-30912A by chromatography
liquid on reverse phase
25 g of the core of crude A-30912A, obtained as described in paragraph C, are dissolved in 300 ml of a mixture
96: 2: 1: 1 of water, acetonitrile, acetic acid and pyridine. This solution is chromatographed on a 4 l stainless steel column (8 cm x 80 cm) filled with Lichroprep RP-18, particle size 25-40 microns (MC / B Manufacturing
<EMI ID = 179.1>
a Chromatospac Prep 100 unit (Jobin Yvon, 16-18 rue du Canal, 91160 Longjumeau, France). The column is operated at a pressure of 6.2-6.9 bars, giving a flow rate of about 60 ml / minute, using the same solvent. The separation is monitored at 280 nm using a UV monitor (ISCO Absorption Monitor Model UA-5, Instrumention Specialties Co., 4700 Superior Ave. Lincoln, Nebraska 68504) with an optical unit (ISCO Type 6). Fractions having a volume of about 500 ml are collected per minute.
Based on the absorption at 280 nm, the fractions containing the core of A-30912A are combined, evaporated in vacuo and lyophilized, which gives 2.6 g of the nucleus. The quantity of solvent necessary to complete this chromatographic separation procedure varies from 7 to 8 1.
<EMI ID = 180.1> <EMI ID = 181.1>
(c) white amorphous solid, soluble in water, dimethylformamide, dimethylsulfoxide and methanol; insoluble in chloroform, toluene and diethyl ether.
(d) Infrared absorption spectrum (pellet of
KBr)
has absorption maxima at:
3340 wide (OR, hydrogen bonding); 2970, 2930 and 2890
<EMI ID = 182.1>
(c) the electrometric titration in 66% aqueous dimethylformamide indicates the presence of a titratable group with a pK of approximately 7.35 (initial pH 7.32).
(f) retention time in high pressure liquid chromatography (K '): 11.52 minutes under the following conditions:
Column: 4 x 300 mm
<EMI ID = 183.1>
Solvent: 1: 2: 97 mixture of ammonium acetate, acetonitrile and water
Flow rate: 3 ml / minute
Pressure: 172.5 bars
Detector: UV with variable wavelength,
at 230 nm
Sensitivity: 0-0.4 A.U.F.S.
Preparation 13
The core of A-30912A is prepared and purified by the process of Preparation 12, but a tetrahydrogenated substrate A-30912A is used.
Preparation 14
The nucleus of A-30912A is prepared and purified
by the method of Preparation 12 but using aculeacin A as a substrate.
Preparation 15
Preparation of the core of A-30912B
A. Deacylation of factor B of antibiotic A-30912
Fermentation of A. utahensis is carried out as described in Preparation 1, using production medium I. After incubation of the culture for approximately
48 hours, factor B of A-30912 dissolved in a small amount of methanol is added to the fermentation medium.
We control the deacylation of factor B of A-
30912 by paper disk test against Candida albicans or Neurospora crassa. We leave the fermentation. continue until deacylation is complete as shown by the disappearance of the activity.
B. Separation of the core from A-30912B
The fermentation broth thus obtained is filtered as described in paragraph A. The mycelial cake is rejected. The clear filtrate thus obtained is passed through a column containing HP-20 resin (very porous polymer DIAION, HP-Series, Mitsubishi Chemical Industries Limited, Tokyo, Japan). The effluent thus obtained is rejected. The column is then washed with up to eight volumes of deionized water at pH 6.5-7.5 to remove the residual filtered broth. This washing water is rejected. Then the column is eluted with a 7: 3 solution of water and methanol. The elution is checked according to the following procedure: two aliquots of each eluted fraction are taken. One of the aliquots is concentrated to a small volume and treated with an acid chloride such as chloride
of myristoyl. This product and the other untreated part are titrated to determine their activity vis-à-vis Candida albicans. If the untreated part has no activity and the acylated aliquot part has activity, the fraction contains the core of A-30912B. The eluate containing the
core of A-30912B vacuum to a small volume and lyophilized to obtain the raw core.
C. Purification of the nucleus of A-30912B by chromatography
reverse phase liquid
Dissolve the core of crude A-30912B, obtained as described in paragraph C, in a 96: 2: 1: 1 mixture of water, acetonitrile, acetic acid and pyridine. We
<EMI ID = 184.1>
Lichroprep RP-18, particle size 25-40 microns (MC / B Manufacturing Chemists, Inc. E / M, Cincinnati, OH). The column is part of a Chromatospac Prep 100 unit (Jobin Yvon, 16-
18 rue du Canal, Longjumeau, France). The column is operated at a pressure of 6.2-6.9 bars, giving a flow rate of approximately GO ml per minute, using the same solvent.
The separation is checked at 280 nm using an apparatus
<EMI ID = 185.1>
Instrumentation Specialties Co., 4700 Superior Ave., Lincoln, Nebraska 68504) with an optical unit (ISCO Type 6).
Based on the absorption at 280 nm, the fractions containing the core of A-30912B are pooled, evaporated in vacuo and lyophilized to obtain the core of purified A-30912B.
Preparation 16
The core of A-30912B is prepared and purified by the process of Preparation 15, but used as
<EMI ID = 186.1>
Preparation 17
A-30912D kernel preparation
A deacylation of factor D from A-30912
Fermentation of A. utahensis is carried out as described in Preparation 1, using production medium I. After having incubated the culture for approximately 48 hours, factor D of A-30912 dissolved in a mixture is added to the fermentation medium. small amount of methanol.
The deacylation of factor D of A-30912 is checked by test on a paper disc against Candida albicans or Neurospora crassa. The fermentation is allowed to continue until the deacylation is complete as shown by the disappearance of the activity.
<EMI ID = 187.1>
The whole fermentation broth obtained is filtered as described in paragraph A. The cake is discarded <EMI ID = 188.1>
on a column containing IIP-20 resin (very porous polymer DIAION, HP-Series, Mitsubishi Chemical Industries Limited, Tokyo, Japan). The effluent thus obtained is rejected.
Then wash the column with up to eight volumes of water
<EMI ID = 189.1>
residual. This washing water is rejected. Then the column is eluted with a 7: 3 solution of water and methanol. The elution is checked using the following procedure:
two aliquots of each eluted fraction are taken. One of the aliquots is concentrated to a small volume and treated with an acid chloride such as myristoyl chloride. This product and the other untreated part are titrated to determine their activity with respect to Candida albicans. If the untreated part has no activity and the acylated aliquot part has activity, the fraction contains the core of A-30912D. The eluate containing the nucleus
of A-30912D is concentrated in vacuo to a small volume and
<EMI ID = 190.1>
C. Purification of the nucleus of A-30912D by chromatography
reverse phase liquid
The nucleus of crude A-30912D obtained as described in paragraph C is dissolved in a 96: 2: 1: 1 mixture of water, acetonitrile, acetic acid and pyridine. of Lichroprep RP-18, particle size 25-40 microns (MC / B
<EMI ID = 191.1>
is part of a Chromatospac Prep 100 unit (Jobin Yvon,
16-18 rue du Canal, 91160 Longjumeau, France). The column is operated at a pressure of 6.2-6.9 bar, which gives a flow rate of about 60 ml / minute, using the same solvent. The separation is monitored at 280 nm using a UV control device (ISCO Absorption Monitor Model UA-5, Instrumentation Specialties Co., 4700 Superior Ave., Lincoln, Nebraska 68504) with an optical unit (ISCO Type 6).
Based on the absorption at 280 nm, the fractions containing the core of A-30912D are combined, evaporated in vacuo and lyophilized to obtain the core of A-30912D purified.
Preparation 18
The core of A-30912D is prepared and purified by the method of Preparation 17, but a tetrahydrogenated substrate A-30912D is used.
Preparation 19
Preparation of the core of A-30912H
A: deacylation of factor H of antibiotic A-30912
Fermentation of A. utahensis is carried out as) described in Preparation 1, using production medium I. After having incubated the culture for approximately 48 hours, factor II of A-30912 dissolved in a small amount of methanol.
The desaçylation of factor H of A-30912 is checked by analysis on a paper disc against
<EMI ID = 192.1>
B. Separation of the core from A-30912H
The whole fermentation broth obtained is filtered as described in paragraph A. The mycelial cake is rejected. The clear filtrate thus obtained is passed through a column containing HP-20 resin (very porous polymer DIAION, HP-Series, Mitsubishi Chemical Industries Limited, Tokyo, Japan). The effluent thus obtained is rejected. Then wash the column with up to eight volumes of water
<EMI ID = 193.1>
residual. This washing water is rejected. Then the column is eluted with a 7: 3 solution of water and methanol. The elution is checked using the following procedure:
two aliquots of each eluted fraction are taken. One of the aliquots is concentrated to a small volume and treated with an acid chloride such as myristoyl chloride. The activity of this product and of the other untreated aliquot part with respect to Candida albicans is determined. If the untreated aliquot part has no activity and the acylated aliquot part has activity, <EMI ID = 194.1> the eluate containing the core of A-30912H under vacuum until
<EMI ID = 195.1>
gross.
C. Purification of the nucleus of A-30912H by chromatography
reverse phase liquid
Dissolve the core of crude A-30912H, obtained
as described in paragraph C, in a 96: 2: 1: 1 mixture of water, acetonitrile, acetic acid and pyridine. This solution is chromatographed on a column packed with Lichroprep RP-18, particle size 25-40 microns (MC / B Manufacturing Chemists, Inc. E / M, Cincinnati, OH). The column is part of a Chromatospac Prep 100 unit (Jobin Yvon,
16-18 rue du Canal 91160 Longjumeau, France). We make it work
the column at a pressure of 6.2-6.9 bars, giving a flow rate of about 60 ml / minute, using the same solvent.
The separation is checked at 280 nm using an apparatus
UV control system (ISCO Absorption Monitor Model UA-5, Instrumentation Specialties Co., 4700 Superior Ave., Lincoln, Nebraska 68504) equipped with an optical unit (ISCO Type 6).
Preparation 20
The nucleus of A-30912H is prepared and purified
by the process of Preparation 19, but a tetrahydrogenated substrate A-30912H is used.
Preparation 21
S31794 / F-1 kernel preparation
A. Deacylation of the antibiotic S31794 / F-1
Fermentation of A. utahensis is carried out as
<EMI ID = 196.1>
production I. After having incubated the culture for approximately 48 hours, the antibiotic S31794 / F-1 dissolved in a small amount of methanol is added to the fermentation medium.
The deacylation of S31794 / F-1 is checked by analysis with a paper disc against Candida albicans. The fermentation is allowed to continue until the deacylation is conspicuous as shown by the disappearance <EMI ID = 197.1>
Lincoln, Nebraska 68504) equipped with an optical unit (ISCO
<EMI ID = 198.1>
<EMI ID = 199.1>
the fractions containing the nucleus of S31794 / F-1, they are evaporated in vacuo and lyophilized to obtain the nucleus of purified S31794 / F-1.
Preparation 22
Preparation of tetrahydrogenated A-30912A
Factor A of A-30912 is dissolved in ethanol.
<EMI ID = 200.1>
in turn uses to catalytically reduce factor A of A-30912, by hydrogenation under positive pressure until the reaction is complete (about 2 to 3 hours). The reaction mixture is filtered and concentrated in vacuo. The residue is dissolved in a small amount of t-butanol and lyophilized to obtain tetrahydrogenated A-30912A.
Preparation 23
<EMI ID = 201.1>
Factor B of A-30912 is dissolved in ethanol.
<EMI ID = 202.1>
platinum which is used in turn to catalytically reduce factor B of A-30912 by hydrogenation under positive pressure until the reaction is complete
(about 2 to 3 hours). The reaction mixture is filtered and concentrated in vacuo. The residue is dissolved in a small amount of t-butanol and lyophilized to obtain
<EMI ID = 203.1>
Preparation 24
Preparation of tetrahydrogenated A-30912D
Factor D is dissolved in ethanol
<EMI ID = 204.1>
Pt which is used at its turn to catalytically reduce the factor D of A-30912, by hydrogenation under positive pressure until the reaction is complete
<EMI ID = 205.1> of the activity.
<EMI ID = 206.1>
The whole fermentation broth obtained is filtered as described in paragraph A. The mycelial cake is discarded, the clear filtrate thus obtained is passed through a column containing HP-20 resin (polymer
very porous DIAION, HP-Series, Mitsubishi Chemical Industries Limited, Tokyo, Japan). The effluent thus obtained is rejected. The column is then washed with up to eight volumes of water
<EMI ID = 207.1>
column with a 7: 3 solution of water and methanol. The elution is checked using the following procedure:
two aliquots are taken from each eluted fraction. One of the aliquots is concentrated to a small volume and treated with an acid chloride such as myristoyl chloride. This product and the other untreated aliquot are titrated to determine their activity vis-à-vis Candida albicans. If the untreated aliquot part has no activity and the acylated aliquot part has activity, the fraction contains the core of S31794 / F-1. We
<EMI ID = 208.1>
to a small volume, and lyophilized to obtain the raw core.
C. Purification of the nucleus of S31794 / F-1 by chromatography
reverse phase liquid
The core of crude S31794 / F-1 obtained as described in paragraph B is dissolved in a 96: 2: 1: 1 mixture of water, acetonitrile, acetic acid and pyridine.
This solution is chromatographed on a column packed with Lichroprep RP-18, particle size 25-40 microns (MC / B
<EMI ID = 209.1>
is part of a Chromatospac Prep 100 unit (Jobin Yvon,
16-18 rue du Canal 91160 Longjumeau, France). The column is operated at a pressure of 6.2-6.9 bars, giving a flow rate of about 60 ml / minute, using the same solvent. The separation is checked at 280 nm using an apparatus
<EMI ID = 210.1>
it is concentrated under vacuum. The residue is dissolved in a small amount of t-butanol and lyophilized to obtain tetrahydrogenated A-30912D.
Preparation 25
<EMI ID = 211.1>
The factor il of A-30912 is dissolved in
<EMI ID = 212.1>
Pt which is used in turn to catalytically reduce the H factor of A-30912, by hydrogenation under positive pressure until the reaction is complete
<EMI ID = 213.1>
and it is concentrated in vacuo. The residue is dissolved in a small amount of t-butanol and lyophilized to obtain tetrahydrogenated A-30912H.
EXAMPLES
Various derivatives containing alkanoyl and alkenoyl groups are prepared by acylation of the appropriate nucleus, either by the modified Schotten-Bauman reaction using an acid chloride as acylating agent.
(Method A) or by the aax active esters method using 2,4,5-trichlorophenyl ester as acylating agent
(Method B). The general procedures for carrying out the acylation reactions by Method A or Method B are indicated below:
Method A (Modified Schotten-Bauman reaction).
This process involves reacting the appropriate nucleus with the alkanol or alkenol acid chloride which corresponds to the desired acyl side chain.
The nucleus is dissolved in a mixture of 0.1 M KHPO4 buffer, pH 7.5 (5 to 10 ml) and acetone or methanol
(5 to 10 ml). To the core solution, cooled by an ice bath or at room temperature, is added slowly
<EMI ID = 214.1>
<EMI ID = 215.1>
If desired, the pH of the reaction mixture can be adjusted to 7.5-8.0 after each addition of the acid chloride; however, this step is not essential. The reaction mixture is stirred at ice bath temperature or at room temperature for 1.5 to 3.0 hours. As the reaction proceeds, a precipitate forms which is composed
<EMI ID = 216.1>
at the end of the reaction period, the reaction mixture is centrifuged to remove the precipitate. The precipitate collected and the supernatant liquor are then treated according to one of the following purification procedures.
. Procedure (a) The precipitate is washed one, two or three times with 2 to 3 volumes of methanol or a 1: 1 mixture of methanol and water. The washing products are centrifuged with methanol or methanol-water and the methanolic supernatant liquors are combined with the supernatant liquor obtained after the initial centrifugation of the reaction mixture. The concentrated supernatant liquors are then concentrated under vacuum to remove the organic solvent. The aqueous concentrate is then combined with an equal volume of methanol and the resulting solution is extracted successively with chloroform and ethyl acetate as described above in Process (a).
Procedure (b) The precipitate is immediately discarded and the supernatant liquor is extracted
pH 5.0-7.0 once or twice with diethyl ether (equal volume) to remove alkanol or unreacted alkenol. The diethyl ether extract is discarded. The supernatant liquor extracted is concentrated in vacuo to remove the organic solvent. Then the aqueous concentrate is combined with an equal volume of methanol and the resulting solution is extracted successively with chloroform and ethyl acetate as described previously in Method ta).
After the extraction step with chloroform followed by ethyl acetate in the preceding procedure (a) or (b), all the phases of solvent extract are combined and concentrated to dryness to obtain the derivative with an alkanoyl or crude alkenoyl group of the core of A-30912A.
The crude derivative is purified by reverse phase CLPE as follows: the sample, dissolved in 5 to 6 ml of methanol, is injected into a stainless steel column
<EMI ID = 217.1>
10) and the column is eluted with a solvent system comprising water, methanol and acetonitrile. We perform
<EMI ID = 218.1>
10 to 12 ml per hour using an LD-C duplex pump
(Milton-Roy). The effluent is checked with an ISCOUA-5 detector at 280 nm. The fractions containing the desired product are combined and concentrated to dryness under vacuum to obtain the purified alkanoyl or alkyoyl derivative of the corresponding nucleus.
The purified product is analyzed by thin layer chromatography (TLC) using reverse phase C18 plates
<EMI ID = 219.1>
development, the plates are observed under UV light to detect the product. The products are also analyzed by field desorption mass spectrometry.
Method B (Active ester method)
<EMI ID = 220.1>
hours a solution of the appropriate nucleus and the appropriate 2,4,5-trichlorophenyl alkanoate or alkenoate in dimethylformamide (DMF) (10-20 ml). The reaction mixture is concentrated to dryness in vacuo to obtain the crude alkanoyl or alkenoyl derivative of the corresponding core. The crude product is purified by reverse phase CLPE as described above in method A. The purified product is also analyzed by the methods used in method A.
<EMI ID = 221.1>
The preparation of various alkanoylated and alkenoylated derivatives, obtained by acylation of the core of A-30912A, representative of the compounds of formula III, is given in Table 1 below. The derivatives of Table 1 are prepared either by the modified Schotten-Bauman reaction using an acid chloride as acylating agent
(Method A) or by the active ester method using 2,4,5-trichlorophenyl ester as acylating agent
(Method B) described above.
<EMI ID = 222.1>
<EMI ID = 223.1>
<EMI ID = 224.1>
<EMI ID = 225.1>
<EMI ID = 226.1>
<EMI ID = 227.1>
<EMI ID = 228.1>
<EMI ID = 229.1>
EXAMPLE 17
N-tridecanoylated derivative of the core of A-30912A
The following procedure illustrates the preparation on a larger scale of the compounds of formula III by the active ester process. The particular compound prepared by the procedure given below is the compound of
<EMI ID = 230.1>
A. Preparation of 2,4,5-trichlorophenyl n-tridecanoate.
A solution of 12.5 g of n-tridecanoic acid is stirred at room temperature for 16 hours
(Sigma Chemical Co.), 11.5 g of 2,4,5-trichlorophenol and 12.0 g of N, N-dicyclohexylcarbodiimide in 650 ml of methylene chloride. Then the reaction mixture is filtered and dried in vacuo to obtain 2,4,5-trichlorophenyl n-tridecanoate (22 g). The material is purified by chromatography on a silica gel column (Woelm) using toluene as eluent. The fractions are monitored by TLC using short wavelength UV light for detection. The fractions containing the desired product are combined and concentrated in vacuo to dryness.
B. Acylation of the core of A-30912A by n-tridecanoate
2,4,5-trichlorophenyl
A solution of 6.0 g of 2,4,5-trichlorophenyl n-tridecanoate and 4.5 g of the core of A-30912A in 600 ml of dimethylformamide (DMF) is stirred at ambient temperature for 16 hours. Removal of the solvent in vacuo provides a residue (12 g). We dilute the residue with
500 ml of methylene chloride for 45 minutes then the mixture is filtered. We reject the filtrate. The remaining solids are extracted with 500 ml of methanol and the methanolic extract is filtered and concentrated in vacuo to obtain a crude product (5.0 g).
The crude product is purified by reverse phase CLPE as follows:
A sample of the crude product (1 g) dissolved in 5 ml of methanol is injected into a steel column
<EMI ID = 231.1>
Preparation 10). The column is eluted with a solvent system comprising a 3: 3: 4 mixture of water, methanol and acetonitrile. The elution is carried out at a pressure of
69-103.5 bar with a flow rate of 11-12 ml per minute using a LDC duplex pump (Milton-Roy). The effluent is monitored with an ultra-violet detector (ISCO-UA-5) at
280.nm. The fractions containing the desired product are combined and dried under vacuum. 550 mg of product are obtained. The chromatography described above is repeated four times with samples of 1 g of crude product to obtain other purified samples as follows:
620 mg, 520 mg, 670 mg and 490 mg. Total weight of purified title product: 2.8 g.
According to the preceding procedures, 4.0 g of the core of A-30912A are reacted with 2,4,5-trichlorophenyl n-tridecanoate to obtain 2.6 g of the purified title product. The materials of the two preparations are combined (5.4 g). Mass ion by field desorption mass spectrometry: (M + Na +):
<EMI ID = 232.1>
(This Micro Bondapak, Waters Co.) with a 2: 1: 2 mixture of water, methanol and acetonitrile as the eluent system, has only a peak.
EXAMPLE 18
N-tridecanoylated derivative of the core of A-30912B
A solution of 2,4,5-trichlorophenyl n-tridecanoate (prepared as in Example 17, Step A) (3.3 mmol) and one mole of the nucleus of A is stirred at ambient temperature for 16 hours. -30912B (see Preparations 15 and 16) in 200 ml of DMF. Removal of the solvent in vacuo provides a residue. The residue is diluted with 300 ml of methylene chloride for 45 minutes and the mixture is filtered. The filtrate is discarded, the resulting solids are extracted with 300 ml of methanol and the methanolic extract is filtered and concentrated in vacuo to obtain a crude product.
The crude product is purified by reverse phase CLPE as follows.
A sample of the crude product (1 g), dissolved in 5 ml of methanol, is injected into a 2.5 x 81 cm stainless steel column packed with LP-1 / C resin (see Preparation 11). The column is eluted with a solvent system comprising a 3: 3: 4 mixture of water, methanol and
<EMI ID = 233.1>
103.5 bar with a flow rate of 11-12 ml / minute using a LDC duplex pump (Milton-Roy). The taper is checked by an ultra-violet detector (ISCO-UA 5) at 280 nm. We
<EMI ID = 234.1>
The fractions containing the desired product are combined and dried under vacuum to obtain the title product. The purified product is analyzed by thin layer chromatography using reverse phase C18 plates.
<EMI ID = 235.1>
1: 2: 2 volume / volume of water, methanol and acetonitrile. After development, the plates are observed under UV light to detect the product,
EXAMPLE 19
Using the method of Example 18 but
<EMI ID = 236.1>
Step A and the appropriate 2,4,5-trichlorophenyl ester of alkanol or alkenoic acid in Step B, the derivatives of the core of A-30912B are indicated below:
Alkanoylated and alkenoylated derivatives of the core of A-30912B
<EMI ID = 237.1>
<EMI ID = 238.1>
<EMI ID = 239.1>
<EMI ID = 240.1>
A solution of 3.3 mmol of n-tridecanoate is stirred at room temperature for 16 hours.
<EMI ID = 241.1>
Step A) and Immole of the nucleus of A-30912D (see Preparations 17 and 18) in 200 ml of DMF. Removal of the solvent in vacuo gives a residue. We dilute the residue with
<EMI ID = 242.1>
filters the mixture. We reject the filtrate. The resulting solids are extracted with 300 ml of methanol and the methanolic extract is filtered and concentrated in vacuo to obtain a crude product.
The crude product is purified by reverse phase CLPE as described in Example 18.
EXAMPLE 21
Using the method of Example 20 but using the appropriate alkanoic acid or alkenol acid
<EMI ID = 243.1>
obtains the derivatives of the core of A-30912D indicated below:
Alkanoylated and alkenoylated derivatives of the core of A-30912D
<EMI ID = 244.1>
<EMI ID = 245.1>
EXEMPT 22
N-tridecanoylated derivative of the core of A-30912H
A solution of 3.3 mmol of 2,4,5-trichlorophenyl n-tridecanoate (prepared as in Example 17, Step A) and of Immole of the core of A-30912H are stirred at ambient temperature for 16 hours. see the
<EMI ID = 246.1>
Removal of the solvent in vacuo gives a residue. The residue is diluted with 300 ml of methylene chloride for 45 minutes and then the mixture is filtered. We reject the filtrate.
The resulting solids are extracted with 300 ml of methanol and the methanolic extract is filtered and concentrated in vacuo to obtain a crude product.
The crude product is purified by reverse phase CLPE as described in Example 18.
EXAMPLE 23
Using the method of Example 22 but using the appropriate alkanol or alkenoic acid in Step A and the appropriate 2,4,5-trichlorophenyl ester of alkanoic or alkenol acid in Step B, the derivatives of the core of A-30912H indicated below:
Alkanoylated and alkenoylated derivatives of the core of A-30912H
<EMI ID = 247.1>
<EMI ID = 248.1>
EXAMPLE 2 4
The following procedure illustrates the preparation of the N-n-tridecanoylated derivative of the core of A-30912H from the core of A-30912A.
The core of A-30912A is treated with 2,4,5-trichlorophenyl n-tridecanoate according to the procedure of Example 17. The derivative thus obtained is methylated by treating a sample (20 mg) with 0.06 ml 3% HCl in methanol in dimethvlformamide. The solution is allowed to stand with stirring for 16 hours, after which the solvent is removed under reduced pressure and a residue is obtained. The residue is purified by reverse phase CLPE in
<EMI ID = 249.1>
EXAMPLE 25
N-tridecanoylated derivative of the S31794 / F-1 nucleus
A solution of 3.3 mmol of 2,4,5-trichlorophenyl n-tridecanoate (prepared as in Example 17, Step A) and 1 mmol of S31794 / F-1 core is stirred at room temperature for 16 hours. (see Preparation 21) in 200 ml of DMF. Removal of the solvent in vacuo leaves a residue. The residue is diluted with 300 ml of methylene chloride for 45 minutes and the mixture is filtered. We reject the filtrate. The remaining solids are extracted with
300 ml of methanol and the methanolic extract is filtered and concentrated in vacuo to obtain a crude product. The
<EMI ID = 250.1>
described in Example 18.
EXAMPLE 26
Using the method of Example 25 but substituting the appropriate alkanoic or alkenol acid in Step A and the 2,4,5-trichlorophenyl ester of the acid
<EMI ID = 251.1>
the derivatives of the S31794 / F-1 nucleus indicated below:
<EMI ID = 252.1>
<EMI ID = 253.1>
<EMI ID = 254.1>
EXAMPLE 27
The antifungal activity of the compounds of formula III can be demonstrated and studied in vitro in disk diffusion and dilution tests on conventional agar or in conventional tests in vivo in mice which. show the efficacy against a systemic fungal infection. The results of the antifungal tests for representative compounds of formula IV (Examples 1 to 16) are given in Tables II, III, IV and V.
<EMI ID = 255.1>
the in vitro test of the compounds of Examples 1 to 16 by methods of diffusion on disc on agar plate. In Table II, the activity is measured by the dimension
(diameter in mm) of the zone of inhibition of the microorganism observed produced by the test compound. In Table III, the activity is measured by the inhibitory concentration
<EMI ID = 256.1>
inhibit the growth of the test organism. Table IV gives the results of the in vitro test of the ntridecanoylated derivative of the nucleus of A-3Q912A (formula III, R5 is
<EMI ID = 257.1>
the agar dilution method. In Table III, activity is measured by the minimum inhibitory concentration (MIC) of the substance (pg / ml) required to inhibit the test organism.
The results of in vivo tests intended to evaluate the effectiveness of the compound of Examples 1 to 16 with regard to
<EMI ID = 258.1>
mice are given in Table V, where the activity is
<EMI ID = 259.1>
to cure 50% of the test animals). When DE 5 is not obtained, the activity is indicated by the lowest
dose at which a significant antifungal effect is observed. In this test, groups of male albino mice (free of specific pathogens) weighing 18 to 20 g are infected intravenously with Candida albicans A-26. Animals are treated with x-rays 24 hours before infection at approximately
50 roentgens per minute for 4 minutes (total dose of
400) to reduce the body's immunological reactions to infection. At 0, 4 and 24 hours after infection, one
gives each group of mice progressive doses subcutaneously of the test compound as a
<EMI ID = 260.1>
the water. The day of death is noted for each animal. A statistical comparison by Student's "t" test of the average day of death is carried out between each group of infected animals treated at a particular dose and a group of 10 infected animals not treated, to determine whether the treatment prolongs significantly the duration of.
Table VI gives the results of the test of the compounds of Examples 1 to 16 to determine their absorption after oral administration. In this essay, we
gave the mice a dose of 416 mg / kg of the test compound in suspension in a 33% mixture of PEG 400 in water.
At time intervals, blood samples are taken from the orbital sinus and the antibiotic activity is determined as follows: a 7 mm disc containing 20 μl of whole blood is placed on agar seeded with Aspergillus
<EMI ID = 261.1>
compares the zones of inhibition from the blood samples with a reference obtained from the test compound, and the amount of compound in the blood sample is calculated.
<EMI ID = 262.1>
<EMI ID = 263.1>
<EMI ID = 264.1>
<EMI ID = 265.1>
<EMI ID = 266.1>
<EMI ID = 267.1>
<EMI ID = 268.1>
TABLE IV
In vitro activity of the n-tridecanoylated derivative of the nucleus of A-30912A with respect to five strains of Candida albicans.
<EMI ID = 269.1>
<EMI ID = 270.1>
<EMI ID = 271.1>
<EMI ID = 272.1>
<EMI ID = 273.1>
<EMI ID = 274.1>
<EMI ID = 275.1>