JP3494398B2 - Biosensor - Google Patents

Biosensor

Info

Publication number
JP3494398B2
JP3494398B2 JP10276798A JP10276798A JP3494398B2 JP 3494398 B2 JP3494398 B2 JP 3494398B2 JP 10276798 A JP10276798 A JP 10276798A JP 10276798 A JP10276798 A JP 10276798A JP 3494398 B2 JP3494398 B2 JP 3494398B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
reaction layer
sensor
biosensor
substrate
salt
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
JP10276798A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPH11201932A (en
Inventor
系子 湯川
俊彦 吉岡
史朗 南海
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Panasonic Corp
Panasonic Holdings Corp
Original Assignee
Panasonic Corp
Matsushita Electric Industrial Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Panasonic Corp, Matsushita Electric Industrial Co Ltd filed Critical Panasonic Corp
Priority to JP10276798A priority Critical patent/JP3494398B2/en
Publication of JPH11201932A publication Critical patent/JPH11201932A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP3494398B2 publication Critical patent/JP3494398B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、試料中の特定成分
について、迅速かつ高精度な定量を簡便に実施すること
ができるバイオセンサに関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a biosensor capable of easily and quickly quantifying a specific component in a sample.

【0002】[0002]

【従来の技術】従来、試料中の特定成分について、試料
液の希釈や攪拌などを行うことなく簡易に定量する方式
として、様々なバイオセンサが提案されている。バイオ
センサの一例として、次のようなセンサが開示されてい
る(特開平2−062952号公報)。すなわち、絶縁
性の基板上にスクリーン印刷等の方法で作用極、対極お
よび参照極からなる電極系を形成し、この電極系上に、
電極系に接して親水性高分子と酸化還元酵素と電子受容
体を含む酵素反応層を形成したものである。この酵素反
応層には必要に応じて緩衝剤が加えられる。このように
して作製されたバイオセンサの酵素反応層上に、基質を
含む試料液を滴下すると、酵素反応層が試料液に溶解す
るから、酵素と基質が反応し、これに伴って電子受容体
が還元される。酵素反応終了後、還元された電子受容体
を電気化学的に酸化し、このとき得られる酸化電流値か
ら試料液中の基質濃度を定量することができる。
2. Description of the Related Art Conventionally, various biosensors have been proposed as a method for easily quantifying a specific component in a sample without diluting or stirring the sample solution. The following sensor is disclosed as an example of a biosensor (Japanese Patent Laid-Open No. 062952/1990). That is, an electrode system consisting of a working electrode, a counter electrode and a reference electrode is formed on the insulating substrate by a method such as screen printing, and on this electrode system,
An enzyme reaction layer containing a hydrophilic polymer, a redox enzyme, and an electron acceptor was formed in contact with the electrode system. A buffer is added to the enzyme reaction layer as needed. When the sample solution containing the substrate is dropped on the enzyme reaction layer of the biosensor thus manufactured, the enzyme reaction layer dissolves in the sample solution, and the enzyme reacts with the substrate, and the electron acceptor Is reduced. After completion of the enzymatic reaction, the reduced electron acceptor is electrochemically oxidized, and the concentration of the substrate in the sample solution can be quantified from the oxidation current value obtained at this time.

【0003】上記のようなバイオセンサは、測定対象物
質を基質とする酵素を選択することで、様々な物質に対
する測定が原理的には可能である。酵素は、蛋白質を主
成分とし、センサに組み込まれる前に精製処理される場
合が多い。この精製課程の条件によっては、酵素の構成
要素であり、また酵素の活性中心となる金属イオンが脱
落し、酵素の立体構造が変化する場合がある。その結
果、酵素の基質特異性が変化したり、活性が低下したり
する。また、センサを保存している間に、雰囲気中の水
分を吸収して変性する場合もある。このため、反応層中
に含有させる酵素の量には、このように変性した酵素の
量を見越さなければならない。一方、酵素反応が反応層
中の酵素量に依存すると、得られる応答電流値は基質の
濃度に比例しなくなる。そのため、反応層中には、試料
液中の基質と十分反応しうる量の酵素が含有されていな
ければならない。
In principle, the biosensor as described above can measure various substances by selecting an enzyme whose substrate is a substance to be measured. Enzymes are protein-based and are often purified before being incorporated into sensors. Depending on the conditions of this purification process, the metal ion, which is a constituent element of the enzyme and is the active center of the enzyme, may be removed, and the three-dimensional structure of the enzyme may change. As a result, the substrate specificity of the enzyme changes or the activity decreases. Further, while the sensor is stored, it may absorb moisture in the atmosphere to be denatured. Therefore, the amount of the enzyme thus modified must be taken into consideration in the amount of the enzyme contained in the reaction layer. On the other hand, when the enzymatic reaction depends on the amount of enzyme in the reaction layer, the obtained response current value is not proportional to the concentration of the substrate. Therefore, the reaction layer must contain the enzyme in an amount sufficient to react with the substrate in the sample solution.

【0004】[0004]

【発明が解決しようとする課題】このようにセンサを作
製する際には、試料中に含有されると予期される基質の
量よりも、かなり過剰な量の酵素を反応層中に含有させ
ることが必要になる。したがって、1センサあたり、相
当量の酵素を要するようになり、センサの単価が非常に
高くなる。本発明は、センサ中における酵素の活性を最
大限に発揮させるようにして、1センサあたりの酵素担
持量を削減し、廉価で保存安定性の高いバイオセンサを
提供することを目的とする。
When manufacturing a sensor as described above, it is necessary to incorporate a considerably large amount of enzyme into the reaction layer in comparison with the amount of the substrate expected to be contained in the sample. Will be required. Therefore, a considerable amount of enzyme is required per sensor, and the unit price of the sensor becomes very high. It is an object of the present invention to provide an inexpensive biosensor having high storage stability by maximizing the activity of the enzyme in the sensor, reducing the amount of enzyme supported per sensor.

【0005】[0005]

【課題を解決するための手段】本発明のバイオセンサ
は、絶縁性の基板、前記基板上に形成された少なくとも
作用極と対極を有する電極系、前記電極系上またはその
近傍に形成された少なくともピロロキノリンキノンを補
酵素としたデヒドロゲナーゼと電子メディエーターを含
む反応層、および前記反応層中または反応層の近傍に反
応層と隔離して設置された2価金属の水溶性塩を具備す
ることを特徴とする。本発明の好ましいバイオセンサ
は、電気絶縁性の基板、前記基板上に形成された少なく
とも作用極と対極を有する電極系、前記基板に組み合わ
されて基板との間に前記電極系に試料液を供給する試料
液供給路を形成するカバー部材、前記電極系上またはそ
の近傍に形成された少なくともピロロキノリンキノンを
補酵素としたデヒドロゲナーゼと電子メディエーターを
含む反応層、および前記反応層中または前記試料供給路
の前記反応層とは隔離された場所に設置された2価金属
の水溶性塩を具備する。本発明の好ましいバイオセンサ
においては、前記金属塩が、反応層と隔離されている。
The biosensor of the present invention comprises an insulating substrate, an electrode system having at least a working electrode and a counter electrode formed on the substrate, and at least formed on or near the electrode system. Supplemented with pyrroloquinoline quinone
It is characterized by comprising a reaction layer containing dehydrogenase as an enzyme and an electron mediator, and a water-soluble salt of a divalent metal placed in the reaction layer or in the vicinity of the reaction layer so as to be isolated from the reaction layer. A preferred biosensor of the present invention is an electrically insulating substrate, an electrode system having at least a working electrode and a counter electrode formed on the substrate, and a sample liquid supplied to the electrode system between the substrate and the substrate combined with the substrate. A cover member that forms a sample liquid supply path, and at least pyrroloquinoline quinone formed on or near the electrode system.
It comprises a reaction layer containing dehydrogenase as a coenzyme and an electron mediator, and a water-soluble salt of a divalent metal placed in a place isolated from the reaction layer or the reaction layer of the sample supply path. In the preferred biosensor of the present invention, the metal salt is isolated from the reaction layer.

【0006】[0006]

【発明の実施の形態】本発明によるバイオセンサは、上
記のように反応層中またはその近傍に2価金属の水溶性
塩を有する。血液などの試料溶液をセンサに添加する
と、試料液供給路に金属塩が存在する場合は、試料液は
前記金属塩を溶解させながら反応層へ導入される。金属
塩が反応層に含まれる場合は、試料液が反応層に到達し
たのち、金属塩が試料液に溶解する。溶解された金属塩
は解離して2価金属イオンが生じる。この金属イオン
は、精製や長期間の保存によって金属イオンが脱落し
た、酵素に取り込まれる。その結果、酵素の立体構造が
再構築したり、活性が回復したりする。これによって、
反応層中に含有される酵素の活性が促進され、センサの
酵素担持量を最小限にできるので、廉価なセンサを作製
することが可能となる。このような金属塩としては、カ
ルシウム塩、カドミウム塩、マンガン塩、マグネシウム
塩およびストロンチウム塩から選ばれる少なくとも1種
が好ましい。これら塩は、前記金属の塩化物、硝酸塩、
硫酸塩が好ましい。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION The biosensor according to the present invention has a water-soluble salt of a divalent metal in or near the reaction layer as described above. When a sample solution such as blood is added to the sensor, if a metal salt is present in the sample solution supply path, the sample solution is introduced into the reaction layer while dissolving the metal salt. When the metal salt is contained in the reaction layer, the metal salt dissolves in the sample solution after the sample solution reaches the reaction layer. The dissolved metal salt dissociates to generate divalent metal ions. This metal ion is incorporated into the enzyme from which the metal ion has been lost due to purification and long-term storage. As a result, the three-dimensional structure of the enzyme is reconstructed and the activity is restored. by this,
Since the activity of the enzyme contained in the reaction layer is promoted and the amount of the enzyme carried by the sensor can be minimized, it is possible to manufacture an inexpensive sensor. As such a metal salt, at least one selected from a calcium salt, a cadmium salt, a manganese salt, a magnesium salt and a strontium salt is preferable. These salts are chlorides, nitrates,
Sulfate is preferred.

【0007】上記金属塩によって、構造や活性が回復す
る酵素にはデヒドロゲナーゼおよびオキシダーゼが挙げ
られる。デヒドロゲナーゼの中でも特にグルコースデヒ
ドロゲナーゼは2価金属イオン、なかでもカルシウムイ
オンを添加すると酵素の活性がよくなり、特に良好な応
答特性が得られる。また、フルクトースデヒドロゲナー
ゼでも良好な応答が得られる。オキシダーゼとしては、
グルコースオキシダーゼが好適に用いられる。前記金属
塩の多くは、吸湿性である。吸湿性の金属塩を反応層中
や反応層表面に担持させると、センサの保存期間中に金
属塩が空気中の水分を吸収して溶解するため、反応層の
一部が溶解する場合がある。その結果、反応層に含まれ
る酵素は不安定な状態となり、変性などの活性劣化を起
こす。したがって、そのような場合は、金属塩は反応層
と隔離して設置するのがよい。金属塩を反応層から隔離
して設置することにより、水分が存在する雰囲気下での
センサの保存性を高めることができる。一方、水分を考
慮する必要がない雰囲気下でのセンサの保存、例えば、
センサをアルミラミネートフィルムのような気密性のフ
ルムで包装する場合は、金属塩を反応層に含有させて
もよい。以上のように、金属塩を設置する場所を、反応
層とするか、反応層から隔離された場所とするかまたは
その両方とするかは、保存雰囲気に応じて決定すること
が好ましい。なお、反応層またはその近傍で反応層から
隔離された場所を含めば、他の部分に2価金属塩が含ま
れていても、効果は変わらない。
Enzymes whose structure and activity are restored by the above metal salts include dehydrogenase and oxidase. Among the dehydrogenases, particularly glucose dehydrogenase, when a divalent metal ion, especially calcium ion is added, the activity of the enzyme is improved, and particularly good response characteristics are obtained. Also, good response can be obtained with fructose dehydrogenase. As oxidase,
Glucose oxidase is preferably used. Many of the metal salts are hygroscopic. When a hygroscopic metal salt is supported in the reaction layer or on the surface of the reaction layer, the metal salt absorbs water in the air and dissolves during the storage period of the sensor, so part of the reaction layer may dissolve. . As a result, the enzyme contained in the reaction layer becomes instable and causes activity deterioration such as denaturation. Therefore, in such a case, the metal salt should be installed separately from the reaction layer. By installing the metal salt separately from the reaction layer, it is possible to improve the storage stability of the sensor in an atmosphere in which water is present. On the other hand, storage of the sensor in an atmosphere where it is not necessary to consider moisture, for example,
Attach the sensor to an airtight flap such as an aluminum laminated film.
When packaged in I Lum may the metal salt is contained in the reaction layer. As described above, it is preferable to determine whether to install the metal salt in the reaction layer, the place separated from the reaction layer, or both, depending on the storage atmosphere. In addition, from the reaction layer at or near the reaction layer
Divalent metal salts are included in other parts including the isolated place
Even if it does, the effect does not change.

【0008】また、試料液を供給したとき、前記金属塩
が容易に溶解するために、金属塩は親水性高分子中に担
持された状態でセンサ内に設置させるのが好ましい。こ
のような親水性高分子の例として、カルボキシメチルセ
ルロースが非常に水溶性が高い点で好ましい。また、ヒ
ドロキシエチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロ
ース、メチルセルロース、エチルセルロース、エチルヒ
ドロキシエチルセルロース、カルボキシメチルエチルセ
ルロース、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコー
ル、ポリリジンなどのポリアミノ酸、ポリスチレンスル
ホン酸、ゼラチンおよびその誘導体、アクリル酸および
その塩、メタクリル酸およびその塩、スターチおよびそ
の誘導体、無水マレイン酸およびその塩、アガロースゲ
ルおよびその誘導体も好適に用いられる。
In addition, since the metal salt is easily dissolved when the sample solution is supplied, it is preferable to install the metal salt in the sensor in a state of being carried in the hydrophilic polymer. As an example of such a hydrophilic polymer, carboxymethyl cellulose is preferable because it has very high water solubility. In addition, polyethylamino acids such as hydroxyethyl cellulose, hydroxypropyl cellulose, methyl cellulose, ethyl cellulose, ethyl hydroxyethyl cellulose, carboxymethyl ethyl cellulose, polyvinylpyrrolidone, polyvinyl alcohol, polylysine, polystyrene sulfonic acid, gelatin and its derivatives, acrylic acid and its salts, and methacrylic acid. And its salts, starch and its derivatives, maleic anhydride and its salts, agarose gel and its derivatives are also preferably used.

【0009】本発明における2価金属の水溶性塩の量
は、この塩がセンサに供給される試料液に溶解したと
き、2価金属の濃度が0.01〜2mg/mlの範囲と
なるのが好ましい。前記濃度の下限値は、金属、例えば
カルシウムが酵素に結合するために必要な最低限の濃度
である。また、濃度が2mg/mlを越えると、試料液
がセンサに注入されたとき、反応層が試料液へ速やかに
溶解しがたくなる。本発明のセンサは、特に血液中の基
質の定量に向けられている。そのようなセンサでは、反
応層の単位面積(1mm2)当たりに担持される酵素量
は、1μg〜50μg/mm2である。従って、反応層
の単位面積を基準にすると、2価金属の水溶性塩の量は
0.003〜0.6μg/mm2となる。一方、以下の
実施例に示されるように、試料液の量が約3μlのセン
サにおいては、1センサチップに必要な酵素量は0.0
1〜0.5mg/チップである。従って、センサの1チ
ップ当たりに用いられる2価金属の水溶性塩は0.03
〜6μgとなる。
The amount of the water-soluble salt of a divalent metal in the present invention is such that when the salt is dissolved in the sample solution supplied to the sensor, the concentration of the divalent metal is in the range of 0.01 to 2 mg / ml. Is preferred. The lower limit of the concentration is the minimum concentration required for binding a metal such as calcium to an enzyme. Further, if the concentration exceeds 2 mg / ml, when the sample solution is injected into the sensor, it becomes difficult for the reaction layer to quickly dissolve in the sample solution. The sensor of the present invention is particularly directed to the quantification of substrates in blood. In such a sensor, the amount of enzyme carried per unit area (1 mm 2 ) of the reaction layer is 1 μg to 50 μg / mm 2 . Therefore, based on the unit area of the reaction layer, the amount of the water-soluble salt of a divalent metal is 0.003 to 0.6 μg / mm 2 . On the other hand, as shown in the following examples, in a sensor in which the amount of sample liquid is about 3 μl, the amount of enzyme required for one sensor chip is 0.0
1 to 0.5 mg / chip. Therefore, the water-soluble salt of a divalent metal used per sensor chip is 0.03.
~ 6 μg.

【0010】本発明による反応層は、電子メディエータ
ーを含有する。電子メディエーターとしては、フェリシ
アンイオン、p−ベンゾキノンおよびその誘導体、フェ
ナジンメトサルフェート、メチレンブルー、フェロセン
およびその誘導体から選ばれる少なくとも1種が好適に
用いられる。さらに、反応層には、上記酵素類や電子メ
ディエーターのほかに、親水性高分子を含有させてもよ
い。反応層中に親水性高分子を添加することにより、電
極系表面からの反応層剥離を防ぐことができる。さら
に、親水性高分子は、反応層表面の割れを防ぐ効果も有
しており、バイオセンサの信頼性を高めるのに効果的で
ある。このような親水性高分子としては、カルボキシメ
チルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロ
キシプロピルセルロース、メチルセルロース、エチルセ
ルロース、エチルヒドロキシエチルセルロース、カルボ
キシメチルエチルセルロース、ポリビニルピロリドン、
ポリビニルアルコール、ポリリジンなどのポリアミノ
酸、ポリスチレンスルホン酸、ゼラチンおよびその誘導
体、アクリル酸およびその塩、メタクリル酸およびその
塩、スターチおよびその誘導体、無水マレイン酸の重合
およびその塩、アガロースゲルおよびその誘導体が好
適に用いられる。酸化電流の測定方法としては、作用極
と対極のみの二極電極方式と、参照極を加えた三極方式
があり、三極の方がより正確な測定が可能である。
The reaction layer according to the present invention contains an electron mediator. As the electron mediator, at least one selected from ferricyan ion, p-benzoquinone and its derivative, phenazine methosulfate, methylene blue, ferrocene and its derivative is preferably used. Further, the reaction layer may contain a hydrophilic polymer in addition to the above enzymes and electron mediators. By adding a hydrophilic polymer to the reaction layer, peeling of the reaction layer from the electrode system surface can be prevented. Further, the hydrophilic polymer also has an effect of preventing cracks on the surface of the reaction layer, and is effective in increasing the reliability of the biosensor. As such a hydrophilic polymer, carboxymethyl cellulose, hydroxyethyl cellulose, hydroxypropyl cellulose, methyl cellulose, ethyl cellulose, ethyl hydroxyethyl cellulose, carboxymethyl ethyl cellulose, polyvinylpyrrolidone,
Polymerization of polyvinyl alcohol, polyamino acids such as polylysine, polystyrene sulfonic acid, gelatin and its derivatives, acrylic acid and its salts, methacrylic acid and its salts, starch and its derivatives, maleic anhydride
The body and its salts, agarose gel and its derivatives are preferably used. As a method for measuring the oxidation current, there are a bipolar electrode method in which only a working electrode and a counter electrode are used, and a three-electrode method in which a reference electrode is added. The three-electrode method enables more accurate measurement.

【0011】[0011]

【実施例】以下に、具体的な実施例を挙げて、本発明を
より詳細に説明する。図1は、本発明によるバイオセン
サの反応層を取り除いた概略平面図である。ポリエチレ
ンテレフタレートからなる電気絶縁性の基板1上に、ス
クリーン印刷により銀ペーストを印刷し、リード2、3
を形成している。次いで、樹脂バインダーを含むカーボ
ンペーストを基板1上に印刷して作用極4を形成してい
る。この作用極4は、リード2と接触している。さら
に、この基板1上に、絶縁性ペーストを印刷して絶縁層
6を形成している。絶縁層6は、作用極4の外周部を覆
っており、これにより作用極4の露出部分の面積を一定
に保っている。そして、樹脂バインダーを含むカーボン
ペーストをリード3と接触するように基板1上に印刷し
てリング状の対極5を形成している。電極4および5か
らなる電極系上に反応層を形成する。そして、この反応
層あるいはこの反応層と隔離した場所の少なくとも一方
に2価金属の水溶性塩10を設置する。
EXAMPLES The present invention will be described in more detail below with reference to specific examples. FIG. 1 is a schematic plan view of the biosensor according to the present invention with the reaction layer removed. On the electrically insulating substrate 1 made of polyethylene terephthalate, a silver paste is printed by screen printing to form the leads 2, 3
Is formed. Next, a carbon paste containing a resin binder is printed on the substrate 1 to form the working electrode 4. The working electrode 4 is in contact with the lead 2. Further, an insulating paste is printed on the substrate 1 to form the insulating layer 6. The insulating layer 6 covers the outer peripheral portion of the working electrode 4, thereby keeping the area of the exposed portion of the working electrode 4 constant. Then, a carbon paste containing a resin binder is printed on the substrate 1 so as to come into contact with the leads 3 to form a ring-shaped counter electrode 5. A reaction layer is formed on the electrode system consisting of the electrodes 4 and 5. Then, the water-soluble salt 10 of the divalent metal is placed in at least one of the reaction layer and the place separated from the reaction layer.

【0012】図2は、反応層および2価金属の水溶性塩
を除いたバイオセンサの分解斜視図である。図1の絶縁
性基板1と、空気孔11を備えたカバー9およびスペー
サー8を、図2中に1点鎖線で示すような位置関係をも
って装着することによりバイオセンサが作製される。ス
ペーサー8のスリット13の部分に、基板1とカバー9
で挟まれて、試料液供給路が形成される。12は試料液
供給路の開口部である。図3は、スペーサー8とカバー
9を重ね合わせたカバー部材の斜視図であり、図2とは
上下逆に配置してある。14は、この試料液供給路を構
成する空間部に露出する面のカバー側の面を示す。この
カバー部材の試料液供給路に露出する面に反応層および
/または塩10を設置してもよい。図4は、本発明によ
るバイオセンサの要部の縦断面図である。図1のように
して電極系を形成した電気絶縁性の基板1上に、酵素お
よび電子メディエーターを含む反応層7が形成され、こ
の反応層7と試料液供給路の開口部12との間に、反応
層7とは隔離して、2価金属の水溶性塩10が担持され
ている。
FIG. 2 is an exploded perspective view of the biosensor from which the reaction layer and the water-soluble salt of divalent metal have been removed. A biosensor is manufactured by mounting the insulating substrate 1 of FIG. 1, the cover 9 having the air holes 11 and the spacer 8 in a positional relationship as shown by the one-dot chain line in FIG. At the slit 13 portion of the spacer 8, the substrate 1 and the cover 9
And the sample liquid supply path is formed. 12 is an opening of the sample liquid supply path. FIG. 3 is a perspective view of a cover member in which the spacer 8 and the cover 9 are superposed, and is arranged upside down with respect to FIG. Reference numeral 14 denotes a cover-side surface of the surface exposed in the space forming the sample liquid supply path. The reaction layer and / or the salt 10 may be provided on the surface of the cover member exposed to the sample liquid supply path. FIG. 4 is a vertical cross-sectional view of the main part of the biosensor according to the present invention. A reaction layer 7 containing an enzyme and an electron mediator is formed on an electrically insulating substrate 1 on which an electrode system is formed as shown in FIG. 1, and between the reaction layer 7 and the opening 12 of the sample liquid supply path. A water-soluble salt 10 of a divalent metal is supported separately from the reaction layer 7.

【0013】《実施例1》図1のようにして電極系を形
成した基板1上に、ピロロキノリンキノン−グルコース
デヒドロゲナーゼ(以下、GDHと略す。)とフェリシ
アン化カリウムの混合水溶液を5μl滴下し、乾燥させ
て反応層7を形成した。この反応層7は、直径3.6m
mの円形で、電極4および5をほぼ覆う大きさであっ
た。塩化カルシウム5mgをカルボキシメチルセルロー
スの水溶液(濃度0.5%)10mlに溶解した溶液を
作製した。この溶液5μlを基板上の10で示す位置に
滴下し、50℃の温風乾燥器中で10分間乾燥させて、
2価金属の水溶性塩10を基板1の上に担持させた。上
記の基板1にカバー9およびスペーサー8を図2中、一
点鎖線で示すような位置関係をもって接着し、バイオセ
ンサを作製した。
Example 1 5 μl of a mixed aqueous solution of pyrroloquinoline quinone-glucose dehydrogenase (hereinafter abbreviated as GDH) and potassium ferricyanide was dropped on the substrate 1 on which the electrode system was formed as shown in FIG. 1 and dried. Then, the reaction layer 7 was formed. The reaction layer 7 has a diameter of 3.6 m.
It was a circle of m and had a size that substantially covered the electrodes 4 and 5. A solution was prepared by dissolving 5 mg of calcium chloride in 10 ml of an aqueous solution of carboxymethyl cellulose (concentration: 0.5%). 5 μl of this solution was dropped on the substrate at a position indicated by 10 and dried in a warm air dryer at 50 ° C. for 10 minutes,
A water-soluble salt 10 of a divalent metal was supported on the substrate 1. A cover 9 and a spacer 8 were adhered to the above-mentioned substrate 1 in a positional relationship shown by a chain line in FIG. 2 to produce a biosensor.

【0014】グルコース標準液として、グルコース濃度
が、0、200、400、600、および1000mg
/dlのものを調製し、このグルコース標準液を試料液
供給路の開口部12からセンサに供給した。そして、試
料液を供給して1分後に、対極5を基準にして作用極4
に+0.5Vのパルス電圧を印加し、その5秒後に作用
極と対極との間に流れる電流値を測定して、センサの応
答特性を測定した。その結果を図5に示す。図5に示す
ように、得られる応答電流値は大きく、また応答電流値
とグルコース濃度の相関性は、優れた直線性を有してい
た。また、作製したバイオセンサを、湿度20%の雰囲
気下で6ヵ月間保存した後、同様にしてセンサの応答特
性を測定した。その結果を図5に示す。図5に示すよう
に、保存後のバイオセンサの応答特性は、バイオセンサ
作製直後のものとほとんど変わらなかった。
As a glucose standard solution, the glucose concentration is 0, 200, 400, 600, and 1000 mg.
/ Dl was prepared, and this glucose standard solution was supplied to the sensor from the opening 12 of the sample solution supply path. Then, one minute after supplying the sample liquid, the working electrode 4 with the counter electrode 5 as a reference.
A pulse voltage of +0.5 V was applied to the sensor, and after 5 seconds, the current value flowing between the working electrode and the counter electrode was measured to measure the response characteristic of the sensor. The result is shown in FIG. As shown in FIG. 5, the obtained response current value was large, and the correlation between the response current value and the glucose concentration had excellent linearity. The prepared biosensor was stored in an atmosphere of 20% humidity for 6 months, and the response characteristics of the sensor were measured in the same manner. The result is shown in FIG. As shown in FIG. 5, the response characteristics of the biosensor after storage were almost the same as those immediately after the biosensor was manufactured.

【0015】《比較例1》2価金属の水溶性塩をセンサ
内に担持させない他は、実施例1と同様にしてセンサを
作製した。そして、実施例1と同様にして、センサ作製
直後および湿度20%で6ヵ月間保存後のバイオセンサ
の応答特性を測定した。その結果を図5に示す。図5に
示すように、得られた応答電流値は、実施例1で作製し
たバイオセンサの約60%に低下した。また、6ヵ月間
保存後のバイオセンサの応答電流値は、センサ作製直後
のセンサよりもかなり低下し、応答電流値とグルコース
濃度の相関性も著しく低下した。
Comparative Example 1 A sensor was manufactured in the same manner as in Example 1 except that the water-soluble salt of a divalent metal was not carried in the sensor. Then, in the same manner as in Example 1, the response characteristics of the biosensor were measured immediately after the sensor was manufactured and after storage for 6 months at a humidity of 20%. The result is shown in FIG. As shown in FIG. 5, the obtained response current value was reduced to about 60% of that of the biosensor manufactured in Example 1. Further, the response current value of the biosensor after being stored for 6 months was considerably lower than that of the sensor immediately after the sensor was manufactured, and the correlation between the response current value and the glucose concentration was also significantly reduced.

【0016】《実施例2》GDHとフェリシアン化カリ
ウムおよび塩化カルシウムの混合水溶液を滴下乾燥させ
ることによって反応層を形成し、2価金属の水溶性塩を
単独でセンサ内に担持させなかった他は、実施例1と同
様にしてバイオセンサを作製した。そして、センサ作製
直後と湿度20%で6ヵ月間保存した後のセンサの応答
特性を実施例1と同様にして測定した。その結果を図5
に示す。図5に示すように、6ヵ月間保存後のバイオセ
ンサの応答電流値は、センサ作製直後のセンサの約85
%に低下し、応答電流値とグルコース濃度の相関性もや
や低下した。
Example 2 A reaction layer was formed by dropping and drying a mixed aqueous solution of GDH and potassium ferricyanide and calcium chloride, and a water-soluble salt of a divalent metal was not carried alone in the sensor. A biosensor was produced in the same manner as in Example 1. Then, the response characteristics of the sensor were measured in the same manner as in Example 1 immediately after the sensor was manufactured and after the sensor was stored at a humidity of 20% for 6 months. The result is shown in Fig. 5.
Shown in. As shown in FIG. 5, the response current value of the biosensor after being stored for 6 months was about 85% of that of the sensor immediately after the sensor was manufactured.
%, And the correlation between the response current value and the glucose concentration also decreased slightly.

【0017】《実施例3》酵素に、グルコースオキシダ
ーゼ(以下、GOXと略す。)を用いる他は、実施例1
と同様にしてセンサを作製した。そして、実施例1と同
様にして、センサ作製直後および湿度20%で6ヵ月間
保存した後のセンサの応答特性を測定した。その結果を
図6に示す。図6に示すように、本実施例のバイオセン
サは、優れた応答特性と保存性を有していた。
Example 3 Example 1 was repeated except that glucose oxidase (hereinafter abbreviated as GOX) was used as the enzyme.
A sensor was manufactured in the same manner as in. Then, in the same manner as in Example 1, the response characteristics of the sensor were measured immediately after the sensor was manufactured and after the sensor was stored at a humidity of 20% for 6 months. The result is shown in FIG. As shown in FIG. 6, the biosensor of this example had excellent response characteristics and storability.

【0018】《比較例2》2価金属の水溶性塩をセンサ
内に担持させない他は、実施例3と同様にしてセンサを
作製した。そして、実施例3と同様にして、センサ作製
直後および湿度20%で6ヵ月間保存した後のセンサの
応答特性を測定した。その結果を図6に示す。図6に示
すように、得られた応答電流値は、実施例3で作製した
バイオセンサの約60%に低下した。また、6ヵ月間保
存後のバイオセンサの応答電流値は、センサ作製直後の
センサよりもかなり低下し、応答電流値とグルコース濃
度の相関性も著しく低下した。
Comparative Example 2 A sensor was prepared in the same manner as in Example 3 except that the water-soluble salt of divalent metal was not carried in the sensor. Then, in the same manner as in Example 3, the response characteristics of the sensor were measured immediately after the sensor was manufactured and after the sensor was stored at a humidity of 20% for 6 months. The result is shown in FIG. As shown in FIG. 6, the obtained response current value was reduced to about 60% of that of the biosensor manufactured in Example 3. Further, the response current value of the biosensor after being stored for 6 months was considerably lower than that of the sensor immediately after the sensor was manufactured, and the correlation between the response current value and the glucose concentration was also significantly reduced.

【0019】《実施例4》GOXとフェリシアン化カリ
ウムおよび塩化カルシウムの混合水溶液を滴下乾燥させ
ることによって反応層を形成し、2価金属の水溶性塩を
単独でセンサ内に担持させなかった他は、実施例3と同
様にしてバイオセンサを作製した。そして、センサ作製
直後と湿度20%で6ヵ月間保存した後のセンサの応答
特性を実施例1と同様にして測定した。その結果を図6
に示す。図6に示すように、6ヵ月間保存後のバイオセ
ンサの応答電流値は、センサ作製直後のセンサの約90
%に低下し、応答電流値とグルコース濃度の相関性もや
や低下した。
Example 4 A reaction layer was formed by dropping and drying a mixed aqueous solution of GOX and potassium ferricyanide and calcium chloride, and a water-soluble salt of a divalent metal was not supported alone in the sensor. A biosensor was produced in the same manner as in Example 3. Then, the response characteristics of the sensor were measured in the same manner as in Example 1 immediately after the sensor was manufactured and after the sensor was stored at a humidity of 20% for 6 months. The result is shown in Figure 6.
Shown in. As shown in FIG. 6, the response current value of the biosensor after being stored for 6 months was about 90% of that of the sensor immediately after the sensor was manufactured.
%, And the correlation between the response current value and the glucose concentration also decreased slightly.

【0020】《実施例5》酵素に、フルクトースデヒド
ロゲナーゼ(以下、FDHと略す。)を用いる他は、実
施例1と同様にしてセンサを作製した。そして、標準試
料液として、フルクトース標準液を用いる他は、実施例
1と同様にして、センサ作製直後および湿度20%で6
ヵ月間保存した後のセンサの応答特性を測定した。その
結果を図7に示す。図7に示すように、得られたバイオ
センサは、優れた応答特性と保存性を有していた。
Example 5 A sensor was produced in the same manner as in Example 1 except that fructose dehydrogenase (hereinafter abbreviated as FDH) was used as the enzyme. Then, in the same manner as in Example 1 except that the fructose standard solution was used as the standard sample solution, immediately after the sensor was manufactured and at a humidity of 20%, 6
The response characteristics of the sensor after storage for one month were measured. The result is shown in FIG. 7. As shown in FIG. 7, the obtained biosensor had excellent response characteristics and storability.

【0021】《比較例3》2価金属の水溶性塩をセンサ
内に担持させない他は、実施例5と同様にしてセンサを
作製した。そして、実施例5と同様にして、センサ作製
直後および湿度20%で6ヶ月保存した後のセンサの応
答特性を測定した。その結果を図7に示す。図7に示す
ように、得られた応答電流値は、実施例5で作製したバ
イオセンサの約65%に低下した。また、6ヵ月間保存
後のバイオセンサの応答電流値は、センサ作製直後のセ
ンサよりもかなり低下し、応答電流値とフルクトース濃
度の相関性も著しく低下した。した。
Comparative Example 3 A sensor was prepared in the same manner as in Example 5, except that the water-soluble salt of divalent metal was not carried in the sensor. Then, in the same manner as in Example 5, the response characteristics of the sensor were measured immediately after the sensor was manufactured and after the sensor was stored at a humidity of 20% for 6 months. The result is shown in FIG. 7. As shown in FIG. 7, the obtained response current value was reduced to about 65% of that of the biosensor manufactured in Example 5. Further, the response current value of the biosensor after being stored for 6 months was considerably lower than that of the sensor immediately after preparation of the sensor, and the correlation between the response current value and the fructose concentration was also significantly reduced. did.

【0022】《実施例6》FDHとフェリシアン化カリ
ウムおよび塩化カルシウムの混合水溶液を滴下乾燥させ
ることによって反応層を形成し、2価金属の水溶性塩を
単独でセンサ内に担持させなかった他は、実施例5と同
様にしてバイオセンサを作製した。そして、センサ作製
直後と湿度20%で6ヵ月間保存した後のセンサの応答
特性を実施例1と同様にして測定した。その結果を図7
に示す。図7に示すように、6ヵ月間保存後のバイオセ
ンサの応答電流値は、センサ作製直後のセンサの約85
%に低下し、応答電流値とグルコース濃度の相関性もや
や低下した。
Example 6 A reaction layer was formed by dropping and drying a mixed aqueous solution of FDH and potassium ferricyanide and calcium chloride, and a water-soluble salt of a divalent metal was not carried alone in the sensor. A biosensor was produced in the same manner as in Example 5. Then, the response characteristics of the sensor were measured in the same manner as in Example 1 immediately after the sensor was manufactured and after the sensor was stored at a humidity of 20% for 6 months. The result is shown in Fig. 7.
Shown in. As shown in FIG. 7, the response current value of the biosensor after storage for 6 months was about 85% of that of the sensor immediately after the sensor was manufactured.
%, And the correlation between the response current value and the glucose concentration also decreased slightly.

【0023】[0023]

【発明の効果】以上のように本発明によれば、センサ中
における酵素の活性を最大限に発揮させ、酵素担持量を
削減し、廉価で保存安定性の高いバイオセンサを提供す
ることができる。
INDUSTRIAL APPLICABILITY As described above, according to the present invention, it is possible to provide a biosensor that maximizes the activity of the enzyme in the sensor, reduces the amount of enzyme supported, and is inexpensive and has high storage stability. .

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】本発明の一実施例におけるバイオセンサの反応
層を除いた概略平面図である。
FIG. 1 is a schematic plan view of a biosensor according to an embodiment of the present invention with a reaction layer removed.

【図2】本発明の他の実施例におけるバイオセンサの反
応層および2価金属の水溶性塩を除いた分解斜視図であ
る。
FIG. 2 is an exploded perspective view of a biosensor according to another embodiment of the present invention from which a reaction layer and a water-soluble salt of a divalent metal are removed.

【図3】同バイオセンサのカバーとスペーサーを重ね合
わせたカバー部材で、図2とは上下逆に配置した斜視図
である。
FIG. 3 is a perspective view of a cover member in which a cover and a spacer of the biosensor are overlapped with each other, which are arranged upside down with respect to FIG. 2.

【図4】同バイオセンサの要部の縦断面図である。FIG. 4 is a vertical cross-sectional view of a main part of the biosensor.

【図5】本発明の一実施例におけるバイオセンサの標準
試料液に対する応答特性図である。
FIG. 5 is a response characteristic diagram of the biosensor in one example of the present invention with respect to a standard sample solution.

【図6】本発明の他の実施例におけるバイオセンサの標
準試料液に対する応答特性図である。
FIG. 6 is a response characteristic diagram of a biosensor in another example of the present invention with respect to a standard sample solution.

【図7】本発明の他の実施例におけるバイオセンサの標
準試料液に対する応答特性図である。
FIG. 7 is a response characteristic diagram of a biosensor in another example of the present invention with respect to a standard sample solution.

【符号の説明】[Explanation of symbols]

1 絶縁性の基板 2、3 リード 4 作用極 5 対極 6 絶縁層 7 反応層 8 スペーサー 9 カバー 10 2価の金属の水溶性塩 11 空気孔 12 試料液供給路の開口部 13 スリット 14 試料液供給路を構成する空間部に露出する面のカ
バー側の面
1 Insulating Substrate 2, 3 Lead 4 Working Electrode 5 Counter Electrode 6 Insulating Layer 7 Reaction Layer 8 Spacer 9 Cover 10 Divalent Metal Water-Soluble Salt 11 Air Vent 12 Sample Liquid Supply Channel Opening 13 Slit 14 Sample Liquid Supply The surface on the cover side of the surface exposed in the space forming the road

フロントページの続き (56)参考文献 特開 平9−43189(JP,A) 特開 平8−278276(JP,A) 特開 平2−245650(JP,A) 特開 平2−102448(JP,A) (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) G01N 27/327 Continuation of front page (56) Reference JP-A-9-43189 (JP, A) JP-A-8-278276 (JP, A) JP-A-2-245650 (JP, A) JP-A-2-102448 (JP , A) (58) Fields investigated (Int.Cl. 7 , DB name) G01N 27/327

Claims (5)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 絶縁性の基板、前記基板上に形成された
少なくとも作用極と対極を有する電極系、前記電極系上
またはその近傍に形成された少なくともピロロキノリン
キノンを補酵素としたデヒドロゲナーゼと電子メディエ
ーターを含む反応層、および前記反応層中または反応層
の近傍で反応層とは隔離された場所の少なくとも一方に
設置された2価金属の水溶性塩を具備することを特徴と
するバイオセンサ。
1. An insulating substrate, an electrode system having at least a working electrode and a counter electrode formed on the substrate, and at least pyrroloquinoline formed on or near the electrode system.
A reaction layer containing a dehydrogenase using quinone as a coenzyme and an electron mediator, and a water-soluble salt of a divalent metal disposed in at least one of the reaction layer and a place separated from the reaction layer in the vicinity of the reaction layer. A biosensor characterized by:
【請求項2】 絶縁性の基板、前記基板上に形成された
少なくとも作用極と対極を有する電極系、前記基板に組
み合わされて基板との間に前記電極系に試料液を供給す
る試料液供給路を形成するカバー部材、前記電極系上ま
たはその近傍に形成された少なくともピロロキノリンキ
ノンを補酵素としたデヒドロゲナーゼと電子メディエー
ターを含む反応層、および前記反応層中または前記試料
液供給路の反応層とは隔離された場所の少なくとも一方
に設置された2価金属の水溶性塩を具備することを特徴
とするバイオセンサ。
2. An insulating substrate, an electrode system having at least a working electrode and a counter electrode formed on the substrate, and a sample liquid supply for supplying a sample liquid to the electrode system between the substrate and the substrate combined with the substrate. A cover member forming a channel, at least a pyrroloquinoline formed on or near the electrode system.
A water-soluble salt of a divalent metal, which is installed in at least one of a reaction layer containing dehydrogenase containing nonone as a coenzyme and an electron mediator, and a place separated from the reaction layer or the reaction layer of the sample solution supply path, A biosensor characterized by being provided.
【請求項3】 前記2価金属の水溶性塩が、親水性高分
子の膜中に担持された請求項1または2記載のバイオセ
ンサ。
3. The biosensor according to claim 1, wherein the water-soluble salt of a divalent metal is supported in a hydrophilic polymer film.
【請求項4】 前記2価金属の水溶性塩が、カルシウム
塩、カドミウム塩、マンガン塩、マグネシウム塩および
ストロンチウム塩からなる群より選ばれた少なくとも1
種である請求項1〜3のいずれかに記載のバイオセン
サ。
4. The water-soluble salt of a divalent metal is at least one selected from the group consisting of calcium salt, cadmium salt, manganese salt, magnesium salt and strontium salt.
The biosensor according to claim 1, which is a seed.
【請求項5】 前記反応層が担持する酵素量は1〜50
μm/mm2であり、前記水溶性塩の量が反応層の単位
面積当たり0.003〜0.6μg/mm2である請求
項1〜のいずれかに記載のバイオセンサ。
5. The amount of enzyme carried by the reaction layer is 1 to 50.
[mu] m / mm 2, biosensor according to any one of claims 1-4 amount of the water-soluble salt is per unit area 0.003~0.6μg / mm 2 of the reaction layer.
JP10276798A 1997-04-14 1998-04-14 Biosensor Expired - Lifetime JP3494398B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP10276798A JP3494398B2 (en) 1997-04-14 1998-04-14 Biosensor

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP9549597 1997-04-14
JP9-313653 1997-11-14
JP9-95495 1997-11-14
JP31365397 1997-11-14
JP10276798A JP3494398B2 (en) 1997-04-14 1998-04-14 Biosensor

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH11201932A JPH11201932A (en) 1999-07-30
JP3494398B2 true JP3494398B2 (en) 2004-02-09

Family

ID=27307827

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP10276798A Expired - Lifetime JP3494398B2 (en) 1997-04-14 1998-04-14 Biosensor

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP3494398B2 (en)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4627911B2 (en) * 2000-03-29 2011-02-09 パナソニック株式会社 Biosensor
JP4627912B2 (en) * 2000-11-09 2011-02-09 パナソニック株式会社 Biosensor
JP4847775B2 (en) * 2006-03-29 2011-12-28 シーシーアイ株式会社 Stable polyol dehydrogenase composition

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0652248B2 (en) * 1988-10-11 1994-07-06 松下電器産業株式会社 Biosensor
JPH0820400B2 (en) * 1989-03-17 1996-03-04 松下電器産業株式会社 Biosensor
JP3498105B2 (en) * 1995-04-07 2004-02-16 アークレイ株式会社 Sensor, method for manufacturing the same, and measuring method using the sensor
JP3437016B2 (en) * 1995-07-31 2003-08-18 松下電器産業株式会社 Biosensor and method of quantifying substrate using the same

Also Published As

Publication number Publication date
JPH11201932A (en) 1999-07-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US6059946A (en) Biosensor
US6656702B1 (en) Biosensor containing glucose dehydrogenase
US5906921A (en) Biosensor and method for quantitative measurement of a substrate using the same
US6225078B1 (en) Method for quantitative measurement of a substrate
JP3867959B2 (en) Glucose sensor
JP3297630B2 (en) Biosensor
JP2760234B2 (en) Substrate concentration measurement method
JP3267936B2 (en) Biosensor
EP0992589B1 (en) Glucose sensor
EP1126032B1 (en) Biosensor
JPWO2002093151A1 (en) Biosensor
JP2960265B2 (en) Biosensor and measurement method using the same
JP3024394B2 (en) Biosensor and measurement method using the same
JP3494398B2 (en) Biosensor
JP3770757B2 (en) Biosensor
JP3272882B2 (en) Biosensor and manufacturing method thereof
JP3267907B2 (en) Biosensor and Substrate Quantification Method Using It
JP3245103B2 (en) Biosensor and Substrate Quantification Method Using It
JP3297623B2 (en) Biosensor
JP3370414B2 (en) Manufacturing method of biosensor
JPH0783872A (en) Biosensor and manufacture thereof
JP2001343350A (en) Biosensor
JP3163218B2 (en) Biosensor manufacturing method
JP3518932B2 (en) Biosensor
JP3063442B2 (en) Biosensor and manufacturing method thereof

Legal Events

Date Code Title Description
FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20071121

Year of fee payment: 4

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20081121

Year of fee payment: 5

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20091121

Year of fee payment: 6

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20091121

Year of fee payment: 6

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20101121

Year of fee payment: 7

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20111121

Year of fee payment: 8

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20121121

Year of fee payment: 9

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20121121

Year of fee payment: 9

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20131121

Year of fee payment: 10

S111 Request for change of ownership or part of ownership

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313113

S533 Written request for registration of change of name

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313533

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350

S111 Request for change of ownership or part of ownership

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313113

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350

S111 Request for change of ownership or part of ownership

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R313113

R350 Written notification of registration of transfer

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R350

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

EXPY Cancellation because of completion of term