JP2001010974A - B細胞リンパ腫の治療のためのヒトbリンパ球限定分化抗原に対するキメラ抗体と放射能標識抗体の療法利用 - Google Patents
B細胞リンパ腫の治療のためのヒトbリンパ球限定分化抗原に対するキメラ抗体と放射能標識抗体の療法利用Info
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Abstract
20+ 細胞に対して誘導する新規な抗体及びその利用の提
供。 【解決手段】 抗−CD20抗体依存性細胞介在性細胞溶解
をCD20+ 細胞に対して誘導し且つATCC寄託番号69119 の
トランスフェクトーマにより生産されるキメラ抗体と実
質的に同じB−細胞涸渇活性を有するキメラ抗CD20抗
体、及びその利用。
Description
参考文献は、単にこの文書の出願日より前にその中に記
載された情報について説明するのであって、該参考文献
が「先行技術」であるということや、前に提出された出
願に基づいた優先権または先行発明者によって本発明者
らがそのような記載よりも日時が先行する権利を与えら
れないということの明白なまたは暗黙の認可であると解
釈してはならない。本発明は、B細胞表面抗原Bp35("C
D20")に対する放射能標識抗体およびキメラ抗体を使っ
たB細胞リンパ腫の治療に向けられる。
類人猿、サル等を含む)の免疫系は多数の器官および細
胞種から成り、これは脊椎動物宿主を侵略する外来微生
物(「抗原」)を正確且つ特異的に認識するもの;その
ような外来微生物に特異的に結合するもの;およびその
ような外来微生物を排除/破壊するものへと発展してい
った。中でもリンパ球は免疫系にとって重要である。リ
ンパ球は胸腺、脾臓および骨髄(成人)中で生産され、
そしてヒト(成人)の循環系中に存在する全白血球の約
30%を占める。リンパ球には2つの主な小集団、即ちT
細胞とB細胞がある。
細胞は抗体産生(体液性免疫)を引き起こす。しかしな
がら、T細胞とB細胞は相互依存であると見なすことが
できる。典型的免疫応答では、抗原提示細胞の表面上の
主要組織適合複合体(「MHC」)糖タンパク質に結合
している抗原の断片にT細胞レセプターが結合するとT
細胞が活性化される。そのような活性化が生物学的媒介
物質(「インターロイキン」)の放出を引き起こし、こ
れが本質的にB細胞を刺激して分化させそして該抗原に
対する抗体(「免疫グロブリン」)を生産させる。
体を発現する。よって、或るB細胞は或る抗原に特異的
な抗体を発現し、別のB細胞は別の抗原に特異的な抗体
を発現するだろう。従って、B細胞は非常に多様であ
り、この多様性が免疫系にとって重要である。ヒトで
は、各B細胞が無数の抗体分子(即ち約107 〜108 )を
生産することができる。そのような抗体産生は、最も典
型的には外来抗原が中和された時に停止する(または実
質的に減少する)。しかし、時に、特定のB細胞の増殖
が衰えずに続くことがある。そのような増殖は「B細胞
リンパ腫」と呼ばれる癌を引き起こし得る。
の「マーカー」として利用することができる細胞表面タ
ンパク質を含んで成る。1つのそのようなヒトB細胞マ
ーカーは、「CD20」と呼ばれるヒトBリンパ球限定分化
抗原Bp35である。CD20は初期プレB細胞発達の間に発現
され、形質細胞分化まで残存する。特に、CD20分子は細
胞周期開始と分化に必要とされる賦活過程の中の一段階
を調節すると思われ、通常、新生物性(「腫瘍」)B細
胞上に非常に高レベルで発現される。CD20は、定義上、
「正常」B細胞と「悪性」B細胞(即ち衰えない増殖が
B細胞リンパ腫を引き起こし得るB細胞)の両方の上に
存在する。よって、CD20表面抗原はB細胞リンパ腫の
「ターゲティング(標的指向)」の候補者として働く可
能性を有する。
次のようにして発生させることができる:B細胞のCD20
表面抗原に特異的な抗体を例えば患者に注射する。それ
らのCD20抗体は正常B細胞と悪性B細胞の両方(表向き
は)のCD20表面抗原に特異的に結合する。CD20表面抗原
に結合した抗CD20抗体は新生物性B細胞の破壊と涸渇を
引き起こすことができる。その上、腫瘍を破壊する可能
性を有する化学物質または放射能標識が例えば新生物性
B細胞に特異的に送達されるように、そのような物質を
抗CD20抗体に接合することができる。アプローチにかか
わりなく、主目標は腫瘍を破壊することである。特定の
アプローチは使用する特定の抗CD20抗体により決定され
得るので、従ってCD20抗原をターゲティングするための
利用可能なアプローチは異なり得る。
試みが報告されている。報告によればネズミ(マウス)
モノクローナル抗体 1F5(抗CD20抗体)を連続点滴静注
によりB細胞リンパ腫患者に投与した。報告によれば循
環している腫瘍細胞を涸渇させるのに非常に高レベル
(>2グラム)の1F5 が必要であり、結果は「一時的」
であると記載された。Press ら、"Monoclonal Antibody
1F5 (Anti-CD20) Sero-therapy of Human B-Cell Lymp
homas." Blood 69/2:584-591(1987)。
トモノクローナル抗体(例えばマウスモノクローナル抗
体)が典型的にはヒトエフェクター機能を欠くこと、即
ちそれらが特に補体依存性細胞溶解を媒介したり抗体依
存性細胞障害もしくはFcレセプター媒介性食作用を通
してヒト標的細胞を溶解したりできないことである。更
に、非ヒトモノクローナル抗体はヒト宿主により外来タ
ンパク質として認識され得る。従って、そのような外来
抗原の反復注入は、有害な過敏性反応となる免疫応答を
誘導し得る。マウス由来のモノクローナル抗体について
は、これはヒト抗マウス抗体応答または"HAMA"と呼ばれ
ている。その上、それらの「外来」抗体は宿主の免疫系
によって攻撃され、その結果それらが標的部位に到達す
る前に事実上中和されてしまうことがある。
理由で放射線療法に対して本質的に感受性である。放射
能標識抗体のイオン化放射線の局所放出は、抗原に結合
した抗体の極めて近位に標的抗原(例えばCD20)を有す
るまたは有しない細胞を殺すことができ;透過性放射線
は嵩張ったまたは血管形成の乏しい腫瘍中の抗体への接
近の制限という問題を除去することができ;そして、必
要とされる抗体の総量を減らすことができる。放射性核
種は、細胞修復機構が細胞を生存させておくことができ
ない箇所に環状DNAに損傷を与えることができる放射
性粒子を発生する。従って、標的が腫瘍ならば、放射能
標識は腫瘍細胞を有利に殺傷する。放射能標識抗体は、
定義によれば、患者(即ち可能な骨髄移植)と健全な提
供者(即ち放射能で処理する時に高度の注意を払う必要
性)の両方に対して用心する必要性がある放射性物質の
使用を含む。
マウスモノクローナル抗体の能力を改善するアプローチ
は、放射能標識または毒素が腫瘍部位に局在化されるよ
うに標識または毒素を抗体に接合させることであった。
例えば、上述のIF5 抗体はヨウ素131 (「131 I」)で
「標識」され、そして伝えられるところによれば2人の
患者で生体内分布について評価された。Eary, J.F.ら、
"Imaging and Treatment of B-Cell Lymphoma" J. Nuc.
Med. 31/8:1257-1268 (1990) を参照のこと。
actory Non-Hodgkin's Lymphoma with Radiolabeled MB
-1 (Anti-CD37) Antibody" J. Clin. Onc. 7/8:1027-10
38 (1989) (131I標識IF-5で治療した1人の患者が「部
分応答」を達成したことを指摘している);Goldenber
g, D.M.ら、"Targeting, Dosi-metry and Radioimmunot
herapy of B-Cell Lymphomas with Iodine-131-Labeled
LL2 Monoclonal Antibody" J. Clin. Onc. 9/4:548-56
4 (1991) (複数回注射を受けた8人の患者のうちの3
人がHAMA応答を発生したことを報告している);Appelb
aum, F.R. "Radiolabeled Monoclonal Antibodies in t
he Treatment of Non-Hodgkin's Lymphoma" Hem./Onc.
Clinics of N.A. 5/5:1013-1025 (1991)(総説文献);
Press, O.W. ら、"Radiolabeled-Antibody Therapy of
B-Cell Lymphoma with AutologousBone Marrow Suppor
t." New England Journal of Medicine 329/17:1219-12
223(1993)(ヨウ素131-標識抗CD20抗体IF5 およびB1)
およびKaminski, M.G.ら "Radioimmunotherapy of B-Ce
ll Lymphoma with [131I] Anti-B1 (Anti-CD20) Antibo
dy" NEJM 329/7 (1993) (ヨウ素131-標識抗CD20抗体B
1;以後"Kaminski"と称する)も参照のこと。
ンCのような化学療法剤)も抗体に接合されている。例
えば、PCT出願公開WO 92/07466 (1992年5月14日公
開)を参照のこと。「接合」抗体の代わりとして、「キ
メラ」抗体、即ち2以上の異なる種(例えばマウスとヒ
ト)からの部分を含んで成る抗体が開発されている。例
えば、Liu,A.Y. ら、"Production of a Mouse-Human Ch
imeric Monoclonal Antibody to CD20 with Potent Fc-
Dependent Biologic Activity" J. Immun. 139/10:3521
-3526 (1987) は、CD20抗原に対して向けられたマウス
/ヒトキメラ抗体を記載している。PCT公報第WO 88/
04936 号も参照のこと。しかしながら、B細胞障害の治
療のためのそのようなキメラ抗体の能力、効力または実
用性に関する情報は該文献中に全く与えられていない。
溶解("CDC") ;抗体依存性細胞障害("ADCC")等〕は、特
異抗原を発現している標的細胞を破壊または涸渇させる
キメラ抗体の生体内能力を本質的に予測することはでき
ないと言及されている。例えば、Robinson, R.D.ら、"C
himeric mouse-human anti-carcinoma antibodies that
mediatedifferent anti-tumor cell biological activ
ities", Hum. Anti-bod. Hybridomas 2:84-93 (1991)
(検出不可能なADCC活性を有するキメラマウス−ヒト抗
体)を参照のこと。従って、キメラ抗体の治療効力は生
体内実験によってのみ正しく評価することができる。必
要とされ且つ大きな技術進歩になると思われるものは、
霊長類(ヒトを含むがそれに限定されない)におけるB
細胞リンパ腫の治療のためにCD20抗原をターゲティング
する治療法である。
用に考案された治療法が本明細書中に開示される。それ
らのプロトコールは、リンパ腫に関係するB細胞を含む
末梢血B細胞の涸渇のための免疫学的に活性なキメラ抗
CD20抗体の投与;局在化されそして末梢B細胞に関係づ
けられた腫瘍をターゲティングするための放射能標識抗
CD20抗体の投与;および協同的療法(組合せ療法)にお
けるキメラ抗CD20抗体と放射能標識抗CD20抗体の投与に
基づく。
軽鎖分子と2つの重鎖分子から構成される。それらの鎖
は通常「Y」字形を形成し、軽鎖と重鎖の両方がYのア
ーム部分を形成し、重鎖がYのつけ根部分を形成してい
る。軽鎖と重鎖は構造的および機能的相同性の領域(ド
メイン)に分けられる。軽鎖の可変領域(「VL 」)と
重鎖の可変領域(「VH 」)は認識と特異性を決定す
る。軽鎖の定常領域((「CL 」)と重鎖の定常領域
(「CH 」)は重要な生物学的性質、例えば抗体鎖会
合、分泌、経胎盤移動性、Fcレセプター結合補体結合等
を付与する。抗体産生細胞における免疫グロブリン遺伝
子発現をもたらす一連の現象は複雑である。
および「JH 」、または「VL 」および「JL 」と呼ば
れる別々の生殖細胞系列遺伝子セグメントの中に位置し
ている。それらの遺伝子セグメントがDNA再配列によ
り連結して、それぞれ重鎖および軽鎖中に現れる完全な
V領域を形成する。次いで、再配列され連結されたVセ
グメント(VL −JL およびVH −D−JH )が、それ
ぞれ軽鎖および重鎖の完全な可変領域または抗原結合領
域をコードする。
を使ったヒトB細胞リンパ腫の血清療法はPress らによ
り記載されている(69 Blood 584, 1987, 前掲)。この
報告された療法応答は不運にも一時的であった。更に、
報告によれば、試験した患者の25%が該血清療法に対し
てヒト抗マウス抗体(HAMA)応答を発生した。Pressら
は、毒素または放射性同位体に接合したそれらの抗体が
未接合抗体よりも長く持続する臨床的利益を付与するか
もしれないことを示唆している。
に実行可能な治療法を提供するごく現実的な必要性のた
めに、我々はアプローチ間を共通に結び付けるものとし
て特定の抗体2B8 を有する様々なアプローチに着手し
た。1つのそのようなアプローチは、末梢血B細胞を容
易に且つ効率的に再生させる哺乳動物系の能力を有利に
活用する。このアプローチを使って、我々は本質的にB
細胞リンパ腫を除去する手段として末梢血およびリンパ
系組織中のB細胞を追放または涸渇させようと試みる。
特に免疫学的に活性なキメラ抗CD20抗体の使用によりこ
れを達成する。別のアプローチでは、放射性標識による
破壊のため腫瘍細胞をターゲティング(標的指向)しよ
うと試みる。
体」は、典型的にはヒトBリンパ球限定分化抗原Bp35と
命名された、一般的にCD20と呼ばれる35,000ダルトンの
細胞表面非グリコシル化リンタンパク質を特異的に認識
する抗体である。本明細書中で使用する時、抗CD20抗体
に関して使用する時の用語「キメラ」は、最も好ましく
は組換えデオキシリボ核酸技術を使って誘導され、ヒト
(免疫学的「親類」種、例えばチンパンジーを含む)成
分と非ヒト成分の両方を含んで成る抗体を包含する。キ
メラ抗体の定常領域は、最も好ましくは天然ヒト抗体の
定常領域と実質的に同じであり;キメラ抗体の可変領域
は、最も好ましくは非ヒト源に由来し、CD20細胞表面抗
原に対する所望の抗原性と特異性を有する。
ヒトCD20細胞表面抗原を含んで成る物質に対する抗体を
産生させるのに使うことができる任意の脊椎動物源であ
ることができる。そのような非ヒト源としては、齧歯類
(例えばウサギ、ラット、マウス等)および非ヒト霊長
類(例えば類人猿、サル等)が挙げられるがそれらに限
定されない。最も好ましくは、非ヒト成分(可変領域)
はマウス源に由来する。本明細書中で使用する時、キメ
ラ抗CD20抗体に関して使用する時の「免疫学的に活性
な」という語は、ヒトC1q を結合し、ヒトBリンパ系細
胞系の補体依存性細胞溶解("CDC") を媒介し、且つ抗体
依存性細胞障害("ADCC")を通してヒト標的細胞を溶解す
るキメラ抗体を意味する。
よび「間接標識アプローチ」という用語は共に、キレー
ト化剤が抗体に共有結合的に取り付けられ、そして該キ
レート化剤中に少なくとも1つの放射性核種が挿入され
ることを意味する。好ましいキレート化剤および放射性
核種はSrivagtava, S.C.およびMease, R.C., "Progress
in Research on Ligands, Nuclides and Techniques f
or Labeling Monoclonal Antibodies," Nucl. Med. Bi
o. 18/6: 589-603 (1991) ("Srivagtava") 中に記載さ
れている。
る。特に好ましいキレート化剤は1−イソチオシアネー
トベンジル−3−メチルジエチレントリアミンペンタ酢
酸("MX-DTPA" )であり;間接標識に特に好ましい放射
性核種としてはインジウム[111] とイットリウム[90]が
挙げられる。本明細書中で使用する時、「直接標識」お
よび「直接標識アプローチ」という用語は、放射性各種
が抗体に共有結合的に直接取り付けられる(典型的には
アミノ酸残基によって)ことを意味する。好ましい放射
性核種は"Srivagtava"中に与えられている。直接標識に
特に好ましい放射性核種は、チロシン残基によって共有
結合的に取り付けられるヨウ素[131] である。間接標識
アプローチが特に好ましい。
血B細胞を迅速に回復または再生させる霊長類の免疫系
の能力に基づいている。その上、霊長類の主要な免疫応
答はT細胞により誘発されるので、免疫系が末梢血B細
胞欠損を有する時は、「特別な」用心(例えば患者の隔
離など)の必要はない。霊長類の免疫系のそれらおよび
他の繊細さの結果として、我々のB細胞障害の治療方法
は、免疫学的に活性なキメラ抗CD20抗体を使った末梢血
B細胞の浄化(purging )を考慮に入れている。
血液に接近する必要性があることを示し得るので、免疫
学的に活性な抗CD20抗体と放射能標識抗CD20抗体の投与
経路は好ましくは非経口である。本明細書中で使用する
時、「非経口」なる用語は静脈内、筋内、皮下、直腸、
膣内または腹腔内投与を包含する。それらのうち静脈内
投与が最も好ましい。
能標識抗CD20抗体は、典型的には、標準技術により、医
薬上許容される緩衝液、例えば無菌塩類溶液、無菌緩衝
化水、プロピレングリコール、前記のものの組合せ、等
の中に提供されるだろう。非経口投与可能な薬剤の調製
方法はPharmaceutical Carriers & Formulations, Mart
in, Remington's Pharmaceutical Sciences, 第15版
(Mack Pub. Co.,Easton, PA 1975)に記載されている。
これは参考として本明細書中に組み込まれる。任意の与
えられた患者において独特の治療効果を生じさせるのに
有用である免疫学的に活性なキメラ抗CD20抗体の特定の
治療的有効量は、当業者に公知の標準技術により決定す
ることができる。
量(即ち治療的有効量)は、約0.001 〜約30mg/kg体
重、より好ましくは約0.01〜約25mg/kg体重、最も好ま
しくは約0.4 〜約20.0mg/kg体重の範囲である。他の用
量も実行できる。用量に影響を及ぼす因子としては、病
気の重度;前の治療方法;患者の全体的健康;存在する
他の病気等が挙げられるがそれらに限定されない。当業
者は、特定の患者を評価しそして前記範囲内に入る適当
な用量、または必要ならば範囲の外側の用量を容易に決
定することができると思う。
CD20抗体の導入は、1回治療または一連の治療として行
うことができる。キメラ抗体に関しては、そのような導
入が一連の治療として実施されるのが好ましい。この好
ましいアプローチは、この病気に関係する治療方法論の
上に基づいている。何ら特定の理論に結び付けようとし
なくても、免疫学的に活性な抗CD20抗体は免疫学的に活
性であり且つCD20に結合するため、個体への免疫学的に
活性な抗CD20抗体の初回導入と同時に、末梢血B細胞涸
渇が始まるだろう。我々は、点滴注入治療後約24時間以
内にほぼ完全なB細胞涸渇を観察した。
20抗体(または放射能標識抗CD20抗体)のその後の導入
は、a)残っている末梢血B細胞を浄化する;b)リン
パ節からのB細胞涸渇を開始する;c)他の組織源、例
えば骨髄、腫瘍等からのB細胞涸渇を開始すると推定さ
れる。繰り返し言うと、免疫学的に活性な抗CD20抗体の
反復導入を使うことにより、一連の現象が起こる。我々
は、これらの各現象を病気の有効治療に重要と見なし
た。第一の「現象」は、主に患者の末梢血B細胞を実質
的に涸渇させることを指令するものとして見なすことが
でき;次の現象は主に、同時にもしくは連続的に系から
残りのB細胞を浄化し、リンパ節B細胞を浄化しまたは
他の組織B細胞を浄化することを指令するものとして見
なすことができる。
療/管理に効果的に利用することができるけれども、好
ましい治療過程は数段階に渡り起こり、約2〜10週間に
渡り、最も好ましくは約4週間に渡り、1週間に1回、
約0.4 〜約20mg/kg体重の免疫学的に活性なキメラ抗CD
20抗体が患者に投与される。
は非キメラであるのが好ましい。この好ましさは、マウ
ス抗体と比較するとキメラ抗体の循環半減期が有意に長
いことに基づいている(即ち、循環半減期が長ければ、
放射性核種が長期間に渡り患者内に存在する)。しかし
ながら、マウス抗体と比べてより低いミリキューリー
("mCi" )線量でキメラ抗体と組み合わせて使用するこ
とにより、放射性キメラ抗体を有利に使用することがで
きる。この筋書きは、治療的効用を維持しながら、許容
できるレベルへの骨髄毒性の減少を考慮に入れている。
当業者は様々な状況下でどの放射性核種が最も適当であ
るかを容易に決定する能力を有すると思われる。例え
ば、ヨウ素[131] は標的免疫療法に使われる公知の放射
性核種である。しかしながら、ヨウ素[131] の臨床的有
用性は次に挙げる幾つかの因子により制限され得る:8
日の物理的半減期;血液中と腫瘍部位の両方におけるヨ
ウ素化抗体の脱ハロゲン化;および腫瘍中への局在化さ
れた用量沈着にとって次善となり得る発光性質(例えば
多量のγ成分)。優れたキレート化剤の出現により、金
属キレート化基をタンパク質に取り付ける機会が、イン
ジウム[131] やイットリウム[90]といった他の放射性核
種を利用する機会を増加させた。
への利用に幾つかの利点を提供する。イットリウム[90]
の64時間という半減期は腫瘍による抗体蓄積を可能にす
るのに十分長く、そして例えばヨウ素[131] と異なり、
イットリウム[90]は100 〜1000細胞直径の組織の範囲
で、それの崩壊の間に全く付随のγ放射を伴わない高エ
ネルギーの純粋なβ発射体である。更に、透過する放射
線の最小線量はイットリウム[90]標識抗体の外来患者投
与を考慮に入れる。また、細胞致死に標識抗体の介在を
必要とせず、そしてイオン化放射線の局所放出が標的抗
原を欠く近隣の腫瘍細胞にも致死的であるだろう。
制限は、それを使った画像診断を難しくする有意なγ線
の欠如に基づく。この問題を回避するために、イットリ
ウム[90]標識抗CD20の治療線量の投与前に腫瘍の位置と
相対的大きさを決定するのに「画像診断用」放射性核
種、例えばインジウム[111] を使うことができる。イン
ジウム[111] は診断用放射性核種として特に好ましい。
何故なら、約1〜約10mCi の間は検出可能な毒性を伴わ
ずに安全に投与することができ;そして画像診断データ
は一般にその後のイットリウム[90]標識抗体の分布を予
測する。
[111] 標識抗体を利用する。というのは、この線量は安
全であり且つ低線量に比較して増大された画像診断効率
を有するからである。この場合、最適な画像診断は抗体
投与後3〜6日目に行う。例えば、Murray, J.L., 26
J. Nuc. Med. 3328 (1985) およびCarraguillo, J.A.
ら, 26 J. Nuc. Med. 67 (1985) を参照のこと。
療有効量(即ち治療的有効量)は約5〜約75 mCi、より
好ましくは約10〜約40 mCiの範囲である。ヨウ素[131]
標識抗C20 抗体の非骨髄剥離的1回治療有効量は約5〜
約70 mCi、より好ましくは約5〜約40 mCiの範囲であ
る。ヨウ素[131] 標識抗C20 抗体の剥離的1回治療有効
量(即ち、自系骨髄移植を必要とし得る)は約30〜約60
0 mCi 、より好ましくは約50〜約500 mCi 未満の範囲で
ある。キメラ抗C20 抗体と組み合わせた場合、マウス抗
体に比較してより長い循環半減期のため、ヨウ素[131]
標識キメラ抗C20抗体の非骨髄剥離的1回治療有効量
は、約5〜約40 mCi、より好ましくは約30 mCi未満の範
囲である。例えばインジウム[111] 標識の画像診断基準
は、典型的には約5mCi 未満である。
使った療法は1回療法処置または複数回処置を利用して
行うことができる。放射性核種成分のため、治療前に、
放射線から生じる潜在的に致死的な骨髄毒性を経験して
いる患者については末梢幹細胞("PSC") または骨髄("B
M")を「収穫」することが好ましい。標準技術を使ってB
Mおよび/またはPSC を収穫し、次いでパージし、そし
て可能な再注入のために凍結しておく。また、治療前に
診断用標識抗体(例えばインジウム[111] を使ったも
の)を使って患者に診断的線量計測研究を行うことが最
も好ましい。その目的は、治療用標識抗体(例えばイッ
トリウム[90]を使ったもの)がいずれかの正常な器官ま
たは組織において不必要に「濃縮」されたりしないこと
を保証することである。
る。例えば、Morrison, S.L.ら、PNAS11:6851-6854 (1
984年11月);欧州特許公開第173494号;Boulianne, G.
L. ら、Nature 312:642(1984年12月);Neubeiger, M.
S. ら、Nature 314:268(1985年3月);欧州特許公開
第125023号;Tan ら、J. Immunol. 135:8564(1985年11
月);Sun, L.K. ら、Hybridoma 5/1:517 (1986);Saha
gan ら、J. Immunol. 137:1066-1074 (1986)を参照のこ
と。一般的には、Muron, Nature 312:597 (1984年12
月);Dickson, Genetic Engineering News 5/3 (1985
年3月);Marx, Science 229, 445(1985年8月);お
よびMorrison, Science 229:1202-1207 (1985年9月)
を参照のこと。
6 号において、ヒト定常領域とマウス可変領域を有し、
CD20のエピトープに対して特異性を有するキメラ抗体を
記載している。Robinson参考文献のキメラ抗体のマウス
部分は2H7 マウスモノクローナル抗体に由来する(γ2
b,κ)。この参考文献は記載のキメラ抗体がB細胞障
害の治療に向けての「第一候補者」であることを記載し
ているが、特にこの参考文献は治療効能の断定を支持す
るデータを欠いており、また重要なことに、霊長類また
はヒトといったより高等の哺乳動物を使ったデータも欠
いているため、この記述は、この提言がこの特定抗体に
的確であるかどうかを決定するための当業者への提言に
過ぎないと見なすことができる。
用可能である。例えば、別々のプラスミド中の免疫グロ
ブリン軽鎖と免疫グロブリン重鎖を使って、軽鎖と重鎖
を別々に発現させることができる。次いでそれらを精製
し、試験管内で完全な抗体に構築することができる。そ
のような構築を達成するための方法論は記載されてい
る。例えば、Scharff, M., Harvey Lectures 69:125 (1
974)を参照のこと。
体を形成させるための試験管内反応パラメーターも記載
されている。例えば、Beychok, S., Cells of Immunogl
oblin Synthesis, Academic Press, New York, p. 69,
1979を参照のこと。完全なH2L2 IgG抗体への重鎖と軽鎖
の細胞内会合および連鎖を達成するために同一細胞中で
の軽鎖と重鎖の同時発現も可能である。そのような同時
発現は、同一宿主細胞中で同一プラスミドまたは異なる
プラスミドのいずれかを使って達成することができる。
抗CD20抗体を作製するための我々の最も好ましいアプロ
ーチであるものは、ヒト起源の重鎖および軽鎖定常領域
をコードするDNAを最初から含有する発現ベクターの
利用に基づく。そのようなベクターは、様々な非ヒト抗
CD20抗体を生成し、分泌しそして種々の特性(例えば結
合特異性の型、エピトープ結合領域等)について分析す
ることができるように、非ヒト可変領域をコードするD
NAの挿入を考慮に入れる。その後で、好ましいかまた
は所望の抗CD20抗体からの軽鎖および重鎖可変領域をコ
ードするcDNAを該ベクター中に組み込むことができ
る。本発明者らはそれらの型のベクターを縦列式キメラ
抗体発現("TCAE")ベクターと呼ぶ。
性なキメラ抗CD20抗体を生産するのに使用した最も好ま
しいTCAEベクターはTCAE 8である。TCAE 8は、本特許文
書の譲渡人が所有するベクター(TCAE 5.2と命名)の誘
導体であり、TCAE 5.2では優性選択可能マーカー(ネオ
マイシンホスホトランスフェラーゼ、"NEO" )の翻訳開
始部位が共通Kozak 配列であり、TCAE 8ではこの領域が
部分的に損傷された共通Kozak 配列であるという点が異
なる。タンパク質発現に対するTCAEベクター("ANEX ベ
クター" とも呼称される)の優性選択可能マーカーの開
始部位の影響に関する詳細は、本出願と一緒に出願され
た同時係属出願の中に詳細に開示されている。
り、それらは縦列に置かれ、即ち可変領域を欠くヒト免
疫グロブリン軽鎖;可変領域を欠くヒト免疫グロブリン
重鎖;DHFR;およびNEO の順に置かれる。各転写カセッ
トはそれ自身の真核プロモーターとポリアデニル化領域
を含有する(TCAE 8ベクターの略図である図1を参照の
こと)。詳しくは、 1)免疫グロブリン重鎖の前のCMVプロモーター/エ
ンハンサーは、−350位の NheI部位から−16位の Sst
I部位まで、軽鎖の前のプロモーター/エンハンサーの
先端が切り取られた変形である(41 Cell, 521, 1985を
参照のこと)。
PCR反応によるcDNAの増幅によって誘導された。
TCAE 8では、これはヒト免疫グロブリン軽鎖κ定常領域
〔Kabat 番号付け法でアミノ酸108-214 、アロタイプKm
3(Kabat, E.A. "Sequencesof proteins of immunolog
ical interest," NIH Publication, 第5版,No.91-324
2, 1991を参照のこと)〕およびヒト免疫グロブリン重
鎖γ1定常領域〔Kabat 番号付け法でアミノ酸114-478
、アロタイプGmla, Gmlz〕であった。
ls Corpora- tion, La Jolla, CA)から単離され;そこ
から得たRNAを使ってcDNAを合成し、次いでPC
R技術を使ってcDNAを増幅させた(Kabat からの共
通配列に関してプライマーを誘導した)。ヒトIgG1ベク
ター(3 Prot. Eng. 531, 1990;ベクターpNγ162 )に
よりトランスフェクトされた細胞から誘導されたRNA
から調製したcDNAから重鎖を単離した(PCR技術
を使って)。Kabat からの共通アミノ酸配列と一致させ
るために、単離されたヒトIgG1中の2つのアミノ酸が変
更され、即ち、アミノ酸225 がバリンからアラニンに
(GTT からGCA に)変更され、そしてアミノ酸287 がメ
チオニンからリジンに(ATG からAAG に)変更された。
セットは、免疫グロブリン鎖の分泌のために合成シグナ
ル配列を含有する。 4)ヒト免疫グロブリン軽鎖および重鎖カセットは、転
写解読枠を維持し且つ免疫グロブリン鎖の中に通常見つ
かるアミノ酸を変更しないような軽鎖および重鎖免疫グ
ロブリン可変領域の挿入を考慮した特定のDNA制限部
位を含有する。
モーター(マウスβ−グロビン主要プロモーター、"BET
A")とポリアデニル化領域(ウシ成長ホルモンポリアデ
ニル化領域、"BGH" )を含んだ。 6)NEO カセットは、それ自身の真核プロモーター(BE
TA)とポリアデニル化領域(SV40初期ポリアデニル化領
域、"SV")を含んだ。TCAE 8ベクターとNEO カセットに
関しては、Kozak 領域は部分的に損傷された共通Kozak
配列(上流の ClaI部位を含む)であった:
がある、即ちccAcc )。
トの特定成分を含む)は図2〜図11に与えられる(配列
番号1)。当業者により認識されるように、TCAEベクタ
ーは、免疫学的に活性なキメラ抗C20 抗体を生産させる
上で実質的に時間を削減することを考慮に入れる。非ヒ
ト軽鎖および重鎖可変領域の調製と単離、次いでそれら
をヒト軽鎖定常転写カセットとヒト重鎖定常転写カセッ
ト中に組み込むことは、免疫学的に活性なキメラ抗C20
抗体の生産に備える。
技術を使って、CD20抗原に対する特異性を有する最も好
ましい非ヒト可変領域を誘導した。ポリメラーゼ連鎖反
応(「PCR」)技術を使って、マウス軽鎖および重鎖
可変領域を直接TCAE 8ベクター中にクローニングした。
これはTCAEベクター中への非ヒト可変領域の組み込みの
ための最も好ましいルートである。この好ましさは主と
して、PCR反応の効率と挿入の精度に基づいている。
しかしながら、この作業を達成する他の同等の手順も利
用可能である。例えば、TCAE 8(または同等のベクタ
ー)を使って、非ヒト抗CD20抗体の可変領域の配列を
得、次いで該配列の一部分、または適当ならば全配列の
オリゴヌクレオチド合成を行い、その後で、該部分また
は全合成配列をベクター中の適当な位置に挿入すること
ができる。当業者はこの作業を達成する能力を有すると
思う。
ラ抗CD20抗体は、CD20に対するモノクローナル抗体から
誘導したマウス可変領域を含むTCAE 8ベクターの使用に
より誘導した。この抗体(下記に詳細に記載する)は"2
B8" と称する。TCAE 8中の2B8 から得られた可変領域の
完全配列("TCAE 8 中の抗CD20" )は図12〜21に記載さ
れる(配列番号2)。
好ましくは哺乳動物起源のものである。当業者はその中
で発現させようとする所望の遺伝子産物に最も適する特
定の宿主細胞系を優先的に決定する能力を有すると思わ
れる。典型的な宿主細胞系としては、DG44とDUXBII(チ
ャイニーズハムスター卵巣細胞系、DHFR- )、HELA(ヒ
ト頸部癌)、CVI (サル腎臓系)、COS (SV40T抗原を
有するCVI の誘導体)、R1610 (チャイニーズハムスタ
ー繊維芽細胞)、BALBC/3T3 (マウス繊維芽細胞)、HA
K (ハムスター腎臓系)、SP2/0 (マウスミエロー
マ)、P3x63-Ag3.653 (マウスミエローマ)、BFA-lclB
PT(ウシ内皮細胞)、RAJI(ヒトリンパ球)および293
(ヒト腎臓)が挙げられるがそれらに限定されない。宿
主細胞系は典型的には商業施設から、the American Tis
sue Culture Collectionからまたは発表された文献から
入手することができる。
SP2/O のいずれかである。Urland,G.ら、"Effect of ga
mma rays and the dihydroforate reductase locus: de
letions and inversions." Som. Cell & Mol.Gen. 12/
6:555-566 (1986)およびSchulman, M.ら、"A better ce
llline for making hybridomas secreting specificant
ibodies." Nature 276:269 (1987)をそれぞれ参照のこ
と。最も好ましくは、宿主細胞系はDG44である。
クションは、当業界で利用可能な任意の技術を使って達
成することができる。それらとしては、トランスフェク
ション(電気泳動およびエレクトロポレーションを含
む)、エンベロープDNAを使った細胞融合、マイクロ
インジェクション、およびそのままのウイルスによる感
染が挙げられるがそれに限定されない。Ridgway, A.A.
G., "Mammalian Expression Vectors." 第24.2章, 47
0-472 頁, Vectors, RodriguesおよびDenhardt編(Butt
erworths, Boston, MA1988)を参照のこと。最も好まし
いのは、エレクトロポレーションによる宿主中へのプラ
スミド導入である。
なく、また本発明を限定すると解釈してはならない。そ
れらの実施例は、放射能標識抗CD20抗体("I2B8");放
射能標識抗CD20抗体("Y2B8");および特定ベクター
("TCAE 8")とマウス抗CD20モノクローナル抗体("2B
8" )由来の可変領域を使って誘導された免疫学的に活
性なキメラ抗CD20抗体("C2B8")、を使った用量イメー
ジングを証明するつもりである。
) BALB/Cマウスを3〜4カ月の期間に渡る毎週の注射によ
りヒトリンパ芽球様細胞系SB(Adams, R.A. ら、"Direc
t implantation and serial transplantationof human
acute lymphoblastic leukemia in hamsters, SB-2." C
an. Res. 28:1121-1125 (1968) を参照のこと;この細
胞系はATCC受入れ番号ATCC CCL 120のもとにthe Americ
an Tissue Culture Collection, Rockville, MD.から入
手可能である)で繰り返し免疫処置した。
時に抗CD20抗体(使用した抗CD20抗体は、Leu 16, Beck
ton Dickinson, San Jose, CA, カタログNo.7670 ;お
よびB1, Coulter Corp., Hialeah, FL, カタログNo.660
2201であった)の高血清力価を証明するマウスを同定し
た。次いでそのようなマウスの脾臓を切除した。Einfel
d, D.A. ら (1988) EMBO 7:711に記載されたプロトコー
ルに従って脾臓細胞をマウスミエローマSP2/0 と融合さ
せた(SP2/0 はATCC受入れ番号ATCC CRL 8006を有す
る)。
ムノアッセイにより行われた。簡単に言えば、Valentin
e, M.A. ら(1989) J. Biol. Chem. 264:11282 に記載さ
れたようなヨードビーズ法により、精製した抗CD20 B1
を125 Iで放射能標識した。(125 I−ヨウ化ナトリウ
ム,ICN, Irvine, CA, カタログNo.28665H )。各々の
融合ウエルからの培地0.05mlを、1% BSA, PBS (pH 7.4)
中の125 I標識抗CD20B1 (10 ng) 0.05mlおよび100,000
個のSB細胞を含む同緩衝液 0.05 mlと一緒にインキュ
ベーションすることにより、ハイブリドーマをスクリー
ニングした。
96ウエルのタイタープレート(V&PScientific, San Die
go, CA )に移すことにより細胞を収集し、徹底的に洗
浄した。未標識抗CD20 B1 を含有する複製ウエルと阻害
抗体を全く含まないウエルを、それぞれ正の対照と負の
対照として使用した。50%阻害以上を含有するウエルを
増殖させ、クローニングした。クローニングした細胞系
から最大阻害を示す抗体が誘導され、これを"2B8" と命
名した。
−メチルジエチレントリアミンペンタ酢酸(" 14C標識
MX-DTPA")を2B8 への放射能標識の接合のためのキレー
ト化剤として使用した。無金属条件を維持するためにMX
-DTPA の操作を行った。即ち、無金属試薬を使用し、そ
して可能な時には、Alconox で洗浄しMilli-Q 水で濯い
だポリプロピレン製プラスチック容器(フラスコ、ビー
カー、メスシリンダー、ピペットチップ)を同様に使用
した。MX-DTPA をOtto Gansow 博士(National Institu
te of Health, Bethesda, MD)から乾燥固体形態として
入手し、4℃で乾燥保存した(遮光下で)。Milli-Q 水
中に2 〜5 mMの濃度の原液を調製し、−70℃で保存し
た。MX-DTPA は水中の二ナトリウム塩としてCoulterImm
unology (Hialeah, Florida) からも得られ、これを−7
0℃で保存した。
con )を使った繰り返し緩衝液交換を利用して、150mM
NaClを含む無金属の50mMバイシン−NaOH, pH 8.6中に2B
8 抗体を移すことにより、MX-DTPA との接合用の精製2B
8 を調製した。一般に、該フィルター装置に50〜200 μ
lのタンパク質(10mg/nl)を加え、次いで2mlのバイ
シン緩衝液を加えた。Sorval SS-34ローター中で4℃で
該フィルターを遠心した(6,000 rpm, 45 分)。滞留液
容量は約50〜100 μlであった。同フィルターを使って
この工程を2回繰り返した。滞留液をポリプロピレン製
1.5 mlスクリューキャップ付試験管に移し、タンパク質
について分析し、10.0mg/mlに希釈し、使用まで4℃で
保存した。上述のプロトコールを使って同様に該タンパ
ク質を150mM NaClと0.05%アジ化ナトリウムを含む50mM
クエン酸ナトリウム, pH 5.5中に移した。
験管中で実施した。凍結したMX-DTPA 原液を使用直前に
解凍した。10mg/mlのタンパク質50〜200 mlを、4:1
のMX-DTPA :2B8 のモル比においてMX-DTPA と反応させ
た。MX-DTPA 原液を添加しそして穏やかに混合すること
により反応を開始した。接合は周囲温度で一晩(14〜20
時間)進行させておいた。実施例I. B. ii. において
上述したような0.05%アジ化ナトリウムを含む無金属生
理的食塩水(0.9 %w/v )中への透析または反復限外濾
過により、接合体から未反応のMX-DTPA を除去した。タ
ンパク質濃度を10mg/mlに調整し、放射能標識するまで
ポリプロピレン試験管中に4℃で保存した。
使って得られた値を炭素[14]標識MX-DTPA の比活性と比
較することにより、MX-DTPA の取り込みを測定した。非
放射性MX-DTPA (Coulter Immunology)を使用した幾つか
の研究には、該接合体を既知濃度と既知比活性のイット
リウム[90]の過剰の放射性担体溶液と共にインキュベー
トすることにより、MX-DTPA 取り込みを評価した。
属の0.05 N HCl中に調製し、そこに無担体のイットリウ
ム[90](塩化物塩)を加えた。この溶液のアリコートを
液体シンチレーションカウンティングにより分析し、こ
の試薬の正確な比活性を決定した。抗体に結合させよう
とするキレートのモル数の3倍に等しい塩化イットリウ
ム試薬の量(典型的には2モル/モル抗体)をポリプロ
ピレン試験管に加え、2M酢酸ナトリウムでpHを4.0-4.
5 に調整した。次いで接合抗体を加え、混合物を周囲温
度で15〜30分間インキュベートした。20mM EDTAを1 mM
の最終濃度に加えることにより反応を失活させ、そして
2M酢酸ナトリウムを使って溶液のpHを約pH 6に調整し
た。
高性能サイズ排除クロマトグラフィー(後述)により精
製した。溶出されたタンパク質含有画分を合わせ、タン
パク質濃度を測定し、そしてアリコートを放射能につい
てアッセイした。塩化イットリウム[90]調製物の比活性
とタンパク質濃度を使ってキレートの取り込みを算出し
た。
た。対数期中期のSB細胞を遠心により培養物から収得
し、1×HBSSで2回洗浄した。細胞をHBSS中1〜2×10
6 細胞/mlに希釈し、50,000〜100,000 細胞/ウエルに
なるように96ウエルのポリスチレンマイクロタイタープ
レート中にアリコートに分けた。プレートを40〜45℃に
て2時間真空乾燥して細胞をプラスチックに固定させ
た。使用するまで該プレートを−20℃で保存した。アッ
セイ用に、使用直前にプレートを周囲温度に温め、次い
で1% BSAを含有する 1×PBS, pH 7.2-7.4 でブロックし
た(2時間)。アッセイ用試料を 1×PBS /1% BSA中に
希釈し、プレートに添加し、同緩衝液中に系列希釈
(1:2)した。
トした後、1×PBS で3回プレートを洗浄した。二次抗
体(ヤギ抗マウスIgG1特異的HRP 接合体、50μl)をウ
エルに添加し(1×PBS /1% BSA中1:1500希釈液)、
そして周囲温度で1時間インキュベートした。プレート
を1×PBS で4回洗浄した後、ABTS基質溶液(0.01%ATB
Sと0.001% H2O2 を含有する50mMクエン酸ナトリウム、p
H 4.5)を加えた。15〜30分間インキュベーション後、
プレートを405 nmで読んだ。非特異的結合をモニタリン
グするために抗原陰性HSB 細胞をアッセイに含めた。吸
光度値を各希釈率に対してプロットし、そして同一プレ
ート上で試験した未変性抗体から得られた値(100 %免
疫反応性を意味する)と比較することにより、該接合体
の免疫反応性を計算した。滴定プロフィールの直線部分
上にある数個の値を比較し、平均値を決定した。
("I2B8")の調製 無担体インジウム[111] を使って接合体を放射能標識し
た。0.05M HCl 中の同位体のアリコート(0.1 〜2 mCi
/mg抗体)をポリプロピレン試験管に移し、約1/10容の
無金属2M HClを加えた。5分間インキュベーション後、
無金属2M酢酸ナトリウムを加え、該溶液をpH 4.0-4.4
に調整した。生理的食塩水中、または0.05%アジ化ナト
リウムを含む50mMクエン酸ナトリウム/150mM NaCl中の
10.0mg/ml DTPA 原液から約0.5 mgの2B8-MX-DTPA を加
え、次いで該溶液を即座に穏やかに混合した。pH試験紙
で溶液のpHを調べ、4.0 〜4.5 の値であることを確認
し、該混合物を周囲温度で15〜30分間インキュベートし
た。次いで、20mM EDTA を1mMの最終濃度になるように
加えることにより反応を失活させ、2M酢酸ナトリウム
を使って反応混合物を約pH 6.0に調整した。
しなかった放射性同位体をサイズ排除クロマトグラフィ
ーにより除去した。HPLC装置は、それぞれWaters U6Kま
たはRheodyne 700注入弁を備えた Waters Model 6000ま
たはTosoHaas Model TSK-6110 溶媒供給システムから成
った。クロマトグラフィー分離は、ゲル浸透カラム(Bi
oRad SEC-250;7.5 ×300 mmまたは同等のTosoHaasカラ
ム)とSEC-250 ガードカラム(7.5 ×100 mm)を使って
実施した。このシステムに、フラクションコレクター
(Pharmacia Frac200 )および280 nmフィルターを取り
付けたUVモニター(Pharmacia model UV-1)を装備し
た。試料を適用し、1×PBS, pH 7.4 を使って1.0 ml/
分の流速で溶離させた。1/2 ml画分をガラス試験管中に
収集し、それらのアリコートをγカウンター中でカウン
トした。上下の窓をそれぞれ100 と500 KeV に設定し
た。
能を加算し、そしてこの数をカラムから溶出された全放
射能で割ることにより、放射能取り込みを算出した。次
いでこの値を百分率(%)として表した(データは示し
てない)。或る場合には、即席薄層クロマトグラフィー
("ITLC")を使って放射能取り込みを測定した。放射能
標識接合体を1×PBS 中または1×PBS /1mM DTPA中に
1:10または1:20希釈し、次いで1μlをITLC SG 紙の1
×5cm片の一端から1.5 cmのところにスポットした。こ
の紙をメタノール:水(1:1, v/v)中の10%酢酸アンモ
ニウムを使った上昇クロマトグラフィーにより展開し
た。紙片を乾燥し、横に半分に切り、γカウンティング
により各部分に結合した放射能を測定した。紙片の下半
分に結合した放射能(タンパク質結合放射能)を、上半
分と下半分の両方の値を加算することにより決定された
全放射能の百分率として表した(データは示してな
い)。
射能を測定することにより、比活性を決定した。この値
をカウンター効率(典型的には75%)について補正し、
280nmでの吸光度により前に決定された該接合体のタン
パク質濃度と関連させ、得られた値をmCi /mgタンパク
質として表した。ある実験では、上述のものと同様であ
るがHPLCによる精製を実施しないプロトコールに従っ
て、2B8-MX-DTPA をインジウム[111] で放射能標識し
た。これを「ミックス&シュート」プロトコールと名付
けた。
("Y2B8")の調製 2 ng HClを使用しないこと以外、I2B8の調製について記
載したのと同じプロトコールに従ってイットリウム[90]
標識2B8-MX-DTPA ("Y2B8")を調製した。イットリウム標
識接合体の全調製物は上述のものと同じサイズ排除クロ
マトグラフィーにより精製した。
いて評価した。上述の「ミックス&シュート」プロトコ
ールに従って臨床用2B8-MX-DTPA を使って放射能標識接
合体を調製した。該接合体の比活性は 2.3 mCi/mgであ
り、該接合体を50mg/ml HSAを含むPBS, pH 7.4 中に配
合した。
注し、3匹のマウスのグループを0,24, 48 および72時
間目に頸部脱臼により犠牲にした。犠牲後、尾、心臓、
肺、肝臓、腎臓、脾臓、筋肉および大腿を取り出し、洗
浄し、重さを量った。分析のため血液試料も採取した。
各標本に結合した放射能をガンマカウンティングにより
測定し、次いで組織1gあたりの%注入線量を決定し
た。個々の器官に付随する血液により与えられる活性寄
与を割り引く試みは行わなかった。
間インキュベートした2B8-MX-DTPAのアリコートを両調
製物について 2.1 mCi/mgの比活性になるようにインジ
ウム[111] で放射能標識した。次いでそれらの接合体を
上述と同じマウスでの生体内分布実験に使用した。線量
計測のため、2B8-MX-DTPA を2.3 mCi /mgの比活性にな
るようにインジウム[111] で放射能標識し、そして約1.
1 μCiを20匹のBALB/cマウスの各々に注射した。次い
で、各々5匹のマウスから成るグループを1, 24, 48 お
よび72時間目に犠牲にし、それらの器官を取り出し、分
析用に調製した。加えて、皮膚、筋肉および骨の一部分
を取り出し、分析用に処理し、尿と糞便も収集し、24〜
74時間の時点で分析した。
イットリウム[90]でも放射能標識し、その生体内分布を
72時間に渡りBALB/cマウスにおいて評価した。HPLCサイ
ズ排除クロマトグラフィーによる精製の後、各々5匹の
マウスから成るグループに臨床用に配合した約1μCiの
接合体(比活性:12.2 mCi/mg)を静注し、次いで1,2
4, 48 および72時間目にマウスを犠牲にし、それらの器
官と組織を上述の如く分析した。γシンチレーションカ
ウンターを使って制動放射エネルギーを測定することに
より、各組織標本に結合した放射能を決定した。次いで
活性値を%注入線量/g組織としてまたは%注入線量/
器官として表した。器官または他の組織を繰り返しすす
いで血液を除去したが、器官に灌流は行わなかった。よ
って、内部に付随した血液により与えられる活性寄与に
ついて器官活性値を割り引かなかった。
有する無胸腺症マウスにおいて測定した。6〜8週齢の
無胸腺症マウスに、無胸腺症マウス中での増殖用に前に
順応させておいた1.2 ×107 個のラモスB細胞腫を含む
0.1 mlのRPMI-1640 を皮下注射(左後方側腹部)した。
腫瘍は2週間以内に出現し、0.07〜1.1グラムの重さに
及んだ。マウスに100 μlのインジウム[111] 標識2B8-
MX-DTPA(16.7μCi)を静注し、0, 24, 48 および72時
間目に頸部脱臼により3匹のマウスのグループを犠牲に
した。犠牲後、尾、心臓、肺、肝臓、腎臓、脾臓、筋
肉、大腿および腫瘍を取り出し、洗浄し、重さを量っ
た。分析用に血液試料も採取した。各標本に結合した放
射能をγカウンティングにより測定し、%注入線量/g
組織を測定した。
体内分布および腫瘍局在化実験 上述した予備的生体内分布実験(実施例I. B. viii.
a. )に従って、接合2B8 をインジウム[111] で2.3 mC
i /mgの比活性に放射能標識し、およそ1.1 μCiを20匹
のBALB/cマウスの各々に注射して放射能標識物質の生体
内分布を調べた。続いて、各々5匹から成るグループを
1, 24, 48 および72時間目に犠牲にし、それらの器官と
皮膚、筋肉および骨の一部分を取り出し、分析用に処理
した。加えて、尿と糞便も収集し、24〜72時間の時点に
渡り分析した。
%の注入線量/gから72時間目には18.9%へと低下した
(データは示してない)。心臓、腎臓、筋肉および脾臓
の値は実験の間中0.7 〜9.8 %の範囲にとどまった。肺
に検出される放射能のレベルは、1時間目の14.2%から
72時間目に7.6 %に減少し;同様に、それぞれの肺の注
入線量/gの値は10.3%と9.9 %であった。それらのデ
ータは、後述するI2B8の放射線吸収線量推定値を決定す
る際に使用した。
リウム[90]標識抗体の生体内分布をBALB/cマウスにおい
て評価した。>90%の放射能取り込みが得られ、放射能
標識抗体をHPLCにより精製した。放射能の組織沈着を主
要器官並びに皮膚、骨および尿と糞便において72時間に
渡り評価し、そして%注入線量/g組織として表した。
射能レベルが1時間目の約39.2%注入線量/gから72時
間後はほぼ15.4%に低下し、一方で尾、心臓、肝臓、筋
肉および脾臓に関係する放射能は実験の間中10.2%また
はそれ未満でまったく一定のままであった。重要なこと
には、骨に関係する放射能は1時間目の4.4 %の注入線
量/g骨から72時間目の3.2 %までに及んだ。それらの
結果を合わせると、該接合体に結合した遊離のイットリ
ウムがほとんどなかったこと、そして遊離の放射性金属
がほとんど実験の間に放出されなかったことを示唆す
る。それらのデータは、後述するY2B8の放射線吸収線量
推定値を決定する際に使用した。
製し、インジウム[111] で2.7 mCi/mgの比活性に放射能
標識した。100 μlの標識接合体(約24μCi)を、ラモ
スB細胞腫を有する12匹の無胸腺症マウスの各々に注射
した。腫瘍は0.1 〜1.0 グラムの範囲であった。注射後
0, 24, 48 および72時間目の時点で眼窩後方穿刺により
50μlの血液を採取し、そして尾、心臓、肺、肝臓、腎
臓、脾臓、筋肉、大腿および腫瘍を取り出した。組織を
処理して重さを量った後、各組織標本に結合した放射能
をγカウンターにより測定し、gあたりの%注入線量と
して表した。
A の腫瘍濃度が実験の進行の間中一様に増加することを
証明した。注入線量の13%が72時間後に腫瘍に蓄積され
た。対比して、血液レベルは、0時での30%から72時間
目の13%へと実験の間に低下した。他の全ての組織(筋
肉を除く)は、実験の終了までに1.3 〜6.0 %注入線量
/g組織を含んだ。筋肉組織は約13%注入線量/gを含
んだ。
的研究 アセトンで固定した32の異なるヒト組織のパネルを使っ
てマウスモノクローナル抗体 2B8の組織反応性を評価し
た。抗体2B8 は、非常に限定された組織分布パターンを
有した抗CD20抗原と反応する。該抗原は、造血起源のも
のを含むリンパ系組織中の細胞のサブセットにおいての
み観察される。
リンパ球集団と、胚中心の増殖細胞において観察され
た。末梢血、扁桃のB細胞領域、脾臓の白色脾髄、およ
び胸腺中に見つかる髄質リンパ球の40〜70%で陽性の反
応性が観察された。陽性の反応性は大腸の粘膜固有層の
リンパ小節(パイアー斑)においても認められた。最後
に、膀胱、乳房、頸、食道、肺、耳下腺、前立腺、小腸
および胃を含む種々の器官の支質中の集合または散在リ
ンパ系細胞も、抗体2B8 に陽性であった(データは示し
てない)。
の重層上皮および上皮は、非反応性であることがわかっ
た。同様に、大脳、脊髄および末梢神経中のものを含む
神経外胚葉細胞では全く反応性が観察されなかった。間
葉要素、例えば骨格筋および平滑筋細胞、繊維芽細胞、
内皮細胞、並びに多形核炎症細胞も陰性であることがわ
かった(データは示してない)。
パネルを使って2B8-MX-DTPA 接合体の組織反応性を評価
した。未接合抗体を使って前に証明されたように(デー
タは示してない)、2B8-MX-DTPA 接合体は、高度に限定
された分布パターンを示しリンパ系起源の細胞のサブセ
ットの上にのみ見つかるCD20抗原を認識する。リンパ節
では、B細胞集団に免疫反応性が観察された。脾臓の白
色脾髄と胸腺の髄質リンパ球において強い反応性が観察
された。膀胱、心臓、大腸、肝臓、肺および子宮中の散
在リンパ球においても免疫反応性が観察され、これはそ
れらの組織中にある炎症細胞の存在に起因するものであ
った。未接合抗体と同様に、神経外胚葉細胞または間葉
要素では全く反応性が観察されなかった(データは示し
てない)。
の臨床分析 a.第I/II相臨床実験:単一線量療法研究 I2B8(画像診断)の第I/II相臨床分析に続くY2B8の単
一治療線量での処置を目下実施している。単一線量研究
では、次のスキームに従う: 1.灌流による末梢幹細胞(PSC) または骨髄(BM)の収
得; 2.I2B8画像診断; 3.Y2B8治療(3つの線量レベル);および 4.PSC または自己BM移植(必要なら、連続3日間の50
0 /mm3 以下の絶体好中球数または20,000/mm3 以下の
血小板数に基づいて、骨髄検査に関する骨髄回収の証拠
なしで) Y2B8の線量レベルは次の通りである:
各々で3人の患者を処置する。
する:各患者を、2通りのI2B8を使った生体内分布実験
に含める。第一の実験では、2 mgのI2B8 (5mCi) を1時
間に渡り点滴静注(i.v.)として投与し、1週間後に2B
8 (即ち未接合抗体)を250mg/時間を越えない速度で
i.v.により投与し、その後すぐに2 mgのI2B8 (5 mCi)を
1時間に渡りi.v.により投与した。両実験とも、I2B8点
滴静注後すぐに、各患者を画像診断し、画像診断をt=
14〜18時間(指摘した場合);t=24時間;t=72時
間;およびt=92時間(指摘した場合)の時点で繰り返
した。インジウム[111] 標識についての全身平均保持時
間を測定した。そのような測定を識別可能な器官または
腫瘍病巣(「着目領域」)についてもおこなった。
この比較に基づいて、標準プロトコールを使ってY2B8の
局在化と濃度の推定値を決定することができる。Y2B8の
推定蓄積線量が推定全身線量の8倍より大きければ、ま
たは肝臓の推定蓄積線量が1500 cGyを越えるならば、Y2
B8を使った治療は行うべきでない。画像診断実験が許容
できれば、0.0 または1.0 mg/kg患者体重の2B8 を点滴
静注により250 mg/時間を越えない速度で投与する。こ
の後、Y2B8 (10, 20または40 mCi) を20 mCi/時間の点
滴静注速度で投与する。
験 Y2B8の第I/II相臨床分析を現在実施している。複数線
量研究の場合、次のスキームに従っている: 1.PSC またはBMの収得; 2.I2B8画像診断 3.4線量または80 mCiの全蓄積線量でのY2B8治療(3
線量レベル);および4.PSC または自己BM移植(臨床
医の決定に基づく) Y2B8の線量レベルは次の通りである:
ベルの各々で処置する。画像診断(線量計測)実験を次
の通り実施する:最初の2人の患者を使って未標識抗体
(即ち2B8 )の好ましい画像診断線量を決定する。最初
の2人の患者に250 ccの生理的食塩水中の100 mgの未標
識2B8 を4時間に渡り投与し、次いで0.5 mCi のI2B8を
投与する--t=0、t=10分、t=120 分、t=24時間
およびt=48時間の時点で生体内分布データ用に血液を
サンプリングする。t=2時間、t=24時間およびt=
48時間の時点で患者を多領域γカメラ画像でスキャンす
る。t=48時間でスキャンした後、患者に上述と同様に
250 mgの2B8 に次いで4.5mCi のI2B8を投与する--- 次
いで上述と同様に採血とスキャンニングを行う。
次の2人の患者に上述と同様に50mgの2B8 を投与し、そ
の後で0.5 mCi のIB28、その48時間後に100 mgの2B8 、
次いで4.5 mCi のI2B8を投与する。250 mgの2B8 が良好
な画像を生成したら、次の2人の患者に上述と同様に25
0 mgの2B8 を投与し、その後で0.5 mCi のIB28、その48
時間後に500 mgの2B8 、次いで4.5 mCi のI2B8を投与す
る。その次の患者は最適な画像を生成する2B8 の最小量
で処理する。最適な画像化は(1) 抗体が最も遅く消失す
る最も効率的な画像化;(2) 単一器官中の区画化を最小
にする最良分布;および(3) 病変の最良の対象分解能
(腫瘍/バックグラウンド対比)により定義されるだろ
う。
14日後に、第一の治療線量のY2B8を開始する。その後の
患者には、I2B8の2〜7日後に第一の治療線量のY2B8を
開始する。Y2B8での処置の前に、最初の4人を除く患者
には、上述と同様に2B8 を投与し、次いで5 〜10分間に
渡りY2B8を点滴静注により投与する。t=0、t=10
分、t=120 分、t=24時間およびt=48時間の時点で
生体内分布用に血液をサンプリングする。患者にほぼ6
〜8週間毎にそれぞれの線量のYB28(第一の線量の場合
と同じ線量を投与する)を4線量の最大値または80 mCi
の全蓄積線量になるように投与する。患者のWBC が3,00
0 以上であり且つAGC が1000,000以上となるまで、患者
に次の線量のY2B8を投与しないことが最も好ましい。3
線量レベル実験の完了の後、MTD の範囲を限定する。次
いで追加の患者を実験に登録し、MTD を投与する。
作製 2B8 マウスハイブリドーマ細胞からRNAを単離し(Ch
omczynki, P.ら、"Single step method of RNA isolati
on by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chlorofo
rm extraction." Anal.Biochem. 162:156-159 (1987)に
記載された通りに)、そしてそれからcDNAを調製し
た。5′末端においてマウス軽鎖シグナル配列と相同性
を有するDNAプライマーと3′末端においてマウス軽
鎖J領域と相同性を有するDNAプライマーのセットを
使ったポリメラーゼ連鎖反応により、該cDNAからマ
ウス免疫グロブリン軽鎖可変領域DNAを単離した。プ
ライマー配列は次の通りであった:
TT ATC AGC TTC 3'(下線を引いた部分はBgl II部位で
あり、上に線を引いた部分は開始コドンである) 2.VL アンチセンス(配列番号4) 5' TGC AGC ATC CGTACG TTT GAT TTC CAG CTT 3'(下
線を引いた部分はBsi WI部位である) TCAE 8中の対応するBgl II部位とBsi WI部位については
図1および図3を、そしてTCAE 8中の抗CD20中の対応す
る部位については図12〜21を参照のこと。
クター中にヒトκ軽鎖定常領域の前のところに直接クロ
ーニングし、配列決定した。マウス可変領域軽鎖につい
て決定されたDNA配列を図22(配列番号5)に示す。
図13のヌクレオチド978 〜1362も参照のこと。図22は更
に、このマウス可変領域、CDRおよびフレームワーク
領域のアミノ酸配列も提供する。2B8 からのマウス軽鎖
可変領域はマウスκVIファミリーに属する。Kabat (前
掲)を参照のこと。
IgG1定常領域の前にクローニングした。プライマーは次
の通りであった: 1.VH センス(配列番号6) 5' GCG GCT CCC ACGCGT GTC CTG TCC CAG 3'(下線を引
いた部分はMlu I部位である) 2.VH アンチセンス(配列番号7) 5' GG(G/C) TGT TGT GCTAGC TG(A/C) (A/G)GA GAC (G/
A)GT GA 3'(下線を引いた部分はNhe I部位である)
位については図1および図4を、そしてTCAE 8中の抗CD
20中の対応する部位については図12〜21を参照のこと。
このマウス重鎖配列は図23(配列番号8)に示される。
図14〜15のヌクレオチド2401〜2820も参照のこと。図23
はこのマウス可変領域、CDRおよびフレームワーク領
域のアミノ酸配列も提供する。2B8 からのマウス重鎖可
変領域はマウスVH 2B ファミリーに属する。Kabat (前
掲)を参照のこと。
ランスフェクトーマの作製 チャイニーズハムスター卵巣("CHO") 細胞DG44はヒポキ
サンチンとチミジンを欠くSSFM II 培地(Gibco, Grand
Island, NY, Form No.91-0456PK)中で増殖させ;SP2/
0 マウスミエローマ細胞は5%ウシ胎児血清と20ml/l
のグルタミンが補足されたダルベッコ改良イーグル培地
("DMEM")(Irvine Scientific, SantaAna, Ca.,カタ
ログ No.9024)中で増殖させた。 0.4mlの使い捨てキュ
ベット中でBTX 600 エレクトロポレーション装置(BTX,
San Diego, CA)を使って、 NotIで制限された25μg
のCHO または50μg のSP2/0 プラスミドDNAを用いて
400 万個の細胞をエレクトロポレーションした。
2/0 の場合は180 ボルト、400 マイクロファラデー、13
オームであった。各エレクトロポレーション物を6枚の
96ウエルプレート中に置いた(約7,000 細胞/ウエ
ル)。エレクトロポレーションの2日後とコロニーが形
成するまでそれから2または3日後に、CHO の場合は 4
00μg/ml活性化合物またはSP2/0 の場合は 800μg/mlに
おいてG418(GENETICIN,Gibco,カタログNo. 860-1811)
を含有する培地(培地は更に50μM ヒポキサンチンと8
μM チミジンを含有する)をプレートに供給した。
なELISA によりキメラ免疫グロブリンの存在についてア
ッセイした。最大量の免疫グロブリンを生産するコロニ
ーを増殖させ、メトトレキセート(SP2/0 の場合は25 n
M 、CHO の場合は5 nM)を含む培地を入れた96ウエルプ
レート中で平板培養し、2または3日毎に栄養補給し
た。上述の通り上清をアッセイし、最大量の免疫グロブ
リンを生産するコロニーを増殖させた。プロテインAア
フィニティークロマトグラフィーを使って上清からキメ
ラ抗CD20抗体を精製した。
アミドゲル中での電気泳動により分析し、約95%より高
い純度であると見積もった。2B8 を基準にしてキメラ抗
体の親和性と特異性を測定した。直接および競合結合ア
ッセイにおいて試験したキメラ抗CD20抗体は、マウス抗
CD20モノクローナル抗体2B8 と比較すると、多数のCD20
陽性B細胞系に対して同等の親和性と特異性を証明した
(データは示してない)。125 I放射能標識キメラ抗CD
20の直接結合により該キメラ抗体の見かけの親和定数
("Kap" )を決定し、Scatchard プロットにより放射能
標識2B8 と比較した。推定Kap はCHO で生産されたキメ
ラ抗CD20抗体については5.2 ×10-9Mであり、SP2/0 で
生産された抗体については7.4 ×10-9Mであった。
あった。ラジオイムノアッセイによる直接競合分析を使
って、2B8 と効率的に競争する能力を比較することによ
り、該キメラ抗体の特異性と免疫反応性の保持の両方を
確かめた。B細胞上のCD20抗原への結合を50%阻害する
のに実質的に当量のキメラ抗CD20抗体と2B8 抗体が必要
であった(データは示してない)。即ち、おそらくキメ
ラ化によるのであろう抗CD20抗体の阻害活性の損失は最
少であった。実施例II. B. の結果は、特に、キメラ抗
CD20抗体がTCAE 8ベクターを使ってCHO およびSP2/0 ト
ランスフェクトーマから生産され、そしてそれらのキメ
ラ抗体がマウス抗CD20モノクローナル抗体2B8 と実質的
に同じ特異性と結合力を有したことを指摘している。
定 i.ヒトC1q 分析 CHO とSP2/0 の両細胞系により生産されたキメラ抗CD20
抗体を、フルオレセイン標識C1q (C1q はQuidel, Mira
Mesa, CA, Prod. No. A400 から得られ、そしてFITC標
識はSigma, St. Louis MO, Prod. No. F-7250 から得ら
れた)を使ったフローサイトメトリーアッセイにおいて
ヒトC1q 結合について評価した。C1q のFITC標識は、Se
lected Methods In Cellular Immunology, Michell & S
hiigi 編(W.H. Freeman & Co., San Francisco, CA, 1
980, p.292)に記載されたプロトコールに従って行っ
た。Becton Dickinson FACScanTMフローサイトメーター
を使って分析結果を誘導した(515 〜545 nmの領域に渡
ってフルオレセインを測定した)。
エローマタンパク質(Binding Site, San Diego, Ca, P
rod. No. BP078)および2B8 を当量数のCD20陽性SB細胞
と共にインキュベートし、次いでFACS緩衝液(PBS 中
0.2% BSA,pH 7.4, 0.02% アジ化ナトリウム)での洗浄
段階により未結合抗体を除去し、次いでFITC標識C1q と
共にインキュベートした。30〜60分間のインキュベーシ
ョン後、細胞を再び洗浄した。対照としてFITC標識C1q
を含む3条件を、製造業者の取扱説明書に従ってFACSca
n TM上で分析した。結果を図24に与える。図24の結果と
して、キメラ抗CD20抗体条件についてのみ蛍光の有意な
増加が観察された。即ち、付着性キメラ抗CD20抗体を有
するSB細胞のみがC1q 陽性であり、一方他の条件は対照
と同じパターンを生じた。
パ腫細胞系を溶解する能力について分析した。100 μCi
の51Crと1×106 個のSB細胞を37℃で1時間混合するこ
とにより、CD20陽性SB細胞を51Crで標識した。次いで標
識SB細胞を、当量のヒト補体と当量(0〜50μg/ml)の
キメラ抗CD20抗体または2B8 のいずれかの存在下で37℃
にて4時間インキュベートした(Brunner, K.T. ら、"Q
uantitative assay of the lytic action of immune ly
mphoid cells on 51Cr-labeled allogeneic target cel
ls in vitro." Immunology 14:181-189 (1968)を参照の
こと)。結果を図25に与える。図25の結果は、特に、キ
メラ抗CD20抗体がそれらの条件下で有意な溶解(49%)
をもたらすことを示す。
ッセイ このアッセイには、CD20陽性細胞(SB)とCD20陰性細胞
〔T細胞白血病系HSB;Adams, Richard, "Formal Discus
sion," Can. Res. 27:2479-2482 (1967) を参照のこ
と;ATCC寄託番号ATCC CCL 120.1〕を使用した。両者を
51Crで標識した。Brunner, K.T. ら、"Quantitative as
say of the lytic action of immune lymphoid cells o
n 51Cr-labeled allogeneic target cells in vitro ;
inhibitionby isoantibody and drugs." Immunology 1
4:181-189 (1968)中に記載されたプロトコールに従って
分析を行った。
りにCD20陽性SB標的細胞(51Cr標識したもの)の実質的
なキメラ抗CD20抗体依存性細胞媒介性溶解を観察し、そ
してこの作用をCHO とSP2/0 により生産された抗体の両
方について観察した(エフェクター細胞はヒト末梢リン
パ球であり;エフェクター細胞:標的の比は 100:1で
あった)。標的細胞の効率的溶解は3.9 μg/mlにおいて
観察された。これに対して、同一条件下で、マウス抗CD
20モノクローナル抗体2B8 は統計上有意でない作用を有
し、そしてCD20陰性HSB 細胞は溶解されなかった。結果
を図26に与える。実施例IIの結果は、特に、実施例Iの
キメラ抗CD20抗体が免疫学的に活性であったことを示
す。
の涸渇 A.非ヒト霊長類実験 3種類の別々の非ヒト霊長類実験を実施した。便宜上、
それらを「キメラ抗CD20 : CHO & SP2/0」、「キメラ抗
CD20 : CHO」および「高用量キメラ抗CD20」と名付け
る。条件は次の通りであった。 キメラ抗CD20 : CHO & SP2/0
ル(White Sands Research Center,Alamogordo, NM )
を各々2匹のサルの3グループに分けた。各グループの
両方のサルに同用量の免疫学的に活性なキメラ抗CD20抗
体を投与した。各グループの一方のサルにはCHO トラン
スフェクトーマにより生産された精製抗体を投与し、他
方のサルにはSP2/0 により生産された抗体を投与した。
3つのグループには、連続4日間に渡りそれぞれ0.1 mg
/kg、0.4 mg/kgおよび1.6 mg/kgに相当する抗体量を
毎日投与した。免疫学的に活性なキメラ抗CD20抗体は、
生理的食塩水と混合して点滴静注により投与した。各点
滴静注の前に血液試料を採取した。最後の注入の24時間
後(T=0)に始まり、その後第 1, 3, 7, 14および28
日にも追加の血液試料を採取した。血液試料はその後、
第90日に実験が終了するまで二週間間隔で採取した。
分間遠心分離した。可溶性キメラ抗CD20抗体レベルのア
ッセイ用に血漿を除去した。ペレット(末梢血白血球と
赤血球を含有する)は蛍光標識抗体分析用にウシ胎児血
清中に再懸濁した(下記の「リンパ系細胞集団の蛍光抗
体標識」を参照のこと)。 キメラ抗CD20 : CHO
ル(White Sands )を各々2匹のサルの3グループに分
けた。全動物にCHO トランスフェクトーマにより生産さ
れた免疫学的に活性なキメラ抗CD20抗体(無菌の食塩水
中)を投与した。3つのグループを次の通りに分けた:
サブクループ1には4日間に渡り0.01mg/kgの抗体を毎
日静注し;サブクループ2には4日間に渡り0.04mg/kg
の抗体を毎日静注し;サブクループ3には6.4 mg/kgの
抗体を1回静注した。
開始前に血液試料を得、更に、上述のような最後の注射
後のT=0, 1, 3, 7, 14および28日目においても血液試
料を採取した。それらの試料を蛍光標識抗体分析用に処
理した(下記の「蛍光抗体標識」を参照のこと)。末梢
血B細胞の定量に加えて、最後の注射後7, 14 および28
日目にリンパ節生検試料を取り、そして単細胞集団をフ
ローサイトメトリーによるリンパ球集団の定量用に染色
した。
ェクトーマから生産された16.8mg/kgの免疫学的に活性
なキメラ抗CD20抗体(無菌の食塩水中)を連続4週間の
期間に渡り毎週点滴注入した。処置の終わりに、骨髄切
除のために両動物を麻酔した。リンパ節生検試料も取っ
た。両方の組織セットを、Ling, N.R.ら、"B-cell and
plasma cell antigens." Leucocyte Typing III White
Cell Differentiation Antigens, A.J. McMichael 編
(Oxford University Press, Oxford UK, 1987), p.302
に記載されたプロトコールに従って、Bリンパ球の存在
下でフローサイトメトリーによりLeu 16で染色した。
S")で2回洗浄し、血漿と同容量のウシ胎児血清(56℃
で30分間熱不活性化したもの)中に再懸濁する。この細
胞調製物の0.1 ml容量を6本の15ml遠心管の各々に分配
した。TおよびBリンパ球集団を同定するために、ヒト
リンパ球表面マーカーCD2 (AMAC, Westbrook, ME) 、CD
20 (Becton Dickinson) およびヒトIgM (Binding Site,
San Diego, CA) に対して特異性を有する蛍光標識モノ
クローナル抗体を3本の試験管に加えた。全ての試薬は
対応するサルリンパ球抗原に陽性であることを前に試験
しておいた。
ンと接合させたポリクローナルヤギ抗ヒトIgG(AMAC)
を使って、サルB細胞表面CD20に結合したキメラ抗CD20
抗体を測定した。この試薬は、サルIgに対する交差反応
性を除去するためにサルIg−セファロースカラム上に予
備吸着させてあり、よって細胞に結合したキメラ抗CD20
抗体の特異的検出および定量が可能である。5本目の試
験管は、二重染色B細胞集団のために抗IgM と抗ヒトIg
G 試薬の両方を含んだ。6本目の試験管は自己蛍光の測
定のために全く試薬を含まなかった。
トし、洗浄し、そして0.5 mlの固定緩衝液(0.15M NaC
l, 1%パラホルムアルデヒド, pH 7.4)で固定し、そ
してBecton Dickinson FACScanTM装置上で分析した。未
標識の白血球を使ったドットプロットビット地図におい
て前方対直角光散乱器により最初にリンパ球集団が同定
された。次いで他の全ての現象をゲート制御することに
より、全リンパ球集団が単離された。その後の蛍光測定
は、ゲート制御されたリンパ球特異的現象のみを反映し
た。
により生産された抗体の効力の間には何ら観察できる差
は確認できなかったが、CHO トランスフェクトーマから
誘導されたキメラ抗CD20抗体を1.6 mg/kgと6.4 mg/kg
の用量レベルで注射したサルと、SP2/0 により生産され
た抗体を0.4 mg/kgの用量レベルで注射したサルについ
ては、第7日後に始まるB細胞再生のわずかな増加が観
察された。図27、図28および図29はキメラ抗CD20 : CHO
& SP2/0実験から得られた結果を与え;図27は0.4 mg/
kg用量レベルに向けられ;図28は1.6 mg/kg用量レベル
に向けられ;そして図29は6.4 mg/kg用量レベルに向け
られる。
用量範囲に渡って治療処置後に末梢血B細胞レベルの大
幅な減少(>95%)が認められ、それらのレベルが注入
後7日間まで維持された。この期間の後でB細胞再生が
始まり、そして再生開始の時期は用量レベルに無関係で
あった。
注射(合計0.04mg/kg)に渡り1/10の抗体用量濃度(0.
01mg/kg)を使用した。図30はこの実験の結果を与え
る。この用量は、抗表面IgM またはLeu 16抗体のいずれ
かを使って推定される正常レベルの約50%へ末梢血B細
胞集団を涸渇させた。この結果は、免疫学的に活性なキ
メラ抗CD20を使って非ヒト霊長類に対してこの期間に渡
りこの用量濃度でBリンパ球集団上のCD20抗原の飽和が
達成されなかったことも示す。治療処置後最初の3日間
の間は血液試料中に該抗体で覆われたBリンパ球が検出
された。しかしながら、7日目までには、抗体で覆われ
た細胞は検出できなくなった。
性なキメラ抗CD20抗体の単一用量および複数用量の結果
を要約する。単一用量条件は6.4 mg/kgであり;複数用
量条件は連続4日間に渡る0.4 mg/kgであった(それら
の結果は上述のサルから誘導された)。
下での末梢血中のB細胞の涸渇が単一または複数用量レ
ベルにかかわらず迅速且つ効率的に起こったことを示
す。更に、最後の注射後少なくとも7日間は涸渇が観察
され、21日目までに部分的なB細胞再生が観察された。
表4は、表3の治療方法を使ったリンパ節の細胞集団に
対する免疫学的に活性なキメラ抗CD20抗体の効果を要約
する(0.4 mg/kgの4日分量;6.4 mg/kgの1回量);
正常リンパ節(対照サル、腋窩およびそ径部)および正
常骨髄(2匹のサル)についての比較値も提供する。
パ球の効率的涸渇を証明する。表4は更に、非ヒト霊長
類について免疫学的に活性なキメラ抗CD20抗体によるリ
ンパ系組織中のB細胞の完全な飽和が達成されなかった
ことも示す。その上、抗体で覆われた細胞が処置後7日
目に観察され、次いで14日目にはリンパ節B細胞の著し
い涸渇が観察された。
測定の方に目を向けながら、上記に言及した単一高用量
キメラ抗CD20実験を実施した。即ち、この実験はキメラ
抗体の投与に関連する何らかの毒性、並びに末梢血リン
パ節と骨髄からのB細胞涸渇の効力を評価するために実
施した。更に、表4のデータは、その実験で、処置後7
〜14日目にリンパ節B細胞の大部分が涸渇され、毎週投
薬法がより有効な結果を示すかもしれないことを指摘す
る。表5は高用量キメラ抗CD20実験の結果を要約する。
(上記表4参照)に比べて、治療停止後22日目に5%未
満のB細胞を含むことを証明した。同様に、キメラ抗CD
20抗体で治療した動物の骨髄では、正常動物の場合の11
〜15%(上記表4参照)に比べて、CD20陽性細胞のレベ
ルが3%未満であった。治療停止後36日目に評価した動
物では、そのうちの1匹(H)はリンパ節中に約12%の
B細胞と骨髄中に4.4 %のB細胞を有しており、別の動
物(H)はリンパ節中に約5%のB細胞と骨髄中に0.8
%のB細胞を有していた。このデータは有意なB細胞涸
渇を示している。
に活性なキメラ抗CD20抗体が霊長類において長期の末梢
血B細胞涸渇を引き起こすことを指摘する。該データは
また、該抗体の高用量を反復投与した時、末梢リンパ節
と骨髄においてB細胞集団の有意な涸渇が達成されたこ
とも示す。試験動物に対して継続して行った追跡調査
は、治療の第一週の間にそのような末梢Bリンパ球の著
しい涸渇があってさえも、何ら健康に悪影響が観察され
なかったことも示した。更に、B細胞集団の再生が観察
されたため、この治療によってそれらの霊長類の多能性
幹細胞に悪影響はなかったという結論が引き出される。
者を第I/II相臨床実験においてC2B8で処置した。用量
増加実験において各患者に単一用量のC2B8を投与した;
次の用量:10mg/m2 ;50mg/m2 ;100 mg/m2 ;25
0 mg/m2 および500 mg/m2 につき3人の患者を使用
した。処置は、生理的食塩水中250 ccの最終容量または
1mg/mlの最大濃度に希釈されたC2B8を、0.22ミクロン
の並列フィルターを通して点滴静注することにより行っ
た。初期速度は最初の1時間の間50cc/時であった。全
く毒性が観察されなければ、投与速度を最大200 cc/時
まで上げることが可能であった。
し」、「軽度」、「中程度」(2人の患者)そして「重
度」(1人の患者)に渡った。全患者が治療処置を完了
した。特にT細胞とB細胞に対するC2B8の効果を測定す
るために、末梢血リンパ球を分析した。全患者に一貫し
て、C2B8の点滴注入後に末梢血Bリンパ球が涸渇され、
そしてそのような涸渇は二週間を越えて維持された。
は、C2B8処置に対して部分的応答(PR)(全ての測定
可能な指標病巣の垂直直径の積の和に、4週間以上持続
する50%以上の減少が観察され、その期間の間は全く新
たな病巣が出現せず、現存する病巣はいずれも拡大しな
いであろう)を証明した。また、少なくとも1人の患者
(500 mg/m2 を投与)はC2B8処置に対してわずかな応
答(MR)(全ての測定可能な指標病巣の2つの最長垂
直直径の積の和に、少なくとも25%で且つ50%未満の減
少が観察される)を証明した。表示効率について、PBL
の結果を図34〜35に与える;PRを示す患者のデータを
図34に与え;MRを示す患者のデータを図35に与える。
図34〜35において次のものを適用する:
B細胞マーカーCD20とCD19、カッパおよびラムダが涸渇
された。T細胞数のわずかな初期減少があったが、それ
らは比較的速い時間枠においてほぼ基準線レベルに戻っ
た。
療法研究 測定可能な進行性疾患を伴う組織学的に確証されたB細
胞リンパ腫を有する患者は、2部に分けられるこの実験
に適格である。第I相は、用量制限する毒性を特徴づけ
るための用量増加と生物学的に活性な耐容量レベルの決
定から成り、この段階では3人の患者から成るグループ
に合計4回の点滴静注による毎週の点滴静注を行う。3
レベルの各々における蓄積量は次の通りである:500 mg
/m2 (125 mg/m2 /点滴注入);1000mg/m2 (25
0 mg/m2 /点滴注入);1500mg/m2 (375 mg/m2
/点滴注入)。生物学的に活性な耐容用量は、耐容でき
る毒性と適度の活性の両方を有する最低用量として定義
され、決定されるだろう。第II相では、C2B8の4回量の
活性を決定することに重点をおいて、追加の患者に生物
学的に活性な耐容用量を投与する。
ス異種移植モデル(nu/nu マウス、雌、約10週齢)にお
いて、C2B8とY2B8を使った組合せ療法アプローチを研究
した。比較目的で、別のマウスもC2B8とY2B8で処置し
た。
%ウシ胎児血清とグルタミンが補足されたRPMI-1640 を
使って37℃および5% CO2にて培養することにより維持し
た。25 gの針が付けられた1ccの注射器を使って0.10ml
の容量(HBSS)で1.7 ×106個のラモス細胞を皮下注射
することにより、7〜10週齢の9匹の雌ヌードマウス中
に腫瘍を発生させた。全ての動物は層状フローフードの
中で処理し、そして籠、寝床、餌および水は全てオート
クレーブ処理した。腫瘍を切除しそして40メッシュ網を
通すことにより腫瘍細胞を濾過し、細胞を遠心分離(13
00 RPM)により1×HBSS(50ml)で洗浄し、1×HBSS中
に10×106 細胞/mlに再懸濁し、そして使用まで−70℃
で凍結保存した。
らの細胞を解凍し、遠心分離(1300RPM)によりペレッ
ト化し、そして1×HBSSで2回洗浄した。次いで細胞を
約2.0 ×106 細胞/mlに再懸濁した。約9〜12匹のマウ
スに、25 gの針が付けられた1ccの注射器を使って該細
胞懸濁液0.1 mlを注射(s.c.)した。注射は動物の左側
のほぼ中央領域に行った。腫瘍は約2週間で発達した。
腫瘍を切除し、上述の通り処理した。実験用マウスには
上述と同様にして0.10mlのHBSS中の1.67×106細胞を注
射した。
C2B8と100 μCiのY2B8を実験に使用することを決定し
た。90匹の雌nu/nu マウス(約10週齢)に腫瘍細胞を注
射した。約10日後、各グループにおいて同等の腫瘍サイ
ズ分布(腫瘍の長さと幅の積として表される平均腫瘍サ
イズは約80 mm2であった)を維持することを試みなが
ら、24匹のマウスを4つの実験グループ(6匹のマウス
/グループ)に割り当てた。25 gの針が付けられた100
μlハミルトン注射器を使った尾静脈注射により、次の
グループを指示の通り処置した:
後に2回目のC2B8注射(200 μg/マウス)を与えた。腫
瘍測定はキャリパーを使って2または3日毎に行った。
処置材料の調製は次のプロトコールに従った:
管に移し、無金属2M酢酸ナトリウムを使ってpH 4.1-
4.4に調整した。2B8-MX-DTPA (生理的食塩水中0.3 m
g;2B8-MX-DTPA の調製については上記を参照のこと)
を加え、渦動攪拌により穏やかに混合した。15分間のイ
ンキュベーション後、0.05×容の20mM EDTAと0.05×容
の2M酢酸ナトリウムを加えることにより反応を失活さ
せた。この反応混合物 5.0μlを、75mg/ml HSAと1mM
DTPAを含む2.5 mlの1×PBS (「配合緩衝液」)中に希
釈することにより放射能濃度を測定した。
レーションカクテルに添加することによって行った。反
応混合物の残りを3.0 mlの配合緩衝液に加え、滅菌濾過
し、使用まで2〜8℃で保存した。反応混合物に添加し
た抗体の量に基づいて算出されたタンパク質濃度と放射
能濃度とを使って比活性(注射の時点で14 mCi/mg)を
算出した。タンパク質に関係する放射能は即席薄層クロ
マトグラフィーを使って測定した。放射能取り込みは95
%であった。Y2B8は使用直前に配合緩衝液中に希釈し、
滅菌濾過した(最終放射能濃度は 1.0mCi /mlであっ
た)。
中の無菌試薬として5.0 mg/mlで供給した。注射前に生
理的食塩水中に2.0 mg/mlに希釈し、次いで滅菌濾過し
た。 C.結果 処置後、腫瘍サイズを長さと幅の積として表し、そして
図31(Y2B8対食塩水);図32(C2B8対食塩水)および図
34(Y2B8+C2B8対食塩水)に指摘した日に測定値をとっ
た。標準誤差も決定した。図34に示されるように、Y2B8
とC2B8の組合せは、Y2B8またはC2B8のいずれかにより得
られる効果と同等の殺腫瘍性効果を示した。
である。1つのそのような方策は、C2B8の治療用量の後
で約一週間以内に2B8 と放射能標識2B8 (例えばY2B
8);または2B8, C2B8 およびY2B8;またはC2B8と例え
ばY2B8のいずれかの組合せを使用する。他の方策は放射
能標識C2B8の使用である--- そのような方策はC2B8の免
疫学的活性部分の利益に加えて放射能標識に関係する利
益の利用を考慮したものである。好ましい放射能標識と
しては、マウス抗体2B8 に比較して大きなC2B8の循環半
減期を仮定すればイットリウム90が挙げられる。
標識の使用から誘導されるであろう利益のため、好まし
い別の方策は、全部ではないにしても大部分のB細胞が
涸渇されてしまうように患者をC2B8で治療することであ
る(単一用量または複数用量のいずれかで)。次いでこ
の後で放射能標識2B8 を使用する。末梢B細胞の涸渇の
ため、放射能標識2B8 が腫瘍細胞をターゲッティングす
る見込みがかなりある。この標識に関して文献中に報告
された結果の型(Kaminski参照)を仮定すれば、ヨウ素
[131] 標識2B8 が好ましく使用される。別の選択は、腫
瘍の透過性を増加させようとして最初に放射能標識2B8
(またはC2B8)を使用し、次いでC2B8による1回または
複数回処置を行うことを含む。
両方に届くC2B8の機会を増加させることである。他の方
策はC2B8と組み合わせた化学療法剤の使用を含む。それ
らの方策としては、いわゆる「互い違い」処置、即ち化
学療法剤での処置の後でC2B8での処置、次いでこのプロ
トコールの反復、が挙げられる。あるいは、単一用量ま
たは複数用量のC2B8での最初の処置、その後で化学療法
処置が有効である。好ましい化学療法剤としては、シク
ロホスファミド;ドキソルビシン;ビンクリスチン;お
よびプレドニソンが挙げられるがそれらに限定されな
い。Armitage, J.O.ら、Cancer 50:1695 (1982) を参照
のこと。これは本明細書中に参考として組み込まれる。
上記の別の治療方法は限定のつもりでなくむしろ例示と
して与えられる。
ペスト条約( 「ブタペスト条約」)の規定のもとに、TC
AE 8中の抗CD20(寄託の目的でE.コリ中に形質転換せ
しめたもの)をアメリカン・タイプ・カルチャー・コレ
クション(ATCC), 12301 Parklawn Drive, Rockville,
Maryland, 20852に寄託した。該微生物は1992年11月9
日にATCCにより試験され、そしてその日に生存可能であ
ると決定された。ATCCはこの微生物に次のATCC寄託番号
を付与した:ATCC 69119(TCAE 8中の抗CD20)。ブタペ
スト条約の規定のもとに1993年6月22日にハイブリドー
マ2B8 をATCCに寄託した。該培養物の生存可能性は1993
年6月25日に決定され、ATCCはこのハイブリドーマに次
のATCC寄託番号を付与した:HB 11388。
生産に有用な縦列式キメラ抗体発現ベクター ("TCAE
8") の略図である。
に含んで成る図1のベクター("TCAE 8 中の抗CD20" )
の核酸配列である。
に含んで成る図1のベクター("TCAE 8 中の抗CD20")の
核酸配列である。
に含んで成る図1のベクター("TCAE 8 中の抗CD20" )
の核酸配列である。
に含んで成る図1のベクター("TCAE 8 中の抗CD20")の
核酸配列である。
に含んで成る図1のベクター("TCAE 8 中の抗CD20" )
の核酸配列である。
に含んで成る図1のベクター("TCAE 8 中の抗CD20")の
核酸配列である。
に含んで成る図1のベクター("TCAE 8 中の抗CD20" )
の核酸配列である。
に含んで成る図1のベクター("TCAE 8 中の抗CD20")の
核酸配列である。
に含んで成る図1のベクター("TCAE 8 中の抗CD20")の
核酸配列である。
に含んで成る図1のベクター("TCAE 8 中の抗CD20")の
核酸配列である。
8 由来のマウス可変領域軽鎖の核酸配列とアミノ酸配列
(CDR とフレームワーク領域を含む) である。
8 由来のマウス可変領域重鎖の核酸配列とアミノ酸配列
(CDR とフレームワーク領域を含む)である。
ウス抗CD20モノクローナル抗体2B8 ;および標識C1q と
ヒトIgG1,kを含む、キメラ抗CD20抗体への蛍光標識ヒト
C1q の結合を証明するフローサイトメトリー結果であ
る。
ノクローナル抗体2B8 を比較する補体依存性連細胞溶解
の結果を示す。
生体内ヒトエフェクター細胞による抗体媒介性細胞障害
の結果を示す。
ラ抗CD20抗体の点滴注入後の非ヒト霊長類末梢血Bリン
パ球涸渇の結果を与える。
ラ抗CD20抗体の点滴注入後の非ヒト霊長類末梢血Bリン
パ球涸渇の結果を与える。
ラ抗CD20抗体の点滴注入後の非ヒト霊長類末梢血Bリン
パ球涸渇の結果を与える。
なキメラ抗CD20抗体の点滴注入後の非ヒト霊長類末梢血
Bリンパ球涸渇の結果を与える。
異種移植モデルにおけるY2B8の殺腫瘍性攻撃の結果を与
える。
異種移植モデルにおけるC2B8の殺腫瘍性攻撃の結果を与
える。
異種移植モデルにおけるY2B8とC2B8の組合せの殺腫瘍性
攻撃の結果を与える。
いて或る期間に渡るB細胞集団涸渇の証拠となるC2B8の
第I/II相臨床分析からの結果を与える。
て或る期間に渡るB細胞集団涸渇の証拠となるC2B8の第
I/II相臨床分析からの結果を与える。
Claims (18)
- 【請求項1】 抗−CD20抗体依存性細胞介在性細胞溶解
をCD20+ 細胞に対して誘導し且つATCC寄託番号69119 の
トランスフェクトーマにより生産されるキメラ抗体と実
質的に同じB−細胞涸渇活性を有するキメラ抗CD20抗体
の少なくとも1種の治療的有効量を含んで成るB細胞リ
ンパ腫治療用組成物。 - 【請求項2】 ヒトに投与される前記抗体の量が、前記
ヒトの体重1kgあたり抗体0.001 〜30mgである、請求項
1に記載の組成物。 - 【請求項3】 ヒトに投与される前記抗体の量が、前記
ヒトの体重1kgあたり抗体0.01〜25mgである、請求項1
又は2に記載の組成物。 - 【請求項4】 ヒトに投与される前記抗体の量が、前記
ヒトの体重1kgあたり抗体 0.4〜20mgである、請求項1
〜3のいずれか1項に記載の組成物。 - 【請求項5】 さらに、無菌塩水、無菌緩衝水、プロピ
レングリコール及びこれらの組合せから成る群から選択
された医薬として許容されるキャリヤー又は賦形剤を含
んで成る、請求項1〜4のいずれか1項に記載の組成
物。 - 【請求項6】 2回投与される、請求項1〜5のいずれ
か1項に記載の組成物。 - 【請求項7】 1回目の投与と2回目の投与の間隔が7
日間以内である請求項6に記載の組成物。 - 【請求項8】 3回投与される、請求項1〜6のいずれ
か1項に記載の組成物。 - 【請求項9】 1回目の投与と2回目の投与の間隔が7
日間以内である、請求項8に記載の組成物。 - 【請求項10】 1回目の投与と3回目の投与の間隔が
14日間以内である、請求項8又は9に記載の組成物。 - 【請求項11】 他の化学療法剤と組み合わせて投与さ
れる、請求項1〜5のいずれか1項に記載の組成物。 - 【請求項12】 前記他の化学療法剤の投与に先立って
投与される請求項11に記載の組成物。 - 【請求項13】 前記他の化学療法剤の投与の後に投与
される、請求項11に記載の組成物。 - 【請求項14】 前記他の化学療法剤がサイクロホスフ
ァミド、ドキソルビニン、ビンクリスチン及びプレドニ
ソンから成る群から選択されたものである、請求項11〜
13のいずれか1項に記載の組成物。 - 【請求項15】 抗−CD20抗体依存性細胞介在性細胞溶
解をCD20+ 細胞に対して誘導し、且つATCC寄託番号6911
9 のトランスフェクトーマから生産されるキメラ抗体と
実質的に同じB−細胞涸渇活性を有するキメラ抗CD20抗
体。 - 【請求項16】 B細胞リンパ腫治療用キットであっ
て、 (1) 抗−CD20抗体依存性細胞介在性細胞溶解活性をCD20
+ 細胞に対して誘導し、且つATCC寄託番号69119 のトラ
ンスフェクタントから生産されるキメラ抗体と実質的に
同じ涸渇活性を有するキメラ抗CD20抗体を含んで成る第
一の組成物、及び (2) 放射能標識抗CD20抗体を含んで成る第二の組成物、
を含んで成るキット。 - 【請求項17】 第一の組成物又は第二の組成物が投与
され、次に第二の組成物が投与される、請求項16に記載
のキット。 - 【請求項18】 第二の組成物が投与され、次に第一の
組成物又は第二の組成物が投与される、請求項16に記載
のキット。
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