WO2023074712A1 - T細胞を評価する方法及びt細胞を評価するための組成物 - Google Patents

T細胞を評価する方法及びt細胞を評価するための組成物 Download PDF

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acid sequence
cells
gene
polypeptide
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新 金子
洋平 河合
佳奈 山口
勇一 熊木
達 二見
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国立大学法人京都大学
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    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
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    • C12Q1/6876Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
    • C12Q1/6881Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for tissue or cell typing, e.g. human leukocyte antigen [HLA] probes

Definitions

  • the present invention provides a method for evaluating T cells, a composition for evaluating T cells, a pharmaceutical composition containing high-quality T cells obtained by the method for evaluating T cells, and a cancer using the pharmaceutical composition. It relates to the prevention or treatment method of
  • T cells antigen-specific cytotoxic T-lymphocytes (CTL) related to the disease
  • CTL cytotoxic T-lymphocytes
  • T cells unmodified T cells
  • Expectations are high for cancer immunotherapy, which treats cancer by returning cells to the original patient.
  • Patent Document 1 describes a method of inducing CD8 ⁇ + ⁇ + CTL by culturing CD4 + CD8 + T cells in a medium containing interleukin 7 and a TCR (T cell receptor) activator.
  • T cell quality evaluation items include, for example, expression analysis of differentiation markers expressed at each stage of T cells, analysis of the amount of cytokines produced after TCR stimulation, proliferation ability, cytotoxic activity, Examples include cancer cell suppressing activity in animal experiments.
  • the quality of T cells is comprehensively evaluated by these items, but such evaluations are often complicated and require a long period of time. Furthermore, since the cost of evaluation is high, there is a demand for a method that can evaluate the quality of T cells more simply and in a short period of time.
  • Non-Patent Document 1 As a method for evaluating the quality of such T cells, for example, it has been found that there is a relationship between the expression level of PD-1, lag3, etc. and the exhaustion of T cells (Non-Patent Document 1). , using these proteins as T cell exhaustion markers, a method of evaluating T cell exhaustion based on the expression level thereof.
  • the present invention has been made in view of the above-mentioned problems of the prior art, and provides a T cell evaluation method capable of evaluating the quality of relatively young T cells using a new index, and a T cell evaluation reagent used therein. for the purpose.
  • secretome secretome
  • high-quality T cells high-quality T cells
  • low-quality T cells T cells with relatively low proliferative potential
  • PCA principal component analysis
  • the quality of T cells can be evaluated by using a gene encoding a polypeptide containing the amino acid sequence of the protein as a marker for evaluating the quality of T cells and using the expression thereof as an index. Furthermore, since these genes are genes that are expressed in a relatively early stage when the number of TCR stimulations of T cells is small, it was found that the quality of relatively young T cells can also be evaluated by using their expression as an index. was completed.
  • a method for evaluating T cells comprising: (I) a gene encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence set forth in any one of SEQ ID NOs: 1-54 (II) one or more of the amino acid sequences set forth in any one of SEQ ID NOs: 1-54 70% or more of the amino acid sequence described in any one of gene (III) SEQ ID NOS: 1 to 54 encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence in which amino acid residues are substituted, deleted, inserted, and / or added A gene encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence having the identity of
  • the detection step detects the expression product using a probe molecule that specifically binds to the expression product of at least one gene selected from the group consisting of the genes (I) to (III)
  • the method according to [1] which is a step.
  • the expression product is a polypeptide encoded by any one of the genes (I) to (III), and the probe molecule specifically binds to the polypeptide
  • the method of [2] which is an antibody and/or an aptamer.
  • At least one gene selected from the group consisting of the genes (I) to (III) is at least one gene selected from the group consisting of the following genes (I') to (III') The method according to any one of [1] to [4], which is a gene.
  • At least one gene selected from the group consisting of the genes (I) to (III) is at least one gene selected from the group consisting of the following genes (I'') to (III'') The method according to any one of [1] to [5], which is a species gene.
  • At least one gene selected from the group consisting of the genes (I) to (III) is selected from the group consisting of the following genes (I''') to (III''') The method according to any one of [1] to [6], which is at least one gene.
  • a T cell evaluation reagent containing a probe molecule that specifically binds to an expression product containing at least one gene selected from the group consisting of the following genes (I) to (III)
  • a T cell evaluation reagent containing a probe molecule that specifically binds to an expression product containing at least one gene selected from the group consisting of the following genes (I) to (III)
  • the expression product is a polypeptide encoded by any one of the genes (I) to (III), and the probe molecule specifically binds to the polypeptide
  • the reagent of [8] which is an antibody and/or an aptamer.
  • At least one gene selected from the group consisting of the genes (I) to (III) is at least one gene selected from the group consisting of the following genes (I') to (III')
  • At least one gene selected from the group consisting of the genes (I) to (III) is at least one gene selected from the group consisting of the following genes (I'') to (III'')
  • At least one gene selected from the group consisting of the genes (I) to (III) is selected from the group consisting of the following genes (I''') to (III''')
  • [17] A method of treating or preventing cancer, comprising administering the pharmaceutical composition of [14] to a subject who has or is at risk of having cancer.
  • a method of treating or preventing cancer comprising administering T cells to a subject who has cancer or is at risk of having cancer, wherein the following (I) to (III) in the T cells ) detecting the expression of at least one gene selected from the group consisting of genes; an evaluation step of evaluating the quality of T cells using the expression of the gene as an index;
  • a method including (I) a gene encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence set forth in any one of SEQ ID NOs: 1-54 (II) one or more of the amino acid sequences set forth in any one of SEQ ID NOs: 1-54 70% or more of the amino acid sequence described in any one of gene (III) SEQ ID NOS: 1 to 54 encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence in which amino acid residues are substituted, deleted, inserted, and / or added A gene encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence having the identity of
  • a method for producing T cells comprising a detection step of detecting expression of at least one gene selected from the group consisting of the following genes (I) to (III) in the T cells; an evaluation step of evaluating the quality of T cells using the expression of the gene as an index;
  • a method of producing a T cell comprising: (I) a gene encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence set forth in any one of SEQ ID NOs: 1-54 (II) one or more of the amino acid sequences set forth in any one of SEQ ID NOs: 1-54 70% or more of the amino acid sequence described in any one of gene (III) SEQ ID NOS: 1 to 54 encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence in which amino acid residues are substituted, deleted, inserted, and / or added A gene encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence having the identity of
  • the present invention it is possible to provide a T cell evaluation method that can evaluate the quality of T cells using a new index, and a T cell evaluation reagent used for the method.
  • FIG. 3 is a scatter diagram obtained by performing principal component analysis (PCA) on all 800 types of secretome data in 24 types of T cell lines.
  • PCA principal component analysis
  • the method for evaluating T cells of the present invention comprises a detection step of detecting the expression of at least one gene selected from the group consisting of the following genes (I) to (III) in T cells; an evaluation step of evaluating the quality of T cells using the expression of the gene as an index; (hereinafter sometimes simply referred to as "the method of the present invention").
  • the T cell in the present invention means a cell expressing an antigen receptor called T cell receptor (TCR) on the surface, alpha beta ( ⁇ ) T cells and gamma delta ( ⁇ ) containing T cells.
  • TCR T cell receptor
  • T cells in the present invention include, for example, helper T cells, cytotoxic T cells, regulatory T cells, natural killer T cells, naive T cells, memory T cells (e.g., stem cell memory T cells (TSCM), central memory T cells). cells (TCM), effector memory T cells, etc.), antigen-stimulated memory T cells, or terminal effector T cells, combinations thereof, or subpopulations thereof.
  • helper T cells cytotoxic T cells
  • regulatory T cells e.g., regulatory T cells, natural killer T cells, naive T cells
  • memory T cells e.g., stem cell memory T cells (TSCM), central memory T cells).
  • TCM stem cell memory T cells
  • TCM central memory T cells
  • TCM central memory T cells
  • TCM central memory T cells
  • TCM central memory T cells
  • TCM central memory T cells
  • TCM central memory T cells
  • TCM central memory T cells
  • TCM central memory T cells
  • TCM central memory T cells
  • TCM central memory T cells
  • Helper T cells are CD4-positive cells, and are further classified into Th1 cells, Th2 cells, Th17 cells, etc. according to the cytokines they express (e.g., J Allergy Clin. Immunol., 135(3): 626-635, 2012).
  • Th1 cells include, for example, cells expressing IFN- ⁇ , IL-2, TNF- ⁇ , and the like.
  • Th2 cells include, for example, cells expressing IL-4, IL-5, IL-6, IL-10, IL-13, and the like.
  • Th17 cells include, for example, cells expressing IL-17 or IL-6.
  • Cytotoxic T cells are CD8-positive cells, and like helper T cells, are further classified into Tc1 cells, Tc2 cells, etc. according to the cytokines they express.
  • Tc1 cells include cells expressing IFN- ⁇ , IL-2, TNF- ⁇ , and the like.
  • Tc2 cells include cells that express IL-4, IL-5, IL-6, IL-10, IL-13, and the like.
  • Regulatory T cells preferably include, for example, CD4(+) CD25(+) FoxP3(+) cells.
  • Naive T cells include, for example, CD4 (+) CD45RA (+) CD62L (+) CCR7 (+) cells, CD8 (+) CD45RA (+) CD62L (+) CCR7 (+) cells, CD4 (+) CCR7 ( +)CD45RA(+)CD95(-)CD45RO(-) cells or CD8(+)CCR7(+)CD45RA(+)CD95(-)CD45RO(-) cells are preferred.
  • Stem cell memory T cells include, for example, CD4 (+) CD45RA (+) CD62L (+) CCR7 (+) CD95 (+) cells, CD8 (+) CD45RA (+) CD62L (+) CCR7 (+) CD95 (+) ) cells, CD4(+)CCR7(+)CD45RA(+)CD95(+)CD45RO(+) cells or CD8(+)CCR7(+)CD45RA(+)CD95(+)CD45RO(+) cells are preferred. be done.
  • Central memory T cells include, for example, CD4 (+) CD45RA (-) CD62L (+) CCR7 (+) CD95 (+) cells, CD8 (+) CD45RA (-) CD62L (+) CCR7 (+) CD95 (+) ) cells, CD4(+)CCR7(+)CD45RA(-)CD45RO(+) cells, CD8(+)CCR7(+)CD45RA(-)CD45RO(+) cells, and the like are preferable.
  • effector memory T cells include preferably CD4(+) CCR7(-) CD45RA(-) CD45RO(+) cells or CD8(+) CCR7(-) CD45RA(-) CD45RO(+) cells.
  • Terminal effector T cells preferably include, for example, CD4(+)CD45RA(+)CD62L(-) cells or CD8(+)CD45RA(+)CD62L(-) cells.
  • T cells differentiated from pluripotent stem cells such as induced pluripotent stem cells (iPS cells) and embryonic stem cells (ES cells); T cells differentiated from somatic stem cells such as hematopoietic stem cells; It may be a T cell.
  • pluripotent stem cells such as induced pluripotent stem cells (iPS cells) and embryonic stem cells (ES cells)
  • ES cells differentiated from somatic stem cells such as hematopoietic stem cells; It may be a T cell.
  • T cells are isolated from peripheral blood mononuclear cells (PBMC: Peripheral Blood Monoclear Cells) isolated from peripheral blood using conventionally known methods or commercially available kits. It can be isolated.
  • PBMC peripheral blood mononuclear Cells
  • T cells include T cells that have not been artificially genetically modified (hereinafter sometimes referred to as “unmodified T cells”), as well as artificial genes in the unmodified T cells. Also included are “genetically modified T cells” that have been modified.
  • artificial genetic modification includes modification of T cell functions by gene transfer to T cells or gene editing of T cells. The artificial genetic modification may be modification of the gene itself possessed by T cells, deletion of the gene itself possessed by T cells, or modification resulting from the introduction of a foreign gene. A combination of two or more types may also be used.
  • the method of artificial genetic modification includes conventionally known methods and methods based thereon, and is not particularly limited.
  • Gene introduction into T cells includes, for example, the gene itself (DNA, mRNA, miRNA, antagomir, ODN (oligodeoxyribonucleotide), etc.) that modifies the function of T cells, or a vector into which the gene is inserted (lentiviral vector , ⁇ - or ⁇ -retroviral vectors, adenoviral vectors, adeno-associated viral vectors, herpes viral vectors, equine encephalitis viral vectors, non-viral vectors such as transposon vector piggyBac (registered trademark) to T cells
  • Gene editing of T cells includes, for example, gene editing of T cells using site-specific nucleases (meganuclease, zinc finger nuclease, TALEN, PPR (Pentatricpeptide repeat), CRISPR-Cas, etc.) (genome editing).
  • Examples of the gene that modifies the function of T cells include proteins secreted from T cells; fusion proteins containing proteins expressed on the surface of T cells and at least one intracellular signaling domain; proteins expressed on the surface of T cells; Fusion proteins comprising at least one co-stimulatory domain and at least one intracellular signaling domain include, more specifically, cell surface enzymes, cell adhesion factors, receptors (e.g., chimeric antigen receptors), and these and subunits that make up the
  • Detection process (target gene)
  • the expression of at least one gene selected from the group consisting of genes (I) to (III) below is detected in T cells.
  • a gene encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence set forth in any one of SEQ ID NOs: 1-54 (II) one or more of the amino acid sequences set forth in any one of SEQ ID NOs: 1-54 70% or more of the amino acid sequence described in any one of gene (III) SEQ ID NOS: 1 to 54 encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence in which amino acid residues are substituted, deleted, inserted, and / or added
  • the gene (I), the gene (II), and the gene (III) are independently of each other. Two or more types may be used.
  • the polypeptide encoded by any one of the genes (I) to (III) is preferably contained in the T cell-derived secretome.
  • secretome refers to proteins that are secreted from cells or that are exposed outside the cells through cell membranes, and include embodiments in which all or part of these proteins are endogenous to cells.
  • secretomes that are secreted from T cells and present in the supernatant of cell culture medium are preferred from the viewpoint of being detectable by a method that is non-invasive to cells.
  • the gene whose expression is to be detected (hereinafter sometimes referred to as "target gene"), if derived from human, is typically "(I) any one of SEQ ID NOS: 1 to 54 A gene encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence described in .
  • Tables 1 to 3 below show the SEQ ID NO and GenBank Accession No. of each amino acid sequence for the amino acid sequences described in SEQ ID NOS: 1 to 54. (GenBank No.); SEQ ID NO of a typical nucleotide sequence of a gene encoding a polypeptide consisting of each amino acid sequence, its open reading frame (ORF position), and GenBank Accession No.
  • the present inventors have identified proteins that can be used as markers for quality evaluation of T cells by KeyMolnet analysis (KM Data) of high-quality T cells and low-quality T cells using a correlation search method.
  • KM Data KeyMolnet analysis
  • the present inventors analyzed the secretome (protein), in high-quality T cells and low-quality T cells, the PC1 score obtained by principal component analysis (PCA) for protein expression levels and the quality of T cells It was found that there is a high correlation with the PC1 score, and that the closer the absolute value of the principal component loading of the first principal component is to 1, the more the protein contributes to the quality of T cells.
  • PCA principal component analysis
  • secretomes whose expression level ratio (expression level ratio between cell groups with different cell quality) is small or large (i.e., the above When proteins with large differences in expression level were identified, these proteins had a high contribution rate to the first principal component (specifically, the absolute value of the principal component loading with respect to the first principal component of the expression level was 0 0.4 or more, preferably 0.8 or more).
  • the polypeptides consisting of the amino acid sequences shown in SEQ ID NOS: 1-54 and the genes consisting of the nucleotide sequences shown in SEQ ID NOS: 55-108, which are described in Tables 1 to 3, are included in the proteins thus selected.
  • the expression of a gene encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence represented by any one of SEQ ID NOs: 1 to 54, which contributes highly to the first principal component, is an index for evaluating the quality of T cells.
  • the gene described as "up” indicates that the protein corresponding to the polypeptide consisting of the amino acid sequence encoded by the gene corresponds to the average expression value and low quality of the protein in the high-quality T cell group by secretome analysis.
  • the expression level is significantly higher in high-quality T cells when compared with the average expression value of the protein in the T cell group, and the expression level increases in high-quality T cells.
  • the gene described as "down” indicates that the protein corresponding to the polypeptide consisting of the amino acid sequence encoded by the gene corresponds to the average expression value of the protein in the high-quality T cell group and the low-quality T cell group in the secretome analysis.
  • Low-quality T cells show significantly higher expression
  • high-quality T cells show decreased expression levels when compared to the average expression of the protein.
  • homologous genes e.g., counterpart genes in organisms other than humans
  • (I) a gene encoding a polypeptide comprising the amino acid sequence set forth in any one of SEQ ID NOs: 1 to 54
  • the target gene can also be the target gene.
  • the nucleotide sequence of a gene can be mutated in nature (that is, non-artificially) due to mutation thereof, etc., such natural mutants can also be used as the target gene in the present invention. can.
  • a person skilled in the art can modify the nucleotide sequence and modify the function, although it is different from the amino acid sequence that codes for it. Since proteins can also be prepared, such variants may also be used as the target gene.
  • amino acid sequence in which amino acid residues are substituted, deleted, inserted, and/or added means an amino acid sequence in which amino acid residues are substituted, deleted, inserted, or added, or It shows that the amino acid sequence is a combination of two or more of Further, “plurality” means, for example, 20, 19, 18, 17, 16, 15, 14, 13, 12, 11, 10, 9, 8, 7, 6, 5, 4, 3, or 2 is preferably an integer of, but not limited to.
  • One or more amino acid residues is preferably 1 to 10 amino acid residues, more preferably 1 to 5, still more preferably 1 to 3, particularly preferably 2 or less. is.
  • (IV) hybridizes under stringent conditions with the complementary strand of the nucleotide sequence encoding the amino acid sequence set forth in any one of SEQ ID NOS: 1 to 54 Also included are “nucleotide sequences”.
  • Hybridization reactions are typically performed under stringent conditions to isolate homologous genes.
  • stringent conditions means that the washing operation of the membrane after hybridization is carried out at a high temperature in a low-salt solution. 2 ⁇ SSC) in 0.5% (w/v) SDS solution at 60° C. for 20 minutes.
  • hybridization can be carried out, for example, according to the method described in the instructions attached to the known ECL direct DNA/RNA labeling/detection system (manufactured by GE Healthcare Bioscience).
  • ECL direct DNA/RNA labeling/detection system manufactured by GE Healthcare Bioscience.
  • these conditions are only examples, and the required stringency can be achieved by appropriately combining DNA concentration, DNA length, hybridization reaction time, and the like.
  • proteins encoded by homologous genes obtained by such methods usually have a high degree of identity with the amino acid sequence set forth in any one of SEQ ID NOS: 1-54. Therefore, in the embodiment of the target gene according to the present invention, "(III) encodes a polypeptide comprising an amino acid sequence having 70% or more identity with the amino acid sequence set forth in any one of SEQ ID NOs: 1 to 54 Also includes “genes”. Amino acid sequence identity can be determined, for example, using the BLASTP program (Altschul et al., J. Mol. Biol., 215, 1990, p. 403-410).
  • identity with the amino acid sequence set forth in any one of SEQ ID NOs: 1 to 54 is typically preferably 70% or more, more preferably 75% or more, 80% or more, 85% or more. % or more, 90% or more, 95% or more (eg, 96% or more, 97% or more, 98% or more, 99% or more).
  • the target gene is preferably at least one gene selected from the group consisting of the following genes (I') to (III') among the genes shown in Tables 1 to 3.
  • (I') according to any one of SEQ ID NOs: 4, 7, 8, 17, 20 and 38 (more preferably SEQ ID NOs: 4, 8, 17, 20 and 38; more preferably SEQ ID NOs: 4 and 17)
  • Gene (II') SEQ ID NO: 4, 7, 8, 17, 20 and 38 (more preferably SEQ ID NO: 4, 8, 17, 20 and 38; more preferably SEQ ID NO: 4 and A gene (III') encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence in which one or more amino acid residues are substituted, deleted, inserted, and/or added to the amino acid sequence according to any one of 17) the amino acid sequence according to any one of SEQ ID NOs: 4, 7, 8, 17, 20 and 38 (more preferably SEQ ID NOs: 4, 8, 17, 20 and 38; more preferably SEQ ID NOs: 4 and 17) and 70
  • detecting gene expression includes both detection of the presence or absence of gene expression and detection of the degree of expression.
  • the expression of the target gene is detected.
  • the gene expression level can be grasped as an absolute amount or as a relative amount. When grasping the relative amount, for example, it can be judged by comparing with the gene expression level of a prepared standard sample.
  • a "standard sample” refers to a sample for which it has been specified in advance whether or not the target gene is expressed, and if so, the amount of expression. For example, T cells that have been previously identified as having good or bad quality can be used as the standard sample.
  • “expression of a gene” means both transcription and translation of a gene. Therefore, “detection of gene expression” in the present invention includes detection at the transcription level (mRNA level) and detection at the translation level (protein level) (that is, detection of the polypeptide encoded by the gene). both are included.
  • splicing occurs in which introns in the pre-mRNA are removed and the exons before and after are recombined (splicing). In some cases, this produces different mature mRNAs. In turn, various proteins are translated thereby. Various mRNAs and proteins resulting from such splicing differences are called "splicing variants". Therefore, detection of gene expression in the present invention includes detection of the splicing variant as long as it is specifically recognized by the following probe molecule.
  • a known technique or a technique based thereon can be used as appropriate.
  • at least one gene selected from the group consisting of the genes (I) to (III) that is, the target gene
  • the expression product is detected using a probe molecule that
  • the expression product of the target gene is mRNA transcribed from the target gene (hereinafter sometimes referred to as "target polynucleotide").
  • the target polynucleotide also includes cDNA using the mRNA as a template.
  • Detection methods include, for example, Northern blotting, dot blotting, and RNase protection assay using oligonucleotide probes designed to hybridize to appropriate positions in the base sequence of the target polynucleotide as the probe molecule. , DNA microarray analysis, in situ hybridization, and the like to detect the target polynucleotide.
  • the oligonucleotide probe one labeled with a labeling substance is used, a signal corresponding to the labeling substance is detected, and the detected signal amount is the amount of the target polynucleotide (i.e., expression level of the target gene).
  • labeling substances at this time include FITC (fluorescein isothiocyanate), FAM (fluorescein amidite), DEAC (7-(diethylamino)coumarin), R6G (rhodamine 6G), Texas Red, Cy5, and BODIPY FL (trade name).
  • luminescence substances such as luminol, luciferin, and lucigenin.
  • the "signal” includes coloration (coloration), reflected light, luminescence, quenching, fluorescence, radiation from a radioactive isotope, and the like, and in addition to those that can be confirmed with the naked eye, depending on the type of signal It also includes those that can be confirmed by measuring methods and equipment.
  • oligonucleotide primers designed to sandwich appropriate positions in the target polynucleotide are used, PCR method, RT-PCR method, TRC (Transcription Reverse Transcription Concerned) method, NASBA (Nucleic Acid Sequence-Based Amplification) method, TMA (Transcription-Mediated Amplification) method, or the like may also be used to amplify and detect the target polynucleotide.
  • a signal (fluorescence) obtained by intercalating the obtained amplification product with a fluorescent dye e.g., ethidium bromide, SYBR Green (trade name), SYTO63 (trade name), etc.
  • a fluorescent dye e.g., ethidium bromide, SYBR Green (trade name), SYTO63 (trade name), etc.
  • the detected signal amount fluorescence intensity
  • detection may be performed in combination with the oligonucleotide probe (double dye probe method, etc.).
  • the amount of the target polynucleotide may be determined by directly subjecting a sample containing the target polynucleotide to a sequencer for analysis.
  • oligonucleotide probes and oligonucleotide primers can be designed by a person skilled in the art based on the sequence of the target polynucleotide by a known method or a method based thereon.
  • the length of the oligonucleotide probe and oligonucleotide primer are each independently preferably at least 15 bases, usually 15 to 100 bases, preferably 17 to 30 bases, more preferably 20-25 bases.
  • the oligonucleotide probes and oligonucleotide primers can be synthesized by, for example, a commercially available oligonucleotide synthesizer.
  • nucleotides deoxyribonucleotides and/or ribonucleotides
  • PNA polyamide nucleic acid
  • LNA locked nucleic acid
  • ENA registered trademark, 2'- O,4'-C-Ethylene-bridged nucleic acids
  • the expression product of the target gene is a polypeptide encoded by the target gene (hereinafter sometimes referred to as "target polypeptide"). More specifically, it is a polypeptide encoded by any one of the genes (I) to (III), that is, selected from the group consisting of the following polypeptides (i) to (iii) is a polypeptide that is (i) a polypeptide comprising the amino acid sequence set forth in any one of SEQ ID NOS: 1-54; (ii) one or more amino acid residues in the amino acid sequence set forth in any one of SEQ ID NOS: 1-54; is a substituted, deleted, inserted, and / or added amino acid sequence (iii) an amino acid sequence having 70% or more identity with the amino acid sequence set forth in any one of SEQ ID NOS: 1 to 54 A polypeptide comprising:
  • polypeptides (i) to (iii) are each independently one species alone, may be two or more.
  • polypeptides (i) to (iii) include polypeptides encoded by any one of the genes (I') to (III'), that is, the following (i' ) to (iii') are preferably selected from the group consisting of polypeptides.
  • polypeptides (ii′) according to any one of SEQ ID NOs: 4, 7, 8, 17, 20 and 38 (more preferably SEQ ID NOs: 4, 8, 17, 20 and 38; more preferably SEQ ID NOs: 4 and 17) Any of the polypeptides (ii′) SEQ ID NOs: 4, 7, 8, 17, 20 and 38 (more preferably SEQ ID NOs: 4, 8, 17, 20 and 38; more preferably SEQ ID NOs: 4 and 17) comprising an amino acid sequence or a polypeptide (iii') SEQ ID NOS: 4, 7, 8, 17, 20 and 38 (more preferably SEQ ID NOs: 4, 8, 17, 20 and 38; more preferably SEQ ID NOs: 4 and 17) having 70% or more identity with the amino acid sequence set forth in any one A polypeptide containing a sequence.
  • polypeptides (i') to (iii') each independently It may be one type alone or two or more types.
  • these target polypeptides to be detected are preferably the above secretomes (T cell-derived secretomes).
  • detection methods for detection at the translation level include detection using anti-polypeptide antibodies and/or aptamers, and detection using labeled amino acids.
  • Detection methods for detection at the translation level include, for example, antibodies that specifically bind to the target polypeptide (hereinafter sometimes referred to as “anti-polypeptide antibodies”) and/or aptamers (hereinafter , In some cases, simply referred to as "aptamer”), immune cell staining method, imaging cytometry, flow cytometry, ELISA (Enzyme-Linked Immuno Sorbent Assay) method, radioimmunoassay, immunoprecipitation method, immunoblotting (Western blotting method etc.), methods of detection using antibodies such as antibody arrays and in vivo imaging (immunological techniques); methods of detection using aptamers instead of the antibodies.
  • the immunological method uses an enzyme immunoassay device such as AIA-900 (manufactured by Tosoh Corporation) or a chemiluminescent enzyme immunoassay device such as AIA-CL2400 (manufactured by Tosoh Corporation) after preparing necessary reagents. can be done automatically.
  • AIA-900 manufactured by Tosoh Corporation
  • AIA-CL2400 manufactured by Tosoh Corporation
  • an “antibody” may be a polyclonal antibody, a monoclonal antibody, or a functional fragment of an antibody.
  • “Antibody” also includes all classes and subclasses of immunoglobulins.
  • a “functional fragment” of an antibody refers to a portion (partial fragment) of an antibody that specifically recognizes the polypeptide encoded by the target gene in the present invention. Specifically, Fab, Fab′, F(ab′) 2 , variable region fragment (Fv), disulfide-bonded Fv, single-chain Fv (scFv), sc(Fv) 2 , diabody, multispecific antibodies, short-chain antibodies, and polymers thereof.
  • the anti-polypeptide antibody according to the present invention is a polyclonal antibody
  • an immunized animal is immunized with an antigen (target polypeptide, its partial peptide, or cells expressing these, etc.), and the antiserum is obtained by conventional means ( Salting out, centrifugation, dialysis, column chromatography, etc.) can be appropriately purified and obtained.
  • Monoclonal antibodies can also be produced by the hybridoma method or recombinant DNA method.
  • the hybridoma method includes, for example, Kohler and Milstein's method (Kohler & Milstein, Nature, 256:495 (1975)), and the recombinant DNA method includes, for example, the DNA encoding the anti-polypeptide antibody. It is cloned from B cells or the like, incorporated into an appropriate vector, introduced into host cells (mammalian cell lines, E. coli, yeast cells, insect cells, plant cells, etc.), and the anti-polypeptide antibody is produced as a recombinant antibody. (For example, P. J. Delves, Antibody Production: Essential Techniques, 1997 WILEY; P. Shepherd and C. Dean Monoclonal Antibodies, 2000 OXFORD UNIVERSITY PRESS; Vandamme AM et al., Eur.J. Biochem. 192:767-775 (1990)).
  • the anti-polypeptide antibody and the aptamer are each labeled with a labeling substance, the signal corresponding to the labeling substance is detected, and the amount of the detected signal is calculated as the amount of the target polypeptide. (that is, the expression level of the target gene).
  • the labeling substance at this time is not particularly limited as long as it can bind to the anti-polypeptide antibody or aptamer and can be detected by a chemical or optical method.
  • fluorescent substances such as fluorescein isothiocyanate (FITC) and rhodamine isothiocyanate (RITC)
  • enzymes such as peroxidase, ⁇ -D-galactosidase, microperoxidase, horseradish peroxidase (HRP) and alkaline phosphatase, and radioactive substances.
  • the anti-polypeptide antibody and/or aptamer When the anti-polypeptide antibody and/or aptamer is used, a method of using a secondary antibody bound with the labeling substance, or a method of using a polymer binding the secondary antibody and the labeling substance. Indirect detection methods such as can also be used.
  • the "secondary antibody” is an antibody that exhibits specific binding to the anti-polypeptide antibody and/or aptamer.
  • an anti-rabbit IgG antibody can be used as the secondary antibody.
  • Labeled secondary antibodies that can be used for antibodies derived from various species such as rabbits, goats, and mice are commercially available. Antibodies can be selected and used.
  • protein G for example, derived from Streptococcus spp.
  • protein A for example, derived from Staphylococcus aureus
  • protein L derived from Peptostreptococcus magnus
  • Detection with labeled amino acids include, for example, a method of culturing T cells in a medium supplemented with a labeled amino acid and detecting a target polypeptide labeled with the labeled amino acid.
  • T cell labeling medium refers to a medium containing at least labeling amino acids for culturing and labeling T cells.
  • essential amino acids for T cell proliferation refers to amino acids essential for T cell proliferation, more specifically, valine, isoleucine, leucine, methionine, lysine, phenylalanine, tryptophan, threonine, histidine.
  • the T cell labeling medium contains a labeled amino acid in which the amino acid is labeled instead of at least one of the essential amino acids, that is, does not contain at least one of the essential amino acids and the essential amino acid that is not contained Contains labeled amino acids, where the amino acids are labeled amino acids.
  • "Containing no essential amino acids” means that the T cell labeling medium does not substantially contain the essential amino acids. More specifically, the content of the essential amino acids in the T cell labeling medium is is 1 ⁇ 10 ⁇ 3 mmol/L or less, preferably less than 1 ⁇ 10 ⁇ 4 mmol/L.
  • the essential amino acids excluded from the T cell labeling medium may be any one of the above or a combination of two or more of them. Among them, methionine is preferred from the viewpoint of efficient incorporation into the protein synthesis pathway.
  • the "labeled amino acid” refers to an essential amino acid partially modified while maintaining the structure of the essential amino acid, and detectable based on the modification.
  • the above-mentioned “detectable” includes those that can be directly confirmed by visual observation such as coloring (color development), quenching, reflected light, luminescence, and fluorescence, as well as those that can be confirmed by a specific measuring method or measuring device.
  • labeled amino acids examples include isotope-labeled amino acids in which some of the atoms of the amino acid are substituted with pulse stable isotopes (e.g., 2 H, 13 C, 15 N); Examples include structural analogs of amino acids modified by modifying groups such as groups, and corresponding to the essential amino acids, any one of them or a combination of two or more of them good.
  • the labeling amino acid contained in the T cell labeling medium instead of methionine may be, for example, one of the atoms constituting methionine.
  • HPG L-Homopropargylglycine
  • HOG L-homoallylglycine
  • the content of the labeled amino acids includes the T cell uptake efficiency, the culture efficiency, the T cell It can be determined as appropriate in consideration of the toxicity etc., and is not particularly limited. Preferably, it is 0.001 to 0.02 mmol/L. More specifically, for example, when the labeled amino acid is AHA, it is preferably 0.0005 to 0.03 mmol/L, more preferably 0.001 to 0.03 mmol/L. More preferably 0.002 to 0.03 mmol/L, even more preferably 0.005 to 0.02 mmol/L.
  • the cells tend to weaken or die, whereas when the content is less than the lower limit, the polypeptide labeled with the labeled amino acid is secreted or exposed outside the cell. As a result, the number of cells to be detected tends to decrease, and the detection accuracy of the polypeptide tends to decrease.
  • the T cell labeling medium further contains common ⁇ -chain family cytokines.
  • a "common ⁇ chain family cytokine” refers to a cytokine that acts via a receptor containing a common ⁇ chain ( ⁇ subunit). More specifically, interleukin 2 (IL-2), interleukin 4 (IL-4), interleukin 7 (IL-7), interleukin 9 (IL-9), interleukin 15 (IL-15) , and interleukin 21 (IL-21), any one of which may be used in combination.
  • interleukin 7, interleukin 15, interleukin 21, and combinations of two or more of these are more preferable from the viewpoint of better maintenance of cell survival and growth.
  • the content of the common ⁇ -chain family cytokine (when there are two or more common ⁇ -chain family cytokines, the total content thereof; the same shall apply hereinafter) is determined according to the properties of T cells, etc. Although it is not limited to this, it is preferably 1 to 1000 ng/mL, more preferably 5 to 100 ng/mL, and 5 to 20 ng/mL. It is even more preferable to have When the content of the common ⁇ -chain family cytokine exceeds the upper limit, the effect of containing the common ⁇ -chain family cytokine tends to decrease or cell proliferation tends to be inhibited. The number of cells that secrete or extracellularly expose a polypeptide labeled with a labeled amino acid tends to decrease, resulting in a decrease in the detection accuracy of the polypeptide.
  • the T cell labeling medium preferably does not contain serum or, if it does contain serum, is dialyzed serum from which the essential amino acids have been removed.
  • the T cell labeling medium may also contain cytoprotective additives such as serum albumin and ITS (insulin-transferrin-sodium selenite); scaffolding agents such as ECM (extracellular matrix) components.
  • T cell labeling media or their basal media are not particularly limited as long as they do not contain the desired essential amino acids, and are DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium), RPMI (Roswell Park Memorial Institute Medium), ⁇ MEM ( ⁇ -modified basal medium such as Eagle minimum essential medium); AIM V TM medium (manufactured by Thermo Fisher Scientific) which is a serum-free medium exclusively for T cells; PRIME-XV T cell Expansion XSFM (manufactured by Fujifilm Wako Pure Chemical) or a commercially available medium for T cells can be used as appropriate.
  • DMEM Disbecco's Modified Eagle Medium
  • RPMI Roswell Park Memorial Institute Medium
  • ⁇ MEM ⁇ -modified basal medium such as Eagle minimum essential medium
  • AIM V TM medium manufactured by Thermo Fisher Scientific
  • PRIME-XV T cell Expansion XSFM manufactured by Fujifilm Wako Pure Chemical
  • a commercially available medium for T cells
  • T cells are cultured in the T cell labeling medium.
  • the labeled amino acid is taken up by T cells, and a polypeptide labeled with the labeled amino acid (T cell-derived polypeptide) is secreted from the T cells or exposed outside the cells.
  • the culture method in the labeling step is not particularly limited, and known T cell proliferation culture conditions can be appropriately adopted, and the characteristics and concentration of T cells can be taken into consideration and adjusted as appropriate.
  • the culture temperature is 35 to 37.5° C., preferably 36 to 37° C.
  • the culture time is 2 to 48 hours, preferably 8 to 24 hours.
  • the culture apparatus for the labeling step is not particularly limited, and examples thereof include plates, dishes, columns, flasks, culture bags, and the like. Ejection means (sensors, valves, pumps, tanks, etc.) may also be provided.
  • the T cell-derived polypeptide that is labeled with the labeling amino acid and is secreted or exposed outside the cell is detected.
  • the detection step A may be performed simultaneously (in real time) with the labeling step.
  • a detection method in the detection step A a detection method suitable for the type of the labeled amino acid can be appropriately employed.
  • Such a detection method is not particularly limited, and a known method or a method based thereon can be appropriately employed.
  • the labeled amino acid is an isotope-labeled amino acid or a structural analogue of an amino acid
  • the medium after the labeling step or during the labeling step that is, during the culture
  • gas isotope ratio mass spectrometry By performing mass spectrometry such as infrared spectroscopy, liquid chromatography mass spectrometry (LC-MS/MS), a signal corresponding to the labeled amino acid is detected, and the amount of the detected signal is the amount of the target polypeptide (i.e. , expression level of the target gene).
  • the labeled amino acid when it is a structural analogue of an amino acid, it can be detected by staining the modified group specifically.
  • the modifying group is an azide group (such as AHA)
  • the azide group can be stained with a fluorescent reagent such as Click-iT TM Alexa Fluor 488 sDIBO Alkyne (manufactured by Thermo Fisher Scientific).
  • a fluorescent reagent such as Click-iT TM Alexa Fluor 488 sDIBO Alkyne (manufactured by Thermo Fisher Scientific).
  • a signal color development, fluorescence, etc.
  • the amount of the detected signal is the amount of the target polypeptide (i.e., the amount of the target gene). expression level).
  • detection methods for detection at the translation level include, for example, a method of recognizing and detecting the sugar chain of the target polypeptide. Such methods include, for example, methods using commercially available reagents such as Click-iT TM (manufactured by Thermo Fisher Scientific). The detection method for detection at the translation level may be used in combination with other methods as appropriate.
  • detection of the expression of the gene is preferably detection at the translation level (detection of the target polypeptide) from the viewpoint of convenience. Methods that detect polypeptides are preferred.
  • the quality of T cells is evaluated using the presence or absence or the expression level of the target gene detected in the detection step as an index.
  • the quality of T cells to be evaluated in the present invention includes proliferative ability and cancer cytotoxic activity.
  • the method of the present invention is preferable as a method for evaluating the proliferative ability of T cells. More specifically, the term "proliferative ability" indicates the ability to activate T cells and increase cells having cytotoxic activity in vitro or in vivo by TCR stimulation or antigen stimulation.
  • T cells can be confirmed, for example, by stimulating the TCR of T cells with TCR-stimulating magnetic beads by the method shown in the Examples below and comparing the cell count before stimulation to the cell count 14 days after stimulation. can, but is not limited to.
  • the evaluation criteria for the quality of the T cells may be appropriately set according to the purpose, and are not particularly limited.
  • the quality of the T cells may be evaluated as good (or bad), and if the expression level of the target gene above a certain threshold is detected, the quality of the T cells is good (or bad). can be evaluated.
  • the expression levels of multiple target genes may be combined to assess T cell quality. For example, when the expression level of the gene described as "up” in Tables 1 to 3 is high and the expression level of the gene described as "down” in Tables 1 to 3 is low, the quality of the T cells is considered to be good. For example, the higher the expression levels of multiple genes described as "up” in Tables 1 to 3, the better the quality of T cells can be evaluated.
  • the quality of T cells may be evaluated according to the expression level of the target gene. For example, a certain value or more, or the expression level of the target gene relative to the expression level of the target gene detected in a standard sample such as T cells that have been specified in advance to have high (or low) proliferative ability If the signal amount is 4 SD or more, 3 SD or more, or 2 SD or more of the average value of , the proliferative ability is high (or low), that is, the quality may be evaluated as good (or bad).
  • the T cell evaluation reagent of the present invention is a reagent (composition) for use in the T cell evaluation method of the present invention, and is at least one gene selected from the group consisting of the following genes (I) to (III).
  • a reagent containing a probe molecule that specifically binds to an expression product of a gene of a species hereinafter sometimes simply referred to as "the reagent of the present invention”).
  • the genes (I) to (III) and the expression products of the genes are as described in the method of the present invention, including preferred embodiments thereof.
  • probe molecules related to the reagent of the present invention include oligonucleotide probes, oligonucleotide primers, anti-polypeptide antibodies, and aptamers mentioned in the method of the present invention described above. in the method of the present invention.
  • the probe molecule may be one of these or a combination of two or more of them. Among them, the anti-polypeptide antibody and/or the aptamer are preferable, and the anti-polypeptide antibody is more preferable.
  • the reagent of the present invention may be liquid or solid such as powder. Additional ingredients may be included.
  • the kit for evaluating T cells of the present invention is a kit for use in the method of evaluating T cells of the present invention, and contains at least one gene selected from the group consisting of genes (I) to (III). It is a kit comprising a probe molecule that specifically binds to an expression product (hereinafter sometimes simply referred to as "the kit of the present invention").
  • the probe molecule according to the kit of the present invention is preferably the reagent of the present invention.
  • the kit of the present invention also contains a buffer, a solution for dilution or suspension such as physiological saline; a reagent for extracting and/or purifying DNA or protein; a blocking agent; a chelating agent; The labeling substance; the fluorescent dye; reagents necessary for the detection step; reagents such as pH adjusters; standard samples; instructions for use;
  • the present invention provides high-quality T cells obtained by the above T-cell evaluation method and pharmaceutical compositions containing the high-quality T cells as active ingredients.
  • the pharmaceutical composition containing T cells as an active ingredient of the present invention can be used to treat cancer patients.
  • the pharmaceutical composition of the present invention can be produced by a method commonly used in the field of formulation technology, such as the method described in the Japanese Pharmacopoeia.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may contain pharmaceutically acceptable additives. Examples of such additives include cell culture media, physiological saline, and suitable buffers (eg, phosphate buffers).
  • the pharmaceutical composition of the present invention can be produced by suspending T cells in physiological saline, an appropriate buffer (eg, phosphate buffer), or the like. It is preferable to contain, for example, 1 ⁇ 10 7 cells or more in a single dose so as to achieve the desired therapeutic effect. It is more preferably 1 ⁇ 10 8 or more, still more preferably 1 ⁇ 10 9 or more.
  • the content of cells can be appropriately adjusted in consideration of the sex, age, weight, condition of the affected area, condition of cells, etc. of the subject.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may contain dimethylsulfoxide (DMSO), serum albumin, and the like for the purpose of protecting cells.
  • DMSO dimethylsulfoxide
  • Antibiotics and the like may be added for the purpose of preventing bacterial contamination, and vitamins, cytokines, and the like may be included for the purpose of promoting activation and differentiation of cells.
  • other pharmaceutically acceptable components e.g., carriers, excipients, disintegrants, buffers, emulsifiers, suspending agents, soothing agents, stabilizers, preservatives, preservatives, physiological saline, etc. It may be included in the pharmaceutical composition of the present invention.
  • a pharmaceutical composition containing the T cells of the present invention as an active ingredient can be cryopreserved.
  • the temperature is not particularly limited as long as it is suitable for cell preservation. Examples include -20°C, -80°C and -120 to -196°C.
  • cells can be stored in suitable containers such as vials. Manipulations to minimize the risk of cell damage during freezing and thawing of T cells are well known to those of skill in the art.
  • T cells are collected from the culture medium, washed with buffer or culture medium, counted, concentrated by centrifugation, etc., and placed in a freezing medium (e.g., containing 10% DMSO). culture solution), and cryopreserved.
  • T cells can be made into a single lot by combining cells cultured in multiple culture vessels.
  • the pharmaceutical composition containing T cells of the present invention contains, for example, 5 ⁇ 10 4 to 9 ⁇ 10 10 T cells per container such as a vial. It can be changed according to the route or the like.
  • Examples of administration routes of the pharmaceutical composition containing the T cells of the present invention include infusion, intratumoral injection, arterial injection, portal vein injection, intraperitoneal administration, and the like.
  • the administration route is not limited to this as long as the T cells, which are the active ingredients in the pharmaceutical composition of the present invention, are delivered to the affected area.
  • Dosage schedules can be single doses or multiple doses. For the period of multiple administrations, for example, a method of repeating administration once every 2 to 4 weeks, a method of repeating administration once every six months to a year, or the like can be adopted.
  • the sex, age, body weight, disease state, etc. of the target patient can be taken into consideration.
  • cancer patients from whom T cells are collected or The non-cancer patient preferably has the same HLA type as the cancer patient to whom the pharmaceutical composition of the present invention is administered for cancer treatment. Moreover, it is more preferable that the cancer patient to whom the pharmaceutical composition of the present invention is administered and the cancer patient from whom T cells are collected are the same person. That is, cancer treatment by autologous transplantation is more preferable than allogeneic transplantation.
  • the pharmaceutical composition of the present invention is used for prevention or treatment of cancer.
  • Cancers include ovarian cancer, hepatoblastoma, hepatocellular carcinoma, gastric cancer, esophageal cancer, pancreatic cancer, renal cell carcinoma, breast cancer, malignant melanoma, non-small cell lung cancer, cervical cancer, and glioblastoma. including, but not limited to, blastoma, prostate cancer, neuroblastoma, chronic lymphocytic leukemia, papillary thyroid cancer, colorectal cancer, and B-cell non-Hodgkin's lymphoma.
  • the timing of administration of the pharmaceutical composition and cancer vaccine of the present invention is not limited,
  • the pharmaceutical composition of the present invention and cancer vaccine may be administered to the subject at the same time or at different times.
  • the pharmaceutical composition of the present invention and cancer vaccine may be formulated separately, or may be a combination drug in which both are mixed.
  • the dosage of the pharmaceutical composition and cancer vaccine of the present invention may conform to the dosage used clinically, and can be appropriately selected depending on the disease, administration subject, administration route, combination with drugs, and the like.
  • the present invention provides a method for treating or preventing cancer, comprising administering T cells to a subject who has cancer or is at risk of having cancer, wherein the T cells have the following (I A detection step of detecting expression of at least one gene selected from the group consisting of genes from ) to (III); an evaluation step of evaluating the quality of T cells using the expression of the gene as an index; A method ((I) a gene encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence according to any one of SEQ ID NOS: 1-54, comprising , gene (III) encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence in which one or more amino acid residues are substituted, deleted, inserted, and / or added amino acid according to any one of SEQ ID NOS: 1 to 54 A gene encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence having greater than 70% identity with the sequence.).
  • a subject in the present invention is a vertebrate.
  • the vertebrate is a mammal.
  • Such mammals include, but are not limited to, farm animals (eg, cows), sport animals, pet/companion animals (eg, cats, dogs, and horses), primates, mice, and rats.
  • the mammal is human.
  • the present invention provides a method for producing T cells, comprising a detection step of detecting the expression of at least one gene selected from the group consisting of the following genes (I) to (III) in the T cells; an evaluation step of evaluating the quality of T cells using the expression of the gene as an index;
  • a method for producing T cells ((I) a gene encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence according to any one of SEQ ID NOS: 1-54 (II) according to any one of SEQ ID NOS: 1-54
  • Any one of gene (III) SEQ ID NOS: 1 to 54 encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence in which one or more amino acid residues are substituted, deleted, inserted, and/or added in the amino acid sequence of A gene encoding a polypeptide comprising an amino acid sequence having 70% or more identity with the amino acid sequence described in .).
  • T cells 1. Evaluation of quality (proliferation ability) of T cells (1) Thaw 14 types of T cell lines shown in Table 7 below and prepare medium A (15% (w/v) fetal bovine serum (FBS, BioWest) in a 96-well plate. , 5 ng/mL interleukin 7 (IL-7), and 5 ng/mL interleukin 15 (IL-15) added to ⁇ MEM ( ⁇ modified Eagle minimal essential medium)) at 1 ⁇ 10 6 cells/well, respectively. sown.
  • medium A 15% (w/v) fetal bovine serum (FBS, BioWest) in a 96-well plate.
  • IL-7 interleukin 7
  • IL-15 interleukin 15
  • T cell receptor (TCR) stimulation Magnetic beads (Dynabeads Human T-Activator CD3/CD28 for T Cell Expansion and Activation (manufactured by Thermo Fisher Scientific) are used to stimulate the TCR of the seeded T cells. , and cultured for 14 days under conditions of 5% CO 2 and 37° C. while replacing the medium with medium A as appropriate.
  • TTL cytotoxic T cells
  • iPSC-T iPS cell-derived CTL
  • the classified groups are also shown in Table 7.
  • T cells of the same strain as the T cells classified into high-quality T cells (good: 7 types) and low-quality T cells (bad: 7 types) in 1 (3) above were stimulated using TCR-stimulating magnetic beads in the same manner as in 1 (1) to (2) above, and the medium was replaced with medium A at 5% CO 2 and 37°C. It was cultured under the conditions of
  • the genes (sequence data) decoded in (4) and (3) were mapped to the human genome sequence using TopHat2 (JOHNS HOPKINS University) and Bowtie2 (JOHNS HOPKINS University).
  • TopHat2 JOHNS HOPKINS University
  • Bowtie2 JOHNS HOPKINS University
  • BUILD GRCh38 published by NCBI (National Center for Biological Information) was used.
  • the expression level for each gene was determined in units of FPKM (fragments per kilobase of exon per million reads mapped) from the number of reads of each gene decoded by Cufflinks (University of Washington).
  • TCR TCR unstimulated
  • TCR TCR was stimulated using TCR-stimulating magnetic beads in the same manner as in (1) to (2) of 1 above, and cultured under the conditions of 5% CO 2 and 37° C. while exchanging the medium with medium A as appropriate.
  • Pathway analysis Transcriptome analysis results obtained in 2 (4) above (expression level for each mapped gene) and secretome analysis results obtained in 3 (5) above (quantitative value of the identified protein ) are integrated, and the six groups (A to F) classified in (3) of 1 above are compared in a round-robin manner (15 ways in total), and KeyMolnet analysis using the correlation search method (KM Data Co., Ltd. ), the signal transduction pathway to which the protein (secretome) identified in the secretome analysis belongs (signal with a large score calculated by the following formula transduction pathway; in the following formula, the molecule belonging to the pathway indicates a protein belonging to the signal transduction pathway).
  • the score is a value indicating the overall degree of involvement calculated by the following formula based on a statistical method (hypergeometric distribution), and the higher the value, the more significant the signal transduction pathway.
  • the secretome analysis results quantitative value (expression level) of the identified protein obtained in (5) of 3 above were compared between the groups A protein (secretome) with an expression level ratio of 0.67 or less or 1.5 or more and a T-test p value of 0.05 or less was extracted.
  • proteins extracted in (3) From the proteins extracted in (3), cytoskeleton, G proteins, and proteins involved in RNA/DNA synthesis and microtubule/membrane transport were excluded, and other proteins were selected.
  • the proteins (abbreviations), amino acid sequences, and genes shown in Tables 1 to 3 above are used for the selected proteins, their amino acid sequences, and genes encoding polypeptides comprising the same amino acid sequences, respectively.
  • the signal transduction pathway that appears frequently is the main signal transduction pathway that is caused by cell quality (proliferative ability).
  • T cells (E/F) derived from the same iPS cell clone it is possible to extract signal transduction pathways related to differences in cell quality caused by the culture system. Therefore, it can be said that the selected proteins are proteins (secretome) related to the signal transduction pathway whose expression varies between cells with different qualities.
  • T cells-2 (1) In addition to the 14 types of T cells shown in Table 7 above, the 10 types of T cells shown in Table 24 below are measured for the proliferation rate in the same manner as in (1) to (3) of 1 above. bottom. For all 24 types of T cells, T cells with a proliferation rate of 20 or more (T cells of cell Nos. 1 to 12 in Table 24) are classified as "high-quality T cells", and the same proliferation rate is less than 20. The T cells (T cells of cell Nos. 13 to 24 in Table 11) were each classified as "low-quality T cells”. Table 24 also shows the proliferation fold of each cell.
  • TCR TCR unstimulated
  • TCR TCR was stimulated using TCR-stimulating magnetic beads in the same manner as in (2), and cultured under conditions of 5% CO 2 and 37° C. while exchanging the medium with medium A as appropriate.
  • the proteins extracted in (5) and (4) were subjected to amino acid sequence determination, protein identification, and quantification in the same manner as in 3 (4) to (5) above.
  • PCA Principal component analysis
  • proteins with a large principal component loading value of the first principal component are expressed in cells with a high PC1 score, that is, low-quality T cells, and proteins with a small principal component loading value of the first principal component are expressed in It was found to be expressed in cells with low PC1 score, ie high quality T cells.
  • the principal component loading of the first principal component was determined for the expression levels of the proteins selected in (4) of the pathway analysis in 4 above.
  • the obtained main component loading of the first main component is also shown in Tables 1 to 3 above.
  • Tables 1 to 3 in the proteins selected in the pathway analysis, the absolute value of the principal component loading for the first principal component obtained is all 0.4 or more, and 0.8 for most proteins. That was it. Therefore, it can be said that the proteins shown in Tables 1 to 3 above can be used as markers for evaluating the quality (proliferative potential) of T cells.
  • EEF1A1 Human EEF1A1 (Elongation factor 1-alpha 1) ELISA Kit (manufactured by MyBioSource) TPI1 (amino acid sequence number 7): Human TPI1 (Triosephosphate isomerase) ELISA Kit (manufactured by MyBioSource) ENO1 (amino acid sequence number 8): Human NNE (Non-Neuronal Enolase) ELISA Kit (manufactured by MyBioSource) TKT (amino acid sequence number 17): Human Transketolase, TK ELISA Kit (manufactured by MyBioSource) G6PD (amino acid sequence number 38): Human G6PD (Glucose 6 Phosphate Dehydrogenase)
  • EEF1A1 amino acid SEQ ID NO: 4
  • TKT amino acid SEQ ID NO: 17
  • G6PD amino acid SEQ ID NO: 38
  • EEF1A1, ENO1, TKT, G6PD, and ALDOC have absolute values of correlation coefficients of 0.6 or more, and these five proteins are particularly preferred embodiments of markers capable of evaluating the quality of T cells. It can be said.
  • EEF1A1 and TKT have a correlation coefficient absolute value of 0.8 or more, and can be said to be particularly preferred embodiments of markers that can evaluate the quality of T cells.
  • the present invention it is possible to provide a T cell evaluation method that can evaluate the quality of T cells using a new index, and a T cell evaluation reagent used for the method.

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Abstract

T細胞における、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、 前記遺伝子の発現を指標としてT細胞の品質を評価する評価工程と、 を含む、T細胞の評価方法。 (I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子 (II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子 (III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。

Description

T細胞を評価する方法及びT細胞を評価するための組成物
 本発明は、T細胞を評価する方法、T細胞を評価するための組成物、T細胞の評価方法により得られた高品質T細胞を含有する医薬組成物及び該医薬組成物を用いる、がんの予防または治療方法等に関する。
 悪性腫瘍等のがんや慢性難治性感染症などの疾患に対する新しい治療方法として、当該疾患に関連する抗原特異的な細胞傷害性T細胞(CTL:Cytotoxic T Lymphocyte)を用いた細胞免疫療法が知られている。近年では、がん治療に有効な手段として、患者からT細胞(未改変T細胞)を採取し、がん攻撃能力が高まるように遺伝子改変して遺伝子改変T細胞とした後、当該遺伝子改変T細胞を元の患者に戻してがんを治療するがん免疫療法が期待を集めている。
 また、患者から採取したT細胞では、細胞疲弊が起こりやすかったり、増殖培養(又は拡大培養)が困難であるといった課題を有していることから、用いることができる細胞数に制限のないiPS細胞に由来するT細胞を利用した、がん免疫療法の開発も進められている。例えば、特許文献1には、CD4CD8T細胞を、インターロイキン7及びTCR(T細胞受容体)活性化剤を含む培地で培養し、CD8αβCTLを誘導する方法が記載されている。
 iPS細胞に由来するT細胞では、iPS細胞株や培養条件等によって品質が異なるため、得られたT細胞においては、その品質を評価して前記がん免疫療法に適したものを選択する必要がある。また、得られた遺伝子改変T細胞についても、その品質を評価して目的の遺伝子改変T細胞として適したものを選択する必要がある。このようなT細胞の品質評価項目としては、具体的に、例えば、T細胞の各段階で発現する分化マーカーの発現解析、TCR刺激後に産生されるサイトカイン量の解析、増殖能、細胞傷害活性、動物実験でのがん細胞抑制活性等が挙げられる。T細胞の品質は、これらの項目によって総合的に評価されるが、かかる評価は、煩雑であったり長期間を要する場合が多い。さらに、評価にかかるコストも高額なことから、より簡便かつ短期間でT細胞の品質を評価できる方法が求められている。
 このようなT細胞の品質評価方法としては、例えば、PD-1やlag3等の発現量とT細胞の疲弊化との間に関係があることが見出されているため(非特許文献1)、これらのタンパク質をT細胞の疲弊化マーカーとして、その発現量によってT細胞の疲弊化を評価する方法が挙げられる。
国際公開第2018/135646号
Daniel L.Barberら,Nature,439,2006年,p.682-687
 in vitroにおいて、上記の疲弊化マーカーは、長期間培養によりかなりT細胞の疲弊化が進んでから発現する。そのため、iPS細胞から分化誘導した直後のT細胞等、比較的若いT細胞の品質を評価するためには不向きであることを本発明者らは見出した。従来、このように比較的若いT細胞の品質も評価できるマーカーは特定されていない。
 本発明は、前記従来技術の有する課題に鑑みてなされたものであり、新たな指標によって比較的若いT細胞の品質も評価できるT細胞の評価方法、及びそれに用いるT細胞評価用試薬を提供することを目的とする。
 本発明者らは前記課題を解決すべく鋭意検討を重ねた結果、増殖能が高いT細胞(高品質T細胞)及び増殖能が比較的低いT細胞(低品質T細胞)についてセクレトーム(secretome)解析及びトランスクリプトーム(transcriptome)解析を行なった。これらの解析で得られたデータを用い、前記高品質T細胞及び前記低品質T細胞において、相互関係検索法を用いたKeyMolnet解析(KMデータ社)により、遺伝子の発現量の差が大きく、かつ、T細胞の品質(増殖能)に関連する可能性の高いシグナル伝達経路を特定した。さらに、セクレトーム解析データについて、前記高品質T細胞及び前記低品質T細胞における主成分解析(PCA)を行なったところ、T細胞の品質(増殖能)と特定のタンパク質(セクレトーム)の発現量との間に、特定の関係があることを見出した。より具体的には、上記PCAで第一主成分の主成分負荷量の絶対値が1に近い遺伝子ほど、T細胞の品質に寄与することを見出した。かかる知見より、上記で特定したシグナル伝達経路に属するタンパク質の中からさらに、セクレトームであって、その発現量比(細胞品質が異なる細胞群間での発現量比)の値が小さい、又は大きくなる(すなわち、前記発現量の差が大きい)タンパク質を特定したところ、これらのタンパク質は、上記の第一主成分の主成分負荷量の絶対値が1に近いものであることが確認された。したがって、当該タンパク質のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子をT細胞の品質評価用のマーカーとし、その発現を指標とすることによって、T細胞の品質を評価することができる。さらに、これら遺伝子は、T細胞のTCR刺激回数の少ない比較的初期に発現する遺伝子であることから、その発現を指標とすることによって、比較的若いT細胞の品質も評価できることを見出し、本発明を完成させるに至った。
 すなわち、本発明の態様は以下のとおりである。
 [1] T細胞における、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
 前記遺伝子の発現を指標としてT細胞の品質を評価する評価工程と、
を含む、T細胞の評価方法。
(I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
 [2] 前記検出工程が、前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を用いて前記発現産物を検出する工程である、[1]に記載の方法。
 [3] 前記発現産物が、前記(I)~(III)の遺伝子のうちのいずれか1つにコードされるポリペプチドであり、かつ、前記プローブ分子が、前記ポリペプチドに特異的に結合する抗体及び/又はアプタマーである、[2]に記載の方法。
 [4] 前記評価工程が、前記遺伝子の発現を指標としてT細胞の増殖能を評価する工程である、[1]~[3]のいずれか一項に記載の方法。
 [5] 前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子が、下記(I’)~(III’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である、[1]~[4]のいずれか一項に記載の方法。
(I’)配列番号4、7、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II’)配列番号4、7、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III’)配列番号4、7、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
 [6] 前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子が、下記(I’’)~(III’’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である、[1]~[5]のいずれか一項に記載の方法。
(I’’)配列番号4、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II’’)配列番号4、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III’’)配列番号4、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
 [7] 前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子が、下記(I’’’)~(III’’’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である、[1]~[6]のいずれか一項に記載の方法。
(I’’’)配列番号4及び17のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II’’’)配列番号4及び17のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III’’’)配列番号4及び17のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
 [8] [2]~[7]のいずれか一項に記載の方法に用いるための試薬であり、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を含有する、T細胞評価用試薬。
(I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
 [9] 前記発現産物が、前記(I)~(III)の遺伝子のうちのいずれか1つにコードされるポリペプチドであり、かつ、前記プローブ分子が、前記ポリペプチドに特異的に結合する抗体及び/又はアプタマーである、[8]に記載の試薬。
 [10] 前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子が、下記(I’)~(III’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である、[8]又は[9]に記載の試薬。
(I’)配列番号4、7、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II’)配列番号4、7、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III’)配列番号4、7、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
 [11] 前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子が、下記(I’’)~(III’’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である、[8]~[10]のいずれか一項に記載の試薬。
(I’’)配列番号4、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II’’)配列番号4、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III’’)配列番号4、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
 [12] 前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子が、下記(I’’’)~(III’’’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である、[8]~[11]のいずれか一項に記載の試薬。
(I’’’)配列番号4及び17のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II’’’)配列番号4及び17のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III’’’)配列番号4及び17のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
[13][1]~[7]のいずれかに記載のT細胞の評価方法により得られた高品質T細胞。
[14][13]に記載の高品質T細胞を含有する医薬組成物。
[15] がんの予防又は治療に使用するための[14]に記載の医薬組成物。
[16][14]に記載の医薬組成物を用いる、がんの予防または治療方法。
[17]がんを有するかまたはがんを有する危険性のある被験者に、[14]に記載の医薬組成物を投与することを含む、がんを治療または予防する方法。
[18]
 がんを有するかまたはがんを有する危険性のある被験者に、T細胞を投与することを含む、がんを治療または予防する方法であって、該T細胞における、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
 前記遺伝子の発現を指標としてT細胞の品質を評価する評価工程と、
を含む、方法。
(I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
[19]T細胞の製造方法であって、該T細胞における、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
 前記遺伝子の発現を指標としてT細胞の品質を評価する評価工程と、
を含む、T細胞の製造方法。
(I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
 
 本発明によれば、新たな指標によってT細胞の品質を評価できるT細胞の評価方法、及びそれに用いるT細胞評価用試薬を提供することが可能となる。
T細胞株24種類における、全800種のセクレトームのデータについて主成分分析(PCA)を行なって得られた散布図である。
 以下、本発明をその好適な実施形態に即して詳細に説明する。
 <T細胞の評価方法>
 本発明のT細胞の評価方法は、
 T細胞における、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
 前記遺伝子の発現を指標としてT細胞の品質を評価する評価工程と、
を含む方法(以下、場合により、単に「本発明の方法」という)である。
(I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
 [T細胞]
  本発明におけるT細胞とは、表面にT細胞受容体(T  cell  receptor、TCR)と称される抗原受容体を発現している細胞を意味し、アルファベータ(αβ)T細胞およびガンマデルタ(γδ)T細胞を含む。
  本発明におけるT細胞は、例えば、ヘルパーT細胞、細胞傷害性T細胞、制御性T細胞、ナチュラルキラーT細胞、ナイーブT細胞、メモリーT細胞(例えば、ステムセルメモリーT細胞(TSCM)、セントラルメモリーT細胞(TCM))、エフェクターメモリーT細胞等)、抗原刺激されたメモリーT細胞、又はターミナルエフェクターT細胞、それらの組み合わせ、またはそれらの亜集団を含むが、これらに限定されることはない。
  ヘルパーT細胞はCD4陽性細胞であり、更に発現するサイトカインによりTh1細胞、Th2細胞及びTh17細胞等に分類される(例えば、J Allergy Clin. Immunol., 135(3): 626-635,2012)。
  Th1細胞としては、例えば、IFN-γ、IL-2又はTNF-α等を発現する細胞等が挙げられる。Th2細胞としては、例えば、IL-4、IL-5、IL-6、IL-10又はIL-13等を発現する細胞等が挙げられる。Th17細胞としては、例えば、IL-17又はIL-6等を発現する細胞等が挙げられる。
  細胞傷害性T細胞は、CD8陽性細胞であり、ヘルパーT細胞同様に、更に発現するサイトカインによりTc1細胞及びTc2細胞等に分類される。
  Tc1細胞としては、例えば、IFN-γ、IL-2又はTNF-α等を発現する細胞等が挙げられる。Tc2細胞としては、例えば、IL-4、IL-5、IL-6、IL-10、IL-13等を発現する細胞等が挙げられる。
  制御性T細胞としては、例えば、CD4(+)CD25(+)FoxP3(+)細胞が好ましく挙げられる。
  ナイーブT細胞としては、例えば、CD4(+)CD45RA(+)CD62L(+)CCR7(+)細胞、CD8(+)CD45RA(+)CD62L(+)CCR7(+)細胞、CD4(+)CCR7(+)CD45RA(+)CD95(-)CD45RO(-)細胞又はCD8(+)CCR7(+)CD45RA(+)CD95(-)CD45RO(-)細胞等が好ましく挙げられる。
ステムセルメモリーT細胞としては、例えば、CD4(+)CD45RA(+)CD62L(+)CCR7(+)CD95(+)細胞、CD8(+)CD45RA(+)CD62L(+)CCR7(+)CD95(+)細胞、CD4(+)CCR7(+)CD45RA(+)CD95(+)CD45RO(+)細胞又はCD8(+)CCR7(+)CD45RA(+)CD95(+)CD45RO(+)細胞等が好ましく挙げられる。
  セントラルメモリーT細胞としては、例えば、CD4(+)CD45RA(-)CD62L(+)CCR7(+)CD95(+)細胞、CD8(+)CD45RA(-)CD62L(+)CCR7(+)CD95(+)細胞、CD4(+)CCR7(+)CD45RA(-)CD45RO(+)細胞又はCD8(+)CCR7(+)CD45RA(-)CD45RO(+)細胞等が好ましく挙げられる。
  エフェクターメモリーT細胞としては、例えば、CD4(+)CCR7(-)CD45RA(-)CD45RO(+)細胞又はCD8(+)CCR7(-)CD45RA(-)CD45RO(+)細胞等が好ましく挙げられる。
  ターミナルエフェクターT細胞としては、例えば、CD4(+)CD45RA(+)CD62L(-)細胞又はCD8(+)CD45RA(+)CD62L(-)細胞等が好ましく挙げられる。
 本発明において、T細胞の由来としては特に制限はなく、動物由来であっても、人由来であってもよく、健常者由来のT細胞であってもよいし、患者(例えば、免疫機能が低下している人又は動物や、悪性腫瘍、感染症又は自己免疫疾患を患っている人又は動物)由来のT細胞であってもよい。さらには、人工多能性幹細胞(iPS細胞)、胚性幹細胞(ES細胞)等の多能性幹細胞から分化誘導したT細胞;造血幹細胞等の体性幹細胞から分化誘導したT細胞;株化したT細胞であってもよい。
 人から採取されたT細胞の場合には、例えば、末梢血から分離された末梢血単核細胞(PBMC:Peripheral Blood Mononuclear Cells)より、従来公知の方法や市販のキット等を用いてT細胞を単離することができる。
 また、本発明において、「T細胞」には、人為的な遺伝子改変がなされていないT細胞(以下、場合により「未改変T細胞」という)の他、前記未改変T細胞に人為的な遺伝子改変がなされた「遺伝子改変T細胞」も含む。なお、本発明において、「人為的な遺伝子改変」には、T細胞への遺伝子導入又はT細胞の遺伝子編集によりT細胞の機能を改変することを含む。前記人為的な遺伝子改変としては、T細胞が有する遺伝子そのものの改変であっても、T細胞が有する遺伝子そのものの欠損であっても、外来の遺伝子が導入された改変であっても、これらの2種以上を組み合わせたものであってもよい。
 前記人為的な遺伝子改変の方法としては、従来公知の方法やそれに準じた方法が挙げられ、特に限定されない。T細胞への遺伝子導入としては、例えば、T細胞の機能を改変させる遺伝子そのもの(DNA、mRNA、miRNA、アンタゴmir、ODN(オリゴデオキシリボヌクレオチド)等)、又は当該遺伝子を挿入したベクター(レンチウイルスベクター、γ-又はα-レトロウイルスベクター、アデノウイルスベクター、アデノ随伴ウイルスベクター、ヘルペスウイルスベクター、ウマ脳炎ウイルスベクター等のウイルスベクター、トランスポゾンベクターであるpiggyBac(登録商標)の非ウイルスベクター)のT細胞への導入が挙げられ、T細胞の遺伝子編集としては、例えば、部位特異的ヌクレアーゼ(メガヌクレアーゼ、ジンクフィンガーヌクレアーゼ、TALEN、PPR(Pentatricopeptide repeat)、CRISPR-Cas等)を用いたT細胞の遺伝子の編集(ゲノム編集)が挙げられる。本発明において、前記人為的な遺伝子改変の方法としては、これらの1種単独であっても2種以上を組み合わせたものであってもよい。
 前記T細胞の機能を改変させる遺伝子としては、例えば、T細胞より分泌されるタンパク質;T細胞表面に発現するタンパク質及び少なくとも1つの細胞内シグナリングドメインを含む融合タンパク質;T細胞表面に発現するタンパク質、少なくとも1つの共刺激ドメイン、及び少なくとも1つの細胞内シグナリングドメインを含む融合タンパク質が挙げられ、より具体的には、細胞表面酵素、細胞接着因子、受容体(例えば、キメラ抗原受容体)、及びこれらを構成するサブユニットが挙げられる。
 [検出工程]
 (標的遺伝子)
 本発明の方法に係る検出工程においては、T細胞における、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現を検出する。
(I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
 ここで、前記(I)~(III)の遺伝子からなる群において、(I)の遺伝子、(II)の遺伝子、及び(III)の遺伝子としては、それぞれ独立に、1種単独であっても2種以上であってもよい。
 前記(I)~(III)の遺伝子のうちのいずれか1つにコードされるポリペプチドは、T細胞由来のセクレトーム(secretome)に含まれることが好ましい。本発明において、「セクレトーム」とは、細胞から分泌される又は細胞膜の中から細胞外に露出されるタンパク質を示し、これらタンパク質の全部又は一部が細胞に内在する態様も含む。これらのセクレトームの中でも、細胞に非侵襲的な方法で検出可能な観点から、T細胞から分泌され、かつ、細胞培養液の上清中に存在する分泌タンパク質であることが好ましい。
 本発明において、発現が検出される遺伝子(以下、場合により「標的遺伝子」という)は、ヒト由来のものであれば、典型的には、「(I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子」である。下記の表1~3に、配列番号1~54に記載のアミノ酸配列について、各アミノ酸配列の配列番号及びGenBank Accession No.(GenBank No.);各アミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子の典型的なヌクレオチド配列の配列番号とそのオープンリーディングフレーム(ORF位置)、及びGenBank Accession No.(GenBank No.);各アミノ酸配列からなるポリペプチドが対応するタンパク質の略称(タンパク質略称)を示す。さらに、下記の実施例の主成分分析(PCA)により得られた各タンパク質の発現量の、第一主成分の主成分負荷量(principal component loading)も合わせて示す。また、下記の表4~6に、表1~3に記載の各タンパク質略称について、正式名(フルネーム)及び存在する場合には別名を示す。
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 本発明者らは、T細胞の品質評価用のマーカーとして利用することが可能なタンパク質として、相互関係検索法を用いた高品質T細胞及び低品質T細胞のKeyMolnet解析(KMデータ社)により、細胞品質が異なる細胞群間で発現量の差が大きい遺伝子がコードするタンパク質が属するシグナル伝達経路を特定した。また、本発明者らは、セクレトーム(タンパク質)の解析により、高品質T細胞及び低品質T細胞において、タンパク質の発現量についての主成分解析(PCA)によって得られるPC1スコアとT細胞の品質とPC1スコアとの間には高い関連性があり、第一主成分の主成分負荷量の絶対値が1に近いタンパク質ほど、T細胞の品質に寄与することを見出した。かかる知見より、上記で特定したシグナル伝達経路に属するタンパク質の中からさらに、セクレトームであって、その発現量比(細胞品質が異なる細胞群間での発現量比)が小さい又は大きい(すなわち、前記発現量の差が大きい)タンパク質を特定したところ、これらタンパク質は、第一主成分への寄与率が高い(具体的には、発現量の第一主成分に対する主成分負荷量の絶対値が0.4以上、好ましくは0.8以上である)タンパク質であることが確認された。表1~3に記載の、配列番号1~54で示されるアミノ酸配列からなるポリペプチド及び配列番号55~108で示されるヌクレオチド配列からなる遺伝子は、それぞれ、このように選出されたタンパク質に含まれるアミノ酸配列及び前記タンパク質をコードする遺伝子の典型的ヌクレオチド配列である。よって、これらの前記第一主成分への寄与率が高い、配列番号1~54のいずれか1つで示されるアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子の発現は、T細胞の品質評価の指標とすることができる。表1~3中、「up」と記載の遺伝子は、その遺伝子がコードするアミノ酸配列からなるポリペプチドが対応するタンパク質が、セクレトーム解析で高品質T細胞群における当該タンパク質の発現平均値と低品質T細胞群における当該タンパク質の発現平均値とを比較したときに高品質T細胞で発現量が有意に高いものであり、高品質T細胞で発現量が増加する。他方、「down」と記載の遺伝子は、その遺伝子がコードするアミノ酸配列からなるポリペプチドが対応するタンパク質が、セクレトーム解析で高品質T細胞群における当該タンパク質の発現平均値と低品質T細胞群における当該タンパク質の発現の平均値とを比較したときに低品質T細胞で発現が有意に高いものであり、高品質T細胞で発現量が減少する。
 本発明においては、前記「(I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子」の相同遺伝子(例えば、ヒト以外の生物におけるカウンターパート遺伝子)を前記標的遺伝子とすることもできる。また、遺伝子のヌクレオチド配列は、その変異などにより、自然界において(すなわち、非人工的に)変異し得ることから、本発明においては、このような天然の変異体も、前記標的遺伝子とすることができる。さらに、現在の技術水準においては、当業者であれば、例えば、前記(I)の遺伝子情報が得られた場合、そのヌクレオチド配列を改変し、そのコードするアミノ酸配列とは異なるが、機能改変したタンパク質を調製することもできるため、このような改変体も、前記標的遺伝子としてよい。
 したがって、本発明に係る標的遺伝子の態様には、「(II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が、置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子」も含まれる。ここで、「アミノ酸残基が、置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列」とは、アミノ酸残基が、置換、欠失、挿入、若しくは付加されたアミノ酸配列、又は、これらの2種以上の組み合わせがなされたアミノ酸配列であることを示す。また、「複数個」とは、例えば、20、19、18、17、16、15、14、13、12、11、10、9、8、7、6、5、4、3、又は2個の整数であることが好ましいが、これに制限されない。1若しくは複数個のアミノ酸残基とは、好ましくはアミノ酸残基が1個以上10個以下、より好ましくは1個以上5個以下、さらに好ましくは1個以上3個以下、特に好ましくは2個以下である。
 さらに、現在の技術水準においては、当業者であれば、例えば、前記(I)の遺伝子情報が得られた場合、そのヌクレオチド配列に基づいて、ハイブリダイゼーション技術(Southern,E.M.,J.Mol.Biol.,98:503-517,1975)や、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)技術(Saiki,R.K.,et al.Science,230:1350-1354,1985、Saiki,R.K.et al.Science,239:487-491,1988)等により、他の生物や細胞から相同遺伝子を取得することが可能である。
 したがって、本発明に係る標的遺伝子の態様には、「(IV)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列の相補鎖とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列」も含まれる。相同遺伝子を単離するためには、通常、ストリンジェントな条件下でハイブリダイゼーション反応を行なう。「ストリンジェントな条件」とは、ハイブリダイゼーション後のメンブレンの洗浄操作を、高温下、低塩濃度溶液中で行なうことを示し、かかる条件としては、例えば、30mMクエン酸三ナトリウム及び300mM塩化ナトリウム(2×SSC)を含有する、0.5%(w/v)SDS溶液中で60℃、20分間の洗浄条件が挙げられる。また、ハイブリダイゼーションは、例えば、公知であるECLダイレクトDNA/RNAラベリング・検出システム(GEヘルスケア バイオサイエンス株式会社製)に添付の使用説明書に記載の方法にしたがって実施することができる。ハイブリダイゼーションの条件が厳しくなるほど、高い相同性を有するDNAの単離を期待し得る。ただし、これらの条件は例示であり、DNAの濃度、DNAの長さ、ハイブリダイゼーションの反応時間等を適宜組み合わせることにより、必要な厳密性(ストリンジェンシー)を実現することが可能である。
 さらに、例えばこのような方法にて取得された相同遺伝子がコードするタンパク質は、通常、配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と高い同一性を有する。したがって、本発明に係る標的遺伝子の態様には、「(III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子」も含まれる。アミノ酸配列の同一性は、例えば、BLASTPのプログラム(Altschulら,J.Mol.Biol.,215,1990年、p.403-410)を用いて決定することができる。また、配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列との同一性は、典型的には、70%以上であることが好ましく、より好ましくは、75%以上、80%以上、85%以上、90%以上、95%以上(例えば、96%以上、97%以上、98%以上、99%以上)である。
 本発明においては、好ましくは、標的遺伝子は、表1~3に記載の遺伝子のうち、下記(I’)~(III’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である。
(I’)配列番号4、7、8、17、20及び38(より好ましくは配列番号4、8、17、20及び38;さらに好ましくは配列番号4及び17)のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II’)配列番号4、7、8、17、20及び38(より好ましくは配列番号4、8、17、20及び38;さらに好ましくは配列番号4及び17)のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III’)配列番号4、7、8、17、20及び38(より好ましくは配列番号4、8、17、20及び38;さらに好ましくは配列番号4及び17)のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
ここで、前記(I’)~(III’)の遺伝子からなる群において、(I’)の遺伝子、(II’)の遺伝子、及び(III’)の遺伝子としては、それぞれ独立に、1種単独であっても2種以上であってもよい。
 (遺伝子の発現の検出)
 本発明において、「遺伝子の発現を検出する」とは、遺伝子の発現の有無の検出及び発現の程度の検出の双方を含む意であり、本発明においては、前記標的遺伝子の発現を検出する。遺伝子の発現量は、絶対量として又は相対量として把握することができる。相対量を把握する場合には、例えば、用意した標準試料の遺伝子の発現量と比較して判断することができる。「標準試料」とは、標的遺伝子を発現しているか否か、又は発現している場合にはその量が事前に特定されている試料を示す。例えば、品質が良い又は悪いことが事前に特定されているT細胞を前記標準試料とすることができる。
 本発明において、「遺伝子の発現」とは、遺伝子の転写及び翻訳の双方を含む意である。したがって、本発明における「遺伝子の発現の検出」には、転写レベル(mRNAレベル)での検出、及び翻訳レベル(タンパク質レベル)での検出(すなわち、前記遺伝子にコードされるポリペプチドの検出)の双方が含まれる。
 また、真核細胞では、遺伝子の転写過程で、mRNA前駆体中のイントロンを除去し、前後のエキソンを再結合する反応(スプライシング(splicing))が生じるが、エキソンの再結合に多様性が生じる場合があり、これにより様々な成熟mRNAが生産される。ひいては、それにより様々なタンパク質が翻訳される。このようなスプライシングの違いにより生じる多様なmRNAやタンパク質を「スプライシングバリアント(splicing variant)」という。したがって、本発明における遺伝子の発現の検出には、下記のプローブ分子に特異的に認識される限り、当該スプライシングバリアントの検出も含まれる。
 本発明における遺伝子の発現の検出には、適宜公知の手法又はそれに準じた手法を用いることができる。中でも、本発明の方法に係る検出工程としては、前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子(すなわち、前記標的遺伝子)の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を用いて前記発現産物を検出することが好ましい。
 〔転写レベルでの検出(標的ポリヌクレオチドの検出)〕
 転写レベルでの検出において、前記標的遺伝子の発現産物は、当該標的遺伝子から転写されたmRNA(以下、場合により「標的ポリヌクレオチド」という)である。前記標的ポリヌクレオチドには、前記mRNAを鋳型とするcDNAも含む。この場合の検出方法としては、例えば、前記プローブ分子として、前記標的ポリヌクレオチドの塩基配列中の適切な位置にハイブリダイズするように設計したオリゴヌクレオチドプローブを用い、ノーザンブロッティング、ドットブロット、RNaseプロテクションアッセイ、DNAマイクロアレイ解析法、in situハイブリダイゼーション法等によって、前記標的ポリヌクレオチドを検出する方法が挙げられる。
 この場合には、例えば、前記オリゴヌクレオチドプローブとして、標識物質によって標識されたものを用い、当該標識物質に応じたシグナルを検出して、検出されたシグナル量を前記標的ポリヌクレオチドの量(すなわち、標的遺伝子の発現量)とすることができる。このときの標識物質としては、例えば、FITC(フルオレセインイソチオシアネート)、FAM(フルオレセインアミダイト)、DEAC(7-(ジエチルアミノ)クマリン)、R6G(ローダミン6G)、Texas Red、Cy5、BODIPY FL(商品名)等の蛍光物質;β-D-グルコシダ―ゼ、ルシフェラーゼ、HRP(ホースラディッシュペルオキシダーゼ)等の酵素;H、14C、32P、35S、123I等の放射性同位体;ビオチン、ストレプトアビジン等の親和性物質;ルミノール、ルシフェリン、ルシゲニン等の発光物質が挙げられる。
 なお、本発明において、「シグナル」には、呈色(発色)、反射光、発光、消光、蛍光、放射性同位体による放射線等が含まれ、肉眼で確認できるものの他、シグナルの種類に応じた測定方法・装置によって確認できるものも含まれる。
 また、例えば、前記プローブ分子として、前記標的ポリヌクレオチド中の適切な位置を挟み込むように設計したオリゴヌクレオチドプライマーを用い、PCR法、RT-PCR法、TRC(Transcription Reverse transcription Concerted)法、NASBA(Nucleic Acid Sequence-Based Amplification)法、TMA(Transcription-Mediated Amplification)法等によって、前記標的ポリヌクレオチドを増幅して検出する方法も挙げられる。
 この場合には、例えば、得られた増幅産物に蛍光色素(例えば、エチジウムブロマイド、SYBR Green(商品名)、SYTO63(商品名)等)をインターカレートして得られたシグナル(蛍光)を検出して、検出されたシグナル量(蛍光強度)を、前記標的ポリヌクレオチドの量(すなわち、標的遺伝子の発現量)とすることができる。また、前記オリゴヌクレオチドプローブと組み合わせて検出してもよい(ダブルダイプローブ法等)。さらに、前記標的ポリヌクレオチドを含む試料を直接シーケンサーに供して解析することにより、前記標的ポリヌクレオチドの量としてもよい。
 このようなオリゴヌクレオチドプローブ及びオリゴヌクレオチドプライマーは、当業者であれば、前記標的ポリヌクレオチドの配列に基づいて、公知の方法又はそれに準じた方法で設計することができる。また、前記オリゴヌクレオチドプローブ及びオリゴヌクレオチドプライマーの長さは、それぞれ独立に、少なくとも15塩基であることが好ましく、通常は、15~100塩基であり、好ましくは17~30塩基であり、より好ましくは20~25塩基である。前記オリゴヌクレオチドプローブ及びオリゴヌクレオチドプライマーは、例えば、市販のオリゴヌクレオチド合成機により合成することができる。また、天然のヌクレオチド(デオキシリボヌクレオチド及び/又はリボヌクレオチド)のみから構成されていなくともよく、例えば、PNA(polyamide nucleic acid)、LNA(登録商標、locked nucleic acid)、ENA(登録商標、2’-O,4’-C-Ethylene-bridged nucleic acids)等の非天然型のヌクレオチドにてその一部又は全部が構成されていてもよい。
 〔翻訳レベルでの検出(標的ポリペプチドの検出)〕
 翻訳レベルでの検出において、前記標的遺伝子の発現産物は、当該標的遺伝子にコードされるポリペプチド(以下、場合により「標的ポリペプチド」という)である。より具体的には、前記(I)~(III)の遺伝子のうちのいずれか1つにコードされるポリペプチドであり、すなわち、下記(i)~(iii)のポリペプチドからなる群から選択されるポリペプチドである。
(i)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチド
(ii)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチド
(iii)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチド。
 前記(i)~(iii)のポリペプチドからなる群において、(i)のポリペプチド、(ii)のポリペプチド、及び(iii)のポリペプチドとしては、それぞれ独立に、1種単独であっても2種以上であってもよい。
 これらの中でも、前記(i)~(iii)のポリペプチドとしては、前記(I’)~(III’)の遺伝子のうちのいずれか1つにコードされるポリペプチド、すなわち、下記(i’)~(iii’)のポリペプチドからなる群から選択されるポリペプチドであることが好ましい。
(i’)配列番号4、7、8、17、20及び38(より好ましくは配列番号4、8、17、20及び38;さらに好ましくは配列番号4及び17)のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチド
(ii’)配列番号4、7、8、17、20及び38(より好ましくは配列番号4、8、17、20及び38;さらに好ましくは配列番号4及び17)のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチド
(iii’)配列番号4、7、8、17、20及び38(より好ましくは配列番号4、8、17、20及び38;さらに好ましくは配列番号4及び17)のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチド。
 前記(i’)~(iii’)のポリペプチドからなる群においても、(i’)のポリペプチド、(ii’)のポリペプチド、及び(iii’)のポリペプチドとしては、それぞれ独立に、1種単独であっても2種以上であってもよい。
 また、本発明において、検出対象となるこれらの標的ポリペプチドとしては、上記のセクレトーム(T細胞由来セクレトーム)であることが好ましい。
 翻訳レベルでの検出の場合の検出方法の一例としては、抗ポリペプチド抗体及び/又はアプタマーによる検出や、標識アミノ酸による検出が挙げられる。
 〈抗ポリペプチド抗体及び/又はアプタマーによる検出〉
 翻訳レベルでの検出の場合の検出方法としては、例えば、前記プローブ分子として、前記標的ポリペプチドに特異的に結合する抗体(以下、場合により「抗ポリペプチド抗体」という)及び/又はアプタマー(以下、場合により、単に「アプタマー」という)を用い、免疫細胞染色法、イメージングサイトメトリー、フローサイトメトリー、ELISA(Enzyme-Linked Immuno Sorbent Assay)法、ラジオイムノアッセイ、免疫沈降法、イムノブロッティング(ウェスタンブロット法等)、抗体アレイ、in vivo イメージング等の抗体を用いて検出する方法(免疫学的手法);前記抗体に代えてアプタマーを用いて検出する方法が挙げられる。また、前記免疫学的手法は、必要な試薬を調製した上で、AIA-900(東ソー社製)等のエンザイムイムノアッセイ装置やAIA-CL2400(東ソー社製)等の化学発光酵素免疫測定装置を用いて自動的に行なってもよい。
 本発明において、「抗体」は、ポリクローナル抗体であっても、モノクローナル抗体であってもよく、また、抗体の機能的断片であってもよい。また、「抗体」には、免疫グロブリンの全てのクラス及びサブクラスが含まれる。抗体の「機能的断片」とは、抗体の一部分(部分断片)であって、本発明においては、前記標的遺伝子にコードされるポリペプチドを特異的に認識するものを示す。具体的には、Fab、Fab’、F(ab’)、可変領域断片(Fv)、ジスルフィド結合Fv、一本鎖Fv(scFv)、sc(Fv)、ダイアボディー(Diabody)、多特異性抗体、短鎖抗体、及びこれらの重合体等が挙げられる。
 本発明に係る抗ポリペプチド抗体は、ポリクローナル抗体であれば、抗原(標的ポリペプチド、その部分ペプチド、又はこれらを発現する細胞等)で免疫動物を免疫し、その抗血清から、従来の手段(塩析、遠心分離、透析、カラムクロマトグラフィー等)によって、適宜精製して取得することができる。また、モノクローナル抗体は、ハイブリドーマ法や組換えDNA法によって作製することができる。ハイブリドーマ法としては、例えば、コーラー及びミルスタインの方法(Kohler&Milstein,Nature,256:495(1975))が挙げられ、組換えDNA法としては、例えば、前記抗ポリペプチド抗体をコードするDNAをハイブリドーマやB細胞等からクローニングし、適当なベクターに組み込んで、これを宿主細胞(哺乳類細胞株、大腸菌、酵母細胞、昆虫細胞、植物細胞等)に導入し、前記抗ポリペプチド抗体を組換え抗体として産生させる手法が挙げられる(例えば、P.J.Delves,Antibody Production:Essential Techniques,1997 WILEY;P.Shepherd and C.Dean Monoclonal Antibodies,2000 OXFORD UNIVERSITY PRESS;Vandamme A.M.et al.,Eur.J.Biochem.192:767-775(1990))。
 この場合には、前記抗ポリペプチド抗体及びアプタマーとして、それぞれ、標識物質によって標識されたものを用い、当該標識物質に応じたシグナルを検出して、検出されたシグナル量を前記標的ポリペプチドの量(すなわち、標的遺伝子の発現量)とすることができる。このときの標識物質としては、前記抗ポリペプチド抗体又はアプタマーに結合することができ、化学的又は光学的方法で検出できるものであれば特に制限されることはなく、例えば、フィコエリスリン(PE)、フルオレセインイソチオシアネート(FITC)、ローダミンイソチオシアネート(RITC)等の蛍光物質や、ペルオキシダーゼ、β-D-ガラクトシダーゼ、マイクロペルオキシダーゼ、ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP)、アルカリホスファターゼ等の酵素、放射性物質が挙げられる。
 また、前記抗ポリペプチド抗体及び/又はアプタマーを用いる場合には、前記標識物質を結合させた二次抗体を利用する方法や、二次抗体と前記標識物質とを結合させたポリマーを利用する方法などの間接的検出方法を利用することもできる。ここで、「二次抗体」とは、前記抗ポリペプチド抗体及び/又はアプタマーに特異的な結合性を示す抗体である。例えば、前記抗ポリペプチド抗体をウサギ抗体として調製した場合には、二次抗体として抗ウサギIgG抗体を使用することができる。ウサギ、ヤギ、マウスなどの様々な生物種に由来する抗体に対して、使用可能な標識二次抗体が市販されており、用いる抗ポリペプチド抗体の由来する生物種に応じて、適切な二次抗体を選択し、使用することができる。また、二次抗体に代えて、標識物質を結合させたプロテインG(例えば、Streptococcus属菌由来)、プロテインA(例えば、Staphylococcus aureus由来)、プロテインL(Peptostreptococcus magnus由来)等を用いることも可能である。
 〈標識アミノ酸による検出〉
 翻訳レベルでの検出の場合の検出方法としては、他にも例えば、標識アミノ酸を添加した培地でT細胞を培養し、前記標識アミノ酸で標識された標的ポリペプチドを検出する方法が挙げられる。このような方法としては、
 少なくとも1種のT細胞増殖用必須アミノ酸に代えてそのアミノ酸が標識された標識アミノ酸を含有し、かつ、共通γ鎖ファミリーサイトカインを含有するT細胞標識用培地でT細胞を培養する標識工程と、
 前記標識アミノ酸で標識されたT細胞由来ポリペプチドを検出する検出工程(以下、場合により「検出工程A」ともいう)と、
を含む方法が好ましい。
 ここで、「T細胞標識用培地」とは、T細胞を培養して標識するための標識アミノ酸を少なくとも含有する培地のことを示す。また、「T細胞増殖用必須アミノ酸(以下、場合により単に「必須アミノ酸」という)」とは、T細胞が増殖するために必須のアミノ酸を示し、より具体的には、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、リジン、フェニルアラニン、トリプトファン、スレオニン、ヒスチジンである。
 前記T細胞標識用培地は、前記必須アミノ酸の少なくとも1種に代えてそのアミノ酸が標識された標識アミノ酸を含有する、すなわち、前記必須アミノ酸の少なくとも1種を含有せず、かつ、当該含有されない必須アミノ酸が標識されたアミノ酸である標識アミノ酸を含有する。「必須アミノ酸を含有しない」とは、前記T細胞標識用培地中に前記必須アミノ酸を実質的に含有しないことをいい、より具体的には、当該必須アミノ酸の含有量がT細胞標識用培地中に1×10-3mmol/L以下であることをいい、1×10-4mmol/L未満であることが好ましい。前記T細胞標識用培地から除かれる(すなわち、前記T細胞標識用培地に実質的に含有されない)必須アミノ酸としては、前記のいずれか1種であっても、2種以上の組み合わせであってもよいが、中でも、タンパク質合成経路への効率的な取り込みの観点から、メチオニンが好ましい。
 前記「標識アミノ酸」とは、前記必須アミノ酸の構造を維持したままでその一部が修飾され、その修飾に基づいて検出可能であるものを示す。前記「検出可能」には、呈色(発色)、消光、反射光、発光、蛍光等の目視で直接的に確認できるものの他、特定の測定方法や測定装置によって確認できることを含む。
 このような標識アミノ酸としては、例えば、アミノ酸の原子の一部をパルス安定同位体(例えば、H、13C、15N)に置換した同位体標識アミノ酸;アミノ酸の一部がアジド基、アルキン基等の修飾基によって修飾されたアミノ酸の構造的類似体(analog)が挙げられ、前記必須アミノ酸に対応して、これらのいずれか1種であっても、2種以上の組み合わせであってもよい。
 例えば、前記T細胞標識用培地が、前記必須アミノ酸のうちのメチオニンを含有しない場合、メチオニンに代えて前記T細胞標識用培地に含有される標識アミノ酸としては、例えば、メチオニンを構成する原子の一部を前記安定同位体に置換した同位体標識メチオニンであるH標識メチオニン、13C標識メチオニン、15N標識メチオニン;メチオニンの構造的類似体であるL-アジドホモアラニン(AHA:L-Azidohomoalanine)、L-ホモプロパルギルグリシン(HPG:L-Homopropargylglycine)、L-ホモアリルグリシン(HAG:L-Homoallylglycine)が挙げられ、これらのいずれか1種であっても、2種以上の組み合わせであってもよい。
 前記T細胞標識用培地において、前記標識アミノ酸の含有量(標識アミノ酸が2種以上である場合にはそれらの合計含有量、以下同じ)としては、T細胞の取り込み効率や培養効率、同T細胞への毒性等を考慮して適宜決定することができ、特に制限されないが、例えば、0.0001~0.1mmol/Lの範囲が挙げられ、0.001~0.05mmol/Lであることが好ましく、0.001~0.02mmol/Lであることがより好ましい。より具体的に、例えば、前記標識アミノ酸がAHAである場合には、0.0005~0.03mmol/Lであることが好ましく、0.001~0.03mmol/Lであることがより好ましく、0.002~0.03mmol/Lであることがさらに好ましく、0.005~0.02mmol/Lであることがさらにより好ましい。前記標識アミノ酸の含有量が前記上限を超えると、細胞が弱ったり死滅し易くなる傾向にあり、他方、前記下限未満であると、前記標識アミノ酸で標識されたポリペプチドを分泌又は細胞外に露出する細胞数が少なくなり、ポリペプチドの検出精度が低下する傾向にある。
 前記T細胞標識用培地は、共通γ鎖ファミリーサイトカインをさらに含有する。これを含有することにより、前記標識アミノ酸で標識されたポリペプチドを発現する細胞を高効率で得ることが可能となる。「共通γ鎖ファミリーサイトカイン」とは、共通のγ鎖(common γ chain:γサブユニット)を含む受容体を介して作用するサイトカインを示す。より具体的には、インターロイキン2(IL-2)、インターロイキン4(IL-4)、インターロイキン7(IL-7)、インターロイキン9(IL-9)、インターロイキン15(IL-15)、及びインターロイキン21(IL-21)が挙げられ、これらのいずれか1種であっても、2種以上の組み合わせであってもよい。中でも、細胞の生存及び増殖をより維持する観点からは、インターロイキン7、インターロイキン15、インターロイキン21、及びこれらの2種以上の組み合わせがより好ましい。
 前記T細胞標識用培地において、前記共通γ鎖ファミリーサイトカインの含有量(共通γ鎖ファミリーサイトカインが2種以上である場合にはそれらの合計含有量、以下同じ)としては、T細胞の性状等を考慮して適宜決定することができるため、これに限定されるものではないが、1~1000ng/mLであることが好ましく、5~100ng/mLであることがより好ましく、5~20ng/mLであることがさらに好ましい。前記共通γ鎖ファミリーサイトカインの含有量が前記上限を超えると、共通γ鎖ファミリーサイトカインを含有させることの効果が低下したり細胞増殖を阻害する傾向にあり、他方、前記下限未満であると、前記標識アミノ酸で標識されたポリペプチドを分泌又は細胞外に露出する細胞数が少なくなり、ポリペプチドの検出精度が低下する傾向にある。
 前記T細胞標識用培地としては、前記必須アミノ酸を除くため、血清を含有しないか、含有する場合には前記必須アミノ酸が除かれた透析血清であることが好ましい。また、前記T細胞標識用培地としては、他に、血清アルブミンやITS(インスリン-トランスフェリン-亜セレン酸ナトリウム)などの細胞保護添加剤;ECM(細胞外基質)成分等の足場剤等を含有していてもよい。これらのT細胞標識用培地又はその基礎培地としては、目的の必須アミノ酸を含有しない限り特に制限されず、DMEM(ダルベッコ改変イーグル培地)、RPMI(ロズウェルパーク記念研究所培地)、αMEM(α改変型イーグル最小必須培地)等の基礎培地;T細胞専用の無血清培地であるAIM VTM培地(Thermo Fisher Scientific社製);PRIME-XV T cell Expansion XSFM(富士フイルム和光純薬社製)等の公知や市販のT細胞用の培地を適宜採用することができる。
 前記標識工程では、前記T細胞標識用培地でT細胞を培養する。これにより、前記標識アミノ酸をT細胞に取り込ませ、T細胞から前記標識アミノ酸で標識されたポリペプチド(T細胞由来ポリペプチド)を分泌又は細胞外に露出させる。前記標識工程における培養方法としては、特に制限されず、公知のT細胞の増殖培養条件を適宜採用することができ、また、T細胞の性状や濃度等を考慮して適宜調整することができるが、例えば、培養温度35~37.5℃、好ましくは36~37℃において、培養時間2~48時間、好ましくは8~24時間の条件が挙げられる。前記標識工程の培養装置としては、特に制限されず、例えば、プレート、ディッシュ、カラム、フラスコ、培養バッグ等が挙げられ、前記T細胞標識用培地等を供給するための供給手段や排出するための排出手段(センサ、バルブ、ポンプ、タンク等)をさらに備えていてもよい。
 前記検出工程Aでは、前記標識アミノ酸で標識され、分泌又は細胞外に露出されたT細胞由来ポリペプチドを検出する。前記検出工程Aとしては、前記標識工程と同時(リアルタイム)で行なってもよい。前記検出工程Aにおける検出方法としては、前記標識アミノ酸の種類に応じた検出方法を適宜採用することができる。このような検出方法としては、特に制限されず、適宜公知の方法又はそれに準じた方法を適宜採用することができる。前記標識アミノ酸が同位体標識アミノ酸又はアミノ酸の構造的類似体である場合には、例えば、前記標識工程後又は標識工程中(すなわち培養途中)の培地について、ガス同位体比質量分析、同位体比赤外分光、液体クロマトグラフ質量分析(LC-MS/MS)等の質量分析を行なうことによって、前記標識アミノ酸に応じたシグナルを検出し、検出されたシグナル量を前記標的ポリペプチドの量(すなわち、標的遺伝子の発現量)とすることができる。
 また、前記標識アミノ酸がアミノ酸の構造的類似体である場合には、前記修飾基に特異的な染色をすることによって検出することができる。例えば、前記修飾基がアジド基である場合(AHA等)には、当該アジド基をClick-iTTM Alexa Fluor 488 sDIBO Alkyne(Thermo Fisher Scientific社製)等の蛍光試薬によって染色することができるため、蛍光顕微鏡、フローサイトメトリー、イメージングサイトメトリー等を用いて、前記標識アミノ酸に応じたシグナル(発色、蛍光等)を検出し、検出されたシグナル量を前記標的ポリペプチドの量(すなわち、標的遺伝子の発現量)とすることができる。
 また、翻訳レベルでの検出の場合の検出方法としては、他にも例えば、標的ポリペプチドの糖鎖を認識して検出する方法も挙げられる。このような方法としては、例えば、Click-iTTM(Thermo Fisher Scientific社製)等の市販の試薬を用いる方法が挙げられる。前記翻訳レベルでの検出の場合の検出方法は、適宜他の方法と組み合わせて用いてもよい。
 本発明において、前記遺伝子の発現の検出としては、簡便性の観点から、翻訳レベルでの検出(前記標的ポリペプチドの検出)であることが好ましく、特に、前記抗ポリペプチド抗体を用いて前記標的ポリペプチドを検出する方法が好ましい。
 [評価工程]
 本発明の方法に係る評価工程においては、前記検出工程で検出された標的遺伝子の発現の有無又はその発現量を指標として、T細胞の品質を評価する。本発明において評価されるT細胞の品質としては、増殖能、がん細胞傷害活性が挙げられ、中でも、本発明の方法は、T細胞の増殖能を評価する方法として好ましい。「増殖能」とは、より具体的には、In vitro又はIn vivoにおいて、TCR刺激又は抗原刺激によってT細胞が活性化し、細胞傷害活性を有する細胞が増加する能力を示す。T細胞の増殖能は、例えば、下記の実施例に示す方法でT細胞のTCRをTCR刺激磁性ビーズで刺激し、刺激前の細胞数と刺激から14日後の細胞数との比で確認することができるが、これに制限されない。
 本発明においては、前記検出工程で検出された、表1~3に示す標的遺伝子のうち、「up」と記載の遺伝子は、その発現量が多いほど、増殖能が高い、すなわち品質が良いと評価することができる。他方、表1~3に示す標的遺伝子のうち、「down」と記載の遺伝子は、その発現量が多いほど、増殖能が低い、すなわち品質が悪いと評価することができる。前記T細胞の品質の評価基準としては、目的に応じて適宜設定すればよく、特に限定されるものではない。例えば、前記検出工程で、前記標的遺伝子の発現レベル(標的遺伝子の転写レベルや翻訳レベル)に応じた標的遺伝子の発現が少しでも検出されれば、すなわち、前記標的ポリヌクレオチドや前記標的ポリペプチドが少しでも検出されれば、T細胞の品質が良い(又は悪い)と評価してもよく、一定の閾値以上の標的遺伝子の発現量が検出されれば、T細胞の品質が良い(又は悪い)と評価してもよい。さらに、複数の標的遺伝子の発現量を組み合わせてT細胞の品質を評価してもよい。例えば、表1~3において「up」と記載の遺伝子の発現量が多く、かつ、表1~3において「down」と記載の遺伝子の発現量が少ない場合には、T細胞の品質が良いと評価することができ、また、例えば、表1~3において「up」と記載の複数の遺伝子の発現量が多いほど、T細胞の品質がよいと評価することができる。
 また、前記標的遺伝子の発現量に応じて、T細胞の品質(例えば、増殖能の度合い)を評価してもよい。例えば、増殖能が高い(又は低い)ことが事前に特定されているT細胞等の標準試料で検出される前記標的遺伝子の発現量に対して、一定の値以上、又は当該標的遺伝子の発現量の平均値の4SD以上、3SD以上、若しくは2SD以上のシグナル量であれば、増殖能が高い(又は低い)、すなわち品質が良い(又は悪い)と評価してもよい。
 <T細胞評価用試薬、T細胞評価用キット>
 本発明のT細胞評価用試薬は、前記本発明のT細胞の評価方法に用いるための試薬(組成物)であり、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を含有する試薬(以下、場合により、単に「本発明の試薬」という)である。
(I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
 本発明の試薬において、前記(I)~(III)の遺伝子、及び前記遺伝子の発現産物としては、その好ましい態様も含めて、上記の本発明の方法において述べたとおりである。本発明の試薬に係るプローブ分子としては、上記の本発明の方法において挙げた、オリゴヌクレオチドプローブ、オリゴヌクレオチドプライマー、抗ポリペプチド抗体、及びアプタマーが挙げられ、それぞれ、その好ましい態様も含めて、上記の本発明の方法において述べたとおりである。前記プローブ分子としては、これらのいずれか1種であっても2種以上の組み合わせであってもよい。中でも、前記抗ポリペプチド抗体及び/又は前記アプタマーが好ましく、前記抗ポリペプチド抗体がより好ましい。
 本発明の試薬は、液体であっても粉末状等の固体であってもよく、前記プローブ分子に加えて、緩衝液、生理食塩水、安定剤、保存剤、防腐剤、培地等の他の成分がさらに含有されていてもよい。
 本発明のT細胞評価用キットは、前記本発明のT細胞の評価方法に用いるためのキットであり、前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を備えるキット(以下、場合により、単に「本発明のキット」という)である。
 本発明のキットに係るプローブ分子としては、前記本発明の試薬であることが好ましい。また、本発明のキットは、前記プローブ分子に加えて、緩衝液、生理食塩水等の希釈又は懸濁用液;DNA又はタンパク質を抽出及び/又は精製するための試薬;ブロッキング剤;キレート剤;前記標識物質;前記蛍光色素;前記検出工程に必要な試薬;pH調整剤等の試薬;標準試料;使用説明書;安全データシート(Safety Data Sheet)等をさらに備えていてもよい。
 本発明は、前記のT細胞の評価方法により得られた高品質T細胞および該高品質T細胞を有効成分として含有する医薬組成物を提供する。
 本発明の、T細胞を有効成分として含む医薬組成物は、がん治療対象を処置するために使用することができる。本発明の医薬組成物は、製剤技術分野において慣用の方法、例えば、日本薬局方に記載の方法等により製造することができる。本発明の医薬組成物は、薬学的に許容される添加剤を含んでいてもよい。該添加剤としては、例えば、細胞培養液、生理食塩水や適当な緩衝液(例えば、リン酸系緩衝液)等が挙げられる。
 本発明の医薬組成物は、T細胞を生理食塩水や適当な緩衝液(例えばリン酸系緩衝液)等に懸濁することによって製造することができる。所望の治療効果が発揮されるように、一回投与分の量として、例えば1×10個以上の細胞を含有させることが好ましい。より好ましくは1×108個以上、さらに好ましくは1×109個以上である。細胞の含有量は、適用対象の性別、年齢、体重、患部の状態、細胞の状態等を考慮して適宜調整することができる。本発明の医薬組成物には、T細胞の他、細胞を保護する目的でジメチルスルフォキシド(DMSO)および血清アルブミン等を含有させてもよい。また、細菌の混入を阻止する目的で抗生物質等ならびに細胞の活性化および分化を促す目的でビタミン類やサイトカイン等を含有させてもよい。さらに、製剤上許容される他の成分(例えば、担体、賦形剤、崩壊剤、緩衝剤、乳化剤、懸濁剤、無痛化剤、安定剤、保存剤、防腐剤、生理食塩水等)を本発明の医薬組成物に含有させてもよい。
 本発明のT細胞を有効成分として含む医薬組成物は、低温凍結保存することができる。低温凍結保存する場合、温度は、細胞の保存に適した温度であれば特に限定されない。例えば、-20℃、-80℃および-120~-196℃が挙げられる。低温凍結保存する場合、細胞は、バイアル等の適切な容器中で保存することができる。T細胞の凍結時および解凍時の細胞損傷リスクを最小限にするための操作は、当業者には周知である。
 T細胞の冷凍保存においては、T細胞を培養液から回収し、緩衝液または培養液により洗浄し、細胞数を計数し、遠心分離等により濃縮して、凍結媒質(例えば、10% DMSOを含む培養液)中に懸濁した後、低温凍結保存する。T細胞は、複数の培養容器で培養した細胞を合わせ、単一ロットにすることができる。本発明のT細胞を含む医薬組成物は、バイアル等の容器当たり、例えば、5×104個~9×1010個のT細胞を含むが、対象とするがんの種類、投与対象、投与経路等に応じて変更することができる。
 本発明のT細胞を含む医薬組成物の投与経路としては、例えば、輸注、腫瘍内注射、動注、門脈注、腹腔内投与等が挙げられる。但し、本発明の医薬組成物中の有効成分であるT細胞が患部に送達される限り、投与経路はこれに限られるものではない。投与スケジュールとしては、単回投与または複数回投与とすることができる。複数回投与の期間は例えば、2~4週間に1回投与を繰り返す方法または半年から1年に1回投与を繰り返す方法等を採用することができる。投与スケジュールの作成においては、対象患者の性別、年齢、体重、病態等を考慮することができる。
 本発明のT細胞を含む医薬組成物を、がんの予防または治療に使用する場合において、他家移植である場合、拒絶反応を起こしにくいという観点から、T細胞を採取されるがん患者または非がん患者は、がん治療のために、本発明の医薬組成物を投与されるがん患者と、HLAの型が一致していることが好ましい。また、本発明の医薬組成物が投与されるがん患者と、T細胞を採取されるがん患者とは同一人であることがより好ましい。すなわち、他家移植より自家的な移植によるがん治療がより好ましい。
 本発明の医薬組成物は、がんの予防または治療のために用いられる。がんとしては、卵巣がん、肝芽腫、肝細胞がん、胃がん、食道がん、膵臓がん、腎細胞がん、乳がん、悪性黒色腫、非小細胞肺がん、子宮頸がん、膠芽腫、前立腺がん、神経芽腫瘍、慢性リンパ性白血病、甲状腺乳頭がん、大腸がん、およびB細胞非ホジキンリンパ腫が挙げられるが、これらに限定されない。
 がんの予防または治療のために、本発明のT細胞を含む医薬組成物とがんワクチンとを組み合わせて使用する場合、本発明の医薬組成物およびがんワクチンの投与時期は限定されず、本発明の医薬組成物およびがんワクチンの投与を、投与対象に対し、同時に投与してもよく、また時間差をおいて投与してもよい。本発明の医薬組成物とがんワクチンとは別々に製剤化されていてもよく、また両者が混合された合剤であってもよい。本発明の医薬組成物およびがんワクチンの投与量は、臨床上用いられている投与量に準ずればよく、疾患、投与対象、投与経路、薬物との組み合わせ等により適宜選択することができる。
 本発明は、がんを有するかまたはがんを有する危険性のある被験者に、T細胞を投与することを含む、がんを治療または予防する方法であって、該T細胞における、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
 前記遺伝子の発現を指標としてT細胞の品質を評価する評価工程と、
を含む、方法
((I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。)を提供する。
 本発明における被験者は、脊椎動物である。特定の実施形態では、該脊椎動物は、哺乳動物である。該哺乳動物には、家畜(例えば、ウシ)、スポーツ動物、ペット/コンパニオン動物(例えば、ネコ、イヌ、及びウマ)、霊長類、マウス、及びラットが含まれるが、これらに限定されない。特定の実施形態では、哺乳動物は、ヒトである。
 本発明は、T細胞の製造方法であって、該T細胞における、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
 前記遺伝子の発現を指標としてT細胞の品質を評価する評価工程と、
を含む、T細胞の製造方法
((I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
(III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。)を提供する。
 
 以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
 1.T細胞の品質(増殖能)評価
 (1)下記の表7に示すT細胞株14種類を解凍し、96wellプレートの培地A(15%(w/v)ウシ胎児血清(FBS、BioWest社製)、5ng/mLインターロイキン7(IL-7)、及び5ng/mLインターロイキン15(IL-15)を添加したαMEM(α改変型イーグル最小必須培地))に、それぞれ1×10cells/wellで播種した。
 (2)T細胞受容体(TCR)刺激磁性ビーズ(Dynabeads Human T-Activator CD3/CD28 for T Cell Expansion and Activation(Thermo Fisher Scientific社製))を用いて、播種したT細胞のTCRをそれぞれ刺激後、培地Aで適宜培地交換しながら、5%CO、37℃の条件下で14日間培養した。
 (3)培養14日目の刺激後の各T細胞を血球算定盤を用いて計数し、次式:
  増殖倍率=TCR刺激後の14日間培養後のT細胞数/TCR刺激前のT細胞数
により、各T細胞における増殖倍率(Fold proliferation)を算出した。結果を下記の表7に合わせて示す。細胞種(ナイーブ(naive)T細胞、細胞傷害性T細胞(CTL)、iPS細胞由来CTL(iPSC-T)細胞)毎に、相対的に増殖倍率の値が高いT細胞を「高品質T細胞(good)」に、相対的に増殖倍率が低いT細胞を「低品質T細胞(bad)」に、それぞれ分類した。具体的には、下記A~Fの群:
A:高品質ナイーブT細胞(good)からなる群
B:高品質細胞傷害性T細胞(good)からなる群
C:低品質ナイーブT細胞(bad)からなる群
D:低品質細胞傷害性T細胞(bad)からなる群
E:高品質iPS細胞由来CTL(good)からなる群
F:低品質iPS細胞由来CTL(bad)からなる群
に分類した。分類した群も合わせて表7に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
 2.T細胞のトランスクリプトーム解析
 (1)上記1の(3)で高品質T細胞(good:7種類)及び低品質T細胞(bad:7種類)に分類したT細胞と同じ株のT細胞(TCR未刺激)について、それぞれ、上記1の(1)~(2)と同様にしてTCR刺激磁性ビーズを用いてTCRを刺激し、培地Aで適宜培地交換しながら、5%CO、37℃の条件下で培養した。
 (2)TCR刺激後7日目の細胞を回収し、先ず、RNeasy Micro Kit(QIAGEN社製)を用いて、Total RNAを抽出した。次いで、抽出したTotal RNA 10ngから、SMART-Seq v4 Ultra Low Input RNA Kit for Sequencing(Clontech社製)を用いて、cDNAを合成・増幅した。
 (3)(2)で得られたcDNA 1ng分を使用して、Nextera XT DNA Library Preparation Kit(Illumina社製)及びNextera XT v2 Index Kit Set A(Illumina社製)を用いてライブラリー調製を行ない、Next-seq500(illumina社製)を用いて、リード長:75bp、single end readの条件でシークエンス解析を行なうことにより、1試料あたり500万リード以上の遺伝子を解読した。
 (4)(3)で解読した遺伝子(シークエンスデータ)をTopHat2(JOHNS HOPKINS大学)及びBowtie2(JOHNS HOPKINS大学)を用いて、ヒトゲノム配列にマップした。なお、ヒトゲノム配列情報及びヒト遺伝子情報には、NCBI(National Center for Biological Information)より公開されているBUILD GRCh38を使用した。マップした遺伝子について、Cufflinks(Washington大学)によって、解読した各遺伝子のリード数から、FPKM(Fragments Per Kilobase of exon per Million reads mapped)を単位とする遺伝子ごとの発現量を求めた。
 3.T細胞のセクレトーム解析-1
 (1)上記1の(3)で高品質T細胞(good:7種類)及び低品質T細胞(bad:7種類)に分類したT細胞と同じ株のT細胞(TCR未刺激)について、それぞれ、上記1の(1)~(2)と同様にしてTCR刺激磁性ビーズを用いてTCRを刺激し、培地Aで適宜培地交換しながら、5%CO、37℃の条件下で培養した。
 (2)TCR刺激後7日目の細胞をそれぞれ1×10cells回収し、15%(w/v)透析FBS、4mmol/L L-グルタミン、ITS(インシュリン-トランスフェリン-亜セレン酸ナトリウム)サプリメント(×1)、50μg/mLアスコルビン酸、5ng/mL IL-7、及び5ng/mL IL-15を添加したαMEM(α改変型イーグル最小必須培地、メチオニン不含有)で懸濁して、37℃、5%COの条件下で1時間培養後、0.00625mmol/L L-アジドホモアラニン(AHA)、15%(w/v)透析FBS、4mmol/L L-グルタミン、ITS(インシュリン-トランスフェリン-亜セレン酸ナトリウム)サプリメント(×1)、50μg/mLアスコルビン酸、5ng/mL IL-7、及び5ng/mL IL-15を添加したαMEM(メチオニン不含有)培地を用いて、37℃、5%COの条件下で24時間培養した。
 (3)培養後、培養上清0.4mLを回収し、培養上清に分泌された、AHAで標識されたタンパク質(セクレトーム)を、Click-iTTM Protein Enrichment Kit,for click chemistry capture of azide-modified protein(Thermo Fisher Scientific社製)を用いて、前記AHAのアジド基をアルキンアガロース樹脂に捕捉させることで抽出した。
 (4)(3)で抽出したタンパク質をLC-MS/MS(Ultimate 3000 RSLCnano及びQ Exactive、いずれもThermo Fisher Scientific社製)で解析した。解析データから、Proteome Discovererソフトウェア(ver.2.2、Thermo Fisher Scientific社製)を用いて、抽出したタンパク質のアミノ酸配列を抽出した。
 (5)Mascotソフトウェア(ver.2.5、Matrix Science 社製)を用い、下記(A)~(C)に記載のアミノ酸配列を組み合わせて構築したデータベースと照合することで、決定したアミノ酸配列からタンパク質を同定した。なお、有意なタンパク質の同定は、同定のスコア閾値を、False discovery rate(FDR)が1%になるように調整して行なった。同定したタンパク質は、Proteome Discoverer 2.2のLabel Free Quantification(LFQ)を用いて定量した。
(A)SwissProt(http://www.uniprot.org/)2018_11版に登録されているヒト(Homo sapiens)由来のタンパク質エントリー(計20413件);
(B)SwissProt(http://www.uniprot.org/)2018_11版に登録されているウシ(Bos taurus)由来のタンパク質エントリー(計5992件);
(C)The Global Proteome Machine Organization(http://www.thegpm.org/crap/index.html)から取得した、ヒト由来及びウシ由来以外のタンパク質汚染物のアミノ酸配列(計46件)。
 4.パスウェイ解析
 (1)上記2の(4)で得られたトランスクリプトーム解析結果(マップした遺伝子ごとの発現量)及び上記3の(5)で得られたセクレトーム解析結果(同定したタンパク質の定量値)を統合し、上記1の(3)で分類した6つの群(A~F)について、総当り(全15通り)で群間比較し、相互関係検索法を用いたKeyMolnet解析(KMデータ社)により、比較した群間で発現量の差が大きかった遺伝子がコードするタンパク質であって、前記セクレトーム解析で同定したタンパク質(セクレトーム)が属するシグナル伝達経路(下記式で算出されるスコアが大きいシグナル伝達経路;下記式中、パスウェイに属している分子とは、シグナル伝達経路に属しているタンパク質を示す)を特定した。前記スコアは、統計学的手法(超幾何分布)に基づいて下記式で算出される総合的な関与度を示す値であり、値が大きいほどそのシグナル伝達経路が有意であることを示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000008
 
 (1)各群(Group)間の比較において、パスウェイ解析により得られたスコアが大きい順に、第1位~10位のシグナル伝達経路及びそのスコア(Score)をそれぞれ下記の表8~22に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000014
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000016
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000017
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000018
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000019
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000020
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000021
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000022
 
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000023
 
 (2)表8~22に示す経路の中から、TCR刺激によって直接惹起されるシグナルであるCaMKシグナルの伝達経路、及び遊走骨格系シグナルである中間系フィラメントシグナルの伝達経路を除外し、増殖倍率の異なる群間の総当たり比較において、登場回数の多いシグナル経路(3回以上登場)、高品質iPS細胞由来T細胞(E)と低品質iPS細胞由来T細胞(F)との比較(E/F)において有意であるシグナル伝達経路(上位10位まで、表22)を選出基準として、T細胞の品質(増殖能)に関連する可能性が高いといえるシグナル伝達経路を選定した。選定したシグナル伝達経路を下記の表23に示す。表23には、表8~22に記載の各比較群におけるスコア順位も合わせて示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000024
 
 (3)(2)で選定したシグナル伝達経路に属するタンパク質の中から、上記3の(5)で得られたセクレトーム解析結果(同定したタンパク質の定量値(発現量))において、比較した群間で発現量比が0.67以下又は1.5以上となり、かつ、T検定でp値が0.05以下となったタンパク質(セクレトーム)を抽出した。
 (4)(3)で抽出したタンパク質から、細胞骨格、Gタンパク質、並びに、RNA・DNA合成及び微小管・膜輸送に関わるタンパク質を除外し、それ以外のタンパク質を選出した。選出したタンパク質、そのアミノ酸配列、及び同アミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子は、それぞれ、上記の表1~3に示したタンパク質(略称)、アミノ酸配列、及び遺伝子である。
 上記パスウェイ解析で増殖倍率の異なる群間を総当たりで比較することで、登場回数の多いシグナル伝達経路が細胞品質(増殖能)に起因する主なシグナル伝達経路であるといえる。一方で、同一のiPS細胞のクローンに由来するT細胞間(E/F)で比較することで、培養系に起因する細胞品質の差異に関わるシグナル伝達経路を抽出することができる。そのため、選出されたタンパク質は、品質の異なる細胞間で発現が変動する当該シグナル伝達経路に関連するタンパク質(セクレトーム)であるといえる。
 5.T細胞のセクレトーム解析-2
 (1)上記の表7に示す14種類のT細胞に加えて、下記の表24に示す10種類のT細胞について、上記1の(1)~(3)と同様にして、増殖倍率を測定した。全24種類のT細胞について、増殖倍率が20以上となったT細胞(表24の細胞No.1~12のT細胞)を「高品質T細胞」に、同増殖倍率が20未満となったT細胞(表11の細胞No.13~24のT細胞)を「低品質T細胞」に、それぞれ分類した。表24には、各細胞の増殖倍率も合わせて示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000025
 
 (2)(1)で高品質T細胞(12種類)及び低品質T細胞(12種類)に分類したT細胞と同じ株のT細胞(TCR未刺激)について、それぞれ、上記1の(1)~(2)と同様にしてTCR刺激磁性ビーズを用いてTCRを刺激し、培地Aで適宜培地交換しながら、5%CO、37℃の条件下で培養した。
 (3)TCR刺激後6日目の細胞をそれぞれ1×10cells回収し、15%(w/v)透析FBS、4mmol/L L-グルタミン、ITS(インシュリン-トランスフェリン-亜セレン酸ナトリウム)サプリメント(×1)、50μg/mLアスコルビン酸、5ng/mL IL-7、及び5ng/mL IL-15を添加したαMEM(α改変型イーグル最小必須培地、メチオニン不含有)で懸濁して、37℃、5%COの条件下で1時間培養後、0.00625mmol/L L-アジドホモアラニン(AHA)、15%(w/v)透析FBS、4mmol/L L-グルタミン、ITS(インシュリン-トランスフェリン-亜セレン酸ナトリウム)サプリメント(×1)、50μg/mLアスコルビン酸、5ng/mL IL-7、及び5ng/mL IL-15を添加したαMEM(メチオニン不含有)培地を用いて、37℃、5%COの条件下で24時間培養した。
 (4)培養後、培養上清0.4mLを回収し、培養上清に分泌された、AHAで標識されたタンパク質(セクレトーム)を、Click-iTTM Protein Enrichment Kit,for click chemistry capture of azide-modified protein(Thermo Fisher Scientific社製)を用いて、前記AHAのアジド基をアルキンアガロース樹脂に捕捉させることで抽出した。
 (5)(4)で抽出したタンパク質について、上記3の(4)~(5)と同様にして、アミノ酸配列の決定、タンパク質の同定、及びその定量を行なった。
 6.主成分分析(PCA)
 上記5のセクレトーム解析の(5)より、800の同定タンパク質及びそれらの発現量のデータが得られた。ただし、前記タンパク質数には、低発現又は無発現のタンパク質を含めていない。各T細胞(24種類)におけるこれらデータについて、主成分分析(PCA)を行なった。PCAで得られた散布図を図1に示す。
 図1に示したように、細胞の品質(この場合、増殖能)とPC1スコアとの間に高い関連性が認められ、高品質T細胞(図1中では白丸で表記)では第一主成分(PC1)スコアが低く、低品質T細胞(図1中では黒丸で表記)ではPC1スコアが高くなった。PCAでは、主成分スコアの係数と主成分負荷量の値とはほぼ比例するため、第一主成分の主成分負荷量の値が(正に)大きい変数(この場合、変数は各タンパク質の発現量)は、第一主成分の正方向に寄与し、第一主成分の主成分負荷量の値が低い(負値の)変数は、第一主成分の負方向に寄与する。そのため、第一主成分の主成分負荷量の値が大きいタンパク質は、PC1スコアが高い細胞、すなわち、低品質T細胞で発現し、第一主成分の主成分負荷量の値が小さいタンパク質は、PC1スコアが低い細胞、すなわち、高品質T細胞で発現することがわかった。
 そこで、前記PCAより、上記4のパスウェイ解析の(4)で選出したタンパク質の発現量について、第一主成分の主成分負荷量(principal component loading)をそれぞれ求めた。得られた第一主成分の主成分負荷量を上記の表1~3に合わせて示す。表1~3に示すように、前記パスウェイ解析で選出したタンパク質において、得られた第一主成分に対する主成分負荷量の絶対値はいずれも0.4以上であり、ほとんどのタンパク質において0.8以上であった。したがって、上記の表1~3に示したタンパク質は、T細胞の品質(増殖能)評価用のマーカーとして利用することが可能であるといえる。
 7.T細胞の品質(増殖能)とマーカータンパク質の発現との相関性(その1)
 「6.主成分分析」の結果、第一主成分への寄与率が高い遺伝子の中から、EEF1A1(アミノ酸配列番号4)、TPI1(アミノ酸配列番号7)、ENO1(アミノ酸配列番号8)、TKT(アミノ酸配列番号17)、及びG6PD(アミノ酸配列番号38)を選択し、これら遺伝子から翻訳されるタンパク質の発現量とT細胞の品質との相関性を確認した。
(1)TCR刺激前の細胞(day0)試料調製
(1-1)10種類のT細胞株(表24に示す細胞No.5、10、11、13、15、16、18、19、22、24)を解凍し、96wellプレートの培地A(15%(w/v)FBS(BioWest社製)、5ng/mL IL-7、及び5ng/mL IL-15を添加したαMEM)に、それぞれ5×10~7×10cells/wellで播種した。
(1-2)播種した細胞を24時間培養後、培養上清を回収し、-80℃で保存した。これを「刺激前上清試料」とした。
 (2)TCR刺激後の細胞(day2)試料調製
(2-1)(1-1)と同じ10種類のT細胞株を解凍し、96wellプレートの培地Aに、それぞれ5×10~7×10cells/wellで播種した。
(2-2)T細胞受容体(TCR)刺激磁性ビーズ(Dynabeads Human T-Activator CD3/CD28 for T Cell Expansion and Activation(Thermo Fisher Scientific社製))を用いて、播種したT細胞のTCRをそれぞれ刺激後、培地Aで適宜培地交換しながら、5%CO、37℃の条件下で2日間培養した。
(2-3)2日間培養し、上清をすべて除去後、新しい培地Aを添加し、さらに24時間培養した。培養上清を回収後、-80℃で保存し、これを「刺激後上清試料」とした。
 (3)タンパク質発現量測定
 (1)で調製した刺激前上清試料、および(2)で調製した刺激後上清試料について、下記市販のキットを用いて、ELISA法による各タンパク質発現量測定を行なった。
EEF1A1(アミノ酸配列番号4):Human EEF1A1(Elongation factor 1-alpha 1)ELISA Kit(MyBioSource社製)
TPI1(アミノ酸配列番号7):Human TPI1(Triosephosphate isomerase)ELISA Kit(MyBioSource社製)
ENO1(アミノ酸配列番号8):Human NNE(Non-Neuronal Enolase)ELISA Kit(MyBioSource社製)
TKT(アミノ酸配列番号17):Human Transketolase、TK ELISA Kit(MyBioSource社製)
G6PD(アミノ酸配列番号38):Human G6PD(Glucose 6 Phosphate Dehydrogenase)ELISA Kit(Elabscience Biotechnology社製)。
 (4)相関係数算出
 前記5つのタンパク質(EEF1A1、TPI1、ENO1、TKT、及びG6PD)について、増殖能(対数値)と前記タンパク質発現量(対数値)との相関係数を算出した。結果を下記の表25に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000026
 
 8.T細胞の品質(増殖能)とマーカータンパク質の発現との相関性(その2)
 「6.主成分分析」の結果、第一主成分への寄与率が高い遺伝子の中から、ALDOC(アミノ酸配列番号20)を選択し、当該遺伝子から翻訳されるタンパク質の発現量とT細胞の品質との相関性を確認した。
 (1)18種類のT細胞株(表24に示す細胞No.5、8~24)を0.5×10~1×10cells取得し、当該細胞を、Phosphate Buffered saline(PBS)(-)1mLに懸濁し凍結融解を3回繰り返す操作、又はLysis buffer 3(MyBioSource社製)1mL添加する操作により、溶解して「刺激後上清試料」とした。
 (2)(1)の細胞溶解液をタンパク質量が30μgとなるようにそろえた後、抗体アレイ(Signaling Explorer Antibody Array、Full Moon BioSystems社製)に添加し、付属のプロトコールにしたがってALDOCタンパク質発現量測定を行なった。
 (3)7.(4)と同様の方法で相関係数を算出した。結果を下記の表26に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000027
 
 表25及び表26では、相関係数の絶対値が0.5以上であれば「相関性あり」と判断した。表25及び表26に示したように、刺激前上清試料(day0)では、EEF1A1(アミノ酸配列番号4)、TPI1(アミノ酸配列番号7)、ENO1(アミノ酸配列番号8)、及びALDOC(アミノ酸配列番号20)で増殖能とタンパク質の発現量との相関を確認した。このことから、EEF1A1、TPI1、ENO1、及びALDOCは、定常状態のときにT細胞の品質を評価できるマーカーといえる。一方、刺激後上清試料(day2)では、EEF1A1(アミノ酸配列番号4)、TKT(アミノ酸配列番号17)、及びG6PD(アミノ酸配列番号38)で増殖能とタンパク質の発現量との相関を確認した。このことから、EEF1A1、TKT、及びG6PDは、TCRによる細胞刺激後の状態のときにT細胞の品質を評価できるマーカーといえる。
 また、これらの中でも、EEF1A1、ENO1、TKT、G6PD、及びALDOCは、相関係数の絶対値が0.6以上であり、これら5つのタンパク質は、T細胞の品質を評価できるマーカーの特に好ましい態様といえる。さらに、EEF1A1及びTKTは、相関係数の絶対値が0.8以上であり、T細胞の品質を評価できるマーカーの特により好ましい態様といえる。
 本発明によれば、新たな指標によってT細胞の品質を評価できるT細胞の評価方法、及びそれに用いるT細胞評価用試薬を提供することが可能となる。

Claims (19)

  1.  T細胞における、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
     前記遺伝子の発現を指標としてT細胞の品質を評価する評価工程と、
    を含む、T細胞の評価方法。
    (I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
  2.  前記検出工程が、前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を用いて前記発現産物を検出する工程である、請求項1に記載の方法。
  3.  前記発現産物が、前記(I)~(III)の遺伝子のうちのいずれか1つにコードされるポリペプチドであり、かつ、前記プローブ分子が、前記ポリペプチドに特異的に結合する抗体及び/又はアプタマーである、請求項2に記載の方法。
  4.  前記評価工程が、前記遺伝子の発現を指標としてT細胞の増殖能を評価する工程である、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
  5.  前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子が、下記(I’)~(III’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である、請求項1~4のいずれか一項に記載の方法。
    (I’)配列番号4、7、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (II’)配列番号4、7、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (III’)配列番号4、7、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
  6.  前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子が、下記(I’’)~(III’’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である、請求項1~5のいずれか一項に記載の方法。
    (I’’)配列番号4、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (II’’)配列番号4、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (III’’)配列番号4、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
  7.  前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子が、下記(I’’’)~(III’’’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である、請求項1~6のいずれか一項に記載の方法。
    (I’’’)配列番号4及び17のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (II’’’)配列番号4及び17のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (III’’’)配列番号4及び17のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
  8.  請求項2~7のいずれか一項に記載の方法に用いるための試薬であり、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現産物に特異的に結合するプローブ分子を含有する、T細胞評価用試薬。
    (I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
  9.  前記発現産物が、前記(I)~(III)の遺伝子のうちのいずれか1つにコードされるポリペプチドであり、かつ、前記プローブ分子が、前記ポリペプチドに特異的に結合する抗体及び/又はアプタマーである、請求項8に記載の試薬。
  10.  前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子が、下記(I’)~(III’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である、請求項8又は9に記載の試薬。
    (I’)配列番号4、7、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (II’)配列番号4、7、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (III’)配列番号4、7、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
  11.  前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子が、下記(I’’)~(III’’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である、請求項8~10のいずれか一項に記載の試薬。
    (I’’)配列番号4、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (II’’)配列番号4、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (III’’)配列番号4、8、17、20及び38のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
  12.  前記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子が、下記(I’’’)~(III’’’)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子である、請求項8~11のいずれか一項に記載の試薬。
    (I’’’)配列番号4及び17のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (II’’’)配列番号4及び17のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (III’’’)配列番号4及び17のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
  13.  請求項1~7のいずれか一項に記載のT細胞の評価方法により得られた高品質T細胞。
  14.  請求項13に記載の高品質T細胞を含有する医薬組成物。
  15.  がんの予防又は治療に使用するための請求項14に記載の医薬組成物。
  16.  請求項14に記載の医薬組成物を用いる、がんの予防または治療方法。
  17.  がんを有するかまたはがんを有する危険性のある被験者に、請求項14に記載の医薬組成物を投与することを含む、がんを治療または予防する方法。
  18.  がんを有するかまたはがんを有する危険性のある被験者に、T細胞を投与することを含む、がんを治療または予防する方法であって、該T細胞における、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
     前記遺伝子の発現を指標としてT細胞の品質を評価する評価工程と、
    を含む、方法。
    (I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
  19.  T細胞の製造方法であって、該T細胞における、下記(I)~(III)の遺伝子からなる群から選択される少なくとも1種の遺伝子の発現を検出する検出工程と、
     前記遺伝子の発現を指標としてT細胞の品質を評価する評価工程と、
    を含む、T細胞の製造方法。
    (I)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (II)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列において、1若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子
    (III)配列番号1~54のいずれか1つに記載のアミノ酸配列と70%以上の同一性を有するアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする遺伝子。
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