WO2009095516A1 - Nanopartículas metálicas funcionalizadas con el neuropéptido vip y procedimiento de preparación - Google Patents

Nanopartículas metálicas funcionalizadas con el neuropéptido vip y procedimiento de preparación Download PDF

Info

Publication number
WO2009095516A1
WO2009095516A1 PCT/ES2009/000043 ES2009000043W WO2009095516A1 WO 2009095516 A1 WO2009095516 A1 WO 2009095516A1 ES 2009000043 W ES2009000043 W ES 2009000043W WO 2009095516 A1 WO2009095516 A1 WO 2009095516A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
nanoparticles
neuropeptide
amino
peg
functionalized
Prior art date
Application number
PCT/ES2009/000043
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
José Antonio MEJÍAS ROMERO
Paula Margarita CASTILLO HERNÁNDEZ
Ana Paula Zaderenko Partida
Carlos Alberto Caro Salazar
David Pozo
Rafael Fernández-Montesino
Mario Delgado Mora
Elena González-Rey
Pedro Pablo GARCÍA LUNA
Original Assignee
Universidad Pablo De Olavide
Universidad De Sevilla
Consejo Superior De Investigaciones Científicas
Fundación Reina Mercedes Para La Investigación Sanitaria
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Universidad Pablo De Olavide, Universidad De Sevilla, Consejo Superior De Investigaciones Científicas, Fundación Reina Mercedes Para La Investigación Sanitaria filed Critical Universidad Pablo De Olavide
Publication of WO2009095516A1 publication Critical patent/WO2009095516A1/es

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/69—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the conjugate being characterised by physical or galenical forms, e.g. emulsion, particle, inclusion complex, stent or kit
    • A61K47/6921—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the conjugate being characterised by physical or galenical forms, e.g. emulsion, particle, inclusion complex, stent or kit the form being a particulate, a powder, an adsorbate, a bead or a sphere
    • A61K47/6923—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the conjugate being characterised by physical or galenical forms, e.g. emulsion, particle, inclusion complex, stent or kit the form being a particulate, a powder, an adsorbate, a bead or a sphere the form being an inorganic particle, e.g. ceramic particles, silica particles, ferrite or synsorb
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00—Preparations for testing in vivo
    • A61K49/0004—Screening or testing of compounds for diagnosis of disorders, assessment of conditions, e.g. renal clearance, gastric emptying, testing for diabetes, allergy, rheuma, pancreas functions
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • A61K47/51—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent
    • A61K47/56—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule
    • A61K47/59—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes
    • A61K47/60—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates the non-active ingredient being a modifying agent the modifying agent being an organic macromolecular compound, e.g. an oligomeric, polymeric or dendrimeric molecule obtained otherwise than by reactions only involving carbon-to-carbon unsaturated bonds, e.g. polyureas or polyurethanes the organic macromolecular compound being a polyoxyalkylene oligomer, polymer or dendrimer, e.g. PEG, PPG, PEO or polyglycerol
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B82—NANOTECHNOLOGY
    • B82B—NANOSTRUCTURES FORMED BY MANIPULATION OF INDIVIDUAL ATOMS, MOLECULES, OR LIMITED COLLECTIONS OF ATOMS OR MOLECULES AS DISCRETE UNITS; MANUFACTURE OR TREATMENT THEREOF
    • B82B1/00—Nanostructures formed by manipulation of individual atoms or molecules, or limited collections of atoms or molecules as discrete units
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575—Hormones
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/483—Physical analysis of biological material

Definitions

  • the object of the present invention is metal nanoparticles functionalized with the VIP neuropeptide, as well as the process for preparing said nanoparticles.
  • noble metals are of special relevance because thanks to their plasmonic properties an increase in the signal is produced, improving the sensitivity of the technique and making them suitable as molecular markers in light transmission and scattering measurements [MA El- Sayed Acc. Chem. Res. (2001), 34, 257.], SERS [M. KaIl, H. Xu, P. Johansson, Journal of Roman Spectroscopy, (2005), 36, 510.], infrared ( IR) and fluorescence [S. Schultz, DR Smith, JJMock, DASchultz PNAS (2000), 97, 996].
  • the biological effects of the VIP neuropeptide have a growing interest in its modulating capacity in pathologies in which there is an inflammatory and / or autoimmune component [Grirnm, MC et al. (2003) J. Immunol. 171, 4990-4994; Pozo, D. (2003) Trenas Mol. Med. 9, 211-217; Ganea, D., and Delgado, M. (2002). Crit. Rev. Oral. Biol. Med. 13, 229-237; Delgado, M. et al. (2003). Braids Immunol 24, 221-224].
  • the cells of certain human tumors overexpress specific VIP receptors in their plasma membranes. Its toxicity and adverse effects are scarce.
  • the nanoparticle functionalization is known to increase the half-life of the molecule bound to it in certain cases, since it makes difficult the lytic protein attack.
  • VIP nanoparticle functionalization faces the problem of designing an effective method by which it can be functionalized by so that its carboxy-terminal end is free, since it is at this end where it interacts with its specific membrane receptors.
  • the functionalization of a peptide to free its arninoterminal end does not presently present difficulties, just the opposite of what happens when it is intended to expose the carboxyl end.
  • the method object of the present invention allows the functionalization of VIP in metal nanoparticles leaving intact its ability to interact with its specific receptors, which will allow to formulate strategies for detection and selective release of drugs on tumor cells or the treatment of diseases with an auto component immune and / or inflammatory.
  • the studies described to date maintain a nanoparticle / peptide orientation leaving the amino group of the protein free to participate in cell recognition functions.
  • the nanoparticles object of the present invention one of the configurations leaves the amino group free, while another allows to leave the acid end of the VIP available, the functional group really responsible for maintaining that specific reception and intervening in cellular functions.
  • the nanoparticles thus functionalized are stable, non-toxic, soluble in water, and compatible with biological systems. They also allow the study and ascription of dependent effects (free carboxyl) and receptor independent (free amino).
  • the preparation procedure there is no current technique on the functionalization of nanoparticles with proteins that have their acid end free. Thanks to the process object of the present invention, nanoparticles functionalized with peptides are obtained here, which thanks to having their acid group available, can participate in other cell recognition functions.
  • the process object of the present invention allows to synthesize nanoparticles that can be used as sensors different organic groups and more specifically nanoparticles with proteins with available acid groups that can intervene in cellular recognition functions.
  • PEG polyethylene glycol
  • the neuropeptide binds through its carboxyl group to one of the amino groups of the terminated bis-amino PEG, leaving the amino group of the free peptide to interact with specific receptors.
  • the nanoparticles are conjugated to a diacid through one of the amino groups of the terminated bis-amino PEG, said being diacid in turn linked through one of the acid groups with the amino group of the neuropeptide, the carboxyl group of the neuropeptide being exposed to interact with specific receptors.
  • the metal core material is silver and the mercapto-derivative is thiopronin, with thiopronin and silver being 3: 1 in the nanoparticles.
  • the diacid is succinic acid.
  • the functionalized metal nanoparticles object of the invention have spherical geometry and have an average diameter of 5 nm.
  • An object of the present invention is also a process for preparing nanoparticles functionalized with a neuropeptide that includes the following steps: a) formation of nanoparticles with a core of metallic material attached to a mercapto derivative, by adding a solution of the mercapto-derived to an aqueous solution of a salt of the metallic material, subsequent reduction with a reducing agent, particularly sodium borohydride, precipitation of the nanoparticles formed by the addition of methanol and collected by centrifugation, ending this step with a washing of the precipitated nanoparticles and separated with ethanol , methanol and acetone.
  • a reducing agent particularly sodium borohydride
  • the procedure additionally includes the following steps: e) functionalization of the finished metal core / mercaptoderiva-do / PEG bis-amino nanoparticles obtained in the previous stages with a neuropeptide, by adding 0.1 mM EDC and 0.25 mM NHS and further adding the neuropeptide keeping in stirring for 24h
  • the nanoparticles obtained by this procedure would make available the amino group of the functionalized peptide to interact with cell membranes.
  • the nanoparticle bound protein must have its acid group available. To achieve this orientation, the preparation procedure is extended, incorporating a new binding ligand between the PEG and the protein.
  • a diacid has been chosen as an intermediary between polyethylene glycol (bis-amino terminal) and VIP.
  • the diacid, particularly succinic uses one of its carboxyls to bind with the amino of the PEG from the previous stage, leaving the other acid group available for its next functionalization.
  • the preparation procedure includes the following steps: a) formation of nanoparticles with a core of metallic material attached to a mercapto derivative, by adding a solution of the mercapto derivative to an aqueous solution of a salt of the metallic material, subsequent reduction with a reducing agent, particularly sodium borohydride, precipitation of the nanoparticles formed by the addition of methanol and collected by centrifugation, ending this step with a washing of the precipitated nanoparticles and separated with ethanol, methanol and acetone.
  • a reducing agent particularly sodium borohydride
  • the metal material of the nanoparticle core is silver
  • the mercapto derivative is thiopronin
  • the neuropeptide is the active vessel intestinal peptide.
  • the diacid used is succinic acid.
  • Figure 1 Scheme of functionalization of metal nanoparticles from thiopronin to VIP.
  • Figure 2 VIP structure. Vasoactive Intestinal Peptide.
  • Figure 3 Images taken with optical microscopy of the macrophage cell line
  • Figure 4 TEM image of the Ag / thiopronin nanoparticles.
  • Figure 5 Scheme of a thiopronin molecule adsorbed on an Ag nanoparticle (not to scale) numbered for the interpretation of the NMR spectrum.
  • TOCSY ID spectrum (3.9 ppm), TOCSY ID spectrum (4.2 ppm), and 1 H spectrum.
  • Figure 7 2D 500 MHz HMBC spectrum of Ag-thiopronin in D 2 O at 298 K.
  • the peptides are neuropeptides and specifically the vasoactive intestinal peptide (VIP), whose structure is shown in Figure 2.
  • VIP a broad spectrum of biological functions is obtained, including immunomodulation, acting predominantly as a potent anti-inflammatory agent and a ThI response inhibitor in the immune system. Therefore, VIP emerges as an important therapeutic factor for the treatment of diseases with inflammatory and autoimmune components [Grimm, M. C. et al. (2003) J Immunol. 171, 4990-4994; Pozo, D. (2003) Trenas Mol. Med 9, 211-217; M; Ganea, D., and Delgado, M. (2002). Crit. Rev. Oral. Biol. Med. 13, 229-237; Delgado, M. et al. (2003). Immunol braids. 24, 221-224; D. Pozo, M. Delgado. FASEB Journal. (2004); 18: 1325].
  • the resulting Ag / thiopronin / PEG solution is dialyzed in water and finally, its solvent is removed to ensure concentration in the next step. This procedure leads to the first orientation, where the amino group of the PEG is exposed to the solution and available for binding with the acid group of a peptide.
  • the peptide used has been VIP.
  • VIP a broad spectrum of biological functions is obtained, including immunomodulation, acting predominantly as a potent anti-inflammatory agent and a ThI response inhibitor in the immune system.
  • EDC and NHS are added in the same relationship as in the previous section to prepare the Ag / thiopronin / PEG.
  • the VIP is added in relation to the added PEG. The reaction is allowed for 24 hours. For final purification, it is dialyzed against miliQ water for 24. This procedure leads to the first orientation, where the VIP amino group is exposed to the solution.
  • a diacid preferably succinic acid
  • PEG poly(ethylene glycol)
  • VIP succinic acid
  • the diacid (particularly the succinic) made available in the previous stage its other acid group where the VIP will react:
  • the VIP thus runationalized keeps its acid residue free, which is the group that really intervenes in the functions of cell recognition, in particular the VIP It exerts significant benefits by activating immune system functions.
  • the Ag / thiopronin / PEG / succinic nanoparticles are dissolved in MES, then EDC and NHS are added in the proportions previously used and left under gentle agitation for 30 minutes s.
  • the corresponding VIP is added to the amount of succinic added, dissolved in miliQ water and the reaction is allowed for 24 hours. For final purification, it is dialyzed against miliQ water to achieve high purity in the product. In this second orientation, it is possible to free the acid end of the peptide which is the functional group that really intervenes in the cell recognition functions.
  • Figure 1 the whole procedure of functionalization of metal nanoparticles from the thiopronin to the VIP is schematized.
  • Figure 8 shows the variations in surface plasmon at all stages of the nanoparticles after their functionalization.
  • the IR spectra (FTIR) of the described nanoparticles, prepared in KBr are shown in Fig. 9.
  • Nanoparticles 3 1: Ag / thiopronin
  • the method published by Hyang and Murray has been followed for the preparation of silver nanoparticles [T. Huang, RW Murray. J. Phys. Chem. B. 2003; 107: 7434.]. following the 3: 1 ratio, in which the silver ions in aqueous solution from the AgNO 3 and thiopronin solution are reduced with sodium borohydride.
  • Ag / thiopronin nanoparticle analysis provides the data necessary to calculate its coating during functionalization in later stages.
  • the nanoparticles are spherical and have an average diameter of 5nm, determined by TEM (Transmission Electron Micro scopy ⁇ _The images were taken with the Philips CM200 high resolution microscope. The samples were prepared by drying the nanoparticles on a copper rack (see Fig. 4) The chemical shifts corresponding to the 1 H-NMR spectrum of the Ag @ thiopronin nanoparticles are shown in Table 1 and in Figure 7.
  • the NMR spectrum was performed at 500 MHz with a Bruker AMX-500 spectrometer in D 2 O.
  • FIG. 6 Two ID TOCSY spectra are shown in Figure 6.
  • TOCSY experiments were performed with the DPFGSE sequence, at 50 ms selective pulses (Gaussian), with a mixing time of 120 ms.
  • Figure 9 shows the correlation between the methyl and carbonylamide groups (177.6 ppm) with a correlation of 3 bonds, as well as the correlation to 2 bonds that exist between the protons of methylene and those of the carbonylamide group at 178 ppm.
  • the A-VIS UV spectrum of the Ag / thiopronin nanoparticles in aqueous solution clearly shows a band with a maximum at ⁇ ? ⁇ 38O nm that belongs to the characteristic absorption of the surface plasmon of the silver nanoparticles, (see Fig. 8) and whose variations will demonstrate the functionalization of the nanoparticles.
  • UV-Vis spectra were collected with an Ocean optics spectrometer equipped with an HR4000 detector.
  • EDC Equimolar amounts of EDC, NHS are added to Ag / thiopronin / PEG nanoparticles dissolved in MES according to the above procedures.
  • the necessary succinic is added according to the functionalized PEG.
  • the reaction is allowed with gentle stirring for 24 hours. It is dialyzed against miliQ water for 48 hours, renewing the water every 10 hours.

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Nanotechnology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Ceramic Engineering (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Constituye el objeto de la presente invención nanopartículas metálicas funcionalizadas con el neuropéptido VIP, así como el procedimiento de preparación de dichas nanopartículas. Las nanopartículas objeto de la presente invención presentan uniones selectivas de nanopartículas a péptidos en dos orientaciones posibles, grupo NH2 o grupo COOH. En esta última orientación, los péptidos si son reconocidos por los receptores de membranas celulares, lo que proporciona una herramienta que permite discernir efectos dependientes e independientes de receptor. El péptido empleado ha sido el VIP, mediante el cual se obtiene un amplio espectro de funciones biológicas, incluida inmunomodulación, actuando predominantemente como un potente anti inflamatorio y un agente inhibidor de la respuesta del Th1 en el sistema inmunitario y emergiendo como un importante factor terapéutico para el tratamiento de enfermedades con componentes inflamatorias y autoinmunes.

Description

TITULO
NANOP ARTÍCULAS METÁLICAS FUNCIONALIZADAS CON EL NEUROPÉPTIDO
VIP Y PROCEDIMIENTO DE PREPARACIÓN.
SECTOR Y OBJETO DE LA INVENCIÓN
Sector químico, bioquímico, inmunológico. Producto para aplicaciones biomédicas. Liberación de fármacos de forma selectiva e identificación de tejidos y/o células diana. Constituye el objeto de la presente invención nanopartículas metálicas funcionalizadas con el neuropéptido VIP, así como el procedimiento de preparación de dichas nanopartículas.
ESTADO DE LA TÉCNICA Durante las últimas décadas, se ha progresado mucho en el diseño de biosensores ópticos y su aplicación a medioambiente [Ji, J.; Schanzle, J. A.; Tabacco, M. B. Anal. Chem. (2004), 76, 1411-1418. ], biotecnología [Kohls, O.; Scheper, T. Sens. Actuators, B (2000), 70, 121-130. ], diagnóstico médico [Yonzon, C. R.; Haynes, C. L.; Zhang, X.; Walsh, J. T.; Van Duyne, R. P. Anal. Chem. (2004), 76, 78-85], selección de fármacos [Ho, H.; Leclerc, M. J. Am. Chem. Soc. (2004), 126, 1384- 1387.] y seguridad alimentaria [Wiskur, S. L.; Anslyn, E. V. J. Am. Chem. Soc. (2001), 123, 10109-10110. ].
El potencial de los biosensores basados en resonancias de plasmones de superficie se descubrió a principios de los 80s por Liedberg et al., quienes detectaron mediante el uso de anticuerpos interacciones proteína-carbohidrato [MacKenzie, C. R.; Hirama, T.; Deng, S. j.; Bundle, D. R.; Narang, S. R. J. Biol. Chem. (1996), 271, 1527-1533.], proteína- ADN [Brockman, J. M.; Frutos, A. G.; Corn, R. M. J. Am. Chem. Soc.( 1999), 121, 8044-8051.], ADN-ADN [Gotoh, M.; Hasegawa, Y.; Shinohara, Y.; Shimizu, M.; Tosu, M. DNA Res. (1995), 2, 285-293. ] y adhesión de células [Van Der Merwe, P. A.; Barclay, A. N. Curr. Opin. Immunol. ( 1996), 8, 257-261 ].
El primer biosensor de anticuerpos basado en la respuesta de la extinción de nanopartículas de Au coloidales a perturbaciones locales del índice de refracción, se desarrolló hace menos de una década [Englebienne, P. Analyst (1998), 123, 1599- 1603.]. Desde entonces, los biodetectores basados en las resonancias de plasmones localizados en superficie (LSPR) de nanopartículas se han empleado de forma creciente en detecciones biológicas [Haes, A. J.; Van Duyne, R. P. J. Am. Chem. Soc. (2002), 124, 10596- 10604 ; C. R. Yonzon, E. Jeoung, S. Zou, G. C. Schatz, M. Mwksich, R. P. Van Duyne J. Am Chem. Soc. (2004), 126, 12669 ] y químicas [McFarland, A. D.; Van Duyne, R. P. Nano Lett. (2003), 3, 1057-1062. ] . Gracias al enorme interés de esos nano-biocoηjugados se han desarrollado un amplio rango de aplicaciones tales como distribución de fármacos, marcadores moleculares, análisis bioquímicos ultrasensibles, desarrollo de dispositivos "lab-on-a-chip", construcción de nano componentes electrónicos, motores nano-moleculares...etc [C. M. Niemeyer, C. A. Mirkin Eds. Nanobiotechnology, Wiley-VCH 2004 ] . También se han usado como agentes potenciadores de contraste en microscopía electrónica [D. L. Feldheim, C. A. Foss, Jr. Eds. Metal nanoparticles. Synthesis, Characterization and Applications, Marcel-Dekker 2002. ] .
Existe un creciente interés por los efectos biológicos de las nanopartículas, de su toxicidad y su alcance en función del medio [M. Tsoli et al. Small (2005); 1:841], por ejemplo, su uso potencial como herramienta terapéutica en tratamientos de cáncer [Ivan H. El-Sayed, Xiaohua Huang and Mostafa A. El- Sayed. Nano Letters (2005) Vol.5, N°5. 829-834].
Entre los diferentes tipos de nanopartículas, los metales nobles son de especial relevancia pues gracias a sus propiedades plasmónicas se produce un aumento de la señal, mejorando la sensibilidad de la técnica y haciéndolos idóneos como marcadores moleculares en medidas de transmisión y dispersión de luz [M.A. El- Sayed Acc. Chem. Res. (2001), 34, 257.], SERS [ M. KaIl, H. Xu, P. Johansson, Journal of Román Spectroscopy, ( 2005), 36, 510.] , infrarrojo (IR) y fluorescencia [S. Schultz, D.R. Smith, J.J.Mock, D.A.Schultz P.N.A.S. (2000), 97, 996]. Por otro lado, los efectos biológicos del neuropéptido VIP tienen un interés creciente por su capacidad moduladora en patologías en las que hay un componente inflamatorio y/o autoinmunitario [Grirnm, M. C. et al. (2003) J. Immunol. 171, 4990- 4994; Pozo, D. (2003) Trenas Mol. Med. 9, 211-217; Ganea, D., and Delgado, M. (2002). Crit. Rev. Oral. Biol. Med. 13, 229-237; Delgado, M. et al. (2003). Trenas Immunol. 24, 221-224]. Asimismo las células de determinados tumores humanos sobreexpresan receptores específicos para VIP en sus membranas plasmáticas. Su toxicidad y efectos adversos son escasos. Sin embargo, una de las limitaciones para el uso clínico de los neuropéptidos en general, y del VIP en particular, es su corta vida media en circulación, lo que haría necesaria la administración crónica del mismo, aumentando los costes económicos y dificultando su posología al paciente. La funcionalización de nanopartículas se sabe que aumenta en determina-dos casos la vida media de la molécula unida a la misma, ya que dificulta el ataque proteo lítico. En cualquier caso, ya sea como agente terapéutico sobre células dianas o como modo de liberación de otros fármacos sobre tumores que sobreexpresan receptores de VIP, la funcionalización de nanopartículas de VIP se enfrenta al problema de diseñar un método eficaz por el que se pueda funcionalizar de forma que su extremo carboxilo- terminal quede libre, ya que es por éste extremo por donde interacciona con sus receptores específicos de membrana. En general, la funcionalización de un péptido para dejar libre su extremo arninoterminal no presenta dificultades en la actualidad, justo lo opuesto a lo que ocurre cuando se pretende dejar expuesto el extremo carboxilo.
El procedimiento objeto de la presente invención permite la funcionalización de VIP en nanopartículas metálicas dejando intacta su capacidad de interacción con sus receptores específicos, lo que permitirá formular estrategias de detección y liberación selectiva de fármacos sobre células tumorales o el tratamiento de enfermedades con un componente auto inmune y/o inflamatorio.
En resumen, los estudios hasta la fecha descritos mantienen una orientación de nanopartícula/péptido dejando libre el grupo amino de la proteína para participar en las funciones de reconocimiento celular. En las nanopartículas objeto de la presente invención, una de las configuraciones deja libre el grupo amino, mientras que otra permite dejar el extremo ácido del VIP disponible, el grupo funcional realmente encargado de mantener esa recepción específica e intervenir en las funciones celulares. Las nanopartículas así funcionalizadas son estables, no tóxicas, solubles en agua, y compatibles con los sistemas biológicos. Permiten asimismo el estudio y adscripción de efectos dependientes (carboxilo libre) e independientes de receptor (amino libre). En cuanto al procedimiento de preparación, no hay técnica actual sobre la funcionalización de nanopartículas con proteínas que tengan libre su extremo ácido. Gracias al procedimiento objeto de la presente invención, se obtienen aquí nanopartículas füncionalizadas con péptidos, que gracias a tener su grupo ácido disponible, pueden participar en otras funciones de reconocimiento celular.
Para que el VIP [Grimm, M. C. et al. (2003) J Immunol 171, 4990-4994; Pozo, D. (2003) Trends Mol. Med. 9, 211-217; M ; Ganea, D., and Delgado, M. (2002). Crit. Rev. Oral. Biol. Med. 13, 229-237; Delgado, M. et al. (2003). Trends Immunol. 24, 221-224; D. Pozo, M. Delgado. FASEB Journal. (2004); 18: 1325 ] sea reconocido a nivel celular, necesita de esta segunda orientación (grupo ácido disponible) y así poder transducir éstas funciones de reconocimiento celular en una respuesta biológica.
Por tanto, el procedimiento objeto de la presente invención permite sintetizar nanopartículas que puedan ser usadas como sensores distintos grupos orgánicos y más específicamente nanopartículas con proteínas con grupos ácidos disponibles que puedan intervenir en funciones de reconocimiento celular.
EXPLICACIÓN DE LA INVENCIÓN Constituye un objeto de la presente invención nanopartículas metálicas funcionalizadas compuestas por un núcleo metálico unido a un mercaptoderivado, el cual a su vez se une a través de al menos uno de sus grupos ácidos a un polímero derivado del polietilénglicol (PEG) bis-amino terminado, estando dichas nanopartículas funcionalizadas con un neuro-péptido, particularmente el péptido intestinal vasoactivo (VIP).
En una posible configuración, el neuropéptido se une a través de su grupo carboxilo a uno de los grupos amino del PEG bis-amino terminado, quedando el grupo amino del péptido libre para interaccionar con receptores específicos. En otra posible configuración, las nanopartículas están conjugadas con un diácido a través de uno de los grupos amino del PEG bis-amino terminado, estando dicho diácido a su vez enlazado a través de uno de los grupos ácido con el grupo amino del neuropéptido, quedando expuesto el grupo carboxilo del neuropéptido para interaccionar con receptores específicos.
En una de las realizaciones preferidas de las nanopartículas objeto de la presente invención, el material metálico del núcleo es plata y el mercapto -derivado es tiopronina, encontrándose la tiopronina y la plata en proporción 3:1 en las nanopartículas.
En una realización preferida de la configuración que deja expuesto el grupo carboxilo del neuropéptido, el diácido es ácido succínico. Las nanopartículas metálicas íuncionalizadas objeto de la invención presen-tan geometría esférica y tienen un diámetro medio de 5 nm.
Constituye igualmente un objeto de la presente invención un procedimiento de preparación de nanopartículas funcionalizadas con un neuropéptido que incluye las siguientes etapas: a) formación de nanopartículas con un núcleo de material metálico unido a un mercaptoderivado, mediante adición de una disolución del mercapto -derivado a una disolución acuosa de una sal del material metálico, posterior reducción con un agente reductor, particularmente borohidruro de sodio, precipitación de las nanopartículas formadas mediante adición de metanol y recogida por centrifugación, terminando esta etapa con un lavado de las nanopartículas precipitadas y separadas con etanol, metanol y acetona. b) dialización frente a agua de las nanopartículas separadas en la etapa anterior, así como eliminación del disolvente utilizado para el lavado hasta conseguir una concentración inferior a 2.10"7moles/ mi y disolución en ácido 2- morfolinoetanosulfónico (MES) 50 mM. c) conjugación de las nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderivado preparadas y dializadas en las etapas anteriores con polietilénglicol bis-amino terminado, mediante adición inicial de EDC [N-(3-dimetilaminopropil)-N'-etücarbodiimida] 0,1 mM y NHS pSí-hidroxisuccinimida] 0,25 mM y ulterior adición de PEG bis-amino terminado, manteniendo agitación durante 24 h. d) dialización en agua de la disolución de nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderivado/PEG bis-amino terminado de la etapa anterior y eliminación del disolvente hasta conseguir una concentración inferior a 2.10"7moles/ mi y disolución en MES 50 mM El procedimiento incluye adicionalmente las siguientes etapas: e) funcionalización de las nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderiva-do/PEG bis-amino terminado obtenidas en las etapas anteriores con un neuropéptido, mediante adición de EDC 0,1 mM y NHS 0,25 mM y ulterior adición del neuropéptido manteniendo en agitación durante 24h
f) purificación de las nanopartículas runcionalizadas núcleo metálico/mercaptoderivado/PEG bis-amino terminado/neuropéptido mediante diálisis frente a agua desionizada durante 24 horas.
Las nanopartículas obtenidas mediante este procedimiento dejarían disponible el grupo amino del péptido fimcionalizado para interaccionar con las membranas celulares.
Para conseguir la recepción celular específica buscada, la proteína unida a la nanopartícula debe tener disponible su grupo ácido. Para conseguir ésta orientación, se amplia el procedimiento de preparación, incorporando un nuevo ligando de unión entre el PEG y la proteína.
Se ha elegido un diácido como intermediario entre el polietilenglicol (bis- aminoterminado) y el VIP. El diácido, particularmente el succínico, emplea uno de sus carboxilos para enlazar con el amino del PEG procedente de la etapa anterior, dejando el otro grupo ácido disponible para su siguiente funcionalización. En este nuevo procedimiento se obtiene, gracias a la incorporación del diácido tras el polietilenglicol, una nanopartícula estabilizada, funcionalizada, de forma que posee un grupo ácido disponible donde posteriormente se unirá el grupo amino de una proteína, y así poder participar en las funciones de reconocimiento celular. En este caso, el procedimiento de preparación incluye las siguientes etapas: a) formación de nanopartículas con un núcleo de material metálico unido a un mercaptoderivado, mediante adición de una disolución del mercaptoderivado a una disolución acuosa de una sal del material metálico, posterior reducción con un agente reductor, particularmente borohidruro de sodio, precipitación de las nanopartículas formadas mediante adición de metanol y recogida por centrifugación, terminando esta etapa con un lavado de las nanopartículas precipitadas y separadas con etanol, metanol y acetona.
b) dialización frente a agua de las nanopartículas separadas en la etapa anterior, así como eliminación del disolvente utilizado para el lavado hasta conseguir una concentración inferior a 2.10"7moles/ mi y disolución en ácido 2- morfolinoetanosulfónico (MES) 50 mM.
c) conjugación de las nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderivado preparadas y dializadas en las etapas anteriores con polietilénglicol bis-amino terminado, mediante adición inicial de EDC [N-(3-dimetilaminopropil)-N'-etilcarbodiimida] 0,1 mM y NHS [N-hidroxisuccinimida] 0,25 mM y ulterior adición de PEG bis- amino terminado, manteniendo agitación durante 24 h.
d) dialización en agua de la disolución de nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderivado/PEG bis-amino terminado de la etapa anterior y eliminación del disolvente hasta conseguir una concentración inferior a 2.10" 7moles/ mi y disolución en MES 50 mM.
y adicionalmente:
e) conjugación de las nanopartículas núcleometálico/mercaptoderivado/ PEG bis-amino terminado precedentes de las etapas anteriores con un diácido mediante adición de EDC y NHS en cantidades equimolares y ulterior adición del diácido, manteniendo en agitación durante 24 horas.
f) purificación de las nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderivado /PEG bis- amino terminado/diácido mediante dialización frente a agua desionizada y disolución de las mismas en MES g) funcionalización de las nanopartículas procedentes de la etapa anterior con un neuropéptido mediante adición inicial de EDC y NHS manteniendo en agitación durante 30 min y ulterior adición del neuropéptido manteniendo la reacción durante 24 h.
h) purificación de las nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderivado/
PEG bis-amino terminado/diácido/neuropéptido mediante diálisis frente a agua desionizada.
En una forma de realización preferente, el material metálico del núcleo de las nanopartículas es plata, el mercaptoderivado es tiopronina y el neuropéptido es el péptido intestinal vaso activo. Preferentemente, en el procedimiento para preparar las nanopartículas cuya configuración deja libre el grupo carboxilo, el diácido utilizado es ácido succínico.
BREVE DESCRIPCIÓN DE LAS FIGURAS
Figura 1: Esquema de funcionalización de nanopartículas metálicas desde la tiopronina al VIP.
Figura 2: Estructura del VIP. Péptido Intestinal Vasoactivo. Figura 3: Imágenes tomadas con microscopía óptica de la línea celular macrofágica
Raw 264.7. Izquierda: imagen de control. Derecha: células incubadas con nanopartículas Ag/tiopronina.
Figura 4: Imagen TEM de las nanopartículas Ag/tiopronina.
Figura 5: Esquema de una molécula de tiopronina adsorbida en una nanopartícula de Ag (no está a escala) numerada para la interpretación del espectro RMN.
Figura 6: Espectro a 500 MHz de Ag-tiopronina en D2O a 298 K. De arriba a abajo:
Espectro ID TOCSY (3.9 ppm), espectro ID TOCSY (4.2 ppm), y espectro 1H.
Figura 7: Espectro a 500 MHz 2D HMBC de Ag-tiopronina en D2O a 298 K.
Figura 8. Espectro de absorción UV- Vis de nanopartículas de Ag/tiopronina, Ag/tiopronina/PEG, Ag/tiopronina/PEG/VIP, Ag/tiopronina/PEG/acido succínico y
Ag/tiopronina/PEG/ácido succínico/VIP en disolución acuosa. Figura 9 ¡Espectro FTIR de nanopartículas de Ag/tiopronina, Ag/tiopronina/PEG y Ag/tiopronina/PEG/succinico en KBr. Izquierda: Región del espectro entre 2500- 3500 crn'1. Derecha: región entre 1000-2000 cm"1.
DESCRIPCIÓN DETALLADA DE LA INVENCIÓN
Constituye un objeto de la presente invención la preparación de nanopartículas metálicas estables, solubles en agua, protegidas con polímeros bio compatibles y funcionalizadas con péptidos. Se aportan datos que permiten caracterizar dichas nanopartículas. Los péptidos son neuropéptidos y específicamente el péptido intestinal vasoactivo (VIP), cuya estructura se muestra en la figura 2.
Con el VIP se obtiene un amplio espectro de funciones biológicas, incluida inmunomodulación, actuando predominantemente como un potente anti inflamatorio y un agente inhibidor de la respuesta del ThI en el sistema inmunitario. Por lo tanto, el VIP emerge como un importante factor terapéutico para el tratamiento de enfermedades con componentes inflamatorias y autoinmunes [Grimm, M. C. et al. (2003) J Immunol. 171, 4990-4994; Pozo, D. (2003) Trenas Mol. Med 9, 211-217; M ; Ganea, D., and Delgado, M. (2002). Crit. Rev. Oral. Biol. Med. 13, 229-237; Delgado, M. et al. (2003). Trenas Immunol. 24, 221-224; D. Pozo, M. Delgado. FASEB Journal. (2004); 18: 1325 ].
Preparación de nanopartículas Ag/tiopronina
Para la síntesis de nanopartículas de plata se ha seguido el método publicado por Hyang and Murray [T. Huang, R. W. Murray. J. Phys. Chem. B. (2003) ; 107: 7434. ], en el cual los iones de plata en disolución acuosa procedentes de la disolución AgNO3 y tiopronina N-(2-mercaptopropionil) glicina, son reducidos con borohidruro sódico. Para una relación tiopronina:plata 3:1, se adiciona la disolución de tiopronina sobre la plata, reduciendo inmediatamente con NaBH4. De la disolución negra resultante se precipitarán las nanopartículas Ag-Tiopronina con la adición de metanol. Las partículas se recogen por centrifugación, lavadas sucesivas veces con etanol, metanol y acetona, dializadas frente a agua y finalmente se elimina su disolvente a presión reducida para asegurar la concentración en cada una de las etapas de fimcionalización.
A pesar de los estudios que existen sobre la reducción de amidas a aminas por la acción del NaBH4 en la presencia de metales de transición [Y. Suzuky Y. Miyaji, Z. Imai. Tetrahedron Letters. (1969) ; 52: 4555 ], los resultados obtenidos demuestran que la molécula de tiopronina no se ve afecta por el NaBH4, sino que se produce un cambio químico en el que la molécula de tiopronina sufre la pérdida del H de su grupo tiol mediante su adsorción en la superficie de la partícula metálica.
Preparación de nanopartículas Ag/tiopronina/PEG De la Fuente et al [ J. M. de la Fuente, C. C. Berry, M. O. Riehle, A. S. G. Curtís. Langmuir. (2006) ; 22: 3286 ]. han ñmcionalizado nanopartículas metálicas de oro con PEG. demostrando que el uso del polietilenglicol tras la nanopartícula estabilizada, disminuye las interacciones inespecíficas de las mismas sobre la superficie celular. Para la conjugación de las nanopartículas de Ag/tiopronina con polietilen-glicol se siguió un método paralelo al propuesto por de la Fuente et al [J. M. de la Fuente, C. C. Berry, M. O. Riehle, A. S. G. Curtís. Langmuir. (2006) ; 22: 3286 ] adaptado para nanopartículas de plata. El producto anterior (Ag/tiopronina) dializado y rotado se disuelve en una disolución de MES ( ácido 2-morfolinoetanosulfónico) 5OmM. Se añade EDC(N-(3- dimetilaminopropil)-N'-etücarbodiimida) (O.lmmol) y NHS N-hidroxisuccinimida (0.25mrnol). Se deja reaccionar brevemente, se añade el PEG (Polietilenglicol bis- aminoterminado) manteniendo la agitación durante 24 horas. La disolución resultante Ag/tiopronina/PEG se dializa en agua y finalmente, se elimina su disolvente para asegurar la concentración en la siguiente etapa. Este procedimiento conduce a la primera orientación, dónde el grupo amino del PEG está expuesto a la disolución y disponible para su unión con el grupo ácido de un péptido.
Preparación de nanopartículas Ag/tiopronina/PEG funcionalizadas con VIP Se han descrito [ J. M. de la Fuente, C. C. Berry, M. O. Riehle, A. S. G. Curtís. Langmuir. (2006) ; 22: 3286 ]. nanopartículas de oro protegidas con tiopronina y estabilizadas con PEG. Posteriormente, se hizo reaccionar tras el PEG, la secuencia de péptidos GRGDSP. Las nanopartículas así obtenidas son estables, solubles en condiciones fisiológicas y exhiben baja toxicidad. Se demuestra que las nanopartículas de oro protegidas con tiopronina inducen o endocitosis o adhesión a la membrana celular dependiendo de la composición química de la superficie de la partícula.
En la presente invención, el péptido empleado ha sido el VIP. Con el VIP se obtiene un amplio espectro de funciones biológicas, incluida inmunomodulación, actuando predominantemente como un potente anti inflamatorio y un agente inhibidor de la respuesta del ThI en el sistema inmunitario. Para preparar las nanopartículas funcionalizadas con VIP, se disuelven en MES las nanopartículas Ag/tiopronina/PEG en análogas proporciones, posteriormente se añaden EDC y NHS en la misma relación que en el apartado anterior para preparar las Ag/tiopronina/PEG. Finalmente se adiciona el VIP en relación al PEG añadido. Se permite la reacción durante 24 horas. Para su purificación final se dializa frente a agua miliQ durante 24. Este procedimiento conduce a la primera orientación, dónde el grupo amino del VIP está expuesto a la disolución.
Preparación de nanopartículas Ag/tiopronina/PEG/succínico
Para diseñar nanopartículas que sean capaces de reaccionar con péptidos a través de su grupo amino se emplea un diácido, preferentemente el ácido succínico, como intermediario entre el PEG y el VIP.
Se toman cantidades equivalentes del producto anterior Ag/tiopronina/PEG dializado y rotado y se disuelven en MES (ácido 2-morfolinoetanosulfónico) 5OmM. Posteriormente y sin esperar, se añaden EDC(N-(3-dimetilaminopropil)-N'- etilcarbodiimida) y NHS N-hidroxisuccinimida en cantidades equimolares. Finalmente se añade el ácido succínico en función de la funcionalización con PEG conseguida en la etapa anterior y se permite la reacción con agitación suave durante 24 horas. Se dializa frente a agua miliQ hasta su total purificación. Se obtienen así nanopartículas con grupos ácidos disponibles para funcionalizar con proteínas. Preparación de nanopartículas Ag/tiopronina/PEG/succínico/VIP
El diácido (particularmente el succínico) dejó disponible en la etapa anterior su otro grupo ácido por donde reaccionará el VIP: El VIP así runcionalizado mantiene libre su resto ácido que es el grupo que realmente interviene en las funciones de reconocimiento celular, en concreto el VIP ejerce importantes beneficios activando funciones del sistema inmune.
Para fancionalizar nanopartículas Ag/PEG/Succínico con VIP, se disuelven en MES las nanopartículas Ag/tiopronina/PEG/succínico, posteriormente se añaden EDC y de NHS en las proporciones anteriormente empleadas y se deja en agitación suave durante 30 minuto s.
Se añade el VIP correspondiente a la cantidad de succínico añadida, disueltos en agua miliQ y se permite la reacción durante 24 horas. Para su purificación final se dializa frente a agua miliQ para conseguir alta pureza en el producto. En esta segunda orientación propuesta, se consigue dejar libre el extremo ácido del péptido que es el grupo funcional que realmente interviene en las funciones de reconocimiento celular.
En la figura 1 se esquematiza todo el procedimiento de funcionalización de nanopartículas metálicas desde la tiopronina al VIP. En la figura 8 se muestran las variaciones en el plasmón superficial en todas las etapas de las nanopartículas tras su funcionalización. Los espectros IR (FTIR) de las nanopartículas descritas, preparadas en KBr se muestran en la Fig. 9.
MODO DE REALIZACIÓN DE LA INVENCIÓN
Nanopartículas 3:l:Ag/tiopronina Tal y como se ha explicado en la descripción detallada, para la preparación de nanopartículas de plata se ha seguido el método publicado por Hyang and Murray [ T. Huang, R. W. Murray. J. Phys. Chem. B. 2003; 107: 7434. ]. siguiendo la proporción 3:1, en el cual los iones de plata en disolución acuosa procedentes de la disolución AgNO3 y tiopronina, son reducidos con borohidruro sódico. El análisis de las nanopartículas de Ag/tiopronina proporciona los datos necesarios para calcular su recubrimiento durante la funcionalización en las etapas posteriores. Las nanopartículas son esféricas y tienen un diámetro medio de 5nm, determinado por TEM (Transmission Electron Micro scopy}_Las imágenes se tomaron con el microscopio de alta resolución Philips CM200. Las muestras se prepararon secando las nanopartículas sobre una gradilla de cobre (ver Fig. 4). Los desplazamientos químicos correspondientes al espectro de 1H-RMN de las nanopartículas de Ag@tiopronina, se muestran en la tabla 1 y en la figura 7. El espectro RMN se realizó a 500 MHz con un espectrómetro Bruker AMX-500 en D2O. El standard HMBC se optimizó a JH,C=8 HZ. El número asignado a cada protón en la molécula se muestra en la figura 5, y los desplazamientos químicos se muestran en la tabla 1. También se comparan las asignaciones de las bandas con las aportadas por Kohlmann et al. J. Phys. Chem. B. 2001; 105: 8801.
En la figura 6 se muestran dos espectros ID TOCSY. Los experimentos TOCSY se realizaron con la secuencia DPFGSE, a pulsos selectivos de 50 ms (Gaussian), con un tiempo de mezcla de 120 ms. En la figura 9 se muestra la correlación entre los grupos metil y carbonilamida (177.6 ppm) con una correlación de 3 enlaces, así como la correlación a 2 enlaces que existe entre los protones del metileno y los del grupo carbonilamida a 178 ppm.
El espectro UV A- VIS de las nanopartículas de Ag/tiopronina en disolución acuosa muestra claramente una banda con un máximo a λ?~38O nm que pertenece a la absorción característica del plasmón superficial de las nanopartículas de plata, (ver Fig. 8) y cuyas variaciones demostrarán la funcionalización de las nanopartículas. Los espectros UV-Vis fueron reco-gidos con un espectrómetro Ocean optics equipado con un detector HR4000.
Nanopartículas 3:1 funcionalizadas con PEG: Ag/tiopronina/PEG
El producto anterior dializado y rotado se disuelve en una disolución de MES (ácido morfolino etano sulfónico) 5OmM. A la muestra disuelta se le añaden EDC N-(3- dimetil-aminopropil)-N'-etilcarboimida hidro clorhídrico) (O.lmmol) y NHS N- Hidroxisucciniimida (0.25mmol). Se deja reaccionar con agitación suave durante 30min y se añade el PEG en proporción a la tiopronina reaccionada. Se deja agitando 24 horas, se dializa en agua Ag/tiopronina/PEG y se elimina el disolvente para asegurar la concentración en la siguiente etapa. Nanopartículas 3:1 PEG funcionalizadas con VIP:Ag/tiopronina/PEG/VIP
A las nanopartículas de Ag@tiopronina@PEG disueltas en MES, se les añaden las cantidades de EDC y NHS que se muestran en las relaciones anteriores. Se adiciona el VIP correspondiente en relación al PEG reaccionado y disuelto en agua miliQ. Se permite la reacción durante 24 horas con suave agitación. Para su purificación final se dializa frente a agua miliQ durante 24 horas.
Este procedimiento conduce a la primera orientación, dónde el grupo amino del PEG está expuesto a la disolución y disponible para su unión con el grupo ácido de un péptido.
Nanopartículas 3:1 PEG funcionalizadas con ácido succínico: Ag/tiopronina/PEG/Succínico
Para diseñar nanopartículas que sean capaces de reaccionar con péptidos a través de su grupo amino y así dejar el extremo ácido del péptido libre en disolución, se ha empleado un diácido, el ácido succínico, como intermediario entre el PEG y del VIP.
A nanopartículas de Ag/tiopronina/PEG disueltas en MES, se adicionan cantidades equimolares de EDC, NHS según los procedimientos anteriores. Se añade el succínico necesario según el PEG funcionalizado. Se permite la reacción con agitación suave durante 24 horas. Se dializa frente a agua miliQ durante 48 horas, renovando el agua cada 10 horas.
Nanopartículas 3:1 PEG ácido succínico funcionalizadas con VIP: Ag/tiopronina/PEG/Succínico/VIP Para rüncionalizar el VIP a nanopartículas Ag/PEG/Succínico, se disolverán previamente en MES y se activarán con EDC y NHS las cantidades necesarias de nanopartícula respecto a la funcionalización conseguida en las etapas anteriores. Se deja reaccionar brevemente previo a la adición del VIP y se permite la reacción durante 24 horas. Para su purificación final se dializa frente a agua miliQ durante 24 horas, renovando el agua cada 10 horas. Así se ha conseguido dejar libre el extremo ácido del péptido que es grupo funcional que realmente interviene en las funciones de reconocimiento celular
Tabla 1: Asignación de Desplazamientos Químicos (500 MHz) para el espectro 1H- NMR obtenidos y comparados con Kohlmann et al. J. Phys. Chem. B. 2001; 105: 8801.
núcleo grupo Tiopronina Au@tiopronina Nuestros datos δ(ppm) δ(ppm) Ag@Tiopronin δ(ρpm)
Hl metil 1.48 1.6 1.8
H2 metino 3.65 4.3 4.2
H4 amida 8.39 8.3 -
H5 metileno 4.01 4.0 3.9-3.7

Claims

REIVINDICACIONES
1.- Nanopartículas metálicas füncionalizadas compuestas por un núcleo metálico unido un mercaptoderivado, el cual a su vez se une a través de al menos uno de sus grupos ácidos a un polímero derivado del polietilénglicol (PEG) bis-amino terminado, caracterizadas porque las nanopartículas están fiincionalizadas con un neuropéptido.
2.- Nanopartículas metálicas füncionalizadas según la reivindicación 1, caracterizadas porque el neuropéptido es el péptido intestinal vaso activo (VIP).
3.- Nanopartículas metálicas funcionalizadas según las reivindicaciones 1 y 2, caracterizadas porque el neuropéptido se une a través de su grupo carboxilo a uno de los grupos amino del PEG bis-amino terminado, quedando el grupo amino del péptido libre para interaccionar con receptores específicos.
4.- Nanopartículas metálicas funcionalizadas según las reivindicaciones 1 y 2, caracterizadas porque las nanopartículas están conjugadas con un diácido a través de uno de los grupos amino del PEG bis-amino terminado, estando dicho diácido a su vez enlazado a través de uno de los grupos ácido con el grupo amino del neuropéptido, quedando expuesto el grupo carboxilo del neuropéptido para interaccionar con receptores específicos.
5.- Nanopartículas metálicas funcionalizadas según las reivindicaciones 1-4, caracterizadas porque el material metálico del núcleo es plata.
6.- Nanopartículas metálicas funcionalizadas según las reivindicaciones 1-5, caracterizadas porque el mercaptoderivado es tiopronina.
7.- Nanopartículas metálicas funcionalizadas según las reivindicaciones 5 y 6, caracterizadas porque la tiopronina y la plata se encuentran en proporción 3:1 en la nanopartícula.
8.- Nanopartículas metálicas funcionalizadas según las reivindicaciones 4-7, caracterizadas porque el diácido es ácido succínico.
9.- Nanopartículas metálicas funcionalizadas según las reivindicaciones 1-8, caracterizadas porque presentan geometría esférica y tienen un diámetro medio de 5 nm.
10.- Procedimiento de preparación de nanopartículas funcionalizadas con un neuropéptido de acuerdo a las reivindicaciones 1-3 que incluye las siguientes etapas:
a) formación de nanopartículas con un núcleo de material metálico unido a un mercaptoderivado, mediante adición de una disolución del mercaptoderivado a una disolución acuosa de una sal del material metálico, posterior reducción con un agente reductor, particularmente borohidruro de sodio, precipitación de las nanopartículas formadas mediante adición de metanol y recogida por centrifugación, terminando esta etapa con un lavado de las nanopartículas precipitadas y separadas con etanol, metanol y acetona.
b) dialización frente a agua de las nanopartículas separadas en la etapa anterior, así como eliminación del disolvente utilizado para el lavado hasta conseguir una concentración inferior a 2.10"7moles/ mi y disolución en ácido 2- morfolinoetanosulfónico (MES) 50 mM.
c) conjugación de las nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderivado preparadas y dializadas en las etapas anteriores con polietilénglicol bis-amino terminado, mediante adición inicial de EDC [N-(3-dimetilaminopropil)-N'-etilcarbodiimida] 0,1 mM y NHS [N-hidroxisuccinimida] 0,25 mM y ulterior adición de PEG bis-amino terminado, manteniendo agitación durante 24 h.
d) dialización en agua de la disolución de nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderivado/PEG bis-amino terminado de la etapa anterior y eliminación del disolvente hasta conseguir una concentración inferior a 2.10~7moles/ mi y disolución en MES 50 mM
95 estando el procedimiento caracterizado porque incluye adicionalmente las siguientes etapas:
e) funcionalización de las nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderiva-do/PEG bis-amino terminado obtenidas en las etapas anteriores con un neuropéptido,
100 mediante adición de EDC 0,1 mM y NHS 0,25 mM y ulterior adición del neuropéptido manteniendo en agitación durante 24h
f) purificación de las nanopartículas funcionalizadas núcleo metálico/mercaptoderivado/PEG bis-amino terminado/neuropéptido mediante diálisis
105 frente a agua desionizada durante 24 horas.
11.- Procedimiento de preparación de nanopartículas funcionalizadas con un neuropéptido de acuerdo a las reivindicaciones 1,2 y 4 que incluye las siguientes etapas: 110 a) formación de nanopartículas con un núcleo de material metálico unido a un mercaptoderivado, mediante adición de una disolución del mercaptoderivado a una disolución acuosa de una sal del material metálico, posterior reducción con un agente reductor, particularmente borohidruro de sodio, precipitación de las nanopartículas
115 formadas mediante adición de metanol y recogida por centrifugación, terminando esta etapa con un lavado de las nanopartículas precipitadas y separadas con etanol, metanol y acetona.
b) dialización frente a agua de las nanopartículas separadas en la etapa anterior, así 120 como eliminación del disolvente utilizado para el lavado hasta conseguir una concentración inferior a 2.10'7moles/ mi y disolución en ácido 2- morfolinoetanosulfónico (MES) 50 mM. c) conjugación de las nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderivado preparadas y dializadas en las etapas anteriores con polietilénglicol bis-amino terminado,
125 mediante adición inicial de EDC [N-(3-dimetilamino-propil)-N'- etilcarbodiimida] 0,1 mM y NHS pSÍ-hidroxisuccinimida] 0,25 mM y ulterior adición de PEG bis-amino terminado, manteniendo agitación durante 24 h. d) dialización en agua de la disolución de nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderivado/PEG bis-amino terminado de la etapa anterior y
130 eliminación del disolvente hasta conseguir una concentración inferior a 2.10" 7moles/ mi. y disolución en MES 50 mM
estando el procedimiento caracterizado porque incluye adicionalmente las siguientes etapas: 135 e) conjugación de las nanopartículas núcleometálico/mercaptoderivado/
PEG bis-amino terminado precedentes de las etapas anteriores con un diácido mediante inicial de EDC y NHS en cantidades equimolares y ulterior adición del diácido, manteniendo en agitación durante 24 horas. 140 f) purificación de las nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderivado /PEG bis- amino terminado/diácido mediante dialización frente a agua desionizada y disolución de las mismas en MES.
145 g) funcionalización de las nanopartículas procedentes de la etapa anterior con un neuropéptido mediante adición inicial de EDC y NHS manteniendo en agitación durante 30 min y ulterior adición del neuropéptido manteniendo la reacción durante 24 h.
150 h) purificación de las nanopartículas núcleo metálico/mercaptoderivado/
PEG bis-amino terminado/diácido/neuropéptido mediante diálisis frente a agua desionizada.
155 12.- Procedimiento de preparación de nanopartículas funcionalizadas con un neuropéptido según las reivindicaciones 9 y 10, caracterizado porque el material metálico del núcleo es plata.
13.- Procedimiento de preparación de nanopartículas funcionalizadas con un 160 neuropéptido según las reivindicaciones 9 - 11, caracterizado porque el mercaptoderivado es tiopronina.
14.- Procedimiento de preparación de nanopartículas funcionalizadas con un neuropéptido según las reivindicaciones 9 - 12, caracterizado porque el 165 neuropéptido es el péptido intestinal vasoactivo.
15.- Procedimiento de preparación de nanopartículas funcionalizadas con un neuropéptido según las reivindicaciones 10 - 14, caracterizado porque el diácido utilizado es ácido succínico. 170
175
180
185
190
PCT/ES2009/000043 2008-01-31 2009-01-28 Nanopartículas metálicas funcionalizadas con el neuropéptido vip y procedimiento de preparación WO2009095516A1 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
ESP200800451 2008-01-31
ES200800451A ES2331781B1 (es) 2008-01-31 2008-01-31 Nanoparticulas metalicas funcionalizadas con el neuropeptido vip y procedimiento de preparacion.

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2009095516A1 true WO2009095516A1 (es) 2009-08-06

Family

ID=40912311

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/ES2009/000043 WO2009095516A1 (es) 2008-01-31 2009-01-28 Nanopartículas metálicas funcionalizadas con el neuropéptido vip y procedimiento de preparación

Country Status (2)

Country Link
ES (1) ES2331781B1 (es)
WO (1) WO2009095516A1 (es)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2010037878A1 (es) * 2008-10-02 2010-04-08 Universidad De Sevilla Utilización de nanopartículas de metales nobles como inmunomoduladores y composición inmunomoduladora

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2541501B1 (es) * 2013-12-19 2016-04-26 Consejo Superior De Investigaciones Científicas (Csic) Sistema polimérico metaloorgánico de coordinación a escala micro-/nanométrica, procedimiento de obtención y aplicaciones

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006025627A1 (en) * 2004-09-03 2006-03-09 Yonsei University Water-soluble nanoparticles stabilized with multi-functional group ligands and method of preapation thereof

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006025627A1 (en) * 2004-09-03 2006-03-09 Yonsei University Water-soluble nanoparticles stabilized with multi-functional group ligands and method of preapation thereof

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
FUENTE, J.M. ET AL.: "Nanoparticle Targeting at Cells", LANGMUIR, vol. 22, 2006, pages 3286 - 3293 *
HUANG, T. ET AL.: "Luminiscence of Tiopronin Monolayer-Protected Silsee Clusters Changes To That of Gold Clusters upon Galvanic Core Metal Exchange", THE JOURNAL OF PHYSICAL CHEMISTRY B, vol. 107, 2003, pages 7434 - 7440 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2010037878A1 (es) * 2008-10-02 2010-04-08 Universidad De Sevilla Utilización de nanopartículas de metales nobles como inmunomoduladores y composición inmunomoduladora

Also Published As

Publication number Publication date
ES2331781A1 (es) 2010-01-14
ES2331781B1 (es) 2010-10-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lin et al. Surface dynamics and ligand–core interactions of quantum sized photoluminescent gold nanoclusters
Eck et al. PEGylated gold nanoparticles conjugated to monoclonal F19 antibodies as targeted labeling agents for human pancreatic carcinoma tissue
Zhang et al. Live-cell surface-enhanced Raman spectroscopy imaging of intracellular pH: From two dimensions to three dimensions
Davies et al. pH-controlled delivery of luminescent europium coated nanoparticles into platelets
Ovejero Paredes et al. Multifunctional silica-based nanoparticles with controlled release of organotin metallodrug for targeted theranosis of breast cancer
Nowinski et al. Biologically inspired stealth peptide-capped gold nanoparticles
Mullen et al. A quantitative assessment of nanoparticle− ligand distributions: implications for targeted drug and imaging delivery in dendrimer conjugates
Choi et al. Synthesis and functional evaluation of DNA-assembled polyamidoamine dendrimer clusters for cancer cell-specific targeting
Cho et al. Highly stable positively charged dendron-encapsulated gold nanoparticles
Maus et al. Conjugation of peptides to the passivation shell of gold nanoparticles for targeting of cell-surface receptors
Denora et al. Spray-dried mucoadhesives for intravesical drug delivery using N-acetylcysteine-and glutathione-glycol chitosan conjugates
Shamsipur et al. Photoluminescence mechanisms of dual-emission fluorescent silver nanoclusters fabricated by human hemoglobin template: From oxidation-and aggregation-induced emission enhancement to targeted drug delivery and cell imaging
JP5597396B2 (ja) 葉酸修飾されたシクロデキストリン化合物、その製造方法、標的指向性薬物送達システム用の薬物送達剤、医薬組成物及び造影剤
Liu et al. A solution to the PEG dilemma: efficient bioconjugation of large gold nanoparticles for biodiagnostic applications using mixed layers
Duan et al. Chitosan-stabilized self-assembled fluorescent gold nanoclusters for cell imaging and biodistribution in vivo
Ali et al. Molecular imprinting of glycoproteins: From preparation to cancer theranostics
Canfarotta et al. Nano-sized molecularly imprinted polymers as artificial antibodies
Sahraei et al. Formation of a highly stable and nontoxic protein corona upon interaction of human α-1-acid glycoprotein (AGP) with citrate-stabilized silver nanoparticles
Liu et al. Serum albumin–peptide conjugates for simultaneous heparin binding and detection
Yang et al. In situ detection of live cancer cells by using bioprobes based on Au nanoparticles
US11377475B2 (en) Metal nanocluster scaffolds
Zhang et al. Weakly acidic carboxy group-grafted β-cyclodextrin-threaded acid-degradable polyrotaxanes for modulating protein interaction and cellular internalization
Wang et al. Design of a serum albumin sensitive probe for cell imaging and drug delivery by modifying a fluorescent agent
Mekuria et al. Preparation of self-assembled core–shell nano structure of conjugated generation 4.5 poly (amidoamine) dendrimer and monoclonal Anti-IL-6 antibody as bioimaging probe
Beiranvand et al. Anticancer drug delivery systems based on specific interactions between albumin and polyglycerol

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 09705053

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE

122 Ep: pct application non-entry in european phase

Ref document number: 09705053

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1