WO2024019378A1 - 코난토킨-g의 분비를 위한 재조합 발현 벡터 및 이로 형질전환된 약독화 살모넬라 균주 - Google Patents

코난토킨-g의 분비를 위한 재조합 발현 벡터 및 이로 형질전환된 약독화 살모넬라 균주 Download PDF

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flgm
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recombinant expression
conantokin
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전흥진
김솔비
김은지
한민주
이명원
강소라
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충남대학교 산학협력단
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    • Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Definitions

  • Cancer is a disease that ultimately threatens life as the proliferation of cells does not stop, burrows into surrounding tissues and destroys normal cells. As the human body's regulatory ability decreases due to aging, it becomes vulnerable to cancer. In an aging society, cancer ranks first among all causes of death, exceeding twice the death rate from heart disease, the second largest cause.
  • the most effective response system to treat disease is to strengthen immunity, but since cancer cells are not foreign invaders, they avoid the body's immune response without triggering it. Certain viruses or bacteria infect cancer cells more than normal cells, and infected bacteria can become targets of attack by immune cells. Accordingly, anticancer treatment methods have been proposed that intentionally infect specific viruses or bacteria to stimulate the body's immune response to fight against cancer cells. Infectious bacteria such as Shigella, Vibrioholera, and pathogenic E. coli only penetrate the cells of the intestinal tract, but do not reach the liver and spleen, which are important organs that produce immune responses. In contrast, Salmonella can penetrate the spleen and liver through lymph nodes and stimulate a systemic immune response. Specifically, Leschner et al. (J.
  • Salmonella is a representative bacteria that causes food poisoning and can cause sepsis due to infection, which can be life-threatening. Therefore, it is too pathogenic to be used directly for cancer treatment.
  • attenuated Salmonella not only has low survival and immune-inducing ability, but also has the risk of converting the attenuated strain to wild-type Salmonella due to mutation, causing sepsis.
  • most anti-cancer treatments using attenuated Salmonella have been stopped or put on hold in the first stage of the clinical process.
  • Conantokin-G is a peptide composed of 17 amino acids and is a poison secreted by sea snails belonging to the genus Cone snail. It is known as an antagonist of NMDAR (N-methyl-D-aspartate receptor) and is known as a sleeper peptide. It has been reported to show potential as a neuroprotective agent in ischemic, excitotoxic, and pain diseases, and to have potential as a research tool for drug addiction and Alzheimer's disease. It is also known to reduce the intensity of excitotoxic intracellular calcium ions and block nerve damage. In particular, NMDAR is involved in the growth of cancer, and is emerging as a target for tumor treatment.
  • the present inventors manufactured a genetic construct linking the flgM gene and the gene encoding the conantokine-G protein, and introduced the genetic construct into an attenuated Salmonella strain to enable secretion of conantokine-G together with flgM, In addition to Salmonella's unique cancer cell targeting and anticancer activity, it was confirmed that the anticancer effect could be maximized by the action of a large amount of conantokine-G, which possesses anticancer activity, and based on this, the present invention was completed.
  • the purpose of the present invention is to provide a recombinant expression vector for effectively secreting conantokine-G protein showing excellent anticancer effect and an attenuated Salmonella strain transformed with the same.
  • Another object of the present invention is to provide an anti-cancer pharmaceutical composition containing the attenuated Salmonella strain as an active ingredient.
  • One aspect is the flgM gene; and an attenuated Salmonella strain transformed with a recombinant expression vector containing the conantokine-G gene.
  • flgM refers to a protein (or a gene encoding such a protein) that inhibits the ⁇ factor, which is responsible for recruiting the RNA polymerase required for late flagellar transcription in the bacterial type 3 secretion system.
  • type 3 secretion system is a pathogenic substance delivery method developed in Gram-negative bacteria, and is a syringe-shaped device that injects pathogenic active proteins directly into the cytoplasm through the host cell membrane (Mota LJ et al, Ann Med. (2005) );37(4):234-249), which means a multi-protein complex structure.
  • the flgM protein remains in the cytoplasm, and class III genes, such as flagellin, are formed. It acts as an anti- ⁇ 28 factor that interferes with transcription of the subunit FliC or the stator protein MotAB.
  • a change in substrate specificity occurs simultaneously within the flagella secretion system, which causes flgM to be secreted out of the cell through the central passage of the hook, and then ⁇ 28 -dependent transcription begins within the cell. .
  • the secretion mechanism of flgM through the flagellum formation process in the type 3 secretion system is shown in Figure 2.
  • the present invention produces a genetic construct containing the flgM gene and the conantokine-G gene, a protein to be secreted, and secretes conantokine-G outside the strain along with the secretion of flgM through the type 3 secretion system of the strain. made possible.
  • Conantokin-G is a peptide composed of 17 amino acids and is a poison secreted by Conus geographus, a member of the genus Conus geographus.
  • sequence of Conantokine-G can be obtained from NCBI GeneBank, a known database.
  • the term “gene” should be considered in its broadest sense and may encode a structural protein or a regulatory protein.
  • the regulatory protein may include transcription factors, heat shock proteins, or proteins involved in DNA/RNA replication, transcription, and/or translation.
  • the term “transformation” refers to introducing a vector containing a polynucleotide encoding a target protein into a host cell so that the protein encoded by the polynucleotide can be expressed within the host cell.
  • the polynucleotide may be introduced into the host cell in the form of an expression cassette, or may be introduced into the host cell in its own form and operably linked to the sequence required for expression in the host cell. It doesn't work.
  • a recombinant expression vector containing the flgM gene and the conantokine-G gene, a protein to be secreted is created and transformed into a Salmonella strain, thereby not only expressing conantokine-G but also producing cells. It can also regulate the secretion of conantokin-G.
  • the term "attenuated” refers to artificially weakening the toxicity of a living pathogen. It means mutating the genes involved in the essential metabolism of the pathogen to prevent it from causing disease in the body and stimulating only the immune system to induce immunity. .
  • the attenuated Salmonella strains include aroA, aroC, aroD, aroE, asd, Rpur, htrA, ompR, ompF, ompC, galE, cya, crp, cyp, phoP, phoQ, rfaY, dksA, hupA, sipC, clpB, clpP, clpX, pab, nadA, pncB, pmi, rpsL, hemA, rfc, poxA, galU, cdt, pur, ssa, guaA, guaB, fliD, The function of one or more genes selected from the group consisting of flgK, flgL, relA, and spoT may be lost.
  • the function of two or more of the above genes may be lost in order to prevent reduction to the wild type and further weaken toxicity.
  • the attenuated Salmonella strain may be a Salmonella strain that has lost aroA, aroD, and asd genes.
  • the attenuated Salmonella strain has anticancer activity by targeting the tumor site and inducing an immune response. Meanwhile, when transformed with the recombinant expression vector of the present invention, the Salmonella strain is targeted to the tumor site, and the secretion ability for conantokin-G, for example, flgM-conantokin-G fusion protein, is improved, making it more powerful. It may exhibit anticancer activity.
  • conantokin-G for example, flgM-conantokin-G fusion protein
  • the flgM gene and the conantokine-G gene may be connected through a linker.
  • linker refers to a polypeptide chain used to link a heterologous domain to a protein of interest, and in one embodiment, the linker is, for example, (G l S m ) n (l , m and n are each ⁇ 2), (G l S m ) n - H p - (G l S m ) n (l, m and n are each ⁇ 1, H ⁇ 6), (G 4 S) a (EAAAK) b (G 4 S) a (a, b are integers from 1 to 4), (G 4 S) p (EAAAK) q (p, q are integers from 1 to 4), (EAAAK) x (G 4 S) y (x, y is an integer from 1 to 4), A(EAAAK) 4 ALEA(EAAAK) 4 A,
  • the linker may be, for example, a 10 to 16-mer peptide linker, and the length of the peptide is 10 to 15-mer, 10 to 14-mer, 10 to 13-mer, 10 to 12-mer, 10 to 10-mer.
  • the length of the linker may affect the secretion level of the flgM-conantokine-G fusion protein of the Salmonella strain according to one embodiment.
  • the attenuated Salmonella strain may have an improved secretion ability of conantokine-G.
  • an attenuated Salmonella strain is transformed with a vector containing an arabinose-inducible promoter to control the expression of conantokine-G in the presence of arabinose, and flgM of the type 3 secretion system is used to control conantokine-G. It can ensure that the G protein can be effectively secreted outside the strain.
  • the attenuated Salmonella strain may additionally include the flhDC gene.
  • the flhDC gene is a main regulator of the flagellin operon gene and can regulate the expression of the flgM gene. Therefore, when the flhDC gene is included in the gene construct, the expression or secretion amount of flgM-conantokine-G is enhanced. You can contribute.
  • the attenuated Salmonella strain may be a Salmonella strain deposited under accession number KCTC15483BP.
  • the attenuated Salmonella strain was transformed with a recombinant expression vector containing the flgM gene-linker-conantokine-G-flhDC gene construct, and the gene construct exhibits the unique anticancer activity of conantokine-G. While maintaining this, it was possible to improve the secretion ability of flgM-conantokine-G of the attenuated Salmonella strain. Therefore, the transformed attenuated Salmonella strain according to one embodiment can be used as an active ingredient for the treatment of cancer.
  • Another aspect provides an anti-cancer pharmaceutical composition or a pharmaceutical composition for the prevention or treatment of cancer containing the attenuated Salmonella strain as an active ingredient.
  • Cancer a disease to be prevented or treated by the composition of the present invention, has aggressive characteristics in which cells divide and grow ignoring normal growth limits, invasive characteristics that penetrate into surrounding tissues, and It is a general term for diseases caused by cells with metastatic characteristics that spread to other parts of the body.
  • the cancer may be a solid cancer, and preferably, if it is a tumor containing cancer tissue or cancer cells that can exhibit the cancer-targeting ability of the Salmonella strain, the application can be extended without limitation.
  • the type of cancer may be any one selected from the group consisting of pancreatic cancer, colon cancer, colon cancer, stomach cancer, liver cancer, colon cancer, brain cancer, breast cancer, thyroid cancer, bladder cancer, esophageal cancer, uterine cancer, and lung cancer. , but is not limited to this.
  • composition of the present invention can be prepared by a method known in the pharmaceutical field for use as an anti-cancer drug, either by itself or by mixing with a pharmaceutically acceptable carrier, forming agent, diluent, etc. can be used
  • compositions may be determined in part depending on the particular composition being administered, as well as in part depending on the particular method used to administer the composition. Accordingly, suitable formulations of the compositions vary widely; for example, the compositions may be formulated for parenteral (i.e., intramuscular, intradermal, or subcutaneous) administration or nasopharyngeal (i.e., intranasal) administration. Generally, formulations for parenteral administration include sterile aqueous or non-aqueous solutions, suspensions and emulsions.
  • non-aqueous solvents examples include propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oils such as olive oil, and injectable organic esters such as ethyl oleate.
  • Aqueous carriers can include water, alcoholic/aqueous solutions, emulsions or suspensions, including saline and buffered media.
  • Parenteral vehicles may include sodium chloride solution, Ringer's dextrose, dextrose and sodium chloride, lactated Ringer's, or fixed oils. Preservatives and other additives may also be present, such as antibacterial agents, antioxidants, chelating agents, and inert gases.
  • the dosage of the active ingredient according to the present invention can be appropriately selected depending on the absorption of the active ingredient in the body, the form of the preparation, the patient's age, gender and condition, the severity of symptoms, etc., and the administration may be done once a day. , may be administered in several divided doses.
  • the typical dosage is 0.001mg/kg ⁇ day to 10g/kg ⁇ day.
  • Another aspect provides a method of preventing or treating cancer, comprising administering the pharmaceutical composition to a subject in an amount effective for preventing or treating cancer.
  • the subject may be a mammal.
  • the mammal may be a human, mouse, rat, dog, cat, horse, cow, goat, or pig.
  • treatment or “treating” or “palliative” or “ameliorative” are used interchangeably herein. These terms refer to methods of obtaining advantageous or desired results, including but not limited to therapeutic benefits and/or prophylactic benefits.
  • Treatment benefit means any therapeutically significant improvement or effect on one or more diseases, conditions or symptoms under treatment.
  • the composition may be administered to a subject at risk of developing a particular disease, condition or condition or to a subject who reports one or more physiological symptoms of the disease, even if the disease, condition or condition has not yet manifested.
  • the pharmaceutical composition may be administered singly or multiple times in a pharmaceutically effective amount.
  • the composition can be formulated and administered in the form of a solution, powder, aerosol, injection, infusion solution (injection), capsule, pill, tablet, suppository, or patch.
  • the route of administration of the pharmaceutical composition for preventing or treating cancer by administering an anticancer agent may be administered through any general route as long as it can reach the target tissue.
  • the pharmaceutical composition is not particularly limited, but depending on the purpose, intraperitoneal administration, intravenous administration, intramuscular administration, subcutaneous administration, intradermal administration, transdermal patch administration, oral administration, intranasal administration, intrapulmonary administration, intrarectal administration, etc. It can be administered through the route.
  • Another aspect is the flgM gene; and a genetic construct containing the conantokine-G gene or the flgM gene; and a recombinant expression vector containing the conantokine-G gene.
  • the term “genetic structure” refers to an assembly, functional unit, or construct containing the genetic information of a protein of interest, and can be interpreted in the broadest sense.
  • the genetic construct is intended to enhance the secretion of flgM-conantokine-G fusion protein from an attenuated Salmonella strain, for example, the flgM gene, a 10 to 16 mer peptide linker, and conan It may refer to a DNA insert to which the Tokine-G gene is operably linked.
  • the term “vector” refers to a DNA preparation containing a base sequence encoding the target polynucleotide operably linked to a suitable control sequence to enable expression of the target polynucleotide in a suitable host.
  • the regulatory sequences may include a promoter capable of initiating transcription, an optional operator sequence to regulate such transcription, a sequence encoding a suitable mRNA ribosome binding site, and sequences that regulate the termination of transcription and translation.
  • the vector After being transformed into a suitable host, the vector can replicate or function independently of the host genome and can be integrated into the genome itself.
  • the vector may be any that can replicate within the host cell.
  • the vector may be a plasmid, cosmid, virus, or bacteriophage in a natural or recombinant state.
  • the vector may include a selection marker for selecting host cells containing the vector.
  • a selection marker is used to select cells transformed with a vector, and markers that confer selectable phenotypes such as drug resistance, auxotrophy, resistance to cytotoxic agents, or expression of surface proteins may be used.
  • the marker may be any one or more selection markers selected from the group consisting of ampicillin, neomycin, puromycin, hygromycin, and zeocin.
  • the vector may include genes involved in replication and/or copy number control, such as an origin of replication and a promoter, and may include restriction enzyme sites, etc., but is not limited thereto.
  • the recombinant expression vector may be operably linked to an inducible promoter.
  • inducible promoter refers to a promoter capable of switching the operation of a linked gene by an inducer, for example, ara promoter, tac promoter, lac promoter, lacUV5 promoter, lpp promoter, pL ⁇ promoter, pR ⁇ promoter, rac5 Promoter, amp promoter, recA promoter, SP6 promoter, trp promoter, T7 promoter, pBAD promoter, Tet promoter, trc promoter, pepT promoter, sulA promoter, pol 11(dinA) promoter, ruv promoter, uvrA promoter, uvrB promoter, uvrD promoter , umuDC promoter, lexA promoter, cea promoter, caa promoter, recN promoter, pagC promoter, hip promoter, ansB promoter or pflE promoter.
  • operably linked may refer to nucleotide sequences being linked on a single nucleic acid fragment such that one function is affected by the other.
  • the pBAD18 asd plasmid was used as a vector to establish a recombinant expression vector of flgM-(linker)-conantokin-G-pBAD18 in which the gene was operably linked to the ara promoter.
  • the asd gene may consist of the base sequence of SEQ ID NO: 10.
  • a Shine-Dalgarno sequence may be inserted into the front end of the genetic construct of the present invention to improve the expression efficiency of conantokine-G.
  • appropriate restriction enzymes can be placed at the front and rear ends of the genetic construct of the present invention so that the genetic construct of the present invention can be introduced into a vector.
  • the flgM gene may consist of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1
  • the conantokin-G gene may consist of the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 2.
  • the recombinant expression vector may further include a flhDC gene, and the flhDC gene may consist of the base sequence of SEQ ID NO: 3.
  • variants refers to entities that exhibit significant structural identity to a reference entity (e.g., a wild-type sequence) but differ structurally from the reference entity in one or more respects. Whether a particular entity is appropriately considered a “variant” of a reference entity is based on its degree of structural or functional identity with the reference entity. Any biological or chemical reference entity has certain unique structural elements, and a variant, by definition, refers to a distinct chemical entity that shares one or more such unique structural elements.
  • a polynucleotide may have unique sequence elements comprising a plurality of nucleotide residues having designated positions relative to each other in linear or three-dimensional space.
  • a polynucleotide may differ from a reference polynucleotide due to one or more differences in the nucleotide sequence and/or one or more differences in chemical moieties (e.g., carbohydrates, lipids, etc.) covalently linked to the polynucleotide backbone.
  • the variant is at least 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91%, 92%, 93% , indicates overall sequence identity to the reference polynucleotide of 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, or 99%.
  • the flgM gene; Conantokine-G gene; and flhDC genes may be regulated by the same inducible promoter.
  • the flgM gene; Conantokine-G gene; and flhDC genes whose expression is regulated by the same inducible promoter, the extra-strain secretion ability of the flgM and conantokine-G proteins may be improved, and the anti-cancer effect of the composition containing the above strains may be improved.
  • the attenuated Salmonella strain according to the present invention was transformed with a recombinant expression vector containing the flgM gene-linker-conantokine-G gene construct and the flhDC gene, through which high levels of conantokine-G were expressed and secreted. can be derived. Therefore, the recombinant expression vector according to one aspect, the attenuated Salmonella strain transformed therewith, and the anticancer pharmaceutical composition containing the same can be used to treat cancer.
  • Figure 1 is a diagram schematically showing the flgM-conantokin-G protein secretion process using a type 3 secretion system.
  • Figure 2 is a diagram briefly showing the flgM secretion mechanism using the flagellum formation process in the type 3 secretion system.
  • Figure 3 is a diagram showing a cleavage map of the flgM-linker-conantokin-G-flhDC pBAD18 plasmid according to an embodiment.
  • Figure 4 shows the results of confirming the protein secretion level of an attenuated Salmonella strain transformed using the flgM-linker-conantokin-G-flhDC pBAD18 plasmid according to an example.
  • Figure 5 shows the results of evaluating the activity of the flgM-conantokin-G fusion protein secreted from an attenuated Salmonella strain according to an example, confirming the antitumor effect on colon cancer cell lines.
  • Figure 6 is an evaluation of the activity of the flgM-conantokin-G fusion protein secreted from an attenuated Salmonella strain according to an example, and shows the results of evaluating the level of cancer cell death through CCK assay and LDH assay.
  • Figure 7 shows the results of quantitatively confirming the change in tumor volume over time after intravenous administration of the flgM-conantokin-G /aroA aroD asd- strain according to an example to a colon cancer mouse model.
  • Figure 8 shows the results of confirming the change in tumor volume for each individual over time after intravenous administration of the flgM-conantokin-G /aroA aroD asd- strain according to an example to a colon cancer mouse model.
  • Figure 9 shows the results of visual confirmation of changes in tumor tissue over time after intravenous administration of the flgM-conantokin-G /aroA aroD asd- strain according to an example to a colon cancer mouse model.
  • flgM DNA sequence of wild-type Salmonella flgM anti-sigma-28 factor FlgM [Salmonella enterica subsp. enterica serovar Typhimurium str. LT2] Gene ID: 1252690, Locus tagSTM1172 NC_003197.2 (1257036..1257341, complement)) and conantokin-
  • the DNA sequence obtained through codon optimization for G was linked to produce a genetic structure according to one example.
  • the flgM DNA sequence and the conantokin-G DNA sequence were connected through a linker, and to increase the expression of the flgM gene, 14 shine-Dalgarno sequences (AGGAGGTTTGACCT) were inserted in front of the flgM gene.
  • the NheI site was inserted at the front, and the SacI site was inserted after the stop codon of conantokin-G.
  • the genetic information of the main structures in this example is as shown in Table 1 below.
  • a PCR product containing the flhDC gene was obtained by PCR using the genomic DNA of wild-type Salmonella LT2 as a template and the flhD-sac1-F and flhC-Sal1-r primers in Table 2 below.
  • the specific PCR conditions were as follows; 5 ⁇ l of 10x buffer, 10 ⁇ l of 5xQ solution, 7.5 ⁇ l of 2 mM dNTPs, 2.5 ⁇ l of 20 ⁇ M flhD-sac1-F primer, 2.5 ⁇ l of 20 ⁇ M flhC-Sal1-r primer, 1 ⁇ l of Taq polymerase, 2 ⁇ l of 10 ng/ ⁇ l genomic DNA, and water.
  • each vector DNA was ligated with the flgM-conantokin-G insert DNA of Example 1-1 at 25°C for 30 minutes and transformed into DH5a competent cells. Thereafter, the transformed cells were spread on LB amp solid medium and cultured at 37°C to select colonies with antibiotic resistance. Six candidate colonies were selected and reacted with 10 U each of NheI and SacI for 1 hour at 37°C, and the generation of a 400bp band was confirmed through electrophoresis.
  • flgM-linker1-conantokin-G-pBAD18 plasmid or flgM-linker2-conantokin-G-pBAD18 plasmid was reacted with 10U of sacI and SalI for 2 hours at 37°C, and the reaction product was purified using a PCR purification kit.
  • Vector DNA was completed. Afterwards, each vector DNA was ligated with the flhDC insert DNA of Example 1-2 at 25°C for 30 minutes, and then DH5a competent cells were transformed. Transformed cells were plated on LB amp solid medium and cultured at 37°C to select colonies with antibiotic resistance.
  • An attenuated Salmonella strain was transformed using the plasmid prepared in Example 1 above.
  • the aro A aro D asd- strain was used as the attenuated Salmonella strain, and through this, the attenuated Salmonella strain was controlled to regulate the expression of conantokin-G by arabinose and secrete it out of the cell.
  • a single colony of each transformed strain was inoculated into LB amp liquid medium and cultured with shaking at 37°C for 12 to 16 hours. Afterwards, it was diluted in fresh LB amp liquid medium to an OD600 of 0.05 and cultured with shaking at 37°C for 2 hours.
  • lanes 1 and 2 represent the group transformed with the flgM-linker1-conantokin-G-flhDC pBAD18 plasmid (flgM-linker1-conantokin-G-flhDC pBAD18/aroA aro D asd-), and lanes 3 and 4 represent the group transformed with the flgM-linker1-conantokin-G-flhDC pBAD18 plasmid.
  • the present inventors deposited the flgM-linker2-conantokin-G-flhDC pBAD18/aroA aro D asd- strain according to an embodiment to the Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology Biological Resources Center on June 26, 2023, and assigned the accession number KCTC15483BP. was granted (S-flgM-conantokin-pBAD18-ASD+/BRD509 asd-).
  • a single colony of the transformed flgM-linker2-conantokin-G-flhDC pBAD18/aroA aro D asd- strain obtained in Example 2 was inoculated into LB amp liquid medium and cultured with shaking at 37°C for 12 to 16 hours. Afterwards, it was diluted in fresh LB amp liquid medium to an OD600 of 0.05 and cultured with shaking at 37°C for 2 hours. When the OD600 reached 0.4 to 0.6 through shaking culture, arabinose was treated to a concentration of 0.2 w%, and the culture was shaken for an additional 5 hours at 37°C. For comparison, a comparison group not treated with arabinose was cultured with shaking under the same conditions. The culture was centrifuged at 3000 rpm to separate the supernatant, and then filtered through a 0.2 ⁇ m filter to completely remove bacteria. Through this, flgM-conantokin-G fusion protein was obtained.
  • murine CT26 mouse colon cancer cell line, HT29, and SW480 human colon cancer cell lines were purchased and each cell was cultured in DMEM (Dulbecco's modified Eagle's medium) containing 10% fetal bovine serum (FBS) and 1% penicillin-streptomycin. After growing, cells were seeded into 6-wells when the number of cells was 2 ⁇ 10 5 . 24 hours later, 200 ⁇ l of the fusion protein obtained from the supernatant was treated through the above process, and observed after culturing for 48 hours.
  • DMEM Dynamic Eagle's medium
  • FBS fetal bovine serum
  • the cell level of the comparison group (-), which was not treated with arabinose, was reduced by about 5% compared to the control group treated with PBS, while the cell level was reduced by about 5% when treated with arabinose, flgM-conantokin- In the experimental group (+) that induced the expression or secretion of G, it was confirmed that the cell level was reduced by more than 50%.
  • CCK assay and LDH assay were performed using the culture medium and cells of Example 3-2.
  • 100ul of the cultured cell line supernatant was transferred to a 96-well plate, 100ul of the CCK solution was added, and the result was measured with a 450nm microreader.
  • This experiment was conducted in triplicate to increase reliability.
  • the cultured cell line supernatant was centrifuged at 1000 rpm for 3 minutes to remove cell debris, and 10 ul of the supernatant and 100 ul of the LDH solution were mixed, incubated at room temperature for 30 minutes, and measured with a 450 nm microreader.
  • the experiment was conducted in triplicate.
  • the level of cell activity detected in the experimental group (+) that induced the expression or secretion of flgM-conantokin-G was compared to the comparison group (-) that was untreated or not treated with arabinose. It was confirmed that this was the lowest, and the level of cells bursting and dying was the highest.
  • the above experimental results show that the transformed attenuated Salmonella strain according to one embodiment has the cell death ability inherent to conantokin-G, and its secretion ability is enhanced through a unique structure linked to flgM, a type 3 secretion system. It has been experimentally proven that this is the case.
  • the experimental animals were 6-week-old animals weighing about 20 g.
  • BALB/c female mice were purchased and used. All animals according to approved protocols For care and experimentation, euthanasia was performed.
  • Murine CT26 colon carcinoma cells were purchased from the American Cell Line Bank (ATCC) and cultured in DMEM medium containing 10% FBS and 1% penicillin-streptomycin. After collecting the CT26 tumor cells cultured in vitro, they were suspended in 20 ⁇ l PBS, and then 1 ⁇ 10 6 cells were subcutaneously injected into the right back of BALB/c mice to xenograft the tumor cells.
  • the flgM-linker2-conantokin-G-flhDC pBAD18/aroA aro D asd- strain prepared in Example 2 is diluted with PBS to obtain about 5 ⁇ 10 cells. It was injected through the tail vein at a dose of 7 CFU/mice (day 0). Afterwards, the mice were injected intraperitoneally with 100 ⁇ l/mice of 40% L-arabinose every day to induce the expression or secretion of flgM-conantokin-G, and the weight and tumor size of the mice were measured at a certain time every day. It was recorded.
  • Tumor volume was calculated using the formula (tumor length
  • the control group was a group injected with only PBS buffer (PBS)
  • the comparison group was a group injected with the attenuated Salmonella strain aroA aroD asd- strain (Salmonella), and the aroA aroD asd- strain transformed with flgM asd was injected as a comparison group.
  • a group (Salmonella+flgM), and a group (Co-) treated with a strain according to an example but not treated with arabinose were used.

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Abstract

코난토킨-G의 분비를 위한 재조합 발현 벡터 및 이로 형질전환된 약독화 살모넬라 균주에 관한 것으로서, flgM 유전자; 및 코난토킨-G 유전자를 포함하는 재조합 발현 벡터로 형질전환된, 약독화 살모넬라 균주, 상기 약독화 살모넬라 균주를 유효성분으로 포함하는 항암용 약학적 조성물, 및 코난토킨-G의 분비능을 향상시킬 수 있는 재조합 발현 벡터를 제공한다.

Description

코난토킨-G의 분비를 위한 재조합 발현 벡터 및 이로 형질전환된 약독화 살모넬라 균주
코난토킨-G의 분비를 위한 재조합 발현 벡터 및 이로 형질전환된 약독화 살모넬라 균주에 관한 것이다. 본 특허출원은 2022년 07년 21일에 대한민국 특허청에 제출된 대한민국 특허출원 제10-2022-0090612호에 대하여 우선권을 주장하며, 상기 특허출원의 개시 사항은 본 명세서에 참조로서 삽입된다.
암은 세포의 증식 활동이 멈추지 않아 주변 조직으로 파고들어 정상세포를 파괴하는 것에 의해 결국에는 생명을 위협하는 질환이다. 노화에 의해 인체의 조절능력이 낮아짐에 따라 암에 취약해지게 되어, 고령화 사회에서 암은 전체 사망원인 중 부동의 1위를 차지하며 2위인 심장질환 사망률의 2배를 넘어섰다.
질병의 치료에 가장 효과적인 대응 체계는 면역력을 강화하는 것이나, 암세포는 외부 침입자가 아니기 때문에 인체의 면역반응을 유발하지 않고 회피한다. 특정 바이러스 또는 박테리아는 정상세포보다 암세포에 더 많이 감염되고, 감염된 박테리아가 면역세포의 공격대상이 될 수 있다. 이에 일부러 특정 바이러스 또는 박테리아를 감염시켜 인체 면역반응을 자극함으로써 암세포에 대항할 수 있도록 하는 항암치료 방법들이 제시되었다. 시겔라(Shigella), 콜레라균(Vibrioholera), 병원성 대장균(pathogenic E. coli)과 같은 감염성 세균들은 장관의 세포에 침투할 뿐, 면역반응을 일으키는 중요한 기관인 간과 비장에는 도달하지 못한다. 이와 대조적으로 살모넬라균은 림프절을 통하여 비장과 간에 침투하여 전신면역반응을 자극시킬 수 있다. 구체적으로, Leschner 등(J. Mol. Med. 2010, 88,763-773)은 CT26 종양을 갖는 마우스를 대상으로 형광을 나타내는 살모넬라균을 정맥주사로 감염시킨 후, 시간에 따른 감염 경로를 추적하였다. 그 결과 감염 직후에는 마우스의 혈액을 통해 전신이 감염된 것을 보여주었으며, 감염 20분 후에는 비장과 간에 살모넬라균이 축적되었으며, 24시간 후에는 종양 조직에만 살모넬라균이 집중적으로 축적되어 있음을 관측하였다.
하지만 살모넬라균은 식중독을 유발하는 대표적인 균으로 감염에 의해 패혈증을 유발하여 생명을 위협할 수 있으므로 직접적으로 암 치료에 사용하기에는 병원성이 너무 강하다. 미국 예일대학 연구팀은 살모넬라를 유전자 조작하면 종양을 공격하는 특성은 유지하면서 독성만 제거하여 약독화할 수 있으며, 상기 약독화된 살모넬라의 주입을 통해 면역 자극을 유도하여 종양을 억제할 수 있다고 발표하였다. 그러나 약독화된 살모넬라는 생존성이 낮고 면역유도능 역시 저하될 뿐 아니라 돌연변이로 인하여 약독화 균주가 야생형 살모넬라로 전환되어 패혈증을 일으킬 우려가 있다. 이에 더하여 연구개발자금의 부족 문제로 인하여 약독화된 살모넬라를 이용한 항암치료는 임상과정의 1단계에서 대부분 중단되거나 보류된 상태이다.
살모넬라와 같은 박테리아를 이용한 암 치료에 동반되어 발생할 수 있는 패혈증의 유발은 극복해야 할 매우 중요한 문제이며, 이에 더하여 면역반응의 자극 역시 활발하게 이루어질 수 있어야 한다. 이에 약독화 및 면역 활성화와 함께 항암치료에 도움이 되는 물질들을 추가로 발현 또는 억제시킬 수 있는 균주들을 개발하고, 이를 항암치료에 이용하고자 하는 연구들이 주를 이루고 있다. 등록특허 제10-0852687호는 약독화된 살모넬라 균주 내에 종양괴사인자 알파단백질 벡터를 형질도입한 종양괴사인자 알파를 발현하는 살모넬라 균주 및 이를 함유하는 항암 치료용 조성물에 대해 게시하였으며, 공개특허 제10-2021-0123556호는 필라멘트 성장 조절로 면역반응을 유도하는 항암 살모넬라에 대해 게시하였다.
“코난토킨-G”는 17개의 아미노산으로 구성된 펩타이드로서, 청자고둥(Cone snail)속에 속한 바다 달팽이가 분비하는 독이다. 이것은 NMDAR(N-methyl-D-aspartate receptor)의 길항제(antagonist)로 알려져 있으며 슬리퍼(sleeper) 펩타이드로 알려져 있다. 허혈성 및 흥분독성 및 통증 등에서 신경보호제의 가능성을 보여주며 약물중독 및 알츠하이머의 연구 도구로 잠재력이 있음이 보고되어 있다. 또한 흥분 독성 세포내 칼슘이온의 강도를 감소시키고, 신경 손상을 차단하는 것으로 알려져 있다. 특히 암의 성장에 NMDAR이 연관되어 있어, 종양 치료에 타겟으로 떠오르고 있다.
이에 본 발명자들은 flgM 유전자 및 코난토킨-G 단백질을 암호화하는 유전자를 연결시킨 유전자 구조물을 제조하고, 유전자 구조물을 약독화 살모넬라 균주에 도입함에 따라 flgM와 함께 코난토킨-G의 분비를 가능하게 함으로써, 살모넬라 고유의 암 세포 표적화 및 항암 활성에 더하여, 항암 활성을 보유하는 다량의 코난토킨-G의 작용에 의해 항암 효과를 보다 극대화시킬 수 있음을 확인하고, 이에 기초하여 본 발명을 완성하였다.
본 배경기술 부분에 기재된 상기 정보는 오직 본 발명의 배경에 대한 이해를 향상시키기 위한 것이며, 이에 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가지는 자에게 있어 이미 알려진 선행기술을 형성하는 정보를 포함하지 않을 수 있다.
본 발명의 목적은 우수한 항암효과를 보이는 코난토킨-G 단백질을 효과적으로 분비하기 위한 재조합 발현 벡터 및 이로 형질전환된, 약독화 살모넬라 균주를 제공하는데 있다.
본 발명의 다른 목적은 상기 약독화 살모넬라 균주를 유효성분으로 포함하는 항암용 약학적 조성물을 제공하는데 있다.
일 양상은 flgM 유전자; 및 코난토킨-G 유전자를 포함하는 재조합 발현 벡터로 형질전환된, 약독화 살모넬라 균주를 제공하는 것이다.
본 명세서에서 "flgM"은 박테리아의 3형 분비계에서 후기 편모 전사를 위해 필요한 RNA 중합효소를 동원하는 것을 담당하는 σ인자를 억제하는 단백질 (또는 이러한 단백질을 암호화하는 유전자)을 지칭한다. 본 명세서에서 "3형 분비계"는 그람 음성균에 발달된 병원성 물질 전달 방법으로, 숙주 세포막을 통과하여 직접 세포질로 병원성 활성 단백질을 주입하는 주사기 형태의 기구(Mota LJ et al, Ann Med.(2005);37(4):234-249)로 다중 단백질 복합구조체를 의미한다. 상기 3형 분비계에서, 세포막에 편모를 만들 수 있는 기본 구조인 후크(hook)-기저체(basal body)가 형성되는 동안, flgM 단백질은 세포질 내에 남아있으며, class III 유전자, 예를 들어 플라젤린 서브유닛 FliC 또는 고정자(stator) 단백질 MotAB의 전사를 방해하는 항-σ28 인자로서 작용한다. 이후, 후크-기저체 구조 완성 후, 동시에 플라젤라 분비 시스템 내 기질 특이성의 변화가 일어나고, 이로 인해 flgM은 후크의 중앙통로를 통해 세포 밖으로 분비되고, 이후 세포 내에서는 σ28-의존적 전사가 시작된다. 3형 분비계에서의 편모 형성 과정을 통한 flgM의 분비기작을 도 2에 나타내었다.
구체적으로, 본 발명은 flgM 유전자와 분비하고자 하는 단백질인 코난토킨-G 유전자를 포함하는 유전적 구조물을 제작하여, 균주의 3형 분비계를 통한 flgM의 분비와 함께 코난토킨-G의 균주 외 분비를 가능하게 하였다.
본 명세서에서 용어, "코난토킨-G"는 17개의 아미노산으로 구성된 펩타이드로서, 청자고둥속에 속한 Conus geographus가 분비하는 독이다. 코난토킨-지의 서열은 공지의 데이터베이스인 NCBI　GeneBank에서 그 정보를 수득할 수 있다.
본 명세서에서 용어, "유전자"는 최광의의 의미로 간주되어야 하며, 구조 단백질 또는 조절 단백질을 암호화할 수 있다. 이때, 조절 단백질은 전사인자, 열 충격단백질 또는 DNA/RNA 복제, 전사 및/또는 번역에 관여하는 단백질을 포함할 수 있다.
본 명세서에서 용어, "형질전환"은 목적 단백질을 암호화하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는　벡터를 숙주세포 내에 도입하여 숙주세포 내에서 상기 폴리뉴클레오티드가 암호화하는 단백질이 발현할 수 있도록 하는 것을 의미한다. 예를 들어, 상기 폴리뉴클레오티드는 발현 카세트의 형태로 숙주세포에 도입될 수 있으며 그 자체의 형태로 숙주세포에 도입되어 숙주세포에서 발현에 필요한 서열과 작동 가능하게 연결되어 있는 것일 수도 있으며, 이에 한정되지 않는다. 일 실시예에 따르면, flgM 유전자 및 분비하고자 하는 단백질인 코난토킨-G 유전자가 포함된 재조합 발현 벡터를 제작하여, 이로 살모넬라 균주를 형질전환함으로써, 단지 코난토킨-G의 발현에 그치는 것이 아니라, 세포 외로 코난토킨-G가 분비되도록 조절할 수 있다.
본 명세서에서 용어, "약독화"는 살아있는 병원체의 독성을 인위적으로 약하게 한 것으로, 병원체의 필수 대사에 관여하는 유전자를 변이시켜 체내에서 질병을 일으키지 못하고 면역 체계만을 자극하여 면역성을 유도하는 것을 의미한다. 살모넬라의 약독화 초래 유전자는 당업계에 잘 알려져 있으며, 예를 들어, 상기 약독화 살모넬라 균주는 aroA, aroC, aroD, aroE, asd, Rpur, htrA, ompR, ompF, ompC, galE, cya, crp, cyp, phoP, phoQ, rfaY, dksA, hupA, sipC, clpB, clpP, clpX, pab, nadA, pncB, pmi, rpsL, hemA, rfc, poxA, galU, cdt, pur, ssa, guaA, guaB, fliD, flgK, flgL, relA, 및 spoT로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자의 기능이 상실된 것일 수 있다. 생체 내 적용 시 야생형으로의 환원을 방지하고, 독성을 더욱 약화시키기 위하여 상기 유전자 중 둘 이상의 유전자 기능을 상실시킬 수 있다. 일 구체예에 따르면, 상기 약독화 살모넬라 균주는 aroA, aroD 및 asd 유전자가 상실된 살모넬라 균주일수 있다.
상기 약독화 살모넬라 균주는 종양 부위에 표적화되어 면역 반응을 유도하는 것에 의해 항암 활성을 갖는다. 한편, 본 발명의 재조합 발현 벡터로 형질전환하는 경우, 상기 살모넬라 균주는 종양 부위에 표적화되고, 코난토킨-G, 예를 들어, flgM-코난토킨-G 융합 단백질에 대한 분비능이 향상되어, 더욱 강력한 항암 활성을 나타낼 수 있다.
일 구체예에서, 상기 flgM 유전자와 코난토킨-G 유전자는 링커를 통하여 연결될 수 있다. 본 명세서에서 "링커"란 관심있는 단백질에 이종성 도메인(domain)을 연결하는 데 사용된 폴리펩타이드 사슬을 지칭하며, 일 구체예에서, 상기 링커는 예를 들어, (GlSm)n(l, m 및 n은 각각 ≥ 2), (GlSm)n-Hp-(GlSm)n (l, m 및 n은 각각 ≥ 1, H ≥ 6), (G4S)a(EAAAK)b(G4S)a(a, b는 1 내지 4의 정수), (G4S)p(EAAAK)q(p, q는 1 내지 4의 정수), (EAAAK)x(G4S)y(x, y는 1 내지 4의 정수), A(EAAAK)4ALEA(EAAAK)4A, (GSSGGS)i(i는 1 내지 4의 정수), KESGSVSSEQLAQFRSLD, EGKSSGSGSESKST, GSAGSAAGSGEF, (EAAAK)k(k는 1 내지 5의 정수), CRRRRRREAEAC, GGGGGGGG, GGGGGG, AEAAAKEAAAAKA, PAPAP, VSQTSKLTRAETVFPDV, PLGLWA, TRHRQPRGWE, AGNRVRRSVG, RRRRRRRR, 및 GSSGGSGSSGGSGGGDEADGSRGSQKAGVDE로 구성되는 군으로부터 선택되는 어느 하나일 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
상기 링커는 예를 들어, 10 내지 16-mer의 펩타이드 링커 일 수 있으며, 상기 펩타이드의 길이는 10 내지 15-mer, 10 내지 14-mer, 10 내지 13-mer, 10 내지 12-mer, 10 내지 11-mer, 12 내지 16-mer, 12 내지 15-merm, 12 내지 14-mer, 12 내지 13-mer, 13 내지 16-mer, 13 내지 15-merm, 또는 13 내지 14-mer의 펩타이드 링커 일 수 있다. 상기 링커의 길이는 일 실시예에 따른 살모넬라 균주의 flgM-코난토킨-G 융합 단백질 분비 수준에 영향을 미칠 수 있다.
일 구체예에서, 상기 약독화 살모넬라 균주는 코난토킨-G의 분비능이 향상된 것일 수 있다. 일 구체예에서 아라비노스(arabinose) 유도 프로모터를 포함하는 벡터로 약독화 살모넬라 균주를 형질전환하여 아라비노스 존재 하에 코난토킨-G의 발현을 조절하고 제3형 분비계의 flgM를 사용하여 코난토킨-G 단백질이 균주 외로 효과적으로 분비될 수 있도록 할 수 있다.
일 구체예에서, 상기 약독화 살모넬라 균주는 flhDC 유전자를 추가로 포함하는 것일 수 있다. 상기 flhDC 유전자는 플라젤린 오페론 (operon) 유전자의 주된 조절자로 flgM 유전자의 발현을 조절할 수 있으며, 이에 상기 유전자 구조물에 flhDC 유전자를 포함시킬 경우, flgM-코난토킨-G의 발현량 또는 분비량을 증진시키는데 기여할 수 있다.
일 구체예에서, 상기 약독화 살모넬라 균주는 수탁번호 KCTC15483BP로 수탁된 살모넬라 균주일 수 있다. 일 실시예에 따르면, 상기 약독화 살모넬라 균주는 flgM 유전자-링커-코난토킨-G-flhDC 유전자 구조물을 포함하는 재조합 발현 벡터에 의해 형질전환되었으며, 상기 유전자 구조물은 코난토킨-G 고유의 항암 활성을 유지한 채, 약독화 살모넬라 균주의 flgM-코난토킨-G의 분비능을 향상시킬 수 있었다. 따라서, 일 실시예에 따른 형질전환된 약독화 살모넬라 균주는 암의 치료를 위한 유효 성분으로 활용할 수 있다.
다른 양상은, 상기 약독화 살모넬라 균주를 유효성분으로 포함하는 항암용 약학적 조성물 또는 암의 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.
상기 약독화 살모넬라 균주에 대한 설명에서 언급된 용어 또는 요소 중 이미 언급된 것과 동일한 것은 상술한 바와 같다.
본 발명의 조성물에 의한 예방 또는 치료 대상 질병인 "암 (cancer)" 은 세포가 정상적인 성장 한계를 무시하고 분열 및 성장하는 공격적(aggressive) 특성, 주위 조직에 침투하는 침투적 (invasive) 특성 및 체내의 다른 부위로 퍼지는 전이적 (metastatic) 특성을 갖는 세포에 의한 질병을 총칭하는 의미이다. 상기 암을 예를 들어, 고형암일 수 있으며, 바람직하게는 살모넬라 균주의 암 표적화능이 발휘될 수 있는 암 조직 또는 암 세포를 포함하는 종양이라면, 비제한적으로 확장 적용될 수 있다. 예를 들어 상기 암의 종류로는 췌장암, 대장암, 결장암, 위암, 간암, 대장암, 뇌암, 유방암, 갑상선암, 방광암, 식도암, 자궁암, 및 폐암으로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나에 해당할 수 있으나, 이에 제한되는 것 아니다.
본 발명의 조성물은 항암용 약제로 이용하기 위하여, 약제학적 분야에서 공지의 방법에 의하여 제조될 수 있으며, 그 자체 또는 약학적으로 허용되는 담체(carrier), 부형제(forming agent), 희석제 등과 혼합하여 사용될 수 있다.
본 명세서에서 "약학적으로 허용 가능한 담체"는 투여되는 특정 조성물에 따라 부분적으로 결정될 뿐만 아니라, 조성물을 투여하는 데 사용되는 특정 방법에 따라 부분적으로 결정될 수 있다. 따라서, 상기 조성물의 적합한 제형이 매우 다양하며, 예를 들어, 조성물은 비경구(즉, 근육내, 피내, 또는 피하) 투여 또는 비인두(즉, 비강내) 투여를 위해 제형화될 수 있다. 일반적으로, 비경구 투여용 제형은 멸균 수성 또는 비수성 용액, 현탁액 및 유화액을 포함한다. 비수성 용매의 예시는 프로필렌 글리콜, 폴리에틸렌 글리콜, 올리브유와 같은 식물유, 및 올레산에틸과 같은 주사용 유기 에스테르이다. 수성 담체는 염수 및 완충된 매질을 비롯하여 물, 알코올/수성 용액, 유화액 또는 현탁액을 포함할 수 있다. 비경구용 비히클은 염화나트륨 용액, 링거 덱스트로스(Ringer's dextrose), 덱스트로스와 염화나트륨, 락테이트화 링거(lactated Ringer's), 또는 고정유를 포함할 수 있다. 방부제 및 기타 첨가물은 또한 예를 들어, 항균제, 항산화제, 킬레이트제, 및 불활성 가스 등으로 존재할 수 있다.
본 발명에 따른 유효성분의 투여량은 체내에서 활성성분의 흡수도, 제제의 형태, 환자의 연령, 성별 및 상태, 증상의 정도 등에 따라 적절히 선택될 수 있으며, 투여는 하루에 한번 투여할 수도 있고, 수회 나누어 투여할 수도 있다. 일반적인 투여량은 0.001mg/kg·일~10g/kg·일이다.
또 다른 양상은, 상기 약학적 조성물을 암을 예방 또는 치료하기에 유효한 양으로 개체에 투여하는 단계를 포함하는, 암을 예방 또는 치료하는 방법을 제공한다.
상기 약학적 조성물에 대한 설명에서 언급된 용어 또는 요소 중 이미 언급된 것과 동일한 것은 상술한 바와 같다.
상기 개체는 포유동물일 수 있다. 상기 포유동물은 사람, 마우스, 랫트, 개, 고양이, 말, 소, 염소, 또는 돼지일 수 있다.
본 명세서에서 용어, "치료" 또는 "치료하는" 또는 "완화하는" 또는 "개선하는"은 상호교환가능하게 사용된다. 이들 용어는 치료 이익 및/또는 예방 이익을 포함하나 이들에 한정되지 않는 유리한 또는 요망되는 결과를 수득하는 방법을 지칭한다. 치료 이익은 치료 하의 하나 이상의 질병, 질환 또는 증상의 임의의 치료적으로 유의미한 개선 또는 그에 대한 효과를 의미한다. 예방 이익에 있어서, 조성물은 특정 질병, 질환 또는 증상이 발생할 위험이 있는 대상체에게 또는 질병, 질환 또는 증상이 아직 나타나지 않을지라도, 질병의 하나 이상의 생리학적 증상을 보고하는 대상체에게 투여될 수 있다.
상기 약학적 조성물은 약학적으로 유효한 양으로 단일 또는 다중 투여될 수 있다. 이때, 조성물은 액제, 산제, 에어로졸, 주사제, 수액제(링겔), 캡슐제, 환제, 정제, 좌제 또는 패치의 형태로 제형화되어 투여할 수 있다. 상기 항암제 투여에 의한 암의 예방 또는 치료용 약학적 조성물의 투여 경로는 목적 조직에 도달할 수 있는 한 어떠한 일반적인 경로를 통하여도 투여될 수 있다.
상기 약학적 조성물은 특별히 이에 제한되지 않으나, 목적하는 바에 따라 복강내 투여, 정맥내 투여, 근육내 투여, 피하 투여, 피내 투여, 경피패치투여, 경구 투여, 비내 투여, 폐내 투여, 직장내 투여 등의 경로를 통해 투여될 수 있다.
또 다른 양상은, flgM 유전자; 및 코난토킨-G 유전자를 포함하는 유전적 구조물 또는 flgM 유전자; 및 코난토킨-G 유전자를 포함하는 재조합 발현 벡터를 제공한다.
상기 flgM, 및 코난토킨-G에 대한 설명에서 언급된 용어 또는 요소 중 이미 언급된 것과 동일한 것은 상술한 바와 같다.
본 명세서에서 용어, "유전적 구조물"은 목적하는 단백질의 유전 정보를 포함하는 집합체, 기능적 단위체, 또는 컨스트럭트를 지칭하며, 이는 최광의로 해석될 수 있다. 상기 유전적 구조물은 본 발명의 목적상, 약독화된 살모넬라 균주로부터 flgM-코난토킨-G 융합 단백질의 분비를 증진시키기 위한 것으로서, 예를 들어, flgM 유전자, 10 내지 16 mer의 펩타이드 링커, 및 코난토킨-G 유전자가 작동가능하게 연결된 DNA 인서트를 지칭하는 것일 수 있다.
본 명세서에서 용어, "벡터"는 적합한 숙주 내에서 목적 폴리뉴클레오타이드를 발현시킬 수 있도록 적합한 조절 서열에 작동 가능하게 연결된 상기 목적 폴리뉴클레오타이드를 코딩하는 염기서열을 함유하는 DNA 제조물을 의미한다. 상기 조절 서열은 전사를 개시할 수 있는 프로모터, 그러한 전사를 조절하기 위한 임의의 오퍼레이터 서열, 적합한 mRNA 리보좀 결합 부위를 코딩하는 서열, 및 전사 및 해독의 종결을 조절하는 서열을 포함할 수 있다. 벡터는 적당한 숙주 내로 형질전환된 후, 숙주 게놈과 무관하게 복제되거나 기능할 수 있으며, 게놈 그 자체에 통합될 수 있다. 상기 벡터는 숙주세포 내에서 복제 가능한 임의의 것일 수 있다. 예를 들어, 상기　벡터는 천연 상태이거나 재조합된 상태의 플라스미드, 코스미드, 바이러스 또는 박테리오파지일 수 있다. 상기　벡터는　벡터를 함유하는 숙주 세포를 선택하기 위한 선택 마커를 포함할 수 있다. 선택 마커는　벡터로 형질전환된 세포를 선별하기 위한 것으로, 약물 내성, 영양 요구성, 세포 독성제에 대한 내성 또는 표면 단백질의 발현과 같은 선택가능 표현형을 부여하는 마커들이 사용될 수 있다. 예를 들어, 상기 마커는 암피실린(ampicillin), 네오마이신(neomycin), 퓨로마이신(puromycin), 히그로마이신(hygromycin) 및 제오신(zeocin)으로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상의 선택 마커일 수 있다. 상기　벡터는 복제원점, 프로모터 등 복제 및/또는 카피수 조절에 관여하는 유전자를 포함할 수 있고, 제한효소 부위 등을 포함할 수 있으나 이에 제한되지 않는다.
일 구체예에서, 상기 재조합 발현벡터는 유도성 프로모터에 작동 가능하게 연결된 것일 수 있다. 본 명세서에서 "유도성 프로모터"란 유도물질에 의해 연결된 유전자의 작동을 스위칭할 수 있는 프로모터로, 예를 들어 ara 프로모터, tac 프로모터, lac프로모터, lacUV5 프로모터, lpp 프로모터, pLλ프로모터, pRλ프로모터, rac5 프로모터, amp 프로모터, recA프로모터, SP6 프로모터, trp 프로모터, T7 프로모터, pBAD 프로모터, Tet 프로모터, trc 프로모터, pepT 프로모터, sulA 프로모터, pol 11(dinA) 프로모터, ruv 프로모터, uvrA 프로모터, uvrB 프로모터, uvrD 프로모터, umuDC 프로모터, lexA 프로모터, cea 프로모터, caa 프로모터, recN 프로모터, pagC 프로모터, hip 프로모터, ansB 프로모터 또는 pflE 프로모터 일 수 있다.
본 명세서에서 "작동 가능하게 연결된"은 하나의 기능이 다른 것에 의하여 영향을 받도록 단일 핵산 단편 상에서 뉴클레오티드 서열들이 연결된 것을 나타낼 수 있다. 일 구체예에서, flgM- conantokin-G 단백질을 발현시키기 위해 pBAD18 asd 플라스미드를 벡터로 사용하여 ara 프로모터에 작동 가능하게 유전자가 연결된 flgM-(linker)-conantokin-G-pBAD18의 재조합 발현벡터를 확립하였다. 상기 asd 유전자는 서열번호 10의 염기서열로 이루어질 수 있다.
일 구체예에서, 상기 코난토킨-G의 발현 효율을 향상시키기 위해 본 발명의 유전적 구조물 전단에 샤인-달가노(Shine-dalgarno) 서열이 삽입될 수 있다. 또한, 본 발명의 유전적 구조물을 벡터에 도입할 수 있도록 본 발명의 유전적 구조물 전단과 후단에 적절한 제한효소를 배치할 수 있다.
일 구체예에서, 상기 flgM 유전자는 서열번호 1의 염기서열로 이루어진 것 일 수 있고, 및/또는 상기 코난토킨-G 유전자는 서열번호 2의 염기서열로 이루어질 수 있다. 또한, 상기 재조합 발현 벡터는 flhDC 유전자를 추가로 포함할 수 있으며, 상기 flhDC 유전자는 서열번호 3의 염기서열로 이루어질 수 있다.
본 명세서에서, "변이체 (variants)"는 참조 엔터티(entity)(예컨대, 야생형 서열)와 상당한 구조적 동일성을 나타내지만 하나 이상에서 참조 엔터티와 구조적으로 상이한 엔터티를 지칭한다. 특정 엔터티가 참조 엔터티의 "변이체"로 적절하게 여겨지는지 여부는 참조 엔티티와의 구조적 또는 기능적 동일성의 정도를 기초로 한다. 임의의 생물학적 또는 화학적 참조 엔터티는 특정한 고유의 구조적 요소를 갖으며, 상기 변이체는, 정의상, 하나 이상의 그러한 고유의 구조적 요소를 공유하는 별개의 화학적 엔터티를 지칭한다. 예를 들어, 폴리뉴클레오티드는 선형 또는 3차원 공간에서 서로에 대해 지정된 위치를 갖는 복수의 뉴클레오티드 잔기를 포함하는 고유의 서열 요소를 가질 수 있다. 예를 들어, 폴리뉴클레오티드는 뉴클레오티드 서열의 하나 이상의 차이 및/또는 폴리뉴클레오티드 백본에 공유 결합된 화학적 모이어티(예를 들어, 탄수화물, 지질 등)의 하나 이상의 차이로 인해 참조 폴리뉴클레오티드와 상이할 수 있다. 일부 실시형태에서, 상기 변이체는 적어도 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 86%, 87%, 88%, 89%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99%의, 참조 폴리뉴클레오티드와의 전체 서열 동일성을 나타낸다.
일 구체예에서, 상기 flgM 유전자; 코난토킨-G 유전자; 및 flhDC 유전자는 동일한 유도성 프로모터에 의해 발현이 조절되는 것일 수 있다. 상기 flgM 유전자; 코난토킨-G 유전자; 및 flhDC 유전자는 동일한 유도성 프로모터에 의해 발현이 조절됨으로써, 상기 flgM 및 코난토킨-G 단백질의 균주 외 분비능이 향상된 것일 수 있으며, 상기 균주를 포함하는 조성물의 항암효과가 향상된 것일 수 있다.
본 발명에 따른 약독화 살모넬라 균주는 flgM 유전자-링커-코난토킨-G 유전자 구조물, 및 flhDC 유전자를 포함하는 재조합 발현 벡터에 의해 형질전환되었으며, 이를 통해, 높은 수준의 코난토킨-G의 발현 및 분비를 유도할 수 있다. 따라서, 일 양상에 따른 재조합 발현 벡터, 이로 형질전환된 약독화 살모넬라 균주 및 이를 포함하는 항암용 약학적 조성물은 암을 치료하는데 활용될 수 있다.
도 1은 3형 분비계를 이용한 flgM-conantokin-G 단백질 분비 과정을 개략적으로 나타낸 도이다
도 2는 제3형 분비계에서의 편모 형성 과정을 이용한 flgM 분비 기작을 간략하게 나타낸 도이다.
도 3은 일 실시예에 따른 flgM-linker-conantokin-G-flhDC pBAD18 플라스미드의 개열지도를 나타낸 도이다.
도 4는 일 실시예에 따른 flgM-linker-conantokin-G-flhDC pBAD18 플라스미드를 사용하여 형질전환된 약독화 살모넬라 균주의 단백질 분비 수준을 확인한 결과이다.
도 5는 일 실시예에 따른 약독화 살모넬라 균주로부터 분비된 flgM-conantokin-G 융합 단백질의 활성을 평가한 것으로서, 대장암 세포주에 대한 항종양 효과를 확인한 결과이다.
도 6은 일 실시예에 따른 약독화 살모넬라 균주로부터 분비된 flgM-conantokin-G 융합 단백질의 활성을 평가한 것으로서, CCK assay 및 LDH assay를 통해 암 세포 사멸 수준을 평가한 결과이다.
도 7은 일 실시예에 따른 flgM-conantokin-G /aroA aroD asd- 균주를 대장암 마우스 모델에 정맥내 투여한 후, 시간의 경과에 따른 종양의 부피 변화를 정량적으로 확인한 결과이다.
도 8은 일 실시예에 따른 flgM-conantokin-G /aroA aroD asd- 균주를 대장암 마우스 모델에 정맥내 투여한 후, 시간의 경과에 따른 종양의 부피 변화를 각 개체 별로 확인한 결과이다.
도 9는 일 실시예에 따른 flgM-conantokin-G /aroA aroD asd- 균주를 대장암 마우스 모델에 정맥내 투여한 후, 시간의 경과에 따른 종양 조직의 변화를 육안으로 확인한 결과이다.
이하 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나, 이들 실시예는 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1: 코난토킨-G 분비를 위한 플라스미드의 제작
1-1. flgM 유전자 및 conantokin-G 유전자가 연결된 유전적 구조물의 제작
야생형 살모넬라의 flgM DNA 서열(flgM anti-sigma-28 factor FlgM [Salmonella enterica subsp. enterica serovar Typhimurium str. LT2] Gene ID: 1252690, Locus tagSTM1172 NC_003197.2 (1257036..1257341, complement))과, conantokin-G에 대한 코돈 최적화를 통해 수득한 DNA 서열을 연결시켜, 일 실시예에 따른 유전적 구조물 제작하였다. 구체적으로, 상기 flgM DNA 서열 및 conantokin-G DNA 서열은 링커를 통하여 연결시켰고, flgM 유전자의 발현을 높이기 위해, flgM 유전자 앞에 14개의 샤인-달가노(shine dalgarno) 서열 (AGGAGGTTTGACCT)을 삽입하였다, 또한, 클로닝을 위해 맨 앞에는 NheⅠ site를 삽입하고, conantokin-G의 종결 코돈 뒤에는 SacⅠ site를 삽입하였다. 한편, 본 실시예에서 주요한 구조물의 유전 정보는 하기 표 1에 나타낸 바와 같다.
[표 1]
Figure PCTKR2023009607-appb-img-000001
야생형 살모넬라 LT2의 genomic DNA를 주형으로 하기 표 2의 flhD-sac1-F 및 flhC-Sal1-r 프라이머를 이용하여 PCR에 의해 flhDC 유전자가 포함된 PCR 산물을 얻었으며, 구체적인 PCR 조건은 다음과 같다; 10x buffer 5μl, 5xQ solution 10 μl, 2 mM dNTPs 7.5 μl, 20 μM flhD-sac1-F 프라이머 2.5μl, 20μM flhC-Sal1-r 프라이머 2.5 μl, Taq polymerase 1 μl, 10 ng/μl genomic DNA2 μl 및 물 19.5 μl을 혼합하여 Qiagen system을 사용하여, 95℃ 5분과, 30회의 94℃ 30초, 49℃ 30초, 72℃ 1분 반복과 그 후에 72℃ 10분의 조건에서 PCR을 진행하였다. PCR purification kit로 정제한 PCR fragment 1μg과 sacI과 SalI을 각각 10U를 37℃에서 2시간 반응시키고, 상기 반응 산물을 PCR purification kit로 정제하여 서열번호 3의 flhDC insert DNA를 제작하였다.
[표 2]
Figure PCTKR2023009607-appb-img-000002
37℃에서 2시간 반응시킨 후, 상기 반응 산물을 PCR purification kit로 정제하여 각각의 벡터 DNA를 얻었다. 상기 플라스미드 내에 삽입된 asd 유전자는 서열번호 10의 염기서열로 이루어질 수 있다. 이후, 각 벡터 DNA를 실시예 1-1의 flgM-conantokin-G insert DNA와 25℃에서 30분간 ligation시키고, DH5a 컴피턴트 세포에 형질전환시켰다. 이후, 상기 형질전환된 세포를 LB amp 고체 배지에 도말하고 37℃에서 배양하여 항생제 내성을 갖는 콜로니를 선별하였다. 선별된 콜로니의 후보군 6개를 선별하여 NheⅠ 및 SacⅠ 각각 10 U와 37℃에서 1시간 반응시킨 후 전기영동을 통해 400bp 밴드의 생성을 확인하였다. 이후, pBAD18을 사용하여 제작된 플라스미드에 대해 해당 후보군의 염기서열 분석을 실시하여, 상기 flgM, linker1, linker2, 및 conantokin-G 유전자의 삽입을 확인하고, 일 실시예에 따른 flgM-linker1-conantokin-G-pBAD18 플라스미드 및 flgM-linker2-conantokin-G-pBAD18 플라스미드를 확립하였다.
이후, 상기 제작한 flgM-linker1-conantokin-G-pBAD18 플라스미드 또는 flgM-linker2-conantokin-G-pBAD18 플라스미드 1μg을 sacⅠ 및 SalⅠ 10U와 37℃에서 2시간 반응시킨 후 반응산물을 PCR purification kit로 정제하여 벡터 DNA를 완성하였다. 이후, 각 벡터 DNA를 상기 실시예 1-2의 flhDC insert DNA와 25℃에서 30분 ligation 시킨 후 DH5a 컴피턴트 세포를 형질전환 시켰다. 형질전환된 세포를 LB amp 고체 배지에 도말하고 37℃에서 배양하여 항생제 내성을 갖는 콜로니를 선별하였다. 선별된 콜로니의 후보군 6개를 선별하여 sacⅠ 및 SalⅠ 10U와 37℃에서 1시간 반응시킨 후 전기영동을 통해 band의 생성을 확인하였다. 해당 후보군의 염기서열 분석을 실시하여, flhDC 유전자의 삽입을 확인하고, 이를 통하여, 일 실시예에 따른 flgM-linker1-conantokin-G-flhDC pBAD18 플라스미드 및 flgM-linker2-conantokin-G-flhDC pBAD18 플라스미드를 확립하였다.
실시예 2: flgM-conantokin-G을 분비하는 약독화 살모넬라 균주 제작
상기 실시예 1에서 제조된 플라스미드를 사용하여 약독화 살모넬라 균주를 형질전환시켰다. 약독화 살모넬라 균주로는 aro A aro D asd- 균주를 사용하였으며, 이를 통해 약독화 살모넬라 균주가 아라비노스에 의해 conantokin-G의 발현을 조절하고 이를 세포 밖으로 분비하도록 조절하였다. 상기 형질전환된 각 균주의 단일 콜로니를 LB amp 액체배지에 접종한 후 37℃에서 12~16시간 진탕배양하였다. 이후 신선한 LB amp 액체배지에 OD600이 0.05가 되도록 희석한 후 37℃에서 2시간 진탕배양하였다. 진탕배양에 의해 OD600이 0.4~0.6이 되면 아라비노스(arabinose)를 0.2 w%의 농도가 되도록 처리하여, 37℃에서 5시간 추가로 진탕배양시켰다. 이후, 배양액을 3000 rpm으로 원심분리하여 상층액을 분리하고, 0.2μm 필터로 여과하여 균을 완전히 제거하였다. 상기 균이 제거된 상층액 50μl를 SDS sample buffer와 혼합하여 100℃ 히팅 블록(heating block)에 5분간 변성시킨 후, 5분간 13000rpm 4℃에서 원심분리 하고 10% 폴리아크릴아마이드 겔에 전기영동을 하였다. 1시간 30분 동안 100V로 전기영동 후 Coomassie Brilliant　Blue　G 250로 염색 후 증류수를 이용하여 탈색하여 웨스턴블랏을 수행하였다. 이를 통해 배양액 중 flgM-conantokin-G의 양을 확인하였으며 나타내었다 (도 4). 상기 도 4에서, 1 및 2 레인은 flgM-linker1-conantokin-G-flhDC pBAD18 플라스미드로 형질전환된 군 (flgM-linker1-conantokin-G-flhDC pBAD18/aroA aro D asd-), 3 및 4 레인은 flgM-linker2-conantokin-G-flhDC pBAD18 플라스미드로 형질전환된 군 (flgM-linker2-conantokin-G-flhDC pBAD18/aroA aro D asd-)이며, 2 및 4 레인은 1 및 3 레인과 달리, 아라비노스를 처리하여 발현을 유도한 군이다.
그 결과, 도 4에 나타낸 바와 같이, 아라비노스가 처리된 2 및 4 레인은 아라비노스가 처리되지 않은 1 및 3 레인보다 동일 농도에서 다량의 양의 flgM-conantokin-G이 분비되었고, 이 중에서도 특정 링커가 적용된 4 레인에서의 분비량은 2 레인에 비해 매우 현저하였다. 상기 결과로부터, 일 실시예 따른 flgM-linker-conantokin-G-flhDC-pBAD18 플라스미드로 형질전환된 균주는 우수한 conantokin-G 분비능을 나타내며, 특히, 14mer 링커가 적용된 flgM-linker2-conantokin-G-flhDC pBAD18/aroA aro D asd- 균주의 분비능은 매우 우수함을 알 수 있었다. 이에, 본 발명자들은 일 실시예에 따른 flgM-linker2-conantokin-G-flhDC pBAD18/aroA aro D asd- 균주를 한국생명공학연구원 생물자원센터에 2023년 6월 26일자로 기탁하고, 수탁번호 KCTC15483BP를 부여받았다 (S-flgM-conantokin-pBAD18-ASD+/BRD509 asd-).
실시예 3: in vitro 에서의 conantokin-G의 항종양 효과 테스트
3-1. 분비된 flgM-conantokin-G의 활성 평가
실시예 2에서 얻은 형질전환된 flgM-linker2-conantokin-G-flhDC pBAD18/aroA aro D asd- 균주의 단일 콜로니를 LB amp 액체배지에 접종한 후 37℃에서 12~16시간 진탕배양하였다. 이후 신선한 LB amp 액체배지에 OD600이 0.05가 되도록 희석한 후 37℃에서 2시간 진탕배양하였다. 진탕배양에 의해 OD600이 0.4~0.6이 되면 아라비노스(arabinose)를 0.2 w%의 농도가 되도록 처리하여, 37℃에서 5시간 추가로 진탕배양시켰다. 비교를 위해서 아라비노스를 처리하지 않은 비교군을 동일 조건에서 진탕배양시켰다. 배양액을 3000 rpm으로 원심분리하여 상층액을 분리하고, 0.2μm 필터로 여과하여 균을 완전히 제거하였다. 이를 통해 flgM-conantokin-G 융합 단백질을 획득하였다.
한편, murine CT26 마우스 결장암 세포주, HT29 및 SW480 인체 대장암 세포주를 구입하여 각각의 세포들을 10% 소태아혈청(FBS) 및 1% 페니실린-스트렙토마이신을 포함하는 DMEM(Dulbecco's modified Eagle's medium)에서 세포를 성장시키고 세포 수가 2 X 105 개 일 때 6-well에 세포를 시딩(seeding)하였다. 24시간 후, 상기 과정을 통해 상층액으로부터 얻은 융합 단백질 200μl를 처리하고, 이를 48시간 배양한 후 관찰하였다.
그 결과, 도 5에 나타낸 바와 같이, 아라비노스를 처리하지 않은 비교군 (-)은 PBS를 처리한 대조군에 비해 약 5% 정도 세포 수준이 감소된 반면, 아라비노스를 처리하여, flgM-conantokin-G의 발현 또는 분비를 유도한 실험군(+)에서는 50% 이상 세포 수준이 감소됨을 확인하였다.
3-2. 암 세포 사멸 유도 효과 평가
암 세포 사멸 유도에 대한 효과를 확인하기 위하여 상기 실시예 3-2의 배양액 및 세포를 사용하여 CCK assay 및 LDH assay를 수행하였다. CCK assay를 위해 상기 배양한 세포주 상층액 100ul를 96well 플레이트에 옮기고 CCK 용액 100ul를 추가한 후, 450nm microreader로 측정하였다. 본 실험은 신뢰성을 높이기 위해 triplicate로 진행하였다. 또한, LDH assay를 위해 상기 배양한 세포주 상층액을 1000rpm에서 3분동안 원심분리하여 세포잔해를 제거하고 상층액 10ul과 LDH 용액 100ul를 혼합하여 실온에서 30분간 인큐베이션하고 450nm microreader로 측정하였다. CCK assay 과 마찬가지로 실험은 triplicate로 진행하였다.
그 결과, 도 6에 나타낸 바와 같이, flgM-conantokin-G의 발현 또는 분비를 유도한 실험군(+)은 비처리 또는 아라비노스를 처리하지 않은 비교군(-)과 비교하여, 검출된 세포 활성 수준이 가장 낮고, 세포가 터져 사멸한 세포의 수준이 가장 높음을 확인하였다. 상기의 실험 결과는, 일 실시예에 따른 형질전환된 약독화 살모넬라 균주는 conantokin-G 고유의 세포 사멸능을 지닌 채로, 제3형 분비계인 flgM과의 연결된 특유의 구조를 통해 그 분비능이 강화된 것임을 실험적으로 입증한 것이다.
실시예 4: 마우스 대장암 모델을 이용한 항종양 효과 평가
본 실시예에서 실험 동물로는 20g 내외의 6 주령 BALB/c 암컷 마우스를 구입하여 사용하였다. 승인된 프로토콜에 따라 모든 동물에 대한 관리 및 실험, 안락사가 수행되었다. 미국 세포주 은행(ATCC)으로부터 murine CT26 결장암종 세포를 구입하여 10% FBS 및 1% 페니실린-스트렙토마이신을 포함하는 DMEM 배지에서 배양하였다. 시험관 내 배양된 CT26 종양세포를 수거한 후, 20μl PBS에 현탁시킨 다음 1×106개의 세포를 BALB/c 마우스의 우측 등에 피하 주사하여 종양세포를 이종 이식하였다. 종양세포의 이식 약 2주 후, 종양의 크기가 100mm3에 도달하면 실시예 2에서 제작한 flgM-linker2-conantokin-G-flhDC pBAD18/aroA aro D asd- 균주를 PBS로 희석하여 약 5×107 CFU/mice용량으로 꼬리 정맥을 통해 주사하였다 (0day). 이후, 상기 마우스를 대상으로 flgM-conantokin-G의 발현 또는 분비 유도를 위하여 40% L-아라비노스 100 μl/mice를 매일 복강내 주사하였고, 매일 일정한 시간을 정하여 마우스의 체중과 종양의 크기를 측정하여 기록하였다. 종양의 부피는 (종양 길이×종양 폭×종양 높이)/2의 식에 의해 계산하였으며, 동물실험 윤리위원회의 지침에 따라 종양 부피가 1,500 mm3이상이되면 안락사시켰다. 한편, 대조군으로는 PBS 완충액만을 주사한 군 (PBS), 비교군으로 약독화 살모넬라 균주인 aroA aroD asd- 균주를 주사한 군 (Salmonella), flgM asd로 형질전환된 aroA aroD asd- 균주를 주사한 군 (Salmonella+flgM), 및 일 실시예에 따른 균주를 처리하되, 아라비노스를 처리하지 않은 군 (Co-)을 이용하였다.
도 7 내지 도 9에 나타낸 바와 같이, 일 실시예에 따른 형질전환된 약독화 살모넬라 균주를 주사에 의해 flgM-conantokin-G의 발현 또는 분비가 유도된 군 (Co+)은 종양의 성장을 현저하게 억제시킴을 확인하였다. 특히, 이러한 항종양 효과는 살모넬라 균주를 주사한 군들 (Salmonella, Salmonella+flgM, Co-)에 비해서도 매우 현저한 것이었다. 이로부터, 일 실시예에 따른 flgM-linker2-conantokin-G-flhDC pBAD18/aroA aro D asd- 균주는 암의 치료를 위한 유효 성분으로 활용할 수 있음을 알 수 있었다.
[수탁번호]
기탁기관명: 한국생명공학연구원 생물자원센터(KCTC)
수탁번호 : KCTC15483BP
수탁일자: 20230626
Figure PCTKR2023009607-appb-img-000003

Claims (13)

  1. flgM 유전자; 및 코난토킨-G (conantokin-G) 유전자를 포함하는 재조합 발현 벡터로 형질전환된, 약독화 살모넬라 균주.
  2. 청구항 1에 있어서, 상기 flgM 유전자 및 코난토킨-G 유전자는 링커를 통하여 연결된 것인, 약독화 살모넬라 균주.
  3. 청구항 1에 있어서, 상기 재조합 발현 벡터는 flhDC 유전자를 추가로 포함하는 것인, 약독화 살모넬라 균주.
  4. 청구항 1에 있어서, 상기 약독화 살모넬라 균주는 aroA, aroC, aroD, aroE, asd, Rpur, htrA, ompR, ompF, ompC, galE, cya, crp, cyp, phoP, phoQ, rfaY, dksA, hupA, sipC, clpB, clpP, clpX, pab, nadA, pncB, pmi, rpsL, hemA, rfc, poxA, galU, cdt, pur, ssa, guaA, guaB, fliD, flgK, flgL, relA 및 spoT로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상의 유전자의 기능상실된 것인, 약독화 살모넬라 균주.
  5. 청구항 1에 있어서, 상기 약독화 살모넬라 균주는 코난토킨-G에 대한 분비능이 향상된 것인, 약독화 살모넬라 균주.
  6. 청구항 1에 있어서, 상기 약독화 살모넬라 균주는 수탁번호 KCTC15483BP로 수탁된 살모넬라 균주.
  7. 청구항 1에 있어서, 상기 약독화 살모넬라 균주를 유효성분으로 포함하는 항암용 약학적 조성물.
  8. flgM 유전자; 및 코난토킨-G 유전자를 포함하는 재조합 발현 벡터.
  9. 청구항 8에 있어서, 상기 flgM 유전자 및 코난토킨-G 유전자는 링커를 통하여 연결된 것인, 재조합 발현 벡터.
  10. 청구항 8에 있어서, 상기 재조합 발현 벡터는 flhDC 유전자를 추가로 포함하는 것인, 재조합 발현 벡터.
  11. 청구항 8에 있어서, 상기 flgM 유전자는 서열번호 1의 염기서열로 이루어진 것인, 재조합 발현 벡터.
  12. 청구항 8에 있어서, 상기 코난토킨-G 유전자는 서열번호 2의 염기서열로 이루어진 것인, 재조합 발현 벡터.
  13. 청구항 8에 있어서, 상기 flgM 유전자; 코난토킨-G 유전자; 및 flhDC 유전자는 동일한 유도성 프로모터에 의해 발현이 조절되는 것인, 재조합 발현 벡터.
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