WO2004029092A2 - Anticorps pour adcc et induisant la production de cytokines. - Google Patents

Anticorps pour adcc et induisant la production de cytokines. Download PDF

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Christophe De Romeuf
Arnaud Glacet
Jacky Lirochon
Dominique Bourel
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    • C07K2317/73—Inducing cell death, e.g. apoptosis, necrosis or inhibition of cell proliferation
    • C07K2317/732—Antibody-dependent cellular cytotoxicity [ADCC]

Definitions

  • the present invention relates to humanized or human chimeric monoclonal antibodies which are produced in selected cell lines, said antibodies having a high affinity for the CD 16 receptor of effector cells of the unitary iiu system but also the property of inducing the secretion of cytokines and of interleukins, which can modulate the cytotoxic activity of effector cells.
  • cytokines are responsible for activating or inhibiting certain components of the immune system as appropriate. For example, it may turn out that the same antibody directed against a given antigen is completely ineffective when it is produced in mouse myeloma lines, whereas it is very effective when it is produced in d 'other cell lines.
  • the two characteristics mentioned above complement each other. Indeed, the production of cytokines induced by the antibodies selected by the method of the invention could enhance the cytotoxic activity of the antibodies. The mechanism of action of such activation is probably due to an autocrine regulation of effector cells. It can be postulated that the antibodies bind to CD 16 causing cytotoxic activity but also induce the production of IFN gamma which in the end can lead to further increase the cytotoxic activity.
  • the invention therefore provides antibodies which have an activity up to 100 times greater than the antibodies available in therapy.
  • the invention provides an anti-HLD-DR and an anti-CD20 significantly more effective than their respective counterpart such as Remitogen® and Rutixan®.
  • the present invention marks a major turning point in the development of antibodies for clinical purposes by providing a new generation whose effective doses to obtain 50% of activity are much lower than those of the antibodies currently used.
  • the invention relates to a chimeric, humanized or human monoclonal antibody produced in a cell line selected for its glycosylation properties of the Fc fragment of an antibody, or whose glycan structure has been modified ex vivo, said antibody having a ADCC level Fc ⁇ RIII (CD 16) greater than 60%, 70%, 80% or preferably greater than 90% compared to the same antibody produced in a CHO line or to a commercially available homologous antibody, characterized in that it has an ability to induce a production rate at least one cytokine by an immune system effector cell expressing the CD 16 receptor greater than 60%, 100% or preferably greater than 200% compared to the same antibody produced in a CHO line or to a commercially available homologous antibody .
  • CD 16 ADCC level Fc ⁇ RIII
  • this antibody has an ADCC level greater than 100% at a concentration of 10 ng / ml compared to the same antibody produced in a CHO line or to a homologous antibody commercially available and a production rate of at least one cytokine by an immune system effector cell, in particular those expressing the CD 16 receptor greater than 1000% at a concentration of Angi / ml compared to the same antibody produced in a CHO line or to a commercially available homologous antibody.
  • Said released cytokines are interleukins, interferons and tissue necrosis factors (TNF).
  • the antibody is selected for its ability to induce the secretion of at least one cytokine chosen from IL-1, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL-6, IL-7 , IL-8, IL-9, IL-10, ... TNFa, TGF ⁇ , IP10 and IFN ⁇ by effector cells of the immune system, in particular those expressing the CD 16 receptor.
  • cytokine chosen from IL-1, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL-6, IL-7 , IL-8, IL-9, IL-10, ... TNFa, TGF ⁇ , IP10 and IFN ⁇ by effector cells of the immune system, in particular those expressing the CD 16 receptor.
  • the antibody selected has the capacity to induce the secretion of IFN ⁇ by the effector cells of the immune system expressing the CD 16 receptor.
  • the level of LFN ⁇ secreted reflects the quality of the antibody fixed by the CD 16 receptor. as for its integrity (Fc function) and its capacity (antigenic site) for binding to the antigen.
  • the secretion of IFN ⁇ contributes to reinforcing the cytotoxic activity of the effector cells.
  • Effector cells can express endogenous CD 16 or be transformed.
  • the term transformed cell means a cell genetically modified so as to express Fc receptors, in particular the CD 16 receptor.
  • the antibody of the invention is capable of inducing the secretion of at least one cytokine by a leukocyte cell, in particular of the family of NK (narural killer) or by cells of the monocyte group -macrophages.
  • a Jurkat line transfected with an expression vector coding for the CD 16 receptor as effector cell is used for the selection of the antibodies. This line is particularly advantageous because it is immortalized, that is to say that it develops indefinitely in culture media and that it makes it possible to obtain reproducible results by its stability of expression of CD 16.
  • the antibody can be selected after being purified and / or modified ex vivo by modification of the glycan structure of the Fc fragment.
  • Selection can be done on antibodies produced by cells commonly used for the production of therapeutic antibodies, such as rat myeloma lines, in particular YB2 / 0 and its derivatives, human lymphoblastoid cells, insect cells and murine myeloma cells. Selection can also be applied to the evaluation of antibodies produced by transgenic plants or transgenic mammals. To this end, the production in CHO serves as a reference (CHO being used for the production of drug antibodies) to compare and select the production systems leading to the antibodies according to the invention. Another alternative consists in making the comparison with the commercially available antibodies, in particular the antibodies under development, the antibodies having obtained a MA or even antibodies whose clinical trials have been stopped and which have proved ineffective and / or producing undesirable side effects at the doses administered. Indeed, as indicated above, the modified antibodies of the invention are up to 100 times more effective in activating ADCC of effector cells of the immune system, which implies lower administration doses than those practiced by the antibodies mentioned above.
  • the antibody of the invention can be produced in cell lines of the rat myeloma type, in particular YB 2/0. It can be directed against a normal non-ubiquitous antigen (example, the antibody is specific for anti-Rhesus D of the human red blood cell), or an antigen of a pathological cell or a pathogenic organism for humans, in particular against a cancer cell antigen. In a preferred aspect, the antibody is an anti-HLA-DR.
  • This antibody has an ADCC level higher than 100% at a concentration of 10 ng / ml or less and a production rate of IL-2 by an effector cell of the immune system expressing the CD 16 receptor higher than 1000% at a concentration of 10 ng / ml compared to the same antibody expressed in the CHO line, expression line of Remitogen®.
  • the anti-HLA-DR of the invention can be produced in a line of rat myeloma, in particular YB2 / 0.
  • the antibody of the invention is an anti-CD20.
  • This antibody has an ADCC level greater than 100% at a concentration of 10 ng / ml or less and a production rate of IL-2 by the Jurkat CD 16 cell greater than 1000% at a concentration ofng / ml compared to Rituxan®.
  • the anti-CD20 of the invention can be produced in a line of rat myeloma, in particular YB2 / 0.
  • antibodies can be selected from anti Ep-CAM, anti-KIR3DL2, anti-NEGFR, anti HER1, anti HER2, anti GD, anti GD2, anti GD3, anti CD-23, anti-CD30, anti-CD33, anti-CD38, anti-CD44, anti CD52, anti CA125 and anti ProteinC; of the specific anti-idiotypes of inhibitors, for example of clotting factors including FVIII and FIX, anti-virals: HBN, HIV, HCV and RSV.
  • the invention relates to the use of an antibody described above, for the manufacture of a medicament intended for the treatment of cancers, for example anti-NEGFR and infections by pathogenic agents, by example anti-HIN.
  • the invention relates to the use of an Anti-HLA-DR or anti-CD20 antibody described above for the manufacture of a medicament intended for the treatment of cancers of MHC class II positive cells, in particular lymphomas of B cells, acute B cell leukemias, Burkitt's lymphoma, Hodgkin's lymphoma, myeloid leukemias, T-cell lymphomas and leukemias, non-Hodgkin's lymphomas and chronic myeloid leukemias.
  • lymphomas of B cells acute B cell leukemias, Burkitt's lymphoma, Hodgkin's lymphoma, myeloid leukemias, T-cell lymphomas and leukemias, non-Hodgkin's lymphomas and chronic myeloid leukemias.
  • the antibody can firstly be selected for its affinity for the CD 16 receptor and then tested and selected as described above for its properties to induce the production of a cytokine, in particular the 'IL-2, by Jurkat CD 16 cells or IF ⁇ by blood effector cells expressing CD16.
  • a cytokine in particular the 'IL-2
  • this antibody can be an antibody listed below produced in any cell line and selected by the tests mentioned above. These are second generation antibodies that are more effective than their currently available counterparts (see Table 1 below). Table 1
  • Epratuzumab Immumedics / anti CD22 cancer Epratuzumab Immumedics / anti CD22 cancer:
  • IDEC-114 IDEC inhibition non-Hodgkin lymphoma ProteinC
  • the invention also relates to the use of an antibody described above for the manufacture of a medicament intended to induce the expression of TNF, IFN ⁇ , IP10, ILS and IL-6 by natural effector cells of the immune system , said medicament being useful in particular for the treatment of cancer and infections.
  • Figure 1 ADCC lysis of Raji cells, induced by anti-HLA-DR antibodies expressed in CHO (triangle) or YB2 / 0 (square).
  • Figure 2 IL2 secretion by Jurkat CD 16 cells, induced by anti-HLA-DR antibodies expressed in CHO (triangle) or YB2 / 0 (square).
  • Figure 3 Correlation between the percentage of ADCC supported by NK cells and the secretion of IL2 by Jurkat CD 16 cells.
  • Figure 7 Secretion of cytokines by NK induced by anti-Rhesus antibodies
  • Figure 8 Secretion of TNF alpha by NK cells, induced by anti-CD20 and anti-HLA-DR antibodies expressed in CH and YB2 / 0 (324 03 082)
  • Figure 9 Secretion of IFN gamma by NK cells, induced by anti-CD20 and anti-HLA-DR antibodies expressed in CH and YB2 / 0 (324 03 082)
  • the chimeric anti-HLA DR antibody was expressed in the YB2 / 0 cell and in CHO.
  • the chimeric anti-HLA-DR antibodies are capable of inducing cytotoxic activity of the RAJI cell, expressing HLA-DR antigens on its surface.
  • the same sequence coding for an IgG1 specific for the HLA-DR antigen is transfected into CHO and YB2 / 0.
  • Antibodies are incubated with RAJI cells (targets) and human Narural Killer (NK) cells.
  • the cytotoxic activity of the antibodies on the Raji cell (ADCC) was evaluated after 16 h of incubation (see FIG. 1).
  • the two anti-HLA-DR antibodies expressed by YB2 / 0 (square) or CHO (triangle) induce lysis of the Raji cell by ADCC.
  • the antibody expressed in YB2 / 0 proves to be more cytotoxic than CHO, especially under conditions of small quantities of effectors and low concentrations of antibodies.
  • the same sequence coding for an IgG1 specific for the HLA-DR antigen is transfected into CHO and YB2 / 0.
  • the antibodies are incubated with RAJI cells (target) and Jurkat CD 16 cells (effectors) carrying the amino acid phenylalanine (F) in position 158.
  • the amount of cytokines (IL2) secreted by Jurkat CD 16 is measured by ELISA ( see figure 2).
  • Anti-HLA DR antibodies induce a strong secretion of IL2 (cytokine). Comparatively, the secretion and therefore the degree of activation is higher when the antibody is expressed in YB2 / 0 (square) compared to CHO (triangle) at all the concentrations studied.
  • Example 2 In vitro correlation between ADCC and release of IL-2 from Jurkat CD16.
  • Mab DF5-EBV was produced by human B lymphocytes obtained from a D-negative immune donor and immortalized by transformation with EBV. This anticoprs has been used as a negative control since in a clinical trial it has been shown to be unable to remove rhesus positive red blood cells from the circulation.
  • the monoclonal antibody (Mab) DF5-YB2 / 0 was obtained by expressing the primary sequence of DF5-EBV in the line YB2 / 0.
  • the monoclonal antibody R297 and other recombinant antibodies were also expressed in YB2 / 0.
  • These antibodies are tested in vitro for their ability to induce lysis of red blood cells treated with papain using mononuclear cells (PBL) as an effector. All the tests were carried out in the presence of human immunoglobulins (IVIg) so as to reconstitute the physiological conditions.
  • IVIg is thought to bind with high affinity to FcgammaRI (CD64). Both Mab DF5-YB2 / 0 and R297 induce lysis of red blood cells at a level comparable to that of WinRho polyclonal antibodies. On the other hand, the Mab DF5-EBV is completely ineffective.
  • the Mabs were incubated overnight with Rhesus positive red cells and Jurkat CD 16 cells.
  • the release of IL-2 in the supernatant was evaluated by
  • Example 4 Activation of macrophage monocots and production of TNF and IL-IRa
  • IL-IRa is a cytokine which competes with 1TL1 at its receptor and thus exerts an anti-inflammatory effect.
  • EXAMPLE 5 Activation of Dendritic Cells and Production of IL10 Applications: induction of specific tolerance to certain antigens.
  • ILIO is a molecule that inhibits the activation of different effector cells and the production of cytokines.
  • Example 6 Induction of the secretion of cytokines by different effector cells.
  • cytokine synthesis is dependent on the presence of the target.
  • R297 and of the anti-Rhesus D polyclonal antibody in terms of cytokines secreted by the effector cells.
  • AD1 very often does not induce secretion of cytokines.
  • the anti-Rh D R297 monoclonal antibody and the anti-Rh D polyclonal WinRho induce significant secretion of IL8 in the presence of mononuclear cells. This secretion is dependent on the concentration of antibodies and the presence of the antigenic target.
  • the AD1 antibody is much less effective in inducing the production of IL8 by mononuclear cells ( Figure 4).
  • the anti-Rh D R297 monoclonal antibody and the anti-Rh D polyclonal WinRho induce a significant secretion of TNF alpha, a secretion of IL6, IFN gamma, IP10, TNF alpha and TGF Beta which is much better than that induced by AD1 by mononuclear cells.
  • This secretion increases with the highest concentration of antibodies for 1TL6, IFN gamma, IP10, but decreases for TNF alpha and TGF Beta ( Figure 5).
  • Example 7 Optimized chimeric anti-CD 20 and anti-HLA DR antibodies produced in YB2 / 0
  • Anti-CD20 the chimeric anti-CD20 antibody transfected in YB2 / 0 is compared to a commercial anti-CD20 antibody produced in CHO (Rituxan).
  • Anti-HLA DR the same sequence coding for the chimeric anti-HLA DR anticoips is transfected into CHO (Bl 1) or YB2 / 0 (4B7).
  • Target cells Raji cells expressing on their surface the CD20 antigen and HLA-DR Effector cells: human NK cells purified by negative selection from human blood bags.
  • TNF alpha The results are expressed in pg / ml of TNF alpha assayed in the supernatants. The abscissa shows the different concentrations of antibodies added to the reaction mixture ( Figure 8).
  • the chimeric anti-CD 20 and anti-HLA DR antibodies produced in YB2 / 0 induce higher levels of TNF in the presence of their target (Raji) compared to the same antibodies produced in CHO.
  • the amount of TNF alpha is dose dependent on the concentration of antibody added. At 10 ng / ml of antibody, 5 times more TNF alpha is induced with the antibodies produced in YB2 / 0 compared to the antibodies produced in CHO.
  • IFN gamma The results are expressed in pg / ml of IFN gamma assayed in the supernatants. The abscissa shows the different concentrations of antibodies added to the reaction mixture (FIG. 9).
  • the chimeric anti-CD 20 and anti-HLA DR antibodies produced in YB2 / 0 induce higher levels of gamma IFN in the presence of their target (Raji) compared to the same antibodies produced in CHO.
  • the amount of IFN gamma is dose dependent on the concentration of antibody added. At all concentrations used (0 to 200 ng / ml) the anti-HLA DR antibody produced in CHO does not induce secretion of IFN gamma, while 40 ng / ml of the antibody produced in YB2 / 0 induces approximately 100 ⁇ g / ml of IFN gamma.
  • the anti-CD20 antibody less than 10 ng / ml of the antibody produced in YB2 / 0 and 200 ng / ml of the antibody produced in CHO is required to induce 300 ⁇ g / ml of IFN gamma (FIG. 9).

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Abstract

La présente invention concerne des anticorps monoclonaux chimériques, humanisés ou humains qui sont produits dans des lignées cellulaires sélectionnées, lesdits anticorps présentant une forte affinité pour le récepteur CD 16 des cellules effectrices du système immunitaire et ainsi capables d'induire une forte ADCC, mais également la propriété d'induire la sécrétion de cytokines et d'interleukines, en particulier l' IFNϜ, qui peut renforcer l'activité ADCC des cellules effectrices et ainsi s'appliquer au traitement des cancers et des infections par des agents pathogènes.

Description

Anticorps pour ADCC et induisant la production de cytokines
La présente invention concerne des anticorps monoclonaux chimériques humanisés ou humains qui sont produits dans des lignées cellulaires sélectionnées, lesdits anticorps présentant une forte affinité pour le récepteur CD 16 des cellules effectrices du système iiu unitaire mais également la propriété d'induire la sécrétion de cytokines et d'interleukines, qui peuvent moduler l'activité cytotoxique des cellules effectrices.
L'immunothérapie au moyen d'anticorps monoclonaux est en passe de devenir un des aspects les plus importants de la médecine. En revanche, les résultats obtenus lors d'essais cliniques apparaissent contrastés. En effet, il peut s'avérer que l'anticorps monoclonal ne soit pas suffisamment efficace. De nombreux essais cliniques sont arrêtés pour diverses causes telles que le manque d'efficacité et des effets secondaires incompatibles avec une utilisation en thérapie clinique. Ces deux aspects sont étroitement liés sachant que des anticorps peu actifs sont administrés à fortes doses pour compenser et obtenir une réponse thérapeutique. L'administration de forte dose induit non seulement des effets secondaires mais est économiquement peu viable.
Ces problèmes sont majeurs dans le développement industriel des anticorps monoclonaux, chimériques humanisés ou humains. A titre d'exemple, la société Protein Design Labs a suspendu les essais cliniques en phase I/II du Remitogen®, qui est un anticorps anti-HLA-DR pouvant être utilisé pour traiter les cancers de cellules MHC de classe II positives, notamment les leucémies des cellules B et T.
Aujourd'hui, la recherche est orientée sur le fragment Fcγ de l'immunoglobuline afin d'améliorer les propriétés fonctionnelles des anticorps. A terme, cela devrait permettre l'obtention d'anticorps qui interagissent et activent les récepteurs des cellules effectrices (monocytes macrophage, lymphocyte B, cellules NK et dendritiques). La fixation d'un anticorps sur son ligand peut induire une activation de certaines cellules effectrices via leurs récepteurs Fc, ce qui est l'objectif de la présente invention. Nous avons montré que certains anticorps non seulement supportaient des propriétés fonctionnelles, comme l'ADCC ou l'activation du complément, mais aussi induisaient la production de cytokines. Ces cytokines, produites au site d' activation des effecteurs, peuvent exercer différentes activités biologiques.
Ainsi, il apparaît nécessaire de tester les propriétés des anticorps candidats à induire la production de ces facteurs modulant la réponse immunitaire. En effet, on a trouvé que l'activation des récepteurs des cellules effectrices produit des réponses très différentes conduisant à la libération d'une ou plusieurs cytokines. Ces cytokines sont responsables de l'activation ou de l'inhibition de certains composants du système immunitaire selon le cas. Il peut s'avérer par exemple qu'un même anticorps dirigé contre un antigène donné soit complètement inefficace lors qu'il est produit dans des lignées de myélome de souris, alors qu'il se montre très efficace lors qu'il est produit dans d'autres lignées cellulaires.
Par exemple, nous démontrons ici que la fixation d'un anticorps sur son ligand peut induire une activation de la cellule Jurkat transfectée CD 16 avec comme conséquence la sécrétion d'IL2. Une forte corrélation est observée entre la sécrétion d'IL2 par Jurkat CD 16 et l'activité ADCC médiée par le CD 16 des cellules effectrices.
Nous avions montré dans notre demande WO 01/77181 (LFB) l'importance de sélectionner des lignées cellulaires permettant de produire des anticorps présentant une forte activité ADCC du type FcγRIII (CD 16). Nous avions trouvé que la modification de la glycosylation du fragment constant des anticorps conduisait à améliorer l'activité ADCC dans des lignées de myélomes de rat telle que YB2/0. Les structures glycanniques étant de type biantennées, avec des chaînes courtes, une faible sialylation, des mannoses et GlcNAc du point d'attache terminaux non intercalaires, et une faible fucosylation. Or, dans le cadre de la présente invention, nous avons découvert que l'avantage de présenter une forte affinité pour le CD 16 peut encore être renforcé par des tests supplémentaires visant à choisir les anticorps qui induisent la production de cytokines.
Les deux caractéristiques précitées se complémentent. En effet, la production de cytokines induites par les anticorps sélectionnés par le procédé de l'invention pourrait renforcer activité cytotoxique des anticorps. Le mécanisme d'action d'une telle activation tient probablement à une régulation positive autocrine des cellules effectrices. On peut postuler que les anticorps se lient au CD 16 provoquant une activité cytotoxique mais également induisent la production d'IFN gamma qui au final peut conduire à augmenter encore davantage l'activité cytotoxique.
L'invention propose donc des anticorps qui présentent une activité jusqu'à 100 fois supérieure aux anticorps disponibles en thérapie. En particulier, l'invention apporte un anti-HLD-DR et un anti-CD20 significativement plus efficaces que leur homologue respectif tel que le Remitogen® et le Rutixan®. La présente invention marque un tournant majeur dans le développement des anticorps à visée clinique en apportant une nouvelle génération dont les doses efficaces pour obtenir 50% d'activité sont bien inférieures à celles des anticorps actuellement utilisés.
Description
Ainsi, l'invention se rapporte à un anticorps monoclonal chimérique, humanisés ou humain produit dans une lignée cellulaire sélectionnée pour ses propriétés de glycosylation du fragment Fc d'un anticorps, ou dont la structure glycannique a été modifiée ex vivo, ledit anticorps présentant un taux ADCC de type FcγRIII (CD 16) supérieur à 60 %, 70%, 80 % ou de préférence supérieur à 90 % comparé au même anticorps produit dans une lignée CHO ou à un anticorps homologue disponible dans le commerce, caractérisé en ce qu'il présente une capacité à induire un taux de production d'au moins une cytokine par une cellule effectrice du système immunitaire exprimant le récepteur CD 16 supérieur à 60 %, 100 % ou de préférence supérieur à 200 % comparé au même anticorps produit dans une lignée CHO ou à un anticorps homologue disponible dans le commerce.
De préférence, cet anticorps présente un taux ADCC supérieure à 100 % à une concentration de lOng/ml comparé au même anticorps produit dans une lignée CHO ou à un anticorps homologue disponible dans le commerce et un taux de production d'au moins une cytokine par une cellule effectrice du système immunitaire, en particulier celles exprimant le récepteur CD 16 supérieur à 1000 % à une concentration delOng/ml comparé au même anticorps produit dans une lignée CHO ou à un anticorps homologue disponible dans le commerce.
Lesdites cytokines libérées sont des interleukines, des interférons et des facteurs de nécrose tissulaire (TNF).
Ainsi, l'anticorps est sélectionné pour sa capacité d'induire la sécrétion d'au moins une cytokine choisie parmi IL-1, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL-6, IL-7, IL-8, IL-9, IL-10,... TNFa, TGFβ, IP10 et IFNγ par les cellules effectrices du système immunitaire en particulier celles exprimant le récepteur CD 16.
De préférence, l'anticorps sélectionné a la capacité d'induire la sécrétion d' IFNγ par les cellules effectrices du système immunitaire exprimant le récepteur CD 16. Le taux d' LFNγ sécrété reflète la qualité de l'anticorps fixé par le récepteur CD 16 quant à son intégrité (fonction Fc) et à sa capacité (site antigénique) de liaison à l'antigène. En outre, la sécrétion d' IFNγ contribue à renforcer l'activité cytotoxique des cellules effectrices. Les cellules effectrices peuvent exprimer un CD 16 endogène ou être transformées. On entend par cellule transformée, une cellule modifiée génétiquement de sorte à exprimer des récepteur Fc, en particulier le récepteur CD 16.
Dans un mode de réalisation particulier, l'anticorps de l'invention est capable d'induire la sécrétion d'au moins une cytokine par une cellule leucocytaire, en particulier de la famille des NK (narural killer) ou par des cellules du groupe monocytes-macrophages. De préférence, on utilise pour la sélection des anticorps une lignée Jurkat transfectée avec un vecteur d'expression codant pour le récepteur CD 16 comme cellule effectrice. Cette lignée est particulièrement avantageuse car elle est immortalisée c'est à dire qu'elle se développe indéfiniment dans des milieux de cultures et qu'elle permet d'obtenir des résultats reproductibles de par sa stabilité d'expression du CD 16.
En outre, l'anticorps peut être sélectionné après avoir été purifié et/ou modifié ex vivo par modification de la structure glycannique du fragment Fc.
La sélection peut se faire sur des anticorps produits par des cellules couramment utilisées pour la production d'anticorps thérapeutiques, telles que les lignées de myélomes de rat, en particulier YB2/0 et ses dérivés, les cellules lymphoblastoïdes humaines, les cellules d'insectes et les cellules de myélomes murines. La sélection peut également être appliquée à l'évaluation d'anticorps produits par des plantes transgéniques ou de mammifères transgéniques. A cet effet, la production dans CHO sert de référence (CHO étant employée pour la production d'anticorps médicament) pour comparer et sélectionner les systèmes de production conduisant aux anticorps selon l'invention. Une autre alternative consiste à effectuer la comparaison avec les anticorps disponibles dans le commerce, en particulier les anticorps en cours de développement, les anticorps ayant obtenus une AMM ou encore des anticorps dont les essais cliniques ont été arrêtés et qui se sont révélés peu efficaces et/ou produisant des effets secondaires indésirables aux doses administrées. En effet, comme indiqué précédemment, les anticorps modifiés de l'invention sont jusqu'à 100 fois plus efficaces pour activer l'ADCC des cellules effectrices du système immunitaires, ce qui implique des doses d'administration inférieures à celles pratiquées par les anticorps mentionnés précédemment.
L'anticorps de l'invention peut être produit dans des lignées cellulaires du type myélome de rat, notamment YB 2/0. Il peut être dirigé contre un antigène normal non ubiquitaire (exemple, l'anticorps est de spécificité anti- Rhésus D du globule rouge humain), ou un antigène d'une cellule pathologique ou d'un organisme pathogène pour l'homme, en particulier contre un antigène d'une cellule cancéreuse. Par Dans un aspect préféré, l'anticorps est un anti-HLA-DR. Cet anticorps présente un taux ADCC supérieure à 100 % à une concentration de 10 ng/ml ou moins et un taux de production d'IL-2 par une cellule effectrice du système immunitaire exprimant le récepteur CD 16 supérieur jusqu'à 1000 % à une concentration de 10 ng/ml comparé au même anticorps exprimé dans la lignée CHO, lignée d'expression du Remitogen®.
L'anti-HLA-DR de l'invention peut être produit dans une lignée de myélome de rat, notamment YB2/0.
Dans un autre aspect préféré, l'anticorps de l'invention est un anti-CD20. Cet anticorps présente un taux ADCC supérieure à 100 % à une concentration de 10 ng/ml ou moins et un taux de production d'IL-2 par la cellule Jurkat CD 16 supérieur jusqu'à 1000 % à une concentration delOng/ml comparé au Rituxan®.
L'anti-CD20 de l'invention peut être produit dans une lignée de myélome de rat, notamment YB2/0.
D'autres anticorps peuvent être sélectionnés parmi les anti Ep-CAM, anti-KIR3DL2, anti-NEGFR, anti HER1, anti HER2, anti GD, anti GD2, anti GD3, anti CD-23, anti- CD30, anti-CD33, anti-CD38, anti-CD44, anti CD52, anti CA125 et anti ProteinC; des anti-idiotypes spécifiques d'inhibiteurs par exemple de facteurs de coagulation dont le FVIII et FIX, les anti-viraux : HBN, HIV, HCV et RSV.
Dans un autre aspect, l'invention concerne l'utilisation d'un anticorps décrit ci-dessus, pour la fabrication d'un médicament destiné au traitement des cancers, par exemple l'anti-NEGFR et des infections par des agents pathogènes, par exemple l'anti-HIN.
Plus particulièrement, l'invention vise l'utilisation d'un anticorps Anti-HLA-DR ou anti-CD20 décrit plus haut pour la fabrication d'un médicament destiné au traitement des cancers des cellules MHC de classe II positives, notamment les lymphomes de cellules B, les leucémies aiguës de cellules B, le lymphome de Burkitt, le lymphome de Hodgkin, les leucémies myéloïdes, les lymphomes et leucémies de cellules T, les lymphomes non hodgkinien et les leucémies myéloïdes chroniques.
Dans un aspect préféré de l'invention, l'anticorps peut dans un premier temps être sélectionné pour son affinité au récepteur CD 16 puis testé et sélectionné tel que décrit ci-dessus pour ses propriétés à induire la production d'une cytokine, notamment l'IL-2, par les cellules Jurkat CD 16 ou l'IFΝγ par les cellules effectrices sanguines exprimant le CD16.
De tels anticorps possédant cette double propriété d'induire l'ADCC via le CD 16 et d'induire la production de l'IL-2 conduisent à une stimulation très importante de l'activité cytotoxique des cellules effectrices. Par exemple, cet anticorps peut être un anticorps listé ci-dessous produit dans toute lignée cellulaire et sélectionné par les tests mentionnés ci-dessus. Il s'agit d'anticorps de seconde génération plus efficaces que leurs homologues disponibles actuellement (voir tableau 1 ci-après). Tableau 1
Nom et marque Société cible indication commerciale de l'anticorps
Edrecolomab Centocor anti Ep-CAM colorectal cancer PANOREX
Rituximab Idée anti CD20 B cell lymphoma RITUXAN Licensié à thrombocytopenia purpura Genentech/ Hoffman la roche
Trastuzumab Genentech anti HER2 ovarian cancer HERCEPTIN Licensié à Hoffman la roche/Immunogen
Palivizumab Medimmune RSV
SYNAGIS Licensié à Abott
Alemtuzumab BTG anti CD52 leukemia CAMPATH Licensié à Schering ibritumomab IDEC anti CD20 NHL tiuxetan Licensié à Schering ZENALLN Cetuximab Merck /BMS / anti HER1 cancers IMC-C225 Imclone
Bevacizumab Genentech/ anti VEGFR cancers
AVASTIN Hoffman la roche
Epratuzumab Immumedics/ anti CD22 cancers:
Amgen non hogkin lymphoma
Hu M195Mab Protein Design ND cancers , Labs MDX-210 Immuno-Designed ND cancers Molécules
BEC2 Imclone anti GD3 cancers Mitumomab
Oregovomab Altarex anti CA125 Ovarian cancer OVAREX
Ecromeximab Kyowa-Hakko anti GD malignant melanoma KW-2971
ABX-EGF Abgenix EGF cancers
MDX010 Medarex ND Cancers
XTL 002 XTL ND anti- viral : HCV biopharmaceuticals Hll SCFV viventia biotech ND cancers
4B5 viventia biotech anti GD2 Cancers
XTL 001 XTL ND anti- viral : HBV biopharmaceuticals MDX-070 MEDAREX Anti-PSMA Prostate cancer
TNX-901 TANOX anti CD-23
IDEC-114 IDEC inhibition non-Hodgkin lymphoma ProteinC
L'invention porte également sur l'utilisation d'un anticorps décrit ci-dessus pour la fabrication d'un médicament destiné à induire l'expression de TNF, IFNγ, IP10, ILS et IL-6 par les cellules effectrices naturelles du système immunitaire, ledit médicament étant utile notamment pour le traitement du cancer et des infections. Légendes et titres des figures :
Figure 1: Lyse ADCC des cellules Raji, induite par des anticorps anti-HLA-DR exprimés dans CHO (triangle) ou YB2/0 (carré).
Figure 2: Sécrétion d'IL2 par les cellules Jurkat CD 16, induite par des anticorps anti- HLA-DR exprimés dans CHO (triangle) ou YB2/0 (carré).
Figure 3: Corrélation entre le pourcentage d'ADCC supportée par les cellules NK et la sécrétion d'IL2 par les cellules Jurkat CD 16.
Figure 4: IL8 sécrétée par les CMN en présence ou absence de cible
Figure 5: Sécrétion de cytokines par les CMN induite par les anticorps anti-Rhésus (valeur sans cible déduite) Tox 324 03 062
Figure 6: Sécrétion de cytokines par les polynucléaires induite par les anticorps anti- Rhésus
Figure 7: Sécrétion de cytokines par les NK induite par les anticorps anti-Rhésus Figure 8: Sécrétion de TNF alpha par les cellules NK, induite par les anticorps anti- CD20 et anti-HLA-DR exprimés dans CH et YB2/0 (324 03 082)
Figure 9: Sécrétion d'IFN gamma par les cellules NK, induite par les anticorps anti- CD20 et anti-HLA-DR exprimés dans CH et YB2/0 (324 03 082)
Exemple 1 : Anti-HLA-DR
1.1 TEST ADCC CD16
L'anticorps anti-HLA DR chimérique a été exprimé dans la cellule YB2/0 et dans CHO. Les anticorps chimériques anti-HLA-DR sont capables d'induire une activité cytotoxique de la cellule RAJI, exprimant à sa surface des antigènes HLA-DR. Pour ce faire, la même séquence codant pour une IgGl spécifique de l'antigène HLA-DR est transfectée dans CHO et YB2/0. Les anticorps sont incubés avec les cellules RAJI (cibles) et les cellules Narural Killer (NK) humaines. L'activité cytotoxique des anticorps sur la cellule Raji (ADCC) a été évaluée après 16h d'incubation (voir figure 1). Les deux anticorps anti-HLA-DR exprimés par YB2/0 (carré) ou CHO (triangle) induisent une lyse de la cellule Raji par ADCC. L'anticorps exprimé dans YB2/0 s'avère plus cytotoxique que CHO surtout dans des conditions de faibles quantités d'effecteurs et de faibles concentrations d'anticorps.
1.2 TEST IL-2
La même séquence codant pour une IgGl spécifique de l'antigène HLA-DR est transfectée dans CHO et YB2/0. Les anticorps sont incubés avec les cellules RAJI (cible) et les cellules Jurkat CD 16 (effecteurs) portant l'acide aminé phénylalanine (F) en position 158. La quantité de cytokines (IL2) sécrétée par Jurkat CD 16 est mesurée par ELISA (voir figure 2).
Les anticorps anti-HLA DR induisent une forte sécrétion d'IL2 (cytokine). Comparativement, la sécrétion et donc le degré d'activation est supérieur lorsque l'anticorps est exprimé dans YB2/0 (carré) par rapport à CHO (triangle) à toutes les concentrations étudiées.
Exemple 2 : Corrélation in vitro entre ADCC et libération d'IL-2 de Jurkat CD16.
Pour cette étude, 3 anticorps monoclonaux (Mab) anti-D ont été comparés.
Le Mab DF5-EBV a été produit par des Lymphocytes B humains obtenus chez un donneur immunisé D-négatif et immortalisés par transformation avec l'EBV. Cet anticoprs a été utilisé comme contrôle négatif étant donné que lors d'un essai clinique, il a été montré incapable d'éliminer les globules rouges rhésus positifs de la circulation.
L'anticorps monoclonal (Mab) DF5-YB2/0 a été obtenu en exprimant la séquence primaire de DF5-EBV dans la lignée YB2/0. L'anticorps monoclonal R297 et d'autres anticorps recombinants ont également été exprimés dans YB2/0. Ces anticorps sont testés in vitro pour leur capacité à induire une lyse des globules rouges traités à la papaïne en utilisant des cellules mononucléées (PBL) comme effecteur. Tous les tests ont été effectués en présence d'immunoglobulines humaines (IVIg) de sorte à reconstituer les conditions physiologiques.
On pense que les IVIg se lient avec une haute affinité au FcgammaRI (CD64). Les deux Mab DF5-YB2/0 et R297 induisent une lyse des globules rouges à un niveau comparable à celui des anticorps polyclonaux WinRho. En revanche, le Mab DF5- EBV est complètement inefficace.
Dans une deuxième série d'expérience, des cellules NK purifiées et des globules rouges non traités ont été utilisés comme effecteur et cibles respectivement. Après 5 heures d'incubation, les Mabs antiD-R297 et DF5-YB2/0 se sont montrés capables de provoquer la lyse des globules rouges, alors que DF5-EBV reste inefficace.
Dans ces deux expériences, la lyse des globules rouges a été inhibée par le Mab 3G8 dirigé contre le FcgammaRIII (CD 16).
En résumé, ces résultats démontrent que l'ADCC provoquée par Mab R297 et Mab DF5-YB2/0 implique le FcgammaRIII exprimé à la surface des cellules NK.
Dans le cadre de l'invention, une troisième série d'expériences a été réalisé selon un test in vitro à l'aide de cellule Jurkat CD 16 pour évaluer l'efficacité d'anticorps anti-D.
Les Mab ont été incubés pendant une nuit avec des globules rouges Rhésus positif et des cellules Jurkat CD 16. La libération d'IL-2 dans le surnageant à été évaluée par
ELISA.
Une forte corrélation entre l'ADCC et l'activation des cellules Jurkat a été observée, ce qui implique que ce test peut être utilisé pour faire la discrimination des Mabs anti-D en fonction de leur réactivité envers FcgammaRIII ( CD 16). ι:
Les mêmes échantillons sont évalués en ADCC et dans le test Jurkat IL2. Les résultats sont exprimés en pourcentage de l'anticorps de référence "LFB-R297". La courbe de corrélation entre les 2 techniques a un coefficient r2=0.9658 (Figure 3).
En conclusion, ces données montrent l'importance des modifications post- traductionnelles de la partie Fc des anticorps pour leur capacité à induire une activité ADCC spécifique du FcgammaRIII. La libération de cytokines telles que 1TL-2 est corrélée avec l'ADCC.
Exemple 3 : activation de cellules NK et production d'IL2 et d'IFNγ
Modèle de mise au point : lignée cellulaire Jurkat transfectée avec le gène codant pour le récepteur CD 16. Applications : renforcement d'une réponse anti-tumorale. LTL2 produite par les cellules effectrices activées induit une activation des lymphocytes T et des cellules NK pouvant aller jusqu'à une stimulation de la prolifération cellulaire. L'IFNγ stimule l'activité des CTLs et peut renforcer l'activité des macrophages.
Exemple 4 : activation de monoc tes macrophages et production de TNF et d'IL- lRa
Applications : renforcement de la phagocytose et induction de propriétés antiinflammatoires. Le TNF produit par les cellules effectrices activées stimule la prolifération des macrophages et des lymphocytes infiltrant les tumeurs. L'IL-IRa est une cytokine qui entre en compétition avec 1TL1 au niveau de son récepteur et exerce ainsi un effet anti-inflammatoire.
Exemple 5 : activation de cellules dendritiques et production d'ILlO Applications : induction d'une tolérance spécifique à certains antigènes. L'ILIO est une molécule inhibitrice de l'activation de différentes cellules effectrices et de la production de cytokines.
Exemple 6 : Induction de la sécrétion de cytokines par différentes cellules effectrices.
Trois populations cellulaires ont été étudiées : les polynucléaires, les cellules mononuclées et les cellules NK. L'induction de la synthèse de cytokines est dépendante de la présence de la cible. Il y a peu de différences dans les profils du R297 et de l'anticorps polyclonal anti-Rhésus D, en terme de cytokines sécrétées par les cellules effectrices. AD1 est très souvent non inducteur de sécrétion de cytokines.
Résultats :
6.1 L'anticorps monoclonal anti-Rh D R297 et le polyclonal anti-Rh D WinRho induisent une sécrétion importante d'IL8 en présence de cellules mononucléées. Cette sécrétion est dépendante de la concentration d'anticorps et de la présence de la cible antigénique. L'anticorps AD1 est beaucoup moins efficace à induire la production d'IL8 par les cellules mononucléées (figure 4).
L'anticorps monoclonal anti-Rh D R297 et le polyclonal anti-Rh D WinRho induisent une sécrétion importante de TNF alpha, une sécrétion d'IL6, IFN gamma, IP10, TNF alpha et TGF Beta moins forte bien que supérieure à celles induites par AD1 par les cellules mononucléées. Cette sécrétion augmente avec la plus forte concentration d'anticorps pour 1TL6, IFN gamma, IP10, mais décroît pour le TNF alpha et le TGF Beta (figure 5).
6.2 L'anticorps monoclonal anti-Rh D R297 et le polyclonal anti-Rh D WinRho induisent une sécrétion très faible, mais supérieure à AD1, d'IL2, IFN gamma, IP10 et TNF par les polynucléaires. Cette sécrétion est dépendante de la concentration d'anticorps (figure 6).
6.3 L'anticorps monoclonal R297 et le polyclonal WinRho induisent une sécrétion importante d'IFN gamma, IP10 et TNF par les cellules NK. Cette sécrétion est dépendante de la concentration d'anticorps (figure 7).
Exemple 7 : Anticorps anti-CD 20 et anti-HLA DR chimériques optimisés produits dans YB2/0
Introduction
Nos premiers résultats ont montré que les anticorps anti-D produits dans YB2/0 ainsi que les anticorps polyclonaux utilisés en clinique induisaient une forte activité ADCC ainsi que la production de cytokines, en particulier de TNF alpha et d'interféron gamma (IFN gamma) à partir de cellules NK purifiées ou de cellules mononuclées. Par contre d'autres anticorps anti-D, produits dans d'autres lignées cellulaires sont négatifs en ADCC et se sont révélés incapables d'induire cette sécrétion de cytokines.
Les résultats complémentaires ci dessous montrent que ce mécanisme n'est pas exclusif aux anti-D en présence d'hématies Rhésus positif mais s'applique également aux anticorps anti-CD20 et anti-HLA DR exprimés dans YB2/0. L'expression dans CHO confère à l'anticorps des propriétés activatrices moins importantes. Ceci est en corrélation avec les résultats obtenus en ADCC.
Matériel Anticorps.
Anti-CD20 : l'anticorps chimérique anti-CD20 transfecté dans YB2/0 est comparé à un anticorps commercial anti-CD20 produit dans CHO (Rituxan).
Anti-HLA DR : la même séquence codant pour l'anticoips chimérique anti-HLA DR est transfectée dans CHO (Bl 1) ou YB2/0 (4B7). Cellules cibles : cellules Raji exprimant à leur surface l'antigène CD20 et HLA-DR Cellule effectrices : cellules NK humaines purifiées par sélection négative à partir de poches de sang humain.
Méthode
Différentes concentrations d'anticorps anti-CD20 ou anti-HLA DR sont incubées avec les cellules Raji et les cellules NK. Après 16 heures d'incubation, les cellules sont centrifugées. Les surnageants sont dosés en TNF alpha et IFN gamma.
Résultats :
1) TNF alpha : Les résultats sont exprimés en pg/ml de TNF alpha dosé dans les surnageants. En abscisse figure les différentes concentrations d'anticorps ajoutées dans le mélange réactionnel (figure 8).
Les anticorps anti-CD 20 et anti-HLA DR chimériques produits dans YB2/0 induisent des taux plus importants de TNF en présence de leur cible (Raji) par rapport aux mêmes anticorps produits dans CHO. La quantité de TNF alpha est bien dose dépendante de la concentration d'anticorps ajouté. A lOng/ml d'anticorps on induit 5 fois plus de TNF alpha avec les anticorps produits dans YB2/0 par rapport aux anticorps produits dans CHO.
2) IFN gamma: Les résultats sont exprimés en pg/ml de IFN gamma dosé dans les surnageants. En abscisse figure les différentes concentrations d'anticorps ajoutées dans ,1e mélange réactionnel (figure 9).
Les anticorps anti-CD 20 et anti-HLA DR chimériques produits dans YB2/0 induisent des taux plus importants de IFN gamma en présence de leur cible (Raji) par rapport aux mêmes anticorps produits dans CHO. La quantité de IFN gamma est bien dose dépendante de la concentration d'anticorps ajouté. A toutes les concentrations utilisées (0 à 200ng/ml) l'anticorps anti-HLA DR produit dans CHO n'induit pas de sécrétion d'IFN gamma, alors que 40ng/ml de l'anticorps produit dans YB2/0 induit environ lOOOpg/ml d'IFN gamma.
Pour l'anticorps anti-CD20, il faut moins de lOng/ml de l'anticorps produit dans YB2/0 et 200ng/ml de l'anticorps produit dans CHO pour induire 300pg/ml de IFN gamma (figure 9).

Claims

REVENDICATIONS
1. Anticoφs monoclonal chimérique, humanisé ou humain produit dans une lignée cellulaire sélectionnée pour ses propriétés à glycosyler de façon particulières le fragment Fc d'un anticoφs, ou dont la structure glycannique a été modifiée ex vivo, ledit anticoφs présentant un taux ADCC de type FcγRIII (CD 16) supérieur à 60 %, 70%, 80 % ou de préférence supérieur à 90 % comparé au même anticoφs produit dans une lignée CHO ou à un anticoφs homologue disponible dans le commerce, et caractérisé en ce qu'il présente une capacité à induire un taux de production d'au moins une cytokine par la cellule Jurkat CD 16 ou une cellule effectrice du système immunitaire exprimant le récepteur CD 16 supérieur à 60 %, 100 % ou de préférence supérieur à 200 % comparé au même anticoφs produit dans une lignée CHO ou à un anticoφs homologue disponible dans le commerce.
2. Anticoφs selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il présente un taux ADCC supérieure à 100 % à une concentration lOng/ml ou moins, comparé au même anticoφs produit dans une lignée CHO ou à un anticoφs homologue disponible dans le commerce et un taux de production d'au moins une cytokine par une cellule effectrice du système immunitaire exprimant le récepteur CD 16 supérieur à 1000 % à une concentration de lOng/ml ou moins, comparé au même anticoφs produit dans une lignée CHO ou à un anticoφs homologue disponible dans le commerce.
3. Anticoφs selon l'une des revendications 1 à 2, caractérisé en ce que les cytokines libérées sont des interleukines.
4. Anticoφs selon l'une des revendications 1 à 2, caractérisé en ce que les cytokines libérées sont des interférons.
5. Anticoφs selon l'une des revendications 1 à 2, caractérisé en ce que les cytokines libérées sont des facteurs de nécrose tissulaire (TNF).
6. Anticoφs selon l'une des revendications 1 à 2, caractérisé en ce que l'anticoφs sélectionné a la capacité d'induire la sécrétion d'au moins une cytokine choisie parmi
IL-1, IL-2, IL-3, IL-4, IL-5, IL-6, IL8, TNFa , TGFβ, IP10 et IFNγ par les cellules effectrices exprimant le récepteur CD 16.
7. Anticoφs selon la revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que ce que l'anticoφs sélectionné a la capacité d'induire la sécrétion d'IL-2 par les cellules effectrices du système immunitaire exprimant le récepteur CD 16.
8. Anticoφs selon la revendication 1, 2 ou 7, caractérisé en ce que la cellule effectrice est une cellule Jurkat exprimant le récepteur CD 16 ou par une cellule leucocytaire, en particulier de la famille des NK (natural killer) ou par des cellules du groupe monocytes-macrophages.
9. Anticoφs selon l'une des revendications 1 à 8, caractérisé en ce qu'il est produit dans lignée cellulaire du type myélome de rat, notamment YB 2/0.
10. Anticoφs selon l'une des revendications 1 à 9, caractérisé en ce qu'il est dirigé contre un antigène d'une cellule pathologique ou d'un organisme pathogène pour l'homme, en particulier contre un antigène d'une cellule cancéreuse.
11. Anticoφs selon la revendication 10, caractérisé en ce qu'il est de spécificité anti- Rhésus D du globule rouge humain.
12. Anticoφs selon la revendication 11, caractérisé en ce qu'il est un anti-HLA-DR.
13. Anticoφs selon la revendication 12, caractérisé en ce qu'il présente un taux ADCC supérieur à 100 % à une concentration de 10 ng/ml ou moins et un taux de production d'IL-2 par une cellule effectrice du système immunitaire exprimant le récepteur CD 16 supérieur jusqu'à 1000 % à une concentration de 10 ng/ml ou moins comparé au même anticoφs exprimé dans la lignée CHO, lignée d'expression du Remitogen®.
14. Anticoφs selon la revendication 12, caractérisé en ce qu'il est produit dans une lignée de myélome de rat, notamment YB2/0.
15. Anticoφs selon la revendication 10, caractérisé en ce qu'il est un anti-CD20.
16. Anticoφs selon la revendication 15, caractérisé en ce qu'il présente un taux ADCC supérieur à 100 % à une concentration de 10 ng/ml ou moins et un taux de production d'IL-2 par une cellule effectrice du système immunitaire exprimant le récepteur CD 16 supérieur jusqu'à 1000 % à une concentration de 10 ng/ml ou moins comparé au Rituxan®.
17. Anticoφs selon la revendication 15, caractérisé en ce qu'il est produit dans une lignée de myélome de rat, notamment YB2/0.
18. Anticoφs selon la revendication 10, caractérisé en ce qu'il est sélectionné parmi les anti Ep-CAM, anti-KIR3DL2, anti-VEGFR, anti HERl, anti HER2, anti GD, anti GD2, anti GD3, anti CD-23, anti-CD30, anti-CD33, anti-CD38, anti-CD44, anti CD52, anti CA125 et anti ProteinC; anti Ep-CAM, anti HER2, anti CD52, anti HERl, anti GD3, anti CA125, anti GD, anti GD2, anti CD-23 et anti ProteinC; les anti-viraux: HBV, HCV, HIV et RSV, des anti-idiotypes spécifiques d'inhibiteurs par exemple de facteurs de coagulation dont le F VIII et FIX..
19. Utilisation d'un anticoφs selon l'une des revendications 1 à 18 pour la fabrication d'un médicament destiné au traitement des cancers et des infections par des agents pathogènes.
20. Utilisation d'un anticoφs selon l'une des revendications 12 à 14 et 15 à 17 pour la fabrication d'un médicament destiné au traitement des cancers des cellules MHC de classe II positives, notamment les lymphomes de cellules B, les leucémies aiguës de cellules B, le lymphome de Burkitt, le lymphome de Hodgkin, les leucémies myéloïdes, les lymphomes et leucémies de cellules T, les lymphomes non hodgkinien et les leucémies myéloïdes chroniques.
21. Utilisation d'un anticoφs selon l'une des revendications 12 à l4 et l5 à l7 pour la fabrication d'un médicament destiné à induire l'expression de TNF, IFNγ, IP10 et IL-6 par les cellules effectrices naturelles du système immunitaire, ledit médicament étant utile notamment pour le traitement du cancer et des infections.
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