WO2007063228A1 - Procede de prediction de la viabilite et de la vitalite de bacteries destinees a etre utilisees dans des environnements stressants - Google Patents

Procede de prediction de la viabilite et de la vitalite de bacteries destinees a etre utilisees dans des environnements stressants Download PDF

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WO2007063228A1
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bacteria
bacterial
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preparations
stress
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PCT/FR2006/002633
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Jean Guzzo
Nicolas Desroche
Raphaëlle TOURDOT-MARECHAL
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Universite De Bourgogne
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    • C12Q2600/00—Oligonucleotides characterized by their use
    • C12Q2600/158—Expression markers

Definitions

  • the present invention relates to a method for predicting the viability, vitality and stability of bacteria for use in stressful environments and the use of this method for the quality control of stress adaptation of bacterial preparations. consisting of said bacteria and / or for the selection of bacteria used in the composition of such preparations.
  • yeast ferments for alcoholic fermentation and bacterial ferments for malolactic fermentation.
  • bacterial ferments preparations that allow the initiation of malolactic fermentation at the appropriate time of the winemaking process, by inoculation of the ferments in the wine.
  • This inoculation, or seeding can be carried out directly or after reactivation of the ferments.
  • Oenococcus oeni is the bacterial species most frequently used and best suited for this fermentation.
  • the bacterial ferments and in particular lactic ferments, are subjected to unfavorable conditions (acidity, nutritional deficiency, oxidative stress, etc.) during their implementation.
  • the producers of these bacterial preparations are therefore faced with the problem of guaranteeing the survival, vitality and stability of said preparations during storage or when they are used in fermentation processes or, in the case of probiotics, during their ingestion and especially the crossing of the stomach.
  • Probiotics means dietary supplements composed of living bacteria that have a beneficial effect by improving the balance of the intestinal flora; these probiotic ferments contain lactobacilli, bifidobacteria and streptococci.
  • the conventional technique of cell counting which consists of performing regular sampling of the stressful environment in which the bacteria were implanted, then to culture these samples and to count the bacteria after a defined incubation period.
  • this technique makes it possible to observe the growth of the bacterial population subjected to stress, it only partially informs about the physiological state of the bacteria: in fact, it is known that bacteria can grow in culture medium without being fully functional and conversely, bacteria adapted to stress conditions may not be able to grow in culture medium.
  • This technique does not allow to control with reliability and reproducibility the ability of bacteria to survive in a stressful environment, following their industrial preparation.
  • the present invention therefore aims to circumvent the above-mentioned difficulties by proposing a reliable, reproducible, accurate and rapid process that allows on the one hand, to estimate and validate the level of stress adaptation of industrially produced bacterial preparations. and intended for use in environments hostile to the survival of these bacteria and secondly, to select bacterial strains constituting such preparations.
  • the present invention relates to a method for predicting the viability, vitality and stability of bacteria for use in stressful environments, which bacteria are produced in the form of bacterial preparations and packaged in frozen form. or freeze-dried, remarkable in that said method comprises: a prior step of resuspending said bacterial preparations in a nutrient medium aqueous non-stressing;
  • aqueous nutrient medium a medium containing substances useful for the normal activity of bacteria and their survival, without constituting a growth medium that would allow these bacteria to multiply; in addition, this medium is non-stressing, that is to say that it constitutes a physicochemically neutral environment, allowing a normal energetic activity of the bacteria.
  • a medium is peptone water (NaCl at 9g L -1 and peptone at Ig L -1 ), which is conventionally used in microbiology for dilution operations.
  • the present invention also relates to the use of this method for controlling the stress adaptation of bacterial ferments.
  • These ferments can be obtained by precacclimation or preselection methods of bacterial strains.
  • Adaptation to acid stress is particularly concerned.
  • One of the particularly privileged uses relates to the control of malolactic ferments intended for the seeding of the wine.
  • a molecular measurement is carried out which is based on measuring the level of expression of at least one marker gene representative of the stress state of the bacterial species in question.
  • the internal pH is measured, that is to say a measurement of the physiological state which reflects the viability and vitality of the bacteria and which is related to the membrane integrity of the bacteria. Characterization of the physiological stability over time of these bacteria is achieved by repeating the two types of measurements over a period of time corresponding to the storage time and / or use of the bacteria.
  • the measured values are compared to those of controls and / or standards to define the degree of gene expression and the nature of the physiological state to characterize the bacteria tested.
  • the controls will generally be the same bacterial strains, having not been pre-acclimated to the stressful environment.
  • the method implements a measurement of the level of expression of at least one marker gene representative of the stress state of the bacteria.
  • RT-qPCR real-time quantitative PCR
  • the measurement of the stress response will relate to the expression of several marker genes, which increases the reliability of the measurement.
  • genes will be selected for which the ratio of expression levels between stress-adapted population and non-adapted population is at least a factor of 2.
  • the expression of the hspl ⁇ gene will be at least that measured in the context of the process.
  • This gene encodes the small Hsp Lol8 chaperone protein.
  • the measurement of the expression of at least one of the genes taken from clpX r trxA or cfa, which are involved in the adaptation of Oenococcus oeni to stress will be added.
  • the expression of hspl ⁇ is strongly induced by multiple stress, as well as in the stationary phase.
  • CIpX stands out as a marker of the lag phase while trxA and cfa are markers of stress expressed during all phases.
  • Oenococcus oeni clpX homologue is a heat shock gene preferentially expressed in exponential growth phase- J. Bacteriol. 181: 6634-6641 (1999).
  • genes coding for low molecular weight proteins induced during stress and for which the ratio of the levels of expression between the population adapted to the stress and the non adapted population will be at least a factor of 2.
  • genes which correspond for example to hspl8 in O. oeni or hspl ⁇ .55 or hspl9.5 in L. plantarum, are also present in the bacterial genera usually used as probiotics (lactobacilli, bifidobacteria).
  • the protocol of the molecular measurement is based on the conventional application of the RT-qPCR technique and is broken down according to the following main stages: - first stage of resuspension of freeze-dried or frozen bacterial preparations, for example by rehydration for fifteen minutes at 30 ° C. in peptone water (NaCl at 9 g L -1 and peptone at Ig L -1 ) if the preparations are lyophilized; - RNA extraction and RNA assays by spectrophotometric measurement at 260/280 nm;
  • the ratio of transcript levels between cells acclimated by cultures at acid pH and non-acclimated cells is 2.1 for hspl ⁇ .55, 3.4 for hspl9.5, 2.8 for groEL, and 2.6 for cfa.
  • the methods implement a measurement of the physiological state which reflects both the viability and the vitality of the bacteria, which is based on a measurement of the intracellular pH (pHi) of the bacteria.
  • pHi intracellular pH
  • bacteria that have adapted well to stress conditions have a pHi significantly different from non-adapted controls. It is therefore possible to determine, for each bacterial species and for a given medium, threshold values and / or ranges of pHi values with which the overall physiological state of the bacteria is characterized.
  • threshold values and / or ranges of pHi values with which the overall physiological state of the bacteria is characterized.
  • the pHi of the non-acclimated cells is 5.21 ⁇ 0.15 whereas that of the acclimated cells is 4.99 ⁇ 0 .05.
  • the pHi for an external pH of 3.5 of the non-acclimated cells is 5.41 + 0.06 while that of the acclimated cells is 5.02 ⁇ 0.06.
  • the protocol implemented may be based on an intracellular pH measurement via a pH-sensitive fluorescent probe, for example carboxy-fluorescein diacetate (CFDA).
  • CFDA carboxy-fluorescein diacetate
  • intracellular pH f (ratio 512/440 nm) to determine the intracellular pH
  • compositions of the buffer solutions are to be adapted by those skilled in the art for each type of bacterial strain tested, in order to optimize the measurement.
  • the prediction method was validated for Oenococcus oeni by comparison with the parameters of unacclimated preparations and by carrying out micro-vinification experiments making it possible to correlate the measurements made with the survival after implantation of the bacteria in the wine.
  • the acclimated preparations have a high level of expression of the marker genes and a significantly different intracellular pH compared to non-acclimated controls.
  • the micro-vinification experiments have shown a growth of the pre-acclimated bacterial population, associated with a decrease in the concentration of malic acid, while non-acclimated populations survived with great difficulty and had no effect on the level of malic acid.
  • the method was validated by correlating with the survival of acclimated and unaccumulated bacteria that were inoculated in a non-nutritive medium at an acidic pH of 2.9, simulating the acidic conditions of gastric fluid of 1 stomach.
  • the advantage of the use of this prediction method as a quality control tool which makes it possible to obtain very quickly an indication of the degree of adaptation to stress, and in particular to acid stress, of bacterial preparations, is well understood. they are obtained by selection or pre-acclimation.
  • the prediction method employed is particularly robust statistically, the measurements made and the results obtained are accurate and reproducible. This process allows, in addition, industrialists to adjust their pre -climation parameters much more efficiently and to optimize their pre-acclimation processes more easily. Indeed, the gene expression measurement is feasible in 48 hours from the reception of the bacterial culture, while the intracellular pH measurement requires 4 to 5 hours.
  • the process according to the invention will notably find a use for the quality control and / or the selection of bacterial preparations in the fields of human and animal nutrition (probiotics), agri-food (fermentative processes, especially wine, beer, corn, soybeans and salting), agriculture (bacterial inoculi) and the environment (composting, fight against pathogenic bacteria and hygienisation of effluents).
  • the method according to the invention will also be used to optimize the production processes of bacterial ferments intended for use in stressful environments.
  • the process according to the invention can be applied without difficulty and without undue effort to those skilled in the art to other bacterial preparations confronted when they are used in stressful and / or hostile environments, the markers These genes are, of course, adapted to the species in question and the threshold values of the pHi are determinable without any particular difficulties.

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Abstract

La présente invention a pour objet un procédé de prédiction de la viabilité, de la vitalité et de la stabilité de bactéries destinées à être utilisées dans des environnements stressants, lesquelles bactéries sont produites sous forme de préparations bactériennes et sont conditionnées sous forme congelée ou lyophilisée, remarquable en ce que ledit procédé comporte : une étape préalable de remise en suspension desdites préparations bactériennes dans un milieu nutritif aqueux non stressant ; une mesure moléculaire du niveau d'expression d'au moins un gène marqueur représentatif de l'état de stress pour chaque espèce bactérienne considérée ; une mesure du pH intracellulaire des bactéries basée sur une sonde fluorescente sensible au pH ; une étape de comparaison des valeurs mesurées à celles de témoins et/ou d'étalons de référence. L'invention a également pour objet l'utilisation de ce procédé pour le contrôle qualité de l'adaptation aux stress de préparations bactériennes ainsi que l'utilisation dudit procédé pour la sélection de telles préparations . Les ferments malolactiques et probiotiques sont plus particulièrement concernés .

Description

PROCEDE DE PREDICTION DE LA VIABILITE ET DE LA VITALITE DE
BACTERIES DESTINEES A ETRE UTILISEES DANS DES
ENVIRONNEMENTS STRESSANTS
La présente invention concerne un procédé de prédiction de la viabilité, de la vitalité et de la stabilité de bactéries destinées à être utilisées dans des environnements stressants ainsi que l'utilisation de ce procédé pour le contrôle qualité de l'adaptation au stress de préparations bactériennes constituées desdites bactéries et/ou pour la sélection de bactéries entrant dans la composition de telles préparations.
Dans le domaine de la vinification, on recourt à des ferments levuriens pour la fermentation alcoolique et à des ferments bactériens pour la fermentation malolactique.
A cette fin, il a été développé des préparations de ferments bactériens qui permettent le déclenchement de la fermentation malolactique au moment opportun du processus de vinification, par inoculation des ferments dans le vin. Cette inoculation, ou ensemencement, peut être réalisée de façon directe ou après réactivation des ferments. Oenococcus oeni est l'espèce bactérienne la plus fréquemment utilisée et la mieux adaptée pour réaliser cette fermentation.
Les fabricants de ces préparations bactériennes ainsi que leurs utilisateurs sont confrontés au problème de la survie des bactéries lors de l'inoculation dans le vin : en effet, les conditions physico-chimiques du vin sont extrêmement défavorables à l'implantation de ces ferments lactiques et causent donc une mortalité importante des bactéries. Afin de réduire ce problème et d'optimiser l'utilisation de ces ferments malolactiques, les producteurs de bactéries ont mis au point des protocoles de pré-acclimatation des bactéries. Les cultures bactériennes sont soumises à une série de stress physico-chimiques forçant les bactéries à adapter leur structure cellulaire et leur métabolisme, permettant d'obtenir des souches capables de survivre après ensemencement dans le vin. D'une manière plus générale, les ferments bactériens, et en particulier les ferments lactiques, sont soumis à des conditions défavorables (acidité, carence nutritionnelle, stress oxydatif, etc.) lors de leur mise en œuvre. Les producteurs de ces préparations bactériennes sont donc confrontés au problème de garantir une survie, une vitalité et une stabilité desdites préparations lors de leur stockage ou lors de leur utilisation dans des procédés fermentaires ou encore, dans le cas des probiotiques, lors de leur ingestion et notamment la traversée de l'estomac. Par probiotiques, on entend les suppléments alimentaires composés de bactéries vivantes qui exercent un effet bénéfique en améliorant l'équilibre de la flore intestinale ; ces ferments probiotiques contiennent des lactobacilles, des bifidobactéries et des streptocoques. La difficulté aujourd'hui pour ces producteurs de préparations bactériennes est donc d'obtenir une mesure fiable du niveau d'adaptation aux stress des préparations bactériennes, pré-acclimatées ou non, et de leur aptitude à survivre après inoculation dans des milieux ; il leur importe également de valider la qualité des produits obtenus après congélation ou lyophilisation, leur permettant de proposer les bactéries les plus performantes dans les préparations commercialisées.
Dans le cas des ferments malolactiques, les industriels ont actuellement recours à des expériences de micro-vinification qui sont coûteuses, longues (plusieurs semaines) et dispendieuses en main d' œuvre. De surcroît, elles sont éloignées des conditions réelles d'utilisation des ferments, à cause des faibles volumes considérés et de la difficulté d'utiliser dans ces expériences un vin représentatif des vins des utilisateurs finals de ces ferments .
D'autres tests ont également été développés, basés sur l'influence des bactéries sur des paramètres physiques de leur environnement, comme la concentration de certains métabolites que ces bactéries consomment ou produisent.
On utilise également la technique conventionnelle de numération cellulaire, qui consiste à effectuer des prélèvements réguliers du milieu stressant dans lequel les bactéries ont été implantées, puis à mettre en culture ces prélèvements et à compter les bactéries après une période d'incubation définie. Or si cette technique permet d'observer la croissance de la population bactérienne soumise au stress, elle ne renseigne que partiellement sur l'état physiologique des bactéries : en effet, il est connu que des bactéries peuvent se multiplier en milieu de culture sans être pleinement fonctionnelles et inversement, des bactéries adaptées aux conditions de stress peuvent ne pas être aptes à se multiplier en milieu de culture. Cette technique ne permet donc pas de contrôler avec fiabilité et reproductibilité la capacité des bactéries à survivre en environnement stressant, suite à leur préparation industrielle.
Aucun de ces tests n'est aujourd'hui réellement satisfaisant : d'une part, ils sont fastidieux et réclament une durée de réalisation importante, et d'autre part, leur degré de précision ne donne pas entière satisfaction en terme d'outils de contrôle qualité.
La présente invention a donc pour but de circonvenir aux difficultés sus-mentionnées en proposant un procédé fiable, reproductible, précis et rapide qui permet d'une part, d'estimer et de valider le niveau d'adaptation aux stress de préparations bactériennes produites industriellement et destinées à être utilisées dans des milieux hostiles à la survie de ces bactéries et d'autre part, de sélectionner des souches bactériennes constitutives de telles préparations. A cet égard, la présente invention a pour objet un procédé de prédiction de la viabilité, de la vitalité et de la stabilité de bactéries destinées à être utilisées dans des environnements stressants, lesquelles bactéries sont produites sous forme de préparations bactériennes et conditionnées sous forme congelée ou lyophilisée, remarquable en ce que ledit procédé comporte : une étape préalable de remise en suspension desdites préparations bactériennes dans un milieu nutritif aqueux non stressant ;
- une mesure moléculaire du niveau d'expression d'au moins un gène marqueur représentatif de l'état de stress pour chaque espèce bactérienne considérée ; - une mesure du pH intracellulaire des bactéries basée sur une sonde fluorescente sensible au pH ;
- une étape de comparaison des valeurs mesurées à celles de témoins et/ou d'étalons de référence.
Par milieu nutritif aqueux, on entend un milieu contenant des substances utiles à l'activité normale des bactéries et à leur survie, sans pour autant constituer un milieu de croissance qui permettrait à ces bactéries de se multiplier ; en outre, ce milieu est non stressant, c'est- à-dire qu' il constitue un environnement neutre sur le plan physico-chimique, permettant une activité énergétique normale des bactéries. Par exemple, un tel milieu est l'eau peptonée (NaCl à 9g. L"1 et peptone à Ig. L"1), qui est classiquement utilisée en microbiologie pour les opérations de dilution. La dernière étape du procédé selon l'invention permet de définir précisément les caractéristiques de vitalité, de viabilité et de stabilité des bactéries considérées lorsqu' elles seront ultérieurement placées dans un environnement stressant. La présente invention a également pour objet l'utilisation de ce procédé pour le contrôle de l'adaptation aux stress de ferments bactériens. Ces ferments peuvent être obtenus par des procédés de préacclimatation ou par présélections de souches bactériennes. L'adaptation au stress acide est plus particulièrement concernée. Une des utilisations particulièrement privilégiée concerne le contrôle des ferments malolactiques destinés à l'ensemencement du vin.
Selon un premier aspect de l'invention, on procède à une mesure moléculaire qui est basée sur la mesure du niveau d'expression d'au moins un gène marqueur représentatif de l'état de stress des espèces bactériennes considérées . Selon un second aspect de l'invention, on mesure le pH interne, c'est-à-dire une mesure de l'état physiologique qui traduit la viabilité et la vitalité des bactéries et qui est liée à l'intégrité membranaire des bactéries. La caractérisation de la stabilité physiologique dans le temps de ces bactéries est réalisée en répétant les deux types de mesures sur une période de temps correspondante à la durée de stockage et/ou d'utilisation des bactéries.
On comprend bien que la combinaison de ces deux paramètres permet une interprétation fiable de la qualité de survie et d' activité des bactéries après inoculation : on vérifie, par la quantification de l'expression génique, l'adaptation aux conditions de stress des bactéries, et on s'assure, par la caractérisation de l'état physiologique, que ces bactéries sont viables et présentent un niveau de vitalité satisfaisant, la mise en corrélation de ces données conduisant à une information complète et significative de l'adaptation des bactéries.
On compare les valeurs mesurées à celles de témoins et/ou d'étalons pour définir le degré de l'expression génique et la nature de l'état physiologique afin de caractériser les bactéries testées. Les témoins seront généralement les mêmes souches bactériennes, n'ayant pas subi de pré-acclimatation à l'environnement stressant. D'autres avantages et caractéristiques de l'invention ressortiront mieux de la description détaillée qui va suivre du procédé selon l'invention.
Selon une caractéristique essentielle de l'invention, le procédé met en œuvre une mesure du niveau d'expression d'au moins un gène marqueur représentatif de l'état de stress des bactéries.
Ce niveau d'expression est quantifié par la technique de transcription inverse couplée à la PCR quantitative en temps réel (RT-qPCR) .
De préférence, la mesure de la réponse au stress portera sur l'expression de plusieurs gènes marqueurs, ce qui augmente la fiabilité de la mesure. On choisira avantageusement des gènes qui s'expriment à différents stades de croissance des bactéries. De préférence, on choisira des gènes pour lesquels le rapport des niveaux d'expression entre population adaptée au stress et population non adaptée est d'au moins un facteur 2.
Ainsi, dans le cas des ferments malolactiques et de la bactérie Oenococcus oenl, l'expression du gène hsplβ sera au minimum celle mesurée dans le cadre du procédé. Ce gène code la protéine chaperon small Hsp Lol8. De préférence, on ajoutera la mesure de l'expression d'au moins un des gènes pris parmi clpXr trxA ou cfa, qui sont impliqués dans l'adaptation de Oenococcus oeni aux stress. L'expression de hsplβ est fortement induite par de multiples stress, ainsi qu'en phase stationnaire. CIpX en revanche se distingue comme marqueur de la phase de latence tandis que trxA et cfa sont des marqueurs de stress exprimés pendant toutes les phases.
L'Homme de l'Art se référera aux bases de données génétiques publiant le génome de Oenococcus oeni pour déterminer les séquences des sondes nucléotidiques qui seront employées lors de la RT-qPCR. On se référera avantageusement à la publication BELTRAMO et al. Real-time PCR for characterizing the stress response of Oenococcus oeni in a wine-like médium. Research in microbiology, vol. 157, no.3, 02 septembre 2005, pages 267-274, qui présente des séquences possibles des amorces nucléotidiques .
On se référera également aux publications suivantes, dont le contenu fait partie intégrante de la description du présent brevet, pour les caractéristiques de ces gènes marqueurs pour Oenococcus oeni :
- Jobin, M. P., Delmas, F., Garmyn, D., Diviès C. and Guzzo, J. Molecular characterization of the gène encoding a 18-kDa small heat shock protein associated with the membrane of Leuconostos oenos. Appl . Env. Microbiol. 63 : 6309-614 (1997) .
- Jobin, M. P., Garmyn, D., Diviès, C. and Guzzo, J. Expression of the Oenococcus oeni trxA gène is induced by hydrogen peroxide and heat shock. Microbiology. 145 : 1245- 1251 (1999) .
- Jobin, M. P., Garmyn, D., Diviès, C. and Guzzo, J. The Oenococcus oeni clpX homologue is a heat shock gène preferentially expressed in exponential growth phase- J. Bacteriol. 181 : 6634-6641 (1999).
Dans le cas de Lactobacillus plantarum, qui est un probiotique, on pourra avantageusement utiliser au minimum la mesure de l'expression du gène hsplβ.55. De préférence, pour une meilleure pertinence des résultats, on ajoutera la mesure de l'expression d'au moins un des gènes pris parmi hsp!9.5r groEL ou cfa.
Bien entendu, dans le cas d'autres préparations bactériennes, et en particulier les probiotiques, l'Homme de l'art choisira les marqueurs géniques les plus appropriés. De préférence, on ciblera des gènes codant pour des protéines de faible masse moléculaire induites lors de stress et pour lesquelles le rapport des niveaux d'expression entre population adaptée au stress et population non adaptée est d'au moins un facteur 2. En effet, de tels gènes, qui correspondent par exemple à hspl8 chez O. oeni ou à hsplδ.55 ou hspl9.5 chez L. plantarum, sont également présents chez les genres bactériens habituellement utilisés comme probiotiques (lactobacilles, bifidobactéries) .
Le protocole de la mesure moléculaire est basé sur l'application conventionnelle de la technique de RT-qPCR et se décompose selon les principales étapes suivantes : - première étape de remise en suspension des préparations bactériennes lyophilisées ou congelées, par exemple par réhydratation pendant quinze minutes à 300C dans de l'eau peptonée (NaCl à 9g. L"1 et peptone à Ig. L"1) si les préparations sont lyophilisées; - extraction des ARN et dosages des ARN par mesure spectrophotométrique à 260/280 nm ;
- traitement à la DNase et vérification de l'efficacité du traitement par PCR ; - transcription inverse;
- PCR quantitative avec amorces spécifiques des gènes ciblés et utilisation d'un témoin interne pour la normalisation des résultats. On utilise ensuite un étalonnage et/ou un comparatif avec des souches témoins pour qualifier l'adaptation aux stress des bactéries en fonction de l'expression génique mesurée.
On a ainsi obtenu dans le cas de souches d' Oenococcus oeni, des rapports de mesures des taux de transcrit entre ceux des cellules acclimatées et ceux des mêmes souches non acclimatées de 5 pour hspl8, de 2,25 pour clpx, de 5,5 pour trxA, et de 4 pour cfa. Les souches ont été acclimatées en les soumettant à un processus industriel de préacclimatation appliqué par les fabricants de ferments malolactiques .
Dans le cas de souches de Lactobacillus plantarum, le rapport des taux de transcrit entre les cellules acclimatées par cultures à pH acide et cellules non acclimatées est de 2,1 pour hsplδ.55, 3,4 pour hspl9.5, 2,8 pour groEL, et 2,6 pour cfa .
Selon une autre caractéristique essentielle de l'invention, les procédés mettent en œuvre une mesure de l'état physiologique qui traduit à la fois la viabilité et la vitalité des bactéries, qui est basée sur une mesure du pH intracellulaire (pHi)des bactéries. En effet, non seulement cette technique nous renseigne sur l'intégrité membranaire mais elle est également significative de la capacité à survivre en milieu acide, paramètre primordial dans le cas des ferments lactiques notamment.
De fait, les bactéries qui se sont bien adaptées aux conditions de stress ont un pHi significativement différent des témoins non adaptés. On peut donc déterminer, pour chaque espèce bactérienne et pour un milieu donné, des valeurs seuils et/ou des plages des valeurs de pHi avec lesquelles on caractérise l'état physiologique global des bactéries. Ainsi, dans le cas de souches d' Oenococcus oeni non acclimatées et acclimatées, on a déterminé pour une valeur de pH du milieu externe de 3,5, que le pHi des cellules non acclimatées est de 5,21 ± 0,15 alors que celui des cellules acclimatées est de 4,99 ± 0,05. Dans le cas de Lactobacillus plantarum, le pHi pour un pH externe à 3,5 des cellules non acclimatées est de 5,41 + 0,06 tandis que celui des cellules acclimatées est de 5,02 ± 0,06.
Le protocole mis en œuvre pourra être basé sur une mesure de pH intracellulaire via une sonde fluorescente sensible au pH , par exemple la carboxy-fluoresceine diacetate (CFDA) . Ce protocole dérive de la technique décrite par Breeuwer et al. (Applied and Environmental Microbiology, Jan. 1996) . Le protocole appliqué pour Oenococcus oeni se décompose selon les étapes suivantes :
- première étape de remise en suspension des préparations bactériennes lyophilisées ou congelées dans un milieu nutritif non stressant ; par exemple, pour Oenococcus oeni on réhydratera les préparations lyophilisées pendant 15 minutes à 300C dans de l'eau peptonée (NaCl : 9g. L"1 et peptone : IgL"1) ;
- lavage des cellules dans un tampon Phosphate de Potassium 100 mM, pH 5,3 ; - resuspension des cellules dans du tampon Phosphate de Potassium 100 mM, pH 8,0 avec la sonde CDCFDase à 1 μM et incubation 30 minutes à 300C ; pendant cette étape on procède au chargement et à la conjugaison de la sonde ;
- centrifugation et resuspension des cellules dans du tampon Phosphate de Potassium 100 mM, pH 5,3 avec du glucose à 20 mM et incubation 30 minutes à 300C ; on procède à l'élimination de la sonde non conjuguée ;
- centrifugation et resuspension des cellules dans du tampon Phosphate de Potassium 100 mM, pH 5,3, afin de procéder à l'élimination de la sonde non conjuguée présente dans le surnageant ;
- centrifugation et resuspension dans 2 mL de Tampon Citrate/Phosphate 100 mM à différents pH. Ajout de 1 μL de nigéricine et 1 μL de valinomycine pour calibration de la sonde ; cette étape a pour but la perméabilisation de la membrane aux protons ;
- lecture de la fluorescence émise à 531 nm après excitation à 440 nm (émission insensible au pH) et à 512 nm
(émission sensible au pH) sur la suspension non filtrée (fluorescence totale) et sur la suspension filtrée sur filtre 0,22 μm (fluorescence extracellulaire) ;
- calcul du ratio = (Emission après Ex : 512 nm non filtrée - Emission après Ex : 512 nm filtrée) / (Emission après Ex : 490 nm non filtrée - Emission après Ex : 490 nm filtrée) ;
- utilisation de la courbe de calibration : pH intracellulaire = f (ratio 512/440 nm) pour déterminer le pH intracellulaire ;
Dans le cas de Lactobacillus plantarum, on a appliqué le même protocole de mesure avec les modifications suivantes : pH du tampon Phosphate de potassium 100 mM à pH 6,0 et température d'incubation 350C au lieu de 300C. L'Homme de l'art adaptera le protocole aux spécificités de chaque souche bactérienne en fonction de la température et du pH optimaux de croissance.
Les compositions des solutions tampons sont à adapter par l'Homme du Métier pour chaque type de souche bactérienne testée, afin d'optimiser la mesure.
Le procédé de prédiction a été validé pour Oenococcus oeni par comparaison avec les paramètres de préparations non acclimatées et par la réalisation d' expériences de micro-vinification permettant de corréler les mesures effectuées avec la survie après implantation des bactéries dans le vin. Ainsi, les préparations acclimatées ont un fort niveau d' expression des gènes marqueurs et un pH intracellulaire significativement différent par rapport aux témoins, non acclimatés. Les expériences de micro-vinification ont mis en évidence une croissance de la population bactérienne pré-acclimatée, associée à une baisse de la concentration en acide malique, tandis que les populations non acclimatées survivaient très difficilement et n'avaient aucune incidence sur le taux d'acide malique.
Dans le cas du probiotique Lactobacillus plantarum, le procédé a été validé par corrélation avec la survie de bactéries acclimatées et non acclimatées qui ont été inoculées dans un milieu non nutritif à pH acide de 2,9, simulant les conditions acides du fluide gastrique de 1' estomac. On comprend bien l'avantage de l'utilisation de ce procédé de prédiction comme outil de contrôle qualité, qui permet d'obtenir très rapidement une indication du degré d'adaptation aux stress, et en particulier au stress acide, des préparations bactériennes, qu'elles soient obtenues par sélection ou par pré-acclimatation.
On notera que le procédé de prédiction employé est particulièrement robuste sur le plan statistique, les mesures effectuées et les résultats obtenus s'avèrent précis et reproductibles . Ce procédé permet, en outxe, aux industriels d'ajuster bien plus efficacement leurs paramètres de préacclimatation et d'optimiser plus aisément leurs processus de pré-acclimatation. En effet, la mesure d'expression génique est réalisable en 48 heures à compter de la réception de la culture bactérienne, tandis que la mesure de pH intracellulaire nécessite 4 à 5 heures.
Le contrôle qualité de la stabilité de ces préparations bactériennes lors de leur stockage et/ou leur utilisation, en répétant dans le temps les mesures du procédé de prédiction, est donc également bien plus aisé et rapide par rapport aux techniques connues.
Il en va de même de l'utilisation du procédé selon l'invention pour la sélection de souches bactériennes, en particulier des ferments probiotiques . Le procédé selon l'invention trouvera notamment une utilisation pour le contrôle qualité et/ou la sélection de préparations bactériennes dans les domaines de la nutrition humaine et animale (probiotiques), de l' agroalimentaire (processus fermentaires, en particulier du vin, de la bière, du maïs, du soja et dans les salaisons et charcuterie), de l'agriculture (inoculi bactériens) et de l'environnement (compostage, lutte contre les bactéries pathogènes et hygiénisation des effluents) .
On utilisera également le procédé selon l'invention pour optimiser les procédés de production de ferments bactériens destinés à une utilisation dans des environnements stressants. Enfin, il va de soi que le procédé selon l'invention peut être appliqué sans difficulté et sans effort excessif pour l'Homme du Métier à d'autres préparations bactériennes confrontées lors de leur utilisation à des environnements stressants et/ou hostiles, les marqueurs géniques étant bien entendu adaptés aux espèces considérées et les valeurs seuils du pHi étant déterminables sans difficultés particulières .

Claims

REVENDICATIONS
1 - Procédé de prédiction de la viabilité, de la vitalité et de la stabilité de bactéries destinées à être utilisées dans des environnements stressants, lesquelles bactéries sont produites sous forme de préparations bactériennes et sont conditionnées sous forme congelée ou lyophilisée, caractérisé en ce que ledit procédé comporte : une étape préalable de remise en suspension desdites préparations bactériennes dans un milieu nutritif aqueux non stressant ; - une mesure moléculaire du niveau d'expression d'au moins un gène marqueur représentatif de l'état de stress pour chaque espèce bactérienne considérée ; une mesure du pH intracellulaire des bactéries basée sur une sonde fluorescente sensible au pH ; - une étape de comparaison des valeurs mesurées à celles de témoins et/ou d'étalons de référence.
2 - Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que la bactérie est Oenococcus oeni et en ce que la mesure moléculaire porte sur l'expression du gène hsplδ.
3 - Procédé selon la revendication 2 caractérisé en ce que la mesure moléculaire porte en outre sur l'expression d'au moins un gène pris parmi : clpx, trxA, cfa .
4 - Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que la bactérie est Lactobacillus plantarum et en ce que la mesure moléculaire porte sur l'expression du gène hspl8.55.
5 - Procédé selon la revendication 4 caractérisé en ce que la mesure moléculaire porte en outre sur l'expression d'au moins un gène pris parmi : hpsl9.5, groEL, cfa.
6 - Utilisation du procédé selon la revendication 1 pour le contrôle qualité de l'adaptation aux stress de ferments probiotiques.
7 - Utilisation du procédé selon l'une quelconque des revendications 2 ou 3 pour le contrôle qualité de l'adaptation aux stress de ferments malolactiques destinés à l'ensemencement du vin.
8 - Utilisation du procédé selon la revendication 1 pour la sélection de souches bactériennes utilisées pour la production de préparations bactériennes confrontées lors de leur utilisation à des environnements stressants.
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