WO2022202069A1 - 微細藻の培養方法 - Google Patents

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WO2022202069A1
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microalgae
culturing
carbon dioxide
saccharification
fermentation
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English (en)
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広瀬佳嗣
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本田技研工業株式会社
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/12—Unicellular algae; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/02—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
    • C12P7/04—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
    • C12P7/06—Ethanol, i.e. non-beverage

Definitions

  • the present invention relates to a method for culturing microalgae.
  • bioethanol produced from non-edible cellulosic biomass such as sugar cane press residue (bagasse) or rice straw
  • second generation ethanol is also referred to as second generation ethanol.
  • bioethanol first generation ethanol
  • second generation ethanol does not compete with food, so it is expected to spread quickly.
  • second-generation ethanol requires technology to saccharify polysaccharides such as cellulose, which are the main components of cellulosic biomass, into monosaccharides such as glucose.
  • a saccharification step of saccharifying a polysaccharide such as cellulose with a saccharifying enzyme is known.
  • saccharifying enzymes are generally expensive, it is difficult to reduce the cost of the saccharifying step. This is one of the factors that hinder the spread of second-generation ethanol.
  • both first-generation ethanol and second-generation ethanol are manufactured through a fermentation process in which sugar is fermented and converted into ethanol.
  • yeast is added to the sugar and anaerobic conditions are maintained to convert the sugar into ethanol and carbon dioxide. From the viewpoint of using bioethanol as a countermeasure against global warming, it is preferable not to release carbon dioxide produced in the fermentation process into the atmosphere.
  • An object of the present invention is to solve the above-mentioned problems.
  • One aspect of the present invention is a culturing step of culturing microalgae, an obtaining step of obtaining protein from the microalgae cultured in the culturing step, and a compression residue obtained by pressing a biomass material and containing cellulose, the obtaining A saccharification step of adding the protein obtained in the step as a saccharifying enzyme and saccharifying the pressing residue; and a fermentation step of fermenting either one to produce a fermented product, and in the culture step, carbon dioxide generated in the fermentation step is supplied to the microalgae.
  • the fermentation step in this method of culturing microalgae at least one of the sugar contained in the pressed juice of the biomass material and the sugar obtained by saccharifying the pressed residue of the biomass material (cellulosic biomass) in the saccharification step is fermented. Let This produces a fermented product.
  • the microalgae are supplied with carbon dioxide produced together with the fermented product in the fermentation step. Thereby, microalgae can be cultivated satisfactorily.
  • Microalgae are highly capable of fixing carbon dioxide through photosynthesis. Therefore, by supplying carbon dioxide generated in the fermentation process to the microalgae and culturing them, it is possible to suppress the release of the carbon dioxide into the atmosphere.
  • protein is obtained from the microalgae cultured in the culture process.
  • This protein functions as a saccharifying enzyme that saccharifies the press residue.
  • microalgae are successfully cultured by the culture process using carbon dioxide generated in the fermentation process. Therefore, protein can be obtained satisfactorily from microalgae.
  • the protein thus obtained in the obtaining step is used as a saccharifying enzyme for saccharifying the residue from compression. As a result, the amount of commercially available saccharifying enzyme used can be reduced or eliminated. As a result, the cost of the saccharification process can be reduced.
  • FIG. 1 is an explanatory diagram illustrating a method for culturing microalgae according to an embodiment of the present invention.
  • microalgae are cultured.
  • the microalgae grow by photosynthesis using, for example, light energy, carbon dioxide and water, and produce proteins.
  • the protein here refers to a substance that functions as a saccharifying enzyme that saccharifies polysaccharides such as cellulose and converts them into monosaccharides.
  • microalgae are treated to increase the amount of protein expression.
  • a known technique can be adopted for this type of processing. For example, genetic recombination is performed on microalgae that do not have the ability to produce protein before treatment. For example, genome editing is performed on microalgae that have the ability to produce protein before treatment.
  • the microalgae cultured by applying this culture method are not limited as long as they are algae capable of producing proteins.
  • An example of the microalgae includes microalgae classified into the Chlorophyceae of the phylum Chlorophyta. More specific examples include Chlamydomonas reinhardtii belonging to the genus Chlamydomonas of the Chlorophyceae.
  • Examples of algae suitable for transformation for enzyme protein expression include cyanobacteria (such as cyanobacteria) and diatoms of the genus Phaeodactylum.
  • the culture method according to the present embodiment has a culture process, an acquisition process, a saccharification process, a solid component separation process, a fermentation process, and a distillation process.
  • microalgae are cultured. Details of the culture step will be described later.
  • proteins produced by the microalgae cultured in the culturing step are obtained.
  • the number of proteins obtained from microalgae may be one, or two or more.
  • the protein in a state of being extracted from microalgae may be obtained by a normal method for isolating or purifying protein from microalgae.
  • the protein solution containing the cell residue may be obtained only by crushing the microalgae without extracting the protein.
  • the process of extracting protein from microalgae can be omitted, so that the acquisition process can be simplified.
  • the protein obtained in the acquisition process is added as a saccharification enzyme to the residue obtained by squeezing the biomass material.
  • the pressing residue is saccharified (enzymatic saccharification).
  • the protein obtained in the obtaining step is protein extracted from microalgae or crushed microalgae containing protein.
  • biomass materials such as sugarcane or sugar beet
  • pressing yields a juice and a pressing residue.
  • the juice contains sugars such as sucrose and glucose.
  • the press residue contains cellulose.
  • the press residue is called bagasse.
  • the press residue may contain, for example, hemicellulose or lignin in addition to cellulose.
  • Cellulose is a polymer in which multiple glucoses are polymerized through glucosidic bonds.
  • Hemicellulose is, for example, a polymer in which at least one or more selected from glucose, xylose, mannose and galactose are polymerized through glucosidic bonds, and refers to water-insoluble polysaccharides other than cellulose.
  • Lignin is a component that constitutes plant cell walls and the like together with polysaccharides (cellulose and hemicellulose).
  • saccharification treatment is performed on the press residue that has been subjected to pretreatment in advance and is in a state where it is likely to be enzymatically saccharified.
  • a pretreatment is, for example, a treatment that partially destroys the structure of the press residue.
  • Various methods such as chemical methods, physical methods, biological methods, or a combination thereof can be employed as the pretreatment. Examples of chemical methods include hydrothermal treatment, acid treatment, and alkali treatment.
  • Hydrothermal treatment utilizes hot water to decompose the press residue.
  • Acid treatment utilizes acid to decompose the press residue.
  • Alkaline treatment utilizes alkali to decompose the press residue.
  • An example of a physical method is a crushing treatment in which the press residue is mechanically pulverized using a pulverizer or mill.
  • One example of a biological method is enzymatic treatment in which enzymes are used to cleave polysaccharide bonds contained in the press residue.
  • the lignin may be separated from the rest of the press residue (eg, cellulose and hemicellulose). Pretreatment may be performed after the treatment for separating lignin. A treatment for separating lignin may be performed after performing the pretreatment and before performing the saccharification step. Alternatively, lignin may be separated by pretreatment. That is, in the saccharification step, the compression residue from which lignin has been separated may be subjected to saccharification treatment.
  • a commercially available saccharification enzyme may be added to the pressed residue after pretreatment together with the protein obtained in the acquisition step.
  • the required amount of commercially available saccharifying enzyme is reduced by adding the protein obtained in the obtaining step.
  • the protein added to the press residue in the saccharification step and the commercially available saccharification enzyme each have the function of decomposing cellulose into monosaccharides such as glucose.
  • the protein added to the press residue in the saccharification step preferably has the function of decomposing hemicellulose into monosaccharides such as xylose.
  • a commercially available saccharifying enzyme is added to the pressed residue in the saccharification step, both the protein and the commercially available saccharifying enzyme may have the function of decomposing hemicellulose into monosaccharides.
  • commercially available saccharifying enzymes may have the function of decomposing hemicellulose into monosaccharides.
  • the above protein may have the function of degrading both cellulose and hemicellulose.
  • a commercially available saccharifying enzyme may have the function of decomposing both cellulose and hemicellulose.
  • a plurality of proteins having a function of degrading cellulose and a different protein having a function of degrading hemicellulose may be obtained together.
  • a saccharifying enzyme having a function of decomposing cellulose and a different saccharifying enzyme having a function of decomposing hemicellulose may be obtained in combination.
  • a solid component separation step of separating solid components from the sugar (liquid) is performed.
  • a method for separating the solid component from the sugar can employ, for example, a filter press, but is not limited to this.
  • a fermentation step is performed to produce a fermented product by fermenting at least one of the sugar separated from the solid component in the solid component separation step and the sugar contained in the juice.
  • Alcohol fermentation is mentioned as an example of fermentation performed in a fermentation process.
  • the fermentation process alcoholically ferments the sugar. This produces a fermented product and carbon dioxide.
  • a fermentate is, for example, an alcohol such as ethanol.
  • the method of alcoholic fermentation is not particularly limited, but it can be carried out using microorganisms, for example.
  • alcoholic fermentation can be performed using one or more microorganisms (alcohol-fermenting microorganisms) capable of decomposing glucose to produce an alcohol such as ethanol and carbon dioxide.
  • microorganisms alcohol-fermenting microorganisms
  • yeast such as Yeast.
  • lactic acid fermentation using lactic acid bacteria may be performed.
  • other fermentations may be performed that are based on sugars such as glucose or xylose.
  • a fermented product such as lactic acid is produced along with the production of carbon dioxide in the fermentation process.
  • biomass plastic is obtained by polymerizing this fermented product.
  • fermented products obtained in the fermentation process include alcohol (eg, ethanol) and chemical product precursors (eg, lactic acid).
  • a distillation process is performed to separate the fermented product from the distillation residue by distilling the fermented product produced in the fermentation process.
  • the distillation method is not particularly limited, for example, an Oldershaw distillation column can be used.
  • the fermentation liquid containing the fermented product produced in the fermentation step is separated into ethanol and a distillation residue in which the solid content is concentrated.
  • the distillation residue contains, for example, nutrients necessary for microalgae growth such as nitrogen (N), phosphate (P), potassium (K), minerals, and combustible solid components.
  • the culture apparatus includes a culture tank 10 and a carbon dioxide supply section 12 .
  • the culture tank 10 contains the culture solution and microalgae.
  • the carbon dioxide supply unit 12 supplies carbon dioxide to the culture tank 10 .
  • the culture apparatus may include a circulation unit that circulates the culture solution in the culture tank 10 by driving a pump, for example.
  • the carbon dioxide generated in the above fermentation process is recovered.
  • the recovered carbon dioxide is sent to the carbon dioxide supply section 12 .
  • the carbon dioxide supply unit 12 drives, for example, a compressor (blower) or a fan.
  • the carbon dioxide supply unit 12 supplies carbon dioxide (carbon dioxide gas) to the microalgae in the culture tank 10 . That is, in the culturing step, carbon dioxide generated in the fermentation step is supplied to the microalgae.
  • the microalgae perform photosynthesis using this carbon dioxide, the water in the culture solution, and the energy of the light irradiated to the microalgae. This allows the microalgae to grow and multiply.
  • Light energy used for photosynthesis of microalgae may be sunlight or an artificial light source.
  • microalgae may be supplied with nutrients obtained by removing solid components from the distillation residue obtained in the above distillation process.
  • nutrients extracted from the incineration ash of the boiler 14, which will be described later may be supplied to the microalgae. These promote the growth and proliferation of microalgae. As a result, protein production by microalgae is promoted.
  • the extracted nutrients may be supplied to the microalgae.
  • the distillation residue may be burned in boiler 14 without nutrient extraction. After obtaining incineration ash containing nutrients in this way, nutrients may be extracted from the incineration ash and supplied to microalgae.
  • energy is obtained by power generation using at least one of the solid components that have not been converted to sugar in the saccharification process in the above saccharification process and the solid components of the distillation residue.
  • This energy is used to drive the culture device.
  • the solid components that have not been converted into sugar by the saccharification treatment in the above saccharification step are the solid components separated in the solid component separation step.
  • at least one of the solid component and the distillation residue is directly combusted in the boiler 14 to generate power.
  • the energy thus obtained is used to drive the culture device. That is, the above energy is used to drive, for example, the compressor or fan of the carbon dioxide supply unit 12 .
  • the above energy is used to drive, for example, a pump in the circulation section.
  • an artificial light source such as an LED for culturing microalgae
  • the above energy is used to drive the artificial light source.
  • the carbon dioxide supply unit 12 supplies not only the carbon dioxide generated in the fermentation process but also the carbon dioxide generated by burning the solid components to the microalgae in the culture tank 10 .
  • the carbon dioxide supply unit 12 may further supply, for example, carbon dioxide discharged from the factory and air containing carbon dioxide in the atmosphere to the culture tank 10 together.
  • the incineration ash contains nutrients necessary for growing microalgae. Therefore, these nutrients may be extracted from the incineration ash and supplied to the culture tank 10 .
  • the microalgae cultured in the culturing process as described above produce proteins as well as starch in the cells through photosynthesis. Therefore, when there is a sufficient amount of accumulated starch, the microalgae are subjected to a crushing treatment to crush the cell walls. Then, one or more saccharifying enzymes capable of saccharifying starch are added. Thereby, a sugar such as glucose can be obtained.
  • saccharifying enzymes that saccharify starch include ⁇ -amylase and glucoamylase. It is more preferable to use ⁇ -amylase and glucoamylase together.
  • sugar obtained by saccharifying the starch accumulated in microalgae as described above can be used for various purposes.
  • sugar obtained by saccharifying starch accumulated in microalgae is fermented in the fermentation step together with at least one of sugar obtained in the saccharification step and sugar contained in the juice. This makes it possible to produce a fermented product also from sugars derived from microalgae cultured in the culture step.
  • the sugar contained in the squeezed juice of the biomass material, or the sugar obtained by saccharifying the residue from pressing the biomass material (cellulosic biomass) in the saccharification step Ferment at least one of This produces a fermentate (eg, ethanol, chemical precursor).
  • the microalgae are supplied with carbon dioxide produced together with the fermented product in the fermentation step.
  • microalgae can be cultivated satisfactorily.
  • Microalgae are highly capable of fixing carbon dioxide through photosynthesis. Therefore, by supplying carbon dioxide generated in the fermentation process to microalgae and culturing them, it is possible to suppress the release of the carbon dioxide into the atmosphere.
  • protein is obtained from the microalgae cultured in the culture process.
  • This protein functions as a saccharifying enzyme that saccharifies the press residue.
  • microalgae are successfully cultured by the culture process using carbon dioxide generated in the fermentation process. Therefore, protein can be obtained satisfactorily from microalgae.
  • the protein thus obtained in the obtaining step is used as a saccharifying enzyme for saccharifying the residue from compression. As a result, the amount of commercially available saccharifying enzyme used can be reduced or eliminated. As a result, the cost of the saccharification process can be reduced.
  • microalgae that have been treated to increase the amount of protein expression are cultured.
  • the amount of protein obtained from microalgae can be increased in the obtaining step. Therefore, the cost of the saccharification process can be more effectively reduced.
  • the method for cultivating microalgae according to the above embodiment includes a distillation step of distilling the fermented product produced in the fermentation step to separate the fermented product and the distillation residue. It supplies microalgae with the nutrients contained in the distillation residue. In this case, microalgae can be cultivated satisfactorily using the nutrients contained in the distillation residue generated in the distillation process. As a result, the amount of protein obtained from microalgae can be increased, and the cost of the saccharification process can be more effectively reduced.
  • the solid component separation step is performed after the saccharification step and before the fermentation step to separate solid components from sugar.
  • the timing of separating the solid components that have not been converted into sugar by the saccharification treatment is not particularly limited.
  • the fermentation step may be performed without separating the solid component and the sugar.
  • the fermented liquid produced in the fermentation process contains solid components that have not been converted into sugar by the saccharification treatment. Therefore, after the fermentation step and before the distillation step, a solid component separation step for separating solid components from the fermentation liquid may be performed.
  • nutrients contained in the incineration ash generated by burning at least one of the solid components and the distillation residue to generate power are supplied to the microalgae.
  • electricity and thermal energy can be obtained by burning the distillation residue produced in the distillation step.
  • the sugar obtained by saccharifying the starch accumulated in the microalgae cultured in the culture process is also fermented.
  • microalgae can be cultured using the carbon dioxide generated in the fermentation process as described above. From this microalgae it becomes possible to obtain biofuels such as ethanol. From the microalgae described above, it becomes possible to obtain, for example, biomass plastics. From the above microalgae, it becomes possible to obtain chemical products other than bioplastics. In addition, carbon dioxide generated when fermenting sugar obtained from microalgae can be used for culturing new microalgae. Therefore, it is possible to suppress the release of carbon dioxide into the atmosphere. However, it is not particularly limited to this. All microalgae cultured in the culture step may be used for protein production.
  • the power generation method using at least one of the solid component and the distillation residue is not limited to the direct combustion described above.
  • the power generation method using at least one of the solid component and the distillation residue may be, for example, gasification or methane fermentation.
  • At least one of the solid component and the distillation residue is thermally decomposed, for example, in a gasification furnace (not shown).
  • This generates combustible gas containing carbon dioxide gas.
  • the generated carbon dioxide gas can be supplied to the culture tank 10 and used for culturing microalgae.
  • the generated combustible gas is burned in, for example, a boiler (not shown). Thereby, electric power can be generated.
  • Carbon dioxide gas generated by this power generation can also be supplied to the culture tank 10 and used for culturing microalgae.
  • the energy obtained by power generation can be used, for example, to drive a culture apparatus.
  • the organic matter contained in at least one of the solid components and the distillation residue is decomposed by anaerobic fermentation by microorganisms.
  • Carbon dioxide gas and methane gas are generated in the process.
  • the generated carbon dioxide gas can be supplied to the culture tank 10 and used for culturing microalgae.
  • the generated methane gas is burned, for example, in a boiler (not shown). This enables power generation.
  • Carbon dioxide gas generated by this power generation can also be supplied to the culture tank 10 and used for culturing microalgae.
  • the energy obtained by power generation can be used, for example, to drive a culture apparatus.

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Abstract

微細藻の培養方法の取得工程では、培養工程で培養した微細藻からタンパク質を得る。糖化工程では、バイオマス材料を圧搾して得られ且つセルロースを含む圧搾残渣に、取得工程で得たタンパク質を糖化酵素として加えて、圧搾残渣を糖化処理する。発酵工程では、糖化工程で得られる糖と、バイオマス材料を圧搾して得られる搾汁液に含まれる糖との少なくとも何れか一方を発酵させて発酵物を生成する。培養工程では、発酵工程で生じる二酸化炭素を微細藻に供給する。

Description

微細藻の培養方法
　本発明は、微細藻の培養方法に関する。
　例えば、独立行政法人農畜産業振興機構が開設したインターネットサイトにおいて、ＵＲＬ：https://www.alic.go.jp/joho-s/joho07#001760.html（２０２１年２月２５日検索）には、「酵素法によるバガスからのバイオエタノール製造技術実証事業」が記載されている。公開日は２０１８年７月１０日であり、著者は斉藤聡志である。この文献に記載されるように、例えば、サトウキビの圧搾残渣（バガス）あるいは稲わらのような非可食のセルロース系バイオマスから製造されるバイオエタノールは、第二世代エタノールとも呼ばれている。第二世代エタノールは、例えば、サトウキビの搾汁液あるいはトウモロコシのような可食バイオマスを原料とするバイオエタノール（第一世代エタノール）とは異なり食糧と競合しないため早期普及が期待されている。
　第二世代エタノールの製造には、セルロース系バイオマスの主成分であるセルロースのような多糖をグルコースのような単糖に糖化する技術が必要である。この種の技術として、糖化酵素によりセルロースのような多糖を糖化する糖化工程が知られている。しかしながら、一般的に糖化酵素は高額であるため、糖化工程を低コスト化することは困難である。このことが第二世代エタノールの普及を妨げる要因の一つとなっている。
　また、第一世代エタノール及び第二世代エタノールの何れも、糖を発酵させてエタノールに変換する発酵工程を経て製造される。発酵工程では、糖に酵母を加えて嫌気条件を維持することにより、該糖をエタノールと二酸化炭素とに変化させる。地球温暖化への対策としてバイオエタノールを利用する観点からは、発酵工程で生成される二酸化炭素が大気中に放出されないことが好ましい。
　つまり、バイオマス材料からエタノールを生成するときに発生する二酸化炭素を有効に利用することが望まれる。また、セルロース系バイオマスを糖化する糖化工程を低コスト化することが望まれる。
　本発明は、上述した課題を解決することを目的とする。
　本発明の一態様は、微細藻を培養する培養工程と、前記培養工程で培養した微細藻からタンパク質を得る取得工程と、バイオマス材料を圧搾して得られ且つセルロースを含む圧搾残渣に、前記取得工程で得た前記タンパク質を糖化酵素として加えて、前記圧搾残渣を糖化処理する糖化工程と、前記糖化工程で得られる糖、及び前記バイオマス材料を圧搾して得られる搾汁液に含まれる糖の少なくとも何れか一方を発酵させて発酵物を生成する発酵工程と、を有し、前記培養工程では、前記発酵工程で生じる二酸化炭素を前記微細藻に供給する、微細藻の培養方法である。
　この微細藻の培養方法における発酵工程では、バイオマス材料の圧搾汁に含まれる糖、又はバイオマス材料の圧搾残渣（セルロース系バイオマス）を糖化工程で糖化して得られる糖、の少なくとも何れか一方を発酵させる。これにより、発酵物を生成する。培養工程では、発酵工程で発酵物とともに生成される二酸化炭素を微細藻に供給する。これにより、微細藻を良好に培養することができる。微細藻は、光合成による二酸化炭素の固定能力が高い。このため、発酵工程で生じる二酸化炭素を微細藻に供給して培養することで、当該二酸化炭素が大気中に放出されることを抑制できる。
　また、取得工程では、培養工程で培養した微細藻からタンパク質を得る。このタンパク質は、圧搾残渣を糖化する糖化酵素として機能する。上記の通り、発酵工程で生じる二酸化炭素を利用した培養工程により、微細藻が良好に培養されている。このため、微細藻から良好にタンパク質を得ることができる。このように取得工程で得たタンパク質を、圧搾残渣を糖化する糖化酵素として利用する。これにより、市販の糖化酵素の使用量を低減することないしはゼロとすることができる。その結果、糖化工程の低コスト化を図ることができる。
　以上から、この微細藻の培養方法によれば、バイオマス材料からエタノールを生成するときに発生する二酸化炭素を有効に利用することができる。しかも、セルロース系バイオマスを糖化する糖化工程を低コスト化することができる。
図１は、本発明の実施形態に係る微細藻の培養方法を説明する説明図である。
　本実施形態に係る微細藻の培養方法（以下、単に培養方法ともいう）では、微細藻を培養する。この微細藻は、例えば、光エネルギー、二酸化炭素及び水を利用した光合成により成長して、タンパク質を生成する。ここでのタンパク質は、セルロースのような多糖を糖化して単糖に転換する糖化酵素として機能する物質を指す。
　本実施形態では、微細藻には、タンパク質の発現量を増やす処理が施されている。この種の処理としては、公知の技術を採用することができる。処理前においてタンパク質の生成能力を備えていない微細藻に対しては、例えば、遺伝子組み換えが行われる。処理前においてタンパク質の生成能力を備える微細藻に対しては、例えば、ゲノム編集が行われる。
　なお、この培養方法を適用して培養される微細藻は、タンパク質を生成可能な藻であれば、制限されない。当該微細藻の一例としては、緑藻植物門の緑藻綱に分類される微細藻類が挙げられる。さらに具体的には、緑藻綱のクラミドモナス属に属するクラミドモナス・ラインハルディ（Ｃｈｌａｍｙｄｏｍｏｎａｓ　ｒｅｉｎｈａｒｄｔｉｉ）が挙げられる。また、酵素タンパク質発現のための形質転換に適した藻類として、ラン藻（シアノバクテリア等）やフェオダクチラム属の珪藻も挙げることができる。
　図１に示すように、本実施形態に係る培養方法は、培養工程と、取得工程と、糖化工程と、固体成分分離工程と、発酵工程と、蒸留工程と、を有する。培養工程では、微細藻を培養する。なお、培養工程の詳細については後述する。取得工程では、培養工程で培養した微細藻が生成したタンパク質を得る。なお、微細藻から得られるタンパク質は１種であってもよいし、２種以上であってもよい。取得工程では、微細藻からタンパク質を単離又は精製する通常の方法により、微細藻から抽出された状態のタンパク質を得てもよい。また、取得工程では、微細藻を破砕するのみで、タンパク質を抽出せずに細胞残渣を含んだままのタンパク質溶液を得てもよい。この場合、微細藻からタンパク質を抽出するプロセスを不要にできるため、取得工程のプロセスを簡略化することができる。
　糖化工程では、バイオマス材料を圧搾して得られる圧搾残渣に、取得工程で得たタンパク質を糖化酵素として加える。これにより、圧搾残渣を糖化処理（酵素糖化）する。上記の通り、取得工程で得たタンパク質は、微細藻から抽出されたタンパク質、又はタンパク質を含む破砕した微細藻である。バイオマス材料においては、例えば、サトウキビ又はテンサイのように、圧搾することで搾汁液と、圧搾残渣とが得られる。搾汁液には、ショ糖、グルコースのような糖が含まれる。圧搾残渣には、セルロースが含まれる。なお、バイオマス材料がサトウキビであった場合、圧搾残渣はバガスと呼ばれる。
　また、圧搾残渣には、セルロースの他に、例えば、ヘミセルロース又はリグニンが含まれていてもよい。セルロースは、複数のグルコースがグルコシド結合により重合した重合体である。ヘミセルロースは、例えば、グルコース、キシロース、マンノース及びガラクトースから選択される少なくとも１以上がグルコシド結合により重合した重合体であって、セルロース以外の水不溶性の多糖類をいう。リグニンは、多糖類（セルロース、ヘミセルロース）とともに、植物体細胞壁等を構成する成分である。
　本実施形態の糖化工程では、予め前処理が施されることにより、酵素糖化され易い状態となった圧搾残渣に対して糖化処理を施す。前処理は、例えば、圧搾残渣の構造の一部を破壊する処理である。前処理としては、化学的な方法、物理的な方法、生物的な方法、又はこれらを組み合わせた方法のような種々の方法を採用することができる。化学的な方法の一例としては、水熱処理、酸処理、アルカリ処理が挙げられる。水熱処理は、圧搾残渣の分解に熱水を利用する。酸処理は、圧搾残渣の分解に酸を利用する。アルカリ処理は、圧搾残渣の分解にアルカリを利用する。物理的な方法の一例としては、粉砕機又はミルで機械的に圧搾残渣を細かくする破砕処理が挙げられる。生物的な方法の一例としては、酵素を使って圧搾残渣に含まれる多糖の結合を切断する酵素処理が挙げられる。
　また、圧搾残渣にリグニンが含まれる場合、リグニンを圧搾残渣の残部（例えば、セルロース及びヘミセルロース）から分離してもよい。リグニンを分離する処理を行った後に前処理を行ってもよい。前処理を行った後であって糖化工程を行う前にリグニンを分離する処理を行ってもよい。また、前処理によってリグニンを分離してもよい。つまり、糖化工程では、リグニンが分離された圧搾残渣に糖化処理を施してもよい。
　糖化工程では、取得工程で得たタンパク質とともに、市販の糖化酵素を、前処理後の圧搾残渣に加えてもよい。この場合、取得工程で得たタンパク質を加える分、市販の糖化酵素の必要量は低減する。本実施形態では、糖化工程において圧搾残渣に加えられるタンパク質と、市販の糖化酵素との各々は、セルロースをグルコースのような単糖に分解する機能を有する。
　また、圧搾残渣にヘミセルロースが含まれる場合、糖化工程で圧搾残渣に加えられるタンパク質は、ヘミセルロースをキシロースのような単糖に分解する機能を有することが好ましい。糖化工程で圧搾残渣に市販の糖化酵素を加える場合には、上記のタンパク質と市販の糖化酵素との両方がヘミセルロースを単糖に分解する機能を有してもよい。上記のタンパク質に代えて、市販の糖化酵素がヘミセルロースを単糖に分解する機能を有してもよい。上記のタンパク質は、セルロースとヘミセルロースとの両方を分解する機能を有してもよい。市販の糖化酵素は、セルロースとヘミセルロースとの両方を分解する機能を有してもよい。上記のタンパク質を、セルロースを分解する機能を有するタンパク質と、これとは別のヘミセルロースを分解する機能を有するタンパク質とを複数種類併せて得てもよい。市販の糖化酵素を、セルロースを分解する機能を有する糖化酵素と、これとは別のヘミセルロースを分解する機能を有する糖化酵素とを複数種類併せて得てもよい。
　糖化工程を行うことで、グルコース及びキシロースのような糖と、糖化処理で糖に転換されなかった残部の固体成分とが得られる。本実施形態では、糖化工程の後、上記の糖（液体）から固体成分を分離する固体成分分離工程を行う。糖から固体成分を分離する方法は、例えば、フィルタープレスを採用することができるが、これには限定されない。
　次に、固体成分分離工程で固体成分と分離された糖、及び上記の搾汁液に含まれる糖との少なくとも何れか一方を発酵させて発酵物を生成する発酵工程を行う。発酵工程で行う発酵の一例としては、アルコール発酵が挙げられる。この場合、発酵工程により、糖をアルコール発酵させる。これにより、発酵物と、二酸化炭素とが生成される。発酵物は、例えば、エタノールのようなアルコールである。
　アルコール発酵の方法は、特に制限されないが、例えば、微生物を用いて行うことができる。具体的には、グルコースを分解して、エタノールのようなアルコールと、二酸化炭素とを生成可能な１種又は２種以上の微生物（アルコール発酵微生物）を用いてアルコール発酵を行うことができる。この種のアルコール発酵微生物の一例としては、イースト菌のような酵母が挙げられる。
　なお、発酵工程では、乳酸菌を用いた乳酸発酵を行ってもよい。発酵工程では、グルコース又はキシロースのような糖類を原料とする他の発酵を行ってもよい。例えば、乳酸発酵を行った場合、発酵工程では二酸化炭素の生成とともに、乳酸のような発酵物が生産される。例えば、この発酵物を重合させることにより、バイオマスプラスチックが得られる。また、発酵工程において、乳酸発酵以外の発酵を行った場合であっても、化成品の生成に活用可能な発酵物を得ることができる。つまり、発酵工程で得られる発酵物としては、アルコール（例えばエタノール）と、化成品前駆体（例えば乳酸）とが挙げられる。
　次に、発酵工程で生成した発酵物を蒸留して、発酵物と蒸留残渣とを分離する蒸留工程を行う。蒸留の方法は、特に制限されないが、例えば、オルダーショウ型蒸留塔を用いることができる。蒸留工程では、発酵工程で生成された発酵物を含む発酵液を、エタノールと、固形分が濃縮された蒸留残渣とに分離する。蒸留残渣には、例えば、窒素（Ｎ）、リン酸（Ｐ）、カリウム（Ｋ）、ミネラルのような微細藻の育成に必要な栄養素と、燃焼させることが可能な固体成分とが含まれる。
　ここで、上記の培養工程について具体的に説明する。培養工程では、培養装置を用いて微細藻を培養する。培養装置は、培養槽１０と、二酸化炭素供給部１２とを備える。培養槽１０は、培養液及び微細藻を収容する。二酸化炭素供給部１２は、培養槽１０に二酸化炭素を供給する。また、培養装置は、不図示ではあるが、例えば、ポンプを駆動することにより、培養槽１０内の培養液を循環させる循環部を備えてもよい。
　上記の発酵工程で生じた二酸化炭素は回収される。回収された二酸化炭素は、二酸化炭素供給部１２に送られる。二酸化炭素供給部１２は、例えば、コンプレッサ（ブロワ）又はファンを駆動する。これにより、二酸化炭素供給部１２は、二酸化炭素（二酸化炭素ガス）を培養槽１０内の微細藻に供給する。つまり、培養工程では、発酵工程で生じる二酸化炭素を微細藻に供給する。この二酸化炭素と、培養液中の水と、微細藻に照射される光のエネルギーとを使って、微細藻は光合成を行う。これによって、微細藻は成長し、増殖する。微細藻の光合成に用いる光エネルギーは、太陽光でもよいし、人工的な光源でもよい。
　培養工程では、上記の蒸留工程で得られた蒸留残渣から固体成分を除いた栄養素を微細藻に供給してもよい。培養工程では、後述するボイラー１４の焼却灰から抽出した栄養素を微細藻に供給してもよい。これらにより、微細藻の成長及び増殖が促される。ひいては、微細藻によるタンパク質の生成が促される。なお、蒸留残渣に栄養素が含まれる場合、抽出した栄養素を微細藻に供給してもよい。また、蒸留残渣を、栄養素の抽出を行うことなくボイラー１４で燃焼させてもよい。これにより栄養素を含む焼却灰を得た後、該焼却灰から栄養素を抽出して微細藻に供給してもよい。
　培養工程では、上記の糖化工程における糖化処理で糖に転換されなかった固体成分と、蒸留残渣の固体成分との少なくとも一方を用いた発電によりエネルギーを得る。このエネルギーを利用して、培養装置を駆動する。なお、上記の糖化工程における糖化処理で糖に転換されなかった固体成分は、固体成分分離工程で分離された固体成分である。本実施形態では、ボイラー１４で固体成分と蒸留残渣との少なくとも一方を直接燃焼させて発電する。これにより得られるエネルギーを利用して、培養装置を駆動する。すなわち、上記のエネルギーを利用して、例えば、二酸化炭素供給部１２のコンプレッサ又はファンを駆動する。上記のエネルギーを利用して、例えば、循環部のポンプを駆動する。微細藻の培養にＬＥＤのような人工光源を用いる場合には、例えば、上記のエネルギーを利用して、人工光源を駆動する。なお、糖化工程を行う前に、例えば、圧搾残渣に含まれるリグニンを分離していた場合、これらのリグニンを上記の固体成分とともにボイラー１４で燃焼させてもよい。これによりエネルギーを得ることができる。
　上記の固体成分をボイラー１４で燃焼させると、二酸化炭素と焼却灰とが生じる。二酸化炭素供給部１２は、発酵工程で生じた二酸化炭素のみではなく、上記の固体成分を燃焼させることで生じる二酸化炭素も併せて培養槽１０内の微細藻に供給する。なお、二酸化炭素供給部１２は、さらに、例えば、工場から排出される二酸化炭素と、大気中の二酸化炭素を含む空気とを併せて培養槽１０に供給してもよい。また、焼却灰には、微細藻の育成に必要な栄養素が含まれる。このため、これらの栄養素を焼却灰から抽出して培養槽１０に供給してもよい。
　上記のように培養工程で培養した微細藻は、タンパク質を生成するとともに、光合成により細胞内に澱粉を生成する。このため、十分な澱粉の蓄積量がある場合は、微細藻に細胞壁を破砕する破砕処理を施す。その後、澱粉を糖化することが可能な１種又は２種以上の糖化酵素を加える。これにより、グルコースのような糖を得ることができる。なお、澱粉を糖化する糖化酵素の好適な例としては、αアミラーゼ及びグルコアミラーゼが挙げられる。αアミラーゼ及びグルコアミラーゼを併用することが一層好ましい。
　上記のようにして微細藻内に蓄積された澱粉を糖化して得られる糖は、種々の用途に用いることができる。本実施形態では、微細藻内に蓄積された澱粉を糖化して得られる糖を、糖化工程で得られる糖及び搾汁液に含まれる糖の少なくとも一方とともに、発酵工程で発酵させる。これによって、培養工程で培養した微細藻に由来する糖からも発酵物を生成することが可能になる。
　以上から、本実施形態に係る微細藻の培養方法における発酵工程では、バイオマス材料の圧搾汁に含まれる糖、又はバイオマス材料の圧搾残渣（セルロース系バイオマス）を糖化工程で糖化して得られる糖、の少なくとも何れか一方を発酵させる。これにより、発酵物（例えば、エタノール、化成品前駆体）を生成する。培養工程では、発酵工程で発酵物とともに生成される二酸化炭素を微細藻に供給する。これにより、微細藻を良好に培養することができる。微細藻は、光合成による二酸化炭素の固定能力が高い。このため、発酵工程で生じる二酸化炭素を微細藻に供給して培養することで、当該二酸化炭素が大気中に放出されることを抑制できる。
　また、取得工程では、培養工程で培養した微細藻からタンパク質を得る。このタンパク質は、圧搾残渣を糖化する糖化酵素として機能する。上記の通り、発酵工程で生じる二酸化炭素を利用した培養工程により、微細藻が良好に培養されている。このため、微細藻から良好にタンパク質を得ることができる。このように取得工程で得たタンパク質を、圧搾残渣を糖化する糖化酵素として利用する。これにより、市販の糖化酵素の使用量を低減することないしはゼロとすることができる。その結果、糖化工程の低コスト化を図ることができる。
　従って、本実施形態に係る微細藻の培養方法によれば、バイオマス材料からエタノールを生成するときに発生する二酸化炭素を有効に利用することができる。しかも、セルロース系バイオマス（圧搾残渣）を糖化する糖化工程を低コスト化することができる。
　上記の実施形態に係る微細藻の培養方法の培養工程では、タンパク質の発現量を増やす処理が施された微細藻を培養する。この場合、取得工程で微細藻から得られるタンパク質量を増やすことができる。このため、糖化工程を一層効果的に低コスト化することができる。
　上記の実施形態に係る微細藻の培養方法では、発酵工程で生成した発酵物を蒸留して、発酵物と蒸留残渣とを分離する蒸留工程を有し、培養工程では、蒸留工程で得られた蒸留残渣に含まれる栄養素を微細藻に供給する。この場合、蒸留工程で生じる蒸留残渣に含まれる栄養素を利用して微細藻を良好に培養することができる。ひいては、微細藻から得られるタンパク質量を増やして、糖化工程を一層効果的に低コスト化することができる。
　上記の実施形態に係る微細藻の培養方法の培養工程では、糖化処理で糖に転換されなかった固体成分と、蒸留工程で得られた蒸留残渣との少なくとも一方を用いた発電により得られる電気及び熱エネルギーを利用して、微細藻の培養装置を駆動する。この場合、例えば、糖化処理で生じる固体成分と、蒸留工程で生じる蒸留残差とを有効に利用して、微細藻を培養することが可能になる。
　上記の実施形態では、糖化工程の後であって、発酵工程の前に固体成分分離工程を行って、糖から固体成分を分離する。しかしながら、糖化処理で糖に転換されなかった固体成分を分離するタイミングは、特に制限されない。例えば、糖化工程の後、固体成分と糖とを分離しないまま発酵工程を行ってもよい。この場合、発酵工程で生成される発酵液に、糖化処理で糖に転換されなかった固体成分が含まれる。そこで、発酵工程の後であって、蒸留工程の前に、発酵液から固体成分を分離する固体成分分離工程を行ってもよい。また、固体成分が含まれる発酵液に対して蒸留工程を行ってもよい。この場合、糖化処理で糖に転換されなかった固体成分が蒸留残渣とともに発酵物から分離される。
　上記の実施形態に係る微細藻の培養方法の培養工程では、固体成分と蒸留残渣との少なくとも一方を用いた発電により生じる二酸化炭素を微細藻に供給する。この場合、上記の通り固体成分と蒸留残渣との少なくとも一方を燃焼させることでエネルギーが得られる。この燃焼により生じる二酸化炭素を利用して微細藻を良好に培養することができる。また、固体成分と蒸留残渣との少なくとも一方を燃焼させることで生じる二酸化炭素が大気中に放出されることも抑制できる。
　上記の実施形態に係る微細藻の培養方法の培養工程では、固体成分と蒸留残渣との少なくとも一方を燃焼させて発電することで生じる焼却灰に含まれる栄養素を微細藻に供給する。この場合、上記の通り、蒸留工程で生じる蒸留残渣を燃焼させて電気及び熱エネルギーを得ることができる。さらに、この燃焼で生じた焼却灰に含まれる栄養素を利用して微細藻を良好に培養することも可能になる。
　上記の実施形態に係る微細藻の培養方法の発酵工程では、培養工程で培養した微細藻内に蓄積された澱粉を糖化して得られた糖も発酵させる。この場合、上記のように発酵工程で生じる二酸化炭素を利用して微細藻を培養することができる。この微細藻から、例えば、エタノールのようなバイオ燃料を得ることが可能になる。上記の微細藻から、例えば、バイオマスプラスチックを得ることが可能になる。上記の微細藻から、バイオプラスチックとは別の化成品を得ることが可能になる。また、微細藻から得られた糖を発酵させるときに生じる二酸化炭素を新たな微細藻の培養に利用することができる。このため、二酸化炭素が大気中に放出されることを抑制できる。しかしながら、特にこれには制限されない。培養工程で培養した微細藻の全てをタンパク質生成用として用いてもよい。
　なお、本発明は、上述した実施形態に限らず、本発明の要旨を逸脱することなく、種々の構成を取り得る。
　例えば、上記の実施形態では、糖化工程での糖化処理で糖に転換されなかった固体成分と、蒸留工程で得られた蒸留残渣との少なくとも一方をボイラー１４で直接燃焼させる。これにより発電する。しかしながら、固体成分と蒸留残渣との少なくとも一方を用いた発電方法は、上記の直接燃焼には制限されない。固体成分と蒸留残渣との少なくとも一方を用いた発電方法は、例えば、ガス化、メタン発酵であってもよい。
　ガス化による発電では、固体成分と蒸留残渣との少なくとも一方を、例えば、不図示のガス化炉により熱分解する。これにより、二酸化炭素ガスを含む可燃性ガスを発生させる。発生した二酸化炭素ガスについては、培養槽１０に供給して微細藻の培養に利用できる。発生した可燃性ガスについては、例えば、不図示のボイラーで燃焼させる。これにより、発電を行うことができる。この発電により生じる二酸化炭素ガスも、培養槽１０に供給して微細藻の培養に利用できる。また、発電で得られるエネルギーは、例えば、培養装置の駆動に利用できる。
　メタン発酵による発電では、固体成分と蒸留残渣との少なくとも一方に含まれる有機物を、微生物による嫌気性発酵により分解する。その過程で二酸化炭素ガスとメタンガスとが発生する。発生した二酸化炭素ガスについては、培養槽１０に供給して微細藻の培養に利用できる。発生したメタンガスについては、例えば、不図示のボイラーで燃焼させる。これにより発電を行うことができる。この発電により生じる二酸化炭素ガスも、培養槽１０に供給して微細藻の培養に利用できる。また、発電で得られるエネルギーは、例えば、培養装置の駆動に利用できる。

Claims (8)

  1. 　微細藻を培養する培養工程と、
    　前記培養工程で培養した微細藻からタンパク質を得る取得工程と、
    　バイオマス材料を圧搾して得られ且つセルロースを含む圧搾残渣に、前記取得工程で得た前記タンパク質を糖化酵素として加えて、前記圧搾残渣を糖化処理する糖化工程と、
    　前記糖化工程で得られる糖、及び前記バイオマス材料を圧搾して得られる搾汁液に含まれる糖の少なくとも何れか一方を発酵させて発酵物を生成する発酵工程と、
    　を有し、
    　前記培養工程では、前記発酵工程で生じる二酸化炭素を前記微細藻に供給する、微細藻の培養方法。
  2. 　請求項１記載の微細藻の培養方法において、
    　前記培養工程では、前記タンパク質の発現量を増やす処理が施された前記微細藻を培養する、微細藻の培養方法。
  3. 　請求項１又は２記載の微細藻の培養方法において、
    　前記発酵工程で生成した前記発酵物を蒸留して、前記発酵物と蒸留残渣とを分離する蒸留工程を有する、微細藻の培養方法。
  4. 　請求項３記載の微細藻の培養方法において、
    　前記培養工程では、前記蒸留工程で得られた前記蒸留残渣に含まれる栄養素を前記微細藻に供給する、微細藻の培養方法。
  5. 　請求項３又は４記載の微細藻の培養方法において、
    　前記培養工程では、前記糖化処理で糖に転換されなかった固体成分と、前記蒸留工程で得られた前記蒸留残渣との少なくとも一方を用いた発電により得られる電気及び熱エネルギーを利用して、前記微細藻の培養装置を駆動する、微細藻の培養方法。
  6. 　請求項５記載の微細藻の培養方法において、
    　前記培養工程では、前記固体成分と前記蒸留残渣との少なくとも一方を用いた発電により生じる二酸化炭素を前記微細藻に供給する、微細藻の培養方法。
  7. 　請求項５又は６記載の微細藻の培養方法において、
    　前記培養工程では、前記固体成分と前記蒸留残渣との少なくとも一方を燃焼させて発電することで生じる焼却灰に含まれる栄養素を前記微細藻に供給する、微細藻の培養方法。
  8. 　請求項１～７の何れか１項に記載の微細藻の培養方法において、
    　前記発酵工程では、前記培養工程で培養した前記微細藻内に蓄積された澱粉を糖化して得られた糖も発酵させる、微細藻の培養方法。
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Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101519671A (zh) * 2008-02-27 2009-09-02 中国科学院过程工程研究所 皇竹草分级转化燃料乙醇联产发电、纸浆的工艺方法
JP2011045277A (ja) * 2009-08-26 2011-03-10 Toshiba Corp セルロース系エタノール生産システムおよび生産方法
JP2013039085A (ja) * 2011-08-18 2013-02-28 Ihi Corp エタノールの製造方法
CN104031946A (zh) * 2013-03-06 2014-09-10 国网新源控股有限公司北京非粮醇电联产技术研发中心 一种免脱毒处理的纤维素乙醇生产方法
JP2019041681A (ja) * 2017-09-01 2019-03-22 三菱マテリアル株式会社 バイオマス資源を用いた藻類産生油の製造方法
KR20200108745A (ko) * 2019-03-11 2020-09-21 연세대학교 산학협력단 바이오연료 생산시스템 및 이를 이용한 바이오연료 생산방법

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101519671A (zh) * 2008-02-27 2009-09-02 中国科学院过程工程研究所 皇竹草分级转化燃料乙醇联产发电、纸浆的工艺方法
JP2011045277A (ja) * 2009-08-26 2011-03-10 Toshiba Corp セルロース系エタノール生産システムおよび生産方法
JP2013039085A (ja) * 2011-08-18 2013-02-28 Ihi Corp エタノールの製造方法
CN104031946A (zh) * 2013-03-06 2014-09-10 国网新源控股有限公司北京非粮醇电联产技术研发中心 一种免脱毒处理的纤维素乙醇生产方法
JP2019041681A (ja) * 2017-09-01 2019-03-22 三菱マテリアル株式会社 バイオマス資源を用いた藻類産生油の製造方法
KR20200108745A (ko) * 2019-03-11 2020-09-21 연세대학교 산학협력단 바이오연료 생산시스템 및 이를 이용한 바이오연료 생산방법

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