WO2023112872A1 - 核酸送達用担体及び核酸送達複合体 - Google Patents

核酸送達用担体及び核酸送達複合体 Download PDF

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WO2023112872A1
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友亮 ▲黒▼▲崎▼
均 佐々木
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology

Definitions

  • the present invention has been made in view of the above circumstances, and provides a nucleic acid delivery carrier that is biodegradable and has good nucleic acid introduction efficiency, and a nucleic acid delivery complex using the nucleic acid delivery carrier. offer.
  • the carrier for nucleic acid delivery of the present embodiment contains a polylysine dendrimer with phenylalanine bound to its end and a biodegradable cationic compound, both constituent components are biodegradable.
  • the carrier for nucleic acid delivery of the present embodiment contains a polylysine dendrimer having phenylalanine bound to the terminal, and a polylysine dendrimer or a polylysine dendrimer having arginine bound to the terminal, the basic skeleton is a polylysine dendrimer. It is biodegradable from Therefore, the nucleic acid delivery carrier of the present embodiment can solve the problem of accumulation toxicity in polyethyleneimine. In addition, it can exhibit good efficiency of nucleic acid introduction equal to or higher than that of polyethyleneimine.
  • lipids N-(2,3-dioleyloxy)propyl-N,N,N-trimethylammonium (DOTMA), didodecyldimethylammonium bromide (DDAB), 1,2-dioleoyloxy-3-trimethylammonium Propane (DOTAP), 1,2-Distearoyl-3-trimethylammoniumpropane (DSTAP), Dioleoyl-3-dimethylammoniumpropane (DODAP), Dioctadecyl-dimethylammonium chloride (DODAC), 1,2-Dimyristoyloxypropyl -3-dimethylhydroxyethylammonium (DMRIE), 2,3-dioleyloxy-N-[2-(sperminecarboxamido)ethyl]-N,N-dimethyl-1-propanamium trifluoroacetate (DOSPA), O , O′-ditetradecanoyl-N-( ⁇ -trimethylammonioacetyl
  • the charge ratio between the polylysine dendrimer having phenylalanine bound to the end and the biodegradable cationic molecule is preferably 1:7 to 7:1, preferably 2:6. ⁇ 6:2 is more preferred. When the charge ratio is within the above range, the efficiency of nucleic acid introduction can be improved.
  • the carrier for nucleic acid delivery of the present embodiment preferably contains a polylysine dendrimer having phenylalanine bound to the terminal and a polylysine dendrimer having arginine bound to the terminal because of its excellent nucleic acid introduction efficiency.
  • a polylysine dendrimer containing an amino group (positive charge) and having phenylalanine bound to the end of the polylysine dendrimer subjected to the above reaction five times contains 3.7 nmol of an amino group (positive charge). From the molar amounts of these amino groups, the charge ratio between the polylysine dendrimer with phenylalanine bound to the terminal and the polylysine dendrimer with arginine bound at the terminal is calculated.
  • the degree of polymerization of the anionic molecule and its salt is not particularly limited, but examples include those with a molecular weight of 1,000 or more, more preferably 2,000 or more.
  • the upper limit is, for example, a molecular weight of 200,000, preferably 150,000, more preferably 100,000.
  • the type of DNA can be appropriately selected depending on the purpose of use, and is not particularly limited, but examples include cDNA, chromosomal DNA, and the like.
  • a form in which these cDNAs and chromosomal DNAs are introduced into plasmid DNAs may also be used.
  • Circular DNA such as plasmid DNA can be appropriately digested with a restriction enzyme or the like and used as linear DNA.
  • RNA messenger RNA
  • mRNA messenger RNA
  • siRNA siRNA
  • miRNA miRNA
  • mRNA or siRNA is preferable.
  • a nucleic acid and a carrier for nucleic acid delivery that is, a mixture of a phenylalanine-modified polylysine dendrimer and a polylysine dendrimer or an arginine-modified polylysine dendrimer are brought into contact with each other so that the charge ratio is as described above. can be manufactured.
  • the compound is a low-molecular-weight nucleic acid capable of regulating the expression of a target gene such as siRNA, usually 0 to 72 hours, preferably 0 to 60 hours, more preferably 0 to 48 hours, It is more preferably 0 hours or more and 36 hours or less, and most preferably 0 hours or more and 32 hours or less.
  • the present invention also provides a nucleic acid delivery method into a subject's cells, comprising administering the nucleic acid delivery complex of the above embodiment to the subject.
  • the complex By administering the complex to a subject, the complex reaches and contacts target cells, and the nucleic acid contained in the complex is introduced into the cells in vivo.
  • the dendrimer mixed solution and pDNA were mixed and left at room temperature for 30 minutes to prepare each complex.
  • Nucleic acid introduction into cells and quantification of luciferase activity were performed using the same method as in Reference Example 1. The results are shown in FIG. In FIG. 2, the numbers in parentheses are the ratio of the molar amount of imino groups of polyethyleneimine or amino groups of each dendrimer to the molar amount of phosphate groups of pDNA.
  • PEI protamine, poly L-lysine dendrigraft (COLCOM, DGL), DOTAP, or 3 ⁇ -N-(N′,N′-dimethyl-aminoethane-carbamoyl-cholesterol) (DC-Chol) alone
  • the charge ratio specifically, the ratio of the molar amount of the cationic group of each gene introduction reagent to the molar amount of the phosphate group of pDNA is 8 (PEI, protamine, DGL) or 4 (DOTAP, DC-Chol). was mixed with pDNA so that
  • Example 7 (SiRNA introduction effect of Arg-Phe-KG5)
  • siRNA introduction effect of integrated Arg-Phe-KG5 in which Arg was bound to the terminal of Phe-KG5 was evaluated.
  • nucleic acid delivery carrier of the present embodiment it is possible to provide a nucleic acid delivery carrier that is biodegradable and has good nucleic acid introduction efficiency.
  • the nucleic acid delivery complex of the present embodiment contains the nucleic acid delivery carrier, is biodegradable, and has good nucleic acid introduction efficiency.

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Abstract

核酸送達用担体は、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、生分解性のカチオン性分子と、を含有する。核酸送達用担体は、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、ポリリジンデンドリマー又は末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、を含有する。核酸送達用担体は、末端にフェニルアラニンを介してアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーを含有する。核酸送達用担体は、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドロンと、末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドロンと、が結合した、一体型のデンドリマーを含有する。

Description

核酸送達用担体及び核酸送達複合体
　本発明は、核酸送達用担体及び核酸送達複合体に関する。
　本願は、２０２１年１２月１４日に、日本に出願された特願２０２１－２０２３５３号に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
　遺伝子医薬品に用いられるＤＮＡは負電荷の高分子であるため、負に帯電した細胞膜と静電的に反発することから細胞内への取り込みに乏しく、生体内の酵素で速やかに分解される。これまでに、遺伝子導入のための試薬として様々なカチオン性高分子やカチオン性脂質が開発されている。これらカチオン性の化合物はＤＮＡと安定な微粒子を形成し、細胞と静電的に結合し、エンドサイトーシスで細胞内へ取り込まれる。しかし、エンドソームから細胞質内へＤＮＡを移行させ、最終的に核までＤＮＡを送達させなければ、遺伝子発現には至らない。このため、エンドソームから細胞質にＤＮＡを送達するための特殊な高分子や膜融合脂質等が研究されている。特に遺伝子発現効果が高いことが知られているカチオン性高分子として、ポリエチレンイミンが挙げられる。このポリエチレンイミンはプロトンスポンジ効果という作用でエンドソーム膜を不安定化し、効率的にＤＮＡを細胞質へ移行できる。一方で、ポリエチレンイミンは生体内で非分解性の高分子であり、蓄積毒性が懸念される。
　これまでに、ポリエチレンイミンに替わるカチオン性高分子として、ポリアルギニンやポリリジン、ポリリジンデンドリマー等の生分解性のカチオン性高分子が検討されている（例えば、非特許文献１等参照）。
　しかしながら、これまで検討された上記生分解性のカチオン性高分子は、ポリエチレンイミンと比較するとエンドソームから細胞質への移行性に乏しく、遺伝子導入効率が悪いという課題がある。
Ohsaki M et al., "In Vitro Gene Transfection Using Dendritic Poly(l-lysine).", Bioconjugate Chem., Vol. 13, Issue 3, pp. 510-517, 2002.
　本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであって、生分解性を有し、且つ、核酸の導入効率が良好な核酸送達用担体及び前記核酸送達用担体を用いた核酸送達複合体を提供する。
　すなわち、本発明は、以下の態様を含む。
（１）　末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、生分解性のカチオン性分子と、を含有する、核酸送達用担体。
（２）　前記生分解性のカチオン性分子が、プロタミン、１，２－ジオレオイルオキシ－３－トリメチルアンモニウムプロパン、ポリリジンデンドリマー、又は末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーである、（１）に記載の核酸送達用担体。
（３）　末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、ポリリジンデンドリマー又は末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、を含有する、核酸送達用担体。
（４）　末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、を含有する、（３）に記載の核酸送達用担体。
（５）　末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、の電荷比が、１：７～７：１である、（４）に記載の核酸送達用担体。
（６）　末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、の電荷比が、２：６～６：２である、（５）に記載の核酸送達用担体。
（７）　末端にフェニルアラニンを介してアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーを含有する、核酸送達用担体。
（８）　末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドロンと、末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドロンと、が結合した、一体型のデンドリマーを含有する、核酸送達用担体。
（９）　核酸と、（１）～（８）のいずれか一つに記載の核酸送達用担体と、からなる、核酸送達複合体。
（１０）　前記核酸に対する、前記核酸送達用担体の電荷比が、６以上である、（９）に記載の核酸送達複合体。
（１１）　前記核酸に対する、前記核酸送達用担体の電荷比が、８以上１２以下である、（１０）に記載の核酸送達複合体。
　上記態様の核酸送達用担体によれば、生分解性を有し、且つ、核酸の導入効率が良好な核酸送達用担体を提供することができる。上記態様の核酸送達複合体は、前記核酸送達用担体を含み、生分解性を有し、且つ、核酸の導入効率が良好である。
参考例１におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 実施例１におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 実施例２におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 実施例３におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 実施例４におけるマウスの各臓器でのルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 実施例５におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 実施例６における一体型のＡｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５とＰｈｅ／Ａｒｇ－ＫＧ５の模式図である。 実施例６におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 実施例６におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。 実施例７におけるルシフェラーゼ活性を示すグラフである。
≪核酸送達用担体≫
　本発明の一実施形態に係る核酸送達用担体（以下、「本実施形態の核酸送達用担体」と称する）は、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、生分解性のカチオン性分子と、を含有する。
　或いは、本発明の別の実施形態に係る核酸送達用担体は、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、ポリリジンデンドリマー又は末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、を含有する。
　発明者らは、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマー（以下、「フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマー」と称する場合がある）を新たに開発した。後述する実施例に示すように、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーは、それ単独で核酸と複合体を形成させても、細胞内への導入効率は悪い。しかしながら、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーを生分解性のカチオン性分子、特に、ポリリジンデンドリマー又は末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマー（以下、「アルギニン修飾ポリリジンデンドリマー」と称する場合がある）と併用して、核酸と複合体を形成させることで、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマー単独での複合体形成時と比較して、優れた導入効率を発揮し、またその導入効率はポリエチレンイミンと同等以上であることを見出し、本発明を完成するに至った。
　ポリリジンデンドリマー又はアルギニン修飾ポリリジンデンドリマーでは、リジン又はアルギニンに由来したアミノ基が末端に２個存在しており、末端のアミノ基の密度が高くなっているのに対して、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマー単独では、ポリリジンデンドリマーの末端のアミノ基の密度に対して末端のアミノ基の密度が半分程度となる。そのため、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマー単独では、核酸との相互作用が弱い可能性がある。これに対して、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーと、生分解性のカチオン性分子、特に、ポリリジンデンドリマー又はアルギニン修飾ポリリジンデンドリマーを組み合わせて用いることで、核酸との相互作用を良好に保つことができ、優れた導入効率を発揮できるものと推察される。また、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーは、遺伝子導入作用を有する生分解性のカチオン性分子と組み合わせて用いることで、極めて強い遺伝子導入効果を示すことから、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーの作用としては、エンドソームから細胞質内への核酸の移行性を高める作用、又は、核酸の細胞質から核への移行性を高める作用が予測される。なお、本実施形態の核酸送達用担体において、その効果を奏することができるメカニズムであれば、上記メカニズムに限定されない。
　また、本実施形態の核酸送達用担体において、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーと、ポリリジンデンドリマー又はアルギニン修飾ポリリジンデンドリマーと、を含む態様であれば、それらが個別の分子として含まれていてもよく、或いは、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドロンと、ポリリジンデンドロン又はアルギニン修飾ポリリジンデンドロンと、が結合した１分子のデンドリマーとして含まれていてもよく（図７の「Ｐｈｅ／Ａｒｇ－ＫＧ５」等参照）、或いは、それらの混合物であってもよい。或いは、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーの末端にアルギニンが結合した一体型のデンドリマーとして含まれていてもよい（図７の「Ａｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５」等参照）。すなわち、この場合には、本実施形態の核酸送達用担体は、末端にフェニルアラニンを介してアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーを含有する。
　本実施形態の核酸送達用担体は、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、生分解性のカチオン性化合物と、を含有する場合には、いずれの構成成分も生分解性を有する。また、本実施形態の核酸送達用担体は、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、ポリリジンデンドリマー又は末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、を含有する場合には、基本骨格がポリリジンデンドリマーであることから、生分解性を有する。よって、本実施形態の核酸送達用担体は、ポリエチレンイミンにおける蓄積毒性の課題を解消し得るものである。また、ポリエチレンイミンと同等以上の良好な核酸導入効率を発揮し得るものである。
　次いで、本実施形態の核酸送達用担体の構成成分について以下に詳細を説明する。
＜フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマー＞
　フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーは、末端にフェニルアラニンが結合した構造を有するポリリジンデンドリマーである。
　フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーは、上記非特許文献１に記載の合成方法によりポリリジンデンドリマーを製造した後、得られたポリリジンデンドリマーの末端の少なくとも一部、好ましくは全部にフェニルアラニンを公知のカップリング反応で結合させることで、得られる。フェニルアラニンの結合量は、合成後のデンドリマーの分子量を測定することで確認することができる。
　ポリリジンデンドリマーは、具体的には、ヘキサメチレンジアミンをコア分子として、アミノ基がｔｅｒｔ－ブトキシカルボニル（Ｂｏｃ）基で保護されたリジンをＨＢＴＵ－ＨＯＢｔ法でカップリングし、次いで、トリフルオロ酢酸で脱Ｂｏｃ化するという反応を繰り返すことで製造する。フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーに用いられるポリリジンデンドリマーとしては、上記反応を１回行ったポリリジンデンドリマーでもよく、２回以上複数回行ったポリリジンデンドリマーであってもよい。中でも、末端アミノ基の量の上昇に伴い、導入し得るフェニルアラニンのモル量も上昇することから、上記反応を４回以上１０回以下行ったポリリジンデンドリマーであることが好ましく、５回行ったポリリジンデンドリマーであることがより好ましい。また、コア分子を１つのアミノ基と1つのカルボキシ基又はチオール基を有する化合物に変更し、上記の反応を行うことで、ポリリジンデンドロンを作製し、最後に任意のリンカーを用いて２種のデンドロンを結合することでデンドリマーを製造することもできる。
＜生分解性のカチオン性分子＞
　生分解性のカチオン性分子としては、生分解性を有し、且つ、核酸と静電的相互作用により複合体を形成し得るものであればよく、例えば、カチオン性ポリマー、カチオン性脂質等が挙げられる。
　カチオン性ポリマーとしては、例えば、キチンやキトサン等のポリカチオン性多糖；ポリリジン（ポリリジンデンドリマー（ＤＧＬ）及びアルギニン修飾ポリリジンデンドリマーを含む）、ポリアルギニン、ポリオルニチン、プロタミン等のポリカチオン性ポリペプチド等が挙げられるが、これらに限定されない。
　カチオン性脂質としては、例えば、大豆ホスファチジルコリン、卵黄ホスファチジルコリン、ジステアロイルホスファチジルコリン、ジパルミトイルホスファチジルコリン等のホスファチジルコリン；ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン等のホスファチジルエタノールアミン；ホスファチジルセリン、ホスファチジン酸、ホスファチジルグリセロール、ホスファチジルイノシトール、リゾホスファチジルコリン、スフィンゴミエリン、卵黄レシチン、大豆レシチン、水素添加リン脂質等のリン脂質；スルホキシリボシルグリセリド、ジグリコシルジグリセリド、ジガラクトシルジグリセリド、ガラクトシルジグリセリド、グリコシルジグリセリド等のグリセロ糖脂質；ガラクトシルセレブロシド、ラクトシルセレブロシド、ガングリオシド等のスフィンゴ糖脂質に、アミノ基、アルキルアミノ基、ジアルキルアミノ基、トリアルキルアンモニウム基、モノアシルオキシアルキル－ジアルキルアンモニウム基、ジアシルオキシアルキル－モノアルキルアンモニウム基等の第４級アンモニウム基が導入された脂質；Ｎ－（２，３－ジオレイルオキシ）プロピル－Ｎ，Ｎ，Ｎ－トリメチルアンモニウム（ＤＯＴＭＡ）、ジドデシルジメチルアンモニウムブロミド（ＤＤＡＢ）、１，２－ジオレオイルオキシ－３－トリメチルアンモニウムプロパン（ＤＯＴＡＰ）、１，２－ジステアロイル－３－トリメチルアンモニウムプロパン（ＤＳＴＡＰ）、ジオレオイル－３－ジメチルアンモニウムプロパン（ＤＯＤＡＰ）、ジオクタデシル－ジメチルアンモニウムクロリド（ＤＯＤＡＣ）、１，２－ジミリストイルオキシプロピル－３－ジメチルヒドロキシエチルアンモニウム（ＤＭＲＩＥ）、２，３－ジオレイルオキシ－Ｎ－［２－（スペルミンカルボキサミド）エチル］－Ｎ，Ｎ－ジメチル－１－プロパナミウムトリフルオロアセテート（ＤＯＳＰＡ）、Ｏ，Ｏ’－ジテトラデカノイル－Ｎ－（α－トリメチルアンモニオアセチル）ジエタノールアミンクロリド等が挙げられるが、これらに限定されない。
　中でも、生分解性のカチオン性分子としては、プロタミン、１，２－ジオレオイルオキシ－３－トリメチルアンモニウムプロパン、ポリリジンデンドリマー、又は末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーが好ましく、ポリリジンデンドリマー、又は末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーがより好ましい。
　生分解性のカチオン性分子は、公知の方法により調製してもよく、市販品を用いてもよい。
　本実施形態の核酸送達用担体において、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、生分解性のカチオン性分子と、の電荷比は、１：７～７：１であることが好ましく、２：６～６：２であることがより好ましい。電荷比が上記範囲であることで、核酸の導入効率をより優れたものとすることができる。
　なお、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーの電荷の算出方法の詳細については後述する。
［ポリリジンデンドリマー及びアルギニン修飾ポリリジンデンドリマー］
　ポリリジンデンドリマーは、上記フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーで説明した反応によって製造することができる。ポリリジンデンドリマーとしては、上記反応を４回以上１０回以下行ったポリリジンデンドリマーであることが好ましく、５回行ったポリリジンデンドリマーであることがより好ましい。なお、ここでいう「ポリリジンデンドリマー」は、デンドリマーの末端にリジンが結合しており、リジン以外のアミノ酸による修飾が施されていないデンドリマーであって、未修飾ポリリジンデンドリマーということもできる。
　アルギニン修飾ポリリジンデンドリマーは、上述したフェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーの製造方法において、ポリリジンデンドリマーの末端の少なくとも一部、好ましくは全部に、フェニルアラニンに代えてアルギニンを公知のカップリング反応で結合させることで、得られる。アルギニンの結合量は、合成後のデンドリマーの分子量を測定することで確認することができる。また、アルギニン修飾ポリリジンデンドリマーに用いられるポリリジンデンドリマーとしては、上記反応を４回以上１０回以下行ったポリリジンデンドリマーであることが好ましく、５回行ったポリリジンデンドリマーであることがより好ましい。
　また、アルギニン修飾ポリリジンデンドリマー及びフェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーが一体となったデンドリマー、例えば、図７に示す「Ａｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５」は、上記反応を５回行ったポリリジンデンドリマーの末端の少なくとも一部、好ましくは全部に、フェニルアラニンを公知のカップリング反応で結合させた後、更に、アルギニンを公知のカップリング反応で結合させることで、得られる。
　或いは、図７に示す「Ｐｈｅ／Ａｒｇ－ＫＧ５」は、上記反応を５回行ったポリリジンデンドロンの末端の少なくとも一部、好ましくは全部に、フェニルアラニンを公知のカップリング反応で結合させたフェニルアラニン修飾ポリリジンデンドロンと、上記反応を５回行ったポリリジンデンドロンの末端の少なくとも一部、好ましくは全部に、アルギニンを公知のカップリング反応で結合させたアルギニン修飾ポリリジンデンドロンを、任意のリンカーを用いて結合させることで、得られる。
　中でも、本実施形態の核酸送達用担体としては、核酸導入効率により優れることから、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、を含有することが好ましい。
　本実施形態の核酸送達用担体において、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、の電荷比は、１：７～７：１であることが好ましく、２：６～６：２であることがより好ましい。電荷比が上記範囲であることで、核酸の導入効率をより優れたものとすることができる。
　なお、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマー及び末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーそれぞれの電荷は、これらデンドリマーが有する総アミノ基のモル量から算出することができ、具体的には、デンドリマー１μｇあたりのアミノ基のモル量から算出することができる。例えば、上記反応を６回行ったポリリジンデンドリマーは１μｇあたり７．９ｎｍｏｌのアミノ基（プラスの電荷）を含み、上記反応を５回行ったポリリジンデンドリマーの末端にアルギニンが結合したデンドリマーは７．１ｎｍｏｌのアミノ基（プラスの電荷）を含み、上記反応を５回行ったポリリジンデンドリマーの末端にフェニルアラニンが結合したデンドリマーは３．７ｎｍｏｌのアミノ基（プラスの電荷）を含む。これらのアミノ基のモル量から、末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、の電荷比を算出する。
　本実施形態の核酸送達用担体は、核酸との複合体形成及び細胞への導入効率に支障をきたさない範囲内で、更にアニオン性分子を含有することができる。
　アニオン性分子としては、γ－ポリグルタミン酸（以下、「γ－ＰＧＡ」）、コンドロイチン硫酸（以下、「ＣＳ」と略記する場合がある）、アルギン酸（以下、ＡＧＡと略記する場合がある）及びそれらの塩等が挙げられる。
　上述したアニオン性分子の塩としては、例えば、ナトリウム、カリウム、リチウム等のアルカリ金属原子；トリメチルアミン、トリエチルアミン、ジメチルアミン、ジエチルアミン、トリエタノールアミン、トリメタノールアミン、ジエタノールアミン、ジメタノールアミン、エタノールアミン等の第三級アミン；テトラメチルアミン、テトラエチルアミン等の第四級アミンとの塩が挙げられる。
　アニオン性分子及びその塩は、その重合度に特に制限はないが、例えば分子量１，０００以上、より好ましくは２，０００以上のものが挙げられる。一方、上限としては、例えば分子量２０万、好ましくは１５万、より好ましくは１０万である。
≪核酸送達複合体≫
　本実施形態の核酸送達複合体は、核酸と、上述した核酸送達用担体と、からなる。
　本実施形態の核酸送達複合体において、アニオン性分子である核酸と、カチオン性分子である核酸送達用担体と、は、静電的相互作用により、複合体を形成している。
　核酸に対する、核酸送達用担体の電荷比は、核酸のリン酸基のモル量に対する、核酸送達用担体に含まれる総アミノ基のモル量の比で表すことができ、４以上とすることができ、６以上であることが好ましく、８以上１２以下であることがより好ましい。上記電荷比が上記範囲であることで、核酸の導入効率をより優れたものとすることができる。
　なお、例えば、ＤＮＡやＲＮＡは、それぞれ１μｇあたり、３．１ｎｍｏｌ以上３．３ｎｍｏｌ以下のリン酸基（マイナスの電荷）を含み、各デンドリマーのアミノ基のモル量は上述したとおりである。
＜核酸＞
　核酸の種類としては、特に制限はなく、例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ＤＮＡとＲＮＡのキメラ核酸、ＤＮＡ／ＲＮＡのハイブリッド等が挙げられる。また、核酸は１本鎖以上３本鎖以下のものを用いることができるが、好ましくは１本鎖又は２本鎖である。核酸は、プリン又はピリミジン塩基のＮ－グリコシドであるその他のタイプのヌクレオチド、あるいは非ヌクレオチド骨格を有するその他のオリゴマー（例えば、市販のペプチド核酸（ＰＮＡ）等）又は特殊な結合を含有するその他のオリゴマー（但し、該オリゴマーはＤＮＡやＲＮＡ中に見出されるような塩基のペアリングや塩基の付着を許容する配置をもつヌクレオチドを含有する）等であってもよい。さらには公知の修飾の付加されたもの、例えば当該分野で知られた標識のあるもの、キャップの付いたもの、メチル化されたもの、１個以上の天然のヌクレオチドを類縁物で置換したもの、分子内ヌクレオチド修飾のされたもの、例えば非荷電結合（例えば、メチルホスホネート、ホスホトリエステル、ホスホルアミデート、カルバメート等）をもつもの、電荷を有する結合又は硫黄含有結合（例えば、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエート等）をもつもの、例えば蛋白質（ヌクレアーゼ、ヌクレアーゼ・インヒビター、トキシン、抗体、シグナルペプチド等）や糖（例えば、モノサッカライド等）等の側鎖基を有しているもの、インターカレント化合物（例えば、アクリジン、プソラレン等）をもつもの、キレート化合物（例えば、金属、放射活性をもつ金属、ホウ素、酸化性の金属等）を含有するもの、アルキル化剤を含有するもの、修飾された結合をもつもの（例えば、αアノマー型の核酸等）であってもよい。
　例えば、ＤＮＡの種類は、使用の目的に応じて適宜選択することができ、特に限定されないが、例えばｃＤＮＡ、染色体ＤＮＡ等が挙げられる。これらｃＤＮＡや染色体ＤＮＡがプラスミドＤＮＡに導入された形態であってもよい。プラスミドＤＮＡ等の環状ＤＮＡは適宜制限酵素等により消化され、線形ＤＮＡとして用いることもできる。
　また、ＲＮＡの種類は、使用の目的に応じて適宜選択することができ、特に限定されないが、例えばメッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）、一本鎖ＲＮＡゲノム、二本鎖ＲＮＡゲノム、ＲＮＡレプリコン、トランスファーＲＮＡ、リボゾーマルＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ等が挙げられる。中でも、ｍＲＮＡ又はｓｉＲＮＡであることが好ましい。
　核酸の大きさは、特に限定されず、染色体（人工染色体等）等の巨大な核酸分子（例えば約１００ｋｂ（ｐ）の大きさ）から、低分子核酸（例えば約５ｂ（ｐ）の大きさ）を導入することが可能であるが、細胞内への核酸導入効率を考慮すると、１５ｋｂｐ以下であることが好ましい。例えば染色体ＤＮＡやプラスミドＤＮＡ、ｍＲＮＡのような高分子核酸の大きさとしては、２ｋｂ（ｐ）以上１５ｋｂ（ｐ）以下とすることができ、２ｋｂ（ｐ）以上１０ｋｂ（ｐ）以下であることが好ましく、４ｋｂ（ｐ）以上１０ｋｂ（ｐ）以下であることがより好ましい。また、比較的低分子の核酸の大きさとしては５ｂ（ｐ）以上２０００ｂ（ｐ）以下とすることができ、１０ｂ（ｐ）以上１０００ｂ（ｐ）以下であることが好ましく、１５ｂ（ｐ）以上８００ｂ（ｐ）以下であることがより好ましい。なお、核酸が一本鎖の場合の単位はｂ（ｂａｓｅ；塩基）であり、一方で、二本鎖の場合の単位はｂｐ（ｂａｓｅ　ｐａｉｒ；塩基対）である。
　核酸は天然に存在するもの、又は合成されたもののいずれでもよいが、１００ｂ（ｐ）程度以下の大きさのものであれば、ホスホトリエチル法、ホスホジエステル法等により、通常用いられる核酸自動合成装置を利用して合成することが可能である。
＜核酸送達複合体の製造方法＞
　本実施形態の核酸送達複合体は、核酸と、核酸送達用担体、すなわち、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドリマーと、ポリリジンデンドリマー又はアルギニン修飾ポリリジンデンドリマーと、の混合物と、を、上記電荷比となるように接触させて、製造することができる。
　具体的には、核酸と、核酸送達用担体と、を水又は適用な緩衝液中で混合し、１５℃以上２５℃以下で３０秒間以上３００分間以下、好ましくは１０分間以上１８０分間以下インキュベートすることで、自己組織化させて複合体を作製する。混合物中の核酸の濃度は、用途やサイズ（分子量）等を考慮し適宜設定できるが、例えば、０．０１ｎｇ／μＬ以上１０００ｎｇ／μＬ以下とすることができる。
　本実施形態の核酸送達複合体は、単独で、或いは、薬理学上許容されうる担体とともに常套手段に従って製剤化し、医薬もしくは試薬組成物として使用することができる。すなわち、本実施形態の核酸送達複合体を医薬用途で使用する場合には、該核酸送達複合体を核酸医薬又は遺伝子治療薬ということもできる。
　核酸送達複合体を試薬組成物として製剤化する場合は、該複合体は、そのままで、或いは、例えば、水若しくはそれ以外の生理学的に許容し得る液（例えば、生理食塩水、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）、通常の細胞培養で用いられる培地（例えばＲＰＭＩ１６４０、ＤＭＥＭ、ＨＡＭ　Ｆ－１２、イーグル培地等）等の水性溶媒、エタノール、メタノール、ＤＭＳＯ等の有機溶媒若しくは水性溶媒と有機溶媒との混合溶液等）との無菌性溶液若しくは懸濁液として提供され得る。該組成物は適宜、自体公知の生理学的に許容し得る賦形剤、ベヒクル、防腐剤、安定剤、結合剤等を含むことができる。
　また、核酸送達複合体を医薬組成物として製剤化する場合は、該複合体は、そのままで、あるいは医薬上許容される担体、香味剤、賦形剤、ベヒクル、防腐剤、安定剤、結合剤などとともに、一般に認められた製剤実施に要求される単位用量形態で混和することによって経口剤（例えば錠剤、カプセル剤等）あるいは非経口剤（例えば注射剤、スプレー剤等）として製造することができる。
　錠剤、カプセル剤などに混和することができる添加剤としては、例えば、ゼラチン、コーンスターチ、トラガント、アラビアゴムのような結合剤、結晶性セルロースのような賦剤、コーンスターチ、ゼラチンなどのような膨化剤、ステアリン酸マグネシウムのような潤滑剤、ショ糖、乳糖またはサッカリンのような甘味剤、ペパーミント、アカモノ油またはチェリーのような香味剤などが用いられる。調剤単位形態がカプセルである場合には、上記タイプの材料にさらに油脂のような液状担体を含有することができる。注射剤用の水性液としては、例えば、生理食塩水、ブドウ糖やその他の補助薬を含む等張液（例えば、Ｄ－ソルビトール、Ｄ－マンニトール、塩化ナトリウムなど）などが用いられ、適当な溶解補助剤、例えば、アルコール（例：エタノール）、ポリアルコール（例：プロピレングリコール、ポリエチレングリコール）、非イオン性界面活性剤（例：ポリソルベート８０ＴＭ、ＨＣＯ－５０）などと併用してもよい。油性液としては、例えば、ゴマ油、大豆油などが用いられ、溶解補助剤である安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールなどと併用してもよい。
　また、上記医薬組成物は、例えば、緩衝剤（例えば、リン酸塩緩衝液、酢酸ナトリウム緩衝液など）、無痛化剤（例えば、塩化ベンザルコニウム、塩酸プロカインなど）、安定剤（例えば、ヒト血清アルブミン、ポリエチレングリコールなど）、保存剤（例えば、ベンジルアルコール、フェノールなど）、酸化防止剤（例えばアスコルビン酸など）などを配合してもよい。
　また、一実施形態において、本発明は、インビトロ系において、上記実施形態の核酸送達複合体を細胞に接触させることを含む、細胞内への核酸送達方法を提供する。
　細胞の種類は特に限定されず、原核生物及び真核生物の細胞を用いることができるが、好ましくは真核生物である。真核生物の種類も、特に限定されず、例えば、ヒトを含む哺乳類（ヒト、サル、マウス、ラット、ハムスター、ウシ等）、鳥類（ニワトリ、ダチョウ等）、両生類（カエル等）、魚類（ゼブラフィッシュ、メダカ等）などの脊椎動物、昆虫（蚕、蛾、ショウジョウバエ等）などの無脊椎動物、植物、酵母等の微生物等が挙げられる。より好ましくは、本発明で対象とされる細胞は、動物もしくは植物細胞、さらに好ましくは哺乳動物細胞である。当該細胞は、癌細胞を含む培養細胞株であっても、個体や組織より単離された細胞、あるいは組織もしくは組織片の細胞であってもよい。また、細胞は接着細胞であっても、非接着細胞であってもよい。
　核酸送達複合体と細胞とを接触させる工程をより具体的に説明すると、例えば次の通りである。
　即ち、細胞は核酸送達複合体との接触の数日前に適当な培地に懸濁され、適切な条件で培養される。核酸送達複合体との接触時において、細胞は増殖期にあってもよいし、そうでなくてもよい。接触時の培養液は、血清含有培地であっても血清不含培地であってもよいが、培地中の血清濃度は３０％以下、好ましくは２０％以下であることが好ましい。培地中に過剰な血清等の蛋白質が含まれていると、核酸送達複合体と細胞との接触が阻害される可能性があるからである。
　接触時の細胞密度は、特に限定されず、細胞の種類等を考慮して適宜設定することが可能であるが、通常０．１×１０５細胞／ｍＬ以上５×１０５細胞／ｍＬ以下、好ましくは０．１×１０５細胞／ｍＬ以上４×１０５細胞／ｍＬ以下、より好ましくは０．１×１０５細胞／ｍＬ以上３×１０５細胞／ｍＬ以下、更に好ましくは０．２×１０５細胞／ｍＬ以上３×１０５細胞／ｍＬ以下、最も好ましくは０．２×１０５細胞／ｍＬ以上２×１０５細胞／ｍＬ以下の範囲である。
　このように調製された細胞を含む培地に、核酸送達複合体含有溶液を添加する。複合体含有溶液の添加量は、特に限定されず、細胞数等を考慮して適宜設定することが可能であるが、培地１ｍＬにつき、通常１μＬ以上１０００μＬ以下、好ましくは１μＬ以上５００μＬ以下、より好ましくは１μＬ以上３００μＬ以下、更に好ましくは１μＬ以上２００μＬ以下、最も好ましくは１μＬ以上１００μＬ以下の範囲である。
　培地に複合体含有溶液を添加後、細胞を培養する、培養時の温度、湿度、ＣＯ２濃度等は、細胞の種類を考慮して適宜設定する。哺乳動物の細胞の場合は、通常約３７℃、湿度約９５％、ＣＯ２濃度は約５％である。
　また、培養時間も用いる細胞の種類等の条件を考慮して適宜設定することが可能であるが、通常１時間以上７２時間以下、好ましくは１時間以上６０時間以下、より好ましくは１時間以上４８時間以下、更に好ましくは１時間以上４０時間以下、最も好ましくは１時間以上３２時間以下の範囲である。
　上記培養時間が短すぎると、核酸が十分細胞内へ導入されず、培養時間が長すぎると、細胞が弱ることがある。
　上記培養により、核酸が細胞内へ導入されるが、好ましくは培地を新鮮な培地と交換するか、培地に新鮮な培地を添加して更に培養を続ける。細胞が哺乳動物由来の細胞である場合は、新鮮な培地は血清又は栄養因子を含むことが好ましい。
　更なる培養の時間は、核酸に期待される機能等を考慮して、適宜設定することが可能であるが、該核酸が発現ベクター等のプラスミドＤＮＡである場合は、通常８時間以上７２時間以下、好ましくは８時間以上６０時間以下、より好ましくは８時間以上４８時間以下、更に好ましくは８時間以上３６時間以下、最も好ましくは１２時間以上３２時間以下の範囲である。該化合物がｓｉＲＮＡなどの標的遺伝子の発現を制御し得る低分子核酸である場合には、通常０時間以上７２時間以下、好ましくは０時間以上６０時間以下、より好ましくは０時間以上４８時間以下、更に好ましくは０時間以上３６時間以下、最も好ましくは０時間以上３２時間以下の範囲である。
　また、一実施形態において、本発明は、上記実施形態の核酸送達複合体を対象に投与することを含む、対象の細胞内への核酸送達方法を提供する。
　該複合体を対象に投与することにより、該複合体が標的細胞へ到達及び接触し、生体内で該複合体に含まれる核酸が細胞内へ導入される。
　すなわち、一実施形態において、本発明は、上記実施形態の核酸送達複合体を対象に投与することを含む、遺伝子治療方法を提供する。
　また、一実施形態において、遺伝子治療のための、上記実施形態の核酸送達複合体を提供する。
　該複合体を投与可能な対象としては、特に限定されず、例えば、ヒトを含む哺乳類（ヒト、サル、マウス、ラット、ハムスター、ウシ等）、鳥類（ニワトリ、ダチョウ等）、両生類（カエル等）、魚類（ゼブラフィッシュ、メダカ等）などの脊椎動物、昆虫（蚕、蛾、ショウジョウバエ等）などの無脊椎動物、植物等を挙げることができる。好ましくは、該複合体の投与対象としては、ヒト又は他の哺乳動物が挙げられる。
　核酸送達複合体の投与方法は、標的細胞へ該複合体が到達及び接触し、該複合体に含まれる核酸を細胞内へ導入可能な範囲で特に限定されず、核酸の種類や、標的細胞の種類や部位等を考慮して、自体公知の投与方法（経口投与、非経口投与（静脈内投与、筋肉内投与、局所投与、経皮投与、皮下投与、腹腔内投与、スプレー等）等）を適宜選択することができる。
　核酸送達複合体の投与量は、核酸の細胞内への導入を達成可能な範囲で特に限定されず、投与対象の種類、投与方法、核酸の種類、標的細胞の種類や部位等を考慮して適宜選択することができるが、経口投与の場合、一般的に例えばヒト（体重６０ｋｇとして）においては、１回あたり、核酸量として１ｍｇ以上１０ｇ以下程度とすることができる。非経口的に投与する場合（例えば静脈内投与等）は、一般的に例えばヒト（体重６０ｋｇとして）においては、１回あたり、核酸量として約０．１μｇ以上３０００ｍｇ以下とすることができる。
　以下、実施例により本発明を説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
［参考例１］
（各デンドリマー単独による遺伝子導入効果）
　まず、ポリリジンデンドリマー（第６世代、ＫＧ６又はＬｙｓ－ＫＧ５とも称する）、及び末端にアルギニン、ヒスチジン又はフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマー（それぞれＡｒｇ－ＫＧ５、Ｈｉｓ－ＫＧ５、Ｐｈｅ－ＫＧ５とも称する）単独使用時の遺伝子導入効果を検討した。
１．材料の準備
　核酸として、プラスミドＤＮＡ（ｐＤＮＡ）を使用した。具体的には、ホタルルシフェラーゼをコードしたｐＣＭＶ－Ｌｕｃを用いた。
　ｐＣＭＶ－Ｌｕｃは東洋ビーネット社のピッカジーン（登録商標）コントロールベクターからホタルルシフェラーゼのｃＤＮＡをＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社のｐｃＤＮＡ３．１ベクターへサブクローニングして調製した。
　ｐＣＭＶ－Ｌｕｃは大腸菌株ＸＬ－１　ｂｌｕｅで増やし、ＱＩＡＧＥＮ社のＥｎｄｏｆｒｅｅ－ｐＤＮＡ　ＧＩＧＡ　ｋｉｔを用いて抽出した。抽出したｐＣＭＶ－Ｌｕｃを５質量％グルコースに溶解して使用した。
　各デンドリマー、具体的には、ＫＧ６、Ａｒｇ－ＫＧ５、Ｈｉｓ－ＫＧ５、及びＰｈｅ－ＫＧ５はペプチド研究所で合成したものを用いた。デンドリマーは全て５質量％グルコース溶液に溶解し、ｐＨを７．４に調整した。
２．複合体の形成
　ｐＤＮＡのリン酸基に対する各デンドリマーのアミノ基の数から電荷比を計算した。
　各複合体は、ｐＤＮＡ溶液とデンドリマー溶液を目的とする電荷比、具体的には、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対する各デンドリマーのアミノ基のモル量が０、２、４、６、８、１０、又は１２となるように混合し、室温で３０分間放置することで調整した。
３．細胞への核酸導入
　培養細胞としてマウスメラノーマ細胞であるＢ１６細胞を用いた。
　Ｂ１６細胞を２４ｗｅｌｌプレートに播種し、２４時間の前培養の後に、ＯＰＴＩＭＥＭを用いて洗浄し、２μｇ／ｍＬのｐＤＮＡを含む複合体を含んだＯＰＴＩＭＥＭ５００μＬを細胞に添加し、２時間インキュベートした。培養液を用いて細胞を洗浄後、培養液中でさらに２２時間培養した。
４．ルシフェラーゼ活性の定量
　培養後の細胞はＬｙｓｉｓ　ｂｕｆｆｅｒ（０．０５ｖ／ｖ％ＴｒｉｔｏｎＸ－１００と２ｍＭ　ｅｔｈｙｌｅｎｅｄｉａｍｉｎｅｔｅｔｒａａｃｅｔｉｃ　ａｃｉｄを含有するｐＨ７．８の０．１Ｍ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌバッファー)中で溶解し、細胞溶解液中のルシフェラーゼ活性はビッカジーン（東洋ビーネット社）を用いて測定した。また、細胞溶解液中のタンパク質濃度をプロテインアッセイＣＢＢ溶液（ナカライテスク社）を用いて測定し、ルシフェラーゼ活性をＲＬＵ／ｍｇ　ｐｒｏｔｅｉｎとして算出した。結果を図１に示す。
　図１に示すように、いずれのデンドリマーを用いた場合においても、ルシフェラーゼ活性は１×１０１０ＲＬＵ／ｍｇ　ｐｒｏｔｅｉｎ未満であった。特に、Ｐｈｅ－ＫＧ５を使用した細胞では、ほとんどルシフェラーゼ活性が検出されず、核酸が導入されていなかった。これは、Ｐｈｅ－ＫＧ５が、ＫＧ６、Ａｒｇ－ＫＧ５、及びＨｉｓ－ＫＧ５と比較して正の電荷密度が低く、負に帯電した核酸との相互作用が弱く、形成した微粒子が不安定であったことから、細胞内への導入が妨げられたためであると推察された。
［実施例１］
（各デンドリマー併用による遺伝子導入効果）
　次いで、参考例１で検討した各デンドリマーを組み合わせて使用した場合における核酸導入効率を検討した。
　５質量％グルコース溶液に溶解し、ｐＨを７．４に調整したポリエチレンイミン（ＰＥＩ）溶液を調製した。
　ＰＥＩ、ＫＧ６、又はＡｒｇ－ＫＧ５を単独で、電荷比、具体的には、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対する各デンドリマーのアミノ基のモル量の比が８となるようにｐＤＮＡと混合した。
　また、２種のデンドリマーを混合した複合体の調製では、まず、ＫＧ６、又はＡｒｇ－ＫＧ５の溶液に、Ｈｉｓ－ＫＧ５又はＰｈｅ－ＫＧ５の溶液を、それぞれ電荷比、すなわち、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対する各デンドリマーのアミノ基のモル量の比が４（合計８）となるように混合した。
　次いで、デンドリマー混合溶液とｐＤＮＡを混合し、室温で３０分間放置することで各複合体を調製した。
　細胞への核酸導入及びルシフェラーゼ活性の定量は、参考例１と同様の方法を用いて行った。結果を図２に示す。図２において、カッコ内の数字は、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対する、ポリエチレンイミンのイミノ基又は各デンドリマーのアミノ基のモル量の比である。
　図２に示すように、ＫＧ６とＰｈｅ－ＫＧ５、又は、Ａｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５を組み合わせた場合に、ポリエチレンイミンと同等以上のルシフェラーゼ活性が確認された。また、これらのデンドリマーを組み合わせた際のルシフェラーゼ活性は、ポリリジンデンドリマー単独で使用した場合の１０倍以上であった。
［実施例２］
（Ａｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５による遺伝子導入効果１）
　ｐＤＮＡに対するデンドリマーの電荷比を固定して、Ａｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５の比率の変化による核酸導入効率への影響を検討した。
　Ａｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５の溶液を電荷比、すなわち、Ａｒｇ－ＫＧ５のアミノ基のモル量とＰｈｅ－ＫＧ５のアミノ基のモル量の比が８：０、６：２、４：４、２：６、又は０：８となるように混合し、Ａｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５の混合溶液を調製した。
　ｐＤＮＡに対するデンドリマー混合溶液の電荷比、すなわち、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対する、デンドリマー混合溶液の総アミノ基のモル量の比が８となるように、各デンドリマー混合溶液をｐＤＮＡと混合し、室温で３０分間放置することで複合体を調製した。
　細胞への核酸導入及びルシフェラーゼ活性の定量は、参考例１と同様の方法を用いて行った。結果を図３に示す。
　図３に示すように、Ａｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５の溶液を電荷比、すなわち、Ａｒｇ－ＫＧ５のアミノ基のモル量とＰｈｅ－ＫＧ５のアミノ基のモル量の比が６：２～２：６であるときに、ルシフェラーゼ活性が１×１０１０ＲＬＵ／ｍｇ　ｐｒｏｔｅｉｎ超と特に良好であった。
［実施例３］
（Ａｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５による遺伝子導入効果２）
　Ａｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５の比率を固定して、ｐＤＮＡに対するデンドリマーの電荷比の変化による核酸導入効率への影響を検討した。
　Ａｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５の溶液を電荷比、すなわち、Ａｒｇ－ＫＧ５のアミノ基のモル量とＰｈｅ－ＫＧ５のアミノ基のモル量の比が１：１となるように混合し、デンドリマー混合溶液を調製した。
　ｐＤＮＡに対するデンドリマー混合溶液の電荷比、すなわち、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対する、デンドリマー混合溶液の総アミノ基のモル量の比が２、４、６、８、１０、１２となるように、デンドリマー混合溶液とｐＤＮＡを混合し、室温で３０分間放置することで複合体を調製した。
　細胞への核酸導入及びルシフェラーゼ活性の定量は、参考例１と同様の方法を用いて行った。結果を図４に示す。
　図４に示すように、ＤＮＡに対するデンドリマーの電荷比、すなわち、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対する、デンドリマー混合溶液の総アミノ基のモル量の比が６であるときに、ルシフェラーゼ活性が１×１０１０ＲＬＵ／ｍｇ　ｐｒｏｔｅｉｎ程度となり、さらに、電荷比が８以上１２以下のときに、ルシフェラーゼ活性が１×１０１０ＲＬＵ／ｍｇ　ｐｒｏｔｅｉｎ超と特に良好であった。
［実施例４］
（インビボでのＡｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５による遺伝子導入効果）
　マウスに投与した際の、Ａｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５による遺伝子導入効果を検討した。
　５週齢のｄｄＹ系雄性マウスにｐＤＮＡとＰＥＩとの複合体（ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対するＰＥＩのアミノ基のモル量の比が８）、又は、ｐＤＮＡとＡｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５との複合体（ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対する各デンドリマーのアミノ基のモル量の比が４、総アミノ基のモル比は８）をｐＤＮＡとして４０μｇ／匹で静脈内投与し、６時間後に肝臓、腎臓、脾臓、心臓、及び肺を摘出し、ホモジネートのルシフェラーゼ活性を測定した。結果を図５に示す。
　図５に示すように、ｐＤＮＡとＰＥＩの複合体は脾臓と肺で高いルシフェラーゼ活性を示したが、ｐＤＮＡとＡｒｇ－ＫＧ５とＰｈｅ－ＫＧ５との複合体は肝臓でｐＤＮＡとＰＥＩの複合体と比較して有意に高いルシフェラーゼ活性が認められた。また、脾臓ではｐＤＮＡとＰＥＩの複合体と同等、肺ではｐＤＮＡとＰＥＩの複合体と比較して有意差はないものの、やや低いルシフェラーゼ活性が確認された。
［実施例５］
（Ｐｈｅ－ＫＧ５と各種遺伝子導入試薬との併用による遺伝子導入効果）
　Ｐｈｅ－ＫＧ５と各種遺伝子導入試薬を組み合わせて使用した場合における核酸導入効率を検討した。
　５質量％グルコース溶液に溶解し、ｐＨを７．４に調整したポリエチレンイミン（ＰＥＩ）溶液を調製した。
　ＰＥＩ、プロタミン、ポリＬ－リジンデンドリグラフト（ＣＯＬＣＯＭ社製、ＤＧＬ）、ＤＯＴＡＰ、又は３β－Ｎ－（Ｎ’，Ｎ’－ジメチル－アミノエタン－カルバモイル－コレステロール）（ＤＣ－Ｃｈｏｌ）を単独で、電荷比、具体的には、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対する各遺伝子導入試薬のカチオン性基のモル量の比が８(ＰＥＩ、プロタミン、ＤＧＬ)、又は４（ＤＯＴＡＰ、ＤＣ－Ｃｈｏｌ）となるようにｐＤＮＡと混合した。
　Ｌｉｐｏｇｅｃｔａｍｉｎｅ（登録商標、以下記載を省略する）３０００（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｆｉｓｈｅｒ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）は試薬のプロトコール通りに用い、ＯＰＴＩＭＥＭ　４７μＬにｐＤＮＡ　１μｇ（１μＬ）とＰ３０００ＴＭ　ｅｎｈａｎｃｅｒ　ｒｅａｇｅｎｔ　２μＬを混合したものと、ＯＰＴＩＭＥＭ　４８．５μＬにＬｉｐｏｇｅｃｔａｍｉｎｅ３０００溶液　１．５μＬを混合したものと、を混合し、室温で１５分放置した。この溶液にＯＰＴＩＭＥＭ　４００μＬを加え、細胞に添加し、２４時間インキュベートした。
　また、Ｐｈｅ－ＫＧ５と各種遺伝子導入試薬を混合した複合体の調製では、まず、Ａｒｇ－ＫＧ５、ＰＥＩ、プロタミン、ＫＧ６（ＤＧＬ）、ＤＯＴＡＰ、又はＤＣ－Ｃｈｏｌの溶液に、Ｐｈｅ－ＫＧ５の溶液を、それぞれ電荷比、すなわちＰｈｅ－ＫＧ５のアミノ基及び各遺伝子導入試薬のカチオン性基のモル量の比が１：２(ＰＥＩ、プロタミン、ＤＧＬ)、又は１：１（ＤＯＴＡＰ、ＤＣ－Ｃｈｏｌ）となるように混合した。
　次いで、各混合溶液とｐＤＮＡを、それぞれ電荷比、すなわち、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対するＰｈｅ－ＫＧ５のアミノ基のモル量の比が４、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対する各遺伝子導入試薬のカチオン性基のモル量の比が８(ＰＥＩ、プロタミン、ＤＧＬ)、又は４（ＤＯＴＡＰ、ＤＣ－Ｃｈｏｌ）となるように混合し、室温で３０分間放置することで各複合体を調製した。
　細胞への核酸導入及びルシフェラーゼ活性の定量は、参考例１と同様の方法を用いて行った。結果を図６に示す。
　図６に示すように、いずれの遺伝子導入試薬においても、Ｐｈｅ－ＫＧ５を併用することで、遺伝子導入試薬を単独で使用する場合よりも遺伝子導入効率が向上していた。
　また、Ｐｈｅ－ＫＧ５とＡｒｇ－ＫＧ５だけではなく、生分解性のカチオン性分子であるプロタミン、ＤＧＬ、又はＤＯＴＡＰを組み合わせた場合に、ポリエチレンイミン単独使用と同等以上のルシフェラーゼ活性が確認された。また、中でも、Ｐｈｅ－ＫＧ５とＡｒｇ－ＫＧ５を組み合わせた場合には、Ｌｉｐｏｇｅｃｔａｍｉｎｅ３０００と同程度のルシフェラーゼ活性が確認された。
［実施例６］
（Ａｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５及びＰｈｅ／Ａｒｇ－ＫＧ５の遺伝子導入効果）
　また、Ｐｈｅ－ＫＧ５の末端にＡｒｇを結合した一体型のＡｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５、及び、フェニルアラニン修飾ポリリジンデンドロンとアルギニン修飾ポリリジンデンドロンとが結合した一体型のＰｈｅ／Ａｒｇ－ＫＧ５（図７参照）の遺伝子導入効果を評価した。
　Ａｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５及びＰｈｅ／Ａｒｇ－ＫＧ５はペプチド研究所で合成したものを用い、５質量％グルコース溶液に溶解し、ｐＨを７．４に調整した。Ａｒｇ－ＫＧ５の溶液とＰｈｅ－ＫＧ５の溶液を電荷比、すなわち、Ａｒｇ－ＫＧ５のアミノ基のモル量とＰｈｅ－ＫＧ５のアミノ基のモル量の比が１：１となるように混合し、デンドリマー混合溶液を調製した。
　次いで、ｐＤＮＡに対するＡｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５溶液又はＰｈｅ／Ａｒｇ－ＫＧ５溶液の電荷比、すなわち、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対する、Ａｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５又はＰｈｅ／Ａｒｇ－ＫＧ５溶液のアミノ基のモル量の比が２、４、６、８、１０、１２となるように、Ａｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５溶液又はＰｈｅ／Ａｒｇ－ＫＧ５溶液とｐＤＮＡを混合し、室温で３０分間放置することで複合体を調製した。また、ｐＤＮＡに対するデンドリマー混合溶液の電荷比、すなわち、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対する、各デンドリマーのアミノ基のモル量の比が４（合計８）となるように、デンドリマー混合溶液とｐＤＮＡを混合し、室温で３０分間放置することで複合体を調製した。
　細胞への核酸導入及びルシフェラーゼ活性の定量は、参考例１と同様の方法を用いて行った。結果を図８に示す。図８において、「＊」はｐ＜０．０５、「＊＊」はｐ＜０．０１を示し、Ｐｈｅ－ＫＧ５とＡｒｇ－ＫＧ５を組み合わせた場合との有意差を示す。
　図８Ａ及び図８Ｂに示すように、一体型のＡｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５及びＰｈｅ／Ａｒｇ－ＫＧ５を用いることで、Ｐｈｅ－ＫＧ５とＡｒｇ－ＫＧ５を組み合わせた場合と同様に高いルシフェラーゼ活性が認められた。特に、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対するＡｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５のアミノ基のモル量の比が１０、並びに、Ｐｈｅ／Ａｒｇ－ＫＧ５のアミノ基のモル量の比が１０及び１２では、Ｐｈｅ－ＫＧ５とＡｒｇ－ＫＧ５を組み合わせた場合と同等のルシフェラーゼ活性であり、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対するＡｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５のアミノ基のモル量の比が１２ではＰｈｅ－ＫＧ５とＡｒｇ－ＫＧ５を組み合わせた場合と比較して有意に高いルシフェラーゼ活性が確認できた。
［実施例７］
（Ａｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５のｓｉＲＮＡ導入効果）
　また、Ｐｈｅ－ＫＧ５の末端にＡｒｇを結合した一体型のＡｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５のｓｉＲＮＡ導入効果を評価した。
１．材料の準備
　ｓｉＲＮＡとして、ホタルルシフェラーゼに対するｓｉＲＮＡを用いた。
　ｓｉＲＮＡはＧｅｎｅＤｅｓｉｇｎに受託合成を依頼した。配列は5’-CUUACGCUGAGUACUUCGAtt-3’（配列番号１）と5’-UCGAAGUACUCAGCGUAAGtt-3’（配列番号２）である。ｓｉＲＮＡは５質量％グルコースに溶解して使用した。
２．複合体の形成
　ｓｉＲＮＡのリン酸基に対するＡｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５のアミノ基の数から電荷比を計算した。
　各複合体は、ｓｉＲＮＡ溶液とデンドリマー溶液を目的とする電荷比、具体的には、ｐＤＮＡのリン酸基のモル量に対するＡｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５のアミノ基のモル量が２、４、６、８、１０、又は１２となるように混合し、室温で３０分間放置することで調整した。
３．細胞への核酸導入
　培養細胞としてマウスメラノーマ細胞であるＢ１６－Ｆ１０細胞にホタルルシフェラーゼが導入されたＢ１６－Ｆ１０－Ｌｕｃ細胞を用いた。
　Ｂ１６－Ｆ１０－Ｌｕｃ細胞を２４ｗｅｌｌプレートに播種し、２４時間の前培養の後に、ＯＰＴＩＭＥＭを用いて洗浄し、２μｇ／ｍＬのｓｉＲＮＡを含む複合体を含んだＯＰＴＩＭＥＭ　５００μＬを細胞に添加し、２時間インキュベートした。培養液を用いて細胞を洗浄後、培養液中でさらに２２時間培養した。
　Ｌｉｐｏｇｅｃｔａｍｉｎｅ（登録商標、以下記載を省略する）ＲＮＡｉＭＡＸは試薬のプロトコール通りに用い、ｓｉＲＮＡ　５ｐｍｏｌを含むＯＰＴＩＭＥＭ　５０μＬと、ＯＰＴＩＭＥＭ　４８．５μＬにＬｉｐｏｇｅｃｔａｍｉｎｅ　ＲＮＡｉＭＡＸ　１．５μＬを混合したものと、を混合し、室温で５分放置した。この溶液にＯＰＴＩＭＥＭ　４００μＬを加え、細胞に添加し、２４時間インキュベートした。
４．ルシフェラーゼ活性の定量
　培養後の細胞はＬｙｓｉｓ　ｂｕｆｆｅｒ中で溶解し、細胞溶解液中のルシフェラーゼ活性はビッカジーン（東洋ビーネット社）を用いて測定した。また、細胞溶解液中のタンパク質濃度を、プロテインアッセイＣＢＢ溶液（ナカライテスク社）を用いて測定し、ルシフェラーゼ活性をＲＬＵ／ｍｇ　ｐｒｏｔｅｉｎとして算出した。また、測定値はｓｉＲＮＡを加えなかったコントロールの細胞のルシフェラーゼ活性で除し、コントロールの細胞のルシフェラーゼ活性を１００％として算出した。結果を図９に示す。図９において、「＊＊」はｐ＜０．０１を示し、コントロールの細胞との有意差を示す。
　ｓｉＲＮＡにＡｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５を用いることで、高いノックダウン効果が認められた。特に、ｓｉＲＮＡのリン酸基のモル量に対するＡｒｇ－Ｐｈｅ－ＫＧ５のアミノ基のモル量の比が６以上では、Ｌｉｐｏｇｅｃｔａｍｉｎｅ　ＲＮＡｉＭＡＸと比較して同等以上のルシフェラーゼのタンパク発現抑制効果が確認できた。
　本実施形態の核酸送達用担体によれば、生分解性を有し、且つ、核酸の導入効率が良好な核酸送達用担体を提供することができる。本実施形態の核酸送達複合体は、前記核酸送達用担体を含み、生分解性を有し、且つ、核酸の導入効率が良好である。

Claims (11)

  1. 　末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、生分解性のカチオン性分子と、を含有する、核酸送達用担体。
  2. 　前記生分解性のカチオン性分子が、プロタミン、１，２－ジオレオイルオキシ－３－トリメチルアンモニウムプロパン、ポリリジンデンドリマー、又は末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーである、請求項１に記載の核酸送達用担体。
  3. 　末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、ポリリジンデンドリマー又は末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、を含有する、核酸送達用担体。
  4. 　末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、を含有する、請求項３に記載の核酸送達用担体。
  5. 　末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、の電荷比が、１：７～７：１である、請求項４に記載の核酸送達用担体。
  6. 　末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドリマーと、末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーと、の電荷比が、２：６～６：２である、請求項５に記載の核酸送達用担体。
  7. 　末端にフェニルアラニンを介してアルギニンが結合したポリリジンデンドリマーを含有する、核酸送達用担体。
  8. 　末端にフェニルアラニンが結合したポリリジンデンドロンと、末端にアルギニンが結合したポリリジンデンドロンと、が結合した、一体型のデンドリマーを含有する、核酸送達用担体。
  9. 　核酸と、請求項１～８のいずれか一項に記載の核酸送達用担体と、からなる、核酸送達複合体。
  10. 　前記核酸に対する、前記核酸送達用担体の電荷比が、６以上である、請求項９に記載の核酸送達複合体。
  11. 　前記核酸に対する、前記核酸送達用担体の電荷比が、８以上１２以下である、請求項１０に記載の核酸送達複合体。
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