JPH0249720B2 - - Google Patents
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Description
本発明は、NAD依存性コレステロール脱水素
酵素(Cholesterol dehydrogenase:以下
「NAD―CDH」と略す)に関する。さらに詳し
く説明すると、微生物を好気的条件で培養し、そ
の菌体もしくは培養液から製造したNAD―CDH
を使用するコレステロールの定量法およびNAD
―CDHを含有するコレステロールの定量用試薬
に関する。ここでいうNAD―CDHとは、補酵素
としてNAD(ニコチンアミドアデニン、ジヌクレ
オチド)を要求し、電子供与体(コレステロー
ル)から水素をうばい、電子受容体(NAD)に
付加する反応を触媒する酵素をいう。
従来好気性微生物が、コレステロールオキシダ
ーゼ、コレステロールデヒドラターゼを生産する
ことは既に知られている。またノカルジア・エリ
スロポリスがコレステロールの酸化を触媒する酵
素を生産すると報告(Ann.Clin.Biochem.,10
巻、79頁、1973年)がある。この酵素の場合は、
NADへの依存性は認められない。また、マイコ
バクテリウム・コレステリカム(J.Biol.Chem.,
206巻、511頁、1953年)、ブレビバクテリウム・
ステロリカム(特公昭48―1190)についても同様
のことがいえる。さらには、絶対嫌気性微生物で
ある、オイバクテリウムsp.ATCC21408がNAD
―CDHを生産するとの報告(特開昭53―56090)
もあるが、酵素学的性質等の記載はほとんどなさ
れていないばかりか、NAD依存性の記載がある
にもかかわらず、NADの存在なしにも反応が進
行する例が記載されている。したがつてこの酵素
は、本発明でいうところのNAD依存性脱水素酵
素とはいえない。
従来酵素によるコレステロールの定量は、コレ
ステロールオキシダーゼを使用する方法が広く用
いられているが、発色系に導くためにパーオキシ
ダーゼ等が必要であり、操作が繁雑である。しか
も血中のビリルビン、アスコルビン酸等により影
響をうけ、これにより誤差が生じやすいという欠
点を有している。コレステロールの定量におい
て、NADの存在なしには反応が進行しないNAD
―CDHを用い、下記反応式に示される反応によ
り生ずるNADHを直接光度計で測定できれば、
操作が簡単であり、前記のコレステロールオキシ
ダーゼを用いる方法の種々の問題も解決される。
コレステロール+NADコレステノン+
NADH
本発明者等は、上記反応に適した酵素すなわ
ち、コレステロールに特異性が高く、NAD依存
性である脱水素酵素を広く自然界に求めたとこ
ろ、意外にも好気的条件下に生育する微生物が、
著量のNAD―CDHを生産することを見い出し
た。その中で、特に優れた菌株として、ノカルジ
アsp.No. Ch2―1(Nocardia sp.No. Ch2―1)、
アルカリゲネスsp.No.4(Alcaligenes sp.No.4)お
よびプロテウス・ブルガリスIAM1025(Proteus
vulgarig IAM1025)が例示される。
次にノカルジアsp.No. Ch2―1およびアルカリ
ゲネスspNo.4の菌学的性質を以下に述べる。
(1) ノカルジアspNo. Ch2―1
(Nocardia sp.No.Ch2―1)の菌学的性質
(A) 形態的性質
1) 細胞の形および大きさ:培養初期菌糸
状に生育し分岐を生じる。その後、不規則
な分断が生じ細胞は、桿菌状となる。大き
さは0.8〜1.0μ×1.5〜4.0μ位である。
気菌糸を形成せず胞子のうち胞子も形成
しない。
2) グラム染色性:陽性
3) 抗酸性:陽性
4) 運動性:無し
(B) 化学的組成分析
細胞壁中にmeso―ジアミノピメリン酸、
アラビノース、ガラクトースが含まれL.L―
ジアミノピメリン酸、グリシンは含まない。
(C) 各培地における生育状態
1) 肉汁寒天平板培地:30℃で4日培養
後、直径0.5〜1.0mmの円形コロニーを形成
する。周辺は全縁もしくは、波状である。
表面は平滑で半球状であり、中心部が凸状
に隆起する場合もある。色調は薄いクリー
ム色で不透明である。培地中に色素は出さ
ない。
2) シユークロース硝酸塩寒天培地
生育中程度で集落の色は白色ないし薄ク
リーム色である。水溶性色素は出さない。
3) グルコース・アスパラギン寒天培地
生育中程度で集落の色はクリーム色であ
る。水溶性色素は出さない。
4) グリセリン・アスパラギン寒天培地
生育中程度で集落の色は白色ないし薄ク
リーム色である。水溶性色素は出さない。
5) スターチ無機塩寒天培地
生育中程度で集落の色は白色ないし薄ク
リーム色である。水溶性色素は出さない。
6) チロシン寒天培地
生育中程度で集落の色は白色ないし薄ク
リーム色である。水溶性色素は出さない。
7) 栄養寒天培地
生育良好で集落の色はクリーム色であ
る。水溶性色素は出さない。
8) イースト麦芽寒天培地
生育良好で集落の色はクリーム色であ
る。水溶性色素は出さない。
9) オートミール寒天培地
生育中程度で集落の色は白色ないし薄ク
リーム色である。水溶性色素は出さない。
(D) 生理的象質
1) 生育温度:15℃〜〜43℃で生育する。
10℃、45℃で生育しない。最適温度は30〜
35℃である。
2) 硝酸塩還元性:陽性
3) カタラーゼ:陽性
4) オキシダーゼ:陰性
5) ウレアーゼ:陽性
6) デンプン加水分解:陰性
7) ゼラチン液化:陰性
8) チロシン加水分解:陰性
9) カゼイン加水分解:陰性
10) キサンチン加水分解:陰性
11) DNAの分解:陰性
12) リトマスミルク:アルカリ性、ペプト
ン化、凝固共にしない。
13) メラニン様色素の生成:無し
14) エスクリン加水分解:陽性
15) Tween20.40.60.80加水分解:すべての
陽性
16) ペニシリン耐性試験:耐性
17) 酸素に対する態度:好気性
18) 無機窒素源の利用:アンモニウム塩、
硝酸塩共に利用する。
19) NaCl生育範囲:0〜6%で生育する。
7%で生育しない。
20) 各種炭素源の同化性(プリドハム、ゴ
ドリーブ寒天培地)
D―グルコース、D―フラクトース、マ
ンノース、グリセリン、トレハロースを同
化する。L―アラビノース、D―キシロー
ス、サツカロース、イノシツト、L―ラム
ノース、ラフイノース、D―ガラクトー
ス、D―マンニツト、マルトース、ソルビ
ツトを同化しない。
21) 各種糖から酸の生成
D―グルコース、マンノース、D―フラ
クトース、トレハロース、グリセリンから
酸を生成する。L―アラビノース、D―キ
シロース、D―ガラクトース、マルトー
ス、サツカロース、ラクトース、D―ソル
ビツト、D―マンニツト、イノシツト、デ
ンプンから酸を生成しない。
以上の菌学的性質をBergey's Manual of
Determinative Bacteriology第8版を参考に
検討した結果、細胞壁中にmeso―ジアミノピ
メリン酸、アラビノース、ガラクトースを含
み、L,L―ジアミノピメリン酸、グリシンが
含まれないこと、好気性で菌糸状によく生育
し、後に分断して桿菌状となること、抗酸性で
あること、胞子のう胞子および気菌糸を着生し
ないこと等から本菌はNocardiaに属する菌で
ある。
よつて本菌は、本発明者らがノカルジアsp.
(Nocardia sp.)No. Ch2―1と命名し、工業
技術院微生物工業技術研究所に菌寄第6217号
(FERM―P No.6217)として寄託されてい
る。
(2) アルカリゲネスsp・No.4
Alcaligenes sp.No.4の菌学的性質
(A) 形 態
1) 細胞の形および大きさ:0.4〜0.6μ×
0.8〜1.2μの桿菌である。
2) 細胞の多形性の有無:多形性は認めら
れない。
3) 運動性の有無:周鞭毛を有し運動す
る。
4) 胞子の有無:胞子は形成しない。
5) グラム染色性:陰性
6) 抗酸性:陰性
(B) 各培地における生育状態
1) 肉汁寒天平板培養
円形コロニーで表面は平滑、半レンズ状
の隆起、全縁状で薄クリーム色、半透明、
光沢あり
2) 肉汁寒天斜面培養
生育中程度、糸状に生育、薄クリーム色
で半透明
3) 肉汁液体培養
菌膜をつくらない、やや濁り沈渣も少し
ある。
4) 肉汁ゼラチン穿刺培養:ゼラチンは液
化しない。
5) リトマスミルク培養:アルカリ性にな
るがペプトン化しない、凝固しない。
(C) 生理的性質
1) 硝酸塩の還元:陽性
2) 脱窒反応:陰性
3) MRテスト:陰性
4) VPテスト:陰性
5) インドールの生成:陰性
6) 硫化水素の生成:弱陽性
7) デンプン加水分解:陰性
8) クエン酸塩の利用:Koserの培地と
Christensenの培地で共に利用する。
9) 無機窒素源の利用:硝酸塩およびアン
モウム塩を利用する。
10) 色素の生成:水溶性色素を生成しな
い。
11) ウレアーゼ:陰性、弱陽性
12) オキシダーゼ:陽性
13) カタラーゼ:陽性
14) 生育範囲PH:PH5.0〜10.0で生育する。
温度:5℃〜37℃で生育する。
42℃で生育しない。
15) 酸素に対する態度:好気性
16 OFテスト(Hugh―Leifson法):フラク
トースから好気的に酸を生成する。
17) 糖類から酸およびガスの生成の有無
Ayers,Rupp and Johnsonの培地でフラ
クトースとグリセリンから酸を生成するが
ガスは生成しない。
アラビノース、キシロース、グルコー
ス、マンノース、ガラクトース、麦芽糖、
シヨ糖、乳糖、トレハロース、ソルビツ
ト、マンニツト、イノシツト、デンプンか
らは酸もガスも生成しない。
18) 独立栄養的生育:水素ガス、炭酸ガ
ス、酸素ガスを含有する気体中で生育しな
い。
19) Tween80の分解性:陽性
20) 資化性:D―フラクトース、L―フエ
ニルアラン、レブリン酸カルシウム、L―
スレオンを資化する。マンノース、マルト
ース、マンニツト、ベタインを資化しな
い。
以上の菌学的諸性質からBergey's manual of
Determinative Bacteriology(第8版)の記載に
照合して検討すると短桿菌で周ベン毛により運動
すること、グラム陰性、好気性であること、栄養
要求性はなく、アンモニウム塩、硝酸塩を利用す
ること、カゼインおよびゼラチンを分解しないこ
と、オキシダーゼ陽性であること等から
Alcaligenes属に分類される。
種については、文献を参考に検討したと
ころAlcaligenes eutrophus.A.paradoxus、A.
ruhlandiiおよびA.latusとは主に独立栄養的生育
の点で異なる。またA.faecalisとは主に42℃にお
ける生育、D―フラクトースの資化性の点で、
A.aquamarinusとは主にデンプンの分解性、マ
ルトースの資化性の点で、A.pacifriusとは主に
スレオニン、ベタインの資化性の点で、A.
cupidusとは主にオキシダーゼおよびマンニツト、
マンノースの資化性の点で、A.venustusとは主
にレブリン酸塩、スレオニン、ベタインの資化性
の点で、A.aestusとは主にマンツト、スレオニ
ン、フエルアラニンの資化性の点でそれぞれ異な
る。
よつて本菌は本発明者がアルカリゲネスsp.
(Alcaligenes sp.)No.4と命名し、工業技術院微
生物工業技術研究所に菌寄第6216号(FERM―
P No.6216)として寄託されている。
Bergey's manual of Determinative
Bacteriology(第8版)
J.Bact.110(1)402―429(1972)
坂崎和一訳:医学細菌同定の手びき(2版)
近代出版、東京、1974
次にこれらの菌を用いてNAD―CDHの製造す
る方法について詳述する。これらの菌はいづれも
構成的にNAD―CDHを生産する能力を有し、通
常のペプトン、酵母エキス又は硫酸アンモウム等
のチツソ源及びグルコース、グリセロール等の炭
素源、その他無機塩等を含有する培地でもNAD
―CDHを生産するが、コレステロールを培地に
添加することによりさらに多量にNAD―CDHを
生産する。この際コレステロールの添加は、培養
開始時あるいは途中からのいずれでもよい。また
その他培養条件に関しては、通常行なわれる範囲
で実施できる。これらの菌により生産された
NAD―CDHは、菌体のみならず、培養液中にも
蓄積され、その何れからでも酵素を回収すること
ができる。これらの培養濾液又は菌体抽出液を硫
酸アンモウム等による塩折又は、アセトン、エタ
ノール等の溶剤沈澱して得た粗酵素は、そのまま
コレステロールの定量に使用するか、あるいは更
に精製して使用することもできる。例えば精製に
ついては、イオン交換クロマトグラフイー、分子
節クロマトグラフイー等公知の方法により可能で
ある。
ここで得られるNAD―CDHは、コレステロー
ル含有物質中のコレステロールの定量に使用で
き、例えば、血液、血中のコレステロール定量等
に有利に使用できる。
本発明に使用するNAD―CDHの活性測定法を
以下に示す。
NAD―CDHの酵素活性は、コレステロールと
NADを基質として反応した合のNADHの生成量
を、340nmにおける吸光度の増加として、分光光
度計で測定し算出する。すなわち、0.1Mトリ
ス・塩酸緩衝液(PH8.6)2.65ml、28mMNAD溶
液0.1ml、(8%トリトンX―100溶液0.15ml)、1
%コレステロール溶液0.05ml及びNAD―CDH水
溶液0.05mlを混合し、30℃で反応させ、反応開始
後1分間の340mmにおける吸光度の増加を測定す
る。
対照として上記組成でコレステロールの代りに
水を用い同様の操作を行ない、対照液の340mmに
おける吸光度の増加を試験液のそれから差し引
く。得られた値からNADHの生成量を求め、こ
れより試料中のNAD―CDH活性を算出する。
酵素活性の表示は、PH8.6、30℃の条件下で1
分間に1μmoleのNADH生成する酵素を1単位と
した。
次に本発明に使用するNAD―CDHの作用を示
す。
コレステロール+NADコレステノン+
NADH
本発明におけるNAD―CDHは全てこの反応を
触媒する。
以下に本発明に使用するNAD―CDHの一般的
性質をノカルジアsp.No. Ch2―1(Nocardia sp.
No.Ch2―1)及びアルカリゲネsp.No.4
(Alcaligenes sp.No.4)の生産するものについて
示す。
(1) ノカルジアsp.No. Ch2―1.No.
Nocardia sp.No. Ch2―1の生産するNAD
―CDH
1) 至適PH:9.0付近(第1図に示される。)
2) PH安定性:37℃,15分の条件おいてPH6
〜7で安定である。
(第2図に示される。)
3) 至適温度:25〜35℃(第3図に示され
る。)
4) 熱安定性:PH7.0、15分の条件において
35℃以下で安定である。
(第4図に示される。)
5) 基質特異性
本酵素は、3β位に水酸基をもつステロイ
ドに反応し、コレステロールを100とすると
ステツグマステロール35、β―シトステロー
ル25、その他デヒドロエピアン、ドロステロ
ン、エルゴステロール等にわずかに作用す
る。
6) 補酵素
NADを要求する。
(2) アルカリゲネスsp.No.4(Alcaligenes sp.No.
4)の生産するNAD―CDH
1) 至適PH:8.5付近(第5図に示される。)
2) PH安定性:37℃,15分の条件においてPH
6〜7で安定である。
(第6図に示される。)
3) 至適温度:25〜35℃(第7図に示され
る。)
4) 熱安定性:PH7.0、15分の条件で0℃ま
で安定である。
(第8図に示される。)
5 基質特異性
水酵素は3β位に水酸性をもつステロイド
に反応し、コレステロールを100とするとβ
―シトステロール36、ステグマステロール
20、その他デヒドロエピアンドロステロン、
エルゴステロール等にわずかに作用する。
6 補酵素
NADを要求する。
次に本発明のNAD―CDHを使用したコレステ
ロールの定量について詳述する。
コレステロールを定量する場合、実際には緩衝
液、NAD、基質(血清、コレステロール等)及
びNAD―CDHを混合し、一定時間反応し、生成
するNADHの増加を吸光度340nmで測定する。
また必要に応じて、生成したNADHの水素をフ
エナジンメソサルフエート(PMS)、ジアフオラ
ーゼ等により、ホルマザン色素等の発色系に導く
ことも可能である。さらには、反応系にコレステ
ロールエステラーゼ、界面活性剤、及び安定化剤
等の添加も可能である。反応時のPHは6〜10の範
囲で実施できるが、優れているPH範囲は7〜9で
ある。
次にNAD―CDHによるコレステロール定量用
試薬の量的組成についての1例を述べれば、反応
系3ml当り、NAD―CDH0.1〜10単位、NAD10
〜100mM(トリトンX−100 1.0%以下)、コレス
テロールエステラーゼ(ベーリンガー社製)0.1
〜10単位が有利である。しかし本発明はこれらの
量的組成に限定されるものではない。本発明の測
定法における特別な利点は、生成するNADHを
直接測定できることであり、また完全に定量でき
ることである。
次に試験例及び実施例につき述べる。
試験例 1
本発明における菌株3種につき、コレステロー
ル5g/、エキス5g/、酵母エキス0.2
g/、少量の消泡剤の組成よりなる培地(PH
7.2)100mlを入れた500ml容坂ロフラスコに植菌
し、30℃で40時間振蘯培養した。培養液5mlを遠
心分離(8000rpm10分間)により集菌し、0.1M
リン酸緩衝液PH7.0、50mlで洗浄した。
次に同じ緩衝液50mlに菌株を懸濁し、超音波に
て菌体を破砕した。この破砕液を遠心分離
(10000rpm10分間)し、清澄液を得た。得られた
清澄液のNAD―CDH活性を測定し次の結果を得
た。
The present invention relates to NAD-dependent cholesterol dehydrogenase (hereinafter abbreviated as "NAD-CDH"). To explain in more detail, NAD-CDH produced from microbial cells or culture fluid by culturing microorganisms under aerobic conditions.
Cholesterol quantification method and NAD using
-Regarding a reagent for quantifying cholesterol containing CDH. NAD-CDH here refers to an enzyme that requires NAD (nicotinamide adenine, dinucleotide) as a coenzyme, steals hydrogen from an electron donor (cholesterol), and catalyzes a reaction that adds it to an electron acceptor (NAD). means. It is already known that aerobic microorganisms produce cholesterol oxidase and cholesterol dehydratase. It has also been reported that Nocardia erythropolis produces an enzyme that catalyzes the oxidation of cholesterol (Ann.Clin.Biochem., 10
Vol. 79, 1973). For this enzyme,
No dependence on NAD was observed. Also, Mycobacterium cholestericum (J.Biol.Chem.,
206, p. 511, 1953), Brevibacterium
The same can be said about Sterolicum (Special Publication 1190-1190). Furthermore, Oibacterium sp. ATCC21408, an obligate anaerobic microorganism, has NAD.
-Report that CDH will be produced (Japanese Patent Application Laid-Open No. 53-56090)
However, not only are there almost no descriptions of enzymatic properties, etc., and even though there is a description of NAD dependence, there are cases where the reaction proceeds even in the absence of NAD. Therefore, this enzyme cannot be said to be an NAD-dependent dehydrogenase as defined in the present invention. Conventionally, a method using cholesterol oxidase has been widely used for quantifying cholesterol using enzymes, but it requires peroxidase or the like to introduce it into a coloring system, and the operation is complicated. Moreover, it has the disadvantage that it is influenced by bilirubin, ascorbic acid, etc. in the blood, which tends to cause errors. In the determination of cholesterol, the reaction does not proceed without the presence of NAD.
-If NADH produced by the reaction shown in the reaction formula below can be directly measured with a photometer using CDH,
It is simple to operate and also solves various problems of the above-mentioned method using cholesterol oxidase. Cholesterol + NAD cholestenone +
NADH The present inventors searched widely in nature for an enzyme suitable for the above reaction, that is, a dehydrogenase that is highly specific for cholesterol and is NAD-dependent. but,
It was found that it produced a significant amount of NAD-CDH. Among them, particularly excellent strains include Nocardia sp.No. Ch2-1 (Nocardia sp.No. Ch2-1),
Alcaligenes sp. No. 4 and Proteus vulgaris IAM1025
vulgarig IAM1025) is exemplified. Next, the mycological properties of Nocardia sp. No. Ch2-1 and Alcaligenes sp. No. 4 will be described below. (1) Mycological properties of Nocardia sp. No. Ch2-1 (A) Morphological properties 1) Cell shape and size: At the initial stage of culture, it grows in a hyphal form and branches. Thereafter, irregular division occurs and the cells become rod-shaped. The size is about 0.8-1.0μ x 1.5-4.0μ. It does not form aerial hyphae and does not form spores. 2) Gram staining: Positive 3) Acid-fastness: Positive 4) Motility: None (B) Chemical composition analysis Meso-diaminopimelic acid, meso-diaminopimelic acid, in the cell wall
Contains arabinose and galactose LL-
Contains no diaminopimelic acid or glycine. (C) Growth status in each medium 1) Broth agar plate medium: After culturing at 30°C for 4 days, circular colonies with a diameter of 0.5 to 1.0 mm are formed. The periphery is either complete or wavy.
The surface is smooth and hemispherical, and the center may be convex. The color is pale cream and opaque. No dye is released into the medium. 2) Seuucrose nitrate agar medium Growth is medium and the color of the colonies is white to pale cream. Does not release water-soluble dyes. 3) Glucose-asparagine agar medium Growth is medium and the color of the colonies is cream-colored. Does not release water-soluble dyes. 4) Glycerin/asparagine agar medium Growth is medium and the color of the colonies is white to light cream. Does not release water-soluble dyes. 5) Starch inorganic salt agar medium Growth is medium and the color of the colonies is white to light cream color. Does not release water-soluble dyes. 6) Tyrosine agar medium Growth is medium and the color of the colonies is white to light cream. Does not release water-soluble dyes. 7) Nutrient agar medium Growth is good and the colony is cream colored. Does not release water-soluble dyes. 8) Yeast malt agar medium Growth is good and the color of the colonies is cream-colored. Does not release water-soluble dyes. 9) Oatmeal agar medium Growth is medium and the colony color is white to light cream color. Does not release water-soluble dyes. (D) Physiological properties 1) Growth temperature: Grows at 15°C to 43°C.
Does not grow at 10℃ or 45℃. Optimum temperature is 30~
It is 35℃. 2) Nitrate reducing ability: Positive 3) Catalase: Positive 4) Oxidase: Negative 5) Urease: Positive 6) Starch hydrolysis: Negative 7) Gelatin liquefaction: Negative 8) Tyrosine hydrolysis: Negative 9) Casein hydrolysis: Negative 10 ) Xanthine hydrolysis: Negative 11) DNA degradation: Negative 12) Litmus milk: No alkalinity, no peptonization, no coagulation. 13) Melanin-like pigment formation: none 14) Aesculin hydrolysis: positive 15) Tween20.40.60.80 hydrolysis: all positive 16) Penicillin resistance test: resistant 17) Attitude towards oxygen: aerobic 18) Inorganic nitrogen source Use: ammonium salt,
Use with nitrate. 19) NaCl growth range: Grows in 0-6%.
Will not grow at 7%. 20) Assimilation of various carbon sources (Pridham, Godelive agar) Assimilates D-glucose, D-fructose, mannose, glycerin, and trehalose. Does not assimilate L-arabinose, D-xylose, sutucarose, inosycetate, L-rhamnose, raffinose, D-galactose, D-mannite, maltose, and sorbitol. 21) Production of acids from various sugars Acid is produced from D-glucose, mannose, D-fructose, trehalose, and glycerin. Does not produce acid from L-arabinose, D-xylose, D-galactose, maltose, sutucarose, lactose, D-sorbitol, D-mannite, inosyte, or starch. The above mycological properties are summarized in Bergey's Manual of
As a result of examining Determinative Bacteriology 8th edition as a reference, it was found that the cell wall contains meso-diaminopimelic acid, arabinose, and galactose, but does not contain L,L-diaminopimelic acid and glycine, and that it grows well in an aerobic mycelium-like manner. This bacterium belongs to Nocardia because it later divides into rod-like forms, is acid-resistant, and does not attach sporangia or aerial hyphae. Therefore, the present inventors discovered that Nocardia sp.
(Nocardia sp.) No. Ch2-1 and has been deposited with the Institute of Microbial Technology, Agency of Industrial Science and Technology as FERM-P No. 6217. (2) Alcaligenes sp. No.4 Mycological properties of Alcaligenes sp. No.4 (A) Morphology 1) Cell shape and size: 0.4-0.6μ×
It is a bacillus with a size of 0.8 to 1.2μ. 2) Presence or absence of cell pleomorphism: No pleomorphism was observed. 3) Motility: Has periflagella and is motile. 4) Presence or absence of spores: Spores are not formed. 5) Gram staining: Negative 6) Acid-fastness: Negative (B) Growth status in each medium 1) Broth agar plate culture Round colonies with smooth surface, semi-lens-shaped ridges, entire rim, light cream color, and translucent ,
Glossy 2) Meat juice agar slant culture Medium growth, filamentous growth, pale cream color and translucent 3) Meat juice liquid culture No bacterial film, slightly cloudy with some sediment. 4) Meat juice gelatin puncture culture: Gelatin does not liquefy. 5) Litmus milk culture: Becomes alkaline but does not become peptonized or coagulate. (C) Physiological properties 1) Nitrate reduction: Positive 2) Denitrification reaction: Negative 3) MR test: Negative 4) VP test: Negative 5) Indole production: Negative 6) Hydrogen sulfide production: Weakly positive 7) Starch hydrolysis: Negative 8) Utilization of citrate: Koser's medium and
Use together with Christensen's medium. 9) Use of inorganic nitrogen sources: Use nitrates and ammonium salts. 10) Pigment generation: Does not produce water-soluble pigments. 11) Urease: Negative, weakly positive 12) Oxidase: Positive 13) Catalase: Positive 14) Growth range PH: Grows at PH5.0 to 10.0. Temperature: Grows between 5°C and 37°C. Does not grow at 42℃. 15) Attitude towards oxygen: Aerobic 16 OF test (Hugh-Leifson method): Generates acid aerobically from fructose. 17) Presence or absence of acid and gas generation from sugars
Ayers, Rupp and Johnson's medium produces acid from fructose and glycerin, but no gas. arabinose, xylose, glucose, mannose, galactose, maltose,
Sucrose, lactose, trehalose, sorbitol, mannitrate, inosyte, and starch do not produce acids or gases. 18) Autotrophic growth: Does not grow in gases containing hydrogen gas, carbon dioxide gas, or oxygen gas. 19) Degradability of Tween80: Positive 20) Assimilation ability: D-fructose, L-phenylalan, calcium levulinate, L-
Capitalize on Threon. Does not assimilate mannose, maltose, mannite, and betaine. Based on the above mycological properties, Bergey's manual of
According to the description in Determinative Bacteriology (8th edition), it is a short bacillus, moves by peribacterial setae, is gram negative, is aerobic, has no auxotrophy, and uses ammonium salts and nitrates. Because it does not degrade casein and gelatin and is oxidase positive, etc.
It is classified in the genus Alcaligenes. Regarding the species, I consulted the literature and found Alcaligenes eutrophus.A.paradoxus, A.
ruhlandii and A.latus mainly in autotrophic growth. In addition, A.faecalis is different from A.faecalis mainly in terms of growth at 42℃ and ability to assimilate D-fructose.
A. aquamarinus differs from A. pacifrius mainly in its ability to decompose starch and assimilate maltose, and A. pacifrius mainly in terms of its ability to assimilate threonine and betaine.
cupidus mainly contains oxidase and mannitase,
In terms of assimilation of mannose, A. venustus differs mainly in terms of assimilation of levulinate, threonine, and betaine, and A. aestus differs mainly in assimilation of mannose, threonine, and feralanine. Each one is different. Therefore, the present inventor identified this bacterium as Alcaligenes sp.
(Alcaligenes sp.) No. 4, and was submitted to the Institute of Microbial Technology, Agency of Industrial Science and Technology as Bacteria Collection No. 6216 (FERM-).
P No. 6216). Bergey's manual of Determinative
Bacteriology (8th edition) J.Bact.110(1)402-429 (1972) Translated by Kazuichi Sakazaki: Handbook of medical bacterial identification (2nd edition)
Kindai Publishing, Tokyo, 1974 Next, the method for producing NAD-CDH using these bacteria will be described in detail. All of these bacteria have the ability to constitutively produce NAD-CDH, and can be used in a medium containing ordinary sources such as peptone, yeast extract, or ammonium sulfate, carbon sources such as glucose and glycerol, and other inorganic salts. But N.A.D.
-It produces CDH, but by adding cholesterol to the medium it produces even more NAD-CDH. At this time, cholesterol may be added either at the start of the culture or during the culture. In addition, other culture conditions can be carried out within the usual range. produced by these bacteria
NAD-CDH is accumulated not only in bacterial cells but also in the culture solution, and the enzyme can be recovered from either of them. The crude enzyme obtained by salting the culture filtrate or bacterial cell extract with ammonium sulfate or by precipitation with a solvent such as acetone or ethanol can be used as is for the determination of cholesterol, or it can be further purified before use. You can also do it. For example, purification can be carried out by known methods such as ion exchange chromatography and molecular node chromatography. The NAD-CDH obtained here can be used to quantify cholesterol in cholesterol-containing substances, and can be advantageously used, for example, to quantify cholesterol in blood and blood. The method for measuring the activity of NAD-CDH used in the present invention is shown below. The enzymatic activity of NAD-CDH is related to cholesterol and
The amount of NADH produced when reacting with NAD as a substrate is measured and calculated as an increase in absorbance at 340 nm using a spectrophotometer. That is, 2.65 ml of 0.1M Tris-HCl buffer (PH8.6), 0.1 ml of 28mMNAD solution, (0.15 ml of 8% Triton X-100 solution), 1
% cholesterol solution and 0.05 ml of NAD-CDH aqueous solution are mixed and reacted at 30°C, and the increase in absorbance at 340 mm for 1 minute after the start of the reaction is measured. As a control, perform the same operation with the above composition but using water instead of cholesterol, and subtract the increase in absorbance of the control solution at 340 mm from that of the test solution. The amount of NADH produced is determined from the obtained value, and the NAD-CDH activity in the sample is calculated from this. Enzyme activity is displayed under the conditions of PH8.6 and 30℃.
An enzyme that generates 1 μmole of NADH per minute was defined as one unit. Next, the action of NAD-CDH used in the present invention will be shown. Cholesterol + NAD cholestenone +
NADH All NAD-CDHs in the present invention catalyze this reaction. The general properties of NAD-CDH used in the present invention are as follows: Nocardia sp. No. Ch2-1 (Nocardia sp.
No.Ch2-1) and Alcaligenes sp.No.4
(Alcaligenes sp. No. 4) is shown below. (1) NAD produced by Nocardia sp.No. Ch2-1.Nocardia sp.No. Ch2-1
-CDH 1) Optimum PH: around 9.0 (shown in Figure 1) 2) PH stability: PH6 at 37℃ for 15 minutes
It is stable at ~7. (See Figure 2.) 3) Optimum temperature: 25-35℃ (See Figure 3.) 4) Thermal stability: PH7.0, 15 minutes.
Stable below 35℃. (It is shown in Figure 4.) 5) Substrate specificity This enzyme reacts with steroids that have a hydroxyl group at the 3β position, and when cholesterol is 100, it reacts with stetugumasterol 35, β-sitosterol 25, other dehydroepianes, and drosterone. , has a slight effect on ergosterol, etc. 6) Requires coenzyme NAD. (2) Alcaligenes sp.No.4 (Alcaligenes sp.No.
4) NAD-CDH produced by
6-7 is stable. (As shown in Figure 6.) 3) Optimum temperature: 25-35°C (As shown in Figure 7.) 4) Thermal stability: Stable down to 0°C under conditions of PH7.0 and 15 minutes. (This is shown in Figure 8.) 5 Substrate specificity Hydroenzyme reacts with steroids that have hydroxyl properties at the 3β position, and when cholesterol is 100, β
-Sitosterol 36, Stegmasterol
20, other dehydroepiandrosterone,
It has a slight effect on ergosterol, etc. 6 Requires coenzyme NAD. Next, the determination of cholesterol using NAD-CDH of the present invention will be described in detail. When quantifying cholesterol, a buffer, NAD, substrate (serum, cholesterol, etc.) and NAD-CDH are mixed, reacted for a certain period of time, and the increase in NADH produced is measured at absorbance at 340 nm.
Further, if necessary, the hydrogen of the generated NADH can be guided to a coloring system such as a formazan dye using phenazine meso sulfate (PMS), diafluorase, or the like. Furthermore, it is also possible to add cholesterol esterase, surfactant, stabilizer, etc. to the reaction system. The pH during the reaction can be carried out in the range of 6 to 10, but an excellent PH range is 7 to 9. Next, to give an example of the quantitative composition of a reagent for cholesterol determination using NAD-CDH, per 3 ml of reaction system, 0.1 to 10 units of NAD-CDH, 10 units of NAD-CDH,
~100mM (Triton X-100 1.0% or less), cholesterol esterase (Boehringer) 0.1
~10 units are advantageous. However, the present invention is not limited to these quantitative compositions. A particular advantage of the method of the invention is that the NADH produced can be measured directly and can be completely quantified. Next, test examples and examples will be described. Test Example 1 For the three strains of the present invention, cholesterol 5g/, extract 5g/, yeast extract 0.2
g/, a medium consisting of a small amount of antifoaming agent (PH
7.2) The cells were inoculated into a 500 ml Sakaro flask containing 100 ml, and cultured with shaking at 30°C for 40 hours. Collect 5 ml of the culture solution by centrifugation (8000 rpm for 10 minutes) and dilute to 0.1 M
Washed with 50 ml of phosphate buffer pH7.0. Next, the bacterial strain was suspended in 50 ml of the same buffer solution, and the bacterial cells were disrupted using ultrasound. This crushed solution was centrifuged (10,000 rpm for 10 minutes) to obtain a clear solution. The NAD-CDH activity of the resulting clear liquid was measured and the following results were obtained.
【表】
試験例 2
コレステロール(片山化学社製)0.67mg/ml、
NAD又はNADP(オリエンタル酵母社製)1.0
mg/ml、トリトンX−100(片山化学社製)4.0
mg/mlを含む0.1Mトリス塩酸緩衝液3.0mlを25
℃、5分間予熱後、希釈した各種コレステロール
脱水素酵素液0.1mlを加え、25℃で反応させ、
340nmにおける吸光度の増加を測定して、各種コ
レステロール脱水素酵素の各補酵素に対する反応
性を調べた。[Table] Test example 2 Cholesterol (manufactured by Katayama Chemical Co., Ltd.) 0.67 mg/ml,
NAD or NADP (manufactured by Oriental Yeast Co., Ltd.) 1.0
mg/ml, Triton X-100 (manufactured by Katayama Chemical Co., Ltd.) 4.0
25 ml of 0.1 M Tris-HCl buffer containing mg/ml
After preheating at ℃ for 5 minutes, add 0.1 ml of diluted various cholesterol dehydrogenase solutions and react at 25℃.
The reactivity of various cholesterol dehydrogenases to each coenzyme was investigated by measuring the increase in absorbance at 340 nm.
【表】
その結果、本発明のコレステロール脱水素酵素
はいずれもNADに対する反応性に比較して
NADPに対する反応性が著しく低いことがわか
る。
実施例 1
Nocardia sp.Ch2―1(FERM―P No.6217)
をグルコース5g/、エキス5g/、酵母エ
キス0.2g/、少量の消泡剤の組成よりなる培
地(PH7.2)200mlをれた500ml容坂ロフラスコに
植菌し、30℃で24時間振蘯培養する。この種培養
液をコレステロール5g/、グルコース2g/
、肉エキス5g/、KH2PO45g/、
MgSO4.7H2O0.2g/、消泡剤0.5g/の組成
よりなる培地(PH7.2)20を入れた30容ジヤ
ーフアーメンターに植菌し、30℃で通気、撹拌
(0.5V/V/min、200rpm)しながら40時間培養
した。
培養液を遠心分離し、得られた菌体を0.1Mリ
ン酸緩衝液PH7.0に懸濁し、ガラスビーズにより
菌体を破砕した。この菌体破砕液を遠心分離
(1000rpm、10分間)し、清澄な菌体抽出液を得
た。得られた清澄液に硫酸アンモニウムを35%飽
和になるように加え酵素を沈澱せしめた。
沈澱を遠心分離(8000rpm10分間)で集め
20mMリン酸緩衝液PH7.0、100mlに溶かし、セロ
フアンチユーブで20mMリン酸緩衝液PH7.0に対
して24時間透析した。
次に得られた透析液を20mMリン酸緩衝液PH
7.0で平衝化したDEAE・セルロース200mlを充填
したカラムに通し、酵素を吸着せしめた。同様の
緩衝液でカラムを洗浄後、緩衝液濃度を0.1Mに
上げてNAD―CDHを溶出した。NAD―CDHを
含む画分を集め、これを濃縮後20mMリン酸緩衝
液PH7.0に対して透析した。これを同様の緩衝液
で平衡化したヘキシルセフアロース20mlを充填し
たカラムに通し、吸着せしめた。このカラムを
20mMリン酸緩衝液PH7.0で洗浄した。次に
0.5MNaClを含む同様の緩衝液でNAD―CDHを
溶出し、活性画分を集め、濃縮し、50単位/mlの
NAD―CDH溶液5.0mlを得た。全体の活性収率
は30%であつた。
実施例 2
Alcaligenes sp.No.4(FERM―P No.6216)を
コレステロール10g/、グリセロール2g/
、コーンスチープリカー5g/、KH2PO45
g/、MgSO47H2O0.2g/、消泡剤0.5g/
の組成よりなる培地に培養し、実施例1と同様
の操作を行ない、40単位/mlのNAD―CDH溶液
を5.0ml得た。全体の活性収率は40%であつた。
実施例 3
Proteus vulgaris IAM1025を用い、実施例1
に準ずる操作を行ない、37単位/mlのNAD―
CDH溶液4mlを得た。全体の活性収率は52%で
あつた。
実施例 4
実施例1で得られたNAD―CDHを用い、標準
血清におけるコレステロールの定量を行なつた。
0.1Mトリス塩酸緩衝液PH8.6、2.71ml、8%ト
リトンX−100 0.1ml、NAD200mg/ml溶液0.1ml、
コレステロールエステラーゼ(ベーリンガー社
製)100単位/ml溶液0.05ml、標準血清0.02mlを
混合し、30℃で反応させ、340nmにおける吸光度
の増加を測定した。反応は3分以内に終点に達し
た。
対照として上記反応組成物のNAD―CDHの代
りに水を用い同様の操作を行ない対照液の340nm
における吸光度の増加を試験液のそれから差し引
いた。
この標準血清における総コレステロール量は、
あらかじめ作成した検量線より、コレステロール
289mg/dlの値が得られた。コレステロールオキ
シダーゼを含む、市販の測定用試薬を用い行なつ
た比較測定からは、コレステロール290mg/dlの
値が得られた。
実施例 5
実施例2〜実施例3で得られたNAD―CDHを
用い、実施例4に準じた操作を行ない、実質的に
は同じ結果が得られた。
実施例 6
実施例1で得られたNAD―CDHを使用し、実
施例4と同様の操作により、各種血清サンプルの
コレステロールを定量し、以下の結果を得た。
市販品コレステロー
血 清 NAD―CDH ルオキシダーゼ(天野
製薬製)
1 289mg/dl 290mg/dl
2 150 146
3 219 221
4 143 143
5 173 170[Table] As a result, all of the cholesterol dehydrogenases of the present invention had a higher reactivity to NAD.
It can be seen that the reactivity to NADP is extremely low. Example 1 Nocardia sp.Ch2-1 (FERM-P No.6217)
was inoculated into a 500 ml Sakaro flask containing 200 ml of a medium (PH 7.2) consisting of 5 g of glucose, 5 g of extract, 0.2 g of yeast extract, and a small amount of antifoaming agent, and shaken at 30°C for 24 hours. Cultivate. This seed culture solution was added to 5g/g of cholesterol and 2g/g of glucose.
, meat extract 5g/, KH 2 PO 4 5g/,
The cells were inoculated into a 30-volume jar fermenter containing 20 medium (PH7.2) consisting of 0.2 g of MgSO 4 .7H 2 O/0.5 g of antifoaming agent, and aerated and stirred at 30°C (0.5 V /V/min, 200 rpm) for 40 hours. The culture solution was centrifuged, and the resulting bacterial cells were suspended in 0.1 M phosphate buffer pH 7.0, and the bacterial cells were disrupted using glass beads. This cell suspension was centrifuged (1000 rpm, 10 minutes) to obtain a clear cell extract. Ammonium sulfate was added to the resulting clear solution to a saturation of 35% to precipitate the enzyme. Collect the precipitate by centrifugation (8000 rpm for 10 minutes)
It was dissolved in 100 ml of 20mM phosphate buffer PH7.0 and dialyzed against 20mM phosphate buffer PH7.0 for 24 hours using cellophane tubes. Next, the obtained dialysate was added to 20mM phosphate buffer PH.
The enzyme was adsorbed through a column packed with 200 ml of DEAE/cellulose equilibrated at 7.0. After washing the column with the same buffer, the buffer concentration was increased to 0.1M to elute NAD-CDH. Fractions containing NAD-CDH were collected, concentrated, and then dialyzed against 20 mM phosphate buffer pH 7.0. This was passed through a column packed with 20 ml of hexyl-Sepharose equilibrated with the same buffer solution and adsorbed. this column
Washed with 20mM phosphate buffer PH7.0. next
NAD-CDH was eluted with a similar buffer containing 0.5M NaCl, and the active fractions were collected, concentrated, and concentrated to 50 units/ml.
5.0 ml of NAD-CDH solution was obtained. The overall activity yield was 30%. Example 2 Alcaligenes sp. No. 4 (FERM-P No. 6216) was added to cholesterol 10g/glycerol 2g/
, corn steep liquor 5g/, KH 2 PO 4 5
g/, MgSO 4 7H 2 O0.2g/, antifoaming agent 0.5g/
The cells were cultured in a medium having the following composition, and the same operations as in Example 1 were performed to obtain 5.0 ml of a 40 units/ml NAD-CDH solution. The overall activity yield was 40%. Example 3 Using Proteus vulgaris IAM1025, Example 1
37 units/ml of NAD-
4 ml of CDH solution was obtained. The overall activity yield was 52%. Example 4 Using NAD-CDH obtained in Example 1, cholesterol in standard serum was quantified. 0.1M Tris-HCl buffer PH8.6, 2.71ml, 8% Triton X-100 0.1ml, NAD 200mg/ml solution 0.1ml,
0.05 ml of cholesterol esterase (manufactured by Boehringer) 100 units/ml solution and 0.02 ml of standard serum were mixed and reacted at 30°C, and the increase in absorbance at 340 nm was measured. The reaction reached its end point within 3 minutes. As a control, the same operation was performed using water instead of NAD-CDH in the above reaction composition.
The increase in absorbance at was subtracted from that of the test solution. The total cholesterol amount in this standard serum is
From the calibration curve prepared in advance, cholesterol
A value of 289 mg/dl was obtained. Comparative measurements performed using a commercially available assay reagent containing cholesterol oxidase yielded a value of 290 mg/dl of cholesterol. Example 5 Using the NAD-CDH obtained in Examples 2 to 3, the same procedure as in Example 4 was carried out, and substantially the same results were obtained. Example 6 Using the NAD-CDH obtained in Example 1, cholesterol in various serum samples was quantified in the same manner as in Example 4, and the following results were obtained. Commercially available cholesterol Serum NAD-CDH Ruoxidase (Amano Pharmaceutical) 1 289mg/dl 290mg/dl 2 150 146 3 219 221 4 143 143 5 173 170
第1図はノカルジアsp.No. Ch2―1FERM―P
No.6217の生産するNAD―CDHの30℃における
至適PHを示す図であり、第2図は本NAD―CDH
の37℃におけるPH安定性を示す図であり、第3図
は本NAD―CDHの至適温度を示す図であり、第
4図は本NAD―CDHの熱安定性を示す図であ
る。第5図はアルカリゲネスsp.No.4FERM―P
No.6216の生産するNAD―CDHの30℃における至
適PHを示す図であり、第6図は本発明NAD―
CDHの37℃におけるPH安定性を示す図であり、
第7図は本NAD―CDHの至適温度を示す図であ
り、第8図は本NAD―CDHの熱安定性を示す図
である。
Figure 1 shows Nocardia sp. No. Ch2-1FERM-P
This is a diagram showing the optimal pH at 30℃ of NAD-CDH produced by No. 6217, and Figure 2 shows the optimum pH of NAD-CDH produced by No. 6217.
FIG. 3 is a diagram showing the optimum temperature of the present NAD-CDH, and FIG. 4 is a diagram showing the thermal stability of the present NAD-CDH. Figure 5 shows Alcaligenes sp.No.4FERM-P
This is a diagram showing the optimum pH at 30°C of NAD-CDH produced by No. 6216, and Fig. 6 is a diagram showing the optimum pH of NAD-CDH produced by No. 6216.
It is a diagram showing the PH stability of CDH at 37°C,
FIG. 7 is a diagram showing the optimum temperature of the present NAD-CDH, and FIG. 8 is a diagram showing the thermal stability of the present NAD-CDH.
Claims (1)
用することを特徴とするコレステロールの定量
法。 2 好気的条件下で生育する微生物の培養物から
得られるNAD依存性コレステロール脱水素酵素
を使用する特許請求の範囲第1項記載コレステロ
ールの定量法。 3 好気的条件下で生育する微生物がノカルジア
属、アルカリゲネス属、プロテウス属の少くとも
1種以上である特許請求の範囲第2項記載のコレ
ステロールの定量法。 4 ノカルジア属に属する菌株がノカルジアsp.
No.Ch2―1(Nocardia sp.No.Ch2―1)FERM―
P No.6217である特許請求の範囲第3項記載のコ
レステロールの定量法。 5 アルカリゲネス属に属する菌株がアルカリゲ
ネスsp.No.4(Alcaligenes sp.No.4)FERM―P
No.6216である特許請求の範囲第3項記載のコレ
ステロールの定量法。 6 プロテウス属に属する菌株がプロテウス・ブ
ルガリスIAM1025(Proteus vulugaris
IAM1025)である特許請求の範囲第3項記載の
コレステロールの定量法。 7 NAD依存性コレステロール脱水素酵素、
NADを含有するか又はそれから成ることを特徴
とするコレステロールの定量用試薬。 8 好気的条件下で生育する微生物の培養物から
得られるNAD依存性コレステロール脱水素酵素
を含有する特許請求の範囲第7項記載のコレステ
ロールの定量用試薬。 9 好気的条件下で生育する微生物がノカルジア
属、アルカリゲネス属、プロテウス属の少くとも
1種以上である特許請求の範囲第8項記載のコレ
ステロールの定量法用試薬。 10 ノカルジア属に属する菌株がノカルジア
sp.No.Ch2―1(Nocardia sp.No.Ch2―1)FERM
―P No.6217である特許請求の範囲第9項記載の
コレステロールの定量用試薬。 11 アルカリゲネス属に属する菌株がアルカリ
ゲネスsp.No.4(Alcaligenes sp.No.4)FERM―
P No.6216である特許請求の範囲第9項記載のコ
レステロールの定量用試薬。 12 プロテウス属に属する菌株がプロテウス・
ブルガリスIAM1025(Proteus vulugaris
IAM1025)である特許請求の範囲第9項記載の
コレステロールの定量用試薬。[Claims] 1. A method for quantifying cholesterol, characterized by using NAD-dependent cholesterol dehydrogenase. 2. The method for quantifying cholesterol according to claim 1, which uses NAD-dependent cholesterol dehydrogenase obtained from a culture of microorganisms grown under aerobic conditions. 3. The method for quantifying cholesterol according to claim 2, wherein the microorganism that grows under aerobic conditions is at least one species of the genus Nocardia, the genus Alcaligenes, and the genus Proteus. 4 A strain belonging to the genus Nocardia is Nocardia sp.
No.Ch2-1 (Nocardia sp.No.Ch2-1) FERM-
The method for quantifying cholesterol according to claim 3, which is P No. 6217. 5 The strain belonging to the genus Alcaligenes is Alcaligenes sp. No. 4 (Alcaligenes sp. No. 4) FERM-P
The method for quantifying cholesterol according to claim 3, which is No. 6216. 6 The bacterial strain belonging to the genus Proteus is Proteus vulgaris IAM1025 (Proteus vulgaris).
IAM1025) The method for quantifying cholesterol according to claim 3. 7 NAD-dependent cholesterol dehydrogenase,
A reagent for quantifying cholesterol, characterized in that it contains or consists of NAD. 8. The reagent for quantifying cholesterol according to claim 7, which contains NAD-dependent cholesterol dehydrogenase obtained from a culture of a microorganism grown under aerobic conditions. 9. The reagent for cholesterol determination according to claim 8, wherein the microorganism that grows under aerobic conditions is at least one species of the genus Nocardia, the genus Alcaligenes, and the genus Proteus. 10 Nocardia is a strain belonging to the genus Nocardia.
sp.No.Ch2-1 (Nocardia sp.No.Ch2-1) FERM
-P No. 6217, the reagent for quantifying cholesterol according to claim 9. 11 The strain belonging to the genus Alcaligenes is Alcaligenes sp. No. 4 (Alcaligenes sp. No. 4) FERM-
The reagent for quantifying cholesterol according to claim 9, which is P No. 6216. 12 The bacterial strain belonging to the genus Proteus is Proteus.
vulgaris IAM1025 (Proteus vulugaris
10. The reagent for quantifying cholesterol according to claim 9, which is IAM1025).
Priority Applications (1)
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JP56186184A JPS5889200A (en) | 1981-11-19 | 1981-11-19 | Cholesterol determination using cholesterol dehydrogenase depending upon nad(p) and reagent for determining it |
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JPS5889200A JPS5889200A (en) | 1983-05-27 |
JPH0249720B2 true JPH0249720B2 (en) | 1990-10-31 |
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1981
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