WO2015086867A1 - Procedimiento para el diagnóstico de cánceres en mucosa oral y faríngea - Google Patents
Procedimiento para el diagnóstico de cánceres en mucosa oral y faríngea Download PDFInfo
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Definitions
- Head and neck cancer is a broad term that encompasses the heterogeneous group of cancers that occur in the upper airways and the digestive tract, including the oral cavity, pharynx and larynx. More than 90% of these cancers develop in the squamous epithelium of the lining of the mucosa, which is why it is known as squamous cell carcinoma.
- the main risk factors for the development of these carcinomas are exposure to tobacco and excessive consumption of alcohol. It is estimated that this type of cancer constitutes 6% of the total and is the sixth cause of death related to cancer.
- the incidence of oral cancer in Spain is approximately 6-13 cases per 100,000 men / year and 1-2 cases per 100,000 women / year.
- the overall rate at 5 years of survival is around 50-60% and depends mainly on the stage of the tumor at the time of diagnosis.
- the present method is applicable to the diagnosis of neoplasms in different stages, such as oral leukoplakia, hyperplasia, mucosal dysplasia (mild to severe), which can be considered as pre-malignant or potentially malignant lesions. * prior to the appearance of clinical and pathological manifestations, thus allowing the early diagnosis of oral cavity cancer.
- This method can be used with a variety of types of lasers that emit in the visible range, such as the He-Ne laser (632 nm), diode laser (637 nm, 785 nm) or the like. Also radiation emitting lasers in the ultraviolet ranges (usually 488 nm or 532 nm) or in the near infrared, such as the Nd-YAG laser (1064 nm) can be used.
- the visible range such as the He-Ne laser (632 nm), diode laser (637 nm, 785 nm) or the like.
- radiation emitting lasers in the ultraviolet ranges usually 488 nm or 532 nm
- the Nd-YAG laser (1064 nm) can be used.
- a sample of pharyngeal human mucosal tissue (non-keratinized pseudostratified epithelium) of pathological appearance (squamous cell carcinoma) is taken.
- a section of the 15-micron thick tissue is prepared with microtome and placed on a slide with an aluminum coating.
- a micro-Raman spectrometer (Horiba Jobin Yvon LABRam-HR800, resolution 4 cm “1 , 950 grooves / mm) is used equipped with a confocal microscope (magnification 50x) and a He-Ne laser (633 nm, maximum energy of 11, 5 mW).
- the values of the P, L and F indices are determined (Table 2).
- the data set is compared with the parameters of normality and malignancy, which allows us to conclude that the diagnosis corresponds to an epidermoid carcinoma.
- a sample of pharyngeal human mucosal tissue (non-keratinized pseudostratified epithelium) of healthy appearance is taken.
- a section of the 15-micron thick tissue is prepared with microtome and placed on a slide with an aluminum coating.
- a micro-Raman spectrometer (Horiba Jobin Yvon LABRam-HR800, resolution 4 cm “1 , 950 grooves / mm) is used equipped with a microscope with focal (magnification 50x) and a He-Ne laser (633 nm, maximum energy of 11 , 5 mW).
- the Raman spectrum is recorded in the range between 800 and 1800 was "1 , with a sweep of 15 seconds and a cumulative of 5 sweeps, (Fig. 2).
- the recorded spectrum is evaluated and quantified (Table 3) by determining the area of the bands associated with phenylalanine (1003 cm “1 ), amide III (1200-1400 cm “ 1 ), amide I (1665 cm “1 ) and CH groups (1450 cm 1 ).
- the values of the P, L and F indices are determined (Table 4). The data set is compared with the parameters of normality and malignancy, which allows us to conclude that the diagnosis corresponds to a healthy mucosa.
Abstract
La presente invención se refiere a un procedimiento para el diagnóstico de cánceres en la cavidad oral y faringe mediante el uso de la espectroscopia Raman, que comprende la cuantificación de las intensidades y áreas de una diversidad de las bandas Stokes del espectro y la definición y cálculo de índices que resultan de dividir las áreas de dos bandas diferentes. El diagnóstico se determina por proximidad de los valores de estos índices con los valores previamente obtenidos en células normales y en células cancerosas.
Description
Procedimiento para el diagnóstico de cánceres en mucosa oral y faríngea
Antecedentes
Cánceres de cavidad oral y faringe
Cáncer de cabeza y cuello es un término amplio que abarca el grupo heterogéneo de cánceres que se presentan en las vías aéreas superiores y el tracto digestivo, incluyendo la cavidad oral, la faringe y la laringe. Más del 90% de estos cánceres se desarrollan en el epitelio escamoso de los revestimientos de la mucosa, por lo que se conoce como carcinoma de células escamosas. Los principales factores de riesgo para el desarrollo de estos carcinomas son la exposición al tabaco y el consumo excesivo de alcohol. Se estima que este tipo de cáncer constituye el 6% del total y es la sexta causa de muerte relacionada con el cáncer. La incidencia del cáncer oral en España es de aproximadamente 6-13 casos por cada 100.000 hombres/año y 1-2 casos por cada 100.000 mujeres/año. La tasa global a los 5 años de supervivencia es de alrededor de 50-60% y depende principalmente de la etapa del tumor al momento del diagnóstico.
La histología es actualmente el método estándar para el diagnóstico de cánceres de la cavidad oral y la orofaringe. Esta examina la morfología, grado de diferenciación y el número de mitosis presentes en la muestra. La precisión del método depende del muestreo apropiado de la lesión de que se trate y la correcta interpretación patológica. Junto con la histología, el tamaño, la afectación de los ganglios linfáticos, invasión perineural, invasión vascular y metástasis a distancia se tienen en cuenta con el fin de adaptar el tratamiento y decidir sobre la terapia adyuvante. Estos factores se utilizan como predictores de la agresividad del tumor y la probabilidad de recurrencia. Hay un período en la transformación maligna o carcinogénesis, en el que se definen las lesiones como pre-malignas. Éstas son la leucoplasia oral (OLK), hiperplasia, displasia mucosa (leve a severa) [P. Holmstrup, P. Vedtofte, J. Reibel, K. Stoltze, Oral Oncol. 2006, 42, 461]. Con la creciente capacidad proliferativa de las células hiperplásicas, el contenido y los tipos de ADN y ARN, proteínas y lípidos va a cambiar tanto cualitativa como cuantitativamente, lo que induce variaciones espectrales de células y tejidos. Todos estos cambios existen antes de que aparezcan las manifestaciones clínicas y patológicas y, por tanto, ofrecen la oportunidad para el diagnóstico precoz del cáncer de cavidad oral. La identificación temprana y la delimitación de estas lesiones malignas, junto con una terapia eficaz son cruciales para mejorar las tasas de supervivencia de las pacientes.
Hoy en día, existe la necesidad clínica de nuevas tecnologías para diagnosticar estos estadios tempranos de la enfermedad e incrementar la rapidez con la que un médico puede hacer el diagnóstico y prescribir el tratamiento apropiado. Técnicas ópticas tales como la espectroscopia de dispersión elástica, técnicas de fluorescencia, espectroscopia infrarroja y la tomografía de coherencia óptica han sido evaluados para la detección de tumores de cabeza y cuello (Amelink A, Kaspers OP, Sterenborg HJ, van der Wal JE, Roodenburg JL, Witjes MJ: Non-invasive measurement of the morphology and physiology of oral mucosa by use of optical spectroscopy. Oral Oncol 2008, 44(1):65-71)), (Arens C, Reussner D, Woenkhaus J, Leunig A, Betz CS, Glanz H: Indirect fluorescence laryngoscopy in the diagnosis of precancerous and cancerous laryngeal lesions. Eur Arch Otorhinolaryngol 2007, 264(6):621-6), (Vokes DE, Jackson R, Guo S, et al: Optical coherence tomography enhanced microlaryngoscopy: preliminary report of a non-contact optical coherence tomography system integrated with a surgical microscope. Ann Otol Rhinol Laryngol 2008, 117:538-547)]. Entre ellos, la espectroscopia Raman ha mostrado un considerable potencial como herramienta de diagnóstico en el tracto aérodigestivo superior, así como en una gama de otros tejidos y órganos, incluyendo la vejiga, mama, hueso, pulmón, sangre, ganglios linfáticos, la laringe, estómago y colon.
Espectroscopia Raman
La espectroscopia Raman es una técnica analítica de alta resolución cuyo principio se basa en la irradiación de un tejido diana con una luz láser monocromática y posterior registro de la luz dispersada inelásticamente, que constituye el espectro Raman. Los espectros de muestras biológicas muestran una "huella digital" (fingerprint) característica que viene determinada por el tipo de vibraciones moleculares específicas de los enlaces químicos, proporcionando así información de la composición química o bioquímica de los tejidos. La región Stokes del espectro Raman, situada entre 500 y 2000 cm"1, se correlaciona con las vibraciones moleculares de importancia bioquímica; así pues, las estructuras y conformaciones bioquímicas específicas del tejido nos brindan una oportunidad única para distinguir entre diferentes tipos de tejidos. Dado que las enfermedades y otras anomalías patológicas conducen a cambios químicos y estructurales, se observan cambios en los espectros de vibración que pueden ser utilizados como marcadores fenotípicos, sensibles de la enfermedad. La espectroscopia Raman no requiere una preparación especial de la muestra ni marcadores, la presencia de agua no distorsiona el análisis, la adquisición del espectro es rápida y la intensidad de banda Raman es directamente proporcional a la concentración.
En la última década se han dado importantes avances tecnológicos en espectrometría y técnicas de computación que han permitido avanzar de forma significativa en la espectroscopia Raman aplicada a las ciencias biológicas y de la vida [DC de Veld DC, Bakker Schut TC, Skurichina
M, Witjes MJ, Van der Wal JE, Roodenburg JL, Sterenborg HJ. Lasers Med Sci 2005, 19(4):203-9], [N Stone, MSc (Dist.); Pela Stavroulaki, MD; Catherine Kendall, MSc (Dist); Martin Birchall, MD;Hugh Barr, MD (Dist.). Laryngoscope,l 10:1756 -1763, 2000] [Harris AT, Garg M, Yang XB, Fisher SE, Kirkham J, Smith DA, Martin- Hirsch DP, High AS: Raman spectroscopy and advanced mathematical modelling in the discrimination of human thyroid cell lines. Head Neck Oncol 2009, 1(1): 38]. Se ha demostrado que el registro de los espectros Raman se puede realizar "in vitro" y "ex vivo" sin perturbar el entorno celular. Además, la técnica es capaz de detectar alteraciones mínimas en la composición bioquímica de las células vivas con el fin de producir una huella dactilar molecular para el diagnóstico del tejido diana.
La espectroscopia Raman en oncología
En oncología, la espectroscopia Raman se está investigando como una herramienta de diagnóstico para caracterizar los cambios malignos tempranos. Aunque los estudios clínicos en la cabeza y el cuello son escasos, [Yi Li, Zhi-Ning Wen, Long-Jiang Li, Meng-Long Li, Ning Gao and Yan-Zhi Guo, J. Raman Spectrosc. 2010, 41, 142-147] demuestran en su publicación que la diferencia en los espectros entre la mucosa normal y el carcinoma es sutil pero los valores de sus variaciones son estadísticamente significativas. La comparación de los espectros Raman mostró un aumento de intensidad en las bandas Raman asociadas a las proteínas y el contenido de ADN, vinculadas ambas a la cancerización. Por su parte, investigadores del Hospital Universitario de Groningen [de Veld 2005, vide supra] publicaron un estudio con 37 pacientes con lesiones de la mucosa oral, mostrando variaciones claras entre diferentes capas de células (capa de tejido conectivo frente a queratina / epitelio). El grupo de Investigación Biofotónica en el Hospital Royal Gloucestershire [G Shetty, C Kendall, N Shepherd , N Stone, H Barr. Br J Cáncer 2006, 94(10): 1460-4] demostró que la espectroscopia Raman es una técnica muy sensible y específica para la identificación de los cambios bioquímicos en la carcinogénesis del esófago de Barrett. Ya en el año 2000, Stone et al. [Stone 2000, vide supra] examinaron el uso de espectroscopia Raman en la detección de tumores malignos de laringe a partir de quince muestras de pacientes de distintas edades (18 a 79 años). Estos autores pudieron analizar por Raman tres tipos de muestras (carcinoma de células normales, displásicas y de células escamosas), con unas sensibilidades entre 76 y 92%, dependiendo del tipo de tejido examinado, y determinaron que las diferencias espectrales están asociadas a variaciones en el ADN, aminoácidos, colágeno y glicolípidos. Recientemente, Wen-Liang Jo et al [Wen-Liang Lo, Jian- Yun Lai, Stephen E. Feinberg, Kenji Izumi, Shou-Yen Kao, Che-Shoa Chang, Alan Lin and Huihua Kenny Chiang. J. Raman Spectrosc. 2011, 42, 174-178.] y Deshmukh et al [Atul Deshmukh; S. P. Singh; Pankaj Chaturvedi; C. Murali Krishna. Journal of Biomedical Optics, 201 1 , 16(12)] encontraron por microRaman diferencias moleculares entre la mucosa oral normal y anormal (carcinoma de células escamosas) y evaluaron la variación del contenido de las
proteínas, el ADN y los lípidos, permitiendo así identificar varios índices de malignidad para carcinomas.
Existen aplicaciones de variantes de esta técnica para distinguir tejidos sanos y carcinomas referidos a otras patologías. Por ejemplo, en la patente "Distinguishing between invasive ductal carcinoma and invasive lobular carcinoma using Raman molecular imaging" (WO2009035946A1) se muestran ejemplos donde se registran bases de datos de espectros de imagen Raman aplicados a tipos de tejidos de cáncer de próstata, hígado o pecho. O más recientemente en WO2011072380A1. Estas difusiones no afectan en principio a la presente invención por no tratarse del mismo método ni patología.
Descripción de la invención
Un aspecto de la presente invención se refiere a un procedimiento para el diagnóstico de cáncer de mucosa oral y faríngea por medio de espectroscopia Raman que comprende las siguientes etapas:
-Toma de muestra de células (in vitro o "ex vivo ")
-Irradiación de una muestra con una luz láser comprendida dentro de los rangos tanto de ultravioleta, infrarrojo o visible y registro del espectro Raman de la muestra en el rango 100 - 3500 cm"1, más particularmente entre 950 -1800 cm 1.
-Cuantificación de las intensidades y áreas de una diversidad de las bandas Stokes del espectro Raman.
-Se definen y calculan índices que resultan de dividir las áreas de dos bandas diferentes:
-Se determina el diagnóstico por proximidad de los valores de estos índices con los valores previamente obtenidos en células normales y en células cancerosas.
Otro aspecto de la invención se refiere a la diversidad de modos de toma de la muestra, que permite el análisis de muestras tanto in vitro como ex vivo en el laboratorio utilizando equipos de Raman convencionales.
En otro aspecto de la invención el presente procedimiento es aplicable a diferentes tipos de cáncer (neoplasias), entre ellos, los del tracto aerodigestivo superior, estómago, colon, vejiga, mama, hueso, pulmón, hígado y próstata.
En otro aspecto de la invención el presente procedimiento es aplicable al diagnóstico de neoplasias en diferentes estadios, tales como la leucoplasia oral, hiperplasia, displasia mucosa (leve a severa), que pueden considerarse como lesiones pre-malignas o potencialmente malignas.* anteriores a la aparición de manifestaciones clínicas y patológicas, permitiendo así el diagnóstico precoz del cáncer de cavidad oral.
Este procedimiento puede utilizar con una diversidad de tipos de láseres que emiten en el rango visible, tales como el láser de He-Ne (632 nm), láser de diodo (637 nm, 785 nm) o similar. También los láseres emisores de radiación en los rangos ultravioleta (habitualmente 488 nm o 532 nm) o en el infrarrojo cercano, como el láser de Nd-YAG (1064 nm) pueden utilizarse.
Este procedimiento puede ser implementado por ordenador u otros medios electrónicos para facilitar y agilizar el tratamiento de la información diagnóstica.
Descripción de los dibujos
Figura. 1. Espectro Raman de células de mucosa con carcinoma epidermoide.
Figura. 2. Espectro Raman de células de mucosa sana
Descripción detallada de la invención
En un modo de realización particular, se han identificado y cuantificado las áreas de las bandas de Stokes asociadas a la fenilalanina (1003 cm'1), amida III (1200-1400 cm 1), amida I (1665 cm 1) y grupos C-H (1450 cm"1).
A continuación se ha definido y calculado los siguientes índices:
índice P (proteínico) = área banda amida III / área banda grupos CH
índice F (fenilalanínico) = área banda amida III / área banda fenilalanina índice L (lipídico) = área banda fenilalanina / área banda amida I
Como un ejemplo de realización preferida se describe el siguiente procedimiento para el diagnóstico in vitro y ex vivo del carcinoma epidermoide:
1. Toma de muestra de mucosa humana oral/faríngea (epitelio pseudoestratificado no queratinizado) de aspecto sano y patológico (carcinoma epidermoide)
Preparación con micrótomo, sobre portaobjetos con recubrimiento metálico, de una sección cuyo espesor esté comprendido entre 15 y 120 mieras.
Registro del espectro Raman en el rango 950 - 1800 cm'1 con un equipo convencional dotado de un láser de He-Ne, de diodo o similar, que emita en torno a 633 nm.
Evaluación del espectro y cuantificación de las intensidades y áreas de las bandas Stokes asociadas a la fenilalanina (1003 cm"1), amida III (1200-1400 cm"1), amida I (1665 cm 1) y grupos C-H (1450 cm 1).
A partir de las razones de las áreas de dichas bandas se determinan los siguientes índices:
índice P (proteínico) = área banda amida III / área banda grupos CH índice F (fenilalanínico) = área banda amida III / área banda fenilalanina Indice L (lipídico) = área banda fenilalanina / área banda amida I Se elabora el diagnóstico por comparación de los valores de estos índices con los parámetros de normalidad y malignidad determinados para el carcinoma epidermoide.
EJEMPLO 1:
Determinación de índices en células de carcinoma epidermoide de mucosa oral/faríngea "ex vivo ".
Se toma una muestra del tejido mucosa humana faríngea (epitelio pseudoestratificado no queratinizado) de aspecto patológico (carcinoma epidermoide).
Se prepara con micrótomo una sección del tejido de espesor 15 mieras y se coloca sobre un portaobjetos con recubrimiento de aluminio.
Se utiliza un espectrómetro micro-Raman (Horiba Jobin Yvon LABRam-HR800, resolución 4 cm"1, 950 grooves/mm) equipado con un microscopio confocal (magnificación 50x) y un láser He-Ne (633 nm, energía máxima de 11,5 mW).
Se registra el espectro Raman en el rango entre 800 y 1800 cm"1, con un barrido de 15 segundos y un acumulado de 5 barridos, (Fig. 1).
Se evalúa y cuantifica (Tabla 1) el espectro registrado determinando el área de las bandas asociadas a la fenilalanina (1003 cm"1), amida III (1200-1400 cm 1), amida I (1665 cm 1) y grupos C-H (1450 cm 1).
Tabla 1
Se determinan los valores de los índices P, L y F (Tabla 2). El conjunto de datos se compara con los parámetros de normalidad y de malignidad, que permite concluir que el diagnóstico corresponde a un carcinoma epidermoide.
Tabla 2
EJEMPLO 2:
Determinación de índices en células de mucosa oral/faríngea sana "ex vivo".
Se toma una muestra del tejido mucosa humana faríngea (epitelio pseudoestratificado no queratinizado) de aspecto sano.
Se prepara con micrótomo una sección del tejido de espesor 15 mieras y se coloca sobre un portaobjetos con recubrimiento de aluminio.
Se utiliza un espectrómetro micro-Raman (Horiba Jobin Yvon LABRam-HR800, resolución 4 cm"1, 950 grooves/mm) equipado con un microscopio con focal (magnificación 50x) y un láser He-Ne (633 nm, energía máxima de 11,5 mW).
Se registra el espectro Raman en el rango entre 800 y 1800 era"1, con un barrido de 15 segundos y un acumulado de 5 barridos, (Fig. 2).
Se evalúa y cuantifica (Tabla 3) el espectro registrado determinando el área de las bandas asociadas a la fenilalanina (1003 cm"1), amida III (1200-1400 cm"1), amida I (1665 cm"1) y grupos C-H (1450 cm 1).
Tabla 3
Se determinan los valores de los índices P, L y F (Tabla 4). El conjunto de datos se compara con los parámetros de normalidad y de malignidad, que permite concluir que el diagnóstico corresponde a un mucosa sana.
Tabla 4
Parámetros de Parámetros de Parámetros de la muestra normalidad malignidad
Indice P (proteínico) 0,92 0,87 ± 0,07 1,2 ± 0,1
Indice F (fenilalanínico) 10,6 10,0 ± 0,7 19,1 ± 1,9
Indice L (lipídico) 0,19 0,20 ± 0,02 0,14 ± 0,02
Claims
1. Procedimiento in vitro y ex vivo para el diagnóstico de carcinoma epidermoide de mucosa oral y faríngea que comprende las siguientes etapas ;
a) irradiación de tejido de células epiteliales con una luz láser comprendida en los rangos ultravioleta, infrarrojo o visible y registro del espectro Raman en el rango 950-1800 cm"1,
b) cuantificación de las intensidades y áreas de las bandas Stokes del espectro Raman,
c) calcular índices relativos que resultan de dividir las áreas de dos bandas diferentes,
d) determinar el diagnóstico por proximidad de los valores de estos índices con los valores previamente obtenidos en células normales y en células cancerosas.
2. Procedimiento in vitro y ex vivo para el diagnóstico de carcinoma epidermoide de mucosa oral y faríngea por medio de espectroscopia Raman, según reivindicación 1 , caracterizado por:
-identificar y cuantificar en la etapa b) las áreas de las bandas de Stokes asociadas a la fenilalanina (1003 cm'1), amida III (1200-1400 cm 1), amida I (1665 cm 1) y grupos C-H (1450 cm 1).
-definir y calcular los siguientes índices en la etapa c):
índice P (proteínico) = área banda amida III / área banda grupos CH
Indice F (fenilalanínico) = área banda amida III / área banda fenilalanina Indice L (lipídico) = área banda fenilalanina / área banda amida I
3. Procedimiento in vitro y ex vivo para el diagnóstico de carcinoma epidermoide de mucosa oral y faríngea por medio de espectroscopia Raman, según reivindicaciones 1-2, caracterizado por el hecho de que las etapas a) a d) son implementadas por ordenador.
4. Procedimiento in vitro y ex vivo para el diagnóstico de de carcinoma epidermoide de mucosa oral y faríngea, según reivindicaciones 1-3 caracterizado por comprender además una etapa previa de preparación de la muestra.
5. Procedimiento según las reivindicaciones 1-4 para el diagnóstico de diferentes estadios de neoplasias de carcinoma epidermoide de mucosa oral y faríngea.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| ES201301151A ES2543848B2 (es) | 2013-12-13 | 2013-12-13 | Procedimiento para el diagnóstico de cánceres de mucosa oral y faríngea |
| ESP201301151 | 2013-12-13 |
Publications (1)
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|---|---|
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|---|---|
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2014
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Non-Patent Citations (4)
| Title |
|---|
| KHMALADZE A. ET AL.: "Tissue-Engineered Constructs of Human Oral Mucosa examined by Raman Spectroscopy.", TISSUE ENGINEERING: PART C., vol. 19, no. 4, 16 November 2012 (2012-11-16), pages 299 - 306 * |
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Also Published As
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| ES2543848A1 (es) | 2015-08-24 |
| ES2543848B2 (es) | 2016-03-09 |
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