KR20150036133A - Processes and systems for the production of fermentation products - Google Patents
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Abstract
본 발명은 알코올과 같은 발효 생성물의 생성을 위한 공정 및 시스템에 관한 것이다. 본 발명은 개선된 생물량 공정 및 생산성을 위해 공급물 스트림 성분을 분리하는 방법을 또한 제공한다.The present invention relates to processes and systems for the production of fermentation products such as alcohols. The present invention also provides a method for separating feed stream components for improved biomass processing and productivity.
Description
본 출원은 2012년 7월 23일자로 출원된 미국 가특허원 제61/674,607호; 2012년 9월 12일자로 출원된 미국 가특허원 제61/699,976호; 2012년 10월 11일자로 출원된 미국 가특허원 제61/712,385호; 2013년 3월 14일자로 출원된 미국 특허원 제13/828,353호; 및 2013년 3월 15일자로 출원된 미국 특허원 제13/836,115호의 이익을 청구하며, 각각의 전체 내용은 본원에 참조로 혼입된다.This application is related to US Provisional Patent Application No. 61 / 674,607, filed July 23, 2012; U.S. Patent Application No. 61 / 699,976, filed September 12, 2012; U. S. Patent Application No. 61 / 712,385, filed October 11, 2012; U.S. Patent Application No. 13 / 828,353, filed March 14, 2013; And U.S. Patent Application No. 13 / 836,115, filed March 15, 2013, the entire contents of each of which are incorporated herein by reference.
본 출원과 관련된 서열 목록은 EFS-Web을 통해 전자 형태로 출원되어 있으며 이로써 이의 전문은 본 명세서에 참조로 혼입된다.Sequence listings related to the present application are filed in electronic form via EFS-Web, the disclosure of which is hereby incorporated by reference in its entirety.
본 발명은 알코올과 같은 발효 생성물을 생산하기 위한 공정 및 시스템에 관한 것이다. 본 발명은 또한 개선된 생물량 공정 생산성을 위해 공급물 스트림 성분(feed stream component)을 분리하기 위한 공정을 제공한다.The present invention relates to processes and systems for producing fermentation products such as alcohols. The present invention also provides a process for separating feed stream components for improved biomass process productivity.
알코올은 연료, 시약, 및 용매와 같은 각종 산업적 및 과학적 적용을 갖는다. 예를 들어, 부탄올은 연료 첨가물로서, 플라스틱 산업에서 공급원료(feedstock) 화학물질로서, 및 식품 및 풍미 산업에서 식품-등급 추출제(food-grade extractant)로서의 용도를 포함하는 각종 적용을 지닌 중요한 산업용 화학물질이다. 따라서, 부탄올과 같은 알코올 및 또한, 예를 들면, 발효 공정 및 이들 공정을 위한 공급원료로서 생물량의 용도를 포함하는 효율적이고 환경친화적인 생성 방법을 위한 요구가 크다.Alcohols have various industrial and scientific applications such as fuels, reagents, and solvents. For example, butanol can be used as a fuel additive, as a feedstock chemical in the plastics industry, and as an important industrial use with various applications, including as a food-grade extractant in the food and flavor industries It is a chemical. Thus, there is a great need for an efficient and environmentally friendly production process involving alcohols such as butanol and also the use of biomass as a feedstock for, for example, fermentation processes and processes.
발효에 의한 알코올의 생성은 하나의 이러한 환경 친화적인 생성 방법이다. 알코올을 고 수율로 생성하는 일부 미생물은, 또한 독성 한계치(toxicity threshold)가 낮아서, 상기 알코올은 이것이 생성되고 있는 발효기로부터 제거되어야 할 필요가 있다. 한가지 방법인, 반응계내 생성물 제거(in situ product removal: ISPR)를 사용하여 알코올이 생성되는 발효기로부터 이를 제거함으로써, 미생물이 알코올을 고 수율로 생성하도록 할 수 있다. 당해 분야에 기술되어져 온 ISPR의 예는 액체-액체 추출이다(참조: 예를 들면, 미국 특허원 공보(특허공개공보) 제2009/0305370호). 기술적으로 및 경제적으로 이용가능한, 액체-액체 추출은 효율적인 질량 전달을 위한 추출제와 발효 브로쓰(fermentation broth) 사이의 접촉; 발효 브로쓰로부터 추출제의 상 분리; 추출제의 효율적인 회수 및 재순환; 및 장기간 작동에 걸친 추출제의 최소의 분해 및/또는 오염을 필요로 한다.The production of alcohol by fermentation is one such environmentally friendly method of production. Some microorganisms that produce alcohol in high yields also have a low toxicity threshold so that the alcohol needs to be removed from the fermenter in which it is being produced. One method, in situ product removal (ISPR), can be used to remove the alcohol from the fermentor where the alcohol is produced, thereby allowing the microorganism to produce the alcohol in high yield. An example of an ISPR that has been described in the art is liquid-liquid extraction (see, for example, U.S. Patent Application Publication No. 2009/0305370). Liquid-liquid extraction, technically and economically available, is the contact between the extractant and the fermentation broth for efficient mass transfer; Phase separation of the extractant from the fermentation broth; Efficient recovery and recycling of the extractant; And minimal degradation and / or contamination of the extractant over long-term operation.
발효기로 도입되는 수성 스트림이 공급원료로부터 용해되지 않은 고체를 함유하는 경우, 용해되지 않은 고체는 액체-액체 추출을 방해할 수 있으며 추출 방법은 기술적으로 및 경제적으로 실행가능하지 않을 수 있는데, 예를 들면 자본 및 작동 비용에 있어서의 증가를 초래할 수 있다. 추출 발효 동안 용해되지 않은 고체의 존재는 질량 전달 계수를 저하시켜, 상 분리를 지연시키고/시키거나, 추출제 속의 용해되지 않은 고체로부터 오일의 축적을 초래함으로써 시간에 따라 감소된 추출 효율을 초래하고/하거나, 추출제는 고체 속에 갇히게 되면서 궁극적으로는 가용물이 들어있는 건조된 양조찌끼(Dried Distillers Grains with Solubles: DDGS)로서 제거되므로 추출제의 손실을 증가시키고/시키거나, 발효 브로쓰로부터 추출제 점적의 이탈을 지연시키고/시키거나 보다 낮은 발효기 용적 효율을 생성할 수 있다. 따라서, 고체 제거는 발효 공정으로부터 알코올을 생성하고 회수하기 위한 효율적인 수단을 제공한다.If the aqueous stream introduced into the fermenter contains undissolved solids from the feedstock, the undissolved solids may interfere with liquid-liquid extraction and the extraction process may not be technically and economically feasible, Which can lead to an increase in capital and operating costs. The presence of undissolved solids during extraction fermentation reduces the mass transfer coefficient, retarding phase separation and / or causing accumulation of oil from undissolved solids in the extractant, resulting in reduced extraction efficiency over time / Or the extractant is trapped in a solid and ultimately removed as Dried Distiller Grains with Solubles (DDGS), thus increasing the loss of the extractant and / or increasing the yield of the extractant from the fermentation broth It is possible to delay the dropout of the droplet and / or to produce a lower fermenter volumetric efficiency. Thus, solid removal provides an efficient means for producing and recovering alcohol from the fermentation process.
고체 제거 외에도, 공급원료로부터 오일의 제거는 또한 알코올의 생성에 있어서 유리한 효과뿐만 아니라 상업적 이점도 제공할 수 있다. 예를 들어, 옥수수 오일 및 대두 오일과 같은 일부 오일은 바이오디젤(biodiesel)용 공급원료로서 사용될 수 있으므로 알코올 생산자들에게 추가의 매출원(revenue stream)을 제공할 수 있다. 또한, 오일을 제거하는 것은 보다 효율적인 발효로 인한 생산 공장에 대한 에너지 절약, 오일의 제거로 인한 부착물의 거의 부재, 증가된 발효기 용적 효율, 및 에너지 요건, 예를 들면, 주모(distillers grains)를 건조시키는데 필요한 에너지 감소를 야기할 수 있다.In addition to solids removal, the removal of oil from the feedstock can also provide commercial benefits as well as beneficial effects in the production of alcohol. For example, some oils, such as corn oil and soybean oil, can be used as feedstocks for biodiesel, thus providing additional revenue streams for alcohol producers. In addition, the removal of oil can also reduce the energy consumption of the production plant due to more efficient fermentation, fewer deposits due to removal of oil, increased fermenter volumetric efficiency, and energy requirements, such as drying distillers grains Which can lead to a reduction in the energy required to achieve the desired result.
에탄올 및 부탄올과 같은 알코올을 생성하기 위한 보다 효율적인 공정 및 시스템을 개발하기 위한 지속적인 필요성이 존재한다. 본 발명은 이러한 필요성을 충족시키며 발효 전에 공급물 스트림 성분을 분리하여 발효 공정 속의 용해되지 않은 고체 및/또는 오일의 양을 조절하기 위한 공정 및 시스템을 포함하는 알코올을 생성하기 위한 공정 및 시스템을 제공한다.There is a continuing need to develop more efficient processes and systems for producing alcohols such as ethanol and butanol. The present invention provides a process and system for producing alcohol comprising processes and systems for meeting this need and for controlling the amount of undissolved solids and / or oils in the fermentation process by separating the feed stream components prior to fermentation do.
본 발명은 공급물 스트림 성분을 분리하고 발효 생성물의 생성시 발효기 공급물 스트림 속의 용해되지 않은 고체 및/또는 오일의 양을 조절하기 위한 공정 및 시스템에 관한 것이다. 분리된 성분은 알코올 발효 공-생성물 프로파일(co-product profile)을 개선시킴을 포함하여, 생물량 공정 생산성을 증가시키기 위한 메카니즘을 제공한다. 공급물 스트림을 (1) 발효가능한 탄소원(carbon source)을 포함하는 수성 스트림, (2) 오일을 포함하는 공급물 스트림, 및 (3) 용해되지 않은 고체를 포함하는 공급물 스트림을 포함하는 특정 성분으로 분리함으로써, 이들 성분은 조절된 방식으로 재조합되거나, 다른 용도를 위해 상기 시스템으로부터 제거될 수 있다. 이는 보다 우수한 단백질 또는 보다 우수한 지방 사료를 필요로 하는 동물 사료 시장과 같은 상이한 시장의 요구에 대해 공-생성물 조성물을 개발하기 위한 메카니즘을 제공한다.The present invention relates to processes and systems for separating feed stream components and for controlling the amount of undissolved solids and / or oil in the fermenter feed stream during the production of fermentation products. The discrete components provide a mechanism for increasing biomass process productivity, including improving the alcohol fermentation co-product profile. (1) a water stream comprising a fermentable carbon source, (2) a feed stream comprising an oil, and (3) a feed stream comprising an undissolved solid. , These components can be recombined in a controlled manner or removed from the system for other uses. This provides a mechanism for developing co-product compositions for different market needs such as animal feed markets that require better protein or better fat feed.
본 발명은 또한 발효 생성물의 생성 시 발효기 공급물 스트림으로부터 오일을 제거하기 위한 공정 및 시스템에 관한 것이다. 일부 구현예에서, 용해되지 않은 고체 및 오일은 발효기 공급물 스트림으로부터 제거될 수 있다.The present invention also relates to a process and system for removing oil from a fermenter feed stream in the production of fermentation products. In some embodiments, undissolved solids and oil may be removed from the fermenter feed stream.
본 발명은 발효가능한 탄소원, 용해되지 않은 고체, 및 오일을 포함하는 공급원료 슬러리를 제공하는 단계; 공급원료 슬러리로부터 용해되지 않은 고체 및 오일 중 일부를 분리함으로써, 발효가능한 탄소원을 포함하는 수용액, 고체를 포함하는 습윤 케이크(wet cake) 및 오일 스트림이 형성되도록 하는 단계; 및 수용액을 미생물을 포함하는 발효 브로쓰에 가함으로써 생성물 알코올을 생성하는 단계를 포함하는, 생성물 알코올을 생성 방법에 관한 것이다. 일부 구현예에서, 상기 방법은 오일 스트림을 회수하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 구현예에서, 상기 방법은 습윤 케이크를 세척하여 탄수화물을 포함하는 수성 스트림을 제공하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 구현예에서, 상기 방법은 수성 스트림을 발효 브로쓰에 가하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 구현예에서, 상기 수용액은 약 5중량% 이하의 용해되지 않은 고체를 함유한다. 일부 구현예에서, 상기 오일을 옥수수 오일이고 하나 이상의 트리글리세라이드, 지방산, 디글리세라이드, 모노글리세라이드, 및 인지질을 포함한다. 일부 구현예에서, 상기 방법은 습윤 케이크의 일부와 오일의 일부를 합하여 트리글리세라이드, 유리 지방산, 디글리세라이드, 모노글리세라이드, 및 인지질을 포함하는 습윤 케이크를 생성하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 구현예에서, 상기 방법은 수용액을 습윤 케이크의 일부와 합하여 수용액과 습윤 케이크의 혼합물을 생성하는 단계 및 당해 혼합물을 발효 브로쓰에 가하는 단계를 추가로 포함한다. 일부 구현예에서, 공급원료 슬러리를 분리하는 단계는 단일 단계 공정이다. 일부 구현예에서, 용해되지 않은 고체 및 오일은 공급원료 슬러리로부터 데칸터 보울 원심분리(decanter bowl centrifugation), 3-상 원심분리, 디스크 스택 원심분리(disk stack centrifugation), 여과 원심분리, 데칸터 원심분리(decanter centrifugation), 여과, 진공 여과, 벨트필터(beltfilter), 가압 여과, 막 여과, 교차 유동 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이팅(grating), 다공성 그레이팅, 부유(flotation), 하이드로사이클론(hydrocyclone), 필터 프레스(filter press), 스크류프레스(screwpress), 중력 침강기(gravity settler), 와동 분리기, 또는 이들의 조합에 의해 분리된다. 일부 구현예에서, 분리 장치의 하나 이상의 조절 매개변수를 조절하여 공급원료 슬러리의 분리를 개선시킨다. 일부 구현예에서, 하나 이상의 조절 매개변수를 차등 속도, 보울 속도, 유동 속도, 임펠러 위치(impeller position), 웨어 위치(weir position), 스크롤 피치(scroll pitch), 체류 시간, 및 배출 용적(discharge volume)으로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 생성물 알코올은 에탄올, 프로판올, 부탄올, 펜탄올, 헥산올, 및 푸젤 알코올(fusel alcohol)로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 미생물은 부탄올 생합성 경로를 포함한다. 일부 구현예에서, 부탄올 생합성 경로는 1-부탄올 생합성 경로, 2-부탄올 생합성 경로, 또는 이소부탄올 생합성 경로이다. 일부 구현예에서, 실시간 측정을 사용하여 공급원료 슬러리의 분리를 모니터한다. 일부 구현예에서, 분리는 푸리에 변환 적외선 분광법(Fourier transform infrared spectroscopy), 근적외선 분광법(near-infrared spectroscopy), 라만 분광법(Raman spectroscopy), 고압 액체 크로마토그래피, 점도계, 농도계, 텐시오미터(tensiometer), 소적 크기 분석기, 입자 분석기, 또는 이의 조합에 의해 모니터링된다.The present invention provides a method for producing a feedstock slurry comprising: providing a feedstock slurry comprising a fermentable carbon source, an undissolved solid, and an oil; Separating some of the undissolved solids and oil from the feedstock slurry to form an aqueous solution comprising a fermentable carbon source, a wet cake comprising the solids and an oil stream; And adding an aqueous solution to a fermentation broth comprising a microorganism to produce a product alcohol. In some embodiments, the method further comprises recovering the oil stream. In some embodiments, the method further comprises washing the wet cake to provide an aqueous stream comprising carbohydrates. In some embodiments, the method further comprises adding an aqueous stream to the fermentation broth. In some embodiments, the aqueous solution contains up to about 5% by weight of undissolved solids. In some embodiments, the oil is corn oil and comprises at least one triglyceride, fatty acid, diglyceride, monoglyceride, and phospholipid. In some embodiments, the method further comprises producing a wet cake comprising triglycerides, free fatty acids, diglycerides, monoglycerides, and phospholipids by combining a portion of the wet cake with a portion of the oil. In some embodiments, the method further comprises combining the aqueous solution with a portion of the wet cake to produce a mixture of aqueous solution and wet cake, and adding the mixture to a fermentation broth. In some embodiments, separating the feedstock slurry is a single step process. In some embodiments, the undissolved solids and oil are separated from the feedstock slurry by decanter bowl centrifugation, 3-phase centrifugation, disk stack centrifugation, filtration centrifugation, decanter centrifugation Filtration using a screen, screen separation, grating, porous grating, flotation, hydrotreating, centrifugal separation, filtration, decanter centrifugation, filtration, vacuum filtration, beltfilter, Such as a hydrocyclone, a filter press, a screw press, a gravity settler, a fluid separator, or a combination thereof. In some embodiments, one or more adjustment parameters of the separation device are adjusted to improve the separation of the feedstock slurry. In some embodiments, one or more of the control parameters are selected from the group consisting of differential speed, bowl speed, flow rate, impeller position, weir position, scroll pitch, residence time, and discharge volume ). In some embodiments, the product alcohol is selected from ethanol, propanol, butanol, pentanol, hexanol, and fusel alcohol. In some embodiments, the microorganism comprises a butanol biosynthetic pathway. In some embodiments, the butanol biosynthetic pathway is a 1-butanol biosynthetic pathway, a 2-butanol biosynthetic pathway, or an isobutanol biosynthetic pathway. In some embodiments, real time measurements are used to monitor the separation of the feedstock slurry. In some embodiments, the separation may be performed using Fourier transform infrared spectroscopy, near-infrared spectroscopy, Raman spectroscopy, high pressure liquid chromatography, viscometer, densitometer, tensiometer, A droplet size analyzer, a particle analyzer, or a combination thereof.
본 발명은 또한 발효가능한 탄소원 및 용해되지 않은 고체를 포함하는 공급원료 슬러리를 제공하는 단계; 공급원료 슬러리로부터 용해되지 않은 고체 중 적어도 일부를 분리함으로써 발효가능한 탄소원을 포함하는 수용액 및 고체를 포함하는 습윤 케이크를 생성시키는 단계; 상기 습윤 케이크를 액체와 접촉시켜 습윤 케이크 혼합물을 형성시키는 단계; 및 습윤 케이크 혼합물로부터 용해되지 않은 고체 중 적어도 일부를 분리함으로써 발효가능한 탄소원을 포함하는 제2의 수용액 및 고체를 포함하는 제2의 습윤 케이크를 생성시키는 단계를 포함하는 방법에 관한 것이다. 일부 구현예에서, 액체는 신선한 물, 역류(backset), 쿠킹 수(cook water), 공정 수, 루터 수(lutter water), 증발 수, 또는 이들의 조합으로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 접촉 단계 및 분리 단계는 반복할 수 있다.The present invention also provides a feedstock slurry comprising a fermentable carbon source and an undissolved solid; Producing a wet cake comprising an aqueous solution and a solid comprising a fermentable carbon source by separating at least a portion of the undissolved solids from the feedstock slurry; Contacting the wet cake with a liquid to form a wet cake mixture; And separating at least a portion of the undissolved solids from the wet cake mixture to produce a second wet cake comprising a second aqueous solution and a solid comprising a fermentable carbon source. In some embodiments, the liquid is selected from fresh water, a backset, a cook water, a process water, a lutter water, an evaporation water, or a combination thereof. In some embodiments, the contacting step and the separating step can be repeated.
본 발명은 발효가능한 탄소원, 용해되지 않은 고체, 및 오일을 포함하는 공급원료 슬러리를 제공하는 단계; 공급원료 슬러리로부터 오일 및 용해되지 않은 고체 중 적어도 일부를 분리함으로써 발효가능한 탄소원을 포함하는 수용액, 오일 스트림; 및 고체를 포함하는 습윤 케이크를 생성시키는 단계; 및 습윤 케이크를 액체와 접촉시켜 습윤 케이크 혼합물을 형성시키는 단계; 및 습윤 케이크 혼합물로부터 용해되지 않은 고체 및 오일 중 적어도 일부를 분리함으로써 발효가능한 탄소원을 포함하는 제2의 수용액, 제2의 오일 스트림; 및 고체를 포함하는 제2의 습윤 케이크를 생성시키는 단계를 포함하는 방법에 관한 것이다. 일부 구현예에서, 공급원료 슬러리를 분리하는 단계는 단일 단계 공정이다. 일부 구현예에서, 용해되지 않은 고체 및 오일은 공급원료 슬러리로부터 데칸터 보울 원심분리, 3-상 원심분리, 디스크 스택 원심분리, 여과 원심분리, 데칸터 원심분리, 여과, 진공 여과, 벨트필터, 가압 여과, 막 여과, 교차 유동 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이팅, 다공성 그레이팅, 부유, 하이드로사이클론, 필터 프레스, 스크류프레스, 중력 침강기, 와동 분리기, 또는 이들의 조합에 의해 분리된다. 일부 구현예에서, 분리 장치의 하나 이상의 조절 매개변수를 조절하여 공급원료 슬러리의 분리를 개선시킨다. 일부 구현예에서, 하나 이상의 조절 매개변수는 차등 속도, 보울 속도, 유동 속도, 임펠러 위치, 웨어 위치, 스크롤 피치, 체류 시간, 및 배출 용적으로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 실시간 측정을 사용하여 공급원료 슬러리의 분리를 모니터한다. 일부 구현예에서, 분리는 푸리에 변환 적외선 분광법, 근적외선 분광법, 라만 분광법, 고압 액체 크로마토그래피, 점도계, 농도계, 텐시오미터, 소적 크기 분석기, 입자 분석기, 또는 이의 조합에 의해 모니터링된다.The present invention provides a method for producing a feedstock slurry comprising: providing a feedstock slurry comprising a fermentable carbon source, an undissolved solid, and an oil; An oil stream comprising an aerobic fermentable carbon source by separating at least some of the oil and undissolved solids from the feed slurry; And a wet cake comprising a solid; And contacting the wet cake with a liquid to form a wet cake mixture; And a second aqueous solution comprising a carbon source fermentable by separating at least a portion of the undissolved solids and oil from the wet cake mixture; a second oil stream; And a second wet cake comprising a solid. In some embodiments, separating the feedstock slurry is a single step process. In some embodiments, the undissolved solids and oil are separated from the feedstock slurry by decanter bowl centrifugation, 3-phase centrifugation, disk stack centrifugation, filtration centrifugation, decanter centrifugation, filtration, vacuum filtration, Is separated by pressure filtration, membrane filtration, crossflow filtration, screen filtration, screen separation, grating, porous grating, suspension, hydrocyclone, filter press, screw press, gravity settler, vortex separator, . In some embodiments, one or more adjustment parameters of the separation device are adjusted to improve the separation of the feedstock slurry. In some embodiments, the at least one adjustment parameter is selected from differential speed, bowl speed, flow rate, impeller position, wear position, scroll pitch, residence time, and discharge volume. In some embodiments, real time measurements are used to monitor the separation of the feedstock slurry. In some embodiments, the separation is monitored by Fourier transform infrared spectroscopy, near infrared spectroscopy, Raman spectroscopy, high pressure liquid chromatography, viscometer, densitometer, tensiometer, droplet size analyzer, particle analyzer, or a combination thereof.
본 발명은 발효가능한 탄소원, 용해되지 않은 고체, 및 오일을 포함하는 공급원료 슬러리를 제공하는 단계; 공급원료 슬러리를 분리함으로써 (i) 발효가능한 탄소 원을 포함하는 제1의 수용액, (ii) 고체를 포함하는 제1의 습윤 케이크, 및 (iii) 오일을 포함하는 스트림, 고체, 및 발효가능한 탄소원을 포함하는 수성 스트림을 형성시키는 단계; 및 제1의 수용액을, 미생물을 포함하는 발효 브로쓰에 가함으로써 발효 생성물을 생성하는 단계를 포함하는 방법에 관한 것이다. 일부 구현예에서, 상기 방법은 오일을 포함하는 스트림, 고체, 및 발효가능한 탄소원을 포함하는 수성 스트림을 분리함으로써 (i) 발효가능한 탄소원을 포함하는 제2의 수용액, (ii) 고체를 포함하는 제2의 습윤 케이크, 및 (iii) 오일 스트림을 형성시키는 단계를 추가로 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 제1 및 제2의 수용액은 발효 브로쓰에 가하기 전에 합할 수 있다. 일부 구현예에서, 제2의 수용액은 오일을 추가로 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 제2의 수용액 또는 이의 일부의 오일을 처리하여 추출제를 생성시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 상기 오일은 화학적으로 또는 효소적으로 처리할 수 있다. 일부 구현예에서, 분리는 데칸터 보울 원심분리, 3-상 원심분리, 디스크 스택 원심분리, 여과 원심분리, 데칸터 원심분리, 여과, 진공 여과, 벨트필터, 가압 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이팅, 다공성 그레이팅, 부유, 하이드로사이클론, 필터 프레스, 스크류프레스, 중력 침강기, 와동 분리기, 또는 이들의 조합에 의해 수행할 수 있다.The present invention provides a method for producing a feedstock slurry comprising: providing a feedstock slurry comprising a fermentable carbon source, an undissolved solid, and an oil; By separating the feedstock slurry, a first aqueous solution comprising (i) a fermentable carbon source, (ii) a first wet cake comprising a solid, and (iii) a stream comprising the oil, a solid, and a fermentable carbon source To form an aqueous stream; And adding a first aqueous solution to a fermentation broth comprising a microorganism to produce a fermentation product. In some embodiments, the method comprises separating a stream comprising oil, a solid, and an aqueous stream comprising a fermentable carbon source to form a second aqueous solution comprising (i) a fermentable carbon source, (ii) 2 wet cake, and (iii) forming an oil stream. In some embodiments, the first and second aqueous solutions may be combined before adding to the fermentation broth. In some embodiments, the second aqueous solution may further comprise an oil. In some embodiments, the oil of the second aqueous solution or a portion thereof may be treated to produce an extractant. In some embodiments, the oil may be chemically or enzymatically treated. In some embodiments, the separation may be carried out in the following manner: decanter bowl centrifugation, 3-phase centrifugation, disk stack centrifugation, filtration centrifugation, decanter centrifugation, filtration, vacuum filtration, belt filtration, Screen separation, grating, porous grating, floating, hydrocyclone, filter press, screw press, gravity settler, vortex separator, or a combination thereof.
본 발명은 발효가능한 탄소원, 용해되지 않은 고체, 및 오일을 포함하는 공급원료 슬러리를 제공하는 단계; 공급원료 슬러리를 분리함으로써 (i) 발효가능한 탄소원 및 고체를 포함하는 제1의 수용액, (ii) 고체를 포함하는 제1의 습윤 케이크, 및 (iii) 제1의 오일 스트림을 형성시키고; 오일을 제1의 수용액에 가함으로써 고체를 포함하는 오일 층 및 발효가능한 탄소원을 포함하는 제2의 수용액을 형성시키는 단계를 포함하는 방법에 관한 것이다. 일부 구현예에서, 고체를 포함하는 상기 오일 층은 (i) 제2의 오일 스트림, (ii) 고체를 포함하는 제2의 습윤 케이크, 및 (iii) 발효가능한 탄소원을 포함하는 제3의 수용액을 형성하며 분리될 수 있다. 일부 구현예에서, 제2의 수용액 및 제3의 수용액은 미생물을 포함하는 발효 브로쓰에 가함으로써 발효 생성물을 생성할 수 있다. 일부 구현예에서, 제2의 수용액 및 제3의 수용액은 오일을 추가로 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 제2의 수용액 및 제3의 수용액을 합하고 제2의 수용액과 제3의 수용액 또는 이의 일부의 오일을 처리함으로써 추출제를 생성할 수 있다. 일부 구현예에서, 상기 오일은 화학적으로 또는 효소적으로 처리할 수 있다. 일부 구현예에서, 분리는 데칸터 보울 원심분리, 3-상 원심분리, 디스크 스택 원심분리, 여과 원심분리, 데칸터 원심분리, 여과, 진공 여과, 벨트필터, 가압 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이팅, 다공성 그레이팅, 부유기, 하이드로사이클론, 필터 프레스, 스크류프레스, 중력 침강기, 와동 분리기, 또는 이들의 조합에 의해 수행할 수 있다.The present invention provides a method for producing a feedstock slurry comprising: providing a feedstock slurry comprising a fermentable carbon source, an undissolved solid, and an oil; Separating the feedstock slurry to form a first aqueous stream comprising (i) a first aqueous solution comprising a fermentable carbon source and a solid, (ii) a first wet cake comprising a solid, and (iii) a first oil stream; And a second aqueous solution comprising an oil layer comprising solids and a fermentable carbon source by applying the oil to the first aqueous solution. In some embodiments, the oil layer comprising solids comprises (i) a second oil stream, (ii) a second wet cake comprising a solid, and (iii) a third aqueous solution comprising a fermentable carbon source, And can be separated. In some embodiments, the second aqueous solution and the third aqueous solution may be added to a fermentation broth comprising a microorganism to produce a fermentation product. In some embodiments, the second aqueous solution and the third aqueous solution may further comprise an oil. In some embodiments, the extractant may be produced by combining the second aqueous solution and the third aqueous solution and treating the oil of the second aqueous solution and the third aqueous solution or a portion thereof. In some embodiments, the oil may be chemically or enzymatically treated. In some embodiments, the separation may be carried out in the following manner: decanter bowl centrifugation, 3-phase centrifugation, disk stack centrifugation, filtration centrifugation, decanter centrifugation, filtration, vacuum filtration, belt filtration, Screen separation, grating, porous grating, sub-organic, hydrocyclone, filter press, screw press, gravity settler, vortex separator, or a combination thereof.
본 발명은 또한 공급원료를 액화시켜 공급원료 슬러리를 생성시키도록 구성된 하나 이상의 액화 유닛(여기서, 당해 액화 유닛은 공급원료를 수용하기 위한 입구(inlet); 및 공급원료 슬러리를 배출하기 위한 출구(outlet)를 포함하며, 여기서 공급원료 슬러리는 발효가능한 탄소원, 오일, 및 용해되지 않은 고체를 포함한다); 및 공급원료 슬러리로부터 오일 및 용해되지 않은 고체를 제거하여 발효가능한 탄소원, 오일 스트림, 및 용해되지 않은 고체 중 일부를 포함하는 습윤 케이크를 포함하는 수용액을 생성하도록 구성된 하나 이상이 분리 장치(여기서, 당해 원심분리기는 공급물 원료 슬러리를 수용하기 위한 도입구; 수용액을 배출하기 위한 제1의 출구; 습윤 케이크를 배출하기 위한 제2의 출구; 및 오일을 배출하기 위한 제3이 출구를 포함한다)를 포함하는 시스템에 관한 것이다. 일부 구현예에서, 상기 시스템은 하나 이상의 혼합 장치; 및 하나 이상의 분리 장치를 포함하는, 습윤 케이크로부터 발효가능한 탄소원을 회수하도록 구성된 하나 이상의 세척 시스템을 추가로 포함한다. 일부 구현예에서, 분리 장치는 데칸터 보울 원심분리, 3-상 원심분리, 디스크 스택 원심분리, 여과 원심분리, 데칸터 원심분리, 여과, 진공 여과, 벨트필터, 가압 여과, 막 여과, 교차 유동 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이팅, 다공성 그레이팅, 부유, 하이드로사이클론, 필터 프레스, 스크류프레스, 중력 침강기, 와동 분리기, 또는 이들의 조합으로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 상기 시스템은 수용액을 발효시켜 생성물 알코올을 생성하도록 구성된 하나 이상의 발효기를 추가로 포함하며, 당해 발효기는 수용액 및/또는 습윤 케이크를 수용하기 위한 입구; 및 생성물 알코올을 포함하는 발효 브로쓰를 배출하기 위한 출구를 포함한다. 일부 구현예에서, 상기 시스템은 온-라인 측정 장치를 추가로 포함한다. 일부 구현예에서, 온-라인 측정 장치는 입자 크기 분석기, 푸리에 변환 적외선 분광기, 근적외선 분광기, 라만 분광기, 고압 액체 크로마토그래피, 점도계, 농도계, 텐시오미터, 소적 크기 분석기, pH 미터, 용존 산소 프로브, 또는 이의 조합으로부터 선택된다.The invention also relates to a process for producing a feedstock slurry, comprising at least one liquefaction unit configured to liquefy the feedstock to produce a feedstock slurry, wherein the liquefaction unit comprises an inlet for receiving the feedstock and an outlet for discharging the feedstock slurry Wherein the feedstock slurry comprises a fermentable carbon source, an oil, and an undissolved solid; And a wet cake comprising a fermentable carbon source, an oil stream, and a wet cake comprising a portion of the undissolved solids by removing oil and undissolved solids from the feed slurry, The centrifuge includes an inlet for receiving the feed slurry, a first outlet for discharging the aqueous solution, a second outlet for discharging the wet cake, and a third outlet for discharging the oil) / RTI > In some embodiments, the system includes one or more mixing devices; And at least one cleaning system configured to recover a fermentable carbon source from the wet cake, the at least one cleaning device comprising at least one separation device. In some embodiments, the separation device may be selected from the group consisting of decanter bowl centrifugation, 3-phase centrifugation, disk stack centrifugation, filtration centrifugation, decanter centrifugation, filtration, vacuum filtration, belt filtration, Is selected from filtration, filtration using screens, screen separation, gratings, porous gratings, suspended solids, hydrocyclones, filter presses, screw presses, gravity settlers, fluid separators, or combinations thereof. In some embodiments, the system further comprises at least one fermenter configured to ferment an aqueous solution to produce a product alcohol, the fermenter having an inlet for receiving an aqueous solution and / or a wet cake; And an outlet for discharging the fermentation broth comprising the product alcohol. In some embodiments, the system further comprises an on-line measurement device. In some embodiments, the on-line measurement device may be a particle size analyzer, a Fourier transform infrared spectroscope, a near infrared ray spectrometer, a Raman spectrometer, a high pressure liquid chromatography, a viscometer, a densitometer, a tensiometer, a droplet size analyzer, Or a combination thereof.
본원에 혼입되고 본 명세서의 일부분을 형성하는 첨부된 도면은 본 발명을 나타내며, 설명과 함께, 본 발명의 원리를 설명하고 관련 분야의 숙련가가 본 발명을 제조하고 사용할 수 있도록 하기 위해 추가로 제공된다.
도 1은 본 발명의 예시적인 공정 및 시스템을 개략적으로 나타내는 것이며, 여기서 용해되지 않은 고체는 액화 후 및 발효 전에 분리에 의해 제거된다.
도 2는 본 발명의 예시적인 대안 공정 및 시스템을 개략적으로 나타내며, 여기서 공급원료는 분쇄된다.
도 3은 본 발명의 다른 예시적인 대안 공정 및 시스템을 개략적으로 나타내며, 여기서 용해되지 않은 고체 및 오일은 분리에 의해 제거된다.
도 4는 본 발명의 다른 예시적인 대안 공정 및 시스템을 개략적으로 나타내며, 여기서 습윤 케이크는 하나 이상의 세척 주기에 적용된다.
도 5는 본 발명의 다른 예시적인 대안 공정 및 시스템을 개략적으로 나타내며, 여기서 용해되지 않은 고체 및 오일은 분리에 의해 제거되고 습윤 케이크는 하나 이상의 세척 주기에 적용된다.
도 6은 본 발명의 다른 예시적인 대안 공정 및 시스템을 개략적으로 나타내며, 여기서 수용액 및 습윤 케이크는 합해져서 발효로 처리된다.
도 7은 본 발명의 다른 예시적인 대안 공정 및 시스템을 개략적으로 나타내며, 여기서 수용액은 발효 전에 당화된다.
도 8은 본 발명의 다른 예시적인 대안 공정 및 시스템을 개략적으로 나타내며, 여기서 공급원료 슬러리는 분리 전에 당화된다.
도 9a 내지 도 9d는 본 발명의 예시적인 대안 공정 및 시스템을 개략적으로 나타내며, 여기서 추가의 분리 장치를 이용하여 용해되지 않은 고체 및 오일을 제거한다.
도 10은 발효 공정을 모니터링하기 위한 온-라인, 인-라인(in-line), 앳-라인(at-line) 및/또는 실시간 측정을 이용하는 예시적인 발효 공정을 개략적으로 나타낸다.
도 11은 다운스트림 공정(downstream processing)을 포함하는 본 발명의 예시적인 발효 공정을 개략적으로 나타낸다.
도 12는, 내부 직경이 2.03mm인 노즐을 사용하여 올레일 알코올을 분산시키는 경우 액화된 옥수수 전분의 수용액으로부터 버블 컬럼(bubble column)을 통해 상향으로 유동하는 올레일 알코올 소적의 분산액으로 i-BuOH를 전달하기 위한 전체 용적 질량 전달 계수(overall volumetric mass transfer coefficient), kLa에 대한 있어서 용해되지 않은 옥수수 매수 고체(corn mash solid)의 존재의 효과를 나타낸다.
도 13은, 내부 직경이 0.76mm인 노즐을 사용하여 올레일 알코올을 분산시키는 경우 액화된 옥수수 전분의 수용액으로부터 버블 컬럼을 통해 상향 유동하는 올레일 알코올 소적의 분산액으로 i-BuOH를 전달하기 위한 전체 용적 질량 전달 계수, kLa에 대한 용해되지 않은 옥수수 매수 고체의 존재의 효과를 나타낸다.
도 14는 (중력) 침전 시간(settling time)의 함수로서 발효 시료 튜브 속의 액체-액체 계면(liquid-liquid interface)의 위치를 나타낸다. 상 분리 데이터는 수행 시간: 5.3, 29.3, 53.3, 및 70.3 hr에 대해 나타낸다. 시료 데이터는 추출성-발효로부터의 것이며, 여기서 고체는 매쉬 공급물로부터 제거되었으며 올레일 알코올(OA)은 용매였다.
도 15는 (중력) 침강 시간의 함수로서 최종의 발효 브로쓰의 액체-액체 계면의 위치를 나타낸다. 데이터는 추출성-발효로부터의 것이며, 여기서 고체는 매쉬 공급물로부터 제거되었으며, 올레일 알코올(OA)은 용매였다.
도 16은 배취(batch) 1 및 배취 2에 대한 시간의 함수로서 슬러리의 수성 상내 글루코즈의 농도를 나타낸다.
도 17은 배취 3 및 배취 4에 대한 시간의 함수로서 슬러리의 수성 상 내 글루코즈의 농도를 나타낸다.
도 18은 전분 전환시 액화 동안 언젠가 적용되었던 효소 부하(loading) 및 +/- 고온 단계의 효과를 나타낸다.
도 19a 내지 도 19e는 공급원료 슬러리의 분리 시 3상 원심분리기 조건의 효과를 나타낸다.The accompanying drawings, which are incorporated in and constitute a part of this specification, illustrate the present invention and, together with the description, further serve to explain the principles of the invention and to enable a person skilled in the relevant art to make and use the invention .
Figure 1 schematically illustrates an exemplary process and system of the present invention in which the undissolved solids are removed by separation after liquefaction and prior to fermentation.
Figure 2 schematically depicts an exemplary alternative process and system of the present invention wherein the feedstock is pulverized.
Figure 3 schematically depicts another exemplary alternative process and system of the present invention wherein undissolved solids and oil are removed by separation.
Figure 4 schematically depicts another exemplary alternative process and system of the present invention wherein the wet cake is applied to one or more wash cycles.
Figure 5 schematically illustrates another exemplary alternative process and system of the present invention wherein the undissolved solids and oil are removed by separation and the wet cake is applied to one or more wash cycles.
Figure 6 schematically depicts another exemplary alternative process and system of the present invention wherein the aqueous solution and the wet cake are combined and processed for fermentation.
Figure 7 schematically illustrates another exemplary alternative process and system of the present invention wherein the aqueous solution is saccharified prior to fermentation.
Figure 8 schematically illustrates another exemplary alternative process and system of the present invention wherein the feedstock slurry is saccharified prior to separation.
Figures 9A-9D schematically illustrate exemplary alternative processes and systems of the present invention in which additional separation equipment is used to remove undissolved solids and oils.
Figure 10 schematically illustrates an exemplary fermentation process using on-line, in-line, at-line, and / or real-time measurements for monitoring the fermentation process.
Figure 11 schematically illustrates an exemplary fermentation process of the present invention including downstream processing.
12 is a graph showing the results of the measurement of the concentration of i- BuOH ( i- BuOH) in a dispersion of oleyl alcohol droplets flowing upward from an aqueous solution of liquefied corn starch through a bubble column when the oleyl alcohol is dispersed using a nozzle having an inner diameter of 2.03 mm The total volumetric mass transfer coefficient, k L a, for delivering the unconverted corn mash solids.
13 is a graph showing the relationship between the amount of i- BuOH and the total amount of i- BuOH transferred to a dispersion of oleyl alcohol droplets flowing upward from an aqueous solution of liquefied corn starch through a bubble column when oleyl alcohol is dispersed using a nozzle having an inner diameter of 0.76 mm. The effect of the presence of undissolved maize solids on the volume mass transfer coefficient, k L a, is shown.
Figure 14 shows the position of the liquid-liquid interface in the fermentation sample tube as a function of (gravity) settling time. The phase separated data are shown for run times: 5.3, 29.3, 53.3, and 70.3 hr. The sample data is from extractable-fermentation, where solids were removed from the mash feed and oleic alcohol (OA) was the solvent.
Figure 15 shows the position of the liquid-liquid interface of the final fermentation broth as a function of settling time (gravity). The data is from extractable-fermentation, where solids were removed from the mash feed and oleyl alcohol (OA) was the solvent.
Figure 16 shows the concentration of glucose in aqueous phase of the slurry as a function of time for
Figure 17 shows the concentration of glucose in the aqueous phase of the slurry as a function of time for
Figure 18 shows the effects of enzymatic loading and +/- high temperature steps that were applied sometime during liquefaction during starch conversion.
Figures 19a-e show the effect of a three phase centrifuge condition on the separation of the feedstock slurry.
달리 정의하지 않는 한, 본원에 사용된 모든 기술적 및 과학적 용어는, 본 발명이 속한 분야에서 통상의 기술자에 의해 일반적으로 이해되는 바와 동일한 의미를 가진다. 상충하는 경우에, 당해 정의를 포함하는 본 출원이 조절할 것이다. 또한, 내용에서 달리 필요하지 않은 한, 단수 용어는 복수를 포함할 것이며 복수 용어는 단수를 포함할 것이다. 본원에 언급된 모든 공보, 특허, 및 다른 참조문헌은, 모든 목적을 위해 이들의 전문이 참조로 혼입된다.Unless otherwise defined, all technical and scientific terms used herein have the same meaning as commonly understood by one of ordinary skill in the art to which this invention belongs. In case of conflict, the present application, including the subject definition, will control. Also, unless the context otherwise requires, the singular terms shall include the plural and the plural terms shall include the singular. All publications, patents, and other references mentioned herein are incorporated by reference in their entirety for all purposes.
본 발명을 추가로 정의하기 위하여, 다음 용어 및 정의가 본원에 제공된다.In order to further define the present invention, the following terms and definitions are provided herein.
본원에 사용된 것으로서, 용어 "포함하다", "포함하는", "포괄하다", "포괄하는", "갖다", "갖는", "함유하다", 또는 "함유하는", 또는 이의 어떠한 다른 변형은 기술된 정수 또는 정수들의 그룹을 포함하지만 어떠한 다른 정수 또는 정수들의 그룹은 배제하지 않음을 내포하는 것으로 이해될 것이다. 예를 들어, 성분들의 목록을 포함하는 조성물, 혼합물, 공정, 방법, 물품, 또는 장치는 필수적으로 이들 성분에만 한정되는 것이 아니라 이러한 조성물, 혼합물, 공정, 방법, 물품, 또는 장치를 표현하여 나열하거나 이에만 고유하지 않은 다른 성분도 포함할 수 있다. 또한, 달리 표현하여 기술하지 않는 한, "또는"은 포괄적인 또는(inclusive or) 이며 배타적인 또는(exclusive or)이 아님을 말한다. 예를 들면, 조건 A 또는 B는 다음 중 어느 하나에 의해 충족된다: A는 진실(또는 존재한다)이고 B는 거짓이고(또는 존재하지 않는다), A는 거짓(또는 존재하지 않는다)이고 B는 진실(또는 존재한다)이며, A 및 B 둘 다는 진실이다(또는 존재한다).As used herein, the terms "comprises," "including," "including," "including," "having," "having," "containing," or "containing" It will be understood that a variation includes a group of integers or integers as described, but does not exclude any other integer or group of integers. For example, a composition, mixture, process, method, article, or apparatus that comprises a list of components is not necessarily limited to these components, but may be any component, mixture, process, method, article, Other ingredients that are not unique may also be included. Also, unless expressly stated otherwise, "or" refers to inclusive or exclusive and not exclusive or. For example, condition A or B is satisfied by either: A is true (or exists), B is false (or does not exist), A is false (or does not exist) Truth (or exists), and both A and B are true (or exist).
또한, 본 발명의 성분 또는 부품 앞의 부정 관사 하나("a" 및 "an")는 다수의 일례, 즉, 성분 또는 부품의 발생에 대해 비제한적인 것으로 의도된다. 따라서, 하나("a" 또는 "an")는 하나 또는 적어도 하나를 포함하는 것으로 해석되어야 하며, 성분 또는 부품의 단수 단어 형태는, 당해 수가 명백하게 단수를 의미하는 것을 제외하고는 다수를 또한 포함한다.Also, it is intended that the singular forms " a " and "an" preceding the components or parts of the invention are non-limiting in numerous instances, i. Accordingly, one ("a" or "an") should be interpreted as including one or at least one, and the singular word form of an element or part also includes a plurality, except where the number clearly implies a singular .
본원에 사용된 것으로서 용어 "발명" 또는 "본 발명"은 비-제한적 용어이며 특수한 발명의 어떠한 단일 구현예를 언급하는 것으로 의도되는 것이 아니라 본 출원에 기술된 모든 가능한 구현예를 포함한다.As used herein, the term " invention "or" invention "is a non-limiting term and is intended to refer to any single embodiment of the specific invention, as well as all possible implementations described in this application.
본원에 사용된 것으로서, 사용된 본 발명의 성분 또는 시약의 양을 변경하는 용어 "약"은 예를 들면, 실제로 농축물 또는 용액을 제조하는데 사용된 대표적인 측정 및 액체 취급 과정을 통해; 이들 과정에서 의도되지 않은 오차를 통해; 성분을 제조하거나 방법을 수행하는데 사용된 제조, 공급원, 또는 성분의 순도에 있어서의 차이 등을 통해 발생할 수 있는 수치적 양에 있어서의 변화를 말한다. 용어 "약"은 또한 특수한 초기 혼합물로부터 생성되는 조성물에 대한 상이한 평형 조건으로 인해 상이한 양을 포함한다. 용어 "약"이 변형되거나 변형되지 않는 것에 상관없이, 특허청구범위는 양에 대해 등량을 포함한다. 하나의 구현예에서, 용어 "약"은 보고된 수치의 10% 이내, 대안적으로 보고된 수치의 5% 이내를 의미한다.As used herein, the term "about" for modifying the amount of an ingredient or reagent of the present invention used, for example, through representative measurements and liquid handling procedures actually used to prepare the concentrate or solution; Through unintentional errors in these processes; Refers to a change in the numerical amount that may occur through the manufacture, source, or difference in purity of the ingredients used to make the composition or perform the method. The term " about "also includes a different amount due to the different equilibrium conditions for the composition resulting from the particular initial mixture. Regardless of whether the term "about" is modified or not, the claims include equivalents to amounts. In one embodiment, the term "about" means within 10% of the reported value, alternatively within 5% of the reported value.
본원에 사용된 것으로서 "생물량"은 옥수수, 사탕수수(또는 줄기), 밀, 셀룰로즈성 또는 리그노셀룰로즈성 물질, 및 셀룰로즈, 헤미셀룰로즈, 리그닌, 전분, 올리고당(oligosaccharide), 이당류, 및/또는 단당류, 및 이의 혼합물을 포함하는 물질과 같은 천연 자원으로부터 기원한 특정 당류 및 전분을 포함하는 발효가능한 당류를 제공하는 가수분해가능한 다당류를 함유하는 천연 생성물을 말한다. 생물량은 또한 단백질 및/또는 지질과 같은 추가의 성분을 포함할 수 있다. 생물량은 단일 공급원으로부터 기원할 수 있거나 생물량은 하나 이상의 공급원으로부터 유도된 혼합물을 포함할 수 있다. 예를 들어, 생물량은 옥수수 속대(corn cob) 및 옥수수 대(corn stover)의 혼합물, 또는 풀 및 잎의 혼합물을 포함할 수 있다. 생물량은 생물에너지 작물, 농사 잔류물, 도시 고형 폐기물, 산업용 고형 폐기물, 제지 제조로부터의 슬러지(sludge), 실외 쓰레기(yard waste), 및 목재 및 산림 폐기물(예를 들면, 산림 간별)을 포함하나, 이에 한정되지 않는다. 생물량의 예는 옥수수 낟알, 옥수수 속대, 옥수수 껍질과 같은 옥수수 잔재, 옥수수 대, 잡초, 밀, 호밀, 밀짚, 스펠트밀(spelt), 라이밀(triticale), 보리, 보리 짚, 귀리, 건초, 벼, 볏짚, 스위치그래스(switchgrass), 감자, 고구마, 카사바, 뚱딴지 덩이줄기(Jerusalem artichoke), 사탕수수 찌꺼기, 수수, 사탕수수, 사탕 무우, 사료용 무우, 대두, 야자, 코코넛, 평지씨, 잇꽃, 해바라기꽃, 수수, 유칼립투스, 억새, 폐지, 낟알, 나무, 가지, 뿌리, 잎, 나무조각, 톱밥, 관목 및 덤불을 분쇄하여 수득된 성분, 야채, 과일, 꽃, 동물 거름, 및 이의 혼합물을 포함하나, 이에 한정되지 않는다. 매쉬, 쥬스, 당밀, 또는 가수분해물은 분쇄, 처리(예를 들면, 효소적, 화학적), 및/또는 액화와 같은 발효 목적을 위해 생물량을 가공하기 위한 당해 분야에 공지된 어떠한 방법으로도 생물량으로부터 형성시킬 수 있다. 처리된 생물량은 발효가능한 당(sugar) 및/또는 물을 포함할 수 있다. 셀룰로즈성 및/또는 리그노셀룰로즈성 생물량은 가공하여 당해 분야의 숙련가에게 공지된 어떠한 방법에 의해서도 발효가능한 당을 함유하는 가수분해물을 수득할 수 있다. 예를 들어, 저 암모니아 전처리는, 이의 전문이 본원에 참조로 혼입된, 미국 특허원 공보 제2007/0031918A1호에 기재되어 있다. 셀룰로즈성 및/또는 리그노셀룰로즈성 생물량의 효소적 당화는 전형적으로 셀룰로즈 및 헤미셀룰로즈의 가수분해를 위해 효소 혼합물을 사용하여 글루코즈, 크실로즈, 및 아라비노즈를 포함하는 당류를 함유하는 가수분해물을 생성하도록 한다. 셀룰로즈성 및/또는 리그노셀룰로즈성 생물량에 적합한 당화 효소는 린(Lynd) 등의 문헌(참조: Microbiol. Mol. Biol. Rev. 66:506-577, 2002)에서 고찰된다.As used herein, the term "biomass" is intended to encompass corn, sugarcane (or stem), wheat, cellulosic or lignocellulosic materials, and cellulose, hemicellulose, lignin, starch, oligosaccharides, disaccharides, and / Refers to natural products containing hydrolyzable polysaccharides that provide fermentable sugars, including certain saccharides and starches from natural sources, such as, for example, sugars, and mixtures thereof. Biomass may also include additional components such as proteins and / or lipids. The biomass may originate from a single source or the biomass may comprise a mixture derived from one or more sources. For example, the biomass may comprise a mixture of corn cob and corn stover, or a mixture of grass and leaves. Biomass includes biological energy crops, agricultural residues, municipal solid wastes, industrial solid wastes, sludge from paper manufacturing, yard waste, and wood and forest wastes (eg, by forests) , But is not limited thereto. Examples of biomass are corn residues such as corn kernels, corncobs, corn husks, cornstalks, weeds, wheat, rye, straw, spelled, triticale, barley, barley straw, oats, hay, Rice, rice straw, switchgrass, potato, sweet potato, cassava, Jerusalem artichoke, sugarcane remnants, sorghum, sugar cane, beetroot, beef cattle, soybean, palm, coconut, Vegetable, fruit, flower, animal manure, and mixtures thereof obtained by pulverizing sunflower flowers, sorghum, eucalyptus, wheat, abolished paper, grains, trees, branches, roots, leaves, wood chips, sawdust, shrubs and bushes But is not limited thereto. The mash, juice, molasses, or hydrolyzate may be removed from the biomass by any method known in the art for processing biomass for fermentation purposes such as grinding, processing (e.g., enzymatic, chemical), and / . The treated biomass may comprise fermentable sugars and / or water. The cellulosic and / or lignocellulosic biomass may be processed to yield a hydrolyzate containing the fermentable sugars by any method known to those skilled in the art. For example, low ammonia pretreatment is described in U. S. Patent Publication No. 2007/0031918 Al, which is incorporated herein by reference in its entirety. The enzymatic saccharification of cellulosic and / or lignocellulosic biomass typically produces hydrolysates containing saccharides including glucose, xylose, and arabinose, using enzymatic mixtures for the hydrolysis of cellulose and hemicellulose . Suitable glycosylating enzymes for cellulosic and / or lignocellulosic biomass are discussed in Lynd et al. (Microbiol. Mol. Biol. Rev. 66: 506-577, 2002).
본원에 사용된 것으로서 "발효가능한 탄소원" 또는 "발효가능한 탄소 기질"은 미생물에 의해 대사될 수 있는 탄소원을 말한다. 적합한 발효가능한 탄소원은 글루코즈 또는 프럭토즈와 같은 단당류; 락토즈 또는 슈크로즈와 같은 이당류; 올리고당; 전분 또는 셀룰로즈와 같은 다당류; 하나의 탄소 기질; 및 이들의 혼합물을 포함하나, 이에 한정되지 않는다.As used herein, "fermentable carbon source" or "fermentable carbon substrate" refers to a carbon source that can be metabolized by a microorganism. Suitable fermentable carbon sources include monosaccharides such as glucose or fructose; Disaccharides such as lactose or sucrose; oligosaccharide; Polysaccharides such as starch or cellulose; One carbon substrate; And mixtures thereof.
본원에 사용된 것으로서 "발효가능한 당"은 알코올과 같은 발효 생성물의 생성을 위해 미생물에 의해 대사될 수 있는 하나 이상의 당류를 말한다.As used herein, "fermentable sugar" refers to one or more sugars that can be metabolized by microorganisms for the production of a fermentation product, such as alcohol.
본원에 사용된 것으로서 "공급원료"는 발효 공정내 공급물을 말한다. 공급물은 발효가능한 탄소원을 포함할 수 있으며 용해되지 않은 고체 및/또는 오일을 포함할 수 있다. 적용가능한 경우, 공급물은, 발효가능한 탄소원이 전분으로부터 유리되거나 액화, 당화, 또는 다른 공정에 의해서와 같은 추가의 공정에 의해 복합체 당류의 가수분해로부터 수득되어지기 전 또는 후의 발효가능한 탄소원을 포함할 수 있다. 공급원료는 생물량을 포함하거나 이로부터 유도될 수 있다. 적합한 공급원료는 호밀, 밀, 옥수수, 옥수수 매쉬, 사탕 수수, 줄기 매쉬, 보리, 셀룰로즈성 물질, 리그노셀룰로즈성 물질, 또는 이들의 혼합물을 포함하나, 이에 한정되지 않는다. "공급원료 오일"에 대해 언급하는 경우, 당해 용어가 제공된 공급원료로부터 생성된 오일을 포함한다는 것이 인식될 것이다.As used herein, "feedstock" refers to a feedstock in a fermentation process. The feed may comprise a fermentable carbon source and may include undissolved solids and / or oils. If applicable, the feed may comprise a fermentable carbon source either before or after the fermentable carbon source is liberated from the starch or obtained from the hydrolysis of the complex saccharide by further processing, such as by liquefaction, saccharification, or other processes . The feedstock may comprise or be derived from a biomass. Suitable feedstocks include, but are not limited to, rye, wheat, corn, corn mash, sorghum, stem mash, barley, cellulosic material, lignocellulosic material, or mixtures thereof. When referring to "feedstock oil ", it will be appreciated that the term includes oils derived from the feedstock provided.
본원에 사용된 것으로서 "발효 브로쓰"는 물, 발효가능한 탄소원(예를 들면, 당류, 전분), 용해된 고체, 임의로 미생물을 생성하는 발효 생성물, 임의로 발효 생성물(예를 들면, 생성물 알코올), 임의로 용해되지 않은 고체, 및 발효 생성물이 미생물에 의해 발효가능한 탄소원의 물질대사에 의해 제조됨으로써 발효 생성물, 물, 및 이산화탄소(CO2)를 형성하는 발효기 속에 유지된 물질의 다른 성분의 혼합물을 말한다. 본원에 가끔 사용된 것으로서, 용어 "발효 배지" 및 "발효된 혼합물"은 "발효 브로쓰"와 동의어로 사용될 수 있다.As used herein, the term "fermented broth" includes water, fermentable carbon sources (e.g. sugars, starches), dissolved solids, fermentation products which optionally produce microorganisms, optionally fermentation products are optionally insoluble solid, and the fermentation products are produced by the metabolism of a fermentable carbon source by the microorganism being refers to a mixture of the other components of the material held in the fermentation product, the fermentation to form water, and carbon dioxide (CO 2). As sometimes used herein, the terms "fermentation medium" and "fermented mixture" may be used synonymously with "fermentation broth".
본원에 사용된 것으로서 "발효기" 또는 "발효 용기"는, 발효 반응이 수행됨으로써 발효 생성물(예를 들면, 에탄올 또는 부탄올과 같은 생성물 알코올)이 발효가능한 탄소원으로부터 제조되는 용기, 유닛(unit), 또는 탱크를 말한다. 발효기는 또한, 미생물의 성장이 일어나는 용기, 유닛, 또는 탱크를 말할 수 있다. 일부 예에서, 미생물 성장 및 발효 둘 다는 발효기 속에서 일어날 수 있다. 용어 "발효기"는 본원에서 "발효 용기"와 동의어로 사용될 수 있다.As used herein, a "fermenter" or "fermentation vessel" is intended to encompass a container, unit, or container made from a fermentable carbon source of fermentation product (eg, a product alcohol such as ethanol or butanol) Tanks. The fermenter may also refer to a vessel, unit, or tank in which the growth of the microorganism takes place. In some instances, both microbial growth and fermentation can occur in a fermenter. The term "fermenter" may be used herein synonymously with "fermentation vessel ".
본원에 사용된 것으로서, "당화 용기"는, 당화(즉, 올리고당의 단당류로의 가수분해)가 수행되는 용기, 장치, 또는 탱크를 말한다. 발효 및 당화가 동시에 일어나는 경우, 당화 용기 및 발효기는 동일한 용기일 수 있다.As used herein, "glycation vessel" refers to a vessel, device, or tank in which saccharification (i.e., hydrolysis of oligosaccharide to monosaccharide) is performed. When fermentation and saccharification occur at the same time, the saccharification vessel and the fermenter may be the same vessel.
본원에 사용된 것으로서 "당화 효소"는 다당류 및/또는 올리고당, 예를 들면, 글리코겐의 알파-1,4-글루코시드 결합, 또는 전분을 가수분해할 수 있는 하나 이상의 효소를 말한다. 당화 효소는 또한 셀룰로즈성 또는 리그노셀룰로즈성 물질을 또한 가수분해할 수 있는 효소를 포함할 수 있다.As used herein, "saccharifying enzyme" refers to one or more enzymes capable of hydrolysing polysaccharides and / or oligosaccharides, for example alpha-1, 4-glucoside bonds, or starch of glycogen. The saccharifying enzyme may also comprise an enzyme capable of hydrolyzing the cellulosic or lignocellulosic material as well.
본원에 사용된 것으로서 "액화 용기"는, 액화가 수행되는 용기, 유닛, 또는 탱크를 말한다. 액화는, 전분이 예를 들면, 효소적 공정에 의해 가수분해되어 올리고당을 수득하는 공정이다. 공급원료가 옥수수인 구현예에서, 올리고당은 액화 동안 옥수수 전분 성분으로부터 가수분해된다.As used herein, "liquefier vessel" refers to a vessel, unit, or tank in which liquefaction is performed. Liquefaction is a process in which starch is hydrolyzed, for example, by an enzymatic process to obtain oligosaccharides. In embodiments where the feedstock is corn, the oligosaccharide is hydrolyzed from the corn starch component during liquefaction.
본원에 사용된 것으로서 "당"은 올리고당, 이당류, 단당류, 및/또는 이들의 혼합물을 말한다. 용어 "당류"는 또한 전분, 덱스트란, 글리코겐, 셀룰로즈, 펜토산과 같은 탄수화물, 및 또한 당을 포함할 수 있다.As used herein, "sugar" refers to oligosaccharides, disaccharides, monosaccharides, and / or mixtures thereof. The term "saccharide" may also include carbohydrates such as starch, dextran, glycogen, cellulose, pentanoic acid, and also sugars.
본원에 사용된 것으로서 "용해되지 않은 고체"는 액체 또는 수성 상 속에서 용해되지 않는 공급원료의 발효가능하지 않은 일부, 예를 들면, 배아, 섬유, 및 글루텐을 말한다. 공급원료의 발효가능하지 않은 부위는 고체로서 잔존하며 발효 브로쓰로부터 액체를 흡수할 수 있는 공급원료의 일부를 포함한다. 본원에 가끔 사용된 것으로서, 용어 "용해되지 않은 고체"는 "고체" 또는 "현탁된 고체"와 동의어로 사용될 수 있다.As used herein, "undissolved solids" refers to non-fermentable portions of feedstocks that are not soluble in the liquid or aqueous phase, such as embryos, fibers, and gluten. The non-fermentable portion of the feedstock remains as a solid and contains a portion of the feedstock that is capable of absorbing liquid from the fermentation broth. As sometimes used herein, the term "undissolved solid" may be used synonymously with "solid" or "suspended solid ".
본원에 사용된 것으로서 "추출제"는 발효 생성물을 추출하는데 사용된 용매를 말한다. 본원에 가끔 사용된 것으로서, 용어 "추출제"는 "용매"와 동일어로 사용될 수 있다.As used herein, "extractant" refers to the solvent used to extract the fermentation product. As sometimes used herein, the term "extractant" may be used in the same language as "solvent ".
본원에 사용된 것으로서 "반응계내 생성물 제거"(ISPR)는 발효와 같은 생물학적 공정으로부터 생성물을 선택적으로 제거하여 생성물이 생성됨에 따라 생물학적 공정에서 생성물 농도를 조절하는 것을 말한다.As used herein, the term " removal of products in a reaction system "(ISPR) refers to the control of product concentration in a biological process as the product is produced by selectively removing the product from biological processes such as fermentation.
본원에 사용된 것으로서 "생성물 알코올"은 발효가능한 탄소원으로서 생물량을 이용하는 발효 공정에서 미생물에 의해 생성될 수 있는 임의의 알코올을 말한다. 생성물 알코올은 C1 내지 C8 알킬 알코올을 포함하나, 이에 한정되지 않는다. 일부 구현예에서, 생성물 알코올은 C2 내지 C8 알킬 알코올이다. 다른 구현예에서, 생성물 알코올은 C2 내지 C5 알킬 알코올이다. C1 내지 C8 알킬 알코올은 메탄올, 에탄올, 프로판올, 부탄올, 펜탄올, 헥산올, 및 이들의 이성체를 포함하나, 이에 한정되지 않는다. 유사하게, C2 내지 C8 알킬 알코올은 에탄올, 프로판올, 부탄올, 펜탄올, 헥산올, 및 이들의 이성체를 포함하나, 이에 한정되지 않는다. 용어 "알코올"은 생성물 알코올에 대한 참조와 함께 본원에서 또한 사용될 수 있다.As used herein, "product alcohol" refers to any alcohol that can be produced by a microorganism in a fermentation process that utilizes biomass as a fermentable carbon source. The product alcohols include, but are not limited to, C 1 to C 8 alkyl alcohols. In some embodiments, the product alcohol is a C 2 to C 8 alkyl alcohol. In another embodiment, the product alcohol is a C 2 to C 5 alkyl alcohol. C 1 to C 8 alkyl alcohols include, but are not limited to, methanol, ethanol, propanol, butanol, pentanol, hexanol, and isomers thereof. Similarly, C 2 to C 8 alkyl alcohols include, but are not limited to, ethanol, propanol, butanol, pentanol, hexanol, and isomers thereof. The term "alcohol" may also be used herein with reference to a product alcohol.
본원에 사용된 것으로서 "부탄올"은 개별적으로 또는 이의 혼합물로서 부탄올 이성체: 1-부탄올(1-BuOH), 2-부탄올(2-BuOH), 3급-부탄올(tert-BuOH), 및/또는 이소부탄올(iBuOH, i-BuOH, 또는 i-BUOH)을 말한다.As used herein, "butanol ", individually or as a mixture thereof, includes butanol isomers such as 1-butanol (1-BuOH), 2-butanol (2-BuOH), tert- Butanol (iBuOH, i-BuOH, or i-BUOH).
본원에 사용된 것으로서 "프로판올"은 개별적으로 또는 이의 혼합물로서 프로판올 이성체: 이소프로판올 또는 1-프로판올을 말한다.As used herein, "propanol" refers to propanol isomers: isopropanol or 1-propanol, either individually or as a mixture thereof.
본원에 사용된 것으로서 "펜탄올"은 개별적으로 또는 이의 혼합물로서 펜탄올 이성체: 1-펜탄올, 3-메틸-1-부탄올, 2-메틸-1-부탄올, 2,2-디메틸-1-프로판올, 3-펜탄올, 2-펜탄올, 3-메틸-2-부탄올, 또는 2-메틸-2-부탄올을 말한다.As used herein, "pentanol ", individually or as a mixture thereof, is selected from the group consisting of pentanol isomers: 1-pentanol, 3-methyl-1-butanol, 2-methyl-1-butanol, 2,2- , 3-pentanol, 2-pentanol, 3-methyl-2-butanol, or 2-methyl-2-butanol.
본원에 사용된 것으로서 "유효 역가"는 발효에 의해 생성된 특수한 발효 생성물(예를 들면, 생성물 알코올)의 총량을 말한다. 발효 생성물이 생성물 알코올인 일부 구현예에서, 유효 역가는 발효 배지의 리터당 알코올 에스테르화에 의해 생성된 알코올 에스테르의 알코올 등가물을 말한다.As used herein, "effective potency" refers to the total amount of a particular fermentation product (e.g., product alcohol) produced by fermentation. In some embodiments where the fermentation product is a product alcohol, an effective reversal refers to an alcohol equivalent of an alcohol ester produced by alcohol esterification per liter of fermentation medium.
본원에서 사용된 것으로서 "수-비혼화성" 또는 "불용성"은 하나의 액체 상을 형성하기 위한 것과 같은 방식으로, 발효 브로쓰와 같은 수용액과 혼합할 수 없는, 추출제 또는 용매와 같은 화학 성분을 나타낸다.As used herein, "water-immiscible" or "insoluble" means a chemical component, such as an extractant or solvent, which can not be mixed with an aqueous solution, such as a fermentation broth, .
본원에서 사용된 것으로서 "수성 상"은 발효 브로쓰를 추출제, 예를 들면, 수-비혼화성 유기 추출제와 접촉시킴으로써 수득된 적어도 2상 혼합물의 수성 상을 나타낸다. 발효성 추출을 포함하는 본원에 기술된 공정의 한 가지 구현예에서, 용어 "발효 브로쓰"는 이후에 2상 발효 추출에서의 수성 상을 나타낼 수 있다.As used herein, "aqueous phase" refers to an aqueous phase of at least two-phase mixture obtained by contacting a fermentation broth with an extractant, for example, a water-immiscible organic extractant. In one embodiment of the process described herein, including fermentative extraction, the term "fermentation broth" may hereinafter refer to an aqueous phase in two phase fermentation extraction.
본원에서 사용된 것으로서 "수성 상 역가"는 수성 상 속의 발효 농축물(예를 들면, 생성물 알코올)을 나타낸다.As used herein, "aqueous phase titer" refers to a fermentation concentrate in aqueous phase (eg, product alcohol).
본원에서 사용된 것으로서 "유기 상"은 발효 브로쓰를 추출제, 예를 들면, 수-비혼화성 유기 추출제와 접촉시킴으로써 수득된 적어도 2상 혼합물의 비-수성 상을 나타낸다.As used herein, "organic phase" refers to a non-aqueous phase of at least two-phase mixture obtained by contacting a fermentation broth with an extractant, for example, a water-immiscible organic extractant.
공정 스트림과 관련하여 본원에서 사용된 것으로서 "부분"은, 스트림의 모든 성분을 포함하는, 스트림의 어떠한 성분 또는 성분들 뿐만 아니라, 전체 스트림을 포함하는 스트림의 조성물을 보유하는 스트림의 어떠한 분획 부분을 나타낸다.As used herein in connection with a process stream, a "portion" refers to any component or components of a stream, including all components of the stream, as well as any fractional portion of the stream that holds the composition of the stream comprising the entire stream .
본원에서 사용된 것으로서 "부산물" 또는 "공-생성물"은 또 다른 생성물의 생성 동안에 생성된 생성물을 나타낸다. 일부 경우에, 용어 "공-생성물"은 용어 "부산물"과 동의어로 사용될 수 있다. 공-생성물은 예를 들면, 공급원료 슬러리, 습윤 케이크, 및 DDGS로부터 회수된 오일을 포함한다. 공-생성물은 또한 가치를 증진시킬 목적을 위한 및/또는 오일로부터 바이오디젤과 같은 다른 생성물을 제조하기 위한 오일, 습윤 케이크 및 DDGS의 변형을 포함할 수 있다.As used herein, "by-product" or "co-product" refers to the product produced during the production of another product. In some cases, the term "co-product" may be used synonymously with the term "by-product ". The co-product includes, for example, feedstock slurry, wet cake, and oil recovered from DDGS. The co-product may also include oils, wet cakes and modifications of DDGS for the purpose of enhancing value and / or for producing other products such as biodiesel from oils.
본원에서 사용된 바와 같은 "증류기 공-생성물"은 발효 전에 또는 발효 동안에 분리될 수 있는 생성물 알코올 생성 공정으로부터의 부산물을 나타낸다. 증류기 공-생성물은, 생성물 알코올이 발효된 매쉬, 및 매쉬로부터 분리된 고체로부터 제거된 후에 잔류하는 비-발효가능한 생성물을 포함한다. 본원에서 사용된 바와 같이, 증류기 공-생성물은 다양한 동물 사료 및 비-동물 사료 제품에서 사용될 수 있다. 증류기 공-생성물의 예는 오일 가수순해로부터의 지방산, 묽은 증류폐액(thin stillage)의 증발로부터의 지질, 시럽, 증류기 곡물(grain), 증류기 곡물 및 가용물, 발효 전의 매쉬로부터의 고체, 및 발효 후의 전체 증류폐액으로부터의 고체, 바이오디젤, 및 아실 글리세라이드를 포함하지만 이에 제한되지 않는다.A "distiller co-product" as used herein refers to a by-product from a product alcohol production process that can be separated prior to fermentation or during fermentation. The distiller co-product comprises a non-fermentable product that remains after the product alcohol has been removed from the fermented mash and from the solid isolated from the mash. As used herein, distiller co-products can be used in a variety of animal feed and non-animal feed products. Examples of distiller co-products are: fatty acids from oil solubilisation, lipids from evaporation of thin stillages, syrups, distiller grains, distiller grains and solubles, solids from the mesh before fermentation, and fermentation But are not limited to, solids, biodiesel, and acylglycerides from whole distillation wastewater.
본원에서 사용된 것으로서 "동물 사료용 증류기 공-생성물"은 동물 사료에서 또는 동물 사료로서 사용하기에 적합한 증류기 공-생성물을 나타낸다. 동물 사료용 증류기 공-생성물의 예는 오일 가수분해로부터의 지방산, 묽은 증류폐액의 증발로부터의 지질, 시럽, 증류기 곡물, 증류기 곡물 및 가용물, 발효 전의 매쉬로부터의 고체, 및 발효 후의 전체 증류폐액으로부터의 고체를 포함하지만 이에 제한되지 않는다.As used herein, "animal feed distiller co-product" refers to a distiller co-product suitable for use in animal feed or as animal feed. Examples of animal feed distiller co-products are fatty acids from oil hydrolysis, lipids from evaporation of dilute distillery liquor, syrups, distiller grains, distiller grains and solids, solids from the mesh before fermentation, But are not limited to, solids.
본원에서 사용된 바와 같은 "증류기 곡물" 또는 "DG"는, 생성물 알코올이 발효된 매쉬로부터 제거된 후에 잔류하는 비-발효가능한 생성물을 나타낸다. 건조된 증류기 곡물은 "증류기 건조된 곡물" 또는 "DDG"로 공지되어 있다. 건조되지 않은 증류기 곡물은 "습윤 증류기 곡물" 또는 "WDG"로 공지되어 있다.As used herein, "distiller grain" or "DG" refers to a non-fermentable product that remains after the product alcohol has been removed from the fermented mash. Dried distiller grains are known as "distiller-dried grains" or "DDG". Non-dried distiller grains are known as "wet distiller grains" or "WDG ".
본원에서 사용된 것으로서 "증류기 곡물 및 가용물" 또는 "DGS"는, 생성물 알코올이 가용물과 배합된 발효된 매쉬로부터 제거된 후에 잔류하는 비-발효가능한 생성물을 나타낸다. 건조된 증류기 곡물 및 가용물은 "증류기 건조된 곡물 및 가용물" 또는 "DDGS"로 공지되어 있다. 건조되지 않은 증류기 곡물 및 가용물은 "습윤 증류기 곡물 및 가용물" 또는 "WDGS"로 공지되어 있다.As used herein, "distiller grains and solubles" or "DGS" refers to a non-fermentable product that remains after the product alcohol has been removed from the fermented mash with the solubles. Dried distiller grains and soluble matter are known as "distiller dried grains and soluble matter" or "DDGS". Non-dried distiller grains and soluble matter are known as "wet retort grains and sweeteners" or "WDGS ".
본원에서 사용된 것으로서 "가용물을 지닌 건조된 증류기 곡물(DDGS)"은 공급원료 또는 생물량의 발효(예를 들면, 생성물 알코올을 생성하는 곡물 또는 곡물 혼합물의 발효)로부터의 공-생성물 또는 부산물을 나타낸다. 일부 구현예에서, DDGS는 또한 생성물 알코올을 제조하는 공정으로부터 생성된 동물 사료를 나타낼 수 있다.As used herein, "dry distiller grains with solubles (DDGS)" refers to co-products or by-products from the fermentation of the feedstock or biomass (e.g., fermentation of the cereal or grain mixture producing the product alcohol) . In some embodiments, DDGS may also represent an animal feed produced from the process of producing product alcohols.
본원에서 사용된 것으로서 "지질"은 비극성 용매 중에서 수-불용성이고 가용성인, 지방산, 중성 지방, 왁스 및 스테로이드를 포함하는 지방 및 지방형 물질의 이종 그룹 중 어느 것을 나타낸다. 지질의 예는 모노글리세라이드, 디글리세라이드, 트리글리세라이드 및 인지질을 포함한다.As used herein, "lipid" refers to any of a heterogeneous group of fatty and fatty substances, including fatty acids, triglycerides, waxes and steroids, which are water-insoluble and soluble in non-polar solvents. Examples of lipids include monoglycerides, diglycerides, triglycerides and phospholipids.
공정 스트림과 관련하여 본원에서 사용된 바와 같은 "증발로부터의 지질"은 생성물 알코올 생성 공정에서 발효 이후의 묽은 증류폐액의 증발 및 원심분리에 의해 생성된 지질 부산물을 나타낸다."Lipids from evaporation ", as used herein in connection with process streams, refers to lipid byproducts produced by evaporation and centrifugation of dilute distillery waste liquid after fermentation in a product alcohol production process.
공정 스트림과 관련하여 본원에서 사용된 바와 같은 "시럽" 또는 "농축된 증류기 가용물"(CDS)은 생성물 알코올 생성 공정에서 발효 이후의 묽은 증류폐액의 증발에 의해 생성된 부산물을 나타낸다."Syrup" or "concentrated distiller solubles" (CDS) as used herein in connection with process streams refers to byproducts produced by evaporation of dilute distillery waste after fermentation in a product alcohol production process.
본원에서 사용된 것으로서 "공정 스트림"은 발효 생성물 생성 공정에 의해 형성된 어떠한 부산물 또는 공-생성물에 관한 것이다. 공정 스트림의 예는 COFA, 증발로부터의 지질, 시럽, DG, DDG, WDG, DGS, DDGS, 및 WDGS를 포함하지만 이에 제한되지 않는다. 공정 스트림의 또 다른 예는, 발효 생성물 생성 공정에서 발효 전의 매쉬로부터 제거된(예를 들면, 원심분리에 의함) 고체(예를 들면, 발효 전의 옥수수 매쉬로부터 제거된 고체)이다. 이들 고체는, 이들이 건조되지 않은 경우 "습윤 케이크"로 언급될 수 있으며, 이들이 건조된 경우 "무수 케이크"로서 언급될 수 있다. 공정 스트림의 또 다른 예는 발효 생성물 생성 공정에서 발효 이후에 전체 증류폐액으로부터 제거된(예를 들면, 원심분리에 의함) 고체이다. 이들 고체는, 이들이 건조되지 않은 경우 "WS 습윤 케이크"로 언급될 수 있으며, 이들이 건조된 경우 "WS 무수 케이크"로서 언급될 수 있다. 가끔 본원에 사용된 것으로서, 용어 "공정 스트림"은 "스트림"과 동의어로 사용될 수 있다.As used herein, "process stream" refers to any by-product or co-product formed by the fermentation product production process. Examples of process streams include, but are not limited to, COFA, lipids from evaporation, syrup, DG, DDG, WDG, DGS, DDGS, and WDGS. Another example of a process stream is a solid (e. G., A solid removed from the maize mesh before fermentation) that has been removed from the mash prior to fermentation in the fermentation product production process (e. G., By centrifugation). These solids can be referred to as "wet cake" if they are not dried, and can be referred to as "dry cake" if they are dried. Another example of a process stream is a solid (e.g., by centrifugation) that has been removed from the entire distillation waste liquid after fermentation in the fermentation product production process. These solids can be referred to as "WS wet cake" if they are not dried and can be referred to as "WS dry cake" As sometimes used herein, the term "process stream" may be used synonymously with "stream ".
본 발명은 발효를 이용하여 생성물 알코올과 같은 발효 생성물을 생성하기 위한 공정 및 방법을 제공한다. 본원에 기술된 공정 및 방법을 이용하여 생성될 수 있는 다른 발효 생성물은 프로판디올, 부탄디올, 아세톤, 락트산, 아세트산, 부티르산, 및 프로피온산과 같은 산; 수소 메탄, 및 이산화탄소와 같은 기체; 아미노산; 바이오틴, 비타민 B2(리보플라빈), 비타민 B12(예를 들면, 코발라민), 아스코르브산(예를 들면, 비타민 C), 비타민 E(예를 들면, a-토코페롤), 및 비타민 K(예를 들면, 메나퀴논)와 같은 비타민; 에리트로마이신, 페니실린, 스트렙토마이신, 및 테트라사이클린과 같은 항생제; 및 시트르산, 인베르타제, 소르비톨, 펙티나제, 및 자일리톨과 같은 다른 생성물을 포함한다.The present invention provides processes and methods for producing fermentation products such as product alcohols using fermentation. Other fermentation products that may be produced using the processes and methods described herein include acids such as propanediol, butanediol, acetone, lactic acid, acetic acid, butyric acid, and propionic acid; Hydrogen, methane, and carbon dioxide; amino acid; Biotin, vitamin B 2 (riboflavin), vitamin B 12 (e.g., cobalamin), ascorbic acid (e. G., Vitamin C), vitamin E (for example, a- tocopherol), and Vitamin K (e. G. , Menaquinone); Antibiotics such as erythromycin, penicillin, streptomycin, and tetracycline; And other products such as citric acid, invertase, sorbitol, pectinase, and xylitol.
본원에 제공된 공정 및 방법의 예로서, 공급원료는 액화시켜 발효가능한 탄소원(예를 들면, 가용성 당) 및 용해되지 않은 고체를 포함하는 공급원료 슬러리를 생성할 수 있다. 일부 예에서, 용어 "공급원료 슬러리" 및 "매쉬"는 상호교환적으로 사용될 수 있다. 일부 구현예에서, 공급원료 슬러리는 가용성 당, 용해되지 않는 고체, 및 오일을 포함한다. 공급원료 슬러리를 발효기에 직접 공급하는 경우, 용해되지 않은 고체 및/또는 오일은 생성물 알코올과 같은 발효 생성물의 효율적인 제거 및 회수를 방해할 수 있다. 예를 들어, 액체-액체 추출을 이용하여 발효 브로쓰로부터 생성물 알코올을 추출하는 경우, 용해되지 않은 고체의 존재는 추출제와 발효 브로쓰 사이의 접촉을 방해함으로써 생성물 알코올의 추출제로의 질량 전달 속도를 감소시키고; 발효기 속에 유액을 생성시킴으로써 추출제 및 발효 브로쓰의 상 분리를 방해하며; 발효 브로쓰로부터 추출제의 유리(disengagement)를 지연시키고; 추출제 및 생성물 알코올의 적어도 한 부분이 고체 속에 "트랩핑(trapping)"되므로 추출제를 회수하여 재순환시키는 효율을 감소시키며; 오일에 의한 오염으로 인해 추출제의 수명 주기를 단축시키며; 발효기 속의 용적을 차지하는 고체가 존재하므로 발효기 용적 효율을 저하시키는 것을 포함하나, 이에 한정되지 않는 시스템 비효율을 유발시킬 수 있다. 이들 효과는 보다 높은 자본비 및 운영비를 초래할 수 있다. 또한, 가용물을 지닌 증류기 건조된 곡물(Distillers Dried Grains with Solubles: DDGS)을 생성시키는데 사용된 용해되지 않은 고체 속에 "트래핑"된 추출제는 동물 사료로서 판매하기 위한 DDGS 값 및 기능을 손상시킬 수 있다. 따라서, 이들 문제를 피하고/하거나 최소화하기 위하여, 용해되지 않은 고체 중 적어도 일부를, 공급원료 슬러리를 발효기에 가하기 전에 공급원료 슬러리로부터 제거할 수 있다. 생성물 알코올 생성의 추출 활성 및 효율은, 용해되지 않은 고체가 제거되지 않은 수용액을 함유하는 발효 브로쓰에서 수행된 추출과 비교하여 용해되지 않은 고체가 제거된 수용액을 함유하는 발효 브로쓰에서 추출을 수행하는 경우 증가될 수 있다.As an example of the processes and methods provided herein, the feedstock may be liquefied to produce a feedstock slurry comprising a fermentable carbon source (e. G., Soluble sugars) and undissolved solids. In some instances, the terms "feedstock slurry" and "mesh" may be used interchangeably. In some embodiments, the feedstock slurry includes soluble sugars, undissolved solids, and oil. When the feedstock slurry is fed directly to the fermenter, the undissolved solids and / or oil may interfere with efficient removal and recovery of fermentation products such as product alcohol. For example, in the case of extracting the product alcohol from a fermentation broth using liquid-liquid extraction, the presence of the undissolved solid prevents the mass transfer rate of the product alcohol to the extractant by interfering with the contact between the extractant and the fermentation broth ≪ / RTI > Disturb phase separation of the extractant and the fermentation broth by producing an emulsion in the fermenter; Delaying the disengagement of the extractant from the fermentation broth; At least a portion of the extractant and product alcohol is "trapped" in the solid, thereby reducing the efficiency of recovery and recycling of the extractant; Shortening the life cycle of the extractant due to oil contamination; But it is possible to cause system inefficiency including, but not limited to, reducing the volume efficiency of the fermenter due to the presence of solids that occupy volume in the fermenter. These effects can result in higher capital and operating costs. In addition, extractants that are "trapped " in undissolved solids used to produce Distillers Dried Grains with Solubles (DDGS) with solubles may impair DDGS values and functionality for sale as animal feed . Thus, in order to avoid and / or minimize these problems, at least some of the undissolved solids may be removed from the feedstock slurry prior to feeding the feedstock slurry to the fermenter. Extraction activity and efficiency of product alcohol production is determined by performing extraction in a fermentation broth containing an aqueous solution in which the undissolved solids are removed as compared to the extraction performed in a fermentation broth containing an aqueous solution in which undissolved solids have not been removed And the like.
본 발명의 공정 및 시스템은 도면을 참조로 설명될 것이다. 일부 구현예에서, 예를 들면, 도 1에 나타낸 바와 같이, 시스템은 공급원료를 액화시켜 공급원료 슬러리를 생성하도록 구성된 액화(10)를 포함한다.The process and system of the present invention will be described with reference to the drawings. In some embodiments, for example, as shown in Figure 1, the system includes a
예를 들어, 공급원료(12)를 액화(10)의 입구에 도입할 수 있다. 공급원료(12)는 보리, 귀리, 호밀, 수수, 밀, 라이밀, 스펠트밀(spelt), 조, 사탕수수, 옥수수, 또는 이들의 배합물을 포함하나, 이에 한정되지 않는 전분과 같은 발효가능한 탄소원을 함유하는 어떠한 적합한 생물량 물질일 수 있다. 물을 또한 액화(10)에 도입할 수 있다.For example, the
공급원료(12)를 액화하는 공정은 공급원료(12)를 가수분해하여 수용성 당을 발생시킴을 포함한다. 산 공정, 효소 공정, 또는 산-효소 공정을 포함하나, 이에 한정되지 않은, 산업에 이용된 어떠한 공지된 액화 공정도 사용될 수 있다. 이러한 공정은 단독으로 또는 함께 사용될 수 있다. 일부 구현예에서, 효소 공정을 이용할 수 있으며 적절한 효소(14), 예를 들면, 알파-아밀라제를 액화(10)의 입구에 도입한다. 본 발명의 공정 및 시스템에 사용될 수 있는 알파-아밀라제의 예는 미국 특허 제7,541,026호; 미국 특허원 공보 제2009/0209026호; 미국 특허원 공보 제2009/0238923호; 미국 특허원 공보 제2009/0252828호; 미국 특허원 공보 제2009/0314286호; 미국 특허원 공보 제2010/02278970호; 미국 특허원 공보 제2010/0048446호; 및 미국 특허원 공보 제2010/0021587호에 기술되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에 참조로 혼입된다.The process of liquefying the
일부 구현예에서, 액화 및/또는 당화를 위한 효소는 미생물(예를 들면, 미생물 32)에 의해 생성될 수 있다. 이러한 효소를 생성하는 미생물의 예는 미국 특허 제7,498,159호; 미국 특허원 공보 제2012/0003701호; 미국 특허원 공보 제2012/0129229호; PCT 국제 공보 제WO 2010/096562호; 및 PCT 국제 공보 제WO 2011/153516호에 기술되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에 참조로 혼입된다.In some embodiments, the enzyme for liquefaction and / or glycation may be produced by a microorganism (e. G., Microorganism 32). Examples of microorganisms that produce such enzymes are described in U.S. Patent Nos. 7,498,159; U.S. Patent Application Publication No. 2012/0003701; U.S. Patent Application Publication No. 2012/0129229; PCT International Publication No. WO 2010/096562; And PCT International Publication No. WO 2011/153516, the entire contents of each of which are incorporated herein by reference.
공급원료(12)를 액화시키는 공정은 발효가능한 탄소원 및 용해되지 않은 고체를 포함하는 공급원료 슬러리(16)를 생성한다. 일부 구현예에서, 공급원료 슬러리(16)는 발효가능한 탄소원, 오일, 및 용해되지 않은 고체를 포함할 수 있다. 용해되지 않은 고체는 공급원료(12)의 발효가능하지 않은 부분이다. 일부 구현예에서, 공급원료(12)는 무수 분쇄되고, 분류되지 않은 옥수수 알맹이와 같은 옥수수일 수 있으며, 용해되지 않은 고체는 세균, 섬유, 및 글루텐을 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 공급원료(12)는 옥수수 또는 옥수수 알맹이이고 공급원료 슬러리(16)는 옥수수 매쉬 슬러리이다. 공급원료 슬러리(16)는 액화(10)의 출구로부터 배출될 수 있으며 분리(20)로 수행될 수 있다.The process of liquefying the
일부 구현예에서, 아미노산, 질소, 무기질, 미량 성분, 및/또는 비타민과 같은 영양분을 공급원료 슬러리(16) 또는 발효(30)에 가할 수 있다. 예를 들면, 다음: 바이오틴, 판토테네이트, 엽산, 니아신, 아미노벤조산, 피리독신, 리보플라빈, 티아민, 비타민 A, 비타민 C, 비타민 D, 비타민 E, 비타민 K, 이노시톨, 칼륨(예를 들면, 인산칼륨), 붕산, 칼슘, 클로라이드, 크롬, 구리(예를 들면, 황산구리), 요오드화물(예를 들면, 요오드화칼륨), 철(예를 들면, 염화철), 리튬, 마그네슘(예를 들면, 황산마그네슘), 망간(예를 들면, 황산망간), 몰리브덴, 염화칼슘, 인, 칼륨, 염화나트륨, 바나듐, 아연(예를 들면, 황산아연), 효모 추출물, 대두 펩톤 등의 하나 이상을 공급원료 슬러리(16) 또는 발효(30)에 가할 수 있다. 아미노산의 예는 히스티딘, 이소루이신, 루이신, 라이신, 메티오닌, 페닐알라닌, 트레오닌, 트립토판, 및 발린과 같은 필수 아미노산, 및 또한 알라닌, 아르기닌, 아스파르트산, 아스파라긴, 시스테인, 글루탐산, 글루타민, 글리신, 하이드록실라이신, 하이드록시프롤린, 오르니틴, 프롤린, 세린, 및 타이로신과 같은 다른 아미노산을 포함한다.In some embodiments, nutrients such as amino acids, nitrogen, minerals, trace elements, and / or vitamins may be added to the
입구를 통한 분리(20)를 구성하여 공급원료 슬러리(16)으로부터 용해되지 않은 고체를 제거할 수 있다. 분리(20)는 오일을 제거하거나, 오일 및 용해되지 않은 고체 둘 다를 제거하기 위해 구성할 수 있다. 분리(20)는 고체 및 액체를 분리할 수 있는 어떠한 장치일 수 있다. 예를 들어, 분리(20)는 예를 들면, 데칸터 보울 원심분리기, 3-상 원심분리기, 디스크 스택 원심분리기, 여과 원심분리기, 또는 데칸터 원심분리기를 포함하는, 당해 산업에서 이용된 어떠한 통상의 원심분리일 수 있다. 일부 구현예에서, 분리는 여과, 진공 여과, 벨트필터, 막 여과, 교차 유동 여과, 가압 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이트 또는 그레이팅, 다공성 그레이팅, 부유, 하이드로사이클론, 필터 프레스, 스크류 프레스, 중력 침강기, 와동 분리기, 또는 고체 및 액체를 분리하는데 사용될 수 있는 어떠한 방법 또는 분리 장치에 의해 달성할 수 있다.
분리(20)로 수행된 공급원료 슬러리(16)을 분리하여 액체 상, 수성 스트림, 또는 수용액(22)(또한 묽은 매쉬로서 공지됨) 및 고체 상, 고체 스트림, 또는 습윤 케이크(24)를 형성할 수 있다. 수용액(22)는 예를 들면, 올리고당 형태의 당, 및 물을 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 수용액(22)은 적어도 약 10중량%의 올리고당, 적어도 약 20중량%의 올리고당, 또는 적어도 약 30중량%의 올리고당을 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 수용액(22)은 분리(20)의 상부 근처에 위치한 출구로부터 배출될 수 있다. 일부 구현예에서, 수용액(22)은, 점도가 약 20 센티포이즈(centipoise: cP)일 수 있다. 일부 구현예에서, 수용액(22)는 약 20g/L 미만의 단량체성 글루코즈, 약 10g/L 미만의 단량체성 글루코즈, 또는 약 5g/L 미만의 단량체성 글루코즈를 포함할 수 있다. 단량체성 글루코즈의 양을 측정하기에 적합한 방법론은 고성능 액체 크로마토그래피(HPLC)와 같이 당해 분야에 잘 공지되어 있다.Separating the
습윤 케이크(24)는 분리(20)로부터 배출시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 습윤 케이크(24)는 분리(20)의 하부 근처에 위치한 출구로부터 배출시킬 수 있다. 습윤(24)는 용해되지 않은 고체를 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 습윤 케이크(24)는 또한 당 및 물의 일부를 포함할 수 있다. 습윤 케이크(24)는, 일단 수용액(22)가 분리(20)로부터 배출된다면 분리(20)를 사용하여 추가의 물로 세척할 수 있다. 일부 구현예에서, 습윤 케이크(24)는 추가의 분리 장치를 사용하여 추가의 물로 세척할 수 있다. 습윤 케이크(24)를 세척하는 것은 습윤 케이크 속에 존재하는 당 또는 당원(예를 들면, 올리고당)을 회수할 것이며, 회수된 당 및 물은 액화(10)로 재순환된다. 세척 후, 습윤 케이크(24)는 어떠한 적합한 공지된 공정을 사용하여 가공함으로써 DDGS를 형성할 수 있다. 습윤 케이크(24)로부터 DDGS의 형성은 몇가지 이점이 있다. 예를 들어, 용해되지 않은 발효기에 가해지지 않으므로, 용해되지 않은 고체가 발효기의 조건에 적용되지 않으므로, 용해되지 않은 고체는 발효기 속에 존재하는 미생물과 접촉하지 않으며, 생성물 알코올과 같은 발효 생성물 또는 추출제와 같은 다른 성분은 용해되지 않은 고체 속에 트랩핑되지 않는다. 이러한 효과는, DDGS가 발효 브로쓰의 미생물 또는 다른 성분(예를 들면, 생성물 알코올, 추출제)를 함유하지 않을 수 있으므로, 후속적인 공정 및 DDGS의 용도, 예를 들면, 동물 사료에 이점을 제공한다.The
일부 구현예에서, 용해되지 않은 고체를 공급원료 슬러리로부터 분리하여 2개의 생성물 스트림, 예를 들면, 공급원료 슬러리와 비교하여 보다 적은 농도의 고체를 함유하는 올리고당의 수용액, 및 공급원료 슬러리와 비교하여 보다 높은 농도의 고체를 함유하는 습윤 케이크를 형성할 수 있다. 또한, 오일을 함유하는 제3의 스트림이 생성될 수 있다. 이와 같이, 다수의 생성물 스트림은 상이한 분리 기술 또는 이들의 조합을 사용하여 생성시킬 수 있다. 예로서, 공급원료 슬러리(16)은 3-상 원심분리기를 사용하여 분리할 수 있다. 3-상 원심분리기는, 3-상 분리가 2개의 액체 상(예를 들면, 수성 스트림 및 오일 스트림) 및 고체 스트림(예를 들면, 고체 또는 습윤 케이크)를 생성하도록 한다(참조: 예를 들면, Flottweg Tricanter®, 제조원: 독일 빌시비부르크 소재의 Flottweg AG). 2개의 액체 상은 분리하여 예를 들면 보울로부터 2개의 배출 시스템을 통해 경사여과(decanting)하여 교차-오염(cross-contamination)을 방지할 수 있으며 고체 스트림은 별도의 배출 시스템을 통해 제거할 수 있다.In some embodiments, the undissolved solids are separated from the feedstock slurry to form two product streams, for example, an aqueous solution of an oligosaccharide containing a lower concentration of solids as compared to a feedstock slurry, and a feedstock slurry A wet cake containing a higher concentration of solids can be formed. In addition, a third stream containing oil may be produced. As such, multiple product streams can be produced using different separation techniques or a combination thereof. As an example, the
공급원료(12)로서 옥수수를 사용하는 일부 구현예에서, 3-상 원심분리기를 사용하여 고체 및 옥수수 오일을 공급원료 슬러리(16)(예를 들면, 액화된 옥수수 매쉬)로부터 동시에 제거할 수 있다. 고체는, 전분을 액화 동안 가용성 올리고당으로 가수분해한 후 잔류하는 용해되지 않은 고체이며, 옥수수 오일은 분쇄 및/또는 액화 동안에 배아로부터 방출되는 유리 오일(free oil)이다. 일부 구현예에서, 3-상 원심분리기는 하나의 공급 스트림 및 3개의 배출 스트림을 가질 수 있다. 공급 스트림은 액화 동안 생성된 액화된 옥수수 매쉬로 이루어질 수 있다. 매쉬는 액화된 전분(예를 들면, 올리고당)의 수용액; 옥수수로부터의 불용성의, 비-전분 성분으로 이루어진 용해되지 않은 고체; 및 글리세라이드 및 유리 지방산으로 이루어진 옥수수 오일로 이루어질 수 있다. 3-상 원심분리기로부터의 3개의 출구 스트림은 매쉬로부터의 용해되지 않은 고체를 함유하는 습윤 케이크(즉, 습윤 케이크(24)); 매쉬로부터의 액화된 전분을 함유하는 진한 농축물 스트림; 및 매쉬로부터의 옥수수 오일을 함유하는 연한 농축물 스트림일 수 있다. 일부 구현예에서, 연한 농축물 스트림(즉, 오일 (26))은 저장 탱크 또는 오일 저장에 적합한 어떠한 용기로 수행될 수 있다. 일부 구현예에서, 오일은 공-생성물로서 판매할 수 있으며, 다른 공-생성물로 전환되거나 옥수수 오일을 옥수수 오일 지방산으로 전환시키는 데 있어서의 경우와 같은 공정에서 사용할 수 있다. 일부 구현예에서, 진한 농축물 스트림(즉, 수용액(22))을 발효에 사용할 수 있다. 일부 구현예에서, 습윤 케이크는 본원에 기술된 바와 같은 증발기 응축물 및/또는 역류(backset)와 같은, 공정 재순환 수로 세척함으로써, 케이크의 액체 상 속의 가용성 전분을 회수할 수 있다.In some embodiments where corn is used as the
일부 구현예에서, 습윤 케이크(24)는 공급원료 슬러리(16)으로부터 형성된 조성물이며, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 적어도 약 50중량%의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 적어도 약 55중량%의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 적어도 약 60중량%의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 적어도 약 65중량%의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 적어도 약 70중량%의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 적어도 약 75중량%의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 적어도 약 80중량%의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 적어도 약 85중량%의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 적어도 약 90중량%의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 적어도 약 95중량%의 용해되지 않은 고체, 또는 공급원료 슬러리 속에 존재하는 적어도 약 99중량%의 용해되지 않은 고체를 포함할 수 있다.In some embodiments, the
일부 구현예에서, 수용액(22)는 공급원료 슬러리(16)으로부터 형성되며, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 약 50중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 약 45중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 약 40중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 약 35중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 약 30중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 약 25중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 약 20중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 약 15중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 약 10중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리 속에 존재하는 약 5중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 또는 공급원료 슬러리 속에 존재하는 약 1중량%의 용해되지 않은 고체를 포함할 수 있다.In some embodiments, the
수용액(22)을 발효시켜 생성물 알코올과 같은 발효 생성물을 생성하도록 구성된 발효(30)는 수용액(22)를 수용하기 위한 입구를 갖는다. 발효(30)는 발효 브로쓰를 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 세균, 시아노박테리아(cyanobacteria), 사상균, 및 효모의 그룹으로부터 선택된 미생물(32)을 발효(30)에 도입하여 발효 브로쓰 속에 포함되도록 할 수 있다. 일부 구현예에서, 미생물(32)은 에스케리키아 콜라이(Escherichia coli)와 같은 세균일 수 있다. 일부 구현예에서, 미생물(32)은 사카로마이세스 세레비지아에(Saccharomyces cerevisiae) 일 수 있다. 일부 구현예에서, 미생물(32)은 수용액(22) 속의 당을 소모하여 부탄올을 생성한다. 일부 구현예에서, 미생물(32)은 재조합체 미생물일 수 있다.The
일부 구현예에서, 미생물(32)은 생합성 경로를 포함하도록 가공될 수 있다. 일부 구현예에서, 생합성 경로는 부탄올 생합성 경로일 수 있다. 일부 구현예에서, 부탄올 생합성 경로는 1-부탄올 생합성 경로, 2-부탄올 생합성 경로, 또는 이소부탄올 생합성 경로일 수 있다. 일부 구현예에서, 생합성 경로는 피루베이트를 발효 생성물로 전환시킨다. 일부 구현예에서, 생합성 경로는 피루베이트 및 또한 아미노산을 발효 생성물로 전환시킨다. 일부 구현예에서, 생합성 경로는 기질을 생합성 경로의 생성물로 전환시키는 것을 촉매화하는 폴리펩타이드를 암호화하는 적어도 하나의 이종 폴리뉴클레오타이드를 포함한다. 일부 구현예에서 생합성 경로의 각각의 기질의 생성물 전환은 이종 폴리뉴클레오타이드에 의해 암호화된 폴리펩타이드에 의해 촉매화된다. 생합성 경로를 포함하는 미생물에 의한 생성물 알코올의 생성의 예는 예를 들면, 미국 특허 제7,851,188호, 및 미국 특허원 공보 제2007/0092957호; 제2007/0259410호; 제2007/0292927호; 제2008/0182308호; 제2008/0274525호; 제2009/0155870호; 제2009/0305363호; 및 제2009/0305370호에 기재되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에 참조로 혼입된다.In some embodiments, the
일부 구현예에서, 미생물(32)은 또한 흡수, 공유 결합, 가교결합, 포괄(entrapment), 및 봉입(encapsulation)에 의한 것과 같이 고정시킬 수 있다. 세포를 봉입하는 방법은 미국 특허원 공보 제2011/0306116호에서와 같이 당해 분야에 공지되어 있으며, 이의 전문은 본원에 참조로 혼입된다.In some embodiments, the
본원에 기술된 공정 및 시스템의 일부 구현예에서, 반응계내 생성물 제거(in situ product removal: ISPR)를 이용하여 발효 브로쓰로부터 생성물 알코올(예를 들면, 부탄올)과 같은 발효 생성물을 제거할 수 있다. 일부 구현예에서, ISPR은, 발효 생성물이 미생물에 의해 생성됨에 따라 발효(30) 속에서 수행되거나, 발효(30) 외부에서, 예를 들면, 액체-액체 추출에 의한 것을 사용하여 수행될 수 있다. 추출성 발효를 사용하여 발효 브로쓰로부터 생성물 알코올을 생성하고 회수하는 방법은 미국 특허원 공보 제2009/0305370호; 미국 특허원 공보 제2010/0221802호; 미국 특허원 공보 제2011/0097773호; 미국 특허원 공보 제2011/0312044호; 미국 특허원 공보 제2011/0312043호; 및 미국 특허원 공보 제2012/0156738호에 기재되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에 참조로 혼입된다.In some embodiments of the processes and systems described herein, in situ product removal (ISPR) can be used to remove fermentation products such as product alcohols (e.g., butanol) from the fermentation broth . In some embodiments, the ISPR may be performed in
일부 구현예에서, 발효(30)는 추출제(34)를 수용하기 위한 입구를 가질 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제(34)를 발효(30) 외부의 발효 브로쓰에 가할 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제(34)를 외부 추출기 또는 외부 추출 루프에 가할 수 있다. 발효(30) 또는 발효(30)의 외부로 추출제(34)를 가하는 대안적인 수단은 점선으로 나타낸다. 일부 구현예에서, 추출제(34)는 비혼화성 유기 용매일 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제(34)는 수-비혼화성 유기 용매일 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제(34)는 포화된, 단일불포화된, 고도불포화된 화합물, 및 이들의 혼합물로 이루어진 그룹으로부터 선택된 유기 추출제일 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제(34)는 C12 내지 C22 지방 알코올, C12 내지 C22 지방산, C12 내지 C22 지방산의 에스테르, C12 내지 C22 지방 알데하이드, C12 내지 C22 지방 아미드, 및 이의 혼합물로 이루어진 그룹으로부터 선택될 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제(34)는 C4 내지 C22 지방 알코올, C4 내지 C28 지방산, C4 내지 C28 지방산의 에스테르, C4 내지 C22 지방 알데하이드, 및 이들의 혼합물로 이루어진 그룹으로부터 또한 선택될 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제(34)는 C12 내지 C22 지방 알코올, C12 내지 C22 지방산, C12 내지 C22 지방산의 에스테르, C12 내지 C22 지방 알데하이드, C12 내지 C22 지방 아미드, 및 이들의 혼합물로부터 선택된 제1의 추출물; 및 C7 내지 C11 지방 알코올, C7 내지 C11 지방산, C7 내지 C11 지방산의 에스테르, C7 내지 C11 지방 알데하이드, 및 이들의 혼합물로부터 선택된 제2의 추출물을 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제(34)는 카복실산일 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제(34)는 옥수수 오일 지방산(COFA) 또는 대두 오일 지방산(SOFA)일 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제(34)는 올레일 알코올, 베헤닐 알코올, 세틸 알코올, 라우릴 알코올, 미리스틸 알코올, 스테아릴 알코올, 올레산, 라우르산, 미리스트산, 스테아르산, 메틸 미리스테이트, 메틸 올레에이트, 1-노난올, 1-데탄올, 2-운데칸올, 1-노나날, 1-운데카놀, 운제카날, 라우릭 알데하이드, 20-메틸운데카날, 및 이들의 혼합물과 같은 유기 추출제일 수 있다. 본원에 기술되고 도면에 나타낸 바와 같은 공정 및 시스템을 위해, 추출제를 발효기 또는 외부 추출기에 가할 수 있다.In some embodiments, the
일부 구현예에서, 추출제는 특정의 특성을 기준으로 하여 선택할 수 있다. 예를 들어, 추출제는, Kd가 높을 수 있다. Kd는 추출제 상(예를 들면, 유기 상)과 수성 상 사이의 발효 생성물(예를 들면, 생성물 알코올)의 분배계수를 말한다. 일부 구현예에서, 추출제는, 선택성이 높을 수 있다. 예를 들면, 선택성은, 추출제가 차지하는 물에 대한 생성물 알코올의 상대적인 양을 말한다.In some embodiments, the extractant may be selected on the basis of specific properties. For example, the extractant may have a high K d . K d is the partition coefficient of the fermentation product (e.g., product alcohol) between the extraction agent phase (e.g., organic phase) and the aqueous phase. In some embodiments, the extractant may be highly selective. For example, selectivity refers to the relative amount of product alcohol to the water occupied by the extract.
일부 구현예에서, 추출제는 생체 적합성일 수 있다. 일부 구현예에서, 생체 적합성은, 미생물이 추출제의 존재하에서 발효가능한 탄소원을 이용하는 능력의 척도를 말한다. 일부 구현예에서, 추출제는 생체 적합성 및 비-생체 적합성 추출제들의 혼합물일 수 있다. 일부 구현예에서, 비-생체 적합성 추출제는 발효가능한 탄소원을 이용하는 미생물의 능력을 방해하는 추출제를 말한다. 예를 들면, 비-생체 적합성 추출제의 존재 하에서, 미생물은, 발효가능한 탄소원을 추출제가 존재하지 않는 경우의 이용률의 약 50% 초과의 이용률로 이용하지 않는다. 일부 구현예에서, 비-생체 적합성 추출제의 존재 하에서, 미생물은 발효가능한 탄소원을 추출제가 존재하는 않는 경우의 이용률의 약 25% 초과의 이용률로 이용하지 않는다. 생체 적합성 및 비-생체 적합성 추출제의 혼합물의 예는 올레일 알코올과 노난올, 올레일 알코올과 1-운데칸올, 올레일 알코올과 2-운데칸올, 올레일 알코올과 1-노나날, 올레일 알코올과 데칸올, 및 올레일 알코올과 도데칸올을 포함하나, 이에 한정되지 않는다. 생체 적합성 및 비-생체 적합성 추출제의 추가의 예는 미국 특허공개 공보 제2011/0097773호에 기술되어 있으며; 이의 전체 내용은 본원에 참조로 혼입된다.In some embodiments, the extractant may be biocompatible. In some embodiments, biocompatibility refers to a measure of the ability of a microorganism to utilize a carbon source capable of fermentation in the presence of an extractant. In some embodiments, the extractant may be a mixture of biocompatible and non-biocompatible extractants. In some embodiments, the non-biocompatible extractant refers to an extractant that interferes with the ability of the microorganism to utilize a fermentable carbon source. For example, in the presence of a non-biocompatible extracting agent, the microorganism does not utilize the fermentable carbon source at a utilization of greater than about 50% of the utilization rate in the absence of the extractant. In some embodiments, in the presence of a non-biocompatible extractant, the microorganism does not utilize the fermentable carbon source at a utilization rate of greater than about 25% of the utilization rate in the absence of the extractant. Examples of mixtures of biocompatible and non-biocompatible extractants include oleanolic and nonanol, oleyl alcohol and 1-undecanol, oleyl alcohol and 2-undecanol, oleyl alcohol and 1-nonanal, oleyl But are not limited to, alcohol and decanol, and oleyl alcohol and dodecanol. Additional examples of biocompatible and non-biocompatible extractants are described in U.S. Patent Publication No. 2011/0097773; The entire contents of which are incorporated herein by reference.
추출제(34)는 2상 혼합물(즉, 수성 상 및 유기 상)을 함유하는 발효 브로쓰 형성 스트림(36)과 접촉한다. 발효 생성물이 생성물 알코올인 경우, 발효 브로쓰 중에 존재하는 생성물 알코올은 생성물 알코올(예를 들면, 유기 상)이 풍부한 추출제를 형성하는 추출제(34)로 이동시킨다. 일부 구현예에서, 스트림(36)은 발효(30)에서 출구를 통해 배출될 수 있다. 생성물 알코올은 통상적인 기술을 이용하여 스트림(36) 속의 추출제로부터 분리될 수 있다. 공급 스트림을 발효(30)에 가할 수 있다. 발효(30)는 당해 분야에 공지된 임의의 적합한 발효기일 수 있다.
일부 구현예에서, 추출제(34)가 발효 브로쓰에 가해지지 않는 경우, 스트림(36)은 발효 브로쓰 및 생성물 알코올을 함유한다. 생성물 알코올 및 발효 브로쓰를 함유하는 스트림(36) 또는 이의 부분은 발효(30)로부터 배출될 수 있으며 생성물 알코올을 회복하기 위해 추가로 가공될 수 있다. 일부 구현예에서, 발효 브로쓰는 발효(30)에 재순환시킬 수 있다.In some embodiments, when the
일부 구현예에서, 동시 당화 및 발효(SSF)는 발효(30)에서 발생할 수 있다. 산 공정, 효소 공정, 또는 산-효소 공정을 포함하지만 이에 제한되지 않는, 당해 산업에서 이용되는 어떠한 공지된 당화 공정도 사용될 수 있다. 일부 구현예에서, 글루코아밀라제와 같은 효소(38)를 도입하여 공급원료 슬러리(16) 또는 수용액(22) 속의 당(예를 들면, 올리고당)을 가수분해하여 단당류를 형성시킬 수 있다. 본 발명의 공정 및 시스템에 사용될 수 있는 글루코아밀라제의 예는 미국 특허 제7,413,887호; 미국 특허 제7,723,079호; 미국 특허공개공보(특허원공보) 제2009/0275080호; 미국 특허공개공보 제2010/0267114호; 미국 특허공개공보 제2011/0014681호; 미국 특허공개공보 제2011/0020899호에 기재되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에 참조로 혼입되어 있다. 일부 구현예에서, 글루코아밀라제는, 발효 생성물(예를 들면, 생성물 알코올)을 또한 생성하는 재조합체 미생물에 의해 발현될 수 있다.In some embodiments, simultaneous saccharification and fermentation (SSF) may occur in fermentation (30). Any known saccharification process used in the industry, including, but not limited to, acid processing, enzymatic processing, or acid-enzyme processing may be used. In some embodiments, an
일부 구현예에서, 글루코아밀라제와 같은 효소를 액화에 가할 수 있다. 글루코아밀라제와 같은 효소를 액화에 가하면 공급원료 슬러리 또는 액화된 매쉬의 점도를 감소시킬 수 있으며, 분리 효율을 증진시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 공급원료 슬러리의 점도를 감소시킬 수 있는 어떠한 효소도 사용할 수 있다(예를 들면, Viscozyme®, 제조원: 미국 미주리주 세인트 루이스 소재의 Sigma-Aldrich). 공급원료의 점도는 실시예 22에 기재된 방법을 포함하는, 당해 기술분야에 공지된 어떠한 방법으로도 측정할 수 있다.In some embodiments, enzymes such as glucoamylase may be added to the liquefaction. When an enzyme such as glucoamylase is added to the liquefaction, the viscosity of the feed slurry or liquefied mesh can be reduced and the separation efficiency can be improved. In some embodiments, any enzyme capable of reducing the viscosity of the feedstock slurry can be used (e.g., Viscozyme ® , Sigma-Aldrich, St. Louis, Mo.). The viscosity of the feedstock can be measured by any method known in the art, including the method described in Example 22.
일부 구현예에서, 스트림(35)은 발효(30)에서 출구로부터 배출될 수 있다. 배출된 스트림(35)은 효모와 같은 미생물(32)을 포함할 수 있다. 미생물(32)은, 예를 들면, 원심분리(나타내지 않음)시킴으로써 스트림(35)으로부터 분리할 수 있다. 미생물(32)은 이후에 발효(30)로 재순환될 수 있으며, 이는 시간에 따라 생성물 알코올의 생성 속도를 증가시킴으로써 생성물 알코올 생성 효율을 증가시킨다.In some embodiments,
스트림(35)의 일부가 발효(30)를 빠져나오는 경우, 스트림(35)은 공급원료 슬러리에 존재하는 약 50중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리에 존재하는 약 45중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리에 존재하는 약 40중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리에 존재하는 약 35중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리에 존재하는 약 30중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리에 존재하는 약 25중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리에 존재하는 약 20중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리에 존재하는 약 15중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리에 존재하는 약 10중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리에 존재하는 약 5중량% 이하의 용해되지 않은 고체, 공급원료 슬러리에 존재하는 약 1중량% 이하의 용해되지 않은 고체를 포함할 수 있다.When a portion of the
일부 구현예에서, 예를 들면, 도 2에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 공정 및 시스템은 공급원료(12)를 건조 분쇄시키도록 구성된 분쇄기(mill; 40)를 포함할 수 있다. 공급원료(12)는 입구를 통해 분쇄기(40)로 공급될 수 있다. 분쇄기(40)는 공급원료(12)를 분쇄 또는 연마할 수 있다. 일부 구현예에서, 공급원료(12)는 분류되지 않을 수 있다. 일부 구현예에서, 공급원료(12)는 분류되지 않은 옥수수 알맹이일 수 있다. 분쇄기(40)는 임의의 적합한 공지된 분쇄기, 예를 들면, 햄머 분쇄기일 수 있다. 무수 분쇄된 공급원료(44)는 출구를 통해 분쇄기(40)로부터 배출되며 액화(10)로 공급된다. 도 2의 나머지는 도 1과 유사하며, 이에 따라 다시 상세하게 기술하지는 않을 것이다. 다른 구현예에서, 공급원료는 분류되지 않고/않거나 무수 분쇄되는 것에 대한 대안으로서 당해 산업에서 공지된 바와 같이 분류되고/되거나 습윤 분쇄될 수 있다.In some embodiments, for example, as shown in FIG. 2, the process and system of the present invention can include a
습윤 분쇄는 생물량을 수개의 성분, 예를 들면, 세균, 과피 섬유, 전분, 및 글루텐으로 분리시켜서 각각의 공-생성물로부터 값(value)을 별도로 포획하는 다단계 공정이다. 공급원료로서 옥수수를 사용하는 경우, 당해 공정은 수개의 공-생성물: 전분, 글루텐 공급물, 글루텐 식이(gluten meal), 및 옥수수 오일 스트림을 생성한다. 이들 스트림은 다시 합하고 가공하여 사료 산업을 위한 맞춤형 생성물을 생성할 수 있다. 습윤 분쇄 공정의 예로서, 공급원료(예를 들면, 옥수수)는 스티핑 탱크(steeping tank)로 수행할 수 있으며, 여기서 이는, 예를 들면, 120 내지 130°F(약 50 내지 55℃)에서 약 30 내지 50 시간 동안 이산화나트륨 용액 속에서 침지된다. 물 속으로 방출된 자양물을 수집하고 증발시켜서 응축되고 발효된 추출물(또는 스티프 액)을 생성할 수 있다. 세균은 침지된 공급원료로부터 제거하고 추가로 가공하여 오일 및 세균 식이를 회수할 수 있다. 세균을 제거한 후에, 공급원료의 나머지 부분을 가공하여 겨(bran)를 제거하고 전분 및 글루텐 슬러리를 생성할 수 있다. 슬러리는 추가로 가공하여 전분 및 글루텐 단백질을 분리할 수 있는 데, 이는 건조시켜서 글루텐 식이를 형성할 수 있다. 전분 스트림을 발효를 통해 추가로 가공하여 발효 생성물(예를 들면, 생성물 알코올)을 생성할 수 있거나 식품, 종이 또는 섬유 산업에서 이용할 수 있다. 예를 들면, 전분 스트림을 사용하여 감미제를 생성할 수 있다. 단백질, 지방 및 섬유를 모두 포함하는 글루텐 식이 및 글루텐 공급 스트림을 젖소, 육우, 가금류, 돼지, 가축, 말, 양식물, 및 가정용 애완동물용 사료에서 사용할 수 있다. 글루텐 식이는 또한 첨가된 미세자양물을 위한 담체로서 사용할 수 있다. 글루텐 식이는 또한, 예를 들면, 가금류 사료에서 안료 성분으로서 사용될 수 있는 메티오닌 및 크산토필을 포함한다(예를 들면, 안료는 황색 안료화를 갖는 난황을 제공한다). 단백질, 성장 인자, B 비타민 및 무기물을 포함하는 응축되고 발효된 추출물은 고 에너지 액체 사료 성분으로서 사용될 수 있다. 응축된 추출물은 또한 펠렛 결합제로서 사용될 수 있다. 이러한 공정은 정제된 전분 스트림을 제공하지만, 이는 비용이 많이 들며 생물량을 발효 생성을 위해 필수적이지 않을 수 있는 이의 비-전분 스트림으로의 분리를 포함한다.Wet milling is a multi-step process in which biomass is separated into several components, such as bacteria, peel fibers, starch, and gluten, to capture the value separately from each co-product. When corn is used as the feedstock, the process produces several co-products: starch, gluten feed, gluten meal, and corn oil stream. These streams can be combined and processed to produce customized products for the feed industry. As an example of a wet grinding process, the feedstock (e.g., corn) may be run with a steeping tank, which may be, for example, at a temperature of 120 to 130 DEG F (about 50 to 55 DEG C) And immersed in sodium dioxide solution for about 30 to 50 hours. The nourishment released into the water can be collected and evaporated to produce condensed and fermented extracts (or stiff fluids). Bacteria can be removed from the immersed feedstock and further processed to recover oil and bacterial diets. After removing the germs, the remainder of the feedstock can be processed to remove bran and produce starch and gluten slurries. The slurry can be further processed to separate starch and gluten proteins, which can be dried to form a gluten meal. The starch stream may be further processed through fermentation to produce fermentation products (e. G., Product alcohols) or may be utilized in the food, paper or textile industries. For example, a starch stream can be used to create a sweetener. Gluten meal and gluten feed streams, including both protein, fat and fiber, can be used in cows, beef cattle, poultry, pigs, livestock, horses, aquaculture, and household pet feed. The gluten diet can also be used as a carrier for added micro-nutrients. Gluten diet also includes, for example, methionine and xanthophylls which can be used as pigment ingredients in poultry feed (for example, pigments provide yolk with yellow pigmentation). Condensed and fermented extracts containing proteins, growth factors, B vitamins and minerals can be used as high energy liquid feed ingredients. The condensed extract may also be used as a pellet binder. This process provides a purified starch stream, which is costly and involves separating the biomass into its non-starch stream, which may not be necessary for fermentation production.
분류는 섬유 및 세균을 제거하는 데, 이는 지면의 전체 옥수수 중에 존재하는 지질(예를 들면, 오일) 대부분을 포함하여 높은 전분(엔도스페름) 함량을 갖는 분류된 옥수수를 생성한다. 일부 구현예에서, 적어도 약 25%, 적어도 약 30%, 적어도 약 35%, 적어도 약 40%, 적어도 약 45%, 적어도 약 50%, 적어도 약 55%, 적어도 약 60%, 적어도 약 65%, 적어도 약 70%, 적어도 약 75%, 적어도 약 80%, 적어도 약 85%, 적어도 약 90%, 적어도 약 95% 이상의 오일이 분류에 의해 세균으로부터 제거될 수 있다. 일부 구현예에서, 분류는 공급원료 속의 용해되지 않은 고체 함량을 공급원료의 적어도 약 0.5%, 적어도 약 1%, 적어도 약 2%, 적어도 약 3%, 적어도 약 4%, 또는 적어도 약 5%로 감소시킬 수 있다.The classification removes fibers and germs, which produces sorted corn having high starch (endosperm) content, including most of the lipids (e.g., oil) present in the whole corn of the ground. In some embodiments, at least about 25%, at least about 30%, at least about 35%, at least about 40%, at least about 45%, at least about 50%, at least about 55%, at least about 60% At least about 70%, at least about 75%, at least about 80%, at least about 85%, at least about 90%, at least about 95% or more oil can be removed from the bacteria by sorting. In some embodiments, the fractionation may be carried out at least about 0.5%, at least about 1%, at least about 2%, at least about 3%, at least about 4%, or at least about 5% of the undissolved solids content in the feedstock .
무수 분획화는 섬유로부터 세균을 분리시키지 않으며, 이에 따라 이는 습윤 분쇄보다 더 저렴하다. 분류의 이점은, 예를 들면, 생성물의 개선된 수율, 발효기 내의 증가된 용적(즉, 공간), 보다 작은 컬럼 직경, 당화를 위한 낮은 효소 부하 및 증가된 효율, 증가된 오일 제거, 오일의 존재로 인한 감소된 장치 클로깅(clogging), 더 적은 세정 셧다운(cleaning shutdown), DDGS 속의 증가된 단백질 수준, DDGS를 위한 감소된 건조 시간, 및 감소된 에너지 소비를 포함할 수 있다. 그러나, 분류는 섬유 또는 세균의 전체를 제거하지 않으며, 고체의 전부를 제거하지도 않는다. 더욱이, 분류 시에는 전분의 일부가 손실된다.Anhydrous fractionation does not separate bacteria from the fibers, which is therefore cheaper than wet milling. Advantages of the classification include, for example, improved yield of product, increased volume in the fermenter (i.e., space), smaller column diameter, lower enzyme load and increased efficiency for glycation, increased oil removal, Less cleaning shutdown, increased protein levels in the DDGS, reduced drying time for DDGS, and reduced energy consumption. However, the classification does not remove the entire fiber or bacteria, nor does it remove all of the solids. Moreover, some of the starch is lost during the classification.
무수 분쇄는 또한 공급원료 가공을 위해 이용될 수 있다. 공급원료는, 예를 들면, 햄머 분쇄기를 이용하여 분쇄하여 식이를 생성할 수 있으며, 이는 이후에 물과 혼합되어 슬러리를 형성할 수 있다. 이러한 슬러리는 아밀라제와 같은 효소를 가함으로써 액화를 하여, 전분을 당으로 가수분해시켜 매쉬를 형성할 수 있다. 매쉬는 가열("쿠킹됨")하여 효소를 불활성화시킨 다음 발효에 가하기 위해 냉각시킬 수 있다. 냉각된 매쉬, 미생물, 및 효소, 예를 들면, 글루코아밀라제를 발효 생성물(예를 들면, 생성물 알코올)을 생성하기 위해 발효에 가할 수 있다. 발효 이후에, 발효 브로쓰를 발효 생성물을 회수하기 위해 증류로 수행할 수 있다. 용해되지 않은 고체가 제거되지 않은 경우, 증류 컬럼(distillation column)의 하부 스트림은 발효되지 않은 고체(예를 들면, 증류기 곡물 고체), 용해된 물질, 및 추가의 공정을 위해 수집할 수 있는 물)을 함유하는 전체 증류폐액이다. 예를 들면, 전체 증류폐액은 고체(예를 들면, 습윤 케이크) 및 묽은 증류폐액으로 분리될 수 있다. 분리는 원심분리, 여과, 스크린 분리, 하이드로사이클론, 또는 고체로부터 액체를 분리하기 위한 어떠한 다른 수단 또는 분리 장치를 포함하지만 이에 제한되지 않는 다수의 수단으로 달성할 수 있다. 묽은 증류폐액은 응축된 증류기 가용물(CDS) 또는 시럽을 형성하는 증발로 수행할 수 있다. 묽은 증류폐액은 가용성 영양분, 작은 곡물 고체(또는 미립자), 및 미생물을 포함할 수 있다. 고체(예: 습윤 케이크)는 시럽과 합한 다음 건조시켜 DDS를 형성할 수 있다. 시럽은 단백질, 지방 및 섬유 뿐만 아니라 비타민 및 무기물, 예를 들면, 인 및 칼륨을 포함하며; 이의 영양상 가치 및 식미(palatability)을 위해 동물 사료에 가할 수 있다. DDGS는 단백질, 지방 및 섬유를 포함하며; 우회 단백질의 공급원을 제공한다. DDGS는 젖소, 육우, 가금류, 돼지, 가축, 말, 양식물 및 가정용 애완동물용 사료에 사용될 수 있다.Anhydrous milling can also be used for feedstock processing. The feedstock can be milled, for example, using a hammer mill to produce a diet, which can then be mixed with water to form a slurry. Such a slurry can be liquefied by adding an enzyme such as amylase to hydrolyze the starch with sugar to form a mesh. The mash can be heated ("cooked") to inactivate the enzyme and then cool it for fermentation. The cooled mash, microorganisms, and enzymes, such as glucoamylase, may be added to the fermentation to produce a fermentation product (e. G., Product alcohol). After fermentation, the fermentation broth can be carried out by distillation to recover the fermentation product. If the undissolved solids are not removed, the bottom stream of the distillation column will contain unfermented solids (e.g., distiller grain solids), dissolved solids, and water that can be collected for further processing) Of the total distillation waste. For example, the entire distillation waste liquid can be separated into a solid (for example, a wet cake) and a dilute distillation waste liquid. Separation may be accomplished by a number of means including, but not limited to, centrifugation, filtration, screen separation, hydrocyclones, or any other means or separation device for separating liquid from solids. Dilute distillation waste can be carried out with condensed distiller solubles (CDS) or evaporation to form syrups. Dilute distillate wastes may include soluble nutrients, small grain solids (or particulates), and microorganisms. Solids (eg wet cake) can be combined with syrup and then dried to form DDS. Syrups include proteins, fats and fibers as well as vitamins and minerals such as phosphorus and potassium; It can be added to animal feed for its nutritional value and palatability. DDGS includes proteins, fats and fibers; Providing a source of bypassing protein. DDGS can be used in dairy cattle, beef cattle, poultry, pigs, livestock, horses, aquaculture and domestic pet feed.
일부 구현예에서, 예를 들면, 도 3에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 공정 및 시스템은 분리(20)의 출구로부터 오일(26)을 배출시킴을 포함할 수 있다. 도 3은, 분리(20)를 빠져나가는 오일 스트림(26)을 제외하고는, 도 1과 유사하며, 이에 따라 다시 상세하게 기재하지는 않을 것이다.In some embodiments, for example, as shown in FIG. 3, the process and system of the present invention may include draining the
분리(20)로 수행된 공급원료 슬러리(16)는 발효 당을 포함하는 제1의 액체 상 또는 수용액(22), 오일(26)을 함유하는 제2의 액체 상, 및 용해되지 않은 고체를 포함하는 고체 상 또는 습윤 케이크(24)로 분리시킬 수 있다. 어떠한 적합한 분리 장치, 예를 들면, 3-상 원심분리기도 수용액(22)(또는 수성 스트림), 습윤 케이크(24)(또는 고체 스트림), 및 오일(26)(또는 오일 스트림)을 배출시키는 데 사용할 수 있다. 일부 구현예에서, 공급원료(12)는 옥수수이고 오일(26)은 옥수수 오일(예를 들면, 유리 옥수수 오일)이다. 본원에서 사용된 용어 '유리 옥수수 오일'은, 옥수수 세균이 없는 옥수수 오일을 의미한다. 일부 구현예에서, 오일(26)은 저장 탱크 또는 오일 저장을 위해 적합한 임의의 용기에 처리할 수 있다. 일부 구현예에서, 공급원료(12)가 옥수수인 경우 옥수수 오일과 같은 공급원료로부터의 오일의 일부는 습윤 케이크(24) 내에 잔류한다.The
일부 구현예에서, 오일(26)이 공급원료(12)로부터 분리(20)를 통해 제거되는 경우, 발효(30) 내의 발효 브로쓰는 감소된 양의 옥수수 오일을 포함한다. 일부 구현예에서, 발효 브로쓰는 용해되지 않은 고체의 약 25중량% 이하를 갖고, 발효 브로쓰는 용해되지 않은 고체의 약 15중량% 이하를 갖고, 발효 브로쓰는 용해되지 않은 고체의 약 10중량% 이하를 갖고, 발효 브로쓰는 용해되지 않은 고체의 약 5중량% 이하를 갖고, 발효 브로쓰는 용해되지 않은 고체의 약 1중량% 이하를 가지며, 발효 브로쓰는 용해되지 않은 고체의 약 0.5중량% 이하를 갖는다.In some embodiments, the fermentation broth in the
일부 구현예에서, 도 2의 공정 및 시스템을 수정하여 도 3의 공정 및 시스템과 관련하여 본원에 토의된 바와 같이 분리(20)로부터의 오일 스트림의 배출을 포함시킬 수 있다.In some implementations, the process and system of FIG. 2 may be modified to include the discharge of an oil stream from the
도 4에 나타낸 바와 같이, 오일이 별도로 배출되지 않는 경우, 이는 습윤 케이크(24)로 제거될 수 있다. 습윤 케이크(24)가 분리(20)를 통해 분리되는 경우, 일부 구현예에서, 공급원료(12)가 옥수수인 경우 옥수수 오일과 같은, 공급원료로부터의 오일의 일부는 습윤 케이크(24) 중에 잔류한다. 습윤 케이크(24)는 혼합(60)으로 처리되고 습윤 케이크 혼합물(65)을 형성하는 물 또는 다른 용매와 합할 수 있다. 일부 구현예에서, 물은 신선한 물, 역류, 쿠킹 수, 공정 수, 루터 수, 증발 수, 또는 발효 가공 시설에서 이용가능한 임의의 수원, 또는 이들의 임의의 조합물일 수 있다. 습윤 케이크 혼합물(65)은 습윤 케이크(24)로부터 회수된 발효가능한 당, 및 습윤 케이크(74)를 포함하는 세척 농축물(75)을 생성하는 분리(70)로 수행할 수 있다. 세척 농축물(75)은 액화(10)로 재순환시킬 수 있다. 도 4의 나머지는 도 1과 유사하며, 이에 따라 다시 상세히 기재하지는 않을 것이다.As shown in FIG. 4, if the oil is not discharged separately, it can be removed with the
일부 구현예에서, 분리(70)는 데칸터 보울 원심분리, 3-상 원심분리, 디스크 스택 원심분리, 여과 원심분리, 데칸터 원심분리, 여과, 진공 여과, 벨트필터, 막 여과, 교차 유동 여과, 가압 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이팅, 다공성 그레이팅, 부유, 하이드로사이클론, 필터 프레스, 스크류프레스, 중력 침강기, 와동 분리기, 또는 이들의 조합을 포함하는, 고체 및 액체를 분리할 수 있는 어떠한 분리 장치일 수 있다.In some embodiments, the
일부 구현예에서, 습윤 케이크를 하나 이상의 세척 사이클 또는 세척 시스템에 처리할 수 있다. 예를 들면, 습윤 케이크(74)는 습윤 케이크(74)를 제2의 세척 시스템으로 수행함으로써 추가로 가공할 수 있다. 일부 구현예에서, 습윤 케이크(74)는 습윤 케이크 혼합물(65')을 형성하는 제2의 혼합(60')으로 수행할 수 있다. 습윤 케이크 혼합물(65')은 세척 농축물(75') 및 습윤 케이크(74')를 생성하는 제2의 분리(70')로 수행할 수 있다. 세척 농축물(75')은 액화(10)로 재순환시킬 수 있고/있거나 세척 농축물(75')은 세척 농축물(75)와 합할 수 있으며 합해진 세척 농축물은 액화(10)로 재순환될 수 있다. 습윤 케이크(74')는 본원에 기재된 추가의 가공을 위해 습윤 케이크(74)와 합할 수 있다. 일부 구현예에서, 분리(70')는 데칸터 보울 원심분리, 3-상 원심분리, 디스크 스택 원심분리, 여과 원심분리, 데칸터 원심분리, 여과, 진공 여과, 벨트필터, 막 여과, 교차 유동 여과, 가압 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이팅, 다공성 그레이팅, 부유, 하이드로사이클론, 필터 프레스, 스크류프레스, 중력 침강기, 와동 분리기, 또는 이들의 조합을 포함하는, 고체 및 액체를 분리할 수 있는 어떠한 분리 장치일 수 있다. 일부 구현예에서, 습윤 케이크는 1개, 2개, 3개, 4개, 5개 이상의 세척 사이클 또는 세척 시스템으로 처리할 수 있다.In some embodiments, the wet cake may be treated in one or more cleaning cycles or cleaning systems. For example, the
습윤 케이크(74)는 가용물과 합한 다음, 건조시켜 임의의 적합한 공지된 공정을 통해 DDGS를 형성할 수 있다. 습윤 케이크(74)로부터 DDGS를 형성시키는 것은 수개의 이점을 갖는다. 예를 들면, 용해되지 않는 고체는 발효기에 가하지 않기 때문에, 용해되지 않은 고체는 발효기의 조건에 처리하지 않고, 이에 따라 용해되지 않은 고체는 발효기 속에 존재하는 미생물과 접촉하지 않으며, 생성물 알코올과 같은 발효 생성물 또는 추출제와 같은 다른 성분은 용해되지 않은 고체 속에 트래핑되지 않는다. 이러한 효과는, DDGS가 발효 브로쓰의 미생물 또는 다른 성분(예를 들면, 생성물 알코올, 추출제)을 포함하지 않기 때문에, 동물 사료로서, 예를 들면, DDGS의 용도 및 후속적인 가공에 이점을 제공한다.The
도 4에 나타낸 바와 같이, 오일은 습윤 케이크로부터 별도로 배출되지 않으며, 이보다는 오일은 습윤 케이크의 일부로서 포함되며 궁극적으로 DDGS 속에 존재한다. 옥수수가 공급원료로서 사용되는 경우, 옥수수 오일은 트리글리세라이드, 디글리세라이드, 모노글리세라이드, 지방산, 및 인지질을 포함하며, 이는 동물을 위한 대사가능한 에너지의 공급원을 제공한다. 습윤 케이크 및 궁극적으로 DDGS 속에 오일이 존재하면 바람직한 동물 사료, 예를 들면, 고지방 함량의 동물 사료를 제공할 수 있다.As shown in Fig. 4, the oil is not discharged separately from the wet cake, rather oil is included as part of the wet cake and ultimately in the DDGS. When corn is used as feedstock, the corn oil contains triglycerides, diglycerides, monoglycerides, fatty acids, and phospholipids, which provide a source of metabolizable energy for the animal. The presence of the wet cake and ultimately the oil in the DDGS can provide the desired animal feed, for example animal feed of high fat content.
일부 구현예에서, 오일은 DDGS로부터 분리되고 동일하거나 상이한 발효 공정에서 후속적으로 사용하기 위한 ISPR 추출제로 전환될 수 있다. 생물량으로부터 추출제를 유도하기 위한 방법은 미국 특허공개공보 제2011/0312043호, 미국 특허공개공보 제2011/0312044호, 미국 특허공개공보 제2012/0156738호, 및 PCT 국제공개공보 제WO 2011/159998호에 기재되어 있으며; 각각의 전체 내용들은 본원에서 참조로 혼입된다. 오일은, 예를 들면, 용매 추출 공정을 포함하는 임의의 적합한 공지된 공정을 이용하여 DDGS로부터 분리될 수 있다. 본 발명의 하나의 구현예에서, DDGS는 추출 용기 내로 로딩되고 헥산과 같은 용매로 세척하여 오일을 제거한다. 이용될 수 있는 다른 용매는, 예를 들면, 이소부탄올, 이소헥산, 에탄올, 석유 증류물, 예를 들면, 석유 에테르, 또는 이들의 혼합물을 포함한다. 오일 추출 후에, DDGS를 처리하여 임의의 나머지 용매를 제거할 수 있다. 예를 들면, DDGS를 가열하여 당해 분야에 공지된 임의의 방법을 이용하여 임의의 잔류하는 용매를 증발시킬 수 있다. 용매 제거 후에, DDGS를 건조 공정에 처리하여 임의의 잔류 물을 제거할 수 있다. 가공된 DDGS를 젖소, 육우, 가금류, 돼지, 가축, 말, 양식물, 및 가정용 애완동물과 같은 동물용 사료 보충물로서 사용될 수 있다.In some embodiments, the oil may be separated from DDGS and converted to an ISPR extractant for subsequent use in the same or a different fermentation process. Methods for deriving an extractant from biomass are described in U.S. Patent Application Publication No. 2001/0312043, U.S. Patent Application Publication No. 2011/0312044, U.S. Patent Application Publication No. 2012/0156738, and PCT International Publication No. WO 2011/159998 Lt; / RTI > The entire contents of each are incorporated herein by reference. The oil may be separated from DDGS using any suitable known process, including, for example, a solvent extraction process. In one embodiment of the invention, DDGS is loaded into an extraction vessel and washed with a solvent such as hexane to remove oil. Other solvents that may be used include, for example, isobutanol, isohexane, ethanol, petroleum distillates such as petroleum ether, or mixtures thereof. After oil extraction, the DDGS can be treated to remove any remaining solvent. For example, DDGS can be heated to evaporate any remaining solvent using any method known in the art. After removal of the solvent, DDGS may be subjected to a drying process to remove any residues. Processed DDGS can be used as animal feed supplements such as cows, beef cattle, poultry, pigs, livestock, horses, aquaculture, and household pets.
DDGS로부터의 추출 후에, 수득되는 오일 및 용매 혼합물을 용매로부터 오일을 분리하기 위해 수집할 수 있다. 하나의 구현예에서, 오일/용매 혼합물을 증발에 의해 가공함으로써 용매가 증발되고 수집되고 재순환될 수 있다. 회수된 오일은 동일하거나 상이한 발효 공정에서 사용하기 위한 후속적인 용도를 위해 ISPR 추출제로 전환될 수 있다.After extraction from DDGS, the resulting oil and solvent mixture can be collected to separate the oil from the solvent. In one embodiment, the solvent can be evaporated, collected and recycled by processing the oil / solvent mixture by evaporation. The recovered oil may be converted to an ISPR extractant for subsequent use for use in the same or a different fermentation process.
공급원료의 오일 성분을 제거하는 것은 생성하는 데 유리한 데, 그 이유는 발효기 내에 존재하는 오일을 지방산 및 글리세린으로 가수분해할 수 있기 때문이다. 글리세린을 물 속에 축적하고 발효 시스템 전반에 걸쳐 재순환시키기 위해 이용가능한 물의 양을 감소시킬 수 있다. 따라서, 공급원료의 오일 성분을 제거하면 시스템을 통해 재순환될 수 있는 물의 양을 증가시킴으로써 생성 효율을 증가시킨다. 또한, 오일을 제거하면 보다 효율적인 발효로 인하여 생산 공장에서 에너지 절감을 유도할 수 있고, 오일의 제거로 인하여 부착물이 적어지며, 발효기 용적 효율이 증가하며, 에너지 요건, 예를 들면, 증류기 곡물을 건조하기 위해 필요한 에너지를 감소시킬 수 있다. Removing the oil component of the feedstock is advantageous to produce because the oil present in the fermenter can be hydrolyzed to fatty acids and glycerin. The amount of water available for accumulating glycerin in water and recirculating throughout the fermentation system can be reduced. Thus, removing the oil component of the feedstock increases the production efficiency by increasing the amount of water that can be recirculated through the system. In addition, removal of the oil can lead to energy savings in the production plant due to more efficient fermentation, less attachment due to the removal of oil, increased efficiency of the fermentor volume, and energy requirements, such as drying the distiller grains The amount of energy required to achieve the desired performance can be reduced.
도 5에 나타낸 바와 같이, 오일을 본원에 기재된 공정 동안에 각종 지점에서 제거할 수 있다. 공급원료 슬러리(16)는, 예를 들면, 3상 원심분리기를 사용하여, 제1 액체 상 또는 수용액(22)(또는 수성 스트림), 오일(26)(또는 오일 스트림)을 포함하는 제2 액체 상, 및 고체 상 또는 습윤 케이크(24)(또는 고체 스트림)으로 분리시킬 수 있다. 습윤 케이크(24)를 추가로 가공하여 발효가능한 당 및 오일을 회수할 수 있다. 습윤 케이크(24)를 혼합(60)으로 수행하고 습윤 케이크 혼합물(65)을 형성하는 물 또는 기타 용매와 합할 수 있다. 일부 구현예에서, 물은 역류, 쿠킹 수, 가공 수, 루터 수(lutter water), 증발로부터 회수된 물, 또는 발효 공정 시설에서 이용가능한 임의의 수원, 또는 이의 조합물일 수 있다. 습윤 케이크 혼합물(65)은 발효가능한 당, 오일(76), 및 습윤 케이크(74)를 포함하는 세척 농축물(75)을 생성하는 분리(70)(예를 들면, 3상 원심분리기)로 수행할 수 있다. 세척 농축물(75)은 액화(10)로 재순환시킬 수 있다. 오일(76) 및 오일(26)은 합하여 각종 소비자 제품의 제조를 위해 추가로 가공할 수 있다. 일부 구현예에서, 오일(예를 들면, 오일 (26), 오일 (76))은 추가로 가공하여 추출제를 발생시킬 수 있다. 예를 들면, 오일은 화학적으로 또는 효소적으로 처리하여 추출제를 발생시킬 수 있다. 오일이 옥수수 오일인 일부 구현예에서, 옥수수 오일은 화학적으로 또는 효소적으로 처리하여 추출제로서 사용될 수 있는 지방산(예를 들면, 옥수수 오일 지방산)을 발생시킬 수 있다. 오일이 효소적으로 처리되는 일부 구현예에서, 효소적 반응은 전환 후 처리(예: 열)하여 효소를 탈활성화시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 오일은 에스테라제, 리파제, 포스포리파제, 라이소포스포리파제 또는 이들의 조합물과 같은 효소적으로 처리된 이용되는 효소일 수 있다. 일부 구현예에서, 오일은 수산화암모늄, 무수 암모니아, 아세트산암모늄, 과산화수소, 톨루엔, 빙초산, 또는 이들의 조합물로 화학적으로 처리할 수 있다. 생물량으로부터 추출제를 유도하는 방법은 미국 특허공개공보 제 2011/0312043호 및 미국 특허공개공보 제2011/0312044호에 기재되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에서 참조로 혼입되어 있다. 오일이 옥수수 오일인 일부 구현예에서, 공급원료 슬러리는 적어도 약 1중량%, 적어도 약 2중량%, 적어도 약 3중량%, 적어도 약 4중량%의 옥수수 오일, 또는 적어도 약 5중량%의 옥수수 오일을 포함할 수 있다. 도 5의 나머지는 도 1과 유사하며, 이에 따라 다시 상세하게 기재하지는 않을 것이다.As shown in FIG. 5, the oil may be removed at various points during the process described herein. The
본원에 기재된 바와 같이, 습윤 케이크를 하나 이상의 세척 사이클 또는 세척 시스템에 처리할 수 있다. 일부 구현예에서, 습윤 케이크(74)는 습윤 케이크 혼합물(65')를 형성하는 제2 혼합물(60')로 수행할 수 있다. 습윤 케이크 혼합물(65')를 세척 농축물(75'), 오일(76') 및 습윤 케이크(74')를 생성하는 제2의 분리(70')로 수행할 수 있다. 세척 농축물(75')은 액화(10)로 재순환시킬 수 있고/있거나 세척 농축물(75')는 세척 농축물(75)과 합할 수 있으며 합해진 세척 농축물은 액화(10)로 재순환시킬 수 있다. 습윤 케이크(74')는 본원에 기재된 바와 같은 추가의 공정을 위해 습윤 케이크(74)와 합할 수 있다. 오일(76), 오일(76') 및 오일(26)은 합하여 각종 소비자 제품의 제조를 위해 추가로 가공할 수 있다. 일부 구현예에서, 오일(예를 들면, 오일 (26), 오일 (76), 오일 (76'))을 추가로 가공하여 본원에 기재된 바와 같은 추출제를 발생시킬 수 있다. 생물량으로부터 추출제를 유도하는 방법은 미국 특허공개공보 제2011/0312043호 및 미국 특허공개공보 제2011/0312044호에 기재되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에서 참조로 포함된다.As described herein, the wet cake may be processed into one or more wash cycles or wash systems. In some embodiments, the
도 6에 나타낸 바와 같이, 수용액(22) 및 습윤 케이크(24)를 합하고, 냉각시키고 발효(30)로 수행할 수 있다. 공급원료 슬러리(16)를, 예를 들면, 3-상 원심분리기를 사용하여 제1의 액체 상 또는 수용액(22), 오일(26)을 포함하는 제2의 액체 상, 및 고체 상 또는 습윤 케이크(24) 내로 분리시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 오일(26)(또는 오일 스트림)을 저장 탱크 또는 오일 저장에 적합한 임의의 용기로 수행할 수 있다. 수용액(22)(또는 수성 스트림) 및 습윤 케이크(24)(고체 스트림)을 혼합(80)으로 수행하고 형성되는 수용액/습윤 케이크 혼합물(82)을 재-슬러리화할 수 있다. 혼합물(82)은, 발효(30)로 수행될 수 있는 냉각된 혼합물(92)을 생성하는 냉각(90)으로 수행될 수 있다. 일부 구현예에서, 오일(26)이 공급원료(12)로부터 분리(20)를 통해 제거되는 경우, 혼합물(82) 및 (92)는 감소된 양의 옥수수 오일을 포함한다. 도 6의 나머지는 도 1과 유사하며, 이에 따라 다시 상세하게 기재하지는 않을 것이다.As shown in FIG. 6, the
일부 구현예에서, 예를 들면, 도 7 및 8에 나타낸 바와 같이, 당화는 분리(20)와 발효(30)(도 7) 사이에 위치한 별도의 당화 시스템(50)에서 발생할 수 있다. 도 7 및 8은, 별도의 당화(50) 및 발효(30)의 포함이 효소(38)를 접수하지 않는 것을 제외하고는 도 1과 유사하다. 일부 구현예에서, 효소(38)는 또한 발효(30)에 가할 수 있다.In some embodiments, for example, as shown in FIGS. 7 and 8, saccharification may occur in a
산 공정, 효소 공정 또는 산-효소 공정을 포함하지만 이에 제한되지 않는, 산업에서 이용된 어떠한 공지된 당화 공정도 사용할 수 있다. 당화(50)를 어떠한 적합한 당화 용기 속에서 수행할 수 있다. 일부 구현예에서, 글루코아밀라제와 같은 효소(38)를 도입하여 단당류를 형성하기 위해 공급원료 슬러리(16) 또는 수용액(22) 속의 당(예를 들면, 올리고당)에 가수분해할 수 있다. 예를 들면, 도 7에서, 분리(20)로부터 배출되고 입구를 통해 당화(50)로 수행된 수용액(22) 중에 존재하는 올리고당을 단당류로 가수분해한다. 단당류를 함유하는 수용액(52)를 출구를 통해 당화(50)로부터 배출시켜서 발효(30)를 수행한다. 대안적으로, 도 8에 나타낸 바와 같이, 액화(10)로부터 배출되고 입구를 통해 당화(50)로 수행된 공급원료 슬러리(16) 중에 존재하는 올리고당을 단당류로 가수분해한다. 단당류를 함유하는 공급원료 슬러리(54)를 출구를 통해 당화(50)로부터 배출시키고 분리(20)로 수행한다.Any known saccharification process used in the industry may be used, including, but not limited to, acid processing, enzymatic processing, or acid-enzymatic processing. The
일부 구현예에서, 도 1 내지 6의 시스템 및 공정을 수정하여 도 7 및 8의 시스템 및 공정과 관련하여 본원에서 토의된 바와 같은 별도의 당화 시스템을 포함할 수 있다.In some embodiments, the system and process of Figures 1-6 may be modified to include a separate saccharification system as discussed herein in connection with the systems and processes of Figures 7 and 8.
일부 구현예에서, 예를 들면, 도 9a 내지 9d에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 시스템 및 공정은 일련의 2개 이상의 분리 장치를 포함할 수 있다. 도 9a 내지 9d는, 분리 시스템을 추가하는 것을 제외하고는 도 1과 유사하며, 이에 따라 다시 상세하게 기재하지는 않을 것이다.In some embodiments, for example, as shown in FIGS. 9A-9D, the system and process of the present invention may comprise a series of two or more separation devices. 9A-9D are similar to FIG. 1, except adding a separation system, and will not be described in detail again.
분리(20)로부터 배출된 수용액(22)은 분리(20')로 수행할 수 있다. 분리(20')는 분리(20)와 동일할 수 있거나 분리(20)와 상이할 수 있으며, 동일한 방식으로 작동할 수 있다. 분리(20')는 수용액(22)으로부터 분리되지 않은 용해되지 않은 고체 및 오일을 제거하여 (i) 수용액(22)과 유사하지만 수용액(22)과 비교하여 감소된 양의 용해되지 않은 고체 및 오일을 함유하는 수용액(22'), (ii) 습윤 케이크(24)와 유사한 습윤 케이크(24'), 및 (iii) 오일(26)과 유사한 오일(26')을 발생시킬 수 있다. 이후에, 수용액(22')은 발효(30)에 도입될 수 있다. 일부 구현예에서, 분리(20') 이후의 하나 이상의 추가의 분리 장치가 존재할 수 있다.The
일부 구현예에서, 분리(20')는, 예를 들면, 데칸터 보울 원심분리, 3-상 원심분리, 디스크 스택 원심분리, 여과 원심분리, 데칸터 원심분리, 여과, 진공 여과, 벨트필터, 막 여과, 교차 유동 여과, 가압 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이팅, 다공성 그레이팅, 부유, 하이드로사이클론, 필터 프레스, 스크류프레스, 중력 침강기, 와동 분리기, 또는 이들의 조합을 포함하는 고체 및 액체를 분리할 수 있는 어떠한 분리 장치일 수 있다.In some embodiments, the separation 20 'can be accomplished by, for example, decanter bowl centrifugation, 3-phase centrifugation, disk stack centrifugation, filtration centrifugation, decanter centrifugation, filtration, vacuum filtration, Including solid filtration, membrane filtration, cross flow filtration, pressure filtration, screen filtration, screen separation, grating, porous grating, suspension, hydrocyclone, filter press, screw press, gravity settler, vortex separator, And any separating device capable of separating the liquid.
일부 구현예에서, 도 1 내지 9의 시스템 및 공정을 수정하여, 본원에 기술된 시스템 및 공정과 관련하여 본원에서 토의된 바와 같은 용해되지 않은 고체를 제거하기 위한 추가의 분리 장치를 포함할 수 있다.In some embodiments, the systems and processes of FIGS. 1-9 may be modified to include additional separation devices for removing undissolved solids as discussed herein in connection with the systems and processes described herein .
일부 구현예에서, 스트림(35)은 발효(30)에서 출구로부터 배출될 수 있다. 스트림(35)을 통해 발효(30)를 빠져나오는 용해되지 않은 고체의 부재 또는 최소화는 수개의 추가의 이점을 갖는다. 예를 들면, 다운스트림 공정에서 유닛 및 작동에 대한 필요성은, 예를 들면, 비어 컬럼(beer column) 또는 증류 컬럼을 감소시키거나 제거할 수 있어서 생성 효율을 증가시킨다. 또한, 전체 증류폐액 원심분리의 일부 또는 전부를 발효기를 빠져나오는 스트림에서 더 적은 용해되지 않은 고체의 결과로서 제거할 수 있다.In some embodiments,
도 9b를 참조하면, 분리(20)로부터 배출된 수용액(22)은 분리(20')로 수행할 수 있다. 분리(20')는 분리(20)와 동일할 수 있거나 분리(20)와 상이할 수 있다. 분리(20')는 추출제 또는 응집제와 같은 분리 첨가제(28)를 포함할 수 있는 방식으로 작동할 수 있다. 분리 첨가제(28)는 오일 또는 고체를 제거하는 데 도움을 줄 수 있다. 분리(20')는 수용액(22)으로부터 분리되지 않은 오일 및 용해되지 않은 고체를 제거하여 (i) 수용액(22)와 유사하지만 수용액(22)와 비교하여 감소된 양의 용해되지 않은 고체 및 오일을 함유하는 수용액(22'), 및 (ii) 오일(26) 및 습윤 케이크(24)의 합해진 스트림과 유사할 수 있으며, 또한 분리 첨가제(28)를 포함하는 스트림(23)을 발생시킬 수 있다. 스트림(23)은 분리(20")로 수행하고, 분리 첨가제(28'), 및 습윤 케이크(24')를 포함하는 스트림을 발생시킬 수 있다. 분리(20")는 분리(20) 및 분리(20')와 동일할 수 있거나 분리(20) 및 분리(20')와 상이할 수 있다. 수용액(22')은 발효(30)로 도입될 수 있다.Referring to FIG. 9B, the
일부 구현예에서, 분리(20), 분리(20'), 및 분리(20")는, 예를 들면, 데칸터 보울 원심분리, 3-상 원심분리, 디스크 스택 원심분리, 여과 원심분리, 데칸터 원심분리, 여과, 진공 여과, 벨트필터, 막 여과, 교차 유동 여과, 가압 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이팅, 다공성 그레이팅, 부유, 하이드로사이클론, 필터 프레스, 스크류프레스, 중력 침강기, 와동 분리기, 또는 이들의 조합을 포함하는 고체 및 액체를 분리할 수 있는 어떠한 분리 장치일 수 있다.In some embodiments, the
도 9c를 참조하면, 공급원료 슬러리(16)는 액화(10)로부터 배출하고 분리(20)로 수행할 수 있다. 공급원료 슬러리(16)는 분리되어 스트림: (i) 수용액(22); (ii) 습윤 케이크(24), 및 (iii) 오일, 고체, 및 발효가능한 탄소원을 포함하는 수성 스트림을 포함하는 스트림(25)을 발생시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 스트림(25)의 고체는 가벼운 고체일 수 있다. 일부 구현예에서, 가벼운 고체는 물보다 덜 치밀하지만 오일보다 더 치밀한 고체일 수 있다. 일부 구현예에서, 가벼운 고체는 오일에 코팅되어 물보다 덜 치밀한 고체를 생성할 수 있다. 일부 구현예에서, 고체는 친지성 및/또는 친수성 특성을 가질 수 있다. 일부 구현예에서, 스트림(25)의 고체는 다음 중 하나 이상을 포함할 수 있다: 세균, 섬유, 전분 및 글루텐. 일부 구현예에서, 스트림(25)의 고체는 미립자를 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 스트림(25)의 고체는 세균, 글루텐 및 섬유를 포함한다. 일부 구현예에서, 발효가능한 탄소원을 포함하는 수용액(22)은 본원에 기술된 바와 같은 발효 생성물을 생성하기 위한 발효(30)로 수행될 수 있다. 일부 구현예에서, 습윤 케이크(24)를, 예를 들면, 본원에 기술된 바와 같이 추가로 가공하여 DDGS를 형성시킬 수 있다.Referring to FIG. 9C, the
분리(20)로부터 배출된 스트림(25)은 분리(20')로 수행할 수 있다. 분리(20')는 분리(20)와 동일할 수 있거나 분리(20)와 상이할 수 있다. 일부 구현예에서, 분리(20) 및 분리(20')는, 예를 들면, 데칸터 보울 원심분리, 3-상 원심분리, 디스크 스택 원심분리, 여과 원심분리, 데칸터 원심분리, 여과, 진공 여과, 벨트필터, 막 여과, 교차 유동 여과, 가압 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이팅, 다공성 그레이팅, 부유, 하이드로사이클론, 필터 프레스, 스크류프레스, 중력 침강기, 와동 분리기, 또는 이들의 조합을 포함하는 고체 및 액체를 분리할 수 있는 어떠한 분리 장치일 수 있다. 일부 구현예에서, 분리는 단일 단계 공정일 수 있다.The
스트림(25)은 분리(20')에 의해 분리되어 스트림: (i) 수용액(22'), (ii) 습윤 케이크(24'), 및 (iii) 오일(26)을 발생시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 수용액(22')은 수용액(22)와 합할 수 있으며, 합해진 수용액은 발효(30)로 수행될 수 있다. 일부 구현예에서, 수용액(22') 속의 고체의 양은 수용액(22) 속의 고체의 양과 비교하여 감소된다. 일부 구현예에서, 수용액(22')은 오일을 포함할 수 있으며, 수용액(22') 속의 오일은 추가로 가공하여 추출제를 발생시킬 수 있다. 예를 들면, 수용액(22')은 화학적으로 또는 효소적으로 처리되어 추출제를 발생시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 수용액(22')은 화학적으로 또는 효소적으로 처리하여 추출제로서 사용될 수 있는 지방산(예를 들면, 옥수수 오일 지방산)을 발생시킬 수 있다. 수용액(22')이 효소적으로 처리되는 일부 구현예에서, 효소 반응을 전환 후에 처리(예: 열)하여 효소를 탈활성화시킬 수 있다. 비교적 작은 스트림 용적을 갖는 수용액(22') 속의 오일을 지방산으로 전환시키면 효소적 또는 화학적 전환을 통해 추출제를 발생시키는 자본 비용을 절감할 수 있다. 생물량으로부터 추출제를 유도하는 방법은 미국 특허공개공보 제2011/0312043호 및 미국 특허공개공보 제2011/0312044호에 기재되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에 참조로 혼입된다.
일부 구현예에서, 습윤 케이크(24')는 습윤 케이크(24)와 합하고, 합해진 습윤 케이크는 본원에 기재된 바와 같이 추가로 가공될 수 있다, 일부 구현예에서, 습윤 케이크(24')는 오일을 포함할 수 있으며 이러한 오일이 풍부한 습윤 케이크는 습윤 케이크(24)와 합하여 동물 사료용 대사가능한 에너지 공급원을 제공할 수 있는 증가된 지방 함량(예를 들면, 증가된 트리글리세라이드 함량)을 갖는 습윤 케이크를 생성할 수 있다. 일부 구현예에서, 증가된 지방 함량을 갖는 이러한 습윤 케이크는 시럽과 합해져서 고 트리글리세라이드, 고 단백질, 저 탄수화물 DDGS를 발생시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 오일을 포함하는 습윤 케이크(24')는, 예를 들면, 본원에 기재된 바와 같이 추가로 가공하여 DDGS를 생성할 수 있다.In some embodiments, the wet cake 24 'may be combined with the
일부 구현예에서, 오일(26)은 저장 탱크 또는 오일 저장에 적합한 임의의 용기로 수행될 수 있다. 일부 구현예에서, 오일(26) 또는 이의 일부는 공급원료 슬러리(16)(점선, 도 9c)와 합해질 수 있다. 공급원료 슬러리에 오일을 가하면 포획된 고체의 양을 증가시킴으로써 스트림(25)을 통한 고체 제거를 증진시킬 수 있다.In some embodiments, the
일부 구현예에서, 오일(26)을 추가로 가공하여 본원에 기술된 바와 같은 추출제를 발생시킬 수 있다. 비교적 작은 스트림 용적을 갖고 공급원료 슬러리(16)에 비하여 감소된 유동 속도를 가질 수 있는 오일(26)을 전환시키면 효소적 또는 화학적 전환을 통해 추출제를 발생시키는 에너지 요건 뿐만 아니라 자본 비용도 절감할 수 있다. 일부 구현예에서, 오일(26)의 유동 속도는 공급원료 슬러리(16)의 유동속도의 약 1% 내지 약 10%일 수 있다. 생물량으로부터 추출제를 유도하는 방법은 미국 특허공개공보 제2011/0312043호 및 미국 특허공개공보 제2011/0312044호에 기재되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에서 참조로 혼입된다.In some embodiments, the
일부 구현예에서, 스트림(25)은 분리 장치의 하나 이상의 매개변수를 조정함으로써 발생시킬 수 있다. 예를 들면, 스트림(25)은 데칸터 원심분리기 또는 3-상 원심분리기와 같은 원심분리기의 웨어(weir)(또는 딥 웨어(deep weir))를 조절함으로써 발생시킬 수 있다.In some implementations,
본원에 기재된 바와 같이, 고체는 액체-액체 추출을 방해할 수 있으며, 이에 따라, 추출 방법을 이용하는 것은 기술적으로 또는 경제적으로 이용가능하지 않을 수 있다. 추출 공정 동안에, 래그 층(rag layer)은 수성 상과 유기 상의 계면에서 형성될 수 있으며, 고체(예를 들면, 가벼운 고체)로 구성된 래그 층은 축적되고 가능하게는 상 분리를 방해할 수 있다. 래그 층의 형성을 완화시키기 위하여, 발효 전에 스트림(25)을 통한 고체의 제거는 래그 층의 형성을 제거할 수 있으며, 이에 의해 발효 브로쓰의 다운스트림 공정 및 발효 생성물의 회수를 증진시킬 수 있다.As described herein, solids can interfere with liquid-liquid extraction, and thus, the use of extraction methods may not be technically or economically feasible. During the extraction process, a rag layer can be formed at the interface between the aqueous phase and the organic phase, and a lag layer composed of solids (e.g., light solids) can accumulate and possibly interfere with phase separation. In order to alleviate the formation of the lag layer, the removal of solids through
래그 층의 형성을 완화시키기 위한 또 다른 구현예에서, 오일은 래그 층을 형성하는 고체를 선택적으로 포획하기 위한 수단으로서 수용액에 가할 수 있다. 도 9d를 참조하면, 공급원료 슬러리(16)는 액화(10)로부터 배출되고 분리(20)로 수행할 수 있다. 공급원료 슬러리(16)는 분리되어 스트림을 발생시킬 수 있다: (i) 수용액(22), (ii) 습윤 케이크(24), 및 (iii) 오일(26). 일부 구현예에서, 습윤 케이크(24)를, 예를 들면, 본원에 기재된 바와 같이 추가로 가공하여 DDGS를 형성시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 오일을 수용액(22)에 가하고 수득되는 혼합물을 용기(80)로 수행하는 데, 여기서 혼합물이 침전되거나 분리되어 (i) 고체(86)를 포함하는 오일 층 및 (ii) 수용액(22')을 형성한다. 일부 구현예에서, 수용액(22')은 본원에 기재된 바와 같은 발효 생성물을 생성하기 위해 발효(30)로 수행할 수 있다. 일부 구현예에서, 수용액(22') 속의 고체의 양은 수용액(22) 속의 고체의 양과 비교하여 감소된다. 일부 구현예에서, 고체가 풍부한 오일 층(86)은 제거되고(예를 들면, 혼합물로부터 걷어내짐) 여과되어 오일 층으로부터 고체를 제거할 수 있다. 일부 구현예에서, 고체가 풍부한 오일 층(86)은 분리(20')로 수행되고 분리되어 스트림: (i) 수용액(22"), (ii) 습윤 케이크(24'), 및 (iii) 오일(26')(고체가 적은 오일)을 발생시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 수용액(22)에 가해진 요일은 공급원료 슬러리(16), 오일(26'), 및/또는 외부 오일 공급원으로부터 분리된 오일(26)일 수 있다.In another embodiment for alleviating the formation of the lag layer, the oil may be added to the aqueous solution as a means for selectively trapping the solid forming the lag layer. Referring to Fig. 9D, the
일부 구현예에서, 습윤 케이크(24')는 습윤 케이크(24)와 합해질 수 있으며, 합해진 습윤 케이크는 본원에 기재된 바와 같이 추가로 가공될 수 있다. 일부 구현예에서, 습윤 케이크(24')는 오일을 포함할 수 있으며, 이러한 오일이 풍부한 습윤 케이크는 습윤 케이크(24)와 합해져서 증가된 지방 함량을 갖는 습윤 케이크를 생성할 수 있으며 본원에 기재된 바와 같이 추가로 가공될 수 있다. 일부 구현예에서, 오일을 포함하는 습윤 케이크(24')는 본원에 기재된 바와 같이 추가로 가공될 수 있다.In some embodiments, the wet cake 24 'may be combined with the
일부 구현예에서, 수용액(22")은 수용액(22')와 합해질 수 있으며, 합해진 수용액은 발효(30)로 처리될 수 있다. 이러한 합해진 수용액 속의 고체의 양은 수용액(22)에 비하여 감소될 수 있으며, 감소된 고체와 함께, 래그 층의 형성은 완화될 수 있다. 일부 구현예에서, 수용액(22') 및 수용액(22")은 오일을 포함할 수 있으며, 당해 오일은 추가로 가공되어 추출제를 발생시킬 수 있다. 예를 들면, 수용액(22') 및 수용액(22")은 합해질 수 있고 화학적으로 또는 효소적으로(도 9d에서 점선) 처리되어 본원에 기재된 바와 같이 추출제를 발생시킬 수 있다. 생물량으로부터 추출제를 유도하는 방법은 미국 특허공개공보 제2011/0312043호 및 미국 특허공개공보 제2011/0312044호에 기재되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에서 참조로 혼입된다.In some embodiments, the
일부 구현예에서, 분리(20) 및 분리(20')는 데칸터 보울 원심분리, 3-상 원심분리, 디스크 스택 원심분리, 여과 원심분리, 데칸터 원심분리, 여과, 진공 여과, 벨트필터, 막 여과, 교차 유동 여과, 가압 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이팅, 다공성 그레이팅, 부유, 하이드로사이클론, 필터 프레스, 스크류프레스, 중력 침강기, 와동 분리기, 또는 이들의 조합을 포함하는 고체 및 액체를 분리할 수 있는 어떠한 분리 장치일 수 있다. 일부 구현예에서, 분리는 단일 단계 공정일 수 있다. 일부 구현예에서, 용기(80)는 정지 혼합기, 혼합기-침강기, 데칸터, 중력 침강기, 및 이들의 조합일 수 있다. 일부 구현예에서, 공정은 오염을 최소화하는 온도(예를 들면, 70 내지 110℃)에서 유지될 수 있다.In some embodiments, the
일부 구현예에서, 예를 들면, 도 10에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 시스템 및 공정은 온-라인, 인-라인, 앳-라인 및/또는 실시간 측정(원은 측정 장치를 나타내고 점선은 피드백 루프를 나타낸다)을 위한 수단을 포함할 수 있다. 도 10은, 온-라인, 인-라인, 앳-라인 및/또는 실시간 측정을 위한 측정 장치를 추가하는 것을 제외하고는, 도 5와 유사하며, 이에 따라 다시 상세히 기재하지는 않을 것이다.In some implementations, for example, as shown in FIG. 10, the system and process of the present invention may be implemented on-line, in-line, at-line and / Lt; / RTI > Fig. 10 is similar to Fig. 5, except adding a measurement device for on-line, in-line, at-line and / or real-time measurement and will not be described again in detail.
본원에 기재된 공정은, 예를 들면, 발효 동안에 발생된 각종 스트림(예를 들면, 공급원료 슬러리, 수용액, 오일 스트림, 습윤 케이크, 습윤 케이크 혼합물, 세척 농축물 등)의 농도 및 다른 물리적 특성의 온-라인, 인-라인, 앳-라인, 및/또는 실시간 측정을 사용하는 통합된 발효 공정일 수 있다. 이들 측정은, 예를 들면, 피드-백 루프에서 사용되어 발효기, 액화 유닛, 분리 유닛, 및 혼합 유닛의 조건 및/또는 발효의 조건을 조정하고 조절할 수 있다. 일부 구현예에서, 발효 브로쓰 속의 발효 생성물 및/또는 다른 대사물 및 기질의 농도는 온-라인, 인-라인, 앳-라인, 및/또는 실시간 측정을 위한 임의의 적합한 측정 장치를 이용하여 측정할 수 있다. 일부 구현예에서, 측정 장치는 다음 중 하나 이상일 수 있다: 푸리에 변환 적외선 분광기(Fourier transform infrared spectroscope; FTIR), 근적외선 분광기(near-infrared spectroscope; NIR), 라만 분광기(Raman spectroscope), 고압 액체 크로마토그래피(HPLC), 점도계, 농도계, 텐시오메터(tensiometer), 소적 크기 분석기, 입자 분석기, pH 측정기, 용존 산소(DO) 프로브 등. 일부 구현예에서, 발효기로부터 배기되는 오프-가스(off-gas)는, 예를 들면, 인-라인 질량 분광기로 분석할 수 있다. 발효기로부터 배기되는 오프-가스를 측정하는 것은 발효 반응에서 존재하는 종을 확인하기 위한 수단으로서 사용될 수 있다. 발효 생성물 및 다른 대사물 및 기질의 농도는 또한 본원에 기술된 기술 및 장치를 사용하여 측정할 수 있다.The process described herein may be used to determine the concentration of various streams (e.g., feed slurry, aqueous feed, oil stream, wet cake, wet cake mixture, wash concentrate, etc.) generated during fermentation and other physical properties - Integrated fermentation process using line, in-line, at-line, and / or real-time measurement. These measurements can be used, for example, in a feed-back loop to adjust and control the conditions of the fermenter, liquefaction unit, separation unit, and mixing unit and / or fermentation conditions. In some embodiments, the concentration of the fermentation product and / or other metabolites and substrate in the fermented broth is measured using any suitable measuring device for on-line, in-line, at-line, and / can do. In some embodiments, the measuring device may be one or more of the following: Fourier transform infrared spectroscope (FTIR), near-infrared spectroscope (NIR), Raman spectroscope, high pressure liquid chromatography (HPLC), viscometer, densitometer, tensiometer, droplet size analyzer, particle analyzer, pH meter, dissolved oxygen (DO) probe. In some embodiments, the off-gas evacuated from the fermenter can be analyzed, for example, by an in-line mass spectrometer. Measuring the off-gas evacuated from the fermenter can be used as a means to identify the species present in the fermentation reaction. The concentrations of fermentation products and other metabolites and substrates can also be measured using the techniques and apparatus described herein.
일부 구현예에서, 측정된 입력치를 조절기 및/또는 조절 시스템에 보낼 수 있으며, 발효기 내의 조건(온도, pH, 영양분, 효소 및/또는 기질 농도), 액화 유닛, 분리 유닛, 및 혼합 유닛을 변화시켜 각종 스트림의 농도 또는 농도 프로파일을 유지시킬 수 있다. 이러한 조절 시스템을 이용함으로써, 공정 매개변수를 전체 공장 생산성 및 경제적인 목적을 증진시키는 방식으로 유지시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 발효의 실시간 조절은 발효기, 액화 유닛, 분리 유닛, 및 혼합 유닛 속의 성분(예를 들면, 생물량, 당, 효소, 영양분, 미생물 등)의 농도를 변화시킴으로써 달성될 수 있다. 일부 구현예에서, 자동화 시스템을 사용하여 분리 및 혼합 조건, 분리 및 혼합 작동으로의 및 이로부터의 유동 속도, 고체 및 오일 제거, 및 당 및 전분 회수를 조정할 수 있다.In some embodiments, the measured input values can be sent to the regulator and / or conditioning system and the conditions (temperature, pH, nutrients, enzyme and / or substrate concentration), liquefaction unit, separation unit, The concentration or concentration profile of various streams can be maintained. By using this conditioning system, process parameters can be maintained in a manner that enhances overall plant productivity and economic objectives. In some embodiments, real-time regulation of fermentation can be achieved by varying the concentration of components (e.g., biomass, sugar, enzymes, nutrients, microorganisms, etc.) in the fermenter, liquefaction unit, separation unit and mixing unit. In some embodiments, automated systems can be used to adjust flow rates, solids and oil removal, and sugar and starch recovery to and from separation and mixing conditions, separation and mixing operations.
발효 공정 동안에, 작동의 유닛이 시간에 따라 최적 수준 이하(sub-optimal level)로 수행될 수 있다. 전체 공장 생산성을 유지하기 위해 액화 및 분리와 같은 작동을 위한 유동 속도, 혼합 속도, 장비 설정 등을 조정할 필요가 있을 수 있다. 본원에 기재된 공정 및 시스템은 공급원료 슬러리(16), 수용액(22), 오일(26) 및 습윤 케이크(24)와 같은 발효 스트림의 농도 및 기타 물리적 특성을 모니터링하기 위한 온-라인, 인-라인, 앳-라인, 및/또는 실시간 측정을 사용하여 통합시킬 수 있다. 이러한 측정을, 예를 들면, 발효, 공급원료 슬러리의 분리, 및 세척 사이클 수행의 조건을 조절하고 조정하기 위한 피드-백 루프에서 사용할 수 있다, 온-라인, 인-라인, 앳-라인, 및/또는 실시간 측정을 이용함으로써, 공정 조건의 즉각적인 피드백 및 조정을 수행하여, 전체적으로 개선된 발효 공정을 생성할 수 있다. 예를 들면, 발효가능한 탄소원(예: 전분, 당), 오일, 및 고체의 양을 공급원료 슬러리(16), 수용액(22), 및 스트림(65) 및 (75)에서, 예를 들면, FTIR 또는 NIR을 사용하여 모니터링할 수 있다. 이러한 매개변수를 모니터링함으로써, 액화 및 당화를 위한 효소 농도 및 체류 시간을 조절하여 공급원료 슬러리(16)의 제조를 증진시킬 수 있으며 분리 및 혼합 조건을 조절하여, 예를 들면, 수용액(22) 및 스트림(65) 및 (75) 속의 발효가능한 탄소원, 오일, 및/또는 고체의 양을 증가시킬 수 있다.During the fermentation process, the unit of operation can be performed at sub-optimal levels over time. In order to maintain overall plant productivity, it may be necessary to adjust flow rates, mixing rates, equipment settings, etc. for operations such as liquefaction and separation. The processes and systems described herein may be used for on-line, in-line monitoring of the concentration and other physical properties of the fermentation stream, such as the
또 다른 예로서, 습윤 케이크(24)를 세척하면 습윤 케이크 속의 당, 전분 및 오일을 회수하도록 하여, 이러한 발효가능한 탄소원 및 오일의 수율 손실을 최소화한다. 스트림(24), (65), (74) 및 (75)의 수분, 당, 전분, 및 오일 함량을 모니터링함으로써, 세척 성능을 조정하여 당, 전분 및 오일 회수를 증진시킬 수 있다. 예를 들면, 이들 스트림의 당, 전분 및 오일 함량을 실시간 측정하는 것은 FTIR 및 NIR로 수행할 수 있으며, 이들 측정은 즉각적인 피드백 및 혼합(60) 및 분리(20, 70) 조건의 조정을 허용한다. 분리 장치의 차등 속도, 공급 속도, 보울 속도, 스크롤 차등 속도, 임펠러 위치, 웨어 위치, 스크롤 피치, 체류 시간, 및 배출 용적을 조정하여 스트림(24, 65, 74, 및 75)의 수분, 당, 전분 및 오일 함량을 수정할 수 있다. 혼합(60) 조건, 예를 들면, 펌프 속도 또는 교반기 속도를 또한 조정하여 스트림(24, 65, 74, 및 75)의 수분, 당, 전분, 및 오일 함량을 수정할 수 있다. 또한, 세척 비(예를 들면, 물과 습윤 케이크 사이의 비)를 또한 조정하여 스트림(24, 65, 및 74)의 수분, 당, 전분, 및 오일 함량을 수정할 수 있다. FTIR 측정 및 소적 영상화를 사용하여 오일 스트림(26, 76) 속의 물 함량을 모니터링할 수 있다. 또한, 오일 스트림(26, 76)의 색상 및 혼탁도를 모니터링하여 오일의 품질을 평가할 수 있다, 이러한 실시간 측정은 분리(20, 70) 조건을 위한 조정을 허용하여 세척기 오일 스트림(예를 들면, 더 적은 물)을 생성시킨다.As another example, washing the
본원에 기재된 공정 및 시스템의 또 다른 구현예에서, 습윤 케이크(24)의 수분 함량은 실시간 측정을 이용하여 모니터링할 수 있다. 습윤 케이크의 수분 함량의 실시간 측정은 NIR로 수행할 수 있으며, 이들 측정은 분리(20, 70) 조건의 즉각적인 피드백 및 조정이 가능하도록 한다. 습윤 케이크의 물 함량을 감소시킴으로써, 습윤 케이크를 건조시키기 위해 더 적은 에너지가 필요하며, 이에 따라 전체 에너지 이용이 생성 공정을 위해 증진될 수 있다. 또한, 습윤 케이크의 낮은 물 함량은 개선된 전분 회수를 생성할 수 있다.In another embodiment of the processes and systems described herein, the moisture content of the
실시간 측정을 이용하는 공정 조절 전략의 또 다른 예로서, 수용액(22) 및 오일(26, 76) 속의 고체는 공정 입자 분석기(JM Canty, Inc., Buffalo, NY), 촛점화된 비임 반사 측정(FBRM®) 기술, 또는 입자 관찰 및 측정(PVM®) 기술(Mettler- Toledo, LLC, Columbus OH)과 같은 입자 크기 분석을 이용하여 측정할 수 있다. 고체를 실시간 모니터링함으로써, 공정 단계를 조정하여 고체 제거를 증진시키고, 이에 따라 수용액 및 오일 스트림 속의 고체의 양을 최소화시키고, 고체의 회수를 최대화시키며, 다운스트림 공정을 포함하는 전체 발효 공정을 증진시킬 수 있다.As another example of a process control strategy using real-time measurements, the solids in the
도 1 내지 10에 기재된 공정 및 시스템은 공급원료 슬러리(16)로부터 용해되지 않은 고체 및/또는 오일을 제거하고 결과적으로, 공정 생산성 및 비용 효율성을 개선시킴을 포함한다. 개선된 생산성은 발효 전에 용해되지 않은 고체 및/또는 오일을 제거하지 않은 공정 및 시스템에 대하여 발효 생성물 생성의 증가된 효율 및/또는 증가된 추출 활성을 포함할 수 있다.The processes and systems described in Figures 1 to 10 include removing undissolved solids and / or oil from the
다운스트림 공정을 포함하는 본 발명의 예시적인 발효 공정은 도 11에 기재되어 있다. 도 11에서 일부 공정 및 스트림은 도 1 내지 10에서 사용된 바와 동일한 명칭 및 번호매김을 사용하여 확인해 왔으며 도 1 내지 10에 기재된 바와 동일하거나 유사한 공정 및 스트림을 나타낸다.An exemplary fermentation process of the present invention including a downstream process is described in FIG. In Fig. 11, some processes and streams have been identified using the same naming and naming as used in Figs. 1-10 and represent processes and streams similar or similar to those described in Figs.
공급원료(12)를 가공하고 용해되지 않은 고체 및/또는 오일을 도 1 내지 10을 참조로 하여 본원에 기재된 바와 같이 분리하였다(100). 요약하면, 공급원료(12)는 액화되어 용해되지 않은 고체, 발효가능한 탄소원 및 오일을 포함하는 공급원료 슬러리를 발생시킬 수 있다. 예를 들면, 분쇄된 곡물 및 하나 이상의 효소를 합하여 공급원료 슬러리를 발생시킬 수 있다. 이러한 공급원료 슬러리는 가열(또는 쿠킹), 액화, 및/또는 "쿠킹된" 공급원료 슬러리 또는 사료를 생성하는 플래쉬 증기로 플래슁할 수 있다. 일부 구현예에서, 공급원료 슬러리는 적어도 약 100℃로 가열할 수 있다. 일부 구현예에서, 공급원료 슬러리는 약 30분 동안 가열할 수 있다. 일부 구현예에서, 공급원료 슬러리는 원료 전분 가수분해(냉각 쿠킹 또는 냉각 가수분해로도 공지됨)로 처리할 수 있다. 원료 전분 가수분해 공정에서, 가열(또는 쿠킹) 단계는 생략되며, 이러한 단계의 생략은 에너지 소비 및 증기 부하(예를 들면, 물 소비)를 감소시킨다. 일부 구현예에서, 액화 및/또는 당화는 발효 온도(예를 들면, 약 30℃ 내지 약 55℃)에서 수행할 수 있다. 일부 구현예에서, 액화 및/또는 당화는 원료 전분 효소 또는 저온 가수분해 효소, 예를 들면, StargenTM(Genencor International, Palo Alto, CA) 및 BPXTM(Novozymes, Franklinton, NC)을 이용하여 수행할 수 있다. 일부 구현예에서, 액화 및/또는 당화는 약 50℃ 미만의 온도에서 수행할 수 있다.The
공급원료 슬러리는 이후에 분리에 적용되어 용해되지 않은 고체를 제거하고, 습윤 케이크(24), 오일(26), 및 발효가능한 탄소원, 예를 들면, 용해된 발효가능한 당을 포함하는 수용액(22)(또는 농축물)을 생성할 수 있다. 분리는 데칸터 보울 원심분리, 3-상 원심분리, 디스크 스택 원심분리, 여과 원심분리, 데칸터 원심분리, 여과, 진공 여과, 벨트필터, 막 여과, 교차 유동 여과, 가압 여과, 스크린을 사용하는 여과, 스크린 분리, 그레이팅, 다공성 그레이팅, 부유, 하이드로사이클론, 필터 프레스, 스크류프레스, 중력 침강기, 와동 분리기, 또는 이들의 조합을 포함하지만 이에 제한되지 않는 다수의 수단에 의해 달성될 수 있다. 이러한 분리 단계는 적어도 약 80%, 적어도 약 85%, 적어도 약 90%, 적어도 약 95%, 적어도 약 96%, 적어도 약 97%, 적어도 약 98%, 또는 적어도 약 99%의 용해되지 않은 고체를 공급원료 슬러리로부터 제거할 수 있다. 일부 구현예에서, 수용액(22)은 적어도 약 0.5%, 적어도 약 1%, 또는 적어도 약 2%의 용해되지 않은 고체를 포함할 수 있다.The feedstock slurry is then applied to the separation to remove the undissolved solids and the
습윤 케이크(24)는 재-슬러리화하거나 물로 세척하고 분리에 적용시켜 추가의 발효가능한 당을 제거하고, 세척된 습윤 케이크(예를 들면, 도 1 내지 10에 기재된 바와 같은 74, 74')를 생성할 수 있다. 일부 구현예에서, 약 1%, 약 2%, 약 3%, 약 4%, 약 5%, 약 10%, 또는 약 15%의 발효가능한 당을 세척된 습윤 케이크로부터 회수할 수 있다. 세척 공정은 다수 회, 예를 들면, 1, 2, 3, 4, 5회 또는 그 이상 반복할 수 있다. 습윤 케이크를 재-슬러리화하거나 세척하기 위해 사용된 물은 발효 공정 동안에 발생된 재순환된 물(예를 들면, 역류, 쿠킹 수, 공정 수, 루터 수, 증발 수)일 수 있다. 일부 구현예에서, 습윤 케이크는 재-슬러리화되거나 비어(beer)로 세척할 수 있다. 세척/분리 공정에 의해 생성된 세척 농축물(예를 들면, 도 4 및 도 5에 기재된 바와 같은 75, 75')를 혼합 단계로 되돌려서 분쇄된 곡물을 갖는 슬러리를 형성시키거나 액화 공정에서 사용할 수 있다. 일부 구현예에서, 세척 농축물을 혼합 단계 전에 가열하거나 냉각시킬 수 있다.The
수용액(22)은 본원에 기재된 바와 같이 추가로 가공할 수 있다. 예를 들면, 수용액(22)은 증기 또는 공정-대-공정 열 교환으로 가열할 수 있다. 당화 효소는 수용액(22)에 가할 수 있으며 수용액(22)의 용해된 발효가능한 당은 부분적으로 또는 완전히 당화시킬 수 있다. 당화된 수용액(22)은 공정-대-공정 교환, 냉각수를 사용한 교환, 또는 급냉 수를 사용한 교환과 같은 다수의 수단에 의해 냉각될 수 있다.The
수용액(22) 및 미생물(32)을 발효(30)에 가할 수 있으며, 여기서 발효가능한 당은 미생물(32)에 의해 대사되어 발효 생성물(예를 들면, 생성물 알코올)을 포함하는 스트림(105)를 생성한다. 일부 구현예에서, 미생물(32)은 1-부탄올, 2-부탄올 또는 이소부탄올과 같은 생성물 알코올을 생성할 수 있는 재조합체 미생물일 수 있다. 일부 구현예에서, 암모니아 및 재순환 스트림을 또한 발효(30)에 가할 수 있다. 일부 구현예에서, 공정은 적어도 하나의 발효기, 적어도 2개의 발효기, 적어도 3개의 발효기, 적어도 4개의 발효기, 적어도 5개의 발효기, 또는 그 이상의 발효기를 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 발효 동안에 발생된 이산화탄소는 스크러버(scrubber)로 배기되어 공기 방출(예를 들면, 알코올 공기 방출)을 감소시키고 생성물 수율을 증가시킬 수 있다.An
생성물 알코올을 포함하는 스트림(105)은 비어 컬럼(120)으로 수행하여 알코올이 풍부한 스트림(122) 및 하부 스트림(125)를 생성할 수 있다. 알코올이 풍부한 스트림(122)은 생성물 알코올을 회수하기 위해 알코올 회수(160)로 보낼 수 있다. 생성물 알코올은, 증류, 흡착(예를 들면, 수지를 사용함), 분자 체(molecular sieve)를 사용한 분리, 투석증발, 기체 스트리핑, 추출 등을 포함하지만 이에 제한되지 않는 당해 분야에 공지된 방법을 사용하여 알코올이 풍부한 스트림(122)로부터 회수할 수 있다. 발효 전에 제거된 대부분의 고체를 갖는, 묽은 증류폐액을 포함하는 하부 스트림(125)은 증발(130)을 통해 증발에 의해 농축되어 시럽(135)을 형성할 수 있다. 시럽(135)은 혼합기(140)에서 습윤 케이크(본원에 기재된 바와 같은 24, 74, 74')와 합할 수 있으며, 습윤 케이크 및 시럽의 합해진 스트림(145)은 이후에 건조기(150) 속에서 건조되어 DDGS를 생성할 수 있다.The
일부 구현예에서, 스트림(105)은 탈기될 수 있다. 일부 구현예에서, 스트림(105)은, 예를 들면, 가열 매쉬를 사용한 공정-대-공정 교환에 의해, 탈기 전에 가열할 수 있다. 일부 구현예에서, 증기는 응축기로 배기시킨 다음, 스크러버로 배기시킬 수 있다. 탈기된 스트림(105)은, 예를 들면, 증류 및/또는 알코올 회수 영역에서 기타 스트림과의 공정-대-공정 열 교환에 의해 추가로 가열할 수 있다.In some embodiments,
도 11의 또 다른 구현예에서, 수용액(22), 미생물(32), 및 추출제를 발효(30)에 가하여 2상 스트림을 생성할 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제를 재순환된 루프를 통해 발효(30)에 가할 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제를 발효(30)의 다운스트림 또는 발효(30)에 대하여 외부로 가할 수 있다. 발효 브로쓰 및 발효 생성물(예를 들면, 생성물 알코올)을 포함하는 스트림을 외부 추출기로 수행하여 생성물 알코올 및 하부 스트림을 포함하는 스트림을 생성할 수 있다. 일부 구현예에서, 생성물 알코올을 포함하는 스트림을 생성물 알코올의 회수를 위한 알코올 회수(160)로 수행할 수 있다. 일부 구현예에서, 하부 스트림을 분리 장치로 처리하여 하부 스트림을 묽은 증류폐액 및 추출제로 분리할 수 있다. 일부 구현예에서, 회수된 추출제를 생성물 알코올을 추출하기 위해 재순환시킬 수 있다. 발효 전에 제거된 대부분의 고체를 지닌 묽은 증류폐액을 증발(130)에 의해 농축시켜 시럽을 형성할 수 있다. 시럽을 혼합기(140) 속에서 습윤 케이크(본원에 기재된 바와 같은 24, 74, 74')와 합하고, 습윤 케이크 및 시럽의 합한 스트림(145)을 이후에 건조기(150) 속에서 건조하여 DDGS를 생성할 수 있다.11,
일부 구현예에서, 수용액(22), 미생물(32), 및 추출제를 발효(30)에 가하여 단일 액체 상 스트림을 형성할 수 있다. 일부 구현예에서, 2상 스트림 또는 단일 액체 상 스트림을 발효(30)로부터 배취방식으로 회수할 수 있거나 발효(30)로부터 연속적으로 회수할 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제를 발효(30)의 다운스트림 또는 발효에 대하여 외부로 가하여 단일 액체 상 스트림을 형성할 수 있다. 일부 구현예에서, 추출제를 외부 추출기에 가하여 단일 액체 상 스트림을 형성할 수 있다.In some embodiments,
알코올 회수를 위한 예시적인 공정이 본원에 기재되어 있으며, 발효 브로쓰로부터 생성물 알코올을 회수하기 위한 추가의 방법은 미국 특허공개공보 제2009/0305370호; 미국 특허공개공보 제2010/0221802호; 미국 특허공개공보 제2011/0097773호; 미국 특허공개공보 제2011/0312044호; 미국 특허공개공보 제2011/0312043호; 미국 특허공개공보 제2012/0035398호; 미국 특허공개공보 제2012/0156738호; PCT 국제공개공보 제WO 2011/159998호; 및 PCT 국제공개공보 제WO 2012/030374호에 기재되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에 참조로 혼입된다. 예를 들면, 진공 증발을 사용하여 발효 브로쓰로부터 생성물 알코올을 회수할 수 있다. 예열된 비어(예를 들면, 수성 스트림 22) 및 용매(예를 들면, 추출제)를 통상적인 무수 연마 연료 에탄올 공장에서 비어 컬럼의 재장착일 수 있는 프리플래쉬 컬럼으로 공급할 수 있다. 이러한 컬럼은 대기압 이하에서 작동할 수 있으며, 증발기 트레인 또는 사료 쿠킹 단계로부터 취한 수증기에 의해 구동될 수 있다. 프리플래쉬 컬럼의 오버헤드는 프리플래쉬 컬럼 공급물과의 열 교환을 포함하는 냉각수 및 공정-대-공정 열 교환의 일부 조합을 사용한 열 교환에 의해 응축될 수 있다. 액체 응축물은 알코올/물 데칸터로 향할 수 있다.Exemplary processes for alcohol recovery are described herein, and additional methods for recovering product alcohol from fermentation broth are disclosed in U.S. Patent Application Publication No. 2009/0305370; U.S. Patent Application Publication No. 2010/0221802; U.S. Patent Application Publication No. 2011/0097773; U.S. Patent Application Publication No. 2011/0312044; U.S. Patent Application Publication No. 2011/0312043; U.S. Patent Application Publication No. 2012/0035398; U.S. Patent Application Publication No. 2012/0156738; PCT International Publication No. WO 2011/159998; And PCT International Publication No. WO 2012/030374, the entire contents of each of which are incorporated herein by reference. For example, the product alcohol can be recovered from the fermentation broth using vacuum evaporation. Preheated vials (e.g., aqueous stream 22) and solvents (e. G., Extractants) may be fed to the preflash column, which may be a reattachment of the via column in a conventional anhydrous polishing fuel ethanol plant. Such a column may operate below atmospheric pressure and be driven by vapor from the evaporator train or feed cooking stage. The overhead of the preflash column can be condensed by heat exchange using some combination of cooling water and process-to-process heat exchange involving heat exchange with the preflash column feed. The liquid condensate can be directed to the alcohol / water decanter.
프리플래쉬 컬럼 하부는 용매 데칸터로 진행될 수 있다. 프리플래쉬 컬럼 하부는 생성물 알코올을 실질적으로 스트리핑할 수 있다. 데칸터는 증류 웰(still well), 원심분리기, 또는 하이드로사이클론일 수 있다. 물은 이러한 데칸터에서 용매 상으로부터 분리되어 수 상을 발생시킬 수 있다. 현탁되고 용해된 고체를 포함하는 수 상은 원심분리되어 습윤 케이크 및 묽은 증류폐액을 생성할 수 있다. 습윤 케이크는 다른 스트림과 합하고 건조시켜서 DDGS를 생성할 수 있으며, 이는 건조될 수 있고 DDGS를 생성하는 다른 스트림과 별도로 판매될 수 있거나, 또는 습윤 케이크로서 판매될 수 있다. 수 상은 분할되어 본원에 기재된 습윤 케이크를 재-슬러리화하기 위해 부분적으로 사용되는 역류를 제공할 수 있다. 이러한 분할은 또한 추가의 가공을 위해 증발기로 펌핑될 수 있는 묽은 증류폐액을 제공한다.The lower portion of the preflash column may proceed to a solvent decanter. The bottom of the preflash column is capable of substantially stripping the product alcohol. The decanter may be a still well, a centrifuge, or a hydrocyclone. Water can separate from the solvent phase in these decanters and generate water. The aqueous phase containing the suspended and dissolved solids may be centrifuged to produce wet cake and dilute distillate waste. The wet cake can be combined with other streams and dried to produce DDGS, which can be dried and sold separately from other streams that produce DDGS, or sold as a wet cake. The aqueous phase may be divided to provide a partially countercurrent backwash to re-slurry the wet cake described herein. This division also provides a dilute distillation waste that can be pumped to an evaporator for further processing.
용매 데칸터에서 생성된 유기 상은 알코올의 에스테르일 수 있다. 용매는 가수분해되어 반응성 용매를 재생시키고 추가의 알코올을 회수할 수 있다. 대안적으로, 유기 상은 여과하고 생성물로서 판매할 수 있다. 가수분해는 열구동되고, 균일하게 촉매화되거나 불균일하게 촉매화될 수 있다. 이 공정에 대한 열 도입은 화염 가열기, 가열 오일, 전기 가열 도입, 또는 고압 스팀일 수 있다. 가수분해를 진행하기 위해 가해진 물은 재순환된 물 스트림, 신선한 물 또는 증기로부터 존재할 수 있다.The organic phase produced in the solvent decanter may be an ester of an alcohol. The solvent can be hydrolyzed to regenerate the reactive solvent and recover additional alcohol. Alternatively, the organic phase may be filtered and sold as product. Hydrolysis can be thermally driven and can be uniformly catalyzed or heterogeneously catalyzed. The heat introduction for this process may be a flame heater, heating oil, electric heating introduction, or high pressure steam. The water applied to proceed with the hydrolysis may be from a recycled water stream, fresh water or steam.
냉각되고 가수분해된 용매는 대기압 이하의 용매 컬럼으로 펌핑될 수 있으며,당해 컬럼에서 증기를 사용하여 생성물 알코올을 실질적으로 스트리핑할 수 있다. 당해 증기는 증발기로부터의 수증기일 수 있으며, 이는 매쉬 공정의 플래쉬 단계로부터의 증기일 수 있거나, 이는 보일러로부터의 증기일 수 있다[참조: 예를 들면, 미국 특허공개공보 제2009/0171129호; 이의 전체 내용은 본원에서 참조로 혼입된다]. 통상적인 무수 분쇄 에탄올 공장으로부터의 정류기 컬럼은 용매 컬럼으로서 적합할 수 있다. 정류기 컬럼을 수정하여 용매 컬럼으로서 작용시킬 수 있다. 용매 컬럼의 하부는, 예를 들면, 냉각수 또는 공정-대-공정 열 교환에 의해 냉각될 수 있다. 냉각된 하부는 경사여과되어 잔류하는 물을 제거할 수 있으며 이러한 물은 공정의 다른 단계로 재순환되거나 액화로 재순환될 수 있다.The cooled and hydrolyzed solvent can be pumped into a solvent column below atmospheric pressure and the product alcohol can be substantially stripped using steam in the column. The steam may be steam from the evaporator, which may be steam from the flash stage of the mash process, or it may be steam from a boiler (see, for example, U.S. Patent Application Publication No. 2009/0171129; The entire contents of which are incorporated herein by reference. A rectifier column from a conventional anhydrous pulverized ethanol plant may be suitable as a solvent column. The rectifier column may be modified to act as a solvent column. The lower portion of the solvent column may be cooled, for example, by cooling water or process-to-process heat exchange. The cooled bottom can be obliquely filtered to remove residual water, which can be recycled to other stages of the process or recycled to liquefaction.
용매 컬럼 오버헤드는 냉각수와의 교환에 의해 또는 공정-대-공정 열 교환에 의해 냉각될 수 있으며, 응축물은 프리플래쉬 컬럼 오버헤드와 공유될 수 있는 배기된 알코올/물 데칸터로 향할 수 있다. 다른 혼합된 물 및 생성물 알코올 스트림은 탈기 단계로부터의 스크러버 하부 및 응축물을 포함하는 당해 데칸터로 가해질 수 있다. 이산화탄소를 포함하는 배기물은 수 스크러버로 향할 수 있다. 이러한 데칸터의 수성 층은 또한 용매 컬럼으로 공급될 수 있거나 소형의 전용 증류 컬럼 속에서 생성물 알코올을 스트리핑할 수 있다. 수성 층은 프리플래쉬 컬럼 오버헤드, 용매 컬럼 오버헤드, 또는 용매 컬럼 하부와의 공정-대-공정 교환에 의해 예열될 수 있다. 이러한 전용 컬럼은 통상적인 무수 연마 연료 에탄올 공정의 측면 스트리퍼로부터 변형될 수 있다.The solvent column overhead can be cooled by exchange with cooling water or by process-to-process heat exchange and the condensate can be directed to an evacuated alcohol / water decanter that can be shared with preflush column overhead . Other mixed water and product alcohol streams may be added to the decanter containing the scrubber bottom and condensate from the degassing step. The exhaust containing carbon dioxide can be directed to the scrubber. The aqueous layer of this decanter can also be fed into a solvent column or it can strip product alcohol in a small dedicated distillation column. The aqueous layer can be preheated by pre-flash column overhead, solvent column overhead, or process-to-process exchange with the solvent column bottom. This dedicated column can be deformed from a side stripper of a conventional anhydrous polished fuel ethanol process.
알코올/수 데칸터의 유기 층은 알코올 컬럼으로 펌핑될 수 있다. 이러한 컬럼은 초-대기압 컬럼일 수 있으며 리보일러 내의 증기 응축에 의해 구동될 수 있다. 컬럼으로의 공급은 공정-대-공정 열교환에 의해 가열되어 컬럼을 작동시키기 위한 에너지 요구량을 감소시킬 수 있다. 이러한 공정-대-공정 열 교환체는 프리플레쉬 컬럼의 부분 응축기, 용매 컬럼의 부분 응축기, 가수분해기의 생성물, 증발기로부터의 수증기, 또는 알코올 컬럼 하부를 포함할 수 있다. 알코올 컬럼 증기의 응축물은 냉각될 수 있으며 알코올/수 데칸터로 복귀할 수 있다. 알코올 컬럼 하부는 알코올 컬럼 공급물과의 교환을 포함하는 공정-대-공정 열 교환에 의해 냉각될 수 있으며 냉각수로 추가로 냉각되고, 여과되고 생성물 알코올로서 판매될 수 있다.The organic layer of the alcohol / water decanter can be pumped into the alcohol column. Such a column may be a super-atmospheric column and may be driven by vapor condensation in the reboiler. The feed to the column can be heated by process-to-process heat exchange to reduce the energy requirement for operating the column. Such a process-to-process heat exchanger may comprise a partial condenser of the pre-flash column, a partial condenser of the solvent column, a product of the hydrolyzer, steam from the evaporator, or a lower portion of the alcohol column. The condensate of the alcohol column vapor can be cooled and returned to the alcohol / water decanter. The lower portion of the alcohol column may be cooled by process-to-process heat exchange involving an exchange with an alcohol column feed, further cooled with cooling water, filtered and sold as product alcohol.
본원에 기재된 바와 같은 프리플래쉬 컬럼 하부로부터 발생된 묽은 증류폐액은 다중 효과 증발기로 향할 수 있다[참조: 예를 들면, 미국 특허공개공보 제2011/0315541호; 이의 전체 내용은 본원에 참조로 혼입된다]. 이러한 증발기는 2개, 3개 이상의 단계를 가질 수 있다. 증발기는 연료 에탄올 공장의 통상적인 설계와 유사한 2가지 효과에 의한 4개의 본체의 구성을 가질 수 있고, 이는 3가지 효과에 의한 3개의 본체를 가질 수 있거나, 또는 이는 다른 구조를 가질 수 있다. 묽은 증류폐액은 이러한 효과들 중 어느 것에서 공급될 수 있다. 첫번째 효과 본체들 중 적어도 하나는 초-대기압 알코올 컬럼으로부터의 증기로 가열될 수 있다. 증기는 최저 압력 효과로부터 취해져서 수증기 형태의 열을 대기압 이하의 프리플래쉬 컬럼 및 용매 컬럼으로 제공할 수 있다. 증발기로부터의 시럽은 증류기 곡물 건조기로 가할 수 있다.The dilute distillation waste liquid generated from the bottom of the preflash column as described herein can be directed to a multiple effect evaporator (see, for example, U.S. Patent Application Publication No. US 2011/0315541; The entire contents of which are incorporated herein by reference. Such an evaporator may have two, three or more stages. The evaporator can have four body configurations due to two effects similar to the conventional design of a fuel ethanol plant, which can have three bodies by three effects, or it can have a different structure. Dilute distillation wastewater can be supplied from any of these effects. At least one of the first effect bodies may be heated with steam from a super-atmospheric alcohol column. Steam can be taken from the lowest pressure effect to provide steam-like heat to sub-atmospheric preflash columns and solvent columns. The syrup from the evaporator can be added to the still grain dryer.
발효기, 탈기장치, 알코올/물 데칸터, 및 기타 공급원으로부터의 이산화탄소 방출은 수 스크러버로 향할 수 있다. 이러한 스크러버의 상부에 공급된 물은 신선한 물일 수 있거나 재순환된 물일 수 있다. 재순환된 물은 처리되어(예를 들면, 생물학적으로 소화됨) 휘발성 유기 화합물을 제거할 수 있으며 급냉될 수 있다. 스크러버 하부는 알코올/수 데칸터, 용매 컬럼으로 보내질 수 있거나, 다른 재순환된 물과 함께 사용되어 본원에 기재된 습윤 케이크를 재-슬러리화할 수 있다. 증발기로부터의 농축물은 혐기성의 생물학적 소화 또는 다른 공정으로 처리하여 습윤 케이크를 재-슬러리화하기 위한 재순환 전에 물을 정제할 수 있다.Carbon dioxide emissions from fermentors, deaerator, alcohol / water decanter, and other sources can be directed to the water scrubber. The water supplied to the top of such a scrubber may be fresh water or recycled water. The recycled water can be treated (e. G., Biologically digested) to remove volatile organic compounds and can be quenched. The bottom of the scrubber can be sent to an alcohol / water decanter, solvent column, or used with other recycled water to re-slurry the wet cake described herein. The concentrate from the evaporator can be treated with anaerobic biological digestion or other processes to purify water prior to recycling to re-slurry the wet cake.
오일은 수개의 지점들 중 어느 것에서 공정 스트림으로부터 분리할 수 있다. 예를 들면, 원심분리기를 작동시켜서 쿠킹된 매쉬의 여과 이후에 오일 스트림을 생성할 수 있거나 프리플래쉬 컬럼 수 상 원심분리기를 작동시켜 오일 스트림을 생성할 수 있다. 중간 농축 시럽 또는 최종 시럽을 원심분리하여 오일 스트림을 생성할 수 있다.The oil can be separated from the process stream at any of several points. For example, a centrifuge may be operated to produce an oil stream after filtration of the cooked mesh, or the preflash column aqueous centrifuge may be operated to produce an oil stream. The intermediate concentrated syrup or the final syrup can be centrifuged to produce an oil stream.
또 다른 구현예에서, 다중-상 물질은 프리플래쉬 컬럼의 하부를 떠날 수 있으며 본원에 기재된 바와 같이 분리 시스템에서 가공될 수 있다. 농축된 고체는 수성 스트림 중에 재분산될 수 있으며 이러한 합해진 스트림을 사용하여 액화된 매쉬로부터 분리되고 세척된 저 전분 고체를 재-펄핑하고 펌핑할 수 있다.In another embodiment, the multi-phase material may leave the bottom of the preflash column and be processed in a separation system as described herein. The concentrated solids can be redispersed in the aqueous stream and this combined stream can be used to re-pulp and pump the washed low starch solids from the liquefied mesh.
생성물 알코올 회수를 위한 또 다른 예시적인 공정에서, 추출제를 이용하여 발효 동안에 발효 브로쓰로부터의 생성물 알코올을 제거하여 발효 브로쓰 속의 생성물 알코올을 특정한 농도 이하로 유지시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 생성물 알코올 제거는 알코올 에스테르를 생성하기 위한 촉매의 존재하에 카복실산으로 에스테르화함으로써 달성할 수 있다. 알코올 에스테르의 형성에 의해 알코올을 추출하기 위한 공정 및 시스템의 설명은 미국 특허 제2012/0156738호에서 발견할 수 있으며, 이의 전체 내용은 본원에서 참조로 혼입된다. 예를 들면, 공급원료 슬러리로부터 분리된 오일은 오일 속의 트리글리세라이드를 카복실산과 같은 지방산으로 전환시키는 에스테라제(예를 들면, 리파제)와 같은 촉매로 가수분해될 수 있다. 이러한 지방산은 생성물 알코올의 회수를 위한 추출제로서 사용될 수 있다. 일부 구현예에서, 오일의 가수분해는 촉매를 발효기에 가함으로써 발효기에서 발생할 수 있다. 일부 구현예에서, 오일의 가수분해는 별도의 용기 속에서 발생할 수 있으며, 지방산을 발효기에 가할 수 있다. 예를 들면, 공급원료 슬러리는 용기 또는 탱크로 수행할 수 있으며, 리파제와 같은 에스테라제는, 공급원료 슬러리에 존재하는 오일을 지방산으로 전환시키는, 용기에 가할 수 있다. 지방산을 포함하는 공급원료 슬러리는 발효기로 수행할 수 있다.In another exemplary process for product alcohol recovery, an extractant may be used to remove the product alcohol from the fermentation broth during fermentation to maintain the product alcohol in the fermentation broth below a certain concentration. In some embodiments, removal of the product alcohol may be accomplished by esterifying the product with a carboxylic acid in the presence of a catalyst to produce an alcohol ester. A description of processes and systems for the extraction of alcohol by the formation of alcohol esters can be found in U.S. Patent No. 2012/0156738, the entire contents of which are incorporated herein by reference. For example, the oil separated from the feedstock slurry can be hydrolyzed with a catalyst such as an esterase (e.g., lipase) that converts the triglyceride in the oil to a fatty acid such as a carboxylic acid. These fatty acids can be used as extractants for the recovery of the product alcohol. In some embodiments, hydrolysis of the oil can occur in the fermenter by adding the catalyst to the fermenter. In some embodiments, the hydrolysis of the oil can occur in a separate vessel, and fatty acids can be added to the fermenter. For example, the feedstock slurry may be carried in a vessel or tank, and an esterase such as a lipase may be added to the vessel, which converts the oil present in the feedstock slurry to a fatty acid. Feedstock slurries containing fatty acids can be carried out with a fermenter.
발효에 의해 생성된 생성물 알코올은 지방산과 반응하여 알코올 에스테르를 생성할 수 있다. 일부 구현예에서, 이들 알코올 에스테르는 발효 브로쓰로부터 추출될 수 있다. 예를 들면, 알코올 에스테르를 포함하는 발효 브로쓰는 3-상 원심분리기와 같은 분리 장치로 이동되어 발효 브로쓰를 3개의 스트림: 용해되지 않은 고체(미생물 포함), 수성 스트림, 및 알코올 에스테르를 포함하는 유기 스트림으로 분리될 수 있다. 일부 구현예에서, 발효 브로쓰는 2개의 스트림: 용해되지 않은 고체(미생물 포함), 및 수성 상 및 유기 상을 포함하는 2상 혼합물로 분리할 수 있다. 발효 브로쓰의 이러한 분리는, 예를 들면, 분리를 위한 발효 브로쓰의 일부를 제거함으로써 발효 동안에 연속적으로 발생할 수 있거나, 또는 배취 모드에서, 예를 들면, 발효기의 전체 내용물은 분리를 위해 제거될 수 있다.The product alcohol produced by fermentation can react with fatty acids to produce alcohol esters. In some embodiments, these alcohol esters can be extracted from fermentation broth. For example, fermentation broth containing alcohol esters may be transferred to a separation device such as a 3-phase centrifuge to separate the fermentation broth into three streams: undissolved solids (including microorganisms), aqueous streams, and alcohol esters Organic < / RTI > stream. In some embodiments, the fermentation broth can be separated into two streams: an undissolved solid (including microorganisms), and a biphasic mixture comprising an aqueous phase and an organic phase. This separation of the fermentation broth can occur continuously during fermentation, for example, by removing a portion of the fermentation broth for separation, or in the batch mode, for example, the entire contents of the fermenter can be removed for separation .
일부 구현예에서, 2상 혼합물은 에스테르-함유 유기 상 및 수성 상으로 분리될 수 있으며, 이러한 분리는, 사이포닝(siphoning), 통기, 경사여과, 원심분리, 중력 침강, 막-보조된 상 분리, 하이드로사이클론 등을 포함하지만 이에 제한되지 않는, 당해 기술분야에 공지된 임의의 방법을 사용하여 달성할 수 있다. 알코올 에스테르-함유 유기 상은 추가로 가공하여 생성물 알코올을 회수할 수 있다. 예를 들면, 알코올 에스테르-함유 유기 상은 용기로 이동시킬 수 있는 데, 여기서 알코올 에스테르는 촉매의 존재하에 가수분해되어 생성물 알코올 및 지방산을 형성할 수 있으며, 생성물 알코올 및 지방산의 이러한 혼합물은 증류에 의해 가공되어 생성물 알코올 및 지방산을 분리할 수 있다.In some embodiments, the two-phase mixture can be separated into an ester-containing organic phase and an aqueous phase, and this separation can be accomplished by various methods including siphoning, aeration, gradient filtration, centrifugation, gravity settling, , Hydrocyclones, and the like, which are known in the art. The alcohol ester-containing organic phase may be further processed to recover the product alcohol. For example, the alcohol ester-containing organic phase can be transferred to a vessel, where the alcohol ester can hydrolyze to form product alcohols and fatty acids, and this mixture of product alcohols and fatty acids is removed by distillation It can be processed to separate product alcohols and fatty acids.
일부 구현예에서, 지방산은 발효기 또는 추출기 컬럼으로 재순환시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 수성 스트림 및 용해되지 않은 고체를 발효기에 재순환시킬 수 있다.In some embodiments, the fatty acid may be recycled to a fermenter or extractor column. In some embodiments, the aqueous stream and undissolved solids can be recycled to the fermenter.
일부 구현예에서, 생성물 알코올의 추출은 발효기의 하류 스트림에서 또는 발효기에 대하여 외부에서 발생할 수 있다. 일부 구현예에서, 발효 시스템은, 예를 들면, 혼합 장치 및 분리 시스템을 포함하는 외부 추출 시스템을 포함할 수 있다. 발효 브로쓰는 혼합 장치로 수행될 수 있으며, 추출제는 혼합 장치에 가하고 발효 브로쓰와 합하여 2상 혼합물을 생성할 수 있다. 2상 혼합물은 분리 시스템으로 수행할 수 있으며, 여기서 2상 혼합물의 분리는 알코올-함유 유기 상 및 수성 상을 생성한다. 일부 구현예에서, 수성 상 또는 이의 일부는 발효기로 복귀시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 알코올-함유 유기 상은 추출제 컬럼으로 수행될 수 있다. 이들 양태에서의 생물량 가공 생산성은, 액화 후에 그러나 발효 전에 생물량 공급 스트림 성분을 분리함으로써 실질적으로 개선된다. 특히, 용해되지 않은 고체 및/또는 오일의 양을 감소시키면 외부 알코올 추출 시스템의 효율을 증가시킨다.In some embodiments, the extraction of the product alcohol may occur at the downstream stream of the fermenter or externally relative to the fermenter. In some embodiments, the fermentation system may include an external extraction system, including, for example, a mixing device and a separation system. The fermentation broth can be carried out with a mixing device, which can be added to the mixing device and combined with the fermentation broth to produce a two-phase mixture. The two-phase mixture may be carried out in a separation system, wherein the separation of the two-phase mixture produces an alcohol-containing organic phase and an aqueous phase. In some embodiments, the aqueous phase or a portion thereof may be returned to the fermenter. In some embodiments, the alcohol-containing organic phase may be carried out with an extractant column. Bioprocessing productivity in these embodiments is substantially improved by separating the biomass feed stream components after liquefaction but prior to fermentation. In particular, reducing the amount of undissolved solids and / or oil increases the efficiency of the external alcohol extraction system.
일부 구현예에서, 오일은 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 분리될 수 있으며 오일 저장 용기 속에 저장될 수 있다. 예를 들면, 오일은 3-상 원심분리 또는 기계적 추출을 포함하는 분리를 위한 임의의 적합한 수단을 이용하는 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 분리할 수 있다. 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 오일의 제거를 증진시키기 위하여, 효소뿐만 아니라 계면활성제, 항-유화제, 또는 응집제와 같은 오일 추출 조제도 이용할 수 있다. 오일 추출 조제의 예는 비-중합체성, 액체 계면활성제; 활석 분말; 미세활석 분말; 효소, 예를 들면, Pectinex® Ultra SP-L, Celluclast®, 및 Viscozyme® L (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO), 및 NZ 33095 (Novozymes, Franklinton, NC); 염(NaOH); 및 탄산칼슘을 포함하지만 이에 제한되지 않는다. 오일 제거를 증진시키기 위한 또 다른 수단은 pH를 상승시키거나 저하시키는 것과 같은 pH 조절일 수 있다. 오일 제거를 위한 추가의 이점은 증가된 오일 수율, 개선된 오일 품질, 감소된 시스템 부착, 및 감소된 중단시간을 포함한다. 또한, 오일 제거는 또한 세정기, 고품질 오일을 생성할 수 있다.In some embodiments, the oil may be separated from the feedstock or feedstock slurry and stored in an oil storage vessel. For example, the oil may be separated from the feedstock or feedstock slurry using any suitable means for separation, including 3-phase centrifugation or mechanical extraction. In order to enhance the removal of oil from the feedstock or feedstock slurry, an oil extraction aid such as a surfactant, an anti-emulsifier, or a flocculant may be used in addition to the enzyme. Examples of oil extraction aids include non-polymeric, liquid surfactants; Talc powder; Fine talc powder; Enzymes, for example, Pectinex ® Ultra SP-L, Celluclast ®, ® L and Viscozyme (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO), and NZ 33095 (Novozymes, Franklinton, NC ); Salt (NaOH); And calcium carbonate. Another means for enhancing oil removal may be pH control, such as raising or lowering the pH. Additional benefits for oil removal include increased oil yield, improved oil quality, reduced system attachment, and reduced downtime. In addition, oil removal can also produce a scrubber, high quality oil.
나머지 공급원료 또는 공급원료 슬러리는 이후에 추가로 처리하여 임의의 잔류 오일을 제거할 수 있다. 예를 들면, 오일 분리 후에 공급원료 또는 공급원료 슬러리를 용기 또는 탱크로 수행할 수 있으며 에스테라제(예: 리파제)와 같은 촉매를 용기에 가하여, 공급원료 또는 공급원료 슬러리 중에 존재하는 오일을 지방산으로 전환시킬 수 있다. 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 오일을 제거하면 효소 효율을 증진시킬 수 있을 뿐만 아니라 본원에 기재된 공정을 위해 필요한 효소의 양도 감소시킬 수 있다. 공급원료 또는 공급원료 슬러리는 이후에 발효기로 수행할 수 있으며 미생물은 또한 생성물 오일을 생성하기 위해 발효기로 가할 수 있다. 일부 구현예에서, 촉매는, 예를 들면, 가열하여 탈활성화시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 탈활성화는 별도의 용기, 예를 들면, 탈활성화 용기 속에서 수행할 수 있다. 탈활성화된 공급원료 또는 공급원료 슬러리는 발효기로 수행할 수 있으며 미생물은 또한 생성물 알코올을 생성하기 위한 발효기에 가할 수 있다. 오일을 지방산으로 전환시킴으로써 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 오일을 제거하면 보다 효율적인 발효로 인하여 생산 공장에서 에너지 절감을 이룰 수 있고, 오일의 제거로 인하여 부착이 덜할 수 있으며, 에너지 요건, 예를 들면, 증류기 곡물을 건조하기 위해 필요한 에너지를 감소시킬 수 있다. 발효 이후에, 생성물 알코올을 포함하는 발효 브로쓰는 생성물 알코올을 회수하기 위한 외부 용기, 예를 들면, 외부 추출기 또는 외부 추출 루프로 수행할 수 있다. 본원에 제공된 바와 같은 오일의 제거는, 본 발명의 구현예가 공급원료 슬러리로부터 오일을 분리하여 안정한 유화액이 공급 스트림 분리 공정의 도움으로 발생하는 경향이 적어지고, 발효 후에 회복 엔트래핑된 바이오-오일과 함께 형성된 유화액을 파괴하기 위한 양자성 용매를 가하는 것에 대한 필요성이 마찬가지로 적어지는 공지된 기술과는 상이하다(참조: 예를 들면, 미국 특허 제7,601,858호; 미국 특허 제8,192,627호). 본 발명의 일부 구현예에서, 유화액은 형성될 수 있지만, 기계적 공정 또는 다른 통상적인 수단에 의해 용이하게 파괴된다.The remaining feedstock or feedstock slurry may then be further treated to remove any residual oil. For example, the feedstock or feedstock slurry can be run as a vessel or tank after oil separation and a catalyst such as an esterase (e.g., lipase) can be added to the vessel to convert the oil present in the feedstock or feedstock slurry into fatty acid . ≪ / RTI > Removal of the oil from the feedstock or feedstock slurry not only enhances the enzyme efficiency, but also reduces the amount of enzyme required for the process described herein. The feedstock or feedstock slurry can then be run with a fermenter and the microbe can also be added to the fermenter to produce the product oil. In some embodiments, the catalyst may be deactivated by, for example, heating. In some embodiments, the deactivation may be performed in a separate vessel, for example, a deactivating vessel. The deactivated feedstock or feedstock slurry can be carried out with a fermenter and the microorganism can also be added to the fermenter to produce the product alcohol. Removal of the oil from the feedstock or feedstock slurry by converting the oil to a fatty acid can result in energy savings in the production plant due to more efficient fermentation, less attachment due to removal of the oil, and energy requirements, The energy required to dry distiller grains can be reduced. After fermentation, the fermentation broth containing the product alcohol may be carried out in an external vessel, for example, an external extractor or an external extraction loop, for recovering the product alcohol. Removal of the oil as provided herein may be advantageous if the embodiment of the present invention separates the oil from the feedstock slurry so that the stable emulsion is less prone to occur with the aid of the feed stream separation process and the recovered entrapped bio- (See, for example, U.S. Patent No. 7,601,858; U.S. Patent No. 8,192,627), as well as the need to add a quantum solvent to destroy the emulsions formed together. In some embodiments of the present invention, the emulsion can be formed, but is easily destroyed by mechanical processing or other conventional means.
추출제를 사용하여 생성물 알코올을 회수하는 경우, 발효 공정 전에 오일을 제거하면 추출제에 의해 취해진 오일의 양을 감소시키고 이에 따라 생성물 알코올을 회수하기 위한 추출제의 유효성을 확대시킬 수 있다. 추출제에 의해 취해진 오일은 추출제의 선택성 뿐만 아니라 Kd도 감소시킬 수 있고, 다시 생성 공정의 작동 비용을 증가시킬 수 있다. 추출제가 생성 공정에서 재순환될 수 있기 때문에, 각각의 발효 사이클은 추출제를 추출제에 의해 취해진 더 많은 오일에 노출시키며 시간이 경과함에 따라 추출제의 선택성 및 Kd를 상당히 감소시킬 수 있다. 본원에 기재된 공정 및 시스템은 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 오일을 제거하고/하거나 오일을 촉매의 첨가에 의해 지방산으로 전환시킴으로써 추출제의 Kd 및 선택성을 유지시키는 수단을 제공한다.When recovering the product alcohol using an extractant, removing the oil prior to the fermentation process can reduce the amount of oil taken up by the extractant and thereby expand the effectiveness of the extractant to recover the product alcohol. The oil taken by the extractant can reduce the K d as well as the selectivity of the extractant and can increase the operating cost of the production process again. Since the extractant can be recycled in the production process, each fermentation cycle exposes the extractant to more oil taken by the extractant and can significantly reduce the selectivity and K d of the extractant over time. The processes and systems described herein provide a means to maintain the K d and selectivity of the extractant by removing oil from the feedstock or feedstock slurry and / or converting the oil to a fatty acid by the addition of a catalyst.
본원에 기재된 공정 및 시스템은 용해되지 않은 고체의 제거의 결과로서 발효 생성물(예를 들면, 생성물 알코올) 생성에서의 추출 활성 및/또는 효율을 증가시킬 수 있다. 예를 들면, 용해되지 않은 고체의 존재가 없는 추출 발효는 발효 브로쓰로부터 추출제로의 생성물 알코올의 증가된 질량 전달 속도, 보다 양호한 상 분리, 및 증가된 추출제 소적 상승 속도의 결과로서 추출제의 낮은 정체(hold-up)를 유도할 수 있다. 또한, 예를 들면, 발효 동안 발효 브로쓰에서 정체된 추출제 소적은 발효 브로쓰로부터 더 신속하고 더 완전하게 해리될 것이며, 이에 의해 발효 브로쓰 내에 더 적은 유리 추출제를 생성시킬 것이다. 또한, 추출제의 더 낮은 정체는 공정에서 손실된 추출제의 양을 감소시킬 수 있다. 고체 제거의 추가의 이점은, 예를 들면, 자본 비용 및 에너지 사용의 절감을 초래하는 원심분리기 및 비어 컬럼과 같은 하류 스트림 가공 장치 및 발효기에서 교반기의 제거; 증가된 발효기 생산성을 초래하는 증가된 발효기 용적; 추출제의 증가된 생성 효율, 증가된 회수 및 재생, 작동 비용을 낮추게 할 추출제의 감소된 유동 속도, 및 연속 발효 또는 소형 발효기를 사용할 잠재성을 초래하는 감소된 추출제 정체(hold-up)를 포함한다. 일부 구현예에서, 발효에 이용가능한 발효기의 용적은 적어도 약 5%, 적어도 약 10% 이상 증가될 것이다.The processes and systems described herein can increase extraction activity and / or efficiency in producing fermentation products (e.g., product alcohols) as a result of removal of undissolved solids. For example, extraction fermentation without the presence of undissolved solids can be advantageously used in the production of extractables as a result of the increased mass transfer rate of the product alcohol from the fermentation broth to the extractant, better phase separation, It is possible to induce a low hold-up. Also, for example, an extractant droplet that is stagnant in the fermentation broth during fermentation will dissociate more rapidly and more completely from the fermentation broth, thereby creating less glass extractant in the fermentation broth. In addition, the lower stagnation of the extractant may reduce the amount of extractant lost in the process. Additional advantages of solids removal include, for example, removal of the stirrer in downstream stream processing equipment and fermentors such as centrifuges and via columns, resulting in a reduction of capital costs and energy use; Increased fermenter volume resulting in increased fermenter productivity; Increased production efficiency of the extractant, increased recovery and regeneration, reduced flow rate of the extractant to lower operating cost, and reduced extraction agent hold-up resulting in the potential to use continuous fermentation or mini-fermentors, . In some embodiments, the volume of fermenter available for fermentation will be increased by at least about 5%, at least about 10% or more.
증가된 추출 효율의 예는, 예를 들면, 분할 계수의 안정화, 증진된 상 분리, 증진된 질량 전달 계수, 저 적가(titer)에서의 작동, 증가된 공정 스트림 재생가능성, 증가된 발효 용적 효율, 증가된 공급원료 부하 공급, 미생물의 증가된 생성물 알코올 적가 내성, 수 재생, 에너지의 절감, 추출제의 증가된 재생, 및 미생물의 재생을 포함한다. 예를 들면, 발효 브로쓰에서의 오일은 발효 전에 공급원료 슬러리로부터 고체를 제거함으로써 감소될 수 있기 때문에, 추출제는 추출제와 합해질 수 있는 더 적은 오일에 노출되며 추출제의 분할 계수를 낮춘다. 따라서, 발효 브로쓰에서의 오일의 감소는 다수의 발효 사이클에 걸쳐 더 안정한 분할 계수를 생성한다. 일부 구현예에서, 분할 계수는 10회 이상의 발효 사이클에 걸쳐 약 10% 미만, 약 5% 미만, 또는 약 1% 미만으로 감소될 수 있다. 증가된 추출 효율의 또 다른 예로서, 더 높은 질량 전달 속도(예를 들면, 더 높은 질량 전달 계수의 형태로)는 생성물 알코올 생성의 증가된 효율을 초래할 수 있다. 일부 구현예에서, 질량 전달 계수는 적어도 2배, 적어도 3배, 적어도 4배, 또는 적어도 5배로 증가할 수 있다.Examples of increased extraction efficiencies include, for example, stabilization of partition coefficients, enhanced phase separation, enhanced mass transfer coefficients, operation at low titer, increased process stream reproducibility, increased fermentation volume efficiency, Increased feed load load, increased product alcohol tolerance of microorganisms, water regeneration, energy savings, increased regeneration of extractants, and microbial regeneration. For example, since the oil in the fermentation broth can be reduced by removing solids from the feedstock slurry prior to fermentation, the extractant is exposed to less oil that can be combined with the extractant and lowers the partitioning factor of the extractant . Thus, the reduction of oil in the fermentation broth produces a more stable fractionation factor over many fermentation cycles. In some embodiments, the partition coefficient may be reduced to less than about 10%, less than about 5%, or less than about 1% over 10 or more fermentation cycles. As another example of increased extraction efficiency, higher mass transfer rates (e.g., in the form of higher mass transfer coefficients) may result in increased efficiency of product alcohol production. In some embodiments, the mass transfer coefficient may increase by at least 2-fold, at least 3-fold, at least 4-fold, or at least 5-fold.
발효 브로쓰와 추출제 사이의 상 분리의 증가는 유화액 형성의 경향을 감소시켜서 생성물 알코올 제조의 효율을 증가시킨다. 예를 들면, 유화액의 부재하에서, 상 분리는 더 신속하게 발생할 수 있으며 더 완벽할 수 있다. 일부 구현예에서, 상 분리는, 앞서 인식할만한 상 분리가 관찰되지 않는 경우에 발생할 수 있다. 일부 구현예에서, 상 분리는 24시간 내에 발생할 수 있다. 일부 구현예에서, 상 분리는, 고체가 제거되지 않거나 유화액이 형성되는 상 분리와 비교하여 적어도 약 2배(2x) 신속하게, 적어도 약 5배(5x) 신속하게, 또는 적어도 약 10배(x10) 신속하게 발생할 수 있다.Increasing the phase separation between the fermentation broth and the extractant reduces the tendency of emulsion formation and increases the efficiency of product alcohol production. For example, in the absence of an emulsion, phase separation can occur more rapidly and can be more perfect. In some embodiments, the phase separation may occur if no previously recognized phase separation is observed. In some embodiments, phase separation may occur within 24 hours. In some embodiments, the phase separation is at least about 2X (2x) faster, at least about 5X (5X) faster, or at least about 10X (x 10) times faster than phase separation in which the solid is not removed or the emulsion formed. ) Can occur quickly.
본원에 기재된 바와 같이, 질소, 무기물, 미량 성분 및/또는 비타민과 같은 영양분을 공급원료 슬러리 또는 발효기에 가할 수 있다. 이들 가해진 영양분 뿐만 아니라 공급원료 중에 천연적으로 발생하는 영양분도 오일에 가용성일 수 있으며, 이에 따라 공급원료 또는 공급원료 슬러리 속의 오일의 존재는 발효 브로쓰 속의 이들 영양분의 농도를 저하시킬 수 있다. 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 오일을 제거하면 영양분의 손실을 최소화할 수 있다. 또한, 발효 브로쓰 속의 고체의 존재는 또한 영양분의 농도의 감소를 초래할 수 있다. 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 고체 및/또는 오일의 제거는 영양분의 손실을 최소화할 수 있다.As described herein, nutrients such as nitrogen, minerals, trace elements, and / or vitamins can be added to the feedstock slurry or fermenter. These nutrients as well as the naturally occurring nutrients in the feedstock may be soluble in the oil and thus the presence of oil in the feedstock or feedstock slurry may reduce the concentration of these nutrients in the fermented broth. Removal of oil from the feedstock or feedstock slurry can minimize the loss of nutrients. In addition, the presence of solids in the fermented broth may also result in a reduction in the concentration of nutrients. Removal of solids and / or oils from the feedstock or feedstock slurry can minimize the loss of nutrients.
본원에 기재된 공정 및 시스템에 있어서, 발효 공정에서의 오일의 존재는 다수의 발효 과정에 걸쳐 추출제의 분할 계수에 영향을 미칠 수 있다. 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 오일을 제거하는 것은 다수의 발효 과정에 걸쳐 추출제의 분할 계수의 다양성을 감소시킬 수 있고, 이에 따라 본원에 기재된 공정 및 시스템의 확장성을 증진시킬 수 있다. 확장성은, 예를 들면, 기능성에서의 결함없이 제조 요건(예: 작동 용적)을 수용하기 위해 공정 또는 시스템을 개질(예를 들면, 확장 또는 응축)시키는 능력을 말한다.In the processes and systems described herein, the presence of oil in a fermentation process can affect the partitioning factor of the extractant over a number of fermentation processes. Removing the oil from the feedstock or feedstock slurry can reduce the diversity of the partitioning factor of the extractant over a number of fermentation processes, thereby improving the extensibility of the processes and systems described herein. Scalability refers to the ability to modify (e.g., expand or condense) a process or system to accommodate manufacturing requirements (e.g., operating volume) without defects in functionality, for example.
또한, 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 고체를 제거하면 확장성에 대한 효과를 또한 가질 수 있다. 예를 들면, 외부 추출기를 이용하는 경우, 감소된 고체(예를 들면, 감소된 전체 현탁된 고체, TSS)는 증진된 성능 및 양호한 확장성을 생성할 수 있다. 감소된 고체는 수성 상과 유기 상(예를 들면, 발효 브로쓰와 추출제) 사이의 생성물 알코올의 질량 전달 속도를 증진시킨다. 고체 입자는 질량 전달을 위한 면적을 효과적으로 감소시키는 추출제 소적의 표면을 피복한다. 고체 입자는 또한 점도 및 유화에 대한 경향을 증가시킴으로써 상 분리를 억제한다. 고체의 존재는 외부 추출기의 작동을 방해할 수 있기 때문에, 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 고체를 제거하면 외부 추출기의 개선된 확장성 및 신뢰성을 제공한다.In addition, removal of solids from the feedstock or feedstock slurry can also have an effect on scalability. For example, when using an external extractor, reduced solids (e.g., reduced total suspended solids, TSS) can produce enhanced performance and good scalability. Reduced solids increase the mass transfer rate of the product alcohol between the aqueous phase and the organic phase (e.g., fermentation broth and extractant). The solid particles cover the surface of the extraction droplet which effectively reduces the area for mass transfer. Solid particles also inhibit phase separation by increasing the tendency towards viscosity and emulsification. Removal of solids from the feedstock or feedstock slurry provides improved extensibility and reliability of the external extractor because the presence of solids can interfere with the operation of the external extractor.
따라서, 고체 및/또는 오일을 제거하면 본원에 기재된 공정 및 시스템의 유닛 작동의 확장성을 증진시킬 수 있다. 예를 들면, 고체 및/또는 오일을 게거하면 추출기 성능, 증류 컬럼 성능, 열 교환체 성능, 및/또는 증발기 성능과 같지만 이에 제한되지 않는 유닛 작동을 증진시킬 수 있다.Thus, removal of solids and / or oils may enhance the extensibility of the unit operations of the processes and systems described herein. For example, retention of solids and / or oil may enhance unit operation, such as but not limited to extractor performance, distillation column performance, heat exchanger performance, and / or evaporator performance.
개선된 유닛 작동의 예로서, 도 11을 참조하면, 스트림(105)은 비어 컬럼(120)으로 수행하여 알코올이 풍부한 스트림(122) 및 하부 스트림(125)를 생성할 수 있다. 발효 전에 제거된 대부분의 고체를 갖는, 묽은 증류폐액을 포함하는 하부 스트림(125)은 증발(130)을 통해 농축될 수 있다. 발효 전에 고체를 제거함으로써, 더 적은 고체가 증발기로 보내져서 증발기에 대한 더 낮은 공급 속도를 생성할 수 있다. 더 낮은 공급 속도는 더 적은 에너지를 필요로 하며, 이에 따라 더 적은 에너지 요건으로 인하여 더 낮은 비용을 필요로 한다.As an example of improved unit operation, referring to FIG. 11,
일부 구현예에서, 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 회수된 오일로부터 물을 제거할 필요가 존재할 수 있다. 일부 구현예에서, 물은 중력 분리, 포합 분리기(coalescing seperator), 원심분리(예를 들면, 데칸터), 흡착 또는 흡수, 증류, 가열, 진공 탈수, 및/또는 공기 스트리핑(예: 공기, 질소)를 포함하는 다수의 방법으로 제거할 수 있다. 흡착 매질의 예는 활성화된 알루미나, 벤토나이트 점토, 염화칼슘, 황산칼슘, 셀룰로오즈, 황산마그네슘, 분자 체, 중합체 및/또는 실리카 겔을 포함하지만 이에 제한되지 않는다. 일부 구현예에서, 흡착 매질은 오일로 연속적으로 교반될 수 있거나, 오일은 흡착 매질을 갖는 패킹된 베드(packed bed)를 통해 유동할 수 있다.In some embodiments, there may be a need to remove water from the recovered oil from the feedstock or feedstock slurry. In some embodiments, the water may be removed by gravity separation, coalescing seperator, centrifugation (e.g. decanter), adsorption or absorption, distillation, heating, vacuum dehydration, and / or air stripping ). ≪ / RTI > Examples of adsorption media include, but are not limited to, activated alumina, bentonite clay, calcium chloride, calcium sulfate, cellulose, magnesium sulfate, molecular sieve, polymer and / or silica gel. In some embodiments, the adsorption medium may be continuously agitated with oil, or the oil may flow through a packed bed having an adsorption medium.
가끔, 생성물 알코올과 같은 발효 생성물을 생성하기 위해 사용된 장비를 세정하고/하거나 멸균시킬 필요가 있을 수 있다. 장비의 예는 발효기, 액화 용기, 당화 용기, 지지 탱크, 저장 탱크, 열 교환체, 파이프라인, 장비 연결부, 노즐, 핏팅, 및 밸브를 포함하지만 이에 제한되지 않는다. 세정 및 멸균은 미생물 오염을 감소시키거나 제거할 수 있을 뿐만 아니라 장비에 잔사(예를 들면, 탄수화물, 당)의 축적도 최소화할 수 있다. 장비에 잔사가 증대되면 원하지 않는 미생물에 대한 영양분 공급원을 제공하여, 이러한 미생물의 증식을 유도할 수 있다. 적소 세정(CIP) 및 적소 멸균(SIP)을 포함하는 발효 장비를 세정하고/하거나 멸균하기 위해 이용된 다수의 방법이 존재한다. CIP 및 SIP는 수동으로 수행할 수 있거나 자동화 시스템을 이용할 수도 있다. 적합할 뿐만 아니라 효율적인 CIP 또는 SIP는, 예를 들면, 미생물 오염으로 인한 작동 중단의 필요성을 최소화함으로써 제조 공장의 적합성을 최소화할 수 있다.Sometimes it may be necessary to clean and / or sterilize equipment used to produce a fermentation product, such as product alcohol. Examples of equipment include, but are not limited to, fermenters, liquefier vessels, saccharification vessels, support tanks, storage tanks, heat exchangers, pipelines, equipment connections, nozzles, fittings, and valves. Cleaning and sterilization not only reduces or eliminates microbial contamination, but also minimizes accumulation of residues (eg, carbohydrates, sugars) in the equipment. Increasing residues in the equipment can provide a source of nutrients for unwanted microorganisms, which can lead to the proliferation of these microorganisms. There are a number of methods used to clean and / or sterilize fermentation equipment, including in situ cleaning (CIP) and in situ sterilization (SIP). CIP and SIP can be performed manually or using an automated system. Adequate as well as efficient CIP or SIP can minimize manufacturing plant compliance by, for example, minimizing the need for disruption due to microbial contamination.
본원에 기재된 공정 및 시스템에서, 예를 들면, 발효 전의, 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터의 고체 및 오일의 제거는 CIP 및 SIP의 효율을 증진시킬 수 있다. 발효 장비에서 고체의 결핍은 CIP 및 SIP를 수행하기 위해 더 적은 세정 수, 더 적은 세정 용액, 및 더 적은 시간을 필요로 할 수 있다. 따라서, 고체의 제거는 CIP 및 SIP 공정의 효율을 증가시킬 수 있고 비용을 절감할 수 있다. 또한, CIP에 사용된 가성 제제(예를 들면, 수산화나트륨)는, CIP의 효율에 대한 영향을 가질 수 있는 오일 형성 비누(즉, 비누화)에서 트리글리세라이드와 반응할 수 있다. 따라서, 오일의 제거는 CIP 동안에 비누의 형성을 감소시킬 수 있고 CIP의 효율을 증진시킬 수 있다.In the processes and systems described herein, for example, removal of solids and oils from the feedstock or feedstock slurry prior to fermentation can enhance the efficiency of CIP and SIP. The lack of solids in the fermentation equipment may require less cleaning water, less cleaning solution, and less time to perform CIP and SIP. Thus, removal of solids can increase the efficiency of CIP and SIP processes and reduce costs. In addition, the caustic formulation used in CIP (e.g., sodium hydroxide) can react with triglycerides in oil-forming soaps (i.e., saponification), which may have an effect on the efficiency of CIP. Thus, the removal of oil can reduce the formation of soap during CIP and improve the efficiency of CIP.
발효성 공정 동안에, 부착물은 생성 공정의 생산성 및 효율에 영향을 미칠 수 있다. 일반적으로, 부착물은 외부 물질 또는 입자의 부착, 예를 들면, 열 교환체 및 증류 컬럼 리보일러(reboiler)의 표면 위의 물질의 부착을 나타낸다. 열 교환체의 표면의 물질의 이러한 부착은 열의 이동을 방해할 수 있고 열 교환체의 작동 능력을 감소시킬 수 있다. 예를 들면, 물질 부착은 유동 저항의 증가를 야기하는 교환체를 통한 유체의 유동을 방해할 수 있다. 또한, 열 교환체 또는 다른 장비의 표면 위의 물질의 부착은 추가의 세정을 필요로 할 수 있다. 이러한 추가의 세정 요건은 공장 생산성의 감소를 초래할 수 있는 공장 중단을 필요로 할 수 있다. 본원에 기재된 공정 및 시스템에서, 예를 들면, 발효 전의, 공급원료 또는 공급원료 슬러리로부터 오일 및/또는 고체의 제거는 물질의 부착을 최소화할 수 있으며 열 교환체와 같은 장비의 표면의 물질의 부착 속도를 저하시킬 수 있다. 따라서, 고체 및 오일 제거는 열 교환체의 부착 속도를 저하시킬 수 있고 열 이동 및 작동 능력에 대한 부착의 영향을 최소화할 수 있다.During the fermentative process, the adherence can affect the productivity and efficiency of the production process. In general, the adherence refers to the adherence of foreign matter or particles, for example, the adherence of a substance on the surface of a heat exchanger and a distillation column reboiler. This adherence of the material on the surface of the heat exchanger can interfere with the heat transfer and reduce the ability of the heat exchanger to operate. For example, material attachment can interfere with fluid flow through the exchanger causing an increase in flow resistance. In addition, attachment of materials on the surface of a heat exchanger or other equipment may require additional cleaning. These additional cleaning requirements may require plant shutdowns that can result in reduced plant productivity. In the processes and systems described herein, for example, removal of oil and / or solids from a feedstock or feedstock slurry prior to fermentation can minimize the attachment of the material and may reduce the adhesion of the material on the surface of equipment such as a heat exchanger The speed can be lowered. Thus, solid and oil removal can reduce the rate of attachment of the heat exchanger and minimize the impact of adhesion on heat transfer and operating capability.
본 발명의 공정 및 시스템의 구현예의 또 다른 예에서, 발효기로부터 배출된 물질은 원심분리기, 침강기, 하이드로사이클론 등 및 이의 조합과 같은 장치를 포함하는 분리 시스템에서 가공하여 후속적인 발효에서 직접적으로 또는 다음의 재-조건화로 재사용하기 위해 재생시킬 수 있는 농축된 형태로 미생물을 회수하도록 한다. 미생물을 재생시키는 능력은 생성물 알코올 생성과 같은 발효 생성물 생성의 전체 속도를 증가시킬 수 있고, 전체 적가 요건을 저하시킬 수 있고/있거나 수성 적가 요건을 저하시킬 수 있어서 더 건강한 미생물 및 더 높은 생성 속도를 수득할 수 있다. 이러한 분리 시스템은 또한 발효 생성물(예: 생성물 알코올) 및 발효로부터 생성된 다른 부산물을 포함하는 유기 스트림, 및 단지 미량의 비혼화성 유기물을 함유하는 수성 스트림을 생성할 수 있다. 이러한 수성 스트림은 공급원료 슬러리로부터 분리된 고체를 세척하기 위한 생성물 알코올 함량이 스트리핑되기 전 또는 후에 사용할 수 있다. 이는 액화 영역으로부터 곡물 건조 및 시럽 배합 영역으로의 이들 고체의 이동을 위한 긴 벨트-구동된 운반 시스템일 수도 있는 것을 피하는 이점을 갖는다. 더욱이, 생성물 알코올이 스트리핑된 후에 생성된 전체 증류폐액은 존재하는 또는 새로운 분리 장치를 사용하여 묽은 증류폐액 및 습윤 케이크 분획으로 분리될 필요가 있을 것이다. 묽은 증류폐액은 발효가능한 매쉬의 새로운 배취를 제조하기 위한 쿠킹 수와 합해질 수 있는 역류를 부분적으로 형성할 수 있다. 이러한 구현예의 또 다른 이점은, 공급원료 슬러리로부터 분리된 고체 중에 보유된 어떠한 잔류하는 발효가능한 당도 이러한 역류를 통해 부분적으로 포획되고 회수될 수 있다는 점이다. 대안적으로, 고체 스트림 중에 포함된 미생물은 수성 스트림 속에 재분산될 수 있으며 이러한 합해진 스트림은 발효로부터 잔류하는 어떠한 생성물 알코올 내용물도 증류시킨다. 미생물이 생존가능하지 않은 경우, 생존가능하지 않은 미생물은, 예를 들면, 전파 공정에서 영양분으로 사용하기 위해 추가로 분리될 수 있다.In another example of an embodiment of the process and system of the present invention, the material discharged from the fermenter is processed in a separation system comprising a device such as a centrifuge, a settler, a hydrocyclone, and the like, The microbes are recovered in a concentrated form that can be regenerated for re-use with the following re-conditioning. The ability to regenerate microorganisms can increase the overall rate of fermentation product production, such as product alcohol production, and can degrade overall drop-off requirements and / or degrade aqueous drop-in requirements, resulting in more healthy microbes and higher production rates . Such a separation system may also produce an aqueous stream containing an organic stream comprising fermentation products (e.g., product alcohols) and other by-products resulting from fermentation, and only trace amounts of incompatible organic matter. This aqueous stream can be used before or after stripping the product alcohol content for washing the solids separated from the feedstock slurry. This has the advantage of avoiding that it may be a long belt-driven delivery system for the transfer of these solids from the liquefaction zone to the grain drying and syrup blending zone. Moreover, the entire distillation waste liquid produced after stripping the product alcohol will need to be separated into dilute distillate waste and wet cake fractions using existing or new separation equipment. The dilute distillate wastewater can partially form backflow that can be combined with the number of cooks to produce a new batch of fermentable mesh. Another advantage of this embodiment is that any remaining fermentable sugar retained in the solids separated from the feedstock slurry can be partially captured and recovered through this backwash. Alternatively, the microorganisms contained in the solid stream can be redispersed in the aqueous stream and this combined stream distils any product alcohol content remaining from the fermentation. If the microorganism is not viable, the non-viable microorganism can be further separated for use as a nutrient in the propagation process, for example.
본원에 기재된 공정 및 시스템의 일부 구현예에서, 발효 공정의 부산물(또는 공-생성물)은 추가로 가공될 수 있으며, 예를 들면, 용해되지 않은 고체는 가공되어 DDGS를 발생시킬 수 있다. 미생물에 대한 억제 영향을 가질 수 있는 지방산 에스테르와 같은 다른 부산물은 발효 브로쓰 및/또는 부산물 스트림으로부터 회수되어 생성물 알코올의 수율을 증가시킬 수 있다. 지방산 에스테르 또는 다른 지질의 회수는 부산물 스트림으로부터 지방산 에스테르를 추출하기 위한 용매를 사용하여 달성할 수 있다. 일부 구현예에서, 수개의 부산물 스트림을 합할 수 있으며 지방산 에스테르는 합해진 스트림으로부터 회수할 수 있다.In some embodiments of the processes and systems described herein, the by-product (or co-product) of the fermentation process can be further processed, for example, the undissolved solids can be processed to generate DDGS. Other by-products, such as fatty acid esters, which may have an inhibitory effect on microorganisms, may be recovered from the fermentation broth and / or the by-product stream to increase the yield of product alcohol. Recovery of fatty acid esters or other lipids can be accomplished using a solvent to extract the fatty acid esters from the by-product stream. In some embodiments, several byproduct streams can be combined and fatty acid esters can be recovered from the combined stream.
지질(예: 지방산 에스테르)의 용매 추출의 구현예에서, 고체는 전체 증류폐액으로부터 분리될 수 있는데("분리된 고체"), 그 이유는 이러한 스트림이 다량의 지방산 에스테르를 함유할 수 있기 때문이다. 이러한 분리된 고체는 이후에 추출기로 공급되고 용매로 세척될 수 있다. 일부 구현예에서, 분리된 고체는 적어도 2회 이상 세척할 수 있다. 세척 후에, 미셀라(miscella)로 공지된, 지질 및 용매의 수득되는 혼합물은 용매로부터 추출된 지질의 분리를 위해 수집될 수 있다. 예를 들면, 지질 및 용매의 수득되는 혼합물은 추가의 가공을 위해 분리기 또는 추출기로 수행할 수 있다. 추출 공정 동안에, 용매는 지질을 용액내로 추출할 뿐만 아니라 미립자("미세물")을 수집하기도 한다. 이러한 미세물은 일반적으로 미셀라 속의 바람직하지 않은 불순물이며, 일 구현예에서, 미셀라는 분리기 또는 추출기로부터 배출되고 미셀라로부터 미세물을 분리하거나 스크러빙하는 분리 장치로 수행될 수 있다.In embodiments of solvent extraction of lipids (e.g., fatty acid esters), solids can be separated from the total distillation waste liquid ("isolated solids") because such streams can contain large amounts of fatty acid esters . This separated solid can then be fed to the extractor and washed with solvent. In some embodiments, the separated solids can be washed at least two times. After washing, the resulting mixture of lipid and solvent, known as miscella, may be collected for the separation of the lipids extracted from the solvent. For example, the resulting mixture of lipid and solvent can be carried out with a separator or extractor for further processing. During the extraction process, the solvent not only extracts lipids into the solution but also collects particulates ("fine water"). These microfilters are generally undesirable impurities in the genus Micas, and in one embodiment, may be carried out with a separator that separates or scrubs fine material from the micellar, which is discharged from a separator or extractor called micelles.
미셀라 중에 포함된 지질 및 용매를 분리하기 위하여, 미셀라는 증류 단계에 적용할 수 있다. 이 단계에서, 미셀라는, 예를 들면, 미셀라를 용매의 증발을 유발하도록 충분히 높지만 추출된 지질에 부정적으로 영향을 미치거나 증발시키도록 충분히 높지 않은 온도로 가열하는 증발기를 통해 가공할 수 있다. 용매가 증발됨에 따라, 이는, 예를 들면, 응축기 속에 수집하고 미래 사용을 위해 재순환시킬 수 있다. 미셀라로부터 용매를 분리하면, 물, 지방산 에스테르(예를 들면, 지방산 이소부틸 에스테르), 지방산, 및 트리글리세라이드를 분리하도록 추가로 가공될 수 있는 조악한 지질의 원료를 생성시킨다. 트리글리세라이드를 회수하기 위한 용매계 추출 시스템은 미국 특허공개공보 제2010/0092603호에 기재되어 있으며, 이의 전체 내용은 본원에 참조로 포함되어 있다.In order to separate lipids and solvents contained in the micelles, it can be applied to a distillation step called micelles. At this stage, the micelles, e. G., Micelles, can be processed through an evaporator heated to a temperature sufficiently high to cause evaporation of the solvent but not high enough to adversely affect or evaporate the extracted lipids. As the solvent evaporates, it can be collected, for example, in a condenser and recycled for future use. Separation of the solvent from the micelle produces a crude lipid source which can be further processed to separate water, fatty acid esters (e.g., fatty acid isobutyl esters), fatty acids, and triglycerides. A solvent system extraction system for recovering triglyceride is described in U.S. Patent Publication No. 2010/0092603, the entire contents of which are incorporated herein by reference.
지질을 추출한 후에, 고체를 추출제로부터 운반하고 스트리핑 장치(예: 용매제거기)로 처리하여 잔류 용매를 제거할 수 있다. 잔류 용매의 제거는 공정 경제학에 중요할 수 있다. 일부 구현예에서, 고체는 진공 기밀 환경에서 용매제거기로 운반하여 고체로부터 일시적으로 증발될 수 있는 용매를 보존하고 수집할 수 있다. 고체가 용매제거기로 공급됨에 따라, 고체는 가열되어 잔류 용매를 증발시키고 제거할 수 있다. 고체를 가열하기 위하여, 용매제거기는 하나 이상의 트레이 위에 고체를 분배하기 위한 메카니즘을 포함할 수 있으며, 고체는 가열된 공기 또는 증기와의 직접 접촉을 통한 것과 같이 직접적으로 또는 고체를 운반하는 트레이를 가열하는 것과 같이 간접적으로 가열할 수 있다. 하나의 트레이로부터 또 다른 것으로 고체를 이동시키는 것을 용이하게 하기 위하여, 고체를 운반하는 트레이는, 고체가 하나의 트레이에서 다음 트레이로 통과하도록 하는 개구(opening)를 포함할 수 있다. 용매 제거기로부터, 고체는 임의로 혼합기로 운반될 수 있는데, 여기서 고체는 건조기로 운반되기 전에 다른 부산물과 혼합된다. 일부 구현예에서, 고체는 용매 제거기로 수행되고 고체는 증기와 접촉된다. 일부 구현예에서, 용매제거기에서 증기 및 고체의 유동은 역류일 수 있다. 일부 구현예에서, 용매제거기를 빠져나오는 증기는 응축될 수 있으며, 미셀라와 임의로 혼합될 수 있으며, 이후에 물이 풍부한 상을 형성하는 데칸터로 공급될 수 있다. 데칸터를 빠져나오는 이러한 물이 풍부한 상은 증류 컬럼으로 공급될 수 있으며, 여기서 용매는 물이 풍부한 스트림으로부터 제거된다. 일부 구현예에서, 용매-고갈된 물이 풍부한 스트림은 증류 컬럼의 하부로 배출될 수 있고 발효 공정으로 재순환될 수 있으며, 예를 들면, 이를 사용하여 공급원료를 가공할 수 있다. 일부 구현예에서, 증류 컬럼의 오버헤드 및 하부 생성물은 발효 공정으로 재순환시킬 수 있다. 예를 들면, 지질이 풍부한 하부는 가수분해기의 공급물에 가할 수 있다. 오버헤드는, 예를 들면, 응축될 수 있으며 용매가 풍부한 스트림 및 물이 풍부한 상을 형성하는 데칸터로 공급될 수 있다. 이러한 데칸터를 빠져나오는 용매가 풍부한 스트림은 추출기에 대한 용매 공급물로서 임의로 사용되며, 이러한 데칸터를 빠져나오는 물이 풍부한 상은 스트리핑 컬럼으로 공급되어 물로부터 용매를 스트리핑할 수 있다.After extracting the lipids, the solids can be carried from the extractant and treated with a stripping device (e.g., solvent remover) to remove residual solvent. Removal of residual solvent may be important to process economics. In some embodiments, the solids can be conveyed to a solvent remover in a vacuum-tight environment to preserve and collect solvents that can be temporarily evaporated from the solids. As the solids are fed to the solvent remover, the solids can be heated to evaporate and remove the residual solvent. In order to heat the solids, the solvent remover may include a mechanism for dispensing the solids over one or more trays, the solids may be heated either directly, such as through direct contact with heated air or steam, Or indirectly, such as by heating. To facilitate the transfer of solids from one tray to another, the trays carrying the solids may include openings through which solids pass from one tray to the next. From the solvent remover, the solids can optionally be conveyed to a mixer, where the solids are mixed with other by-products before being conveyed to the dryer. In some embodiments, the solids are conducted with a solvent remover and the solids are contacted with the vapor. In some embodiments, the flow of vapor and solids in the solvent remover may be countercurrent. In some embodiments, the vapors exiting the solvent remover can be condensed, optionally mixed with the micelles, and then fed to a decanter to form a water-rich phase. Such a water-rich phase exiting the decanter can be fed into the distillation column, where the solvent is removed from the water-rich stream. In some embodiments, the solvent-depleted water-rich stream can be discharged to the bottom of the distillation column and recycled to the fermentation process, for example, to use it to process the feedstock. In some embodiments, the overhead and bottom products of the distillation column can be recycled to the fermentation process. For example, a lipid-rich bottom can be added to the feed of the hydrolyzate. The overhead can be fed, for example, to a decanter that can be condensed and form a solvent-rich stream and a water-rich phase. A solvent rich stream exiting the decanter is optionally used as the solvent feed to the extractor and a water-rich phase exiting the decanter is fed into the stripping column to strip the solvent from the water.
일부 구현예에서, 부산물 또는 공-생성물은 발효 공정에서 사용된 공급원료 슬러리로부터 유도될 수 있다. 본원에 기재된 바와 같이, 옥수수가 공급원료로서 사용되는 경우, 옥수수 오일은 발효 전에 공급원료 슬러리로부터 분리될 수 있다. 발효 공정 전에 옥수수 오일을 제거하는 이점은 발효 공정의 말기(예를 들면, 시럽으로부터)에 옥수수 오일 제거와 비교하여 더 많은 옥수수 오일을 회수하는 것, 발효 공정 말기에 옥수수 오일 제거와 비교하여 고품질 및 따라서 더 고가의 오일을 회수하는 것, 공-생성물로서 옥수수 오일을 발생시키는 것, 및 옥수수 오일을 다른 생성물로 전환시키는 것이다.In some embodiments, the by-product or co-product can be derived from the feedstock slurry used in the fermentation process. As described herein, if corn is used as the feedstock, the corn oil may be separated from the feedstock slurry prior to fermentation. The benefits of removing corn oil prior to the fermentation process include recovering more corn oil compared to corn oil removal at the end of the fermentation process (e.g., from syrup), high quality and / Thus, recovering more expensive oil, generating corn oil as co-product, and converting corn oil to other products.
예를 들면, 옥수수 오일은 트리글리세라이드, 디글리세라이드, 모노글리세라이드, 지방산, 피토스테롤, 비타민 E, 카로테노이드(예를 들면, β-카로텐, β-크립토크산틴, 루테인 제아크산틴), 인지질, 및 토코페롤과 같은 항산화제를 포함하기 때문에, 이는 상이한 농도 또는 속도로 다른 공-생성물로 가하여, 수득되는 공-생성물에서 이들 성분의 양을 변화시키는 능력을 생성할 수 있다. 이러한 방식으로, 수득되는 공-생성물의 지방 함량을 조절하여, 예를 들면, 고 지방 생성물과 비교하여 젖소의 필요성에 더 잘 맞을 수 있는 저 지방, 고 단백질 동물 사료를 수득할 수 있다. 고 지방 동물 사료가 바람직할 수 있는 또 다른 구현예에서, 옥수수 오일은 동물 사료의 성분으로서 사용될 수 있는 데, 그 이유는 이의 고 트리글리세라이드 함량이 대사가능한 에너지의 공급원을 제공할 수 있기 때문이다. 또한, 옥수수 오일 속의 천연 항산화제는 비타민 E의 공급원을 제공할 뿐만 아니라 악취의 발달도 감소시킨다.For example, corn oil can be selected from the group consisting of triglycerides, diglycerides, monoglycerides, fatty acids, phytosterols, vitamin E, carotenoids (e.g., beta -carotene, beta -cryptotaxanthin, Because it contains antioxidants such as tocopherol, it can be added to the other co-product at different concentrations or rates to create the ability to change the amount of these components in the resulting co-product. In this way, it is possible to control the fat content of the resulting co-product to obtain a low fat, high protein animal feed which can, for example, be better suited to the needs of the cow compared to the high fat product. In another embodiment where high fat animal feed may be desirable, corn oil can be used as a component of animal feed because its high triglyceride content can provide a source of metabolizable energy. In addition, natural antioxidants in corn oil not only provide a source of vitamin E but also reduce the development of odors.
공급원료로부터 분리된 옥수수 오일은 추가로 가공하여 소비자 사용을 위한 정제된 옥수수 오일 또는 식용 오일을 생성할 수 있다. 예를 들면, 조악한 옥수수 오일은 추가로 가공하여 검을 제거(degumming)하여 포스파타이드를 제거하고, 알칼리 정제하여 유리 지방산을 중화시키고, 색상 체 및 미량 요소를 제거하기 위해 탈색하고, 왁스를 제거하여 월동준비(winterizing)시키고, 탈취시킴으로써 정제된 옥수수 오일을 생성할 수 있다[참조: 예를 들면, 옥수수 오일, 5th Edition, Corn Refiners Association, Washington, D.C., 2006]. 정제된 옥수수 오일은, 예를 들면, 식품 제품을 생산하기 위한 식품 제조업자가 사용할 수 있다. 알칼리 정제에 의해 제거된 유리 지방산은 비누원료로서 사용될 수 있으며 월동준비 단계로부터 회수된 왁스는 동물 사료에서 이용될 수 있다.The corn oil separated from the feedstock may be further processed to produce refined corn oil or edible oil for consumer use. For example, crude corn oil is further processed to degumming the gum to remove phosphatide, alkali refining to neutralize the free fatty acids, decolorizing to remove hues and trace elements, removing the wax (Eg, corn oil, 5 th Edition, Corn Refiners Association, Washington, DC, 2006). The term " corn oil " Purified corn oil can be used, for example, by food manufacturers to produce food products. Free fatty acids removed by alkali refining can be used as soap raw materials and the wax recovered from the winter preparation step can be used in animal feed.
옥수수 오일은 수지, 플라스틱, 중합체, 윤활제, 페인트, 니스(varnish), 인쇄 잉크, 비누, 및 직물의 제조에 사용될 수 있으며; 약물 제형의 성분으로서 약제 산업에서 이용될 수도 있다. 옥수수 오일은 또한 바이오디젤 또는 재생가능한 디젤용 공급원료로서 사용될 수 있다.Corn oil can be used in the manufacture of resins, plastics, polymers, lubricants, paints, varnishes, printing inks, soaps, and fabrics; It may also be used in the pharmaceutical industry as a component of drug formulations. Corn oil can also be used as a feedstock for biodiesel or renewable diesel.
일부 구현예에서, 옥수수 오일과 같은 오일은 추출성 발효를 위한 추출제의 생성을 위한 공급원료로서 사용될 수 있다. 예를 들면, 생물량으로부터 유도된 오일은 발효 브로쓰로부터 부탄올과 같은 생성물 알코올을 제거하기 위해 이용가능한 추출제로 전환시킬 수 있다. 오일 속의 글리세라이드는 발효 생성물 추출제로서 사용될 수 있는, 반응 생성물, 예를 들면, 지방산, 지방 알코올, 지방 아미드, 지방산 알킬 에스테르, 지방산 글리콜 에스테르, 및 하이드록실화된 트리글리세라이드, 또는 이의 혼합물로 화학적으로 또는 효소적으로 전환될 수 있다. 예로서 옥수수 오일을 사용하는 경우, 옥수수 오일 트리글리세라이드는 수산화암모니아 또는 수산화나트륨과 같은 염기와 반응하여 지방 아미드, 지방산, 및 글리세롤을 수득할 수 있다. 이들 지방 아미드, 지방산, 또는 이들의 혼합물은 추출제로서 사용할 수 있다. 일부 구현예에서, 옥수수 오일과 같은 식물 오일은 리파제와 같은 효소로 가수분해되어 지방산(예를 들면, 옥수수 오일 지방산)을 형성할 수 있다. 생물량으로부터 추출제를 유도하는 방법은 미국 특허공개공보 제2011/0312043호, 미국 특허공개공보 제2011/0312044호, 및 PCT 국제공개공보 제WO 2011/159998호에 기재되어 있다. 일부 구현예에서, 추출제는 동물 사료의 성분으로서 전부 또는 부분적으로 사용될 수 있거나, 이는 바이오디젤 또는 재생가능한 디젤용 공급원료로서 사용될 수 있다.In some embodiments, an oil such as corn oil may be used as a feedstock for the production of an extractant for extractive fermentation. For example, the oil derived from the biomass may be converted to an extractant available for removal of the product alcohol, such as butanol, from the fermentation broth. The glycerides in the oil can be chemically modified with reaction products, such as fatty acids, fatty alcohols, fatty amides, fatty acid alkyl esters, fatty acid glycol esters, and hydroxylated triglycerides, or mixtures thereof, which can be used as fermentation product extractants ≪ / RTI > or enzymatically. When corn oil is used as an example, corn oil triglyceride can react with bases such as ammonia hydroxide or sodium hydroxide to obtain fatty amides, fatty acids, and glycerol. These fatty amides, fatty acids, or a mixture thereof can be used as an extracting agent. In some embodiments, vegetable oils such as corn oil may be hydrolyzed with an enzyme such as lipase to form fatty acids (e.g., corn oil fatty acid). Methods for deriving an extractant from biomass are described in U.S. Patent Application Publication No. 2011/0312043, U.S. Patent Application Publication No. 2011/0312044, and PCT International Publication No. WO 2011/159998. In some embodiments, the extractant may be used wholly or in part as a component of an animal feed, or it may be used as a feedstock for biodiesel or renewable diesel.
일부 구현예에서, 옥수수 오일은 또한 바이오디젤 또는 재생가능한 디젤로서 사용될 수 있다. 일부 구현예에서, 오일 또는 오일들의 조합물은 바이오디젤 또는 재생가능한 디젤용 공급원료로서 사용될 수 있다. 오일의 예는 카놀라, 캐스터, 옥수수, 호호바(jojoba), 카란자, 마후아, 아마인, 대두, 야자, 땅콩, 평지씨, 벼, 홍화, 및 해바라기 오일을 포함한다. 바이오디젤은 메탄올, 에탄올 및 부탄올과 같은 알코올을 사용한 식물 오일의 에스테르 전환반응 또는 에스테르화 반응으로부터 유도될 수 있다. 예를 들면, 바이오디젤은 산-촉매화된, 알칼리-촉매화된, 또는 효소-촉매화된 에스테르 전환반응 또는 에스테르화 반응(예를 들면, 식물 오일-유도된 트리글리세라이드의 에스테르 전환반응 또는 식물 오일-유도된 유리 지방산의 에스테르화 반응)에 의해 생성될 수 있다. 황산, 염산 및 인산과 같은 무기 산; 톨루엔설폰산 및 나프탈렌설폰산과 같은 유기 산; Amberlyst® 설폰화된 폴리스티렌 수지와 같은 고체 산; 또는 제올라이트는 산-촉매화된 에스테르 전환반응 또는 에스테르화 반응을 위한 촉매로서 사용될 수 있다. 수산화칼륨, 칼륨 메톡사이드, 수산화나트륨 또는 메톡사이드나트륨 또는 수산화칼슘과 같은 염기를 알칼리-촉매화된 에스테르 전환반응 또는 에스테르화 반응을 위한 촉매로서 사용할 수 있다. 일부 구현예에서, 바이오디젤은, 통합된 공정, 예를 들면, 유리 지방산의 산-촉매화된 에스테르화 및 이후의 트리글리세라이드의 염기-촉매화된 에스테르 전환반응에 의해 제조될 수 있다.In some embodiments, corn oil may also be used as biodiesel or as a renewable diesel. In some embodiments, a combination of oils or oils may be used as the feedstock for biodiesel or renewable diesel. Examples of oils include canola, caster, corn, jojoba, carranza, mahayana, flaxseed, soybean, palm, peanut, rapeseed, rice, safflower, and sunflower oil. Biodiesel can be derived from the esterification or esterification of plant oils using alcohols such as methanol, ethanol and butanol. For example, biodiesel can be used as an acid-catalyzed, alkali-catalyzed, or enzyme-catalyzed ester conversion reaction or esterification reaction (e.g., ester conversion reaction of plant oil-derived triglycerides, An esterification reaction of an oil-derived free fatty acid). Inorganic acids such as sulfuric acid, hydrochloric acid and phosphoric acid; Organic acids such as toluene sulfonic acid and naphthalene sulfonic acid; Solid acids such as Amberlyst ® sulfonated polystyrene resins; Or zeolites can be used as catalysts for acid-catalyzed ester conversion reactions or esterification reactions. A base such as potassium hydroxide, potassium methoxide, sodium hydroxide or sodium methoxide or calcium hydroxide can be used as a catalyst for the alkali-catalyzed ester conversion reaction or esterification reaction. In some embodiments, biodiesel can be prepared by an integrated process, such as acid-catalyzed esterification of free fatty acids and subsequent base-catalyzed ester conversion of triglycerides.
리파제 또는 에스테라제와 같은 효소를 사용하여 에스테르 전환반응 또는 에테르화 반응을 촉매화할 수 있다. 리파제는 세균 또는 진균, 예를 들면, 슈도모나 스( Pseudomonas ), 테르모마이세스 ( Thermomyces ), 부르크홀데리아 ( Burkholderia ), 칸디다( Candida ), 및 리조무코르(Rhizomucor)로부터 유도될 수 있다. 일부 구현예에서, 리파제는 슈도모나스 플루오레센스 ( Pseudomonas fluorescens ), 슈도모나스 세파시아( Pseudomonas cepacia ), 리조무코르 미에헤이 ( Rhizomucor miehei ), 부르크홀데리아 세파시아 ( Burkholderia cepacia ), 테르모마이세스 라누기노사( Thermomyces lanuginosa ), 또는 칸디다 안트악티카( Candida antarctica)로부터 유도될 수 있다. 일부 구현예에서, 효소는 가용성 또는 불용성 지지체 위에서 부동화될 수 있다. 효소의 부동화는 1) 공유 지지체, 물리적 흡착, 정전 결합 또는 친화성 결합을 통한 다공성 또는 비-다공성 담체 지지체로의 효소의 결합; 2) 이작용성 또는 다작용성 시약과의 가교결합; 3) 겔 매트릭스, 중합체, 유화액, 또는 막의 일부 형태에서의 포획; 및 4) 이러한 방법들의 임의의 조합을 포함하는 각종 기술을 이용하여 수행할 수 있다. 일부 구현예에서, 리파제는, 예를 들면, 아크릴 수지, 실리카, 또는 비이드(예: 폴리메타그릴레이트 비이드)를 부동화시킬 수 있다. 일부 구현예에서, 리파제는 가용성일 수 있다.Enzymes such as lipase or esterase can be used to catalyze ester or etherification reactions. Lipases may be derived from bacteria or fungi, for example, Pseudomonas Monastir (Pseudomonas), Terre Mo My process (Thermomyces), Burkholderia (Burkholderia), Candida (Candida), and Lee jomu cor (Rhizomucor). In some embodiments, the lipase is Pseudomonas fluorescein sense (Pseudomonas fluorescens , Pseudomonas sp. cepacia ), Rizomukor Hey, Mie (Rhizomucor miehei ), Burkholderia Sefar Asia (Burkholderia cepacia), Terminus all my process called leakage labor (Thermomyces lanuginosa), or it may be derived from Candida not teuak urticae (Candida antarctica). In some embodiments, the enzyme can be immobilized on a soluble or insoluble support. Immobilization of the enzyme may be accomplished by 1) binding of the enzyme to a porous or non-porous carrier support via covalent support, physical adsorption, electrostatic binding or affinity binding; 2) cross-linking with difunctional or multifunctional reagents; 3) capture in gel matrix, polymer, emulsion, or some form of membrane; And 4) using any of a variety of techniques including any combination of these methods. In some embodiments, the lipase can passivate, for example, acrylic resin, silica, or beads (e.g., polymethacrylate beads). In some embodiments, the lipase may be soluble.
일부 구현예에서, 본원에 기재된 바이오디젤은 다음의 지방산 알킬 에스테르(FAAE): 지방산 메틸 에스테르(FAME), 지방산 에틸 에스테르(FAEE), 및 지방산 부틸 에스테르(FABE) 중 하나 이상을 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 본원에 기재된 바이오디젤은 다음: 미리스테이트, 팔미테이트, 스테아레이트, 올레에이트, 리놀레에이트, 리놀레네이트, 아라키데이트, 및 베헤네이트 중 하나 이상을 포함할 수 있다.In some embodiments, the biodiesel described herein may comprise one or more of the following fatty acid alkyl esters (FAAEs): fatty acid methyl esters (FAME), fatty acid ethyl esters (FAEE), and fatty acid butyl esters (FABE). In some embodiments, the biodiesel described herein may comprise one or more of the following: pre-stearate, palmitate, stearate, oleate, linoleate, linolenate, arachidate, and behenate.
일부 구현예에서, 발효 공정으로부터의 오일은 비수성 스트림을 형성하는 증발에 의해 회수될 수 있다. 이러한 비수성 스트림은 지방산 에스테르 및 지방산을 포함할 수 있으며 이러한 스트림은 가수분해기로 수행하여 생성물 알코올 및 지방산을 회수할 수 있다. 일부 구현예에서, 이러한 스트림은 바이오디젤 생성을 위한 공급원료로서 사용될 수 있다.In some embodiments, the oil from the fermentation process may be recovered by evaporation to form a non-aqueous stream. Such non-aqueous streams may include fatty acid esters and fatty acids, which may be carried out with a hydrolyzate to recover product alcohols and fatty acids. In some embodiments, such a stream may be used as a feedstock for biodiesel production.
일부 구현예에서, 본원에 기재된 바이오디젤은 미국 시험 및 재료 협회(ASTM) D6751의 명세를 충족한다. 일부 구현예에서, 본원에 기재된 바이오디젤은 유럽 표준 EN 14214의 명세를 충족한다.In some embodiments, the biodiesel described herein meets the specifications of the American Society for Testing and Materials (ASTM) D6751. In some embodiments, the biodiesel described herein meets the specification of European standard EN 14214.
일부 구현예에서, 바이오디젤을 생성하기 위한 반응기 구조는, 예를 들면, 배취식-교반된 탱크 반응기, 연속식-교반된 탱크 반응기, 팩킹된 베드 반응기, 유체 베드 반응기, 확장형 베드 반응기, 및 재순환 막 반응기를 포함한다.In some embodiments, the reactor structure for producing biodiesel includes, for example, a batch-stirred tank reactor, a continuous-stirred tank reactor, a packed bed reactor, a fluid bed reactor, an expandable bed reactor, Membrane reactor.
일부 구현예에서, 조성물은 적어도 2% 바이오디젤, 적어도 5% 바이오디젤, 적어도 10% 바이오디젤, 적어도 20% 바이오디젤, 적어도 30% 바이오디젤, 적어도 40% 바이오디젤, 적어도 50% 바이오디젤, 적어도 60% 바이오디젤, 적어도 70% 바이오디젤, 적어도 80% 바이오디젤, 적어도 90% 바이오디젤, 또는 100% 바이오디젤을 포함할 수 있다.In some embodiments, the composition comprises at least 2% biodiesel, at least 5% biodiesel, at least 10% biodiesel, at least 20% biodiesel, at least 30% biodiesel, at least 40% biodiesel, at least 50% 60% biodiesel, at least 70% biodiesel, at least 80% biodiesel, at least 90% biodiesel, or 100% biodiesel.
일부 구현예에서, 본원에 기재된 바이오디젤은 석유계 디젤 연료와 배합되어 바이오디젤 배합물을 형성할 수 있다. 일부 구현예에서, 바이오디젤 배합물은 적어도 2용적% 바이오디젤, 적어도 3용적% 바이오디젤, 적어도 4용적% 바이오디젤, 적어도 5용적% 바이오디젤, 적어도 6용적% 바이오디젤, 적어도 7용적% 바이오디젤, 적어도 8용적% 바이오디젤, 적어도 9용적% 바이오디젤, 적어도 10용적% 바이오디젤, 적어도 11용적% 바이오디젤, 적어도 12용적% 바이오디젤, 적어도 13용적% 바이오디젤, 적어도 14용적% 바이오디젤, 적어도 15용적% 바이오디젤, 적어도 16용적% 바이오디젤, 적어도 17용적% 바이오디젤, 적어도 18용적% 바이오디젤, 적어도 19용적% 바이오디젤, 또는 적어도 20용적% 바이오디젤을 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 바이오디젤 배합물은 약 20용적% 이하의 바이오디젤을 포함할 수 있다.In some embodiments, the biodiesel described herein can be combined with a petroleum-based diesel fuel to form a biodiesel blend. In some embodiments, the biodiesel blend comprises at least 2% by volume biodiesel, at least 3% by volume biodiesel, at least 4% by volume biodiesel, at least 5% by volume biodiesel, at least 6% by volume biodiesel, at least 7% by volume biodiesel At least 8% by volume biodiesel, at least 9% by volume biodiesel, at least 10% by volume biodiesel, at least 11% by volume biodiesel, at least 12% by volume biodiesel, at least 13% by volume biodiesel, at least 14% by volume biodiesel, At least 15% by volume biodiesel, at least 16% by volume biodiesel, at least 17% by volume biodiesel, at least 18% by volume biodiesel, at least 19% by volume biodiesel, or at least 20% by volume biodiesel. In some embodiments, the biodiesel blend may comprise up to about 20% by volume biodiesel.
바이오디젤 생성물의 부산물은 글리세롤이다. 또한, 글리세롤은 또한 발효 공정의 오일 및 부산물로부터 추출제의 생성의 부산물일 수 있다. 바이오디젤용 공급원료는 COFA와 같은 지방산을 글리세롤과 반응시킴으로써 생성할 수 있다. 반응은 황산과 같은 무기 강산 또는 AmberlystTM 중합체성 촉매 및 이온 교환 수지와 같은 고체 산 촉매에 의해 촉매화될 수 있다. 높은 전환률은 반응 물질로부터 물을 회수함으로써 수득할 수 있다. 반응 생성물은 모노글리세라이드, 디글리세라이드, 및 트리글리세라이드를 반응물의 비와 반응 정도로 측정된 비로 포함할 수 있다. 글리세라이드 혼합물은 바이오디젤을 제조하기 위해 일반적으로 사용된 트리글리세라이드 공급물 대신에 사용될 수 있다. 일부 구현예에서, 글리세라이드는 계면활성제로서 또는 바이오디젤용 공급원료로서 사용할 수 있다.The by-product of the biodiesel product is glycerol. Glycerol may also be a by-product of the production of extractants from oils and by-products of the fermentation process. Feedstocks for biodiesel can be produced by reacting fatty acids such as COFA with glycerol. The reaction can be catalyzed by a solid acid catalyst such as an inorganic strong acid or Amberlyst TM polymeric catalyst and an ion exchange resin such as sulfuric acid. A high conversion rate can be obtained by recovering water from the reactants. The reaction product may include monoglyceride, diglyceride, and triglyceride as a ratio measured by the ratio of the reactants to the reactants. The glyceride mixture can be used in place of the triglyceride feeds commonly used to make biodiesel. In some embodiments, the glyceride can be used as a surfactant or as a feedstock for biodiesel.
일부 구현예에서, 고체는 공급원료 슬러리로부터 분리할 수 있으며 트리글리세라이드 및 지방산을 포함할 수 있다. 이러한 고체는 원심분리로부터 또는 건조 후에 배출물로서 회수된, 동물 공급물로서 사용될 수 있다. 고체는 반추동물(예: 젖소)용 사료로서 특히 적합할 수 있는 데, 그 이유는 이용가능한 라이신 및 바이패스 또는 루멘 비분해성 단백질의 고함량 때문이다. 예를 들면, 이들 고체는 고 단백질, 저 지방 사료에서 특히 가치있을 수 있다. 일부 구현예에서, 이들 고체는 염기로서 사용될 수 있으며, 즉 시럽과 같은 기타 부산물을 고체에 가하여 동물 공급물로서 사용될 수 있는 생성물을 형성할 수 있다. 일부 구현예에서, 상이한 양의 다른 부산물을 고체에 가하여 특정한 동물 종(예를 들면, 젖소, 육우, 가금류, 돼지, 가축, 말, 양식물, 및 가정용 애완동물)의 필요성을 충족하기 위한 수득되는 생성물의 특성을 조절할 수 있다.In some embodiments, the solids can be separated from the feedstock slurry and can include triglycerides and fatty acids. Such solids can be used as an animal feed, recovered as an effluent from centrifugation or after drying. Solids may be particularly suitable as rats for ruminants (e.g. dairy cows) because of the high content of lysine and bypass or lumen nonsoluble protein available. For example, these solids can be particularly valuable in high protein, low fat feeds. In some embodiments, these solids can be used as bases, i.e., other by-products such as syrups can be added to the solid to form a product that can be used as an animal feed. In some embodiments, different amounts of different byproducts are added to the solid to provide the solid (such as cows, beef cattle, poultry, pigs, livestock, horses, aquaculture, and household pets) The properties of the product can be controlled.
저 지방 동물 사료가 바람직한 일부 구현예에서, 오일은 발효 전에 공급원료로부터 제거할 수 있다. 옥수수 오일을 제거함으로써, 생성된 DDGS는 저 지방, 고 단백질 함량을 가질 수 있다. 옥수수 오일이 제거되지 않은 경우, 습윤 케이크 중에 존재하는 오일은 건조 공정에 의해 산화될 수 있다. 이러한 산화는 흑화 효과(darkening effect)를 유발하며 어두운 색상의 DDGS를 생성한다. 오일이 발효 전에 공급원료로부터 제거되는 경우, 생성된 DDGS는 색상이 더 밝을 수 있으며 이러한 밝은 색상의 DDGS는 일부 동물 사료 제품에 바람직할 수 있다.In some embodiments where low fat animal feed is desired, the oil may be removed from the feedstock prior to fermentation. By removing the corn oil, the resulting DDGS can have low fat, high protein content. If the corn oil is not removed, the oil present in the wet cake may be oxidized by a drying process. This oxidation leads to a darkening effect and produces a darker color of DDGS. If the oil is removed from the feedstock prior to fermentation, the resulting DDGS may be brighter in color and this brightly colored DDGS may be desirable for some animal feed products.
전체 증류폐액으로부터 분리된 고체의 조성물은, 예를 들면, 조악한 단백질, 지방산, 및 지방산 에스테르를 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 이러한 조성물은, 예를 들면, 고 단백질(예를 들면, 고 라이신), 저 지방, 및 고 섬유 함량이 바람직한 동물 사료로서, 습윤 또는 건조 상태로 사용될 수 있다. 일부 구현예에서, 예를 들면, 고 지방, 저 섬유 동물 사료가 바람직한 경우 또 다른 부산물 스트림으로부터의, 지방을 당해 조성물에 가할 수 있다. 일부 구현예에서, 이러한 고 지방, 저 섬유 동물 사료를 돼지 또는 가금류에 사용할 수 있다. 일부 구현예에서, CDS의 비-수성 조성물은, 예를 들면, 단백질, 지방산, 및 지방산 에스테르 및 또한 기타 용해된 및 현탁된 고체, 예를 들면, 염 및 탄수화물을 포함할 수 있다. 이러한 CDS 조성물은, 예를 들면, 습윤 또는 건조 상태의 동물 사료로서 사용될 수 있으며, 여기서 고 단백질, 저 지방, 고 무기 염 사료 성분이 바람직하다. 일부 구현예에서, 이러한 조성물은 젖소 할당량의 성분으로서 사용될 수 있다.Solid compositions separated from the whole distillation waste liquid may contain, for example, crude proteins, fatty acids, and fatty acid esters. In some embodiments, such compositions may be used in wet or dry form, for example, as animal feeds where high protein (e.g., high lysine), low fat, and high fiber content are desirable. In some embodiments, for example, fat can be added to the composition from another byproduct stream if a high fat, low fiber animal feed is desired. In some embodiments, such high fat, low fiber animal feed can be used in pigs or poultry. In some embodiments, non-aqueous compositions of CDS can include, for example, proteins, fatty acids, and fatty acid esters, and also other dissolved and suspended solids, such as salts and carbohydrates. Such a CDS composition can be used, for example, as an animal feed in a wet or dry state, wherein high protein, low fat, high inorganic salt feed ingredients are preferred. In some embodiments, such a composition may be used as a component of a cow allocation.
일부 구현예에서, 발효 공정을 통해 생성물 알코올의 생성에 의해 발생된 하나 이상의 스트림을 합하여 바이오디젤과 같은 연료 공급원으로서 사용될 수 있는 적어도 약 90% 지방산을 포함하는 조성물을 생성할 수 있다.In some embodiments, one or more streams generated by the production of the product alcohol through a fermentation process can be combined to produce a composition comprising at least about 90% fatty acid that can be used as a fuel source, such as biodiesel.
발효 공정을 통해 생성물 알코올의 생성에 의해 발생된 각종 스트림을 다수의 공-생성물 조성물을 발생시키는 많은 방법으로 합할 수 있다. 예를 들면, 매쉬로부터의 조악한 옥수수를 추출제로서 이용될 지방산을 발생시키고 지질을 증발기로 추출하는데 사용하는 경우, 이후에 나머지 스트림은 합하고 가공하여 조악한 단백질, 조악한 지방, 트리클리세라이드, 지방산, 및 지방산 에스테르를 포함하는 공-생성물 조성물을 생성할 수 있다. 또 다른 예에서, 옥수수 오일과 같은 오일이 공급원료 슬러리로부터 제거되는 경우, 오일은 증류기 곡물에 가하여, 예를 들면, 동물 사료 생성물을 생성할 수 있다.Various streams generated by the production of the product alcohol through a fermentation process can be combined in a number of ways to generate multiple co-product compositions. For example, if the crude corn from the mash is used to extract fatty acids to be used as extractants and to extract lipids with an evaporator, then the remaining streams are combined and processed to produce crude proteins, crude fat, trichlcercides, To produce a co-product composition comprising a fatty acid ester. In another example, when an oil, such as corn oil, is removed from the feedstock slurry, the oil may be added to the distiller grains to produce, for example, animal feed products.
일부 구현예에서, 본원에 기재된 공정 및 시스템의 조성물은 적어도 약 20 내지 35중량% 조악한 단백질, 적어도 약 1 내지 20중량% 조악한 지방, 적어도 약 0 내지 5중량% 트리글리세라이드, 적어도 약 4 내지 10중량% 지방산, 및 적어도 약 2 내지 6중량% 지방산 에스테르를 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 조성물은 약 25중량% 조악한 단백질, 약 10중량% 조악한 지방, 약 0.5중량% 트리글리세라이드, 약 6중량% 지방산, 및 약 4중량% 지방산 에스테르를 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 조성물은 적어도 약 25 내지 31중량% 조악한 단백질, 적어도 약 6 내지 10중량% 조악한 지방, 적어도 약 4 내지 8중량% 트리글리세라이드, 적어도 약 0 내지 2중량% 지방산, 및 적어도 약 1 내지 3중량% 지방산 에스테르일 수 있다. 일부 구현예에서, 조성물은 약 28중량% 조악한 단백질, 약 8중량% 조악한 지방, 약 6중량% 트리글리세라이드, 약 0.7중량% 지방산, 및 약 1중량% 지방산 에스테르를 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 지방산 에스테르는 지방산 메틸 에스테르, 지방산 에틸 에스테르, 지방산 부틸 에스테르, 또는 지방산 이소부틸 에스테르일 수 있다.In some embodiments, the compositions of the processes and systems described herein comprise at least about 20-35 wt% crude protein, at least about 1-20 wt% crude fat, at least about 0-5 wt% triglyceride, at least about 4-10 wt% % Fatty acids, and at least about 2 to 6 wt% fatty acid esters. In some embodiments, the composition may comprise about 25 wt% crude protein, about 10 wt% crude fat, about 0.5 wt% triglyceride, about 6 wt% fatty acid, and about 4 wt% fatty acid ester. In some embodiments, the composition comprises at least about 25 to 31 weight percent crude protein, at least about 6 to 10 weight percent crude fat, at least about 4 to 8 weight percent triglyceride, at least about 0 to 2 weight percent fatty acid, and at least about 1 To 3% by weight fatty acid esters. In some embodiments, the composition may comprise about 28 wt% crude protein, about 8 wt% crude fat, about 6 wt% triglyceride, about 0.7 wt% fatty acid, and about 1 wt% fatty acid ester. In some embodiments, the fatty acid ester may be a fatty acid methyl ester, a fatty acid ethyl ester, a fatty acid butyl ester, or a fatty acid isobutyl ester.
일부 구현예에서, 공급원료 슬러리로부터 추출된 전체 증류폐엑 및 오일로부터 분리된 고체는 합할 수 있으며 수득되는 조성물은 조악한 단백질, 조악한 지방, 트리글리세라이드, 지방산, 지방산 에스테르, 라이신, 중성 세제 섬유(NDF), 및 산 세제 섬유(ADF)를 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 조성물은 적어도 약 26 내지34중량% 조악한 단백질, 적어도 약 15 내지 25중량% 조악한 지방, 적어도 약 12 내지 20중량% 트리글리세라이드, 적어도 약 1 내지 2중량% 지방산, 적어도 약 2 내지4중량% 지방산 에스테르, 적어도 약 1 내지 2중량% 라이신, 적어도 약 11 내지 23중량% NDF, 및 적어도 약 5 내지 11중량% ADF를 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 조성물은 약 29중량% 조악한 단백질, 약 21중량% 조악한 지방, 약 16중량% 트리글리세라이드, 약 1중량% 지방산, 약 3중량% 지방산 에스테르, 약 1중량% 라이신, 약 17중량% NDF, 및 약 8중량% ADF를 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 지방산 에스테르는 지방산 메틸 에스테르, 지방산 에틸 에스테르, 지방산 부틸 에스테르, 또는 지방산 이소부틸 에스테르일 수 있다. 이러한 조성물의 고 지방, 트리글리세라이드, 및 라이신 함량 및 저 섬유 함량은 돼지 및 가금류용 사료로서 바람직할 수 있다.In some embodiments, the total distillation effluent extracted from the feedstock slurry and the solids separated from the oil may be combined and the resulting composition may contain crude protein, crude fat, triglyceride, fatty acid, fatty acid ester, lysine, neutral detergent fiber (NDF) , And acid detergent fiber (ADF). In some embodiments, the composition comprises at least about 26-34 wt% crude protein, at least about 15-25 wt% crude fat, at least about 12-20 wt% triglyceride, at least about 1-2 wt% fatty acid, 4 wt% fatty acid ester, at least about 1 to 2 wt% lysine, at least about 11 to 23 wt% NDF, and at least about 5 to 11 wt% ADF. In some embodiments, the composition comprises about 29 weight percent crude protein, about 21 weight percent crude fat, about 16 weight percent triglyceride, about 1 weight percent fatty acid, about 3 weight percent fatty acid ester, about 1 weight percent lysine, about 17 weight % NDF, and about 8 wt% ADF. In some embodiments, the fatty acid ester may be a fatty acid methyl ester, a fatty acid ethyl ester, a fatty acid butyl ester, or a fatty acid isobutyl ester. The high fat, triglyceride, and lysine content and low fiber content of such compositions may be desirable as feed for pigs and poultry.
본원에 기재된 바와 같이, 발효 공정을 통한 생성물 알코올의 생성에 의해 발생된 각종 스트림을 각종 방법으로 합하여 조악한 단백질, 조악한 지방, 트리글리세라이드, 지방산, 및 지방산 에스테르를 포함하는 조성물을 생성할 수 있다. 예를 들면, 적어도 약 6% 조악한 지방 및 적어도 약 28% 조악한 단백질을 포함하는 조성물을 젖소 동물용 동물 사료 생성물로서 이용할 수 있다. 적어도 약 6% 조악한 지방 및 적어도 약 26% 조악한 단백질을 포함하는 조성물을 가축사육장 소용 동물 사료 생성물로서 이용할 수 있지만 적어도 약 1% 조악한 지방 및 적어도 약 27% 조악한 단백질을 포함하는 조성물을 월동 소용 동물 사료 생성물로서 이용할 수 있다. 적어도 약 13% 조악한 지방 및 적어도 약 27% 조악한 단백질을 포함하는 조성물을 가금류용 동물 사료 생성물로서 이용할 수 있다. 적어도 약 18% 조악한 지방 및 적어도 약 22% 조악한 단백질을 포함하는 조성물을 단위동물용 동물 사료 생성물로서 이용할 수 있다. 각종 스트림을 특정한 동물 종(예: 가축, 반추동물, 소, 낙농 동물, 돼지, 염소, 양, 가금류, 말, 양식물, 또는 가정용 애완동물, 예를 들면, 개, 고양이, 및 토끼)을 위한 사료 생성물을 맞춤화하기 위한 방법으로 합할 수 있다.As described herein, various streams generated by the production of product alcohols through a fermentation process can be combined in various ways to produce a composition comprising crude protein, crude fat, triglycerides, fatty acids, and fatty acid esters. For example, a composition comprising at least about 6% crude fat and at least about 28% crude protein can be used as an animal feed product for a cow animal. Compositions comprising at least about 6% crude fat and at least about 26% crude protein can be used as animal feed products for livestock husbandry use but contain at least about 1% crude fat and at least about 27% crude protein in an animal feed for winter It can be used as a product. A composition comprising at least about 13% crude fat and at least about 27% crude protein can be used as an animal feed product for poultry. Compositions comprising at least about 18% crude fat and at least about 22% crude protein can be used as animal feed products for unit animals. It is possible to use various streams for specific animal species such as livestock, ruminants, cows, dairy animals, pigs, goats, sheep, poultry, horses, aquaculture or domestic pets such as dogs, cats, Can be combined as a method for customizing feed products.
본 발명의 공정으로 발생된 DDGS는 다음 중 하나 이상을 가함으로써 개질시켜 맞춤형 고가의 사료 생성물을 생성할 수 있다: 단백질, 지방, 섬유, 회분, 지질, 아미노산, 비타민 및 무기물. 아미노산은, 예를 들면, 필수 아미노산, 예를 들면, 히스티딘, 이소류신, 류신, 라이신, 메티오닌, 페닐알라닌, 트레오닌, 트립토판, 및 발린 및 또한 기타 아민산, 예를 들면, 알라닌, 아르기닌, 아스파르트산, 아스파라긴, 시스테인, 글루탐산, 글루타민, 글리신, 하이드록시라이신, 하이드록시프롤린, 오르니틴, 프롤린, 세린, 및 타이로신을 포함한다. 무기물은, 예를 들면, 칼슘, 클로라이드, 코발트, 구리, 플루오라이드, 요오드, 철, 마그네슘, 망간, 인, 칼륨, 셀레늄, 나트륨, 황, 및 아연을 포함한다. 비타민은, 예를 들면, 비타민 A, C, D, E, K, 및 B (티아민, 리보플라빈, 니아신, 판토텐산, 바이오틴, 비타민 B6, 비타민 B12 및 폴레이트)를 포함한다.DDGS generated by the process of the present invention can be modified by adding one or more of the following to produce customized and expensive feed products: proteins, fats, fibers, ash, lipids, amino acids, vitamins and minerals. Amino acids include, for example, essential amino acids such as histidine, isoleucine, leucine, lysine, methionine, phenylalanine, threonine, tryptophan and valine and also other amine acids such as alanine, arginine, aspartic acid, asparagine , Cysteine, glutamic acid, glutamine, glycine, hydroxylysine, hydroxyproline, ornithine, proline, serine, and tyrosine. Minerals include, for example, calcium, chloride, cobalt, copper, fluoride, iodine, iron, magnesium, manganese, phosphorus, potassium, selenium, sodium, sulfur and zinc. Vitamins include, for example, vitamins A, C, D, E, K, and B (thiamine, riboflavin, niacin, pantothenic acid, biotin, vitamin B6, vitamin B12 and folate).
본원에 기재된 바와 같이, 본 발명의 공정 및 시스템은 부탄올과 같은 생성물 알코올의 생성을 개선시킬 수 있는 다수의 이점을 제공한다. 예를 들면, 질량 전달에서의 개선은 낮은 수성 적가에서의 작동을 가능하게 하여 "더 건강한" 미생물을 생성시킨다. 더 양호한 상 분리는 개선된 발효기 용적 효율 뿐만 아니라 비어 컬럼, 증류 컬럼 등을 통해 더 적은 반응기 내용물을 가공하는 가능성도 유도할 수 있다. 또한, 고체를 통한 용매 손실이 더 적으며 세포 재순환 가능성이 존재한다. 본 발명의 공정 및 시스템은 또한 고급 DDGS를 제공할 수 있다.As described herein, the processes and systems of the present invention provide a number of advantages that can improve the production of product alcohols such as butanol. For example, improvements in mass transfer enable operation at lower aqueous additions, resulting in "healthier" microorganisms. Better phase separation can also lead to improved fermenter volumetric efficiency as well as the possibility of processing less reactor contents via via columns, distillation columns, and the like. In addition, there is less solvent loss through solids and the possibility of cell recirculation exists. The process and system of the present invention can also provide advanced DDGS.
본원에 기재된 공정 및 시스템은 또한 발효 전에 오일의 제거를 제공하며, 이는 이후에 발효를 위한 오일의 조절된 첨가를 허용한다. 더욱이, 발효 전의 오일의 제거는 DDGS 중에 존재하는 오일의 양에서의 가요성을 허용할 수 있다. 즉, 오일은 상이한 양으로 DDGS에 가하여 특별한 동물 종의 영양분 필요성에 따라 상이한 지방 함량을 갖는 DDGS를 생성한다.The processes and systems described herein also provide for the removal of the oil prior to fermentation, which in turn allows controlled addition of the oil for fermentation. Moreover, removal of the oil before fermentation may allow flexibility in the amount of oil present in the DDGS. That is, the oil is added to DDGS in different amounts to produce DDGS with different fat contents depending on the nutritional needs of particular animal species.
본원에 기재된 공정 및 시스템은 아스펜 모델링과 같은 컴퓨터 모델링을 이용하여 입증할 수 있다[참조: 예를 들면, 미국 특허 제7,666,282호). 예를 들면, 시판되는 모델링 소프트웨어 Aspen Plus®(Aspen Technology, Inc., Burlington, MA)를 아메리칸 인스티튜트 오브 케미칼 엔지니어즈, 인크.(American Institute of Chemical Engineers, Inc.; New York, NY)에서 이용가능한, DIPPR (Design Institute for Physical Property Research)과 같은 물리적 특성 데이터베이스와 관련지어 사용하여 통합된 알코올 발효, 정제 및 물 관리 공정을 위한 아스펜 모델을 개발할 수 있다. 이러한 공정 모델링은 많은 기본 공학 계산, 예를 들면, 질량 및 에너지 균형, 증기/액체 평형, 및 반응속도 계산을 수행할 수 있다. 아스펜 모델을 발생시키기 위하여, 정보 입력은, 예를 들면, 실험 데이터, 공급원료의 물 함량 및 조성, 매쉬 쿠킹 및 플래슁을 위한 온도, 당화 조건(예: 효소 공급, 전분 전환, 온도, 압력), 발효 조건(예: 미생물 공급, 글루코스 전환, 온도, 압력), 탈기 조건, 용매 컬럼, 프리플래쉬 컬럼, 응축기, 증발기, 원심분리기 등을 포함할 수 있다.The processes and systems described herein can be verified using computer modeling such as Aspen modeling (see, e.g., U.S. Patent No. 7,666,282). For example, commercially available modeling software Aspen Plus ® (Aspen Technology, Inc., Burlington, Mass.) Is available from the American Institute of Chemical Engineers, Inc., New York, NY , And DIPPR (Design Institute for Physical Property Research) to develop an Aspen model for integrated alcohol fermentation, refining and water management processes. Such process modeling can perform many basic engineering calculations, such as mass and energy balances, vapor / liquid equilibrium, and reaction rate calculations. In order to generate the Aspen model, the information input may include, for example, experimental data, the water content and composition of the feedstock, the temperature for mash cooking and flashing, the saccharification conditions (e.g., enzyme feed, starch conversion, temperature, , A fermentation condition (e.g., microbial feed, glucose conversion, temperature, pressure), a degassing condition, a solvent column, a preflash column, a condenser, an evaporator, a centrifuge and the like.
재조합체Recombinant 미생물 microbe
이론으로 국한시키려는 의도는 아니지만, 본원에 기재된 공정은 어떠한 알코올-생성 미생물, 특히 이들의 내성 수준 이상의 적가에서 알코올을 생성하는 재조합체 미생물과 관련해서 유용하다.While not intending to be bound by theory, the process described herein is useful with respect to any alcohol-producing microorganism, particularly a recombinant microorganism that produces an alcohol at a lower than its resistance level.
알코올-생성 미생물은 당해 기술분야에 공지되어 있다. 예를 들면, 메탄영양 세균(예를 들면, Methylosinus trichosporium )에 의한 메탄의 발효성 산화는 메탄올을 생성하고, 효모 균주 CEN.PK113-7D (CBS 8340, the Centraal Buro voor Schimmelculture; van Dijken, et al., Enzyme Microb. Techno. 26:706-714, 2000)는 에탄올을 생성한다. 알코올을 생산하는 재조합체 미생물은 또한 당해 기술분야에 공지되어 있다(예를 들면, Ohta, et al., Appl. Environ. Microbiol. 57:893-900, 1991; Underwood, et al., Appl. Environ. Microbiol. 68:1071-1081, 2002; Shen and Liao, Metab. Eng. 10:312-320, 2008; Hahnai, et al., Appl. Environ. Microbiol. 73:7814-7818, 2007; 미국 특허 제5,514,583호; 미국 특허 제5,712,133호; PCT 출원 공보 제WO 1995/028476호; Feldmann, et al., Appl. Microbiol. Biotechnol. 38: 354-361, 1992; Zhang, et al., Science 267:240-243, 1995; 미국 특허원 공보 제2007/0031918 A1호; 미국 특허 제7,223,575호; 미국 특허 제7,741,119호; 미국 특허 제7,851,188호; 미국 특허원 공보 제2009/0203099 A1호; 미국 특허원 공보 제2009/0246846 A1호; 및 PCT 출원 공보 제WO 2010/075241호, 이들 모두는 본원에 참조로 포함되어 있다).Alcohol-producing microorganisms are known in the art. For example, methanotrophs (e.g., Methylosinus fermentative oxidation of methane by trichosporium) generates methanol, a yeast strain CEN.PK113-7D (CBS 8340, the Centraal Buro voor Schimmelculture; van Dijken, et al, Enzyme Microb Techno 26:... 706-714, 2000) produces ethanol. Recombinant microorganisms that produce alcohol are also known in the art (see, for example, Ohta, et al., Appl. Environ. Microbiol. 57: 893-900, 1991; Underwood, et al., Appl. Microbiol. 68: 1071-1081, 2002; Shen and Liao, Metab. Eng. 10: 312-320, 2008; Hahnai, et al., Appl. Environ Microbiol. 73: 7814-7818, 2007; Science, 267: 240-351, 1992; Zhang, et al., Science 267: 240-351, 243, 1995; U.S. Patent Application Publication No. 2007/0031918 A1; U.S. Patent No. 7,223,575; U.S. Patent No. 7,741,119; U.S. Patent No. 7,851,188; U.S. Patent Application Publication No. 2009/0203099 A1; U.S. Patent Application Publication No. 2009 / 0246846 A1, and PCT Application Publication No. WO 2010/075241, all of which are incorporated herein by reference).
또한, 미생물은 재조합체 기술을 사용하여 변형시켜 에탄올 및 부탄올과 같은 생성물 알코올을 생산할 수 있는 재조합체 미생물을 발생시킬 수 있다. 생합성 경로를 통해 생성물 알코올을 생산할 수 있도록 재조합체적으로 변형시킬 수 있는 미생물은 속 클로스트리디움(Clostridium ), 지모모나스(Zymomonas), 에스케리키아(Escherichia), 살모넬라(Salmonella), 세라티아(Serratia), 에르위니아(Erwinia), 클렙시엘라(Klebsiella), 쉬겔라(Shigella), 로도코쿠스(Rhodococcus), 슈도모나스(Pseudomonas), 바실러스(Bacillus), 락토바실러스(Lactobacillus), 엔테로코쿠스(Enterococcus), 알칼리게네스(Alcaligenes), 클렙시엘라(Kl ebsiella), 파에니바실러스(Paenibacillus), 아르트로박터(Arthrobacter), 코리네박테리움(Corynebacterium), 브레비박테리움(Brevibacterium), 쉬조사카로마이세스(Schizosaccharomyces), 클루이베로마이세스(Kluyveromyces), 야로위아(Yarrowia), 피치아(Pichia), 칸디다(Candida), 한세눌라(Hansenula), 이싸트첸키아(Issatchenkia), 또는 사카로마이세스(Saccharomyces)의 구성원을 포함한다. 일부 구현예에서, 재조합체 미생물은 에스케리키아 콜라이(Escherichia coli), 락토바실러스 플란타룸(Lactobacillus plantarum), 클루이베로마이세스 락티스(Kluy veromyces lactis), 클루이베로마이세스 마르시아누스(Kluyveromyces marxianus) 및 사카로마이세스 세레비지아에(Saccharomyces cerevisiae)로 이루어진 그룹으로부터 선택될 수 있다. 일부 구현예에서, 재조합체 미생물은 효모이다. 일부 구현예에서, 재조합체 미생물은 사카로마이세스(Saccharomyces), 지고사카로마이세스(Zygosaccharomyces), 쉬조사카로마이세스(Schizosaccharomyces), 덱케라(Dekkera), 토룰롭시스(Torulopsis), 브렛타노마이세스(Brettanomyces), 및 일부 종의 칸디다(Candida)로부터 선택된 돌능금 나무-양성 효모이다. 돌능금 나무-양성 효모의 종은 사카로마이세스 세레비지아에, 사카로마이세스 클루이베리, 쉬조사카로마이세스 폼베(Schizosaccharomyces pombe), 사카로마이세스 바이아누스(Saccharomyces bayanus ), 사카로마이세스 미키타에(Saccharomyces mikitae), 사카로마이세스 파라독수스(Saccharomyces paradoxus), 지고사카로마이세스 로욱시이(Zygosaccharomyces rouxii), 및 칸디다 글라브라타(Candida glabrata)를 포함하지만 이에 제한되지 않는다.In addition, microorganisms can be modified using recombinant techniques to generate recombinant microorganisms capable of producing product alcohols such as ethanol and butanol. Microorganisms that can be transformed with recombinant volume to produce the product alcohol from the biosynthetic pathway in Clostridium (Clostridium), jimo Pseudomonas (Zymomonas), Escherichia (Escherichia), Salmonella (Salmonella), Serratia marcescens (Serratia) , Er Winiah (Erwinia), keulrep when Ella (Klebsiella), Shh Gela (Shigella), also co kusu (Rhodococcus), Pseudomonas (Pseudomonas), Bacillus (Bacillus), Lactobacillus bacteria (Lactobacillus), Enterobacter nose kusu (Enterococcus), But are not limited to, Alcaligenes , Kl ebsiella , Paenibacillus , Arthrobacter , Corynebacterium , Brevibacterium , (Schizosaccharomyces), Cluj Vero My process (Kluyveromyces), Yarrow subtotal (Yarrowia), blood teeth (Pichia), Candida (Candida), Hanse Cronulla (Han enula s), Issa teuchen Escherichia (Issatchenkia), also Includes members of the Saccharomyces family. In some embodiments, the recombinant microorganism is selected from the group consisting of Escherichia Escherichia E. coli , Lactobacillus plantarum , Kluy veromyces ( Kluy veromyces lactis) lactis), Cluj Vero My Marcia Seth Augustine (Kluyveromyces marxianus) and in Saccharomyces (Saccharomyces Mai Jia access Celebi cerevisiae ). In some embodiments, the recombinant microorganism is yeast. In some embodiments, the recombinant microorganism is selected from the group consisting of Saccharomyces , Zygosaccharomyces , Schizosaccharomyces , Dekkera , Torulopsis , a positive yeast-Mai access (Brettanomyces), and crab tree selected from Candida (Candida) of some species. Gargoyle-positive yeast species include Saccharomyces cerevisiae, Saccharomyces cerevisiae, Schizosaccharomyces pombe , Saccharomyces bacillus , Saccharomyces spp. bayanus ), Saccharomyces < RTI ID = 0.0 > mikitae , < / RTI > Saccharomyces paradoxus , Zygosaccharomyces rouxii , Candida glabrata , and the like.
사카로마이세스 세레비지아에는 당해 기술분야에 공지되어 있으며 아메리칸 타입 컬쳐 컬렉션(American Type Culture Collection; Rockville, MD), 셀트랄뷔로 부어 쉼멜컬쳐즈(Centraalbureau voor Schimmelcultures; CBS) 푼잘 바이오다이버시티 센터(Fungal Biodiversity Centre), 레사프리(LeSaffre), 게르트 스트랜드(Gert Strand) AB, 펌 솔류션즈(Ferm Solutions), 노쓰 아메리칸 바이오프로덕츠(North American Bioproducts), 마르트렉스(Martrex), 및 랄레만드(Lallemand)를 포함하지만 이에 제한되지 않는 다양한 공급원으로부터 이용가능하다. 사카로마이세스 세레비지아에는 BY4741, CEN.PK 113-7D, Ethanol Red® 효모, Ferm ProTM 효모, Bio-Ferm® XR 효모, Gert Strand Prestige Batch Turbo 알코올 효모, Gert Strand Pot Distillers 효모, Gert Strand Distillers Turbo 효모, FerMaxTM Green 효모, FerMaxTM Gold 효모, Thermosacc® 효모, BG-1, PE-2, CAT-1, CBS7959, CBS7960, 및 CBS7961을 포함하지만 이에 제한되지 않는다.Saccharomyces cerevisiae is well known in the art and is commercially available from the American Type Culture Collection (Rockville, MD), Centraalbureau voor Schimmelcultures (CBS) Feral Biodiversity Center, LeSaffre, Gert Strand AB, Ferm Solutions, North American Bioproducts, Martrex, and Lallemand. ≪ / RTI > including but not limited to < / RTI > Saccharomyces cerevisiae includes BY4741, CEN.PK 113-7D, Ethanol Red 占 yeast, Ferm Pro TM Yeast, Bio-Ferm ® XR yeast, Gert Strand Prestige Batch Turbo alcohol yeast, Gert Strand Pot Distillers yeast, Gert Strand Distillers Turbo yeast, FerMax TM Green yeast, FerMax TM Gold yeast, Thermosacc ® yeast, BG-1, PE-2, CAT-1, CBS7959, CBS7960, and CBS7961.
일부 구현예에서, 미생물은 부동화 또는 캡슐화될 수 있다. 예를 들면, 미생물은 알기네이트, 알긴산칼슘, 또는 폴리아크릴아미드 겔을 사용하여, 또는 규조암, 셀라이트, 규조토, 실리카 겔, 플라스틱, 또는 수지와 같은 각종의 고표면적 지지체 메트릭스 상으로의 바이오필름의 형성의 도입을 통해 부동화 또는 캡슐화할 수 있다. 일부 구현예에서, ISPR은 부동화된 또는 캡슐화된 미생물과 함께 사용할 수 있다. 이러한 조합은 특수한 용적 생산성, 대사율, 생성물 알코올 수율, 생성물 알코올에 대한 내성과 같은 생산성을 증진시킬 수 있다. 또한, 부동화 및 캡슐화는 미생물 상에서의 전단과 같은 공정 조건의 영향을 최소화할 수 있다.In some embodiments, the microorganism may be passivated or encapsulated. For example, the microorganism can be produced by using alginate, calcium alginate, or polyacrylamide gel, or on a variety of high surface area support matrices such as diatomaceous earth, celite, diatomaceous earth, silica gel, plastic, Lt; RTI ID = 0.0 > encapsulation < / RTI > In some embodiments, ISPR can be used with immobilized or encapsulated microorganisms. This combination can enhance productivity such as specific volume productivity, metabolic rate, yield of product alcohol, and tolerance to product alcohol. In addition, passivation and encapsulation can minimize the effects of process conditions such as shear on the microbial bed.
발효 및 또한, 부탄올을 생성하는 미생물을 이용하는 부탄올의 생산은, 예를 들면, 미국 특허 제7,851,188호, 및 미국 특허공개공보 제2007/0092957호; 제2007/0259410호; 제2007/0292927호; 제2008/0182308호; 제2008/0274525호; 제2009/0155870호; 제2009/0305363호; 및 제2009/0305370호에 기재되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에서 참조로 혼입된다. 일부 구현예에서, 미생물은 가공하여 생합성 경로를 포함할 수 있다. 일부 구현예에서, 생합성 경로는 가공된 부탄올 생합성 경로이다. 일부 구현예에서, 생합성 경로는 피루베이트를 발효 생성물로 전환시킨다. 일부 구현예에서, 생합성 경로는 피루베이트 및 또한 아미노산을 발효 생성물로 전환시킨다. 일부 구현예에서, 기질을 경로의 생성물 전환으로 촉매화하는 적어도 1개, 적어도 2개, 적어도 3개, 또는 적어도 4개의 폴리펩타이드는 미생물 에서 이종의 폴리뉴클레오타이드에 의해 암호화된다. 일부 구현예에서, 기질을 경로의 생성물 전환으로 촉매화하는 모든 폴리펩타이드는 미생물에서 이종의 폴리뉴클레오타이드에 의해 암호화된다. 일부 구현예에서, 기질을, 아세토락테이트의 2,3-디하이드록시이소발레레이트로의 생성물 전환으로 촉매화하는 폴리펩타이드 및/또는 기질을, 이소부티르알데히드의 이소부탄올로의 생성물 전환으로 촉매화하는 폴리펩타이드는 보조인자로서 감소된 니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오타이드(NADH)를 이용할 수 있다.The production of butanol using fermentation and also microorganisms that produce butanol is described, for example, in U.S. Patent No. 7,851,188 and U.S. Patent Publication No. 2007/0092957; 2007/0259410; 2007/0292927; 2008/0182308; 2008/0274525; 2009/0155870; 2009/0305363; And 2009/0305370, the entire contents of each of which are incorporated herein by reference. In some embodiments, the microorganism may be engineered to include biosynthetic pathways. In some embodiments, the biosynthetic pathway is a engineered butanol biosynthetic pathway. In some embodiments, the biosynthetic pathway converts pyruvate to a fermentation product. In some embodiments, the biosynthetic pathway converts pyruvate and also amino acids to fermentation products. In some embodiments, at least one, at least two, at least three, or at least four polypeptides that catalyze substrate conversion of the pathway are encoded by heterologous polynucleotides in the microorganism. In some embodiments, all polypeptides that catalyze substrate conversion of the pathway are encoded by heterologous polynucleotides in the microorganism. In some embodiments, the polypeptide and / or substrate catalyzing the conversion of the substrate to product conversion of acetolactate to 2,3-dihydroxyisovalerate can be achieved by converting the product of isobutyraldehyde to isobutanol, May use reduced nicotinamide adenine dinucleotide (NADH) as a cofactor.
생합성 경로Biosynthetic pathway
사용될 수 있는 이소부탄올을 생성하기 위한 생합성 경로는 미국 특허 제7,851,188호에 기재된 것들을 포함하며, 이는 본원에서 참조로 혼입된다. 일 구현예에서, 이소부탄올 생합성 경로는 다음의 기질의 생성물 전환을 포함한다:Biosynthetic pathways for producing isobutanol which may be used include those described in U.S. Patent No. 7,851,188, which is incorporated herein by reference. In one embodiment, the isobutanol biosynthetic pathway comprises product conversion of the following substrates:
a) 예를 들면, 아세토락테이트 신타제에 의해 촉매화될 수 있는, 피루베이트의 아세토락테이트로의 전환;a) conversion of pyruvate to acetolactate, which can be catalyzed, for example, by acetolactate synthase;
b) 예를 들면, 아세토하이드록시 산 리덕토이소머라제에 의해 촉매화될 수 있는, 아세토락테이트의 2,3-디하이드록시이소발레레이트로의 전환;b) the conversion of acetolactate to 2,3-dihydroxyisovalerate, which can be catalysed, for example, by acetohydroxy acid reductoisomerase;
c) 예를 들면, 아세토하이드록시 산 데하이드라타제에 의해 촉매화될 수 있는 2,3-디하이드록시이소발레레이트의 α-케토이소발레레이트로의 전환;c) conversion of 2,3-dihydroxyisovvalerate, which can be catalyzed, for example, by acetohydroxy acid dehydratase to alpha -ketoisovvalerate;
d) 예를 들면, 측쇄 α-케토산 데카복실레라아제에 의해 촉매화될 수 있는, α-케토이소발레레이트의 이소부티르알데히드로의 전환; 및d) conversion of alpha -ketoisovalerate to isobutyraldehyde, for example, which can be catalyzed by branched alpha -keto acid decarboxylase; And
e) 예를 들면, 측쇄 알코올 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, 이소부티르알데히드의 이소부탄올로의 전환.e) Conversion of isobutyraldehyde to isobutanol, which can be catalyzed, for example, by branched alcohol dehydrogenases.
또 다른 구현예에서, 이소부탄올 생합성 경로는 다음의 기질의 생성물 전환을 포함한다:In another embodiment, the isobutanol biosynthetic pathway comprises product conversion of the following substrates:
a) 예를 들면, 아세토락테이트 신타제에 의해 촉매화될 수 있는, 피루베이트의 아세토락테이트로의 전환;a) conversion of pyruvate to acetolactate, which can be catalyzed, for example, by acetolactate synthase;
b) 예를 들면, 케톨-산 리덕토이소머라제에 의해 촉매화될 수 있는, 아세토락테이트의 2,3-디하이드록시이소발레레이트로의 전환;b) the conversion of acetolactate to 2,3-dihydroxyisovalerate, which can be catalysed, for example, by ketol-acid reductoisomerase;
c) 예를 들면, 디하이드록시산 데하이드라타제에 의해 촉매화될 수 있는, 2,3-디하이드록시이소발레레이트의 α-케토이소발레레이트로의 전환;c) conversion of 2,3-dihydroxyisovvalerate to alpha -ketoisovalerate, which can be catalysed, for example, by dihydroxy acid dehydratase;
d) 예를 들면, 트랜스아미나제 또는 발린 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, α-케토이소발레레이트;d)? -ketoisovalerate, which can be catalyzed, for example, by transaminase or valine dehydrogenase;
e) 예를 들면, 발린 데카복실라제에 의해 촉매화될 수 있는, 발린의 이소부틸아민으로의 전환;e) conversion of valine to isobutylamine, for example, which can be catalyzed by valine decarboxylase;
f) 예를 들면, 오메가 트랜스아미나제에 의해 촉매화될 수 있는, 이소부틸아민의 이소부티르알데히드로의 전환; 및f) the conversion of isobutylamine to isobutyraldehyde, which can be catalyzed, for example, by omega transaminase; And
g) 예를 들면, 측쇄 알코올 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, 이소부티르알데히드의 이소부탄올로의 전환.g) Conversion of isobutyraldehyde to isobutanol, for example, which can be catalyzed by branched alcohol dehydrogenase.
또 다른 구현예에서, 이소부탄올 생합성 경로는 다음의 기질의 생성물 전환을 포함한다:In another embodiment, the isobutanol biosynthetic pathway comprises product conversion of the following substrates:
a) 예를 들면, 아세토락테이트 신타제에 의해 촉매화될 수 있는, 피루베이트의 아세토락테이트로의 전환;a) conversion of pyruvate to acetolactate, which can be catalyzed, for example, by acetolactate synthase;
b) 예를 들면, 아세토하이드록시 산 리덕토이소머라제에 의해 촉매화될 수 있는, 아세토락테이트의 2,3-디하이드록시이소발레레이트로의 전환;b) the conversion of acetolactate to 2,3-dihydroxyisovalerate, which can be catalysed, for example, by acetohydroxy acid reductoisomerase;
c) 예를 들면, 아세토하이드록시 산 데하이드라타제에 의해 촉매화될 수 있는, 2,3-디하이드록시이소발레레이트의 α-케토이소발레레이트로의 전환;c) conversion of 2,3-dihydroxyisovvalerate to alpha -ketoisovalerate, which can be catalysed, for example, by acetohydroxy acid dehydratase;
d) 예를 들면, 측쇄 케토산 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, α-케토이소발레레이트의 이소부티릴-CoA로의 전환;d) the conversion of alpha -ketoisovalerate to isobutyryl-CoA, which can be catalyzed, for example, by branched chain ketoacid dehydrogenases;
e) 예를 들면, 알데히드 데하이드로게나제를 아실화함으로써 촉매화할 수 있는, 이소부티릴-CoA의 이소부티르알데히드로의 전환; 및e) conversion of isobutyryl-CoA to isobutyraldehyde, which can be catalyzed, for example, by acylating an aldehyde dehydrogenase; And
f) 예를 들면, 측쇄 알코올 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, 이소부티르알데히드의 이소부탄올로의 전환.f) the conversion of isobutyraldehyde to isobutanol, which can be catalysed, for example, by branched alcohol dehydrogenases.
사용될 수 있는 1-부탄올을 생성하기 위한 생합성 경로는 미국 특허공개공보 제2008/0182308호에 기재되어 있으며, 이는 본원에 참조로 혼입된다. 일 구현예에서, 1-부탄올 생합성 경로는 다음의 기질의 생성물 전환을 포함한다:Biosynthetic pathways for producing 1-butanol which may be used are described in U.S. Patent Application Publication No. 2008/0182308, which is incorporated herein by reference. In one embodiment, the 1-butanol biosynthetic pathway involves product conversion of the following substrates:
a) 예를 들면, 아세틸-CoA 아세틸트랜스퍼라제에 의해 촉매화될 수 있는, 아세틸-CoA의 아세토아세틸-CoA로의 전환;a) conversion of acetyl-CoA to acetoacetyl-CoA, which can be catalyzed, for example, by acetyl-CoA acetyltransferase;
b) 예를 들면, 3-하이드록시부티릴-CoA 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, 아세토아세틸-CoA의 3-하이드록시부티릴-CoA로의 전환;b) the conversion of acetoacetyl-CoA to 3-hydroxybutyryl-CoA, which can be catalyzed, for example, by 3-hydroxybutyryl-CoA dehydrogenase;
c) 예를 들면, 크로토나제에 의해 촉매화될 수 있는, 3-하이드록시부티릴-CoA의 크로토닐-CoA로의 전환로의 전환;c) conversion of 3-hydroxybutyryl-CoA to crotyl-CoA, which can be catalyzed, for example, by crotonazene;
d) 예를 들면, 부티릴-CoA 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, 크로토닐-CoA의 부티릴-CoA로의 전환;d) conversion of crotyl-CoA to butyryl-CoA, which can be catalyzed, for example, by butyryl-CoA dehydrogenase;
e) 예를 들면, 부티르알데히드 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, 부티릴-CoA의 부티르알데히드로의 전환; 및e) conversion of butyryl-CoA to butyraldehyde, which can be catalyzed, for example, by butyraldehyde dehydrogenase; And
f) 부탄올 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, 부티르알데히드의 1-부탄올로의 전환.f) Conversion of butyraldehyde to 1-butanol, which can be catalyzed by butanol dehydrogenase.
사용될 수 있는 2-부탄올을 생성하기 위한 생합성 경로는, 본원에 참조로 혼입되어 있는, 미국 특허공개공보 제2007/0259410호 및 미국 특허공개공보 제2009/0155870호에 기재된 것들을 포함한다. 일 구현예에서, 2-부탄올 생합성 경로는 다음의 기질의 생성물 전환을 포함한다:Biosynthetic pathways for producing 2-butanol that may be used include those described in U.S. Patent Application Publication No. 2007/0259410 and U.S. Patent Application Publication No. 2009/0155870, incorporated herein by reference. In one embodiment, the 2-butanol biosynthetic pathway involves product conversion of the following substrates:
a) 예를 들면, 아세토락테이트 신타제에 의해 촉매화될 수 있는, 피루베이트의 알파-아세토락테이트로의 전환;a) conversion of pyruvate to alpha-acetolactate, which can be catalysed, for example, by acetolactate synthase;
b) 예를 들면, 아세토락테이트 데카복실라제에 의해 촉매화될 수 있는, 알파-아세토락테이트의 아세토닌으로의 전환;b) the conversion of alpha-acetolactate to acetonine, which can be catalyzed, for example, by acetolactate decarboxylase;
c) 예를 들면, 아세토닌 아미나제에 의해 촉매화될 수 있는, 아세토인의 3-아미노-2-부탄올로의 전환;c) conversion of acetone to 3-amino-2-butanol, which can be catalysed, for example, by acetoninaminase;
d) 예를 들면, 아미노부탄올 키나제에 의해 촉매화될 수 있는, 3-아미노-2-부탄올의 3-아미노-2-부탄올 포스페이트로의 전환;d) conversion of 3-amino-2-butanol to 3-amino-2-butanol phosphate, which can be catalyzed, for example, by amino butanol kinase;
e) 예를 들면, 아미노부탄올 포스페이트 포스포릴라제에 의해 촉매화될 수 있는, 3-아미노-2-부탄올 포스페이트의 2-부탄올로의 전환; 및e) conversion of 3-amino-2-butanol phosphate to 2-butanol, which can be catalyzed, for example, by aminobutanol phosphate phosphorylase; And
f) 예를 들면, 부탄올 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는 2-부탄온의 2-부탄올로의 전환.f) Conversion of 2-butanone, which can be catalysed, for example, by butanol dehydrogenase to 2-butanol.
또 다른 구현예에서, 2-부탄올 생합성 경로는 다음의 기질의 생성물 전환을 포함한다:In another embodiment, the 2-butanol biosynthetic pathway comprises product conversion of the following substrates:
a) 예를 들면, 아세토락테이트 신타제에 의해 촉매화될 수 있는, 피루베이트의 알파-아세토락테이트로의 전환;a) conversion of pyruvate to alpha-acetolactate, which can be catalysed, for example, by acetolactate synthase;
b) 예를 들면, 아세토락테이트 데카복실라제에 의해 촉매화될 수 있는, 알파-아세토락테이트의 아세토인로의 전환;b) the conversion of alpha-acetolactate to acetone, which can be catalyzed, for example, by acetolactate decarboxylase;
c) 예를 들면, 부탄디올 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, 아세토인의 2,3-부탄디올로의 전환;c) conversion of acetone to 2,3-butanediol, which can be catalyzed, for example, by butanediol dehydrogenase;
d) 예를 들면, 디알 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, 2,3-부탄디올의 2-부탄온으로의 전환; 및d) conversion of 2,3-butanediol to 2-butanone, which can, for example, be catalyzed by dialdehydegenase; And
e) 예를 들면, 부탄올 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, 2-부타논의 2-부탄올로의 전환.e) Conversion to 2-butanone 2-butanol, which can be catalysed, for example, by butanol dehydrogenase.
사용될 수 있는 2-부탄온을 생성하기 위한 생합성 경로는, 본원에 참조로 혼입되는, 미국 특허공개공보 제2007/0259410호 및 미국 특허공개공보 제2009/0155870호에 기재되어 포함된다. 일 구현예에서, 2-부탄온 생합성 경로는 다음의 기질의 생성물 전환을 포함한다:Biosynthetic pathways for producing 2-butanone that may be used are described and included in U.S. Patent Application Publication No. 2007/0259410 and U.S. Patent Application Publication No. 2009/0155870, which are incorporated herein by reference. In one embodiment, the 2-butanone biosynthetic pathway involves product conversion of the following substrates:
a) 예를 들면, 아세토락테이트 신타제에 의해 촉매화될 수 있는, 피루베이트의 알파-아세토락테이트로의 전환;a) conversion of pyruvate to alpha-acetolactate, which can be catalysed, for example, by acetolactate synthase;
b) 예를 들면, 아세토락테이트 데카복실라제에 의해 촉매화될 수 있는, 알파-아세토락테이트의 아세토인으로의 전환;b) the conversion of alpha-acetolactate to acetone, which can be catalyzed, for example, by acetolactate decarboxylase;
c) 예를 들면, 아세토닌 아미나제에 의해 촉매화될 수 있는, 아세토인의 3-아미노-2-부탄올로의 전환;c) conversion of acetone to 3-amino-2-butanol, which can be catalysed, for example, by acetoninaminase;
d) 예를 들면, 아미노부탄올 키나제에 의해 촉매화될 수 있는, 3-아미노-2-부탄올의 3-아미노-2-부탄올 포스페이트로의 전환; 및d) conversion of 3-amino-2-butanol to 3-amino-2-butanol phosphate, which can be catalyzed, for example, by amino butanol kinase; And
e) 예를 들면, 아미노부탄올 포스페이트 포스포릴라제에 의해 촉매화될 수 있는, 3-아미노-2-부탄올 포스페이트의 2-부탄온으로의 전환.e) Conversion of 3-amino-2-butanol phosphate to 2-butanone, which can be catalyzed, for example, by aminobutanol phosphate phosphorylase.
또 다른 구현예에서, 2-부탄온 생합성 경로는 다음의 기질의 생성물 전환을 포함한다:In another embodiment, the 2-butanone biosynthetic pathway involves product conversion of the following substrates:
a) 예를 들면, 아세토락테이트 신타제에 의해 촉매화될 수 있는, 피루베이트의 알파-아세토락테이트로의 전환;a) conversion of pyruvate to alpha-acetolactate, which can be catalysed, for example, by acetolactate synthase;
b) 예를 들면, 아세토락테이트 데카복실라제에 의해 촉매화될 수 있는, 알파-아세토락테이트의 아세토인으로의 전환;b) the conversion of alpha-acetolactate to acetone, which can be catalyzed, for example, by acetolactate decarboxylase;
c) 예를 들면, 부탄디올 데하이드로게나제에 의해 촉매화될 수 있는, 아세토인의 2,3-부탄디올로의 전환; 및c) conversion of acetone to 2,3-butanediol, which can be catalyzed, for example, by butanediol dehydrogenase; And
d) 예를 들면, 디올 데하이드라타제에 의해 촉매화될 수 있는, 2,3-부탄디올의 2-부탄온로의 전환.d) Conversion of 2,3-butanediol to 2-butanone, which can, for example, be catalyzed by diol dehydratase.
용어 "아세토하이드록시산 신타제", "아세토락테이트 신타제" 및 "아세토락테이트 신타제"("ALS"로 약칭됨)는 본원에 상호교환적으로 사용되며, 피루베이트의 아세토락테이트 및 CO2로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 나타낸다. 아세토락테이트 신타제의 예는 EC 번호 2.2.1.6(참조: Enzyme Nomenclature 1992, Academic Press, San Diego)로 공지되어 있다. 이들 변형되지 않은 효소는 바실러스 서브틸리스(Bacillus subtilis)(각각, 진뱅크(GenBank) 번호: CAB 15618(서열 번호: 1), Z99122(서열 번호: 2), NCBI(생물학 정보에 대한 국립 센터(National Center for Biotechnology Information)) 아미노산 서열, NCBI 뉴클레오타이드 서열), 클렙시엘라 프네우모니아에(Klebsiella pneumoniae)(진뱅크 번호: AAA25079 (서열 번호: 3), M73842(서열 번호: 4)), 및 락토코쿠스 락티스(Lactococcus lactis)(진뱅크 번호: AAA25161(서열 번호: 5), L16975(서열 번호: 6))를 포함하지만 이에 제한되지 않는 다수의 공급원으로부터 이용가능하다.The terms "acetohydroxy acid synthase", "acetolactate synthase" and "acetolactate synthase" (abbreviated as "ALS") are used interchangeably herein and include acetolactate and (Or polypeptides) having an enzyme activity catalyzing the conversion to CO 2 . An example of acetolactate synthase is known from EC No. 2.2.1.6 (Enzyme Nomenclature 1992, Academic Press, San Diego). These unmodified enzymes are called Bacillus subtilis subtilis) (each, Gene Bank (GenBank) Number: CAB 15618 (SEQ ID NO: 1), Z99122 (SEQ ID NO: 2), NCBI (National Center for Biological Information (National Center for Biotechnology Information)) amino acid sequence, NCBI nucleotide in the sequence), when keulrep Ella peune feather California (Klebsiella pneumoniae) (Gene Bank ID: AAA25079 (SEQ ID NO: 3), M73842 (SEQ ID NO: 4)), and Lactobacillus nose kusu lactis (Lactococcus lactis) (Gene Bank ID: AAA25161 (SEQ ID NO: 5), L16975 (SEQ ID NO: No. 6)). ≪ / RTI >
용어 "케톨-산 리덕토이소머라제"("KARI"), "아세토하이드록시산 이소머로리덕타제", "아세토하이드록시산 리덕토이소머라제"는 상호교환적으로 사용될 것이며, (S)-아세토락테이트의 2,3-디하이드록시이소발러레이트로의 반응을 촉매화하는 효소 활성을 지닌 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. KARI 효소의 예는 EC 번호 EC 1.1.1.86(참조: Enzyme Nomenclature 1992, Academic Press, San Diego)로 분류될 수 있으며, 에스케리키아 콜라이(Escherichia coli)(진뱅크 번호: NP_418222(서열 번호: 7), NC_000913(서열 번호: 8)), 사카로마이세스 세레비지아에(Saccharomyces cerevisiae)(진뱅크 번호: NP_013459(서열 번호: 9), NC_001144(서열 번호: 10)), 메타노코쿠스 마리팔루디스(Methanococcus maripaludis)(진뱅크 번호: CAF30210(서열 번호: 11), BX957220(서열 번호: 12)), 및 바실루스 서브틸리스(Bacillus subtilis)(진뱅크 번호: CAB14789(서열 번호: 13), 제Z99118(서열 번호: 14))를 포함하나, 이에 한정되지 않는, 미생물의 거대한 배열로부터 이용가능하다. KARI는 언에어로스티페스 칵카에(Anaerostipes caccae) KARI 변이체 "K9G9" 및 "K9D3"(각각 서열 번호: 15 및 16)을 포함한다. 케톨-산 리덕토이소머라제(KARI) 효소는 미국 특허원 공보 제2008/0261230호, 제2009/0163376호, 및 제2010/0197519호, 및 PCT 출원 공보 제WO/2011/041415호에 기술되어 있으며, 이는 본원에 참조로 혼입된다. 본원에 기재된 KARI의 예는 락토코쿠스 락티스(Lactococcus lactis), 비브리오 콜레라(Vibrio cholera), 슈도모나스 아에루기노사(Pseudomonas aeruginosa) PAO1, 및 슈도모나스 플루오레센스(Pseudomonas fluorescens) PF5 돌연변이체로부터의 것들이다. 일부 구현예에서, KARI는 NADH를 이용한다. 일부 구현예에서, KARI는 환원된 니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오타이드 포스페이트(NADPH)를 이용한다.The term "ketol-acid reductoisomerase"("KARI"),"acetohydroxy acid isomeruryldextyrase "," acetohydroxy acid reductoisomerase " ) -Acetolactate with 2,3-dihydroxyisovalerate. The term " polypeptide " refers to a polypeptide (or polypeptides) having an enzymatic activity that catalyzes the reaction of acetolactate with 2,3-dihydroxyisovalerate. Examples of the KARI enzyme EC number EC 1.1.1.86: can be divided into (see Enzyme Nomenclature 1992, Academic Press, San Diego), Escherichia coli (Escherichia coli) (Gene bank number: NP_418222 (SEQ ID NO: 7), NC_000913 (SEQ ID NO: 8), to), my process three Levy Jia as Saccharomyces (Saccharomyces cerevisiae) (Gene bank number: NP_013459 (SEQ ID NO: 9), NC_001144 (SEQ ID NO: 10)), a meta Noko kusu grains arm rudiseu (Methanococcus maripaludis) (Gene bank number: CAF30210 (SEQ ID NO: 11), BX957220 (SEQ ID NO: 12)), and Bacillus subtilis (Bacillus subtilis) (Gene Bank Number: CAB14789 (SEQ ID NO: 13), No. Z99118 (SEQ ID NO: No. 14)), which are commercially available. KARI is an aerostrict cocktail ( Anaerostipes Kacc variants "K9G9" and "K9D3" (SEQ ID NOs: 15 and 16, respectively). The ketol-acid reductoisomerase (KARI) enzyme is described in U.S. Patent Application Publication Nos. 2008/0261230, 2009/0163376, and 2010/0197519, and PCT Application Publication No. WO / 2011/041415 , Which is incorporated herein by reference. Examples of KARI's described herein include Lactococcus lactis , Vibrio cholera ), Pseudomonas aeruginosa aeruginosa) PAO1, and Pseudomonas fluorescein sense (Pseudomonas fluorescens PF5 mutants. In some embodiments, KARI utilizes NADH. In some embodiments, KARI utilizes reduced nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADPH).
용어 "아세토하이드록시산 데하이드라타제" 및 "디하이드록시산 데하이드라타제"("DHAD")는 2,3-디하이드록시이소발러레이트의 α-케토이소발러레이트로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 아세토하이드록시산 데하이드라타제의 예는 EC 번호 제4.2.1.9호로 공지되어 있다. 이러한 효소는 에스케리키아 콜라이(진뱅크 번호: YP_026248(서열 번호: 17), NC000913(서열 번호: 18)), 사카로마이세스 세레비지아에(Saccharomyces cerevisiae)(진뱅크 번호: NP_012550(서열 번호: 19), NC 001142(서열 번호: 20), 엠. 마리팔루디스(M. maripaludis)(진뱅크 번호: CAF29874(서열 번호: 21), BX957219(서열 번호: 22)), 비. 서브틸리스(B. subtilis)(진뱅크 번호: CAB14105(서열 번호: 23), Z99115(서열 번호: 24)), 엘. 락티스(L. Iactis), 및 엔. 크라싸(N. crassa)를 포함하나, 이에 한정되지 않는 미생물의 거대한 배열로부터 이용가능하다. 본원에 참조로 혼입된 미국 특허원 공보 제2010/0081154호, 및 미국 특허 제7,851,188호는 스트렙토코쿠스 무탄스(Streptococcus mutans)로부터의 디하이드록시산 데하이드라타제(DHAD)를 포함하는 DHAD를 기술하고 있다.The terms "acetohydroxy acid dehydratase" and "dihydroxy acid dehydratase"("DHAD") refer to the conversion of 2,3-dihydroxyisobalurate to a- Refers to polypeptides (or polypeptides) having catalytic enzyme activity. An example of an acetohydroxy acid dehydratase is known under EC number 4.2.1.9. These enzymes include Escherichia coli (Gene Bank No .: YP_026248 (SEQ ID NO: 17), NC000913 (SEQ ID NO: 18)), Saccharomyces cerevisiae (Gene Bank No .: NP_012550 : 19), NC 001142 (SEQ ID NO: 20), M. maripaludis (Gene Bank number: CAF29874 (SEQ ID NO: 21), BX957219 (SEQ ID NO: 22) But not limited to, B. subtilis (Gene Bank No .: CAB14105 (SEQ ID NO: 23), Z99115 (SEQ ID NO: 24)), L. Iactis , and N. crassa U.S. Patent Application Publication No. 2010/0081154 and U.S. Patent No. 7,851,188, which are incorporated herein by reference, disclose that dehydrohalogenation from Streptococcus mutans , Describes DHAD containing Roxithan dehydratase (DHAD).
용어 "측쇄 α-케토산 데카복실라제", "α-케토산 데카복실라제", "α-케토이소발레레이트 데카복실라제", 또는 "2-케토이소발레레이트 데카복실라제"("KIVD")는 α-케토이소발러레이트의 이소부티르알데하이드 및 CO2로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 가진 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 측쇄 α-케토산 데카복실라제"의 예는 EC 번호 제4.1.1.72호로 공지되어 있으며 락토코쿠스 락티스(Lactococcus lactis)(진뱅크 번호: AAS49166(서열 번호: 25), AY548760(서열 번호: 26); CAG34226(서열 번호: 27), AJ746364(서열 번호: 28), 살모넬라 티피무리움(Salmonella typhimurium)(진뱅크 번호: NP_461346(서열 번호: 29), NC_003197(서열 번호: 30)), 클로스트리디움 아세토부틸리쿰(Clostridium acetobutylicum)(진뱅크 번호: NP_149189(서열 번호: 31), NC_001988(서열 번호: 32)), 엠. 카세올리티쿠스(M. caseolyticus)(서열 번호: 33), 및 엘. 그라이이(L grayi)(서열 번호: 34)를 포함하나, 이에 한정되지 않는 다수의 공급원으로부터 이용가능하다.The term "side chain α-keto acid decarboxylase", "α-keto acid decarboxylase", "α-ketoisovalerate decarboxylase" or "2-ketoisovalerate decarboxylase" KIVD ") refers to polypeptides (or polypeptides) having enzymatic activity catalyzing the conversion of alpha -ketoisovalerate to isobutyraldehyde and CO 2 . Quot; side chain a-keto acid decarboxylase "is known as EC No. 4.1.1.72 and is referred to as Lactococcus lactis) (Gene bank number: AAS49166 (SEQ ID NO: 25), AY548760 (SEQ ID NO: 26); CAG34226 (SEQ ID NO: 27), AJ746364 (SEQ ID NO: 28), Salmonella typhimurium (Salmonella typhimurium) (Gene bank number: NP_461346 (SEQ ID NO: 29), NC_003197 (SEQ ID NO: 30)), Clostridium acetonitrile unit Tilikum (Clostridium acetobutylicum) (Gene bank number: NP_149189 (SEQ ID NO: 31), NC_001988 ( SEQ ID NO: 32)), M. < RTI ID = 0.0 > M. caseolyticus (SEQ ID NO: 33), and EL. (SEQ ID NO: 34). ≪ / RTI >
용어 "측쇄 알코올 데하이드로게나제"("ADH")는 이소부티르알데하이드의 이소부탄올로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 측쇄 알코올 데하이드로게나제의 예는 EC 번호 제1.1.1.265호로 공지되어 있지만, 또한 다른 알코올 데하이드로게나제(구체적으로, EC 1.1.1.1 또는 1.1.1.2) 하에 분류될 수 있다. 알코올 데하이드로게나제는 NADPH-의존성이거나 NADH-의존성일 수 있다. 이러한 효소는 사카로마이세스 세레비지아에(Saccharomyces cerevisiae)(진뱅크 번호: NP_010656(서열 번호: 35), NC_001136(서열 번호: 36), NP_014051(서열 번호: 37), NC_001145(서열 번호: 38)), 에스케리키아 콜라이(Escherichia coli)(진뱅크 번호: NP_417484(서열 번호: 39), NC_000913(서열 번호: 40)), 씨. 아세토부틸티쿰(C. acetobutylticum)(진뱅크 번호: NP_349892(서열 번호: 41), NC_003030(서열 번호: 42); NP_349891(서열 번호: 43), NC_003030(서열 번호: 44))를 포함하나, 이에 한정되지 않는 다수의 공급원으로부터 이용가능하다. 미국 특허원 공보 제2009/0269823호는 SadB, 아크로모박터 크실로속시단스(Achromobacter xylosoxidans)로부터의 알코올 데하이드로게나제(ADH)를 기술하고 있다. 알코올 데하이드로게나제는 또한 말 간 ADH 및 베이제린키아 인디카(Beijerinkia indica) ADH(본원에 참조로 혼입된, 미국 특허원 공보 제2011/0269199호에 기술됨)를 포함한다.The term "branched alcohol dehydrogenase"("ADH") refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of isobutyraldehyde to isobutanol. Examples of branched alcohol dehydrogenases are known under EC No. 1.1.1.265, but may also be classified under other alcohol dehydrogenases (specifically EC 1.1.1.1 or 1.1.1.2). The alcohol dehydrogenase may be NADPH-dependent or NADH-dependent. This enzyme is the My process three Levy Jia in Saccharomyces (Saccharomyces cerevisiae) (Gene bank number: NP_010656 (SEQ ID NO: 35), NC_001136 (SEQ ID NO: 36), NP_014051 (SEQ ID NO: 37), NC_001145 (SEQ ID NO: 38)), Escherichia coli (Escherichia coli) (Gene bank number: NP_417484 (SEQ ID NO: 39), NC_000913 (SEQ ID NO: 40)), seed. One including, whereby; tikum butyl acetoacetate (C. acetobutylticum) (44): : 43), NC_003030 ( SEQ ID NO: Gene bank number: NP_349892 (SEQ ID NO:: 41), NC_003030 (SEQ ID NO: NP_349891 (SEQ ID NO: 42)) And are available from a number of sources, including but not limited to. U.S. Patent Application Publication No. 2009/0269823 describes an alcohol dehydrogenase (ADH) from Achromobacter xylosoxidans , SadB. Alcohol dehydrogenase is also known to be involved in the production of endogenous ADH and Beijerinkia < RTI ID = 0.0 > indica ) ADH (described in U.S. Patent Application Publication No. 2011/0269199, incorporated herein by reference).
용어 "부탄올 데하이드로게나제"는 이소부티르알데하이드의 이소부탄올로의 전환 또는 2-부타논 및 2-부탄올의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(폴리펩타이드들)을 말한다. 부탄올 데하이드로게나제는 알코올 데하이드로게나제의 광범위한 계열의 소세트이다. 부탄올 데하이드로게나제는 NAD- 또는 NADP-의존성이다. NAD-의존성 효소는 EC 1.1.1.1로 공지되어 있으며 예를 들면, 로도코쿠스 루버(Rhodococcus ruber)(진뱅크 번호: CAD36475, AJ491307)로부터 이용가능하다. NADP 의존성 효소는 EC 1.1.1.2로서 공지되어 있으며 예를 들면, 피로코쿠스 푸리오수스(Pyrococcus furiosus)(진뱅크 번호: AAC25556, AF013169)로부터 이용가능하다. 또한, 부탄올 데하이드로게나제는 에스케리키아 콜라이(진뱅크 번호: NP 417484, NC_000913)로부터 이용가능하며 사이클로헥산올 데하이드로게나제는 악시네토박터 아종(Acinetobacter sp .)(진뱅크 번호: AAG10026, AF282240)으로부터 이용가능하다. 용어 "부탄올 데하이드로게나제"는 또한 보조인자로서 NADH 또는 NADPH를 사용한, 부티르알데하이드의 1-부탄올로의 전환을 촉매화하는 효소를 말한다. 부탄올 데하이드로게나제는 예를 들면, 씨. 아세토부틸리쿰(C. acetobutylicum)(진뱅크 번호: NP_149325, NC_001988; 주: 당해 효소는 알데하이드 및 알코올 데하이드로게나제 활성 둘 다를 지닌다); NP_349891, NC_003030; 및 NP_349892, NC_003030) 및 에스케리키아 콜라이(진뱅크 번호: NP_417-484, NC_000913)로부터 이용가능하다.The term "butanol dehydrogenase" refers to polypeptides (polypeptides) having an enzymatic activity of catalyzing the conversion of isobutyraldehyde to isobutanol or the conversion of 2-butanone and 2-butanol. Butanol dehydrogenase is a subset of a broad family of alcohol dehydrogenases. Butanol dehydrogenase is NAD- or NADP-dependent. NAD-dependent enzymes are known as EC 1.1.1.1 and include, for example, Rhodococcus ruber (Gene Bank No .: CAD36475, AJ491307). NADP-dependent enzymes are known as EC 1.1.1.2 and include, for example, Pyrococcus furiosus (Gene Bank number: AAC25556, AF013169). In addition, butanol dehydrogenase is available from Escherichia coli (Gene Bank No: NP 417484, NC_000913) and cyclohexanol dehydrogenase is available from Acinetobacter sp . ) (Gene Bank No .: AAG10026, AF282240). The term "butanol dehydrogenase" also refers to an enzyme that catalyzes the conversion of butyraldehyde to 1-butanol using NADH or NADPH as cofactor. Butanol dehydrogenase is, for example, C. acetobutylicum (Gene Bank No .: NP_149325, NC_001988; note: the enzyme has both aldehyde and alcohol dehydrogenase activity); NP_349891, NC_003030; And NP_349892, NC_003030) and Escherichia coli (Gene Bank No .: NP_417-484, NC_000913).
용어 "측쇄 케토산 데하이드로게나제"는, 전형적으로 NAD+(니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오타이드)를 전자 수용체로 사용하는, α-케토이소발러레이트의 이소부티릴-CoA(이소부티릴-보조효소 A)로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 측쇄 케토산 데하이드로게나제의 예는 EC 번호 1.2.4.4로 공지되어 있다. 이러한 측쇄 케토산 데하이드로게나제는 4개의 소단위로 구성되고 모든 소단위로부터의 서열은 바실러스 서브틸리스(Bacillus subtilis)(진뱅크 번호: CAB14336(서열 번호: 45), Z99116(서열 번호: 46); CAB14335(서열 번호: 47), Z99116(서열 번호: 48); CAB14334(서열 번호: 49), Z99116(서열 번호: 50); 및 CAB14337(서열 번호: 51), Z99116(서열 번호: 52)) 및 슈도모나스 푸티다(Pseudomonas putida)(진뱅크 번호: AAA65614(서열 번호: 53), M57613(서열 번호: 54); AAA65615(서열 번호: 55), M57613(서열 번호: 56); AAA65617(서열 번호: 57), M57613(서열 번호: 58); 및 AAA65618(서열 번호: 59), M57613(서열 번호: 60))을 포함하나, 이에 한정되지 않는 미생물의 거대한 배열로부터 이용가능하다.The term "side chain keto acid dehydrogenase" is typically NAD + isobutyryl -CoA (isobutyryl of, α- Kane toy Nassau multiple rate using the (nicotinamide adenine di-nucleotide) as an electron acceptor-coenzyme (Or polypeptides) having an enzyme activity that catalyzes the conversion of A to A). An example of a branched chain keto acid dehydrogenase is known as EC No. 1.2.4.4. These side chain keto acid dehydrogenases are composed of four subunits and the sequence from all subunits is Bacillus subtilis (Gene Bank number: CAB14336 (SEQ ID NO: 45), Z99116 (SEQ ID NO: 46); CAB14335 (SEQ ID NO: 47), Z99116 (SEQ ID NO: 48), CAB14334 (SEQ ID NO: 49), Z99116 (SEQ ID NO: 55), M57613 (SEQ ID NO: 56), AAA65617 (SEQ ID NO: 57), Pseudomonas putida (Gene Bank No .: AAA65614 ), M57613 (SEQ ID NO: 58), and AAA65618 (SEQ ID NO: 59), M57613 (SEQ ID NO: 60)).
용어 "아실화 알데하이드 데하이드로게나제"는, 전형적으로 NADH 또는 NADPH를 전자 공여체로 사용하는, 이소부티릴-CoA의 이소부티르알데하이드로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 아실화 알데하이드 데하이드로게나제의 예는 EC 번호 1.2.1.10 및 1.2.1.57로 공지되어 있다. 이러한 효소는 클로스트리디움 베이제린키이(Clostridium beijerinckii)(진뱅크 번호: AAD31841(서열 번호: 61), AF157306(서열 번호: 62)), 클로스트리디움 아세토부틸리쿰(Clostridium acetobutylicum)(진뱅크 번호: NP_149325(서열 번호: 63), NC_001988(서열 번호: 64); NP_149199(서열 번호: 65), NC_001988(서열 번호: 66)), 슈도모나스 푸티다(Pseudomonas putida)(진뱅크 번호: AAA89106(서열 번호: 67), U13232(서열 번호: 68)), 및 테르무스 테르모필루스(Thermus thermophilus)(진뱅크 번호: YP_145486(서열 번호: 69), NC_006461(서열 번호: 70))을 포함하나, 이에 한정되지 않는 다수의 공급원으로부터 이용가능하다.The term "acylated aldehyde dehydrogenase" refers to a polypeptide (or polypeptide) having an enzymatic activity that catalyzes the conversion of isobutyryl-CoA to isobutyraldehyde, typically using NADH or NADPH as the electron donor ). Examples of acylated aldehyde dehydrogenases are known as EC numbers 1.2.1.10 and 1.2.1.57. These enzymes include Clostridium < RTI ID = 0.0 > beijerinckii) (Gene Bank ID: AAD31841 (SEQ ID NO: 61), AF157306 (SEQ ID NO: 62)), Clostridium acetonitrile unit Tilikum (Clostridium acetobutylicum) (Gene bank number: NP_149325 (SEQ ID NO: 63), NC_001988 (SEQ ID NO: 64); NP_149199 (SEQ ID NO: 65), NC_001988 (SEQ ID NO: 66), c), footage Pseudomonas (Pseudomonas putida ) (Gene Bank No .: AAA89106 (SEQ ID NO: 67), U13232 (SEQ ID NO: 68)), and Thermus stearothermophilus but are not limited to, a variety of sources including, but not limited to, thermophilus (Gene Bank No .: YP_145486 (SEQ ID NO: 69), NC_006461 (SEQ ID NO: 70)
용어 "트랜스아미나제"는 알라닌 또는 글루타메이트를 아민 공여체로서 사용하는, α-케토이소발러레이트의 L-발린으로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 트랜스아미나제의 예는 EC 번호 2.6.1.42 및 2.6.1.66으로 공지되어 있다. 이러한 효소는 다수의 공급원으로부터 이용가능하다. 알라닌-의존성 효소에 대한 공급원의 예는 에스케리키아 콜라이(진뱅크 번호: YP_ 026231(서열 번호: 71), NC_000913(서열 번호: 72)) 및 바실러스 리케니포르미스(Bacillus licheniformis)(진뱅크 번호: YP_093743(서열 번호: 73), NC_006322 (서열 번호: 74))를 포함하나, 이에 한정되지 않는다. 글루타메이트-의존성 효소에 대한 공급원의 예는 에스케리키아 콜라이(진뱅크 번호: YP_026247(서열 번호: 75), NC_000913(서열 번호: 76)), 사카로마이세스 세레비지아에(Saccharomyces cerevisiae)(진뱅크 번호: NP_012682(서열 번호: 77), NC_001142(서열 번호: 78)) 및 메타노박테리움 테르모아우토트로피쿰(Methanobacterium thermoautotrophicum)(진뱅크 번호: NP_276546(서열 번호: 79), NC_000916(서열 번호: 80))을 포함하나, 이에 한정되지 않는다.The term "transaminase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of alpha -ketoisovalerate to L-valine using alanine or glutamate as an amine donor. Examples of transaminases are known as EC numbers 2.6.1.42 and 2.6.1.66. Such enzymes are available from multiple sources. Examples of sources for alanine-dependent enzymes include Escherichia coli (Gene Bank No .: YP_ 026231 (SEQ ID NO: 71), NC_000913 (SEQ ID NO: 72)) and Bacillus licheniformis ) (Gene Bank No .: YP_093743 (SEQ ID NO: 73), NC_006322 (SEQ ID NO: 74)). Examples of sources for glutamate-dependent enzymes include Escherichia coli (Gene Bank No .: YP_026247 (SEQ ID NO: 75), NC_000913 (SEQ ID NO: 76)), Saccharomyces cerevisiae (SEQ ID NO: 77), NC_001142 (SEQ ID NO: 78) and Methanobacterium thermoautotrophicum (Gene Bank No .: NP_276546 (SEQ ID NO: 79), NC_000916 : 80)), but is not limited thereto.
용어 "발린 데하이드로게나제"는 전형적으로 NAD(P)H를 전자 공여체로서 및 암모니아를 아민 공여체로서 사용하는, α-케토이소발러레이트의 L-발린으로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 발린 데하이드로게나제의 예는 EC 번호 1.4.1.8 및 1.4.1.9로 공지되어 있으며 이러한 효소는 스트렙토마이세스 코엘리콜로르(Streptomyces coelicolor)(진뱅크 번호: NP_628270 (서열 번호: 81), NC_003888(서열 번호: 82)) 및 바실러스 서브틸리스(진뱅크 번호: CAB14339(서열 번호: 83), Z99116(서열 번호: 84))를 포함하나, 이에 한정되지 않는 다수의 공급원으로부터 이용가능하다.The term "valine dehydrogenase" typically encompasses the enzymatic activity of catalyzing the conversion of alpha -ketoisobalrate to L-valine using NAD (P) H as the electron donor and ammonia as the amine donor (Or < / RTI > polypeptides). Examples of the valine dehydrogenase are known to the EC number 1.4.1.8 and 1.4.1.9, and these enzymes are Streptomyces nose Elie Le Colo (Streptomyces a) coelicolor) (Gene bank number: NP_628270 (SEQ ID NO: 81), NC_003888 (SEQ ID NO: 82)) and Bacillus subtilis (Gene Bank Number: CAB14339 (SEQ ID NO:: 83), Z99116 (84 SEQ ID NO) But are not limited to, a number of sources.
용어 "발린 데카복실라제"는 L-발린의 이소부틸아민 및 CO2로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 발린 데카복실라제의 예는 EC 번호 4.1.1.14로 공지되어 있다. 이러한 효소는 예를 들면, 스트렙토마이세스 비리디파키엔스(Streptomyces viridifaciens)(진뱅크 번호: AAN10242(서열 번호: 85), AY116644 (서열 번호: 86))와 같은 스트렙토마이세스에서 발견된다.The term "valynecarboxylase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of L-valine to isobutylamine and CO 2 . An example of valindeca fucilase is known as EC number 4.1.1.14. Such enzymes include, for example, Streptomyces irregularities Defining Keyence (Streptomyces viridifaciens) (Gene bank number: AAN10242 (SEQ ID NO: 85) is found in Streptomyces, such as (SEQ ID NO: 86)), AY116644.
용어 "오메가 트랜스아미나제"는 적합한 아미노산을 아민 공여체로서 사용하는, 이소부틸아민의 이소부티르알데하이드로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 오메가 트랜스아미나제의 예는 EC 번호 2.6.1.18로 공지되어 있으며 알칼리게네스 데니트리피칸스(Alcaligenes denitrificans)(AAP92672(서열 번호: 87), AY330220(서열 번호: 88)), 랄스토니아 유트로파(Ralstonia eutropha)(진뱅크 번호: YP_294474(서열 번호: 89), NC_007347(서열 번호: 90)), 쉐와넬라 오네이덴시스(Shewanella oneidensis)(진뱅크 번호: NP_719046(서열 번호: 91), NC_004347(서열 번호: 92)), 및 슈도모나스 푸티다(Pseudomonas putida)(진뱅크 번호: AAN66223(서열 번호: 93), AEO16776(서열 번호: 94))를 포함하나, 이에 한정되지 않는 다수의 공급원으로부터 이용가능하다.The term "omega transaminase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of isobutylamine to isobutyraldehyde, using the appropriate amino acid as the amine donor. An example of an omega transaminase is known as EC number 2.6.1.18 and is derived from Alcaligenes denitrificans (AAP92672 (SEQ ID NO: 87), AY330220 (SEQ ID NO: 88)), Ralstonia eutropha) (Gene Bank ID: YP_294474 (SEQ ID NO: 89), NC_007347 (SEQ ID NO: 90)), and guilloche Nella ohneyi den sheath (Shewanella oneidensis) (Gene bank number: NP_719046 (SEQ ID NO: 91), NC_004347 (SEQ ID NO: 92)), and Pseudomonas footage is (Pseudomonas but are not limited to, putida (Gene Bank number: AAN66223 (SEQ ID NO: 93), AEO16776 (SEQ ID NO: 94)).
용어 "아세틸-CoA 아세틸트랜스퍼라제"는 아세틸-CoA의 2개 분자의 아세토아세틸-CoA 및 보조효소 A(CoA)로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 아세틸-CoA 아세틸트랜스퍼라제의 예는 단쇄 아실-CoA 및 아세틸-CoA에 대해 기질 선호도(정방향의 반응)를 갖는 아세틸-CoA 아세틸트랜스퍼라제이며, 보다 광범위한 기질 범위를 갖는 효소(E.C. 2.3.1.16)가 또한 기능적일 것이지만, E.C. 2.3.1.9 [Enzyme Nomenclature 1992, Academic Press, San Diego]로서 분류된다. 아세틸-CoA 아세틸트랜스퍼라제는 다수의 공급원, 예를 들면, 에스케리키아 콜라이(진뱅크 번호: NP_416728, NC_000913; NCBI(생물공학 정보에 대한 국립 센터) 아미노산 서열, NCBI 뉴클레오타이드 서열), 클로스트리디움 아세토부틸리쿰(진뱅크 번호: NP_349476.1, NC_003030; NP_149242, NC_001988, 바실러스 서브틸리스(진뱅크 번호: NP_390297, NC_000964), 및 사카로마이세스 세레비지아에(진뱅크 번호: NP_015297, NC_001148)로부터 이용가능하다.The term "acetyl-CoA acetyltransferase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of two molecules of acetyl-CoA to acetoacetyl-CoA and coenzyme A (CoA). An example of an acetyl-CoA acetyltransferase is an acetyl-CoA acetyltransferase with substrate preference (positive reaction) for short chain acyl-CoA and acetyl-CoA, and an enzyme with a broader substrate range (EC 2.3.1.16) It will also be functional, but EC 2.3.1.9 [Enzyme Nomenclature 1992, Academic Press, San Diego]. Acetyl-CoA acetyltransferase may be obtained from a number of sources such as, for example, Escherichia coli (Gene Bank No: NP_416728, NC_000913; NCBI (National Center for Biotechnology Information) amino acid sequence, NCBI nucleotide sequence), Clostridium aceto (Gene Bank Number: NP_015297, NC_001148), Bacillus subtilis (Gene Bank Number: NP_390297, NC_000964), and Saccharomyces cerevisiae (Gene Bank No .: NP_349476.1, NC_003030; NP_149242, Lt; / RTI >
용어 "3-하이드록시부티릴-CoA 데하이드로게나제"는 아세토아세틸-CoA의 3-하이드록시부티릴-CoA로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 3-하이드록시부티릴-CoA 데하이드로게나제의 예는 (S)-3-하이드록시부티릴-CoA 또는 (R)-3-하이드록시부티릴-CoA에 대해 기질 선호도를 갖는, NADH-의존성일 수 있다. 예들은 E.C. 1.1.1.35 및 E.C. 1.1.1.30으로 각각 분류될 수 있다. 또한, 3-하이드록시부티릴-CoA 데하이드로게나제는 NADPH-의존성이며, (S)-3-하이드록시부티릴-CoA 또는 (R)-3-하이드록시부티릴-CoA에 대해 기질 선호도를 가질 수 있으며 각각 E.C. 1.1.1.157 및 E.C. 1.1.1.36으로 분류된다. 3-하이드록시부티릴-CoA 데하이드로게나제는 다수의 공급원, 예를 들면, 클로스트리디움 아세토부틸리쿰(Clostridium acetobutylicum)(진뱅크 번호: NP_349314, NC_003030), 바실러스 서브틸리스(진뱅크 번호: AAB09614, U29084), 랄스토니아 유트로파(Ralstonia eutropha)(진뱅크 번호: YP_294481, NC_007347), 및 알칼리게네스 유트로푸스(Alcaligenes eutrophus)(진뱅크 번호: AAA21973, J04987)로부터 이용가능하다.The term "3-hydroxybutyryl-CoA dehydrogenase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity that catalyze the conversion of acetoacetyl-CoA to 3-hydroxybutyryl-CoA. An example of a 3-hydroxybutyryl-CoA dehydrogenase is NADH-dependence ((S) -3-hydroxybutyryl-CoA having substrate preference for Lt; / RTI > Examples can be categorized as EC 1.1.1.35 and EC 1.1.1.30, respectively. In addition, 3-hydroxybutyryl-CoA dehydrogenase is NADPH-dependent and has a substrate preference for (S) -3-hydroxybutyryl-CoA or (R) -3-hydroxybutyryl- And are classified as EC 1.1.1.157 and EC 1.1.1.36, respectively. 3-hydroxy-butyryl -CoA dehydrogenase includes a plurality of sources, for example, Clostridium acetonitrile unit Tilikum (Clostridium acetobutylicum ) (Gene Bank No: NP_349314, NC_003030), Bacillus subtilis (Gene Bank No .: AAB09614, U29084), Ralstonia eutropha ) (Gene Bank No .: YP_294481, NC_007347), and Alcaligenes eutrophus ) (Gene Bank No .: AAA21973, J04987).
용어 "크로토나제"는 3-하이드록시부티릴-CoA의 크로토닐-CoA 및 H2O로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 크로토나제의 예는 (S)-3-하이드록시부티릴-CoA 또는 (R)-3-하이드록시부티릴-CoA에 대한 기질 선호도를 가질 수 있으며 각각 E.C. 4.2.1.17 및 E.C. 4.2.1.55로 분류될 수 있다. 크로토나제는 다수의 공급원, 예를 들면, 에스케리키아 콜라이(진뱅크 번호: NP_415911, NC_000913), 클로스트리디움 아세토부틸리쿰(진뱅크 번호: NP_349318, NC_003030), 바실러스 서브틸리스(진뱅크 번호: CAB13705, Z99113), 및 에어로모나스 카비아에(Aeromonas caviae)(진뱅크 번호: BAA21816, D88825)로부터 이용가능하다.The term "crotonase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of 3-hydroxybutyryl-CoA to crotyl-CoA and H 2 O. Examples of crotonazines may have substrate preferences for (S) -3-hydroxybutyryl-CoA or (R) -3-hydroxybutyryl-CoA and are described in EC 4.2.1.17 and EC 4.2.1.55 Can be classified. The crotonazate may be obtained from a number of sources such as, for example, Escherichia coli (Gene Bank No .: NP_415911, NC_000913), Clostridium acetobutylicum (Gene Bank No .: NP_349318, NC_003030), Bacillus subtilis No. CAB13705, Z99113), and Aeromonas caviae) (Gene bank number is available from BAA21816, D88825).
용어 "부티릴-CoA 데하이드로게나제"는 크로토닐-CoA의 부티릴-CoA로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 부티릴-CoA 데하이드로게나제의 예는 NADH-의존성, NADPH-의존성, 또는 플라빈-의존성이며 E.C. 1.3.1.44, E.C. 1.3.1.38, 및 E.C. 1.3.99.2로 각각 분류될 수 있다. 부티릴-CoA 데하이드로게나제는 다수의 공급원, 예를 들면, 클로스트리디움 아세토부틸리쿰(Clostridium acetobutylicum)(진뱅크 번호: NP_347102, NC_ 003030), 유글레나 그라실리스(Euglena gracilis)(진뱅크 번호: Q5EU90, AY741582), 스트렙토마이세스 콜리누스(Streptomyces collinus)(진뱅크 번호: AAA92890, U37135), 및 스트렙토마이세스 코엘리콜로르(Streptomyces coelicolor)(진뱅크 번호: CAA22721, AL939127)로부터 이용가능하다.The term "butyryl-CoA dehydrogenase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of crotyl-CoA to butyryl-CoA. Examples of butyryl-CoA dehydrogenases are NADH-dependent, NADPH-dependent, or flavin-dependent, and can be classified as EC 1.3.1.44, EC 1.3.1.38, and EC 1.3.99.2, respectively. Butyryl -CoA dehydrogenase includes a plurality of sources, for example, Clostridium acetonitrile unit Tilikum (Clostridium acetobutylicum ) (Gene Bank No: NP_347102, NC_003030), Euglena gracilis) (Gene bank number: Q5EU90, AY741582), Streptomyces call Linus (Streptomyces collinus) (Gene bank number: AAA92890, U37135), and Streptomyces nose Elie Le Colo (Streptomyces coelicolor (Gene Bank number: CAA22721, AL939127).
용어 "부티르알데하이드 데하이드로게나제"는 NADH 또는 NADPH를 보조인자를로 사용하는, 부티릴-CoA의 부티르알데하이드로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. NADH에 대해 선호도를 갖는 부티르알데하이드 데하이드로게나제는 E.C. 1.2.1.57로서 공지되어 있으며 예를 들면, 클로스트리디움 베이제린키이(Clostridium beijerinckii)(진뱅크 번호: AAD31841, AF157306) 및 클로스트리디움 아세토부틸리쿰(진뱅크 번호: NP.sub.--149325, NC.sub.--001988)로부터 이용가능하다.The term "butyraldehyde dehydrogenase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity that catalyzes the conversion of butyryl-CoA to butyraldehyde using NADH or NADPH as an assistant . Unit having a preference for NADH butyraldehyde dehydrogenase are known as EC 1.2.1.57, and, for example, Clostridium bay jerin key (Clostridium beijerinckii ) (Gene Bank No .: AAD31841, AF157306) and Clostridium Acetobutylicum (Gene Bank No .: NP.sub .-- 149325, NC.sub .-- 001988).
용어 "이소부티릴-CoA 뮤타제"는 부티릴-CoA의 이소부티릴-CoA로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 가진 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)를 말한다. 당해 효소는 보조효소 B12를 보조인자로 사용한다. 이소부티릴-CoA 뮤타제의 예는 EC 번호 5.4.99.13으로 공지되어 있다. 당해 효소는 스트렙토마이세스 신나모넨시스(Streptomyces cinnamonensis)(진뱅크 번호: AAC08713(서열 번호: 95), U67612(서열 번호: 96); CAB59633(서열 번호: 97), AJ246005(서열 번호: 98)), 스트렙토마이세스 코엘리콜라(Streptomyces coelicolor)(진뱅크 번호: CAB70645(서열 번호: 99), AL939123(서열 번호: 100); CAB92663(서열 번호: 101), AL939121(서열 번호: 102)), 및 스트렙토마이세스 아베르미틸리스(Streptomyces avermitilis)(진뱅크 번호: NP_824008(서열 번호: 103), NC_003155(서열 번호: 104); NP_824637(서열 번호: 105), NC_003155 (서열 번호: 106))를 포함하나, 이에 한정되지 않는 다수의 스트렙토마이세스에서 발견된다.The term "isobutyryl-CoA mutease" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of butyryl-CoA to isobutyryl-CoA. This enzyme uses coenzyme B 12 as a cofactor. An example of an isobutyryl-CoA mutease is known as EC number 5.4.99.13. The enzyme is called Streptomyces cinnamonensis cinnamonensis) (Gene bank number: AAC08713 (SEQ ID NO: 95), U67612 (SEQ ID NO: 96); CAB59633 (SEQ ID NO: 97), AJ246005 (SEQ ID NO: 98)), Streptomyces nose Eli coke (Streptomyces coelicolor) (Gene Bank Number: CAB70645 (SEQ ID NO: 99), AL939123 (SEQ ID NO: 100); CAB92663 (SEQ ID NO: 101), AL939121 (SEQ ID NO: 102)), and Streptomyces Abbe reumi subtilis (Streptomyces but are not limited to , avermitilis (SEQ ID NO: 103), NC_003155 (SEQ ID NO: 104), NP_824637 (SEQ ID NO: 105), NC_003155 It is found in myces.
용어 "아세토락테이트 데카복실라제"는 알파-아세토락테이트의 아세토인으로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 아세토락테이트 데카복실라제의 예는 EC 4.1.1.5로 공지되어 있으며, 예를 들면, 바실러스 서브틸리스(진뱅크 번호: AAA22223, L04470), 크렙시엘라 테리게나(Klebsiella terrigena)(진뱅크 번호: AAA25054, L04507) 및 크렙시엘라 뉴모니아에(Klebsiella pneumoniae)(진뱅크 번호: AAU43774, AY722056)로부터 이용가능하다.The term "acetolactate decarboxylase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of alpha-acetolactate to acetone. Examples of acetolactate decarboxylases are known as EC 4.1.1.5 and include, for example, Bacillus subtilis (Gene Bank No .: AAA22223, L04470), Klebsiella terrigena (Gene Bank No .: AAA25054, L04507) and Klebsiella pneumoniae ) (Gene Bank No .: AAU43774, AY722056).
용어 "아세토인 아미나제" 또는 "아세토인 트랜스아미나제"는 아세토인의 3-아미노-2-부탄올로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 아세토인 아미나제는 보조인자 피리독살 5'-포스페이트 또는 NADH 또는 NADPH를 이용할 수 있다. 수득되는 생성물은 3-위치에서 (R) 또는 (S) 입체화학을 가질 수 있다. 피리독살 포스페이트-의존성 효소는 알라닌 또는 글루타메이트와 같은 아미노산을 아미노 공여체로서 사용할 수 있다. NADH- 및 NADPH-의존성 효소는 암모니아를 제2 기질로서 사용할 수 있다. 아미노 알코올 데하이드로게나제로 또한 공지된 NADH-의존성 아세토인 아미나제의 적합한 예는 이토(Ito) 등(미국 특허 제6,432,688호)에 의해 기술되어 있다. 피리독살-의존성 아세토인 아미나제의예는 신(Shin) 및 김(Kim) 등(참조: J. Org. Chem. 67:2848-2853, 2002)에 의해 기술된 아민:피루베이트 아미노트랜스퍼라제(또한 아민:피루베이트 트랜스아미나제로 불림)이다.The term "acetoinaminase" or "acetoin transaminase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of acetone to 3-amino-2-butanol. Acetone aminase may utilize co-factor pyridoxal 5'-phosphate or NADH or NADPH. The resulting product may have (R) or (S) stereochemistry at the 3-position. Pyridoxal phosphate-dependent enzymes can use amino acids such as alanine or glutamate as amino donors. NADH- and NADPH-dependent enzymes can use ammonia as a secondary substrate. Suitable examples of NADH-dependent acetylinaminases also known as aminoalcohol dehydrogenases are described by Ito et al. (U.S. Patent No. 6,432,688). Examples of pyridoxal-dependent acetylinaminases include the amine: pyruvate aminotransferase described by Shin and Kim et al. (J. Org. Chem. 67: 2848-2853, 2002) Amine: pyruvate transaminase).
용어 "아세토인 키나제"는 아세토인의 포스포아세토인으로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 아세토인 키나제는 반응에서 ATP(아데노신 트리포스페이트) 또는 포스포에놀피루베이트를 포스페이트 공여체로서 사용할 수 있다. 예를 들면, 유사한 기질 디하이드록시아세토인에서 유사한 반응을 촉매화하는 효소는 EC 2.7.1.29로 공지된 효소를 포함한다(참조: Garcia-Alles, et al., Biochemistry 43:13037-13046, 2004).The term "acetoin kinase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of acetone to phosphoacetone. Acetone kinase can use ATP (adenosine triphosphate) or phosphoenolpyruvate as a phosphate donor in the reaction. For example, an enzyme that catalyzes a similar reaction in a similar substrate dihydroxyacetone includes an enzyme known as EC 2.7.1.29 (Garcia-Alles, et al., Biochemistry 43: 13037-13046, 2004 ).
용어 "아세토인 포스페이트 아미나제"는 포스포아세토인의 3-아미노-2-부탄올 O-포스페이트로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 아세토인 포스페이트 아미나제는 보조효소 피리독살 5'- 포스페이트, NADH, 또는 NADPH를 사용할 수 있다. 수득되는 생성물은 3-위치에서 (R) 또는 (S) 입체화학을 가질 수 있다. 피리독살 포스페이트-의존성 효소는 알라닌 또는 글루타메이트와 같은 아미노산을 사용할 수 있다. NADH-의존성 및 NADPH-의존성 효소는 암모니아를 제2의 기질로서 사용할 수 있다. 비록 포스포아세토인에서 당해 반응을 촉매화하는 효소가 보고되어 있지 않지만, 유사한 기질 세리놀 포스페이트에서 동종 반응을 수행하도록 제안된 피리독살 포스페이트-의존성 효소가 존재한다(참조: Yasuta, et al., Appl. Environ. Microbial. 67:4999-5009, 2001).The term "acetoinphosphate aminase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of phosphoacetone to 3-amino-2-butanol O-phosphate. Acetoin phosphate aminase may use the coenzyme pyridoxal 5'-phosphate, NADH, or NADPH. The resulting product may have (R) or (S) stereochemistry at the 3-position. Pyridoxal phosphate-dependent enzymes can use amino acids such as alanine or glutamate. NADH-dependent and NADPH-dependent enzymes can use ammonia as a secondary substrate. Although no enzyme has been reported to catalyze the reaction in phosphoacetone, there is a pyridoxal phosphate-dependent enzyme proposed to perform homologation in a similar substrate serinol phosphate (see Yasuta, et al. Appl. Environ. Microbiol. 67: 4999-5009, 2001).
또한 "아미노 알코올 O-포스페이트 리아제"로 불리는 용어 "아미노부탄올 포스페이트 포스폴리아제,"는 3-아미노-2-부탄올 O-포스페이트의 2-부타논으로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 가진 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)를 말한다. 아미노 부탄올 포스페이트 포스포-리아제는 보조효소 피리독살 5'-포스페이트를 이용할 수 있다. 유사한 기질 1-아미노-2-프로판올 포스페이트에서 유사한 반응을 촉매화하는 효소가 보고되어 있다(참조: Jones, et al., Biochem J. 134:167-182, 1973). 미국 특허원 공보 제2007/0259410호는 유기체 에르위니아 카로토보라(Erwinia carotovora)로부터의 아미노부탄올 포스페이트 포스포-리아제를 기술한다.The term "amino butanol phosphate phospholipase " also referred to as" amino alcohol O-phosphate lyase "refers to a polypeptide having an enzymatic activity that catalyzes the conversion of 3-amino-2-butanol O- (Or polypeptides). Aminobutanol phosphate phospho-lyase can utilize the coenzyme pyridoxal 5'-phosphate. Enzymes catalyzing a similar reaction in a similar substrate 1-amino-2-propanol phosphate have been reported (Jones, et al., Biochem J. 134: 167-182, 1973). U.S. Patent Application Publication No. 2007/0259410 discloses an organism Erwinia carotovora . < / RTI >
용어 "아미노부탄올 키나제"는 3-아미노-2-부탄올의 3-아미노-2-부탄올 O-포스페이트로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 아미노 부탄올 키나제는 ATP를 포스페이트 공여체로서 이용할 수 있다. 비록 3-아미노-2-부탄올에서 당해 반응을 촉매화하는 효소가 보고되어 있지는 않지만, 유사한 기질 에탄올아민 및 1-아미노-2-프로판올에서 동종 반응을 촉매화하는 효소는 보고되어 있다(참조: Jones, et al., 상기 참조). 미국 특허원 공보 제2009/0155870호는 실시예 14에서, 에르위니아 카로토보라 아종 아트로셉티카(Erwinia carotovora subsp. Atroseptica)의 아미노 알코올 키나제를 기술하고 있다.The term "aminobutanol kinase" refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of 3-amino-2-butanol to 3-amino-2-butanol O-phosphate. Aminobutanol kinase can utilize ATP as a phosphate donor. Although enzymes catalyzing this reaction have not been reported in 3-amino-2-butanol, enzymes catalyzing homologous reactions in similar substrates ethanolamine and 1-amino-2-propanol have been reported (Jones , et al., supra). U.S. Patent Application Publication No. 2009/0155870 describes an amino alcohol kinase of Erwinia carotovora subsp. Atroseptica in Example 14.
"아세토인 리덕타제"로 또한 공지된 용어 "부탄디올 데하이드로게나제"는 아세토인의 2,3-부탄디올로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 가진 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 부탄디알 데하이드로게나제는 알코올 데하이드로게나제의 광범위한 계열의 소세트이다. 부탄디올 데하이드로게나제 효소는 알코올 생성 시 (R)- 또는 (S)-입체화학의 생성을 위한 특이성을 가질 수 있다. (S)-특이적인 부탄디올 데하이드로게나제는 EC 1.1.1.76로서 공지되어 있으며 예를 들면, 크렙시엘라 뉴모니아에(Klebsiella pneumoniae)(진뱅크 번호: BBA13085, D86412)로부터 이용가능하다. (R)-특이적인 부탄디올 데하이드로게나제는 EC 1.1.1.4로 공지되어 있으며 예를 들면, 바실러스 세레우스(Bacillus cereus)(진뱅크 번호 NP 830481, NC_004722; AAP07682, AE017000), 및 락토코쿠스 락티스(Lactococcus lactis)(진뱅크 번호 AAK04995, AE006323)로부터 이용가능하다.The term "butanediol dehydrogenase " also known as" acetoyl reductase "refers to polypeptides (or polypeptides) having an enzymatic activity catalyzing the conversion of acetone to 2,3-butanediol. Butanedialdehydrogenase is a subset of a broad family of alcohol dehydrogenases. The butanediol dehydrogenase enzyme may have specificity for the production of (R) - or (S) - stereochemistry at the time of alcohol production. (S) -specific butanediol dehydrogenase is known as EC 1.1.1.76 and is described, for example, in Klebsiella pneumoniae ) (Gene Bank number: BBA13085, D86412). (R) - specific butanediol dehydrogenase are known as EC 1.1.1.4 and, for example, Bacillus cereus (Bacillus cereus) (Gene bank number NP 830481, NC_004722; available from AAP07682, AE017000), and Lactococcus lactis kusu nose (Lactococcus lactis) (Gene bank number AAK04995, AE006323).
"디알 데하이드라타제" 또는 "프로판디올 데하이드라타제"로서 또한 공지된 용어 "부탄디올 데하이드라타제"는 2,3-부탄디올의 2-부타논으로의 전환을 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 부탄디올 데하이드라타제는 보조효소 아데노실 코발라민(또한 보조효소 Bw 또는 비타민 B12로서 공지됨; 비록 비타민 B12는 보조효소 B12가 아닌 코발라민의 다른 형태를 또한 말할 수 있다)을 이용할 수 있다. 아데노실 코발라민-의존성 효소는 EC 4.2.1.28로서 공지되어 있으며, 예를 들면, 크렙시엘라 옥시토카(Klebsiella oxytoca)(진뱅크 번호: AA08099(알파 소단위), D45071; BAA08100(베타 소단위), D45071; 및 BBA08101(감마 소단위), D45071(모든 3개의 소단위는 활성을 위해 필요함을 주목함), 및 크렙시엘라 뉴모니아(Klebsiella pneumonia)(진뱅크 번호: AAC98384(알파 소단위), AF102064; 진뱅크 번호: AAC98385(베타 소단위), AF102064, 진뱅크 번호: AAC98386(감마 소단위), AF102064)로부터 이용가능하다. 다른 적합한 디알 데하이드라타제는 살모넬라 티피무리움(Salmonella typhimurium)(진뱅크 번호: AAB84102 (거대 소단위), AF026270; 진뱅크 번호: AAB84103(중간 소단위), AF026270; 진뱅크 번호: AAB84104(작은 소단위), AF026270); 및 락토바실러스 콜리노이데스(Lactobacillus collinoides)(진뱅크 번호: CAC82541(거대 소단위), AJ297723 ; 진뱅크 번호: CAC82542(중간 소단위); AJ297723; 진뱅크 번호: CAD01091(작은 소단위), AJ297723); 및 락토바실러스 브레비스(특히 균주 CNRZ 734 및 CNRZ 735, 참조: Speranza, et al., J. Agric. Food Chem. 45:3476-3480, 1997)로부터의 효소, 및 상응하는 효소를 암호화하는 뉴클레오타이드 서열로부터 이용가능한 B12-의존성 디알 데하이드라타제를 포함하지만 이에 제한되지 않는다. 디알 데하이드라타제 유전자 분리 방법은 당해 분야에 잘 공지되어 있다(예를 들면, 미국 특허 제5,686,276호).The term "butanediol dehydratase " also known as" dial dehydratase "or" propanediol dehydratase "refers to an enzyme having the enzymatic activity of catalyzing the conversion of 2,3-butanediol to 2- Refers to polypeptides (or polypeptides). The butanediol dehydratase can utilize coenzyme adenosyl cobalamin (also known as coenzyme Bw or vitamin B12, although vitamin B12 can also refer to other forms of cobalamin, not coenzyme B12). Adenosyl cobalamin-dependent enzymes are known as EC 4.2.1.28, and include, for example, Klebsiella oxytoca) (Gene bank number: AA08099 (alpha subunit), D45071; BAA08100 (beta subunit), D45071; and BBA08101 (gamma subunit), D45071 (all three subunits are also noted a need for an activity), and keurep when Ella Klebsiella pneumonia ) (available from Gene Bank Number: AAC98384 (alpha subunit), AF102064; Gene Bank Number: AAC98385 (beta subunit), AF102064, Gene Bank Number: AAC98386 (Gamma Subunit), AF102064. Other suitable Diallo to Hydra hydratase is Salmonella typhimurium (Salmonella typhimurium ) (Gene Bank Number: AAB84102 (Giant Subunit), AF026270; Gene Bank Number: AAB84103 (intermediate subunit), AF026270; Gene Bank Number: AAB84104 (small subunit), AF026270); And Lactobacillus < RTI ID = 0.0 > collinoides ) (Gene Bank Number: CAC82541 (giant subunit), AJ297723; Gene Bank Number: CAC82542 (intermediate subunit); AJ297723; Gene Bank Number: CAD01091 (small subunit), AJ297723); And enzymes from Lactobacillus brevis (in particular strains CNRZ 734 and CNRZ 735, see Speranza, et al., J. Agric. Food Chem. 45: 3476-3480, 1997), and from nucleotide sequences encoding the corresponding enzymes But are not limited to, the available B12-dependent dialdehyde hydratase. Methods for the isolation of didehydratase genes are well known in the art (see, for example, U.S. Patent No. 5,686,276).
용어 "피루베이트 데카복실라제"는 피루브산의 아세트알데하이드 및 이산화탄소로의 탈카복실화를 촉매화하는 효소 활성을 갖는 폴리펩타이드(또는 폴리펩타이드들)을 말한다. 피루베이트 데하이드로게나제는 EC 번호 4.1.1.1로 공지되어 있다. 이들 효소는 사카로마이세스 세레비지아에(Saccharomyces cerevisiae)(진뱅크 번호: CAA97575(서열 번호: 107), CAA97705 (서열 번호: 109), CAA97091(서열 번호: 111))를 포함하는 다수의 효모에서 발견된다.The term " pyruvate decarboxylase "refers to polypeptides (or polypeptides) having enzymatic activity catalyzing decarboxylation of pyruvic acid to acetaldehyde and carbon dioxide. Pyruvate dehydrogenase is known as EC number 4.1.1.1. These enzymes are in my process to the three Levy Jia Saccharomyces (Saccharomyces cerevisiae) (Gene bank number: CAA97575 (SEQ ID NO: 107), CAA97705 (SEQ ID NO: 109), CAA97091: It is found in a number of yeast containing (SEQ ID NO: 111)).
본원에 제공된 것으로서 이소부탄올 생합성 경로를 포함하는 미생물은 하나 이상의 추가의 변형을 포함할 수 있는 것으로 인식될 것이다. 미국 특허원 공보 제2009/0305363호(참조로 포함됨)은 세포질에 국재된 아세토락테이트 신타제의 발현 및 피부베이트 데카복실라제 활성의 실질적인 제거를 위해 효모를 가공함으로써 피루베니트의 아세토락테이트로의 증가된 전환을 기재하고 있다. 일부 구현예에서, 미생물은 글리세롤-3-포스페이트 데하이드로게나제 활성을 감소시키기 위한 변형 및/또는 미국 특허원 공보 제2009/0305363호(본원에 참조로 포함됨)에 기술된 것으로서 피루베이트 데카복실라제 활성을 갖는 폴리펩타이드를 암호화하는 적어도 하나의 유전자의 파괴 또는 피루베이트 데카복실라제 유전자 발현을 제어하는 조절 성분을 암호화하는 적어도 하나의 유전자의 파괴, 및/또는 미국 특허원 공보 제 2010/0120105호(본원에 참조로 포함됨)에 기술된 것으로서 엔트너 도우도로프 경로(Entner-Doudoroff Pathway) 또는 등가물 균형 감소를 통한 증가된 탄소 유출을 제공하는 변형을 포함할 수 있다. 다른 변형은 피루베이트-이용 생합성 경로에서의 단계를 촉매화하는 폴리펩타이드를 암호화하는 적어도 하나의 폴리뉴클레오타이드의 통합을 포함한다. 다른 변형은 아세토락테이트 리덕타제 활성을 갖는 폴리펩타이드를 암호화하는 내인성 폴리뉴클레오타이드의 적어도 하나의 결실, 돌연변이, 및/또는 치환을 포함한다. 일부 구현예에서, 아세토락테이트 리덕타제 활성을 갖는 폴리펩타이드는 사카로마이세스 세레비지아에 또는 이의 동족체의 YMR226C(서열 번호: 127, 128)이다. 추가의 변형은 알데하이드 데하이드로게나제 및/또는 알데하이드 옥사다제 활성을 갖는 폴리펩타이드를 암호화하는 내인성 폴리뉴클레오타이드에서의 결실, 돌연변이 및/또는 치환을 포함한다. 일부 구현예에서, 알데하이드 데하이드로게나제 활성을 갖는 폴리펩타이드는 사카로마이세스 세레비지아에 또는 이의 동족체로부터의 ALD6이다. 효모 생산 숙주 세포가 pdc-인 글루코즈 억제를 감소시키는 효과를 갖는 유전적 변형은 본원에 참조로 혼입된 미국 특허원 공보 제2011/0124060호에 기술되어 있다. 일부 구현예에서, 결실되거나 하향-조절된 피루베이트 데카복실라제는 PDC1, PDC5 , PDC6 , 및 이들의 조합으로 이루어진 그룹으로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 피루베이트 데카복실라제는 표 1의 효소로부터 선택된다. 일부 구현예에서, 미생물은 글리세르알데하이드-3-포스페이트의 글리세레이트 1,3, 비스포스페이트로의 전환을 촉매화하는 폴리펩타이드를 암호화하는 폴리뉴클레오타이드의 결실 또는 하향-조절을 함유할 수 있다. 일부 구현예에서, 당해 반응을 촉매화하는 효소는 글리세르알데하이드-3-포스페이트 데하이드로게나제이다.It will be appreciated that a microorganism comprising an isobutanol biosynthetic pathway as provided herein may comprise one or more additional modifications. U.S. Patent Application Publication No. 2009/0305363 (incorporated herein by reference) discloses a method for the production of acetolactate synthetase from cytoplasm and the production of acetolactate from pyruvate by treating the yeast for substantial elimination of skin bait decarboxylase activity ≪ / RTI > In some embodiments, the microorganism is a variant for reducing glycerol-3-phosphate dehydrogenase activity and / or as described in U.S. Patent Application Publication No. 2009/0305363 (incorporated herein by reference), pyruvate decarboxylase Destruction of at least one gene encoding a polypeptide having activity, or destruction of at least one gene encoding a regulatory element that controls pyruvate decarboxylase gene expression, and / or the disruption of at least one gene encoding a polypeptide having activity (US Patent Publication No. 2010/0120105 The Entner-Doudoroff Pathway as described in U.S. Patent Application Serial No. 10/1992, the disclosure of which is incorporated herein by reference, or a modification that provides increased carbon efflux through equivalent balance reduction. Other variations include the incorporation of at least one polynucleotide encoding a polypeptide that catalyzes a step in a pyruvate-utilizing biosynthetic pathway. Other variations include deletion, mutation, and / or substitution of at least one endogenous polynucleotide encoding a polypeptide having acetolactate reductase activity. In some embodiments, the polypeptide having acetolactate reductase activity is YMR226C (SEQ ID NO: 127, 128) of Saccharomyces cerevisiae or a homologue thereof. Further modifications include deletions, mutations and / or substitutions in endogenous polynucleotides encoding polypeptides with aldehyde dehydrogenase and / or aldehyde oxadase activity. In some embodiments, the polypeptide having aldehyde dehydrogenase activity is ALD6 from Saccharomyces cerevisiae or analogs thereof. Genetic variants that have the effect of reducing yeast-producing host cell pdc- inhibiting glucose are described in U.S. Patent Application Publication No. 2011/0124060, incorporated herein by reference. In some embodiments, the deleted or down-regulated pyruvate decarboxylase is selected from the group consisting of PDC1 , PDC5 , PDC6 , and combinations thereof. In some embodiments, the pyruvate decarboxylase is selected from the enzymes of Table 1. In some embodiments, the microorganism may contain deletion or down-regulation of a polynucleotide encoding a polypeptide that catalyzes the conversion of glyceraldehyde-3-phosphate to
[표 1][Table 1]
일부 구현예에서, 어떠한 특수한 핵산 분자 또는 폴리펩타이드도 본원에 기술된 뉴클레오타이드 서열 또는 폴리펩타이드 서열에 대해 적어도 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 또는 99% 동일할 수 있다. 당해 분야에 공지된 것으로서 용어 "동질성 퍼센트"는 서열을 비교하여 측정된 것으로서, 2개 이상의 폴리펩타이드 서열 또는 2개 이상의 폴리뉴클레오타이드 서열 사이의 관계이다. 당해 분야에서, "동질성"은 또한 이러한 서열의 스트링(string) 사이의 일치에 의해 측정된 바와 같은, 경우일 수 있기 때문에, 폴리펩타이드 또는 폴리뉴클레오타이드 서열 사이의 서열 관련성의 정도를 의미한다. 동질성 및 유사성은 문헌: Computational Molecular Biology (Lesk, A. M., Ed.) Oxford University: NY (1988); Biocomputing: Informatics and Genome Projects (Smith, D. W., Ed.) Academic: NY (1993); Computer Analysis of Sequence Data , Part I (Griffin, A. M., and Griffin, H. G., Eds.) Humania: NJ (1994); Sequence Analysis in Molecular Biology (von Heinje, G., Ed.) Academic (1987); and Sequence Analysis Primer (Gribskov, M. and Devereux, J., Eds.) Stockton: NY (1991)에 기재된 것들을 포함하나 이에 한정되지 않는, 공지된 방법으로 용이하게 계산할 수 있다.In some embodiments, any particular nucleic acid molecule or polypeptide is at least 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, or 99% identical to the nucleotide sequence or polypeptide sequence described herein. Can be the same. As is known in the art, the term "homology percentage" is the relationship between two or more polypeptide sequences or two or more polynucleotide sequences, as determined by comparing the sequences. In the art, "homology" also refers to the degree of sequence relatedness between a polypeptide or polynucleotide sequence, as it may be the case, as determined by the correspondence between the strings of such sequences. Homology and similarity are described in Computational Molecular Biology (Lesk, AM, Ed.) Oxford University: NY (1988); Biocomputing: Informatics and Genome Projects (Smith, DW, Ed.) Academic: NY (1993); Computer Analysis of Sequence Data , Part I ( Griffin, AM, and Griffin, HG, Eds.) Humania: NJ (1994); Sequence Analysis in Molecular Biology (von Heinje, G., Ed.) Academic (1987); and Sequence Analysis Primer (Gribskov, M. and Devereux, J., Eds.) Stockton: NY (1991).
동질성을 측정하는 방법은 시험한 서열들 사이의 가장 우수한 일치를 제공하도록 설계된다. 동질성 및 유사성을 측정하는 방법은 시판되는 컴퓨터 프로그램에서 암호화되어 있다. 서열 정렬 및 동질성 퍼센트 계산은 LASERGENE 생물정보 게산 세트(bioinformatics computing suite)(제조원: 위스콘신주 매디슨 소재의 DNASTAR Inc., Madison, WI)의 MegAlignTM 프로그램을 사용하여 수행할 수 있다. 서열의 다중 정렬은 클러스탈(Clustal) V(Higgins 및 Sharp에 의해 문헌, CABIOS. 5:151-153, 1989; Higgins, et al., Comput. Appl. Biosci. 8:189-191, 1992에 기술됨)를 표지하고 LASERGENE 생물정보 계산 세트(bioinformatics computing suite)(제조원: DNASTAR Inc.)의 MegAlignTM 프로그램에서 밝혀진 정렬 방법에 상응하는 정렬의 클러스탈 V 방법을 포함하는 수개의 다양한 알고리즘을 포함하는 클러스탈 정렬 방법을 사용하여 수행할 수 있다. 다중 정렬의 경우, 디폴트 값(default value)은 GAP PENALTY = 10 및 GAP LENGTH PENALTY = 10에 상응한다. 클러스탈 방법을 사용한 단백질 서열의 동질성 퍼센트의 계산 및 쌍방식 정렬을 위한 디폴트 매개변수는 KTUPLE=1, GAP PENALTY=3, WINDOW=5 및 DIAGONALS SAVED=5이다. 핵산의 경우, 이들 매개변수는 KTUPLE=2, GAP PENALTY=5, WINDOW=4 및 DIAGONALS SAVED=4이다. 클러스탈 V 프로그램을 사용하여 서열을 정렬한 후, 동일한 프로그램에서 서열 거리 표를 관찰함으로써 동질성 퍼센트를 수득하는 것이 가능하다. 또한, 정렬의 클러스탈 W 방법이 이용가능하며 클러스탈 W(Higgins 및 Sharp에 의해, CABIOS. 5:151-153, 1989; Higgins, et al., Comput. Appl. Biosci. 8:189-191, 1992에 기술됨)를 표지하고 LASERGENE 생물정보 계산 세트(제조원: DNASTAR Inc.)의 MegAlignTMv6.1 프로그램에서 밝혀진 정렬 방법에 상응한다. 다중 정렬을 위한 디폴트 매개변수[갭 패널티(GAP PENALTY) = 10, 갭 길이 패널티(GAP LENGTH PENALTY) = 0.2, 지연 다이버겐 서열(Delay Divergen Seqs)(%)=30, DNA 전이 중량=0.5, 단백질 중량 매트릭스 = 고넷 시리즈(Gonnet Series), DNA 중량 매트릭스 = IUB ). 클러스탈 W 프로그램을 사용한 서열의 정렬 후, 동일한 프로그램에서 서열 거리 표를 관찰하여 동질성 퍼센트를 수득하는 것이 가능하다.Methods for measuring homology are designed to provide the best match between tested sequences. Methods of measuring homogeneity and similarity are encrypted in commercially available computer programs. Sequence alignments and percent homogeneity calculations can be performed using the MegAlign TM program of the LASERGENE bioinformatics computing suite (DNASTAR Inc., Madison, Wis.), Madison, Wis. Multiple alignments of sequences are described in Clustal V (Higgins and Sharp, CABIOS. 5: 151-153, 1989; Higgins, et al., Comput. Appl. Biosci. 8: 189-191, ) Containing a number of various algorithms including the clusteral V method of alignment corresponding to the alignment method identified in the MegAlign TM program of the LASERGENE bioinformatics computing suite (manufacturer: DNASTAR Inc.) Can be carried out using a star sorting method. For multiple alignments, the default value corresponds to GAP PENALTY = 10 and GAP LENGTH PENALTY = 10. The default parameters for calculation of percent identity and pairwise alignment of protein sequences using the clustering method are KTUPLE = 1, GAP PENALTY = 3, WINDOW = 5, and DIAGONALS SAVED = 5. For nucleic acids, these parameters are KTUPLE = 2, GAP PENALTY = 5, WINDOW = 4 and DIAGONALS SAVED = 4. It is possible to obtain homogeneity percentages by aligning the sequences using a Cluster V program and then observing the sequence distance table in the same program. Clustal W methods of alignment are also available and are available from Clustal W (Higgins and Sharp, CABIOS. 5: 151-153, 1989; Higgins, et al., Comput. Appl. Biosci. 8: 189-191, 1992) and corresponds to the alignment method revealed in the MegAlign TM v6.1 program of the LASERGENE bioinformatics calculation set (DNASTAR Inc.). (GAP PENALTY = 10, GAP LENGTH PENALTY = 0.2, Delay Divergen Seqs (%) = 30, DNA transfer weight = 0.5, Weight Matrix = Gonnet Series, DNA Weight Matrix = IUB). After aligning the sequence with the cluster W program, it is possible to observe the sequence distance table in the same program to obtain the percent identity.
표준 재조합체 DNA 및 분자 클로닝 기술은 당해 기술분야에 공지되어 있으며, 문헌[참조: Sambrook 등의 문헌(Sambrook, J., Fritsch, E. F. and Maniatis, T.(Molecular Cloning: A Laboratory Manual; Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, 1989; 본원에서 Maniatis로 언급됨) 및 Ausubel 등의 문헌(Ausubel, et al., Current Protocols in Molecular Biology, pub. by Greene Publishing Assoc, and Wiley-Interscience, 1987)]에 기재되어 있다. 부탄올 생합성 경로를 포함하는 미생물을 작제하기 위한 방법의 예는, 예를 들면, 미국 특허 제7,851,188호, 및 미국 특허공개공보 제2007/0092957호; 제2007/0259410호; 제2007/0292927호; 제2008/0182308호; 제2008/0274525호; 제2009/0155870호; 제2009/0305363호; 및 제2009/0305370호에 기재되어 있으며, 각각의 전체 내용은 본원에 참조로 혼입된다.Standard recombinant DNA and molecular cloning techniques are well known in the art and are described in Sambrook et al. (Sambrook, J., Fritsch, EF and Maniatis, T. (Molecular Cloning: A Laboratory Manual; Cold Spring Harbor (Ausubel, et al., Current Protocols in Molecular Biology, pub. By Greene Publishing Assoc, and Wiley-Interscience, 1987) Examples of methods for constructing a microorganism including a butanol biosynthetic pathway are described in, for example, U.S. Patent No. 7,851,188 and U.S. Patent Application Publication 2007/0092957; 2007/0259410; 2007 / 0292927, 2008/0182308, 2008/0274525, 2009/0155870, 2009/0305363 and 2009/0305370, the entire contents of each being incorporated herein by reference.
또한, 본 발명의 각종 구현예들이 본원에 기재되어 왔지만, 이들은 단지 예로서 제공되어 왔으며, 제한하는 것이 아니라는 것을 이해해야 한다. 관련 분야의 숙련가에게는, 형태 및 상세한 사항에 있어서의 각종 변화가 본 발명의 취지 및 영역으로부터 벗어나지 않고 여기에 이루어질 수 있음이 명백할 것이다. 따라서, 본 발명의 범위 및 영역은 위에서 기재한 예시적인 구현예들 중 어느 것으로 제한되지 않아야 하지만, 특허청구범위 및 이의 균등물에 따라서만 정의되어야 한다.In addition, while various embodiments of the invention have been described herein, it should be understood that they have been provided by way of example only, and not limitation. It will be apparent to those skilled in the relevant art that various changes in form and details may be made therein without departing from the spirit and scope of the invention. Accordingly, the breadth and scope of the present invention should not be limited by any of the above-described exemplary implementations, but should be defined only in accordance with the following claims and their equivalents.
본 명세서에서 언급된 모든 공보, 특허 및 특허원은, 본 발명이 관련되는 당해 분야의 숙련가의 기술 수준의 지표이며, 각각의 개개의 공보, 특허 또는 특허원이 구체적으로 및 개별적으로 참조로 포함되는 것으로 나타낸 경우와 같이 동일한 정도로 본원에 참조로 혼입된다.All publications, patents, and patent applications mentioned in this specification are indicative of the level of skill of those skilled in the art to which this invention pertains and each individual publication, patent or patent application is herein incorporated by reference in specificity and in its Quot; is < / RTI > incorporated herein by reference to the same extent.
실시예Example
다음의 비제한적인 실시예는 본 발명을 추가로 나타낼 것이다. 다음의 실시예는 공급원료로서 옥수수를 포함하지만, 다른 생물량 공급원이 본 발명으로부터 벗어나지 않고 공급원료에 사용될 수 있음을 이해하여야 한다.The following non-limiting examples will further illustrate the present invention. It should be understood that the following examples include corn as the feedstock, but other biomass feedstocks can be used for the feedstock without departing from the invention.
본원에서 사용된 것으로서, 사용된 약어의 의미는 다음과 같았다: "g"은 그램을 의미하고, "kg"은 킬로그램을 의미하고, "lbm"은 파운드 질량을 의미하고, "gpm"은 분당 갤론을 의미하고, "gal"은 갤론을 의미하며, "MMGPY"는 년당 백만 갤론을 의미한다. "L"은 리터를 의미하고, "mL"는 밀리리터를 의미하고, "uL"은 마이크로리터를 의미하고, "mL/L"은 리터당 밀리리터를 의미하고, "mL/min"은 분당 밀리리터를 의미하고, "min"은 분을 의미하고, "hr"은 시간을 의미하고, "DI"는 탈이온화됨을 의미하고, "uM"는 마이크로미터를 의미하고, "nm"은 나노미터를 의미하고, "w/v"는 중량/용적을 의미하고, "중량%"는 중량 퍼센트를 의미하고, "OD"는 광학 밀도를 의미하고, "OD600"은 600 nM의 파장에서의 광학 밀도를 의미하고, "dcw"는 무수 세포 중량을 의미하고, "rpm"은 분당 회전수를 의미하고, "℃"는 섭씨를 의미하고, "℃/min"은 분당 섭씨 온도를 의미하고, "slpm"은 분당 표준 리터를 의미하고, "ppm"은 백만부를 의미하고, "cP"는 센티포이즈(centipoise)를 의미하고, "ID"는 내경을 의미하며, "GC"는 기체 크로마토그래프를 의미한다.As used herein, the abbreviations used have the following meanings: "g" means gram, "kg" means kilogram, "lbm" means pound mass, "gpm" means gallon per minute , "Gal" means gallon, and "MMGPY" means million gallons per year. ML / min " means milliliters per liter, "mL / min" means milliliters per minute, "&Quot; um "means micrometer," nm "means nanometer, and "" w / v "means weight / volume," wt% "means weight percent," OD "means optical density," OD 600 "means optical density at wavelength of 600 nM , "dcw" means the weight of anhydrous cells, "rpm" means the number of revolutions per minute, "C" means Celsius, "C / min" means Celsius temperature per minute, "slpm" Standard liter, "ppm" means one million, "cP" means centipoise, "ID" means inner diameter, and "GC" means gas chromatograph.
실시예Example 1 One
질량 전달 속도에 대한 용해되지 않은 고체의 효과Effect of undissolved solids on mass transfer rate
다음의 실험을 수행하여, SSF 배취에 대한 액체 상의 평균 조성물을 모사하기 위하여 동시 당화 및 발효(SSF) 발효(즉, 올리고당의 약 50% 전환)를 통하여 대략 반인, 옥수수 매쉬로부터 유도된 발효 브로쓰의 조성물을 모의하는 수성 상으로부터 i-BuOH의 질량 전달 속도에 대한 용해되지 않은 고체의 영향을 측정하였다.Fermentation broth derived from corn mash, approximately half-way through simultaneous saccharification and fermentation (SSF) fermentation (i.e., about 50% conversion of the oligosaccharide) to simulate the liquid composition for the SSF batch, The effect of undissolved solids on the mass transfer rate of i- BuOH from the aqueous phase simulating the composition of < RTI ID = 0.0 >
대략 100kg의 액화된 옥수수 매쉬를 30L 들이의 유리, 재킷형 수지 케틀(jacketed resin kettle)을 사용하여 3개의 동등한 배취 속에서 제조하였다. 케틀을 기계적 교반, 온도 조절, 및 pH 조절을 사용하여 설정하였다. 3개의 배취를 위해 사용된 프로토콜은 다음과 같았다: (a) 분쇄된 옥수수를 수돗물과 혼합함(무수물 기준으로 30중량% 옥수수), (b) 슬러리를 교반하면서 55℃로 가열함, (c) 슬러리의 pH를 NaOH 또는 H2SO4를 사용하여 5.8로 조정함, (d) 알파-아밀라제를 가함(무수 옥수수 기준으로 0.02중량%), (e) 슬러리를 85℃로 가열함, (f) pH를 5.8로 조절함, (g) pH를 5.8로 유지시키면서 슬러리를 85℃에서 2시간 동안 유지함, 및 (h) 슬러리를 25℃로 냉각시킴.Approximately 100 kg of liquefied corn mash was prepared in three equivalent batches using a 30 liter glass, jacketed resin kettle. The kettle was set using mechanical stirring, temperature control, and pH control. The protocol used for the three batches was as follows: (a) mixing the ground corn with tap water (30 wt% corn on anhydrous basis), (b) heating the slurry to 55 & Adjusting the pH of the slurry to 5.8 using NaOH or H 2 SO 4 , (d) adding alpha-amylase (0.02 wt% on anhydrous maize), (e) heating the slurry to 85 ° C, adjusting the pH to 5.8, (g) maintaining the slurry at 85 ° C for 2 hours while maintaining the pH at 5.8, and (h) cooling the slurry to 25 ° C.
Pioneer 3335 복합 옥수수, 전체 알맹이 황색 옥수수(whole kernel yellow corn, 제조원: 아이오와주 존스톤 소재의 Pioneer Hi-Bred International)를 사용하였고, 이를 1mm 스크린을 사용하여 햄머-분쇄기 속에서 분쇄하였다. 분쇄된 옥수수의 수분 함량은 12중량%이었으며, 분쇄된 옥수수의 전분 함량은 무수 옥수수를 기준으로 하여 71.4중량%이었다. 알파-아밀라제 효소는 Liquozyme® SC DS(제조원: 노쓰캐롤라이나주 프랭클린톤 소재의 Novozymes)이었다. 합해진 3개의 배취에 대해 사용된 성분의 총량은 다음과 같았다: 33.9kg의 분쇄된 옥수수(12% 수분), 65.4kg의 수돗물, 및 0.006kg의 Liquozyme® SC DS. 총 0.297kg의 NaOH (17중량%)를 가하여 pH를 조절하였다. 어떠한 H2SO4도 필요하지 않았다. 3개의 30L 배취로부터 회수된 액화된 옥수수 매쉬의 총량은 99.4kg이었다.Pioneer 3335 compound corn, whole kernel yellow corn (Pioneer Hi-Bred International, Inc., Johnston, Iowa) was used and ground in a hammer-grinder using a 1 mm screen. The moisture content of the ground corn was 12 wt%, and the content of starch in the ground corn was 71.4 wt% based on anhydrous corn. Alpha-amylase enzyme Liquozyme ® SC DS: It was (manufactured by Novozymes North Carolina Franklin t material). The total amount of ingredients used for the three batches combined was as follows: 33.9 kg of ground corn (12% moisture), 65.4 kg of tap water, and 0.006 kg of Liquozyme ® SC DS. A total of 0.297 kg of NaOH (17% by weight) was added to adjust the pH. No H 2 SO 4 was needed. The total amount of liquefied corn mash recovered from the three 30L batches was 99.4 kg.
고체는 6개의 1L 들이 병을 포함한 대형 플로어 원심분리기 속에서 원심분리하여 매쉬로부터 제거하였다. 매쉬(73.4kg)는 25℃에서 20분 동안 8000 rpm에서 원심분리하여 44.4kg의 농축물 및 26.9kg의 습윤 케이크를 수득하였다. 농축물은 <1중량%의 현탁된 고체를 함유하였고, 습윤 케이크는 대략 18중량%의 현탁된 고체를 함유한 것으로 측정되었다. 이는, 원래의 액화된 매쉬가 대략 7중량%의 현탁된 고체를 함유하였음을 암시한다. 이는 대부분의 전분이 액화되었다고 추정하여 사용된 옥수수의 전분 함량 및 옥수수 부하량과 일치한다. 전분의 모두가 액화된 경우, 원심분리기로부터 직접 회수된 44.4kg의 농축물은 대략 23중량%의 용해된 올리고당(액화된 전분)을 함유할 수 있었다. 약 0.6kg의 i-BuOH를 33.4kg의 농축물에 가하여 이를 보전하였다. 1.6중량%의 i-BuOH를 함유한, 수득되는 36.0kg의 농축물을 원료 용액으로 사용하였다. 농축물은 SSF의 초기에 액체 상 조성물을 모사한다. 따라서, 이의 일부를 질량 기준으로 동일한 양의 H2O로 희석시켜서 약 50% 전환률에서 SSF를 모사하는 농축물을 생성하였다. 더 많은 i-BuOH를 가하여 희석된 농축물 속의 i-BuOH의 최종 농도를 3.0중량% (약 30g/L)로 만들었다.The solids were removed from the mesh by centrifugation in a large floor centrifuge containing 6 1L bottles. The mesh (73.4 kg) was centrifuged at 8000 rpm for 20 minutes at 25 ° C to yield 44.4 kg of concentrate and 26.9 kg of wet cake. The concentrate contained <1 wt.% Of the suspended solids and the wet cake contained approximately 18 wt.% Of the suspended solids. This suggests that the original liquefied mesh contained approximately 7 wt% suspended solids. This is consistent with the starch content and corn loadings of corn used assuming most of the starch was liquefied. When all of the starch was liquefied, 44.4 kg of the concentrate directly recovered from the centrifuge could contain approximately 23 wt% dissolved oligosaccharides (liquefied starch). About 0.6 kg of i- BuOH was added to 33.4 kg of concentrate to maintain it. 36.0 kg of the obtained concentrate containing 1.6 wt% of i- BuOH was used as the raw material solution. The concentrate simulates the liquid phase composition at the beginning of the SSF. Thus, a portion thereof was diluted with an equal amount of H 2 O on a mass basis to produce a concentrate that simulates SSF at about 50% conversion. More i- BuOH was added to make the final concentration of i- BuOH in the diluted concentrate 3.0 wt% (about 30 g / L).
희석된 농축물은 다음과 같이 제조하였다: 1.6중량%의 i-BuOH를 함유한 18kg의 농축물 원료 용액을 18kg의 수돗물과 혼합하고 0.82kg의 i-BuOH를 가하였다. 희석된 농축물의 수득되는 36.8kg의 용액은 대략 11중량%의 올리고당 및 대략 30g/L의 i-BuOH로 구성되었다. 이러한 용액은 올리고당의 대략 50%의 전환률 및 30g/L의 i-BuOH의 수성 역가에서 옥수수 매쉬 발효(SSF)의 액체 상을 모사한다.The diluted concentrate was prepared as follows: 18 kg of a concentrate stock solution containing 1.6% by weight of i - BuOH was mixed with 18 kg of tap water and 0.82 kg of i- BuOH was added. A resulting solution of 36.8 kg of the diluted concentrate consisted of approximately 11% by weight of oligosaccharide and approximately 30 g / L of i- BuOH. This solution simulates a liquid phase of corn silk fermentation (SSF) at a conversion of approximately 50% of the oligosaccharide and an aqueous titre of 30 g / L i- BuOH.
질량 전달 시험은, 대부분의 용해되지 않은 고체가 제거된 후에 액화된 옥수수 매쉬로부터 유도된 브로쓰에서 질량 전달 성능을 모사하기 위하여 수성 상으로서 이러한 용액을 사용하여 수행하였다. 질량 전달 시험의 목적은, 액화된 옥수수 매쉬로부터 유도된, 모의된 브로쓰로부터 i-BuOH를 모의된 브로쓰를 통해 상승하는 용매(추출제) 소적의 분산액으로 이동시키기 위한 전체 용적 질량 전달 계수(kLa)에 대한 용해되지 않은 고체의 영향을 측정하기 위한 것이었다. 작동 파라메터의 주요 설계와 kLa의 상관관계를 사용하여 질량 전달 작동을 확대할 수 있다. 확대하기에 유용한 소규모 데이터로부터 kLa의 상관관계를 발생시키기 위하여 가능한한 많이 일정하게 유지시켜야 하는 매개변수의 예는 소적 크기(예: 노즐 직경, 노즐을 통해 분산되는 상의 속도)를 측정하는 상 및 설계 매개변수 둘 다의 물리적 특성이다.The mass transfer test was carried out using this solution as an aqueous phase to simulate the mass transfer performance in the broth derived from the liquefied corn mash after most of the undissolved solids had been removed. The purpose of the mass transfer test is to determine the total volume mass transfer coefficient ( i. E.) For transferring the i- BuOH from the simulated broth derived from the liquefied corn mash to the dispersion of solvent (extractant) droplets rising through the simulated broth It was to determine the effects of non-dissolved solids on the k L a). The correlation between the main design of the operating parameters and k L a can be used to expand the mass transfer operation. Examples of parameters that must be kept as constant as possible in order to generate a correlation of k L a from small data useful for magnification include an image that measures droplet size (e.g., nozzle diameter, velocity of the image dispersed through the nozzle) And the design parameters.
6인치 직경의 7피트 길이의 유리, 재킷형 컬럼을 사용하여, 현탁된 매쉬 고체를 사용하는 경우 및 사용하지 않는 경우 둘 다에서, 올리고당(액화된 옥수수 매쉬로부터 유도됨)의 수용액으로부터 i-BuOH의 모의된 브로쓰를 통해 상승하는 올레일 알코올(OA) 소적의 분산액으로의 이동을 위한 kLa를 측정하였다. i-BuOH를 수성 상에 가하여 대략 30g/L의 i-BuOH의 초기 농도를 수득하였다. 대략 11중량%의 올리고당 및 대략 30g/L의 i-BuOH를 포함한 특정한 양의 수성 상(전형적으로 약 35kg)을 컬럼에 충전시켰고, 컬럼을 재킷을 통해 따뜻한 H2O를 유동시킴으로써 30℃로 가열하였다. 시험 동안에 컬럼 내에서 또는 밖에서 수성 상의 유동은 없었다.From a solution of oligosaccharide (derived from a liquefied corn mash), using a 6-inch diameter, 7 foot long glass, jacketed column, both with and without a suspended mesh solid, i- BuOH the rising through the simulated broth of oleyl alcohol (OA) k L a for movement in the dispersion of the droplets was measured. i- BuOH was added to the aqueous phase to obtain an initial concentration of i- BuOH of approximately 30 g / L. Certain amount of aqueous phase containing about 11% of oligosaccharides and i -BuOH of about 30g / L of the weight (typically about 35kg) for sikyeotgo filled in the column, heated with warm H 2 O to the column through the jacket at 30 ℃ by flowing Respectively. There was no aqueous phase flow in or out of the column during the test.
신선한 올레일 알코올(80/85% 등급, 오하이오주 신시네티 소재의 Cognis Corporation)을 단일 노즐을 통해 컬럼의 하부 내로 스파징(sparging)하여 수성 상을 통해 유동된 추출제 소적의 분산액을 생성하였다. 수성 상의 상부에 도달한 후에, 추출제 소적은, 이후에 컬럼의 상부로부터 과유동된 별도의 유기 상을 형성하였고 수용기 내로 회수되었다. 전형적으로, 3 내지 5gal의 올레일 알코올이 단일 시험을 위해 컬럼을 통해 유동되었다.Fresh oleic alcohol (80/85% grade, Cognis Corporation, Cincinnati, Ohio) was sparged through a single nozzle into the bottom of the column to produce a dispersion of extractant droplets that flowed through the aqueous phase. After reaching the top of the aqueous phase, the extractant droplets formed a separate organic phase, which was subsequently exchanged from the top of the column and recovered into the receiver. Typically, 3 to 5 grams of oleyl alcohol has flowed through the column for a single test.
수성 상의 시료는 시험 전반에 걸쳐 수회로 컬럼으로부터 수집되었으며, 과유동물로부터 수집된 전체 "풍부한" 올레일 알코올의 복합체 시료를 시험의 말기에 수집하였다. 모든 시료를 i-BuOH에 대하여 HP-6890 GC (캘리포니아주 산타 클라라 소재의 Agilent Technologies, Inc.)를 이용하여 분석하였다. 수성 상 속의 i-BuOH에 대한 농도 프로파일(즉, i-BuOH 농도 대 시간)을 사용하여 작동 조건의 주어진 세트에서 kLa를 계산하였다. 시험 동안에 수집된 전체 "풍부한" 올레일 알코올의 최종 복합체 시료를 사용하여 i-BuOH에 대한 질량 균형을 점검하였다.Samples of the aqueous phase were collected from a number of water columns throughout the test and a composite sample of the total "rich" oleyl alcohol collected from the oil animals was collected at the end of the test. All samples were analyzed for i-BuOH using HP-6890 GC (Agilent Technologies, Inc., Santa Clara, Calif.). The concentration profile for i- BuOH in aqueous phase (i.e., i- BuOH concentration versus time) was used to calculate k L a for a given set of operating conditions. The mass balance for i- BuOH was checked using the final composite sample of total "rich" oleyl alcohol collected during the test.
노즐 크기 및 노즐 속도(공급 노즐을 통한 올레일 알코올의 평균 속도)를 변화시켜 kLa에 대한 영향을 관찰하였다. 올리고당(액화된 옥수수 매쉬로부터 수득된 희석된 농축물)의 수용액을 사용하여 일련의 시험을 수행하였다. SSF의 중기에 액화된 옥수수 매쉬(용해되지 않은 고체를 포함)를 모의하기 위해 다시 매쉬 고체를 가한 후에 올리고당의 동일한 수용액을 사용하여 유사한 일련의 시험을 수행하였다. 일부 작동 조건(예를 들면, 높은 올레일 알코올 유동 속도) 하에서, 불량한 상 분리를, 시험 동안에 수집된 전체 "풍부한" 올레일 알코올의 대표적인 복합체 시료를 수득하기 힘들도록 제조된 컬럼의 상단에서 수득하였음을 주목한다. 또한, 일부 작동 조건하에서, 수성 상의 시료는 상당량의 유기 상을 포함하였음을 주목한다. 특정한 시료 처리 및 제조 기술을 사용하여, 시료가 수집된 시점에서 컬럼 속의 수성 상의 가능한 한 대표적인 것이었던 수성 상의 시료를 수득하였다.The effect on k L a was observed by varying the nozzle size and nozzle speed (mean velocity of oleo alcohol through the feed nozzle). A series of tests were performed using an aqueous solution of oligosaccharide (diluted concentrate obtained from liquefied corn mash). A similar series of tests were performed using the same aqueous solution of oligosaccharide after the mesh solids were again applied to simulate liquefied corn mashes (including undissolved solids) in mid-SSF. Under some operating conditions (e.g., high oleic alcohol flow rates), poor phase separation was obtained at the top of the prepared column to make it difficult to obtain representative composite samples of the total "rich" oleyl alcohol collected during the test . It is also noted that under some operating conditions, the aqueous phase samples contained significant amounts of organic phase. Using specific sample processing and fabrication techniques, a sample of aqueous phase that was as representative of the aqueous phase in the column as possible at the time the sample was collected was obtained.
컬럼 내의 수성 상은 모든 실제적 목적을 위해 "잘 혼합"되었는데, 그 이유는 i-BuOH의 농도가 주어진 시점에서 컬럼의 길이를 따라 많이 변하지 않았기 때문이다. 용매 소적 상이 또한 잘 혼합된 것으로 추정하면, 컬럼에서 수성 상으로부터 용매 상으로의 i-BuOH의 전체 질량 전달은 다음 수학식으로 계산할 수 있다:The aqueous phase in the column was "mixed well" for all practical purposes because the concentration of i- BuOH did not change much along the length of the column at any given point in time. Assuming that the solvent droplet phase is also well mixed, the total mass transfer of i-BuOH from the aqueous phase to the solvent phase in the column can be calculated by the following equation:
(1) (One)
상기 수학식(1)에서,In the above equation (1)
rB는 수성 상의 단위 용적당 단위 시간당 그램 i-BuOH/리터 수성 상/hr 또는 g/L/hr로 나타낸, 수성 상으로부터 용매 상으로 이동된 i-BuOH의 총 질량이다.r B is the total mass of i- BuOH transferred from the aqueous phase to the solvent, expressed in grams i- BuOH / liter aqueous phase / hr or g / L / hr per unit time per aqueous phase unit.
kLa는, hr-1로 나타낸, 수성 상으로부터 용매 상으로의 i-BuOH의 질량 전달을 기술하는 전체 용적 질량 전달 계수이다.k L a is the total volumetric mass transfer coefficient, expressed in hr -1 , which describes the mass transfer of i- BuOH from the aqueous phase to the solvent phase.
CB , 브로쓰는, 그램 i-BuOH/리터 수성 상 또는 g/L로 나타낸, 전체 시험에 걸쳐 모의된 브로쓰(수성) 상에서의 i-BuOH의 평균 농도이다.C B, broth, the average concentration of the i- BuOH on g i -BuOH / liter aqueous phase or g / L shown in, the simulated over the test broth (aqueous).
CB ,용매는, 그램 i-BuOH/리터 용매 상 또는 g/L로 나타낸, 전체 시험에 걸친 용매 상 내의 i-BuOH의 평균 농도이다.C B , and the solvent is the average concentration of i - BuOH in the solvent phase over the entire test, expressed in grams i- BuOH / liter solvent phase or g / L.
KB는 (그램 i-BuOH/리터 용매 상)/(그램 i-BuOH/Liter 수성 상)으로 나타낸, 용매와 수성 상 사이의 i-BuOH에 대한 평균 평형 분배 계수이다.K B is the average equilibrium partition coefficient for i - BuOH between the solvent and the aqueous phase, expressed in grams i- BuOH / liter solvent phase / (gram i- BuOH / Liter aqueous phase)
매개변수 rB, CB,브로쓰, 및 CB,용매 는 수성 및 용매 상의 시료로부터 수득된 농도 데이터로부터 각각의 시험에 대해 계산하였다. 매개변수 KB는 액화된 옥수수 매쉬, 올레일 알코올, 및 i-BuOH로부터의 수성 농축물을 혼합하고 2개의 액체 상이 평형에 도달할 때까지 시스템을 격렬히 혼합함으로써 독립적으로 측정하였다. i-BuOH의 농도는 두 개의 상에서 측정하여 KB를 결정하였다. rB, CB , 브로쓰, CB ,용매, 및 KB를 주어진 시험에 대하여 결정한 후에, KLa는 수학식(1)을 재배열하여 계산할 수 있었다:The parameters r B , C B, Broth , and C B, solvents were calculated for each test from the concentration data obtained from aqueous and solvent phase samples. The parameter K B was measured independently by mixing the liquefied corn mash, oleyl alcohol, and aqueous concentrates from i- BuOH and vigorously mixing the system until the two liquid phases reached equilibrium. The concentration of i- BuOH was determined in two phases to determine K B. After determining r B , C B , Broth , C B , solvent , and K B for a given test, K L a could be calculated by rearranging equation (1)
(2) (2)
질량 전달 시험은 수성 상으로서 희석된 농축물(고체 제거됨)을 사용하여 5 ft/s 내지 21 ft/s의 범위의 노즐 속도로 2개의 상이한 크기의 노즐을 사용하여 수행하였다. ID가 0.76 mm인 노즐을 사용하여 3개의 시험을 수행하였고, ID가 2.03 mm인 노즐을 사용하여 3개의 시험을 수행하였다. 모든 시험을 용매로서 올레일 알코올을 사용하여 위에서 기술한 6인치 직경 컬럼 속에서 30℃에서 수행하였다. 고체를 제거함으로써 액화된 옥수수 매쉬로부터 수득된 올레일 알코올과 희석된 농축물 사이의 i-BuOH의 평형 분배계수는 대략 5인 것으로 측정되었다. 희석된 농축물(고체 제거됨)을 사용하는 질량 전달 시험의 결과는 표 2에 나타낸다.The mass transfer test was performed using two different sized nozzles at a nozzle speed ranging from 5 ft / s to 21 ft / s using diluted concentrate (solids removed) as the aqueous phase. Three tests were performed using a nozzle with an ID of 0.76 mm and three tests were conducted using a nozzle with an ID of 2.03 mm. All tests were carried out at 30 ° C in a 6 inch diameter column as described above using oleyl alcohol as solvent. The equilibrium partition coefficient of i- BuOH between the oleyl alcohol and the diluted concentrate obtained from the liquefied corn mash by removing the solids was determined to be approximately 5. [ The results of the mass transfer test using the diluted concentrate (solid removed) are shown in Table 2.
[표 2][Table 2]
습윤 케이크(액화된 옥수수 매쉬로부터 고체를 제거함으로써 초기에 수득됨)의 일부를 묽은 농축물에 가함으로써 SSF를 통해 반정도로 액화된 옥수수 매쉬(용해되지 않은 고체를 함유함)로부터 발효 브로쓰를 모의하는 수성 상을 합성하였다. 일부 물을 또한 가하여 습윤 케이크 중에 유지된 액체 상을 희석시키는 데, 그 이유는 이러한 액체가 농축된 농축물과 동일한 조성을 갖기 때문이다. 희석된 상층물(17.8kg), 13.0kg 습윤 케이크 (~18중량%의 용해되지 않은 매쉬 고체를 함유함), 5.0kg의 H2O, 및 0.83kg의 i-BuOH를 함께 혼합하여 대략 6.3중량%의 용해되지 않은 고체 및, 대략 13중량%의 액화된 전분 및 대략 2.4중량%의 i-BuOH (H2O로 균형시킴)로 이루어진 액체 상을 포함하는 36.6kg의 슬러리를 수득하였다. 이러한 슬러리는 대략 30% 옥수수 부하에서 i-BuOH에 대한 옥수수의 SSF를 통해 절반 방식으로 발효 브로쓰의 조성물을 모사하는데, 그 이유는 이러한 유형의 브로쓰 중에서 발견된 용해되지 않은 고체 및 올리고당의 수준이 각각 대략 6 내지 8중량% 및 10 내지 12중량%인 것으로 밝혀졌기 때문이다.A portion of the wet cake (initially obtained by removing solids from the liquefied corn mash) was added to the dilute concentrate to simulate the fermentation broth from the corn mash (containing undissolved solids) that was half liquefied through the SSF Was synthesized. Some water is also added to dilute the liquid phase held in the wet cake, since this liquid has the same composition as the concentrated concentrate. The diluted top layer (17.8 kg), 13.0 kg wet cake (containing ~ 18 wt% insoluble mesh solids), 5.0 kg of H 2 O, and 0.83 kg of i- BuOH were mixed together to give a weight of approximately 6.3 wt % Of undissolved solids, and a liquid phase consisting of approximately 13 wt% liquefied starch and approximately 2.4 wt% i- BuOH (balanced with H 2 O). This slurry simulates the composition of the fermentation broth in half-way through the SSF of corn for i- BuOH at approximately 30% corn load, because the levels of undissolved solids and oligosaccharides found in this type of broth Is about 6 to 8 wt% and 10 to 12 wt%, respectively.
질량 전달 시험은 수성 상으로서 희석된 농축물 및 용해되지 않은 매쉬 고체의 슬러리를 사용하여 5 ft/s 내지 22 ft/s의 범위의 노즐 속도에서 2개의 상이한 크기의 노즐을 사용하여 수행하였다. ID가 0.76 mm인 노즐을 사용하여 3회의 시험을 수행하였고, ID가 2.03 mm인 노즐을 사용하여 3회의 시험을 수행하였다. 모든 시험을 용매로서 올레일 알코올을 사용하여 위에서 기술한 6인치 직경 컬럼에서 30℃에서 수행하였다. 희석된 농축물 및 용해되지 않은 매쉬 고체의 슬러리를 사용하는 질량 전달 시험의 결과는 표 3에 나타낸다.Mass transfer tests were performed using two different sized nozzles at a nozzle speed ranging from 5 ft / s to 22 ft / s using a slurry of diluted concentrate and undissolved mesh solid as the aqueous phase. Three trials were performed using a nozzle with an ID of 0.76 mm and three trials were conducted using a nozzle with an ID of 2.03 mm. All tests were carried out at 30 [deg.] C in a 6 inch diameter column as described above using oleyl alcohol as solvent. The results of the mass transfer test using a slurry of diluted concentrate and undissolved mesh solids are shown in Table 3.
[표 3][Table 3]
도 12는 액화된 옥수수 전분(즉, 올리고당)의 수용액으로부터 i-BuOH의 버블 컬럼으로 통해 상향 유동하는 올레일 알코올 소적의 분산으로의 전달에 대한 전체 용적 질량 전달 계수, kLa에 있어서 용해되지 않은 옥수수 매쉬 고체의 존재의 효과를 나타낸다. 올레일 알코올은 2.03 mm의 ID 노즐을 통해 컬럼에 공급되었다. 고체가 제거된 시스템에 대한 kLa 대 고체가 제거되지 않은 시스템에 대한 kLa의 비는 2.03 mm 노즐의 경우 노즐 속도에 따라 2 내지 5임이 발견되었다.12 is not dissolved in the total volume of the mass transfer coefficient, k L a of the upflow oleyl transfer to the dispersion of the alcohol droplets through a bubble column of the i-BuOH from an aqueous solution of liquefied corn starch (i.e., oligosaccharides) Indicating the effect of the presence of non-corn mash solids. The oleyl alcohol was fed to the column via an ID nozzle of 2.03 mm. The ratio of k L a of the k L a large solid system is not removed on the solid is removed, the system was found to be a 2 to 5 according to the nozzle speed when the 2.03 mm nozzle.
도 13은 액화된 옥수수 전분(즉, 올리고당)의 수용액으로부터 i-BuOH의 버블 컬럼을 통해 상향 유동하는 올레일 알코올 소적의 분산으로의 i-BuOH의 전달에 대한 전체 용적 질량 전달 계수, kLa의 용해되지 않은 옥수수 매쉬 고체의 존재의 효과를 나타낸다. 올레일 알코올은 0.76 mm ID 노즐을 통해 컬럼에 공급되었다. 고체가 제거된 시스템에 대한 kLa 대 고체가 제거되지 않은 시스템에 대한 kLa의 비는 0.76 mm 노즐에 대한 노즐 속도에 따라 2 내지 4임이 발견되었다.13 is a full-volume mass-transfer coefficient for the liquefied corn starch passed the i-BuOH to the dispersion of oleyl alcohol droplets that from the flow upward through the bubble column of the i-BuOH in water (i.e., oligosaccharides), k L a Of undissolved corn silicate solids. The oleyl alcohol was fed to the column via a 0.76 mm ID nozzle. The ratio of k L a of the k L a large solid system is not removed on the solid is removed, the system was found to be a 2 to 4 according to the nozzle speed of the 0.76 mm nozzle.
실시예Example 2 2
수성 상Aqueous phase 과 and 고체 상Solid phase 사이의 상 분리에 대한 용해되지 않은 고체의 제거의 효과 The effect of removal of undissolved solids on phase separation between
본 실시예는 용해되지 않은 고체가 제거되지 않은 액화된 옥수수 매쉬와 동일한 용매로부터 기원한 올리고당 수용액과 비교하여 용해되지 않은 고체가 제거된 액화된 옥수수 매쉬 및 용매 상으로부터 기원한 올리고당의 수용액 사이의 개선된 상 분리를 나타낸다. 시스템 둘 다는 i-BuOH를 함유하였다. 수성 상으로부터 용매 상의 적절한 분리는, 액체-액체 추출이 ISPR을 실시하기 위한 가치있는 분리 방법이 되는데 중요하다.This example illustrates an improvement between an aqueous solution of oligosaccharides originating from a liquefied corn mash and a solvent phase in which undissolved solids have been removed as compared to an oligosaccharide aqueous solution originating from the same solvent as the liquefied corn mash in which the undissolved solids have not been removed Lt; / RTI > phase separation. Both systems contained i- BuOH. Proper separation of the solvent phase from the aqueous phase is important as liquid-liquid extraction is a valuable separation method for conducting ISPR.
대략 900g의 액화된 옥수수 매쉬를 1L들이의 유리, 재킷형 수지 케틀(kettle) 속에서 제조하였다. 당해 케틀을 기계적 교반, 온도 조절, 및 pH 조절로 설정하였다. 다음의 프로토콜을 사용하였다: 분쇄된 옥수수를 수돗물(무수물 기준으로 26중량%의 옥수수)와 혼합하고, 슬러리를 교반하면서 55℃로 가열하며, pH를 NaOH 또는 H2SO4를 사용하여 5.8로 조절하고, 알파-아밀라제(무수 옥수수 기준으로 0.02중량%)를 가하고 85℃까지 연속 가열하며, pH를 5.8로 조절하면서 85℃에서 2시간 동안 유지하고, 25℃로 냉각시킨다.Approximately 900 g of liquefied corn mash was prepared in a 1 liter glass, jacketed resin kettle. The kettle was set for mechanical stirring, temperature control, and pH control. The following protocol was used: milled corn was mixed with tap water (26 wt% corn on anhydrous basis) and the slurry heated to 55 ° C with stirring and the pH adjusted to 5.8 with NaOH or H 2 SO 4 , Added with alpha-amylase (0.02 wt% based on anhydrous corn), heated continuously to 85 ° C, held at 85 ° C for 2 hours while adjusting the pH to 5.8, and cooled to 25 ° C.
파이오니어(Pioneer) 3335 하이브리드 옥수수, 전체 알맹이 황색 옥수수를 사용하여(제조원: 아이오와주 존스톤 소재의 Pioneer Hi-Bred International), 이를 1 mm 스크린을 사용하는 햄머-분쇄기 속에서 분쇄하였다. 분쇄된 옥수수의 수분 함량은 12중량%이었으며, 분쇄된 옥수수의 전분 함량은 무수 옥수수 기준으로 71.4중량%이었다. 알파-아밀라제 효소는 Novozymes(노쓰캐롤라이나주 프랭클린톤 소재)으로부터의 Liquozyme® SC DS이었다. 사용된 성분의 전체 량은 265.9g의 분쇄된 옥수수(12% 수분), 634.3g의 수돗물, 및 0.056g의 Liquozyme® SC DS이었다. 회수된 액화된 옥수수 매쉬의 총량은 883.5g이었다.Using Pioneer 3335 hybrid corn, whole grain yellow corn (Pioneer Hi-Bred International, Inc., Johnston, Iowa), it was ground in a hammer-grinder using a 1 mm screen. The moisture content of the ground corn was 12 wt%, and the starch content of the ground corn was 71.4 wt% on anhydrous corn. Alpha-amylase enzyme was Liquozyme ® SC DS from Novozymes (North Carolina Franklin t material). The total amount of ingredients used was 265.9 g ground maize (12% moisture), 634.3 g tap water, and 0.056 g Liquozyme ® SC DS. The total amount of recovered liquefied corn mash was 883.5 g.
액화된 옥수수 매쉬의 일부를 용해되지 않은 고체를 제거하지 않고 직접 사용하여 고체를 포함하는 상 분리 시험을 위해 수성 상을 제조하였다. 액화된 옥수수 매쉬 중 일부를 원심분리하여 용해되지 않은 고체의 대부분을 제거하고 고체의 부재를 포함하는 상 분리 시험을 위한 수성 상을 제조하였다.A portion of the liquefied corn mash was used directly without removing undissolved solids to prepare an aqueous phase for phase separation tests involving solids. Some of the liquefied corn mashes were centrifuged to remove most of the undissolved solids and an aqueous phase was prepared for phase separation tests involving the absence of solids.
고체를 매쉬로부터 대형 바닥 원심분리기 속에서 원심분리하여 매쉬로부터 제거하였다. 매쉬(583.5g)를 5000rpm에서 20분 동안 35℃에서 원심분리하여 394.4g의 농축물 및 189.0g의 습윤 케이크를 수득하였다. 농축물은 대략 0.5중량%의 현탁된 고체를 함유하였으며, 습윤 케이크는 대략 20중량%의 현탁된 고체를 함유한 것으로 측정되었다. 이는, 원래의 액화된 매쉬가 대략 7중량%의 현탁된 고체를 함유하였음을 암시한다. 이는 옥수수 로딩 및 사용된 옥수수의 전분 함량과 일치하며 대부분의 전분이 액화되었던 것으로 추정된다. 전분 모두가 액화되면, 원심분리기로부터 직접 회수된 농축물은 고체가 없는 것을 기준으로 대략 20중량%의 용해된 올리고당(액화된 전분)를 함유할 수 있었다.The solids were removed from the mesh by centrifugation in a large bottom centrifuge from the mesh. The mash (583.5 g) was centrifuged at 5000 rpm for 20 minutes at 35 DEG C to obtain 394.4 g of concentrate and 189.0 g of wet cake. The concentrate contained approximately 0.5% by weight of suspended solids, and the wet cake was determined to contain approximately 20% by weight of suspended solids. This suggests that the original liquefied mesh contained approximately 7 wt% suspended solids. This is consistent with the corn loading and the starch content of corn used, and it is estimated that most of the starch was liquefied. When all of the starch was liquefied, the concentrate directly recovered from the centrifuge could contain approximately 20 wt% of dissolved oligosaccharides (liquefied starch) based on the absence of solids.
상 분리 시험의 목적은 액화된 옥수수 매쉬로부터 기원한 브로쓰를 모사하는 액체 상과 용매 상 사이의 상 분리 정도에 있어서 용해되지 않은 고체의 효과를 측정하기 위한 것이다. 모든 시험에서 수성 액체 상은 약 20중량%의 용해된 올리고당을 함유하였으며, 유기 상은 올레일 알코올(OA)을 함유하였다. 또한, i-BuOH를 모든 시험에 가하여 상들이 평형이 되었을 때 수성 상 속에 대략 25g/L를 수득하였다. 2개이 진탕 시험을 수행하였다. 제1의 시험을 위한 수성 상(고체 함유)은 60.0g의 액화된 옥수수 매쉬를 3.5g의 i-BuOH와 혼합하여 제조하였다. 제2의 시험(고체 제거됨)을 위한 수성 상은 액화된 옥수수 매쉬로부터 고체를 제거하여 수득된 60.0g의 농축물을 3.5g의 i-BuOH와 혼합하여 제조하였다. 올레일 알코올(15.0g, 80/85% 등급, 제조원: 오하이오주 신시네티 소재의 Cognis Corporation)을 진탕 시험 병 각각에 가하였다. 올레일 알코올은 병들 둘 다에서 수성 상의 상부에 액체 상 분리물을 형성하였으며 상들의 질량 비는, 수성 상/용매 상이 약 1/4이 되도록 수득되었다. 병들 둘 다를 2분 동안 격렬하게 진탕시켜 수성 및 유기 상을 친밀하게 접촉시켜 i-BuOH가 2개의 상 사이에 평형에 도달하도록 하였다. 병들을 1시간 동안 정착되도록 하였다. 사진을 다양한 시간(0, 15, 30, 및 60분)에 쵤영하여 액화된 옥수수 매쉬로부터 기원한 수성 상, 올레일 알코올을 함유하는 용매 상, 및 i-BuOH를 함유하는 용매 상으로부터 기원한 수성 상을 함유하는 시스템 속의 상 분리에 있어서 용해되지 않은 고체의 효과를 관찰하였다. 0시(0)는, 2분의 진탕 기간이 완료된 직후의 시간에 상응한다.The purpose of the phase separation test is to determine the effect of undissolved solids on the degree of phase separation between the liquid phase and the solvent phase, which simulates the broth originating from the liquefied corn mash. In all the tests, the aqueous liquid phase contained about 20% by weight dissolved oligosaccharide, and the organic phase contained oleyl alcohol (OA). Also, i-BuOH was added to all the tests to obtain approximately 25 g / L in the aqueous phase when the phases were equilibrated. Two shaking tests were performed. The aqueous phase (containing solids) for the first test was prepared by mixing 60.0 g of liquefied corn mash with 3.5 g of i- BuOH. The aqueous phase for the second test (solids removed) was prepared by mixing 60.0 g of the concentrate obtained by removing solids from the liquefied corn mash with 3.5 g of i- BuOH. Oleyl alcohol (15.0 g, 80/85% grade, manufactured by Cognis Corporation, Cincinnati, OH) was added to each of the shaking test bottles. The oleyl alcohol formed liquid phase separations on top of the aqueous phase in both the bottles and the mass ratio of the phases was obtained such that the aqueous phase / solvent phase was about 1/4. Both bottles were shaken vigorously for 2 minutes to bring the aqueous and organic phases intimately in contact so that i- BuOH reached equilibrium between the two phases. The bottles were allowed to settle for 1 hour. Various time a picture (0, 15, 30, and 60 minutes) on the one originating from the aqueous phase, the solvent phase containing the oleyl alcohol, and a solvent containing i- BuOH derived from the liquefied corn mash aqueous choelyoung The effect of undissolved solids on phase separation in systems containing phases was observed. The 0 o'clock (0) corresponds to the time immediately after the 2 min shaking period is completed.
고체(액화된 옥수수 매쉬)를 지닌 시스템과 고체가 제거된(액화된 옥수수 매쉬로부터의 액체 농축물) 시스템에 대한 시간의 함수로서 유기(용매) 상과 수성 상 사이의 분리 정도는 특정 시점에서 시스템 둘 다에서 거의 동일한 것으로 나타났다. 유기 상은 약간 더 어둡고 혼탁하며, 계면은 고체를 지닌 경우에 거의 명확하지 않았다(계면 주변에 진한 "래그(rag)" 층). 그러나, 용매가 연속적으로 작동되는 추출 발효의 경우, 유기 상의 상부의 조성물은, 다음 단계가 증류인 추출 발효의 하부 공정의 경우 흥미롭다.The degree of separation between the organic (solvent) phase and the aqueous phase as a function of time for the system with solids (liquefied corn mash) and solids removed (liquid concentrate from the liquefied corn mash) Both appeared almost identical. The organic phase was slightly darker and turbid, and the interface was almost indistinguishable (with a solid "rag" layer around the interface) with solids. However, in the case of extractive fermentation in which the solvent is continuously operated, the composition on top of the organic phase is of interest in the case of a sub-process of extractive fermentation in which the next step is distillation.
미생물은 증류 컬럼 속에서 열적으로 탈활성화될 것이므로 유기 상의 상단에서 미생물의 양을 최소화하는 것이 유리할 수 있다. 유기 상의 상부의 용해되지 않은 용매는 증류 컬럼을 막고, 리보일러(reboiler)를 오염시키고, 컬럼의 기저에 위치하는 용매/물 데칸터의 불량한 상 분리, 또는 앞서 언급된 우려의 어떠한 조합을 유발할 수 있기 때문에 유기 상의 상단에서 용해되지 않은 용매의 양을 최소화하는 것이 유리할 수 있다. 유기 상의 상단에서 상 물의 양을 최소화하는 것이 유리할 수 있다. 상 수는 별도의 수성 상으로 존재하는 물이다. 수성 상의 추가의 양은 증류 컬럼에서 로딩 및 에너지 요구를 증가시킬 것이다. 10 밀리리터(10mL) 시료를 "고체가 제거된" 및 "고체가 제거되지 않은" 병으로부터의 유기 층의 상부에서 제거하고, 시료 둘 다를 원심분리하여 침전 시간 60분 후에 "고체가 들어있는" 및 "고체가 제거된" 병 속의 유기 상의 조성물을 나타나도록 하여 비교하였다. 당해 결과는, 진탕 시험 둘 다의 말기에서 유기 상이 일부 바람직하지 않은 상(들)을 함유하였음을 나타낸다(유기 상 둘 다는 혼탁하다). 그러나, 당해 결과는, 고체가 제거되는 농축물을 포함하는 상 분리 시험으로부터의 상부 층이 제거되어, 필수적으로 용해되지 않은 고체를 함유하지 않음을 또한 나타낸다. 한편, 용해되지 않은 고체는 매쉬를 포함하는 시험의 유기 상의 상부로부터 수집된 10mL 시료의 하부에서 명확하게 관찰된다. 시료 중 3%는 유기 층 세척 매쉬 고체의 상부로부터 수집된 것으로 추정되었다. 추출 발효 과정의 발효기 속에 존재하는 풍부한 용매 상이 3%의 용해되지 않은 고체를 함유한 경우, 다음 문제들 중 하나 이상이 발생할 수 있었다: 유의적인 양의 미생물의 손실, 용매 컬럼 리보일러의 오염, 용매 컬럼의 막힘. 당해 결과는 또한, 농축물을 포함하는 상 분리 시험으로부터의 상부 층이 상 물을 거의 함유하지 않았음을 나타낸다. 표 4는 침전 시간 60분 후 진탕 시험 병 둘 다에서 상부 "유기" 층 전체에 분산된 상의 상대적인 양의 추정치를 나타낸다.Since the microorganisms will be thermally deactivated in the distillation column, it may be advantageous to minimize the amount of microorganisms at the top of the organic phase. The undissolved solvent on the top of the organic phase can clog the distillation column, contaminate the reboiler, cause poor phase separation of the solvent / water decanter located at the bottom of the column, or any combination of the aforementioned concerns It may be advantageous to minimize the amount of undissolved solvent at the top of the organic phase. It may be advantageous to minimize the amount of supernatant at the top of the organic phase. The constant is water present in a separate aqueous phase. The additional amount of aqueous phase will increase loading and energy requirements in the distillation column. A 10 milliliter (10 mL) sample was removed from the top of the organic layer from the "solids depleted" and "solids not removed" bottles and both samples were centrifuged to remove " &Quot; solids removed "bottle. The results indicate that at the end of both shaking tests the organic phase contained some undesirable phase (s) (both organic phases are turbid). However, the results also show that the top layer from the phase separation test, which includes the concentrate from which the solid is removed, is removed so that it essentially does not contain undissolved solids. On the other hand, undissolved solids are clearly observed at the bottom of a 10 mL sample collected from the top of the organic phase of the test containing the mesh. It was estimated that 3% of the samples were collected from the top of the organic layer wash mesh solid. If the rich solvent phase present in the fermentor of the extraction fermentation process contained 3% undissolved solids, one or more of the following problems could have occurred: a significant amount of microbial loss, contamination of the solvent column boiler, Clogging of the column. The results also indicate that the top layer from the phase separation test containing the concentrate contained very little water. Table 4 shows estimates of the relative amounts of the phases dispersed throughout the top "organic" layer in both shaking test bottles after 60 minutes of settling time.
[표 4][Table 4]
본 실시예는, 액화된 옥수수 매쉬로부터의 용해되지 않은 고체의 대부분을 제거하는 것이 매쉬로부터 수득된 액체, 수성 상을 올레일 알코올과 같은 용매와 접촉시킨 후, 개선된 상 분리를 생성함을 나타낸다. 당해 실시예는, 고체가 유기 용매가 들어있는 매쉬의 액체 부분과 접촉시키기 전에 먼저 제거되는 경우 용해되지 않은 고체를 유의적으로 거의 함유하지 않을 것임을 나타낸다. 이는 추출 발효를 위한 상 분리의 상부("유기") 층 속의 매쉬의 용해되지 않은 고체 함량을 최소화시키는 장점을 입증한다.This example demonstrates that removing most of the undissolved solids from the liquefied corn mash produces improved phase separation after contacting the liquid obtained from the mesh, the aqueous phase with a solvent such as oleyl alcohol . This example shows that the solids will contain substantially no dissolved solids if they are first removed before contacting the liquid portion of the mesh containing the organic solvent. This demonstrates the advantage of minimizing the undissolved solids content of the mesh in the upper ("organic") layer of the phase separation for extraction fermentation.
시료를 또한 당해 실시예에 기술된 상 분리 진탕 시험을 반복하기 전에 시료 제조의 완료 후 수일 동안 가라앉혔다. 고체가 들어있는 시료는 액화된 옥수수 매쉬, i-BuOH, 및 올레일 알코올로 이루어졌으며, 고체가 제거된 시료는 액화된 옥수수 매쉬, i-BuOH, 및 올레일 알코올로부터 용해되지 않은 고체의 대부분을 제거함으로써 생산된 농축물로 이루어졌다. 액화된 매쉬는 대략 7중량%의 현탁된 고체를 함유하였으며, 매쉬로부터 생성된 농축물은 대략 0.5중량%의 현탁된 고체를 함유하였다. 분쇄된 옥수수 속의 전분 모두가 액화된 경우, 액화된 매쉬 속의 액체 상 및 매쉬로부터 생성된 농축물은 고체가 비-함유 기준으로 대략 20중량%의 용해된 올리고당(액화된 전분)을 함유하였다. 시료 둘 다는 약 1/4의 상: 용매 상/수성 상의 질량 비를 수득하는 양의 올레일 알코올을 함유하였다. 또한, i-BuOH를 모든 시험에 가하여 상이 평형이었을 때 수성 상에서 대략 25g/L를 수득하였다.The sample was also allowed to settle for several days after the completion of the sample preparation before repeating the phase separation shaking test described in this example. The samples containing solids were composed of liquefied corn mash, i-BuOH, and oleyl alcohol, and the solid-removed samples contained most of the undissolved solids from liquefied corn mash, i-BuOH, and oleyl alcohol ≪ / RTI > The liquefied mesh contained approximately 7 wt% suspended solids, and the concentrate from the mesh contained approximately 0.5 wt% suspended solids. When all of the corn starch in the ground corn was liquefied, the liquid phase in the liquefied mesh and the concentrate produced from the mesh contained solids up to approximately 20 wt% dissolved oligosaccharides (liquefied starch) on a non-containing basis. Both samples contained an amount of oleyl alcohol to obtain a ratio of about 1/4 of the phase: solvent phase / aqueous phase mass. In addition, i-BuOH was added to all the tests to obtain approximately 25 g / L in the aqueous phase when the phases were equilibrium.
상 분리 시험의 목적은 실온에서 수일 동안 다중상 혼합물을 둔 후 상 분리 정도에 있어서 용해되지 않은 고체의 효과를 측정하여 추출 발효 전반에 걸쳐서 시스템의 특성에서의 잠재적인 변화를 모사하는 것이다. 2회의 진탕 시험을 수행하였다. 병 둘 다를 2분 동안 격렬하게 진탕시켜서 수성 및 유기 상을 친밀하게 접촉시켰다. 병을 1시간 동안 두었다. 사진을 다양한 시간(0, 2, 5, 10, 20, 및 60분)에서 촬영하여 수일 동안 노화(aging)시킨 당해 시스템 속에서 상 분리시 용해되지 않은 고체의 효과를 관찰하였다. 0시간(0)은, 병을 벤치에 둔 직후의 시간에 상응한다.The purpose of the phase separation test is to measure the effect of undissolved solids at the degree of phase separation after placing the multiphase mixture for several days at room temperature and to simulate potential changes in the characteristics of the system throughout the extraction fermentation. Two shaking tests were performed. Both bottles were vigorously shaken for two minutes to bring the aqueous and organic phases intimately in contact. The bottle was left for one hour. Photographs were taken at various times (0, 2, 5, 10, 20, and 60 minutes) and aged for several days to observe the effect of solubilized solids upon phase separation in the system. 0 Time (0) corresponds to the time immediately after placing the bottle on the bench.
상 분리는, 고체가 제거된 시료 속에서 2분 후 발생하기 시작하였다. 거의 완전한 상 분리는, 유기 상이 2개 상 혼합물의 전체 용적의 대략 25%를 차지하는 사실을 기반으로 하여 단지 5 내지 10분 후에 제거된 경우 시료 속에서 발생하였던 것으로 나타났다. 완전한 분리는, 유기 상이 상의 초기 비에 상응한 이후로, 총 용적의 대략 20%를 차지한 경우에 나타날 수 있는 것으로 예측될 수 있다. 고체가 제거되지 않은 시료 속에서는 심지어 1시간 후에도 명백한 상 분리가 일어나지 않았다.The phase separation began to occur two minutes after the solid was removed from the sample. Nearly complete phase separation appeared to occur in the sample when removed after only 5 to 10 minutes, based on the fact that the organic phase accounts for approximately 25% of the total volume of the two phase mixture. Complete separation can be expected to occur when the organic phase occupies approximately 20% of the total volume since then, corresponding to the initial ratio of phases. No apparent phase separation occurred even after 1 hour in the sample without solid removal.
시료 둘 다에 대한 상부 상의 조성을 또한 비교하였다. 상부 상의 조성은, 다음 단계가 증류인 추출 발효의 하부의 공정에 영향을 미친다. 미생물은 증류 컬럼 속에서 열적으로 탈활성화될 것이므로 유기 상의 상부에서 미생물의 양을 최소화하는 것이 유리하다. 고체가 증류 컬럼을 막고, 리보일러를 오염시키며, 컬럼의 기저에 위치한 용매/물 데칸터 속에서 불량한 상 분리를 유발하거나, 또는 앞서 언급된 근심의 어떠한 조합을 유발할 수 있기 때문에, 유기 상의 상부에서 최소화하기 위한 다른 성분은, 용해되지 않은 고체의 양이다. 또한, 수성 상의 추가량은 후속된 증류 컬럼 속에서 로딩 및 에너지 요구도를 증가시킬 것이므로, 유기 상의 상부에서 최소화하기 위한 다른 성분은 별도의 수성 상으로서 존재하는 물인 상 물의 양이다.The composition on top of both samples was also compared. The composition on the top affects the process downstream of the extractive fermentation, the next step being distillation. Since the microorganisms will be thermally deactivated in the distillation column, it is advantageous to minimize the amount of microorganisms on top of the organic phase. Because the solids can block the distillation column, contaminate the reboiler, cause poor phase separation in the solvent / water decanter located at the bottom of the column, or cause any combination of the above mentioned meshes, Another ingredient to minimize is the amount of undissolved solids. In addition, the additional amount of the aqueous phase will increase loading and energy requirements in the subsequent distillation column, so the other ingredient to minimize at the top of the organic phase is the amount of water that is water present as a separate aqueous phase.
10 밀리리터(10mL) 시료를 "고체가 들어있는" 및 "고체가 제거된" 병으로부터의 유기 층의 상부로부터 제거하고, 시료 둘 다를 원심분리하여 60분의 침전 시간 후 "고체가 들어있는" 및 "고체가 제거된" 병 안의 유기 상의 조성물을 나타내고 비교하였다. "고체가 들어있는" 시료의 상부로부터 수집한 시료의 조성물은, 60분 내에 이러한 시료 속에서 발생하는 상 분리가 필수적으로 없음을 확인한다. 구체적으로, "고체가 들어있는" 진탕 시험 병의 상부로부터 수집한 시료 속에서 용매 상 대 총 수성 상(수성 액체 + 현탁된 고체)의 비는 대략 1/4 w/w이며, 이는 시험 전에 시료를 제조하는데 사용된 동일한 비이다. 또한, "고체가 들어있는" 진탕 시험 병의 상부로부터 수집한 시료 속의 용해되지 않은 고체의 양은 액화된 옥수수 매쉬 속에서 발견된 것과 거의 동일하며, 이는, 60분 내에 당해 진탕 시험 병 속에 침전된 고체가 필수적으로 존재하지 않음을 나타낸다. 한편, 고체가 제거된 농축물("고체가 제거됨")을 포함하는 상 분리 시험으로부터의 상부 층이 용해되지 않은 고체를 필수적으로 함유하지 않았다. 당해 결과는 또한, 농축물을 포함하는 상 분리 시험으로부터의 상부 층이 상 물을 거의 함유하지 않았음을 나타낸다. 이는, 당해 시료 병 속에서 용매 상 대 수성 상의 비는 대략 1/1 w/w이며, 이는, 고체가 제거된 시험에서 유기 상에 용매(올레일 알코올)이 농축되어 있었음을 나타낸다. 표 5는, 60분의 침전 시간 후에 진탕 시험 병 둘 다에서 상부 "유기" 층 전반에 걸쳐서 분산된 상의 상대적인 양의 추정치를 나타낸다.A 10 milliliter (10 mL) sample was removed from the top of the organic layer from the " solids containing "and" solids removed "bottles, and both samples were centrifuged to obtain" The organic phase compositions in the "solids removed" bottle were compared and compared. The composition of the sample collected from the top of the "solid containing" sample confirms that there is essentially no phase separation occurring in these samples within 60 minutes. Specifically, the ratio of the solvent phase to the total aqueous phase (aqueous liquid + suspended solid) in the sample collected from the top of the shaking test bottle containing "solids " is approximately 1/4 w / w, ≪ / RTI > Also, the amount of undissolved solids in the sample collected from the top of the shaking test bottle containing "solids" is almost the same as that found in the liquefied corn mash, which means that the solids precipitated in the shaking test bottle Is not necessarily present. On the other hand, the upper layer from the phase separation test, which included a solid-depleted concentrate ("solids removed"), essentially did not contain undissolved solids. The results also indicate that the top layer from the phase separation test containing the concentrate contained very little water. This indicates that the ratio of solvent phase to aqueous phase in the sample bottle is approximately 1/1 w / w, indicating that the solvent (oleyl alcohol) was concentrated in the organic phase in the test in which the solid was removed. Table 5 shows an estimate of the relative amount of phase dispersed throughout the upper "organic" layer in both shaking test bottles after a settling time of 60 minutes.
[표 5][Table 5]
본 실시예는, i-BuOH를 함유하는 액화된 옥수수 매쉬로부터 용해되지 않은 고체를 제거하고, 이를 용매 상과 접촉하여, 이를 수일 동안 침전시킨 후, 당해 상을 다시 혼합하는 것이, 용해되지 않은 고체가 액화된 매쉬로부터 제거되지 않았던 시료와 비교하여 개선된 상 분리를 생성함을 나타낸다. 실제로, 당해 실시예는, 용해되지 않은 고체가 제거되지 않은 시료 속에서 필수적으로 상 분리가 심지어 60분 후에도 발생하지 않음을 나타낸다. 당해 실시예는, 상 분리 후 수득된 상부 상이, 고체를 매쉬의 액체 부분과 유기 용매를 접촉시키기 전에 우선 제거하는 경우 용해되지 않은 고체를 유의적으로 거의 함유하지 않음을 나타낸다. 이는, 추출 발효를 위한 상 분리의 상부("유기") 층에서 최소화되어야 하는 가장 중요한 종 중 2개가 미생물의 수준 및 매쉬로부터의 용해되지 않은 고체의 수준이므로 중요하다. 앞서의 실시예는, 액화된 옥수수 매쉬로부터 고체를 제거하는 것이, 수성 상을 용매 상과 접촉시킨 직 후 개선된 상 분리를 초래함을 나타내었다. 이는, 추출 발효가 발효시 조기 시점에 이용가능하도록 할 수 있다. 당해 실시예는 또한 액화된 옥수수 매쉬로부터 고체를 제거하는 것이 용매 상과 접촉된 수성 상(고체가 제거된 올리고당 용액)을 함유하는 노화된 시료 속에서 개선된 상 분리를 초래함을 나타낸다. 이는 또한, 추출 발효가 발효시 후기에 이용가능하도록 할 수 있다.This example demonstrates that removing the undissolved solids from the liquefied corn mash containing i- BuOH, contacting it with the solvent phase, allowing it to settle for several days, and then re-mixing the phase, ≪ / RTI > produces improved phase separation compared to samples that were not removed from the liquefied mesh. Indeed, this example shows that essentially no phase separation occurs even after 60 minutes in a sample in which undissolved solids have not been removed. This example shows that the top phase obtained after phase separation is substantially free of undissolved solids when the solids are first removed prior to contacting the liquid portion of the mesh with the organic solvent. This is important because two of the most important species that must be minimized in the upper ("organic") layer of phase separation for extraction fermentation are the levels of microorganisms and levels of undissolved solids from the mash. The previous example showed that removing the solids from the liquefied corn mash resulted in improved phase separation immediately after contacting the aqueous phase with the solvent phase. This allows the extraction fermentation to be available at an early stage in fermentation. This example also shows that removing the solids from the liquefied corn mash results in improved phase separation in the aged sample containing the aqueous phase (solids-free oligosaccharide solution) in contact with the solvent phase. This may also make the extract fermentation available later in the fermentation.
실시예Example 3 3
ISPRISPR 추출 용매 - 디스크 스택 원심분리기의 손실에 대한 용해되지 않은 고체의 제거의 효과 Effect of removal of undissolved solids on loss of extraction solvent-disk stack centrifuge
본 실시예는 반-연속 디스크-스택 원심분리기를 사용한 발효 전 옥수수 매쉬로부터 용해되지 않은 고체를 제거함으로써 추출 발효 공정에 의해 발생된 DDGS를 통한 용매 손실을 감소시키는 잠재능을 입증한다.This example demonstrates the ability to reduce solvent loss through DDGS produced by an extractive fermentation process by removing undissolved solids from pre-fermented corn silages using a semi-continuous disc-stack centrifuge.
대략 216kg의 액화된 옥수수 매쉬를 재킷형 스테인레스 강 반응기 속에서 제조하였다. 반응기를 기계적 교반, 온도 조절, 및 pH 조절로 설정하였다. 사용된 프로토콜은 다음과 같았다: 분쇄된 옥수수를 수돗물(무수물 기준으로 25중량%의 옥수수)과 혼합하고, 당해 슬러리를 400rpm에서 교반하면서 55℃로 가열하고, NaOH 또는 H2SO4를 사용하여 pH 5.8로 조정하며, 알파-아밀라제(무수 옥수수 기준으로 0.02중량%)를 가하고, 85℃에서 가열을 지속하며, pH를 5.8로 조정하고, pH를 5.8에서 유지하면서 85℃에서 30분 동안 유지시키고, 생 증기(live steam) 주입을 사용하여 121℃로 가열하고, 121℃에서 30분 동안 유지시켜 제트 쿠커(jet cooker)를 모의하며, 85℃로 냉각시키고, pH를 5.8로 조절하며, 알파-아밀라제(무수 옥수수 기준으로 0.02중량%)의 제2의 충전물을 가하고, pH를 5.8로 유지시키면서 85℃에서 60분 동안 유지시켜 액화를 완성한다. 이후에, 매쉬를 60℃로 냉각시키고 원심분리 공급물 탱크로 이전시켰다.Approximately 216 kg of liquefied corn mash was produced in a jacketed stainless steel reactor. The reactor was set to mechanical stirring, temperature control, and pH control. The protocol is as follows was used: heating the comminuted corn water (anhydrous basis with 25% by weight of corn) and mixed, and the slurry with 55 ℃ with stirring at 400rpm, and using NaOH or H 2 SO 4 pH Adjusted to 5.8, alpha-amylase (0.02% by weight on anhydrous corn) was added, heating was continued at 85 DEG C, the pH was adjusted to 5.8, the pH was maintained at 5.8 and kept at 85 DEG C for 30 minutes, Heated to 121 캜 using live steam injection and maintained at 121 캜 for 30 minutes to simulate a jet cooker, cooled to 85 캜, adjusted to pH 5.8, loaded with alpha-amylase (0.02% by weight on anhydrous corn) of a second filler is added and maintained at 85 DEG C for 60 minutes while maintaining the pH at 5.8 to complete liquefaction. Thereafter, the mesh was cooled to 60 DEG C and transferred to a centrifuge feed tank.
파이오니어 3335 하이브리드 옥수수, 전체 알맹이 황색 옥수수(제조원: 아이오와주 존스톤 소재의 Pioneer Hi-Bred International)를 사용하고, 이를 1mm 스크린을 사용하여 햄머-분쇄기 속에서 분쇄하였다. 분쇄된 옥수수의 수분 함량은 12중량%였으며, 분쇄된 옥수수의 전분 함량은 무수 옥수수 기준으로 71.4중량%이었다. 알파-아밀라제 효소는 Novozymes(노쓰캐롤라이나주 프랭클린 소재)로부터의 Liquozyme® SC DS이었다. 사용된 성분의 양은 61.8kg의 분쇄된 옥수수(12% 수분), 147.3kg의 수돗물, 제1의 알파-아밀라제 충전물을 위한 1kg의 물 속의 0.0109kg의 Liquozyme® SC DS의 용액, 제2의 알파-아밀라제 충전물(쿠킹 단계 후)을 위한 1kg의 물 속의 0.0109kg의 Liquozyme® SC DS의 다른 용액이었다. 약 5kg의 H2O를 쿠킹 단계 동안에 증기 농축물을 통해 배취에 가하였다. 총 0.25kg의 NaOH(12.5중량%) 및 0.12kg의 H2SO4(12.5중량%)를 실시 전체에서 가하여 pH를 조절하였다. 회수된 액화된 옥수수 매쉬의 총량은 216kg이었다.Pioneer 3335 hybrid corn, whole grain yellow corn (manufactured by Pioneer Hi-Bred International, Inc., Johnston, Iowa) was crushed in a hammer-grinder using a 1 mm screen. The moisture content of the ground corn was 12 wt%, and the starch content of the ground corn was 71.4 wt% on anhydrous corn. Alpha-amylase enzyme was Liquozyme ® SC DS from Novozymes (North Carolina Franklin materials). The amount of ingredients used 61.8kg of crushed corn (12% moisture), 147.3kg of water, the alpha 1-amylases Liquozyme solution of 0.0109kg in the water for the filling of 1kg ® SC DS, of a second alpha- amylase filler was a different solution of Liquozyme ® SC DS of 0.0109kg in the water of 1kg for (after cooking step). About 5 kg of H 2 O was added to the batch via the steam concentrate during the cooking step. A total of 0.25 kg of NaOH (12.5 wt%) and 0.12 kg of H 2 SO 4 (12.5 wt%) were added throughout the run to adjust the pH. The total amount of recovered liquefied corn mash was 216 kg.
최종의 액화된 옥수수 매쉬 슬러리의 조성은 대략 7중량%의 용해되지 않은 고체 및 93중량%의 액체인 것으로 추정되었다. 당해 액체 상은 약 19중량%(190g/L)의 액화된 전분(가용성 올리고당)을 함유하였다. 매쉬의 유동학은 슬러리를 이의 성분으로 분리하는 능력과 관련하여 중요하다. 매쉬 속의 액체 상은 30℃에서 점도가 약 5.5cP인 뉴톤유체(Newtonian fluid)인 것으로 측정되었다. 매쉬 슬러리는, 전단 속도에 따라 85℃에서 벌크 점도(bulk viscosity)가 약 10 내지 70 cP인 전단 희석 유체인 것으로 측정되었다.The final liquefied corn mash slurry composition was estimated to be approximately 7 wt% undissolved solids and 93 wt% liquid. The liquid phase contained about 19% by weight (190 g / L) of liquefied starch (soluble oligosaccharides). The rheology of the mesh is important in relation to its ability to separate the slurry into its constituents. The liquid phase in the mesh was measured to be a Newtonian fluid having a viscosity of about 5.5 cP at 30 ° C. The mesh slurry was measured to be a shear thinning fluid having a bulk viscosity of about 10 to 70 cP at 85 DEG C, depending on the shear rate.
액화된 매쉬(209kg, 190L)는 디스크-스택 분할-보울 원심분리기(제조원: 버지니아주 리치몬드 소재의 Alfa Laval Inc.)를 사용하여 원심분리하였다. 원심분리기는 연속 공급물, 연속 농축물 출구, 및 습윤 케이크의 배취 배출을 사용한 반-배취 방식으로 작동하였다. 액화된 옥수수 매쉬를 1L/min의 속도로 연속 공급하고, 투명해진 농축물을 연속적으로 제거하고, 습윤 케이크를 매 4분마다 주기적으로 배출하였다. 디스크 스택으로부터의 고체에 대한 적절한 배출 간격을 측정하기 위하여, 디스크 스택으로 공급될 매쉬의 시료를 고속 랩 원심분리기 속에서 원심분리하였다. 매쉬(48.5g)를 실온에서 11,000rpm(실온에서 약 21,000g으로 약 10분 동안)으로 회전시켰다. 투명해진 농축물(36.1g) 및 12.4g의 펠렛(습윤 케이크)을 회수하였다. 투명해진 농축물은 약 0.3중량%의 용해되지 않은 고체를 함유하였으며 펠렛(습윤 케이크)은 약 27중량%의 용해되지 않은 고체를 함유한 것으로 측정되었다. 이러한 데이터를 기반으로, 4분의 배출 간격을 디스크 스택 원심분리기의 작동을 위해 선택하였다.The liquefied mesh (209 kg, 190 L) was centrifuged using a disk-stack split-bowl centrifuge (Alfa Laval Inc., Richmond, Va.). The centrifuge operated in a semi-batch mode using continuous feed, continuous concentrate outlet, and batch drainage of the wet cake. The liquefied corn mash was continuously fed at a rate of 1 L / min, the clarified concentrate was continuously removed, and the wet cake was periodically drained every 4 minutes. To determine the proper discharge interval for solids from the disk stack, a sample of the mesh to be fed into the disk stack was centrifuged in a high speed lap centrifuge. The mesh (48.5 g) was spun at room temperature to 11,000 rpm (room temperature to about 21,000 g for about 10 minutes). The clarified concentrate (36.1 g) and 12.4 g of pellets (wet cake) were recovered. The clarified concentrate contained about 0.3% by weight of undissolved solids and the pellets (wet cake) contained about 27% by weight of undissolved solids. Based on this data, a 4 minute discharge interval was selected for operation of the disk stack centrifuge.
디스크 스택 원심분리기는 1L/min의 액화된 옥수수 매쉬 공급물 속도를 이용하여 9000 rpm(6100g)으로 약 60℃에서 작동시켰다. 매쉬(209kg)를 155kg의 투명해진 농축물 및 55kg의 습윤 케이크로 분리하였다. 반-연속식 디스크 스택에 의해 달성된, (농축물의 양)/(공급된 매쉬의 양)으로 정의된 분할분(split)은 배취 원심분리기에서 달성된 분할분과 유사하였다. 6100g, 1L/min의 공급 속도, 및 4분의 배출 간격에서 작동하는 디스크 스택 반-배취 원심분리기에 대한 분할분은 (155kg/209kg) = 74%이었으며, 21,000g에서 10분 동안 작동하는 랩 배취 원심분리기에 대한 분할분은 (36.1g/48.5g) = 74%이었다.The disk stack centrifuge was operated at about 60 ° C at 9000 rpm (6100 g) using a liquefied corn meal feed rate of 1 L / min. The mesh (209 kg) was separated into 155 kg of a clear, concentrated concentrate and 55 kg of wet cake. The split defined by (amount of concentrate) / (quantity of supplied mesh) achieved by the semi-continuous disk stack was similar to the fraction achieved in the batch centrifuge. (155 kg / 209 kg) = 74% for a disk stack half-batch centrifuge operating at 6100 g, a feed rate of 1 L / min, and a discharge interval of 4 minutes, and a lap batch The fraction (36.1 g / 48.5 g) for the centrifuge was 74%.
디스크 스택 원심분리기로부터 회수된 투명해진 원심분리 시료 45 mL를 랩 원심분리기 속에서 21,000g으로 10분 동안 회전시켜 농축물 속에서 현탁된 고체의 수준을 평가하였다. 약 0.15 내지 0.3g의 용해되지 않은 고체를 45mL의 농축물로부터 회수하였다. 이는 원심분리기에 공급된 매쉬로부터의 용해되지 않은 고체 속의 약 10배 감소인 농축물 속의 용해되지 않은 고체 중 0.3 내지 0.7중량%에 상응한다. DDGS를 통한 ISPR 추출 용매 손실은, 추출 발효 속에 존재하는 용해되지 않은 고체의 수준이 일부 고체/액체 분리 장치 또는 장치의 조합을 사용하여 한 자릿수(an order of magnitude)로 감소되는 경우, 대략 한 자릿수로 감소되어 발효 전 옥수수 매쉬로부터 현탁된 고체를 제거할 수 있었음이 이상적이다. DDGS를 통한 용매 손실을 최소화시키는 것은 추출 발효 공정을 위한 DDGS 품질 및 경제성에 있어서 중요한 인자이다.45 mL of the clarified centrifuge sample recovered from the disk stack centrifuge was spun in a lap centrifuge at 21,000 g for 10 minutes to assess the level of suspended solids in the concentrate. About 0.15 to 0.3 g of undissolved solid was recovered from 45 mL of the concentrate. This corresponds to 0.3 to 0.7% by weight of undissolved solids in the concentrate which is about 10 times less in the undissolved solids from the mesh fed to the centrifuge. ISPR Extraction Solvent Loss via DDGS is a process whereby the level of undissolved solids present in the extract fermentation is reduced to an order of magnitude using some solid / liquid separator or combination of devices, To remove suspended solids from the pre-fermented corn mash. Minimizing solvent loss through DDGS is an important factor in the quality and economics of DDGS for the extraction fermentation process.
실시예Example 4 4
ISPRISPR 추출 용매-병 회전 시험의 손실에 대한 용해되지 않은 고체의 제거의 효과 Effect of removal of undissolved solids on loss of extraction solvent-bottle rotation test
본 실시예는, DDGS를 통한 용매 손실을 감소시키기 위한 잠재능이 원심분리기를 사용한 발효 전에 옥수수 매쉬로부터 용해되지 않은 고체를 제거함에 의해 추출 발효 공정으로 발생되었음을 입증한다.This example demonstrates that the ability to reduce solvent losses through DDGS has been generated in the fermentation process by removing undissolved solids from the corn mash prior to fermentation using a centrifuge.
실험실-규모의 병 회전 시험을 액화된 옥수수 매쉬를 사용하여 수행하였다. 당해 시험은 통상적인 에탄올 공장에서 전체 증류폐액으로부터 용해되지 않은 고체를 제거하기 위해 사용된 전형적인 데칸터 원심분리기의 작동 조건을 모의한다. 통상적인 에탄올 공장에서 데칸터 원심분리기는 약 3000g의 상대적인 원심력(RCF) 및 약 30초의 전체 증류폐액 체류 시간에서 전형적으로 작동한다. 이들 원심분리기는 전형적으로 약 5% 내지 6%의 현탁된 고체(비어 컬럼 후)를 함유하는 전체 증류폐액 속에서 약 90%의 현탁된 고체를 제거하여, 약 0.5%의 현탁된 고체를 함유하는 옅은 증류폐액을 생성한다.Laboratory-scale bottle rotation tests were performed using liquefied corn mash. This test simulates the operating conditions of a typical decanter centrifuge used to remove undissolved solids from the entire distillation waste liquid in a conventional ethanol plant. In a typical ethanol plant, a decanter centrifuge typically operates at a relative centrifugal force (RCF) of about 3000 g and a total distillery waste retention time of about 30 seconds. These centrifuges typically remove about 90% of suspended solids in a total distillation wastewater containing about 5% to 6% of suspended solids (after the beer column), resulting in a suspension containing about 0.5% of the suspended solids A light distillation waste liquid is produced.
액화된 옥수수 매쉬는 실시예 2에 기술된 프로토콜에 따라 제조하였다. 약 10 mL의 매쉬를 원심분리기 튜브 속에 두었다. 당해 시료를 약 3000g(4400 rpm의 회전자 속도)의 RCF에서 총 1분 동안 원심분리하였다. 원심분리기의 가속화 및 탈가속화로 인하여 시료를 3000g에서 약 30 내지 40초 동안 및 3000g 미만의 속도에서 총 20 내지 30초 동안 소비하였다. 시료 온도는 약 60℃이었다.Liquefied corn mashes were prepared according to the protocol described in Example 2. About 10 mL of the mesh was placed in a centrifuge tube. The sample was centrifuged for a total of 1 minute at an RCF of about 3000 g (rotor speed of 4400 rpm). Due to the acceleration and deceleration of the centrifuge the sample was consumed at 3000 g for about 30 to 40 seconds and at a rate of less than 3000 g for a total of 20 to 30 seconds. The sample temperature was about 60 ° C.
약 7중량%의 현탁된 고체를 함유한 매쉬(10mL)를 약 6.25mL의 투명해진 농축물 및 3.75 mL의 습윤 케이크(원심분리기 튜브의 바닥에서의 펠렛)로 분리하였다. 병 회전 시험에 의해 달성된, (농축물의 양)/(충전된 원래의 매쉬의 양)으로 정의된, 분할분은 약 62%였다. 투명한 농축물은 약 0.5중량%의 현탁된 고체를 함유하였으며, 이는 원래의 매쉬 속의 현탁된 고체의 수준과 비교하여 현탁된 고체 속에서 10 배 이상의 감소인 것으로 측정되었다. 투명한 펠렛은 약 18중량%의 현탁된 고체를 함유한 것으로 또한 측정되었다.A mesh (10 mL) containing about 7 wt% of the suspended solids was separated into about 6.25 mL of the clarified concentrate and 3.75 mL of the wet cake (pellet at the bottom of the centrifuge tube). The fraction divided by (amount of concentrate) / (amount of original mesh filled) achieved by the bottle rotation test was about 62%. The clear concentrate contained about 0.5 wt.% Suspended solids, which was determined to be a 10-fold decrease in suspended solids compared to the level of suspended solids in the original mesh. The clear pellets were also measured to contain about 18% by weight suspended solids.
표 6은 상업적인 에탄올 공정 시 전체 증류폐액을 옅은 증류 폐액으로 전환시키기 위한 데칸터 원심분리기의 작동을 나타내는 조건에서 병 회전 시험에 대한 현탁된(용해되지 않은) 고체 질량 균형을 요약한다. 표 6에 제공된 모든 값은 근사치이다.Table 6 summarizes the suspended (undissolved) solids mass balance for the bottle rotation test under conditions indicative of the operation of a decanter centrifuge to convert the entire distillation waste liquid to a light distillation waste liquid in a commercial ethanol process. All values provided in Table 6 are approximate.
[표 6][Table 6]
농축물은 약 190g/L의 용해된 올리고당(액화된 전분)을 함유한 것으로 또한 측정되었다. 이는, 분쇄된 옥수수 속의 전분의 대부분이 사용된 옥수수 부하(무수 옥수수 기준으로 약 26중량%) 및 사용된 옥수수의 전분 함량을 기준으로 한 액화 공정 시 액화되어(즉, 가용성 올리고당으로 가수분해되어) 액화된 매쉬(무수 옥수수 기준으로 약 71.4중량%의 전분)를 생산한다는 추정과 일치한다. 26%의 무수 옥수수 부하에서 분쇄된 옥수수 속의 전분의 대부분을 가수분해하면 병 회전 시험에 사용된 원심분리기에 충전된 액화된 옥수수 매쉬 속에서 약 7중량%의 현탁된(용해되지 않은) 고체가 생성될 것이다.The concentrate was also measured to contain about 190 g / L of dissolved oligosaccharide (liquefied starch). This is because most of the ground corn starch is liquefied (i. E., Hydrolyzed to soluble oligosaccharides) during the liquefaction process based on the corn load (about 26% by weight on anhydrous maize) used and the starch content of the corn used, (About 71.4% by weight starch on anhydrous maize) of liquefied mash. Hydrolysis of most of the corn starch ground at 26% anhydrous maize load resulted in about 7 wt% suspended (undissolved) solids in the liquefied corn mache filled in the centrifuge used in the bottle rotation test Will be.
투명해진 농축물이 단지 약 0.5중량%의 용해되지 않은 고체를 함유하였다는 사실은, 병 회전 시험에 사용된 조건이 충전된 매쉬로부터의 용해되지 않은 고체 속에서 10배 이상의 감소를 초래하였음을 나타낸다. 이와 동일한 고체 제거 성능이 발효 전 연속식 데칸터 원심분리기에 의해 달성될 수 있는 경우, DDGS에서 ISPR 추출 용매 손실이 대략 한 자릿수로 감소될 수 있었음이 충분히 추정된다. DDGS를 통한 용매 손실을 최소화하는 것은 추출 발효 공정을 위한 DDGS 품질 및 경제성에 있어서 중요한 인자이다.The fact that the clarified concentrate contained only about 0.5% by weight of undissolved solids indicates that the conditions used in the bottle rotation test resulted in a 10-fold or more reduction in the undissolved solids from the filled mash . It is well assumed that the same solids removal performance could be achieved by a pre-fermentation continuous decanter centrifuge, the loss of ISPR extraction solvent in DDGS could be reduced to approximately one order of magnitude. Minimizing solvent loss through DDGS is an important factor in DDGS quality and economics for the extraction fermentation process.
실시예Example 5 5
용해되지 않은 고체를 제거함에 의한 옥수수 오일의 제거Removal of corn oil by removing undissolved solids
본 실시예는 발효 전에 용해되지 않은 고체를 제거함으로써 옥수수 매쉬로부터 옥수수 오일을 제거하고 회수하기 위한 잠재능을 입증한다. 추출 용매의 효능은, 옥수수 오일을 용해되지 않은 고체의 제거를 통해 제거하는 경우 개선될 수 있다. 또한, 용해되지 않은 고체의 제거를 통한 옥수수 오일의 제거는 용매 분배 계수의 어떠한 감소도 최소화하여 잠재적으로 개선된 추출 발효 공정을 생성할 수 있다.This example demonstrates the ability to remove and recover corn oil from corn mash by removing undissolved solids before fermentation. The efficacy of the extraction solvent can be improved if corn oil is removed through the removal of undissolved solids. In addition, removal of corn oil through removal of undissolved solids can minimize any reduction in the solvent partition coefficient, creating a potentially improved extraction fermentation process.
대략 1000g의 액화된 옥수수 매쉬를 1L 유리, 재킷형 수지 케틀 속에서 제조하였다. 당해 케틀을 기계적 교반, 온도 조절, 및 pH 조절을 사용하여 설정하였다. 다음의 프로토콜을 사용하였다: 분쇄된 옥수수를 수돗물(무수물 기준으로 26중량%의 옥수수)과 혼합하고, 당해 슬러리를 교반하면서 55℃로 가열하고, pH를 NaOH 또는 H2SO4를 사용하여 5.8로 조정하고, 알파-아밀라제(무수 옥수수 기준으로 0.02중량%)를 가하고, 85℃까지 연속적으로 가열하고, pH를 5.8로 조정하고, pH를 5.8로 유지하면서 85℃로 2시간 동안 유지시키고, 25℃로 냉각시킨다.Approximately 1000 g of liquefied corn mash was prepared in a 1 L glass, jacketed resin kettle. The kettle was set up using mechanical stirring, temperature control, and pH control. The following protocol was used: milled corn was mixed with tap water (26 wt% corn on anhydrous basis) and the slurry heated to 55 ° C with stirring and the pH was adjusted to 5.8 using NaOH or H 2 SO 4 (0.02 wt% on anhydrous corn), heated continuously to 85 ° C, adjusted to pH 5.8, held at 85 ° C for 2 hours while maintaining the pH at 5.8, maintained at 25 ° C Lt; / RTI >
Pioneer 3335 하이브리드 옥수수, 전체 알맹이 황색 옥수수(제조원: 아이오와주 존스톤 소재의 Pioneer Hi-Bred International)를 사용하고, 이를 햄머-분쇄기 속에서 1 mm 스크린을 사용하여 분쇄하였다. 분쇄된 옥수수의 수분 함량은 약 11.7중량%이었으며, 분쇄된 옥수수의 전분 함량은 무수 옥수수 기준으로 약 71.4중량%이었다. 알파-아밀라제 효소는 Liquozyme® SC DS(제조원: 노쓰캐롤라이나주 프랭클린톤 소재의 Novozymes)이었다. 사용된 성분의 총량은 294.5g의 분쇄된 옥수수(11.7% 수분), 705.5g의 수돗물, 및 0.059g의 Liquozyme® SC DS이었다. 물(4.3g)을 가하여 효소를 희석시키고, 총 2.3g의 20% NaOH 용액을 가하여 pH를 조절하였다. 약 952g의 매쉬를 회수하였다.Pioneer 3335 hybrid corn, whole grain yellow corn (Pioneer Hi-Bred International, Inc., Johnston, Iowa) was used and milled in a hammer-grinder using a 1 mm screen. The moisture content of the ground corn was about 11.7 wt%, and the starch content of the ground corn was about 71.4 wt% on anhydrous corn. Alpha-amylase enzyme Liquozyme ® SC DS: It was (manufactured by Novozymes North Carolina Franklin t material). The total amount of ingredients used was 294.5 g of ground corn (11.7% moisture), 705.5 g of tap water, and 0.059 g of Liquozyme ® SC DS. Water (4.3 g) was added to dilute the enzyme, and a total of 2.3 g of 20% NaOH solution was added to adjust the pH. Approximately 952 g of the mesh was recovered.
액화된 옥수수 매쉬를 5000 rpm (7260g)에서 30분 동안 40℃에서 원심분리시켜 올리고당의 수용액으로부터 용해되지 않은 고체를 제거하였다. 원심분리에 의한 고체의 제거는 또한 수성 상의 상부에 별도의 유기 액체로서 유리 옥수수 오일의 제거를 생성하였다. 대략 1.5g의 옥수수 오일을 수성 상의 상부에 부유하는 유기 층으로부터 회수하였다. 액화된 매쉬를 생산하는데 사용된 분쇄된 옥수수는 무수 옥수수 기준으로 약 3.5중량%의 옥수수 오일을 함유하였다는 것이 헥산 추출로 측정되었다. 이는 분쇄된 옥수수를 사용한 액화 공정에 공급된 약 9g의 옥수수 오일에 상응한다.The liquefied corn mash was centrifuged at 5000 rpm (7260 g) for 30 minutes at 40 < 0 > C to remove undissolved solids from the aqueous solution of oligosaccharide. Removal of the solids by centrifugation also resulted in the removal of glass corn oil as a separate organic liquid on top of the aqueous phase. Approximately 1.5 g of corn oil was recovered from the organic layer suspended on top of the aqueous phase. It was determined by hexane extraction that the ground corn used to produce the liquefied mesh contained about 3.5 wt.% Corn oil on anhydrous maize. This corresponds to about 9 grams of corn oil supplied to the liquefaction process using ground corn.
액화된 매쉬로부터 옥수수 오일을 회수한 후, 올리고당의 수용액을 습윤 케이크로부터 경사 제거하였다. 약 617g의 액화된 전분 용액을 회수하여 약 334g의 습윤 케이크를 남겼다. 습윤 케이크는 액화된 매쉬 속에 존재하였던 대부분의 용해되지 않은 고체를 함유하였다. 액화된 전분 용액은 약 0.2중량%의 용해되지 않은 고체를 함유하였다. 습윤 케이크는 약 21중량%의 용해되지 않은 고체를 함유하였다. 당해 습윤 케이크를 1000g의 수돗물로 세척하여 케이크 속에 여전히 있는 올리고당을 제거하였다. 이는 케이크를 물과 혼합하여 슬러리를 형성함으로써 수행하였다. 이후에, 슬러리를 원래의 매쉬를 원심분리하는데 사용된 동일한 조건하에서 원심분리하여 세척된 고체를 회수하였다. 세척 슬러리를 원심분리하여 세척된 고체를 제거하는 것은 또한 액화된 매쉬로부터 생성된 원래의 습윤 케이크와 함께 잔존하여야만 하는 일부의 추가 유리된 옥수수 오일의 제거를 생성하였다. 이러한 추가의 옥수수 오일은 원심분리된 세척 혼합물의 수성 상의 상부에 별도의, 옅은, 유기 액체 층으로서 관찰되었다. 대략 1g의 추가의 옥수수 오일을 세척 공정으로부터 회수하였다.After recovering the corn oil from the liquefied mesh, an aqueous solution of oligosaccharide was decanted away from the wet cake. About 617 g of the liquefied starch solution was recovered leaving about 334 g of wet cake. The wet cake contained most of the undissolved solids that were present in the liquefied mesh. The liquefied starch solution contained about 0.2 wt% undissolved solids. The wet cake contained about 21% by weight of undissolved solids. The wet cake was washed with 1000 g of tap water to remove oligosaccharide still present in the cake. This was done by mixing the cake with water to form a slurry. The slurry was then centrifuged under the same conditions used to centrifuge the original mesh to recover washed solids. Centrifugation of the wash slurry to remove washed solids also resulted in the removal of some additional free corn oil that had to remain with the original wet cake produced from the liquefied mesh. This additional corn oil was observed as a separate, pale, organic liquid layer on top of the aqueous phase of the centrifuged wash mixture. Approximately 1 g of additional corn oil was recovered from the wash process.
습윤 고체를 1000g의 수돗물을 사용하여 매번 2회 이상 세척하여 필수적으로 모든 액화된 전분을 제거하였다. 매쉬 고체의 2번째 및 3번째 물 세척으로부터 가시적인 추가의 옥수수 오일이 제거되지 않았다. 최종 세척된 고체를 진공 오븐 속에서 밤새 80℃에서 및 약 20 인치의 Hg 진공으로 건조시켰다. 무수 고체로서, 아마도 여전히 배아로 잔존하는 옥수수 오일의 양은 헥산 추출로 측정하였다. 비교적 무수 고체인 시료(3.60g, 약 2중량%의 수분)는 0.22g의 옥수수 오일을 함유하였다. 당해 결과는 0.0624g의 옥수수 오일/g의 무수 고체에 상응한다. 이는 습윤 고체 속에 잔류 올리고당이 존재하지 않음을 의미하는 세척된 고체의 경우이었다. 액화된 옥수수 매쉬를 원심분리하여 유리 옥수수 오일 및 올리고당의 수용액의 층을 습윤 케이크로부터 분리한 후, 약 21중량%의 용해되지 않은 고체를 함유하는 약 334g의 습윤 케이크가 잔존하는 것으로 측정되었다. 이는 약 70.1g의 용해되지 않은 고체를 포함하는 습윤 케이크에 상응한다. 0.0624g의 옥수수 오일/g의 무수 고체에서, 습윤 케이크 속의 고체는 약 4.4g의 옥수수 오일을 함유하여야 한다.The wet solid was washed twice more each time with 1000 g of tap water to remove essentially all liquefied starch. No visible additional corn oil was removed from the second and third water wash of the mesh solid. The final washed solids were dried in a vacuum oven at 80 < 0 > C overnight and about 20 inches of Hg vacuum. As a dry solid, the amount of corn oil that was still remaining in the embryo was probably determined by hexane extraction. A relatively anhydrous solid sample (3.60 g, approximately 2 wt% moisture) contained 0.22 g of corn oil. The results correspond to a dry solid of 0.0624 g of corn oil / g. This was the case for washed solids, meaning that no residual oligosaccharides were present in the wet solid. The liquefied corn mash was centrifuged to separate a layer of the aqueous corn oil and oligosaccharide solution from the wet cake and then determined that about 334 grams of wet cake remained, containing about 21 weight percent undissolved solids. This corresponds to a wet cake containing about 70.1 g of undissolved solids. In a dry solid of 0.0624 g of corn oil / g, the solids in the wet cake should contain about 4.4 g of corn oil.
요약하면, 대략 1.5g의 유리 옥수수 오일이 액화된 매쉬를 원심분리함으로써 회수되었다. 추가로 1g의 유리 옥수수 오일은 매쉬로부터 생성된 원래의 습윤 케이크를 세척하기 위해 발생된 제1(물)의 세척 슬러리를 원심분리하여 회수하였다. 최종적으로, 세척된 고체는 약 4.4g의 옥수수 오일을 여전히 함유한 것으로 측정되었다. 액화에 충전된 옥수수는 약 9g의 옥수수 오일을 함유한 것으로 또한 측정되었다. 따라서, 총 6.9g의 옥수수 오일을 다음의 공정 단계로부터 회수하였다: 액화, 액화된 매쉬로부터 고체의 제거, 당해 매쉬로부터 고체의 세척, 및 고체의 최종 세척. 결과적으로, 액화에 공급된 옥수수 속의 총 옥수수 오일의 대략 76%가 본원에 기술된 액화 및 고체 제거 공정 동안에 회수되었다.In summary, approximately 1.5 g of free corn oil was recovered by centrifuging the liquefied mesh. In addition, 1 g of glassy corn oil was recovered by centrifugation of the first (water) wash slurry generated to wash the original wet cake produced from the mesh. Finally, the washed solid was determined to still contain about 4.4 g of corn oil. The liquefied corn was also measured to contain about 9 grams of corn oil. Thus, a total of 6.9 g of corn oil was recovered from the following process steps: liquefaction, removal of solids from the liquefied mesh, washing of the solids from the mesh, and final washing of the solids. As a result, approximately 76% of the total corn oil in the corn fed to the liquefaction was recovered during the liquefaction and solid removal processes described herein.
실시예Example 6 6
당원으로서 농축물 및 매쉬를 사용한 추출 발효Extraction fermentation using concentrate and mesh as a party
본 실시예는 당원으로서 옥수수 매쉬 및 옥수수 매쉬 농축물을 사용하여 수행된 추출 발효를 설명한다. 옥수수 매쉬 농축물은 발효 전에 옥수수 매쉬로부터 용해되지 않은 고체를 제거하여 생성하였다. 4회의 추출 발효를, 당원으로서 액화된 옥수수 매쉬(고체는 제거되지 않음)를 사용하여 2회 및 액화된 옥수수 매쉬로부터 용해되지 않은 고체의 대부분을 제거하여 수득된 액화된 매쉬 농축물(올리고당의 수용액)을 사용하여 2회 나란히 수행하였다. 올레일 알코올(OA)을 하나는 고체를 사용하고 하나는 제거된 고체를 사용하는 2개의 발효에 가하여 브로쓰로부터 형성되는 생성물(i-BuOH)을 추출하였다. 옥수수 오일 지방산(COFA)의 혼합물을 하나는 고체를 사용하고 하나는 제거된 고체를 사용하는, 다른 2개의 발효에 가하여, 브로쓰로부터 형성되는 생성물을 추출하였다. COFA는 옥수수 오일을 가수분해하여 제조하였다. 이들 발효의 목적은 용매와 브로쓰 사이의 상 분리 시 고체를 제거하는 효과를 시험하고 고체가 제거된 또는 고체가 제거되지 않은 발효 브로쓰로부터 회수된 용해되지 않은 고체 속에 트래핑된 잔류 용매의 양을 측정하였다.This example illustrates an extractive fermentation carried out using corn mash and corn mash concentrate as a source. The corn mash concentrate was produced by removing undissolved solids from the corn mash before fermentation. Four extracted fermentations were performed twice using liquefied corn mash (solid not removed) as a source and liquefied mesh concentrate obtained by removing most of the undissolved solids from the liquefied corn mash (an aqueous solution of oligosaccharide ). ≪ / RTI > The product ( i- BuOH) formed from the broth was extracted by adding two oleyl alcohol (OA), one using solids and one using the removed solids. A mixture of corn oil fatty acid (COFA) was added to the other two fermentations, one using solids and one using solids removed, to extract the product formed from the broth. COFA was prepared by hydrolyzing corn oil. The purpose of these fermentations is to test the effect of removing solids during phase separation between solvent and broth and to determine the amount of residual solvent trapped in undissolved solids recovered from solids-free or non-solids fermentation broth Respectively.
액화된 옥수수 Liquefied corn 매쉬의Mash 제조 Produce
대략 31kg의 액화된 옥수수 매쉬를 30L의 재킷형 유리 수지 케틀 속에서 제조하였다. 반응기에 기계적 교반, 온도 조절, 및 pH 조절로 장비처리하였다. 사용된 프로토콜은 다음과 같았다: 분쇄된 옥수수를 수돗물(무수물 기준으로 40중량%의 옥수수)과 혼합하고, 당해 슬러리를 250rpm으로 교반하면서 55℃로 가열하고, pH를 NaOH 또는 H2SO4를 사용하여 5.8로 조정하고, 알파-아밀라제(무수 옥수수 기준으로 0.16중량%)의 묽은 수용액을 가하고, 55℃에서 60분 동안 유지시키고, 95℃로 가열하고, pH를 5.8로 조정하고, 95℃에서 120분 동안 pH를 5.8로 유지하면서 두어 액화를 완료하였다. 매쉬를 멸균 원심분리기 병 속으로 이전시켜 오염을 방지하였다.Approximately 31 kg of liquefied corn mash was produced in a 30 L jacketed glass resin kettle. The reactor was equipped with mechanical stirring, temperature control, and pH adjustment. The protocol used was as follows: milled corn was mixed with tap water (40 wt.% Corn on anhydrous basis) and the slurry heated to 55 ° C with stirring at 250 rpm and the pH was adjusted to
사용된 옥수수는 전체 알맹이 황색 옥수수(제조원: 아이오와주 존스톤 소재의 Pioneer Hi-Bred International)이었으며, 이를 파일럿-규모 햄머-분쇄기 속에서 1 mm의 스크린을 사용하여 분쇄하였다. 분쇄된 옥수수의 수분 함량은 약 12중량%이었으며, 분쇄된 옥수수의 전분 함량은 무수 옥수수 기준으로 약 71.4중량%이었다. 사용된 알파-아밀라제 효소는 Spezyme® Fred-L(제조원: 캘리포니아주 팔로 알토 소재의 Genencor®)이었다. 사용된 성분의 양은: 14.1kg의 분쇄된 옥수수(12% 수분), 16.9kg의 수돗물, 2.0kg의 물 속의 19.5g의 Spezyme® Fred-L로 이루어진 알파-아밀라제의 용액이었다. 알파-아밀라제는 멸균 여과하였다. 총 0.21kg의 NaOH(17중량%)를 당해 실시 전반에 걸쳐 pH를 조정하였다.The corn used was whole-grain yellow corn (Pioneer Hi-Bred International of Johnston, Iowa), which was ground using a 1 mm screen in a pilot-scale hammer-grinder. The moisture content of the ground corn was about 12 wt%, and the starch content of the ground corn was about 71.4 wt% on anhydrous corn. Using the Alpha-amylase enzyme Spezyme ® Fred-L: It was (® Manufacturer of Palo Alto, Genencor). The amount of ingredients used was: a solution of alpha-amylase consisting of 14.1 kg of ground corn (12% moisture), 16.9 kg of tap water, 19.5 g of Spezyme ® Fred-L in 2.0 kg of water. Alpha-amylase was sterile filtered. A total of 0.21 kg of NaOH (17% by weight) was adjusted throughout the run.
액화된 옥수수 매쉬는 사용된 옥수수 부하를 기준으로 하여 대략 28중량%(약 280g/L)의 액화된 전분, 옥수수의 전분 함량을 함유한 것으로 추정되었으며, 모든 전분은 액화 동안 가수분해된 것으로 추정되었다. 매쉬를 발효 시 요구되는 것보다 더 높은 농도의 올리고당을 사용하여 제조함으로써 영양분, 접종물, 글루코아밀라제, 및 염기를 초기 발효 브로쓰에 가하는 경우 희석을 허용하였다. 영양분, 접종물, 글루코아밀라제, 및 염기의 첨가에 의한 희석 후, 매쉬(고체는 제거되지 않음) 속의 예측된 총 초기 가용성 당은 약 250g/L이었다.The liquefied corn mash was estimated to contain approximately 28 wt.% (About 280 g / L) of liquefied starch based on the corn load used, the starch content of maize, and all starches were estimated to be hydrolyzed during liquefaction . The mash was prepared using higher concentrations of oligosaccharides than required for fermentation, allowing dilution when the nutrients, inoculum, glucoamylase, and base were added to the initial fermentation broth. After dilution by addition of nutrients, inoculum, glucoamylase, and base, the predicted total initial soluble sugar in the mash (solid not removed) was about 250 g / L.
약 13.9kg의 액화된 매쉬를 6개의 1L들이 병을 함유한 병 원심분리기를 사용하여 원심분리하였다. 원심분리기를 5000rpm(7260 RCF)에서 20분 동안 실온으로 작동시켰다. 매쉬를 약 5.5kg의 투명해진 농축물 및 약 8.4kg의 습윤 케이크(원심분리기 병의 바닥에 펠렛)로 분리하였다. (농축물의 양)/(공급된 매쉬의 양)으로 정의된 분할분은 약 (5.5kg/13.9kg) = 40%이었다.Approximately 13.9 kg of the liquefied mesh was centrifuged using a bottle centrifuge containing six 1 L bottles. The centrifuge was operated at room temperature for 20 minutes at 5000 rpm (7260 RCF). The mesh was separated into about 5.5 kg of the clarified concentrate and about 8.4 kg of wet cake (pellet on the bottom of the centrifuge bottle). (5.5 kg / 13.9 kg) = 40% was defined as the amount of water (concentrated amount) / (amount of supplied mesh).
고체는 하기 기술한 2010Y034 및 2010Y036 발효에 충전된 매쉬로부터 제거되지 않았다. 발효 2010Y033 및 2010Y035(또한 하기 기술됨)에 충전된 농축물은 상기 프로토콜에 따라 매쉬로부터 현탁된 고체의 대부분을 원심분리로 제거함으로써 생성하였다.The solids were not removed from the filled mashes at the 2010Y034 and 2010Y036 fermentations described below. Concentrates filled in fermentations 2010Y033 and 2010Y035 (also described below) were produced by centrifuging most of the suspended solids from the mesh according to the protocol.
발효 씨드 플라스크 성장을 위한 일반적인 방법Common methods for growing fermented seed flasks
탄수화물 공급원으로부터 이소부탄올을 생성하기 위해 가공한 사카로마이세스 세레비지아에 균주(pdcl , pdc5 , 및 pdc6이 결실됨)를 동결된 배양물로부터의 씨드 플라스크 속에서 0.55 내지 1.1g/L dcw(OD600 1.3-2.6 - Thermo Helios α 제조원: 매사츄세츠주 왈탐 소재의 Thermo Fisher Scientific Inc.)로 성장시켰다. 사카로마이세스 세레비지아에 균주는, 본원에 참조로 혼입된 미국 특허원 공보 제2012/0164302호에 기술되어 있다. 배양물을 26℃에서 300 rpm으로 회전하는 항온처리기 속에서 성장시켰다. 동결된 배양물을 -80℃에서 미리 저장하였다. 제1의 씨드 플라스크 배지의 조성은 다음과 같았다:Strains ( pdcl , pdc5 , and pdc6 deleted) to Saccharomyces cerevisiae processed to produce isobutanol from a carbohydrate source were fed in a seed flask from a frozen culture at 0.55-1.1 g / L dcw ( OD 600 1.3-2.6 - Thermo Helios a manufacturer: Thermo Fisher Scientific Inc., Walton, Mass.). The strain Saccharomyces cerevisiae is described in U.S. Patent Application Publication No. 2012/0164302 incorporated herein by reference. The cultures were grown in a thermostat rotating at 300 rpm at 26 < 0 > C. The frozen cultures were pre-stored at -80 < 0 > C. The composition of the first seed flask culture was as follows:
3.0g/L의 덱스트로즈3.0 g / L dextrose
3.0g/L의 에탄올, 무수3.0 g / L of ethanol,
3.7g/L의 ForMediumTM 합성의 완전한 아미노산(Kaiser) 드롭-아웃(Drop-Out):Complete amino acid (Kaiser) drop-out of 3.7 g / L ForMedium TM synthesis:
HIS 부재, URA 부재(참조 번호 DSCKl62CK) HIS member, URA member (DSCKl62CK)
6.7g/L의 아미노산이 없는 Difco 효모 질소 염기(번호 291920).Difco yeast nitrogen base (No. 291920) without 6.7 g / L amino acid.
제1의 씨드 플라스크 배양물로부터 12 밀리리터(12 mL)를 2L들이 플라스크에 이전시키고 300rpm에서 회전하는 항온처리기에서 30℃로 성장시켰다. 제2의 씨드 플라스크는 220 mL의 다음 배지를 갖는다:Twelve milliliters (12 mL) from the first seed flask culture was transferred to a 2 L flask and grown at 30 C in a thermostat rotating at 300 rpm. The second seed flask has 220 mL of the following medium:
30.0g/L의 덱스트로즈30.0 g / L dextrose
5.0g/L의 에탄올, 무수5.0 g / L of ethanol,
3.7g/L의 ForMediumTM 합성의 완전한 아미노산(제조원: Kaiser) 드롭-아웃:A complete amino acid of 3.7 g / L ForMedium TM synthesis (manufacturer: Kaiser) Drop-out:
HIS 부재, URA 부재(참조 번호 DSCKl62CK) HIS member, URA member (DSCKl62CK)
6.7g/L의, 아미노산이 없는 Difco 효모 질소 염기(번호 291920)6.7 g / L of Difco yeast nitrogen base without amino acid (No. 291920)
0.2M MES 완충액으로 pH 5.5 내지 6.0까지 적정.Titration to pH 5.5 to 6.0 with 0.2 M MES buffer.
배양물을 0.55-1.1g/L의 dcw(OD600 1.3-2.6)로 성장시켰다. 200g/L의 펩톤 및 100g/L의 효모 추출물을 함유하는 30mL의 용액의 첨가물을 당해 세포 농축물에 가하였다. 이후에, 300 mL의 멸균된 0.2μM 여과기를 추가하고, 90 내지 95%의 올레일 알코올(제조원: 오하이오주 신시내티 소재의 Cognis Corporation)을 플라스크에 가하였다. 배양물을 수거 전에 > 4g/L dcw (OD600 >10)까지 지속 성장시키고 발효기에 가하였다.The cultures were incubated with 0.55-1.1 g / L dcw (OD 600 1.3-2.6). An additive of 30 mL of solution containing 200 g / L of peptone and 100 g / L of yeast extract was added to the cell concentrate. Thereafter, 300 mL of sterilized 0.2 [mu] M filter was added and 90 to 95% of oleic alcohol (Cognis Corporation, Cincinnati, OH) was added to the flask. Cultures were continuously grown to> 4 g / L dcw (OD 600 > 10) before harvest and added to the fermenter.
발효 제조Fermentation manufacture
초기 발효기 제조Initial fermenter manufacturing
유리 재킷형의 2L들이 발효기(제조원: 독일 괴팅겐 소재의 Sartorius AG)에 고체(농축물)가 들어있거나 없는 액화된 매쉬로 충전시켰다. pH 프로브(Hamilton Easyferm Plus K8, 부품 번호: 238627, 제조원: 스위스 보나두즈 소재의 Hamilton Bonaduz AG)를 Sartorius DCU-3 Control Tower Calibration 메뉴를 통해 보정하였다. 0은 pH=7에서 보정하였다. 기간은 pH=4에서 보정하였다. 이후에, 프로브를 발효기 내로 스테인레스 강 헤드 플레이트를 통해 위치시켰다. 용존 산소 프로브(pO2 프로브)를 또한 헤드 플레이트를 통해 발효기 내로 위치시켰다. 영양분, 씨드 배양물, 추출 용매, 및 염기를 전달하기 위해 사용한 튜빙을 헤드 플레이트에 부착시키고 말단을 호일처리하였다. 전체 발효기는 오토클레이브(제조원: 오하이오주 멘토 소재의 Steris Corporation)에 위치시키고 30분 동안 액체 주기로 멸균시켰다.A 2L glass-jacketed fermenter (Sartorius AG, Gottingen, Germany) was charged with a liquefied mesh with or without solid (concentrate). The pH probe (Hamilton Easyferm Plus K8, part no. 238627, manufactured by Hamilton Bonaduz AG, Bonaduz, Switzerland) was calibrated using the Sartorius DCU-3 Control Tower Calibration menu. 0 was corrected at pH = 7. The period was corrected at pH = 4. Thereafter, the probe was placed into the fermenter through the stainless steel head plate. A dissolved oxygen probe (pO 2 probe) was also placed in the fermenter through the head plate. The tubing used to deliver the nutrients, seed culture, extraction solvent, and base was attached to the head plate and the ends were foil treated. The entire fermenter was placed in an autoclave (Steris Corporation, Mentor, OH) and sterilized with a liquid cycle for 30 minutes.
발효기를 오토클레이브로부터 제거하고 부하 장치(load cell)에 두었다. 재킷 수(jacket water) 공급 및 회수관을 가정용수(house water) 및 세정 배수 라인 각각에 연결하였다. 라인 내부 및 외부의 응축기 냉각수를 7℃에서 작동하는 6-L들이 재순환 온도 욕에 연결시켰다. 발효기로부터 가스를 전달하는 배기 라인을 열 질량 분광계(Prima dB, 제조원: 매사츄세츠주 왈탐 소재의 Thermo Fisher Scientific Inc.)에 연결된 전달 라인에 연결시켰다. 살포기 라인을 가스 공급 라인에 연결시켰다. 영양분, 추출 용매, 씨드 배양물, 및 염기를 전달하기 위한 도관을 펌프를 통해 배수 라인에 연결하거나 클램핑하여 폐쇄하였다. 오토클레이빙된 물질, 0.9% w/v NaCl 을 액화된 매쉬를 가하기 전에 배수하였다.The fermenter was removed from the autoclave and placed in a load cell. A jacket water supply and return line was connected to each of the house water and rinse drain lines. The condenser cooling water inside and outside the line was connected to a 6-L recirculation temperature bath operating at 7 ° C. The exhaust line carrying the gas from the fermenter was connected to a delivery line connected to a thermal mass spectrometer (Prima dB, manufactured by Thermo Fisher Scientific Inc., Walton, Mass.). The spreader line was connected to the gas supply line. The conduits for delivering nutrients, extraction solvents, seed cultures, and bases were connected to the drainage line via a pump or closed by clamping. The autoclaved material, 0.9% w / v NaCl, was drained before adding the liquefied mesh.
리파제 처리 후-액화After lipase treatment - liquefaction
발효기 온도를 액화 주기가 완료된 후 30℃ 대신에 55℃로 설정하였다. pH를 필요할 경우 산 또는 염기를 덩어리로 가하여 pH=5.8에서 수동으로 조절하였다. 리파제 효소 스톡 용액을 발효기에 가하여 최종 리파제 농도가 10 ppm이 되도록 하였다. 발효기를 55℃, 300 rpm, 및 0.3 slpm N2 오버레이(overlay)에서 >6 시간 동안 유지시켰다. 리파제 처리를 완료한 후 발효기 온도를 30℃로 설정하였다.The fermenter temperature was set at 55 占 폚 instead of 30 占 폚 after the liquefaction cycle was completed. The pH was adjusted manually at pH = 5.8 by adding lumps of acid or base if necessary. The lipase enzyme stock solution was added to a fermenter to give a final lipase concentration of 10 ppm. A fermenter at 55 ℃, 300 rpm, and 0.3 slpm N 2 overlaid (overlay)> was maintained for 6 hours. After completion of the lipase treatment, the temperature of the fermenter was set to 30 占 폚.
접종 전 영양분 첨가Nutrient addition before inoculation
7.0 mL/L(접종 후 용적)의 에탄올(200 proof, 무수)을 접종 직전에 가하였다. 접종 직전에 티아민을 20 mg/L의 최종 농도로 가하였다. 접종 직전에 100 mg/L의 니코틴산을 가하였다.7.0 mL / L (volume after inoculation) of ethanol (200 proof, anhydrous) was added just before inoculation. Immediately prior to inoculation, thiamine was added to a final concentration of 20 mg / L. 100 mg / L of nicotinic acid was added immediately before inoculation.
발효기 접종Inoculation of fermenter
발효기 pO2 프로브를, N2를 발효기에 가하는 동안 0으로 보정하였다. 발효기 pO2 프로브를 300 rpm에서 살포하는 멸균 공기로 이의 기간 동안 보정하였다. 발효기를 제2의 씨드 플라스크가 >4g/L dcw로 된 후 접종하였다. 진탕 플라스크를 발효기/진탕기로부터 5분 동안 제거하여 올리엘 알코올 상 및 수성 상의 상 분리가 되도록 하였다. 수성 상(55 mL)을 멸균된, 접종 병으로 이전하였다. 접종물을 연동 펌프를 통해 발효기 내로 펌핑하였다.The fermentor pO 2 probe was calibrated to zero while N 2 was added to the fermenter. Fermenters were corrected for a period between the pO 2 probe with sterile air spraying at 300 rpm. The fermenter was inoculated after the second seed flask had> 4 g / L dcw. The shake flask was removed from the fermenter / shaker for 5 minutes to allow phase separation of the oleanolic and aqueous phases. The aqueous phase (55 mL) was transferred to a sterile, inoculated bottle. The inoculum was pumped into the fermenter through a peristaltic pump.
접종 후 After inoculation 올레일 알코올Oleyl alcohol 또는 옥수수 오일 지방산 첨가 Or corn oil fatty acid addition
1L/L(접종 후 용적)의 올레일 알코올 또는 옥수수 오일 지방산을 접종 직후 가하였다.1 L / L (volume after inoculation) oleic alcohol or corn oil fatty acid was added immediately after inoculation.
발효기 작동 조건Fermenter operating conditions
발효기를 30℃에서 전체 성장 및 생성 단계 동안 작동시켰다. pH를 어떠한 산도 가하지 않고 5.7 내지 5.9의 pH로부터 5.2의 조절 설정-점으로 감소되도록 하였다. pH를 수산화암모늄을 사용하여 pH =5.2에서 성장 및 생성 단계의 나머지 동안 조절하였다. 멸균 공기를 스파저(sparger)를 통해 성장 및 생성 단계의 나머지에 대해 0.3 slpm에서 발효기에 가하였다. pO2는, 교반기를 300rpm까지 최소로 설정하고 2000rpm까지 최대로 설정하면서, 교반 조절 만을 사용하여 Sartorius DCU-3 Control Box PID 대조군 루프에 의해 3.0%로 조절되도록 설정하였다. 글루코즈를 α-아밀라제(글루코아밀라제)를 가함으로써 액화된 옥수수 매쉬의 연속 당화 및 발효를 통해 공급하였다. 글루코즈를, 전분이 당화에 이용가능한 한 과량(1 내지 50g/L)으로 유지하였다.The fermentor was operated at 30 < 0 > C during the entire growth and production phase. The pH was allowed to decrease from a pH of 5.7 to 5.9, without any acid, to a regulated setpoint of 5.2. The pH was adjusted using ammonium hydroxide at pH = 5.2 for the remainder of the growth and production steps. Sterile air was added via a sparger to the fermenter at 0.3 slpm for the remainder of the growth and production steps. pO 2 was set to 3.0% controlled by a Sartorius DCU-3 Control Box PID control loop using only stirring control while setting the stirrer to a minimum of 300 rpm and setting it to 2000 rpm to a maximum. Glucose was fed through continuous saccharification and fermentation of liquefied corn mash by adding? -Amylase (glucoamylase). Glucose was maintained at an excess (1 to 50 g / L) as much as the starch was available for glycation.
시료sample A A
실험 확인자 2010Y033는 다음을 포함하였다: 씨드 플라스크 성장 방법, 고체를 배제한 옥수수 매쉬를 사용한 초기 발효기 제조 방법, 액화 후 리파제 처리, 접종 방법 전 영양분 첨가, 발효기 접종 방법, 발효기 작동 조건 방법, 및 분석 방법 모두. 옥수수 오일 지방산을 접종 후 0.1 내지 1.0 시간의 사이에서 단일 배취 속에 가하였다.Experimental Verifier 2010Y033 included: seed flask growth method, initial fermenter preparation method using solid maize mesh, lipase treatment after liquefaction, inoculation method All nutrient addition, fermenter inoculation method, fermenter operating condition method and analysis method . The corn oil fatty acid was added in a single batch between 0.1 and 1.0 hour after inoculation.
시료sample B B
실험 확인자 2010Y034는 다음을 포함하였다: 씨드 플라스크 성장 방법, 고체를 포함하는 옥수수 매쉬를 사용한 초기 발효기 제조 방법, 액화 후 리파제 처리, 접종 방법 전 영양분 첨가, 발효기 접종 방법, 발효기 작동 조건 방법, 및 분석 방법 모두. 옥수수 오일 지방산을 접종 후 0.1 내지 1.0 시간 사이에 단일 배취에 가하였다.Experimental Verifier 2010Y034 included: seed flask growth method, initial fermenter manufacturing method using corn silicate containing solids, lipase treatment after liquefaction, inoculation method addition of whole nutrients, fermenter inoculation method, fermenter operating condition method, and analysis method all. Corn oil fatty acid was added to a single batch between 0.1 and 1.0 hour after inoculation.
시료sample C C
실험 확인자 2010Y035는 다음을 포함하였다: 씨드 플라스크 성장 방법, 고체를 배제한 옥수수 매쉬를 사용한 초기 발효기 제조 방법, 접종 방법 전 영양분 첨가, 발효기 접종 방법, 발효기 작동 조건 방법, 및 분석 방법 모두. 올레일 알코올을 접종 후 0.1 내지 1.0 시간 사이에 단일 배취에 가하였다.Experimental verifier 2010Y035 included: seed flask growth method, initial fermenter manufacturing method using solid maize mesh, inoculation method, all nutrient addition, fermenter inoculation method, fermenter operating condition method, and analysis method. Oleyl alcohol was added to a single batch between 0.1 and 1.0 hour after inoculation.
시료sample D D
실험 확인자 2010Y036은 다음을 포함하였다: 씨드 플라스크 성장 방법, 고체를 포함한 옥수수 매쉬를 사용한 초기 발효기 제조 방법, 접종 방법 전 영양분 첨가, 발효기 접종 방법, 발효기 작동 조건 방법, 및 분석 방법 모두. 올레일 알코올을 접종 후 0.1 내지 1.0 시간 사이에 단일 배취에 가하였다. 시료 A 내지 D에 대한 결과는 표 7에 나타낸다.Experimental verifier 2010Y036 included: seed flask growth method, initial fermenter manufacturing method using corn silicate containing solids, inoculation method, all nutrient addition, fermenter inoculation method, fermenter operating condition method, and analysis method. Oleyl alcohol was added to a single batch between 0.1 and 1.0 hour after inoculation. The results for Samples A to D are shown in Table 7.
[표 7][Table 7]
실시예Example 7 7
발효기 용적 효율의 개선에 대한 발효기 Fermenter for improvement of volumetric efficiency of fermenter 공급물로부터From the feed 용해되지 않은 고체의 제거 효과 Removal effect of undissolved solids
본 실시예는 발효기 용적 효율에 있어서 발효 전 매쉬로부터 용해되지 않은 고체를 제거하는 효과를 입증한다. 옥수수 매쉬 속의 용해되지 않은 고체는 옥수수 부하 및 전분 함량에 따라 매쉬 용적의 적어도 5%를 점유한다. 발효 전 고체를 제거하는 것은 적어도 5% 이상의 당이 발효기로 충전되도록 하여 배취 생산성을 증가시킬 수 있다.This example demonstrates the effect of removing undissolved solids from the pre-fermentation mesh for the volume efficiency of the fermenter. The undissolved solids in the maize mesh occupy at least 5% of the mesh volume depending on the corn load and starch content. Removing the pre-fermentation solids can increase batching productivity by allowing at least 5% of the sugar to be filled with the fermenter.
사용된 옥수수 로딩을 기반으로 대략 28중량%(280g/L)의 액화된 전분(40%의 무수 옥수수 기준), 옥수수의 전분 함량(71.4%의 무수 옥수수 기준), 및 추정되는 모든 전분을 함유하는 실시예 5에서 생성된 액화된 옥수수 매쉬가 액화 동안 가용성 올리고당으로 가수분해된 것으로 추정하였다. 매쉬를 영양분, 접종물, 글루코아밀라제, 및 염기를 초기 발효 브로쓰에 가하는 경우 희석되도록 하기 위해 발효기 속에서 바람직한 농도보다 더 높은 농도의 올리고당으로 제조하였다. 매쉬를 이들 성분을 가한 후 대략 10%까지 희석시켰다. 따라서, 발효 2010Y034 및 2010Y036의 개시에서 매쉬(고체를 포함) 속의 액화된 전분의 예측된 농도는 약 250g/L이었다. 2010Y034 및 2010Y036 발효에 충전된 실제 글루코즈 등가물은 각각 239g/kg 및 241g/kg인 것으로 측정되었다. 비교시, 2010Y033 및 2010Y035 발효에 충전된 글루코즈 등가물은 각각 257g/kg 및 263g/kg인 것으로 측정되었다. 이들 발효에 대한 공급물은 농축물(대부분의 고체가 제거된 매쉬)이었음에 주목한다. 대략 1.2L의 당원(매쉬 또는 농축물)을 각각의 발효에 충전시켰다. 따라서, 이러한 데이터를 기준으로 하여, 대략 8.3% 이상의 당을 매쉬(2010Y033 및 2010Y036)와 비교한 농축물(2010Y033 및 2010Y035)을 사용한 발효기에 충전시켰다. 이들 결과는, 발효 전 옥수수 매쉬로부터의 용해되지 않은 고체를 제거하는 것은 단위 용적 당 충전된 당에 있어서 유의적인 증가를 초래할 수 있는 것으로 입증된다. 이는, 고체가 존재하는 경우, 이들이 가치있는 발효기 용적을 점유함을 내포한다. 고체를 공급물로부터 제거한 경우, 용해되지 않은 고체의 부재로 인하여 보다 많은 당이 발효기에 가해질("맞춰질") 수 있다. 당해 실시예는, 발효기 용적 효율이 발효 전에 매쉬로부터 용해되지 않은 고체를 제거함으로써 유의적으로 개선될 수 있음을 입증한다.Based on the corn loading used, it was found that approximately 28 wt% (280 g / L) of liquefied starch (based on 40% anhydrous corn), corn starch content (based on an anhydrous maize of 71.4%), It was assumed that the liquefied corn mash produced in Example 5 was hydrolyzed to soluble oligosaccharides during liquefaction. The mash was prepared with oligosaccharides at concentrations higher than the desired concentrations in the fermenter to dilute the nutrients, inoculum, glucoamylase, and base when added to the initial fermentation broth. The mesh was diluted to approximately 10% after adding these ingredients. Thus, at the onset of fermentation 2010Y034 and 2010Y036, the predicted concentration of liquefied starch in the mash (including solids) was about 250 g / L. The actual glucose equivalents charged at the 2010Y034 and 2010Y036 fermentations were determined to be 239 g / kg and 241 g / kg, respectively. In comparison, the glucose equivalents charged at the 2010 Y033 and 2010 Y035 fermentations were determined to be 257 g / kg and 263 g / kg, respectively. Note that the feed for these fermentations was a concentrate (a mash with most solids removed). Approximately 1.2 liters of sugar (mash or concentrate) was charged to each fermentation. Thus, based on these data, the fermenter was filled with concentrates (2010Y033 and 2010Y035) that were approximately 8.3% or more sugar compared to mash (2010Y033 and 2010Y036). These results demonstrate that the removal of undissolved solids from the corn silage prior to fermentation can result in a significant increase in the sugars charged per unit volume. This implies that when solids are present, they occupy valuable fermenter volumes. When the solids are removed from the feed, more sugars may be applied ("tailed") to the fermenter due to the absence of undissolved solids. This example demonstrates that the volume efficiency of the fermenter can be significantly improved by removing undissolved solids from the mesh before fermentation.
실시예Example 8 8
추출 용매와 Extraction solvent 브로쓰Brods 사이의 상 분리에 대한 용해되지 않은 고체의 제거의 효과 - 추출 발효 Effect of elimination of undissolved solids on phase separation between extractive fermentation
본 실시예는 발효 전에 옥수수 매쉬로부터 용해되지 않은 고체를 제거함으로써 추출 발효 공정 동안 및 후에 용매 상과 브로쓰 상 사이의 개선된 분리를 입증한다. 2개의 추출 발효를, 하나는 당원으로서 액화된 옥수수 매쉬를 사용하고(고체는 제거되지 않음) 하나는 액화된 옥수수 매쉬로부터 용해되지 않은 고체의 대부분을 제거함으로서 발생된 농축물(올리고당의 수용액)을 사용하여, 나란히 수행하였다. 올레일 알코올(OA)을 발효 둘 다에 가하여 브로쓰로부터 형성되는 생성물(i-BuOH)을 추출하였다. 고체가 공급물(옥수수 매쉬를 사용함)로부터 제거되지 않는 당해 실시예에서 언급된 발효 브로쓰는 실시예 6에 기술된 바와 같은 2010Y036이었다. 고체가 공급물로부터 제거된(옥수수 매쉬로부터 생성된 농축물 사용) 당해 실시예에 언급된 발효 브로쓰는 실시예 6에 기술된 바와 같은 2010Y035이었다. 올레일 알코올은 발효 둘 다에서 사용된 추출 용매이었다. 상 분리의 속도 및 정도를 측정하고 발효 전체에서 및 최종 발효 브로쓰에 대해 비교하였다. 추출 발효 공정에서 적절한 상 분리는 미생물의 최소 손실 및 또한 최소 용매 손실 및 또한 후류 공정의 보다 낮은 자본 및 운영 비용을 가져올 수 있다.This example demonstrates improved separation between the solvent phase and Broth phase during and after the extraction fermentation process by removing undissolved solids from the corn mash prior to fermentation. One using the liquefied corn mash as a sugar source (no solids are removed) and one concentrate (an aqueous solution of oligosaccharides) generated by removing most of the undissolved solids from the liquefied corn mash , And performed in parallel. Oleyl alcohol (OA) was added to both fermentations to extract the product ( i- BuOH) formed from the broth. The fermentation broth mentioned in this example in which the solids were not removed from the feed (using a corn mash) was 2010Y036 as described in Example 6. The fermented broth mentioned in this example was the 2010 Y035 as described in Example 6, in which the solids were removed from the feed (using the concentrate produced from the corn mash). The oleyl alcohol was the extraction solvent used in both fermentation. The speed and degree of phase separation were measured and compared for the entire fermentation and for the final fermentation broth. Proper phase separation in an extractive fermentation process can lead to minimal loss of microorganisms and also minimal solvent losses and also lower capital and operating costs of the wake process.
발효 동안 용매와 브로쓰 상 사이의 상During fermentation, the phase between the solvent and broth phase 분리 detach
대략 10 mL의 시료를 각각의 발효기로부터 5.3, 29.3, 53.3, 및 70.3 시간째에 꺼내어, 상 분리를 고체가 시료로부터 제거된 발효(2010Y035) 및 고체가 제거되지 않은 발효(2010Y036)로부터의 시료에 대해 비교하였다. 상 분리를 관찰하고 시료를 약 2시간 동안 설정시키고 액체-액체 계면의 위치를 추적함으로써 모든 수행 시간으로부터 모든 시료에 대해 비교하였다. 필수적으로, 고체가 제거되지 않은 발효로부터 꺼낸 시료 중 어느 것에 대해서도 상 분리는 관찰되지 않았다. 상 분리를 고체가 발효 전에 액화된 옥수수 매쉬로부터 제거된 발효로부터의 모든 시료에 대해 관찰하였다. 분리는, 고체가 모든 발효 시간 동안 제거된 실시로부터의 시료를 꺼낸지 약 10 내지 15분 내에 발생하기 시작하여 2시간의 기간에 걸쳐 지속적으로 증진되었다. 상 분리는 약 7분의 침전 시간 후 농축물 발효(고체가 제거됨)로부터 발효 수행 시간 5.3 시간째에 꺼낸 시료에서 발생하기 시작하였다. 상 분리는 약 17분의 침전 시간 후 농축물 발효(고체가 제거됨)로부터 53.5시간째에 꺼낸 시료에서 발생하기 시작하였다.Approximately 10 mL of sample was withdrawn from each fermenter at 5.3, 29.3, 53.3, and 70.3 hours, and phase separation was performed on samples from solid fermentation (2010Y035) and solid fermentation (2010Y036) Respectively. Phase separation was observed and samples were compared for all samples from all run times by setting the sample for about 2 hours and tracking the position of the liquid-liquid interface. Essentially, phase separation was not observed for any of the samples taken from the fermentation where solid was not removed. Phase separation was observed for all samples from the fermentation removed from the liquefied corn mash prior to solid fermentation. The separation began to occur within about 10 to 15 minutes after the solid was removed from the run for all fermentation times, and was continuously enhanced over a period of 2 hours. Phase separation began to occur in the sample taken from the fermentation of the concentrate (solid removed) after about 7 minutes of precipitation time and 5.3 hours after fermentation. The phase separation began to occur in the sample taken 53.5 hours after the fermentation of the concentrate (solid was removed) after about 17 minutes of precipitation time.
도 13은 (중력) 침전 시간의 함수로서 발효 시료 튜브 속의 액체-액체 계면의 위치의 플롯이다. 당해 데이터는, 농축물이 당원으로서(옥수수 매쉬로부터 제거된 고체) 공급되고 올레일 알코올이 ISPR 추출 용매인 추출 발효(실시예 6에서 실시 2010Y035)로부터 꺼낸 시료에 대한 것이다. 당해 플롯에서 상 분리 데이터는 발효 2010Y035로부터 5.3, 29.3, 53.3, 및 70.3 시간의 수행 시간에 꺼낸 시료에 대한 것이다. 계면 위치는 시료 튜브 속에서 총 브로쓰 높이의 퍼센트로 기록된다. 예를 들면, 2010Y035 발효(농축물/올레일 알코올)로부터 5.3 시간 수행 시간에서 꺼낸 시료 속의 계면 위치는 시료 튜브(분리 안됨)의 바닥으로부터 120분의 침전 시간 후 3.5mL로 증가하였다. 이러한 특수한 시료 튜브 속에서 약 10mL의 총 브로쓰가 존재하였다. 따라서, 이러한 시료에 대한 계면 위치는 도 13에서 35%로 보고되었다. 유사하게, 2010Y035 발효(농축물/올레일 알코올)로부터 53.3 시간 수행 시간째에 꺼낸 시료 속의 계면 위치는 시료 튜브(분리 안됨)의 바닥으로부터 125분의 침전 시간 후 약 3.9mL로 증가하였다. 이러한 특수한 시료 튜브 속에 약 10mL의 총 브로쓰가 존재하였다. 따라서, 이러한 시료에 대한 계면 위치는 도 13에서 39%로 보고되었다.Figure 13 is a plot of the position of the liquid-liquid interface in the fermentation sample tube as a function of (gravity) settling time. The data are for a sample from which the concentrate was fed as a source (solids removed from corn mash) and the oleic alcohol was taken from an extractive fermentation (conducted in Example 6, 2010Y035), which is an ISPR extraction solvent. The phase separated data in the plot are for samples taken at run times of 5.3, 29.3, 53.3, and 70.3 hours from fermentation 2010Y035. The interfacial position is recorded as a percentage of the total brot height in the sample tube. For example, the interfacial position in the sample taken from the 2010Y035 fermentation (concentrate / oleyl alcohol) at 5.3 hours of run time increased to 3.5 mL after 120 minutes of sedimentation time from the bottom of the sample tube (not separated). There was about 10 mL total broth in this particular sample tube. Thus, the interfacial position for such a sample is reported as 35% in FIG. Similarly, the interfacial position in the sample taken from the 2010Y035 fermentation (concentrate / oleyl alcohol) at 53.3 h run time increased to about 3.9 mL after the 125 min precipitation time from the bottom of the sample tube (not separated). About 10 mL of total broth was present in this particular sample tube. Therefore, the interface position for this sample is reported as 39% in FIG.
완전한 발효 후 용매와 After complete fermentation, 브로쓰Brods 상 사이의 상 분리 Phase separation between phases
70시간의 수행 시간 후, 발효가 중지되고, 올레일 알코올 추출 발효로부터의 2개의 브로쓰를 2L 들이 유리의 눈금이 매겨진 실린더에 분리하기 위해 이전시켰다. 용매 및 브로쓰 상의 분리를 관찰하고 비교하였다. 고체가 발효(실시 2010Y036) 전에 제거되지 않은 브로쓰에 대해 약 3시간 후에 대부분 상 분리가 관찰되지 않았다. 상 분리는, 고체가 발효 전에 액화된 옥수수 매쉬로부터 제거된(수행 2010Y035) 브로쓰에 대해 관찰되었다. 분리는 약 15분의 침전 시간 후에 발생하기 시작하여 3시간의 기간에 걸쳐 계속 개선되었다. 15분 후에, 액체-액체 계면은 2개 상 혼합물의 전체 높이의 약 10%인 수준에서 설정되었다. 이는, 수성 상이 분산액으로부터 먼저 분할되어 혼합물의 바닥에 축적되기 시작함을 나타낸다. 시간이 진행되면서, 보다 많은 수성 상이 혼합물의 바닥에 축적되어 계면의 위치가 상승하도록 한다. 약 3시간의 침전 시간 후에, 계면은 2개의 상 혼합물의 전체 높이의 약 40%인 수준으로 증가하였다. 이는, 거의 완전한 상 분리가, 고체가 제거된 최종의 2개 상 브로쓰에 대한 약 3시간(중력) 침전 시간 후에 발효에 대해 초기에 충전된 농축물 및 올레일 알코올의 양을 기준으로 발생하였음을 나타낸다. 대략 동일한 용적의 초기 농축물 및 용매를 발효 둘 다에 충전하였다. 대략 1.2L의 액화된 옥수수 매쉬 및 대략 1.1L의 올레일 알코올을 발효 2010Y036에 충전하였다. 매쉬의 동일한 배취로부터 생산된 대략 1.2L의 농축물, 및 대략 1.1L의 올레일 알코올을 발효 2010Y035에 충전하였다. 수성 상 속의 대략 100g/kg의 초기 당이 소모되었다는 사실 및 생성된 i-BuOH 중 약 75%가 용매 상 속에 존재하였다는 점을 고려한 후, 완전한 분리가 일어났을 때 최종의 수성 및 유기 상의 상대적인 용적이 약 1:1일 수 있는 것으로 예측할 수 있었다. 도 14는, 고체가 제거된(2010Y035) 추출 발효로부터 최종의 2개 상 브로쓰에 대한 (중력) 침전 시간의 함수로서 액체-액체 계면 위치의 플롯이다. 계면 위치는 최종 브로쓰의 상 분리를 관찰하기 위해 사용된 2L의 눈금이 매겨진 실린더 속에서 총 브로쓰 높이의 퍼센트로 보고된다. 2010Y035 발효로부터 최종 브로쓰의 계면 위치는, 눈금이 매겨진 실린더(분리가 안됨)의 바닥으로부터 175분의 침전 시간 후에 2개의 상 혼합물의 전체 높이의 약 40%인 수준으로 증가하였다. 따라서, 최종 브로쓰 속에서 2개 상의 거의 완전한 분리가 3시간의 침전 시간 후에 발생하였다. 대략 50%의 계면 위치는 완전한 분리에 상응할 수 있다.After a running time of 70 hours, the fermentation was stopped and two broths from oleyl alcohol-extracted fermentation were transferred to separate 2 L glass graduated cylinders. Solvent and broth phases were observed and compared. For the broth that had not been removed before the solid fermentation (Run 2010Y036), most phase separation was not observed after about 3 hours. Phase separation was observed for the broth in which the solids were removed from the liquefied corn mash before fermentation (performance 2010Y035). Separation began to occur after a settling time of about 15 minutes and continued to improve over a period of 3 hours. After 15 minutes, the liquid-liquid interface was set at a level that was about 10% of the total height of the two phase mixture. This indicates that the aqueous phase is first separated from the dispersion and begins to accumulate at the bottom of the mixture. As time progresses, more aqueous phase accumulates at the bottom of the mixture, causing the position of the interface to rise. After a settling time of about 3 hours, the interface increased to a level of about 40% of the total height of the two phase mixtures. This resulted in an almost complete phase separation based on the amount of the initially charged concentrate and oleyl alcohol for fermentation after about 3 hours (gravity) settling time for the final two-phase broth in which solids were removed . Approximately the same volume of initial concentrate and solvent was charged to both fermentations. Approximately 1.2 L of liquefied corn mash and approximately 1.1 L of oleyl alcohol were charged to fermentation 2010Y036. Approximately 1.2 L of concentrate produced from the same batch of mesh, and approximately 1.1 L of oleyl alcohol were charged to fermentation 2010Y035. After considering the fact that approximately 100 g / kg of the initial sugar in the aqueous phase has been consumed and about 75% of the i-BuOH produced was in the solvent phase, the final relative amounts of aqueous and organic phases It can be estimated that this can be about 1: 1. Figure 14 is a plot of the liquid-liquid interfacial location as a function of (gravity) settling time for the final two phase broth from extract fermentation with solids removed (2010Y035). The interfacial position is reported as a percentage of the total broth height in a 2L graduated cylinder used to observe the phase separation of the final broth. From the 2010Y035 fermentation, the interfacial position of the final broth increased to a level of about 40% of the total height of the two phase mixtures after a settling time of 175 minutes from the bottom of the graduated cylinder (not detached). Thus, almost complete separation of the two phases in the final broth occurred after a settling time of 3 hours. An interfacial position of approximately 50% may correspond to complete separation.
10 mL의 시료를 고체가 제거된 발효로부터 최종 브로쓰(이는 약 3시간 동안 침전되었다)의 유기 상의 상부로부터 꺼냈다. 시료를 고속 실험실 원심분리기로 회전시켜 3시간 동안 브로쓰가 침전되도록 한 후 유기 상 속에 존재하는 수성 상의 양을 측정하였다. 당해 결과는, 최종 브로쓰의 상부 층의 약 90%가 용매 상이었음을 나타내었다. 최종 브로쓰의 상부 층의 약 10%는 비교적 소량의 용해되지 않은 고체를 포함하는 수성 상이었다. 일부 고체는 수성 상(수성 상보다 더 농밀함)의 바닥에 위치하였으며 또한 소량의 고체가 액체-액체 계면에 축적되었다.10 mL of sample was taken from the top of the organic phase of the final broth (which had settled for about 3 hours) from the solid-free fermentation. The sample was rotated with a high-speed centrifuge to allow the broth to settle for 3 hours and the amount of aqueous phase present in the organic phase was measured. The results showed that about 90% of the top layer of the final broth was in the solvent phase. About 10% of the top layer of the final broth was an aqueous phase containing a relatively small amount of undissolved solids. Some solids were located at the bottom of the aqueous phase (more dense than the aqueous phase) and also a small amount of solid was accumulated at the liquid-liquid interface.
10 mL의 시료를 또한 고체가 제거된 발효로부터 최종 브로쓰(이는 약 3시간 후 침전하였다)의 바닥 상으로부터 꺼냈다. 시료를 고속 실험실 원심분리기로 회전시켜 당해 브로쓰가 3시간 동안 침전되도록 한 후 수성 상 속에 존재하는 유기 상의 양을 측정하였다. 브로쓰를 3시간 동안 침전시킨 후 고체가 제거되는 발효로부터 최종 브로쓰의 바닥(수성) 상내에 유기 상이 필수적으로 존재하지 않음이 측정되었다. 당해 결과는, 거의 완전한 상 분리가, 고체가 제거된 발효로부터 최종 브로쓰에 대해 발생하였음을 입증한다. 고체가 제거되지 않은 발효로부터 최종 브로쓰에 대해 거의 어떠한 상 분리도 명백하지 않았다. 당해 데이터는, 추출 발효 전에 액화된 옥수수 매쉬로부터 고체를 제거하는 것이 발효 동안 및 후에 상 분리에 있어어 유의적인 개선이 가능할 수 있도록 하여 미생물, 용해되지 않은 고체, 및 후류 공정으로의 물의 손실이 거의 없도록 함을 내포한다.10 mL of sample was also taken from the bottom of the final broth (which was settled after about 3 hours) from the solids-free fermentation. The sample was rotated by a high-speed centrifuge to allow the broth to settle for 3 hours and the amount of organic phase present in the aqueous phase was measured. After the broth was settled for 3 hours, it was determined that the organic phase was essentially not present in the bottom (aqueous) phase of the final broth from the solid-free fermentation. The results demonstrate that nearly complete phase separation has occurred for the final broth from solids-free fermentation. Almost no phase separation was evident for the final broth from the solid-free fermentation. The data show that the removal of solids from liquefied corn mashes prior to extraction fermentation can result in significant improvements in phase separation during fermentation and later in phase separation, resulting in loss of microorganisms, undissolved solids, It implies that it does not exist.
브로쓰를 약 3시간 동안 침전시킨 후 고체가 제거되지 않은 발효로부터 10mL의 시료를 최종 브로쓰의 상부로부터 꺼냈다. 시료를 고속 실험실 원심분리기에서 회전시켜 최종 브로쓰의 상단에서 용매 및 수성 상의 상대적인 양을 측정하였다. 당해 브로쓰는 액화된 옥수수 매쉬 고체로부터의 모든 고체를 함유하였다. 시료의 약 1/2은 수성 상이었으며, 약 1/2은 유기 상이었다. 수성 상은, 고체가 제거된 브로쓰로부터의 상부 층의 시료와 비교하여 유의적으로 보다 많은 용해되지 않은 고체(액화된 매쉬로부터)를 함유하였다. 당해 시료 속에서 수성 및 용매 상의 양은 대략적으로 동일하며 이는, 고체가 제거되지 않은 최종 브로쓰 속에서(심지어 3시간의 침전 시간 후에도) 상 분리가 필수적으로 발생하지 않았음을 나타낸다. 당해 데이터는, 고체가 추출 발효 전에 액화된 옥수수 매쉬로부터 제거되지 않는 경우, 발효 동안 및 후에 발생하는 경향이 있는 상 분리가 거의 없거나 없음을 내포한다. 이는 미생물, 용해되지 않은 고체, 및 후류 공정으로의 물의 유의적인 손실을 초래할 수 있었다.After the broth was settled for about 3 hours, 10 mL of the sample from the non-solid fermentation was taken out from the top of the final broth. The sample was rotated in a high-speed laboratory centrifuge to measure the relative amounts of solvent and aqueous phase at the top of the final broth. The broth contained all solids from the liquefied corn mash solids. About half of the sample was an aqueous phase and about half was organic phase. The aqueous phase contained significantly more undissolved solids (from the liquefied mesh) as compared to the sample of the top layer from the solids-free broth. The amounts of aqueous and solvent phases in the sample are approximately the same, indicating that phase separation did not necessarily occur in the final broth where solids were not removed (even after a 3 hour precipitation time). This data implies little or no phase separation which tends to occur during and after fermentation if the solids are not removed from the liquefied corn mash prior to extraction fermentation. This could lead to significant loss of microorganisms, undissolved solids, and water to the wake process.
실시예Example 9 9
ISPRISPR 추출 용매-추출 발효의 손실에 대한 용해되지 않은 고체의 제거의 효과 Effect of elimination of undissolved solids on loss of extraction solvent-extracted fermentation
본 실시예는, 용매를 감소시키는 잠재능이 발효 전 옥수수 매쉬로부터 용해되지 않은 고체를 제거함으로써 추출 발효 공정의 말기에 DDGS로 상실됨을 입증한다. 실시예 6은, 하나는 당원으로서 액화된 옥수수 매쉬(2010Y036 - 고체는 제거되지 않음)를 사용하고 하나는 액화된 옥수수 매쉬로부터 용해되지 않은 고체의 대부분을 제거함으로써 수득된 액화된 매쉬 농축물(2010Y035-올리고당의 수용액)을 사용하여 차례로 수행된 2개의 추출 발효를 기술하였다. 올레일 알코올 (OA)을 발효 둘 다에 가하여 브로쓰로부터의 생성물 이소부탄올(i-BuOH)을 이것이 형성되면 추출하였다. 최종 발효 브로쓰로부터 회수된 용해되지 않은 고체 속에 트래핑된 잔류 용매의 양을 측정하고 비교하였다.This example demonstrates that the ability to reduce solvent is lost to DDGS at the end of the extractive fermentation process by removing undissolved solids from the pre-fermentation maize mesh. Example 6 is a liquefied mesh concentrate (2010Y036) obtained by using liquefied corn mash (2010Y036 - solid not removed) as a source and one removing most of the undissolved solids from the liquefied corn mash - < / RTI > aqueous solution of oligosaccharide). Oleic alcohol (OA) was added to both fermentations to extract the product isobutanol ( i- BuOH) from broth when it was formed. The amount of residual solvent trapped in the undissolved solids recovered from the final fermentation broth was measured and compared.
실시예 6에 기술된 발효 2010Y035 및 2010Y036를 완료한 후, 브로쓰를 수거하여 상 분리 시험을 수행하는데 사용하였다. 이후에, 용해되지 않은 고체(발효 전에 제거되지 않은 옥수수 매쉬로부터의 미세물)를 각각의 브로쓰로부터 회수하여 전체의 추출가능한 오일에 대해 분석하였다. 고체의 각각의 로트(lot)로부터 회수된 오일을 올레일 알코올 및 옥수수 오일에 대해 분석하였다. 브로쓰 둘 다에 대해 다음의 프로토콜에 따랐다:After the fermentations 2010Y035 and 2010Y036 described in Example 6 were completed, the broth was collected and used to perform the phase separation test. Subsequently, undissolved solids (micro-water from corn silks not removed prior to fermentation) were recovered from each broth and analyzed for total extractable oil. The oil recovered from each lot of solids was analyzed for oleyl alcohol and corn oil. For both brochures we have followed the following protocol:
· 브로쓰를 원심분리하여 유기, 수성, 및 고체 상을 분리하였다.The broth was centrifuged to separate the organic, aqueous, and solid phases.
· 유기 및 수성 상을 원심분리기 튜브의 바닥에서 습윤 케이크로부터 떨어져 나오는 고체로부터 경사여과하여 제거하였다.The organic and aqueous phases were removed by obliquely filtering from the solids coming off the wet cake at the bottom of the centrifuge tube.
· 습윤 케이크를 물로 완전히 세척하여 잔류하는 당류, 글루코즈, 염, 효소 등과 같은 케이크 속에 유지된 용해된 고체 모두를 필수적으로 제거하였다.The wet cake was thoroughly washed with water to remove essentially all dissolved solids retained in the cake, such as residual sugars, glucose, salts, enzymes, and the like.
· 세척된 습윤 케이크를 진공 오븐 속에서 밤새(80℃에서 하우스-진공) 건조시켜 케이크 속의 물 모두를 필수적으로 제거하였다.The washed wet cake was dried in a vacuum oven overnight (house-vacuum at 80 ° C) to essentially remove all of the water in the cake.
· 무수 고체의 일부를 속슬레 추출기(Soxhlet extractor) 속의 헥산과 완전히 접촉시켜 고체로부터 오일을 제거하였다.A portion of the anhydrous solid was completely contacted with hexane in a Soxhlet extractor to remove the oil from the solid.
· 고체로부터 회수된 오일을 GC로 분석하여 고체로부터 회수된 오일 속에 존재하는 올레일 알코올 및 옥수수 오일의 상대적인 양을 측정하였다.The oil recovered from the solid was analyzed by GC to determine the relative amounts of oleyl alcohol and corn oil present in the recovered oil from the solid.
· 입자 크기 분포(PSD)를 발효 브로쓰 둘 다로부터 회수한 고체에 대해 측정하였다.The particle size distribution (PSD) was measured for solids recovered from both fermentation broths.
발효 브로쓰 둘 다로부터의 용해되지 않은 고체의 회수 및 헥산 추출을 위한 데이터는 표 8에 나타낸다. 당해 데이터는, 대략 동일한 양의 오일이 발효 둘 다에서 고체(고체의 단위 중량 당)에 의해 흡수되었음을 나타낸다.Data for recovery of undissolved solids from both fermentation broths and hexane extraction are shown in Table 8. The data indicate that approximately the same amount of oil was absorbed by the solid (per unit weight of solids) in both fermentations.
[표 8][Table 8]
실시예Example 10 10
물로 습윤 케이크를 세척함으로써 액화된 옥수수 By washing the wet cake with water, liquefied corn 매쉬로부터From mesh 고체의 제거로 With removal of solid 발생Occur 된 습윤 케이크로부터의 가용성 전분의 회수 - 2 단계 공정Recovery of soluble starch from wet cake - Two-step process
본 실시예는, 습윤 케이크를 물로 2회 세척함으로써 습윤 케이크로부터 가용성 전분의 회수를 입증하며, 여기서 상기 케이크는 액화된 매쉬를 원심분리하여 발생되었다. 액화된 옥수수 매쉬를 연속식 데칸터 원심분리기에 공급하여 농축물 스트림(C-1) 및 습윤 케이크(WC-1)를 생성하였다. 농축물은 가용성 전분의 비교적 고체를 함유하지 않은 수용액이며, 습윤 케이크는 공급물 매쉬와 비교하여 고체 속에서 농축되었다. 습윤 케이크의 일부를 더운 물과 혼합하여 슬러리(S-1)를 형성시켰다. 당해 슬러리를 데칸터 원심분리기를 통해 역 펌핑하여 세척 수 농축물(C-2) 및 세척된 습윤 케이크(WC-2)를 생성하였다. C-2는 가용성 전분의 비교적 고체를 함유하지 않은 희석 수용액이었다. C-2에서 가용성 전분의 농도는 매쉬의 분리로부터 생성된 농축물 속의 가용성 전분의 농도보다 적었다. WC-2 속에 유지된 액체 상은 매쉬의 분리로부터 생성된 습윤 케이크 속의 액체보다 전분 속에서 보다 더 묽었다. 세척된 습윤 케이크(WC-2)를 더운 물과 혼합하여 슬러리(S-2)를 형성하였다. 충전된 물 대 충전된 습윤 케이크 속의 가용성 전분의 양의 비는 세척 단계 둘 다에서 동일하였다. 제2의 세척 슬러리를 데칸터 원심분리기를 통해 역으로 펌핑하여 제2의 세척 수 농축물(C-3) 및 2회 세척된 습윤 케이크(WC-3)를 생성하였다. C-3는 가용성 전분의 비교적 고체를 함유하지 않은 희석 수용액이었다. C-3 속의 가용성 전분의 농도는 제1의 세척 단계(C-2)에서 생성된 농축물 속의 가용성 전분의 농도 미만이었으므로, WC-3(제2의 세척된 습윤 케이크) 속에 유지된 액체 상은 WC-2(제1의 세척된 습윤 케이크)에서 보다 전분 속에서 보다 더 묽었다. 2개의 세척 농축물(C-2 및 C-3) 속의 전체 가용성 전분은 회수되어 액화로 역 재순환될 수 있는 전분이다. 최종의 세척된 습윤 케이크 속에 유지된 액체 속의 가용성 전분은 매쉬의 원래의 분리에서 생성된 습윤 케이크 속의 것보다 훨씬 적다.This example demonstrates the recovery of soluble starch from a wet cake by washing the wet cake twice with water, where the cake was generated by centrifuging the liquefied mesh. The liquefied corn mash was fed to a continuous decanter centrifuge to produce a concentrate stream (C-1) and a wet cake (WC-1). The concentrate was an aqueous solution which contained relatively no solids of soluble starch, and the wet cake was concentrated in the solid as compared to the feed mash. A portion of the wet cake was mixed with hot water to form a slurry (S-1). The slurry was back-pumped through a decanter centrifuge to produce a wash water concentrate (C-2) and a washed wet cake (WC-2). C-2 was a dilute aqueous solution containing relatively no solids of soluble starch. The concentration of soluble starch at C-2 was less than the concentration of soluble starch in the concentrate resulting from the separation of the mash. The liquid phase retained in the WC-2 was more diluted than in the wet cake produced from the separation of the mash than in the starch. The washed wet cake (WC-2) was mixed with hot water to form a slurry (S-2). The ratio of the amount of soluble starch in the filled water to the filled wet cake was the same in both wash steps. The second wash slurry was pumped back through a decanter centrifuge to form a second wash water concentrate (C-3) and a second washed wet cake (WC-3). C-3 was a dilute aqueous solution containing relatively no solids of soluble starch. Since the concentration of soluble starch in C-3 was less than the concentration of soluble starch in the concentrate produced in the first washing step (C-2), the liquid phase retained in WC-3 (second washed wet cake) -2 (the first washed wet cake) than in the starch. The total soluble starch in the two wash concentrates (C-2 and C-3) is a starch that can be recovered and recycled back to liquefaction. The soluble starch in the liquid retained in the final washed wet cake is much less than that in the wet cake produced in the original separation of the mesh.
액화된 옥수수 Liquefied corn 매쉬의Mash 생산성 productivity
대략 1000gal의 액화된 옥수수 매쉬를 햄머 분쇄기, 슬러리 혼합기, 슬러리 탱크, 및 액화 탱크로 이루어진 무수 낱알 액화 연속 시스템 속에서 생산하였다. 분쇄된 옥수수, 물, 및 알파-아밀라제를 연속적으로 공급하였다. 반응기는 기계적 교반, 온도 조절, 및 암모니아 또는 황산을 사용한 pH 조절을 구비하였다. 반응 조건은 다음과 같았다:Approximately 1000gal of liquefied corn mash was produced in a continuous aeration system with a hammer mill, slurry mixer, slurry tank, and liquefied tank. Crushed corn, water, and alpha-amylase were continuously fed. The reactor was equipped with mechanical stirring, temperature control, and pH adjustment with ammonia or sulfuric acid. The reaction conditions were as follows:
· 햄머 분쇄기 체 크기: 7/64"· Hammer crusher body size: 7/64 "
· 슬러리 혼합기로의 공급 속도· Feed rate to slurry mixer
- 분쇄된 옥수수: 560 lbm/hr (14.1중량% 수분) - Ground corn: 560 lbm / hr (14.1 wt% moisture)
- 공정 수: 16.6 lbm/min (200 F) - Number of processes: 16.6 lbm / min (200 F)
- 알파-아밀라제: 61g/hr (Genecor: Spezyme® ALPHA)- Alpha-amylase: 61 g / hr (Genecor: Spezyme ® ALPHA)
· 슬러리 탱크 조건:· Slurry tank conditions:
- 온도: 185℉(85℃) - Temperature: 185 ° F (85 ° C)
- pH: 5.8 - pH: 5.8
- 체류 시간: 0.5시간 - Retention time: 0.5 hour
- 무수 옥수수 부하: 31중량% - anhydrous maize load: 31 wt%
- 효소 부하: 0.028중량%(무수 옥수수 기준) - Enzyme load: 0.028 wt% (based on anhydrous corn)
· 액화 탱크 조건:· Liquefaction tank conditions:
- 온도: 185℉(85℃) - Temperature: 185 ° F (85 ° C)
- pH: 5.8 - pH: 5.8
- 체류 시간: 약 3 시간 - Retention time: about 3 hours
- 추가의 효소가 첨가되지 않음. - No additional enzyme added.
액화된 옥수수 매쉬의 생성속도는 약 3gpm이었다. 분쇄된 옥수수의 전분 함량은 무수 옥수수 기준으로 약 70중량%인 것으로 측정되었다. 액화된 매쉬의 총 고체(TS)는 약 31중량%이었고, 전체 현탁된 고체(TSS)는 대략 7중량%이었다. 액체 상은 HPLC에 의해 측정된 것으로서 약 23 내지 24중량%의 액화된 전분(가용성 올리고사카라이드)을 함유하였다.The production rate of the liquefied corn mash was about 3 gpm. The starch content of the ground corn was determined to be about 70% by weight on anhydrous maize. The total solids (TS) of the liquefied mesh was about 31 wt% and the total suspended solids (TSS) was about 7 wt%. The liquid phase contained about 23 to 24% by weight of liquefied starch (soluble oligosaccharide) as determined by HPLC.
액화된 매쉬를 다음 조건에서 연속 데칸터 원심분리기로 원심분리하였다:The liquefied mesh was centrifuged in a continuous decanter centrifuge under the following conditions:
· 보울 속도: 5000 rpm (약 3600g's)Bowl speed: 5000 rpm (about 3600g's)
· 차등 속도: 15 rpm· Differential speed: 15 rpm
· 웨어 직경(Weir Diameter): 185 mm(웨어 플레이트 제거됨)· Weir Diameter: 185 mm (wear plate removed)
· 공급 속도: 5 내지 20gpm에서 변함.Feed rate: varies from 5 to 20 gpm.
대략 850gal의 농축물 및 대략 1400 lbm의 습윤 케이크를, 매쉬를 원심분리하여 생성하였다. 습윤 케이크 속의 전체 고체는 수분 균형에 의해 약 46.3%(현탁된 + 용해된)인 것으로 측정되었다. 액체 상은 약 23중량%의 가용성 전분을 함유한다는 것을 알고 있는 상태에서, 습윤 케이크 속의 전체 현탁된 고체는 약 28중량%인 것으로 추정되었다. 습윤 케이크는 원심분리기 작동 전에 액화된 매쉬 속에 존재하는 가용성 전분의 대략 12%를 함유한 것으로 추정되었다.Approximately 850 g of concentrate and approximately 1400 lbm of wet cake were produced by centrifuging the mesh. The total solids in the wet cake were determined to be about 46.3% (suspended + dissolved) by moisture balance. It was assumed that the total suspended solids in the wet cake were about 28% by weight, with the liquid phase knowing that it contained about 23% by weight of soluble starch. The wet cake was estimated to contain approximately 12% of the soluble starch present in the liquefied mash prior to centrifuge operation.
고체를 물로 세척함에 의한 습윤 케이크로부터 가용성 전분의 회수 - Recovery of soluble starch from wet cake by washing the solids with water - 첫번째first 세척 wash
액화된 매쉬의 분리로부터 회수된 약 707 lbm의 습윤 케이크를 165gal의 더운(91℃) 물과 300gal의 스테인레스 강 용기 속에서 혼합하였다. 수득되는 슬러리를 약 30분 동안 혼합하였다. 당해 슬러리를 데칸터 원심분리기에 연속적으로 공급하여 슬러리로부터 세척된 고체를 제거하였다. 세척 슬러리를 분리하기 위해 사용된 원심분리기는 상기 액화된 매쉬로부터의 고체를 제거하는데 사용된 것과 동일한 것이었으며, 이를 슬러리를 공급하기 전에 신선한 물로 세정하였다. 원심분리기를 다음의 조건에서 작동시켜 세척 슬러리로부터 고체를 제거하였다:Approximately 707 lbm of the wet cake recovered from the separation of the liquefied mesh was mixed with 165 grams of hot (91 DEG C) water and 300 grams of stainless steel vessel. The resulting slurry was mixed for about 30 minutes. The slurry was continuously fed into a decanter centrifuge to remove washed solids from the slurry. The centrifuge used to separate the wash slurry was the same as that used to remove solids from the liquefied mesh and was rinsed with fresh water before feeding the slurry. The centrifuge was run under the following conditions to remove solids from the wash slurry:
· 보울 속도: 5000 rpm (약 3600g's)Bowl speed: 5000 rpm (about 3600g's)
· 차등 속도: 5 rpm· Differential speed: 5 rpm
· 웨어 직경: 185 mm(웨어 플레이트 제거됨)· Wear diameter: 185 mm (wear plate removed)
· 공급 속도: 5gpm.· Feed rate: 5gpm.
대략 600 lbm의 세척된 습윤 케이크를 원심분리기로 생성하였으나, 물질의 손실로 인하여 400 lbm 만이 회수되었다. 습윤 케이크 속의 전체 고체는 수분 균형에 의해 약 36.7%(현탁됨 + 용해됨)인 것으로 측정되었다. 슬러리의 액체 상 및 세척 수 농축물(슬러리로부터 수득됨) 속의 전체 가용성 전분(글루코즈의 합, DP2, DP3, 및 DP4+)은 HPLC에 의해 각각 약 6.7중량% 및 6.9중량%인 것으로 측정되었다. DP2는 2개의 글루코즈 단위(글루코즈 이량체)를 함유하는 덱스트로즈 중합체를 말한다. DP3은 3개의 글루코즈 단위(글루코즈 삼량체)를 함유하는 덱스트로즈 중합체를 말한다. DP4+는 4개 이상의 글루코즈 단위(글루코즈 사량체 및 그 이상)을 함유하는 덱스트로즈 중합체를 말한다. 이는, 잘 혼합된 희석 세척 단계가 달성되었음을 입증하였다. 따라서, 세척된 습윤 케이크 속에 유지된 액체 상 속의 가용성 전분의 농도는 당해 희석 세척에 대해 약 6.8중량%(질량 균형에 의함)이어야만 한다. 전체 고체 및 용해된 올리고당 데이터를 기준으로 하여, 세척된 습윤 케이크 중 전체의 현탁된 고체는 약 32중량%인 것으로 추정되었다. 원심분리에 의해 생성된 케이크의 모든 600 lbm이 세척된 경우 세척된 습윤 케이크는 원래의 액화된 매쉬 속에 존재한 가용성 전분의 대략 2.6%를 함유한 것으로 추정되었다. 이는 세척 전 매쉬 습윤 케이크와 비교하여 세척된 습윤 케이크 속에서 가용성 전분에 있어 약 78% 감소를 나타낸다. 액화된 매쉬의 분리로부터 생성된 습윤 케이크가 세척되지 않은 경우, 매쉬 속의 전체 전분의 약 12%는 가용성(액화된) 전분으로서 손실될 수 있다. 매쉬의 분리로부터 생성된 습윤 케이크를 당해 실시예에서 입증된 조건에서 물로 세척하는 경우, 매쉬로부터 전체 전분의 2.6%가 가용성(액화된) 전분으로서 손실될 수 있었다.Approximately 600 lbm of washed wet cake was produced with a centrifuge, but only 400 lbm was recovered due to material loss. The total solids in the wet cake were determined to be about 36.7% (suspended + dissolved) by moisture balance. The total soluble starch (sum of glucose, DP2, DP3, and DP4 +) in the liquid phase and wash water concentration of the slurry (obtained from the slurry) was determined to be about 6.7 wt% and 6.9 wt% respectively by HPLC. DP2 refers to a dextrose polymer containing two glucose units (glucose dimer). DP3 refers to a dextrose polymer containing three glucose units (glucose trimer). DP4 + refers to a dextrose polymer containing four or more glucose units (glucose tetramer and more). This proved that a well-mixed dilute washing step was achieved. Thus, the concentration of soluble starch in the liquid phase retained in the washed wet cake should be about 6.8% by weight (by mass balance) for the dilute wash concerned. Based on the total solid and dissolved oligosaccharide data, it was estimated that the total suspended solids in the washed wet cake were about 32% by weight. When all 600 lbm of the cake produced by centrifugation had been washed, the washed wet cake was estimated to contain approximately 2.6% of the soluble starch present in the original liquefied mesh. This represents about 78% reduction in soluble starch in the wet cake washed compared to the pre-wash mesh wet cake. If the wet cake produced from the separation of the liquefied mesh is not cleaned, about 12% of the total starch in the mesh may be lost as soluble (liquefied) starch. When the wet cake produced from the separation of the mashes was washed with water under the proven conditions of this example, 2.6% of the total starch from the mash could be lost as soluble (liquefied) starch.
액화된 매쉬 습윤 케이크의 첫번째 재-슬러리 세척으로부터 회수된 약 400 lbm의 세척된 습윤 케이크를 110gal의 더운(90℃) 물과 300gal의 스테인레스 강 용기 속에서 혼합하였다. 수득되는 슬러리를 약 30분 동안 혼합하였다. 당해 슬러리를 데칸터 원심분리기에 지속적으로 공급하여 슬러리로부터 세척된 고체를 제거하였다. 제2의 세척 슬러리를 분리하는데 사용된 원심분리기는 상기 첫번째 세척시 사용된 것과 동일하였으며, 이는 제2의 세척 슬러리를 공급하기 전에 신선한 물로 세정하였다. 원심분리기를 다음의 조건에서 작동하여 세척 슬러리로부터 고체를 제거하였다:Approximately 400 lbm of the washed wet cake recovered from the first re-slurry wash of the liquefied mesh wet cake was mixed with 110 grams of hot (90 占 폚) water and 300 grams of stainless steel vessel. The resulting slurry was mixed for about 30 minutes. The slurry was continuously fed into a decanter centrifuge to remove washed solids from the slurry. The centrifuge used to separate the second wash slurry was the same as that used in the first wash, which was rinsed with fresh water before feeding the second wash slurry. The centrifuge was operated under the following conditions to remove solids from the wash slurry:
· 보울 속도: 5000 rpm (약 3600g's)Bowl speed: 5000 rpm (about 3600g's)
· 차등 속도: 5 rpm· Differential speed: 5 rpm
· 웨어 직경: 185 mm(웨어 플레이트를 제거함)· Wear diameter: 185 mm (remove the wear plate)
· 공급 속도: 4gpm.· Feeding speed: 4gpm.
대략 322 lbm의 세척된 습윤 케이크를 원심분리기로 생성하였다. 제2의 세척으로부터의 습윤 케이크 속의 전체 고체는 수분 균형에 의해 약 37.4%(현탁됨 + 용해됨)인 것으로 측정되었다. 슬러리의 액체 상 및 세척 수 농축물(슬러리로부터 수득됨) 속의 전체 가용성 전분(글루코즈, DP2, DP3, 및 DP4+의 합)은 HPLC에 의해 각각 약 1.6중량% 및 1.6중량%인 것으로 측정되었다. 이는, 잘 혼합된 희석 세척 단계가 제2의 세척에서 달성되었음을 입증하였다. 따라서, 세척된 습윤 케이크 속에 유지된 액체 상 속의 가용성 전분의 농도는 당해 희석 세척에 대해 약 1.6중량%(질량 균형에 의함)이어야만 한다. 전체 고체 및 용해된 올리고당 데이터를 기준으로 하여, 세척된 습윤 케이크 중 전체의 현탁된 고체는 약 36중량%인 것으로 추정되었다. 제1의 세척 단계에서 생성된 케이크의 모든 600 lbm이 세척된 경우 세척된 습윤 케이크는 원래의 액화된 매쉬 속에 존재한 가용성 전분의 대략 0.5%를 함유한 것으로 추정되었다. 이는 세척 전 약 96%의 매쉬 습윤 케이크와 비교하여 이중 세척된 습윤 케이크 속에서 가용성 전분에 있어 전체적인 감소를 나타낸다. 액화된 매쉬의 분리로부터 생성된 습윤 케이크가 세척되지 않은 경우, 매쉬 속의 전체 전분의 약 12%는 가용성(액화된) 전분으로서 손실될 수 있었다. 매쉬의 분리로부터 생성된 습윤 케이크를 당해 실시예에서 입증된 조건에서 물로 2회 세척하는 경우, 매쉬로부터의 전체 전분의 0.5%가 가용성(액화된) 전분으로서 손실될 수 있었다.Approximately 322 lbm of the cleaned wet cake was produced with a centrifuge. The total solids in the wet cake from the second wash were determined to be about 37.4% (suspended + dissolved) by moisture balance. The total soluble starch (sum of glucose, DP2, DP3, and DP4 +) in the liquid phase and wash water concentration of the slurry (obtained from the slurry) was measured by HPLC to be about 1.6% by weight and 1.6% by weight respectively. This proved that a well-mixed dilute wash step was achieved in the second wash. Thus, the concentration of soluble starch in the liquid phase retained in the washed wet cake should be about 1.6% by weight (by mass balance) for this dilute wash. Based on the total solid and dissolved oligosaccharide data, it was estimated that the total suspended solids in the washed wet cake was about 36 wt%. If all 600 lbm of the cake produced in the first washing step had been washed, the washed wet cake was estimated to contain approximately 0.5% of the soluble starch present in the original liquefied mesh. This represents a total reduction in soluble starch in the double-washed wet cake compared to about 96% wet wet cake before washing. When the wet cake produced from the separation of the liquefied mesh was not cleaned, about 12% of the total starch in the mesh could be lost as soluble (liquefied) starch. If the wet cake produced from the separation of the mashes was washed twice with water in the proven conditions of this example, 0.5% of the total starch from the mash could be lost as soluble (liquefied) starch.
실시예Example 11 11
가용성(액화된) 전분에 대한 옥수수 고체 속의 전분의 전환에 대한 액화 동안 고온 단계의 효과Effect of high temperature step during liquefaction on conversion of starch in corn solids to soluble (liquefied) starch
본 실시예는, 반응의 중간에 일부 시간에서 고온(또는 "쿠킹") 단계를 사용한 작동 액화가 옥수수 고체 속의 전분의 가용성(액화된) 전분으로의 보다 높은 전환을 생성할 수 있음을 입증한다. 당해 실시예에서 입증된 "쿠킹" 단계는, 액화가 시작된 후 일부 시점에서 액화 온도의 상승, 일부 기간 동안 보다 높은 온도에서 유지, 및 이후에 온도를 원래의 값으로 다시 강하시켜 액화를 완성함을 포함한다.This example demonstrates that operation liquefaction using a high temperature (or "cooking") step at some time in the middle of the reaction can produce a higher conversion of the starch in corn solids into soluble (liquefied) starch. The proven " cooking "step in this example is to raise the liquefaction temperature at some point after liquefaction has started, to maintain it at a higher temperature for some period, and then to drop the temperature back to its original value to complete the liquefaction .
A. 액화 후 고체 속에 잔류하는 가수분해되지 않은 전분을 측정하기 위한 과정A. Procedure for measuring unhydrolyzed starch remaining in solid after liquefaction
액화된 옥수수 매쉬를 실시예 1의 프로토콜(중간의 고온 단계는 없음)에 따라 1회 실시로 제조하였다. 액화된 옥수수 매쉬를 다른 실시에서 중간의 고온 단계의 추가를 제외하고는 제1의 실시에서와 동일한 조건에서 다른 실시로 제조하였다. 실시 둘 다로부터의 매쉬를 다음 단계에 따라 후처리하였다. 이를 원심분리하여 용해되지 않은 고체로부터 액화된 전분의 수용액을 분리하였다. 액화된 전분의 수용액을 경사여과로 제거하여 습윤 케이크를 회수하였다. 습윤 케이크는 매쉬로부터 용해되지 않은 고체의 대부분을 함유하였지만, 고체는 여전히 액화된 전분 용액으로 습윤되었다. 습윤 케이크를 물로 완전히 세척하고, 후속적인 슬러리를 원심분리하여 용해되지 않은 고체로부터 수성 층을 분리하였다. 케이크를 액화로부터 회수된 원래의 습윤 케이크 속에서 유지된 가용성 전분 모두를 대략적으로 제거하기에 충분한 물로 총 5회 세척하였다. 결과적으로, 액체 상을 필수적으로 가용성 전분을 함유하지 않는 물로 이루어진 최종 세척된 습윤 케이크 속에 유지하였다.A liquefied corn mesh was prepared in a single run according to the protocol of Example 1 (no intermediate high temperature steps). The liquefied corn mash was prepared in another run under the same conditions as in the first run except for the addition of intermediate high temperature stages in another run. The mesh from both runs was post-processed according to the following steps. This was centrifuged to separate an aqueous solution of liquefied starch from undissolved solids. The aqueous solution of the liquefied starch was removed by oblique filtration to recover the wet cake. The wet cake contained most of the undissolved solids from the mesh, but the solids were still wet with the liquefied starch solution. The wet cake was thoroughly washed with water and the subsequent slurry was centrifuged to separate the aqueous layer from the undissolved solid. The cake was washed five times total with water sufficient to approximately remove all of the soluble starch retained in the original wet cake recovered from liquefaction. As a result, the liquid phase was maintained in a final washed wet cake consisting essentially of water containing no soluble starch.
최종 세척된 습윤 케이크를 물 속에서 재-슬러리화하고, 거대 과량의 알파-아밀라제 및 글루코아밀라제 둘 다를 가하였다. 슬러리를 적어도 24시간 동안 혼합하면서 온도 및 pH를 조절하여 알파-아밀라제가 용해되지 않은 고체 속에 잔류하는 필수적으로 모든 가수분해되지 않은 전분을 가용성 올리고당으로 전환하도록 하였다. 잔류 전분(이는 목적한 조건에서 액화 동안 가수분해되지 않았음)으로부터 발생된 가용성 올리고당을 존재하는 글루코아밀라제에 의해 글루코즈로 후속적으로 전환하였다. 글루코즈 농도를 HPLC로 시간에 따라 추적하여 잔류 전분으로부터 발생된 모든 올리고당이 글루코즈로 확실히 전환되도록 하였으며 글루코즈 농도는 시간에 따라 더 이상 증가하지 않았다.The final washed wet cake was re-slurried in water and added with both large excess of alpha-amylase and glucoamylase. The temperature and pH were adjusted while mixing the slurry for at least 24 hours to convert essentially all of the unhydrolyzed starch remaining in the solubilized alpha-amylase to soluble oligosaccharides. The soluble oligosaccharide generated from the residual starch (which was not hydrolyzed during liquefaction at the desired conditions) was subsequently converted to glucose by the existing glucoamylase. Glucose concentration was monitored with HPLC over time to ensure that all oligosaccharide from the residual starch was converted to glucose and glucose concentration did not increase with time.
B. 액화된 옥수수 B. Liquefied corn 매쉬의Mash 생성 produce
2개 배취의 액화된 옥수수 매쉬(각각 대략 1L)를 85℃에서 Liquozyme® SC DS (알파-아밀라제, 제조원: 노쓰캐롤라이나주 프랭클린톤 소재의 Novozymes)를 사용하여 제조하였다. 배취 둘 다는 2시간 보다 약간 긴 시간 동안 85℃에서 작동시켰다. 그러나, "쿠킹" 기간을 제2 배취("배취 2")의 중간에 가하였다. 배취 2에 대한 온도 프로파일은 85℃에서 약 30분이었으며, 온도를 85℃에서 101℃로 상승시키고, 101℃에서 약 30분 동안 유지시키고, 85℃로 강하시키며, 다른 120분 동안 액화를 지속하였다. 배취 둘 다에서 사용된 분쇄된 옥수수는 실시예 1에서와 동일하였다. 26중량%(무수 옥수수 기준)의 옥수수 부하를 배취 둘 다에서 사용하였다. 실시 둘 다에서 사용된 효소의 전체 양은 0.08중량%(무수 옥수수 기준)에 상응하였다. pH를 액화 실시 둘 다 동안 5.8에서 조절하였다. 액화를 유리의, 재킷형 수지 케틀 속에서 수행하였다. 당해 캐틀은 기계적 교반, 온도 조절, 및 pH 조절로 설정하였다.Two batches of liquefied corn mashes (approximately 1 L each) were prepared at 85 ° C using Liquozyme ® SC DS (alpha-amylase, Novozymes, Franklin, North Carolina). Both batches were run at 85 ° C for a little longer than 2 hours. However, the "cooking" period was added in the middle of the second batch ("
다음의 프로토콜에 따라 배취 1을 위한 액화된 옥수수 매쉬를 제조하였다:A liquefied corn mash for
· 알파-아밀라제를 수돗물로 희석시켰다(20.802g의 물 속의 0.418g 효소)Alpha-amylase was diluted with tap water (0.418 g enzyme in 20.802 g water)
· 704.5g의 수돗물을 케틀에 충전시켰다.704.5 g of tap water was charged into the kettle.
· 진탕기를 켰다.I turned on the shaker.
· 분쇄된 옥수수의 첫번째 충전물, 198g을 제조하였다.198 g of the first filler of ground corn was prepared.
· 진탕하면서 55℃로 가열하였다.Heat with shaking at 55 ° C.
· H2SO4 또는 NaOH를 사용하여 pH를 5.8로 조정하였다.The pH was adjusted to 5.8 using H 2 SO 4 or NaOH.
· 알파-아밀라제 용액의 첫번째 충전물, 7.111g을 제조하였다.7.111 g of the first charge of the alpha-amylase solution were prepared.
· 85℃로 가열하였다.Gt; 85 C. < / RTI >
· 85℃에서 30분 동안 유지하였다.Gt; 85 C < / RTI > for 30 minutes.
· 알파-아밀라제 용액의 제2의 충전물, 3.501g을 제조하였다.3.501 g of a second packing of alpha-amylase solution was prepared.
· 분쇄된 옥수수의 제2의 충전물, 97.5g을 제조하였다.97.5 g of a second packing of ground corn was prepared.
· 85℃에서 또 다른 100분 동안 지속적으로 실시하였다.Gt; 85 C < / RTI > for another 100 minutes.
· 액화가 완료된 후, 60℃로 냉각시켰다.After the liquefaction was completed, it was cooled to 60 캜.
· 반응기를 비우고 998.5g의 액화된 매쉬를 회수하였다.The reactor was emptied and 998.5 g of liquefied mesh was recovered.
다음의 프로토콜에 따라 배취 2를 위한 액화된 옥수수 매쉬를 제조하였다:A liquefied corn mash for
· 알파-아밀라제를 수돗물 속에서 희석하였다(16.642g의 물 속의 0.3366g의 효소)Alpha-amylase was diluted in tap water (0.3366 g of enzyme in 16.642 g of water)
· 562.6g의 수돗물을 케틀에 충전하였다.562.6 g of tap water was charged to the kettle.
· 진탕기를 켰다.I turned on the shaker.
· 분쇄된 옥수수, 237.5g을 충전하였다.237.5 g of ground corn were charged.
· 진탕하면서 55℃로 가열하였다.Heat with shaking at 55 ° C.
· 묽은 H2SO4 또는 NaOH를 사용하여 pH를 5.8로 조정하였다.The pH was adjusted to 5.8 using dilute H 2 SO 4 or NaOH.
· 알파-아밀라제 용액의 첫번째 충전물, 4.25g을 제조하였다.The first charge of the alpha-amylase solution, 4.25 g, was prepared.
· 85℃로 가열하였다.Gt; 85 C. < / RTI >
· 85℃에서 30분 동안 유지하였다.Gt; 85 C < / RTI > for 30 minutes.
· 101℃로 가열하였다.Gt; 101 C. < / RTI >
· 101℃에서 30분 동안 유지하였다.Gt; 101 C < / RTI > for 30 minutes.
· 매쉬의 온도를 85℃로 다시 강하하였다.The temperature of the mesh was dropped again to 85 ° C.
· 희석된 H2SO4 또는 NaOH를 사용하여 pH를 5.8로 조절하였다.The pH was adjusted to 5.8 using diluted H 2 SO 4 or NaOH.
· 알파-아밀라제 용액의 제2의 충전물, 4.2439g을 제조하였다.A second charge of alpha-amylase solution, 4.2439 g, was prepared.
· 85℃에서 또 다른 120분 동안 지속적으로 실시하였다.Gt; 85 C < / RTI > for another 120 minutes.
· 액화가 완료된 후, 60℃로 냉각시켰다.After the liquefaction was completed, it was cooled to 60 캜.
C. 액화된 C. liquefied 매쉬로부터From mesh 용해되지 않은 고체의 제거 및 가용성 전분을 제거하기 위해 물을 사용한 습윤 케이크의 세척 Removal of undissolved solids and washing of wet cake with water to remove soluble starch
고체의 대부분을 대형 바닥의 원심분리기 속에서 실온에서 5000 rpm으로 20분 동안 원심분리하여 액화된 매쉬의 배취 둘 다로부터 제거하였다. 배치 1로부터의 매쉬 500g의 원심분리로 334.1g의 농축물 및 165.9g의 습윤 케이크를 수득하였다. 배치 2로부터의 매쉬 872g의 원심분리로 654.7g의 농축물 및 217g의 습윤 케이크를 수득하였다. 액화된 매쉬의 각각의 배취로부터 회수된 습윤 케이크를 수돗물로 5회 세척하여 케이크 속에 유지된 가용성 전분 모두를 필수적으로 제거하였다. 세척을 원래의 매쉬를 원심분리하는데 사용된 동일한 병 속에서 수행하여 케이크를 용기들 사이로 이전하는 것을 방지하였다. 각각의 세척 단계에 있어서, 케이크를 물과 혼합하고, 수득되는 세척 슬러리를 실온에서 원심분리(5000 rpm에서 20분 동안)하였다. 이는 매쉬의 배취 둘 다로부터 회수된 습윤 케이크에서 수행된 모든 5개의 세척 단계에 대해 수행하였다. 대략 165g의 물을 배취 1로부터의 습윤 케이크의 5개 세척물 각각에서 사용하여 배취 1로부터의 습윤 케이크를 세척하는데 사용된 총 828.7g의 물을 생성하였다. 대략 500g의 물을 배취 2로부터의 습윤 케이크의 5개 세척물 각각에서 사용하여 배취 2로부터 습윤 케이크를 세척하는데 사용된 총 2500g의 물을 생성하였다. 배취 1로부터 습윤 케이크의 모든 5개 물 세척물로부터 회수한 총 세척 농축물은 893.1g이었다. 배취 2로부터 습윤 케이크의 모든 5개 물 세척물로부터 회수한 총 세척 농축물은 2566.3g이었다. 배취 1로부터 회수된 최종의 세척된 습윤 케이크는 101.5g이었으며, 배취 2로부터 회수된 최종의 세척된 습윤 케이크는 151.0g이었다. 각각의 배취로부터 수득된 최종의 세척된 습윤 케이크는 가용성 전분을 필수적으로 함유하지 않았으므로; 각각의 케이크 속에 유지된 액체는 주로 물이었다. 습윤 케이크의 총 고체(TS)는 습윤 균형을 사용하여 측정하였다. 배취 1로부터 습윤 케이크의 총 고체는 21.63중량%이었으며, 배취 2로부터 습윤 케이크에 대한 TS는 23.66중량%이었다.Most of the solids were removed from both batches of the liquefied mesh by centrifugation at 5000 rpm for 20 minutes at room temperature in a large bottom centrifuge. Centrifugation of 500 g of mesh from
D. 액화 후 용해되지 않은 고체에 잔류하는 가수분해되지 않은 전분의 수준을 측정하기 위한 세척된 습윤 케이크의 액화/D. Liquefaction of the washed wet cake to determine the level of hydrolyzed starch remaining in the undissolved solids after liquefaction / 당화Glycation
세척된 습윤 케이크 둘 다 속에 존재하는 고체 속에 잔류하는 가수분해되지 않은 전분의 수준은 케이크를 물 속에서 재-슬러리화하고 과량의 알파-아밀라제 및 과량의 글루코아밀라제를 가하여 측정하였다. 알파-아밀라제는 고체 속의 잔류하는 가수분해되지 않은 전분을 슬러리의 수성 상 속에 용해되는 가용성 올리고당으로 전환시킨다. 글루코아밀라제는 알파-아밀라제에 의해 생성된 가용성 올리고당을 글루코즈로 후속적으로 전환시킨다. 반응은 55℃(글루코아밀라제에 대해 최대로 추천된 온도)에서 적어도 24시간 동안 실시하여 고체 속의 잔류 전분 모두가 가용성 올리고당으로 전환되도록 보증하고, 모든 가용성 올리고당이 글루코즈로 전환되도록 보증한다. 고체 속에 있었으며, 액화 동안에 가수분해되지 않았던 전분인 잔류하는 가수분해되지 않은 전분은 당해 과정에 의해 발생된 글루코즈의 양으로부터 계산될 수 있다.The level of hydrolyzed starch remaining in the solids present in both washed wet cake was measured by reslurrying the cake in water and adding excess alpha-amylase and excess glucoamylase. Alpha-amylase converts the remaining unhydrolyzed starch in the solid into a soluble oligosaccharide that is soluble in the aqueous phase of the slurry. Glucoamylase subsequently converts soluble oligosaccharides produced by alpha-amylase to glucose. The reaction is carried out for at least 24 hours at 55 ° C (the maximum recommended temperature for glucoamylase) to ensure that all the remaining starch in the solid is converted to soluble oligosaccharides and ensures that all soluble oligosaccharides are converted to glucose. The remaining unhydrolyzed starch, which was in the solid and was not hydrolyzed during liquefaction, can be calculated from the amount of glucose produced by the process.
다음의 프로토콜에 사용된 알파-아밀라제 및 글루코아밀라제 효소는 각각 Liquozyme®SC DS 및 Spirizyme® Fuel (제조원: 노쓰캐롤라이나주 프랭클린 소재의 Novozymes)이었다. 세척된 습윤 케이크를 처리하는데 사용된 용기는 기계적 교반, 온도 조절, 및 pH 조절이 장착된 250 mL 들이의 재킷형 유리 수지 케틀이었다. 사용된 Liquozyme®의 양은 "무수 옥수수 기준"으로 0.08중량%의 효소 부하에 상응한다. 사용된 Sprizyme®의 양은 "무수 옥수수 기준"으로 0.2중량%의 효소 부하에 상응한다. 당해 기준은 세척된 케이크 속에 유지된 용해되지 않은 고체의 양을 제공하는데 요구되는 분쇄된 옥수수의 양으로서 정의되며, 모든 전분이 가용성 올리고당으로 가수분해되는 것으로 추정된다. 세척된 케이크 속에 유지된 용해되지 않은 고체는 대부분 옥수수의 전분이 없는, 발효가능하지 않은 부분인 것으로 고려된다. 이들 효소 부하는 26% 옥수수 부하에서 액화 및 당화를 완료하는데 요구되는 것보다 적어도 4배 더 높다. 효소는 고체 속의 잔류 전분의 완전한 가수분해를 보증하고 올리고당의 글루코즈로의 완전한 전환을 보증하기 위해 매우 과량으로 사용되었다.Alpha using the following protocol-amylase and glucoamylase enzymes are each Liquozyme ® SC and DS Spirizyme Fuel ® (Novozymes, Franklin, North Carolina). The vessel used to treat the washed wet cake was a 250 mL jacketed glass resin kettle equipped with mechanical stirring, temperature control, and pH adjustment. The amount of Liquozyme ® used corresponds to an enzyme load of 0.08% by weight on "anhydrous corn basis". The amount of Sprizyme ® used corresponds to an enzyme load of 0.2 wt.% On a "anhydrous maize basis. &Quot; The criteria are defined as the amount of ground corn required to provide the amount of undissolved solids held in the washed cake and it is assumed that all of the starch is hydrolyzed to soluble oligosaccharides. The undissolved solids retained in the washed cake are considered to be non-fermentable portions, most of which are starch free of corn. These enzyme loads are at least four times higher than those required to complete liquefaction and saccharification at a 26% corn load. The enzyme has been used in extreme amounts to ensure complete hydrolysis of the residual starch in the solid and to ensure complete conversion of the oligosaccharide to glucose.
다음의 프로토콜에 따라 배취 1 매쉬로부터의 세척된 습윤 케이크 속에 존재하는 고체 속의 가수분해되지 않은 전분의 수준을 측정하였다:The level of unhydrolyzed starch in the solid present in the washed wet cake from one batch of batches was determined according to the following protocol:
· 알파-아밀라제를 수돗물 속에 희석시켰다(10.3607g의 물 속의 0.1297g의 효소)Alpha-amylase was diluted in tap water (0.1297 g of enzyme in 10.3607 g of water)
· 글루코아밀라제를 수돗물 속에 희석시켰다(15.6054g의 물 속의 0.3212g)Glucoamylase was diluted in tap water (0.3212 g in 15.6054 g water)
· 132g의 수돗물을 케틀에 충전시켰다.132 g of tap water was charged to the kettle.
· 진탕기를 켰다.I turned on the shaker.
· 액화 배취 1로부터 생성된, 세척된 습윤 케이크 68g을 충전시켰다(TS=21.63중량%).68 g of the washed wet cake produced from liquefied
· 진탕하면서 55℃로 가열하였다.Heat with shaking at 55 ° C.
· 묽은 H2SO4 또는 NaOH를 사용하여 pH를 5.5로 조정하였다.The pH was adjusted to 5.5 using dilute H 2 SO 4 or NaOH.
· 알파-아밀라제 용액, 3.4992g을 충전시켰다.Alpha-amylase solution, 3.4992 g.
· 글루코아밀라제 용액, 5.319g을 충전시켰다.· 5.319 g of glucoamylase solution was charged.
· pH를 5.5로 조절하면서 55℃에서 24시간 동안 수행하고 글루코즈를 위한 슬러리를 주기적으로 시료채취하였다.The slurry for glucose was periodically sampled by performing at 55 [deg.] C for 24 hours while adjusting the pH to 5.5.
다음의 프로토콜에 따라 배취 2로부터의 세척된 습윤 케이크 속에 존재하는 고체 속의 가수분해되지 않은 전분의 수준을 측정하였다.The level of unhydrolyzed starch in the solid present in the washed wet cake from
· 알파-아밀라제를 수돗물 속에 희석시켰다(11.709g의 물 속의 0.2384g의 효소).Alpha-amylase was diluted in tap water (11.709 g of 0.2384 g of enzyme in water).
· 글루코아밀라제를 수돗물 속에 희석시켰다(17.5538g의 물 속의 0.3509g).Glucoamylase was diluted in tap water (0.3509 g in 17.5538 g water).
· 154.3g의 수돗물을 케틀에 충전시켰다.154.3 g of tap water was charged to the kettle.
· 진탕기를 켰다.I turned on the shaker.
· 액화 배취 1로부터 생성된, 세척된 습윤 케이크 70.7g을 충전시켰다(TS=23.66 중량%).70.7 g of the washed wet cake produced from liquefied
· 진탕하면서 55℃로 가열하였다.Heat with shaking at 55 ° C.
· 묽은 H2SO4 또는 NaOH를 사용하여 pH를 5.5로 조정하였다.The pH was adjusted to 5.5 using dilute H 2 SO 4 or NaOH.
· 알파-아밀라제 용액, 2.393g을 충전시켰다.Alpha-amylase solution, 2.393 g.
· 글루코아밀라제 용액, 5.9701g을 충전시켰다.· 5.8314 g of glucoamylase solution was charged.
· pH를 5.5로 조절하면서 55℃에서 24시간 동안 수행하고 글루코즈를 위한 슬러리를 주기적으로 시료채취하였다.The slurry for glucose was periodically sampled by performing at 55 [deg.] C for 24 hours while adjusting the pH to 5.5.
세척된Washed 습윤 케이크의 액화/ The liquefaction / 당화에On saccharification 대한 결과의 비교 Comparison of results for
위에 기술된 바와 같이, 배취 1 및 2로부터의 세척된 습윤 케이크를 물 속에 재-슬러리화하고, 매우 과량의 알파-아밀라제 및 글루코아밀라제 둘 다를 슬러리에 가하여 고체 속에 잔류하는 어떠한 전분도 가수분해하고 이를 글루코즈로 전환하였다. 도 15는 시간의 함수로서 슬러리의 수성 상 속의 글루코즈의 농도를 나타낸다.As described above, the washed wet cake from
글루코즈의 농도는 시간에 따라 증가하였으며 반응기 둘 다에 대해 대략 24시간째에 최대 값으로 나타났다. 24시간 내지 48시간 사이의 글루코즈에 있어서 약간의 감소는 미생물 오염으로부터 기원할 수 있으므로; 각각의 시스템에서 도달된 글루코즈의 최대 수준을 사용하여 세척된 습윤 케이크의 고체 속에 있던 잔류하는 가수분해되지 않은 전분의 수준을 계산하였다. 배취 1 액화로부터 수득된 세척된 습윤 케이크를 반응시켜(알파-아밀라제 및 글루코아밀라제의 존재하에서) 도달된 글루코즈의 최대 수준은 4.48g/L이었다. 비교 시, 배취 2 액화로부터 수득된 세척된 습윤 케이크를 반응시켜(알파-아밀라제 및 글루코아밀라제의 존재하에서) 도달된 글루코즈의 최대 수준은 2.39g/L이었다.Glucose concentration increased with time and peaked at approximately 24 hours for both of the reactors. A slight decrease in glucose between 24 and 48 hours may be due to microbial contamination; The maximum level of glucose reached in each system was used to calculate the level of residual unhydrolyzed starch in the solids of the washed wet cake. The maximum level of glucose reached (in the presence of alpha-amylase and glucoamylase) by reacting the washed wet cake obtained from batch liquor was 4.48 g / L. In comparison, the washed wet cake obtained from batch liquefaction was reacted (in the presence of alpha-amylase and glucoamylase) to a maximum level of 2. 4 g / L of glucose reached.
액화된 매쉬(액화 동안 가수분해되지 않았음) 속의 용해되지 않은 고체 속에 존재한 잔류하는 가수분해되지 않은 전분의 수준은 매쉬의 상응하는 배취로부터 수득된 세척된 습윤 케이크로부터 수득한 글루코즈 데이터를 기준으로 계산하였다.The level of residual unhydrolyzed starch present in the undissolved solids in the liquefied mesh (which was not hydrolyzed during liquefaction) is based on the glucose data obtained from the washed wet cake obtained from the corresponding batch of mesh Respectively.
· 액화 배취 1: 고체 속의 잔류하는 가수분해되지 않은 전분은 액화에 공급된 옥수수 속의 전체 전분의 2.1%에 상응한다. 이는, 옥수수 속의 전분의 2.1%가 배취 1 액화 조건 동안에 가수분해되지 않았음을 내포한다. 액화 배취 1 동안에 중간 고온("쿠킹") 단계는 일어나지 않았다.Liquefied Batch 1: The remaining unhydrolyzed starch in the solid corresponds to 2.1% of the total starch in the corn fed to the liquefaction. This implies that 2.1% of the corn starch was not hydrolyzed during the batch liquefaction condition. No intermediate high temperature ("cooking") step occurred during
· 액화 배취 2: 고체 속의 잔류하는 가수분해되지 않은 전분은 액화에 공급된 옥수수 속의 총 전분의 1.1%에 상응한다. 이는, 옥수수 속의 전분의 1.1%가 배취 2 액화 조건 동안 가수분해되지 않았음을 내포한다. 고온("쿠킹") 단계는 액화 배취 2 동안 발생하지 않았다.Liquefied Batch 2: The remaining unhydrolyzed starch in the solid corresponds to 1.1% of the total starch in the corn fed to the liquefaction. This implies that 1.1% of the corn starch was not hydrolyzed during the batch liquefaction condition. The high temperature ("cooking") step did not occur during
당해 실시예는, 액화 동안 일부 시기에 고온 "쿠킹" 단계의 추가가 보다 높은 전분 전환을 생성할 수 있었음을 입증한다. 이는 액화된 옥수수 매쉬 속의 용해되지 않은 고체에 잔존하는 잔류하는 가수분해된 전분을 거의 생성하지 않을 것이며 용해되지 않은 고체가 액화 전에 매쉬로부터 제거되는 공정에서 전분 손실을 거의 초래하지 않을 것이다.This example demonstrates that the addition of the high temperature "cooking" step at some time during liquefaction could produce higher starch conversion. This will produce very little residual hydrolyzed starch remaining in the undissolved solids in the liquefied corn mash and will cause little starch loss in the process where undissolved solids are removed from the mesh before liquefaction.
실시예Example 12 12
옥수수 고체 속의 전분을 가용성(액화된) 전분으로 전환 시 액화 동안 고온 단계의 효과Effect of high temperature stage during liquefaction in converting cornstarch starch into soluble (liquefied) starch
액화된 옥수수 매쉬의 2개의 배취(배취 3 및 배취 4)를 85℃에서 Liquozyme® SC DS(알파-아밀라제, 제조원: 노쓰캐롤라이나주 프랭클린 소재의 Novozymes)를 사용하여 제조하였다. 배취 둘 다를 85℃에서 2시간 약간 넘은 시간 동안 작동시켰다. 그러나, "쿠킹" 기간은 배취 4의 중간에 추가하였다. 배취 4에 대한 온도 프로파일은 85℃에서 약 30분이었으며, 당해 온도는 85℃로부터 121℃로 상승시켜, 121℃에서 약 30분 동안 유지시키고, 85℃로 냉각시키며, 다른 90분 동안 액화를 지속하였다. 배취 둘 다에 사용된 분쇄된 옥수수는 실시예 1과 동일하였다. 26중량%(무수 옥수수 기준)의 옥수수 로딩을 배취 둘 다에 사용하였다. 실시 둘 다에 사용된 효소의 총량은 0.04중량%(무수 옥수수 기준)에 상응하였다. pH는 둘 다의 액화 실시 동안에 5.8에서 조절하였다. 배취 3에 대한 액화는 1L들이의 유리, 재킷형 수지 케틀 속에서 수행하고 배취 4에 대한 액화는 200L들이의 스테인레스 강 발효기 속에서 수행하였다. 반응기 둘 다는 기계적 교반, 온도 조절, 및 pH 조절을 갖추었다.Two batches of the liquefied corn mash ® Liquozyme SC DS in a 85 ℃ (
당해 실시예에 대한 실험 조건은 다음의 차이와 함께 실시예 9에 대해 기술된 것과 유사하였다.The experimental conditions for this example were similar to those described for Example 9 with the following differences.
배취 3을 위한 액화된 옥수수 매쉬의 생성을 위해: 0.211g의 알파-아밀라제를 10.403g의 수돗물 속에 희석하였다. 알파-아밀라제 용액의 제1의 충전물은 3.556g이었다. 알파-아밀라제 용액의 제2의 충전물은 1.755g이었으며 반응을 또 다른 90분 동안 85℃에서 계속 수행하도록 하였다.For the production of a liquefied corn mash for batch 3: 0.211 g of alpha-amylase was diluted in 10.403 g tap water. The first charge of the alpha-amylase solution was 3.556 g. The second charge of the alpha-amylase solution was 1.755 g and the reaction was allowed to continue at 85 [deg.] C for another 90 minutes.
배취 4를 위한 액화된 옥수수 매쉬의 생성을 위해: 22g의 알파-아밀라제를 2kg의 수돗물 속에 희석시키고, 147.9kg의 수돗물을 발효기에 충전시키고, 61.8kg의 분쇄된 옥수수를 충전하였다. 알파-아밀라제 용액의 제1의 충전물은 1.0kg이었으며, 반응물을 85℃로 가열하고 85℃에서 30분 동안 유지시킨 후, 반응물을 121℃로 가열하고 121℃에서 30분 동안 유지시켰다. 알파-아밀라제 용액의 제2의 충전물은 1kg이었으며 반응이 85℃에서 또 다른 90분 동안 계속 수행되도록 하였다.For the production of a liquefied corn mash for batch 4: 22 g of alpha-amylase was diluted in 2 kg of tap water, 147.9 kg of tap water was charged to the fermenter, and 61.8 kg of ground corn was charged. The first charge of the alpha-amylase solution was 1.0 kg and the reaction was heated to 85 DEG C and held at 85 DEG C for 30 minutes, then the reaction was heated to 121 DEG C and held at 121 DEG C for 30 minutes. The second charge of the alpha-amylase solution was 1 kg and the reaction was allowed to continue for another 90 minutes at 85 ° C.
액화된 Liquefied 매쉬로부터From mesh 용해되지 않은 고체의 제거 및 가용성 전분을 제거하기 위한 물을 사용한 습윤 케이크의 세척 Removal of undissolved solids and washing of wet cake with water to remove soluble starch
고체의 대부분을 실온에서 5000 rpm으로 15분 동안 대형 바닥 원심분리기 속에서 원심분리하여 액화된 매쉬의 배취 둘 다로부터 제거하였다. 배치 3으로부터의 매쉬 500.1g의 원심분리로 337.2g의 농축물 및 162.9g의 습윤 케이크가 수득되었다. 배치 4로부터의 매쉬 509.7g의 원심분리로 346.3g의 농축물 및 163.4g의 습윤 케이크가 수득되었다. 액화된 매쉬의 각각의 배취로부터 회수된 습윤 케이크를 수돗물로 5회 세척하여 케이크 속에 유지된 가용성 전분 모두를 필수적으로 제거하였다. 세척을 원래의 매쉬를 원심분리하는데 사용된 동일한 병 속에서 수행하여 케이크가 용기들 사이로 이전하는 것을 방지하였다. 각각의 세척 단계에 대해, 케이크를 물과 혼합하고, 수득되는 세척 슬러리를 실온에서 원심분리(5000 rpm에서 15분)하였다. 이는 매쉬의 배취 둘 다로부터 회수된 습윤 케이크에서 수행된 모든 5개의 세척 단계에 대해 수행하였다. 대략 164g의 물을 배취 3으로부터의 습윤 케이크의 5개 세척물 각각에서 사용하여 배취 3으로부터의 습윤 케이크를 세척하는데 사용된 총 819.8g의 물을 생성하였다. 대략 400g의 물을 배취 4로부터의 습윤 케이크의 5개 세척물 각각에서 사용하여 배취 4로부터 습윤 케이크를 세척하는데 사용된 총 2000g의 물을 생성하였다. 배취 3으로부터 습윤 케이크의 모든 5개 물 세척물로부터 회수한 총 세척 농축물은 879.5g이었다. 배취 4로부터 습윤 케이크의 모든 5개 물 세척물로부터 회수된 총 세척 농축물은 2048.8g이었다. 배취 3으로부터 회수된 최종 세척된 습윤 케이크는 103.2g이었으며, 배취 4로부터 회수된 최종 세척된 습윤 케이크는 114.6g이었다. 각각의 배취로부터 수득된 최종 세척된 습윤 케이크는 가용성 전분을 필수적으로 함유하지 않았으므로; 각각의 케이크 속에 유지된 액체는 주로 물이었다. 습윤 케이크의 총 고체(TS)는 수분 균형을 사용하여 측정하였다. 배취 3으로부터 습윤 케이크의 총 고체는 21.88중량%이었으며, 배취 4로부터 습윤 케이크에 대한 TS는 18.1중량%이었다.Most of the solids were removed from both batches of the liquefied mesh by centrifugation at 5000 rpm at room temperature in a large bottom centrifuge for 15 minutes. Centrifugation of 500.1 g of mesh from
본 실시예를 위한 실험 조건은 다음의 차이와 함께 실시예 9에 대해 기술된 것과 유사하였다:The experimental conditions for this example were similar to those described for Example 9 with the following differences:
배취 3을 위해 액화 후 용해되지 않은 고체 속에 잔류하는 가수분해되지 않은 전분의 수준을 측정하기 위한 세척된 습윤 케이크의 액화/당화를 위해: 배취 3의 액화로부터 생성된 68g의 세척된 습윤 케이크를 충전하였다(TS = 21.88중량%). 3.4984g의 알파-아밀라제 용액 및 5.3042g의 글루코아밀라제를 충전시켰다. 반응은 pH를 5.5에서 조절하고 글루코즈를 위한 슬러리를 주기적으로 시료채취하면서 55℃에서 47시간 동안 수행하였다.For liquefaction / saccharification of the washed wet cake for measuring the level of unhydrolyzed starch remaining in undissolved solids after liquefaction for batch 3: 68 g of the washed wet cake produced from the liquefaction of
배취 4를 위해 액화 후 용해되지 않은 고체 속에 잔류하는 가수분해되지 않은 전분의 수준을 측정하기 위한 세척된 습윤 케이크의 액화/당화를 위해: 0.1663g의 알파-아밀라제를 13.8139g의 수돗물에 희석하고, 0.213g의 글루코아밀라제를 20.8002g의 수돗물에 희석시켰다. 117.8g의 수돗물을 케틀에 충전시켰다. 배취 4의 액화로부터 생성된 82.24g의 세척된 습윤 케이크를 충전하였다(TS = 18.1중량%). 3.4952g의 알파-아밀라제 용액 및 10.510g의 글루코아밀라제를 충전하였다. 반응은 pH를 5.5로 조절하고 글루코즈용 슬러리를 주기적으로 시료채취하면서 55℃에서 50시간 동안 수행하였다.For liquefaction / saccharification of the washed wet cake to determine the level of hydrolyzed starch remaining in undissolved solids after liquefaction for batch 4: 0.1663 g of alpha-amylase was diluted in 13.8139 g of tap water, 0.213 g of glucoamylase was diluted in 20.8002 g of tap water. 117.8 g of tap water was charged to the kettle. 82.24 g of the washed wet cake produced from the liquefaction of
세척된Washed 습윤 케이크의 액화/ The liquefaction / 당화에On saccharification 대한 결과의 비교 Comparison of results for
위에 기술된 바와 같이, 배취 3 및 4로부터의 세척된 습윤 케이크를 물 속에 재-슬러리화하고, 매우 과량의 알파-아밀라제 및 글루코아밀라제를 슬러리에 가하여 고체 속에 잔류하는 임의의 전분을 가수분해하고 이를 글루코즈로 전환하였다. 도 16은 시간의 함수로서 슬러리의 수성 상 속의 글루코즈의 농도를 나타낸다.As described above, the washed wet cake from
글루코즈의 농도는 시간에 따라 증가하였으며 배취 3으로부터의 세척된 습윤 케이크에 대해 대략 26시간째에 최대 값으로 나타났다. 배취 4의 세척된 습윤 케이크의 경우, 글루코즈 농도는 24시간 내지 47시간 사이에 계속 약간 증가하였다. 배취 4의 습윤 케이크에 대해 47시간째에 측정한 글루코즈 농도는 최대 값과 대략 동등한 것으로 추정된다. 배취 3 액화로부터 수득된 세척된 습윤 케이크를 반응시킴으로써(알파-아밀라제 및 글루코아밀라제의 존재하에서) 도달한 글루코즈의 최대 수준은 8.33g/L이었다. 비교 시, 배취 4 액화로부터 수득된 세척된 습윤 케이크를 반응시켜(알파-아밀라제 및 글루코아밀라제의 존재하에서) 도달된 글루코즈의 최대 수준은 4.92g/L이었다.Glucose concentration increased with time and peaked at approximately 26 hours for the washed wet cake from
액화된 매쉬(액화 동안 가수분해되지 않았음) 속의 용해되지 않은 고체 속에 존재한 잔류하는 가수분해되지 않은 전분의 수준은 매쉬의 상응하는 배취로부터 수득된 세척된 습윤 케이크를 "가수분해"하여(과량의 알파-아밀라제 및 글루코아밀라제의 존재하에서) 수득된 글루코즈 데이터를 기준으로 계산하였다.The level of residual unhydrolyzed starch present in the undissolved solids in the liquefied mesh (which was not hydrolyzed during liquefaction) "hydrolyzes" the washed wet cake obtained from the corresponding batches of the mash In the presence of alpha-amylase and glucoamylase).
· 액화 배취 3: 고체 속의 잔류하는 가수분해되지 않은 전분은 액화에 공급된 전체 전분의 3.8%에 상응한다. 이는, 옥수수 속의 전분의 3.8%가 배취 3 액화 조건 동안에 가수분해되지 않았음을 내포한다. 액화 배취 3 동안에 중간 고온("쿠킹") 단계는 일어나지 않았다.Liquefied Batch 3: The remaining unhydrolyzed starch in the solid corresponds to 3.8% of the total starch fed to the liquefaction. This implies that 3.8% of the starch in the corn was not hydrolyzed during
· 액화 배취 4: 고체 속의 잔류하는 가수분해되지 않은 전분은 액화에 공급된 옥수수 속의 총 전분의 2.2%에 상응한다. 이는, 옥수수 속의 전분의 2.2%가 배취 4 액화 조건 동안 가수분해되지 않았음을 내포한다. 고온("쿠킹") 단계는 액화 배취 4 동안 발생하였다.Liquefied Batch 4: The remaining unhydrolyzed starch in the solid corresponds to 2.2% of the total starch in the corn fed to the liquefaction. This implies that 2.2% of the corn starch was not hydrolyzed during
당해 실시예는, 액화 동안 일부 시기에 고온 "쿠킹" 단계의 추가가 보다 높은 전분 전환을 생성할 수 있었음을 입증한다. 이는 액화된 옥수수 매쉬 속의 용해되지 않은 고체에 잔존하는 잔류하는 가수분해된 전분을 거의 생성하지 않을 것이며 용해되지 않은 고체가 액화 전에 매쉬로부터 제거되는 공정에서 전분 손실을 거의 초래하지 않을 것이다.This example demonstrates that the addition of the high temperature "cooking" step at some time during liquefaction could produce higher starch conversion. This will produce very little residual hydrolyzed starch remaining in the undissolved solids in the liquefied corn mash and will cause little starch loss in the process where undissolved solids are removed from the mesh before liquefaction.
실시예Example 11 및 12의 요약 및 비교 Summary and comparison of 11 and 12
액화 조건은 옥수수 고체 속의 전분의 가용성(액화된) 전분으로의 전환에 영향을 미칠 수 있다. 분쇄된 옥수수 속의 전분의 가용성 전분으로의 전환에 영향을 미칠 수 있는 가능한 액화 조건은 온도, 효소(알파-아밀라제) 부하이며, +/- 고온("쿠킹") 단계는 액화 동안 일부 시간에 발생한다. 실시예 11 및 12는, 액화 동안 일부 시간에 고온("쿠킹") 단계의 시행이 옥수수 고체 속의 전분의 가용성(액화된) 전분으로의 보다 높은 전환을 일으킬 수 있음을 입증하였다. 실시예 11 및 12에 기술된 액화 시 고온 단계는 액화 개시 후 일부 시점에서 액화 온도를 상승시킨 다음, 일부 기간 동안 보다 높은 고온에서 유지시킨 후, 당해 온도를 원래의 값으로 다시 강하시켜 액화를 완료함을 포함하였다.Liquefaction conditions can affect the conversion of starch in corn solids to soluble (liquefied) starch. Possible liquefaction conditions that can affect the conversion of starch in ground corn to soluble starch are temperature, enzyme (alpha-amylase) load, and +/- high temperature ("cooking") step occurs at some time during liquefaction . Examples 11 and 12 demonstrate that the implementation of the high temperature ("cooking") step at some time during liquefaction can result in higher conversion of the starch in corn solids into soluble (liquefied) starch. The liquefaction high temperature steps described in Examples 11 and 12 raise the liquefaction temperature at some point after the start of liquefaction and then maintain it at a higher temperature for some period and then drop the temperature back to its original value to complete liquefaction .
실시예 11에서 비교한 액화 반응은 실시예 12에서 비교한 반응보다 상이한 효소 로딩에서 실시하였다. 당해 실시예는, 전분 전환 시 2개의 주요 액화 조건의 효과를 입증한다: (1) 효소 부하, 및 (2) +/- 고온 단계는 액화 동안 일부 시간에 적용된다.The liquefaction reactions compared in Example 11 were performed at different enzyme loading than the reactions compared in Example 12. [ This example demonstrates the effect of two major liquefaction conditions on starch conversion: (1) enzyme load, and (2) high temperature step applied at some time during liquefaction.
실시예 11 및 12에 기술된 액화된 옥수수 매쉬의 4개 배취를 제조하는데 사용된 조건은 하기 및 표 9에 요약한다.The conditions used to prepare the four batches of the liquefied corn mash described in Examples 11 and 12 are summarized below and in Table 9.
모든 배취에 대해 일반적인 조건:General conditions for all batches:
· 액화 온도 - 85℃· Liquefaction temperature - 85 ℃
· 액화 온도에서 총 시간 - 대략 2시간· Total time at liquefaction temperature - approximately 2 hours
· 옥수수를 분쇄하는데 사용된 체 크기 - 1 mmSieve size used to crush corn - 1 mm
· pH - 5.8PH - 5.8
· 무수 옥수수 부하 - 26%· Anhydrous corn load - 26%
· 알파-아밀라제 - Liquozyme® SC DS(제조원: 노쓰캐롤라이나주 프랭클린 소재의 Nozymes).· Alpha-amylase - Liquozyme ® SC DS (manufactured by North Carolina Franklin Nozymes of material).
[표 9][Table 9]
배취 2 및 4에 대한 온도 프로파일은 다음과 같다(모든 값은 근사치이다): 85℃에서 30분 동안, 30분 동안 고온 단계, 85℃에서 90분. 초기 85℃ 기간 전에 효소의 1/2을 가하고, 반을 최종의 85℃ 기간 동안 고온 단계 후에 가하였다.The temperature profiles for
도 17은, 효소 부하 및 +/- 고온 단계의 효과가 전분 전환에 있어서 액화 동안 일부 시기에 적용되었음을 나타낸다. 고체 속의 잔류하는 가수분해되지 않은 전분의 수준은 목적한 액화 조건 동안에 가수분해되지 않은 전분이다. 도 17은, 고체 속의 가수분해되지 않은 전분의 수준이 액화 동안 일부 시점에서 고온("쿠킹") 단계를 적용함으로써 거의 1/2로 감소되었음을 나타낸다. 이는 2개의 상이한 효소 부하에서 입증되었다. 도 17의 데이터는 또한, 2배의 효소 부하로 고온 단계가 액화 동안 적용되는 것에 상관없이 고체 속의 잔류하는 가수분해되지 않은 전분의 수준의 거의 1/2을 생성하였음을 나타낸다. 이들 실시예는, 보다 높은 효소(알파-아밀라제) 부하 및/또는 반응 동안 일부 시간에서 고온("쿠킹") 단계의 추가가 액화된 옥수수 매쉬 속에 존재하는 용해되지 않은 고체 속에 잔류하는 가수분해되지 않은 전분에서 유의적인 감소를 초래할 수 있었으며 용해되지 않은 고체가 액화 전에 매쉬로부터 제거되는 경우 공정에서 전분의 손실을 감소시킬 수 있음을 입증한다. 액화 후 고체 속의 어떠한 잔류 전분도, 고체가 발효 전에 제거되는 공정에서 발효 동안 가수분해되는 가능성을 가지지 않을 것이다.Figure 17 shows that the effects of enzyme loading and +/- high temperature steps were applied at some time during liquefaction in starch conversion. The level of residual unhydrolyzed starch in the solid is starch that is not hydrolyzed during the desired liquefaction conditions. Figure 17 shows that the level of unhydrolyzed starch in the solid was reduced to almost one-half by applying a high temperature ("cooking") step at some point during liquefaction. This was demonstrated at two different enzyme loads. The data in Figure 17 also shows that with a double enzyme load, the hot stage produced almost half of the level of residual unhydrolyzed starch in the solid, regardless of whether it was applied during liquefaction. These examples demonstrate that the addition of a higher enzyme (alpha-amylase) load and / or a high temperature ("cooking") step at some time during the reaction is carried out in the unhydrolyzed solid remaining in the undissolved solids present in the liquefied corn mash Could lead to a significant reduction in starch and demonstrate that the loss of starch in the process can be reduced if the undissolved solids are removed from the mesh prior to liquefaction. Any residual starch in the solid after liquefaction will not have the potential to be hydrolyzed during fermentation in a process where the solid is removed prior to fermentation.
실시예 13Example 13
85℃ 효소 분해 후 전분 및 After the enzyme decomposition at 85 ° C, 불용물의Insoluble 체 분리 Sieve separation
실시예 1에 기술된 방법에 따라 제조된 매쉬(301 그람)를, 조정이 필요한 경우 NaOH 용액의 점적을 사용하여 pH 5.8에서 유지시키고, 대략 0.064그람의 Liquozyme® 알파-아밀라제 효소(제조원: 노쓰캐롤라이나주 프랭클린톤 소재의 Novozyme)의 판매회사가 명시한 투여량으로 처리하고 85℃에서 5시간 동안 유지시켰다. 생성물을 냉장시켰다.Embodiment the mash (301 grams) prepared according to the method described in Example 1, the adjustment using the drip of the NaOH solution was maintained at pH 5.8, if necessary, Liquozyme ® of about 0.064 grams of alpha-amylase enzyme (manufactured by North Carolina Novozyme, Franklin, Tenn.) And maintained at 85 占 폚 for 5 hours. The product was refrigerated.
냉장된 생성물을 대략 50℃로 가온하고 48g을 100 메쉬 체를 포함하는 여과기 조립체에 붓고 -15 Hg 내지 -20 Hg에서 저장 진공원에 연결시켰다. 체 접시의 노출된 체 표면적은 44 cm2이었으며 Nalgene®(뉴욕주 로체스터 소재의 Thermo Fisher Scientific)이 제공한 플라스틱 여과기 하우징 내부에 밀봉하였다. 슬러리를 여과하여 체 위에 습윤 케이크 및 수용기 병 속에 40.4g의 황색의 혼탁한 여액을 형성시켰다. 습윤 케이크를 적소에서 물로 세척한 직후 진공원이 최종 세척된 케이크를 통해 임의의 유리된 수분을 계속 끌어내는 동안 중지시켰다. 필터의 밑면으로부터 점적이 중지된 때에 여과를 종료하였다. 추가로 28.5g의 세척 여액을 최종 단계의 여액을 적어도 색상 및 혼탁도를 나타내는 3단계에 걸쳐 수집하였다. 7.6g의 최종 습윤 케이크 덩어리를 실온에서 24시간에 걸쳐 2.1g으로 공기 건조시켰다. 2.1g은 열 램프를 사용한 건조 후 7.73%의 물을 함유하는 것으로 측정되었다. 당해 실험의 진공 여과는 25%의 총 무수 고체를 함유하는 습윤 케이크를 생성하였다.The refrigerated product was warmed to approximately 50 ° C and 48 g was poured into a filter assembly containing a 100 mesh sieve and connected to a storage vacuum source at -15 Hg to -20 Hg. The exposed surface area of the sieve plate was 44 cm 2 and was sealed inside a plastic filter housing provided by Nalgene ® (Thermo Fisher Scientific, Rochester, NY). The slurry was filtered to form 40.4 g of a yellow turbid filtrate in a wet cake and a receiver bottle on the sieve. Immediately after washing the wet cake with water in place, the vacuum source was paused while still drawing any liberated moisture through the final washed cake. Filtration was terminated when dripping from the bottom of the filter ceased. A further 28.5 g of wash filtrate was collected over the three stages of filtration of the final step, at least showing color and turbidity. 7.6 g of the final wet cake mass was air dried at 2.1 g over 24 hours at room temperature. 2.1 g was measured to contain 7.73% water after drying with a heat lamp. Vacuum filtration of this experiment produced a wet cake containing 25% total dry solids.
여액의 시료를 실온에서 올레일 알코올과 합하고 격렬하게 혼합하여 침전되도록 하였다. 계면은 대략 15분 내에 재저장되었으나 흐릿한 래그 층(hazy rag layer)이 남았다.Samples of the filtrate were combined with oleic alcohol at room temperature and mixed vigorously to precipitate. The interface was restored within approximately 15 minutes, but a hazy rag layer remained.
1g의 >99.99%(미량 금속 기준) 요오드, 2g의 ReagentPlus® 등급(>99%) 요오드화칼륨(제조원: 둘 다, 미주리주 세인트 루이스 소재의 Sigma-Aldrich), 및 17g의 1개 소적의 양의 하우스 탈이온수로 이루어진 루골 용액(Lugol's solution)(전분 지시인자)을 여액의 시료에 가하고, 물 속에 재-슬러리화된 케이크 고체 및 물의 대조군 시료를 건조시켰다. 여액은 암청색 또는 보라색으로 변하였으며, 고체 슬러리는 매우 진한 청색으로 변하였고 물은 담호박색으로 되었다. 호박색보다 어두운 어떠한 색도 12 단위보다 긴 올리고당의 존재를 나타낸다.1 g of 99.99% (trace metal based) iodine, 2 g of ReagentPlus ® grade (> 99%) potassium iodide (both from Sigma-Aldrich, St. Louis, Mo.), and one drop of 17 g Lugol's solution (starch indicator) consisting of house deionized water was added to the sample of the filtrate and the control sample of cake-solids and water re-slurried in water was dried. The filtrate turned dark blue or purple, the solid slurry changed to a very dark blue color and the water became pale amber. Any color darker than amber indicates the presence of oligosaccharides longer than 12 units.
당해 실험은, 대부분의 현탁된 고체가 100의 메쉬 체에서 중간 속도에서 위에 기술된 바와 같이 제조된 전분 용액으로부터 분리될 수 있으며 전분은 여과기 케이크 고체와 함께 잔류함을 나타내었다. 이는, 가수분해된 전분의 일부가 남아있는 케이크의 불완전한 세척을 나타낸다.This experiment showed that most of the suspended solids can be separated from the prepared starch solution at a medium speed in a 100 mesh sieve as described above and the starch remains with the filter cake solids. This represents an incomplete washing of the cake where some of the hydrolyzed starch remains.
당해 실험을 직경이 63mm인 100의 메쉬 체에서 156 그람의 매쉬로 반복하였다. 최대 온도는 102℃이었고, 효소는 Spezyme®이었으며 당해 슬러리는 85℃ 초과에서 3시간 동안 유지되었다. 체질 속도는 체 면적의 평방피트당 분당 0.004gal 이하로 측정되었다.This experiment was repeated with a mesh of 156 grams in a 100 mesh sieve having a diameter of 63 mm. The maximum temperature was 102 ° C, the enzyme was Spezyme ® , and the slurry was held at 85 ° C for 3 hours. The rate of sieving was measured to be less than 0.004 gals per minute per square foot of body area.
실시예Example 14 14
115℃ 효소 분해 후 전분 및 After enzyme degradation at < RTI ID = 0.0 > 115 C & 불용물의Insoluble 체 분리 Sieve separation
하우스 탈이온수(200g)를 개방된 파르 모델(Parr Model) 4635 1 리터들이 압력 용기(일리노이주 몰린 소재)내로 충전시키고 85℃의 온도로 가열하였다. 물을 자기 교반 바아로 진탕시켰다. 실시예 1에 기술된 바와 같이 제조된 무수 분쇄된 옥수수(90g)를 스푼 방식(spoon-wise)으로 가하였다. pH를 스톡 암모니아 수용액을 사용하여 5.2 내지 6.0 근처까지 상승시켰다. 대략 0.064 그람의 Liquozyme® 용액을 작은 눈금 피펫을 사용하여 가하였다. 압력 용기의 뚜껑을 밀봉하고 당해 용기를 하우스 질소를 사용하여 50 psig로 가압시켰다. 진탕시킨 혼합물을 6분 내에 110℃로 가열하고 총 20분 동안 106 내지 116℃ 사이에서 유지시켰다. 가열을 감소시키고, 압력을 완화시키고, 용기를 열었다. 추가로 0.064g의 Liquozyme®을 가하고 온도를 추가로 142분 동안 63 내지 75℃에서 유지시켰다.House deionized water (200 grams) was charged into an open Parr Model 4635 1 liter pressure vessel (Moline, Ill.) And heated to a temperature of 85 degrees Celsius. The water was shaken with a magnetic stir bar. Anhydrous ground corn (90 g) prepared as described in Example 1 was added spoon-wise. The pH was raised to around 5.2 to 6.0 using a stock aqueous ammonia solution. Approximately 0.064 grams of Liquozyme ® solution was added using a small graduated pipette. The lid of the pressure vessel was sealed and the vessel was pressurized to 50 psig using house nitrogen. The shaken mixture was heated to < RTI ID = 0.0 > 110 C < / RTI > within 6 minutes and maintained between 106 and 116 C for a total of 20 minutes. Reducing heating, relieving pressure, and opening the container. An additional 0.064 g of Liquozyme ® was added and the temperature was maintained at 63 to 75 ° C for an additional 142 minutes.
소량의 슬러리를 파르 용기(Parr vessel)로부터 취하고 100, 140, 및 170의 메쉬 체의 무더기를 통해 중력을 차단하였다. 슬라이드를 100 메쉬 체에서만 유지시켰다.A small amount of slurry was taken from a Parr vessel and gravity was blocked through a pile of 100, 140, and 170 mesh sieves. Slides were kept in 100 mesh sieve only.
슬러리 중 일부, 약 40%를, 75 밀리미터 직경의 100 및 200 메쉬 디쉬의 이중 스크린 조립체의 상단 위에서 가열하면서 이전시켰다. 일부 중력 여과를 수행하였다. -15 내지 -20 인치의 수은 사이의 진공을 여액 수용기로 끌고 꾸준한 여과를 확립하였다. 여액은 황색이었고 흐렸으나 안정하게 분산되었다. 케이크 표면을 5분 내에 노출시켰다. 케이크를 탈이온수의 분무로 2 내지 3분 동안 세척하고 여액의 혼탁도가 일정해질 때까지 수용기를 변화시키면서, 총 5회의 분무로 반복하였다. 체를 시험하여 모든 고체가 100 메쉬 체 위에 존재하였으며 200 메쉬에는 존재하지 않았다는 결론을 얻었다. 습윤 케이크 덩어리는, 두께가 5 mm이었다. 습윤 케이크 덩어리는 18.9g인 것으로 측정되었으며 합해진 여액 질량은 192g이었다.A portion, about 40%, of the slurry was transferred while heating on top of a double screen assembly of 100 and 200 mesh dishes of 75 mm diameter. Some gravity filtration was performed. Vacuum between -15 and -20 inches of mercury was drawn into the filtrate receiver and steady filtration was established. The filtrate was yellow and cloudy but stably dispersed. The cake surface was exposed within 5 minutes. The cake was washed with deionized water spray for 2 to 3 minutes and repeated with a total of 5 doses, varying the receiver until the turbidity of the filtrate was constant. The sieve was tested and all the solids were present on a 100 mesh sieve and not on 200 mesh. The wet cake mass had a thickness of 5 mm. The wet cake mass was measured to be 18.9 g and the combined filtrate mass was 192 g.
잔류하는 슬러리의 질량을 필터 조립체에 65℃에서 100 메쉬 체로 이전시키고 5 내지 10분 동안 여과하였다. 케이크를 탈이온수의 분무기로 3 내지 4분 동안 세척하고 여액의 혼탁도가 일정해질 때까지- 총 8회의 분무로 수용기 변화를 반복하였다. 진공을 더 이상의 점적이 여과기의 밑면으로부터 떨어지지 않는 것으로 관찰될 때까지 지속하였다. 습윤 케이크는 두께가 8 mm이었고 직경이 75mm이었으며 질량이 36.6g이었다. 합한 여액은 261g으로 칭량되었다.The mass of the remaining slurry was transferred to a filter assembly at 65 DEG C to a 100 mesh sieve and filtered for 5 to 10 minutes. The cake was washed with a deionized water sprayer for 3-4 minutes until the turbidity of the filtrate became constant - the changes in the receiver were repeated with a total of 8 doses. The vacuum was maintained until no further drips were observed to fall off the underside of the filter. The wet cake had a thickness of 8 mm, a diameter of 75 mm, and a mass of 36.6 g. The combined filtrate was weighed to 261 g.
3개의 바이알을 위에서 기술한 방법에 따라 전분에 대해 시험하였다. 1개 바이알은 물을 함유하였으며 다른 2개는 탈이온수 속에 슬러리화된 습윤 케이크의 시료를 함유하였다. 모든 바이알은 황-호박색으로 색상이 변하였다. 이는, 여과기 케이크가 세척되어 전분이 올리고당을 함유하지 않았음을 의미하는 것으로 해석되었다. 이들 고체를 연장된 액화 및 후속된 당화를 사용하여 이후에 엄격하게 분석하여 글루코즈 기준으로, 습윤 케이크가 원래의 옥수수 속에 존재한 총 전분의 0.2% 이하를 함유함을 확인하였다.Three vials were tested for starch according to the method described above. One vial contained water and the other two contained a sample of the wet cake slurried in deionized water. All vials changed color to yellow-amber. This was interpreted to mean that the filter cake was washed so that the starch did not contain oligosaccharides. These solids were then rigorously analyzed using extended liquefaction and subsequent saccharification to confirm that, on a glucose basis, the wet cake contained less than 0.2% of the total starch present in the original corn.
여액의 시료를 바이알 속에서 올레일 알코올과 합하고, 격렬하게 혼합하고 침전되도록 하였다. 투명한 오일 층을 신속하게 획득하고 계면은 래그 층이 거의 없는 것으로 잘 정의되었다. 당해 실시예는, 옥수수 매쉬가 ~110℃의 열수 조건으로 20분의 쿠킹 동안 가열되어 여과되고 세척되기 전에 85℃에서 2시간 초과 동안 추가로 액화되는 공정에서, 총 여액이 필수적으로 곡물에 공급된 모든 전분을 함유함을 나타낸다. 또한, 올레일 알코올과, 여액 속에 함유된 불순물 사이의 유의적인 간섭은 관찰되지 않았다.The sample of the filtrate was combined with the oleyl alcohol in the vial, mixed vigorously and allowed to settle. A clear oil layer was obtained quickly and the interface was well defined to have fewer lag layers. This example demonstrates that in a process in which the corn mash is further liquefied at 85 캜 for more than 2 hours before being heated and filtered during 20 minutes of cooking under hydrothermal conditions of ~ 110 캜, the total filtrate is essentially fed to the grain Indicating that it contains all of the starch. Further, no significant interference between the oleyl alcohol and the impurities contained in the filtrate was observed.
당해 실험을 직경이 75mm인 80 메쉬 체에서 247 그람의 매쉬를 사용하여 반복하였다. 최대 쿠킹 온도는 115℃이었고, 효소는 Liquozyme®이었으며 슬러리를 3시간 동안 85℃ 이상에서 유지시켰다. 체질 속도는 체 면적의 평방 피트당 분당 0.1gal 초과인 것으로 측정되고 결정되었다.This experiment was repeated using a mesh of 247 grams in an 80 mesh sieve having a diameter of 75 mm. The maximum cooking temperature was 115 ° C, the enzyme was Liquozyme ®, and the slurry was held at 85 ° C for 3 hours. The sieving rate was measured and determined to be greater than 0.1 gal per minute per square foot of body area.
실시예Example 15 15
본 실시예는 증류폐액으로부터의 고체의 제거 및 탈용매화제에 의한 추출로 고체로부터 지방산, 에스테르, 및 트리글리세라이드를 회수함을 나타낸다. 발효 동안에, 고체는 전체 증류폐액으로부터 분리되어 탈용매화기에 공급되며, 여기서 이들은 1.1톤/hr의 증기와 접촉된다. 전체 증류폐액 습윤 케이크(추출기 공급물), 용매, 추출기 미셀라, 및 추출기 배출 고체에 대한 유동 속도는 표 10에 나타낸다. 표의 값은 쇼트 톤(short ton)/hr이다.This example shows the recovery of fatty acids, esters, and triglycerides from solids by removal of the solid from the distillation waste liquid and extraction with the desolvating agent. During fermentation, the solids are separated from the total distillation waste liquid and fed to the desolvation unit, where they are contacted with 1.1 ton / hr of steam. The flow rates for the whole distilled waste liquid wet cake (extractor feed), solvent, extractor micellar, and extractor discharge solids are shown in Table 10. The value in the table is short ton / hr.
[표 10][Table 10]
탈용매화기를 빠져나오는 고체를 건조기에 공급한다. 탈용매화기를 빠져나오는 증기는 0.55 톤/hr의 헥산 및 1.102 톤/hr의 물을 함유한다. 당해 스트림을 농축시켜 데칸터에 공급한다. 데칸터로부터 빠져나오는 물이 풍부한 상은 약 360 ppm의 헥산을 함유한다. 당해 스트림을, 헥산이 물이 풍부한 스트림으로부터 제거되는 증류 컬럼에 공급한다. 증류 컬럼의 상단에서 빠져나오는 헥산이 풍부한 스트림을 농축시켜 데칸터에 공급한다. 데칸터에서 빠져나오는 유기물이 풍부한 스트림은 증류 컬럼에 공급한다. 스트림(11.02 톤/hr)을 증류 컬럼의 하부에 공급한다. 당해 컬럼의 상부 및 하부 생성물의 조성은 표 11에 나타낸다. 표 값은 톤/hr이다.The solids exiting the desolvator are fed to the dryer. The vapors exiting the desolvator contain 0.55 ton / hr of hexane and 1.102 ton / hr of water. The stream is concentrated and fed to a decanter. The water-rich phase leaving the decanter contains about 360 ppm of hexane. The stream is fed to a distillation column where the hexane is removed from the water-rich stream. The hexane-enriched stream exiting the top of the distillation column is concentrated and fed to the decanter. The organic rich stream exiting the decanter feeds to the distillation column. The stream (11.02 ton / hr) is fed to the bottom of the distillation column. The composition of the upper and lower products of the column is shown in Table 11. The table value is ton / hr.
[표 11][Table 11]
실시예Example 16 16
부산물 회수By-product recovery
본 실시예는 매쉬로부터 부산물의 회수를 나타낸다. 옥수수 오일은 3-상 원심분리기(Flottweg Tricanter® Z23-4 보울 직경, 230 mm, 길이 대 직경의 비 4:1)를 당해 조건에 사용한 것을 제외하고는 실시예 6에 기술된 조건 하에 매쉬로부터 분리하였다:This example shows the recovery of by-products from the mesh. The corn oil was separated from the mesh under the conditions described in Example 6, except that a 3-phase centrifuge (Flottweg Tricanter ® Z23-4 bowl diameter, 230 mm, length to diameter ratio of 4: 1) :
· 보울 속도: 5000 rpm· Bowl speed: 5000 rpm
· 차등 속도: 10 rpm· Differential speed: 10 rpm
· 공급 속도: 3gpm· Feeding speed: 3gpm
· 상 분리기 디스크: 138 mm· Phase separator disk: 138 mm
· 임펠러 설정: 144 mm.· Impeller setting: 144 mm.
분리된 옥수수 오일은 기체 크로마토그래피 및 박층 크로마토그래피로 측정된 것으로서 81%의 트리글리세라이드, 6%의 유리 지방산, 4%의 디글리세라이드, 및 5%의 총 인지질 및 모노글리세라이드를 갖는다(참조: 예를 들면, 미국 특허원 공보 제2012/0164302호).Separated corn oil has 81% triglyceride, 6% free fatty acid, 4% diglyceride, and 5% total phospholipid and monoglyceride as measured by gas chromatography and thin layer chromatography (see, For example, U.S. Patent Application Publication No. 2012/0164302).
위에서 기술된 조건하에 매쉬로부터 분리된 고체는, 건조시 중량 손실에 의해 측정된 것으로서 수분 함량이 58%이었고 기체 크로마토그래피에 의해 측정된 1.2%의 트리글리세라이드 및 0.27%의 유리 지방산을 가졌다(참조: 예를 들면, 미국 특허원 공보 제2012/0164302호).The solids separated from the mash under the conditions described above had a moisture content of 58% as measured by weight loss on drying and had 1.2% triglyceride and 0.27% free fatty acids as measured by gas chromatography (cf. < RTI ID = For example, U.S. Patent Application Publication No. 2012/0164302).
표 14에서 전체 증류폐액으로부터 분리된 고체, 증발기 단계들 사이에 추출된 오일, 부산물 추출물 및 응축된 증류기 가용물(CDS)의 조성을 표 12에 나타낸 전체 증류폐액의 조성 및 표 13의 추정(3-상 원심분리기에서 분리)을 추정하여 계산하였다. 표 11의 값은 Aspen Plus® 모델(미국 매사츄세츠 벌링톤 소재의 Aspen Technology, Inc.)로부터 수득하였다. 당해 모델은, 옥수수 오일이 매쉬로부터 추출되지 않는 것으로 추정한다. 세포, 용해된 고체, 및 현탁된 고체의 무수 기준의 단백질 함량은 대략 각각 50%, 22%, 및 35.5%인 것으로 추정된다. 부산물 추출물의 조성은 무수 기준으로 70.7%의 지방산 및 29.3%의 지방산 이소부틸 에스테르인 것으로 추정된다.The composition of the solid separated from the total distillation waste liquid, the oil extracted between the evaporator stages, the by-product extract and the condensed distiller solubles (CDS) in Table 14 are shown in Table 12 and the estimated (three-phase Separated from the centrifuge). The values in Table 11 were obtained from an Aspen Plus ® model (Aspen Technology, Inc., Burlington, Mass.). The model assumes that the corn oil is not extracted from the mesh. The protein content on the anhydrous basis of cells, dissolved solids, and suspended solids is estimated to be approximately 50%, 22%, and 35.5%, respectively. The composition of the by-product extract is estimated to be 70.7% fatty acid and 29.3% fatty acid isobutyl ester on anhydrous basis.
[표 12][Table 12]
[표 13][Table 13]
[표 14][Table 14]
실시예Example 17 17
액화된 옥수수 Liquefied corn 매쉬로부터From mesh 옥수수 오일의 제거Removal of corn oil
본 실시예는 액화된 옥수수 매쉬로부터 옥수수 오일을 제거하기 위한 3-상 원심분리기의 용도를 기술한다. 전체 옥수수 알맹이는 전형적으로 약 3 내지 6중량%의 옥수수 오일을 함유하며 이의 대부분은 배아 속에 남아 있다. 옥수수 오일을 건조 분쇄 및 액화 동안에 배아로부터 방출시킨다. 후속적으로, 옥수수 매쉬는 유리 옥수수 오일을 함유한다.This example describes the use of a three-phase centrifuge to remove corn oil from a liquefied corn mash. The whole corn grain typically contains about 3 to 6 wt% corn oil, most of which remain in the embryo. The corn oil is released from the embryo during dry milling and liquefaction. Subsequently, the corn mash contains glass corn oil.
액화된 옥수수 매쉬를 예를 들면, 무수-분쇄 옥수수에서 에탄올로의 공정에서 사용된 것으로서 표준 연속 액화 공정을 사용하여 생성시켰다. 분쇄된 옥수수는 4.16중량%의 옥수수 오일(무수 옥수수 기준)을 함유하였으며 수분 함량이 14.7중량%이었다. 분쇄된 옥수수 및 물을 슬러리 탱크에 각각 10.2 lbm/min 및 17.0 lbm/min에서 공급하여 32중량%의 무수 옥수수 부하를 수득하였다. 알파-아밀라제를 무수 옥수수 기준으로 약 0.025중량%의 효소 부하에 상응하는 속도로 슬러리 탱크에 공급하였다. 슬러리 및 액화 탱크는 둘 다 85℃ 및 pH 5.8에서 실시하였다. 85℃에서 전체 체류 시간은 약 2 시간이었다. 매쉬는 약 3gpm의 속도에서 생성되었으며 습윤 기준으로 약 1.3중량%의 옥수수 오일을 함유하였다. 유리 오일 및 일부로서 존재하는 당해 오일 중 일부는 용해되지 않은 고체였다. 이는 대략 2.0 lbm의 옥수수 오일/옥수수의 부쉘(bushel)이 되는 매쉬의 전체 옥수수 오일 함량에 상응한다. 매쉬 속의 총 고체(TS)는 32중량%이었고 전체의 현탁된 고체(TSS)는 7.7중량%이었다.Liquefied corn mashes were produced using, for example, a standard continuous liquefaction process as used in the process from anhydrous-ground corn to ethanol. The ground corn contained 4.16 wt% corn oil (based on anhydrous corn) and had a water content of 14.7 wt%. Crushed corn and water were fed into the slurry tanks at 10.2 lbm / min and 17.0 lbm / min, respectively, to yield a 32% by weight anhydrous maize load. The alpha-amylase was fed to the slurry tank at a rate corresponding to an enzyme load of about 0.025% by weight on anhydrous corn. The slurry and liquefaction tank were both run at 85 [deg.] C and pH 5.8. The total residence time at 85 캜 was about 2 hours. The mesh was produced at a rate of about 3 gpm and contained about 1.3 wt.% Corn oil on a wet basis. Some of the oil present as a glass oil and as a part were undissolved solids. This corresponds to the total corn oil content of the mesh being approximately 2.0 lbm of corn oil / corn bushel. The total solids (TS) in the mesh was 32 wt% and the total suspended solids (TSS) was 7.7 wt%.
액화된 옥수수 매쉬를 3-상 원심분리기(Model Z23-4/441, Flottweg Tricanter®, 독일 빌시빌부르크 소재의 Flottweg AG)에 약 3gpm의 속도로 공급하였다. 공급물 온도는 약 80℃이었다. 매쉬를 3개의 스트림: (1) 옥수수 오일, (2) 올리고당(액화된 전분)의 수용액, 및 (3) 습윤 케이크로 분리하였다. Tricanter®의 작동 조건은 다음과 같았다:The liquefied corn mash was supplied with approximately 3gpm speed three-phase centrifuge (Model Z23-4 / 441, Flottweg Tricanter ®, Flottweg AG Germany Freiburg Bill Nashville materials). The feed temperature was about 80 ° C. The mesh was separated into three streams: (1) corn oil, (2) an aqueous solution of oligosaccharides (liquefied starch), and (3) wet cake. The operating conditions of Tricanter ® were as follows:
· 보울 속도: 5000 rpm· Bowl speed: 5000 rpm
· G-힘: 대략 4000g's· G-Power: about 4000g's
· 차등 속도: 10 rpm· Differential speed: 10 rpm
· 임펠러 설정: 대략 145· Impeller setting: approximately 145
· 상 분리기 디스크: 대략 138 mm.· Phase separator disk: approx. 138 mm.
표 15는 공급물 스트림, 및 Tricanter®로부터의 3개의 출구 스트림에 대해 측정된 데이터(유동 속도, 밀도, 고체 함량, 및 옥수수 오일 함량)을 요약한다.Table 15 summarizes the measured data (flow rate, density, solids content, and corn oil content) for the feed stream and the three outlet streams from Tricanter ® .
[표 15][Table 15]
Tricanter®에 의해 매쉬로부터 제거된 옥수수 오일은 매쉬 공급물 속에서 39%의 전체 옥수수 오일로 계수되었다. 옥수수 오일 제거 속도는 약 0.8 lbm/부쉘의 옥수수와 동등하다. 액화된 옥수수 매쉬로부터 분리되어 회수된 옥수수 오일은 약 85중량%의 글리세라이드를 함유하였다.The corn oil removed from the mesh by Tricanter ® was counted in 39% total corn oil in the mash feed. The removal rate of corn oil is about 0.8 lbm / equivalent to the bovine corn. The corn oil recovered from the liquefied corn mash contained about 85% by weight of glyceride.
약 0.8lb 옥수수 오일/부쉘의 옥수수가 제거된 공정에서, 매쉬 유동 속도는 분당 3.9gal까지 감소할 수 있다:In a process in which about 0.8 lb of corn oil / bovine corn was removed, the mesh flow rate could be reduced to 3.9 gal / min:
발효에 대한 전체 매쉬 유동이 약 700gpm인 생산 공장에서, 제거된 오일은 전체 매쉬 유동의 약 0.55%를 제조할 수 있다. 생산 공장이 처리량을 비례적으로 상승시켜 추가의 용적을 이용한다고 추정하면, 연간 생산량은 0.55%까지 증가할 수 있으며, 이는 56 MMGPY 공장이 추가로 310,000gal의 에탄올을 생성할 수 있음을 의미한다.In a production plant with a total mesh flow of about 700 gpm for fermentation, the removed oil can produce about 0.55% of the total mesh flow. Assuming the production plant increases the throughput proportionally and uses additional volumes, the annual production could increase to 0.55%, which means that the 56 MMGPY plant could generate an additional 310,000 gals of ethanol.
실시예Example 18 18
액화된 옥수수 Liquefied corn 매쉬로부터From mesh 옥수수 오일의 제거 - 공급 속도 조정 Removal of corn oil - adjustment of feed rate
본 실시에에서, 액화된 옥수수 매쉬를 3-상 원심분리기에 1gpm의 공급 속도로 공급하였다. 액화된 옥수수 매쉬를 예를 들면, 무수-분쇄 옥수수에서 에탄올로의 공정에서 사용된 표준 연속 액화 공정을 사용하여 발생시켰다. 분쇄된 옥수수는 4.16중량%의 옥수수 오일(무수 옥수수 기준)을 함유하였고 수분 함량은 14.7중량%이었다. 분쇄된 옥수수 및 물을 슬러리 탱크에 각각 8.2 lbm/min 및 19.0 lbm/min으로 공급하여 대략 26중량%의 무수 옥수수 부하를 수득하였다. 알파-아밀라제를 슬러리 탱크에 50g/hr의 속도로 공급하였으며, 이는 무수 옥수수 기준으로 약 0.026중량%의 효소 부하에 상응하였다. 슬러리 및 액화 탱크 둘 다를 85℃ 및 pH 5.8에서 작동하였다. 어떠한 제트 쿠커도 사용하지 않았다. 85℃에서 전체 체류 시간은 약 2시간이었다. 매쉬는 약 3gpm의 속도로 생성되었으며 원심분리 시험을 위해 1500gal의 탱크 내로 쌓았다. 당해 매쉬는 습윤 기준으로 약 1.1중량%의 옥수수 오일을 함유하였다. 유리 오일 및 일부로서 존재하는 당해 오일의 일부는 용해되지 않은 고체 속에 존재하였다. 이는 대략 2.0 lbm의 옥수수 오일/옥수수의 부쉘인 매쉬의 전체 옥수수 오일 함량에 상응한다. 매쉬 속의 TS는 25.6중량%이었고 TSS는 5.3중량%이었다.In this embodiment, the liquefied corn mash was fed to a three-phase centrifuge at a feed rate of 1 gpm. Liquefied corn mashes were generated using, for example, a standard continuous liquefaction process used in a process from anhydrous-ground corn to ethanol. The ground corn contained 4.16 wt% corn oil (based on anhydrous corn) and the moisture content was 14.7 wt%. The ground corn and water were fed into the slurry tanks at 8.2 lbm / min and 19.0 lbm / min, respectively, to yield a dry corn load of approximately 26% by weight. Alpha-amylase was fed to the slurry tank at a rate of 50 g / hr, corresponding to an enzyme load of about 0.026% by weight on a dry corn basis. Both the slurry and the liquefaction tank were operated at 85 [deg.] C and pH 5.8. No jet cookers were used. The total residence time at 85 캜 was about 2 hours. The mesh was produced at a rate of about 3 gpm and packed into a 1500 gal tank for centrifugation. The mesh contained about 1.1% by weight corn oil on a wet basis. The glass oil and some of the oil present as part were present in undissolved solids. This corresponds to the total corn oil content of the mesh, which is approximately 2.0 lbm of corn oil / maize cores. The TS in the mesh was 25.6 wt% and the TSS was 5.3 wt%.
액화된 옥수수 매쉬를 공급물 탱크에 3-상 원심분리기(모델 Z23-3, Flottweg Tricanter®, 제조원: 독일 빌시비부르크 소재의 Flottweg AG)로 약 1gpm의 속도로 공급하였다. 공급물 온도는 약 80℃였다. 매쉬를 3개의 스트림으로 분리하였다: (1) 옥수수 오일, (2) 올리고당의 수용액(액화된 전분), 및 (3) 습윤 케이크. Tricanter®의 작동 조건은 다음과 같았다:3-phase centrifuges for liquefied corn mash to feed tank: was supplied with a velocity of about 1gpm (model Z23-3, Flottweg Tricanter ®, manufactured by Flottweg AG Germany Freiburg Bill fertilizing material). The feed temperature was about 80 ° C. The mesh was separated into three streams: (1) corn oil, (2) an aqueous solution of oligosaccharides (liquefied starch), and (3) wet cake. The operating conditions of Tricanter ® were as follows:
· 보울 속도: 5000 rpm· Bowl speed: 5000 rpm
· G-힘: 대략 4000g's· G-Power: about 4000g's
· 차등 속도: 12 rpm· Differential speed: 12 rpm
· 임펠러 설정: 대략 156· Impeller setting: Approximately 156
· 상 분리기 디스크: 대략 140 mm.· Phase separator disk: approx. 140 mm.
표 16은 공급물 스트림, 및 Tricanter®로부터의 3개의 출구 스트림에 대해 측정된 데이터(유동 속도, 밀도, 고체 함량, 및 옥수수 오일 함량)을 요약한다. 옥수수 오일 매쉬 균형의 품질은 102%였고, 총 고체 매쉬 균형의 품질은 105%였다.Table 16 summarizes the measured data (flow rate, density, solids content, and corn oil content) for the feed stream and the three outlet streams from Tricanter ® . The quality of the corn oil mesh balance was 102% and the quality of the total solid mesh balance was 105%.
[표 16][Table 16]
Tricanter®에 의해 매쉬로부터 제거된 옥수수 오일은 매쉬 공급물 속에서 17%의 전체 옥수수 오일로 계산되었다. 이러한 옥수수 오일 제거 속도는 약 0.34 lbm/부쉘의 옥수수와 동등하다. 액화된 옥수수 매쉬로부터 분리되어 회수한 옥수수 오일은 약 81.4중량%의 글리세라이드 및 8.3중량%의 유리 지방산을 함유하였다.The corn oil removed from the mesh by Tricanter ® was calculated as 17% total corn oil in the mash feed. This corn oil removal rate is equivalent to about 0.34 lbm / bushel of maize. The corn oil recovered from the liquefied corn mash contained about 81.4 wt% glyceride and 8.3 wt% free fatty acid.
실시예Example 19 19
액화된 옥수수 Liquefied corn 매쉬로부터From mesh 옥수수 오일의 제거 - 공급 속도 조정 Removal of corn oil - adjustment of feed rate
본 실시예에서, 액화된 옥수수 매쉬를 3-상 원심분리기에 10.1gpm의 공급 속도에서 공급하였다. 액화된 옥수수 매쉬를 예를 들면, 무수-분쇄 옥수수에서 에탄올로의 공정에서 사용된 것으로서 표준 연속 액화 공정을 사용하여 발생시켰다. 분쇄된 옥수수는 4.16중량%의 옥수수 오일(무수 옥수수 기준)을 함유하였고 수분 함량은 14.7중량%이었다. 분쇄된 옥수수 및 물을 슬러리 탱크에 각각 8.2 lbm/min 및 19.0 lbm/min으로 공급하여 대략 26중량%의 무수 옥수수 부하를 수득하였다. 알파-아밀라제를 슬러리 탱크에 50g/hr의 속도로 공급하며, 이는 무수 옥수수 기준으로 약 0.026중량%의 효소 부하에 상응하였다. 슬러리 및 액화 탱크 둘 다를 85℃ 및 pH 5.8에서 작동하였다. 제트 쿠커는 사용하지 않았다. 85℃에서 전체 체류 시간은 약 2시간이었다. 매쉬는 약 3gpm의 속도로 생성되었으며 원심분리 시험을 위해 1500gal의 탱크 내로 쌓았다. 당해 매쉬는 습윤 기준으로 약 1.1중량%의 옥수수 오일을 함유하였다. 유리 오일 및 일부로서 존재하는 당해 오일의 일부는 용해되지 않은 고체 속에 존재하였다. 이는 대략 2.0 lbm의 옥수수 오일/옥수수의 부쉘인 매쉬의 전체 옥수수 오일 함량에 상응한다. 매쉬 속의 TS는 26.2중량%이었고 TSS는 6.7중량%이었다.In this example, the liquefied corn mash was fed to a three-phase centrifuge at a feed rate of 10.1 gpm. Liquefied corn mashes, for example, were generated using a standard continuous liquefaction process as used in the process from anhydrous-ground corn to ethanol. The ground corn contained 4.16 wt% corn oil (based on anhydrous corn) and the moisture content was 14.7 wt%. The ground corn and water were fed into the slurry tanks at 8.2 lbm / min and 19.0 lbm / min, respectively, to yield a dry corn load of approximately 26% by weight. The alpha-amylase was fed to the slurry tank at a rate of 50 g / hr, corresponding to an enzyme load of about 0.026% by weight on a dry corn basis. Both the slurry and the liquefaction tank were operated at 85 [deg.] C and pH 5.8. No jet cookers were used. The total residence time at 85 캜 was about 2 hours. The mesh was produced at a rate of about 3 gpm and packed into a 1500 gal tank for centrifugation. The mesh contained about 1.1% by weight corn oil on a wet basis. The glass oil and some of the oil present as part were present in undissolved solids. This corresponds to the total corn oil content of the mesh, which is approximately 2.0 lbm of corn oil / maize cores. The TS in the mesh was 26.2 wt% and the TSS was 6.7 wt%.
액화된 옥수수 매쉬를 공급물 탱크로부터 3-상 원심분리기(모델 Z23-4/441, Flottweg Tricanter® 독일 빌시비부르크 소재의 Flottweg AG)로 약 10.1gpm의 속도로 공급하였다. 공급물 온도는 약 80℃이었다. 매쉬를 3개의 스트림으로 분리하였다: (1) 옥수수 오일, (2) 올리고당의 수용액(액화된 전분), 및 (3) 습윤 케이크. Tricanter®의 작동 조건은 다음과 같았다:The liquefied corn mash was fed from the feed tank to a 3-phase centrifuge (Model Z23-4 / 441, Flottweg Tricanter ® Flottweg AG, Wiltshire, Germany) at a rate of about 10.1 gpm. The feed temperature was about 80 ° C. The mesh was separated into three streams: (1) corn oil, (2) an aqueous solution of oligosaccharides (liquefied starch), and (3) wet cake. The operating conditions of Tricanter ® were as follows:
· 보울 속도: 5000 rpm· Bowl speed: 5000 rpm
· G-힘: 대략 4000g's· G-Power: about 4000g's
· 차등 속도: 20 rpm· Differential speed: 20 rpm
· 임펠러 설정: 대략 148· Impeller setting: approx. 148
· 상 분리기 디스크: 대략 138 mm.· Phase separator disk: approx. 138 mm.
표 17은 공급물 스트림, 및 Tricanter®로부터의 3개의 출구 스트림에 대해 측정된 데이터(유동 속도, 밀도, 고체 함량, 및 옥수수 오일 함량)을 요약한다. 옥수수 오일 덩어리 균형의 품질은 95%였다.Table 17 summarizes the measured data (flow rate, density, solids content, and corn oil content) for the feed stream and the three outlet streams from Tricanter ® . The quality of the lump balance of corn oil was 95%.
[표 17][Table 17]
Tricanter®에 의해 매쉬로부터 제거된 옥수수 오일은 매쉬 공급물 속에서 18%의 전체 옥수수 오일로 계산되었다. 이러한 옥수수 오일 제거 속도는 약 0.36 lbm/부쉘의 옥수수와 동등하였다. 액화된 옥수수 매쉬로부터 분리되어 회수된 옥수수 오일은 약 81.4중량%의 글리세라이드 및 8.3중량%의 유리 지방산을 함유하였다.The corn oil removed from the mesh by Tricanter ® was calculated as 18% whole corn oil in the mesh feed. This corn oil removal rate was equivalent to about 0.36 lbm / bushel of maize. The corn oil recovered from the liquefied corn mash contained about 81.4 wt% glyceride and 8.3 wt% free fatty acid.
실시예Example 20 20
매쉬로부터 옥수수 오일의 회수에 대한 액화된 옥수수 매쉬 pH의 효과Effect of liquefied corn mash pH on recovery of maize oil from mash
액화된 옥수수 매쉬를 무수-분쇄 옥수수 대 에탄올 공정에서 전형적으로 사용된 표준 연속 액화 공정을 사용하여 발생시켰다. 분쇄된 옥수수는 4.6중량%의 옥수수 오일(무수 옥수수 기준)을 함유하였으며 수분 함량은 12.5중량%이었다. 분쇄된 옥수수 및 물을 슬러리 탱크에 25.9중량%의 무수 옥수수 부하로 3gpm에서 옥수수 매쉬를 생성하는 속도로 슬러리 탱크에 공급하였다. 슬러리 탱크를 85℃에서 30분의 체류 시간 동안 작동시켰다. 이후에, 슬러리를 생 스트림을 사용하여 제트 쿠커 속에서 105℃로 가열하고 당해 온도에서 약 30분 동안 유지시켰다. 유지된 튜브를 배출시킨 후, 슬러리를 85℃에서 90분의 체류 시간으로 작동하는 액화 탱크내로 공급하였다. 알파-아밀라제(Spezyme®, 제조원: 캘리포니아주 팔로 알토 소재의 ALPHA Genencor®)를 무수 옥수수 기준으로 0.04중량%의 효소의 전체적인 효소 부하에 상응한 속도에서 공정에 연속해서 공급하였다. 40 퍼센트(40%)의 총 효소를 슬러리 탱크에 가하고, 60%를 액화 탱크에 가하였다. 슬러리 및 액화 탱크 둘 다를 pH 5.8에서 실시하였다. 매쉬를 약 3gpm의 속도로 생성시키고 원심분리기 시험을 위해 1500gal의 탱크에 쌓았다. 액화된 옥수 매쉬는 습윤 기준으로 약 1.12중량%의 옥수수 오일을 함유하였다. 이는 대략 2.2 lbm의 옥수수 오일/부쉘의 옥수수인 매쉬의 총 옥수수 오일 함량에 상응한다. 당해 오일의 일부는 유리 오일로 존재하였으며; 일부는 여전히 용해되지 않은 고체 내에 존재하였다. 매쉬 속에서 옥수수 오일 속의 글리세라이드 대 유리 지방산의 비는 약 7.6 대 1이었다. 매쉬 속의 총 고체(TS)는 25.9중량%이었으며, 전체 현탁된 고체(TSS)는 4.7중량%이었다. 최종 매쉬의 DE(덱스트로즈 등가물) 및 pH는 각각 15.9 및 5.75이었다. 매쉬의 밀도는 1.08g/mL이었다.The liquefied corn mash was generated using a standard continuous liquefaction process typically used in a dry-milled corn versus ethanol process. The ground corn contained 4.6 wt% corn oil (based on anhydrous corn) and the moisture content was 12.5 wt%. The ground corn and water were fed to the slurry tank at a rate of 3 gpm at a rate of producing corn mash with a 25.9 wt% dry maize load in the slurry tank. The slurry tank was operated at 85 캜 for a residence time of 30 minutes. Subsequently, the slurry was heated to 105 DEG C in a jet cooker using the raw stream and held at that temperature for about 30 minutes. After draining the retained tube, the slurry was fed into a liquefaction tank operating at 85 DEG C with a residence time of 90 minutes. Alpha-amylase: it was fed continuously to the process in a whole corresponding to the enzyme of the enzyme load of the speed (Spezyme ®, manufactured by ALPHA Genencor Palo Alto ® materials) and 0.04% by weight, based on dry corn. 40% (40%) of total enzyme was added to the slurry tank and 60% was added to the liquefaction tank. Both the slurry and the liquefaction tank were run at pH 5.8. The mesh was produced at a rate of approximately 3 gpm and packed in a 1500 gal tank for centrifuge testing. The liquefied agate mesh contained about 1.12 wt% corn oil on a wet basis. This corresponds to a total corn oil content of approximately 2.2 lbm corn oil / bushel corn mesh. Some of the oil was present as glass oil; Some were still in undissolved solids. The ratio of glyceride to free fatty acid in the corn oil in the mesh was about 7.6 to 1. The total solids (TS) in the mesh was 25.9 wt% and the total suspended solids (TSS) was 4.7 wt%. The DE (dextrose equivalent) and pH of the final mesh were 15.9 and 5.75, respectively. The density of the mesh was 1.08 g / mL.
액화된 매쉬를 3-상 원심분리기(Model Z23-4/441, Flottweg Tricanter®, 제조원: 독일 빌시빌부르크 소재의 Flottweg AG)를 사용하여 3개의 상이한 공급물 유동 속도에서 분리하였다: 1.24gal/min, 5.1gal/min 및 10gal/min. 공급물 온도는 약 80℃이었다. 매쉬를 3개의 스트림으로 분리하였다: (1) 옥수수 오일, (2) 올리고당(액화된 전분)의 수용액, 및 (3) 습윤 케이크. 보울 속도는 약 5000rpm(대략 4000g's)에서 일정하게 유지시켰다. 표 18은 매쉬 공급 속도의 함수로서 옥수수 오일 회수를 5.8의 매쉬 pH에 대한 Tricanter®와 비교한다. 표 18에 나타낸 데이터는, pH = 5.8에서 옥수수 오일의 회수율에 있어서 Tricanter® 에 대한 공급물 속도의 효과가 있음을 나타낸다.A three-phase centrifugal separator the liquefied mash: using (Model Z23-4 / 441, Flottweg Tricanter ®, manufactured by Flottweg AG of Germany bill Nashville Freiburg material) were separated in three different feed flow rate: 1.24gal / min , 5.1gal / min and 10gal / min. The feed temperature was about 80 ° C. The mesh was separated into three streams: (1) corn oil, (2) an aqueous solution of oligosaccharide (liquefied starch), and (3) wet cake. Bowl speed was kept constant at about 5000 rpm (about 4000 g's). Table 18 compares corn oil recovery as a function of mash feed rate to Tricanter ® for a mesh pH of 5.8. The data presented in Table 18 indicate that there is an effect of the feed rate on Tricanter ® in the recovery of corn oil at pH = 5.8.
[표 18][Table 18]
옥수수 오일 회수는 매쉬 속에 함유된 총 오일(유리 오일 및 고체 속의 오일 둘 다)을 기반으로 한다. Tricanter®에 공급된 매쉬는 1.1 내지 1.2중량%의 옥수수 오일(유리 오일 및 고체 속의 오일 포함)을 함유하였다.Corn oil recovery is based on total oil (both glass oil and solid oil) contained in the mesh. The mesh supplied to Tricanter ® contained 1.1-1.2 wt% corn oil (including glass oil and oil in solid).
표 18의 데이터는, 옥수수 오일 회수 속도에 대한 매쉬 공급 속도의 효과가 있음을 나타낸다(시험한 조건에서). 표 19는 시험된 3개의 조건에 대해 수성 농축물 속의 오일 상, 오일 농축물 속의 수성 상, 및 오일 농축물 속의 고체의 양을 요약한다.The data in Table 18 indicate that there is an effect of the mash feed rate on the corn oil recovery rate (under the conditions tested). Table 19 summarizes the amount of solids in the oil phase in an aqueous concentrate, the aqueous phase in an oil concentrate, and the oil concentrate for the three conditions tested.
[표 19][Table 19]
*LuMiSizer®(제조원: 독일 베를린 소재의 L.U.M. GmbH)를 사용하여 측정함. * Measured using LuMiSizer ® (manufactured by LUM GmbH, Berlin, Germany).
표 19의 데이터는, 회수된 옥수수 오일이 수성 상 및 고체를 거의 함유하지 않으므로 매우 투명함을 나타낸다. 액화된 옥수수 매쉬로부터 분리되어 회수된 옥수수 오일은 약 85.1중량%의 글리세라이드 및 8.0중량%의 유리 지방선을 함유하였다. 균형은 고체, 수성 상, 및 다른 추출가능한 물질(예를 들면, 인지질, 스테롤 등)이었다.The data in Table 19 indicate that the recovered corn oil has very little transparency because it contains little aqueous phases and solids. The corn oil recovered from the liquefied corn mash contained about 85.1 wt% glyceride and 8.0 wt% free fat. Balances were solid, aqueous phase, and other extractable materials (e.g., phospholipids, sterols, etc.).
Tricanter® 공급물 탱크 속의 잔류하는 액화된 옥수수 매쉬의 pH를 약 3으로 낮췄다. 산성 매쉬를 3-상 원심분리기(모델 Z23-4/441, Flottweg Tricanter®, 제조원: 독일 빌시비부르크 소재의 Flottweg AG)를 사용하여 2개의 상이한 공급물 유동 속도: 1.3gal/min 및 5gal/min에서 분리하였다. 공급물 온도는 약 80℃였다. 매쉬를 3개의 스트림: (1) 옥수수 오일, (2) 올리고당(액화된 전분)의 수용액, 및 (3) 습윤 케이크로 분리하였다. 보울 속도는 약 5000rpm(대략 4000g's)에서 일정하게 유지되었다. 표 20은 공급속도의 함수로서 옥수수 오일 회수를 3.0의 매쉬 pH에 대한 Tricanter®와 비교한다.The pH of the remaining liquefied corn mash in the Tricanter ® feed tank was reduced to about 3. Acid mesh three-phase centrifuge: using (model Z23-4 / 441, Flottweg Tricanter ®, manufactured by German bill fertilization Flottweg AG of Freiburg material) two different feed flow rate: 1.3gal / min and 5gal / min . The feed temperature was about 80 ° C. The mesh was separated into three streams: (1) corn oil, (2) an aqueous solution of oligosaccharides (liquefied starch), and (3) wet cake. Bowl speed was kept constant at about 5000 rpm (about 4000 g's). Table 20 compares corn oil recovery as a function of feed rate with Tricanter ® for a mesh pH of 3.0.
[표 20][Table 20]
매쉬를 pH=5.8에서 생성한 후, 최종 매쉬의 pH를 원심분리기에 공급하기 전에 3으로 낮추었다. 옥수수 오일 회수는 매쉬 속에 함유된 전체 오일을 기반으로 한다(유리 오일 및 고체 속의 오일 둘 다). Tricanter®에 공급된 매쉬는 약 0.9중량%의 옥수수 오일(유리 오일 및 고체 속의 오일 포함)을 함유하였다. Tricanter®에 공급된 매쉬의 전체 고체는 27.1중량%이었고, 매쉬의 전체 현탁된 고체는 5.5중량%이었다.After producing the mesh at pH = 5.8, the pH of the final mesh was lowered to 3 before feeding to the centrifuge. Corn oil recovery is based on the total oil contained in the mesh (both glass and solid oils). The mesh supplied to Tricanter ® contained about 0.9% by weight of corn oil (including glass oil and oil in the solid). The total solid of the mesh fed to Tricanter ® was 27.1 wt% and the total suspended solids of the mesh was 5.5 wt%.
표 21은 시험한 2개의 조건에 대한 수성 농축물 속의 오일 상, 오일 농축물 속의 수성 상, 및 오일 농축물 속의 고체의 양을 요약한다. 표 21의 데이터는, 회수된 옥수수 오일이 수성 상 및 고체를 거의 함유하지 않았으므로 매우 투명하였음을 나타낸다.Table 21 summarizes the amounts of solids in the oil phase, the aqueous phase in the oil concentrate, and the oil concentrate in an aqueous concentrate for the two conditions tested. The data in Table 21 show that the recovered corn oil is very transparent because it contains little aqueous phase and solids.
[표 21][Table 21]
시험 A(표 18)의 결과를 시험 D(표 20)의 결과와 비교하고 시험 B의 결과(표 19)를 시험 E(표 21)과 비교하여 Tricanter®을 사용한 옥수수 오일 회수에 있어서 매쉬 pH의 효과를 나타낸다. 당해 Tricanter®을 사용하여 매쉬를 분리하기 전에 이의 pH를 감소시키는 것이 보다 높은 옥수수 회수를 생성함을 제안한다. 이러한 비교는 표 22에 나타낸다.Test A, (Table 18) compared to the results of Test D (Table 20) The results of comparing the results of Test B (Table 19) and Test E (Table 21) of mash pH in corn oil return with Tricanter ® Effect. It is suggested that reducing the pH of the mesh before it is separated using the Tricanter ® produces higher corn yields. These comparisons are shown in Table 22.
[표 22][Table 22]
표 22에 나타낸 퍼센트는 매쉬 속에 함유된 전체 오일(유리 오일 및 고체 속의 오일 둘 다)을 기반으로 한 옥수수 오일 회수이다. Tricanter®에 공급된 매쉬 속의 옥수수 오일의 조성은 당해 실시예에 기술된 시험 모두에 대해 0.9% 내지 1.2중량%의 옥수수 오일(유리 오일 및 고체 속의 오일 포함)의 범위였다. Tricanter®를 5000 rpm(~4000G's)에서 작동시키고, 차등 속도 및 임펠러 설정은 각각 5 내지 10 rpm 및 145 mm이었다.The percentage shown in Table 22 is the recovery of corn oil based on total oil (both glass oil and solid oil) contained in the mesh. The composition of the corn oil in the mesh supplied to Tricanter ® ranged from 0.9% to 1.2% by weight of corn oil (including glass oil and solid in oil) for all of the tests described in this example. Tricanter ® was operated at 5000 rpm (~ 4000 G's), differential speed and impeller settings were 5 to 10 rpm and 145 mm respectively.
실시예Example 21 21
옥수수 corn 매쉬로부터From mesh 옥수수 오일 및 고체의 회수Recovery of corn oil and solids
액화된 옥수수 매쉬를 무수 옥수수 기준으로 30 내지 31중량%를 지닌 무수-분쇄 옥수수 대 에탄올 공정에 사용된 표준 연속 액화 공정을 사용하여 발생시켰다. 쿠킹 수 및 역류로 이루어진 재순환 수를 사용하였으며, 이는 총 고체(TS)를 대략 33중량%로 상승시켰다. 알파-아밀라제(Spezyme® RSL, Genencor®, 제조원: 캘리포니아주 팔로 알토 소재)를 슬러리 탱크(85℃, 대략 5.8의 pH, 30분의 체류 시간)에 대략 0.02중량%의 무수 옥수수 기재 효소 부하에 상응한 속도에서 가하였다. 제트 쿠커를 사용하여 18분 쿠킹 시간으로 온도를 105 내지 110℃로 승온시켰다. 액화 탱크를 85℃에서 대략 5.8의 pH를 사용하여 작동시켰다. Spezyme® RSL(제조원: 캘리포니아주 팔로 알토 소재의 Genencor®)을 또한 액화 탱크에 대략 0.005중량%의 무수 옥수수 기재 효소 부하에 상응한 속도에서 가하고, 액화 탱크 속의 전체 체류 시간은 약 90분이었다. 매쉬의 측면 스트림을 액화 탱크로부터 수집하고 소형 희석 탱크에 전달하였으며, 여기서 공정 응축물을 가하여 바람직한 희석을 달성하였다. 원래의 매쉬는 습윤 기준으로 약 1.55중량%의 옥수수 오일을 함유하였다. 유리 오일 및 일부로서 존재한 당해 오일의 일부는 용해되지 않은 고체였다. 이는 대략 3.0 lbm의 옥수수 오일/부쉘의 옥수수인 원래의 매쉬의 전체 옥수수 함량에 상응한다. 원래의 매쉬 속의 TS는 33.2중량%였고 전체의 현탁된 고체(TSS)는 6.5중량%였다. 공정 농축물을 사용한 희석은 TS를 대략 27중량%로, TSS를 대략 5.5중량%로, 및 오일 함량을 대략 1.3중량%(습윤 기준)으로 저하시켰다.The liquefied corn mash was generated using a standard continuous liquefaction process used in a dry-milled corn-to-ethanol process with 30 to 31 wt% on a dry corn basis. Recirculating water consisting of cooking water and reflux was used, which increased the total solids (TS) to approximately 33% by weight. Alpha-amylase (Spezyme ® RSL, Genencor ® , Palo Alto, Calif.) Corresponds to approximately 0.02 wt% anhydrous corn-based enzyme load in a slurry tank (85 ° C, pH of approximately 5.8, residence time of 30 min) I went at a speed. Using a jet cooker, the temperature was raised to 105 to 110 DEG C with a 18 minute cooking time. The liquefaction tank was operated at 85 캜 using a pH of approximately 5.8. Spezyme ® RSL (manufactured in Palo Alto, Genencor ®) was added in addition to one equivalent to about 0.005% by weight of the dry maize base load liquefaction enzymes tank speed, total residence time of liquid in the tank was about 90 minutes. The side stream of the mesh was collected from the liquefaction tank and transferred to a mini-dilution tank where process condensate was added to achieve the desired dilution. The original mesh contained about 1.55 wt% corn oil on a wet basis. The glass oil and some of the oil present as a part were undissolved solids. This corresponds to the total corn content of the original mesh, which is approximately 3.0 lbm corn oil / boucle maize. The TS in the original mesh was 33.2 wt% and the total suspended solids (TSS) was 6.5 wt%. Dilution with process concentrate reduced TS to approximately 27 wt%, TSS to approximately 5.5 wt%, and oil content to approximately 1.3 wt% (wetting basis).
액화된 옥수수 매쉬를 공급물 탱크로부터 3-상 원심분리기(모델 Z23-4/441, Flottweg Tricanter®, 제조원: 독일 빌시비부르크 소재의 Flottweg AG)에 9 내지 11gpm 사이의 속도로 공급하였다. 공급물 온도는 약 85℃였다. 매쉬를 3개의 스트림으로 분리하였다: (i) 옥수수 오일, (2) 올리고당(액화된 전분)의 수용액, 및 (3) 습윤 케이크. 3-상 원심분리기의 작동 조건은 다음과 같았다:A three-phase centrifugal separator the liquefied corn mash from the feed tank: was fed at a rate of between 9 to 11gpm (model Z23-4 / 441, Flottweg Tricanter ®, manufactured by Flottweg AG of Germany bill fertilizing material Freiburg). The feed temperature was about 85 ° C. The mesh was separated into three streams: (i) corn oil, (2) an aqueous solution of oligosaccharide (liquefied starch), and (3) wet cake. The operating conditions of the three-phase centrifuge were as follows:
· 보울 속도: 5000 rpm· Bowl speed: 5000 rpm
· G-힘: 대략 3200g· G-Force: Approximately 3200g
· 차등 속도: 25 rpm· Differential speed: 25 rpm
· 임펠러 설정: 표 참조· Impeller settings: see table
· 상 분리기 디스크: 대략 138 mm· Phase separator disk: approx. 138 mm
표 23은 분리 후 3-상 원심분리기 조건 및 특성을 요약한다. 옥수수 부하 33중량% 및 26중량% 둘 다에서 스트림을 매우 투명한 옥수수 오일 스트림 및 습윤 케이크로 38 내지 41중량%의 전체 고체에서 분리하였다. 무거운 상에서 현탁된 고체 농축물은 옥수수 부하에 의해 강하게 영향받았다. 33중량%의 시료는 대략 3.5 내지 4중량%의 농축물 TSS를 생성한 반면, 26중량%의 TS는 대략 1.7 내지 2중량%의 보다 적은 TSS 농축물을 생성하였다.Table 23 summarizes the conditions and characteristics of the three-phase centrifuge after separation. At both corn loadings of 33 wt% and 26 wt%, the stream was separated into a very transparent corn oil stream and a wet cake at 38-41 wt% total solids. The solid concentrate suspended in the heavy phase was strongly affected by the corn load. A sample of 33 wt% yielded approximately 3.5 to 4 wt% of concentrated TSS, while 26 wt% of TS produced approximately 1.7 to 2 wt% of less TSS concentrate.
[표 23][Table 23]
결과는 또한 도 19a 내지 도 19e에 나타낸다. 도 19a는 대략 4gpm의 낮은 유동 속도에서, 농축물 TSS는 약 3.3%이었고, 농축물 TSS는 11.5gpm의 유동 속도로 약 4.2 내지 4.7%로 증가하였다.The results are also shown in Figs. 19A to 19E. 19A, at a low flow rate of approximately 4 gpm, the concentrate TSS was approximately 3.3% and the concentrate TSS increased to approximately 4.2 to 4.7% at a flow rate of 11.5 gpm.
도 19b는 유동 속도의 함수로서 현탁된 고체 회수를 나타낸다. 대략 4gpm의 낮은 유동 속도에서, 대략 60%의 현탁된 고체가 습윤 케이크에서 회수되었다. 유동 속도를 약 11.5gpm으로 증가시킴으로써, 회수율은 약 40 내지 50%로 감소하였다.Figure 19b shows the number of solids suspended as a function of flow rate. At low flow rates of approximately 4 gpm, approximately 60% of the suspended solids were recovered in the wet cake. By increasing the flow rate to about 11.5 gpm, the recovery was reduced to about 40 to 50%.
도 19c는 유동 속도의 함수로서 습윤 케이크 전체 고체를 나타낸다. 대략 4gpm의 낮은 유동 속도에서, 습윤 케이크 전체 고체는 약 41%였다. 유동 속도를 약 11.5gpm으로 증가시킴으로써, 습윤 케이크 전체 고체는 약 39%로 감소하였다.Figure 19c shows the total cake of the wet cake as a function of flow rate. At low flow rates of approximately 4 gpm, the total solids of the wet cake was approximately 41%. By increasing the flow rate to about 11.5 gpm, the total solids of the wet cake was reduced to about 39%.
도 19d는 전체 습윤 케이크 고체에 대한 차등적 rpm의 영향을 나타낸다. 습윤 케이크 고체는 증가된 차등적 rpm으로 감소시켰다.Figure 19d shows the effect of the differential rpm on the overall wet cake solids. The wet cake solids were reduced to increased differential rpm.
도 19e는 옥수수 오일 회수에 대한 유동 속도의 효과를 나타낸다. 낮은 유동 속도에서, 오일 회수는 약 48%이었다. 유동 속도를 대략 11.5gpm으로 증가시킨 경우, 오일 회수는 약 35%로 감소한다. 유동 속도가 클수록 공급 스트림으로부터 분리된 오일이 적음이 명백하다.Figure 19e shows the effect of flow rate on corn oil recovery. At low flow rates, the oil recovery was about 48%. If the flow rate is increased to approximately 11.5 gpm, the oil recovery is reduced to approximately 35%. The larger the flow rate, the less oil is separated from the feed stream.
실시예Example 22 22
옥수수 매쉬의 유동학적 특성Rheological properties of corn mash
옥수수 매쉬의 점도는 날개 기하학적 구조(vane geometry)로 구성된 AR-G2 회전 유량계(제조원: 델라웨어주 뉴 캐슬 소재의 TA Instruments)를 사용하여 측정한다. 분쇄된 옥수수의 슬러리 및 물을 제조하여, 혼합하고, 수지 캐틀 속에서 55℃로 가열한다. pH를 5.8로 조정하고, 효소(예를 들면, 알파-아밀라제 및/또는 글루코아밀라제)를 슬러리에 가한다. 당해 슬러리를 65℃까지 2℃/min의 속도로 가열한다. 시료를 제거하고 65℃로 예비가열시킨 협소한 갭 동심원 실린더 기하학적 구조가 구비된 유량계로 이전시킨다. 이후에, 온도 램프를, 온도를 65℃ 내지 85℃에서 2℃/min의 속도로 상승시켜 수행한다. 온도 램프는 고정 전단 속도(예를 들면, 75-200s-1)에서 수행한다. 점도는 시간의 함수로서 측정한다.The viscosity of the maize mesh is measured using an AR-G2 rotary flow meter (TA Instruments, New Castle, Del.) With vane geometry. A slurry of ground corn and water is prepared, mixed and heated to 55 ° C in a resin cake. The pH is adjusted to 5.8 and the enzyme (e.g., alpha-amylase and / or glucoamylase) is added to the slurry. The slurry is heated to 65 DEG C at a rate of 2 DEG C / min. The sample is removed and transferred to a flow meter equipped with a narrow gap concentric cylinder geometry preheated to 65 ° C. Thereafter, the temperature ramp is performed by raising the temperature at 65 [deg.] C to 85 [deg.] C at a rate of 2 [deg.] C / min. The temperature ramp is performed at a fixed shear rate (e.g., 75-200 s -1 ). The viscosity is measured as a function of time.
본 발명의 다양한 구현예를 위에서 기술하였지만, 이들은 단지 예로 나타낸 것이며, 제한하는 것이 아님을 이해하여야 한다. 형태 및 세부사항에 있어서 다양한 변화가 본 발명의 취지 및 영역으로부터 벗어나지 않고 이루어질 수 있음이 관련 분야의 숙련가에게 명백할 것이다. 따라서, 본 발명의 범위 및 영역은 위에서 설명한 예시적인 구현예 중 어느 것에 의해 제한되지 않아야 하지만, 다음의 특허청구범위 및 이들의 등가물에 따라서만 정의되어야 한다.While various embodiments of the present invention have been described above, it should be understood that they have been presented by way of example only, and not limitation. It will be apparent to one skilled in the relevant art that various changes in form and details may be made therein without departing from the spirit and scope of the invention. Accordingly, the breadth and scope of the present invention should not be limited by any of the above-described exemplary implementations, but should be defined only in accordance with the following claims and their equivalents.
본 명세서에서 언급한 모든 공보, 특허 및 특허원은, 본 발명이 속한 당해 분야의 숙련가의 수준의 지표이며, 각각의 개개 공보, 특허 또는 특허원이 참조로 포함되는 것으로 구체적으로 및 개별적으로 나타내는 경우와 동일한 정도로 참조로 본원에 혼입된다.All publications, patents, and patent applications mentioned in this specification are indicative of the level of skill of those skilled in the art to which this invention pertains and are specifically and individually indicated to be incorporated by reference to the respective individual publication, patent or patent ≪ / RTI > are incorporated herein by reference.
SEQUENCE LISTING
<110> Butamax Advanced Biofuels LLC
<120> Processes and Systems for the Fermentative Production of Alcohols
<130> CL4723WOPCT1
<160> 128
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 570
<212> PRT
<213> Bacillus subtilis
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Ala Glu Leu Val Val Asp Cys Leu Val Glu Gln Gly Val Thr His Val
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Phe Gly Ile Pro Gly Ala Lys Ile Asp Ala Val Phe Asp Ala Leu Gln
35 40 45
Asp Lys Gly Pro Glu Ile Ile Val Ala Arg His Glu Gln Asn Ala Ala
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Ile Arg Ala Asp Arg Leu Lys Arg Thr His Gln Ser Leu Asp Asn Ala
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Gly Gln Ala Gly Ala Ala Phe Val Ser Phe Pro Gln Asp Val Val Asn
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Phe Val Glu Thr Tyr Gln Ala Ala Gly Thr Leu Ser Arg Asp Leu Glu
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Leu Leu Leu Glu Gln Ala Asp Val Val Leu Thr Ile Gly Tyr Asp Pro
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His Asp Ala Val Lys Val Glu Phe Ala Glu Arg Glu Gln Lys Ile Leu
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cggacacatc aatctttgga taatgcggcg ctattccagc cgattacaaa atacagtgta 420
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gcagggcagg ctggggccgc ttttgtgagc tttccgcaag atgttgtgaa tgaagtcaca 540
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cggcggtagt ggccatcccg gtggattatc gcgataaccc gctgctgatg ggccagctgc 1800
atctgagtca gattctgtaa gtcatcacaa taaggaaaga aaaatgaaaa aagtcgcact 1860
tgttaccggc gccggccagg ggattggtaa agctatcgcc cttcgtctgg tgaaggatgg 1920
atttgccgtg gccattgccg attataacga cgccaccgcc aaagcggtcg cctccgaaat 1980
caaccaggcc ggcggccgcg ccatggcggt gaaagtggat gtttctgacc gcgaccaggt 2040
atttgccgcc gtcga 2055
<210> 5
<211> 554
<212> PRT
<213> Lactococcus lactis
<400> 5
Met Ser Glu Lys Gln Phe Gly Ala Asn Leu Val Val Asp Ser Leu Ile
1 5 10 15
Asn His Lys Val Lys Tyr Val Phe Gly Ile Pro Gly Ala Lys Ile Asp
20 25 30
Arg Val Phe Asp Leu Leu Glu Asn Glu Glu Gly Pro Gln Met Val Val
35 40 45
Thr Arg His Glu Gln Gly Ala Ala Phe Met Ala Gln Ala Val Gly Arg
50 55 60
Leu Thr Gly Glu Pro Gly Val Val Val Val Thr Ser Gly Pro Gly Val
65 70 75 80
Ser Asn Leu Ala Thr Pro Leu Leu Thr Ala Thr Ser Glu Gly Asp Ala
85 90 95
Ile Leu Ala Ile Gly Gly Gln Val Lys Arg Ser Asp Arg Leu Lys Arg
100 105 110
Ala His Gln Ser Met Asp Asn Ala Gly Met Met Gln Ser Ala Thr Lys
115 120 125
Tyr Ser Ala Glu Val Leu Asp Pro Asn Thr Leu Ser Glu Ser Ile Ala
130 135 140
Asn Ala Tyr Arg Ile Ala Lys Ser Gly His Pro Gly Ala Thr Phe Leu
145 150 155 160
Ser Ile Pro Gln Asp Val Thr Asp Ala Glu Val Ser Ile Lys Ala Ile
165 170 175
Gln Pro Leu Ser Asp Pro Lys Met Gly Asn Ala Ser Ile Asp Asp Ile
180 185 190
Asn Tyr Leu Ala Gln Ala Ile Lys Asn Ala Val Leu Pro Val Ile Leu
195 200 205
Val Gly Ala Gly Ala Ser Asp Ala Lys Val Ala Ser Ser Leu Arg Asn
210 215 220
Leu Leu Thr His Val Asn Ile Pro Val Val Glu Thr Phe Gln Gly Ala
225 230 235 240
Gly Val Ile Ser His Asp Leu Glu His Thr Phe Tyr Gly Arg Ile Gly
245 250 255
Leu Phe Arg Asn Gln Pro Gly Asp Met Leu Leu Lys Arg Ser Asp Leu
260 265 270
Val Ile Ala Val Gly Tyr Asp Pro Ile Glu Tyr Glu Ala Arg Asn Trp
275 280 285
Asn Ala Glu Ile Asp Ser Arg Ile Ile Val Ile Asp Asn Ala Ile Ala
290 295 300
Glu Ile Asp Thr Tyr Tyr Gln Pro Glu Arg Glu Leu Ile Gly Asp Ile
305 310 315 320
Ala Ala Thr Leu Asp Asn Leu Leu Pro Ala Val Arg Gly Tyr Lys Ile
325 330 335
Pro Lys Gly Thr Lys Asp Tyr Leu Asp Gly Leu His Glu Val Ala Glu
340 345 350
Gln His Glu Phe Asp Thr Glu Asn Thr Glu Glu Gly Arg Met His Pro
355 360 365
Leu Asp Leu Val Ser Thr Phe Gln Glu Ile Val Lys Asp Asp Glu Thr
370 375 380
Val Thr Val Asp Val Gly Ser Leu Tyr Ile Trp Met Ala Arg His Phe
385 390 395 400
Lys Ser Tyr Glu Pro Arg His Leu Leu Phe Ser Asn Gly Met Gln Thr
405 410 415
Leu Gly Val Ala Leu Pro Trp Ala Ile Thr Ala Ala Leu Leu Arg Pro
420 425 430
Gly Lys Lys Val Tyr Ser His Ser Gly Asp Gly Gly Phe Leu Phe Thr
435 440 445
Gly Gln Glu Leu Glu Thr Ala Val Arg Leu Asn Leu Pro Ile Val Gln
450 455 460
Ile Ile Trp Asn Asp Gly His Tyr Asp Met Val Lys Phe Gln Glu Glu
465 470 475 480
Met Lys Tyr Gly Arg Ser Ala Ala Val Asp Phe Gly Tyr Val Asp Tyr
485 490 495
Val Lys Tyr Ala Glu Ala Met Arg Ala Lys Gly Tyr Arg Ala His Ser
500 505 510
Lys Glu Glu Leu Ala Glu Ile Leu Lys Ser Ile Pro Asp Thr Thr Gly
515 520 525
Pro Val Val Ile Asp Val Pro Leu Asp Tyr Ser Asp Asn Ile Lys Leu
530 535 540
Ala Glu Lys Leu Leu Pro Glu Glu Phe Tyr
545 550
<210> 6
<211> 3220
<212> DNA
<213> Lactococcus lactis
<400> 6
tagatccgga aacaactgat tacctgagtt aacttagcag aaattgcaga agataacggt 60
aatttggatg aagcattaaa ttacctttat caaattccgg tgaatgatga aaattatatt 120
gctgctttaa tcaaaattgc tgacttatat caatttgaag ttgattttga aacagcaatt 180
tctaagttag aagaagcaag agaattatcg gattctcctc tgattacttt tgctttggct 240
gagtcctact ttgaacaagg tgattattca gctgccatta ccgaatatgc aaaactttca 300
gaacgaaaaa ttttacatga aacaaaaatt tctatttatc aaagaattgg tgactcttat 360
gcccaattag gtaattttga gaatgccata tcatttcttg aaaaatcact tgaatttgat 420
gaaaaaccgg aaaccttgta taaaattgct cttctttatg gagaaactca taatgaaaca 480
agagccattg ctaatttcaa acggttagaa aaaatggatg ttgaattttt gaactatgaa 540
ttagcctatg cccaaaccct agaagctaat caagaattta aagctgcact agaaatggca 600
aagaaaggga tgaaaaaaaa tcctaatgcc gttcctctct tacacttcgc ttcaaaaatt 660
tgtttcaaac ttaaggacaa agctgcagca gaacgttatc tcgtggatgc tttaaattta 720
ccagaattac atgacgaaac agtctttttg cttgctaatt tatacttcaa cgaagaagat 780
tttgaagctg tcattaatct tgaagagctt ttagaagatg aacatttatt agctaaatgg 840
ctttttgcag gagcacataa agctttggaa aatgattctg aagcggctgc tttgtatgaa 900
gaactcattc aaaccaatct gtcagagaat ccagagtttt tagaagacta tattgatttt 960
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gttccagatg atgaaaatat gagaaattta ctgacagact taaaaaataa ttactgacaa 1080
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tgtaaaaggt tctattatct gataaaatga ttgtgaagta atccaagaga ttatgaaata 1200
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taaacgtgcg caccaatcaa tggataatgc tggaatgatg caatcagcaa caaaatattc 1620
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agtatcaatc aaagccattc aaccactttc agaccctaaa atggggaatg cctctattga 1800
tgacattaat tatttagcac aagcaattaa aaatgctgta ttgccagtaa ttttggttgg 1860
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ccaaccagag cgtgaattaa ttggtgatat cgcagcaaca ttggataatc ttttaccagc 2220
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<212> PRT
<213> Escherichia coli
<400> 7
Met Ala Asn Tyr Phe Asn Thr Leu Asn Leu Arg Gln Gln Leu Ala Gln
1 5 10 15
Leu Gly Lys Cys Arg Phe Met Gly Arg Asp Glu Phe Ala Asp Gly Ala
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Ser Tyr Leu Gln Gly Lys Lys Val Val Ile Val Gly Cys Gly Ala Gln
35 40 45
Gly Leu Asn Gln Gly Leu Asn Met Arg Asp Ser Gly Leu Asp Ile Ser
50 55 60
Tyr Ala Leu Arg Lys Glu Ala Ile Ala Glu Lys Arg Ala Ser Trp Arg
65 70 75 80
Lys Ala Thr Glu Asn Gly Phe Lys Val Gly Thr Tyr Glu Glu Leu Ile
85 90 95
Pro Gln Ala Asp Leu Val Ile Asn Leu Thr Pro Asp Lys Gln His Ser
100 105 110
Asp Val Val Arg Thr Val Gln Pro Leu Met Lys Asp Gly Ala Ala Leu
115 120 125
Gly Tyr Ser His Gly Phe Asn Ile Val Glu Val Gly Glu Gln Ile Arg
130 135 140
Lys Asp Ile Thr Val Val Met Val Ala Pro Lys Cys Pro Gly Thr Glu
145 150 155 160
Val Arg Glu Glu Tyr Lys Arg Gly Phe Gly Val Pro Thr Leu Ile Ala
165 170 175
Val His Pro Glu Asn Asp Pro Lys Gly Glu Gly Met Ala Ile Ala Lys
180 185 190
Ala Trp Ala Ala Ala Thr Gly Gly His Arg Ala Gly Val Leu Glu Ser
195 200 205
Ser Phe Val Ala Glu Val Lys Ser Asp Leu Met Gly Glu Gln Thr Ile
210 215 220
Leu Cys Gly Met Leu Gln Ala Gly Ser Leu Leu Cys Phe Asp Lys Leu
225 230 235 240
Val Glu Glu Gly Thr Asp Pro Ala Tyr Ala Glu Lys Leu Ile Gln Phe
245 250 255
Gly Trp Glu Thr Ile Thr Glu Ala Leu Lys Gln Gly Gly Ile Thr Leu
260 265 270
Met Met Asp Arg Leu Ser Asn Pro Ala Lys Leu Arg Ala Tyr Ala Leu
275 280 285
Ser Glu Gln Leu Lys Glu Ile Met Ala Pro Leu Phe Gln Lys His Met
290 295 300
Asp Asp Ile Ile Ser Gly Glu Phe Ser Ser Gly Met Met Ala Asp Trp
305 310 315 320
Ala Asn Asp Asp Lys Lys Leu Leu Thr Trp Arg Glu Glu Thr Gly Lys
325 330 335
Thr Ala Phe Glu Thr Ala Pro Gln Tyr Glu Gly Lys Ile Gly Glu Gln
340 345 350
Glu Tyr Phe Asp Lys Gly Val Leu Met Ile Ala Met Val Lys Ala Gly
355 360 365
Val Glu Leu Ala Phe Glu Thr Met Val Asp Ser Gly Ile Ile Glu Glu
370 375 380
Ser Ala Tyr Tyr Glu Ser Leu His Glu Leu Pro Leu Ile Ala Asn Thr
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Ile Ala Arg Lys Arg Leu Tyr Glu Met Asn Val Val Ile Ser Asp Thr
405 410 415
Ala Glu Tyr Gly Asn Tyr Leu Phe Ser Tyr Ala Cys Val Pro Leu Leu
420 425 430
Lys Pro Phe Met Ala Glu Leu Gln Pro Gly Asp Leu Gly Lys Ala Ile
435 440 445
Pro Glu Gly Ala Val Asp Asn Gly Gln Leu Arg Asp Val Asn Glu Ala
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Ile Arg Ser His Ala Ile Glu Gln Val Gly Lys Lys Leu Arg Gly Tyr
465 470 475 480
Met Thr Asp Met Lys Arg Ile Ala Val Ala Gly
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<212> DNA
<213> Escherichia coli
<400> 8
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<213> Saccharomyces cerevisiae
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1 5 10 15
Thr Ala Lys Arg Thr Phe Ala Leu Ala Thr Arg Ala Ala Ala Tyr Ser
20 25 30
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35 40 45
Lys Gln Ile Asn Phe Gly Gly Thr Val Glu Thr Val Tyr Glu Arg Ala
50 55 60
Asp Trp Pro Arg Glu Lys Leu Leu Asp Tyr Phe Lys Asn Asp Thr Phe
65 70 75 80
Ala Leu Ile Gly Tyr Gly Ser Gln Gly Tyr Gly Gln Gly Leu Asn Leu
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Arg Asp Asn Gly Leu Asn Val Ile Ile Gly Val Arg Lys Asp Gly Ala
100 105 110
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Phe Thr Val Glu Asp Ala Ile Lys Arg Gly Ser Tyr Val Met Asn Leu
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Leu Ser Asp Ala Ala Gln Ser Glu Thr Trp Pro Ala Ile Lys Pro Leu
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Leu Thr Lys Gly Lys Thr Leu Tyr Phe Ser His Gly Phe Ser Pro Val
165 170 175
Phe Lys Asp Leu Thr His Val Glu Pro Pro Lys Asp Leu Asp Val Ile
180 185 190
Leu Val Ala Pro Lys Gly Ser Gly Arg Thr Val Arg Ser Leu Phe Lys
195 200 205
Glu Gly Arg Gly Ile Asn Ser Ser Tyr Ala Val Trp Asn Asp Val Thr
210 215 220
Gly Lys Ala His Glu Lys Ala Gln Ala Leu Ala Val Ala Ile Gly Ser
225 230 235 240
Gly Tyr Val Tyr Gln Thr Thr Phe Glu Arg Glu Val Asn Ser Asp Leu
245 250 255
Tyr Gly Glu Arg Gly Cys Leu Met Gly Gly Ile His Gly Met Phe Leu
260 265 270
Ala Gln Tyr Asp Val Leu Arg Glu Asn Gly His Ser Pro Ser Glu Ala
275 280 285
Phe Asn Glu Thr Val Glu Glu Ala Thr Gln Ser Leu Tyr Pro Leu Ile
290 295 300
Gly Lys Tyr Gly Met Asp Tyr Met Tyr Asp Ala Cys Ser Thr Thr Ala
305 310 315 320
Arg Arg Gly Ala Leu Asp Trp Tyr Pro Ile Phe Lys Asn Ala Leu Lys
325 330 335
Pro Val Phe Gln Asp Leu Tyr Glu Ser Thr Lys Asn Gly Thr Glu Thr
340 345 350
Lys Arg Ser Leu Glu Phe Asn Ser Gln Pro Asp Tyr Arg Glu Lys Leu
355 360 365
Glu Lys Glu Leu Asp Thr Ile Arg Asn Met Glu Ile Trp Lys Val Gly
370 375 380
Lys Glu Val Arg Lys Leu Arg Pro Glu Asn Gln
385 390 395
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<211> 1188
<212> DNA
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 10
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aacggtcact ccccatctga agctttcaac gaaaccgtcg aagaagctac ccaatctcta 900
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<210> 11
<211> 330
<212> PRT
<213> Methanococcus maripaludis
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Met Lys Val Phe Tyr Asp Ser Asp Phe Lys Leu Asp Ala Leu Lys Glu
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Lys Thr Ile Ala Val Ile Gly Tyr Gly Ser Gln Gly Arg Ala Gln Ser
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Leu Asn Met Lys Asp Ser Gly Leu Asn Val Val Val Gly Leu Arg Lys
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Asn Gly Ala Ser Trp Asn Asn Ala Lys Ala Asp Gly His Asn Val Met
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Thr Ile Glu Glu Ala Ala Glu Lys Ala Asp Ile Ile His Ile Leu Ile
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100 105 110
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Pro Lys Ser Pro Gly Lys Met Val Arg Arg Thr Tyr Glu Glu Gly Phe
130 135 140
Gly Val Pro Gly Leu Ile Cys Ile Glu Ile Asp Ala Thr Asn Asn Ala
145 150 155 160
Phe Asp Ile Val Ser Ala Met Ala Lys Gly Ile Gly Leu Ser Arg Ala
165 170 175
Gly Val Ile Gln Thr Thr Phe Lys Glu Glu Thr Glu Thr Asp Leu Phe
180 185 190
Gly Glu Gln Ala Val Leu Cys Gly Gly Val Thr Glu Leu Ile Lys Ala
195 200 205
Gly Phe Glu Thr Leu Val Glu Ala Gly Tyr Ala Pro Glu Met Ala Tyr
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275 280 285
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290 295 300
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<212> DNA
<213> Methanococcus maripaludis
<400> 12
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acaactttca aagaagaaac agaaactgac cttttcggtg aacaagctgt tttatgcggt 600
ggagttaccg aattaatcaa ggcaggattt gaaacactcg ttgaagcagg atacgcacca 660
gaaatggcat actttgaaac ctgccacgaa ttgaaattaa tcgttgactt aatctaccaa 720
aaaggattca aaaacatgtg gaacgatgta agtaacactg cagaatacgg cggacttaca 780
agaagaagca gaatcgttac agctgattca aaagctgcaa tgaaagaaat cttaagagaa 840
atccaagatg gaagattcac aaaagaattc cttctcgaaa aacaggtaag ctatgctcat 900
ttaaaatcaa tgagaagact cgaaggagac ttacaaatcg aagaagtcgg cgcaaaatta 960
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<211> 342
<212> PRT
<213> Bacillus subtilis
<400> 13
Met Val Lys Val Tyr Tyr Asn Gly Asp Ile Lys Glu Asn Val Leu Ala
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20 25 30
Ala Leu Asn Leu Lys Glu Ser Gly Val Asp Val Ile Val Gly Val Arg
35 40 45
Gln Gly Lys Ser Phe Thr Gln Ala Gln Glu Asp Gly His Lys Val Phe
50 55 60
Ser Val Lys Glu Ala Ala Ala Gln Ala Glu Ile Ile Met Val Leu Leu
65 70 75 80
Pro Asp Glu Gln Gln Gln Lys Val Tyr Glu Ala Glu Ile Lys Asp Glu
85 90 95
Leu Thr Ala Gly Lys Ser Leu Val Phe Ala His Gly Phe Asn Val His
100 105 110
Phe His Gln Ile Val Pro Pro Ala Asp Val Asp Val Phe Leu Val Ala
115 120 125
Pro Lys Gly Pro Gly His Leu Val Arg Arg Thr Tyr Glu Gln Gly Ala
130 135 140
Gly Val Pro Ala Leu Phe Ala Ile Tyr Gln Asp Val Thr Gly Glu Ala
145 150 155 160
Arg Asp Lys Ala Leu Ala Tyr Ala Lys Gly Ile Gly Gly Ala Arg Ala
165 170 175
Gly Val Leu Glu Thr Thr Phe Lys Glu Glu Thr Glu Thr Asp Leu Phe
180 185 190
Gly Glu Gln Ala Val Leu Cys Gly Gly Leu Ser Ala Leu Val Lys Ala
195 200 205
Gly Phe Glu Thr Leu Thr Glu Ala Gly Tyr Gln Pro Glu Leu Ala Tyr
210 215 220
Phe Glu Cys Leu His Glu Leu Lys Leu Ile Val Asp Leu Met Tyr Glu
225 230 235 240
Glu Gly Leu Ala Gly Met Arg Tyr Ser Ile Ser Asp Thr Ala Gln Trp
245 250 255
Gly Asp Phe Val Ser Gly Pro Arg Val Val Asp Ala Lys Val Lys Glu
260 265 270
Ser Met Lys Glu Val Leu Lys Asp Ile Gln Asn Gly Thr Phe Ala Lys
275 280 285
Glu Trp Ile Val Glu Asn Gln Val Asn Arg Pro Arg Phe Asn Ala Ile
290 295 300
Asn Ala Ser Glu Asn Glu His Gln Ile Glu Val Val Gly Arg Lys Leu
305 310 315 320
Arg Glu Met Met Pro Phe Val Lys Gln Gly Lys Lys Lys Glu Ala Val
325 330 335
Val Ser Val Ala Gln Asn
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<212> DNA
<213> Bacillus subtilis
<400> 14
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ctggtgatta acctgacgcc ggacaagcag cactctgatg tagtgcgcac cgtacagcca 360
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<212> PRT
<213> Anaerostipes caccae
<400> 15
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Asn Asp Ile Glu Pro Asn Leu Glu Ala Gly Asn Met Leu Met Phe Ala
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Val Asp Leu Ile Tyr Gln Ser Gly Phe Ser Gly Met Arg Tyr Ser Ile
245 250 255
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260 265 270
Thr Glu Asp Thr Lys Lys Ala Met Lys Lys Ile Leu Ser Asp Ile Gln
275 280 285
Asp Gly Thr Phe Ala Lys Asp Phe Leu Val Asp Met Ser Asp Ala Gly
290 295 300
Ser Gln Val His Phe Lys Ala Met Arg Lys Leu Ala Ser Glu His Pro
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Ala Glu Val Val Gly Glu Glu Ile Arg Ser Leu Tyr Ser Trp Ser Asp
325 330 335
Glu Asp Lys Leu Ile Asn Asn
340
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<211> 343
<212> PRT
<213> Anaerostipes caccae
<400> 16
Met Glu Glu Cys Lys Met Ala Lys Ile Tyr Tyr Gln Glu Asp Cys Asn
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Leu Ser Leu Leu Asp Gly Lys Thr Ile Ala Val Ile Gly Tyr Gly Ser
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Ile Ile Gly Leu Tyr Glu Gly Ala Lys Asp Trp Lys Arg Ala Glu Glu
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Ser Gln Val His Phe Lys Ala Met Arg Lys Leu Ala Ser Glu His Pro
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Ala Glu Val Val Gly Glu Glu Ile Arg Ser Leu Tyr Ser Trp Ser Asp
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Glu Asp Lys Leu Ile Asn Asn
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<211> 616
<212> PRT
<213> Escherichia coli
<400> 17
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Glu Leu Thr Lys Arg Tyr Tyr Glu Gln Asn Asp Glu Ser Ala Leu Pro
245 250 255
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Ser Phe Leu Lys Ser Met Gly Leu Gly Lys Ala Cys Ala Leu Ile Thr
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Asp Gly Arg Phe Ser Gly Gly Thr Ser Gly Leu Ser Ile Gly His Val
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Ser Pro Glu Ala Ala Ser Gly Gly Ser Ile Gly Leu Ile Glu Asp Gly
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<212> DNA
<213> Escherichia coli
<400> 18
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Gly Lys Tyr Val Met Ala Asp Leu Ile Asn Val Gly Gly Thr Gln Ser
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Val Ile Lys Tyr Leu Tyr Glu Asn Asn Met Leu His Gly Asn Thr Met
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Thr Val Thr Gly Asp Thr Leu Ala Glu Arg Ala Lys Lys Ala Pro Ser
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Ala Val Gly Lys Ile Thr Gly Lys Glu Gly Thr Tyr Phe Lys Gly Arg
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Ala Arg Val Phe Glu Glu Glu Gly Ala Phe Ile Glu Ala Leu Glu Arg
435 440 445
Gly Glu Ile Lys Lys Gly Glu Lys Thr Val Val Val Ile Arg Tyr Glu
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Gly Pro Arg Gly Ala Pro Gly Met Pro Glu Met Leu Lys Pro Ser Ser
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Ala Ser Asn Gly Cys Val Leu Asp Ala
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<211> 1131
<212> DNA
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 20
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aagaaactag gtgcaaacta cgccccctgc gtcctgccac aattgcaagc tgcttcaagg 660
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gtttctccca ttaaggaaat cggctggaaa ggcgaacaaa ttaatattcc gttgttgccc 1020
ggcgaacaaa ccggtccatt ggccaaagaa gttgcacaat ggattaatgg aatccaatat 1080
ggcgagactg agcatggcaa ttggtcaagg gttgttactg atttgaactg a 1131
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<211> 550
<212> PRT
<213> Methanococcus maripaludis
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Met Ile Ser Asp Asn Val Lys Lys Gly Val Ile Arg Thr Pro Asn Arg
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Ala Leu Leu Lys Ala Cys Gly Tyr Thr Asp Glu Asp Met Glu Lys Pro
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Phe Ile Gly Ile Val Asn Ser Phe Thr Glu Val Val Pro Gly His Ile
35 40 45
His Leu Arg Thr Leu Ser Glu Ala Ala Lys His Gly Val Tyr Ala Asn
50 55 60
Gly Gly Thr Pro Phe Glu Phe Asn Thr Ile Gly Ile Cys Asp Gly Ile
65 70 75 80
Ala Met Gly His Glu Gly Met Lys Tyr Ser Leu Pro Ser Arg Glu Ile
85 90 95
Ile Ala Asp Ala Val Glu Ser Met Ala Arg Ala His Gly Phe Asp Gly
100 105 110
Leu Val Leu Ile Pro Thr Cys Asp Lys Ile Val Pro Gly Met Ile Met
115 120 125
Gly Ala Leu Arg Leu Asn Ile Pro Phe Ile Val Val Thr Gly Gly Pro
130 135 140
Met Leu Pro Gly Glu Phe Gln Gly Lys Lys Tyr Glu Leu Ile Ser Leu
145 150 155 160
Phe Glu Gly Val Gly Glu Tyr Gln Val Gly Lys Ile Thr Glu Glu Glu
165 170 175
Leu Lys Cys Ile Glu Asp Cys Ala Cys Ser Gly Ala Gly Ser Cys Ala
180 185 190
Gly Leu Tyr Thr Ala Asn Ser Met Ala Cys Leu Thr Glu Ala Leu Gly
195 200 205
Leu Ser Leu Pro Met Cys Ala Thr Thr His Ala Val Asp Ala Gln Lys
210 215 220
Val Arg Leu Ala Lys Lys Ser Gly Ser Lys Ile Val Asp Met Val Lys
225 230 235 240
Glu Asp Leu Lys Pro Thr Asp Ile Leu Thr Lys Glu Ala Phe Glu Asn
245 250 255
Ala Ile Leu Val Asp Leu Ala Leu Gly Gly Ser Thr Asn Thr Thr Leu
260 265 270
His Ile Pro Ala Ile Ala Asn Glu Ile Glu Asn Lys Phe Ile Thr Leu
275 280 285
Asp Asp Phe Asp Arg Leu Ser Asp Glu Val Pro His Ile Ala Ser Ile
290 295 300
Lys Pro Gly Gly Glu His Tyr Met Ile Asp Leu His Asn Ala Gly Gly
305 310 315 320
Ile Pro Ala Val Leu Asn Val Leu Lys Glu Lys Ile Arg Asp Thr Lys
325 330 335
Thr Val Asp Gly Arg Ser Ile Leu Glu Ile Ala Glu Ser Val Lys Tyr
340 345 350
Ile Asn Tyr Asp Val Ile Arg Lys Val Glu Ala Pro Val His Glu Thr
355 360 365
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Val Lys Ile Gly Ala Val His Pro Lys Met Tyr Lys His Asp Gly Pro
385 390 395 400
Ala Lys Val Tyr Asn Ser Glu Asp Glu Ala Ile Ser Ala Ile Leu Gly
405 410 415
Gly Lys Ile Val Glu Gly Asp Val Ile Val Ile Arg Tyr Glu Gly Pro
420 425 430
Ser Gly Gly Pro Gly Met Arg Glu Met Leu Ser Pro Thr Ser Ala Ile
435 440 445
Cys Gly Met Gly Leu Asp Asp Ser Val Ala Leu Ile Thr Asp Gly Arg
450 455 460
Phe Ser Gly Gly Ser Arg Gly Pro Cys Ile Gly His Val Ser Pro Glu
465 470 475 480
Ala Ala Ala Gly Gly Val Ile Ala Ala Ile Glu Asn Gly Asp Ile Ile
485 490 495
Lys Ile Asp Met Ile Glu Lys Glu Ile Asn Val Asp Leu Asp Glu Ser
500 505 510
Val Ile Lys Glu Arg Leu Ser Lys Leu Gly Glu Phe Glu Pro Lys Ile
515 520 525
Lys Lys Gly Tyr Leu Ser Arg Tyr Ser Lys Leu Val Ser Ser Ala Asp
530 535 540
Glu Gly Ala Val Leu Lys
545 550
<210> 22
<211> 1653
<212> DNA
<213> Methanococcus maripaludis
<400> 22
atgataagtg ataacgtcaa aaagggagtt ataagaactc caaaccgagc tcttttaaag 60
gcttgcggat atacagacga agacatggaa aaaccattta ttggaattgt aaacagcttt 120
acagaagttg ttcccggcca cattcactta agaacattat cagaagcggc taaacatggt 180
gtttatgcaa acggtggaac accatttgaa tttaatacca ttggaatttg cgacggtatt 240
gcaatgggcc acgaaggtat gaaatactct ttaccttcaa gagaaattat tgcagacgct 300
gttgaatcaa tggcaagagc acatggattt gatggtcttg ttttaattcc tacgtgtgat 360
aaaatcgttc ctggaatgat aatgggtgct ttaagactaa acattccatt tattgtagtt 420
actggaggac caatgcttcc cggagaattc caaggtaaaa aatacgaact tatcagcctt 480
tttgaaggtg tcggagaata ccaagttgga aaaattactg aagaagagtt aaagtgcatt 540
gaagactgtg catgttcagg tgctggaagt tgtgcagggc tttacactgc aaacagtatg 600
gcctgcctta cagaagcttt gggactctct cttccaatgt gtgcaacaac gcatgcagtt 660
gatgcccaaa aagttaggct tgctaaaaaa agtggctcaa aaattgttga tatggtaaaa 720
gaagacctaa aaccaacaga catattaaca aaagaagctt ttgaaaatgc tattttagtt 780
gaccttgcac ttggtggatc aacaaacaca acattacaca ttcctgcaat tgcaaatgaa 840
attgaaaata aattcataac tctcgatgac tttgacaggt taagcgatga agttccacac 900
attgcatcaa tcaaaccagg tggagaacac tacatgattg atttacacaa tgctggaggt 960
attcctgcgg tattgaacgt tttaaaagaa aaaattagag atacaaaaac agttgatgga 1020
agaagcattt tggaaatcgc agaatctgtt aaatacataa attacgacgt tataagaaaa 1080
gtggaagctc cggttcacga aactgctggt ttaagggttt taaagggaaa tcttgctcca 1140
aacggttgcg ttgtaaaaat cggtgcagta catccgaaaa tgtacaaaca cgatggacct 1200
gcaaaagttt acaattccga agatgaagca atttctgcga tacttggcgg aaaaattgta 1260
gaaggggacg ttatagtaat cagatacgaa ggaccatcag gaggccctgg aatgagagaa 1320
atgctctccc caacttcagc aatctgtgga atgggtcttg atgacagcgt tgcattgatt 1380
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<210> 23
<211> 558
<212> PRT
<213> Bacillus subtilis
<400> 23
Met Ala Glu Leu Arg Ser Asn Met Ile Thr Gln Gly Ile Asp Arg Ala
1 5 10 15
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Gly Lys Pro Phe Ile Ala Val Cys Asn Ser Tyr Ile Asp Ile Val Pro
35 40 45
Gly His Val His Leu Gln Glu Phe Gly Lys Ile Val Lys Glu Ala Ile
50 55 60
Arg Glu Ala Gly Gly Val Pro Phe Glu Phe Asn Thr Ile Gly Val Asp
65 70 75 80
Asp Gly Ile Ala Met Gly His Ile Gly Met Arg Tyr Ser Leu Pro Ser
85 90 95
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100 105 110
Phe Asp Gly Met Val Cys Ile Pro Asn Cys Asp Lys Ile Thr Pro Gly
115 120 125
Met Leu Met Ala Ala Met Arg Ile Asn Ile Pro Thr Ile Phe Val Ser
130 135 140
Gly Gly Pro Met Ala Ala Gly Arg Thr Ser Asp Gly Arg Lys Ile Ser
145 150 155 160
Leu Ser Ser Val Phe Glu Gly Val Gly Ala Tyr Gln Ala Gly Lys Ile
165 170 175
Asn Glu Asn Glu Leu Gln Glu Leu Glu Gln Phe Gly Cys Pro Thr Cys
180 185 190
Gly Ser Cys Ser Gly Met Phe Thr Ala Asn Ser Met Asn Cys Leu Ser
195 200 205
Glu Ala Leu Gly Leu Ala Leu Pro Gly Asn Gly Thr Ile Leu Ala Thr
210 215 220
Ser Pro Glu Arg Lys Glu Phe Val Arg Lys Ser Ala Ala Gln Leu Met
225 230 235 240
Glu Thr Ile Arg Lys Asp Ile Lys Pro Arg Asp Ile Val Thr Val Lys
245 250 255
Ala Ile Asp Asn Ala Phe Ala Leu Asp Met Ala Leu Gly Gly Ser Thr
260 265 270
Asn Thr Val Leu His Thr Leu Ala Leu Ala Asn Glu Ala Gly Val Glu
275 280 285
Tyr Ser Leu Glu Arg Ile Asn Glu Val Ala Glu Arg Val Pro His Leu
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Ala Lys Leu Ala Pro Ala Ser Asp Val Phe Ile Glu Asp Leu His Glu
305 310 315 320
Ala Gly Gly Val Ser Ala Ala Leu Asn Glu Leu Ser Lys Lys Glu Gly
325 330 335
Ala Leu His Leu Asp Ala Leu Thr Val Thr Gly Lys Thr Leu Gly Glu
340 345 350
Thr Ile Ala Gly His Glu Val Lys Asp Tyr Asp Val Ile His Pro Leu
355 360 365
Asp Gln Pro Phe Thr Glu Lys Gly Gly Leu Ala Val Leu Phe Gly Asn
370 375 380
Leu Ala Pro Asp Gly Ala Ile Ile Lys Thr Gly Gly Val Gln Asn Gly
385 390 395 400
Ile Thr Arg His Glu Gly Pro Ala Val Val Phe Asp Ser Gln Asp Glu
405 410 415
Ala Leu Asp Gly Ile Ile Asn Arg Lys Val Lys Glu Gly Asp Val Val
420 425 430
Ile Ile Arg Tyr Glu Gly Pro Lys Gly Gly Pro Gly Met Pro Glu Met
435 440 445
Leu Ala Pro Thr Ser Gln Ile Val Gly Met Gly Leu Gly Pro Lys Val
450 455 460
Ala Leu Ile Thr Asp Gly Arg Phe Ser Gly Ala Ser Arg Gly Leu Ser
465 470 475 480
Ile Gly His Val Ser Pro Glu Ala Ala Glu Gly Gly Pro Leu Ala Phe
485 490 495
Val Glu Asn Gly Asp His Ile Ile Val Asp Ile Glu Lys Arg Ile Leu
500 505 510
Asp Val Gln Val Pro Glu Glu Glu Trp Glu Lys Arg Lys Ala Asn Trp
515 520 525
Lys Gly Phe Glu Pro Lys Val Lys Thr Gly Tyr Leu Ala Arg Tyr Ser
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Lys Leu Val Thr Ser Ala Asn Thr Gly Gly Ile Met Lys Ile
545 550 555
<210> 24
<211> 1677
<212> DNA
<213> Bacillus subtilis
<400> 24
atggcagaat tacgcagtaa tatgatcaca caaggaatcg atagagctcc gcaccgcagt 60
ttgcttcgtg cagcaggggt aaaagaagag gatttcggca agccgtttat tgcggtgtgt 120
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gatgcgctga ctgttacagg aaaaactctt ggagaaacca ttgccggaca tgaagtaaag 1080
gattatgacg tcattcaccc gctggatcaa ccattcactg aaaagggagg ccttgctgtt 1140
ttattcggta atctagctcc ggacggcgct atcattaaaa caggcggcgt acagaatggg 1200
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<210> 25
<211> 547
<212> PRT
<213> Lactococcus lactis
<400> 25
Met Tyr Thr Val Gly Asp Tyr Leu Leu Asp Arg Leu His Glu Leu Gly
1 5 10 15
Ile Glu Glu Ile Phe Gly Val Pro Gly Asp Tyr Asn Leu Gln Phe Leu
20 25 30
Asp Gln Ile Ile Ser Arg Glu Asp Met Lys Trp Ile Gly Asn Ala Asn
35 40 45
Glu Leu Asn Ala Ser Tyr Met Ala Asp Gly Tyr Ala Arg Thr Lys Lys
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Ala Ala Ala Phe Leu Thr Thr Phe Gly Val Gly Glu Leu Ser Ala Ile
65 70 75 80
Asn Gly Leu Ala Gly Ser Tyr Ala Glu Asn Leu Pro Val Val Glu Ile
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Val Gly Ser Pro Thr Ser Lys Val Gln Asn Asp Gly Lys Phe Val His
100 105 110
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115 120 125
Pro Val Thr Ala Ala Arg Thr Leu Leu Thr Ala Glu Asn Ala Thr Tyr
130 135 140
Glu Ile Asp Arg Val Leu Ser Gln Leu Leu Lys Glu Arg Lys Pro Val
145 150 155 160
Tyr Ile Asn Leu Pro Val Asp Val Ala Ala Ala Lys Ala Glu Lys Pro
165 170 175
Ala Leu Ser Leu Glu Lys Glu Ser Ser Thr Thr Asn Thr Thr Glu Gln
180 185 190
Val Ile Leu Ser Lys Ile Glu Glu Ser Leu Lys Asn Ala Gln Lys Pro
195 200 205
Val Val Ile Ala Gly His Glu Val Ile Ser Phe Gly Leu Glu Lys Thr
210 215 220
Val Thr Gln Phe Val Ser Glu Thr Lys Leu Pro Ile Thr Thr Leu Asn
225 230 235 240
Phe Gly Lys Ser Ala Val Asp Glu Ser Leu Pro Ser Phe Leu Gly Ile
245 250 255
Tyr Asn Gly Lys Leu Ser Glu Ile Ser Leu Lys Asn Phe Val Glu Ser
260 265 270
Ala Asp Phe Ile Leu Met Leu Gly Val Lys Leu Thr Asp Ser Ser Thr
275 280 285
Gly Ala Phe Thr His His Leu Asp Glu Asn Lys Met Ile Ser Leu Asn
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Ile Asp Glu Gly Ile Ile Phe Asn Lys Val Val Glu Asp Phe Asp Phe
305 310 315 320
Arg Ala Val Val Ser Ser Leu Ser Glu Leu Lys Gly Ile Glu Tyr Glu
325 330 335
Gly Gln Tyr Ile Asp Lys Gln Tyr Glu Glu Phe Ile Pro Ser Ser Ala
340 345 350
Pro Leu Ser Gln Asp Arg Leu Trp Gln Ala Val Glu Ser Leu Thr Gln
355 360 365
Ser Asn Glu Thr Ile Val Ala Glu Gln Gly Thr Ser Phe Phe Gly Ala
370 375 380
Ser Thr Ile Phe Leu Lys Ser Asn Ser Arg Phe Ile Gly Gln Pro Leu
385 390 395 400
Trp Gly Ser Ile Gly Tyr Thr Phe Pro Ala Ala Leu Gly Ser Gln Ile
405 410 415
Ala Asp Lys Glu Ser Arg His Leu Leu Phe Ile Gly Asp Gly Ser Leu
420 425 430
Gln Leu Thr Val Gln Glu Leu Gly Leu Ser Ile Arg Glu Lys Leu Asn
435 440 445
Pro Ile Cys Phe Ile Ile Asn Asn Asp Gly Tyr Thr Val Glu Arg Glu
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Ile His Gly Pro Thr Gln Ser Tyr Asn Asp Ile Pro Met Trp Asn Tyr
465 470 475 480
Ser Lys Leu Pro Glu Thr Phe Gly Ala Thr Glu Asp Arg Val Val Ser
485 490 495
Lys Ile Val Arg Thr Glu Asn Glu Phe Val Ser Val Met Lys Glu Ala
500 505 510
Gln Ala Asp Val Asn Arg Met Tyr Trp Ile Glu Leu Val Leu Glu Lys
515 520 525
Glu Asp Ala Pro Lys Leu Leu Lys Lys Met Gly Lys Leu Phe Ala Glu
530 535 540
Gln Asn Lys
545
<210> 26
<211> 1828
<212> DNA
<213> Lactococcus lactis
<400> 26
tttaaataag tcaatatcgt tgacttattt agaagaaaga gttattcttt aaatgtcaag 60
ttagttgact aaattaaata taaaatatgg aggaatgtga tgtatacagt aggagattac 120
ctgttagacc gattacacga gttgggaatt gaagaaattt ttggagttcc tggtgactat 180
aacttacaat ttttagatca aattatttca cgcgaagata tgaaatggat tggaaatgct 240
aatgaattaa atgcttctta tatggctgat ggttatgctc gtactaaaaa agctgccgca 300
tttctcacca catttggagt cggcgaattg agtgcgatca atggactggc aggaagttat 360
gccgaaaatt taccagtagt agaaattgtt ggttcaccaa cttcaaaagt acaaaatgac 420
ggaaaatttg tccatcatac actagcagat ggtgatttta aacactttat gaagatgcat 480
gaacctgtta cagcagcgcg gactttactg acagcagaaa atgccacata tgaaattgac 540
cgagtacttt ctcaattact aaaagaaaga aaaccagtct atattaactt accagtcgat 600
gttgctgcag caaaagcaga gaagcctgca ttatctttag aaaaagaaag ctctacaaca 660
aatacaactg aacaagtgat tttgagtaag attgaagaaa gtttgaaaaa tgcccaaaaa 720
ccagtagtga ttgcaggaca cgaagtaatt agttttggtt tagaaaaaac ggtaactcag 780
tttgtttcag aaacaaaact accgattacg acactaaatt ttggtaaaag tgctgttgat 840
gaatctttgc cctcattttt aggaatatat aacgggaaac tttcagaaat cagtcttaaa 900
aattttgtgg agtccgcaga ctttatccta atgcttggag tgaagcttac ggactcctca 960
acaggtgcat tcacacatca tttagatgaa aataaaatga tttcactaaa catagatgaa 1020
ggaataattt tcaataaagt ggtagaagat tttgatttta gagcagtggt ttcttcttta 1080
tcagaattaa aaggaataga atatgaagga caatatattg ataagcaata tgaagaattt 1140
attccatcaa gtgctccctt atcacaagac cgtctatggc aggcagttga aagtttgact 1200
caaagcaatg aaacaatcgt tgctgaacaa ggaacctcat tttttggagc ttcaacaatt 1260
ttcttaaaat caaatagtcg ttttattgga caacctttat ggggttctat tggatatact 1320
tttccagcgg ctttaggaag ccaaattgcg gataaagaga gcagacacct tttatttatt 1380
ggtgatggtt cacttcaact taccgtacaa gaattaggac tatcaatcag agaaaaactc 1440
aatccaattt gttttatcat aaataatgat ggttatacag ttgaaagaga aatccacgga 1500
cctactcaaa gttataacga cattccaatg tggaattact cgaaattacc agaaacattt 1560
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aaaacattag gattttccta atgttttt 1828
<210> 27
<211> 548
<212> PRT
<213> Lactococcus lactis
<400> 27
Met Tyr Thr Val Gly Asp Tyr Leu Leu Asp Arg Leu His Glu Leu Gly
1 5 10 15
Ile Glu Glu Ile Phe Gly Val Pro Gly Asp Tyr Asn Leu Gln Phe Leu
20 25 30
Asp Gln Ile Ile Ser His Lys Asp Met Lys Trp Val Gly Asn Ala Asn
35 40 45
Glu Leu Asn Ala Ser Tyr Met Ala Asp Gly Tyr Ala Arg Thr Lys Lys
50 55 60
Ala Ala Ala Phe Leu Thr Thr Phe Gly Val Gly Glu Leu Ser Ala Val
65 70 75 80
Asn Gly Leu Ala Gly Ser Tyr Ala Glu Asn Leu Pro Val Val Glu Ile
85 90 95
Val Gly Ser Pro Thr Ser Lys Val Gln Asn Glu Gly Lys Phe Val His
100 105 110
His Thr Leu Ala Asp Gly Asp Phe Lys His Phe Met Lys Met His Glu
115 120 125
Pro Val Thr Ala Ala Arg Thr Leu Leu Thr Ala Glu Asn Ala Thr Val
130 135 140
Glu Ile Asp Arg Val Leu Ser Ala Leu Leu Lys Glu Arg Lys Pro Val
145 150 155 160
Tyr Ile Asn Leu Pro Val Asp Val Ala Ala Ala Lys Ala Glu Lys Pro
165 170 175
Ser Leu Pro Leu Lys Lys Glu Asn Ser Thr Ser Asn Thr Ser Asp Gln
180 185 190
Glu Ile Leu Asn Lys Ile Gln Glu Ser Leu Lys Asn Ala Lys Lys Pro
195 200 205
Ile Val Ile Thr Gly His Glu Ile Ile Ser Phe Gly Leu Glu Lys Thr
210 215 220
Val Thr Gln Phe Ile Ser Lys Thr Lys Leu Pro Ile Thr Thr Leu Asn
225 230 235 240
Phe Gly Lys Ser Ser Val Asp Glu Ala Leu Pro Ser Phe Leu Gly Ile
245 250 255
Tyr Asn Gly Thr Leu Ser Glu Pro Asn Leu Lys Glu Phe Val Glu Ser
260 265 270
Ala Asp Phe Ile Leu Met Leu Gly Val Lys Leu Thr Asp Ser Ser Thr
275 280 285
Gly Ala Phe Thr His His Leu Asn Glu Asn Lys Met Ile Ser Leu Asn
290 295 300
Ile Asp Glu Gly Lys Ile Phe Asn Glu Arg Ile Gln Asn Phe Asp Phe
305 310 315 320
Glu Ser Leu Ile Ser Ser Leu Leu Asp Leu Ser Glu Ile Glu Tyr Lys
325 330 335
Gly Lys Tyr Ile Asp Lys Lys Gln Glu Asp Phe Val Pro Ser Asn Ala
340 345 350
Leu Leu Ser Gln Asp Arg Leu Trp Gln Ala Val Glu Asn Leu Thr Gln
355 360 365
Ser Asn Glu Thr Ile Val Ala Glu Gln Gly Thr Ser Phe Phe Gly Ala
370 375 380
Ser Ser Ile Phe Leu Lys Ser Lys Ser His Phe Ile Gly Gln Pro Leu
385 390 395 400
Trp Gly Ser Ile Gly Tyr Thr Phe Pro Ala Ala Leu Gly Ser Gln Ile
405 410 415
Ala Asp Lys Glu Ser Arg His Leu Leu Phe Ile Gly Asp Gly Ser Leu
420 425 430
Gln Leu Thr Val Gln Glu Leu Gly Leu Ala Ile Arg Glu Lys Ile Asn
435 440 445
Pro Ile Cys Phe Ile Ile Asn Asn Asp Gly Tyr Thr Val Glu Arg Glu
450 455 460
Ile His Gly Pro Asn Gln Ser Tyr Asn Asp Ile Pro Met Trp Asn Tyr
465 470 475 480
Ser Lys Leu Pro Glu Ser Phe Gly Ala Thr Glu Asp Arg Val Val Ser
485 490 495
Lys Ile Val Arg Thr Glu Asn Glu Phe Val Ser Val Met Lys Glu Ala
500 505 510
Gln Ala Asp Pro Asn Arg Met Tyr Trp Ile Glu Leu Ile Leu Ala Lys
515 520 525
Glu Gly Ala Pro Lys Val Leu Lys Lys Met Gly Lys Leu Phe Ala Glu
530 535 540
Gln Asn Lys Ser
545
<210> 28
<211> 1954
<212> DNA
<213> Lactococcus lactis
<400> 28
ctagagtttt ctttagtcat aattcactcc ttttattagt ctattatact tgataattca 60
aataagtcaa tatcgttgac ttatttaaag aaaagcgtta ttctataaat gtcaagttga 120
ttgaccaata tataataaaa tatggaggaa tgcgatgtat acagtaggag attacctatt 180
agaccgatta cacgagttag gaattgaaga aatttttgga gtccctggag actataactt 240
acaattttta gatcaaatta tttcccacaa ggatatgaaa tgggtcggaa atgctaatga 300
attaaatgct tcatatatgg ctgatggcta tgctcgtact aaaaaagctg ccgcatttct 360
tacaaccttt ggagtaggtg aattgagtgc agttaatgga ttagcaggaa gttacgccga 420
aaatttacca gtagtagaaa tagtgggatc acctacatca aaagttcaaa atgaaggaaa 480
atttgttcat catacgctgg ctgacggtga ttttaaacac tttatgaaaa tgcacgaacc 540
tgttacagca gctcgaactt tactgacagc agaaaatgca accgttgaaa ttgaccgagt 600
actttctgca ctattaaaag aaagaaaacc tgtctatatc aacttaccag ttgatgttgc 660
tgctgcaaaa gcagagaaac cctcactccc tttgaaaaag gaaaactcaa cttcaaatac 720
aagtgaccaa gaaattttga acaaaattca agaaagcttg aaaaatgcca aaaaaccaat 780
cgtgattaca ggacatgaaa taattagttt tggcttagaa aaaacagtca ctcaatttat 840
ttcaaagaca aaactaccta ttacgacatt aaactttggt aaaagttcag ttgatgaagc 900
cctcccttca tttttaggaa tctataatgg tacactctca gagcctaatc ttaaagaatt 960
cgtggaatca gccgacttca tcttgatgct tggagttaaa ctcacagact cttcaacagg 1020
agccttcact catcatttaa atgaaaataa aatgatttca ctgaatatag atgaaggaaa 1080
aatatttaac gaaagaatcc aaaattttga ttttgaatcc ctcatctcct ctctcttaga 1140
cctaagcgaa atagaataca aaggaaaata tatcgataaa aagcaagaag actttgttcc 1200
atcaaatgcg cttttatcac aagaccgcct atggcaagca gttgaaaacc taactcaaag 1260
caatgaaaca atcgttgctg aacaagggac atcattcttt ggcgcttcat caattttctt 1320
aaaatcaaag agtcatttta ttggtcaacc cttatgggga tcaattggat atacattccc 1380
agcagcatta ggaagccaaa ttgcagataa agaaagcaga caccttttat ttattggtga 1440
tggttcactt caacttacag tgcaagaatt aggattagca atcagagaaa aaattaatcc 1500
aatttgcttt attatcaata atgatggtta tacagtcgaa agagaaattc atggaccaaa 1560
tcaaagctac aatgatattc caatgtggaa ttactcaaaa ttaccagaat cgtttggagc 1620
aacagaagat cgagtagtct caaaaatcgt tagaactgaa aatgaatttg tgtctgtcat 1680
gaaagaagct caagcagatc caaatagaat gtactggatt gagttaattt tggcaaaaga 1740
aggtgcacca aaagtactga aaaaaatggg caaactattt gctgaacaaa ataaatcata 1800
atttataaat agtaaaaaac attaggaaat acctaatgtt tttttgttga ctaaatcaat 1860
ccctctttat atagaaaacc ttagtttctc aaagacaact taattaagcc tgccaaattg 1920
gaactcgcaa aatgtaatct atcctctgct ccta 1954
<210> 29
<211> 550
<212> PRT
<213> Salmonella typhimurium
<400> 29
Met Gln Asn Pro Tyr Thr Val Ala Asp Tyr Leu Leu Asp Arg Leu Ala
1 5 10 15
Gly Cys Gly Ile Gly His Leu Phe Gly Val Pro Gly Asp Tyr Asn Leu
20 25 30
Gln Phe Leu Asp His Val Ile Asp His Pro Thr Leu Arg Trp Val Gly
35 40 45
Cys Ala Asn Glu Leu Asn Ala Ala Tyr Ala Ala Asp Gly Tyr Ala Arg
50 55 60
Met Ser Gly Ala Gly Ala Leu Leu Thr Thr Phe Gly Val Gly Glu Leu
65 70 75 80
Ser Ala Ile Asn Gly Ile Ala Gly Ser Tyr Ala Glu Tyr Val Pro Val
85 90 95
Leu His Ile Val Gly Ala Pro Cys Ser Ala Ala Gln Gln Arg Gly Glu
100 105 110
Leu Met His His Thr Leu Gly Asp Gly Asp Phe Arg His Phe Tyr Arg
115 120 125
Met Ser Gln Ala Ile Ser Ala Ala Ser Ala Ile Leu Asp Glu Gln Asn
130 135 140
Ala Cys Phe Glu Ile Asp Arg Val Leu Gly Glu Met Leu Ala Ala Arg
145 150 155 160
Arg Pro Gly Tyr Ile Met Leu Pro Ala Asp Val Ala Lys Lys Thr Ala
165 170 175
Ile Pro Pro Thr Gln Ala Leu Ala Leu Pro Val His Glu Ala Gln Ser
180 185 190
Gly Val Glu Thr Ala Phe Arg Tyr His Ala Arg Gln Cys Leu Met Asn
195 200 205
Ser Arg Arg Ile Ala Leu Leu Ala Asp Phe Leu Ala Gly Arg Phe Gly
210 215 220
Leu Arg Pro Leu Leu Gln Arg Trp Met Ala Glu Thr Pro Ile Ala His
225 230 235 240
Ala Thr Leu Leu Met Gly Lys Gly Leu Phe Asp Glu Gln His Pro Asn
245 250 255
Phe Val Gly Thr Tyr Ser Ala Gly Ala Ser Ser Lys Glu Val Arg Gln
260 265 270
Ala Ile Glu Asp Ala Asp Arg Val Ile Cys Val Gly Thr Arg Phe Val
275 280 285
Asp Thr Leu Thr Ala Gly Phe Thr Gln Gln Leu Pro Ala Glu Arg Thr
290 295 300
Leu Glu Ile Gln Pro Tyr Ala Ser Arg Ile Gly Glu Thr Trp Phe Asn
305 310 315 320
Leu Pro Met Ala Gln Ala Val Ser Thr Leu Arg Glu Leu Cys Leu Glu
325 330 335
Cys Ala Phe Ala Pro Pro Pro Thr Arg Ser Ala Gly Gln Pro Val Arg
340 345 350
Ile Asp Lys Gly Glu Leu Thr Gln Glu Ser Phe Trp Gln Thr Leu Gln
355 360 365
Gln Tyr Leu Lys Pro Gly Asp Ile Ile Leu Val Asp Gln Gly Thr Ala
370 375 380
Ala Phe Gly Ala Ala Ala Leu Ser Leu Pro Asp Gly Ala Glu Val Val
385 390 395 400
Leu Gln Pro Leu Trp Gly Ser Ile Gly Tyr Ser Leu Pro Ala Ala Phe
405 410 415
Gly Ala Gln Thr Ala Cys Pro Asp Arg Arg Val Ile Leu Ile Ile Gly
420 425 430
Asp Gly Ala Ala Gln Leu Thr Ile Gln Glu Met Gly Ser Met Leu Arg
435 440 445
Asp Gly Gln Ala Pro Val Ile Leu Leu Leu Asn Asn Asp Gly Tyr Thr
450 455 460
Val Glu Arg Ala Ile His Gly Ala Ala Gln Arg Tyr Asn Asp Ile Ala
465 470 475 480
Ser Trp Asn Trp Thr Gln Ile Pro Pro Ala Leu Asn Ala Ala Gln Gln
485 490 495
Ala Glu Cys Trp Arg Val Thr Gln Ala Ile Gln Leu Ala Glu Val Leu
500 505 510
Glu Arg Leu Ala Arg Pro Gln Arg Leu Ser Phe Ile Glu Val Met Leu
515 520 525
Pro Lys Ala Asp Leu Pro Glu Leu Leu Arg Thr Val Thr Arg Ala Leu
530 535 540
Glu Ala Arg Asn Gly Gly
545 550
<210> 30
<211> 1653
<212> DNA
<213> Salmonella typhimurium
<400> 30
ttatcccccg ttgcgggctt ccagcgcccg ggtcacggta cgcagtaatt ccggcagatc 60
ggcttttggc aacatcactt caataaatga cagacgttgt gggcgcgcca accgttcgag 120
gacctctgcc agttggatag cctgcgtcac ccgccagcac tccgcctgtt gcgccgcgtt 180
tagcgccggt ggtatctgcg tccagttcca gctcgcgatg tcgttatacc gctgggccgc 240
gccgtgaatg gcgcgctcta cggtatagcc gtcattgttg agcagcagga tgaccggcgc 300
ctgcccgtcg cgtaacatcg agcccatctc ctgaatcgtg agctgcgccg cgccatcgcc 360
gataatcaga atcacccgcc gatcgggaca ggcggtttgc gcgccaaacg cggcgggcaa 420
ggaatagccg atagaccccc acagcggctg taacacaact tccgcgccgt caggaagcga 480
cagcgcggca gcgccaaaag ctgctgtccc ctggtcgaca aggataatat ctccgggttt 540
gagatactgc tgtaaggttt gccagaagct ttcctgggtc agttctcctt tatcaatccg 600
cactggctgt ccggcggaac gcgtcggcgg cggcgcaaaa gcgcattcca ggcacagttc 660
gcgcagcgta gacaccgcct gcgccatcgg gaggttgaac caggtttcgc cgatgcgcga 720
cgcgtaaggc tgaatctcca gcgtgcgttc cgccggtaat tgttgggtaa atccggccgt 780
aagggtatcg acaaaacggg tgccgacgca gataacccta tcggcgtcct ctatggcctg 840
acgcacttct ttgctgctgg cgccagcgct ataggtgcca acgaagttcg ggtgctgttc 900
atcaaaaagc cccttcccca tcagtagtgt cgcatgagcg atgggcgttt ccgccatcca 960
gcgctgcaac agtggtcgta aaccaaaacg cccggcaaga aagtcggcca atagcgcaat 1020
gcgccgactg ttcatcaggc actgacgggc gtgataacga aaggccgtct ccacgccgct 1080
ttgcgcttca tgcacgggca acgccagcgc ctgcgtaggt gggatggccg tttttttcgc 1140
cacatcggcg ggcaacatga tgtatcctgg cctgcgtgcg gcaagcattt cacccaacac 1200
gcggtcaatc tcgaaacagg cgttctgttc atctaatatt gcgctggcag cggatatcgc 1260
ctgactcatg cgataaaaat gacgaaaatc gccgtcaccg agggtatggt gcatcaattc 1320
gccacgctgc tgcgcagcgc tacagggcgc gccgacgata tgcaagaccg ggacatattc 1380
cgcgtaactg cccgcgatac cgttaatagc gctaagttct cccacgccaa aggtggtgag 1440
tagcgctcca gcgcccgaca tgcgcgcata gccgtccgcg gcataagcgg cgttcagctc 1500
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caaatagtcg gccacggtat aggggttttg cat 1653
<210> 31
<211> 554
<212> PRT
<213> Clostridium acetobutylicum
<400> 31
Met Lys Ser Glu Tyr Thr Ile Gly Arg Tyr Leu Leu Asp Arg Leu Ser
1 5 10 15
Glu Leu Gly Ile Arg His Ile Phe Gly Val Pro Gly Asp Tyr Asn Leu
20 25 30
Ser Phe Leu Asp Tyr Ile Met Glu Tyr Lys Gly Ile Asp Trp Val Gly
35 40 45
Asn Cys Asn Glu Leu Asn Ala Gly Tyr Ala Ala Asp Gly Tyr Ala Arg
50 55 60
Ile Asn Gly Ile Gly Ala Ile Leu Thr Thr Phe Gly Val Gly Glu Leu
65 70 75 80
Ser Ala Ile Asn Ala Ile Ala Gly Ala Tyr Ala Glu Gln Val Pro Val
85 90 95
Val Lys Ile Thr Gly Ile Pro Thr Ala Lys Val Arg Asp Asn Gly Leu
100 105 110
Tyr Val His His Thr Leu Gly Asp Gly Arg Phe Asp His Phe Phe Glu
115 120 125
Met Phe Arg Glu Val Thr Val Ala Glu Ala Leu Leu Ser Glu Glu Asn
130 135 140
Ala Ala Gln Glu Ile Asp Arg Val Leu Ile Ser Cys Trp Arg Gln Lys
145 150 155 160
Arg Pro Val Leu Ile Asn Leu Pro Ile Asp Val Tyr Asp Lys Pro Ile
165 170 175
Asn Lys Pro Leu Lys Pro Leu Leu Asp Tyr Thr Ile Ser Ser Asn Lys
180 185 190
Glu Ala Ala Cys Glu Phe Val Thr Glu Ile Val Pro Ile Ile Asn Arg
195 200 205
Ala Lys Lys Pro Val Ile Leu Ala Asp Tyr Gly Val Tyr Arg Tyr Gln
210 215 220
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225 230 235 240
Ala Thr Leu Ser Met Gly Lys Gly Val Phe Asn Glu Ala His Pro Gln
245 250 255
Phe Ile Gly Val Tyr Asn Gly Asp Val Ser Ser Pro Tyr Leu Arg Gln
260 265 270
Arg Val Asp Glu Ala Asp Cys Ile Ile Ser Val Gly Val Lys Leu Thr
275 280 285
Asp Ser Thr Thr Gly Gly Phe Ser His Gly Phe Ser Lys Arg Asn Val
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Pro Ile Thr Met Lys Asp Ala Leu Thr Glu Leu Thr Ser Lys Ile Glu
325 330 335
His Arg Asn Phe Glu Asp Leu Asp Ile Lys Pro Tyr Lys Ser Asp Asn
340 345 350
Gln Lys Tyr Phe Ala Lys Glu Lys Pro Ile Thr Gln Lys Arg Phe Phe
355 360 365
Glu Arg Ile Ala His Phe Ile Lys Glu Lys Asp Val Leu Leu Ala Glu
370 375 380
Gln Gly Thr Cys Phe Phe Gly Ala Ser Thr Ile Gln Leu Pro Lys Asp
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Ala Thr Phe Ile Gly Gln Pro Leu Trp Gly Ser Ile Gly Tyr Thr Leu
405 410 415
Pro Ala Leu Leu Gly Ser Gln Leu Ala Asp Gln Lys Arg Arg Asn Ile
420 425 430
Leu Leu Ile Gly Asp Gly Ala Phe Gln Met Thr Ala Gln Glu Ile Ser
435 440 445
Thr Met Leu Arg Leu Gln Ile Lys Pro Ile Ile Phe Leu Ile Asn Asn
450 455 460
Asp Gly Tyr Thr Ile Glu Arg Ala Ile His Gly Arg Glu Gln Val Tyr
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Asn Asn Ile Gln Met Trp Arg Tyr His Asn Val Pro Lys Val Leu Gly
485 490 495
Pro Lys Glu Cys Ser Leu Thr Phe Lys Val Gln Ser Glu Thr Glu Leu
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Glu Lys Ala Leu Leu Val Ala Asp Lys Asp Cys Glu His Leu Ile Phe
515 520 525
Ile Glu Val Val Met Asp Arg Tyr Asp Lys Pro Glu Pro Leu Glu Arg
530 535 540
Leu Ser Lys Arg Phe Ala Asn Gln Asn Asn
545 550
<210> 32
<211> 1665
<212> DNA
<213> Clostridium acetobutylicum
<400> 32
ttgaagagtg aatacacaat tggaagatat ttgttagacc gtttatcaga gttgggtatt 60
cggcatatct ttggtgtacc tggagattac aatctatcct ttttagacta tataatggag 120
tacaaaggga tagattgggt tggaaattgc aatgaattga atgctgggta tgctgctgat 180
ggatatgcaa gaataaatgg aattggagcc atacttacaa catttggtgt tggagaatta 240
agtgccatta acgcaattgc tggggcatac gctgagcaag ttccagttgt taaaattaca 300
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ggaaggtttg atcacttttt tgaaatgttt agagaagtaa cagttgctga ggcattacta 420
agcgaagaaa atgcagcaca agaaattgat cgtgttctta tttcatgctg gagacaaaaa 480
cgtcctgttc ttataaattt accgattgat gtatatgata aaccaattaa caaaccatta 540
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gaaatagtac ctataataaa tagggcaaaa aagcctgtta ttcttgcaga ttatggagta 660
tatcgttacc aagttcaaca tgtgcttaaa aacttggccg aaaaaaccgg atttcctgtg 720
gctacactaa gtatgggaaa aggtgttttc aatgaagcac accctcaatt tattggtgtt 780
tataatggtg atgtaagttc tccttattta aggcagcgag ttgatgaagc agactgcatt 840
attagcgttg gtgtaaaatt gacggattca accacagggg gattttctca tggattttct 900
aaaaggaatg taattcacat tgatcctttt tcaataaagg caaaaggtaa aaaatatgca 960
cctattacga tgaaagatgc tttaacagaa ttaacaagta aaattgagca tagaaacttt 1020
gaggatttag atataaagcc ttacaaatca gataatcaaa agtattttgc aaaagagaag 1080
ccaattacac aaaaacgttt ttttgagcgt attgctcact ttataaaaga aaaagatgta 1140
ttattagcag aacagggtac atgctttttt ggtgcgtcaa ccatacaact acccaaagat 1200
gcaactttta ttggtcaacc tttatgggga tctattggat acacacttcc tgctttatta 1260
ggttcacaat tagctgatca aaaaaggcgt aatattcttt taattgggga tggtgcattt 1320
caaatgacag cacaagaaat ttcaacaatg cttcgtttac aaatcaaacc tattattttt 1380
ttaattaata acgatggtta tacaattgaa cgtgctattc atggtagaga acaagtatat 1440
aacaatattc aaatgtggcg atatcataat gttccaaagg ttttaggtcc taaagaatgc 1500
agcttaacct ttaaagtaca aagtgaaact gaacttgaaa aggctctttt agtggcagat 1560
aaggattgtg aacatttgat ttttatagaa gttgttatgg atcgttatga taaacccgag 1620
cctttagaac gtctttcgaa acgttttgca aatcaaaata attag 1665
<210> 33
<211> 1641
<212> DNA
<213> Clostridium acetobutylicum
<400> 33
atgaaacaac gtatcgggca atacttgatc gatgccctac acgttaatgg tgtcgataag 60
atctttggag tcccaggtga tttcacttta gcctttttgg acgatatcat aagacatgac 120
aacgtggaat gggtgggaaa tactaatgag ttgaacgccg cttacgccgc tgatggttac 180
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ccttcatcag ttgctcaaca agagggtaga tatgtccacc attcattggg tgaaggaatc 360
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cacgaacaac tggaacagtt tgtcaatcag acaaacatcc ctgttgcaca actttccttg 720
ggtaagtctg ctttcaatga agagaatgaa cattaccttg gtatctacga tggcaaaatc 780
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gatcttgtga atggcctgaa ttctattgac tatagaaatg aaacacacta cccatcttat 1020
caaagatctg atatgaaata cgaattgaat gacgcaccac ttacacaatc taactatttc 1080
aaaatgatga acgcttttct agaaaaagat gacatcctac tagctgaaca aggtacatcc 1140
tttttcggcg catatgactt atccctatac aagggaaatc agtttatcgg tcagccttta 1200
tgggggtcaa tagggtatac ttttccatct ttactaggaa gtcaactagc agacatgcat 1260
aggagaaaca ttttgcttat aggcgatggt agtttacaac ttactgttca agccctaagt 1320
acaatgatta gaaaggatat caaaccaatc attttcgtta tcaataacga cggttacacc 1380
gtcgaaagac ttatccacgg catggaagag ccatacaatg atatccaaat gtggaactac 1440
aagcaattgc cagaagtatt tggtggaaaa gatactgtaa aagttcatga tgctaaaacc 1500
tccaacgaac tgaaaactgt aatggattct gttaaagcag acaaagatca catgcatttc 1560
attgaagtgc atatggcagt agaggacgcc ccaaagaagt tgattgatat agctaaagcc 1620
tttagtgatg ctaacaagta a 1641
<210> 34
<211> 1647
<212> DNA
<213> Listeria grayi
<400> 34
atgtacaccg tcggccaata cttagtagac cgcttagaag agatcggcat cgataaggtt 60
tttggtgtcc cgggtgacta caacctgacc tttttggact acatccagaa ccacgaaggt 120
ctgagctggc aaggtaatac gaatgaactg aatgccgcgt acgcagctga tggctatgct 180
cgtgaacgcg gtgttagcgc tttggtcacg accttcggcg ttggtgagct gtccgcaatc 240
aatggcaccg caggtagctt cgcggagcaa gttccggtga ttcatatcgt gggcagcccg 300
accatgaatg ttcagagcaa caagaaactg gttcatcaca gcctgggtat gggcaacttt 360
cacaacttca gcgagatggc gaaagaagtc accgccgcaa ccacgatgct gacggaagag 420
aatgcggcgt cggagattga tcgtgttctg gaaaccgccc tgctggagaa acgcccagtg 480
tacatcaatc tgccgatcga cattgctcac aaggcgatcg tcaagccggc gaaagccctg 540
caaaccgaga agagctctgg cgagcgtgag gcacaactgg cggagatcat tctgagccat 600
ctggagaagg ctgcacagcc gattgtgatt gcgggtcacg agatcgcgcg cttccagatc 660
cgtgagcgtt tcgagaattg gattaatcaa acgaaactgc cggtgaccaa tctggcctac 720
ggcaagggta gcttcaacga agaaaacgag catttcattg gtacctatta tcctgcattt 780
agcgataaga acgtgctgga ctacgtggat aactccgact ttgtcctgca ctttggtggt 840
aaaatcattg ataacagcac ctccagcttc tcccaaggct tcaaaaccga gaacaccctg 900
actgcggcga acgatatcat tatgctgccg gacggtagca cgtattctgg tattagcctg 960
aatggcctgc tggccgagct ggaaaaactg aatttcacgt ttgccgacac cgcagcaaag 1020
caggcggagt tggcggtgtt tgagccgcag gctgaaaccc cgttgaaaca ggaccgtttt 1080
caccaggcgg tgatgaattt tctgcaagct gacgatgtcc tggttacgga acagggcacc 1140
tcttcttttg gcttgatgct ggcgcctctg aaaaagggta tgaacttgat ctcgcaaacg 1200
ctgtggggta gcattggtta cacgttgccg gcgatgattg gtagccaaat tgcggcaccg 1260
gagcgtcgtc atatcctgag cattggtgat ggtagctttc agctgactgc gcaggaaatg 1320
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accgttgagc gtgcgatcca tggcgaagat gaaagctata acgacattcc gacgtggaac 1440
ttgcaactgg tggcggaaac cttcggtggt gacgccgaaa ccgtcgacac tcacaatgtg 1500
ttcacggaga ctgatttcgc caacaccctg gcggcaattg acgcgacgcc gcagaaagca 1560
cacgttgtgg aagttcacat ggaacaaatg gatatgccgg agagcctgcg ccagatcggt 1620
ctggcactgt ccaagcagaa tagctaa 1647
<210> 35
<211> 312
<212> PRT
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 35
Met Pro Ala Thr Leu Lys Asn Ser Ser Ala Thr Leu Lys Leu Asn Thr
1 5 10 15
Gly Ala Ser Ile Pro Val Leu Gly Phe Gly Thr Trp Arg Ser Val Asp
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Asn Asn Gly Tyr His Ser Val Ile Ala Ala Leu Lys Ala Gly Tyr Arg
35 40 45
His Ile Asp Ala Ala Ala Ile Tyr Leu Asn Glu Glu Glu Val Gly Arg
50 55 60
Ala Ile Lys Asp Ser Gly Val Pro Arg Glu Glu Ile Phe Ile Thr Thr
65 70 75 80
Lys Leu Trp Gly Thr Glu Gln Arg Asp Pro Glu Ala Ala Leu Asn Lys
85 90 95
Ser Leu Lys Arg Leu Gly Leu Asp Tyr Val Asp Leu Tyr Leu Met His
100 105 110
Trp Pro Val Pro Leu Lys Thr Asp Arg Val Thr Asp Gly Asn Val Leu
115 120 125
Cys Ile Pro Thr Leu Glu Asp Gly Thr Val Asp Ile Asp Thr Lys Glu
130 135 140
Trp Asn Phe Ile Lys Thr Trp Glu Leu Met Gln Glu Leu Pro Lys Thr
145 150 155 160
Gly Lys Thr Lys Ala Val Gly Val Ser Asn Phe Ser Ile Asn Asn Ile
165 170 175
Lys Glu Leu Leu Glu Ser Pro Asn Asn Lys Val Val Pro Ala Thr Asn
180 185 190
Gln Ile Glu Ile His Pro Leu Leu Pro Gln Asp Glu Leu Ile Ala Phe
195 200 205
Cys Lys Glu Lys Gly Ile Val Val Glu Ala Tyr Ser Pro Phe Gly Ser
210 215 220
Ala Asn Ala Pro Leu Leu Lys Glu Gln Ala Ile Ile Asp Met Ala Lys
225 230 235 240
Lys His Gly Val Glu Pro Ala Gln Leu Ile Ile Ser Trp Ser Ile Gln
245 250 255
Arg Gly Tyr Val Val Leu Ala Lys Ser Val Asn Pro Glu Arg Ile Val
260 265 270
Ser Asn Phe Lys Ile Phe Thr Leu Pro Glu Asp Asp Phe Lys Thr Ile
275 280 285
Ser Asn Leu Ser Lys Val His Gly Thr Lys Arg Val Val Asp Met Lys
290 295 300
Trp Gly Ser Phe Pro Ile Phe Gln
305 310
<210> 36
<211> 939
<212> DNA
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 36
atgcctgcta cgttaaagaa ttcttctgct acattaaaac taaatactgg tgcctccatt 60
ccagtgttgg gtttcggcac ttggcgttcc gttgacaata acggttacca ttctgtaatt 120
gcagctttga aagctggata cagacacatt gatgctgcgg ctatctattt gaatgaagaa 180
gaagttggca gggctattaa agattccgga gtccctcgtg aggaaatttt tattactact 240
aagctttggg gtacggaaca acgtgatccg gaagctgctc taaacaagtc tttgaaaaga 300
ctaggcttgg attatgttga cctatatctg atgcattggc cagtgccttt gaaaaccgac 360
agagttactg atggtaacgt tctgtgcatt ccaacattag aagatggcac tgttgacatc 420
gatactaagg aatggaattt tatcaagacg tgggagttga tgcaagagtt gccaaagacg 480
ggcaaaacta aagccgttgg tgtctctaat ttttctatta acaacattaa agaattatta 540
gaatctccaa ataacaaggt ggtaccagct actaatcaaa ttgaaattca tccattgcta 600
ccacaagacg aattgattgc cttttgtaag gaaaagggta ttgttgttga agcctactca 660
ccatttggga gtgctaatgc tcctttacta aaagagcaag caattattga tatggctaaa 720
aagcacggcg ttgagccagc acagcttatt atcagttgga gtattcaaag aggctacgtt 780
gttctggcca aatcggttaa tcctgaaaga attgtatcca attttaagat tttcactctg 840
cctgaggatg atttcaagac tattagtaac ctatccaaag tgcatggtac aaagagagtc 900
gttgatatga agtggggatc cttcccaatt ttccaatga 939
<210> 37
<211> 360
<212> PRT
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 37
Met Ser Tyr Pro Glu Lys Phe Glu Gly Ile Ala Ile Gln Ser His Glu
1 5 10 15
Asp Trp Lys Asn Pro Lys Lys Thr Lys Tyr Asp Pro Lys Pro Phe Tyr
20 25 30
Asp His Asp Ile Asp Ile Lys Ile Glu Ala Cys Gly Val Cys Gly Ser
35 40 45
Asp Ile His Cys Ala Ala Gly His Trp Gly Asn Met Lys Met Pro Leu
50 55 60
Val Val Gly His Glu Ile Val Gly Lys Val Val Lys Leu Gly Pro Lys
65 70 75 80
Ser Asn Ser Gly Leu Lys Val Gly Gln Arg Val Gly Val Gly Ala Gln
85 90 95
Val Phe Ser Cys Leu Glu Cys Asp Arg Cys Lys Asn Asp Asn Glu Pro
100 105 110
Tyr Cys Thr Lys Phe Val Thr Thr Tyr Ser Gln Pro Tyr Glu Asp Gly
115 120 125
Tyr Val Ser Gln Gly Gly Tyr Ala Asn Tyr Val Arg Val His Glu His
130 135 140
Phe Val Val Pro Ile Pro Glu Asn Ile Pro Ser His Leu Ala Ala Pro
145 150 155 160
Leu Leu Cys Gly Gly Leu Thr Val Tyr Ser Pro Leu Val Arg Asn Gly
165 170 175
Cys Gly Pro Gly Lys Lys Val Gly Ile Val Gly Leu Gly Gly Ile Gly
180 185 190
Ser Met Gly Thr Leu Ile Ser Lys Ala Met Gly Ala Glu Thr Tyr Val
195 200 205
Ile Ser Arg Ser Ser Arg Lys Arg Glu Asp Ala Met Lys Met Gly Ala
210 215 220
Asp His Tyr Ile Ala Thr Leu Glu Glu Gly Asp Trp Gly Glu Lys Tyr
225 230 235 240
Phe Asp Thr Phe Asp Leu Ile Val Val Cys Ala Ser Ser Leu Thr Asp
245 250 255
Ile Asp Phe Asn Ile Met Pro Lys Ala Met Lys Val Gly Gly Arg Ile
260 265 270
Val Ser Ile Ser Ile Pro Glu Gln His Glu Met Leu Ser Leu Lys Pro
275 280 285
Tyr Gly Leu Lys Ala Val Ser Ile Ser Tyr Ser Ala Leu Gly Ser Ile
290 295 300
Lys Glu Leu Asn Gln Leu Leu Lys Leu Val Ser Glu Lys Asp Ile Lys
305 310 315 320
Ile Trp Val Glu Thr Leu Pro Val Gly Glu Ala Gly Val His Glu Ala
325 330 335
Phe Glu Arg Met Glu Lys Gly Asp Val Arg Tyr Arg Phe Thr Leu Val
340 345 350
Gly Tyr Asp Lys Glu Phe Ser Asp
355 360
<210> 38
<211> 1083
<212> DNA
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 38
ctagtctgaa aattctttgt cgtagccgac taaggtaaat ctatatctaa cgtcaccctt 60
ttccatcctt tcgaaggctt catggacgcc ggcttcacca acaggtaatg tttccaccca 120
aattttgata tctttttcag agactaattt caagagttgg ttcaattctt tgatggaacc 180
taaagcactg taagaaatgg agacagcctt taagccatat ggctttagcg ataacatttc 240
gtgttgttct ggtatagaga ttgagacaat tctaccacca accttcatag cctttggcat 300
aatgttgaag tcaatgtcgg taagggagga agcacagact acaatcaggt cgaaggtgtc 360
aaagtacttt tcaccccaat caccttcttc taatgtagca atgtagtgat cggcgcccat 420
cttcattgca tcttctcttt ttctcgaaga acgagaaata acatacgtct ctgcccccat 480
ggctttggaa atcaatgtac ccatactgcc gataccacca agaccaacta taccaacttt 540
tttacctgga ccgcaaccgt tacgaaccaa tggagagtac acagtcaaac caccacataa 600
tagtggagca gccaaatgtg atggaatatt ctctgggata ggcaccacaa aatgttcatg 660
aactctgacg tagtttgcat agccaccctg cgacacatag ccgtcttcat aaggctgact 720
gtatgtggta acaaacttgg tgcagtatgg ttcattatca ttcttacaac ggtcacattc 780
caagcatgaa aagacttgag cacctacacc aacacgttga ccgactttca acccactgtt 840
tgacttgggc cctagcttga caactttacc aacgatttca tgaccaacga ctagcggcat 900
cttcatattg ccccaatgac cagctgcaca atgaatatca ctaccgcaga caccacatgc 960
ttcgatctta atgtcaatgt catgatcgta aaatggtttt gggtcatact ttgtcttctt 1020
tgggtttttc caatcttcgt gtgattgaat agcgatacct tcaaatttct caggataaga 1080
cat 1083
<210> 39
<211> 387
<212> PRT
<213> Escherichia coli
<400> 39
Met Asn Asn Phe Asn Leu His Thr Pro Thr Arg Ile Leu Phe Gly Lys
1 5 10 15
Gly Ala Ile Ala Gly Leu Arg Glu Gln Ile Pro His Asp Ala Arg Val
20 25 30
Leu Ile Thr Tyr Gly Gly Gly Ser Val Lys Lys Thr Gly Val Leu Asp
35 40 45
Gln Val Leu Asp Ala Leu Lys Gly Met Asp Val Leu Glu Phe Gly Gly
50 55 60
Ile Glu Pro Asn Pro Ala Tyr Glu Thr Leu Met Asn Ala Val Lys Leu
65 70 75 80
Val Arg Glu Gln Lys Val Thr Phe Leu Leu Ala Val Gly Gly Gly Ser
85 90 95
Val Leu Asp Gly Thr Lys Phe Ile Ala Ala Ala Ala Asn Tyr Pro Glu
100 105 110
Asn Ile Asp Pro Trp His Ile Leu Gln Thr Gly Gly Lys Glu Ile Lys
115 120 125
Ser Ala Ile Pro Met Gly Cys Val Leu Thr Leu Pro Ala Thr Gly Ser
130 135 140
Glu Ser Asn Ala Gly Ala Val Ile Ser Arg Lys Thr Thr Gly Asp Lys
145 150 155 160
Gln Ala Phe His Ser Ala His Val Gln Pro Val Phe Ala Val Leu Asp
165 170 175
Pro Val Tyr Thr Tyr Thr Leu Pro Pro Arg Gln Val Ala Asn Gly Val
180 185 190
Val Asp Ala Phe Val His Thr Val Glu Gln Tyr Val Thr Lys Pro Val
195 200 205
Asp Ala Lys Ile Gln Asp Arg Phe Ala Glu Gly Ile Leu Leu Thr Leu
210 215 220
Ile Glu Asp Gly Pro Lys Ala Leu Lys Glu Pro Glu Asn Tyr Asp Val
225 230 235 240
Arg Ala Asn Val Met Trp Ala Ala Thr Gln Ala Leu Asn Gly Leu Ile
245 250 255
Gly Ala Gly Val Pro Gln Asp Trp Ala Thr His Met Leu Gly His Glu
260 265 270
Leu Thr Ala Met His Gly Leu Asp His Ala Gln Thr Leu Ala Ile Val
275 280 285
Leu Pro Ala Leu Trp Asn Glu Lys Arg Asp Thr Lys Arg Ala Lys Leu
290 295 300
Leu Gln Tyr Ala Glu Arg Val Trp Asn Ile Thr Glu Gly Ser Asp Asp
305 310 315 320
Glu Arg Ile Asp Ala Ala Ile Ala Ala Thr Arg Asn Phe Phe Glu Gln
325 330 335
Leu Gly Val Pro Thr His Leu Ser Asp Tyr Gly Leu Asp Gly Ser Ser
340 345 350
Ile Pro Ala Leu Leu Lys Lys Leu Glu Glu His Gly Met Thr Gln Leu
355 360 365
Gly Glu Asn His Asp Ile Thr Leu Asp Val Ser Arg Arg Ile Tyr Glu
370 375 380
Ala Ala Arg
385
<210> 40
<211> 387
<212> PRT
<213> Escherichia coli
<400> 40
Met Asn Asn Phe Asn Leu His Thr Pro Thr Arg Ile Leu Phe Gly Lys
1 5 10 15
Gly Ala Ile Ala Gly Leu Arg Glu Gln Ile Pro His Asp Ala Arg Val
20 25 30
Leu Ile Thr Tyr Gly Gly Gly Ser Val Lys Lys Thr Gly Val Leu Asp
35 40 45
Gln Val Leu Asp Ala Leu Lys Gly Met Asp Val Leu Glu Phe Gly Gly
50 55 60
Ile Glu Pro Asn Pro Ala Tyr Glu Thr Leu Met Asn Ala Val Lys Leu
65 70 75 80
Val Arg Glu Gln Lys Val Thr Phe Leu Leu Ala Val Gly Gly Gly Ser
85 90 95
Val Leu Asp Gly Thr Lys Phe Ile Ala Ala Ala Ala Asn Tyr Pro Glu
100 105 110
Asn Ile Asp Pro Trp His Ile Leu Gln Thr Gly Gly Lys Glu Ile Lys
115 120 125
Ser Ala Ile Pro Met Gly Cys Val Leu Thr Leu Pro Ala Thr Gly Ser
130 135 140
Glu Ser Asn Ala Gly Ala Val Ile Ser Arg Lys Thr Thr Gly Asp Lys
145 150 155 160
Gln Ala Phe His Ser Ala His Val Gln Pro Val Phe Ala Val Leu Asp
165 170 175
Pro Val Tyr Thr Tyr Thr Leu Pro Pro Arg Gln Val Ala Asn Gly Val
180 185 190
Val Asp Ala Phe Val His Thr Val Glu Gln Tyr Val Thr Lys Pro Val
195 200 205
Asp Ala Lys Ile Gln Asp Arg Phe Ala Glu Gly Ile Leu Leu Thr Leu
210 215 220
Ile Glu Asp Gly Pro Lys Ala Leu Lys Glu Pro Glu Asn Tyr Asp Val
225 230 235 240
Arg Ala Asn Val Met Trp Ala Ala Thr Gln Ala Leu Asn Gly Leu Ile
245 250 255
Gly Ala Gly Val Pro Gln Asp Trp Ala Thr His Met Leu Gly His Glu
260 265 270
Leu Thr Ala Met His Gly Leu Asp His Ala Gln Thr Leu Ala Ile Val
275 280 285
Leu Pro Ala Leu Trp Asn Glu Lys Arg Asp Thr Lys Arg Ala Lys Leu
290 295 300
Leu Gln Tyr Ala Glu Arg Val Trp Asn Ile Thr Glu Gly Ser Asp Asp
305 310 315 320
Glu Arg Ile Asp Ala Ala Ile Ala Ala Thr Arg Asn Phe Phe Glu Gln
325 330 335
Leu Gly Val Pro Thr His Leu Ser Asp Tyr Gly Leu Asp Gly Ser Ser
340 345 350
Ile Pro Ala Leu Leu Lys Lys Leu Glu Glu His Gly Met Thr Gln Leu
355 360 365
Gly Glu Asn His Asp Ile Thr Leu Asp Val Ser Arg Arg Ile Tyr Glu
370 375 380
Ala Ala Arg
385
<210> 41
<211> 389
<212> PRT
<213> Clostridium acetobutylicum
<400> 41
Met Leu Ser Phe Asp Tyr Ser Ile Pro Thr Lys Val Phe Phe Gly Lys
1 5 10 15
Gly Lys Ile Asp Val Ile Gly Glu Glu Ile Lys Lys Tyr Gly Ser Arg
20 25 30
Val Leu Ile Val Tyr Gly Gly Gly Ser Ile Lys Arg Asn Gly Ile Tyr
35 40 45
Asp Arg Ala Thr Ala Ile Leu Lys Glu Asn Asn Ile Ala Phe Tyr Glu
50 55 60
Leu Ser Gly Val Glu Pro Asn Pro Arg Ile Thr Thr Val Lys Lys Gly
65 70 75 80
Ile Glu Ile Cys Arg Glu Asn Asn Val Asp Leu Val Leu Ala Ile Gly
85 90 95
Gly Gly Ser Ala Ile Asp Cys Ser Lys Val Ile Ala Ala Gly Val Tyr
100 105 110
Tyr Asp Gly Asp Thr Trp Asp Met Val Lys Asp Pro Ser Lys Ile Thr
115 120 125
Lys Val Leu Pro Ile Ala Ser Ile Leu Thr Leu Ser Ala Thr Gly Ser
130 135 140
Glu Met Asp Gln Ile Ala Val Ile Ser Asn Met Glu Thr Asn Glu Lys
145 150 155 160
Leu Gly Val Gly His Asp Asp Met Arg Pro Lys Phe Ser Val Leu Asp
165 170 175
Pro Thr Tyr Thr Phe Thr Val Pro Lys Asn Gln Thr Ala Ala Gly Thr
180 185 190
Ala Asp Ile Met Ser His Thr Phe Glu Ser Tyr Phe Ser Gly Val Glu
195 200 205
Gly Ala Tyr Val Gln Asp Gly Ile Ala Glu Ala Ile Leu Arg Thr Cys
210 215 220
Ile Lys Tyr Gly Lys Ile Ala Met Glu Lys Thr Asp Asp Tyr Glu Ala
225 230 235 240
Arg Ala Asn Leu Met Trp Ala Ser Ser Leu Ala Ile Asn Gly Leu Leu
245 250 255
Ser Leu Gly Lys Asp Arg Lys Trp Ser Cys His Pro Met Glu His Glu
260 265 270
Leu Ser Ala Tyr Tyr Asp Ile Thr His Gly Val Gly Leu Ala Ile Leu
275 280 285
Thr Pro Asn Trp Met Glu Tyr Ile Leu Asn Asp Asp Thr Leu His Lys
290 295 300
Phe Val Ser Tyr Gly Ile Asn Val Trp Gly Ile Asp Lys Asn Lys Asp
305 310 315 320
Asn Tyr Glu Ile Ala Arg Glu Ala Ile Lys Asn Thr Arg Glu Tyr Phe
325 330 335
Asn Ser Leu Gly Ile Pro Ser Lys Leu Arg Glu Val Gly Ile Gly Lys
340 345 350
Asp Lys Leu Glu Leu Met Ala Lys Gln Ala Val Arg Asn Ser Gly Gly
355 360 365
Thr Ile Gly Ser Leu Arg Pro Ile Asn Ala Glu Asp Val Leu Glu Ile
370 375 380
Phe Lys Lys Ser Tyr
385
<210> 42
<211> 1170
<212> DNA
<213> Clostridium acetobutylicum
<400> 42
ttaataagat tttttaaata tctcaagaac atcctctgca tttattggtc ttaaacttcc 60
tattgttcct ccagaatttc taacagcttg ctttgccatt agttctagtt tatcttttcc 120
tattccaact tctctaagct ttgaaggaat acccaatgaa ttaaagtatt ctctcgtatt 180
tttaatagcc tctcgtgcta tttcatagtt atctttgttc ttgtctattc cccaaacatt 240
tattccataa gaaacaaatt tatgaagtgt atcgtcattt agaatatatt ccatccaatt 300
aggtgttaaa attgcaagtc ctacaccatg tgttatatca taatatgcac ttaactcgtg 360
ttccatagga tgacaactcc attttctatc cttaccaagt gataatagac catttatagc 420
taaacttgaa gcccacatca aattagctct agcctcgtaa tcatcagtct tctccattgc 480
tatttttcca tactttatac atgttcttaa gattgcttct gctataccgt cctgcacata 540
agcaccttca acaccactaa agtaagattc aaaggtgtga ctcataatgt cagctgttcc 600
cgctgctgtt tgatttttag gtactgtaaa agtatatgta ggatctaaca ctgaaaattt 660
aggtctcata tcatcatgtc ctactccaag cttttcatta gtctccatat ttgaaattac 720
tgcaatttga tccatttcag accctgttgc tgaaagagta agtatacttg caattggaag 780
aactttagtt attttagatg gatctttaac catgtcccat gtatcgccat cataataaac 840
tccagctgca attaccttag aacagtctat tgcacttcct ccccctattg ctaatactaa 900
atccacatta ttttctctac atatttctat gccttttttt actgttgtta tcctaggatt 960
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tctatcatat ataccgttcc tttttatact tcctccgcca taaactataa gcactcttga 1080
gccatatttc ttaatttctt ctccaattac gtctattttt ccttttccaa aaaaaacttt 1140
agttggtatt gaataatcaa aacttagcat 1170
<210> 43
<211> 390
<212> PRT
<213> Clostridium acetobutylicum
<400> 43
Met Val Asp Phe Glu Tyr Ser Ile Pro Thr Arg Ile Phe Phe Gly Lys
1 5 10 15
Asp Lys Ile Asn Val Leu Gly Arg Glu Leu Lys Lys Tyr Gly Ser Lys
20 25 30
Val Leu Ile Val Tyr Gly Gly Gly Ser Ile Lys Arg Asn Gly Ile Tyr
35 40 45
Asp Lys Ala Val Ser Ile Leu Glu Lys Asn Ser Ile Lys Phe Tyr Glu
50 55 60
Leu Ala Gly Val Glu Pro Asn Pro Arg Val Thr Thr Val Glu Lys Gly
65 70 75 80
Val Lys Ile Cys Arg Glu Asn Gly Val Glu Val Val Leu Ala Ile Gly
85 90 95
Gly Gly Ser Ala Ile Asp Cys Ala Lys Val Ile Ala Ala Ala Cys Glu
100 105 110
Tyr Asp Gly Asn Pro Trp Asp Ile Val Leu Asp Gly Ser Lys Ile Lys
115 120 125
Arg Val Leu Pro Ile Ala Ser Ile Leu Thr Ile Ala Ala Thr Gly Ser
130 135 140
Glu Met Asp Thr Trp Ala Val Ile Asn Asn Met Asp Thr Asn Glu Lys
145 150 155 160
Leu Ile Ala Ala His Pro Asp Met Ala Pro Lys Phe Ser Ile Leu Asp
165 170 175
Pro Thr Tyr Thr Tyr Thr Val Pro Thr Asn Gln Thr Ala Ala Gly Thr
180 185 190
Ala Asp Ile Met Ser His Ile Phe Glu Val Tyr Phe Ser Asn Thr Lys
195 200 205
Thr Ala Tyr Leu Gln Asp Arg Met Ala Glu Ala Leu Leu Arg Thr Cys
210 215 220
Ile Lys Tyr Gly Gly Ile Ala Leu Glu Lys Pro Asp Asp Tyr Glu Ala
225 230 235 240
Arg Ala Asn Leu Met Trp Ala Ser Ser Leu Ala Ile Asn Gly Leu Leu
245 250 255
Thr Tyr Gly Lys Asp Thr Asn Trp Ser Val His Leu Met Glu His Glu
260 265 270
Leu Ser Ala Tyr Tyr Asp Ile Thr His Gly Val Gly Leu Ala Ile Leu
275 280 285
Thr Pro Asn Trp Met Glu Tyr Ile Leu Asn Asn Asp Thr Val Tyr Lys
290 295 300
Phe Val Glu Tyr Gly Val Asn Val Trp Gly Ile Asp Lys Glu Lys Asn
305 310 315 320
His Tyr Asp Ile Ala His Gln Ala Ile Gln Lys Thr Arg Asp Tyr Phe
325 330 335
Val Asn Val Leu Gly Leu Pro Ser Arg Leu Arg Asp Val Gly Ile Glu
340 345 350
Glu Glu Lys Leu Asp Ile Met Ala Lys Glu Ser Val Lys Leu Thr Gly
355 360 365
Gly Thr Ile Gly Asn Leu Arg Pro Val Asn Ala Ser Glu Val Leu Gln
370 375 380
Ile Phe Lys Lys Ser Val
385 390
<210> 44
<211> 1173
<212> DNA
<213> Clostridium acetobutylicum
<400> 44
gtggttgatt tcgaatattc aataccaact agaatttttt tcggtaaaga taagataaat 60
gtacttggaa gagagcttaa aaaatatggt tctaaagtgc ttatagttta tggtggagga 120
agtataaaga gaaatggaat atatgataaa gctgtaagta tacttgaaaa aaacagtatt 180
aaattttatg aacttgcagg agtagagcca aatccaagag taactacagt tgaaaaagga 240
gttaaaatat gtagagaaaa tggagttgaa gtagtactag ctataggtgg aggaagtgca 300
atagattgcg caaaggttat agcagcagca tgtgaatatg atggaaatcc atgggatatt 360
gtgttagatg gctcaaaaat aaaaagggtg cttcctatag ctagtatatt aaccattgct 420
gcaacaggat cagaaatgga tacgtgggca gtaataaata atatggatac aaacgaaaaa 480
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gaggtgtatt ttagtaatac aaaaacagca tatttgcagg atagaatggc agaagcgtta 660
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gacactaatt ggagtgtaca cttaatggaa catgaattaa gtgcttatta cgacataaca 840
cacggcgtag ggcttgcaat tttaacacct aattggatgg agtatatttt aaataatgat 900
acagtgtaca agtttgttga atatggtgta aatgtttggg gaatagacaa agaaaaaaat 960
cactatgaca tagcacatca agcaatacaa aaaacaagag attactttgt aaatgtacta 1020
ggtttaccat ctagactgag agatgttgga attgaagaag aaaaattgga cataatggca 1080
aaggaatcag taaagcttac aggaggaacc ataggaaacc taagaccagt aaacgcctcc 1140
gaagtcctac aaatattcaa aaaatctgtg taa 1173
<210> 45
<211> 330
<212> PRT
<213> Bacillus subtilis
<400> 45
Met Ser Thr Asn Arg His Gln Ala Leu Gly Leu Thr Asp Gln Glu Ala
1 5 10 15
Val Asp Met Tyr Arg Thr Met Leu Leu Ala Arg Lys Ile Asp Glu Arg
20 25 30
Met Trp Leu Leu Asn Arg Ser Gly Lys Ile Pro Phe Val Ile Ser Cys
35 40 45
Gln Gly Gln Glu Ala Ala Gln Val Gly Ala Ala Phe Ala Leu Asp Arg
50 55 60
Glu Met Asp Tyr Val Leu Pro Tyr Tyr Arg Asp Met Gly Val Val Leu
65 70 75 80
Ala Phe Gly Met Thr Ala Lys Asp Leu Met Met Ser Gly Phe Ala Lys
85 90 95
Ala Ala Asp Pro Asn Ser Gly Gly Arg Gln Met Pro Gly His Phe Gly
100 105 110
Gln Lys Lys Asn Arg Ile Val Thr Gly Ser Ser Pro Val Thr Thr Gln
115 120 125
Val Pro His Ala Val Gly Ile Ala Leu Ala Gly Arg Met Glu Lys Lys
130 135 140
Asp Ile Ala Ala Phe Val Thr Phe Gly Glu Gly Ser Ser Asn Gln Gly
145 150 155 160
Asp Phe His Glu Gly Ala Asn Phe Ala Ala Val His Lys Leu Pro Val
165 170 175
Ile Phe Met Cys Glu Asn Asn Lys Tyr Ala Ile Ser Val Pro Tyr Asp
180 185 190
Lys Gln Val Ala Cys Glu Asn Ile Ser Asp Arg Ala Ile Gly Tyr Gly
195 200 205
Met Pro Gly Val Thr Val Asn Gly Asn Asp Pro Leu Glu Val Tyr Gln
210 215 220
Ala Val Lys Glu Ala Arg Glu Arg Ala Arg Arg Gly Glu Gly Pro Thr
225 230 235 240
Leu Ile Glu Thr Ile Ser Tyr Arg Leu Thr Pro His Ser Ser Asp Asp
245 250 255
Asp Asp Ser Ser Tyr Arg Gly Arg Glu Glu Val Glu Glu Ala Lys Lys
260 265 270
Ser Asp Pro Leu Leu Thr Tyr Gln Ala Tyr Leu Lys Glu Thr Gly Leu
275 280 285
Leu Ser Asp Glu Ile Glu Gln Thr Met Leu Asp Glu Ile Met Ala Ile
290 295 300
Val Asn Glu Ala Thr Asp Glu Ala Glu Asn Ala Pro Tyr Ala Ala Pro
305 310 315 320
Glu Ser Ala Leu Asp Tyr Val Tyr Ala Lys
325 330
<210> 46
<211> 993
<212> DNA
<213> Bacillus subtilis
<400> 46
atgagtacaa accgacatca agcactaggg ctgactgatc aggaagccgt tgatatgtat 60
agaaccatgc tgttagcaag aaaaatcgat gaaagaatgt ggctgttaaa ccgttctggc 120
aaaattccat ttgtaatctc ttgtcaagga caggaagcag cacaggtagg agcggctttc 180
gcacttgacc gtgaaatgga ttatgtattg ccgtactaca gagacatggg tgtcgtgctc 240
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aactcaggag gccgccagat gccgggacat ttcggacaaa agaaaaaccg cattgtgacg 360
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atggagaaaa aggatatcgc agcctttgtt acattcgggg aagggtcttc aaaccaaggc 480
gatttccatg aaggggcaaa ctttgccgct gtccataagc tgccggttat tttcatgtgt 540
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tacagaggcc gtgaagaagt agaggaagcg aaaaaaagtg atcccctgct tacttatcaa 840
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<210> 47
<211> 327
<212> PRT
<213> Bacillus subtilis
<400> 47
Met Ser Val Met Ser Tyr Ile Asp Ala Ile Asn Leu Ala Met Lys Glu
1 5 10 15
Glu Met Glu Arg Asp Ser Arg Val Phe Val Leu Gly Glu Asp Val Gly
20 25 30
Arg Lys Gly Gly Val Phe Lys Ala Thr Ala Gly Leu Tyr Glu Gln Phe
35 40 45
Gly Glu Glu Arg Val Met Asp Thr Pro Leu Ala Glu Ser Ala Ile Ala
50 55 60
Gly Val Gly Ile Gly Ala Ala Met Tyr Gly Met Arg Pro Ile Ala Glu
65 70 75 80
Met Gln Phe Ala Asp Phe Ile Met Pro Ala Val Asn Gln Ile Ile Ser
85 90 95
Glu Ala Ala Lys Ile Arg Tyr Arg Ser Asn Asn Asp Trp Ser Cys Pro
100 105 110
Ile Val Val Arg Ala Pro Tyr Gly Gly Gly Val His Gly Ala Leu Tyr
115 120 125
His Ser Gln Ser Val Glu Ala Ile Phe Ala Asn Gln Pro Gly Leu Lys
130 135 140
Ile Val Met Pro Ser Thr Pro Tyr Asp Ala Lys Gly Leu Leu Lys Ala
145 150 155 160
Ala Val Arg Asp Glu Asp Pro Val Leu Phe Phe Glu His Lys Arg Ala
165 170 175
Tyr Arg Leu Ile Lys Gly Glu Val Pro Ala Asp Asp Tyr Val Leu Pro
180 185 190
Ile Gly Lys Ala Asp Val Lys Arg Glu Gly Asp Asp Ile Thr Val Ile
195 200 205
Thr Tyr Gly Leu Cys Val His Phe Ala Leu Gln Ala Ala Glu Arg Leu
210 215 220
Glu Lys Asp Gly Ile Ser Ala His Val Val Asp Leu Arg Thr Val Tyr
225 230 235 240
Pro Leu Asp Lys Glu Ala Ile Ile Glu Ala Ala Ser Lys Thr Gly Lys
245 250 255
Val Leu Leu Val Thr Glu Asp Thr Lys Glu Gly Ser Ile Met Ser Glu
260 265 270
Val Ala Ala Ile Ile Ser Glu His Cys Leu Phe Asp Leu Asp Ala Pro
275 280 285
Ile Lys Arg Leu Ala Gly Pro Asp Ile Pro Ala Met Pro Tyr Ala Pro
290 295 300
Thr Met Glu Lys Tyr Phe Met Val Asn Pro Asp Lys Val Glu Ala Ala
305 310 315 320
Met Arg Glu Leu Ala Glu Phe
325
<210> 48
<211> 984
<212> DNA
<213> Bacillus subtilis
<400> 48
atgtcagtaa tgtcatatat tgatgcaatc aatttggcga tgaaagaaga aatggaacga 60
gattctcgcg ttttcgtcct tggggaagat gtaggaagaa aaggcggtgt gtttaaagcg 120
acagcgggac tctatgaaca atttggggaa gagcgcgtta tggatacgcc gcttgctgaa 180
tctgcaatcg caggagtcgg tatcggagcg gcaatgtacg gaatgagacc gattgctgaa 240
atgcagtttg ctgatttcat tatgccggca gtcaaccaaa ttatttctga agcggctaaa 300
atccgctacc gcagcaacaa tgactggagc tgtccgattg tcgtcagagc gccatacggc 360
ggaggcgtgc acggagccct gtatcattct caatcagtcg aagcaatttt cgccaaccag 420
cccggactga aaattgtcat gccatcaaca ccatatgacg cgaaagggct cttaaaagcc 480
gcagttcgtg acgaagaccc cgtgctgttt tttgagcaca agcgggcata ccgtctgata 540
aagggcgagg ttccggctga tgattatgtc ctgccaatcg gcaaggcgga cgtaaaaagg 600
gaaggcgacg acatcacagt gatcacatac ggcctgtgtg tccacttcgc cttacaagct 660
gcagaacgtc tcgaaaaaga tggcatttca gcgcatgtgg tggatttaag aacagtttac 720
ccgcttgata aagaagccat catcgaagct gcgtccaaaa ctggaaaggt tcttttggtc 780
acagaagata caaaagaagg cagcatcatg agcgaagtag ccgcaattat atccgagcat 840
tgtctgttcg acttagacgc gccgatcaaa cggcttgcag gtcctgatat tccggctatg 900
ccttatgcgc cgacaatgga aaaatacttt atggtcaacc ctgataaagt ggaagcggcg 960
atgagagaat tagcggagtt ttaa 984
<210> 49
<211> 424
<212> PRT
<213> Bacillus subtilis
<400> 49
Met Ala Ile Glu Gln Met Thr Met Pro Gln Leu Gly Glu Ser Val Thr
1 5 10 15
Glu Gly Thr Ile Ser Lys Trp Leu Val Ala Pro Gly Asp Lys Val Asn
20 25 30
Lys Tyr Asp Pro Ile Ala Glu Val Met Thr Asp Lys Val Asn Ala Glu
35 40 45
Val Pro Ser Ser Phe Thr Gly Thr Ile Thr Glu Leu Val Gly Glu Glu
50 55 60
Gly Gln Thr Leu Gln Val Gly Glu Met Ile Cys Lys Ile Glu Thr Glu
65 70 75 80
Gly Ala Asn Pro Ala Glu Gln Lys Gln Glu Gln Pro Ala Ala Ser Glu
85 90 95
Ala Ala Glu Asn Pro Val Ala Lys Ser Ala Gly Ala Ala Asp Gln Pro
100 105 110
Asn Lys Lys Arg Tyr Ser Pro Ala Val Leu Arg Leu Ala Gly Glu His
115 120 125
Gly Ile Asp Leu Asp Gln Val Thr Gly Thr Gly Ala Gly Gly Arg Ile
130 135 140
Thr Arg Lys Asp Ile Gln Arg Leu Ile Glu Thr Gly Gly Val Gln Glu
145 150 155 160
Gln Asn Pro Glu Glu Leu Lys Thr Ala Ala Pro Ala Pro Lys Ser Ala
165 170 175
Ser Lys Pro Glu Pro Lys Glu Glu Thr Ser Tyr Pro Ala Ser Ala Ala
180 185 190
Gly Asp Lys Glu Ile Pro Val Thr Gly Val Arg Lys Ala Ile Ala Ser
195 200 205
Asn Met Lys Arg Ser Lys Thr Glu Ile Pro His Ala Trp Thr Met Met
210 215 220
Glu Val Asp Val Thr Asn Met Val Ala Tyr Arg Asn Ser Ile Lys Asp
225 230 235 240
Ser Phe Lys Lys Thr Glu Gly Phe Asn Leu Thr Phe Phe Ala Phe Phe
245 250 255
Val Lys Ala Val Ala Gln Ala Leu Lys Glu Phe Pro Gln Met Asn Ser
260 265 270
Met Trp Ala Gly Asp Lys Ile Ile Gln Lys Lys Asp Ile Asn Ile Ser
275 280 285
Ile Ala Val Ala Thr Glu Asp Ser Leu Phe Val Pro Val Ile Lys Asn
290 295 300
Ala Asp Glu Lys Thr Ile Lys Gly Ile Ala Lys Asp Ile Thr Gly Leu
305 310 315 320
Ala Lys Lys Val Arg Asp Gly Lys Leu Thr Ala Asp Asp Met Gln Gly
325 330 335
Gly Thr Phe Thr Val Asn Asn Thr Gly Ser Phe Gly Ser Val Gln Ser
340 345 350
Met Gly Ile Ile Asn Tyr Pro Gln Ala Ala Ile Leu Gln Val Glu Ser
355 360 365
Ile Val Lys Arg Pro Val Val Met Asp Asn Gly Met Ile Ala Val Arg
370 375 380
Asp Met Val Asn Leu Cys Leu Ser Leu Asp His Arg Val Leu Asp Gly
385 390 395 400
Leu Val Cys Gly Arg Phe Leu Gly Arg Val Lys Gln Ile Leu Glu Ser
405 410 415
Ile Asp Glu Lys Thr Ser Val Tyr
420
<210> 50
<211> 1275
<212> DNA
<213> Bacillus subtilis
<400> 50
atggcaattg aacaaatgac gatgccgcag cttggagaaa gcgtaacaga ggggacgatc 60
agcaaatggc ttgtcgcccc cggtgataaa gtgaacaaat acgatccgat cgcggaagtc 120
atgacagata aggtaaatgc agaggttccg tcttctttta ctggtacgat aacagagctt 180
gtgggagaag aaggccaaac cctgcaagtc ggagaaatga tttgcaaaat tgaaacagaa 240
ggcgcgaatc cggctgaaca aaaacaagaa cagccagcag catcagaagc cgctgagaac 300
cctgttgcaa aaagtgctgg agcagccgat cagcccaata aaaagcgcta ctcgccagct 360
gttctccgtt tggccggaga gcacggcatt gacctcgatc aagtgacagg aactggtgcc 420
ggcgggcgca tcacacgaaa agatattcag cgcttaattg aaacaggcgg cgtgcaagaa 480
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ccaaaagaag agacgtcata tcctgcgtct gcagccggtg ataaagaaat ccctgtcaca 600
ggtgtaagaa aagcaattgc ttccaatatg aagcgaagca aaacagaaat tccgcatgct 660
tggacgatga tggaagtcga cgtcacaaat atggttgcat atcgcaacag tataaaagat 720
tcttttaaga agacagaagg ctttaattta acgttcttcg ccttttttgt aaaagcggtc 780
gctcaggcgt taaaagaatt cccgcaaatg aatagcatgt gggcggggga caaaattatt 840
cagaaaaagg atatcaatat ttcaattgca gttgccacag aggattcttt atttgttccg 900
gtgattaaaa acgctgatga aaaaacaatt aaaggcattg cgaaagacat taccggccta 960
gctaaaaaag taagagacgg aaaactcact gcagatgaca tgcagggagg cacgtttacc 1020
gtcaacaaca caggttcgtt cgggtctgtt cagtcgatgg gcattatcaa ctaccctcag 1080
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attgctgtca gagacatggt taatctgtgc ctgtcattag atcacagagt gcttgacggt 1200
ctcgtgtgcg gacgattcct cggacgagtg aaacaaattt tagaatcgat tgacgagaag 1260
acatctgttt actaa 1275
<210> 51
<211> 474
<212> PRT
<213> Bacillus subtilis
<400> 51
Met Ala Thr Glu Tyr Asp Val Val Ile Leu Gly Gly Gly Thr Gly Gly
1 5 10 15
Tyr Val Ala Ala Ile Arg Ala Ala Gln Leu Gly Leu Lys Thr Ala Val
20 25 30
Val Glu Lys Glu Lys Leu Gly Gly Thr Cys Leu His Lys Gly Cys Ile
35 40 45
Pro Ser Lys Ala Leu Leu Arg Ser Ala Glu Val Tyr Arg Thr Ala Arg
50 55 60
Glu Ala Asp Gln Phe Gly Val Glu Thr Ala Gly Val Ser Leu Asn Phe
65 70 75 80
Glu Lys Val Gln Gln Arg Lys Gln Ala Val Val Asp Lys Leu Ala Ala
85 90 95
Gly Val Asn His Leu Met Lys Lys Gly Lys Ile Asp Val Tyr Thr Gly
100 105 110
Tyr Gly Arg Ile Leu Gly Pro Ser Ile Phe Ser Pro Leu Pro Gly Thr
115 120 125
Ile Ser Val Glu Arg Gly Asn Gly Glu Glu Asn Asp Met Leu Ile Pro
130 135 140
Lys Gln Val Ile Ile Ala Thr Gly Ser Arg Pro Arg Met Leu Pro Gly
145 150 155 160
Leu Glu Val Asp Gly Lys Ser Val Leu Thr Ser Asp Glu Ala Leu Gln
165 170 175
Met Glu Glu Leu Pro Gln Ser Ile Ile Ile Val Gly Gly Gly Val Ile
180 185 190
Gly Ile Glu Trp Ala Ser Met Leu His Asp Phe Gly Val Lys Val Thr
195 200 205
Val Ile Glu Tyr Ala Asp Arg Ile Leu Pro Thr Glu Asp Leu Glu Ile
210 215 220
Ser Lys Glu Met Glu Ser Leu Leu Lys Lys Lys Gly Ile Gln Phe Ile
225 230 235 240
Thr Gly Ala Lys Val Leu Pro Asp Thr Met Thr Lys Thr Ser Asp Asp
245 250 255
Ile Ser Ile Gln Ala Glu Lys Asp Gly Glu Thr Val Thr Tyr Ser Ala
260 265 270
Glu Lys Met Leu Val Ser Ile Gly Arg Gln Ala Asn Ile Glu Gly Ile
275 280 285
Gly Leu Glu Asn Thr Asp Ile Val Thr Glu Asn Gly Met Ile Ser Val
290 295 300
Asn Glu Ser Cys Gln Thr Lys Glu Ser His Ile Tyr Ala Ile Gly Asp
305 310 315 320
Val Ile Gly Gly Leu Gln Leu Ala His Val Ala Ser His Glu Gly Ile
325 330 335
Ile Ala Val Glu His Phe Ala Gly Leu Asn Pro His Pro Leu Asp Pro
340 345 350
Thr Leu Val Pro Lys Cys Ile Tyr Ser Ser Pro Glu Ala Ala Ser Val
355 360 365
Gly Leu Thr Glu Asp Glu Ala Lys Ala Asn Gly His Asn Val Lys Ile
370 375 380
Gly Lys Phe Pro Phe Met Ala Ile Gly Lys Ala Leu Val Tyr Gly Glu
385 390 395 400
Ser Asp Gly Phe Val Lys Ile Val Ala Asp Arg Asp Thr Asp Asp Ile
405 410 415
Leu Gly Val His Met Ile Gly Pro His Val Thr Asp Met Ile Ser Glu
420 425 430
Ala Gly Leu Ala Lys Val Leu Asp Ala Thr Pro Trp Glu Val Gly Gln
435 440 445
Thr Ile His Pro His Pro Thr Leu Ser Glu Ala Ile Gly Glu Ala Ala
450 455 460
Leu Ala Ala Asp Gly Lys Ala Ile His Phe
465 470
<210> 52
<211> 1425
<212> DNA
<213> Bacillus subtilis
<400> 52
atggcaactg agtatgacgt agtcattctg ggcggcggta ccggcggtta tgttgcggcc 60
atcagagccg ctcagctcgg cttaaaaaca gccgttgtgg aaaaggaaaa actcggggga 120
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cggacagctc gtgaagccga tcaattcgga gtggaaacgg ctggcgtgtc cctcaacttt 240
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gatctagaga tttcaaaaga aatggaaagt cttcttaaga aaaaaggcat ccagttcata 720
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<210> 53
<211> 410
<212> PRT
<213> Pseudomonas putida
<400> 53
Met Asn Glu Tyr Ala Pro Leu Arg Leu His Val Pro Glu Pro Thr Gly
1 5 10 15
Arg Pro Gly Cys Gln Thr Asp Phe Ser Tyr Leu Arg Leu Asn Asp Ala
20 25 30
Gly Gln Ala Arg Lys Pro Pro Val Asp Val Asp Ala Ala Asp Thr Ala
35 40 45
Asp Leu Ser Tyr Ser Leu Val Arg Val Leu Asp Glu Gln Gly Asp Ala
50 55 60
Gln Gly Pro Trp Ala Glu Asp Ile Asp Pro Gln Ile Leu Arg Gln Gly
65 70 75 80
Met Arg Ala Met Leu Lys Thr Arg Ile Phe Asp Ser Arg Met Val Val
85 90 95
Ala Gln Arg Gln Lys Lys Met Ser Phe Tyr Met Gln Ser Leu Gly Glu
100 105 110
Glu Ala Ile Gly Ser Gly Gln Ala Leu Ala Leu Asn Arg Thr Asp Met
115 120 125
Cys Phe Pro Thr Tyr Arg Gln Gln Ser Ile Leu Met Ala Arg Asp Val
130 135 140
Ser Leu Val Glu Met Ile Cys Gln Leu Leu Ser Asn Glu Arg Asp Pro
145 150 155 160
Leu Lys Gly Arg Gln Leu Pro Ile Met Tyr Ser Val Arg Glu Ala Gly
165 170 175
Phe Phe Thr Ile Ser Gly Asn Leu Ala Thr Gln Phe Val Gln Ala Val
180 185 190
Gly Trp Ala Met Ala Ser Ala Ile Lys Gly Asp Thr Lys Ile Ala Ser
195 200 205
Ala Trp Ile Gly Asp Gly Ala Thr Ala Glu Ser Asp Phe His Thr Ala
210 215 220
Leu Thr Phe Ala His Val Tyr Arg Ala Pro Val Ile Leu Asn Val Val
225 230 235 240
Asn Asn Gln Trp Ala Ile Ser Thr Phe Gln Ala Ile Ala Gly Gly Glu
245 250 255
Ser Thr Thr Phe Ala Gly Arg Gly Val Gly Cys Gly Ile Ala Ser Leu
260 265 270
Arg Val Asp Gly Asn Asp Phe Val Ala Val Tyr Ala Ala Ser Arg Trp
275 280 285
Ala Ala Glu Arg Ala Arg Arg Gly Leu Gly Pro Ser Leu Ile Glu Trp
290 295 300
Val Thr Tyr Arg Ala Gly Pro His Ser Thr Ser Asp Asp Pro Ser Lys
305 310 315 320
Tyr Arg Pro Ala Asp Asp Trp Ser His Phe Pro Leu Gly Asp Pro Ile
325 330 335
Ala Arg Leu Lys Gln His Leu Ile Lys Ile Gly His Trp Ser Glu Glu
340 345 350
Glu His Gln Ala Thr Thr Ala Glu Phe Glu Ala Ala Val Ile Ala Ala
355 360 365
Gln Lys Glu Ala Glu Gln Tyr Gly Thr Leu Ala Asn Gly His Ile Pro
370 375 380
Ser Ala Ala Ser Met Phe Glu Asp Val Tyr Lys Glu Met Pro Asp His
385 390 395 400
Leu Arg Arg Gln Arg Gln Glu Leu Gly Val
405 410
<210> 54
<211> 6643
<212> DNA
<213> Pseudomonas putida
<400> 54
gcatgcctgc aggccgccga tgaaatggtg gaaggtatcg gtaggctggc cctgctcatc 60
gctgaacacg ttacgcccgc tgccggtatc gaccaggctc tggtgaatat gcatggaact 120
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cactaccggt gccagaccca acgctgcgta gcgggcgatc acggccttca gctggccccg 540
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catgccattg gccggcaacg gcaaggctgt cttgtagcgc acctgtttca aggcaaaact 1020
cgagcggata ttcgccacac ccggcaaccg ggtcaggtaa tcgagaaacc gctccagcgc 1080
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ctccatcacc tcgggccgtt cggcaatttc ttcctcgaag cggtgcagcg actgctctac 1200
ctgtttttcc aggctgacat ggatgaacac attcacatcc agccccaacg cctcgggcga 1260
caacaaggtc acctgctggc ggatcacccc cagttcttcc atggcccgca cccggttgaa 1320
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ttcctgcagg ctgttgagaa tgccgatatc ggtacgatcg agtttgcgca tgagacaaaa 1440
tcaccggttt tttgtgttta tgcggaatgt ttatctgccc cgctcggcaa aggcaatcaa 1500
cttgagagaa aaattctcct gccggaccac taagatgtag gggacgctga cttaccagtc 1560
acaagccggt actcagcggc ggccgcttca gagctcacaa aaacaaatac ccgagcgagc 1620
gtaaaaagca tgaacgagta cgcccccctg cgtttgcatg tgcccgagcc caccggccgg 1680
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ccccctgtcg atgtcgacgc tgccgacacc gccgacctgt cctacagcct ggtccgcgtg 1800
ctcgacgagc aaggcgacgc ccaaggcccg tgggctgaag acatcgaccc gcagatcctg 1860
cgccaaggca tgcgcgccat gctcaagacg cggatcttcg acagccgcat ggtggttgcc 1920
cagcgccaga agaagatgtc cttctacatg cagagcctgg gcgaagaagc catcggcagc 1980
ggccaggcgc tggcgcttaa ccgcaccgac atgtgcttcc ccacctaccg tcagcaaagc 2040
atcctgatgg cccgcgacgt gtcgctggtg gagatgatct gccagttgct gtccaacgaa 2100
cgcgaccccc tcaagggccg ccagctgccg atcatgtact cggtacgcga ggccggcttc 2160
ttcaccatca gcggcaacct ggcgacccag ttcgtgcagg cggtcggctg ggccatggcc 2220
tcggcgatca agggcgatac caagattgcc tcggcctgga tcggcgacgg cgccactgcc 2280
gaatcggact tccacaccgc cctcaccttt gcccacgttt accgcgcccc ggtgatcctc 2340
aacgtggtca acaaccagtg ggccatctca accttccagg ccatcgccgg tggcgagtcg 2400
accaccttcg ccggccgtgg cgtgggctgc ggcatcgctt cgctgcgggt ggacggcaac 2460
gacttcgtcg ccgtttacgc cgcttcgcgc tgggctgccg aacgtgcccg ccgtggtttg 2520
ggcccgagcc tgatcgagtg ggtcacctac cgtgccggcc cgcactcgac ctcggacgac 2580
ccgtccaagt accgccctgc cgatgactgg agccacttcc cgctgggtga cccgatcgcc 2640
cgcctgaagc agcacctgat caagatcggc cactggtccg aagaagaaca ccaggccacc 2700
acggccgagt tcgaagcggc cgtgattgct gcgcaaaaag aagccgagca gtacggcacc 2760
ctggccaacg gtcacatccc gagcgccgcc tcgatgttcg aggacgtgta caaggagatg 2820
cccgaccacc tgcgccgcca acgccaggaa ctgggggttt gagatgaacg accacaacaa 2880
cagcatcaac ccggaaaccg ccatggccac cactaccatg accatgatcc aggccctgcg 2940
ctcggccatg gatgtcatgc ttgagcgcga cgacaatgtg gtggtgtacg gccaggacgt 3000
cggctacttc ggcggcgtgt tccgctgcac cgaaggcctg cagaccaagt acggcaagtc 3060
ccgcgtgttc gacgcgccca tctctgaaag cggcatcgtc ggcaccgccg tgggcatggg 3120
tgcctacggc ctgcgcccgg tggtggaaat ccagttcgct gactacttct acccggcctc 3180
cgaccagatc gtttctgaaa tggcccgcct gcgctaccgt tcggccggcg agttcatcgc 3240
cccgctgacc ctgcgtatgc cctgcggtgg cggtatctat ggcggccaga cacacagcca 3300
gagcccggaa gcgatgttca ctcaggtgtg cggcctgcgc accgtaatgc catccaaccc 3360
gtacgacgcc aaaggcctgc tgattgcctc gatcgaatgc gacgacccgg tgatcttcct 3420
ggagcccaag cgcctgtaca acggcccgtt cgacggccac catgaccgcc cggttacgcc 3480
gtggtcgaaa cacccgcaca gcgccgtgcc cgatggctac tacaccgtgc cactggacaa 3540
ggccgccatc acccgccccg gcaatgacgt gagcgtgctc acctatggca ccaccgtgta 3600
cgtggcccag gtggccgccg aagaaagtgg cgtggatgcc gaagtgatcg acctgcgcag 3660
cctgtggccg ctagacctgg acaccatcgt cgagtcggtg aaaaagaccg gccgttgcgt 3720
ggtagtacac gaggccaccc gtacttgtgg ctttggcgca gaactggtgt cgctggtgca 3780
ggagcactgc ttccaccacc tggaggcgcc gatcgagcgc gtcaccggtt gggacacccc 3840
ctaccctcac gcgcaggaat gggcttactt cccagggcct tcgcgggtag gtgcggcatt 3900
gaaaaaggtc atggaggtct gaatgggcac gcacgtcatc aagatgccgg acattggcga 3960
aggcatcgcg caggtcgaat tggtggaatg gttcgtcaag gtgggcgaca tcatcgccga 4020
ggaccaagtg gtagccgacg tcatgaccga caaggccacc gtggaaatcc cgtcgccggt 4080
cagcggcaag gtgctggccc tgggtggcca gccaggtgaa gtgatggcgg tcggcagtga 4140
gctgatccgc atcgaagtgg aaggcagcgg caaccatgtg gatgtgccgc aagccaagcc 4200
ggccgaagtg cctgcggcac cggtagccgc taaacctgaa ccacagaaag acgttaaacc 4260
ggcggcgtac caggcgtcag ccagccacga ggcagcgccc atcgtgccgc gccagccggg 4320
cgacaagccg ctggcctcgc cggcggtgcg caaacgcgcc ctcgatgccg gcatcgaatt 4380
gcgttatgtg cacggcagcg gcccggccgg gcgcatcctg cacgaagacc tcgacgcgtt 4440
catgagcaaa ccgcaaagcg ctgccgggca aacccccaat ggctatgcca ggcgcaccga 4500
cagcgagcag gtgccggtga tcggcctgcg ccgcaagatc gcccagcgca tgcaggacgc 4560
caagcgccgg gtcgcgcact tcagctatgt ggaagaaatc gacgtcaccg ccctggaagc 4620
cctgcgccag cagctcaaca gcaagcacgg cgacagccgc ggcaagctga cactgctgcc 4680
gttcctggtg cgcgccctgg tcgtggcact gcgtgacttc ccgcagataa acgccaccta 4740
cgatgacgaa gcgcagatca tcacccgcca tggcgcggtg catgtgggca tcgccaccca 4800
aggtgacaac ggcctgatgg tacccgtgct gcgccacgcc gaagcgggca gcctgtgggc 4860
caatgccggt gagatttcac gcctggccaa cgctgcgcgc aacaacaagg ccagccgcga 4920
agagctgtcc ggttcgacca ttaccctgac cagcctcggc gccctgggcg gcatcgtcag 4980
cacgccggtg gtcaacaccc cggaagtggc gatcgtcggt gtcaaccgca tggttgagcg 5040
gcccgtggtg atcgacggcc agatcgtcgt gcgcaagatg atgaacctgt ccagctcgtt 5100
cgaccaccgc gtggtcgatg gcatggacgc cgccctgttc atccaggccg tgcgtggcct 5160
gctcgaacaa cccgcctgcc tgttcgtgga gtgagcatgc aacagactat ccagacaacc 5220
ctgttgatca tcggcggcgg ccctggcggc tatgtggcgg ccatccgcgc cgggcaactg 5280
ggcatcccta ccgtgctggt ggaaggccag gcgctgggcg gtacctgcct gaacatcggc 5340
tgcattccgt ccaaggcgct gatccatgtg gccgagcagt tccaccaggc ctcgcgcttt 5400
accgaaccct cgccgctggg catcagcgtg gcttcgccac gcctggacat cggccagagc 5460
gtggcctgga aagacggcat cgtcgatcgc ctgaccactg gtgtcgccgc cctgctgaaa 5520
aagcacgggg tgaaggtggt gcacggctgg gccaaggtgc ttgatggcaa gcaggtcgag 5580
gtggatggcc agcgcatcca gtgcgagcac ctgttgctgg ccacgggctc cagcagtgtc 5640
gaactgccga tgctgccgtt gggtgggccg gtgatttcct cgaccgaggc cctggcaccg 5700
aaagccctgc cgcaacacct ggtggtggtg ggcggtggct acatcggcct ggagctgggt 5760
atcgcctacc gcaagctcgg cgcgcaggtc agcgtggtgg aagcgcgcga gcgcatcctg 5820
ccgacttacg acagcgaact gaccgccccg gtggccgagt cgctgaaaaa gctgggtatc 5880
gccctgcacc ttggccacag cgtcgaaggt tacgaaaatg gctgcctgct ggccaacgat 5940
ggcaagggcg gacaactgcg cctggaagcc gaccgggtgc tggtggccgt gggccgccgc 6000
ccacgcacca agggcttcaa cctggaatgc ctggacctga agatgaatgg tgccgcgatt 6060
gccatcgacg agcgctgcca gaccagcatg cacaacgtct gggccatcgg cgacgtggcc 6120
ggcgaaccga tgctggcgca ccgggccatg gcccagggcg agatggtggc cgagatcatc 6180
gccggcaagg cacgccgctt cgaacccgct gcgatagccg ccgtgtgctt caccgacccg 6240
gaagtggtcg tggtcggcaa gacgccggaa caggccagtc agcaaggcct ggactgcatc 6300
gtcgcgcagt tcccgttcgc cgccaacggc cgggccatga gcctggagtc gaaaagcggt 6360
ttcgtgcgcg tggtcgcgcg gcgtgacaac cacctgatcc tgggctggca agcggttggc 6420
gtggcggttt ccgagctgtc cacggcgttt gcccagtcgc tggagatggg tgcctgcctg 6480
gaggatgtgg ccggtaccat ccatgcccac ccgaccctgg gtgaagcggt acaggaagcg 6540
gcactgcgtg ccctgggcca cgccctgcat atctgacact gaagcggccg aggccgattt 6600
ggcccgccgc gccgagaggc gctgcgggtc ttttttatac ctg 6643
<210> 55
<211> 352
<212> PRT
<213> Pseudomonas putida
<400> 55
Met Asn Asp His Asn Asn Ser Ile Asn Pro Glu Thr Ala Met Ala Thr
1 5 10 15
Thr Thr Met Thr Met Ile Gln Ala Leu Arg Ser Ala Met Asp Val Met
20 25 30
Leu Glu Arg Asp Asp Asn Val Val Val Tyr Gly Gln Asp Val Gly Tyr
35 40 45
Phe Gly Gly Val Phe Arg Cys Thr Glu Gly Leu Gln Thr Lys Tyr Gly
50 55 60
Lys Ser Arg Val Phe Asp Ala Pro Ile Ser Glu Ser Gly Ile Val Gly
65 70 75 80
Thr Ala Val Gly Met Gly Ala Tyr Gly Leu Arg Pro Val Val Glu Ile
85 90 95
Gln Phe Ala Asp Tyr Phe Tyr Pro Ala Ser Asp Gln Ile Val Ser Glu
100 105 110
Met Ala Arg Leu Arg Tyr Arg Ser Ala Gly Glu Phe Ile Ala Pro Leu
115 120 125
Thr Leu Arg Met Pro Cys Gly Gly Gly Ile Tyr Gly Gly Gln Thr His
130 135 140
Ser Gln Ser Pro Glu Ala Met Phe Thr Gln Val Cys Gly Leu Arg Thr
145 150 155 160
Val Met Pro Ser Asn Pro Tyr Asp Ala Lys Gly Leu Leu Ile Ala Ser
165 170 175
Ile Glu Cys Asp Asp Pro Val Ile Phe Leu Glu Pro Lys Arg Leu Tyr
180 185 190
Asn Gly Pro Phe Asp Gly His His Asp Arg Pro Val Thr Pro Trp Ser
195 200 205
Lys His Pro His Ser Ala Val Pro Asp Gly Tyr Tyr Thr Val Pro Leu
210 215 220
Asp Lys Ala Ala Ile Thr Arg Pro Gly Asn Asp Val Ser Val Leu Thr
225 230 235 240
Tyr Gly Thr Thr Val Tyr Val Ala Gln Val Ala Ala Glu Glu Ser Gly
245 250 255
Val Asp Ala Glu Val Ile Asp Leu Arg Ser Leu Trp Pro Leu Asp Leu
260 265 270
Asp Thr Ile Val Glu Ser Val Lys Lys Thr Gly Arg Cys Val Val Val
275 280 285
His Glu Ala Thr Arg Thr Cys Gly Phe Gly Ala Glu Leu Val Ser Leu
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Val Gln Glu His Cys Phe His His Leu Glu Ala Pro Ile Glu Arg Val
305 310 315 320
Thr Gly Trp Asp Thr Pro Tyr Pro His Ala Gln Glu Trp Ala Tyr Phe
325 330 335
Pro Gly Pro Ser Arg Val Gly Ala Ala Leu Lys Lys Val Met Glu Val
340 345 350
<210> 56
<211> 6643
<212> DNA
<213> Pseudomonas putida
<400> 56
gcatgcctgc aggccgccga tgaaatggtg gaaggtatcg gtaggctggc cctgctcatc 60
gctgaacacg ttacgcccgc tgccggtatc gaccaggctc tggtgaatat gcatggaact 120
gccaggcgtg cgcgccagcg gtttggccat gcacaccacg gtcagcccgt gcttgagtgc 180
cacttccttg agcaggtgtt tgaacaggaa ggtctggtcg gccagcagca gcgggtcgcc 240
atgtagcaag ttgatctcga actggctgac gcccatttcg tgcatgaagg tgtcgcgcgg 300
caggccgagc gcggccatgc actggtacac ctcattgaag aacgggcgca ggccgttgtt 360
ggaactgaca ctgaacgccg aatggcccag ctcgcggcgg ccgtcggtgc ccagcggtgg 420
ctggaacggc tgctgcgggt cactgttggg ggcaaacacg aagaactcaa gctcggtcgc 480
cactaccggt gccagaccca acgctgcgta gcgggcgatc acggccttca gctggccccg 540
ggtggacagt gccgagggcc ggccatccag ttcattggca tcgcagatgg ccagggcgcg 600
accgtcatcg ctccagggca agcgatgaac ctggctgggt tccgctacca acgccaggtc 660
gccgtcgtcg cagccgtaga atttcgccgg cgggtagccg cccatgatgc attgcagcag 720
caccccacgg gccatctgca ggcggcggcc ttcgagaaag ccttcggcgg tcatcacctt 780
gccgcgtggg acgccgttga ggtcgggggt gacgcattcg atttcatcga tgccctggag 840
ctgagcgatg ctcatgacgc ttgtccttgt tgttgtaggc tgacaacaac ataggctggg 900
ggtgtttaaa atatcaagca gcctctcgaa cgcctggggc ctcttctatt cgcgcaaggt 960
catgccattg gccggcaacg gcaaggctgt cttgtagcgc acctgtttca aggcaaaact 1020
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ctggatactc ggcagcagta cccgcaacag gtagtccggg tcgcccgtca tcaggtagca 1140
ctccatcacc tcgggccgtt cggcaatttc ttcctcgaag cggtgcagcg actgctctac 1200
ctgtttttcc aggctgacat ggatgaacac attcacatcc agccccaacg cctcgggcga 1260
caacaaggtc acctgctggc ggatcacccc cagttcttcc atggcccgca cccggttgaa 1320
acagggcgtg ggcgacaggt tgaccgagcg tgccagctcg gcgttggtga tgcgggcgtt 1380
ttcctgcagg ctgttgagaa tgccgatatc ggtacgatcg agtttgcgca tgagacaaaa 1440
tcaccggttt tttgtgttta tgcggaatgt ttatctgccc cgctcggcaa aggcaatcaa 1500
cttgagagaa aaattctcct gccggaccac taagatgtag gggacgctga cttaccagtc 1560
acaagccggt actcagcggc ggccgcttca gagctcacaa aaacaaatac ccgagcgagc 1620
gtaaaaagca tgaacgagta cgcccccctg cgtttgcatg tgcccgagcc caccggccgg 1680
ccaggctgcc agaccgattt ttcctacctg cgcctgaacg atgcaggtca agcccgtaaa 1740
ccccctgtcg atgtcgacgc tgccgacacc gccgacctgt cctacagcct ggtccgcgtg 1800
ctcgacgagc aaggcgacgc ccaaggcccg tgggctgaag acatcgaccc gcagatcctg 1860
cgccaaggca tgcgcgccat gctcaagacg cggatcttcg acagccgcat ggtggttgcc 1920
cagcgccaga agaagatgtc cttctacatg cagagcctgg gcgaagaagc catcggcagc 1980
ggccaggcgc tggcgcttaa ccgcaccgac atgtgcttcc ccacctaccg tcagcaaagc 2040
atcctgatgg cccgcgacgt gtcgctggtg gagatgatct gccagttgct gtccaacgaa 2100
cgcgaccccc tcaagggccg ccagctgccg atcatgtact cggtacgcga ggccggcttc 2160
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gaatcggact tccacaccgc cctcaccttt gcccacgttt accgcgcccc ggtgatcctc 2340
aacgtggtca acaaccagtg ggccatctca accttccagg ccatcgccgg tggcgagtcg 2400
accaccttcg ccggccgtgg cgtgggctgc ggcatcgctt cgctgcgggt ggacggcaac 2460
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ggcccgagcc tgatcgagtg ggtcacctac cgtgccggcc cgcactcgac ctcggacgac 2580
ccgtccaagt accgccctgc cgatgactgg agccacttcc cgctgggtga cccgatcgcc 2640
cgcctgaagc agcacctgat caagatcggc cactggtccg aagaagaaca ccaggccacc 2700
acggccgagt tcgaagcggc cgtgattgct gcgcaaaaag aagccgagca gtacggcacc 2760
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ctcggccatg gatgtcatgc ttgagcgcga cgacaatgtg gtggtgtacg gccaggacgt 3000
cggctacttc ggcggcgtgt tccgctgcac cgaaggcctg cagaccaagt acggcaagtc 3060
ccgcgtgttc gacgcgccca tctctgaaag cggcatcgtc ggcaccgccg tgggcatggg 3120
tgcctacggc ctgcgcccgg tggtggaaat ccagttcgct gactacttct acccggcctc 3180
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ggagcccaag cgcctgtaca acggcccgtt cgacggccac catgaccgcc cggttacgcc 3480
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ggccgccatc acccgccccg gcaatgacgt gagcgtgctc acctatggca ccaccgtgta 3600
cgtggcccag gtggccgccg aagaaagtgg cgtggatgcc gaagtgatcg acctgcgcag 3660
cctgtggccg ctagacctgg acaccatcgt cgagtcggtg aaaaagaccg gccgttgcgt 3720
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ggagcactgc ttccaccacc tggaggcgcc gatcgagcgc gtcaccggtt gggacacccc 3840
ctaccctcac gcgcaggaat gggcttactt cccagggcct tcgcgggtag gtgcggcatt 3900
gaaaaaggtc atggaggtct gaatgggcac gcacgtcatc aagatgccgg acattggcga 3960
aggcatcgcg caggtcgaat tggtggaatg gttcgtcaag gtgggcgaca tcatcgccga 4020
ggaccaagtg gtagccgacg tcatgaccga caaggccacc gtggaaatcc cgtcgccggt 4080
cagcggcaag gtgctggccc tgggtggcca gccaggtgaa gtgatggcgg tcggcagtga 4140
gctgatccgc atcgaagtgg aaggcagcgg caaccatgtg gatgtgccgc aagccaagcc 4200
ggccgaagtg cctgcggcac cggtagccgc taaacctgaa ccacagaaag acgttaaacc 4260
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cgacaagccg ctggcctcgc cggcggtgcg caaacgcgcc ctcgatgccg gcatcgaatt 4380
gcgttatgtg cacggcagcg gcccggccgg gcgcatcctg cacgaagacc tcgacgcgtt 4440
catgagcaaa ccgcaaagcg ctgccgggca aacccccaat ggctatgcca ggcgcaccga 4500
cagcgagcag gtgccggtga tcggcctgcg ccgcaagatc gcccagcgca tgcaggacgc 4560
caagcgccgg gtcgcgcact tcagctatgt ggaagaaatc gacgtcaccg ccctggaagc 4620
cctgcgccag cagctcaaca gcaagcacgg cgacagccgc ggcaagctga cactgctgcc 4680
gttcctggtg cgcgccctgg tcgtggcact gcgtgacttc ccgcagataa acgccaccta 4740
cgatgacgaa gcgcagatca tcacccgcca tggcgcggtg catgtgggca tcgccaccca 4800
aggtgacaac ggcctgatgg tacccgtgct gcgccacgcc gaagcgggca gcctgtgggc 4860
caatgccggt gagatttcac gcctggccaa cgctgcgcgc aacaacaagg ccagccgcga 4920
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cacgccggtg gtcaacaccc cggaagtggc gatcgtcggt gtcaaccgca tggttgagcg 5040
gcccgtggtg atcgacggcc agatcgtcgt gcgcaagatg atgaacctgt ccagctcgtt 5100
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gctcgaacaa cccgcctgcc tgttcgtgga gtgagcatgc aacagactat ccagacaacc 5220
ctgttgatca tcggcggcgg ccctggcggc tatgtggcgg ccatccgcgc cgggcaactg 5280
ggcatcccta ccgtgctggt ggaaggccag gcgctgggcg gtacctgcct gaacatcggc 5340
tgcattccgt ccaaggcgct gatccatgtg gccgagcagt tccaccaggc ctcgcgcttt 5400
accgaaccct cgccgctggg catcagcgtg gcttcgccac gcctggacat cggccagagc 5460
gtggcctgga aagacggcat cgtcgatcgc ctgaccactg gtgtcgccgc cctgctgaaa 5520
aagcacgggg tgaaggtggt gcacggctgg gccaaggtgc ttgatggcaa gcaggtcgag 5580
gtggatggcc agcgcatcca gtgcgagcac ctgttgctgg ccacgggctc cagcagtgtc 5640
gaactgccga tgctgccgtt gggtgggccg gtgatttcct cgaccgaggc cctggcaccg 5700
aaagccctgc cgcaacacct ggtggtggtg ggcggtggct acatcggcct ggagctgggt 5760
atcgcctacc gcaagctcgg cgcgcaggtc agcgtggtgg aagcgcgcga gcgcatcctg 5820
ccgacttacg acagcgaact gaccgccccg gtggccgagt cgctgaaaaa gctgggtatc 5880
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ccacgcacca agggcttcaa cctggaatgc ctggacctga agatgaatgg tgccgcgatt 6060
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<210> 57
<211> 423
<212> PRT
<213> Pseudomonas putida
<400> 57
Met Gly Thr His Val Ile Lys Met Pro Asp Ile Gly Glu Gly Ile Ala
1 5 10 15
Gln Val Glu Leu Val Glu Trp Phe Val Lys Val Gly Asp Ile Ile Ala
20 25 30
Glu Asp Gln Val Val Ala Asp Val Met Thr Asp Lys Ala Thr Val Glu
35 40 45
Ile Pro Ser Pro Val Ser Gly Lys Val Leu Ala Leu Gly Gly Gln Pro
50 55 60
Gly Glu Val Met Ala Val Gly Ser Glu Leu Ile Arg Ile Glu Val Glu
65 70 75 80
Gly Ser Gly Asn His Val Asp Val Pro Gln Ala Lys Pro Ala Glu Val
85 90 95
Pro Ala Ala Pro Val Ala Ala Lys Pro Glu Pro Gln Lys Asp Val Lys
100 105 110
Pro Ala Ala Tyr Gln Ala Ser Ala Ser His Glu Ala Ala Pro Ile Val
115 120 125
Pro Arg Gln Pro Gly Asp Lys Pro Leu Ala Ser Pro Ala Val Arg Lys
130 135 140
Arg Ala Leu Asp Ala Gly Ile Glu Leu Arg Tyr Val His Gly Ser Gly
145 150 155 160
Pro Ala Gly Arg Ile Leu His Glu Asp Leu Asp Ala Phe Met Ser Lys
165 170 175
Pro Gln Ser Ala Ala Gly Gln Thr Pro Asn Gly Tyr Ala Arg Arg Thr
180 185 190
Asp Ser Glu Gln Val Pro Val Ile Gly Leu Arg Arg Lys Ile Ala Gln
195 200 205
Arg Met Gln Asp Ala Lys Arg Arg Val Ala His Phe Ser Tyr Val Glu
210 215 220
Glu Ile Asp Val Thr Ala Leu Glu Ala Leu Arg Gln Gln Leu Asn Ser
225 230 235 240
Lys His Gly Asp Ser Arg Gly Lys Leu Thr Leu Leu Pro Phe Leu Val
245 250 255
Arg Ala Leu Val Val Ala Leu Arg Asp Phe Pro Gln Ile Asn Ala Thr
260 265 270
Tyr Asp Asp Glu Ala Gln Ile Ile Thr Arg His Gly Ala Val His Val
275 280 285
Gly Ile Ala Thr Gln Gly Asp Asn Gly Leu Met Val Pro Val Leu Arg
290 295 300
His Ala Glu Ala Gly Ser Leu Trp Ala Asn Ala Gly Glu Ile Ser Arg
305 310 315 320
Leu Ala Asn Ala Ala Arg Asn Asn Lys Ala Ser Arg Glu Glu Leu Ser
325 330 335
Gly Ser Thr Ile Thr Leu Thr Ser Leu Gly Ala Leu Gly Gly Ile Val
340 345 350
Ser Thr Pro Val Val Asn Thr Pro Glu Val Ala Ile Val Gly Val Asn
355 360 365
Arg Met Val Glu Arg Pro Val Val Ile Asp Gly Gln Ile Val Val Arg
370 375 380
Lys Met Met Asn Leu Ser Ser Ser Phe Asp His Arg Val Val Asp Gly
385 390 395 400
Met Asp Ala Ala Leu Phe Ile Gln Ala Val Arg Gly Leu Leu Glu Gln
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Pro Ala Cys Leu Phe Val Glu
420
<210> 58
<211> 6643
<212> DNA
<213> Pseudomonas putida
<400> 58
gcatgcctgc aggccgccga tgaaatggtg gaaggtatcg gtaggctggc cctgctcatc 60
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tcaccggttt tttgtgttta tgcggaatgt ttatctgccc cgctcggcaa aggcaatcaa 1500
cttgagagaa aaattctcct gccggaccac taagatgtag gggacgctga cttaccagtc 1560
acaagccggt actcagcggc ggccgcttca gagctcacaa aaacaaatac ccgagcgagc 1620
gtaaaaagca tgaacgagta cgcccccctg cgtttgcatg tgcccgagcc caccggccgg 1680
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ccccctgtcg atgtcgacgc tgccgacacc gccgacctgt cctacagcct ggtccgcgtg 1800
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cgccaaggca tgcgcgccat gctcaagacg cggatcttcg acagccgcat ggtggttgcc 1920
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cgcctgaagc agcacctgat caagatcggc cactggtccg aagaagaaca ccaggccacc 2700
acggccgagt tcgaagcggc cgtgattgct gcgcaaaaag aagccgagca gtacggcacc 2760
ctggccaacg gtcacatccc gagcgccgcc tcgatgttcg aggacgtgta caaggagatg 2820
cccgaccacc tgcgccgcca acgccaggaa ctgggggttt gagatgaacg accacaacaa 2880
cagcatcaac ccggaaaccg ccatggccac cactaccatg accatgatcc aggccctgcg 2940
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tgcctacggc ctgcgcccgg tggtggaaat ccagttcgct gactacttct acccggcctc 3180
cgaccagatc gtttctgaaa tggcccgcct gcgctaccgt tcggccggcg agttcatcgc 3240
cccgctgacc ctgcgtatgc cctgcggtgg cggtatctat ggcggccaga cacacagcca 3300
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ggccgccatc acccgccccg gcaatgacgt gagcgtgctc acctatggca ccaccgtgta 3600
cgtggcccag gtggccgccg aagaaagtgg cgtggatgcc gaagtgatcg acctgcgcag 3660
cctgtggccg ctagacctgg acaccatcgt cgagtcggtg aaaaagaccg gccgttgcgt 3720
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aggcatcgcg caggtcgaat tggtggaatg gttcgtcaag gtgggcgaca tcatcgccga 4020
ggaccaagtg gtagccgacg tcatgaccga caaggccacc gtggaaatcc cgtcgccggt 4080
cagcggcaag gtgctggccc tgggtggcca gccaggtgaa gtgatggcgg tcggcagtga 4140
gctgatccgc atcgaagtgg aaggcagcgg caaccatgtg gatgtgccgc aagccaagcc 4200
ggccgaagtg cctgcggcac cggtagccgc taaacctgaa ccacagaaag acgttaaacc 4260
ggcggcgtac caggcgtcag ccagccacga ggcagcgccc atcgtgccgc gccagccggg 4320
cgacaagccg ctggcctcgc cggcggtgcg caaacgcgcc ctcgatgccg gcatcgaatt 4380
gcgttatgtg cacggcagcg gcccggccgg gcgcatcctg cacgaagacc tcgacgcgtt 4440
catgagcaaa ccgcaaagcg ctgccgggca aacccccaat ggctatgcca ggcgcaccga 4500
cagcgagcag gtgccggtga tcggcctgcg ccgcaagatc gcccagcgca tgcaggacgc 4560
caagcgccgg gtcgcgcact tcagctatgt ggaagaaatc gacgtcaccg ccctggaagc 4620
cctgcgccag cagctcaaca gcaagcacgg cgacagccgc ggcaagctga cactgctgcc 4680
gttcctggtg cgcgccctgg tcgtggcact gcgtgacttc ccgcagataa acgccaccta 4740
cgatgacgaa gcgcagatca tcacccgcca tggcgcggtg catgtgggca tcgccaccca 4800
aggtgacaac ggcctgatgg tacccgtgct gcgccacgcc gaagcgggca gcctgtgggc 4860
caatgccggt gagatttcac gcctggccaa cgctgcgcgc aacaacaagg ccagccgcga 4920
agagctgtcc ggttcgacca ttaccctgac cagcctcggc gccctgggcg gcatcgtcag 4980
cacgccggtg gtcaacaccc cggaagtggc gatcgtcggt gtcaaccgca tggttgagcg 5040
gcccgtggtg atcgacggcc agatcgtcgt gcgcaagatg atgaacctgt ccagctcgtt 5100
cgaccaccgc gtggtcgatg gcatggacgc cgccctgttc atccaggccg tgcgtggcct 5160
gctcgaacaa cccgcctgcc tgttcgtgga gtgagcatgc aacagactat ccagacaacc 5220
ctgttgatca tcggcggcgg ccctggcggc tatgtggcgg ccatccgcgc cgggcaactg 5280
ggcatcccta ccgtgctggt ggaaggccag gcgctgggcg gtacctgcct gaacatcggc 5340
tgcattccgt ccaaggcgct gatccatgtg gccgagcagt tccaccaggc ctcgcgcttt 5400
accgaaccct cgccgctggg catcagcgtg gcttcgccac gcctggacat cggccagagc 5460
gtggcctgga aagacggcat cgtcgatcgc ctgaccactg gtgtcgccgc cctgctgaaa 5520
aagcacgggg tgaaggtggt gcacggctgg gccaaggtgc ttgatggcaa gcaggtcgag 5580
gtggatggcc agcgcatcca gtgcgagcac ctgttgctgg ccacgggctc cagcagtgtc 5640
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atcgcctacc gcaagctcgg cgcgcaggtc agcgtggtgg aagcgcgcga gcgcatcctg 5820
ccgacttacg acagcgaact gaccgccccg gtggccgagt cgctgaaaaa gctgggtatc 5880
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ggcaagggcg gacaactgcg cctggaagcc gaccgggtgc tggtggccgt gggccgccgc 6000
ccacgcacca agggcttcaa cctggaatgc ctggacctga agatgaatgg tgccgcgatt 6060
gccatcgacg agcgctgcca gaccagcatg cacaacgtct gggccatcgg cgacgtggcc 6120
ggcgaaccga tgctggcgca ccgggccatg gcccagggcg agatggtggc cgagatcatc 6180
gccggcaagg cacgccgctt cgaacccgct gcgatagccg ccgtgtgctt caccgacccg 6240
gaagtggtcg tggtcggcaa gacgccggaa caggccagtc agcaaggcct ggactgcatc 6300
gtcgcgcagt tcccgttcgc cgccaacggc cgggccatga gcctggagtc gaaaagcggt 6360
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<210> 59
<211> 459
<212> PRT
<213> Pseudomonas putida
<400> 59
Met Gln Gln Thr Ile Gln Thr Thr Leu Leu Ile Ile Gly Gly Gly Pro
1 5 10 15
Gly Gly Tyr Val Ala Ala Ile Arg Ala Gly Gln Leu Gly Ile Pro Thr
20 25 30
Val Leu Val Glu Gly Gln Ala Leu Gly Gly Thr Cys Leu Asn Ile Gly
35 40 45
Cys Ile Pro Ser Lys Ala Leu Ile His Val Ala Glu Gln Phe His Gln
50 55 60
Ala Ser Arg Phe Thr Glu Pro Ser Pro Leu Gly Ile Ser Val Ala Ser
65 70 75 80
Pro Arg Leu Asp Ile Gly Gln Ser Val Ala Trp Lys Asp Gly Ile Val
85 90 95
Asp Arg Leu Thr Thr Gly Val Ala Ala Leu Leu Lys Lys His Gly Val
100 105 110
Lys Val Val His Gly Trp Ala Lys Val Leu Asp Gly Lys Gln Val Glu
115 120 125
Val Asp Gly Gln Arg Ile Gln Cys Glu His Leu Leu Leu Ala Thr Gly
130 135 140
Ser Ser Ser Val Glu Leu Pro Met Leu Pro Leu Gly Gly Pro Val Ile
145 150 155 160
Ser Ser Thr Glu Ala Leu Ala Pro Lys Ala Leu Pro Gln His Leu Val
165 170 175
Val Val Gly Gly Gly Tyr Ile Gly Leu Glu Leu Gly Ile Ala Tyr Arg
180 185 190
Lys Leu Gly Ala Gln Val Ser Val Val Glu Ala Arg Glu Arg Ile Leu
195 200 205
Pro Thr Tyr Asp Ser Glu Leu Thr Ala Pro Val Ala Glu Ser Leu Lys
210 215 220
Lys Leu Gly Ile Ala Leu His Leu Gly His Ser Val Glu Gly Tyr Glu
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Asn Gly Cys Leu Leu Ala Asn Asp Gly Lys Gly Gly Gln Leu Arg Leu
245 250 255
Glu Ala Asp Arg Val Leu Val Ala Val Gly Arg Arg Pro Arg Thr Lys
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Gly Phe Asn Leu Glu Cys Leu Asp Leu Lys Met Asn Gly Ala Ala Ile
275 280 285
Ala Ile Asp Glu Arg Cys Gln Thr Ser Met His Asn Val Trp Ala Ile
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Gly Asp Val Ala Gly Glu Pro Met Leu Ala His Arg Ala Met Ala Gln
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Gly Glu Met Val Ala Glu Ile Ile Ala Gly Lys Ala Arg Arg Phe Glu
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Val Ala Gln Phe Pro Phe Ala Ala Asn Gly Arg Ala Met Ser Leu Glu
370 375 380
Ser Lys Ser Gly Phe Val Arg Val Val Ala Arg Arg Asp Asn His Leu
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Gly Thr Ile His Ala His Pro Thr Leu Gly Glu Ala Val Gln Glu Ala
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Ala Leu Arg Ala Leu Gly His Ala Leu His Ile
450 455
<210> 60
<211> 6643
<212> DNA
<213> Pseudomonas putida
<400> 60
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ccccctgtcg atgtcgacgc tgccgacacc gccgacctgt cctacagcct ggtccgcgtg 1800
ctcgacgagc aaggcgacgc ccaaggcccg tgggctgaag acatcgaccc gcagatcctg 1860
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gaaaaaggtc atggaggtct gaatgggcac gcacgtcatc aagatgccgg acattggcga 3960
aggcatcgcg caggtcgaat tggtggaatg gttcgtcaag gtgggcgaca tcatcgccga 4020
ggaccaagtg gtagccgacg tcatgaccga caaggccacc gtggaaatcc cgtcgccggt 4080
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ggccgaagtg cctgcggcac cggtagccgc taaacctgaa ccacagaaag acgttaaacc 4260
ggcggcgtac caggcgtcag ccagccacga ggcagcgccc atcgtgccgc gccagccggg 4320
cgacaagccg ctggcctcgc cggcggtgcg caaacgcgcc ctcgatgccg gcatcgaatt 4380
gcgttatgtg cacggcagcg gcccggccgg gcgcatcctg cacgaagacc tcgacgcgtt 4440
catgagcaaa ccgcaaagcg ctgccgggca aacccccaat ggctatgcca ggcgcaccga 4500
cagcgagcag gtgccggtga tcggcctgcg ccgcaagatc gcccagcgca tgcaggacgc 4560
caagcgccgg gtcgcgcact tcagctatgt ggaagaaatc gacgtcaccg ccctggaagc 4620
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agagctgtcc ggttcgacca ttaccctgac cagcctcggc gccctgggcg gcatcgtcag 4980
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tgcattccgt ccaaggcgct gatccatgtg gccgagcagt tccaccaggc ctcgcgcttt 5400
accgaaccct cgccgctggg catcagcgtg gcttcgccac gcctggacat cggccagagc 5460
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atcgcctacc gcaagctcgg cgcgcaggtc agcgtggtgg aagcgcgcga gcgcatcctg 5820
ccgacttacg acagcgaact gaccgccccg gtggccgagt cgctgaaaaa gctgggtatc 5880
gccctgcacc ttggccacag cgtcgaaggt tacgaaaatg gctgcctgct ggccaacgat 5940
ggcaagggcg gacaactgcg cctggaagcc gaccgggtgc tggtggccgt gggccgccgc 6000
ccacgcacca agggcttcaa cctggaatgc ctggacctga agatgaatgg tgccgcgatt 6060
gccatcgacg agcgctgcca gaccagcatg cacaacgtct gggccatcgg cgacgtggcc 6120
ggcgaaccga tgctggcgca ccgggccatg gcccagggcg agatggtggc cgagatcatc 6180
gccggcaagg cacgccgctt cgaacccgct gcgatagccg ccgtgtgctt caccgacccg 6240
gaagtggtcg tggtcggcaa gacgccggaa caggccagtc agcaaggcct ggactgcatc 6300
gtcgcgcagt tcccgttcgc cgccaacggc cgggccatga gcctggagtc gaaaagcggt 6360
ttcgtgcgcg tggtcgcgcg gcgtgacaac cacctgatcc tgggctggca agcggttggc 6420
gtggcggttt ccgagctgtc cacggcgttt gcccagtcgc tggagatggg tgcctgcctg 6480
gaggatgtgg ccggtaccat ccatgcccac ccgaccctgg gtgaagcggt acaggaagcg 6540
gcactgcgtg ccctgggcca cgccctgcat atctgacact gaagcggccg aggccgattt 6600
ggcccgccgc gccgagaggc gctgcgggtc ttttttatac ctg 6643
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<211> 468
<212> PRT
<213> Clostridium beijerinckii
<400> 61
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Thr Asn Val Glu Asn Ile Asn Leu Lys Asn Tyr Lys Asp Asn Ser Ser
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Cys Phe Gly Val Phe Glu Asn Val Glu Asn Ala Ile Asn Ser Ala Val
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50 55 60
Lys Ile Ile Thr Glu Ile Arg Lys Ala Ala Leu Glu Asn Lys Glu Val
65 70 75 80
Leu Ala Thr Met Ile Leu Glu Glu Thr His Met Gly Arg Tyr Glu Asp
85 90 95
Lys Ile Leu Lys His Glu Leu Val Ala Lys Tyr Thr Pro Gly Thr Glu
100 105 110
Asp Leu Thr Thr Thr Ala Trp Ser Gly Asp Asn Gly Leu Thr Val Val
115 120 125
Glu Met Ser Pro Tyr Gly Val Ile Gly Ala Ile Thr Pro Ser Thr Asn
130 135 140
Pro Thr Glu Thr Val Ile Cys Asn Ser Ile Gly Met Ile Ala Ala Gly
145 150 155 160
Asn Ala Val Val Phe Asn Gly His Pro Gly Ala Lys Lys Cys Val Ala
165 170 175
Phe Ala Ile Glu Met Ile Asn Lys Ala Ile Ile Ser Cys Gly Gly Pro
180 185 190
Glu Asn Leu Val Thr Thr Ile Lys Asn Pro Thr Met Glu Ser Leu Asp
195 200 205
Ala Ile Ile Lys His Pro Leu Ile Lys Leu Leu Cys Gly Thr Gly Gly
210 215 220
Pro Gly Met Val Lys Thr Leu Leu Asn Ser Gly Lys Lys Ala Ile Gly
225 230 235 240
Ala Gly Ala Gly Asn Pro Pro Val Ile Val Asp Asp Thr Ala Asp Ile
245 250 255
Glu Lys Ala Gly Lys Ser Ile Ile Glu Gly Cys Ser Phe Asp Asn Asn
260 265 270
Leu Pro Cys Ile Ala Glu Lys Glu Val Phe Val Phe Glu Asn Val Ala
275 280 285
Asp Asp Leu Ile Ser Asn Met Leu Lys Asn Asn Ala Val Ile Ile Asn
290 295 300
Glu Asp Gln Val Ser Lys Leu Ile Asp Leu Val Leu Gln Lys Asn Asn
305 310 315 320
Glu Thr Gln Glu Tyr Phe Ile Asn Lys Lys Trp Val Gly Lys Asp Ala
325 330 335
Lys Leu Phe Ser Asp Glu Ile Asp Val Glu Ser Pro Ser Asn Ile Lys
340 345 350
Cys Ile Val Cys Glu Val Asn Ala Asn His Pro Phe Val Met Thr Glu
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Leu Met Met Pro Ile Leu Pro Ile Val Arg Val Lys Asp Ile Asp Glu
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Ala Val Lys Tyr Thr Lys Ile Ala Glu Gln Asn Arg Lys His Ser Ala
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<212> DNA
<213> Clostridium beijerinckii
<400> 62
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tggaagcttc tttaagtagt cgctctttct tagtatcttc tctgcttctt tccatgtgcc 1140
atctaagata ataaatgctg gaattttttc tgaatcttta catttagact ttctttctag 1200
aggttcatca tcatccatag gaaataatac acgtatttca taatcatcgc tattaatata 1260
ttcaattaat ttttcaggag tctttactct ctcccaaaga attaactcag ttgattctgg 1320
attcaccaat ttcaataatc tagcggtatt tgaaggccta ctaaattctc tttctgttga 1380
taatatcaat atctttgctt ttgtctctat tttaggcaca atatcgcaga tacaatttat 1440
tattggcaac ccacatttat tgcagctctc atataactta gtaatttgct taactttaaa 1500
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ctaactgatt ataacatatg tattcaatat atcactccta gttttcaaag cactggcaat 1620
acgaattaca aattaatttc tggatttatg tcagtatttc attaataaaa ggtcggactt 1680
ttaagatact tgttttagct attgatcata tttattaaag actatgcatt taatgtataa 1740
ttataatgaa tattatcaat aatatttatt ttatattaca atcttacagt ctttattcta 1800
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tgataacgtt ttgtcttcct tatatttact ttttcggttt aataggttga ttctgtaaat 1980
tttagtgata acatatattt gatgacatta aaaatttaat atttcatata aatttttaat 2040
gtctattaat ttttaaatca caaggaggaa tagttcatga ataaagacac actaatacct 2100
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<213> Clostridium acetobutylicum
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Lys Asp Glu Lys Thr Cys Gly Ile Ile Glu Arg Asn Glu Pro Tyr Gly
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Gly Val Ile Cys Ala Ser Glu Gln Ser Val Ile Val Leu Lys Ser Ile
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Gly Ala Ser Gly Asp Leu Tyr Asn Phe Arg Ile Pro Pro Ser Phe Thr
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actatagcag ctatggctgg cataaaagta cctaaaacca caagaatatt aataggagaa 960
gttacctcct taggtgaaga agaacctttt gcccacgaaa aactatctcc tgttttggct 1020
atgtatgagg ctgacaattt tgatgatgct ttaaaaaaag cagtaactct aataaactta 1080
ggaggcctcg gccatacctc aggaatatat gcagatgaaa taaaagcacg agataaaata 1140
gatagattta gtagtgccat gaaaaccgta agaacctttg taaatatccc aacctcacaa 1200
ggtgcaagtg gagatctata taattttaga ataccacctt ctttcacgct tggctgcgga 1260
ttttggggag gaaattctgt ttccgagaat gttggtccaa aacatctttt gaatattaaa 1320
accgtagctg aaaggagaga aaacatgctt tggtttagag ttccacataa agtatatttt 1380
aagttcggtt gtcttcaatt tgctttaaaa gatttaaaag atctaaagaa aaaaagagcc 1440
tttatagtta ctgatagtga cccctataat ttaaactatg ttgattcaat aataaaaata 1500
cttgagcacc tagatattga ttttaaagta tttaataagg ttggaagaga agctgatctt 1560
aaaaccataa aaaaagcaac tgaagaaatg tcctccttta tgccagacac tataatagct 1620
ttaggtggta cccctgaaat gagctctgca aagctaatgt gggtactata tgaacatcca 1680
gaagtaaaat ttgaagatct tgcaataaaa tttatggaca taagaaagag aatatatact 1740
ttcccaaaac tcggtaaaaa ggctatgtta gttgcaatta caacttctgc tggttccggt 1800
tctgaggtta ctccttttgc tttagtaact gacaataaca ctggaaataa gtacatgtta 1860
gcagattatg aaatgacacc aaatatggca attgtagatg cagaacttat gatgaaaatg 1920
ccaaagggat taaccgctta ttcaggtata gatgcactag taaatagtat agaagcatac 1980
acatccgtat atgcttcaga atacacaaac ggactagcac tagaggcaat acgattaata 2040
tttaaatatt tgcctgaggc ttacaaaaac ggaagaacca atgaaaaagc aagagagaaa 2100
atggctcacg cttcaactat ggcaggtatg gcatccgcta atgcatttct aggtctatgt 2160
cattccatgg caataaaatt aagttcagaa cacaatattc ctagtggcat tgccaatgca 2220
ttactaatag aagaagtaat aaaatttaac gcagttgata atcctgtaaa acaagcccct 2280
tgcccacaat ataagtatcc aaacaccata tttagatatg ctcgaattgc agattatata 2340
aagcttggag gaaatactga tgaggaaaag gtagatctct taattaacaa aatacatgaa 2400
ctaaaaaaag ctttaaatat accaacttca ataaaggatg caggtgtttt ggaggaaaac 2460
ttctattcct cccttgatag aatatctgaa cttgcactag atgatcaatg cacaggcgct 2520
aatcctagat ttcctcttac aagtgagata aaagaaatgt atataaattg ttttaaaaaa 2580
caaccttaa 2589
<210> 67
<211> 307
<212> PRT
<213> Pseudomonas putida
<400> 67
Met Ser Lys Lys Leu Lys Ala Ala Ile Ile Gly Pro Gly Asn Ile Gly
1 5 10 15
Thr Asp Leu Val Met Lys Met Leu Arg Ser Glu Trp Ile Glu Pro Val
20 25 30
Trp Met Val Gly Ile Asp Pro Asn Ser Asp Gly Leu Lys Arg Ala Arg
35 40 45
Asp Phe Gly Met Lys Thr Thr Ala Glu Gly Val Asp Gly Leu Leu Pro
50 55 60
His Val Leu Asp Asp Asp Ile Arg Ile Ala Phe Asp Ala Thr Ser Ala
65 70 75 80
Tyr Val His Ala Glu Asn Ser Arg Lys Leu Asn Ala Leu Gly Val Leu
85 90 95
Met Val Asp Leu Thr Pro Ala Ala Ile Gly Pro Tyr Cys Val Pro Pro
100 105 110
Val Asn Leu Lys Gln His Val Gly Arg Leu Glu Met Asn Val Asn Met
115 120 125
Val Thr Cys Gly Gly Gln Ala Thr Ile Pro Met Val Ala Ala Val Ser
130 135 140
Arg Val Gln Pro Val Ala Tyr Ala Glu Ile Val Ala Thr Val Ser Ser
145 150 155 160
Arg Ser Val Gly Pro Gly Thr Arg Lys Asn Ile Asp Glu Phe Thr Arg
165 170 175
Thr Thr Ala Gly Ala Ile Glu Gln Val Gly Gly Ala Arg Glu Gly Lys
180 185 190
Ala Ile Ile Val Ile Asn Pro Ala Glu Pro Pro Leu Met Met Arg Asp
195 200 205
Thr Ile His Cys Leu Thr Asp Ser Glu Pro Asp Gln Ala Ala Ile Thr
210 215 220
Ala Ser Val His Ala Met Ile Ala Glu Val Gln Lys Tyr Val Pro Gly
225 230 235 240
Tyr Arg Leu Lys Asn Gly Pro Val Phe Asp Gly Asn Arg Val Ser Ile
245 250 255
Phe Met Glu Val Glu Gly Leu Gly Asp Tyr Leu Pro Lys Tyr Ala Gly
260 265 270
Asn Leu Asp Ile Met Thr Ala Ala Ala Leu Arg Thr Gly Glu Met Phe
275 280 285
Ala Glu Glu Ile Ala Ala Gly Thr Ile Gln Leu Pro Arg Arg Asp Ile
290 295 300
Ala Leu Ala
305
<210> 68
<211> 2180
<212> DNA
<213> Pseudomonas putida
<400> 68
ggtacccctg gagccggtca aggccggcga cttcatgcgc gtcgagatcg gcggcatcgg 60
cagcgcctcc gtgcgcttca cctgatcgaa cagaggacaa acccatgagc aagaaactca 120
aggcggccat cataggcccc ggcaatatcg gtaccgatct ggtgatgaag atgctccgtt 180
ccgagtggat tgagccggtg tggatggtcg gcatcgaccc caactccgac ggcctcaaac 240
gcgcccgcga tttcggcatg aagaccacag ccgaaggcgt cgacggcctg ctcccgcacg 300
tgctggacga cgacatccgc atcgccttcg acgccacctc ggcctatgtg catgccgaga 360
atagccgcaa gctcaacgcg cttggcgtgc tgatggtcga cctgaccccg gcggccatcg 420
gcccctactg cgtgccgccg gtcaacctca agcagcatgt cggccgcctg gaaatgaacg 480
tcaacatggt cacctgcggc ggccaggcca ccatccccat ggtcgccgcg gtgtcccgcg 540
tgcagccggt ggcctacgcc gagatcgtcg ccaccgtctc ctcgcgctcg gtcggcccgg 600
gcacgcgcaa gaacatcgac gagttcaccc gcaccaccgc cggcgccatc gagcaggtcg 660
gcggcgccag ggaaggcaag gcgatcatcg tcatcaaccc ggccgagccg ccgctgatga 720
tgcgcgacac catccactgc ctgaccgaca gcgagccgga ccaggctgcg atcaccgctt 780
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cgccaccggc ctcgatcaag ccggtatgcc gctgatcgag atcacccacg gcgacggcct 1200
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ctgtaccgag gcggatgtct ccgagcagca catcggcatg gcgcgcaagc tgggggtcga 1440
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<210> 69
<211> 307
<212> PRT
<213> Thermus thermophilus
<400> 69
Met Ser Glu Arg Val Lys Val Ala Ile Leu Gly Ser Gly Asn Ile Gly
1 5 10 15
Thr Asp Leu Met Tyr Lys Leu Leu Lys Asn Pro Gly His Met Glu Leu
20 25 30
Val Ala Val Val Gly Ile Asp Pro Lys Ser Glu Gly Leu Ala Arg Ala
35 40 45
Arg Ala Leu Gly Leu Glu Ala Ser His Glu Gly Ile Ala Tyr Ile Leu
50 55 60
Glu Arg Pro Glu Ile Lys Ile Val Phe Asp Ala Thr Ser Ala Lys Ala
65 70 75 80
His Val Arg His Ala Lys Leu Leu Arg Glu Ala Gly Lys Ile Ala Ile
85 90 95
Asp Leu Thr Pro Ala Ala Arg Gly Pro Tyr Val Val Pro Pro Val Asn
100 105 110
Leu Lys Glu His Leu Asp Lys Asp Asn Val Asn Leu Ile Thr Cys Gly
115 120 125
Gly Gln Ala Thr Ile Pro Leu Val Tyr Ala Val His Arg Val Ala Pro
130 135 140
Val Leu Tyr Ala Glu Met Val Ser Thr Val Ala Ser Arg Ser Ala Gly
145 150 155 160
Pro Gly Thr Arg Gln Asn Ile Asp Glu Phe Thr Phe Thr Thr Ala Arg
165 170 175
Gly Leu Glu Ala Ile Gly Gly Ala Lys Lys Gly Lys Ala Ile Ile Ile
180 185 190
Leu Asn Pro Ala Glu Pro Pro Ile Leu Met Thr Asn Thr Val Arg Cys
195 200 205
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210 215 220
Arg Ala Met Glu Arg Glu Val Gln Ala Tyr Val Pro Gly Tyr Arg Leu
225 230 235 240
Lys Ala Asp Pro Val Phe Glu Arg Leu Pro Thr Pro Trp Gly Glu Arg
245 250 255
Thr Val Val Ser Met Leu Leu Glu Val Glu Gly Ala Gly Asp Tyr Leu
260 265 270
Pro Lys Tyr Ala Gly Asn Leu Asp Ile Met Thr Ala Ser Ala Arg Arg
275 280 285
Val Gly Glu Val Phe Ala Gln His Leu Leu Gly Lys Pro Val Glu Glu
290 295 300
Val Val Ala
305
<210> 70
<211> 924
<212> DNA
<213> Thermus thermophilus
<400> 70
atgtccgaaa gggttaaggt agccatcctg ggctccggca acatcgggac ggacctgatg 60
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cccggcaccc ggcagaacat cgacgagttc accttcacca ccgcccgggg cctggaggcc 540
atcggggggg ccaagaaggg gaaggccatc atcatcctga acccggcgga accccccatc 600
ctcatgacca acaccgtgcg ctgcatcccc gaggacgagg gctttgaccg ggaggccgtg 660
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<211> 417
<212> PRT
<213> Escherichia coli
<400> 71
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100 105 110
Leu Phe Asn Leu Phe Ala Gly Arg Arg Ala Asp Gly Arg Val Lys Lys
115 120 125
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130 135 140
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145 150 155 160
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165 170 175
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180 185 190
Gly Asn Val Ile Thr Asp Glu Glu Leu Leu Lys Leu Asp Ala Leu Ala
195 200 205
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210 215 220
Phe Pro Gly Ile Ile Phe Ser Glu Ala Arg Pro Leu Trp Asn Pro Asn
225 230 235 240
Ile Val Leu Cys Met Ser Leu Ser Lys Leu Gly Leu Pro Gly Ser Arg
245 250 255
Cys Gly Ile Ile Ile Ala Asn Glu Lys Ile Ile Thr Ala Ile Thr Asn
260 265 270
Met Asn Gly Ile Ile Ser Leu Ala Pro Gly Gly Ile Gly Pro Ala Met
275 280 285
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290 295 300
Val Ile Lys Pro Phe Tyr Tyr Gln Arg Val Gln Glu Thr Ile Ala Ile
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Ile Arg Arg Tyr Leu Pro Glu Asn Arg Cys Leu Ile His Lys Pro Glu
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Gly Ala Ile Phe Leu Trp Leu Trp Phe Lys Asp Leu Pro Ile Thr Thr
340 345 350
Lys Gln Leu Tyr Gln Arg Leu Lys Ala Arg Gly Val Leu Met Val Pro
355 360 365
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Gly Val Lys Ile Leu Ala Glu Glu Ile Glu Arg Ala Trp Ala Glu Ser
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His
<210> 72
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<212> PRT
<213> Escherichia coli
<400> 72
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1 5 10 15
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Thr Leu Leu Ala Gly Met Leu Arg Glu Lys Leu Gly Trp Asp Ile Glu
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100 105 110
Leu Phe Asn Leu Phe Ala Gly Arg Arg Ala Asp Gly Arg Val Lys Lys
115 120 125
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130 135 140
Leu Glu Glu Asp Leu Phe Val Ser Ala Arg Pro Asn Ile Glu Leu Leu
145 150 155 160
Pro Glu Gly Gln Phe Lys Tyr His Val Asp Phe Glu His Leu His Ile
165 170 175
Gly Glu Glu Thr Gly Met Ile Cys Val Ser Arg Pro Thr Asn Pro Thr
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Gly Asn Val Ile Thr Asp Glu Glu Leu Leu Lys Leu Asp Ala Leu Ala
195 200 205
Asn Gln His Gly Ile Pro Leu Val Ile Asp Asn Ala Tyr Gly Val Pro
210 215 220
Phe Pro Gly Ile Ile Phe Ser Glu Ala Arg Pro Leu Trp Asn Pro Asn
225 230 235 240
Ile Val Leu Cys Met Ser Leu Ser Lys Leu Gly Leu Pro Gly Ser Arg
245 250 255
Cys Gly Ile Ile Ile Ala Asn Glu Lys Ile Ile Thr Ala Ile Thr Asn
260 265 270
Met Asn Gly Ile Ile Ser Leu Ala Pro Gly Gly Ile Gly Pro Ala Met
275 280 285
Met Cys Glu Met Ile Lys Arg Asn Asp Leu Leu Arg Leu Ser Glu Thr
290 295 300
Val Ile Lys Pro Phe Tyr Tyr Gln Arg Val Gln Glu Thr Ile Ala Ile
305 310 315 320
Ile Arg Arg Tyr Leu Pro Glu Asn Arg Cys Leu Ile His Lys Pro Glu
325 330 335
Gly Ala Ile Phe Leu Trp Leu Trp Phe Lys Asp Leu Pro Ile Thr Thr
340 345 350
Lys Gln Leu Tyr Gln Arg Leu Lys Ala Arg Gly Val Leu Met Val Pro
355 360 365
Gly His Asn Phe Phe Pro Gly Leu Asp Lys Pro Trp Pro His Thr His
370 375 380
Gln Cys Met Arg Met Asn Tyr Val Pro Glu Pro Glu Lys Ile Glu Ala
385 390 395 400
Gly Val Lys Ile Leu Ala Glu Glu Ile Glu Arg Ala Trp Ala Glu Ser
405 410 415
His
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<212> PRT
<213> Bacillus licheniformis
<400> 73
Met Lys Pro Pro Leu Ser Lys Ile Gly Glu Lys Met Ile Glu Lys Thr
1 5 10 15
Gly Val Arg Ala Val Met Ser Asp Ile Gln Glu Val Leu Ala Gly Gly
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Glu Arg Ser Tyr Ile Asn Leu Ser Ala Gly Asn Pro Met Ile Leu Pro
35 40 45
Gly Val Ser Ala Met Trp Lys Ser Ala Leu Ala Asp Leu Leu Asp Asp
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Asp Arg Phe Ser Ser Val Ile Gly Gln Tyr Gly Ser Ser Tyr Gly Thr
65 70 75 80
Asp Glu Leu Ile Ala Ser Val Val Arg Phe Phe Ser Glu Arg Tyr Ser
85 90 95
Ala Gly Ile Arg Lys Glu Asn Val Leu Ile Thr Ala Gly Ser Gln Gln
100 105 110
Leu Phe Phe Leu Ala Ile Asn Ser Phe Cys Gly Met Gly Ser Gly Ser
115 120 125
Val Met Lys Lys Ala Leu Ile Pro Met Leu Pro Asp Tyr Ser Gly Tyr
130 135 140
Ser Gly Ala Ala Leu Glu Arg Glu Met Ile Glu Gly Ile Pro Pro Leu
145 150 155 160
Ile Ser Lys Leu Asp Asp His Thr Phe Arg Tyr Glu Leu Asp Arg Lys
165 170 175
Gly Phe Leu Glu Arg Met Arg Ile Gly Ala Val Leu Leu Ser Arg Pro
180 185 190
Asn Asn Pro Cys Gly Asn Ile Leu Pro Lys Glu Asp Val Ala Phe Ile
195 200 205
Ser Asp Ala Cys Arg Glu Ala Asn Val Pro Leu Phe Ile Asp Ser Ala
210 215 220
Tyr Ala Pro Pro Phe Pro Ala Ile His Phe Ile Asp Met Glu Pro Ile
225 230 235 240
Phe Asn Glu Gln Ile Ile His Cys Met Ser Leu Ser Lys Ala Gly Leu
245 250 255
Pro Gly Glu Arg Ile Gly Ile Ala Ile Gly Pro Ser Arg Tyr Ile Gln
260 265 270
Ala Met Glu Ala Phe Gln Ser Asn Ala Ala Ile His Ser Ser Arg Leu
275 280 285
Gly Gln Tyr Met Ala Ala Ser Val Leu Asn Asp Gly Arg Leu Ala Asp
290 295 300
Val Ser Leu Asn Glu Val Arg Pro Tyr Tyr Arg Asn Lys Phe Met Leu
305 310 315 320
Leu Lys Glu Thr Leu Leu Cys Lys Met Pro Glu Asp Ile Lys Trp Tyr
325 330 335
Leu His Gln Gly Glu Gly Ser Leu Phe Gly Trp Leu Trp Phe Glu Asp
340 345 350
Leu Pro Val Thr Asp Ala Ala Leu Tyr Glu Tyr Met Lys Ala Asp Gly
355 360 365
Val Ile Ile Val Pro Gly Ser Ser Phe Phe His Arg Gln Ser Arg Arg
370 375 380
Leu Ala His Ser His Gln Cys Ile Arg Ile Ser Leu Thr Ala Ala Asp
385 390 395 400
Glu Asp Ile Ile Arg Gly Ile Asp Val Leu Ala Lys Ile Ala Lys Gly
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Val Tyr Glu Lys Gln Val Glu Tyr Leu
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<210> 74
<211> 1278
<212> DNA
<213> Bacillus licheniformis
<400> 74
ttataagtat tcaacctgtt tctcatatac acccttcgca attttagcta aaacatcgat 60
tccccttata atatcttcat ccgccgcggt taggctgatt cgtatacact ggtgtgaatg 120
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cccgatggcg attccgatcc tttcgccagg caggccggct tttgaaaggc tcatacagtg 540
aatgatctgc tcgttgaaaa tcggttccat gtcgataaag tgaatcgccg gaaaaggcgg 600
agcatatgcg gaatcaatga acagcggaac attcgcttct cggcatgcgt ctgaaatgaa 660
tgctacatct tctttaggca agatgtttcc gcaaggattg ttcgggcgcg atagcaagac 720
agcaccgatg cgcatcctct ctaaaaaccc cttacggtcg agctcatatc gaaacgtatg 780
atcatccaat ttcgatatga gcggagggat cccctcaatc atctcccgct ccagtgccgc 840
cccgctgtat cccgaatagt caggcagcat cgggatcaag gcttttttca tcacagatcc 900
gcttcccatt ccgcaaaacg aattgatcgc cagaaaaaac agctgctggc ttccggctgt 960
aatcaacacg ttctcttttc gaatgccggc gctataccgc tctgaaaaga agcggacaac 1020
acttgcaatc agttcatcgg ttccatagct cgatccgtat tggccgatca ccgaagaaaa 1080
cctgtcatcg tcaaggagat cggcaagagc cgacttccac atggctgaca cgccgggcaa 1140
aatcatcgga ttgcccgcac ttaaattaat gtatgaccgt tcaccgccgg ccaggacttc 1200
ctgaatatcg ctcatcacag ccctgacccc tgttttctca atcattttct ctccgatttt 1260
gcttaatggc ggcttcac 1278
<210> 75
<211> 309
<212> PRT
<213> Escherichia coli
<400> 75
Met Thr Thr Lys Lys Ala Asp Tyr Ile Trp Phe Asn Gly Glu Met Val
1 5 10 15
Arg Trp Glu Asp Ala Lys Val His Val Met Ser His Ala Leu His Tyr
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Ala Lys Ile Tyr Arg Phe Pro Val Ser Gln Ser Ile Asp Glu Leu Met
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Glu Ala Cys Arg Asp Val Ile Arg Lys Asn Asn Leu Thr Ser Ala Tyr
85 90 95
Ile Arg Pro Leu Ile Phe Val Gly Asp Val Gly Met Gly Val Asn Pro
100 105 110
Pro Ala Gly Tyr Ser Thr Asp Val Ile Ile Ala Ala Phe Pro Trp Gly
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Ala Tyr Leu Gly Ala Glu Ala Leu Glu Gln Gly Ile Asp Ala Met Val
130 135 140
Ser Ser Trp Asn Arg Ala Ala Pro Asn Thr Ile Pro Thr Ala Ala Lys
145 150 155 160
Ala Gly Gly Asn Tyr Leu Ser Ser Leu Leu Val Gly Ser Glu Ala Arg
165 170 175
Arg His Gly Tyr Gln Glu Gly Ile Ala Leu Asp Val Asn Gly Tyr Ile
180 185 190
Ser Glu Gly Ala Gly Glu Asn Leu Phe Glu Val Lys Asp Gly Val Leu
195 200 205
Phe Thr Pro Pro Phe Thr Ser Ser Ala Leu Pro Gly Ile Thr Arg Asp
210 215 220
Ala Ile Ile Lys Leu Ala Lys Glu Leu Gly Ile Glu Val Arg Glu Gln
225 230 235 240
Val Leu Ser Arg Glu Ser Leu Tyr Leu Ala Asp Glu Val Phe Met Ser
245 250 255
Gly Thr Ala Ala Glu Ile Thr Pro Val Arg Ser Val Asp Gly Ile Gln
260 265 270
Val Gly Glu Gly Arg Cys Gly Pro Val Thr Lys Arg Ile Gln Gln Ala
275 280 285
Phe Phe Gly Leu Phe Thr Gly Glu Thr Glu Asp Lys Trp Gly Trp Leu
290 295 300
Asp Gln Val Asn Gln
305
<210> 76
<211> 1476
<212> DNA
<213> Escherichia coli
<400> 76
atggctaact acttcaatac actgaatctg cgccagcagc tggcacagct gggcaaatgt 60
cgctttatgg gccgcgatga attcgccgat ggcgcgagct accttcaggg taaaaaagta 120
gtcatcgtcg gctgtggcgc acagggtctg aaccagggcc tgaacatgcg tgattctggt 180
ctcgatatct cctacgctct gcgtaaagaa gcgattgccg agaagcgcgc gtcctggcgt 240
aaagcgaccg aaaatggttt taaagtgggt acttacgaag aactgatccc acaggcggat 300
ctggtgatta acctgacgcc ggacaagcag cactctgatg tagtgcgcac cgtacagcca 360
ctgatgaaag acggcgcggc gctgggctac tcgcacggtt tcaacatcgt cgaagtgggc 420
gagcagatcc gtaaagatat caccgtagtg atggttgcgc cgaaatgccc aggcaccgaa 480
gtgcgtgaag agtacaaacg tgggttcggc gtaccgacgc tgattgccgt tcacccggaa 540
aacgatccga aaggcgaagg catggcgatt gccaaagcct gggcggctgc aaccggtggt 600
caccgtgcgg gtgtgctgga atcgtccttc gttgcggaag tgaaatctga cctgatgggc 660
gagcaaacca tcctgtgcgg tatgttgcag gctggctctc tgctgtgctt cgacaagctg 720
gtggaagaag gtaccgatcc agcatacgca gaaaaactga ttcagttcgg ttgggaaacc 780
atcaccgaag cactgaaaca gggcggcatc accctgatga tggaccgtct ctctaacccg 840
gcgaaactgc gtgcttatgc gctttctgaa cagctgaaag agatcatggc acccctgttc 900
cagaaacata tggacgacat catctccggc gaattctctt ccggtatgat ggcggactgg 960
gccaacgatg ataagaaact gctgacctgg cgtgaagaga ccggcaaaac cgcgtttgaa 1020
accgcgccgc agtatgaagg caaaatcggc gagcaggagt acttcgataa aggcgtactg 1080
atgattgcga tggtgaaagc gggcgttgaa ctggcgttcg aaaccatggt cgattccggc 1140
atcattgaag agtctgcata ttatgaatca ctgcacgagc tgccgctgat tgccaacacc 1200
atcgcccgta agcgtctgta cgaaatgaac gtggttatct ctgataccgc tgagtacggt 1260
aactatctgt tctcttacgc ttgtgtgccg ttgctgaaac cgtttatggc agagctgcaa 1320
ccgggcgacc tgggtaaagc tattccggaa ggcgcggtag ataacgggca actgcgtgat 1380
gtgaacgaag cgattcgcag ccatgcgatt gagcaggtag gtaagaaact gcgcggctat 1440
atgacagata tgaaacgtat tgctgttgcg ggttaa 1476
<210> 77
<211> 376
<212> PRT
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 77
Met Thr Leu Ala Pro Leu Asp Ala Ser Lys Val Lys Ile Thr Thr Thr
1 5 10 15
Gln His Ala Ser Lys Pro Lys Pro Asn Ser Glu Leu Val Phe Gly Lys
20 25 30
Ser Phe Thr Asp His Met Leu Thr Ala Glu Trp Thr Ala Glu Lys Gly
35 40 45
Trp Gly Thr Pro Glu Ile Lys Pro Tyr Gln Asn Leu Ser Leu Asp Pro
50 55 60
Ser Ala Val Val Phe His Tyr Ala Phe Glu Leu Phe Glu Gly Met Lys
65 70 75 80
Ala Tyr Arg Thr Val Asp Asn Lys Ile Thr Met Phe Arg Pro Asp Met
85 90 95
Asn Met Lys Arg Met Asn Lys Ser Ala Gln Arg Ile Cys Leu Pro Thr
100 105 110
Phe Asp Pro Glu Glu Leu Ile Thr Leu Ile Gly Lys Leu Ile Gln Gln
115 120 125
Asp Lys Cys Leu Val Pro Glu Gly Lys Gly Tyr Ser Leu Tyr Ile Arg
130 135 140
Pro Thr Leu Ile Gly Thr Thr Ala Gly Leu Gly Val Ser Thr Pro Asp
145 150 155 160
Arg Ala Leu Leu Tyr Val Ile Cys Cys Pro Val Gly Pro Tyr Tyr Lys
165 170 175
Thr Gly Phe Lys Ala Val Arg Leu Glu Ala Thr Asp Tyr Ala Thr Arg
180 185 190
Ala Trp Pro Gly Gly Cys Gly Asp Lys Lys Leu Gly Ala Asn Tyr Ala
195 200 205
Pro Cys Val Leu Pro Gln Leu Gln Ala Ala Ser Arg Gly Tyr Gln Gln
210 215 220
Asn Leu Trp Leu Phe Gly Pro Asn Asn Asn Ile Thr Glu Val Gly Thr
225 230 235 240
Met Asn Ala Phe Phe Val Phe Lys Asp Ser Lys Thr Gly Lys Lys Glu
245 250 255
Leu Val Thr Ala Pro Leu Asp Gly Thr Ile Leu Glu Gly Val Thr Arg
260 265 270
Asp Ser Ile Leu Asn Leu Ala Lys Glu Arg Leu Glu Pro Ser Glu Trp
275 280 285
Thr Ile Ser Glu Arg Tyr Phe Thr Ile Gly Glu Val Thr Glu Arg Ser
290 295 300
Lys Asn Gly Glu Leu Leu Glu Ala Phe Gly Ser Gly Thr Ala Ala Ile
305 310 315 320
Val Ser Pro Ile Lys Glu Ile Gly Trp Lys Gly Glu Gln Ile Asn Ile
325 330 335
Pro Leu Leu Pro Gly Glu Gln Thr Gly Pro Leu Ala Lys Glu Val Ala
340 345 350
Gln Trp Ile Asn Gly Ile Gln Tyr Gly Glu Thr Glu His Gly Asn Trp
355 360 365
Ser Arg Val Val Thr Asp Leu Asn
370 375
<210> 78
<211> 376
<212> PRT
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 78
Met Thr Leu Ala Pro Leu Asp Ala Ser Lys Val Lys Ile Thr Thr Thr
1 5 10 15
Gln His Ala Ser Lys Pro Lys Pro Asn Ser Glu Leu Val Phe Gly Lys
20 25 30
Ser Phe Thr Asp His Met Leu Thr Ala Glu Trp Thr Ala Glu Lys Gly
35 40 45
Trp Gly Thr Pro Glu Ile Lys Pro Tyr Gln Asn Leu Ser Leu Asp Pro
50 55 60
Ser Ala Val Val Phe His Tyr Ala Phe Glu Leu Phe Glu Gly Met Lys
65 70 75 80
Ala Tyr Arg Thr Val Asp Asn Lys Ile Thr Met Phe Arg Pro Asp Met
85 90 95
Asn Met Lys Arg Met Asn Lys Ser Ala Gln Arg Ile Cys Leu Pro Thr
100 105 110
Phe Asp Pro Glu Glu Leu Ile Thr Leu Ile Gly Lys Leu Ile Gln Gln
115 120 125
Asp Lys Cys Leu Val Pro Glu Gly Lys Gly Tyr Ser Leu Tyr Ile Arg
130 135 140
Pro Thr Leu Ile Gly Thr Thr Ala Gly Leu Gly Val Ser Thr Pro Asp
145 150 155 160
Arg Ala Leu Leu Tyr Val Ile Cys Cys Pro Val Gly Pro Tyr Tyr Lys
165 170 175
Thr Gly Phe Lys Ala Val Arg Leu Glu Ala Thr Asp Tyr Ala Thr Arg
180 185 190
Ala Trp Pro Gly Gly Cys Gly Asp Lys Lys Leu Gly Ala Asn Tyr Ala
195 200 205
Pro Cys Val Leu Pro Gln Leu Gln Ala Ala Ser Arg Gly Tyr Gln Gln
210 215 220
Asn Leu Trp Leu Phe Gly Pro Asn Asn Asn Ile Thr Glu Val Gly Thr
225 230 235 240
Met Asn Ala Phe Phe Val Phe Lys Asp Ser Lys Thr Gly Lys Lys Glu
245 250 255
Leu Val Thr Ala Pro Leu Asp Gly Thr Ile Leu Glu Gly Val Thr Arg
260 265 270
Asp Ser Ile Leu Asn Leu Ala Lys Glu Arg Leu Glu Pro Ser Glu Trp
275 280 285
Thr Ile Ser Glu Arg Tyr Phe Thr Ile Gly Glu Val Thr Glu Arg Ser
290 295 300
Lys Asn Gly Glu Leu Leu Glu Ala Phe Gly Ser Gly Thr Ala Ala Ile
305 310 315 320
Val Ser Pro Ile Lys Glu Ile Gly Trp Lys Gly Glu Gln Ile Asn Ile
325 330 335
Pro Leu Leu Pro Gly Glu Gln Thr Gly Pro Leu Ala Lys Glu Val Ala
340 345 350
Gln Trp Ile Asn Gly Ile Gln Tyr Gly Glu Thr Glu His Gly Asn Trp
355 360 365
Ser Arg Val Val Thr Asp Leu Asn
370 375
<210> 79
<211> 330
<212> PRT
<213> Methanobacterium thermoautotrophicum
<400> 79
Met Arg Leu Trp Arg Ala Leu Tyr Arg Pro Pro Thr Ile Thr Tyr Pro
1 5 10 15
Ser Lys Ser Pro Glu Val Ile Ile Met Ser Cys Glu Ala Ser Gly Lys
20 25 30
Ile Trp Leu Asn Gly Glu Met Val Glu Trp Glu Glu Ala Thr Val His
35 40 45
Val Leu Ser His Val Val His Tyr Gly Ser Ser Val Phe Glu Gly Ile
50 55 60
Arg Cys Tyr Arg Asn Ser Lys Gly Ser Ala Ile Phe Arg Leu Arg Glu
65 70 75 80
His Val Lys Arg Leu Phe Asp Ser Ala Lys Ile Tyr Arg Met Asp Ile
85 90 95
Pro Tyr Thr Gln Glu Gln Ile Cys Asp Ala Ile Val Glu Thr Val Arg
100 105 110
Glu Asn Gly Leu Glu Glu Cys Tyr Ile Arg Pro Val Val Phe Arg Gly
115 120 125
Tyr Gly Glu Met Gly Val His Pro Val Asn Cys Pro Val Asp Val Ala
130 135 140
Val Ala Ala Trp Glu Trp Gly Ala Tyr Leu Gly Ala Glu Ala Leu Glu
145 150 155 160
Val Gly Val Asp Ala Gly Val Ser Thr Trp Arg Arg Met Ala Pro Asn
165 170 175
Thr Met Pro Asn Met Ala Lys Ala Gly Gly Asn Tyr Leu Asn Ser Gln
180 185 190
Leu Ala Lys Met Glu Ala Val Arg His Gly Tyr Asp Glu Ala Ile Met
195 200 205
Leu Asp Tyr His Gly Tyr Ile Ser Glu Gly Ser Gly Glu Asn Ile Phe
210 215 220
Leu Val Ser Glu Gly Glu Ile Tyr Thr Pro Pro Val Ser Ser Ser Leu
225 230 235 240
Leu Arg Gly Ile Thr Arg Asp Ser Val Ile Lys Ile Ala Arg Thr Glu
245 250 255
Gly Val Thr Val His Glu Glu Pro Ile Thr Arg Glu Met Leu Tyr Ile
260 265 270
Ala Asp Glu Ala Phe Phe Thr Gly Thr Ala Ala Glu Ile Thr Pro Ile
275 280 285
Arg Ser Val Asp Gly Ile Glu Ile Gly Ala Gly Arg Arg Gly Pro Val
290 295 300
Thr Lys Leu Leu Gln Asp Glu Phe Phe Arg Ile Ile Arg Ala Glu Thr
305 310 315 320
Glu Asp Ser Phe Gly Trp Leu Thr Tyr Ile
325 330
<210> 80
<211> 993
<212> DNA
<213> Methanobacterium thermoautotrophicum
<400> 80
tcagatgtag gtgagccatc cgaagctgtc ctctgtctct gccctgatta tcctgaagaa 60
ctcatcctgc agcagctttg taacgggacc ccttcgcccg gcacctatct ctataccatc 120
aactgatctg atgggtgtta tctctgcggc tgtacctgtg aagaaggcct catctgcgat 180
gtagagcatc tccctggtta tgggttcctc atgcacggta acaccctcgg tcctggctat 240
ctttattacg gagtcccttg ttatccccct cagaagggat gatgaaacag ggggggtgta 300
aatttcaccc tcactgacga ggaatatgtt ctccccgcta ccctcactta tgtagccatg 360
gtagtccagc attatggcct catcatagcc gtgtctcaca gcctccatct tggcaagctg 420
tgagttgagg tagttaccgc cggcctttgc catgttgggc attgtgtttg gtgccatcct 480
ccgccaggtt gaaacaccag catcgacacc aacctcaagg gcctctgcac ccagataggc 540
cccccattcc caggcagcca cagcgacgtc cactgggcag ttcaccgggt gaacacccat 600
ctcaccgtat cccctgaata ccacgggtct tatatagcac tcctcaagtc cgttctccct 660
gacggtctca actatggcat cacatatctg ctcctgggtg tagggtatgt ccatccggta 720
tatctttgca gaatcaaaaa ggcgtttaac atgctcccgc aaacggaaga tggctgaccc 780
cttactgttc ctgtagcacc ttattccctc aaagacagat gatccataat gcacaacatg 840
tgagagtacg tggacggtgg cttcttccca ttcaaccatt tcaccgttta accatatctt 900
tccactggct tcgcatgaca tgataataac ctcaggtgat ttactaggat aggttatggt 960
tggaggccta tataatgctc tccataaccg caa 993
<210> 81
<211> 364
<212> PRT
<213> Streptomyces coelicolor
<400> 81
Met Thr Asp Val Asn Gly Ala Pro Ala Asp Val Leu His Thr Leu Phe
1 5 10 15
His Ser Asp Gln Gly Gly His Glu Gln Val Val Leu Cys Gln Asp Arg
20 25 30
Ala Ser Gly Leu Lys Ala Val Ile Ala Leu His Ser Thr Ala Leu Gly
35 40 45
Pro Ala Leu Gly Gly Thr Arg Phe Tyr Pro Tyr Ala Ser Glu Ala Glu
50 55 60
Ala Val Ala Asp Ala Leu Asn Leu Ala Arg Gly Met Ser Tyr Lys Asn
65 70 75 80
Ala Met Ala Gly Leu Asp His Gly Gly Gly Lys Ala Val Ile Ile Gly
85 90 95
Asp Pro Glu Gln Ile Lys Ser Glu Glu Leu Leu Leu Ala Tyr Gly Arg
100 105 110
Phe Val Ala Ser Leu Gly Gly Arg Tyr Val Thr Ala Cys Asp Val Gly
115 120 125
Thr Tyr Val Ala Asp Met Asp Val Val Ala Arg Glu Cys Arg Trp Thr
130 135 140
Thr Gly Arg Ser Pro Glu Asn Gly Gly Ala Gly Asp Ser Ser Val Leu
145 150 155 160
Thr Ser Phe Gly Val Tyr Gln Gly Met Arg Ala Ala Ala Gln His Leu
165 170 175
Trp Gly Asp Pro Thr Leu Arg Asp Arg Thr Val Gly Ile Ala Gly Val
180 185 190
Gly Lys Val Gly His His Leu Val Glu His Leu Leu Ala Glu Gly Ala
195 200 205
His Val Val Val Thr Asp Val Arg Lys Asp Val Val Arg Gly Ile Thr
210 215 220
Glu Arg His Pro Ser Val Val Ala Val Ala Asp Thr Asp Ala Leu Ile
225 230 235 240
Arg Val Glu Asn Leu Asp Ile Tyr Ala Pro Cys Ala Leu Gly Gly Ala
245 250 255
Leu Asn Asp Asp Thr Val Pro Val Leu Thr Ala Lys Val Val Cys Gly
260 265 270
Ala Ala Asn Asn Gln Leu Ala His Pro Gly Val Glu Lys Asp Leu Ala
275 280 285
Asp Arg Gly Ile Leu Tyr Ala Pro Asp Tyr Val Val Asn Ala Gly Gly
290 295 300
Val Ile Gln Val Ala Asp Glu Leu His Gly Phe Asp Phe Asp Arg Cys
305 310 315 320
Lys Ala Lys Ala Ser Lys Ile Tyr Asp Thr Thr Leu Ala Ile Phe Ala
325 330 335
Arg Ala Lys Glu Asp Gly Ile Pro Pro Ala Ala Ala Ala Asp Arg Ile
340 345 350
Ala Glu Gln Arg Met Ala Glu Ala Arg Pro Arg Pro
355 360
<210> 82
<211> 1095
<212> DNA
<213> Streptomyces coelicolor
<400> 82
tcacggccgg ggacgggcct ccgccatccg ctgctcggcg atccggtcgg ccgccgcggc 60
cggcggaata ccgtcctcct tcgcacgtgc gaatatggcc agcgtggtgt cgtagatctt 120
cgaggccttc gccttgcacc ggtcgaagtc gaacccgtgc agctcgtcgg cgacctggat 180
gacaccgccg gcgttcacca catagtccgg cgcgtagagg atcccgcggt cggcgaggtc 240
cttctcgacg cccgggtggg cgagctggtt gttggccgcg ccgcacacca ccttggcggt 300
cagcaccggc acggtgtcgt cgttcagcgc gccgccgagc gcgcagggcg cgtagatgtc 360
caggttctcc acccggatca gcgcgtcggt gtcggcgacg gcgaccaccg acgggtgccg 420
ctccgtgatc ccgcgcacca cgtccttgcg cacgtccgtg acgacgacgt gggcgccctc 480
ggcgagcagg tgctcgacca ggtggtggcc gaccttgccg acgcccgcga tgccgacggt 540
gcggtcgcgc agcgtcgggt cgccccacag gtgctgggcg gcggcccgca tgccctggta 600
gacgccgaag gaggtgagca cggaggagtc gcccgcgccg ccgttctccg gggaacgccc 660
ggtcgtccag cggcactcgc gggccacgac gtccatgtcg gcgacgtagg tgccgacgtc 720
gcacgcggtg acgtagcggc cgcccagcga ggcgacgaac cggccgtagg cgaggagcag 780
ctcctcgctc ttgatctgct ccggatcgcc gatgatcacg gccttgccgc caccgtggtc 840
cagaccggcc atggcgttct tgtacgacat cccgcgggcg aggttcagcg cgtcggcgac 900
ggcctccgcc tcgctcgcgt acgggtagaa gcgggtaccg ccgagcgccg ggcccagggc 960
ggtggagtgg agggcgatca cggccttgag gccgctggca cggtcctggc agagcacgac 1020
ttgctcatgt cccccctgat ccgagtggaa cagggtgtgc agtacatcag caggtgcgcc 1080
gtttacgtcg gtcac 1095
<210> 83
<211> 364
<212> PRT
<213> Bacillus subtilis
<400> 83
Met Glu Leu Phe Lys Tyr Met Glu Lys Tyr Asp Tyr Glu Gln Leu Val
1 5 10 15
Phe Cys Gln Asp Glu Gln Ser Gly Leu Lys Ala Ile Ile Ala Ile His
20 25 30
Asp Thr Thr Leu Gly Pro Ala Leu Gly Gly Thr Arg Met Trp Thr Tyr
35 40 45
Glu Asn Glu Glu Ala Ala Ile Glu Asp Ala Leu Arg Leu Ala Arg Gly
50 55 60
Met Thr Tyr Lys Asn Ala Ala Ala Gly Leu Asn Leu Gly Gly Gly Lys
65 70 75 80
Thr Val Ile Ile Gly Asp Pro Arg Lys Asp Lys Asn Glu Glu Met Phe
85 90 95
Arg Ala Phe Gly Arg Tyr Ile Gln Gly Leu Asn Gly Arg Tyr Ile Thr
100 105 110
Ala Glu Asp Val Gly Thr Thr Val Glu Asp Met Asp Ile Ile His Asp
115 120 125
Glu Thr Asp Tyr Val Thr Gly Ile Ser Pro Ala Phe Gly Ser Ser Gly
130 135 140
Asn Pro Ser Pro Val Thr Ala Tyr Gly Val Tyr Arg Gly Met Lys Ala
145 150 155 160
Ala Ala Lys Ala Ala Phe Gly Thr Asp Ser Leu Glu Gly Lys Thr Ile
165 170 175
Ala Val Gln Gly Val Gly Asn Val Ala Tyr Asn Leu Cys Arg His Leu
180 185 190
His Glu Glu Gly Ala Asn Leu Ile Val Thr Asp Ile Asn Lys Gln Ser
195 200 205
Val Gln Arg Ala Val Glu Asp Phe Gly Ala Arg Ala Val Asp Pro Asp
210 215 220
Asp Ile Tyr Ser Gln Asp Cys Asp Ile Tyr Ala Pro Cys Ala Leu Gly
225 230 235 240
Ala Thr Ile Asn Asp Asp Thr Ile Lys Gln Leu Lys Ala Lys Val Ile
245 250 255
Ala Gly Ala Ala Asn Asn Gln Leu Lys Glu Thr Arg His Gly Asp Gln
260 265 270
Ile His Glu Met Gly Ile Val Tyr Ala Pro Asp Tyr Val Ile Asn Ala
275 280 285
Gly Gly Val Ile Asn Val Ala Asp Glu Leu Tyr Gly Tyr Asn Ala Glu
290 295 300
Arg Ala Leu Lys Lys Val Glu Gly Ile Tyr Gly Asn Ile Glu Arg Val
305 310 315 320
Leu Glu Ile Ser Gln Arg Asp Gly Ile Pro Ala Tyr Leu Ala Ala Asp
325 330 335
Arg Leu Ala Glu Glu Arg Ile Glu Arg Met Arg Arg Ser Arg Ser Gln
340 345 350
Phe Leu Gln Asn Gly His Ser Val Leu Ser Arg Arg
355 360
<210> 84
<211> 364
<212> PRT
<213> Bacillus subtilis
<400> 84
Met Glu Leu Phe Lys Tyr Met Glu Lys Tyr Asp Tyr Glu Gln Leu Val
1 5 10 15
Phe Cys Gln Asp Glu Gln Ser Gly Leu Lys Ala Ile Ile Ala Ile His
20 25 30
Asp Thr Thr Leu Gly Pro Ala Leu Gly Gly Thr Arg Met Trp Thr Tyr
35 40 45
Glu Asn Glu Glu Ala Ala Ile Glu Asp Ala Leu Arg Leu Ala Arg Gly
50 55 60
Met Thr Tyr Lys Asn Ala Ala Ala Gly Leu Asn Leu Gly Gly Gly Lys
65 70 75 80
Thr Val Ile Ile Gly Asp Pro Arg Lys Asp Lys Asn Glu Glu Met Phe
85 90 95
Arg Ala Phe Gly Arg Tyr Ile Gln Gly Leu Asn Gly Arg Tyr Ile Thr
100 105 110
Ala Glu Asp Val Gly Thr Thr Val Glu Asp Met Asp Ile Ile His Asp
115 120 125
Glu Thr Asp Tyr Val Thr Gly Ile Ser Pro Ala Phe Gly Ser Ser Gly
130 135 140
Asn Pro Ser Pro Val Thr Ala Tyr Gly Val Tyr Arg Gly Met Lys Ala
145 150 155 160
Ala Ala Lys Ala Ala Phe Gly Thr Asp Ser Leu Glu Gly Lys Thr Ile
165 170 175
Ala Val Gln Gly Val Gly Asn Val Ala Tyr Asn Leu Cys Arg His Leu
180 185 190
His Glu Glu Gly Ala Asn Leu Ile Val Thr Asp Ile Asn Lys Gln Ser
195 200 205
Val Gln Arg Ala Val Glu Asp Phe Gly Ala Arg Ala Val Asp Pro Asp
210 215 220
Asp Ile Tyr Ser Gln Asp Cys Asp Ile Tyr Ala Pro Cys Ala Leu Gly
225 230 235 240
Ala Thr Ile Asn Asp Asp Thr Ile Lys Gln Leu Lys Ala Lys Val Ile
245 250 255
Ala Gly Ala Ala Asn Asn Gln Leu Lys Glu Thr Arg His Gly Asp Gln
260 265 270
Ile His Glu Met Gly Ile Val Tyr Ala Pro Asp Tyr Val Ile Asn Ala
275 280 285
Gly Gly Val Ile Asn Val Ala Asp Glu Leu Tyr Gly Tyr Asn Ala Glu
290 295 300
Arg Ala Leu Lys Lys Val Glu Gly Ile Tyr Gly Asn Ile Glu Arg Val
305 310 315 320
Leu Glu Ile Ser Gln Arg Asp Gly Ile Pro Ala Tyr Leu Ala Ala Asp
325 330 335
Arg Leu Ala Glu Glu Arg Ile Glu Arg Met Arg Arg Ser Arg Ser Gln
340 345 350
Phe Leu Gln Asn Gly His Ser Val Leu Ser Arg Arg
355 360
<210> 85
<211> 594
<212> PRT
<213> Streptomyces viridifaciens
<400> 85
Met Ser Thr Ser Ser Ala Ser Ser Gly Pro Asp Leu Pro Phe Gly Pro
1 5 10 15
Glu Asp Thr Pro Trp Gln Lys Ala Phe Ser Arg Leu Arg Ala Val Asp
20 25 30
Gly Val Pro Arg Val Thr Ala Pro Ser Ser Asp Pro Arg Glu Val Tyr
35 40 45
Met Asp Ile Pro Glu Ile Pro Phe Ser Lys Val Gln Ile Pro Pro Asp
50 55 60
Gly Met Asp Glu Gln Gln Tyr Ala Glu Ala Glu Ser Leu Phe Arg Arg
65 70 75 80
Tyr Val Asp Ala Gln Thr Arg Asn Phe Ala Gly Tyr Gln Val Thr Ser
85 90 95
Asp Leu Asp Tyr Gln His Leu Ser His Tyr Leu Asn Arg His Leu Asn
100 105 110
Asn Val Gly Asp Pro Tyr Glu Ser Ser Ser Tyr Thr Leu Asn Ser Lys
115 120 125
Val Leu Glu Arg Ala Val Leu Asp Tyr Phe Ala Ser Leu Trp Asn Ala
130 135 140
Lys Trp Pro His Asp Ala Ser Asp Pro Glu Thr Tyr Trp Gly Tyr Val
145 150 155 160
Leu Thr Met Gly Ser Ser Glu Gly Asn Leu Tyr Gly Leu Trp Asn Ala
165 170 175
Arg Asp Tyr Leu Ser Gly Lys Leu Leu Arg Arg Gln His Arg Glu Ala
180 185 190
Gly Gly Asp Lys Ala Ser Val Val Tyr Thr Gln Ala Leu Arg His Glu
195 200 205
Gly Gln Ser Pro His Ala Tyr Glu Pro Val Ala Phe Phe Ser Gln Asp
210 215 220
Thr His Tyr Ser Leu Thr Lys Ala Val Arg Val Leu Gly Ile Asp Thr
225 230 235 240
Phe His Ser Ile Gly Ser Ser Arg Tyr Pro Asp Glu Asn Pro Leu Gly
245 250 255
Pro Gly Thr Pro Trp Pro Thr Glu Val Pro Ser Val Asp Gly Ala Ile
260 265 270
Asp Val Asp Lys Leu Ala Ser Leu Val Arg Phe Phe Ala Ser Lys Gly
275 280 285
Tyr Pro Ile Leu Val Ser Leu Asn Tyr Gly Ser Thr Phe Lys Gly Ala
290 295 300
Tyr Asp Asp Val Pro Ala Val Ala Gln Ala Val Arg Asp Ile Cys Thr
305 310 315 320
Glu Tyr Gly Leu Asp Arg Arg Arg Val Tyr His Asp Arg Ser Lys Asp
325 330 335
Ser Asp Phe Asp Glu Arg Ser Gly Phe Trp Ile His Ile Asp Ala Ala
340 345 350
Leu Gly Ala Gly Tyr Ala Pro Tyr Leu Gln Met Ala Arg Asp Ala Gly
355 360 365
Met Val Glu Glu Ala Pro Pro Val Phe Asp Phe Arg Leu Pro Glu Val
370 375 380
His Ser Leu Thr Met Ser Gly His Lys Trp Met Gly Thr Pro Trp Ala
385 390 395 400
Cys Gly Val Tyr Met Thr Arg Thr Gly Leu Gln Met Thr Pro Pro Lys
405 410 415
Ser Ser Glu Tyr Ile Gly Ala Ala Asp Thr Thr Phe Ala Gly Ser Arg
420 425 430
Asn Gly Phe Ser Ser Leu Leu Leu Trp Asp Tyr Leu Ser Arg His Ser
435 440 445
Tyr Asp Asp Leu Val Arg Leu Ala Ala Asp Cys Asp Arg Leu Ala Gly
450 455 460
Tyr Ala His Asp Arg Leu Leu Thr Leu Gln Asp Lys Leu Gly Met Asp
465 470 475 480
Leu Trp Val Ala Arg Ser Pro Gln Ser Leu Thr Val Arg Phe Arg Gln
485 490 495
Pro Cys Ala Asp Ile Val Arg Lys Tyr Ser Leu Ser Cys Glu Thr Val
500 505 510
Tyr Glu Asp Asn Glu Gln Arg Thr Tyr Val His Leu Tyr Ala Val Pro
515 520 525
His Leu Thr Arg Glu Leu Val Asp Glu Leu Val Arg Asp Leu Arg Gln
530 535 540
Pro Gly Ala Phe Thr Asn Ala Gly Ala Leu Glu Gly Glu Ala Trp Ala
545 550 555 560
Gly Val Ile Asp Ala Leu Gly Arg Pro Asp Pro Asp Gly Thr Tyr Ala
565 570 575
Gly Ala Leu Ser Ala Pro Ala Ser Gly Pro Arg Ser Glu Asp Gly Gly
580 585 590
Gly Ser
<210> 86
<211> 1785
<212> DNA
<213> Streptomyces viridifaciens
<400> 86
gtgtcaactt cctccgcttc ttccgggccg gacctcccct tcgggcccga ggacacgcca 60
tggcagaagg ccttcagcag gctgcgggcg gtggatggcg tgccgcgcgt caccgcgccg 120
tccagtgatc cgcgtgaggt ctacatggac atcccggaga tccccttctc caaggtccag 180
atccccccgg acggaatgga cgagcagcag tacgcagagg ccgagagcct cttccgccgc 240
tacgtagacg cccagacccg caacttcgcg ggataccagg tcaccagcga cctcgactac 300
cagcacctca gtcactatct caaccggcat ctgaacaacg tcggcgatcc ctatgagtcc 360
agctcctaca cgctgaactc caaggtcctt gagcgagccg ttctcgacta cttcgcctcc 420
ctgtggaacg ccaagtggcc ccatgacgca agcgatccgg aaacgtactg gggttacgtg 480
ctgaccatgg gctccagcga aggcaacctg tacgggttgt ggaacgcacg ggactatctg 540
tcgggcaagc tgctgcggcg ccagcaccgg gaggccggcg gcgacaaggc ctcggtcgtc 600
tacacgcaag cgctgcgaca cgaagggcag agtccgcatg cctacgagcc ggtggcgttc 660
ttctcgcagg acacgcacta ctcgctcacg aaggccgtgc gggttctggg catcgacacc 720
ttccacagca tcggcagcag tcggtatccg gacgagaacc cgctgggccc cggcactccg 780
tggccgaccg aagtgccctc ggttgacggt gccatcgatg tcgacaaact cgcctcgttg 840
gtccgcttct tcgccagcaa gggctacccg atactggtca gcctcaacta cgggtcaacg 900
ttcaagggcg cctacgacga cgtcccggcc gtggcacagg ccgtgcggga catctgcacg 960
gaatacggtc tggatcggcg gcgggtatac cacgaccgca gtaaggacag tgacttcgac 1020
gagcgcagcg gcttctggat ccacatcgat gccgccctgg gggcgggcta cgctccctac 1080
ctgcagatgg cccgggatgc cggcatggtc gaggaggcgc cgcccgtttt cgacttccgg 1140
ctcccggagg tgcactcgct gaccatgagc ggccacaagt ggatgggaac accgtgggca 1200
tgcggtgtct acatgacacg gaccgggctg cagatgaccc cgccgaagtc gtccgagtac 1260
atcggggcgg ccgacaccac cttcgcgggc tcccgcaacg gcttctcgtc actgctgctg 1320
tgggactacc tgtcccggca ttcgtatgac gatctggtgc gcctggccgc cgactgcgac 1380
cggctggccg gctacgccca cgaccggttg ctgaccttgc aggacaaact cggcatggat 1440
ctgtgggtcg cccgcagccc gcagtccctc acggtgcgct tccgtcagcc atgtgcagac 1500
atcgtccgca agtactcgct gtcgtgtgag acggtctacg aagacaacga gcaacggacc 1560
tacgtacatc tctacgccgt tccccacctc actcgggaac tcgtggatga gctcgtgcgc 1620
gatctgcgcc agcccggagc cttcaccaac gctggtgcac tggaggggga ggcctgggcc 1680
ggggtgatcg atgccctcgg ccgcccggac cccgacggaa cctatgccgg cgccttgagc 1740
gctccggctt ccggcccccg ctccgaggac ggcggcggga gctga 1785
<210> 87
<211> 440
<212> PRT
<213> Alcaligenes denitrificans
<400> 87
Met Ser Ala Ala Lys Leu Pro Asp Leu Ser His Leu Trp Met Pro Phe
1 5 10 15
Thr Ala Asn Arg Gln Phe Lys Ala Asn Pro Arg Leu Leu Ala Ser Ala
20 25 30
Lys Gly Met Tyr Tyr Thr Ser Phe Asp Gly Arg Gln Ile Leu Asp Gly
35 40 45
Thr Ala Gly Leu Trp Cys Val Asn Ala Gly His Cys Arg Glu Glu Ile
50 55 60
Val Ser Ala Ile Ala Ser Gln Ala Gly Val Met Asp Tyr Ala Pro Gly
65 70 75 80
Phe Gln Leu Gly His Pro Leu Ala Phe Glu Ala Ala Thr Ala Val Ala
85 90 95
Gly Leu Met Pro Gln Gly Leu Asp Arg Val Phe Phe Thr Asn Ser Gly
100 105 110
Ser Glu Ser Val Asp Thr Ala Leu Lys Ile Ala Leu Ala Tyr His Arg
115 120 125
Ala Arg Gly Glu Ala Gln Arg Thr Arg Leu Ile Gly Arg Glu Arg Gly
130 135 140
Tyr His Gly Val Gly Phe Gly Gly Ile Ser Val Gly Gly Ile Ser Pro
145 150 155 160
Asn Arg Lys Thr Phe Ser Gly Ala Leu Leu Pro Ala Val Asp His Leu
165 170 175
Pro His Thr His Ser Leu Glu His Asn Ala Phe Thr Arg Gly Gln Pro
180 185 190
Glu Trp Gly Ala His Leu Ala Asp Glu Leu Glu Arg Ile Ile Ala Leu
195 200 205
His Asp Ala Ser Thr Ile Ala Ala Val Ile Val Glu Pro Met Ala Gly
210 215 220
Ser Thr Gly Val Leu Val Pro Pro Lys Gly Tyr Leu Glu Lys Leu Arg
225 230 235 240
Glu Ile Thr Ala Arg His Gly Ile Leu Leu Ile Phe Asp Glu Val Ile
245 250 255
Thr Ala Tyr Gly Arg Leu Gly Glu Ala Thr Ala Ala Ala Tyr Phe Gly
260 265 270
Val Thr Pro Asp Leu Ile Thr Met Ala Lys Gly Val Ser Asn Ala Ala
275 280 285
Val Pro Ala Gly Ala Val Ala Val Arg Arg Glu Val His Asp Ala Ile
290 295 300
Val Asn Gly Pro Gln Gly Gly Ile Glu Phe Phe His Gly Tyr Thr Tyr
305 310 315 320
Ser Ala His Pro Leu Ala Ala Ala Ala Val Leu Ala Thr Leu Asp Ile
325 330 335
Tyr Arg Arg Glu Asp Leu Phe Ala Arg Ala Arg Lys Leu Ser Ala Ala
340 345 350
Phe Glu Glu Ala Ala His Ser Leu Lys Gly Ala Pro His Val Ile Asp
355 360 365
Val Arg Asn Ile Gly Leu Val Ala Gly Ile Glu Leu Ser Pro Arg Glu
370 375 380
Gly Ala Pro Gly Ala Arg Ala Ala Glu Ala Phe Gln Lys Cys Phe Asp
385 390 395 400
Thr Gly Leu Met Val Arg Tyr Thr Gly Asp Ile Leu Ala Val Ser Pro
405 410 415
Pro Leu Ile Val Asp Glu Asn Gln Ile Gly Gln Ile Phe Glu Gly Ile
420 425 430
Gly Lys Val Leu Lys Glu Val Ala
435 440
<210> 88
<211> 1947
<212> DNA
<213> Alcaligenes denitrificans
<400> 88
ttcgatggcg cgctgcacgg cggccaccag ctgctccacc aggggtgggc gcctgcccgc 60
gcgcgcggtc gggctggaaa tcgatcatgg atgaatctat acagttgtca tgattgcaac 120
tatacagtta gcccgttttg cggcaattgt atattttcat tcgctcgtgg acgtccgaga 180
atcggtttga tcgcgccgcc cgcccctttc cgcgcagcgg cgtttctttt cctccggagt 240
ctccccatga gcgctgccaa actgcccgac ctgtcccacc tctggatgcc ctttaccgcc 300
aaccggcagt tcaaggcgaa cccccgcctg ctggcctcgg ccaagggcat gtactacacg 360
tctttcgacg gccgccagat cctggacggc acggccggcc tgtggtgcgt gaacgccggc 420
cactgccgcg aagaaatcgt ctccgccatc gccagccagg ccggcgtcat ggactacgcg 480
ccggggttcc agctcggcca cccgctggcc ttcgaggccg ccaccgccgt ggccggcctg 540
atgccgcagg gcctggaccg cgtgttcttc accaattcgg gctccgaatc ggtggacacc 600
gcgctgaaga tcgccctggc ctaccaccgc gcgcgcggcg aggcgcagcg cacccgcctc 660
atcgggcgcg agcgcggcta ccacggcgtg ggcttcggcg gcatttccgt gggcggcatc 720
tcgcccaacc gcaagacctt ctccggcgcg ctgctgccgg ccgtggacca cctgccgcac 780
acccacagcc tggaacacaa cgccttcacg cgcggccagc ccgagtgggg cgcgcacctg 840
gccgacgagt tggaacgcat catcgccctg cacgacgcct ccaccatcgc ggccgtgatc 900
gtcgagccca tggccggctc caccggcgtg ctcgtcccgc ccaagggcta tctcgaaaaa 960
ctgcgcgaaa tcaccgcccg ccacggcatt ctgctgatct tcgacgaagt catcaccgcg 1020
tacggccgcc tgggcgaggc caccgccgcg gcctatttcg gcgtaacgcc cgacctcatc 1080
accatggcca agggcgtgag caacgccgcc gttccggccg gcgccgtcgc ggtgcgccgc 1140
gaagtgcatg acgccatcgt caacggaccg caaggcggca tcgagttctt ccacggctac 1200
acctactcgg cccacccgct ggccgccgcc gccgtgctcg ccacgctgga catctaccgc 1260
cgcgaagacc tgttcgcccg cgcccgcaag ctgtcggccg cgttcgagga agccgcccac 1320
agcctcaagg gcgcgccgca cgtcatcgac gtgcgcaaca tcggcctggt ggccggcatc 1380
gagctgtcgc cgcgcgaagg cgccccgggc gcgcgcgccg ccgaagcctt ccagaaatgc 1440
ttcgacaccg gcctcatggt gcgctacacg ggcgacatcc tcgcggtgtc gcctccgctc 1500
atcgtcgacg aaaaccagat cggccagatc ttcgagggca tcggcaaggt gctcaaggaa 1560
gtggcttagg gtgaacacgc cctgagccgg ccccggcagg aaacgcgccg ccgcgcggcg 1620
gcgcgtccat cgaactcccg catcgagctt ttgcattcat gaagaaaatc acgcatttca 1680
tcaacggcca gccccacgaa ggccgcagca accgctacac cgagggcttc aacccggcca 1740
cgggcgagtc gtctcctcga tctgcctggg cggggccgaa gaagtggacc tggccgtggc 1800
ggccgcccgc gcggcctttc ccgcctggtc cgaaacgccg gcgctcaagc gcgcgcgcgt 1860
gctgttcaac ttcaaggcgc tgctggacaa gcaccaggac gagctggccg cgctcatcac 1920
gcgcgagcac ggcaaggtgt tttccga 1947
<210> 89
<211> 443
<212> PRT
<213> Ralstonia eutropha
<400> 89
Met Asp Ala Ala Lys Thr Val Ile Pro Asp Leu Asp Ala Leu Trp Met
1 5 10 15
Pro Phe Thr Ala Asn Arg Gln Tyr Lys Ala Ala Pro Arg Leu Leu Ala
20 25 30
Ser Ala Ser Gly Met Tyr Tyr Thr Thr His Asp Gly Arg Gln Ile Leu
35 40 45
Asp Gly Cys Ala Gly Leu Trp Cys Val Ala Ala Gly His Cys Arg Lys
50 55 60
Glu Ile Ala Glu Ala Val Ala Arg Gln Ala Ala Thr Leu Asp Tyr Ala
65 70 75 80
Pro Pro Phe Gln Met Gly His Pro Leu Ser Phe Glu Ala Ala Thr Lys
85 90 95
Val Ala Ala Ile Met Pro Gln Gly Leu Asp Arg Ile Phe Phe Thr Asn
100 105 110
Ser Gly Ser Glu Ser Val Asp Thr Ala Leu Lys Ile Ala Leu Ala Tyr
115 120 125
His Arg Ala Arg Gly Glu Gly Gln Arg Thr Arg Phe Ile Gly Arg Glu
130 135 140
Arg Gly Tyr His Gly Val Gly Phe Gly Gly Met Ala Val Gly Gly Ile
145 150 155 160
Gly Pro Asn Arg Lys Ala Phe Ser Ala Asn Leu Met Pro Gly Thr Asp
165 170 175
His Leu Pro Ala Thr Leu Asn Ile Ala Glu Ala Ala Phe Ser Lys Gly
180 185 190
Gln Pro Thr Trp Gly Ala His Leu Ala Asp Glu Leu Glu Arg Ile Val
195 200 205
Ala Leu His Asp Pro Ser Thr Ile Ala Ala Val Ile Val Glu Pro Leu
210 215 220
Ala Gly Ser Ala Gly Val Leu Val Pro Pro Val Gly Tyr Leu Asp Lys
225 230 235 240
Leu Arg Glu Ile Thr Thr Lys His Gly Ile Leu Leu Ile Phe Asp Glu
245 250 255
Val Ile Thr Ala Phe Gly Arg Leu Gly Thr Ala Thr Ala Ala Glu Arg
260 265 270
Phe Lys Val Thr Pro Asp Leu Ile Thr Met Ala Lys Ala Ile Asn Asn
275 280 285
Ala Ala Val Pro Met Gly Ala Val Ala Val Arg Arg Glu Val His Asp
290 295 300
Thr Val Val Asn Ser Ala Ala Pro Gly Ala Ile Glu Leu Ala His Gly
305 310 315 320
Tyr Thr Tyr Ser Gly His Pro Leu Ala Ala Ala Ala Ala Ile Ala Thr
325 330 335
Leu Asp Leu Tyr Gln Arg Glu Asn Leu Phe Gly Arg Ala Ala Glu Leu
340 345 350
Ser Pro Val Phe Glu Ala Ala Val His Ser Val Arg Ser Ala Pro His
355 360 365
Val Lys Asp Ile Arg Asn Leu Gly Met Val Ala Gly Ile Glu Leu Glu
370 375 380
Pro Arg Pro Gly Gln Pro Gly Ala Arg Ala Tyr Glu Ala Phe Leu Lys
385 390 395 400
Cys Leu Glu Arg Gly Val Leu Val Arg Tyr Thr Gly Asp Ile Leu Ala
405 410 415
Phe Ser Pro Pro Leu Ile Ile Ser Glu Ala Gln Ile Ala Glu Leu Phe
420 425 430
Asp Thr Val Lys Gln Ala Leu Gln Glu Val Gln
435 440
<210> 90
<211> 1341
<212> DNA
<213> Ralstonia eutropha
<400> 90
atggccgact cacccaacaa cctcgctcac gaacatcctt cacttgaaca ctattggatg 60
ccttttaccg ccaatcgcca attcaaagcg agccctcgtt tactcgccca agctgaaggt 120
atgtattaca cagatatcaa tggcaacaag gtattagact ctacagcggg cttatggtgt 180
tgtaatgctg gccatggtcg ccgtgagatc agtgaagccg tcagcaaaca aattcggcag 240
atggattacg ctccctcctt ccaaatgggc catcccatcg cttttgaact ggccgaacgt 300
ttaaccgaac tcagcccaga aggactcaac aaagtattct ttaccaactc aggctctgag 360
tcggttgata ccgcgctaaa aatggctctt tgctaccata gagccaatgg ccaagcgtca 420
cgcacccgct ttattggccg tgaaatgggt taccatggcg taggatttgg tgggatctcg 480
gtgggtggtt taagcaataa ccgtaaagcc ttcagcggcc agctattgca aggcgtggat 540
cacctgcccc acaccttaga cattcaacat gccgccttta gtcgtggctt accgagcctc 600
ggtgctgaaa aagctgaggt attagaacaa ttagtcacac tccatggcgc cgaaaatatt 660
gccgccgtta ttgttgaacc catgtcaggt tctgcagggg taattttacc acctcaaggc 720
tacttaaaac gcttacgtga aatcactaaa aaacacggca tcttattgat tttcgatgaa 780
gtcattaccg catttggccg tgtaggtgca gcattcgcca gccaacgttg gggcgttatt 840
ccagacataa tcaccacggc taaagccatt aataatggcg ccatccccat gggcgcagtg 900
tttgtacagg attatatcca cgatacttgc atgcaagggc caaccgaact gattgaattt 960
ttccacggtt atacctattc gggccaccca gtcgccgcag cagcagcact cgccacgctc 1020
tccatctacc aaaacgagca actgtttgag cgcagttttg agcttgagcg gtatttcgaa 1080
gaagccgttc atagcctcaa agggttaccg aatgtgattg atattcgcaa caccggatta 1140
gtcgcgggtt tccagctagc accgaatagc caaggtgttg gtaaacgcgg atacagcgtg 1200
ttcgagcatt gtttccatca aggcacactc gtgcgggcaa cgggcgatat tatcgccatg 1260
tccccaccac tcattgttga gaaacatcag attgaccaaa tggtaaatag ccttagcgat 1320
gcaattcacg ccgttggatg a 1341
<210> 91
<211> 446
<212> PRT
<213> Shewanella oneidensis
<400> 91
Met Ala Asp Ser Pro Asn Asn Leu Ala His Glu His Pro Ser Leu Glu
1 5 10 15
His Tyr Trp Met Pro Phe Thr Ala Asn Arg Gln Phe Lys Ala Ser Pro
20 25 30
Arg Leu Leu Ala Gln Ala Glu Gly Met Tyr Tyr Thr Asp Ile Asn Gly
35 40 45
Asn Lys Val Leu Asp Ser Thr Ala Gly Leu Trp Cys Cys Asn Ala Gly
50 55 60
His Gly Arg Arg Glu Ile Ser Glu Ala Val Ser Lys Gln Ile Arg Gln
65 70 75 80
Met Asp Tyr Ala Pro Ser Phe Gln Met Gly His Pro Ile Ala Phe Glu
85 90 95
Leu Ala Glu Arg Leu Thr Glu Leu Ser Pro Glu Gly Leu Asn Lys Val
100 105 110
Phe Phe Thr Asn Ser Gly Ser Glu Ser Val Asp Thr Ala Leu Lys Met
115 120 125
Ala Leu Cys Tyr His Arg Ala Asn Gly Gln Ala Ser Arg Thr Arg Phe
130 135 140
Ile Gly Arg Glu Met Gly Tyr His Gly Val Gly Phe Gly Gly Ile Ser
145 150 155 160
Val Gly Gly Leu Ser Asn Asn Arg Lys Ala Phe Ser Gly Gln Leu Leu
165 170 175
Gln Gly Val Asp His Leu Pro His Thr Leu Asp Ile Gln His Ala Ala
180 185 190
Phe Ser Arg Gly Leu Pro Ser Leu Gly Ala Glu Lys Ala Glu Val Leu
195 200 205
Glu Gln Leu Val Thr Leu His Gly Ala Glu Asn Ile Ala Ala Val Ile
210 215 220
Val Glu Pro Met Ser Gly Ser Ala Gly Val Ile Leu Pro Pro Gln Gly
225 230 235 240
Tyr Leu Lys Arg Leu Arg Glu Ile Thr Lys Lys His Gly Ile Leu Leu
245 250 255
Ile Phe Asp Glu Val Ile Thr Ala Phe Gly Arg Val Gly Ala Ala Phe
260 265 270
Ala Ser Gln Arg Trp Gly Val Ile Pro Asp Ile Ile Thr Thr Ala Lys
275 280 285
Ala Ile Asn Asn Gly Ala Ile Pro Met Gly Ala Val Phe Val Gln Asp
290 295 300
Tyr Ile His Asp Thr Cys Met Gln Gly Pro Thr Glu Leu Ile Glu Phe
305 310 315 320
Phe His Gly Tyr Thr Tyr Ser Gly His Pro Val Ala Ala Ala Ala Ala
325 330 335
Leu Ala Thr Leu Ser Ile Tyr Gln Asn Glu Gln Leu Phe Glu Arg Ser
340 345 350
Phe Glu Leu Glu Arg Tyr Phe Glu Glu Ala Val His Ser Leu Lys Gly
355 360 365
Leu Pro Asn Val Ile Asp Ile Arg Asn Thr Gly Leu Val Ala Gly Phe
370 375 380
Gln Leu Ala Pro Asn Ser Gln Gly Val Gly Lys Arg Gly Tyr Ser Val
385 390 395 400
Phe Glu His Cys Phe His Gln Gly Thr Leu Val Arg Ala Thr Gly Asp
405 410 415
Ile Ile Ala Met Ser Pro Pro Leu Ile Val Glu Lys His Gln Ile Asp
420 425 430
Gln Met Val Asn Ser Leu Ser Asp Ala Ile His Ala Val Gly
435 440 445
<210> 92
<211> 1341
<212> DNA
<213> Shewanella oneidensis
<400> 92
atggccgact cacccaacaa cctcgctcac gaacatcctt cacttgaaca ctattggatg 60
ccttttaccg ccaatcgcca attcaaagcg agccctcgtt tactcgccca agctgaaggt 120
atgtattaca cagatatcaa tggcaacaag gtattagact ctacagcggg cttatggtgt 180
tgtaatgctg gccatggtcg ccgtgagatc agtgaagccg tcagcaaaca aattcggcag 240
atggattacg ctccctcctt ccaaatgggc catcccatcg cttttgaact ggccgaacgt 300
ttaaccgaac tcagcccaga aggactcaac aaagtattct ttaccaactc aggctctgag 360
tcggttgata ccgcgctaaa aatggctctt tgctaccata gagccaatgg ccaagcgtca 420
cgcacccgct ttattggccg tgaaatgggt taccatggcg taggatttgg tgggatctcg 480
gtgggtggtt taagcaataa ccgtaaagcc ttcagcggcc agctattgca aggcgtggat 540
cacctgcccc acaccttaga cattcaacat gccgccttta gtcgtggctt accgagcctc 600
ggtgctgaaa aagctgaggt attagaacaa ttagtcacac tccatggcgc cgaaaatatt 660
gccgccgtta ttgttgaacc catgtcaggt tctgcagggg taattttacc acctcaaggc 720
tacttaaaac gcttacgtga aatcactaaa aaacacggca tcttattgat tttcgatgaa 780
gtcattaccg catttggccg tgtaggtgca gcattcgcca gccaacgttg gggcgttatt 840
ccagacataa tcaccacggc taaagccatt aataatggcg ccatccccat gggcgcagtg 900
tttgtacagg attatatcca cgatacttgc atgcaagggc caaccgaact gattgaattt 960
ttccacggtt atacctattc gggccaccca gtcgccgcag cagcagcact cgccacgctc 1020
tccatctacc aaaacgagca actgtttgag cgcagttttg agcttgagcg gtatttcgaa 1080
gaagccgttc atagcctcaa agggttaccg aatgtgattg atattcgcaa caccggatta 1140
gtcgcgggtt tccagctagc accgaatagc caaggtgttg gtaaacgcgg atacagcgtg 1200
ttcgagcatt gtttccatca aggcacactc gtgcgggcaa cgggcgatat tatcgccatg 1260
tccccaccac tcattgttga gaaacatcag attgaccaaa tggtaaatag ccttagcgat 1320
gcaattcacg ccgttggatg a 1341
<210> 93
<211> 448
<212> PRT
<213> Pseudomonas putida
<400> 93
Met Asn Met Pro Glu Thr Gly Pro Ala Gly Ile Ala Ser Gln Leu Lys
1 5 10 15
Leu Asp Ala His Trp Met Pro Tyr Thr Ala Asn Arg Asn Phe Gln Arg
20 25 30
Asp Pro Arg Leu Ile Val Ala Ala Glu Gly Asn Tyr Leu Val Asp Asp
35 40 45
His Gly Arg Lys Ile Phe Asp Ala Leu Ser Gly Leu Trp Thr Cys Gly
50 55 60
Ala Gly His Thr Arg Lys Glu Ile Ala Asp Ala Val Thr Arg Gln Leu
65 70 75 80
Ser Thr Leu Asp Tyr Ser Pro Ala Phe Gln Phe Gly His Pro Leu Ser
85 90 95
Phe Gln Leu Ala Glu Lys Ile Ala Glu Leu Val Pro Gly Asn Leu Asn
100 105 110
His Val Phe Tyr Thr Asn Ser Gly Ser Glu Cys Ala Asp Thr Ala Leu
115 120 125
Lys Met Val Arg Ala Tyr Trp Arg Leu Lys Gly Gln Ala Thr Lys Thr
130 135 140
Lys Ile Ile Gly Arg Ala Arg Gly Tyr His Gly Val Asn Ile Ala Gly
145 150 155 160
Thr Ser Leu Gly Gly Val Asn Gly Asn Arg Lys Met Phe Gly Gln Leu
165 170 175
Leu Asp Val Asp His Leu Pro His Thr Val Leu Pro Val Asn Ala Phe
180 185 190
Ser Lys Gly Leu Pro Glu Glu Gly Gly Ile Ala Leu Ala Asp Glu Met
195 200 205
Leu Lys Leu Ile Glu Leu His Asp Ala Ser Asn Ile Ala Ala Val Ile
210 215 220
Val Glu Pro Leu Ala Gly Ser Ala Gly Val Leu Pro Pro Pro Lys Gly
225 230 235 240
Tyr Leu Lys Arg Leu Arg Glu Ile Cys Thr Gln His Asn Ile Leu Leu
245 250 255
Ile Phe Asp Glu Val Ile Thr Gly Phe Gly Arg Met Gly Ala Met Thr
260 265 270
Gly Ser Glu Ala Phe Gly Val Thr Pro Asp Leu Met Cys Ile Ala Lys
275 280 285
Gln Val Thr Asn Gly Ala Ile Pro Met Gly Ala Val Ile Ala Ser Ser
290 295 300
Glu Ile Tyr Gln Thr Phe Met Asn Gln Pro Thr Pro Glu Tyr Ala Val
305 310 315 320
Glu Phe Pro His Gly Tyr Thr Tyr Ser Ala His Pro Val Ala Cys Ala
325 330 335
Ala Gly Leu Ala Ala Leu Asp Leu Leu Gln Lys Glu Asn Leu Val Gln
340 345 350
Ser Ala Ala Glu Leu Ala Pro His Phe Glu Lys Leu Leu His Gly Val
355 360 365
Lys Gly Thr Lys Asn Ile Val Asp Ile Arg Asn Tyr Gly Leu Ala Gly
370 375 380
Ala Ile Gln Ile Ala Ala Arg Asp Gly Asp Ala Ile Val Arg Pro Tyr
385 390 395 400
Glu Ala Ala Met Lys Leu Trp Lys Ala Gly Phe Tyr Val Arg Phe Gly
405 410 415
Gly Asp Thr Leu Gln Phe Gly Pro Thr Phe Asn Thr Lys Pro Gln Glu
420 425 430
Leu Asp Arg Leu Phe Asp Ala Val Gly Glu Thr Leu Asn Leu Ile Asp
435 440 445
<210> 94
<211> 930
<212> DNA
<213> Pseudomonas putida
<400> 94
atgaccacga agaaagctga ttacatttgg ttcaatgggg agatggttcg ctgggaagac 60
gcgaaggtgc atgtgatgtc gcacgcgctg cactatggca cttcggtttt tgaaggcatc 120
cgttgctacg actcgcacaa aggaccggtt gtattccgcc atcgtgagca tatgcagcgt 180
ctgcatgact ccgccaaaat ctatcgcttc ccggtttcgc agagcattga tgagctgatg 240
gaagcttgtc gtgacgtgat ccgcaaaaac aatctcacca gcgcctatat ccgtccgctg 300
atcttcgtcg gtgatgttgg catgggagta aacccgccag cgggatactc aaccgacgtg 360
attatcgctg ctttcccgtg gggagcgtat ctgggcgcag aagcgctgga gcaggggatc 420
gatgcgatgg tttcctcctg gaaccgcgca gcaccaaaca ccatcccgac ggcggcaaaa 480
gccggtggta actacctctc ttccctgctg gtgggtagcg aagcgcgccg ccacggttat 540
caggaaggta tcgcgctgga tgtgaacggt tatatctctg aaggcgcagg cgaaaacctg 600
tttgaagtga aagatggtgt gctgttcacc ccaccgttca cctcctccgc gctgccgggt 660
attacccgtg atgccatcat caaactggcg aaagagctgg gaattgaagt acgtgagcag 720
gtgctgtcgc gcgaatccct gtacctggcg gatgaagtgt ttatgtccgg tacggcggca 780
gaaatcacgc cagtgcgcag cgtagacggt attcaggttg gcgaaggccg ttgtggcccg 840
gttaccaaac gcattcagca agccttcttc ggcctcttca ctggcgaaac cgaagataaa 900
tggggctggt tagatcaagt taatcaataa 930
<210> 95
<211> 566
<212> PRT
<213> Streptomyces cinnamonensis
<400> 95
Met Asp Ala Asp Ala Ile Glu Glu Gly Arg Arg Arg Trp Gln Ala Arg
1 5 10 15
Tyr Asp Lys Ala Arg Lys Arg Asp Ala Asp Phe Thr Thr Leu Ser Gly
20 25 30
Asp Pro Val Asp Pro Val Tyr Gly Pro Arg Pro Gly Asp Thr Tyr Asp
35 40 45
Gly Phe Glu Arg Ile Gly Trp Pro Gly Glu Tyr Pro Phe Thr Arg Gly
50 55 60
Leu Tyr Ala Thr Gly Tyr Arg Gly Arg Thr Trp Thr Ile Arg Gln Phe
65 70 75 80
Ala Gly Phe Gly Asn Ala Glu Gln Thr Asn Glu Arg Tyr Lys Met Ile
85 90 95
Leu Ala Asn Gly Gly Gly Gly Leu Ser Val Ala Phe Asp Met Pro Thr
100 105 110
Leu Met Gly Arg Asp Ser Asp Asp Pro Arg Ser Leu Gly Glu Val Gly
115 120 125
His Cys Gly Val Ala Ile Asp Ser Ala Ala Asp Met Glu Val Leu Phe
130 135 140
Lys Asp Ile Pro Leu Gly Asp Val Thr Thr Ser Met Thr Ile Ser Gly
145 150 155 160
Pro Ala Val Pro Val Phe Cys Met Tyr Leu Val Ala Ala Glu Arg Gln
165 170 175
Gly Val Asp Pro Ala Val Leu Asn Gly Thr Leu Gln Thr Asp Ile Phe
180 185 190
Lys Glu Tyr Ile Ala Gln Lys Glu Trp Leu Phe Gln Pro Glu Pro His
195 200 205
Leu Arg Leu Ile Gly Asp Leu Met Glu His Cys Ala Arg Asp Ile Pro
210 215 220
Ala Tyr Lys Pro Leu Ser Val Ser Gly Tyr His Ile Arg Glu Ala Gly
225 230 235 240
Ala Thr Ala Ala Gln Glu Leu Ala Tyr Thr Leu Ala Asp Gly Phe Gly
245 250 255
Tyr Val Glu Leu Gly Leu Ser Arg Gly Leu Asp Val Asp Val Phe Ala
260 265 270
Pro Gly Leu Ser Phe Phe Phe Asp Ala His Val Asp Phe Phe Glu Glu
275 280 285
Ile Ala Lys Phe Arg Ala Ala Arg Arg Ile Trp Ala Arg Trp Leu Arg
290 295 300
Asp Glu Tyr Gly Ala Lys Thr Glu Lys Ala Gln Trp Leu Arg Phe His
305 310 315 320
Thr Gln Thr Ala Gly Val Ser Leu Thr Ala Gln Gln Pro Tyr Asn Asn
325 330 335
Val Val Arg Thr Ala Val Glu Ala Leu Ala Ala Val Leu Gly Gly Thr
340 345 350
Asn Ser Leu His Thr Asn Ala Leu Asp Glu Thr Leu Ala Leu Pro Ser
355 360 365
Glu Gln Ala Ala Glu Ile Ala Leu Arg Thr Gln Gln Val Leu Met Glu
370 375 380
Glu Thr Gly Val Ala Asn Val Ala Asp Pro Leu Gly Gly Ser Trp Tyr
385 390 395 400
Ile Glu Gln Leu Thr Asp Arg Ile Glu Ala Asp Ala Glu Lys Ile Phe
405 410 415
Glu Gln Ile Arg Glu Arg Gly Arg Arg Ala Cys Pro Asp Gly Gln His
420 425 430
Pro Ile Gly Pro Ile Thr Ser Gly Ile Leu Arg Gly Ile Glu Asp Gly
435 440 445
Trp Phe Thr Gly Glu Ile Ala Glu Ser Ala Phe Gln Tyr Gln Arg Ser
450 455 460
Leu Glu Lys Gly Asp Lys Arg Val Val Gly Val Asn Cys Leu Glu Gly
465 470 475 480
Ser Val Thr Gly Asp Leu Glu Ile Leu Arg Val Ser His Glu Val Glu
485 490 495
Arg Glu Gln Val Arg Glu Leu Ala Gly Arg Lys Gly Arg Arg Asp Asp
500 505 510
Ala Arg Val Arg Ala Ser Leu Asp Ala Met Leu Ala Ala Ala Arg Asp
515 520 525
Gly Ser Asn Met Ile Ala Pro Met Leu Glu Ala Val Arg Ala Glu Ala
530 535 540
Thr Leu Gly Glu Ile Cys Gly Val Leu Arg Asp Glu Trp Gly Val Tyr
545 550 555 560
Val Glu Pro Pro Gly Phe
565
<210> 96
<211> 4362
<212> DNA
<213> Streptomyces cinnamonensis
<400> 96
tgaggcgctg gatcgcctcg gagagcagct ggtaacggtc cgcgtggtac tcggccgggg 60
tgcagccgtc cacgatgtgc gggatcgcgt cgggctcgag gatcaccagg gcgggggcgt 120
cgccgatcgc gtcggcgaac gtgtccaccc agctccggta ggcctccgca ctggccgcgc 180
cgcccgcgga gtgctgaccg cagtcgcggt gcgggatgtt gtacgcgacg agtacggcgg 240
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cggccggcca cacggccatg gcccgttcgg agatgcgcct gagcgtctcg gcgtcctcgg 360
cgcggccctg ttcctcccac tgcctgacct ggcgcgcggc ggggctgtcg gggtcgaccc 420
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ccttcgtgcc gtcggacccc gggtctgagg aggagcagcc tgccgggagc ccgagggcgg 540
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tggtgacagt gacggtcagt cagcccggca atcgttacat aaaggactat tcaagctctt 660
gtgccacacc gcctccggtg ccgagcgcga acccggcggg caccagagcc ccgccgcggc 720
cgcggagccg tacgtacgac cgaattgcga gacggggctg accaccatat gaccggcggg 780
taaggtcgat gccgtgccga agccgctcag cctccccttc gatcccatcg cccgcgccga 840
cgagctctgg aagcagcgct ggggatcggt cccggccatg ggcgcgatca cctcgatcat 900
gcgggcgcac cagatcctgc tcgccgaggt cgacgcggtc gtcaagccgt acggactgac 960
cttcgcgcgc tacgaggcgc tggtgctcct caccttctcg caggccggcg agttgccgat 1020
gtcgaagatc ggcgagcggc tcatggtgca cccgacctcg gtcacgaaca ccgtggaccg 1080
cctggtgaag tccggcctgg tcgacaagcg cccgaacccc aacgacggcc gcggcacgct 1140
cgcctccatc acggagaagg gccgcgaggt cgtcgaggcg gccacccgcg agctgatggc 1200
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gtgggatcgg gtcgtcccgg tacgggcggg ggcggcgaag atcgcgtgaa aagggcggtt 1380
acgctcgtag ccatgaaacg cagcgtgctg acccgctacc gggtgatggc ctacgtcacc 1440
gccgtcatgc tcctcatcct gtgcgcctgc atggtggcca agtacggctt cgacaagggc 1500
gagggtctga ccctcgtcgt gtcgcaggtg cacggcgtgc tctacatcat ctacctgatc 1560
ttcgccttcg acctgggctc caaggcgaag tggccgttcg gcaagctgct ctgggtgctg 1620
gtctcgggca cgatcccgac cgccgccttc ttcgtcgagc gcaaggtcgc ccgtgacgtc 1680
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ccgtcaccgg cgacctggag atcctgcgcg tcagccacga ggtcgagcgc gagcaggtgc 3300
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tgcggtcggg gcgtgccggg gtcttttagg ggcgcgggga actgcgcgag caacccccac 3780
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tgcccccgcc cgccgggcgg cgcgaattcg taggtttaag gggcaggggt cagggcaggc 3900
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<212> PRT
<213> Streptomyces cinnamonensis
<400> 97
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1 5 10 15
Leu Asp Gly His Asp Arg Gly Ala Lys Val Ile Ala Arg Ala Leu Arg
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Asp Ala Gly Met Glu Val Ile Tyr Thr Gly Leu His Gln Thr Pro Glu
35 40 45
Gln Val Val Asp Thr Ala Ile Gln Glu Asp Ala Asp Ala Ile Gly Leu
50 55 60
Ser Ile Leu Ser Gly Ala His Asn Thr Leu Phe Ala Arg Val Leu Glu
65 70 75 80
Leu Leu Lys Glu Arg Asp Ala Glu Asp Ile Lys Val Phe Gly Gly Gly
85 90 95
Ile Ile Pro Glu Ala Asp Ile Ala Pro Leu Lys Glu Lys Gly Val Ala
100 105 110
Glu Ile Phe Thr Pro Gly Ala Thr Thr Thr Ser Ile Val Glu Trp Val
115 120 125
Arg Gly Asn Val Arg Gln Ala Val
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<210> 98
<211> 1643
<212> DNA
<213> Streptomyces cinnamonensis
<400> 98
gtcgacctcc cgtttggcgc acggaaggga ggctctgtcc cccgtgtgcc ctagggggag 60
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<211> 566
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<213> Streptomyces coelicolor
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1 5 10 15
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50 55 60
Leu Tyr Pro Thr Gly Tyr Arg Gly Arg Thr Trp Thr Ile Arg Gln Phe
65 70 75 80
Ala Gly Phe Gly Asn Ala Glu Gln Thr Asn Glu Arg Tyr Lys Met Ile
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Leu Arg Asn Gly Gly Gly Gly Leu Ser Val Ala Phe Asp Met Pro Thr
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Leu Met Gly Arg Asp Ser Asp Asp Pro Arg Ser Leu Gly Glu Val Gly
115 120 125
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Pro Ala Val Pro Val Phe Cys Met Tyr Leu Val Ala Ala Glu Arg Gln
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Gly Val Asp Ala Ser Val Leu Asn Gly Thr Leu Gln Thr Asp Ile Phe
180 185 190
Lys Glu Tyr Ile Ala Gln Lys Glu Trp Leu Phe Gln Pro Glu Pro His
195 200 205
Leu Arg Leu Ile Gly Asp Leu Met Glu Tyr Cys Ala Ala Gly Ile Pro
210 215 220
Ala Tyr Lys Pro Leu Ser Val Ser Gly Tyr His Ile Arg Glu Ala Gly
225 230 235 240
Ala Thr Ala Ala Gln Glu Leu Ala Tyr Thr Leu Ala Asp Gly Phe Gly
245 250 255
Tyr Val Glu Leu Gly Leu Ser Arg Gly Leu Asp Val Asp Val Phe Ala
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Pro Gly Leu Ser Phe Phe Phe Asp Ala His Leu Asp Phe Phe Glu Glu
275 280 285
Ile Ala Lys Phe Arg Ala Ala Arg Arg Ile Trp Ala Arg Trp Met Arg
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Asp Val Tyr Gly Ala Arg Thr Asp Lys Ala Gln Trp Leu Arg Phe His
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Thr Gln Thr Ala Gly Val Ser Leu Thr Ala Gln Gln Pro Tyr Asn Asn
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Val Val Arg Thr Ala Val Glu Ala Leu Ala Ala Val Leu Gly Gly Thr
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Glu Gln Ala Ala Glu Ile Ala Leu Arg Thr Gln Gln Val Leu Met Glu
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Glu Gln Ile Lys Glu Arg Gly Leu Arg Ala His Pro Asp Gly Gln His
420 425 430
Pro Val Gly Pro Ile Thr Ser Gly Leu Leu Arg Gly Ile Glu Asp Gly
435 440 445
Trp Phe Thr Gly Glu Ile Ala Glu Ser Ala Phe Arg Tyr Gln Gln Ser
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Leu Glu Lys Asp Asp Lys Lys Val Val Gly Val Asn Val His Thr Gly
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Ser Val Thr Gly Asp Leu Glu Ile Leu Arg Val Ser His Glu Val Glu
485 490 495
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Ala Ala Val Arg Gly Ala Leu Asp Ala Met Leu Ala Ala Ala Arg Ser
515 520 525
Gly Gly Asn Met Ile Gly Pro Met Leu Asp Ala Val Arg Ala Glu Ala
530 535 540
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cgctggatgc gcgacgtgta cggcgcgcgg accgacaagg cccagtggct gcggttccac 960
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accgggctcc accagacgcc cgagcagatc gtcgacaccg cgatccagga ggacgccgac 180
gcgatcgggc tgtccatcct ctccggtgcg cacaacacgc tcttcgccgc cgtgatcgag 240
ctgctccggg agcgggacgc cgcggacatc ctggtcttcg gcggcgggat catccccgag 300
gcggacatcg ccccgctgaa ggagaagggc gtcgcggaga tcttcacgcc cggcgccacc 360
acggcgtcca tcgtggactg ggtccgggcg aacgtgcggg agcccgcggg agcatag 417
<210> 103
<211> 566
<212> PRT
<213> Streptomyces avermitilis
<400> 103
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1 5 10 15
Tyr Asp Ala Ser Arg Lys Arg Glu Ala Asp Phe Thr Thr Leu Ser Gly
20 25 30
Asp Pro Val Glu Pro Ala Tyr Gly Pro Arg Pro Gly Asp Ala Tyr Glu
35 40 45
Gly Phe Glu Arg Ile Gly Trp Pro Gly Glu Tyr Pro Phe Thr Arg Gly
50 55 60
Leu Tyr Pro Thr Gly Tyr Arg Gly Arg Thr Trp Thr Ile Arg Gln Phe
65 70 75 80
Ala Gly Phe Gly Asn Ala Glu Gln Thr Asn Glu Arg Tyr Lys Lys Ile
85 90 95
Leu Ala Asn Gly Gly Gly Gly Leu Ser Val Ala Phe Asp Met Pro Thr
100 105 110
Leu Met Gly Arg Asp Ser Asp Asp Arg Arg Ala Leu Gly Glu Val Gly
115 120 125
His Cys Gly Val Ala Ile Asp Ser Ala Ala Asp Met Glu Val Leu Phe
130 135 140
Lys Asp Ile Pro Leu Gly Asp Val Thr Thr Ser Met Thr Ile Ser Gly
145 150 155 160
Pro Ala Val Pro Val Phe Cys Met Tyr Leu Val Ala Ala Glu Arg Gln
165 170 175
Gly Val Asp Pro Ser Val Leu Asn Gly Thr Leu Gln Thr Asp Ile Phe
180 185 190
Lys Glu Tyr Ile Ala Gln Lys Glu Trp Leu Phe Gln Pro Glu Pro His
195 200 205
Leu Arg Leu Ile Gly Asp Leu Met Glu His Cys Ala Ser Lys Ile Pro
210 215 220
Ala Tyr Lys Pro Leu Ser Val Ser Gly Tyr His Ile Arg Glu Ala Gly
225 230 235 240
Ala Thr Ala Ala Gln Glu Leu Ala Tyr Thr Leu Ala Asp Gly Phe Gly
245 250 255
Tyr Val Glu Leu Gly Leu Ser Arg Gly Leu Asp Val Asp Val Phe Ala
260 265 270
Pro Gly Leu Ser Phe Phe Phe Asp Ala His Val Asp Phe Phe Glu Glu
275 280 285
Ile Ala Lys Phe Arg Ala Ala Arg Arg Ile Trp Ala Arg Trp Leu Arg
290 295 300
Asp Val Tyr Gly Ala Lys Ser Glu Lys Ala Gln Trp Leu Arg Phe His
305 310 315 320
Thr Gln Thr Ala Gly Val Ser Leu Thr Ala Gln Gln Pro Tyr Asn Asn
325 330 335
Val Val Arg Thr Ala Val Glu Ala Leu Ala Ala Val Leu Gly Gly Thr
340 345 350
Asn Ser Leu His Thr Asn Ala Leu Asp Glu Thr Leu Ala Leu Pro Ser
355 360 365
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370 375 380
Glu Thr Gly Val Ala Asn Val Ala Asp Pro Leu Gly Gly Ser Trp Tyr
385 390 395 400
Val Glu Gln Leu Thr Asp Arg Ile Glu Ala Asp Ala Glu Lys Ile Phe
405 410 415
Glu Gln Ile Arg Glu Arg Gly Leu Arg Ala His Pro Asp Gly Arg His
420 425 430
Pro Ile Gly Pro Ile Thr Ser Gly Ile Leu Arg Gly Ile Glu Asp Gly
435 440 445
Trp Phe Thr Gly Glu Ile Ala Glu Ser Ala Phe Gln Tyr Gln Gln Ala
450 455 460
Leu Glu Lys Gly Asp Lys Arg Val Val Gly Val Asn Val His His Gly
465 470 475 480
Ser Val Thr Gly Asp Leu Glu Ile Leu Arg Val Ser His Glu Val Glu
485 490 495
Arg Glu Gln Val Arg Val Leu Gly Glu Arg Lys Ser Gly Arg Asp Asp
500 505 510
Thr Ala Val Thr Ala Ala Leu Asp Ala Met Leu Ala Ala Ala Arg Asp
515 520 525
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530 535 540
Thr Leu Gly Glu Ile Cys Asp Val Leu Arg Glu Glu Trp Gly Val Tyr
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565
<210> 104
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<212> DNA
<213> Streptomyces avermitilis
<400> 104
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ctccaggtcg cccgtcacgg acccgtggtg gacgttgacg ccgacgaccc gcttgtcgcc 300
cttctccagc gcctgctggt actggaaggc cgactcggcg atctccccgg tgaaccagcc 360
gtcctcgatg ccgcgcagga tgccggaggt gatgggcccg atcgggtgcc gcccgtccgg 420
gtgggcccgc agcccgcgct ccctgatctg ttcgaagatc ttctcggcgt cggcctcgat 480
ccggtcggtc agctgctcca cgtaccagga accgcccagc ggatcggcca cgttggcgac 540
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cggcagggcg agggtctcgt cgagggcgtt ggtgtgcagc gagttcgtcc cgccgagcac 660
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cttgtacgcg gggatcttcg aggcgcagtg ctccatcagg tcgccgatga gccgcagatg 1080
gggctcgggc tggaagagcc actccttctg cgcgatgtac tccttgaaga tgtcggtctg 1140
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ctcgatggcg tcagcgtcca t 1701
<210> 105
<211> 138
<212> PRT
<213> Streptomyces avermitilis
<400> 105
Met Gly Val Ala Ala Gly Pro Ile Arg Val Val Val Ala Lys Pro Gly
1 5 10 15
Leu Asp Gly His Asp Arg Gly Ala Lys Val Ile Ala Arg Ala Leu Arg
20 25 30
Asp Ala Gly Met Glu Val Ile Tyr Thr Gly Leu His Gln Thr Pro Glu
35 40 45
Gln Ile Val Gly Thr Ala Ile Gln Glu Asp Ala Asp Ala Ile Gly Leu
50 55 60
Ser Ile Leu Ser Gly Ala His Asn Thr Leu Phe Ala Ala Val Ile Asp
65 70 75 80
Leu Leu Lys Glu Arg Asp Ala Glu Asp Ile Lys Val Phe Gly Gly Gly
85 90 95
Ile Ile Pro Glu Ala Asp Ile Ala Pro Leu Lys Glu Lys Gly Val Ala
100 105 110
Glu Ile Phe Thr Pro Gly Ala Thr Thr Ala Ser Ile Val Glu Trp Val
115 120 125
Arg Ala Asn Val Arg Gln Pro Ala Gly Ala
130 135
<210> 106
<211> 1701
<212> DNA
<213> Streptomyces avermitilis
<400> 106
tcagaaaccg gcgggctccg tgtagacccc ccactcctcc cggaggacat cgcagatctc 60
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<210> 107
<211> 139
<212> PRT
<213> Saccharomyces cerevisiae
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Met Ser Glu Ile Thr Leu Gly Lys Tyr Leu Phe Glu Arg Leu Lys Gln
1 5 10 15
Val Asn Val Asn Thr Val Phe Gly Leu Pro Gly Asp Phe Asn Leu Ser
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Leu Leu Asp Lys Ile Tyr Glu Val Glu Gly Met Arg Trp Ala Gly Asn
35 40 45
Ala Asn Glu Leu Asn Ala Ala Tyr Ala Ala Asp Gly Tyr Ala Arg Ile
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65 70 75 80
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<211> 1689
<212> DNA
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 108
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<212> PRT
<213> Saccharomyces cerevisiae
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1 5 10 15
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85 90 95
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100 105 110
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115 120 125
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245 250 255
Pro Arg Tyr Gly Gly Val Tyr Val Gly Thr Leu Ser Arg Pro Glu Val
260 265 270
Lys Lys Ala Val Glu Ser Ala Asp Leu Ile Leu Ser Ile Gly Ala Leu
275 280 285
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Pro Thr Asp Val Tyr Ala Ile Val Gln Val Leu Trp Gly Ser Ile Gly
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Asp Pro Lys Lys Arg Val Ile Leu Phe Ile Gly Asp Gly Ser Leu Gln
435 440 445
Leu Thr Val Gln Glu Ile Ser Thr Met Ile Arg Trp Gly Leu Lys Pro
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Tyr Ile Phe Val Leu Asn Asn Asn Gly Tyr Thr Ile Glu Lys Leu Ile
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Ala Leu Leu Pro Thr Phe Gly Ala Arg Asn Tyr Glu Thr His Arg Val
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Asp Asn Ser Lys Ile Arg Met Ile Glu Val Met Leu Pro Val Phe Asp
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Ala Pro Gln Asn Leu Val Lys Gln Ala Gln Leu Thr Ala Ala Thr Asn
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<211> 1689
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ggtgtttacg ttggtacctt gtctagacca gaagttaaga aggctgtaga atctgctgat 840
ttgatattgt ctatcggtgc tttgttgtct gatttcaata ccggttcttt ctcttactcc 900
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gctaacactc caatgaagca agaatggatg tggaaccatt tgggtaactt cttgagagaa 1140
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ccaacagatg tatacgctat cgtccaagtc ttgtggggtt ccattggttt cacagtcggc 1260
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ttgactcaag acaaggactt ccaagacaac tctaagatta gaatgattga agttatgttg 1620
ccagtctttg atgctccaca aaacttggtt aaacaagctc aattgactgc cgctactaac 1680
gctaaacaa 1689
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<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 111
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35 40 45
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100 105 110
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115 120 125
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130 135 140
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165 170 175
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195 200 205
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210 215 220
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245 250 255
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260 265 270
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275 280 285
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340 345 350
Thr Pro Ala Asn Lys Gly Val Pro Ala Ser Thr Pro Leu Lys Gln Glu
355 360 365
Trp Leu Trp Asn Glu Leu Ser Lys Phe Leu Gln Glu Gly Asp Val Ile
370 375 380
Ile Ser Glu Thr Gly Thr Ser Ala Phe Gly Ile Asn Gln Thr Ile Phe
385 390 395 400
Pro Lys Asp Ala Tyr Gly Ile Ser Gln Val Leu Trp Gly Ser Ile Gly
405 410 415
Phe Thr Thr Gly Ala Thr Leu Gly Ala Ala Phe Ala Ala Glu Glu Ile
420 425 430
Asp Pro Asn Lys Arg Val Ile Leu Phe Ile Gly Asp Gly Ser Leu Gln
435 440 445
Leu Thr Val Gln Glu Ile Ser Thr Met Ile Arg Trp Gly Leu Lys Pro
450 455 460
Tyr Leu Phe Val Leu Asn Asn Asp Gly Tyr Thr Ile Glu Lys Leu Ile
465 470 475 480
His Gly Pro His Ala Glu Tyr Asn Glu Ile Gln Thr Trp Asp His Leu
485 490 495
Ala Leu Leu Pro Ala Phe Gly Ala Lys Lys Tyr Glu Asn His Lys Ile
500 505 510
Ala Thr Thr Gly Glu Trp Asp Ala Leu Thr Thr Asp Ser Glu Phe Gln
515 520 525
Lys Asn Ser Val Ile
530
<210> 112
<211> 1599
<212> DNA
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 112
atgtctgaaa ttactcttgg aaaatactta tttgaaagat tgaagcaagt taatgttaac 60
accatttttg ggctaccagg cgacttcaac ttgtccctat tggacaagat ttacgaggta 120
gatggattga gatgggctgg taatgcaaat gagctgaacg ccgcctatgc cgccgatggt 180
tacgcacgca tcaagggttt atctgtgctg gtaactactt ttggcgtagg tgaattatcc 240
gccttgaatg gtattgcagg atcgtatgca gaacacgtcg gtgtactgca tgttgttggt 300
gtcccctcta tctccgctca ggctaagcaa ttgttgttgc atcatacctt gggtaacggt 360
gattttaccg tttttcacag aatgtccgcc aatatctcag aaactacatc aatgattaca 420
gacattgcta cagccccttc agaaatcgat aggttgatca ggacaacatt tataacacaa 480
aggcctagct acttggggtt gccagcgaat ttggtagatc taaaggttcc tggttctctt 540
ttggaaaaac cgattgatct atcattaaaa cctaacgatc ccgaagctga aaaggaagtt 600
attgataccg tactagaatt gatccagaat tcgaaaaacc ctgttatact atcggatgcc 660
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ccagcttttg tgacacctct aggtaaaggg tcaatagatg aacagcatcc cagatatggc 780
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ttcctcggtg tacaaatgaa atttgcacta caaaacttac tgaaggttat tcccgatgtt 1020
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<210> 113
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<212> PRT
<213> Candida glabrata
<400> 113
Met Ser Glu Ile Thr Leu Gly Arg Tyr Leu Phe Glu Arg Leu Asn Gln
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Leu Leu Asp Lys Ile Tyr Glu Val Glu Gly Met Arg Trp Ala Gly Asn
35 40 45
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50 55 60
Lys Gly Met Ser Cys Ile Ile Thr Thr Phe Gly Val Gly Glu Leu Ser
65 70 75 80
Ala Leu Asn Gly Ile Ala Gly Ser Tyr Ala Glu His Val Gly Val Leu
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His Val Val Gly Val Pro Ser Ile Ser Ser Gln Ala Lys Gln Leu Leu
100 105 110
Leu His His Thr Leu Gly Asn Gly Asp Phe Thr Val Phe His Arg Met
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130 135 140
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210 215 220
His Asp Val Lys Ala Glu Thr Lys Lys Leu Ile Asp Ala Thr Gln Phe
225 230 235 240
Pro Ser Phe Val Thr Pro Met Gly Lys Gly Ser Ile Asp Glu Gln His
245 250 255
Pro Arg Phe Gly Gly Val Tyr Val Gly Thr Leu Ser Arg Pro Glu Val
260 265 270
Lys Glu Ala Val Glu Ser Ala Asp Leu Ile Leu Ser Val Gly Ala Leu
275 280 285
Leu Ser Asp Phe Asn Thr Gly Ser Phe Ser Tyr Ser Tyr Lys Thr Lys
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Phe Pro Gly Val Gln Met Lys Phe Ala Leu Gln Lys Leu Leu Asn Ala
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Val Pro Glu Ala Ile Lys Gly Tyr Lys Pro Val Pro Val Pro Ala Arg
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Val Pro Glu Asn Lys Ser Cys Asp Pro Ala Thr Pro Leu Lys Gln Glu
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Pro Asn Asn Ala Tyr Gly Ile Ser Gln Val Leu Trp Gly Ser Ile Gly
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Phe Thr Thr Gly Ala Cys Leu Gly Ala Ala Phe Ala Ala Glu Glu Ile
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Asp Pro Lys Lys Arg Val Ile Leu Phe Ile Gly Asp Gly Ser Leu Gln
435 440 445
Leu Thr Val Gln Glu Ile Ser Thr Met Ile Arg Trp Gly Leu Lys Pro
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Tyr Leu Phe Val Leu Asn Asn Asp Gly Tyr Thr Ile Glu Arg Leu Ile
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<212> DNA
<213> Candida glabrata
<400> 114
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<210> 115
<211> 596
<212> PRT
<213> Pichia stipitis
<400> 115
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Leu Gln Val Gln Thr Ile Phe Gly Val Pro Gly Asp Phe Asn Leu Ser
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Leu Leu Asp Lys Ile Tyr Glu Val Glu Asp Ala His Gly Lys Asn Ser
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<212> DNA
<213> Pichia stipitis
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<210> 117
<211> 569
<212> PRT
<213> Pichia stipitis
<400> 117
Met Val Ser Thr Tyr Pro Glu Ser Glu Val Thr Leu Gly Arg Tyr Leu
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Leu Ser Asp Ile Ser Ile Ala Pro Gly Gln Ile Asp Arg Cys Ile Arg
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Glu Ala Tyr Val His Gln Arg Pro Val Tyr Val Gly Leu Pro Ala Asn
165 170 175
Met Val Asp Leu Lys Val Pro Ser Ser Leu Leu Glu Thr Pro Ile Asp
180 185 190
Leu Lys Leu Lys Gln Asn Asp Pro Glu Ala Gln Glu Val Val Glu Thr
195 200 205
Val Leu Lys Leu Val Ser Gln Ala Thr Asn Pro Ile Ile Leu Val Asp
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Ala Cys Ala Leu Arg His Asn Cys Lys Glu Glu Val Lys Gln Leu Val
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Asp Ala Thr Asn Phe Gln Val Phe Thr Thr Pro Met Gly Lys Ser Gly
245 250 255
Ile Ser Glu Ser His Pro Arg Leu Gly Gly Val Tyr Val Gly Thr Met
260 265 270
Ser Ser Pro Gln Val Lys Lys Ala Val Glu Asn Ala Asp Leu Ile Leu
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Asp Gly Ser Leu Gln Leu Thr Val Gln Glu Ile Ser Thr Leu Cys Lys
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500 505 510
Tyr Gln Asn Val Arg Val Ser Thr Ala Gly Glu Leu Asp Ser Leu Phe
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Ser Asp Lys Lys Phe Ala Ser Pro Asp Arg Ile Arg Met Ile Glu Val
530 535 540
Met Leu Ser Arg Leu Asp Ala Pro Ala Asn Leu Val Ala Gln Ala Lys
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Leu Ser Glu Arg Val Asn Leu Glu Asn
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<212> DNA
<213> Pichia stipitis
<400> 118
atggtatcaa cctacccaga atcagaggtt actctaggaa ggtacctctt tgagcgactc 60
caccaattga aagtggacac cattttcggc ttgccgggtg acttcaacct ttccttattg 120
gacaaagtgt atgaagttcc ggatatgagg tgggctggaa atgccaacga attgaatgct 180
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atcttggtag acgcttgtgc cctcagacac aattgcaaag aggaagtcaa acaattggtt 720
gatgccacta attttcaagt ctttacaact ccaatgggta aatctggtat ctccgaatct 780
catccaagat tgggcggtgt ctatgtcggg acaatgtcga gtcctcaagt caaaaaagcc 840
gttgaaaatg ccgatcttat actatctgtt ggttcgttgt tatcggactt caatacaggt 900
tcattttcat actcctacaa gacgaagaat gttgttgaat tccactctga ctatatgaaa 960
atcagacagg ccaccttccc aggagttcaa atgaaagaag ccttgcaaca gttgataaaa 1020
agggtctctt cttacatcaa tccaagctac attcctactc gagttcctaa aaggaaacag 1080
ccattgaaag ctccatcaga agctcctttg acccaagaat atttgtggtc taaagtatcc 1140
ggctggttta gagagggtga tattatcgta accgaaactg gtacatctgc tttcggaatt 1200
attcaatccc attttcccag caacactatc ggtatatccc aagtcttgtg gggctcaatt 1260
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aggagagtaa ttttgttcgt cggtgatggt tcattgcagt tgacggttca ggaaatctct 1380
acgttgtgta aatgggattg taacaatact tatctttacg tgttgaacaa tgatggttac 1440
actatagaaa ggttgatcca cggcaaaagt gccagctaca acgatataca gccttggaac 1500
catttatcct tgcttcgctt attcaatgct aagaaatacc aaaatgtcag agtatcgact 1560
gctggagaat tggactcttt gttctctgat aagaaatttg cttctccaga taggataaga 1620
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<210> 119
<211> 563
<212> PRT
<213> Kluyveromyces lactis
<400> 119
Met Ser Glu Ile Thr Leu Gly Arg Tyr Leu Phe Glu Arg Leu Lys Gln
1 5 10 15
Val Glu Val Gln Thr Ile Phe Gly Leu Pro Gly Asp Phe Asn Leu Ser
20 25 30
Leu Leu Asp Asn Ile Tyr Glu Val Pro Gly Met Arg Trp Ala Gly Asn
35 40 45
Ala Asn Glu Leu Asn Ala Ala Tyr Ala Ala Asp Gly Tyr Ala Arg Leu
50 55 60
Lys Gly Met Ser Cys Ile Ile Thr Thr Phe Gly Val Gly Glu Leu Ser
65 70 75 80
Ala Leu Asn Gly Ile Ala Gly Ser Tyr Ala Glu His Val Gly Val Leu
85 90 95
His Val Val Gly Val Pro Ser Val Ser Ser Gln Ala Lys Gln Leu Leu
100 105 110
Leu His His Thr Leu Gly Asn Gly Asp Phe Thr Val Phe His Arg Met
115 120 125
Ser Ser Asn Ile Ser Glu Thr Thr Ala Met Ile Thr Asp Ile Asn Thr
130 135 140
Ala Pro Ala Glu Ile Asp Arg Cys Ile Arg Thr Thr Tyr Val Ser Gln
145 150 155 160
Arg Pro Val Tyr Leu Gly Leu Pro Ala Asn Leu Val Asp Leu Thr Val
165 170 175
Pro Ala Ser Leu Leu Asp Thr Pro Ile Asp Leu Ser Leu Lys Pro Asn
180 185 190
Asp Pro Glu Ala Glu Glu Glu Val Ile Glu Asn Val Leu Gln Leu Ile
195 200 205
Lys Glu Ala Lys Asn Pro Val Ile Leu Ala Asp Ala Cys Cys Ser Arg
210 215 220
His Asp Ala Lys Ala Glu Thr Lys Lys Leu Ile Asp Leu Thr Gln Phe
225 230 235 240
Pro Ala Phe Val Thr Pro Met Gly Lys Gly Ser Ile Asp Glu Lys His
245 250 255
Pro Arg Phe Gly Gly Val Tyr Val Gly Thr Leu Ser Ser Pro Ala Val
260 265 270
Lys Glu Ala Val Glu Ser Ala Asp Leu Val Leu Ser Val Gly Ala Leu
275 280 285
Leu Ser Asp Phe Asn Thr Gly Ser Phe Ser Tyr Ser Tyr Lys Thr Lys
290 295 300
Asn Ile Val Glu Phe His Ser Asp Tyr Thr Lys Ile Arg Ser Ala Thr
305 310 315 320
Phe Pro Gly Val Gln Met Lys Phe Ala Leu Gln Lys Leu Leu Thr Lys
325 330 335
Val Ala Asp Ala Ala Lys Gly Tyr Lys Pro Val Pro Val Pro Ser Glu
340 345 350
Pro Glu His Asn Glu Ala Val Ala Asp Ser Thr Pro Leu Lys Gln Glu
355 360 365
Trp Val Trp Thr Gln Val Gly Glu Phe Leu Arg Glu Gly Asp Val Val
370 375 380
Ile Thr Glu Thr Gly Thr Ser Ala Phe Gly Ile Asn Gln Thr His Phe
385 390 395 400
Pro Asn Asn Thr Tyr Gly Ile Ser Gln Val Leu Trp Gly Ser Ile Gly
405 410 415
Phe Thr Thr Gly Ala Thr Leu Gly Ala Ala Phe Ala Ala Glu Glu Ile
420 425 430
Asp Pro Lys Lys Arg Val Ile Leu Phe Ile Gly Asp Gly Ser Leu Gln
435 440 445
Leu Thr Val Gln Glu Ile Ser Thr Met Ile Arg Trp Gly Leu Lys Pro
450 455 460
Tyr Leu Phe Val Leu Asn Asn Asp Gly Tyr Thr Ile Glu Arg Leu Ile
465 470 475 480
His Gly Glu Thr Ala Gln Tyr Asn Cys Ile Gln Asn Trp Gln His Leu
485 490 495
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515 520 525
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Ala Pro Ser Asn Leu Val Lys Gln Ala Gln Leu Thr Ala Ala Thr Asn
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Ala Lys Asn
<210> 120
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<212> DNA
<213> Kluyveromyces lactis
<400> 120
atgtctgaaa ttacattagg tcgttacttg ttcgaaagat taaagcaagt cgaagttcaa 60
accatctttg gtctaccagg tgatttcaac ttgtccctat tggacaatat ctacgaagtc 120
ccaggtatga gatgggctgg taatgccaac gaattgaacg ctgcttacgc tgctgatggt 180
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ttggacactc caattgattt gagcttgaag ccaaatgacc cagaagccga agaagaagtc 600
atcgaaaacg tcttgcaact gatcaaggaa gctaagaacc cagttatctt ggctgatgct 660
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ttcccaggtg tccaaatgaa gttcgcttta caaaaattgt tgactaaggt tgccgatgct 1020
gctaagggtt acaagccagt tccagttcca tctgaaccag aacacaacga agctgtcgct 1080
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gctaagaac 1689
<210> 121
<211> 571
<212> PRT
<213> Yarrowia lipolytica
<400> 121
Met Ser Asp Ser Glu Pro Gln Met Val Asp Leu Gly Asp Tyr Leu Phe
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Asp Phe Asn Leu Thr Leu Leu Asp His Val Tyr Asn Val Asp Met Arg
35 40 45
Trp Val Gly Asn Thr Asn Glu Leu Asn Ala Gly Tyr Ser Ala Asp Gly
50 55 60
Tyr Ser Arg Val Lys Arg Leu Ala Cys Leu Val Thr Thr Phe Gly Val
65 70 75 80
Gly Glu Leu Ser Ala Val Ala Ala Val Ala Gly Ser Tyr Ala Glu His
85 90 95
Val Gly Val Val His Val Val Gly Val Pro Ser Thr Ser Ala Glu Asn
100 105 110
Lys His Leu Leu Leu His His Thr Leu Gly Asn Gly Asp Phe Arg Val
115 120 125
Phe Ala Gln Met Ser Lys Leu Ile Ser Glu Tyr Thr His His Ile Glu
130 135 140
Asp Pro Ser Glu Ala Ala Asp Val Ile Asp Thr Ala Ile Arg Ile Ala
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Tyr Thr His Gln Arg Pro Val Tyr Ile Ala Val Pro Ser Asn Phe Ser
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Lys Ile Thr Asn Phe Ala Tyr Phe Val Thr Pro Met Gly Lys Gly Ser
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275 280 285
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Ser Cys Met Ile Arg Asn Asn Val Lys Pro Tyr Ile Phe Val Leu Asn
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Asn Asp Gly Tyr Thr Ile Glu Arg Leu Ile His Gly Glu Asn Ala Ser
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Tyr Asn Asp Val His Met Trp Lys Tyr Ser Lys Ile Leu Asp Thr Phe
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Asn Ala Lys Ala His Glu Ser Ile Val Val Asn Thr Lys Gly Glu Met
515 520 525
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Leu Ile Glu Val Met Cys Asp Lys Met Asp Ala Pro Ala Ser Leu Ile
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Lys Gln Ala Glu Leu Ser Ala Lys Thr Asn Val
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<210> 122
<211> 1713
<212> DNA
<213> Yarrowia lipolytica
<400> 122
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<210> 123
<211> 571
<212> PRT
<213> Schizosaccharomyces pombe
<400> 123
Met Ser Gly Asp Ile Leu Val Gly Glu Tyr Leu Phe Lys Arg Leu Glu
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Gln Leu Gly Val Lys Ser Ile Leu Gly Val Pro Gly Asp Phe Asn Leu
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Ala Leu Leu Asp Leu Ile Glu Lys Val Gly Asp Glu Lys Phe Arg Trp
35 40 45
Val Gly Asn Thr Asn Glu Leu Asn Gly Ala Tyr Ala Ala Asp Gly Tyr
50 55 60
Ala Arg Val Asn Gly Leu Ser Ala Ile Val Thr Thr Phe Gly Val Gly
65 70 75 80
Glu Leu Ser Ala Ile Asn Gly Val Ala Gly Ser Tyr Ala Glu His Val
85 90 95
Pro Val Val His Ile Val Gly Met Pro Ser Thr Lys Val Gln Asp Thr
100 105 110
Gly Ala Leu Leu His His Thr Leu Gly Asp Gly Asp Phe Arg Thr Phe
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Met Asp Met Phe Lys Lys Val Ser Ala Tyr Ser Ile Met Ile Asp Asn
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Lys Lys Ala Arg Pro Val Tyr Ile Gly Ile Pro Ser Asp Ala Gly Tyr
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Phe Lys Ala Ser Ser Ser Asn Leu Gly Lys Arg Leu Lys Leu Glu Glu
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Thr His Phe Pro Thr Tyr Val Thr Pro Met Gly Lys Ser Ala Ile Asp
245 250 255
Glu Thr Ser Gln Phe Phe Asp Gly Val Tyr Val Gly Ser Ile Ser Asp
260 265 270
Pro Glu Val Lys Asp Arg Ile Glu Ser Thr Asp Leu Leu Leu Ser Ile
275 280 285
Gly Ala Leu Lys Ser Asp Phe Asn Thr Gly Ser Phe Ser Tyr His Leu
290 295 300
Ser Gln Lys Asn Ala Val Glu Phe His Ser Asp His Met Arg Ile Arg
305 310 315 320
Tyr Ala Leu Tyr Pro Asn Val Ala Met Lys Tyr Ile Leu Arg Lys Leu
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Leu Lys Val Leu Asp Ala Ser Met Cys His Ser Lys Ala Ala Pro Thr
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355 360 365
Glu Ile Thr His Cys Trp Phe Trp Pro Lys Phe Ser Glu Phe Leu Lys
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Pro Arg Asp Val Leu Ile Thr Glu Thr Gly Thr Ala Asn Phe Gly Val
385 390 395 400
Leu Asp Cys Arg Phe Pro Lys Asp Val Thr Ala Ile Ser Gln Val Leu
405 410 415
Trp Gly Ser Ile Gly Tyr Ser Val Gly Ala Met Phe Gly Ala Val Leu
420 425 430
Ala Val His Asp Ser Lys Glu Pro Asp Arg Arg Thr Ile Leu Val Val
435 440 445
Gly Asp Gly Ser Leu Gln Leu Thr Ile Thr Glu Ile Ser Thr Cys Ile
450 455 460
Arg His Asn Leu Lys Pro Ile Ile Phe Ile Ile Asn Asn Asp Gly Tyr
465 470 475 480
Thr Ile Glu Arg Leu Ile His Gly Leu His Ala Ser Tyr Asn Glu Ile
485 490 495
Asn Thr Lys Trp Gly Tyr Gln Gln Ile Pro Lys Phe Phe Gly Ala Ala
500 505 510
Glu Asn His Phe Arg Thr Tyr Cys Val Lys Thr Pro Thr Asp Val Glu
515 520 525
Lys Leu Phe Ser Asp Lys Glu Phe Ala Asn Ala Asp Val Ile Gln Val
530 535 540
Val Glu Leu Val Met Pro Met Leu Asp Ala Pro Arg Val Leu Val Glu
545 550 555 560
Gln Ala Lys Leu Thr Ser Lys Ile Asn Lys Gln
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<210> 124
<211> 1713
<212> DNA
<213> Schizosaccharomyces pombe
<400> 124
atgagtgggg atattttagt cggtgaatat ctattcaaaa ggcttgaaca attaggggtc 60
aagtccattc ttggtgttcc aggagatttc aatttagctc tacttgactt aattgagaaa 120
gttggagatg agaaatttcg ttgggttggc aataccaatg agttgaatgg tgcttatgcc 180
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attgttggaa tgccttccac aaaggtgcaa gatactggag ctttgcttca tcatacttta 360
ggagatggag actttcgcac tttcatggat atgtttaaga aagtttctgc ctacagtata 420
atgatcgata acggaaacga tgcagctgaa aagatcgatg aagccttgtc gatttgttat 480
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ttttttgacg gcgtttatgt tggttcaatt tcagatcctg aagttaaaga cagaattgaa 840
tccactgatc tgttgctatc catcggtgct ctcaaatcag actttaacac gggttccttc 900
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gaatttttga agccccgaga tgttttgatc accgagactg gaactgcaaa ctttggtgtc 1200
cttgattgca ggtttccaaa ggatgtaaca gccatttccc aggtattatg gggatctatt 1260
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gatcgtcgta ccattcttgt agtaggtgat ggatccttac aactgacgat tacagagatt 1380
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accattgagc gtttaattca tggtttgcat gctagctata acgaaattaa cactaaatgg 1500
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gttaaaactc ctactgacgt tgaaaagttg tttagcgaca aggagtttgc aaatgcagat 1620
gtcattcaag tagttgagct tgtaatgcct atgttggatg cacctcgtgt cctagttgag 1680
caagccaagt tgacgtctaa gatcaataag caa 1713
<210> 125
<211> 563
<212> PRT
<213> Zygosaccharomyces rouxii
<400> 125
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35 40 45
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50 55 60
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65 70 75 80
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His Ile Val Gly Val Pro Ser Val Ser Ser Gln Ala Lys Gln Leu Leu
100 105 110
Leu His His Thr Leu Gly Asn Gly Asp Phe Thr Val Phe His Arg Met
115 120 125
Ser Ala Asn Ile Ser Glu Thr Thr Ala Met Leu Thr Asp Ile Thr Ala
130 135 140
Ala Pro Ala Glu Ile Asp Arg Cys Ile Arg Val Ala Tyr Val Asn Gln
145 150 155 160
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165 170 175
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Pro Ser Phe Val Thr Pro Met Gly Lys Gly Ser Ile Asp Glu Gln Asn
245 250 255
Pro Arg Phe Gly Gly Val Tyr Val Gly Thr Leu Ser Ser Pro Glu Val
260 265 270
Lys Glu Ala Val Glu Ser Ala Asp Leu Val Leu Ser Val Gly Ala Leu
275 280 285
Leu Ser Asp Phe Asn Thr Gly Ser Phe Ser Tyr Ser Tyr Lys Thr Lys
290 295 300
Asn Val Val Glu Phe His Ser Asp His Ile Lys Ile Arg Asn Ala Thr
305 310 315 320
Phe Pro Gly Val Gln Met Lys Phe Val Leu Lys Lys Leu Leu Gln Ala
325 330 335
Val Pro Glu Ala Val Lys Asn Tyr Lys Pro Gly Pro Val Pro Ala Pro
340 345 350
Pro Ser Pro Asn Ala Glu Val Ala Asp Ser Thr Thr Leu Lys Gln Glu
355 360 365
Trp Leu Trp Arg Gln Val Gly Ser Phe Leu Arg Glu Gly Asp Val Val
370 375 380
Ile Thr Glu Thr Gly Thr Ser Ala Phe Gly Ile Asn Gln Thr His Phe
385 390 395 400
Pro Asn Gln Thr Tyr Gly Ile Ser Gln Val Leu Trp Gly Ser Ile Gly
405 410 415
Tyr Thr Thr Gly Ser Thr Leu Gly Ala Ala Phe Ala Ala Glu Glu Ile
420 425 430
Asp Pro Lys Lys Arg Val Ile Leu Phe Ile Gly Asp Gly Ser Leu Gln
435 440 445
Leu Thr Val Gln Glu Ile Ser Thr Met Ile Arg Trp Gly Leu Lys Pro
450 455 460
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465 470 475 480
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485 490 495
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500 505 510
Ser Thr Val Gly Glu Trp Asn Lys Leu Thr Gln Asp Pro Lys Phe Asn
515 520 525
Glu Asn Ser Arg Ile Arg Met Ile Glu Val Met Leu Glu Val Met Asp
530 535 540
Ala Pro Ser Ser Leu Val Ala Gln Ala Gln Leu Thr Ala Ala Thr Asn
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Ala Lys Gln
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<211> 1689
<212> DNA
<213> Zygosaccharomyces rouxii
<400> 126
atgtctgaaa ttactctagg tcgttacttg ttcgaaagat taaagcaagt tgacactaac 60
accatcttcg gtgttccagg tgacttcaac ttgtccttgt tggacaaggt ctacgaagtg 120
caaggtctaa gatgggctgg taacgctaac gaattgaacg ctgcctacgc tgctgacggt 180
tacgccagag ttaagggttt ggctgctttg atcaccacct tcggtgtcgg tgaattgtct 240
gctttgaacg gtattgcagg ttcttacgct gaacacgttg gtgttttgca cattgttggt 300
gttccatctg tctcttctca agctaagcaa ttgttgttgc accacacctt gggtaacggt 360
gacttcactg ttttccacag aatgtccgcc aacatctctg aaaccaccgc tatgttgacc 420
gacatcactg ctgctccagc tgaaattgac cgttgcatca gagttgctta cgtcaaccaa 480
agaccagtct acttgggtct accagctaac ttggttgacc aaaaggtccc agcttctttg 540
ttgaacactc caattgatct atctctaaag gagaacgacc cagaagctga aaccgaagtt 600
gttgacaccg ttttggaatt gatcaaggaa gctaagaacc cagttatctt ggctgatgct 660
tgctgctcca gacacgacgt caaggctgaa accaagaagt tgatcgactt gactcaattc 720
ccatctttcg ttactcctat gggtaagggt tccatcgacg aacaaaaccc aagattcggt 780
ggtgtctacg tcggtactct atccagccca gaagttaagg aagctgttga atctgctgac 840
ttggttctat ctgtcggtgc tctattgtcc gatttcaaca ctggttcttt ctcttactct 900
tacaagacca agaacgttgt tgaattccac tctgaccaca tcaagatcag aaacgctacc 960
ttcccaggtg ttcaaatgaa attcgttttg aagaaactat tgcaagctgt cccagaagct 1020
gtcaagaact acaagccagg tccagtccca gctccgccat ctccaaacgc tgaagttgct 1080
gactctacca ccttgaagca agaatggtta tggagacaag tcggtagctt cttgagagaa 1140
ggtgatgttg ttattaccga aactggtacc tctgctttcg gtatcaacca aactcacttc 1200
cctaaccaaa cttacggtat ctctcaagtc ttgtggggtt ctattggtta caccactggt 1260
tccactttgg gtgctgcctt cgctgctgaa gaaattgacc ctaagaagag agttatcttg 1320
ttcattggtg acggttctct acaattgacc gttcaagaaa tctccaccat gatcagatgg 1380
ggtctaaagc catacttgtt cgttttgaac aacgatggtt acaccattga aagattgatt 1440
cacggtgaaa ccgctgaata caactgtatc caaccatgga agcacttgga attgttgaac 1500
accttcggtg ccaaggacta cgaaaaccac agagtctcca ctgtcggtga atggaacaag 1560
ttgactcaag atccaaaatt caacgaaaac tctagaatta gaatgatcga agttatgctt 1620
gaagtcatgg acgctccatc ttctttggtc gctcaagctc aattgaccgc tgctactaac 1680
gctaagcaa 1689
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<211> 267
<212> PRT
<213> Saccharomyces cerevisiae
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1 5 10 15
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Tyr Leu Glu Ala Ser Asn Gly Asp Met Lys Leu Ile Leu Ala Ala Arg
35 40 45
Arg Leu Glu Lys Leu Glu Glu Leu Lys Lys Thr Ile Asp Gln Glu Phe
50 55 60
Pro Asn Ala Lys Val His Val Ala Gln Leu Asp Ile Thr Gln Ala Glu
65 70 75 80
Lys Ile Lys Pro Phe Ile Glu Asn Leu Pro Gln Glu Phe Lys Asp Ile
85 90 95
Asp Ile Leu Val Asn Asn Ala Gly Lys Ala Leu Gly Ser Asp Arg Val
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Thr Ala Leu Ile Asn Ile Thr Gln Ala Val Leu Pro Ile Phe Gln Ala
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Lys Asn Ser Gly Asp Ile Val Asn Leu Gly Ser Ile Ala Gly Arg Asp
145 150 155 160
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165 170 175
Ala Phe Thr Asp Ser Leu Arg Lys Glu Leu Ile Asn Thr Lys Ile Arg
180 185 190
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245 250 255
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260 265
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<211> 804
<212> DNA
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 128
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cctcatcata tcttccgtgg ataa 804
SEQUENCE LISTING
<110> Butamax Advanced Biofuels LLC
<120> Processes and Systems for the Fermentative Production of Alcohols
<130> CL4723WOPCT1
<160> 128
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 570
<212> PRT
<213> Bacillus subtilis
<400> 1
Met Thr Lys Ala Thr Lys Glu Gln Lys Ser Leu Val Lys Asn Arg Gly
1 5 10 15
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35 40 45
Asp Lys Gly Pro Glu Ile Ile Val Ala Arg His Glu Gln Asn Ala Ala
50 55 60
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65 70 75 80
Leu Val Thr Ser Gly Pro Gly Ala Ser Asn Leu Ala Thr Gly Leu Leu
85 90 95
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100 105 110
Ile Arg Ala Asp Arg Leu Lys Arg Thr His Gln Ser Leu Asp Asn Ala
115 120 125
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130 135 140
Lys Asn Ile Pro Glu Ala Val Thr Asn Ala Phe Arg Ile Ala Ser Ala
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Gly Gln Ala Gly Ala Phe Val Ser Phe Pro Gln Asp Val Val Asn
165 170 175
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Gly Pro Ala Ala Asp Asp Ala Ile Ser Ala Ala Ila Ala Lys Ile Gln
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Thr Ala Lys Leu Pro Val Val Leu Val Gly Met Lys Gly Gly Arg Pro
210 215 220
Glu Ala Ile Lys Ala Val Arg Lys Leu Leu Lys Lys Val Gln Leu Pro
225 230 235 240
Phe Val Glu Thr Tyr Gln Ala Gly Thr Leu Ser Arg Asp Leu Glu
245 250 255
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260 265 270
Leu Leu Leu Glu Gln Ala Asp Val Val Leu Thr Ile Gly Tyr Asp Pro
275 280 285
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305 310 315 320
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His Asp Ala Val Lys Val Glu Phe Ala Glu Arg Glu Gln Lys Ile Leu
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Trp Lys Ser Asp Arg Ala His Pro Leu Glu Ile Val Lys Glu Leu Arg
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Ala Ile Trp Met Ser Arg Tyr Phe Arg Ser Tyr Glu Pro Leu Thr Leu
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Met Ile Ser Asn Gly Met Gln Thr Leu Gly Val Ala Leu Pro Trp Ala
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Ile Gly Ala Ser Leu Val Lys Pro Gly Glu Lys Val Val Ser Ser Ser
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Gly Asp Gly Gly Phe Leu Phe Ser Ala Met Glu Leu Glu Thr Ala Val
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Arg Leu Lys Ala Pro Ile Val His Ile Val Trp Asn Asp Ser Thr Tyr
465 470 475 480
Asp Met Val Ala Phe Gln Gln Leu Lys Lys Tyr Asn Arg Thr Ser Ala
485 490 495
Val Asp Phe Gly Asn Ile Asp Ile Val Lys Tyr Ala Glu Ser Phe Gly
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<212> DNA
<213> Bacillus subtilis
<400> 2
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ccatttgttg aaacatatca agctgccggt accctttcta gagatttaga ggatcaatat 780
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gttgttctga cgatcggcta tgacccgatt gaatatgatc cgaaattctg gaatatcaat 900
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<210> 3
<211> 559
<212> PRT
<213> Klebsiella pneumoniae
<400> 3
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Val Val Ser Gln Leu Glu Ala Gln Gly Val Arg Gln Val Phe Gly Ile
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Gly Ser Ala Phe Val Ser Leu Pro Gln Asp Val Val Asp Gly Pro Val
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260 265 270
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Gln His Gln Arg Glu Leu Leu Asp Arg Arg Gly Ala Gln Leu Asn Gln
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Asn Ser Asp Val Thr Leu Thr Val Asp Met Gly Ser Phe His Ile Trp
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405 410 415
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Ala Asn Val Leu His Leu Ile Trp Val Asp Asn Gly Tyr Asn Met Val
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Asp Asn Pro Leu Leu Met Gly Gln Leu His Leu Ser Gln Ile Leu
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<211> 2055
<212> DNA
<213> Klebsiella pneumoniae
<400> 4
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<211> 554
<212> PRT
<213> Lactococcus lactis
<400> 5
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1 5 10 15
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Ala His Gln Ser Met Asp Asn Ala Gly Met Met Gln Ser Ala Thr Lys
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Asn Tyr Leu Ala Gln Ala Ile Lys Asn Ala Val Leu Pro Val Ile Leu
195 200 205
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Val Ile Ala Val Gly Tyr Asp Pro Ile Glu Tyr Glu Ala Arg Asn Trp
275 280 285
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tttgaagctg tcattaatct tgaagagctt ttagaagatg aacatttatt agctaaatgg 840
ctttttgcag gagcacataa agctttggaa aatgattctg aagcggctgc tttgtatgaa 900
gaactcattc aaaccaatct gtcagagaat ccagagtttt tagaagacta tattgatttt 960
cttaaagaaa ttggtcaaat ttctaaaaca gaaccaatta ttgaacaata tttggaactt 1020
gttccagatg atgaaaatat gagaaattta ctgacagact taaaaaataa ttactgacaa 1080
agctgtcagt aattattttt attgtaagct agaaaattca aaaacttgcg tcaaaataat 1140
tgtaaaaggt tctattatct gataaaatga ttgtgaagta atccaagaga ttatgaaata 1200
tgaattagaa caaatagagg taaaataaaa aatgtctgag aaacaatttg gggcgaactt 1260
ggttgtcgat agtttgatta accataaagt gaagtatgta tttgggattc caggagcaaa 1320
aattgaccgg gtttttgatt tattagaaaa tgaagaaggc cctcaaatgg tcgtgactcg 1380
tcatgagcaa ggagctgctt tcatggctca agctgtcggt cgtttaactg gcgaacctgg 1440
tgtagtagtt gttacgagtg ggcctggtgt atcaaacctt gcgactccgc ttttgaccgc 1500
gacatcagaa ggtgatgcta ttttggctat cggtggacaa gttaaacgaa gtgaccgtct 1560
taaacgtgcg caccaatcaa tggataatgc tggaatgatg caatcagcaa caaaatattc 1620
agcagaagtt cttgacccta atacactttc tgaatcaatt gccaacgctt atcgtattgc 1680
aaaatcagga catccaggtg caactttctt atcaatcccc caagatgtaa cggatgccga 1740
agtatcaatc aaagccattc aaccactttc agaccctaaa atggggaatg cctctattga 1800
tgacattaat tatttagcac aaganattaa aaatgctgta ttgccagtaa ttttggttgg 1860
agctggtgct tcagatgcta aagtcgcttc atccttgcgt aatctattga ctcatgttaa 1920
tattcctgtc gttgaaacat tccaaggtgc aggggttatt tcacatgatt tagaacatac 1980
tttttatgga cgtatcggtc ttttccgcaa tcaaccaggc gatatgcttc tgaaacgttc 2040
tgaccttgtt attgctgttg gttatgaccc aattgaatat gaagctcgta actggaatgc 2100
agaaattgat agtcgaatta tcgttattga taatgccatt gctgaaattg atacttacta 2160
ccaaccagag cgtgaattaa ttggtgatat cgcagcaaca ttggataatc ttttaccagc 2220
tgttcgtggc tacaaaattc caaaaggaac aaaagattat ctcgatggcc ttcatgaagt 2280
tgctgagcaa cacgaatttg atactgaaaa tactgaagaa ggtagaatgc accctcttga 2340
tttggtcagc actttccaag aaatcgtcaa ggatgatgaa acagtaaccg ttgacgtagg 2400
ttcactctac atttggatgg cacgtcattt caaatcatac gaaccacgtc atctcctctt 2460
ctcaaacgga atgcaaacac tcggagttgc acttccttgg gcaattacag ccgcattgtt 2520
gcgcccaggt aaaaaagttt attcacactc tggtgatgga ggcttccttt tcacagggca 2580
agaattggaa acagctgtac gtttgaatct tccaatcgtt caaattatct ggaatgacgg 2640
ccattatgat atggttaaat tccaagaaga aatgaaatat ggtcgttcag cagccgttga 2700
ttttggctat gttgattacg taaaatatgc tgaagcaatg agagcaaaag gttaccgtgc 2760
acacagcaaa gaagaacttg ctgaaattct caaatcaatc ccagatacta ctggaccggt 2820
ggtaattgac gttcctttgg actattctga taacattaaa ttagcagaaa aattattgcc 2880
tgaagagttt tattgattac aatcaagcaa tttgtggcat aacaaaataa aagaagaagg 2940
ccttgaacac ctaagcgttc agggcctttt tttgtgaaat aaattagatg aaatttacaa 3000
tgagttttgt gaaactagct tctagtttgt gaaaaattgc ctataattgc cgaataaaaa 3060
tacccattta ccactccaag aggatgcttc aaattagcta aatacccgtt ttagaggatg 3120
cgtaaaaaca acaaaagagg atgagtatag aacgataaaa cttttttatg ataggttgag 3180
agaattgaat ataaaatata ataagtagaa ggcagcaatt 3220
<210> 7
<211> 491
<212> PRT
<213> Escherichia coli
<400> 7
Met Ala Asn Tyr Phe Asn Thr Leu Asn Leu Arg Gln Gln Leu Ala Gln
1 5 10 15
Leu Gly Lys Cys Arg Phe Met Gly Arg Asp Glu Phe Ala Asp Gly Ala
20 25 30
Ser Tyr Leu Gln Gly Lys Lys Val Val Ile Val Gly Cys Gly Ala Gln
35 40 45
Gly Leu Asn Gln Gly Leu Asn Met Arg Asp Ser Gly Leu Asp Ile Ser
50 55 60
Tyr Ala Leu Arg Lys Glu Ala Ile Ala Glu Lys Arg Ala Ser Trp Arg
65 70 75 80
Lys Ala Thr Glu Asn Gly Phe Lys Val Gly Thr Tyr Glu Glu Leu Ile
85 90 95
Pro Gln Ala Asp Leu Val Ile Asn Leu Thr Pro Asp Lys Gln His Ser
100 105 110
Asp Val Val Arg Thr Val Gln Pro Leu Met Lys Asp Gly Ala Ala Leu
115 120 125
Gly Tyr Ser His Gly Phe Asn Ile Val Glu Val Gly Glu Gln Ile Arg
130 135 140
Lys Asp Ile Thr Val Val Met Ala Pro Lys Cys Pro Gly Thr Glu
145 150 155 160
Val Arg Glu Glu Tyr Lys Arg Gly Phe Gly Val Pro Thr Leu Ile Ala
165 170 175
Val His Pro Glu Asn Asp Pro Lys Gly Glu Gly Met Ala Ile Ala Lys
180 185 190
Ala Trp Ala Ala Ala Thr Gly Gly His Arg Ala Gly Val Leu Glu Ser
195 200 205
Ser Phe Val Ala Glu Val Lys Ser Asp Leu Met Gly Glu Gln Thr Ile
210 215 220
Leu Cys Gly Met Leu Gln Ala Gly Ser Leu Leu Cys Phe Asp Lys Leu
225 230 235 240
Val Glu Glu Gly Thr Asp Pro Ala Tyr Ala Glu Lys Leu Ile Gln Phe
245 250 255
Gly Trp Glu Thr Ile Thr Glu Ale Leu Lys Gln Gly Gly Ile Thr Leu
260 265 270
Met Met Asp Arg Leu Ser Asn Pro Ala Lys Leu Arg Ala Tyr Ala Leu
275 280 285
Ser Glu Gln Leu Lys Glu Ile Met Ala Pro Leu Phe Gln Lys His Met
290 295 300
Asp Asp Ile Ile Ser Gly Glu Phe Ser Ser Gly Met Met Ala Asp Trp
305 310 315 320
Ala Asn Asp Asp Lys Lys Leu Leu Thr Trp Arg Glu Glu Thr Gly Lys
325 330 335
Thr Ala Phe Glu Thr Ala Pro Gln Tyr Glu Gly Lys Ile Gly Glu Gln
340 345 350
Glu Tyr Phe Asp Lys Gly Val Leu Met Ile Ala Met Val Lys Ala Gly
355 360 365
Val Glu Leu Ala Phe Glu Thr Met Val Asp Ser Gly Ile Ile Glu Glu
370 375 380
Ser Ala Tyr Tyr Glu Ser Leu His Glu Leu Pro Leu Ile Ala Asn Thr
385 390 395 400
Ile Ala Arg Lys Arg Leu Tyr Glu Met Asn Val Val Ile Ser Asp Thr
405 410 415
Ala Glu Tyr Gly Asn Tyr Leu Phe Ser Tyr Ala Cys Val Pro Leu Leu
420 425 430
Lys Pro Phe Met Ala Glu Leu Gln Pro Gly Asp Leu Gly Lys Ala Ile
435 440 445
Pro Glu Gly Ala Val Asp Asn Gly Gln Leu Arg Asp Val Asn Glu Ala
450 455 460
Ile Arg Ser His Ala Ile Glu Gln Val Gly Lys Lys Leu Arg Gly Tyr
465 470 475 480
Met Thr Asp Met Lys Arg Ile Ala Val Ala Gly
485 490
<210> 8
<211> 1476
<212> DNA
<213> Escherichia coli
<400> 8
atggctaact acttcaatac actgaatctg cgccagcagc tggcacagct gggcaaatgt 60
cgctttatgg gccgcgatga attcgccgat ggcgcgagct accttcaggg taaaaaagta 120
gtcatcgtcg gctgtggcgc acagggtctg aaccagggcc tgaacatgcg tgattctggt 180
ctcgatatct cctacgctct gcgtaaagaa gcgattgccg agaagcgcgc gtcctggcgt 240
aaagcgaccg aaaatggttt taaagtgggt acttacgaag aactgatccc acaggcggat 300
ctggtgatta acctgacgcc ggacaagcag cactctgatg tagtgcgcac cgtacagcca 360
ctgatgaaag acggcgcggc gctgggctac tcgcacggtt tcaacatcgt cgaagtgggc 420
gagcagatcc gtaaagatat caccgtagtg atggttgcgc cgaaatgccc aggcaccgaa 480
gtgcgtgaag agtacaaacg tgggttcggc gtaccgacgc tgattgccgt tcacccggaa 540
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caccgtgcgg gtgtgctgga atcgtccttc gttgcggaag tgaaatctga cctgatgggc 660
gagcaaacca tcctgtgcgg tatgttgcag gctggctctc tgctgtgctt cgacaagctg 720
gtggaagaag gtaccgatcc agcatacgca gaaaaactga ttcagttcgg ttgggaaacc 780
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gccaacgatg ataagaaact gctgacctgg cgtgaagaga ccggcaaaac cgcgtttgaa 1020
accgcgccgc agtatgaagg caaaatcggc gagcaggagt acttcgataa aggcgtactg 1080
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atcattgaag agtctgcata ttatgaatca ctgcacgagc tgccgctgat tgccaacacc 1200
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aactatctgt tctcttacgc ttgtgtgccg ttgctgaaac cgtttatggc agagctgcaa 1320
ccgggcgacc tgggtaaagc tattccggaa ggcgcggtag ataacgggca actgcgtgat 1380
gtgaacgaag cgattcgcag ccatgcgatt gagcaggtag gtaagaaact gcgcggctat 1440
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<210> 9
<211> 395
<212> PRT
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 9
Met Leu Arg Thr Gln Ala Ala Arg Leu Ile Cys Asn Ser Arg Val Ile
1 5 10 15
Thr Ala Lys Arg Thr Phe Ala Leu Ala Thr Arg Ala Ala Ala Tyr Ser
20 25 30
Arg Pro Ala Ala Arg Phe Val Lys Pro Met Ile Thr Thr Arg Gly Leu
35 40 45
Lys Gln Ile Asn Phe Gly Gly Thr Val Glu Thr Val Tyr Glu Arg Ala
50 55 60
Asp Trp Pro Arg Glu Lys Leu Leu Asp Tyr Phe Lys Asn Asp Thr Phe
65 70 75 80
Ala Leu Ile Gly Tyr Gly Ser Gln Gly Tyr Gly Gln Gly Leu Asn Leu
85 90 95
Arg Asp Asn Gly Leu Asn Val Ile Ile Gly Val Arg Lys Asp Gly Ala
100 105 110
Ser Trp Lys Ala Ala Ile Glu Asp Gly Trp Val Pro Gly Lys Asn Leu
115 120 125
Phe Thr Val Glu Asp Ala Ile Lys Arg Gly Ser Tyr Val Met Asn Leu
130 135 140
Leu Ser Asp Ala Ala Gln Ser Glu Thr Trp Pro Ala Ile Lys Pro Leu
145 150 155 160
Leu Thr Lys Gly Lys Thr Leu Tyr Phe Ser His Gly Phe Ser Pro Val
165 170 175
Phe Lys Asp Leu Thr His Val Glu Pro Pro Lys Asp Leu Asp Val Ile
180 185 190
Leu Val Ala Pro Lys Gly Ser Gly Arg Thr Val Arg Ser Leu Phe Lys
195 200 205
Glu Gly Arg Gly Ile Asn Ser Ser Tyr Ala Val Trp Asn Asp Val Thr
210 215 220
Gly Lys Ala His Glu Lys Ala Gln Ala Leu Ala Val Ala Ile Gly Ser
225 230 235 240
Gly Tyr Val Tyr Gln Thr Thr Phe Glu Arg Glu Val Asn Ser Asp Leu
245 250 255
Tyr Gly Glu Arg Gly Cys Leu Met Gly Gly Ile His Gly Met Phe Leu
260 265 270
Ala Gln Tyr Asp Val Leu Arg Glu Asn Gly His Ser Pro Ser Glu Ala
275 280 285
Phe Asn Glu Thr Val Glu Glu Ala Thr Gln Ser Leu Tyr Pro Leu Ile
290 295 300
Gly Lys Tyr Gly Met Asp Tyr Met Tyr Asp Ala Cys Ser Thr Thr Ala
305 310 315 320
Arg Arg Gly Ala Leu Asp Trp Tyr Pro Ile Phe Lys Asn Ala Leu Lys
325 330 335
Pro Val Phe Gln Asp Leu Tyr Glu Ser Thr Lys Asn Gly Thr Glu Thr
340 345 350
Lys Arg Ser Leu Glu Phe Asn Ser Gln Pro Asp Tyr Arg Glu Lys Leu
355 360 365
Glu Lys Glu Leu Asp Thr Ile Arg Asn Met Glu Ile Trp Lys Val Gly
370 375 380
Lys Glu Val Arg Lys Leu Arg Pro Glu Asn Gln
385 390 395
<210> 10
<211> 1188
<212> DNA
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 10
atgttgagaa ctcaagccgc cagattgatc tgcaactccc gtgtcatcac tgctaagaga 60
acctttgctt tggccacccg tgctgctgct tacagcagac cagctgcccg tttcgttaag 120
ccaatgatca ctacccgtgg tttgaagcaa atcaacttcg gtggtactgt tgaaaccgtc 180
tacgaaagag ctgactggcc aagagaaaag ttgttggact acttcaagaa cgacactttt 240
gctttgatcg gttacggttc ccaaggttac ggtcaaggtt tgaacttgag agacaacggt 300
ttgaacgtta tcattggtgt ccgtaaagat ggtgcttctt ggaaggctgc catcgaagac 360
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gttatgaact tgttgtccga tgccgctcaa tcagaaacct ggcctgctat caagccattg 480
ttgaccaagg gtaagacttt gtacttctcc cacggtttct ccccagtctt caaggacttg 540
actcacgttg aaccaccaaa ggacttagat gttatcttgg ttgctccaaa gggttccggt 600
agaactgtca gatctttgtt caaggaaggt cgtggtatta actcttctta cgccgtctgg 660
aacgatgtca ccggtaaggc tcacgaaaag gcccaagctt tggccgttgc cattggttcc 720
ggttacgttt accaaaccac tttcgaaaga gaagtcaact ctgacttgta cggtgaaaga 780
ggttgtttaa tgggtggtat ccacggtatg ttcttggctc aatacgacgt cttgagagaa 840
aacggtcact ccccatctga agctttcaac gaaaccgtcg aagaagctac ccaatctcta 900
tacccattga tcggtaagta cggtatggat tacatgtacg atgcttgttc caccaccgcc 960
agaagaggtg ctttggactg gtacccaatc ttcaagaatg ctttgaagcc tgttttccaa 1020
gacttgtacg aatctaccaa gaacggtacc gaaaccaaga gatctttgga attcaactct 1080
caacctgact acagagaaaa gctagaaaag gaattagaca ccatcagaaa catggaaatc 1140
tggaaggttg gtaaggaagt cagaaagttg agaccagaaa accaataa 1188
<210> 11
<211> 330
<212> PRT
<213> Methanococcus maripaludis
<400> 11
Met Lys Val Phe Tyr Asp Ser Asp Phe Lys Leu Asp Ala Leu Lys Glu
1 5 10 15
Lys Thr Ile Ala Val Ile Gly Tyr Gly Ser Gln Gly Arg Ala Gln Ser
20 25 30
Leu Asn Met Lys Asp Ser Gly Leu Asn Val Val Gly Leu Arg Lys
35 40 45
Asn Gly Ala Ser Trp Asn Asn Ala Lys Ala Asp Gly His Asn Val Met
50 55 60
Thr Ile Glu Glu Ala Gla Lys Ala Asp Ile Ile His Ile Leu Ile
65 70 75 80
Pro Asp Glu Leu Gln Ala Glu Val Tyr Glu Ser Gln Ile Lys Pro Tyr
85 90 95
Leu Lys Glu Gly Lys Thr Leu Ser Phe Ser His Gly Phe Asn Ile His
100 105 110
Tyr Gly Phe Ile Val Pro Pro Lys Gly Val Asn Val Val Leu Val Ala
115 120 125
Pro Lys Ser Pro Gly Lys Met Val Arg Arg Thr Tyr Glu Glu Gly Phe
130 135 140
Gly Val Pro Gly Leu Ile Cys Ile Glu Ile Asp Ala Thr Asn Asn Ala
145 150 155 160
Phe Asp Ile Val Ser Ala Met Ala Lys Gly Ile Gly Leu Ser Arg Ala
165 170 175
Gly Val Ile Gln Thr Thr Phe Lys Glu Glu Thr Glu Thr Asp Leu Phe
180 185 190
Gly Glu Gln Ala Val Leu Cys Gly Gly Val Thr Glu Leu Ile Lys Ala
195 200 205
Gly Phe Glu Thr Leu Val Glu Ala Gly Tyr Ala Pro Glu Met Ala Tyr
210 215 220
Phe Glu Thr Cys His Glu Leu Lys Leu Ile Val Asp Leu Ile Tyr Gln
225 230 235 240
Lys Gly Phe Lys Asn Met Trp Asn Asp Val Ser Asn Thr Ala Glu Tyr
245 250 255
Gly Gly Leu Thr Arg Arg Ser Ser Ile Val Thr Ala Asp Ser Lys Ala
260 265 270
Ala Met Lys Glu Ile Leu Arg Glu Ile Gln Asp Gly Arg Phe Thr Lys
275 280 285
Glu Phe Leu Leu Glu Lys Gln Val Ser Tyr Ala His Leu Lys Ser Met
290 295 300
Arg Arg Leu Glu Gly Asp Leu Gln Ile Glu Glu Val Gly Ala Lys Leu
305 310 315 320
Arg Lys Met Cys Gly Leu Glu Lys Glu Glu
325 330
<210> 12
<211> 993
<212> DNA
<213> Methanococcus maripaludis
<400> 12
atgaaggtat tctatgactc agattttaaa ttagatgctt taaaagaaaa aacaattgca 60
gtaatcggtt atggaagtca aggtagggca cagtccttaa acatgaaaga cagcggatta 120
aacgttgttg ttggtttaag aaaaaacggt gcttcatgga acaacgctaa agcagacggt 180
cacaatgtaa tgaccattga agaagctgct gaaaaagcgg acatcatcca catcttaata 240
cctgatgaat tacaggcaga agtttatgaa agccagataa aaccatacct aaaagaagga 300
aaaacactaa gcttttcaca tggttttaac atccactatg gattcattgt tccaccaaaa 360
ggagttaacg tggttttagt tgctccaaaa tcacctggaa aaatggttag aagaacatac 420
gaagaaggtt tcggtgttcc aggtttaatc tgtattgaaa ttgatgcaac aaacaacgca 480
tttgatattg tttcagcaat ggcaaaagga atcggtttat caagagctgg agttatccag 540
acaactttca aagaagaaac agaaactgac cttttcggtg aacaagctgt tttatgcggt 600
ggagttaccg aattaatcaa ggcaggattt gaaacactcg ttgaagcagg atacgcacca 660
gaaatggcat actttgaaac ctgccacgaa ttgaaattaa tcgttgactt aatctaccaa 720
aaaggattca aaaacatgtg gaacgatgta agtaacactg cagaatacgg cggacttaca 780
agaagaagca gaatcgttac agctgattca aaagctgcaa tgaaagaaat cttaagagaa 840
atccaagatg gaagattcac aaaagaattc cttctcgaaa aacaggtaag ctatgctcat 900
ttaaaatcaa tgagaagact cgaaggagac ttacaaatcg aagaagtcgg cgcaaaatta 960
agaaaaatgt gcggtcttga aaaagaagaa taa 993
<210> 13
<211> 342
<212> PRT
<213> Bacillus subtilis
<400> 13
Met Val Lys Val Tyr Tyr Asn Gly Asp Ile Lys Glu Asn Val Leu Ala
1 5 10 15
Gly Lys Thr Val Ala Val Ile Gly Tyr Gly Ser Gln Gly His Ala His
20 25 30
Ala Leu Asn Leu Lys Glu Ser Gly Val Asp Val Ile Val Gly Val Arg
35 40 45
Gln Gly Lys Ser Phe Thr Gln Ala Gln Glu Asp Gly His Lys Val Phe
50 55 60
Ser Val Lys Glu Ala Ala Ala Gl Ala Glu Ile Ile Met Val Leu Leu
65 70 75 80
Pro Asp Glu Gln Gln Gln Lys Val Tyr Glu Ala Glu Ile Lys Asp Glu
85 90 95
Leu Thr Ala Gly Lys Ser Leu Val Phe Ala His Gly Phe Asn Val His
100 105 110
Phe His Gln Ile Val Pro Pro Ala Asp Val Asp Val Phe Leu Val Ala
115 120 125
Pro Lys Gly Pro Gly His Leu Val Arg Arg Thr Tyr Glu Gln Gly Ala
130 135 140
Gly Val Pro Ala Leu Phe Ala Ile Tyr Gln Asp Val Thr Gly Glu Ala
145 150 155 160
Arg Asp Lys Ala Leu Ala Tyr Ala Lys Gly Ile Gly Gly Ala Arg Ala
165 170 175
Gly Val Leu Glu Thr Thr Phe Lys Glu Glu Thr Glu Thr Asp Leu Phe
180 185 190
Gly Glu Gln Ala Val Leu Cys Gly Gly Leu Ser Ala Leu Val Lys Ala
195 200 205
Gly Phe Glu Thr Leu Thr Glu Ala Gly Tyr Gln Pro Glu Leu Ala Tyr
210 215 220
Phe Glu Cys Leu His Glu Leu Lys Leu Ile Val Asp Leu Met Tyr Glu
225 230 235 240
Glu Gly Leu Ala Gly Met Arg Tyr Ser Ile Ser Asp Thr Ala Gln Trp
245 250 255
Gly Asp Phe Val Ser Gly Pro Arg Val Val Asp Ala Lys Val Lys Glu
260 265 270
Ser Met Lys Glu Val Leu Lys Asp Ile Gln Asn Gly Thr Phe Ala Lys
275 280 285
Glu Trp Ile Val Glu Asn Gln Val Asn Arg Pro Arg Phe Asn Ala Ile
290 295 300
Asn Ala Ser Glu Asn Glu His Gln Ile Glu Val Val Gly Arg Lys Leu
305 310 315 320
Arg Glu Met Met Pro Phe Val Lys Gln Gly Lys Lys Lys Glu Ala Val
325 330 335
Val Ser Val Ala Gln Asn
340
<210> 14
<211> 1476
<212> DNA
<213> Bacillus subtilis
<400> 14
atggctaact acttcaatac actgaatctg cgccagcagc tggcacagct gggcaaatgt 60
cgctttatgg gccgcgatga attcgccgat ggcgcgagct accttcaggg taaaaaagta 120
gtcatcgtcg gctgtggcgc acagggtctg aaccagggcc tgaacatgcg tgattctggt 180
ctcgatatct cctacgctct gcgtaaagaa gcgattgccg agaagcgcgc gtcctggcgt 240
aaagcgaccg aaaatggttt taaagtgggt acttacgaag aactgatccc acaggcggat 300
ctggtgatta acctgacgcc ggacaagcag cactctgatg tagtgcgcac cgtacagcca 360
ctgatgaaag acggcgcggc gctgggctac tcgcacggtt tcaacatcgt cgaagtgggc 420
gagcagatcc gtaaagatat caccgtagtg atggttgcgc cgaaatgccc aggcaccgaa 480
gtgcgtgaag agtacaaacg tgggttcggc gtaccgacgc tgattgccgt tcacccggaa 540
aacgatccga aaggcgaagg catggcgatt gccaaagcct gggcggctgc aaccggtggt 600
caccgtgcgg gtgtgctgga atcgtccttc gttgcggaag tgaaatctga cctgatgggc 660
gagcaaacca tcctgtgcgg tatgttgcag gctggctctc tgctgtgctt cgacaagctg 720
gtggaagaag gtaccgatcc agcatacgca gaaaaactga ttcagttcgg ttgggaaacc 780
atcaccgaag cactgaaaca gggcggcatc accctgatga tggaccgtct ctctaacccg 840
gcgaaactgc gtgcttatgc gctttctgaa cagctgaaag agatcatggc acccctgttc 900
cagaaacata tggacgacat catctccggc gaattctctt ccggtatgat ggcggactgg 960
gccaacgatg ataagaaact gctgacctgg cgtgaagaga ccggcaaaac cgcgtttgaa 1020
accgcgccgc agtatgaagg caaaatcggc gagcaggagt acttcgataa aggcgtactg 1080
atgattgcga tggtgaaagc gggcgttgaa ctggcgttcg aaaccatggt cgattccggc 1140
atcattgaag agtctgcata ttatgaatca ctgcacgagc tgccgctgat tgccaacacc 1200
atcgcccgta agcgtctgta cgaaatgaac gtggttatct ctgataccgc tgagtacggt 1260
aactatctgt tctcttacgc ttgtgtgccg ttgctgaaac cgtttatggc agagctgcaa 1320
ccgggcgacc tgggtaaagc tattccggaa ggcgcggtag ataacgggca actgcgtgat 1380
gtgaacgaag cgattcgcag ccatgcgatt gagcaggtag gtaagaaact gcgcggctat 1440
atgacagata tgaaacgtat tgctgttgcg ggttaa 1476
<210> 15
<211> 343
<212> PRT
<213> Anaerostipes caccae
<400> 15
Met Glu Glu Cys Lys Met Ala Lys Ile Tyr Tyr Gln Glu Asp Cys Asn
1 5 10 15
Leu Ser Leu Leu Asp Gly Lys Thr Ile Ala Val Ile Gly Tyr Gly Ser
20 25 30
Gln Gly His Ala His Ala Leu Asn Ala Lys Glu Ser Gly Cys Asn Val
35 40 45
Ile Ile Gly Leu Tyr Glu Gly Ala Lys Glu Trp Lys Arg Ala Glu Glu
50 55 60
Gln Gly Phe Glu Val Tyr Thr Ala Ala Glu Ala Ala Lys Lys Ala Asp
65 70 75 80
Ile Ile Met Ile Leu Ile Asn Asp Glu Lys Gln Ala Thr Met Tyr Lys
85 90 95
Asn Asp Ile Glu Pro Asn Leu Glu Ala Gly Asn Met Leu Met Phe Ala
100 105 110
His Gly Phe Asn Ile His Phe Gly Cys Ile Val Pro Pro Lys Asp Val
115 120 125
Asp Val Thr Met Ile Ala Pro Lys Gly Pro Gly His Thr Val Arg Ser
130 135 140
Glu Tyr Glu Glu Gly Lys Gly Val Pro Cys Leu Val Ala Val Glu Gln
145 150 155 160
Asp Ala Thr Gly Lys Ala Leu Asp Met Ala Leu Ala Tyr Ala Leu Ala
165 170 175
Ile Gly Gly Ala Arg Ala Gly Val Leu Glu Thr Thr Phe Arg Thr Glu
180 185 190
Thr Glu Thr Asp Leu Phe Gly Glu Gln Ala Val Leu Cys Gly Gly Val
195 200 205
Cys Ala Leu Met Gln Ala Gly Phe Glu Thr Leu Val Glu Ala Gly Tyr
210 215 220
Asp Pro Arg Asn Ala Tyr Phe Glu Cys Ile His Glu Met Lys Leu Ile
225 230 235 240
Val Asp Leu Ile Tyr Gln Ser Gly Phe Ser Gly Met Arg Tyr Ser Ile
245 250 255
Ser Asn Thr Ala Glu Tyr Gly Asp Tyr Ile Thr Gly Pro Lys Ile Ile
260 265 270
Thr Glu Asp Thr Lys Lys Ala Met Lys Lys Ile Leu Ser Asp Ile Gln
275 280 285
Asp Gly Thr Phe Ala Lys Asp Phe Leu Val Asp Met Ser Asp Ala Gly
290 295 300
Ser Gln Val His Phe Lys Ala Met Arg Lys Leu Ala Ser Glu His Pro
305 310 315 320
Ala Glu Val Val Gly Glu Glu Ile Arg Ser Leu Tyr Ser Trp Ser Asp
325 330 335
Glu Asp Lys Leu Ile Asn Asn
340
<210> 16
<211> 343
<212> PRT
<213> Anaerostipes caccae
<400> 16
Met Glu Glu Cys Lys Met Ala Lys Ile Tyr Tyr Gln Glu Asp Cys Asn
1 5 10 15
Leu Ser Leu Leu Asp Gly Lys Thr Ile Ala Val Ile Gly Tyr Gly Ser
20 25 30
Gln Gly His Ala His Ala Leu Asn Ala Lys Glu Ser Gly Cys Asn Val
35 40 45
Ile Ile Gly Leu Tyr Glu Gly Ala Lys Asp Trp Lys Arg Ala Glu Glu
50 55 60
Gln Gly Phe Glu Val Tyr Thr Ala Ala Glu Ala Ala Lys Lys Ala Asp
65 70 75 80
Ile Ile Met Ile Leu Ile Asn Asp Glu Lys Gln Ala Thr Met Tyr Lys
85 90 95
Asn Asp Ile Glu Pro Asn Leu Glu Ala Gly Asn Met Leu Met Phe Ala
100 105 110
His Gly Phe Asn Ile His Phe Gly Cys Ile Val Pro Pro Lys Asp Val
115 120 125
Asp Val Thr Met Ile Ala Pro Lys Gly Pro Gly His Thr Val Arg Ser
130 135 140
Glu Tyr Glu Glu Gly Lys Gly Val Pro Cys Leu Val Ala Val Glu Gln
145 150 155 160
Asp Ala Thr Gly Lys Ala Leu Asp Met Ala Leu Ala Tyr Ala Leu Ala
165 170 175
Ile Gly Gly Ala Arg Ala Gly Val Leu Glu Thr Thr Phe Arg Thr Glu
180 185 190
Thr Glu Thr Asp Leu Phe Gly Glu Gln Ala Val Leu Cys Gly Gly Val
195 200 205
Cys Ala Leu Met Gln Ala Gly Phe Glu Thr Leu Val Glu Ala Gly Tyr
210 215 220
Asp Pro Arg Asn Ala Tyr Phe Glu Cys Ile His Glu Met Lys Leu Ile
225 230 235 240
Val Asp Leu Ile Tyr Gln Ser Gly Phe Ser Gly Met Arg Tyr Ser Ile
245 250 255
Ser Asn Thr Ala Glu Tyr Gly Asp Tyr Ile Thr Gly Pro Lys Ile Ile
260 265 270
Thr Glu Asp Thr Lys Lys Ala Met Lys Lys Ile Leu Ser Asp Ile Gln
275 280 285
Asp Gly Thr Phe Ala Lys Asp Phe Leu Val Asp Met Ser Asp Ala Gly
290 295 300
Ser Gln Val His Phe Lys Ala Met Arg Lys Leu Ala Ser Glu His Pro
305 310 315 320
Ala Glu Val Val Gly Glu Glu Ile Arg Ser Leu Tyr Ser Trp Ser Asp
325 330 335
Glu Asp Lys Leu Ile Asn Asn
340
<210> 17
<211> 616
<212> PRT
<213> Escherichia coli
<400> 17
Met Pro Lys Tyr Arg Ser Ala Thr Thr His Gly Arg Asn Met Ala
1 5 10 15
Gly Ala Arg Ala Leu Trp Arg Ala Thr Gly Met Thr Asp Ala Asp Phe
20 25 30
Gly Lys Pro Ile Ile Ala Val Val Asn Ser Phe Thr Gln Phe Val Pro
35 40 45
Gly His Val His Leu Arg Asp Leu Gly Lys Leu Val Ala Glu Gln Ile
50 55 60
Glu Ala Ala Gly Gly Val Ala Lys Glu Phe Asn Thr Ile Ala Val Asp
65 70 75 80
Asp Gly Ile Ala Met Gly His Gly Gly Met Leu Tyr Ser Leu Pro Ser
85 90 95
Arg Glu Leu Ile Ala Asp Ser Val Glu Tyr Met Val Asn Ala His Cys
100 105 110
Ala Asp Ala Met Val Cys Ile Ser Asn Cys Asp Lys Ile Thr Pro Gly
115 120 125
Met Leu Met Ala Ser Leu Arg Leu Asn Ile Pro Val Ile Phe Val Ser
130 135 140
Gly Gly Pro Met Glu Ala Gly Lys Thr Lys Leu Ser Asp Gln Ile Ile
145 150 155 160
Lys Leu Asp Leu Val Asp Ala Met Ile Gln Gly Ala Asp Pro Lys Val
165 170 175
Ser Asp Ser Gln Ser Asp Gln Val Glu Arg Ser Ala Cys Pro Thr Cys
180 185 190
Gly Ser Cys Ser Gly Met Phe Thr Ala Asn Ser Met Asn Cys Leu Thr
195 200 205
Glu Ala Leu Gly Leu Ser Gln Pro Gly Asn Gly Ser Leu Leu Ala Thr
210 215 220
His Ala Asp Arg Lys Gln Leu Phe Leu Asn Ala Gly Lys Arg Ile Val
225 230 235 240
Glu Leu Thr Lys Arg Tyr Tyr Glu Gln Asn Asp Glu Ser Ala Leu Pro
245 250 255
Arg Asn Ile Ala Ser Lys Ala Ala Phe Glu Asn Ala Met Thr Leu Asp
260 265 270
Ile Ala Met Gly Gly Ser Thr Asn Thr Val Leu His Leu Leu Ala Ala
275 280 285
Ala Gln Glu Ala Glu Ile Asp Phe Thr Met Ser Asp Ile Asp Lys Leu
290 295 300
Ser Arg Lys Val Pro Gln Leu Cys Lys Val Ala Pro Ser Thr Gln Lys
305 310 315 320
Tyr His Met Glu Asp Val His Arg Ala Gly Gly Val Ile Gly Ile Leu
325 330 335
Gly Glu Leu Asp Arg Ala Gly Leu Leu Asn Arg Asp Val Lys Asn Val
340 345 350
Leu Gly Leu Thr Leu Pro Gln Thr Leu Glu Gln Tyr Asp Val Met Leu
355 360 365
Thr Gln Asp Asp Ala Val Lys Asn Met Phe Arg Ala Gly Pro Ala Gly
370 375 380
Ile Arg Thr Thr Gln Ala Phe Ser Gln Asp Cys Arg Trp Asp Thr Leu
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Asp Asp Arg Ala Asn Gly Cys Ile Arg Ser Leu Glu His Ala Tyr
405 410 415
Ser Lys Asp Gly Gly Leu Ala Val Leu Tyr Gly Asn Phe Ala Glu Asn
420 425 430
Gly Cys Ile Val Lys Thr Ala Gly Val Asp Asp Ser Ile Leu Lys Phe
435 440 445
Thr Gly Pro Ala Lys Val Tyr Glu Ser Gln Asp Asp Ala Val Glu Ala
450 455 460
Ile Leu Gly Gly Lys Val Val Ala Gly Asp Val Val Ile Arg Tyr
465 470 475 480
Glu Gly Pro Lys Gly Gly Pro Gly Met Gln Glu Met Leu Tyr Pro Thr
485 490 495
Ser Phe Leu Lys Ser Met Gly Leu Gly Lys Ala Cys Ala Leu Ile Thr
500 505 510
Asp Gly Arg Phe Ser Gly Gly Thr Ser Gly Leu Ser Ile Gly His Val
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Ser Pro Glu Ala Ala Ser Gly Gly Ser Ile Gly Leu Ile Glu Asp Gly
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Ser Asp Ala Glu Leu Ala Ala Arg Arg Glu Ala Gln Asp Ala Arg Gly
565 570 575
Asp Lys Ala Trp Thr Pro Lys Asn Arg Glu Arg Gln Val Ser Phe Ala
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Leu Arg Ala Tyr Ala Ser Leu Ala Thr Ser Ala Asp Lys Gly Ala Val
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Arg Asp Lys Ser Lys Leu Gly Gly
610 615
<210> 18
<211> 1851
<212> DNA
<213> Escherichia coli
<400> 18
atgcctaagt accgttccgc caccaccact catggtcgta atatggcggg tgctcgtgcg 60
ctgtggcgcg ccaccggaat gaccgacgcc gatttcggta agccgattat cgcggttgtg 120
aactcgttca cccaatttgt accgggtcac gtccatctgc gcgatctcgg taaactggtc 180
gccgaacaaa ttgaagcggc tggcggcgtt gccaaagagt tcaacaccat tgcggtggat 240
gatgggattg ccatgggcca cggggggatg ctttattcac tgccatctcg cgaactgatc 300
gctgattccg ttgagtatat ggtcaacgcc cactgcgccg acgccatggt ctgcatctct 360
aactgcgaca aaatcacccc ggggatgctg atggcttccc tgcgcctgaa tattccggtg 420
atctttgttt ccggcggccc gatggaggcc gggaaaacca aactttccga tcagatcatc 480
aagctcgatc tggttgatgc gatgatccag ggcgcagacc cgaaagtatc tgactcccag 540
agcgatcagg ttgaacgttc cgcgtgtccg acctgcggtt cctgctccgg gatgtttacc 600
gctaactcaa tgaactgcct gaccgaagcg ctgggcctgt cgcagccggg caacggctcg 660
ctgctggcaa cccacgccga ccgtaagcag ctgttcctta atgctggtaa acgcattgtt 720
gaattgacca aacgttatta cgagcaaaac gacgaaagtg cactgccgcg taatatcgcc 780
agtaaggcgg cgtttgaaaa cgccatgacg ctggatatcg cgatgggtgg atcgactaac 840
accgtacttc acctgctggc ggcggcgcag gaagcggaaa tcgacttcac catgagtgat 900
atcgataagc tttcccgcaa ggttccacag ctgtgtaaag ttgcgccgag cacccagaaa 960
taccatatgg aagatgttca ccgtgctggt ggtgttatcg gtattctcgg cgaactggat 1020
cgcgcggggt tactgaaccg tgatgtgaaa aacgtacttg gcctgacgtt gccgcaaacg 1080
ctggaacaat acgacgttat gctgacccag gatgacgcgg taaaaaatat gttccgcgca 1140
ggtcctgcag gcattcgtac cacacaggca ttctcgcaag attgccgttg ggatacgctg 1200
gcgccgatc gcgccaatgg ctgtatccgc tcgctggaac acgcctacag caaagacggc 1260
ggcctggcgg tgctctacgg taactttgcg gaaaacggct gcatcgtgaa aacggcaggc 1320
gtcgatgaca gcatcctcaa attcaccggc ccggcgaaag tgtacgaaag ccaggacgat 1380
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gaaggcccga aaggcggtcc ggggatgcag gaaatgctct acccaaccag cttcctgaaa 1500
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tctggtcttt ccatcggcca cgtctcaccg gaagcggcaa gcggcggcag cattggcctg 1620
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<210> 19
<211> 585
<212> PRT
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 19
Met Gly Leu Leu Thr Lys Val Ala Thr Ser Arg Gln Phe Ser Thr Thr
1 5 10 15
Arg Cys Val Ala Lys Lys Leu Asn Lys Tyr Ser Tyr Ile Ile Thr Glu
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35 40 45
Lys Lys Glu Asp Phe Lys Lys Pro Gln Val Gly Val Gly Ser Cys Trp
50 55 60
Trp Ser Gly Asn Pro Cys Asn Met His Leu Leu Asp Leu Asn Asn Arg
65 70 75 80
Cys Ser Gln Ser Ile Glu Lys Ala Gly Leu Lys Ala Met Gln Phe Asn
85 90 95
Thr Ile Gly Val Ser Asp Gly Ile Ser Met Gly Thr Lys Gly Met Arg
100 105 110
Tyr Ser Leu Gln Ser Arg Glu Ile Ile Ala Asp Ser Phe Glu Thr Ile
115 120 125
Met Met Ala Gln His Tyr Asp Ala Asn Ile Ala Ile Pro Ser Cys Asp
130 135 140
Lys Asn Met Pro Gly Val Met Met Ala Met Gly Arg His His As Arg Pro
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Ser Ile Met Val Tyr Gly Gly Thr Ile Leu Pro Gly His Pro Thr Cys
165 170 175
Gly Ser Ser Lys Ile Ser Lys Asn Ile Asp Ile Val Ser Ala Phe Gln
180 185 190
Ser Tyr Gly Glu Tyr Ile Ser Lys Gln Phe Thr Glu Glu Glu Arg Glu
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Asp Val Val Glu His Ala Cys Pro Gly Pro Gly Ser Cys Gly Gly Met
210 215 220
Tyr Thr Ala Asn Thr Met Ala Ser Ala Ala Glu Val Leu Gly Leu Thr
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Ile Pro Asn Ser Ser Ser Phe Pro Ala Val Ser Lys Glu Lys Leu Ala
245 250 255
Glu Cys Asp Asn Ile Gly Glu Tyr Ile Lys Lys Thr Met Glu Leu Gly
260 265 270
Ile Leu Pro Arg Asp Ile Leu Thr Lys Glu Ala Phe Glu Asn Ala Ile
275 280 285
Thr Val Val Ala Thr Gly Gly Ser Thr Asn Ala Val Leu His Leu
290 295 300
Val Ala Val Ala His Ser Ala Gly Val Lys Leu Ser Pro Asp Asp Phe
305 310 315 320
Gln Arg Ile Ser Asp Thr Thr Pro Leu Ile Gly Asp Phe Lys Pro Ser
325 330 335
Gly Lys Tyr Val Met Ala Asp Leu Ile Asn Val Gly Gly Thr Gln Ser
340 345 350
Val Ile Lys Tyr Leu Tyr Glu Asn Asn Met Leu His Gly Asn Thr Met
355 360 365
Thr Val Thr Gly Asp Thr Leu Ala Glu Arg Ala Lys Lys Ala Pro Ser
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Ala Asn Gly His Leu Gln Ile Leu Tyr Gly Ser Leu Ala Pro Gly Gly
405 410 415
Ala Val Gly Lys Ile Thr Gly Lys Gly Gly Thr Tyr Phe Lys Gly Arg
420 425 430
Ala Arg Val Phe Glu Glu Glu Gly Ala Phe Ile Glu Ala Leu Glu Arg
435 440 445
Gly Glu Ile Lys Lys Gly Glu Lys Thr Val Val Ile Arg Tyr Glu
450 455 460
Gly Pro Arg Gly Ala Pro Gly Met Pro Glu Met Leu Lys Pro Ser Ser
465 470 475 480
Ala Leu Met Gly Tyr Gly Leu Gly Lys Asp Val Ala Leu Leu Thr Asp
485 490 495
Gly Arg Phe Ser Gly Gly Ser His Gly Phe Leu Ile Gly His Ile Val
500 505 510
Pro Glu Ala Ala Glu Gly Gly Pro Ile Gly Leu Val Arg Asp Gly Asp
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Glu Ile Ile Asp Asp Ala Asp Asn Asn Lys Ile Asp Leu Leu Val Ser
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Arg Tyr Thr Arg Gly Thr Leu Ser Lys Tyr Ala Lys Leu Val Ser Asn
565 570 575
Ala Ser Asn Gly Cys Val Leu Asp Ala
580 585
<210> 20
<211> 1131
<212> DNA
<213> Saccharomyces cerevisiae
<400> 20
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aagccaaaac cgaacagtga gttagtgttt ggcaagagct tcacggacca catgttaact 120
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<400> 21
Met Ile Ser Asp Asn Val Lys Lys Gly Val Ile Arg Thr Pro Asn Arg
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Ala Leu Leu Lys Ala Cys Gly Tyr Thr Asp Glu Asp Met Glu Lys Pro
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Phe Ile Gly Ile Val Asn Ser Phe Thr Glu Val Val Pro Gly His Ile
35 40 45
His Leu Arg Thr Leu Ser Glu Ala Ala Lys His Gly Val Tyr Ala Asn
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Gly Gly Thr Pro Phe Glu Phe Asn Thr Ile Gly Ile Cys Asp Gly Ile
65 70 75 80
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Ile Ala Asp Ala Val Glu Ser Met Ala Arg Ala His Gly Phe Asp Gly
100 105 110
Leu Val Leu Ile Pro Thr Cys Asp Lys Ile Val Pro Gly Met Ile Met
115 120 125
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130 135 140
Met Leu Pro Gly Glu Phe Gln Gly Lys Lys Tyr Glu Leu Ile Ser Leu
145 150 155 160
Phe Glu Gly Val Gly Glu Tyr Gln Val Gly Lys Ile Thr Glu Glu Glu
165 170 175
Leu Lys Cys Ile Glu Asp Cys Ala Cys Ser Gly Ala Gly Ser Cys Ala
180 185 190
Gly Leu Tyr Thr Ala Asn Ser Ala Cys Leu Thr Glu Ala Leu Gly
195 200 205
Leu Ser Leu Pro Met Cys Ala Thr Thr His Ala Val Asp Ala Gln Lys
210 215 220
Val Arg Leu Ala Lys Lys Ser Gly Ser Lys Ile Val Asp Met Val Lys
225 230 235 240
Glu Asp Leu Lys Pro Thr Asp Ile Leu Thr Lys Glu Ala Phe Glu Asn
245 250 255
Ala Ile Leu Val Asp Leu Ala Leu Gly Gly Ser Thr Asn Thr Thr Leu
260 265 270
His Ile Pro Ala Ile Ala Asn Glu Ile Glu Asn Lys Phe Ile Thr Leu
275 280 285
Asp Asp Phe Asp Arg Leu Ser Asp Glu Val Pro His Ile Ala Ser Ile
290 295 300
Lys Pro Gly Gly Glu His Tyr Met Ile Asp Leu His Asn Ala Gly Gly
305 310 315 320
Ile Pro Ala Val Leu Asn Val Leu Lys Glu Lys Ile Arg Asp Thr Lys
325 330 335
Thr Val Asp Gly Arg Ser Ile Leu Glu Ile Ala Glu Ser Val Lys Tyr
340 345 350
Ile Asn Tyr Asp Val Ile Arg Lys Val Glu Ala Pro Val His Glu Thr
355 360 365
Ala Gly Leu Arg Val Leu Lys Gly Asn Leu Ala Pro Asn Gly Cys Val
370 375 380
Val Lys Ile Gly Ala Val His Pro Lys Met Tyr Lys His Asp Gly Pro
385 390 395 400
Ala Lys Val Tyr Asn Ser Glu Asp Glu Ala Ile Ser Ala Ile Leu Gly
405 410 415
Gly Lys Ile Val Glu Gly Asp Val Ile Val Ile Arg Tyr Glu Gly Pro
420 425 430
Ser Gly Gly Pro Gly Met Gly Met Leu Ser Pro Thr Ser Ala Ile
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Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Gla Asp Ile Ile
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Lys Lys Gly Tyr Leu Ser Ser Tyr Ser Lys Leu Val Ser Ser Ala Asp
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545 550
<210> 22
<211> 1653
<212> DNA
<213> Methanococcus maripaludis
<400> 22
atgataagtg ataacgtcaa aaagggagtt ataagaactc caaaccgagc tcttttaaag 60
gcttgcggat atacagacga agacatggaa aaaccattta ttggaattgt aaacagcttt 120
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gtttatgcaa acggtggaac accatttgaa tttaatacca ttggaatttg cgacggtatt 240
gcaatgggcc acgaaggtat gaaatactct ttaccttcaa gagaaattat tgcagacgct 300
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tttgaaggtg tcggagaata ccaagttgga aaaattactg aagaagagtt aaagtgcatt 540
gaagactgtg catgttcagg tgctggaagt tgtgcagggc tttacactgc aaacagtatg 600
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gatgcccaaa aagttaggct tgctaaaaaa agtggctcaa aaattgttga tatggtaaaa 720
gaagacctaa aaccaacaga catattaaca aaagaagctt ttgaaaatgc tattttagtt 780
gaccttgcac ttggtggatc aacaaacaca acattacaca ttcctgcaat tgcaaatgaa 840
attgaaaata aattcataac tctcgatgac tttgacaggt taagcgatga agttccacac 900
attgcatcaa tcaaaccagg tggagaacac tacatgattg atttacacaa tgctggaggt 960
attcctgcgg tattgaacgt tttaaaagaa aaaattagag atacaaaaac agttgatgga 1020
agaagcattt tggaaatcgc agaatctgtt aaatacataa attacgacgt tataagaaaa 1080
gtggaagctc cggttcacga aactgctggt ttaagggttt taaagggaaa tcttgctcca 1140
aacggttgcg ttgtaaaaat cggtgcagta catccgaaaa tgtacaaaca cgatggacct 1200
gcaaaagttt acaattccga agatgaagca atttctgcga tacttggcgg aaaaattgta 1260
gaaggggacg ttatagtaat cagatacgaa ggaccatcag gaggccctgg aatgagagaa 1320
atgctctccc caacttcagc aatctgtgga atgggtcttg atgacagcgt tgcattgatt 1380
actgatggaa gattcagtgg tggaagtagg ggcccatgta tcggacacgt ttctccagaa 1440
gctgcagctg gcggagtaat tgctgcaatt gaaaacgggg atatcatcaa aatcgacatg 1500
attgaaaaag aaataaatgt tgatttagat gaatcagtca ttaaagaaag actctcaaaa 1560
ctgggagaat ttgagcctaa aatcaaaaaa ggctatttat caagatactc aaaacttgtc 1620
tcatctgctg acgaaggggc agttttaaaa taa 1653
<210> 23
<211> 558
<212> PRT
<213> Bacillus subtilis
<400> 23
Met Ala Glu Leu Arg Ser Asn Met Ile Thr Gln Gly Ile Asp Arg Ala
1 5 10 15
Pro His Arg Ser Leu Leu Arg Ala Ala Gly Val Lys Glu Glu Asp Phe
20 25 30
Gly Lys Pro Phe Ile Ala Val Cys Asn Ser Tyr Ile Asp Ile Val Pro
35 40 45
Gly His Val His Leu Gln Glu Phe Gly Lys Ile Val Lys Glu Ala Ile
50 55 60
Arg Glu Ala Gly Gly Val Pro Phe Glu Phe Asn Thr Ile Gly Val Asp
65 70 75 80
Asp Gly Ile Ala Met Gly His Ile Gly Met Arg Tyr Ser Leu Pro Ser
85 90 95
Arg Glu Ile Ile Ala Asp Ser Val Glu Thr Val Val Ser Ala His Trp
100 105 110
Phe Asp Gly Met Val Cys Ile Pro Asn Cys Asp Lys Ile Thr Pro Gly
115 120 125
Met Leu Met Ala Ala Met Arg Ile Asn Ile Pro Thr Ile Phe Val Ser
130 135 140
Gly Gly Pro Met Ala Ala Gly Arg Thr Ser Asp Gly Arg Lys Ile Ser
145 150 155 160
Leu Ser Ser Val Phe Glu Gly Val Gly Ala Tyr Gln Ala Gly Lys Ile
165 170 175
Asn Glu Asn Glu Leu Gln Glu Leu Glu Gln Phe Gly Cys Pro Thr Cys
180 185 190
Gly Ser Cys Ser Gly Met Phe Thr Ala Asn Ser Met Asn Cys Leu Ser
195 200 205
Glu Ala Leu Gly Leu Ala Leu Pro Gly Asn Gly
210 215 220
Ser Pro Glu Arg Lys Glu Phe Val Arg Lys Ser Ala Gln Leu Met
225 230 235 240
Glu Thr Ile Arg Lys Asp Ile Lys Pro Arg Asp Ile Val Thr Val Lys
245 250 255
Ala Ile Asp Asn Ala Phe Ala Leu Asp Met Ala Leu Gly Gly Ser Thr
260 265 270
Asn Thr Val Leu His Thr Leu Ala Leu Ala Asn Glu Ala Gly Val Glu
275 280 285
Tyr Ser Leu Glu Arg Ile Asn Glu Val Ala Glu Arg Val Val His Leu
290 295 300
Ala Lys Leu Ala Pro Ala Ser Asp Val Phe Ile Glu Asp Leu His Glu
305 310 315 320
Ala Gly Gly Val Ser Ala Ala Leu Asn Glu Leu Ser Lys Lys Glu Gly
325 330 335
Ala Leu His Leu Asp Ala Leu Thr Val Thr Gly Lys Thr Leu Gly Glu
340 345 350
Thr Ile Ala Gly His Glu Val Lys Asp Tyr Asp Val Ile His Pro Leu
355 360 365
Asp Gln Pro Phe Thr Glu Lys Gly Gly Leu Ala Val Leu Phe Gly Asn
370 375 380
Leu Ala Pro Asp Gly Ala Ile Lys Thr Gly Gly Val Gln Asn Gly
385 390 395 400
Ile Thr Arg His Glu Gly Pro Ala Val Val Phe Asp Ser Gln Asp Glu
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Ala Leu Asp Gly Ile Ile Asn Arg Lys Val Lys Glu Gly Asp Val Val
420 425 430
Ile Ile Arg Tyr Glu Gly Pro Lys Gly Gly Pro Gly Met Pro Glu Met
435 440 445
Leu Ala Pro Thr Ser Gln Ile Val Gly Met Gly Leu Gly Pro Lys Val
450 455 460
Ala Leu Ile Thr Asp Gly Arg Phe Ser Gly Ala Ser Arg Gly Leu Ser
465 470 475 480
Ile Gly His Val Ser Pro Glu Ala Ala Glu Gly Gly Pro Leu Ala Phe
485 490 495
Val Glu Asn Gly Asp His Ile Ile Val Asp Ile Glu Lys Arg Ile Leu
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515 520 525
Lys Gly Phe Glu Pro Lys Val Lys Thr Gly Tyr Leu Ala Arg Tyr Ser
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Lys Leu Val Thr Ser Ala Asn Thr Gly Gly Ile Met Lys Ile
545 550 555
<210> 24
<211> 1677
<212> DNA
<213> Bacillus subtilis
<400> 24
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<210> 25
<211> 547
<212> PRT
<213> Lactococcus lactis
<400> 25
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275 280 285
Gly Ala Phe Thr His His Leu Asp Glu Asn Lys Met Ile Ser Leu Asn
290 295 300
Ile Asp Glu Gly Ile Ile Phe Asn Lys Val Val Glu Asp Phe Asp Phe
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Gly Gln Tyr Ile Asp Lys Gln Tyr Glu Glu Phe Ile Pro Ser Ser Ala
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Ser Thr Ile Phe Leu Lys Ser Asn Ser Arg Phe Ile Gly Gln Pro Leu
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Gln Asn Lys
545
<210> 26
<211> 1828
<212> DNA
<213> Lactococcus lactis
<400> 26
tttaaataag tcaatatcgt tgacttattt agaagaaaga gttattcttt aaatgtcaag 60
ttagttgact aaattaaata taaaatatgg aggaatgtga tgtatacagt aggagattac 120
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<213> Lactococcus lactis
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Ile Asp Glu Gly Lys Ile Phe Asn Glu Arg Ile Gln Asn Phe Asp Phe
305 310 315 320
Glu Ser Leu Ile Ser Ser Leu Leu Asp Leu Ser Glu Ile Glu Tyr Lys
325 330 335
Gly Lys Tyr Ile Asp Lys Lys Gln Glu Asp Phe Val Pro Ser Asn Ala
340 345 350
Leu Leu Ser Gln Asp Arg Leu Trp Gln Ala Val Glu Asn Leu Thr Gln
355 360 365
Ser Asn Glu Thr Ile Val Ala Glu Gln Gly Thr Ser Phe Phe Gly Ala
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Ser Ser Ile Phe Leu Lys Ser Lys Ser His Phe Ile Gly Gln Pro Leu
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<212> DNA
<213> Lactococcus lactis
<400> 28
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ttgaccaata tataataaaa tatggaggaa tgcgatgtat acagtaggag attacctatt 180
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Ala Phe Gly Ala Ala Ala Leu Ser Leu Pro Asp Gly Ala Glu Val Val
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Leu Gln Pro Leu Trp Gly Ser Ile Gly Tyr Ser Leu Pro Ala Ala Phe
405 410 415
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420 425 430
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485 490 495
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500 505 510
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515 520 525
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545 550
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<212> DNA
<213> Salmonella typhimurium
<400> 30
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ggcttttggc aacatcactt caataaatga cagacgttgt gggcgcgcca accgttcgag 120
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atcaaaaagc cccttcccca tcagtagtgt cgcatgagcg atgggcgttt ccgccatcca 960
gcgctgcaac agtggtcgta aaccaaaacg cccggcaaga aagtcggcca atagcgcaat 1020
gcgccgactg ttcatcaggc actgacgggc gtgataacga aaggccgtct ccacgccgct 1080
ttgcgcttca tgcacgggca acgccagcgc ctgcgtaggt gggatggccg tttttttcgc 1140
cacatcggcg ggcaacatga tgtatcctgg cctgcgtgcg gcaagcattt cacccaacac 1200
gcggtcaatc tcgaaacagg cgttctgttc atctaatatt gcgctggcag cggatatcgc 1260
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cgcgtaactg cccgcgatac cgttaatagc gctaagttct cccacgccaa aggtggtgag 1440
tagcgctcca gcgcccgaca tgcgcgcata gccgtccgcg gcataagcgg cgttcagctc 1500
attggcgcat cccacccaac gcagggtcgg gtggtcaatc acatggtcaa gaaactgcaa 1560
gttataatcg cccggtacgc caaaaagatg gccaatgccg catcctgcca gtctgtccag 1620
caaatagtcg gccacggtat aggggttttg cat 1653
<210> 31
<211> 554
<212> PRT
<213> Clostridium acetobutylicum
<400> 31
Met Lys Ser Glu Tyr Thr Ile Gly Arg Tyr Leu Leu Asp Arg Leu Ser
1 5 10 15
Glu Leu Gly Ile Arg His Ile Phe Gly Val Pro Gly Asp Tyr Asn Leu
20 25 30
Ser Phe Leu Asp Tyr Ile Met Glu Tyr Lys Gly Ile Asp Trp Val Gly
35 40 45
Asn Cys Asn Glu Leu Asn Ala Gly Tyr Ala Ala Asp Gly Tyr Ala Arg
50 55 60
Ile Asn Gly Ile Gly Ala Ile Leu Thr Thr Phe Gly Val Gly Glu Leu
65 70 75 80
Ser Ala Ile Asl Ale Ile Ala Gly Ala Tyr Ala Glu
85 90 95
Val Lys Ile Thr Gly Ile Pro Thr Ala Lys Val Arg Asp Asn Gly Leu
100 105 110
Tyr Val His His Thr Leu Gly Asp Gly Arg Phe Asp His Phe Phe Glu
115 120 125
Met Phe Arg Glu Val Thr Val Ala Glu Ala Leu Leu Ser Glu Glu Asn
130 135 140
Ala Ala Gln Glu Ile Asp Arg Val Leu Ile Ser Cys Trp Arg Gln Lys
145 150 155 160
Arg Pro Val Leu Ile Asn Leu Pro Ile Asp Val Tyr Asp Lys Pro Ile
165 170 175
Asn Lys Pro Leu Lys Pro Leu Leu Asp Tyr Thr Ile Ser Ser Asn Lys
180 185 190
Glu Ala Ala Cys Glu Phe Val Thr Glu Ile Val Pro Ile Ile Asn Arg
195 200 205
Ala Lys Lys Pro Val Ile Leu Ala Asp Tyr Gly Val Tyr Arg Tyr Gln
210 215 220
Val Gln His Val Leu Lys Asn Leu Ala Glu Lys Thr Gly Phe Pro Val
225 230 235 240
Ala Thr Leu Ser Met Gly Lys Gly Val Phe Asn Glu Ala His Pro Gln
245 250 255
Phe Ile Gly Val Tyr Asn Gly Asp Val Ser Ser Pro Tyr Leu Arg Gln
260 265 270
Arg Val Asp Glu Ala Asp Cys Ile Ile Ser Val Gly Val Lys Leu Thr
275 280 285
Asp Ser Thr Thr Gly Gly Phe Ser His Gly Phe Ser Lys Arg Asn Val
290 295 300
Ile His Ile Asp Pro Phe Ser Ile Lys Ala Lys Gly Lys Lys Tyr Ala
305 310 315 320
Pro Ile Thr Met Lys Asp Ala Leu Thr Glu Leu Thr Ser Lys Ile Glu
325 330 335
His Arg Asn Phe Glu Asp Leu Asp Ile Lys Pro Tyr Lys Ser Asp Asn
340 345 350
Gln Lys Tyr Phe Ala Lys Glu Lys Pro Ile Thr Gln Lys Arg Phe Phe
355 360 365
Glu Arg Ile Ala His Phe Ile Lys Glu Lys Asp Val Leu Leu Ala Glu
370 375 380
Gln Gly Thr Cys Phe Phe Gly Ala Ser Thr Ile Gln Leu Pro Lys Asp
385 390 395 400
Ala Thr Phe Ile Gly Gln Pro Leu Trp Gly Ser Ile Gly Tyr Thr Leu
405 410 415
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420 425 430
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450 455 460
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465 470 475 480
Asn Asn Ile Gln Met Trp Arg Tyr His Asn Val Pro Lys Val Leu Gly
485 490 495
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500 505 510
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Ile Glu Val Val Met Asp Arg Tyr Asp Lys Pro Glu Pro Leu Glu Arg
530 535 540
Leu Ser Lys Arg Phe Ala Asn Gln Asn Asn
545 550
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<212> DNA
<213> Clostridium acetobutylicum
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ttgaagagtg aatacacaat tggaagatat ttgttagacc gtttatcaga gttgggtatt 60
cggcatatct ttggtgtacc tggagattac aatctatcct ttttagacta
Claims (47)
공급원료 슬러리로부터 용해되지 않은 고체 및 오일 중의 일부를 분리함으로써 발효가능한 탄소원을 포함하는 수용액, 고체를 포함하는 습윤 케이크, 및 오일 스트림을 형성시키는 단계; 및
수용액을, 미생물을 포함하는 발효 브로쓰에 가함으로써 발효 생성물을 생성시키는 단계를 포함하는, 발효 생성물의 제조 방법.Providing a feedstock slurry comprising a fermentable carbon source, an undissolved solid, and an oil;
Forming an aqueous solution comprising a fermentable carbon source, a wet cake comprising a solid, and an oil stream by separating the undissolved solids and a portion of the oil from the feedstock slurry; And
Adding an aqueous solution to a fermentation broth comprising a microorganism to produce a fermentation product.
b) 공급원료 슬러리로부터 용해되지 않은 고체 중의 적어도 일부를 분리함으로써 발효가능한 탄소원을 포함하는 수용액과 고체를 포함하는 습윤 케이크를 생성시키는 단계;
c) 습윤 케이크를 액체와 접촉시켜 습윤 케이크 혼합물을 형성시키는 단계; 및
d) 습윤 케이크 혼합물로부터 용해되지 않은 고체 중의 적어도 일부를 분리함으로써 발효가능한 탄소원을 포함하는 제2의 수용액과 고체를 포함하는 제2의 습윤 케이크를 생성시키는 단계를 포함하는 방법.a) providing a feedstock slurry comprising a fermentable carbon source and an undissolved solid;
b) producing a wet cake comprising a solid and an aqueous solution comprising a fermentable carbon source by separating at least a portion of the undissolved solids from the feedstock slurry;
c) contacting the wet cake with a liquid to form a wet cake mixture; And
d) separating at least a portion of the undissolved solids from the wet cake mixture to produce a second wet cake comprising a second aqueous solution comprising a fermentable carbon source and a solid.
공급원료 슬러리로부터 상기 오일 및 용해되지 않은 고체 중의 적어도 일부를 분리함으로써 발효가능한 탄소원을 포함하는 수용액, 오일 스트림, 및 고체를 포함하는 습윤 케이크를 생성시키는 단계; 및
c) 습윤 케이크를 액체와 접촉시켜 습윤 케이크 혼합물을 형성시키는 단계; 및
d) 습윤 케이크 혼합물로부터 용해되지 않은 고체 및 오일 중의 적어도 일부를 분리함으로써 발효가능한 탄소원을 포함하는 제2의 수용액, 제2의 오일 스트림, 및 고체를 포함하는 제2의 습윤 케이크를 생성시키는 단계를 포함하는 방법.Providing a feedstock slurry comprising a fermentable carbon source, an undissolved solid, and an oil;
Producing a wet cake comprising an aqueous solution, an oil stream, and a solid comprising a fermentable carbon source by separating at least a portion of said oil and undissolved solids from a feedstock slurry; And
c) contacting the wet cake with a liquid to form a wet cake mixture; And
d) producing a second wet cake comprising a second aqueous solution comprising a fermentable carbon source, a second oil stream, and a solid by separating at least a portion of the undissolved solids and the oil from the wet cake mixture, Methods of inclusion.
공급원료 슬러리를 분리함으로써 (i) 발효가능한 탄소원을 포함하는 제1의 수용액, (ii) 고체를 포함하는 제1의 습윤 케이크, 및 (iii) 오일을 포함하는 스트림, 고체, 및 발효가능한 탄소원을 포함하는 수성 스트림을 형성시키는 단계; 및
제1의 수용액을, 미생물을 포함하는 발효 브로쓰에 가함으로써 발효 생성물을 생성시키는 단계를 포함하는 방법.Providing a feedstock slurry comprising a fermentable carbon source, an undissolved solid, and an oil;
By separating the feedstock slurry, a stream, solid, and fermentable carbon source comprising (i) a first aqueous solution comprising a fermentable carbon source, (ii) a first wet cake comprising a solid, and (iii) To form an aqueous stream; And
Adding a first aqueous solution to a fermentation broth comprising a microorganism to produce a fermentation product.
오일을 포함하는 스트림, 고체, 및 발효가능한 탄소원을 포함하는 수성 스트림을 분리함으로써 (i) 발효가능한 탄소원을 포함하는 제2의 수용액, (ii) 고체를 포함하는 제2의 습윤 케이크, 및 (iii) 오일 스트림을 형성시키는 단계를 추가로 포함하는 방법.29. The method of claim 28,
(I) a second aqueous solution comprising a fermentable carbon source, (ii) a second wet cake comprising a solid, and (iii) a second wet cake comprising a solid, ) ≪ / RTI > oil stream.
공급원료 슬러리를 분리함으로써 (i) 발효가능한 탄소원 및 고체를 포함하는 제1의 수용액, (ii) 고체를 포함하는 제1의 습윤 케이크, 및 (iii) 제1의 오일 스트림을 형성시키는 단계; 및
제1의 수용액에 오일을 가함으로써 고체를 포함하는 오일 층과 발효가능한 탄소원을 포함하는 제2의 수용액을 형성시키는 단계를 포함하는 방법.Providing a feedstock slurry comprising a fermentable carbon source, an undissolved solid, and an oil;
Separating the feedstock slurry to form a first aqueous stream comprising (i) a first aqueous solution comprising a fermentable carbon source and a solid, (ii) a first wet cake comprising a solid, and (iii) a first oil stream; And
Adding oil to the first aqueous solution to form a second aqueous solution comprising an oil layer comprising solids and a fermentable carbon source.
상기 공급원료를 수용하기 위한 입구; 및
공급원료 슬러리를 배출하기 위한 출구를 포함하며, 공급원료 슬러리는 발효가능한 탄소원, 오일, 및 용해되지 않은 고체를 포함하는 액화 유닛; 및
공급원료 슬러리로부터 오일과 용해되지 않은 고체를 제거하여 발효가능한 탄소원을 포함하는 수용액, 오일 스트림, 및 용해되지 않은 고체 중의 일부를 포함하는 습윤 케이크를 생성하도록 구성된 하나 이상의 분리 유닛으로서, 상기 원심분리기가
공급원료 슬러리를 수용하기 위한 입구;
수용액을 배출하기 위한 제1의 출구;
습윤 케이크를 배출하기 위한 제2의 출구; 및
오일을 배출하기 위한 제3의 출구를 포함하는 원심분리기를 포함하는 시스템.At least one liquefaction unit configured to liquefy the feedstock to produce a feedstock slurry, the liquefaction unit comprising:
An inlet for receiving said feedstock; And
An outlet for discharging the feedstock slurry, wherein the feedstock slurry comprises a liquefying unit comprising a fermentable carbon source, oil, and undissolved solids; And
At least one separation unit configured to remove the oil and undissolved solids from the feedstock slurry to produce a wet cake comprising an aqueous solution comprising a fermentable carbon source, an oil stream, and a portion of the undissolved solids, wherein the centrifuge
An inlet for receiving a feedstock slurry;
A first outlet for discharging the aqueous solution;
A second outlet for discharging the wet cake; And
And a third outlet for discharging the oil.
하나 이상의 혼합 유닛; 및
하나 이상의 분리 유닛을 포함하는, 습윤 케이크로부터 발효가능한 탄소원을 회수하도록 구성된 하나 이상의 세척 시스템을 추가로 포함하는 시스템.43. The method of claim 42,
At least one mixing unit; And
Further comprising at least one separation unit, wherein the system further comprises at least one cleaning system configured to recover a fermentable carbon source from the wet cake.
수용액 및/또는 습윤 케이크를 수용하기 위한 입구; 및
생성물 알코올을 포함하는 발효 브로쓰를 배출하기 위한 출구를 포함하는 시스템.44. The method of claim 43 further comprising at least one fermenter configured to ferment an aqueous solution to produce product alcohol,
An inlet for receiving an aqueous solution and / or a wet cake; And
And an outlet for discharging the fermentation broth comprising the product alcohol.
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