WO2019045533A1 - Line-1 조절 영역에서 cpg 부위의 메틸화 수준을 이용한 유방암 진단용 조성물, 키트, 및 이를 이용한 방법 - Google Patents

Line-1 조절 영역에서 cpg 부위의 메틸화 수준을 이용한 유방암 진단용 조성물, 키트, 및 이를 이용한 방법 Download PDF

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    • C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/154—Methylation markers

Definitions

  • a kit for diagnosing breast cancer or breast cancer by measuring the methylation level of CpG region in the LINE-1 regulatory region, and a diagnostic method using the kit is provided.
  • composition for breast cancer diagnosis using a biomarker in breast cancer-specific cfDNA there is provided a composition for breast cancer diagnosis using a biomarker in breast cancer-specific cfDNA.
  • a kit for breast cancer diagnosis using a biomarker in breast cancer specific cfDNA is provided.
  • a method for diagnosing breast cancer is provided by detecting a biomarker in a breast cancer specific cfDNA.
  • compositions for breast cancer diagnosis comprising an agent that measures the level of methylation of a CpG region in a regulatory region of a polynucleotide encoding long interspersed nuclear element-1 (LINE-1).
  • LINE-1 long interspersed nuclear element-1
  • breast cancer refers to breast cancer, and may also be referred to interchangeably as “ breast cancer ".
  • the breast cancer may include mammary gland breast cancer, lobule breast cancer, or a combination thereof.
  • diagnosis refers to the determination of a disease name, and may include a disease name of a breast cancer, a disease state, stage, etiology, presence or absence of complication, prognosis, and recurrence.
  • LINE-1 Long interspersed nuclear element-1
  • L1 Long interspersed nuclear element-1
  • LINE-1 can be about 17% of the human genome.
  • LINE-1 can be about 6000 bp of DNA.
  • LINE-1 may include two open reading frames (ORFs) and an untranslated region (UTR).
  • ORFs open reading frames
  • UTR untranslated region
  • the nucleotide sequence of canine LINE-1 may be located at the 41245th nucleotide to the 47245th nucleotide from the 5'-end of the chromosome 26, clone XX-397I18 (GenBank Accession No. AC188543.15).
  • regulatory region refers to a nucleic acid region capable of increasing or decreasing the expression of a particular gene.
  • the regulatory region may be in the 5 ', 3', or ORFs of the ORF.
  • the regulatory region may be, for example, a promoter, a 5'-UTR, an operator, an enhancer, and a silencer.
  • the nucleotide sequence of the LINE-1 regulatory region may comprise the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 (LINE-1 of the open genome) or SEQ ID NO: 2 (LINE-1 of the human genome).
  • methylation refers to the attachment of methyl groups to bases constituting DNA.
  • the methylation may be that the methyl group is attached to the cytosine of the CpG nucleotide sequence (CpG site).
  • CpG site the CpG nucleotide sequence
  • the CpG site may be the 103rd nucleotide to the 104th nucleotide from the 5 'end in SEQ ID NO: 1 of canine LINE-1.
  • the CpG site may be the 482nd nucleotide to the 483st nucleotide from the 5'end of SEQ ID NO: 2 of human LINE-1.
  • the methylation level of the CpG region can be measured by restriction enzyme digestion, polymerase chain reaction (PCR), or methylation-specific PCR.
  • the methylation-specific PCR can be performed, for example, by using methylation-specific polymerase chain reaction (MSP), real-time methylation-specific polymerase chain reaction (PCR), PCR using methylated DNA- Quantitative PCR.
  • MSP methylation-specific polymerase chain reaction
  • PCR real-time methylation-specific polymerase chain reaction
  • PCR methylated DNA- Quantitative PCR.
  • the methylation level of the CpG region can be measured by pyrosequencing, bisulfite sequencing.
  • the preparation may be a primer set for CpG site amplification or a CpG site specific probe; Methylation-sensitive restriction enzymes; And methylated non-sensitive restriction enzymes.
  • the primer may be an oligonucleotide that provides a polymerization initiation point in a polymerization reaction by a polymerase, and the primer may be used in a nucleic acid amplification reaction.
  • the primer is hybridized with a region complementary to the target sequence.
  • amplification refers to increasing the number of copies of the target sequence or its complementary sequence.
  • the nucleic acid amplification reaction can be performed by a method known in the art. Amplification of nucleic acids involves either a method requiring multiple cycles during amplification or a method performed at a single temperature. Examples of cycling techniques include those that require thermal cycling. Methods that require thermocycling include polymerase chain reaction (PCR). PCR is known in the art.
  • Isothermal amplification methods include, but are not limited to, strand displacement amplification (SDA), helicase dependent amplification (HDA), exonuclease dependent amplification, recombinase polymerase amplification RPA), loop mediated amplification (LAMP), nucleic acid based amplification (NASBA and TMA), or a combination thereof.
  • SDA strand displacement amplification
  • HDA helicase dependent amplification
  • RPA recombinase polymerase amplification
  • LAMP loop mediated amplification
  • NASBA and TMA nucleic acid based amplification
  • the primers may be included in one, or two or more sets depending on the amplification method selected.
  • the length of the primer is about 5 to about 100 nucleotides (hereinafter referred to as 'nt'), about 10 to about 80 nt, about 10 to about 60 nt, about 10 to about 50 nt, about 10 to about 40 nt, 10 to about 30 nt, or about 20 to about 30 nt.
  • 'nt' nucleotides
  • the primer set may comprise polynucleotides selected from the group consisting of SEQ ID NOS: 3, 4, 7,
  • the probe refers to an oligonucleotide that specifically binds to a target sequence.
  • Probes include polynucleotides that include specific portions designed to hybridize in a sequence-specific manner, for example, with complementary regions of a specific nucleic acid sequence, such as a target nucleic acid sequence.
  • the probe may comprise DNA, RNA, or a combination thereof, and may be labeled with a detectable label.
  • the primer or the probe may be labeled at the end or inside thereof with a fluorescent substance, a chemiluminescent substance or a radioactive isotope.
  • restriction enzyme refers to an endonuclease that identifies and cleaves a specific base sequence in DNA.
  • the nucleotide sequence that the restriction enzyme identifies is called the recognition sequence.
  • methylation sensitive restriction enzyme refers to an enzyme that can not be cleaved or cleaved according to the presence of methylation of the CpG site in the recognition sequence of a restriction enzyme.
  • the methylation sensitive restriction enzyme may be HpaII, BsiSI, or a combination thereof.
  • the target sequence can be amplified by subsequent PCR without the nucleic acid sample being cleaved by HpaII, BsiSI, or a combination thereof.
  • the nucleic acid sample may be cleaved by HpaII, BsiSI, or a combination thereof, and the target sequence may not be amplified by subsequent PCR have.
  • the methylated non-sensitive restriction enzyme refers to an enzyme capable of recognizing the recognition sequence and cleaving it, regardless of the methylation of the CpG site in the recognition sequence of the restriction enzyme.
  • the methylated non-sensitive restriction enzyme may be MspI. Regardless of whether the CpG site has been methylated in the regulatory region of the polynucleotide encoding LINE-1, the nucleic acid sample may be cleaved by MspI and the target sequence may not be amplified by subsequent PCR. A nucleic acid sample cleaved by MspI can be used as a negative control. Differences in amplification of DNA fragmented with HpaII and MspI may indicate differences in the methylation level of the CpG region in the regulatory region of the polynucleotide encoding LINE-1.
  • kits for breast cancer diagnosis comprising an agent for measuring the methylation level of a CpG region in a regulatory region of a polynucleotide encoding LINE-1 and a reagent for nucleic acid amplification.
  • the breast cancer, diagnosis, LINE-1, regulatory region, CpG region, methylation level, and formulation are as described above.
  • the nucleic acid amplification reagent may be a polymerase, a dNTP, a buffer, a nucleic acid, a coenzyme, a fluorescent substance, or a combination thereof.
  • the polymerase is, for example, Taq polymerase.
  • Another aspect is a method comprising: obtaining a nucleic acid sample from a biological sample isolated from an individual; And measuring the methylation level of the CpG site in the regulatory region of the polynucleotide encoding LINE-1 from the obtained nucleic acid sample.
  • the method comprises obtaining a nucleic acid sample from a biological sample isolated from an individual.
  • the subject may be a mammal, including a human, dog, mouse, cow, pig, horse, sheep, or cat.
  • the subject may be an individual suspected of having or afflicted with breast cancer.
  • the biological sample refers to a sample obtained from the individual.
  • the biological sample may be, for example, blood, plasma, serum, bone marrow fluid, lymph fluid, saliva, fluid, mucosal fluid, amniotic fluid, or a combination thereof.
  • the nucleic acid sample may be cell free DNA (cfDNA).
  • cfDNA refers to a cleaved DNA present in the bloodstream, not in the cell.
  • the method of obtaining the nucleic acid sample from the biological sample can be carried out using a method commonly used in the art.
  • the nucleic acid sample can be obtained using, for example, a phenol / chloroform extraction method, an SDS extraction method, a CTAB (Cetyl Trimethyl Ammonium Bromide) separation method, and a commercially available DNA extraction kit.
  • the method comprises measuring the methylation level of the CpG region in the regulatory region of the polynucleotide encoding LINE-1 from the resulting nucleic acid sample.
  • the step of measuring the methylation level of the CpG region may include a step of cleaving the nucleic acid sample by adding a methylation-sensitive restriction enzyme, a methylated non-sensitive restriction enzyme, or a combination thereof to the nucleic acid sample.
  • the nucleic acid sample can be cleaved according to whether the CpG region is methylated in the regulatory region of the polynucleotide encoding LINE-1.
  • the method may further comprise amplifying the nucleic acid sample after the step of cleaving the nucleic acid sample.
  • the target sequence of the nucleic acid sample can be amplified.
  • the target sequence of the nucleic acid sample may not be amplified.
  • the method may further comprise determining that the subject is at a higher risk of developing breast cancer if the methylation level of the CpG region in the regulatory region of the polynucleotide encoding LINE-1 is lower than the methylation level of the normal control.
  • the methylation level of the CpG region in the regulatory region of the polynucleotide encoding LINE-1 is small compared to the methylation level of the normal control, that is, if the low methylation of the CpG region is detected in the regulatory region of the polynucleotide encoding LINE-1 .
  • the individual can be determined to have a high likelihood of getting breast cancer.
  • Another aspect is a method comprising: obtaining a nucleic acid sample from a biological sample isolated from an individual; And
  • composition for breast cancer diagnosis using a biomarker in breast cancer-specific cfDNA, a kit, and a method using the same can diagnose breast cancer by a simple method using blood, and can diagnose breast cancer with high accuracy and sensitivity.
  • FIG. 1 is a schematic diagram of a method for diagnosing breast cancer using LINE-1 methylation level of plasma-free cell-free DNA (cfDNA).
  • FIG. 2 is a graph showing the ratio of methylated CpG relative to normal cells calculated from the methylation level of CpG region in normal cells and the methylation level of CpG region in cancer cells (A: human, B: dog).
  • FIG. 3 is a graph showing the patterns of methylated dCCGG sequences between breast cancer and normal samples when amplified using a primer set for CCGG at two different positions (A: using a specific set of dCCGG primers, B: Using a non-specific dCCGG primer set for amplification).
  • FIGS. 4A and 4B are diagrams showing nucleotide sequences corresponding to mammary tumor-specific methylation sites and specific dCCGG amplification reverse primers in LINE-1 regulatory regions in dogs and humans, respectively (Conversely, the same base sequence as the forward primer, : Complementary base sequence to reverse primer, underline: methylation site, ⁇ : mammary cancer-specific methylation site).
  • Fig. 5 is a graph showing the total amount (ng) of cfDNA in the blood of a dog and a normal human having cancer.
  • FIG. 6 is a graph showing the total amount of blood cfDNA (A) and the methylation level (B) of LINE-1 calculated.
  • FIG. 7 is a graph showing the sensitivity and specificity of methylation levels of LINE-1 to mammary tumors or mammary benign tumors (N: normal, O.T: other cancers, B.T .: benign tumors, M.T: malignant tumors or ductal carcinomas).
  • Figure 8 is a graph (C) of the amount of total cfDNA (A) in the human sample, the methylation level (B) of the LINE-1 calculated, and the sensitivity and specificity.
  • Example 1 Identification of methylation level of LINE-1 in cell-free DNA present in blood of breast cancer patients
  • the methylation level of LINE-1 gene was confirmed in human breast cancer cell line and mammary gland cancer cell line.
  • human breast epithelial cell line MCF-10a American Type Culture Collection (ATCC)
  • human breast cancer cell line MBA-MD-231 ATCC
  • human breast cancer cell line MCF7 ATCC
  • Abs Nors is a complete normal beagle dog tissue obtained from a laboratory dog of Seoul National University Animal Hospital.
  • Near Nors is a tissue obtained from cancer tissues around a dog, and obtained from Seoul National University Animal Hospital.
  • cfPCs and " cfMC” were purchased from the Nobuo Sasaki laboratory (Japan), cfPCs were cell lines made from dogs of primary breast cancer tissues, and cfMC was a cell line made from metastasized cancer cells.
  • Genomic DNA was isolated from the prepared cells using DNeasy Blood & Tissue Qiag kit (Qiagen). The isolated genomic DNA was subjected to bisulfite conversion using an EZ DNA Methylation-Lightning kit (Zymo Research) to replace all non-methylated cytosine (C) bases with Uridine (U) bases. Then, the LINE-1 regulatory region was amplified by PCR method, and the base sequence was analyzed by cloning. 1 LINE-1 nucleotide sequence was confirmed from the open genome based on the nucleotide sequence of LINE-1 ORF2 mRNA (GenBank Accession No. AB012223.1) known from the dog.
  • the methylation level of the C region of the LINE-1 gene was calculated.
  • the ratio of methylated CpG relative to normal cells was calculated from the methylation level of CpG region in normal cells and the methylation level of CpG region in cancer cells.
  • the results are shown in Fig. 2 (A: human, B: dog) .
  • the methylation level of the regulatory region of LINE-1 was significantly lower in the human breast cancer cell line and the dog breast cancer cell line than the methylation level of the regulatory region of LINE-1 in normal cells.
  • the methylation level of LINE-1 gene was significantly reduced in cancers compared to normal cells.
  • LINE-1 Transposable elements such as the LINE-1 regulatory region, have a very large number of methylation sites.
  • methylation sites specific for breast cancer were identified by primer sequences to identify methylation sites that were significantly associated with breast cancer.
  • Genomic DNA isolated from two MT cell lines was prepared (B: mammary glandular tissues of normal beagle, Chmm and Cipm: cell lines made from transferred cancer, Chmp and cimp: primary tumor tissues without metastasis ≪ / RTI >
  • Real-time PCR was performed using the prepared genomic DNA as a template and a primer set of the following sequence that targets CCGG sequences at two other positions.
  • the nucleotide sequence of the LINE-1 regulatory region in the genomic DNA is shown in SEQ ID NO: 1 (open) and SEQ ID NO: 2 (human).
  • Reverse primer for specific dCCGG amplification 5'-CCGTCTTCCTACCTTGATAG-3 '(SEQ ID NO: 4)
  • Non-specific dCCGG reverse primer for amplification 5'-CTCCTGTCCTGGGGACACTC-3 '(SEQ ID NO: 6)
  • FIG. Figure 3 shows the pattern of methylated CCGG sequence between breast cancer and normal sample when amplified using a primer set targeting CCGG at two other positions.
  • FIG. 4A and FIG. 4B show the base sequence corresponding to the mammary tumor-specific methylation site and the specific reverse CCGG amplification primer in the LINE-1 regulatory region (conformation: the same base sequence as the forward primer, : Complementary base sequence to reverse primer, underline: methylation site, ⁇ : mammary cancer-specific methylation site).
  • Plasma Plasma was isolated from the blood of the acquired dogs except for peripheral blood mononuclear cells (PBMC). PBMC and plasma were separated by centrifugation at 400 g for 30 minutes using Ficoll-paque (GE healthcare). From the separated plasma, cfDNA was obtained using a QIAamp Circulating Nucleic Acid kit. The amount of cfDNA obtained was quantified using a NanoDrop spectrophotometer (Thermo Fisher Scientific), and the total amount (ng) of cfDNA was calculated. The total amount of the calculated cfDNA is shown in Fig.
  • the total amount of cfDNA in the blood of the normal individuals and the cancer-affected individuals did not show any significant difference.
  • the total amount of cfDNA showed a very large variation between samples, which may be a difference between individuals and that the results may be affected by sample preparation.
  • the cfDNA prepared as described in Example 1.3 was used as a sample and it was confirmed whether the methylation level of LINE-1 in the cfDNA was significantly associated with the mammary tumor.
  • the sample was incubated at 95 DEG C for 3 minutes to denature the DNA, and 50 cycles were repeated with one cycle consisting of 95 DEG C for 10 seconds, 60 DEG C for 10 seconds, and 72 DEG C for 30 seconds.
  • HpaII is a methylation-sensitive restriction enzyme that can cleave a non-methylated restriction enzyme recognition sequence (CCGG).
  • MspI is a methylated non-sensitive restriction enzyme, which has the same recognition sequence as HpaII. If the CpG site of the restriction enzyme recognition sequence is methylated, MspI can cleave the recognition sequence, but HpaII can not be cleaved. Unless the CpG region of the restriction enzyme recognition sequence is methylated, LINE-1 is cleaved by HpaII and not amplified in PCR.
  • LINE-1 can not be cleaved by HpaII and can be amplified in PCR. Since MspI can cleave recognition sequences regardless of methylation, the MspI-treated group was used as a control. The difference in the amplified CT (threshold cycle) value of the segmented DNA in each of HpaII and MspI indicates the methylation level at that position.
  • the methylation level of LINE-1 was calculated using the following equation:
  • CT MspI CT value of real time PCR for MspI-cleaved sample
  • CT value of real time PCR for CT HpaII HpaII digested sample
  • the total amount of blood cfDNA is shown in Fig. 6A, and the methylation level of the calculated LINE-1 is shown in Fig. 6B.
  • the total amount of blood cfDNA in normal individuals and mammary glands was not significantly different, but the level of methylation of LINE-1 was significantly different.
  • These differences showed very high specificity and sensitivity in both mammary tumors and mammary benign tumors. Such high specificity and sensitivity did not appear in the samples (Fig. 7, N: normal, O.T .: other cancer, B.T .: benign tumor, M.T .: malignant tumor or mammary cancer).
  • Example 1.4 it was determined whether the level of methylation of LINE-1 in human blood cfDNA was significantly associated with breast cancer.
  • Plasma was obtained from the collected blood. As described in Example 1.4, cfDNA was obtained from plasma, and the obtained cfDNA was treated with HpaII and MspI and amplified by real-time PCR.
  • the primer set for human LINE-1 amplification used in real-time PCR is as follows:
  • Reverse primer for human hCCGG amplification 5'-GCTCCACCCAGTTCGAGCT-3 '(SEQ ID NO: 8)
  • the methylation level of LINE-1 was then calculated.
  • the total amount of cfDNA, the calculated methylation level of LINE-1, and a graph of sensitivity and specificity are shown in Figs. 8A to 8C, respectively.
  • Fig. 8A the amount of cfDNA slightly increased in healthy normal controls and breast cancer patients, but decreased in other cancers.
  • the level of methylation of LINE-1 in blood cfDNA of breast cancer patients was significantly lower than that of normal controls.
  • hypomethylation of LINE-1 in blood cfDNA is a significant biomarker for the diagnosis of breast cancer (Fig. 8B).
  • the human was also able to show an AUC value of 0.78, indicating the possibility of biomarker (FIG. 8C).

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Abstract

유방암 특이적 cfDNA 내 바이오마커를 이용한 유방암 진단용 조성물, 키트, 및 이를 이용한 방법에 의할 경우, 혈액을 이용하여 간편한 방법으로 유방암을 진단할 수 있고, 유방암을 높은 정확도 및 민감도로 진단할 수 있다.

Description

LINE-1 조절 영역에서 CPG 부위의 메틸화 수준을 이용한 유방암 진단용 조성물, 키트, 및 이를 이용한 방법
LINE-1 조절 영역에서 CpG 부위의 메틸화 수준을 측정함으로써, 유방암 또는 유선암을 진단하기 위한 조성물, 키트, 및 이를 이용한 진단 방법에 관한 것이다.
유방암 또는 유선암은 여성과 암컷 반려견에서 가장 빈번하게 발생하는 암이다. 또한 유전적 소인보다 후성적 요인이 발암에 차지하는 비중이 높은 것으로 알려져 있다. 이러한 유방암을 진단하기 위해 다양한 시도가 진행되어 왔고, 최근에는 혈액의 무세포 DNA(cell-free DNA: cfDNA)를 이용한 진단이 시도되고 있다. 혈액 내의 소량 존재하는 cfDNA의 경우, 그 양의 변화가 여러 질병 상태와 연관되어 있고, 특정 유전자들이 가지는 유전적 변이와 후성유전적 조절이 질병상태의 cfDNA에서 검출될 수 있음이 보고되고 있다(Uehiro et al., Breast Cancer Research (2016) 18:129). 그러나, cfDNA는 혈액 내에 매우 적은 양으로 존재하고 사람마다 편차가 크다는 것은, cfDNA에서 특정 유전자의 변이를 검출하여 진단 마커로 이용하는데 있어 큰 제약으로 작용한다.
개와 사람의 유전체는 약 절반이 내인성 역전사인자들(endogenous retroelements)로 채워져 있으며, 이러한 내인성 역전사인자의 기능은 최근 다양한 연구를 통해 이들의 기능이 밝혀지고 있다. 이 내인성 역전사인자들은 일반적으로 정상의 경우 과메틸화(hypermethylation)되어 있으나, 질병 상태에서 메틸화 수준이 변할 수 있는 것으로 보고되고 있다. 최근 이들 역전자인자의 저메틸화(hypomethylation)와 암의 연관성에 대하여 보고되고 있다.
따라서, 유방암을 쉬운 방법으로 시료를 채취하고, 진단의 정확성이 우수한 유방암 특이적 cfDNA 내 바이오마커를 선별하는 것이 필요하다.
유방암 특이적 cfDNA 내 바이오마커를 이용한 유방암 진단용 조성물을 제공된다.
유방암 특이적 cfDNA 내 바이오마커를 이용한 유방암 진단용 키트를 제공한다.
유방암 특이적 cfDNA 내 바이오마커를 검출하여 유방암 진단 방법을 제공한다.
유방암 특이적 cfDNA 내 바이오마커를 검출하여 유방암 진단에 필요한 정보를 제공하는 방법을 제공한다.
일 양상은 LINE-1(Long interspersed nuclear element-1)을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역(regulatory region)에서 CpG 부위의 메틸화 수준을 측정하는 제제를 포함하는 유방암 진단용 조성물을 제공한다.
용어 "유방암(breast cancer)"는 유방에 생긴 암을 말하고, 상호교환적으로 "유선암"으로도 불릴 수 있다. 상기 유방암은 유선(mammary gland) 유방암, 소엽(lobule) 유방암, 또는 이들의 조합을 포함할 수 있다.
용어 "진단(diagnosis)"은 병명을 판정하는 일을 말하고, 유방암의 병명, 병의 상태, 병기, 병인, 합병증의 유무, 예후, 및 재발 등을 포함할 수 있다.
LINE-1(Long interspersed nuclear element-1)은 전이성 인자(transposable elements) 중의 하나로서, 상호교환적으로 "L1"으로도 불릴 수 있다. LINE-1은 인간 게놈의 약 17%를 이룰 수 있다. LINE-1은 약 6000 bp의 DNA일 수 있다. LINE-1은 2개의 열린해독틀(open reading frame: ORF) 및 비번역 영역(untranslated region: UTR)을 포함할 수 있다. 개 LINE-1의 뉴클레오티드 서열은 개의 26번 염색체, 클론 XX-397I18(GenBank Accession No. AC188543.15)의 5'-말단으로부터 41245번째 뉴클레오티드 내지 47245번째 뉴클레오티드에 위치한 것일 수 있다. 사람 LINE-1(LINE-1.3 또는 L1.3)의 뉴클레오티드 서열은 GenBank Accession No. L19088.1의 서열일 수 있다.
용어 "조절 영역(regulatory region)"은 특정 유전자의 발현을 증가 또는 감소시킬 수 있는 핵산 부위를 말한다. 상기 조절 영역은 ORF의 5' 방향, 3' 방향, 또는 ORF들 사이에 존재할 수 있다. 상기 조절 영역은 예를 들어 프로모터, 5'-UTR, 오퍼레이터(operator), 인핸서(enhancer), 및 사일런서(silencer)일 수 있다. LINE-1 조절 부위의 뉴클레오티드 서열은 서열번호 1(개 유전체의 LINE-1) 또는 서열번호 2(사람 유전체의 LINE-1)의 뉴클레오티드 서열을 포함할 수 있다.
용어 "메틸화(methylation)"은 DNA를 구성하는 염기에 메틸기가 부착되는 것을 말한다. 상기 메틸화는 CpG 뉴클레오티드 서열(CpG 부위)의 시토신에 메틸기가 부착되는 것일 수 있다. 메틸화가 일어난 경우 그로 인하여 전사 인자의 결합이 방해를 받게 되어 특정 유전자의 발현이 억제될 수 있다. 반대로, 비메틸화 또는 저메틸화가 일어나는 경우 특정 유전자의 발현이 증가할 수 있다.
상기 CpG 부위는 개 LINE-1의 서열번호 1에서 5' 말단으로부터 103번째 뉴클레오티드 내지 104번째 뉴클레오티드일 수 있다. 상기 CpG 부위는 사람 LINE-1의 서열번호 2에서 5' 말단으로부터 482번째 뉴클레오티드 내지 483번째 뉴클레오티드일 수 있다.
상기 CpG 부위의 메틸화 수준은 제한효소 절단 후 중합효소 연쇄 반응(polymerase chain reaction: PCR) 또는 메틸화 특이적인 PCR에 의해 측정될 수 있다. 메틸화 특이적인 PCR은 예를 들어 메틸화 특이적 PCR(methylation-specific polymerase chain reaction: MSP), 실시간 메틸화 특이적 PCR(real time methylation-specific polymerase chain reaction), 메틸화 DNA 특이적 결합 단백질을 이용한 PCR, 또는 정량적 PCR이다. 상기 CpG 부위의 메틸화 수준은 피로시퀀싱(pyrosequencing), 비술페이트(bisulfite) 시퀀싱에 의해 측정될 수 있다.
상기 제제는 CpG 부위 증폭용 프라이머 세트 또는 CpG 부위 특이적 프로브; 메틸화 민감성 제한효소; 및 메틸화 비민감성 제한효소로 이루어진 군으로부터 선택될 수 있다.
상기 프라이머(primer)는 중합효소에 의한 중합 반응에서 중합 개시점을 제공하는 올리고뉴클레오티드(oligonucleotide)로, 상기 프라이머는 핵산 증폭 반응에 사용되는 것일 수 있다. 상기 프라이머는 상기 표적 서열에 상보적인 영역과 혼성화된다. 용어 "증폭(amplification)"은 표적 서열 또는 그의 상보적인 서열의 카피 수를 증가시키는 것을 나타낸다. 상기 핵산 증폭 반응은 당업계에 알려진 방법에 의하여 수행될 수 있다. 핵산의 증폭은 증폭 동안 복수의 사이클을 필요로 하는 방법 또는 단일 온도에서 수행되는 방법을 포함한다. 순환 방법(cycling techniques)의 예는 열 순환을 필요로 하는 방법을 포함한다. 열 순환을 필요로 하는 방법은 중합효소 연쇄반응(polymerase chain reaction: PCR)을 포함한다. PCR은 당업계에 알려져 있다. 등온 증폭 방법은 가닥 치환 증폭(strand displacement amplification: SDA), 헬리카제 의존적 증폭(helicase dependant amplification: HDA), 엑소뉴클레아제 의존적 증폭(exonuclease dependant amplification), 리콤비나제 중합효소증폭(recombinase polymerase amplification: RPA), 루프 매개된 증폭(loop mediated amplification: LAMP), 핵산 기반 증폭(nucleic acid based amplification: NASBA 및 TMA), 또는 이들의 조합일 수 있다. 상기 프라이머는 선택되는 증폭 방법에 따라 1개, 또는 2개 이상의 세트로 포함될 수 있다.
상기 프라이머의 길이는 약 5 내지 약 100 뉴클레오티드(이하, 'nt'라고 함), 약 10 내지 약 80 nt, 약 10 내지 약 60 nt, 약 10 내지 약 50 nt, 약 10 내지 약 40 nt, 약 10 내지 약 30 nt, 또는 약 20 내지 약 30 nt일 수 있다.
상기 프라이머 세트는 서열번호 3, 4, 7, 및 8로 이루어진 군으로부터 선택된 폴리뉴클레오티드를 포함할 수 있다.
상기 프로브(probe)는 표적 서열에 특이적으로 결합하는 올리고뉴클레오티드를 의미한다. 프로브는 예를 들어 표적 핵산 서열과 같은 특이적인 핵산 서열의 상보적인 영역을 갖는 서열-특이적인 방법으로 혼성화되도록 고안된 특이적인 부분을 포함하는 폴리뉴클레오티드를 포함한다. 상기 프로브는 DNA, RNA, 또는 이들의 조합을 포함할 수 있고, 검출가능한 표지로 표지될 수 있다.
상기 프라이머 또는 프로브는 그의 말단 또는 내부에 형광 물질, 화학발광물질(chemiluminescent) 또는 방사성 동위원소 등으로 표지된 것일 수 있다.
용어 "제한효소(restriction enzyme)"은 DNA의 특정한 염기서열을 식별하고 이를 절단하는 엔도뉴클레아제(endonuclease)를 말한다. 제한효소가 식별하는 염기서열은 인식 서열이라고 한다.
용어 "메틸화 민감성 제한효소(methylation sensitive restriction enzyme)"는 제한효소의 인식 서열 중 CpG 부위의 메틸화의 존재에 따라 절단하거나 절단할 수 없는 효소를 말한다. 상기 메틸화 민감성 제한효소는 HpaII, BsiSI, 또는 이들의 조합일 수 있다. LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위가 메틸화될 경우, 핵산 시료가 HpaII, BsiSI, 또는 이들의 조합에 의해 절단되지 않고 그 후의 PCR에 의해 표적 서열이 증폭될 수 있다. 반대로, LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위가 메틸화되지 않을 경우, 핵산 시료가 HpaII, BsiSI, 또는 이들의 조합에 의해 절단되고, 그 후의 PCR에 의해 표적 서열이 증폭되지 않을 수 있다.
상기 메틸화 비민감성 제한효소는 제한효소의 인식 서열 중 CpG 부위의 메틸화와 관계 없이 인식 서열을 식별하여 절단할 수 있는 효소를 말한다. 상기 메틸화 비민감성 제한효소는 MspI일 수 있다. LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위가 메틸화되었는지 여부와 무관하게, 핵산 시료가 MspI에 의해 절단될 수 있고, 그 후의 PCR에 의해 표적 서열이 증폭되지 않을 수 있다. MspI에 의해 절단된 핵산 시료는 음성 대조군으로 이용될 수 있다. HpaII와 MspI으로 절편화된 DNA의 증폭량의 차이는 LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위의 메틸화 수준의 차이를 나타낼 수 있다.
다른 양상은 LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위의 메틸화 수준을 측정하는 제제 및 핵산 증폭용 시약을 포함하는 유방암 진단용 키트를 제공한다.
상기 유방암, 진단, LINE-1, 조절 영역, CpG 부위, 메틸화 수준, 및 제제는 전술한 바와 같다.
상기 핵산 증폭용 시약은 중합효소, dNTP, 완충제, 핵산, 조효소, 형광물질, 또는 이들의 조합일 수 있다. 상기 중합 효소는 예를 들어 Taq 중합효소이다.
다른 양상은 개체로부터 분리된 생물학적 시료로부터 핵산 시료를 수득하는 단계; 및 수득된 핵산 시료로부터 LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위의 메틸화 수준을 측정하는 단계를 포함하는 유방암 진단 방법을 제공한다.
상기 방법은 개체로부터 분리된 생물학적 시료로부터 핵산 시료를 수득하는 단계를 포함한다.
상기 개체는 사람, 개, 마우스, 소, 돼지, 말, 양, 또는 고양이를 포함한 포유동물일 수 있다. 상기 개체는 유방암을 앓거나 앓는 것으로 의심되는 개체일 수 있다.
상기 생물학적 시료는 상기 개체로부터 수득된 시료를 말한다. 상기 생물학적 시료는 예를 들면 혈액, 혈장, 혈청, 골수액, 림프액, 타액, 누액, 점막액, 양수, 또는 이들의 조합일 수 있다.
상기 핵산 시료는 무세포 DNA(cell free DNA: cfDNA)일 수 있다. 상기 cfDNA는 세포 내에 존재하지 않고, 혈류에 존재하는 절단된 DNA를 말한다.
상기 생물학적 시료로부터 핵산 시료를 수득하는 방법은 당해 업계에서 통상적으로 사용되는 방법을 사용하여 수행될 수 있다. 상기 핵산 시료는 예를 들어, 페놀/클로로포름 추출법, SDS 추출법, CTAB(Cetyl Trimethyl Ammonium Bromide) 분리법, 및 상업적으로 이용가능한 DNA 추출 키트를 이용하여 수득될 수 있다.
상기 방법은 수득된 핵산 시료로부터 LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위의 메틸화 수준을 측정하는 단계를 포함한다.
CpG 부위의 메틸화 수준을 측정하는 단계는 상기 핵산 시료에 메틸화 민감성 제한효소, 메틸화 비민감성 제한효소, 또는 이들의 조합을 가하여 핵산 시료를 절단하는 단계를 포함할 수 있다. 상기 핵산 시료는 LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위의 메틸화 여부에 따라 절단될 수 있다.
상기 방법은 핵산 시료를 절단하는 단계 후에 상기 핵산 시료를 증폭하는 단계를 더 포함할 수 있다. 상기 핵산 시료가 메틸화 민감성 제한효소 또는 메틸화 비민감성 제한효소에 의해 절단되지 않을 경우, 상기 핵산 시료의 표적 서열은 증폭될 수 있다. 반대로, 상기 핵산 시료가 메틸화 민감성 제한효소 또는 메틸화 비민감성 제한효소에 의해 절단될 경우, 상기 핵산 시료의 표적 서열은 증폭되지 않을 수 있다.
상기 방법은 LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위의 메틸화 수준이 정상 대조군의 메틸화 수준에 비해 작은 경우 상기 개체는 유방암에 걸릴 확률이 높은 것으로 결정하는 단계를 더 포함할 수 있다.
LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위의 메틸화 수준이 정상 대조군의 메틸화 수준에 비해 작은 경우, 즉 LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위의 저메틸화가 검출되는 경우, 상기 개체는 유방암에 걸릴 확률이 높은 것으로 결정될 수 있다.
다른 양상은 개체로부터 분리된 생물학적 시료로부터 핵산 시료를 수득하는 단계; 및
수득된 핵산 시료로부터 LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위의 메틸화 수준을 측정하는 단계를 포함하는 유방암 진단을 위하여 정보를 제공하는 방법을 제공한다.
유방암 특이적 cfDNA 내 바이오마커를 이용한 유방암 진단용 조성물, 키트, 및 이를 이용한 방법에 의할 경우, 혈액을 이용하여 간편한 방법으로 유방암을 진단할 수 있고, 유방암을 높은 정확도 및 민감도로 진단할 수 있다.
도 1은 혈장 내 존재하는 무세포 DNA(cfDNA)의 LINE-1 메틸화 수준을 이용한 유방암 진단 방법의 모식도 이다.
도 2는 정상 세포에서 CpG 부위의 메틸화 수준과 암 세포에서 CpG 부위의 메틸화 수준으로부터 산출된 정상 세포에 대해 상대적인 메틸화된 CpG의 비를 나타내는 그래프이다(A: 사람, B: 개).
도 3은 다른 두 위치의 CCGG를 대상으로 하는 프라이머 세트를 사용하여 증폭하였을 때, 유방암과 정상 시료 간의 메틸화된 dCCGG 서열의 양상을 나타내는 그래프이다(A: 특이적 dCCGG 증폭용 프라이머 세트 사용, B: 비특이적 dCCGG 증폭용 프라이머 세트 사용).
도 4a 및 도 4b는 각각 개 및 사람에서 LINE-1 조절 부위에서 유선암 특이적인 메틸화 부위 및 특이적 dCCGG 증폭용 역방향 프라이머에 상응하는 염기 서열을 나타내는 그림이다(▨: 정방향 프라이머와 동일한 염기 서열, ▧: 역방향 프라이머에 상보적인 염기 서열, 밑줄: 메틸화 부위, ▒: 유선암 특이적 메틸화 부위).
도 5는 암에 걸린 개와 정상인 개의 혈액 중 cfDNA의 총 양(ng)을 나타내는 그래프이다.
도 6은 혈액 cfDNA 전체 양(A) 및 산출된 LINE-1의 메틸화 수준(B)을 나타내는 그래프이다.
도 7은 유선암 또는 유선 양성 종양에 대한 LINE-1의 메틸화 수준의 민감 및 특이도를 나타내는 그래프이다(N: 정상, O.T.: 기타 암, B.T.: 양성 종양, M.T.: 악성 종양 또는 유선암).
도 8은 사람의 시료에서 총 cfDNA의 양(A), 산출된 LINE-1의 메틸화 수준(B), 및 민감도와 특이도의 그래프(C)이다.
이하 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나, 이들 실시예는 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1. 유방암 환자의 혈액내 존재하는 무세포 DNA에서 LINE-1의 메틸화 수준의 확인
1. 사람과 반려견의 유방암 세포주에서 LINE-1의 메틸화 수준의 확인
사람 유방암 세포주 및 개의 유선암 유래 세포에서 LINE-1 유전자의 메틸화 수준을 확인하였다.
구체적으로, 인간 유방 상피 세포주 MCF-10a(American Type Culture Collection: ATCC), 인간 유방암 세포주 MBA-MD-231(ATCC) 및 인간 유방암 세포주 MCF7(ATCC)를 준비하였다. 개의 "Abs Nors"는 완전 정상의 비글견 조직으로, 서울대학교 동물병원 실험견으로부터 수득하였고, "Near Nors"는 반려견의 암조직 주변에서 얻어진 조직으로, 서울대학교 동물병원으로부터 입수하였다. "cfPCs" 및 "cfMC"는 Nobuo Sasaki 연구실(일본)에서 구입하였고, cfPCs는 개의 1차적 유선암 조직으로부터 만들어진 세포주이고, cfMC는 전이된 암세포에서 만들어진 세포주이다.
준비된 세포에서 DNeasy Blood & Tissue Qiag키트(Qiagen )를 사용하여 게놈 DNA를 분리하였다. 분리된 게놈 DNA를 EZ DNA Methylation-Lightning 키트(Zymo Research)를 사용하여 메틸화되지 않은 시토신(C) 염기를 모두 우리딘(U) 염기로 치환하는 비술피트 변환(bisulfite conversion)을 수행하였다. 이후, PCR 방법을 통해 LINE-1 조절 부위를 증폭하고, 클로닝을 거쳐 염기서열을 분석하였다. 개의 LINE-1 염기서열은 개에서 알려진 LINE-1 ORF2의 mRNA (GenBank Accession No. AB012223.1) 뉴클레오티드 서열을 바탕으로 개 유전체로부터 LINE-1 전체 서열을 확인하였다. 개의 26번 염색체, 클론 XX-397I18의 5'-말단으로부터 41245번째 뉴클레오티드 내지 47245번째 뉴클레오티드 위치에서 완전한 LINE-1 구조를 찾을 수 있었다(GenBank Accession No. AC188543.15).
LINE-1 유전자의 C 부위의 메틸화 수준을 산출하였다. 정상 세포에서 CpG 부위의 메틸화 수준과 암 세포에서 CpG 부위의 메틸화 수준으로부터, 정상 세포에 대해 상대적인 메틸화된 CpG의 비를 산출하고, 그 결과를 도 2에 나타내었다(A: 사람, B: 개).
도 2에 나타난 바와 같이, 정상 세포에서 LINE-1의 조절 부위의 메틸화 수준에 비해, 사람 유방암 세포주 및 개의 유선암 유래 세포에서 LINE-1의 조절 부위의 메틸화 수준이 유의하게 낮았다. 따라서, 개와 사람 모두에서, LINE-1 유전자의 메틸화 수준은 정상 세포에 비해 암에서 유의하게 감소되어 있음을 확인하였다.
2. 유방암과 연관성이 있는 LINE-1 메틸화 부위의 확인
LINE-1 역전사인자(transposable element), 예를 들어 LINE-1 조절 부위에는 매우 많은 수의 메틸화 부위가 존재한다. LINE-1 역전사인자의 수많은 메틸화 부위들 중에서 유방암과 유의하게 연관성이 있는 메틸화 부위를 확인하기 위하여, 프라이머 서열에 따라 유방암 특이적인 LINE-1 메틸화 양상이 나타나는지 확인하였다.
실시예 1.1에 기재된 바와 같이, 개의 MT 세포주로부터 분리된 게놈 DNA를 준비하였다(B: 정상비글의 유선조직, Chmm 및 Cipm: 전이된 암으로부터 만들어진 세포주, Chmp 및 cimp: 전이되지않은 1차 종양조직으로부터 생성된 세포주).
준비된 게놈 DNA을 주형으로 사용하고, 다른 두 위치의 CCGG 서열을 표적으로 하는 하기 서열의 프라이머 세트를 사용하여 실시간 PCR을 수행하였다. 게놈 DNA 중 LINE-1 조절 부위의 염기 서열은 서열번호 1(개) 및 서열번호 2(사람)로 기재하였다.
특이적 dCCGG 증폭용 정방향 프라이머: 5'-GGAAGAGTAGGGTCTCCAAATC-3' (서열번호 3)
특이적 dCCGG 증폭용 역방향 프라이머: 5'-CCGTCTTCCTACCTTGATAG-3' (서열번호 4)
비특이적 dCCGG 증폭용 정방향 프라이머: 5'-AGTTCGCGCTTCTATCAAGGT-3' (서열번호 5)
비특이적 dCCGG 증폭용 역방향 프라이머: 5'-CTCCTGTCCTGGGGACACTC-3' (서열번호 6)
실시간 PCR을 수행하여 LINE-1 메틸화 수준을 산출하고, 그 결과를 도 3에 나타내었다. 도 3은 다른 두 위치의 CCGG를 대상으로 하는 프라이머 세트를 사용하여 증폭하였을 때, 유방암과 정상 시료 간의 메틸화된 CCGG 서열의 양상을 보여준다.
도 3에 나타난 바와 같이, 특이적 dCCGG 증폭용 프라이머 세트를 사용한 경우, 암과 정상 시료 간에 메틸화 양상의 차이가 분명하였다. 그러나, 유사한 조절부위라 하더라도, 비특이적 dCCGG 증폭용 프라이머 세트를 사용한 경우 암과 정상 시료 간에 메틸화 양상의 차이가 분명하지 않았다. 또한, LINE-1의 조절 부위가 아닌 LINE-1의 ORF 2 위치의 dCCGG 서열의 경우, 암의 메틸화 수준이 오히려 정상의 메틸화 수준보다 약간 높게 나타났다. 따라서, 특이적 dCCGG 증폭용 프라이머 세트가 표적으로 하는 위치가 유선암 특이적인 메틸화 부위임을 확인하였다.
LINE-1 조절 부위에서 유선암 특이적인 메틸화 부위 및 특이적 CCGG 증폭용 역방향 프라이머에 상응하는 염기 서열을 도 4a(개) 및 도 4b(사람)에 나타내었다(▨: 정방향 프라이머와 동일한 염기 서열, ▧: 역방향 프라이머에 상보적인 염기 서열, 밑줄: 메틸화 부위, ▒: 유선암 특이적 메틸화 부위).
3. 무세포 DNA의 양과 개의 유선암의 관련성
사람의 경우, 암 환자의 혈액 중의 무세포 DNA(cell free DNA: cfDNA)의 양이 정상인의 혈액 중 cfDNA의 양에 비해 증가한다고 알려져 있다. 개의 경우에도, 암에 걸린 개체의 혈액 중 cfDNA의 양이 정상인 개체에 비해 유의하게 차이가 있는지 여부를 확인하였다.
암에 걸린 개와 정상인 개의 혈액을 서울대학교 동물병원과 해마루 동물병원으로부터 입수하였다. 입수된 개의 혈액으로부터 혈구세포(Peripheral blood mononuclear cell: PBMC)를 제외한 혈장을 분리하였다. Ficoll-paque(GE healthcare)를 사용하고, 400g에서 30분간 원심분리하여 PBMC와 혈장을 분리하였다. 분리된 혈장으로부터 QIAamp Circulating Nucleic Acid 키트를 사용하여 cfDNA를 수득하였다. 수득된 cfDNA의 양은 NanoDrop 분광광도계(Thermo Fisher Scientific)를 사용하여 정량하고, cfDNA의 총 양(ng)을 산출하였다. 산출된 cfDNA의 총 양을 도 5에 나타내었다.
도 5에 나타난 바와 같이, 개의 정상 개체와 암에 걸린 개체에서 혈액 중 cfDNA의 총 양은 유의적 차이를 나타내지 않았다. 또한, cfDNA의 총 양은 시료 간의 편차가 매우 크게 나타났는데, 이는 개체 간의 차이일 수도 있고, 시료 준비 과정에 의해 그 결과가 영향을 받을 수 있음을 보여준다.
4. 개의 유선암과 혈액 cfDNA에서 LINE-1 메틸화 수준의 관련성
실시예 1.3에 기재된 바와 같이 준비된 cfDNA를 시료로 하고, cfDNA에서 LINE-1의 메틸화 수준이 유선암과 유의한 관련성이 있는지 여부를 확인하였다.
우선, 유선암에 걸린 개 19 마리, 양성 종양 개 15마리, 기타 암 개 11마리, 및 정상인 개 11마리(총 56마리)를 채혈하고, 혈액으로부터 혈장을 수득하였다. 혈장에서 cfDNA를 수득하고, 수득된 cfDNA를 정량하였다. 동량의 cfDNA에 HpaII 제한효소(엔지노믹스, 한국) 및 MspI 제한효소(엔지노믹스, 한국)을 가하였다.
그 후, 실시간 PCR에서, 시료를 95℃에서 3분 동안 인큐베이션하여 DNA를 변성시키고, 95℃에서 10초, 60℃에서 10초, 및 72℃에서 30초를 1 사이클로 하여 50 사이클을 반복하였다.
HpaII는 메틸화 민감성 제한효소로서, 메틸화되지 않은 제한효소 인식 서열(CCGG)을 절단할 수 있다. MspI은 메틸화 비민감성 제한효소로서, HpaII와 인식 서열이 동일한 제한효소이다. 제한효소 인식 서열의 CpG 부위가 메틸화되면, MspI은 인식 서열을 절단할 수 있으나, HpaII는 절단할 수 없다. 제한효소 인식 서열의 CpG 부위가 메틸화되어 있지 않으면, LINE-1은 HpaII에 의해 절단되어 PCR에서 증폭되지 않는다. 반대로, 제한효소 인식 서열의 CpG 부위가 메틸화되어 있으면, LINE-1은 HpaII에 의해 절단되지 않아 PCR에서 증폭될 수 있다. MspI은 메틸화 여부와 상관 없이 인식 서열을 절단할 수 있으므로, MspI 처리군은 대조군으로 사용되었다. HpaII와 MspI 각각에서 절편화된 DNA의 증폭 CT(threshold cycle) 값 차이는 해당 위치의 메틸화 수준을 나타낸다. LINE-1의 메틸화 수준은 하기 수학식을 이용하여 산출하였다:
메틸화된 LINE-1 = 2^-[delta][delta]CT, [delta]CT = CT(HpaII)-CT(MspI), [deltadelta]CT = [delta]CT(Cancer) - [delta]CT(healthy).
(CT MspI: MspI-절단된 시료에 대한 실시간 PCR의 CT 값, CT HpaII: HpaII 절단된 시료에 대한 실시간 PCR의 CT 값)
혈액 cfDNA 전체 양을 도 6의 A에 나타내고, 산출된 LINE-1의 메틸화 수준을 도 6의 B에 나타내었다. 도 6의 A 및 B에 나타난 바와 같이, 정상 개체와 유선암 개체의 혈액 cfDNA 전체 양은 큰 차이가 나지 않지만, LINE-1의 메틸화 수준은 유의한 차이가 있었다. 이러한 차이는 각각 개의 유선암 및 유선 양성 종양 모두에서 매우 높은 특이도와 감도를 나타내었다. 이렇게 높은 특이도와 감도는 시료에서는 나타나지 않았다(도 7, N: 정상, O.T.: 기타 암, B.T.: 양성 종양, M.T.: 악성 종양 또는 유선암).
5. 사람의 유방암과 혈액 cfDNA에서 LINE-1 메틸화 수준의 관련성
실시예 1.4와 유사하게, 사람 혈액 cfDNA에서 LINE-1의 메틸화 수준이 유방암과 유의하게 관련되어 있는지 여부를 확인하였다.
유방암 환자 26명과 정상인 10명의 혈액을 삼성병원으로부터 수집하였다. 유방암 환자군의 연령은 32세 내지 64세였고, 유방암 시료는 3개 시료 0 병기, 12시료는 I 병기, 10시료는 II 병기, 1개의 시료는 III 병기였다. 암 종류와 관련하여는 ER, PR, 및 HER-2에 대해 +++/++-/---를 모두 포함하고 있는 것으로 확인되었다.
수집된 혈액으로부터 혈장을 수득하였다. 실시예 1.4에 기재된 바와 같이, 혈장으로부터 cfDNA를 수득하고, 수득된 cfDNA를 HpaII와 MspI로 처리하고, 실시간 PCR로 증폭하였다. 실시간 PCR에서 사용된 사람 LINE-1 증폭용 프라이머 세트는 하기와 같다:
사람 hCCGG 증폭용 정방향 프라이머: 5'-CTACGCCCACGGAATCTCGC-3' (서열번호 7)
사람 hCCGG 증폭용 역방향 프라이머: 5'-GCTCCACCCAGTTCGAGCT-3' (서열번호 8)
그후 LINE-1의 메틸화 수준을 산출하였다. 총 cfDNA의 양, 산출된 LINE-1의 메틸화 수준, 및 민감도와 특이도의 그래프를 각각 도 8의 A 내지 C에 나타내었다.
도 8의 A에 나타난 바와 같이, 건강한 정상 대조군과 유방암 환자 시료에서 cfDNA의 양은 약간 증가하고 오히려 기타 암에서는 감소한 양상으로 나타났다. 하지만, 유방암 환자의 혈액 cfDNA에서 LINE-1의 메틸화 수준은 정상 대조군에 비해 유의하게 감소하였다. 따라서, 혈액 cfDNA에서 LINE-1의 저메틸화는 유방암 진단에 유의한 바이오마커임을 확인하였다(도 8의 B). 개 만큼의 높은 감도와 특이도를 나타내지는 못했지만, 사람에서도 0.78의 AUC 값을 나타내어 바이오마커 가능성을 보였다(도 8의 C).

Claims (13)

  1. LINE-1(Long interspersed nuclear element-1)을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역(regulatory region)에서 CpG 부위의 메틸화 수준을 측정하는 제제를 포함하는 유방암 진단용 조성물.
  2. 청구항 1에 있어서, 상기 CpG 부위는 서열번호 1에서 5' 말단으로부터 103번째 뉴클레오티드 내지 104번째 뉴클레오티드, 또는 서열번호 2에서 5' 말단으로부터 482번째 뉴클레오티드 내지 483번째 뉴클레오티드인 것인 조성물.
  3. 청구항 1에 있어서, 상기 제제는
    CpG 부위 증폭용 프라이머 세트 또는 CpG 부위 특이적 프로브;
    메틸화 민감성 제한효소; 및
    메틸화 비민감성 제한효소로 이루어진 군으로부터 선택된 것인 조성물.
  4. 청구항 3에 있어서, 상기 프라이머 세트는 서열번호 3, 4, 7, 및 8로 이루어진 군으로부터 선택된 폴리뉴클레오티드를 포함하는 것인 조성물.
  5. 청구항 3에 있어서, 상기 메틸화 민감성 제한효소는 HpaII, BsiSI, 또는 이들의 조합인 것인 조성물.
  6. 청구항 3에 있어서, 상기 메틸화 비민감성 제한효소는 MspI인 것인 조성물.
  7. LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위의 메틸화 수준을 측정하는 제제 및 핵산 증폭용 시약을 포함하는 유방암 진단용 키트.
  8. 개체로부터 분리된 생물학적 시료로부터 핵산 시료를 수득하는 단계; 및
    수득된 핵산 시료로부터 LINE-1을 암호화하는 폴리뉴클레오티드의 조절 영역에서 CpG 부위의 메틸화 수준을 측정하는 단계를 포함하는 유방암 진단 방법.
  9. 청구항 8에 있어서, 상기 개체는 사람, 개, 마우스, 소, 돼지, 말, 양, 또는 고양이인 것인 방법.
  10. 청구항 8에 있어서, 상기 핵산 시료는 무세포 DNA(cell free DNA: cfDNA)인 것인 방법.
  11. 청구항 8에 있어서, CpG 부위의 메틸화 수준을 측정하는 단계는 상기 핵산 시료에 메틸화 민감성 제한효소, 메틸화 비민감성 제한효소, 또는 이들의 조합을 가하여 핵산 시료를 절단하는 단계를 포함하는 것인 방법.
  12. 청구항 11에 있어서, 상기 방법은 핵산 시료를 절단하는 단계 후에 상기 핵산 시료를 증폭하는 단계를 더 포함하는 것인 방법.
  13. 청구항 8에 있어서, 상기 방법은 상기 CpG 부위의 메틸화 수준이 정상 대조군의 메틸화 수준에 비해 작은 경우 상기 개체는 유방암에 걸릴 확률이 높은 것으로 결정하는 단계를 더 포함하는 것인 방법.
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