WO2016159377A1 - がんの治療薬のスクリーニング方法 - Google Patents

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WO2016159377A1
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cancer
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泰広 山田
克憲 蝉
山本　拓也
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Kyoto University NUC
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Kyoto University NUC
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology

Definitions

  • the present invention relates to a method for screening for a therapeutic drug for cancer.
  • molecular targeting drugs that is, therapeutic drugs that directly target proteins related to important intracellular signals related to cancer cell growth and progression
  • searches for proteins that can become new drug discovery targets are being actively pursued.
  • target proteins for cancer treatment include proteins encoded by genes that are unique or overexpressed in cancer cells.
  • Non-patent Document 1 a technique for reprogramming somatic cells has been developed and attempts have been made to reinitialize cancer cells. Such attempts have been focused on changing the properties of cancer cells themselves. There are no reports on screening for cancer drugs using cancer cell reprogramming.
  • An object of the present invention is to provide a method for screening for a therapeutic drug for cancer.
  • the present inventors have found that when initializing cancer cells, the target cells (that is, important intracellular signals related to cancer cell growth / progression). Repression of the expression of genes that are known to be related) enhances reprogramming, in other words, the proteins encoded by these target genes maintain their characteristics as cancer cells, And found that it has the effect of suppressing the fate change of cancer cells. Furthermore, the present inventors have found that the enhanced initialization depends on the expression of transposable elements. Therefore, when cancer cells expressing a target protein of an existing molecular target drug were brought into contact with the molecular target drug to suppress the activity of the target protein, it was confirmed that the expression of the transposable element was increased.
  • the test substance when the expression of a transposable element in a cancer cell for which an effective target protein is known is increased under contact with the test substance, it can be confirmed that the test substance has a function of suppressing the activity of the target protein. Became clear.
  • the test substance when targeting any cancer cell, if the test substance increases the expression of the transposable element in the cancer cell, the test substance is a cell involved in the growth / progress of the cancer cell. Since it can be presumed to have a function of suppressing the activity of some protein related to the internal signal, it becomes possible to directly screen candidate substances for cancer therapeutic agents without identifying the target protein (target gene). As a result of further studies based on these findings, the present inventors have completed the present invention.
  • a method for screening for a therapeutic drug for cancer comprising the following steps; (I) a step of measuring the expression level of a transposable element in contact with or non-contact with a test substance in a target cancer cell; and (ii) under non-contact in contact with a test substance. A step of selecting the test substance as a cancer therapeutic agent when the expression level of the transposable element increases in comparison.
  • the transposable element is at least one sequence selected from endogenous retrovirus, LINE, SINE, and fragments thereof.
  • transposable element is at least one sequence selected from HERV-H, HERV-W, L1-ORF2, ERVK and fragments thereof.
  • a method for identifying a protein that can be a drug discovery target of a cancer therapeutic drug comprising the following steps; (I) Expression of a transposable element in a cancer cell containing a gene encoding a test protein in a form in which expression can be controlled under conditions for expressing the gene or under conditions where expression of the gene is suppressed A step of measuring the amount, and (ii) when the expression level of the transposable element is increased under the condition in which the expression of the gene is suppressed as compared with the condition under which the gene is expressed. A process of selecting proteins that can be targets for drug discovery for cancer treatment.
  • the present invention it is not necessary to identify a target gene, and it becomes possible to directly screen for a therapeutic drug for cancer that becomes a molecular target drug.
  • FIG. 1A shows a schematic diagram describing a method for inducing EWS / ATF1 expression and introducing reprogramming factors.
  • FIG. 1B shows a phase contrast microscopic image of sarcoma cell line G1297 after introduction of reprogramming factor when EWS / ATF1 expression was induced (DOXD0.2 ⁇ g / ml) or not (DOX 0 ⁇ g / ml).
  • FIG. 1C shows the results of measuring the number of colonies formed after introduction of reprogramming factor when EWS / ATF1 expression was induced (DOX 0.2 or 0.1 ⁇ g / ml) or not (DOX 0 ⁇ g / ml). .
  • FIG. 1A shows a schematic diagram describing a method for inducing EWS / ATF1 expression and introducing reprogramming factors.
  • FIG. 1B shows a phase contrast microscopic image of sarcoma cell line G1297 after introduction of reprogramming factor when
  • FIG. 1D shows RT-PCR of EWS / ATF1 expression induction by adding 0.2 ⁇ g / ml DOX to iPS cell lines (C-1, C-2, C-3 and C-4) established from sarcoma cell line G1297. The result confirmed by is shown.
  • FIG. 1E shows the results of chromosome microarray (CGH array) analysis in the sarcoma cell line G1297 and an iPS cell line established from the same.
  • FIG. 1F shows the results of measuring the expression of Nanog in the iPS cell lines (C-1, C-2, C-3 and C-4) by RT-PCR (left figure) and staining the iPS cell line with Nanog and DAPI. The stained image (right figure) is shown.
  • FIG. 1G shows a stained image of teratoma formed by transplanting iPS cells established from sarcoma cell line G1297 subcutaneously into nude mice.
  • FIG. 1H shows a photograph of a chimeric mouse generated by injecting iPS cells established from the sarcoma cell line G1297 into a blastocyst.
  • FIG. 1I shows that EWS / ATF1 expression was induced (DOX 0.2 or 0.1 ⁇ g / ml) or not induced (DOX 0 ⁇ g / ml) on day 4 after introduction of reprogramming factor (4F) into sarcoma cell line G1297.
  • FIG. 1J shows that EWS / ATF1 expression was induced on mouse embryonic fibroblasts (MEF) 4 days after introduction of reprogramming factor (4F) (DOX 0.2 or 0.1 ⁇ g / ml) or not (DOX (0 ⁇ g / ml) shows the results of FACS in which the positive rate of SSEA1 was measured 10 days after 4F introduction.
  • FIG. 1K shows 4F introduction or GFP when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) on day 4 after introduction of reprogramming factor (4F) or GFP into sarcoma cell line G1297.
  • FIG. 1L shows a schematic diagram describing EWS / ATF1 expression induction and a method for introducing MYOD1.
  • Figure 1M shows the results of RT-PCR measurement of Myogenin expression in cells in which MYOD1 was introduced into the sarcoma cell line G1297, with or without EWS / ATF1 expression induction (ON).
  • FIG. 1N shows staining with Myosin heavy chain (MHC) and DAPI, in which MYOD1 was introduced into sarcoma cell line G1297, when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not (OFF).
  • MHC Myosin heavy chain
  • FIG. 1 O shows 6 days after MYOD1 introduction or GFP introduction when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) on day 4 after introduction of MYOD1 or GFP into sarcoma cell line G1297
  • TSS transcription initiation site
  • FIG. 2B shows ChIP-seq analysis using antibodies against H3K4me3 and H3K27Ac in chromosome 12 with and without EWS / ATF1 expression induced in sarcoma cell line G1297 (ON) or without (OFF) and FAIRE -seq Shows the result of analysis.
  • EWS / ATF1 indicates the binding region of EWS / ATF1, and H3K4me3, H3K27Ac
  • FAIRE indicate the amount of H3K4me3-histone, the amount of H3K27Ac-histone, and the amount of unbound histone, respectively. Shows the peak.
  • FIG. 2C shows the result of ChIP-seq analysis using an antibody against H3K9me3 in the vicinity of the transposable element with or without induction of EWS / ATF1 in the sarcoma cell line G1297.
  • the vertical axis shows the logarithm of RPM when EWS / ATF1 expression is induced (ON) with respect to RPM (read permillion) when EWS / ATF1 is not induced (OFF). Therefore, a high value means that H3K9me3 is enhanced in this region when EWS / ATF1 expression is induced (ON).
  • FIG. 2D shows the expression of L1 (left figure) and MMERVK10c (right figure) with RT-PCR when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in sarcoma cell line G1297.
  • the measurement results are shown.
  • FIG. 2E shows H3K9me3 in the vicinity of the transcription start site (TSS) of the gene induced by EWS / ATF1 when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in the sarcoma cell line G1297.
  • TSS transcription start site
  • FIG. 2F shows Reduced Representation Bisulfite Sequencing (RRBS at the CpG site in the ERVK region when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in ES cells, somatic cells, and sarcoma cell line G1297. ) Shows the result of the analysis.
  • FIG. 3A shows the results of measuring the amount of H3K9me3 at the Oct3 / 4, Nanog and Sox2 binding sites of ES cells when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF). In the figure, shading indicates the amount of H3K9me3.
  • FIG. 3B shows the results of measuring the amount of H3K9me3 at the MYOD1 binding site of myotube cells when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF). In the figure, shading indicates the amount of H3K9me3.
  • FIG. 3C shows the results of measuring the amount of Oct3 / 4 at the Oct3 / 4 binding site of ES cells when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF).
  • FIG. 3D shows the introduction of 4F in the sarcoma cell line G1297 with or without induction of EWS / ATF1 expression (ON) or 4 days after introduction of reprogramming factor (4F) or GFP.
  • recovered from the cell of the 6th day after GFP introduction by a microarray is shown.
  • FIG. 3E shows that when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in cells introduced with MYOD1 into the sarcoma cell line G1297, expression of EWS / ATF1 was induced (ON), and Suv39h1 was induced by RNAi.
  • FIG. 3F shows the case where EWS / ATF1 expression was induced (ON) on day 4 after introduction of MYOD1 or GFP into the sarcoma cell line G1297, and Suv39h1 expression was suppressed (siSuv39h1) or not (siControl).
  • FIG. 3G shows the gene ontology (GO) term of the gene whose expression increased when Suv39h1 expression was suppressed in the result of FIG. 3F.
  • FIG. 4A shows a schematic diagram describing the method of introduction of reprogramming factor, MYOD1 or GFP and siRNA into the MP-CCS-SY cell line.
  • FIG. 4B shows that when the reprogramming factor (+ 4F) or GFP was introduced into the MP-CCS-SY cell line, expression of EWS / ATF1 was suppressed by RNAi (siEWS / ATF1) or expression was not suppressed (siControl).
  • FIG. 4C shows a schematic diagram describing the introduction of reprogramming factors into HCC827 or SK-BR3 cell lines and the method of adding each drug.
  • 4D shows the case where DMSO, 5FU or Lapatinib (Lap) was added to the SK-BR3 cell line when reprogramming factor was introduced (Dox (4F) +) or not (Dox (4F)-) Of PODXL expression by RT-PCR (left figure) and when reprogramming factor was introduced into HCC827 cell line (Dox (4F) +) or not (Dox (4F)-)
  • the result (right figure) which measured the expression of PODXL by RT-PCR when DMSO, 5FU, or Gefitinib (Gef) was added in is shown.
  • FIG. 4E shows the results when Lapatinib (Lap) or DMSO was added to the SK-BR3 cell line when reprogramming factor was introduced (Dox (4F) +) or not (Dox (4F)-).
  • Results of microarray analysis left figure
  • Gefitinib (Gef) or DMSO when reprogramming factor was introduced into HCC827 cell line Dox (4F) +
  • Dox (4F)- The result (right figure) of the microarray analysis in the case of adding is shown.
  • FIG. 4F shows the results of measuring the expression of L1 OFR2 (left figure) and HERV-W (right figure) by RT-PCR when Lapatinib (Lap) or DMSO was added in the SK-BR3 cell line.
  • FIG. 4G shows the results of measuring the expression of L1 OFR2 (left figure) and HERV-W (right figure) by RT-PCR when Gefitinib (Gef) or DMSO was added in the HCC827 cell line.
  • Fig. 4H shows the results when Lapatinib (Lap) or DMSO was added to the SK-BR3 cell line when reprogramming factor was introduced (Dox (4F) +) or not (Dox (4F)-).
  • FIG. 4I shows the results of microarray analysis of the expression of all genes or HERVH-related genes when Lapatinib (Lap) or DMSO was added to the SK-BR3 cell line (left figure) and Gefitinib (Gef) to the HCC827 cell line Or the result (right figure) which performed microarray analysis about the expression of all the genes at the time of DMSO addition or a HERVH related gene is shown.
  • FIG. 5A shows a growth curve when doxycycline (DOX) 0, 0.1, 0.2, 1 or 2 ⁇ g / ml was added to sarcoma cell line G1297 and cultured.
  • DOX doxycycline
  • FIG. 5B shows that when the reprogramming factor was introduced into the sarcoma cell line G1297 (+ 4F) or not (-4F), expression of EWS / ATF1 was induced (ON) or not (OFF) ) Shows the results of measuring the amount of Oct3 / 4 in each case by Western blotting.
  • FIG. 5C shows a phase contrast microscopic image of iPS cells established after introduction of reprogramming factor when EWS / ATF1 expression was not induced (DOX 0 ⁇ g / ml).
  • FIG. 5D shows the results of measuring the expression levels of Oct3 / 4 and Nanog by RT-PCR when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in the sarcoma cell line G1297.
  • ESC ES cell
  • FIG. 5E shows a schematic diagram describing the method of induction of EWS / ATF1 expression and introduction of reprogramming factors.
  • FIG. 5F shows that EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in cells (+ 4F) or cells not introduced (GFP) into the sarcoma cell line G1297.
  • FIG. 6A shows ChIP using antibodies against H3K4me3 and H3K27Ac at the transcription start site (TSS) of all genes when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in sarcoma cell line G1297.
  • TSS transcription start site
  • FIG. 6B shows ChIP-seq using an antibody against H3K9me3 in the vicinity of the transcription start site (TSS) of ERVK when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in sarcoma cell line G1297.
  • FIG. 6C shows the results of ChIP-seq analysis using an antibody against H3K9me3 in chromosome 15 when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in the sarcoma cell line G1297.
  • the transcription region of LTR / ERVK is shown in the figure below.
  • 6D shows the transcription initiation site of the gene induced by EWS / ATF1 in the vicinity of the transposable element when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not (OFF) in the sarcoma cell line G1297.
  • the result of the ChIP-seq analysis (random mapping method) using the antibody with respect to H3K9me3 in (TSS) is shown.
  • the vertical axis shows the logarithm of RPM when EWS / ATF1 expression is induced (ON) with respect to RPM (read permillion) when EWS / ATF1 is not induced (OFF). Therefore, a high value means that H3K9me3 is enhanced in this region when EWS / ATF1 expression is induced (ON).
  • FIG. 7A shows the transcription initiation site (TSS), EWS / ATF1 binding site when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in ES cells, somatic cells, and sarcoma cell line G1297. Results of Reduced Representation Bisulfite Sequencing (RRBS) analysis at CpG sites at Oct3 / 4 binding site, Sox2 binding site and Nanog binding site are shown.
  • FIG. 7B shows the results of measuring the amount of H3K9me3 at the Ascl1-binding site of neural stem cells when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF). In the figure, shading indicates the amount of H3K9me3.
  • FIG. 7A shows the transcription initiation site (TSS), EWS / ATF1 binding site when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) in ES cells, somatic cells, and sarcoma cell line G1297. Results of Reduce
  • FIG. 7C shows ChIP-seq analysis using antibodies against H3K4me3 and H3K27Ac at the Oct3 / 4 binding site of ES cells when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not (OFF) and FAIRE- Results of seq analysis (left figure) and results of ChIP-seq analysis and FAIRE-seq analysis using antibodies against H3K4me3 and H3K27Ac at the MyoD1 binding site of myotube cells (right figure) are shown.
  • FIG. 8A shows a schematic diagram describing a method for inducing EWS / ATF1 expression and introducing a reprogramming factor for ChIP analysis.
  • FIG. 8B shows 6 days after introduction of MyoD1 or GFP when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not induced (OFF) 4 days after introduction of MyoD1 or GFP into sarcoma cell line G1297.
  • recovered from the said cell is shown.
  • FIG. 8C shows the expression of histone modifying enzymes (Suv39h1, Suv39h2, Eed, Suz12, and Ezh2) in the sarcoma cell line G1297 when EWS / ATF1 expression was induced (ON) or not (OFF). The result confirmed by PCR is shown.
  • FIG. 9A is a schematic diagram illustrating the method of induction of expression of EWS / ATF1 for RT-PCR analysis, introduction of MyoD1, and introduction of each siRNA, and the histone modifying enzymes (Suv39h1, Suv39h2, Ezh2, Suz12 and Eed). The effect of expression suppression is shown.
  • FIG. 9A is a schematic diagram illustrating the method of induction of expression of EWS / ATF1 for RT-PCR analysis, introduction of MyoD1, and introduction of each siRNA, and the histone modifying enzymes (Suv39h1, Suv39h2, Ezh2, Suz12 and Eed). The effect of expression suppression is shown.
  • FIG. 9A is a schematic diagram illustrating the method of induction of expression of EWS / ATF1 for RT-PCR analysis, introduction of MyoD1, and introduction of each siRNA, and the histone modifying enzymes (Suv39h1, Suv39h2, Ezh2, Suz12 and Eed).
  • FIG. 9B shows the results obtained by measuring the expression of L1 promoter by RT-PCR when Suv39h1 or Ezh2 expression was suppressed by RNAi in sarcoma cell line G1297.
  • FIG. 9C shows a PiggyBac vector construct for introducing the reprogramming factor and a phase contrast image and a fluorescence image of the cell after introduction into SK-BR3.
  • FIG. 10 shows DMSO, 5FU (1 mM or 10 mM) or Gefitinib (Gef) in the case where the reprogramming factor was introduced into the A549 cell line (Dox (4F) +) or not (Dox (4F) ⁇ ).
  • FIG. 11A shows a schematic diagram describing the method of introduction of the reprogramming factor (4F) by retrovirus and the introduction of anticancer agents (Alectinib, Imatinib) into H2228 and KBM7.
  • FIG. 11A shows a schematic diagram describing the method of introduction of the reprogramming factor (4F) by retrovirus and the introduction of anticancer agents (Alectinib, Imatinib) into H2228 and KBM7.
  • FIG. 12A shows that when reprogramming factors are introduced into H2228 and KBM7, Alectinib (0 ⁇ M (control), 1 ⁇ M or 10 ⁇ M) is added to H2228, and Imatinib (0 ⁇ M (control) is added), 1 ⁇ M or The expression of L1 when 10 ⁇ M) is added is measured by RT-PCR, and the transcription level is normalized by the GAPDH value.
  • FIG. 12A shows that when the expression of EWS / ATF1 was induced in the mouse sarcoma cell line G1297 (DoxON) or not induced (DoxOFF), the reprogramming factor was introduced (+ 4F) or not, respectively.
  • FIG. 12B shows the results of measuring the expression of ERVK in the case of DoxON and DoxOFF by RT-PCR and normalizing the transcription level with ⁇ -actin (Actb) value.
  • the present invention provides a method for screening for a therapeutic agent for cancer, comprising the following steps; (I) a step of measuring the expression of a transposable element in contact with a test substance in a target cancer cell; and (ii) the transposer from a condition in which the cancer cell is not in contact with the test substance. A step of selecting the test substance as a cancer therapeutic agent when the expression of a bull element increases.
  • cancer means a malignant tumor, including carcinoma (malignant tumor derived from epithelial cells), sarcoma, and other leukemias, and is not limited to a specific cancer.
  • the cancer cell used in the present invention is a cell constituting a malignant tumor, and may be a cell line or a cell isolated from a living body.
  • cancer cells used in the present invention are cancer cells (for example, EWS / ATF1 fusion gene forced expression) whose effective target protein is known (ie, known to be sensitive to an existing molecular target drug).
  • cancer cells gefitinib-sensitive mutant EGFR-expressing cancer cells, lapatinib-sensitive HER2-amplified cancer cells, alectinib-sensitive EML4-ALK fusion gene-expressing cancer cells, imatinib-sensitive chronic myeloid leukemia cells, etc.
  • cancer cells whose effective target protein is unknown may be used.
  • test substance in the screening method of the present invention, any test substance can be used, and any known compound and novel compound may be used.
  • the test substance may also be (1) a biological library method, (2) a synthetic library method using deconvolution, (3) “one-bead one-compound” live Can be obtained using any of a number of approaches in combinatorial library methods known in the art, including rally methods, and (4) synthetic library methods using affinity chromatography sorting.
  • Biological library methods using affinity chromatography sorting are limited to peptide libraries, but the other four approaches can be applied to small molecule compound libraries of peptides, non-peptide oligomers, or compounds (Lam (1997) Anticancer Drug Des. 12: 145-67).
  • Examples of methods for the synthesis of molecular libraries can be found in the art (DeWitt et al. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90: 6909-13; Erb et al. (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91: 11422-6; Zuckermann et al. (1994) J. Med. Chem. 37: 2678-85; Cho et al.
  • the contact between the cancer cell and the test substance may be performed by appropriately adding the test substance to the culture solution for cancer cells.
  • the culture solution for cancer cells is used for culturing animal cells.
  • the medium can be prepared as a basal medium. Examples of the basal medium include IMDM medium, Medium ⁇ 199 medium, Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM) medium, ⁇ MEM medium, Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM) medium, Ham's F12 medium, RPMI 1640 medium, Fischer's medium and the like. Is included.
  • the medium may contain serum or may be serum-free.
  • the medium can be, for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acids, trace elements, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, lipids, amino acids, L-glutamine, non-essential amino acids, vitamins, growth factors, small molecules
  • albumin for example, albumin, insulin, transferrin, selenium, fatty acids, trace elements, 2-mercaptoethanol, thiolglycerol, lipids, amino acids, L-glutamine, non-essential amino acids, vitamins, growth factors, small molecules
  • One or more substances such as compounds, antibiotics, antioxidants, pyruvate, buffers, inorganic salts, cytokines and the like may also be included.
  • culture temperature is not particularly limited, but is, for example, about 30 to 40 ° C., preferably about 37 ° C.
  • the CO 2 concentration is, for example, about 1 to 10%, preferably about 5%.
  • the O 2 concentration is 1-20%.
  • the O 2 concentration may be 1 to 10%.
  • the contact time between the cancer cell and the test substance is not particularly limited, and examples thereof include 1 hour, 2 hours, 6 hours, 12 hours, 1 day, 1.5 days, 2 days or more.
  • Epigenetic modification is a method of analyzing methylation of DNA by a method of concentrating methylated DNA, a method using base substitution by bisulfite treatment, or a method using a restriction enzyme sensitive to methylation, Perform chromatin immunoprecipitation (ChIP) with modified histone antibodies, analyze the concentrate with RT-PCR or next-generation sequencer (ChIP-seq analysis), extract the open chromatin region on the genome with FAIRE, and generate the next generation Analysis can be performed by a method using a sequencer (FAIRE-seq analysis) or the like.
  • a transposable element means a gene sequence called a mobile genetic element or transposon that is moved or copied on a genome and inserted into the genome.
  • a preferred transposable element used as an index for screening for a therapeutic drug for cancer of the present invention is a retrotransposon.
  • a retrotransposon is a sequence copied to RNA, and thus the copied RNA can be used as an index.
  • retrotransposons include LTR (long terminal repeat) type retrotransposons (endogenous retroviruses) and non-LTR type retrotransposons.
  • the sequence of the transposable element can be obtained from the NCBI database as appropriate. Using this sequence information, the expression level of the transposable element or its fragment can be analyzed by reverse transcriptase PCR or quantitative reverse transcriptase PCR. , Northern blot analysis, immunohistochemistry, array analysis, RNA-seq analysis and combinations thereof. The expression of the transposable element or a fragment thereof can be evaluated by analysis of epigenetic modifications such as DNA methylation and histone modification.
  • the kit for screening for a cancer therapeutic agent includes a primer or a probe used for measuring the expression level of the above-described transposable element.
  • the kit for screening for a therapeutic drug for cancer may further include a document or instructions describing the measurement procedure.
  • it may further include a panel of various cancer cells having different effective target proteins (wherein the effective target protein has the same meaning as described above).
  • a method for identifying a protein that can be a drug discovery target of a cancer therapeutic agent includes the following steps: (I) a transposer under a condition for expressing a candidate gene or a condition in which the expression of the gene is suppressed in a cancer cell containing a gene (candidate gene) encoding a test protein in a form capable of controlling expression.
  • the method includes a step of selecting the test protein as a protein that can be a drug discovery target of a therapeutic drug for cancer.
  • candidate genes are identified as a result of exhaustive analysis of gene expression in cancer cells using a microarray or the like, and are highly expressed in genes or cancer cells that are specifically expressed in cancer cells. Genes that are present.
  • the expression controllable form means a form capable of ON / OFF of the expression of the candidate gene.
  • the candidate gene is an inducible promoter (eg, metallothionein promoter (induced by heavy metal ions), heat shock protein promoter. (Induced by heat shock), Tet-ON / Tet-OFF promoter (induced by addition or removal of tetracycline or its derivative), steroid-responsive promoter (induced by steroid hormone or its derivative), etc.)
  • inducible promoter eg, metallothionein promoter (induced by heavy metal ions), heat shock protein promoter. (Induced by heat shock), Tet-ON / Tet-OFF promoter (induced by addition or removal of tetracycline or its derivative), steroid-responsive promoter (induced by steroid hormone or its derivative), etc.
  • Expression vectors and the like Confirmation / evaluation of expression of the transposable element is the same as the screening method for cancer therapeutic agents described above.
  • the EWS / ATF1 fusion gene described in YamadaYK, et al, J Clin Invest. 123: 600-610, 2013 is induced in a doxycycline (Dox) -dependent manner
  • Dox doxycycline
  • a possible mouse sarcoma cell line also referred to as G1297 strain
  • the sarcoma cells have been confirmed to stop growth in vitro and to regress tumors in vivo due to EWS / ATF1 expression cessation.
  • G1297 was initialized by introducing an initialization factor into G1297.
  • EWS / ATF1 sarcoma cells expressing EWS / ATF1
  • reprogramming factors 4F: Oct3 / 4, Sox2, Klf4, and c-Myc
  • iPS cell-like colonies were confirmed by the expression of 4F (FIGS. 1A to 1C).
  • An iPS cell-like cell line was established by picking up this iPS cell-like colony (FIG. 5C).
  • the induction of iPS cells was performed by the following method.
  • Oct3 / 4 Sox2, Klf4 and c-Myc were each introduced into Plat-E cells using a pMXs-based retroviral vector, and the virus-containing supernatant was collected and filtered through a 0.45 ⁇ m cellulose acetate filter.
  • G1297 was seeded at 8 ⁇ 10 5 cells per 60-mm dish, infected with the virus-containing supernatant, and replaced with LIF-containing ES medium on the third day after infection.
  • the established iPS cell-like cell line was confirmed to express EWS / ATF1 in a doxycycline-dependent manner, similar to the parent sarcoma cell (FIG. 1D). Furthermore, some chromosomal abnormalities were also observed, confirming that the iPS cell-like cell line was derived from sarcoma cells (FIG. 1E). When the expression of pluripotency-related genes such as Nanog and endogenous Oct3 / 4 (Pou5f1) in iPS cell-like cells derived from the sarcoma cells was compared with ES cells, there was no significant difference (Fig. 1F and FIG. 5D). RT-PCR was performed using the following method.
  • the efficiency of initialization of sarcoma cells was 0.06%, which was shown to be lower than the initialization efficiency of MEF.
  • iPS cell-like cells were administered subcutaneously to immunodeficient mice, teratomas were formed, and chimeric mice could be created by injection into blastocysts (FIGS. 1G and 1H).
  • EWS / ATF1 expression-dependent sarcoma cells pluripotent cells can be obtained by reprogramming by suppressing the expression of EWS / ATF1.
  • EWS / ATF1 acts suppressively in the reprogramming of EWS / ATF1 expression-dependent sarcoma cells.
  • EWS / ATF1 does not suppress the generation of SSEA1-positive cells due to reprogramming in MEF (Fig. 1J), so that the expression of EWS / ATF1 results in the suppression of reprogramming specific to sarcoma cells.
  • sarcoma cells when 4F is introduced (4F-sarcoma cells) or sarcoma cells when GFP is introduced as a negative control
  • the microarray analysis was performed for each of the cases where EWS / ATF1 was expressed and not expressed (FIG. 5E).
  • Microarray analysis was performed using Mouse-Gene-1.0-ST-Array (Affymetrix Inc., Santa Clara, USA). All data analysis was performed using GeneSpring GX software program (version 12; Agilent Technologies, Santa Clara, USA).
  • FIG. 1L the influence of EWS / ATF1 expression on skeletal muscle differentiation induction by introduction of MYOD1 was examined.
  • MYOG Myogenin
  • Fig. 1M MYOD1-introduced sarcoma cells
  • MHC myosin heavy chain
  • EWS / ATF1 expression was examined using ChIP-seq analysis and FAIRE-seq analysis (FIG. 2A and FIG. 6A).
  • TSS transcription start site
  • H3K4me3 is an indicator of the activation promoter. No change was observed.
  • H3K27Ac is an indicator of activation enhancer, at the EWS / ATF1 binding site away from TSS but not TSS.
  • EWS / ATF1 was found to increase H3K9me3 in transposable elements (ERVs, LINEs and SINEs) of EWS / ATF1 expression-dependent sarcoma cells (FIGS. 2C, 6B, 6C and 6D). ). Based on this, EWS / ATF1 expression-dependent sarcoma cells suppressed EWS / ATF1 expression and confirmed the expression of the transposable element, confirming that the expression of the transposable elements L1 and MMERVK10c increased. (FIG. 2D).
  • FIG. 9C shows the effects on the reprogramming of EGFR tyrosine kinase inhibitor gefitinib and HER2 tyrosine kinase inhibitor lapatinib.
  • FIG. 4C shows that when lapatinib was treated with 50% inhibitory concentration (IC 50 ) in 4F-introduced SK-BR-3, it promoted the expression of reprogramming marker PODXL (FIG. 4D). The establishment of fully reprogrammed iPS cells was not successful. On the other hand, treatment with 5-fluorouracil (5FU) at an IC 50 concentration did not increase the expression of PODXL (FIG. 4D).
  • IC 50 inhibitory concentration
  • 5FU 5-fluorouracil
  • cancer cells other than HCC827, SK-BR-3 and G1297 can be applied to the screening method of the present invention. That is, evaluation was performed using a known cancer cell type, a non-small cell lung cancer cell line H2228 expressing the EML4-ALK fusion gene, and a chronic myeloid leukemia cell line KBM7.
  • the H2228 cell line is known to be sensitive to Alectinib, an ALK inhibitor
  • the KBM7 cell line is sensitive to Imatinib, a Bcr-Abl tyrosine kinase inhibitor.
  • a reprogramming factor (4F: Oct3 / 4, Sox2, Klf4 and c-Myc) is introduced into H2228 and KBM7 by retrovirus, and Alectinib is added to the culture medium of H2228 to 1 ⁇ M or 10 ⁇ M on the first day of infection.
  • Imatinib was added to the culture medium of KBM7 so as to be 1 ⁇ M or 10 ⁇ M.
  • cancer cells that can be used in the screening method of the present invention are not limited to specific cell types and can be applied to a wide variety of cancer cell types.
  • RNA-seq analysis examined the expression of transposable elements in cells that had stopped (DoxOFF) and cells that continued to contain Dox (DoxON). As a result, as shown in FIG. 12A, an ERVK transposable element was identified, in which the expression was significantly increased by suppressing the expression of EWS / ATF1.
  • RNA-seq analysis was performed using the following method. After extracting total RNA from each cell using RNeasy Plus Mini Kit (Qiagen, Hilden, Germany), a library was created using TruSeq Stranded Total RNA with Ribo-Zero Gold LT sample Prep kit (illumina) . After quantification of the concentration using KAPA Library Quantification kits (Nippon Genetics), sequencing was performed with Hiseq 2500 (illumina) using Hiseq PE Rapid Cluster kit v2-HS. The sequence data was analyzed using TopHat software and Cufflinks software, and visualized by IGV (Integrative Genomics Viewer).
  • cancer cells are adaptable to the environment and can therefore survive and continue to progress. After an initial response to a molecular target drug for cancer, the majority of cancers acquire resistance and cause disease recurrence. However, the mechanism by which cancer cells acquire resistance to drugs is not completely understood, but by inhibiting the oncogene signal, the release of slow transcriptional repression through changes in epigenetic modifications. The phenomenon that cancer cells forced to initialize from the outside can acquire adaptability supports the mechanism of resistance acquisition.
  • cancer cells are said to reduce the level of DNA methylation in transposable elements, but the reduction of inhibitory histone markers in transposable elements by the addition of drugs increases the adaptability of cancer cells This is not inconsistent with the above consideration. Adaptation gained through inhibition of oncogene signaling could change the fate of cancer cells to drug resistant cells, a new mechanism for survival of cancer cells when treated with molecularly targeted drugs Is expected to be offered.

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Abstract

本発明は、膨大な数の標的タンパク質の候補の中から、真の標的タンパク質を同定することなく、いずれかのタンパク質を標的とする分子標的薬としてのがん治療薬をスクリーニングする方法を提供することを目的とする。　本発明は、（i）対象となるがん細胞内で、被験物質との接触下または非接触下でトランスポーザブルエレメントの発現量を測定する工程、および（ii）被験物質と接触下において、非接触下と比較して前記トランスポーザブルエレメントの発現量が増加した場合、当該被験物質をがんの治療薬として選出する工程を含む、がんの治療薬をスクリーニングする方法を提供することにより、上記課題を解決する。

Description

がんの治療薬のスクリーニング方法
　本発明は、がんの治療薬をスクリーニングする方法に関する。
　近年、がん治療において、分子標的薬、すなわち、がん細胞の増殖・進展に関わる重要な細胞内シグナルに関係するタンパク質を直接標的とした治療薬が有効であることが多く示されており、新規な創薬標的となり得るタンパク質の探索が盛んにおこなわれている。がん治療の標的候補タンパク質として、がん細胞で特有あるいは過剰に発現している遺伝子によってコードされるタンパク質が例示される。マイクロアレイ法などの網羅的解析により、このような標的候補タンパク質をコードする遺伝子を多く見出すことは可能であるが、その中から実際にがん治療の標的となり得るタンパク質をコードする真の標的遺伝子を特定するのには過度の実験を要する。
　また、体細胞を初期化する技術が開発され、がん細胞を初期化する試みがなされているが（非特許文献１）、このような試みは、がん細胞そのものの性質を変えることに主眼が置かれており、がん細胞の初期化を利用したがんの治療薬のスクリーニングについての報告はない。
Kosaka T, et al, Cancer Sci. 104:1017-1026, 2013
　本発明の課題は、がんの治療薬をスクリーニングする方法を提供することにある。
　本発明者らは上記の課題を解決すべく鋭意検討を行った結果、がん細胞を初期化する際に、既知標的遺伝子（即ち、がん細胞の増殖・進展に関わる重要な細胞内シグナルに関係することが既知のタンパク質をコードする遺伝子）の発現を抑制すると、初期化が亢進すること、言い換えれば、これらの標的遺伝子にコードされるタンパク質は、がん細胞としての特徴を維持し、がん細胞の運命変更を抑制する作用があることを見出した。さらに、本発明者らは、当該初期化の亢進は、トランスポーザブルエレメントの発現に依拠することを見出した。そこで、既存の分子標的薬の標的タンパク質を発現するがん細胞を、該分子標的薬と接触させて該標的タンパク質の活性を抑制したところ、トランスポーザブルエレメントの発現が上昇することを確認した。従って、有効な標的タンパク質が既知のがん細胞におけるトランスポーザブルエレメントの発現が、被験物質との接触下で増加した場合、当該被験物質が当該標的タンパク質の活性を抑制する機能を有すると確認できることが明らかとなった。また、任意のがん細胞を対象とした場合でも、被験物質が当該がん細胞におけるトランスポーザブルエレメントの発現を増加させた場合、当該被験物質は、当該がん細胞の増殖・進展に関わる細胞内シグナルに関係する何らかのタンパク質の活性を抑制する機能を有すると推定できるので、標的タンパク質（標的遺伝子）を同定することなく、がん治療薬の候補物質を直接スクリーニングすることが可能となる。
　本発明者らは、これらの知見に基づいてさらに研究を重ねた結果、本発明を完成するに至った。
　すなわち、本発明は以下の方法を提供する。
［１］下記の工程を含む、がんの治療薬をスクリーニングする方法；
（i）対象となるがん細胞において、被験物質との接触下または非接触下でトランスポーザブルエレメントの発現量を測定する工程、および
（ii）被験物質との接触下において、非接触下と比較して前記トランスポーザブルエレメントの発現量が増加した場合、当該被験物質をがんの治療薬として選出する工程。
［２］前記トランスポーザブルエレメントが、レトロトランスポゾンまたはその断片である、［１］に記載の方法。
［３］前記トランスポーザブルエレメントが、内在性レトロウィルス、LINE、SINEおよびその断片から選択される少なくとも一つの配列である、［２］に記載の方法。
［４］前記トランスポーザブルエレメントが、HERV-H、HERV-W、L1-ORF2、ERVKおよびその断片から選択される少なくとも一つの配列である、［２］に記載の方法。
［５］下記の工程を含む、がん治療薬の創薬標的となり得るタンパク質の同定方法；
（i）被験タンパク質をコードする遺伝子を、発現制御可能な形態で含むがん細胞内で、該遺伝子を発現する条件下または該遺伝子の発現が抑制された条件下で、トランスポーザブルエレメントの発現量を測定する工程、および
（ii）該遺伝子の発現が抑制された条件下において、該遺伝子を発現する条件下と比較して前記トランスポーザブルエレメントの発現量が増加した場合、当該被験タンパク質をがんの治療薬の創薬標的となり得るタンパク質として選出する工程。
　本発明により、標的遺伝子を同定する必要がなく、分子標的薬となるがんの治療薬を直接スクリーニングすることが可能となる。
図１Aは、EWS/ATF1の発現誘導と初期化因子の導入の方法を記載した概略図を示す。図１Bは、EWS/ATF1を発現誘導した（DOX 0.2μg/ml）場合または誘導しなかった（DOX 0μg/ml）場合における初期化因子の導入後のサルコーマ細胞株G1297の位相差顕微鏡像を示す。図１Cは、EWS/ATF1を発現誘導した（DOX 0.2または0.1μg/ml）場合または誘導しなかった（DOX 0μg/ml）場合における初期化因子の導入後のコロニー形成数を測定した結果を示す。図１Dは、サルコーマ細胞株G1297から樹立したiPS細胞株（C-1、C-2、C-3およびC-4）へ0.2μg/mlのDOX添加によるEWS/ATF1の発現誘導をRT-PCRで確認した結果を示す。図１Eは、サルコーマ細胞株G1297および同細胞株から樹立したiPS細胞株における染色体マイクロアレイ（CGHアレイ）解析の結果を示す。図１Fは、iPS細胞株（C-1、C-2、C-3およびC-4）におけるNanogの発現をRT-PCRで測定した結果（左図）およびiPS細胞株をNanogおよびDAPIで染色した染色像（右図）を示す。図１Gは、サルコーマ細胞株G1297から樹立したiPS細胞をヌードマウスの皮下に移植して形成されたテラトーマの染色像を示す。図１Hは、サルコーマ細胞株G1297から樹立したiPS細胞を胚盤胞へ注入し、発生したキメラマウスの写真を示す。図１Iは、サルコーマ細胞株G1297へ初期化因子（4F）導入後4日目にEWS/ATF1を発現誘導した（DOX 0.2または0.1μg/ml）場合または誘導しなかった（DOX 0μg/ml）場合における4F導入後10日目にSSEA1の陽性率を測定したFACSの結果を示す。図１Jは、マウス胚性線維芽細胞（MEF）へ初期化因子（4F）導入後4日目にEWS/ATF1を発現誘導した（DOX 0.2または0.1μg/ml）場合または誘導しなかった（DOX 0μg/ml）場合における4F導入後10日目にSSEA1の陽性率を測定したFACSの結果を示す。図１Kは、サルコーマ細胞株G1297へ初期化因子（4F）導入またはGFP導入後4日目にEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合において、4F導入またはGFP導入後6日目の細胞から回収したRNAを用いてマイクロアレイ解析をした結果を示す。図１Lは、EWS/ATF1の発現誘導とMYOD1を導入する方法を記載した概略図を示す。図１Mは、サルコーマ細胞株G1297へMYOD1を導入した細胞において、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのMyogeninの発現をRT-PCRで測定した結果を示す。図１Nは、サルコーマ細胞株G1297へMYOD1を導入した細胞において、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合において、Myosin heavy chain（MHC）およびDAPIで染色した染色像（左図）およびMyosin heavy chainの発現をRT-PCRで測定した結果（右図）を示す。図１ Oは、サルコーマ細胞株G1297へMYOD1導入またはGFP導入後4日目にEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合において、MYOD1導入またはGFP導入後6日目の細胞から回収したRNAを用いてマイクロアレイ解析をした結果を示す。 図２Aは、サルコーマ細胞株G1297においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのEWS/ATF1により誘導される遺伝子の転写開始サイト（ＴＳＳ）（左図）およびEWS/ATF1の結合サイト（EWS/ATF1-binding sites）（右図）におけるH3K4me3およびH3K27Acに対する抗体を用いたChIP-seq解析ならびにFAIRE-seq解析の結果を示す。図中、赤色は、当該サイトでのH3K4me3（ヒストンＨ３の４番目のリジン残基がトリメチル化）されたヒストンの量、H3K27Ac（ヒストンＨ３の２７番目のリジン残基がアセチル化）されたヒストンの量またはヒストンへの非結合量を意味する。図２Bは、サルコーマ細胞株G1297においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合での、第１２染色体におけるH3K4me3およびH3K27Acに対する抗体を用いたChIP-seq解析ならびにFAIRE-seq解析の結果を示す。図中、EWS/ATF1（HA）は、EWS/ATF1の結合領域を示し、H3K4me3、H3K27AcおよびFAIREは、それぞれ、H3K4me3されたヒストンの量、H3K27Acされたヒストンの量およびヒストンへの非結合量のピークを示す。図２Cは、サルコーマ細胞株G1297においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合での、トランスポーザブルエレメント近辺におけるH3K9me3に対する抗体を用いたChIP-seq解析の結果を示す。図中、縦軸は、EWS/ATF1を誘導しなかった（OFF）場合のRPM (read per million)に対するEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合のRPMの対数を示す。従って、値が高いことは、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合に当該領域にてH3K9me3が亢進していることを意味する。図２Dは、サルコーマ細胞株G1297にてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのL1（左図）およびMMERVK10c（右図）の発現をRT-PCRで測定した結果を示す。図２Eは、サルコーマ細胞株G1297においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合での、EWS/ATF1により誘導される遺伝子の転写開始サイト（ＴＳＳ）近辺におけるH3K9me3に対する抗体を用いたChIP-seq解析の結果を示す。図中、縦軸は、EWS/ATF1を誘導しなかった（OFF）場合のRPM (read per million)に対するEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合のRPMの対数を示す。図２Fは、ES細胞、体細胞、サルコーマ細胞株G1297においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのERVK領域におけるCpGサイトでのReduced Representation Bisulfite Sequencing (RRBS)解析の結果を示す。 図３Aは、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのＥＳ細胞のOct3/4、NanogおよびSox2結合サイトでのH3K9me3量を測定した結果を示す。図中、濃淡は、当該H3K9me3量を示す。図３Bは、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合での筋管細胞のMYOD1結合サイトでのH3K9me3量を測定した結果を示す。図中、濃淡は、当該H3K9me3量を示す。図３Cは、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのＥＳ細胞のOct3/4結合サイトでのOct3/4量を測定した結果を示す。図３Dは、サルコーマ細胞株G1297へ初期化因子（4F）導入またはGFP導入後4日目にEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合での、4F導入またはGFP導入後6日目の細胞から回収したRNAのうちOct3/4によって調整される遺伝子の発現をマイクロアレイによって解析した結果を示す。図３Eは、サルコーマ細胞株G1297へMYOD1導入した細胞においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合もしくは、EWS/ATF1を発現誘導（ON）し、RNAiによりSuv39h1、Suv39h2またはEzh2の発現を抑制した場合でのMyogeninの発現をRT-PCRで測定した結果を示す。図３Fは、サルコーマ細胞株G1297へMYOD1導入またはGFP導入後4日目にEWS/ATF1を発現誘導（ON）させ、Suv39h1の発現抑制した（siSuv39h1）場合または発現抑制しなかった（siControl）場合でのMYOD1導入またはGFP導入後6日目の細胞から回収したRNAを用いてマイクロアレイ解析をした結果を示す。図３Gは、図３Fの結果において、Suv39h1の発現抑制した場合に発現が増加した遺伝子のgene ontology (GO) termを示す。 図４Aは、MP-CCS-SY細胞株へ初期化因子、MYOD1またはGFPおよびsiRNAの導入の方法を記載した概略図を示す。図４Bは、MP-CCS-SY細胞株へ初期化因子（+4F）またはGFPを導入した場合における、RNAiによりEWS/ATF1の発現抑制した（siEWS/ATF1）場合または発現抑制しなかった（siControl）場合でのPODXLの発現をRT-PCRで測定した結果（左図）、およびMP-CCS-SY細胞株へMYOD1またはGFPを導入した場合における、RNAiによりEWS/ATF1の発現抑制した（siEWS/ATF1）場合または発現抑制しなかった（siControl）場合でのMyogeninの発現をRT-PCRで測定した結果（右図）を示す。図４Cは、HCC827またはSK-BR3細胞株へ初期化因子の導入および各薬剤の添加方法を記載した概略図を示す。図４Dは、SK-BR3細胞株へ初期化因子を導入した（Dox(4F)+）場合または導入しなかった（Dox(4F)-）場合におけるDMSO、5FUまたはLapatinib（Lap）を添加した場合でのPODXLの発現をRT-PCRで測定した結果（左図）、およびHCC827細胞株へ初期化因子を導入した（Dox(4F)+）場合または導入しなかった（Dox(4F)-）場合における、DMSO、5FUまたはGefitinib（Gef）を添加した場合でのPODXLの発現をRT-PCRで測定した結果（右図）を示す。図４Eは、SK-BR3細胞株へ初期化因子を導入した（Dox(4F)+）場合または導入しなかった（Dox(4F)-）場合におけるLapatinib（Lap）またはDMSOを添加した場合でのマイクロアレイ解析の結果（左図）、およびHCC827細胞株へ初期化因子を導入した（Dox(4F)+）場合または導入しなかった（Dox(4F)-）場合における、Gefitinib（Gef）またはDMSOを添加した場合でのマイクロアレイ解析の結果（右図）を示す。図４Fは、SK-BR3細胞株にてLapatinib（Lap）またはDMSOを添加した場合でのL1 OFR2（左図）およびHERV-W（右図）の発現をRT-PCRで測定した結果を示す。図４Gは、HCC827細胞株にてGefitinib（Gef）またはDMSOを添加した場合でのL1 OFR2（左図）およびHERV-W（右図）の発現をRT-PCRで測定した結果を示す。図４Hは、SK-BR3細胞株へ初期化因子を導入した（Dox(4F)+）場合または導入しなかった（Dox(4F)-）場合におけるLapatinib（Lap）またはDMSOを添加した場合でのHERVH関連遺伝子についてマイクロアレイ解析をした結果を示す。図４Iは、SK-BR3細胞株へLapatinib（Lap）またはDMSOを添加した場合での全ての遺伝子またはHERVH関連遺伝子の発現についてマイクロアレイ解析をした結果（左図）およびHCC827細胞株へGefitinib（Gef）またはDMSO添加した場合での全ての遺伝子またはHERVH関連遺伝子の発現についてマイクロアレイ解析をした結果（右図）を示す。 図５Aは、サルコーマ細胞株G1297へドキシサイクリン（DOX） 0、0.1、0.2、1または2μg/mlを添加して培養した際の増殖曲線を示す。図５Bは、サルコーマ細胞株G1297へ初期化因子を導入した（+4F）場合または導入しなかった（-4F）場合において、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのOct3/4量をウェスタンブロッティング法で測定した結果を示す。図５Cは、EWS/ATF1を発現誘導しなかった（DOX 0μg/ml）場合における初期化因子の導入後に樹立されたiPS細胞の位相差顕微鏡像を示す。図５Dは、サルコーマ細胞株G1297においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのOct3/4およびNanogの発現量をRT-PCR法で測定した結果を示す。図中、ESC（ES細胞）は陽性対照として用いた。図５Eは、EWS/ATF1の発現誘導と初期化因子の導入の方法を記載した概略図を示す。図５Fは、サルコーマ細胞株G1297へ初期化因子を導入した（+4F）細胞または導入しなかった（GFP）細胞において、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのCadh1（左図）およびEpcam（右図）の発現をRT-PCRで測定した結果を示す。 図６Aは、サルコーマ細胞株G1297においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合での全遺伝子の転写開始サイト（ＴＳＳ）におけるH3K4me3およびH3K27Acに対する抗体を用いたChIP-seq解析ならびにFAIRE-seq解析の結果を示す。図６Bは、サルコーマ細胞株G1297においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのERVKの転写開始サイト（TSS）近辺におけるH3K9me3に対する抗体を用いたChIP-seq解析の結果を示す。図中、縦軸は、EWS/ATF1を誘導しなかった（OFF）場合のRPM (read per million)に対するEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合のRPMの対数を示す。従って、値が高いことは、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合において当該領域でのH3K9me3が亢進していることを意味する。図６Cは、サルコーマ細胞株G1297においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合での第１５染色体におけるH3K9me3に対する抗体を用いたChIP-seq解析の結果を示す。LTR/ERVKの転写領域を下図に示す。図６Dは、サルコーマ細胞株G1297においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合での、トランスポーザブルエレメント近辺およびEWS/ATF1により誘導される遺伝子の転写開始サイト（ＴＳＳ）におけるH3K9me3に対する抗体を用いたChIP-seq解析（ランダムマッピング法）の結果を示す。図中、縦軸は、EWS/ATF1を誘導しなかった（OFF）場合のRPM (read per million)に対するEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合のRPMの対数を示す。従って、値が高いことは、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合に当該領域にてH3K9me3が亢進していることを意味する。 図７Aは、ES細胞、体細胞、サルコーマ細胞株G1297においてEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合での転写開始サイト（TSS）、EWS/ATF1結合サイト、Oct3/4結合サイト、Sox2結合サイトおよびNanog結合サイトにおけるCpGサイトでのReduced Representation Bisulfite Sequencing (RRBS)解析の結果を示す。図７Bは、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合での神経幹細胞のAscl1結合サイトでのH3K9me3量を測定した結果を示す。図中、濃淡は、当該H3K9me3量を示す。図７Cは、EWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合でのＥＳ細胞のOct3/4結合サイトにおけるH3K4me3およびH3K27Acに対する抗体を用いたChIP-seq解析ならびにFAIRE-seq解析の結果（左図）および筋管細胞のMyoD1結合サイトにおけるH3K4me3およびH3K27Acに対する抗体を用いたChIP-seq解析ならびにFAIRE-seq解析の結果（右図）を示す。 図８Aは、ChIP解析のためのEWS/ATF1を発現誘導と初期化因子の導入の方法を記載した概略図を示す。図８Bは、サルコーマ細胞株G1297へMyoD1導入またはGFP導入後4日目にEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合、または誘導しなかった（OFF）場合におけるMyoD1導入またはGFP導入後6日目の細胞から回収したRNAのうち、MyoD1によって調整される遺伝子の発現をマイクロアレイによって解析した結果を示す。図８Cは、サルコーマ細胞株G1297へEWS/ATF1を発現誘導した（ON）場合または誘導しなかった（OFF）場合における、ヒストン修飾酵素（Suv39h1、Suv39h2、Eed、Suz12およびEzh2）の発現をRT-PCRで確認した結果を示す。各ヒストン修飾酵素において、左のバーはEWS/ATF1を発現誘導したもの（EWS/ATF1 ON）、右のバーはEWS/ATF1を発現誘導しなかったもの（EWS/ATF1 OFF）を示す。 図９Aは、RT-PCR解析のためのEWS/ATF1を発現誘導とMyoD1の導入および各siRNAの導入の方法を記載した概略図ならびに各ヒストン修飾酵素（Suv39h1、Suv39h2、Ezh2、Suz12およびEed）の発現抑制の効果を示す。図９Bは、サルコーマ細胞株G1297にてRNAiによりSuv39h1またはEzh2の発現抑制を行った場合におけるL1 promoterの発現をRT-PCRで測定した結果を示す。図９Cは、初期化因子を導入するためのPiggyBacベクターのコンストラクトおよびSK-BR3へ導入後の細胞の位相差像および蛍光像を示す。 図１０は、A549細胞株へ初期化因子を導入した（Dox(4F)+）場合または導入しなかった（Dox(4F)-）場合におけるDMSO、5FU（1ｍMまたは10mM）またはGefitinib（Gef）（10mMまたは50mM）を添加した場合でのPODXLの発現をRT-PCRで測定した結果を示す。 図１１Aは、H2228およびKBM7へのレトロウィルスによる初期化因子(4F)の導入と、抗がん剤（Alectinib、Imatinib）の導入の方法を記載した概略図を示す。図１１Bは、H2228およびKBM7へ初期化因子を導入した場合において、H2228にAlectinib（0μM(control)、1μMまたは10μM）を添加した場合、およびKBM7にImatinib（0μM(control)を添加)、１μMまたは10μM）を添加した場合でのL1の発現をRT-PCRで測定し、転写レベルをGAPDH値で標準化した結果を示す。 図１２Aは、マウスサルコーマ細胞株G1297へEWS/ATF1を発現誘導した（DoxON）場合または誘導しなかった（DoxOFF）場合において、それぞれ初期化因子を導入した（+4F）場合または導入しなかった場合での第８染色体のERVK遺伝子座におけるRNA-seq解析の結果を示す。図１２Bは、DoxONおよびDoxOFFの場合におけるERVKの発現をRT-PCRで測定し、転写レベルをβ-アクチン(Actb)値で標準化した結果を示す。
　本発明は、下記の工程を含む、がんの治療薬をスクリーニングする方法を提供する；
（i）対象となるがん細胞へ、被験物質との接触下でトランスポーザブルエレメントの発現を測定する工程、および
（ii）被験物質と接触させる条件下において、接触させない条件下より前記トランスポーザブルエレメントの発現が増加した場合、当該被験物質をがんの治療薬として選出する工程。
がん細胞
　本発明において、がんとは、悪性腫瘍を意味し、癌腫（上皮細胞由来の悪性腫瘍）、肉腫、その他白血病などを含み、特定のがんに限定されない。また、本発明で用いるがん細胞とは、悪性腫瘍を構成する細胞であり、株化された細胞であっても生体内から単離された細胞であってもよい。また、本発明で用いるがん細胞は、有効な標的タンパク質が既知（即ち、ある既存の分子標的薬に対して感受性であることが既知）のがん細胞（例えば、EWS/ATF1融合遺伝子強制発現がん細胞、ゲフィチニブ感受性の変異EGFR発現がん細胞、ラパチニブ感受性のHER2-増幅がん細胞、アレクチニブ感受性のEML4-ALK融合遺伝子発現がん細胞、イマチニブ感受性の慢性骨髄性白血病細胞など）であってもよいし、有効な標的タンパク質が不明のがん細胞であってもよい。
被験物質
　本発明のスクリーニング方法においては、任意の被験物質を用いることができ、いかなる公知化合物および新規化合物であってもよく、例えば、細胞抽出物、細胞培養上清、微生物発酵産物、海洋生物由来の抽出物、植物抽出物、核酸（特にsiRNA）、精製タンパク質または粗タンパク質、ペプチド、非ペプチド化合物、合成低分子化合物、天然化合物等が挙げられる。本発明において、被験物質はまた、（1）生物学的ライブラリー法、（2）デコンヴォルーションを用いる合成ライブラリー法、（3）「1ビーズ1化合物（one-bead one-compound）」ライブラリー法、及び（4）アフィニティクロマトグラフィ選別を使用する合成ライブラリー法を含む当技術分野で公知のコンビナトリアルライブラリー法における多くのアプローチのいずれかを使用して得ることができる。アフィニティクロマトグラフィ選別を使用する生物学的ライブラリー法はペプチドライブラリーに限定されるが、その他の4つのアプローチはペプチド、非ペプチドオリゴマー、または化合物の低分子化合物ライブラリーに適用できる（Lam (1997) Anticancer Drug Des. 12: 145-67）。分子ライブラリーの合成方法の例は、当技術分野において見出され得る（DeWitt et al. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90: 6909-13; Erb et al. (1994) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91: 11422-6; Zuckermann et al. (1994) J. Med. Chem. 37: 2678-85; Cho et al. (1993) Science 261: 1303-5; Carell et al. (1994) Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 33: 2059; Carell et al. (1994) Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 33: 2061; Gallop et al. (1994) J. Med. Chem. 37: 1233-51）。化合物ライブラリーは、溶液（Houghten (1992) Bio/Techniques 13: 412-21を参照のこと）またはビーズ（Lam (1991) Nature 354: 82-4）、チップ（Fodor (1993) Nature 364: 555-6）、細菌（米国特許第5,223,409号）、胞子（米国特許第5,571,698号、同第5,403,484号、及び同第5,223,409号）、プラスミド（Cull et al. (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89: 1865-9）若しくはファージ（Scott and Smith (1990) Science 249: 386-90; Devlin (1990) Science 249: 404-6; Cwirla et al. (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87: 6378-82; Felici (1991) J. Mol. Biol. 222: 301-10; 米国特許出願第2002103360号）として作製され得る。
　がん細胞と被験物質の接触は、がん細胞の培養液へ適宜被験物質を添加することによって行われても良く、本発明において、がん細胞の培養液は、動物細胞の培養に用いられる培地を基礎培地として調製することができる。基礎培地としては、例えばIMDM培地、Medium 199培地、Eagle's Minimum Essential Medium (EMEM)培地、αMEM培地、Dulbecco's modified Eagle's Medium (DMEM)培地、Ham's F12培地、RPMI 1640培地、Fischer's培地およびこれらの混合培地などが包含される。培地には、血清が含有されていてもよいし、あるいは無血清でもよい。必要に応じて、培地は、例えば、アルブミン、インスリン、トランスフェリン、セレン、脂肪酸、微量元素、2-メルカプトエタノール、チオールグリセロール、脂質、アミノ酸、L-グルタミン、非必須アミノ酸、ビタミン、増殖因子、低分子化合物、抗生物質、抗酸化剤、ピルビン酸、緩衝剤、無機塩類、サイトカインなどの1つ以上の物質も含有し得る。
　培養温度、CO２濃度等の他の培養条件は適宜設定できる。培養温度は、特に限定されるものではないが、例えば約30～40℃、好ましくは約37℃である。また、CO２濃度は、例えば約１～10％、好ましくは約5％である。O2濃度は、1～20％である。また、O２濃度は、１～10％であってもよい。
　がん細胞と被験物質の接触時間は特に限定されないが、１時間、２時間、６時間、１２時間、１日、１．５日、２日またはそれ以上が例示される。
　エピジェネティック修飾は、メチル化DNAを濃縮する方法、バイサルファイト処理による塩基置換を利用する方法、またはメチル化感受性の制限酵素を利用する方法により、DNAのメチル化を解析する方法や、解析目的の修飾ヒストン抗体でクロマチン免疫沈降法（ChIP）を行い、濃縮物をRT-PCRや次世代シークエンサーにより解析する方法(ChIP-seq解析)、ゲノム上のオープンクロマチン領域を、FAIRE法で抽出し次世代シークエンサーを用いて解析する方法（FAIRE-seq解析）などにより解析することができる。
トランスポーザブルエレメント
　本発明において、トランスポーザブルエレメントとは、可動遺伝因子またはトランスポゾンと呼ばれるゲノム上を移動または複写されゲノム内へ挿入される遺伝子配列を意味する。本発明のがんの治療薬のスクリーニングの指標として用いる好ましいトランスポーザブルエレメントは、レトロトランスポゾンである。本発明において、レトロトランスポゾンとは、RNAに複写される配列であることから、当該複写されたRNAを指標として用いることができる。本発明において、レトロトランスポゾンは、LTR（long terminal repeat）型レトロトランスポゾン（内在性レトロウィルス）と非 LTR 型レトロトランスポゾンを含む。LTR型レトロトランスポゾンとして、HERV-E、HERV-F、HERV-H、HERV-K、HERV-L、HERV-T、HERV-W、HERV-FRD、ERV9、HML-1、HML-2、HML-3、HML-4、HML-5、HML-6、HML-9HML-10およびERVKから成る群より選択される遺伝子が例示され、非 LTR 型レトロトランスポゾンとして、LINE（長鎖散在反復配列）またはSINE（短鎖散在反復配列）が例示される。LINEとして、オープンリーディングフレーム（ORF）1とORF2というエンドヌクレアーゼ/逆転写酵素をコードするLINE-1 (L1) レトロトランスポゾンが例示される。
　当該トランスポーザブルエレメントの配列は、適宜、NCBIのデータベースより入手でき、この配列情報を用いて、トランスポーザブルエレメントまたはその断片の発現量を逆転写酵素PCR分析、定量的な逆転写酵素PCR分析、ノーザン・ブロット分析、免疫組織化学、アレイ分析、RNA-seq解析およびそれらの組合せによって測定することができる。また、トランスポーザブルエレメントまたはその断片の発現は、DNAのメチル化やヒストン修飾などのエピジェネティック修飾の解析により評価することができる。
がんの治療薬をスクリーニングするためのキット
　本発明において、がんの治療薬をスクリーニングするためのキットは、上述したトランスポーザブルエレメントの発現量を測定するために用いるプライマーまたはプローブを含む。
　本発明において、がんの治療薬をスクリーニングするためのキットは、さらに、測定手順を記載した書面や説明書を含んでもよい。あるいは有効な標的タンパク質（ここで、有効な標的タンパク質とは上記と同義である）の異なる種々のがん細胞のパネルをさらに含んでもよい。
　本発明の別の側面においては、がん治療薬の創薬標的となり得るタンパク質の同定方法が提供される。本同定方法は下記の工程：
（i）被験タンパク質をコードする遺伝子（候補遺伝子）を、発現制御可能な形態で含むがん細胞内で、候補遺伝子を発現する条件下または該遺伝子の発現が抑制された条件下で、トランスポーザブルエレメントの発現量を測定する工程、および
（ii）候補遺伝子の発現が抑制された条件下において、該遺伝子を発現する条件下と比較して前記トランスポーザブルエレメントの発現量が増加した場合、当該被験タンパク質をがんの治療薬の創薬標的となり得るタンパク質として選出する工程
を含むことを特徴とする。
　ここで、候補遺伝子としては、がん細胞における遺伝子発現をマイクロアレイ等を用いて網羅的に解析した結果同定される、がん細胞に特有に発現している遺伝子やがん細胞で高発現している遺伝子が挙げられる。
　また、発現制御可能な形態とは、候補遺伝子の発現のON/OFFが可能な形態を意味し、例えば、候補遺伝子が、誘導プロモーター（例、メタロチオネインプロモーター（重金属イオンで誘導）、ヒートショックタンパク質プロモーター（ヒートショックで誘導）、Tet-ON／Tet-OFF系プロモーター（テトラサイクリン又はその誘導体の添加又は除去で誘導）、ステロイド応答性プロモーター（ステロイドホルモン又はその誘導体で誘導）等）の制御下におかれた発現ベクター等が挙げられる。
　トランスポーザブルエレメントの発現の確認・評価については、上記したがん治療薬のスクリーニング方法と同様である。
　本発明を以下の実施例でさらに具体的に説明するが、本発明の範囲はそれら実施例によってなんら限定されるものではない。
　がん細胞の初期化に対するがん遺伝子の効果を調べるため、Yamada K, et al, J Clin Invest. 123:600-610, 2013に記載のEWS/ATF1融合遺伝子をドキシサイクリン（Ｄｏｘ）依存的に誘導可能なマウスサルコーマ細胞株（G1297株とも称す）を用いた。なお、当該サルコーマ細胞は、EWS/ATF1の発現停止によりin vitroでの増殖停止およびin vivoでの腫瘍の退縮が確認されている。
　0.2 μg/mlのドキシサイクリン添加によるEWS/ATF1を発現誘導することでマウスES細胞の増殖に影響が出ないことから、EWS/ATF1は、導入した初期化因子の発現量に影響を与えないことを確認した（図５A、図５Bおよび図５D）。
　続いて、G1297に初期化因子を導入することにより、G1297が初期化されるのか否かについて確認した。EWS/ATF1を発現させたサルコーマ細胞では、初期化因子(4F：Oct3/4, Sox2, Klf4, および c-Myc)をレトロウィルスにより導入してもiPS細胞様コロニーは観察されなかった。一方、EWS/ATF1の発現を停止させた場合は、4Fの発現によりiPS細胞様コロニーが確認された（図１A～C）。このiPS細胞様コロニーをピックアップすることによりiPS細胞様細胞株を樹立した（図５C）。なお、iPS細胞の誘導は、次の方法により行った。Oct3/4、Sox2、Klf4およびc-MycをpMXs-basedレトロウィルスベクターを用いて、それぞれPlat-E細胞へ導入し、ウィルス含有上清を回収し、0.45μmセルロースアセテートフィルターでろ過した。G1297を60-mmディッシュあたり8×105の細胞を播種し、ウィルス含有上清を用いて感染させ、感染後３日目にＬＩＦ含有ＥＳ培地に交換し培養した。
　樹立したiPS細胞様細胞株は、親サルコーマ細胞と同様にドキシサイクリン依存的にEWS/ATF1を発現することが確認された（図１D）。さらに、いくつかの染色体異常も同様に観察され、当該iPS細胞様細胞株がサルコーマ細胞由来であることが確認された（図１E）。当該サルコーマ細胞由来のiPS細胞様細胞における、Nanogおよび内在性のOct3/4 (Pou5f1)などの多能性関連遺伝子の発現をES細胞と比較したところ、大きな違いは見られなかった（図１Fおよび図５D）。なお、RT-PCRは次の方法を用いて行った。RNeasy Plus Mini kit (Qiagen, Hilden, Germany)を使用して全ＲＮＡを単離した。Go-taq qPCR Master Mix(Promega, Madison, USA)を使用して定量的real-time PCR解析を行った。転写レベルをβ-actinまたはGAPDH値で標準化した。
　サルコーマ細胞の初期化の効率は、0.06％であり、このことは、MEFの初期化効率よりも低いことが示された。得られたiPS細胞様細胞を免疫不全マウスの皮下に投与したところ、テラトーマが形成され、さらに、胚盤胞に注入することでキメラマウスを作成できた（図１Gおよび図１H）。
　以上より、EWS/ATF1発現依存性サルコーマ細胞では、EWS/ATF1の発現を抑制することで初期化により多能性細胞を得られることが確認された。この結果は、EWS/ATF1発現依存性サルコーマ細胞の初期化において、EWS/ATF1は抑制的に働くことを示している。
　続いて、EWS/ATF1を介したがん細胞の初期化不全のメカニズムを解析した。まず、SSEA1陽性細胞の発生をFACS解析することで初期化の早期における現象を確認した（図１I）。その結果、SSEA1陽性細胞数は、Dox濃度依存的に減少することが確認された。このことから、EWS/ATF1は、初期化の早期段階から阻害することが示唆された。また、線維芽細胞の初期化における最初の事象である間葉-上皮移行のマーカーの発現をマイクロアレイによって調べたところ、EWS/ATF1の発現抑制後、これらの遺伝子が有意に上昇することが確認された。一方、EWS/ATF1の発現は、MEFでは、初期化によるSSEA1陽性細胞の発生を抑制していないことから（図１J）、EWS/ATF1の発現はサルコーマ細胞に特異的な初期化抑制をもたらすことが示唆された。
　がん遺伝子の発現が、4Fの導入時の転写応答においていかなる影響を与えるかを調べるため、4Fを導入した際のサルコーマ細胞（4F－サルコーマ細胞）または陰性対照としてGFPを導入した際のサルコーマ細胞のマイクロアレイ解析をEWS/ATF1の発現させた場合と発現させなかった場合それぞれについて行った（図５E）。なお、マイクロアレイ解析は、Mouse Gene 1.0 ST Array (Affymetrix Inc., Santa Clara, USA)を使用して行った。すべてのデータ解析は、GeneSpring GX software program (version 12; Agilent Technology, Santa Clara, USA)を使用して行った。
　その結果、4F－サルコーマ細胞においてEWS/ATF1の発現を抑制することで多くの遺伝子が上昇または下降することが確認された（図１K）。発現が変化した遺伝子は、EWS/ATF1を発現した4F-サルコーマ細胞においても同様に上昇または下降していたが、EWS/ATF1が発現していない4F-サルコーマ細胞に比べて、変化の違いは小さかった（図５F）。以上より、EWS/ATF1の発現は、サルコーマ細胞における運命変更を抑制していることが示唆された。
　さらにMYOD1の導入による骨格筋分化誘導へのEWS/ATF1の発現の影響を調べた（図１L）。その結果、初期骨格筋分化マーカーであるMyogenin（MYOG）の発現が、MYOD1導入サルコーマ細胞（MYOD1－サルコーマ細胞）においてEWS/ATF1発現抑制後、有意に上方制御されていることが確認された（図１M）。また、MHC（myosin heavy chain）陽性細胞は、EWS/ATF1 が発現していないMYOD1－サルコーマ細胞において有意に増加していた（図１N）。MYOD1の導入による初期転写応答をマイクロアレイ法で分析したところ、EWS/ATF1発現したサルコーマ細胞と比べて、EWS/ATF1を発現しない細胞では、MYOD1の導入による遺伝子変化数が増加した（図１ O）。骨格筋分化誘導関連遺伝子（例えば、Myogenin）は、EWS/ATF1の発現抑制されたサルコーマ細胞においてMYOD1の導入により大きく上方制御されることが示された。一方、筋細胞の分化形質転換は、EWS/ATF1発現により抑制されることが確認された。
　以上の結果より、EWS/ATF1の発現は、細胞運命を変える外来性の転写因子に対する転写応答を制限することが示唆された。
　このような転写制御は、エピジェネティック制御が深く関与していると考えられることから、EWS/ATF1発現依存性サルコーマ細胞におけるEWS/ATF1の発現によって調節されるエピジェネティック修飾を調べた。
　まず、EWS/ATF1発現の効果をChIP-seq解析およびFAIRE-seq解析を用いて調べた（図２Aおよび図６A）。前述のようにEWS/ATF1のターゲット遺伝子の発現が上方に制御をされているにもかかわらず、EWS/ATF1により誘導された遺伝子の転写開始サイト（ＴＳＳ）では、活性化プロモーターの指標であるH3K4me3は、変化が観察されなかった。しかし、EWS/ATF1の発現により、ＴＳＳ ではなくＴＳＳから離れたEWS/ATF1の結合サイトにおける、活性化エンハンサーの指標であるH3K27Acの促進は確認された。以上の結果より、遠位制御サイトにおいてエンハンサー活性が転写の増加に関連していることが示唆された。
　FAIRE-seq解析により、EWS/ATF1の発現によるオープンクロマチンのピークは、EWS/ATF1結合サイトにあること、およびEWS/ATF1の発現抑制によりこのオープンクロマチンピークが消えることが確認された(図２B)。この結果は、EWS/ATF1結合サイトでのエピジェネティック修飾による活性化が、転写の増加に密接に関連していることを示唆している。
　続いて、抑制型ヒストンマーカーに注目して解析を行った。EWS/ATF1の発現は、EWS/ATF1発現依存性サルコーマ細胞のトランスポーザブルエレメント（ERVs, LINEsおよびSINEs）においてH3K9me3を増加させることが見出された(図２C、図６B、図６Cおよび図６D)。このことから、EWS/ATF1発現依存性サルコーマ細胞においてEWS/ATF1の発現を抑制し、トランスポーザブルエレメントの発現を確認したところ、トランスポーザブルエレメントであるL1およびMMERVK10cの発現が増加することが確認された(図２D)。さらに、ＴＳＳ領域でH3K9me3を確認したところ、EWS/ATF1の発現により適度な増幅を引き起こすことが見出された(図２Ｅ)。一方、RRBS（Reduced Representation Bisulfite Sequencing）分析を行ったところ、ERVs、ＴＳＳ領域、Oct3/4結合サイト、Nanog結合サイトおよび Sox2結合サイトにおける、EWS/ATF1発現の有無によるDNAメチル化のレベルの違いは見出されなかった(図２Ｆおよび図７A)。
　以上の結果は、EWS/ATF1が活性と抑制のヒストン修飾の両方を誘導することから、EWS/ATF1を発現するサルコーマ細胞では、複雑なヒストンのメチル化修飾を有することを示唆している。
　トランスポーザブルエレメントは、細胞を特徴づける転写ネットワークに重要な役割を果たす主要な転写因子の結合サイトを有することから、EWS/ATF1発現の効果を調べた。ＥＳ細胞の多能性を維持するためのコア制御ネットワークは、Oct3/4, Nanog, および Sox2を介した協調的な活性化からなることが報告されている。そこで、ＥＳ細胞のOct3/4、Nanogおよび Sox2の結合サイトでのH3K9me3修飾へのEWS/ATF1の影響を調べたところ、H3K9me3が増加することが見出された(図３Ａ)。同様に、神経幹細胞におけるAscl1結合サイトおよび筋管におけるMyoD1結合サイトにおいて、EWS/ATF1の発現によりH3K9me3が亢進することも見出された（図３Bおよび図７B）。
　一方、ＥＳ細胞のOct3/4結合サイトおよび筋管のMyoD1結合サイトにおける活性型ヒストンマーカーであるH3K4me3 および H3K27Acの量は、EWS/ATF1の発現によって変化しなかった（図７C）。同様に、オープンクロマチンピークも変化しなかった（図７C）。これらの結果より、EWS/ATF1の発現が、H3K9me3を亢進して細胞の運命決定因子の発現を抑制する可能性があることが示唆された。
　EWS/ATF1と導入初期化因子の結合を調べるために、V5でタグ化したOct3/4をSox2、Klf4および c-Mycとともに導入し、抗V5抗体を使用してChIP-seq解析を行った（図８A）。その結果、ＥＳ細胞のOct3/4 結合サイトへのV5タグ化Oct3/4結合は、EWS/ATF1の発現によって抑制されなかった(図３C)。
　続いて、Oct3/4結合サイトに隣接する遺伝子の発現をEWS/ATF1の発現の有無において、マイクロアレイ解析を行ったところ、EWS/ATF1を発現しない4F－サルコーマ細胞において多くのOct3/4結合サイトに隣接する遺伝子が上方または下方制御されていたが、EWS/ATF1が発現する場合には、上方または下方制御される遺伝子の数が制限された（図３D）。同様に、MyoD1結合サイトに関連する転写活性化は、EWS/ATF1が発現する場合、抑制されていることが確認された（図８B）。
　H3K9me3の関係を調べるため、EWS/ATF1の発現とヒストンメチルトランスフェラーゼの発現量の関係を調べた。その結果、H3K9メチルトランスフェラーゼであるSuv39h1/Suv39h2およびH3K27メチルトランスフェラーゼであるEzh2が、EWS/ATF1の発現によって上方制御されることが確認された（図８C）。
　続いて、これらのメチルトランスフェラーゼのEWS/ATF1による発現誘導を抑制した場合のMYOD1の制御遺伝子の発現を調べた。実験方法および各メチルトランスフェラーゼのsiRNAの効果を（図９A）に記載した。その結果、サルコーマ細胞においてSuv39h1をノックダウンすると、L1の発現が増加した（図９B）。また、Suv39h1およびSuv39h2をノックダウンすると、EWS/ATF1が発現していても、Myogeninの発現誘導を有意に増加させた（図３E）。さらに、Suv39h1を抑制し、MYOD1を導入または導入しなかった場合の遺伝子変化をマイクロアレイ法により解析したところ、Myogeninを含むMYOD1によって誘導される遺伝子の発現量が増加することが明らかとなった（図３F）。一方、Ezh2 または Eedをノックダウンした場合であっても、MYOD1によってMyogeninの発現が誘導されなかった。この結果より、EWS/ATF1によりH3K9メチルトランスフェラーゼの発現が誘導されることによって、サルコーマ細胞において、細胞の運命を決定づける遺伝子の転写を抑制することが示唆された。
　次に、ヒト明細胞肉腫（ＣＣＳ）細胞株の初期化におけるEWS/ATF1の発現の効果を調べた。4Fを導入したCCS細胞においてEWS/ATF1をノックダウンしたところ（図４A）、ヒト初期化の初期マーカーであるTRA-1-60をコードするPODXLの発現を増加させたが（図４B）、完全に初期化されたiPS細胞を樹立することはできなかった。同様に、MYOD1を導入したCCS細胞においてEWS/ATF1をノックダウンしたところ、MYOGの発現の増加が認められた（図４B）。
　この他にも、がん遺伝子のシグナル活性化が、細胞の初期化に与える影響を調べた。上皮増殖因子レセプター（EGFR）変異肺がん細胞株HCC827およびHER2－増幅乳がん細胞株SK-BR-3を実験に使用した。なお、これらのがん細胞株は、それぞれEGFR特異的チロシンキナーゼおよびHER2チロシンキナーゼ阻害剤に感受性である。HCC827およびSK-BR-3へDox誘導性4FをPBトランスポゾンを用いて導入し（図９C）、それぞれEGFRチロシンキナーゼ阻害剤であるgefitinibおよびHER2チロシンキナーゼ阻害剤lapatinibの初期化に対する効果を調べた（図４C）。その結果、4F導入SK-BR-3において、lapatinibを50%阻害濃度（IC50）で処置したところ、初期化マーカーであるPODXLの発現を促進したが（図４D）、ヒトがん細胞株から完全に初期化されたiPS細胞の樹立までは成功しなかった。一方、5-フルオロウラシル（5FU）をIC50濃度で処置してもPODXLの発現は増加しなかった（図４D）。同様に、4Fを導入したHCC827において、gefitinibをIC50濃度で処置したところ、PODXLの発現を促進したが、5FUをIC50濃度で処置してもPODXLの発現は増加しなかった（図４D）。一方、野生型EGFRを有する肺がん細胞株A549では、4F導入時のgefitinib処置によってもPODXLの発現は上昇しなかった（図１０）。マイクロアレイ解析によって、HCC827 およびSK-BR-3への４Fの導入時または非導入時の遺伝子発現変化を調べた。それぞれgefitinibおよびlapatinibで処置したところ、PODXLやNANOGを含む多くの遺伝子が上方または下方制御されることが明らかとなった（図４E）。これらの結果により、主要ながん遺伝子シグナルが、安定的な転写ネットワークを介してがん細胞の特徴を維持することが示唆された。
　次に、HCC827、SK-BR-3およびG1297以外のがん細胞についても、本発明のスクリーニング方法に適用可能であるかについて評価した。すなわち、既知のがん細胞種である、EML4-ALK融合遺伝子を発現する非小細胞肺がん細胞株H2228、および慢性骨髄性白血病細胞株KBM7を用いて評価した。ここで、H2228細胞株はALK阻害剤であるAlectinibに感受性を示すこと、KBM7細胞株はBcr-Ablチロシンキナーゼ阻害薬であるImatinibに感受性を示すことが知られている。H2228およびKBM7へ初期化因子（４F：Oct3/4、Sox2、Klf4およびc-Myc）をレトロウィルスによって導入し、感染１日目に、H2228の培養培地に1μMまたは10μMとなるようにAlectinibを添加し、一方でKBM7の培養培地に1μMまたは10μMとなるようにImatinibを添加した。感染後3日目にそれぞれAlectinib（1μM、10μM）およびImatinib（1μM、10μM）を含有したRPMI1640+10%FBS, GlutaMax, PS（ペニシリン、ストレプトマイシン）培地（H2228用）、IMDM+10%FBS, GlutaMax, PS培地（KBM7用）に交換し、2日後（感染から5日目後）にRNeasy Plus Mini Kit (Qiagen, Hilden, Germany)を使用して全RNAを抽出し、Go-Taq qPCR Master Mix (Promega, Madison, USA)を使用して定量的RT-PCR解析を行い、転写レベルをGAPDH値で標準化した（図１１A）。結果を図１１Bに示す。H2228初期化細胞株では、1μM　Alectinib処理を行った場合に、LINE1（L1）トランスポーザブルエレメントの発現上昇が認められた。また、KBM7初期化細胞株では、Imanitibの濃度依存的にL1トランスポーザブルエレメントの発現上昇が認められた。
　以上の結果より、本発明のスクリーニング方法に使用できるがん細胞は、特定の細胞種に限定されず、広く様々ながん細胞種に適用が可能であることが示唆された。
　ChIP-seq解析によって、SK-BR-3およびHCC827において、それぞれlapatinibおよびgefitinibで処置したところ、トランスポーザブルエレメントでH3K9me3が減少することが明らかとなった。同様に、トランスポーザブルエレメント（L1またはHERV-Wの発現量が増加した（図４F、図４G）。マイクロアレイ解析によって、SK-BR-3およびHCC827 への４Fの導入時または非導入時のHERVH関連遺伝子の発現変化を調べたところ、それぞれlapatinibおよびgefitinibで処置することにより、HERVH関連遺伝子が上方制御されることが明らかとなった（図４Hおよび図４I）。特に、HERVH関連遺伝子が、4Fの導入によるヒトがん細胞における薬剤によるがん遺伝子シグナルの阻害により、あらゆる遺伝子の中で優先的に影響を受けることが確認された(図４I)。
　さらに、G1297株の発現解析から、EWS/ATF1の発現抑制時に発現誘導が認められるトランスポーザブルエレメントの同定を試みた。実験手順は、図５Eの概略図と同じであり、Dox添加によりEWS/ATF1を発現させたG1297株に、初期化因子(+4F)またはGFPをレトロウィルスにより導入し、導入４日後にDox添加を停止した細胞(DoxOFF)と、Dox添加を続けた細胞(DoxON)におけるトランスポーザブルエレメントの発現をRNA-seq解析によって調べた。その結果、図１２Aに示されるように、EWS/ATF1の発現を抑制することで優位に発現上昇が認められるERVKトランスポーザブルエレメントを同定した。なお、RNA-seq解析は次の方法を用いて行った。それぞれの細胞からRNeasy Plus Mini Kit (Qiagen, Hilden, Germany)を使用して全RNAを抽出した後に、TruSeq Stranded Total RNA with Ribo-Zero Gold LT sample Prep kit (illumina)を用いてライブラリーを作成した。KAPA Library Quantification kits（日本ジェネティクス）を用いて濃度定量後、Hiseq PE Rapid Cluster kit v2-HSを用いて、Hiseq2500(illumina)にてシーケンスを行った。シーケンスデータは、TopHatソフトウェアおよびCufflinksソフトウェアを用いて解析し、IGV(Integrative Genomics Viewer)により可視化した。また、定量的RT-PCRにおいても、EWS/ATF1発現抑制時に優位にERVKトランスポーザブルエレメントの発現量が上昇することが認められた（図１２B）。
　以上の結果より、上記の同定したERVKトランスポーザブルエレメントは、本発明のスクリーニング方法に適用可能であることが示された。
　以上のように、がん遺伝子シグナルによってがん細胞の特徴が維持されること、すなわちがん細胞の初期化を阻害することが示された。一方、がん遺伝子をターゲットとする抗がん剤が、がん細胞の初期化の早期段階を促進することも示された。これらの結果は、がん遺伝子シグナルを阻害する薬剤によって、がん細胞が、細胞の運命の変更に対して寛容な状態になり得ることを示している。従って、がん細胞における特定のシグナルを阻害する薬剤の初期化への影響を調べることによって、重要ながん遺伝子のシグナルを検出することが可能となる。
　一方、がん細胞は環境への適応性を有し、それゆえ生存し進行を続け得る。がんの分子標的薬に対する初期応答のあと、大多数のがんは抵抗性を獲得し、疾患の再発を引き起こす。しかし、がん細胞が薬剤に対して抵抗性を獲得するメカニズムは、完全に理解されているわけではないが、がん遺伝子シグナルの阻害によりエピジェネティック修飾の変化を介するゆるやかな転写抑制の解除により、外部からの初期化を強いられたがん細胞が適応性を獲得できるという現象は、抵抗性獲得のメカニズムをサポートするものである。
　一般に、がん細胞がトランスポーザブルエレメントにおいてＤＮＡメチル化のレベルを減少させると言われているが、薬剤の添加によるトランスポーザブルエレメントにおける抑制型ヒストンマーカーの減少ががん細胞の適応性を高めるという考察と矛盾するものではない。がん遺伝子シグナルの阻害を通して獲得した適応性によって、がん細胞の運命が薬剤抵抗性細胞へと変更し得ることが考えられ、分子標的薬で処置したときにがん細胞が生き残るための新しいメカニズムが提供されることが予想される。
　これは、抗がん剤のような、がん遺伝子シグナルを妨げる化合物の同定を目指す現状を否定するようにも見える。しかし、本研究の知見に基づいて、重要ながん遺伝子経路およびがん細胞適応性の両方をターゲットとする併用療法が、がん患者を治療する効果的な方法になり得ることが示唆される。
　本出願は、日本で出願された特許出願特願２０１５－　７７２６７（出願日：２０１５年　４月　３日）を基礎としており、その内容は本明細書に全て包含されるものである。

Claims (5)

  1. 　下記の工程を含む、がんの治療薬をスクリーニングする方法；
    （i）対象となるがん細胞内で、被験物質との接触下または非接触下でトランスポーザブルエレメントの発現量を測定する工程、および
    （ii）被験物質との接触下において、非接触下と比較して前記トランスポーザブルエレメントの発現量が増加した場合、当該被験物質をがんの治療薬として選出する工程。
  2. 　前記トランスポーザブルエレメントが、レトロトランスポゾンまたはその断片である、請求項１に記載の方法。
  3. 　前記トランスポーザブルエレメントが、内在性レトロウィルス、LINE、SINEおよびその断片から選択される少なくとも一つの配列である、請求項２に記載の方法。
  4. 　前記トランスポーザブルエレメントが、HERV-H、HERV-W、L1-ORF2、ERVKおよびその断片から選択される少なくとも一つの配列である、請求項２に記載の方法。
  5. 　下記の工程を含む、がん治療薬の創薬標的となり得るタンパク質の同定方法；
    （i）被験タンパク質をコードする遺伝子を、発現制御可能な形態で含むがん細胞内で、該遺伝子を発現する条件下または該遺伝子の発現が抑制された条件下で、トランスポーザブルエレメントの発現量を測定する工程、および
    （ii）該遺伝子の発現が抑制された条件下において、該遺伝子を発現する条件下と比較して前記トランスポーザブルエレメントの発現量が増加した場合、当該被験タンパク質をがんの治療薬の創薬標的となり得るタンパク質として選出する工程。
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