UA62746A - Associated inactivated emulsion vaccine against newcastle disease, infectious bronchitis of chickens and syndrome of decreasing egg production-76 - Google Patents

Associated inactivated emulsion vaccine against newcastle disease, infectious bronchitis of chickens and syndrome of decreasing egg production-76 Download PDF

Info

Publication number
UA62746A
UA62746A UA2003054367A UA2003054367A UA62746A UA 62746 A UA62746 A UA 62746A UA 2003054367 A UA2003054367 A UA 2003054367A UA 2003054367 A UA2003054367 A UA 2003054367A UA 62746 A UA62746 A UA 62746A
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
chickens
inactivated
syndrome
newcastle disease
infectious bronchitis
Prior art date
Application number
UA2003054367A
Other languages
Ukrainian (uk)
Other versions
UA62746C2 (en
Inventor
Inna Yuriivna Bezrukava
Liudmyla Ivanivna Nalyvaiko
Tetiana Volodymyrivna Nedilko
Oleksandr Anatoliiovych Shomin
Original Assignee
Poultry Keeping Inst Of Academ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Poultry Keeping Inst Of Academ filed Critical Poultry Keeping Inst Of Academ
Priority to UA2003054367A priority Critical patent/UA62746C2/en
Publication of UA62746A publication Critical patent/UA62746A/en
Publication of UA62746C2 publication Critical patent/UA62746C2/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

The associated inactivated emulsion vaccine against Newcastle disease (ND), infectious bronchitis of chickens (IBC) and syndrome of decreasing egg production-76 (SDEP-76) comprises the inactivated ND, IBC and SDEP-76 viruses, namely inactivated ND virus strain La-Sota, inactivated IBC virus strain H-52, and inactivated SDEP-76 virus strain L-497 in the mixture with adjuvant.

Description

Опис винаходуDescription of the invention

Запропонований винахід відноситься до ветеринарної вірусології та біотехнології і може бути застосований 2 проти інфекційних хвороб птиці: інфекційного бронхіту курей (ІБК), хвороби Ньюкасла (ХН), синдрому зниження несучості (СЗН-76) курей.The proposed invention relates to veterinary virology and biotechnology and can be applied 2 against infectious diseases of poultry: infectious bronchitis of chickens (IBC), Newcastle disease (CN), reduced laying syndrome (SZN-76) of chickens.

Вірусні хвороби птиці негативно впливають на продуктивність несучок.Viral diseases of poultry negatively affect the productivity of laying hens.

Метою винаходу є досягнення високої імуногенності та нешкідливості вакцини при її застосуванні.The purpose of the invention is to achieve high immunogenicity and harmlessness of the vaccine when it is used.

Емульсинвакцина асоційована інактивована проти ХН, ІБК та СЗН-76 розроблялась на підставі вивчення 70 ефективності застосування моновакцин.Associated inactivated emulsion vaccine against CHN, IBK and SZN-76 was developed based on the study of 70 effectiveness of monovaccines.

Існують інактивовані вакцини "Вировак ИБК" (ВНИВИП, Россия 000 "ВНИВИП-препарать", 2002г., г.Санкт-Петербург) проти ІБК, вакцина проти хвороби Ньюкасла (патент России Мо2159129, кл. Аб1КЗ39/00 от 20.11.2000), інактивована вакцина проти СЗН-76 курей (5) патент Мо1809836, С12М7/00, 16.08.89). Ці вакцини є моновакцинами. Комплексні інактивовані вакцини виявляють більш високу імуногенність у порівнянні з 72 Моновакцинами.There are inactivated vaccines "Virovak IBK" (VNIVIP, Russia 000 "VNIVIP-preparat", 2002, St. Petersburg) against IBK, a vaccine against Newcastle disease (Russian patent Mo2159129, class Ab1KZ39/00 dated 20.11.2000), inactivated vaccine against SZN-76 of chickens (5) patent Mo1809836, С12М7/00, 16.08.89). These vaccines are monovaccines. Complex inactivated vaccines show higher immunogenicity compared to 72 Monovaccines.

Існує вакцина інактивована ВІМЕМУМАХІОКОР (каталог КНОМЕ МЕКІБЄОХ, июнь 1990, Франция, препарать!There is an inactivated vaccine VIMEMUMACHIOKOR (KNOME MEKIBEOH catalog, June 1990, France, drug!

Рон-Мерье, гамма препаратов для птиц) проти ХН, ІБК, СЗН-76. Вакцина містить: - вірус інфекційного бронхіту, штам Мазгз 41, інактивований, з мінімальним титром перед інактивацією 106-7Е|ЮБО, 720 - вірус ХН, Техасьський штам, інактивований, з мінімальним титром перед інактивацією 108ЕІО5О, - вірус СЗН-76, 127 штам, інактивований, з мінімальним титром перед інактивацією 105ССІО50 та масляний ад'ювант дз 0,Змл. - ця вакцина може бути прототипом.Ron-Merieux, a range of preparations for birds) against HN, IBK, SZN-76. The vaccine contains: - Infectious bronchitis virus, strain Mazgz 41, inactivated, with a minimum titer before inactivation of 106-7E|YUBO, 720 - HN virus, Texas strain, inactivated, with a minimum titer before inactivation of 108EIO5O, - SZN-76 virus, strain 127 , inactivated, with a minimum titer before inactivation of 105SSIO50 and oil adjuvant dz 0.Zml. - this vaccine may be a prototype.

Недоліком вакцини є те, що вона імпортна та містить штами не вітчизняні.The disadvantage of the vaccine is that it is imported and contains non-domestic strains.

В основу винаходу поставлено задачу: розробити емульсин-вакцину асоційовану інактивовану проти ХН, ІБК та СЗН-76, що містить віруси інактивовані зі штамів ХН, ІБК та СЗН-76 шляхом використання інактивованого « вірусу Ньюкаслської хвороби (штам "Ла-Сота", одержаний із Державного науково-контрольного інституту біотехнології і штамів мікроорганізмів, м.Київ), інфекційного бронхіту курей (штам "Н-52", одержаний ізThe invention is based on the following task: to develop an inactivated emulsin-vaccine against ХН, IBK and SZN-76, containing viruses inactivated from strains of ХН, IBK and SЗН-76 by using the inactivated "Newcastle disease virus" ("La Sota" strain, obtained from the State Scientific Control Institute of Biotechnology and Strains of Microorganisms, Kyiv), infectious bronchitis of chickens (strain "H-52", obtained from

Всеросійського науково-дослідного інституту контролю, стандартизації і сертифікації ветеринарних препаратів «о зо (м.Москва). Вірус синдрому зниження несучості - 76 (штам "І -497") ізольований від клінічно хворих курей наAll-Russian Scientific and Research Institute of Control, Standardization and Certification of Veterinary Medicines "O.Z.O. (Moscow). The virus of the syndrome of reduced laying - 76 (strain "I -497") isolated from clinically sick chickens on

СЗ3Н-7б в одному з птахо-господарств України. У суміші з адювантом вони забезпечують розробку « емульсинвакцини асоційованої інактивованої проти Ньюкаслської хвороби, інфекційного бронхіту курей та ї- синдрому зниження несучості - 76.SZ3N-7b in one of the poultry farms of Ukraine. In a mixture with an adjuvant, they ensure the development of an "associated inactivated emulsion vaccine against Newcastle disease, infectious bronchitis of chickens, and the syndrome of reduced laying capacity - 76.

Аналіз рівня техніки щодо патентних та науково-технічних джерел інформації дозволив зробити висновок, що с рішення, яке заявляється, відповідає критеріям "новизна" та "винахідницький рівень". соAnalysis of the state of the art in relation to patent and scientific and technical sources of information made it possible to conclude that the proposed solution meets the criteria of "novelty" and "inventive level". co

Вакцина виготовляється з екстраембріональної рідини інфікованих ембріонів курей і качок у стадії їх розвитку і містить інактивовані віруси ХН (штам "Ла-Сота"), інфекційного бронхіту курей (штам "Н-52"), синдрому зниження несучості - 76 (штам "І-497" - заявка Мо2003010511, від 26 березня 2003 року. Інститут птахівництва УААН) у суміші з ад'ювантом "Монтанід ІЗА-70" «The vaccine is made from the extra-embryonic fluid of infected embryos of chickens and ducks in their developmental stage and contains inactivated viruses of HN (strain "La Sota"), infectious bronchitis of chickens (strain "H-52"), syndrome of reduced laying capacity - 76 (strain "I- 497" - application Mo2003010511, dated March 26, 2003. Poultry Institute of the Ukrainian Academy of Sciences) in a mixture with the adjuvant "Montanid IZA-70"

Приклад 1. -о с Контроль повноти інактивації вірусів НХ та ІБК проводили на 9-10-денних СПФ-ембріонах курей або ембріонах з низькими титрами антитіл до вірусів НХ та ІБК, одержаних від курей благополучного щодо гострих :з» інфекційних захворювань птах-господарства. Вміст 3-х флаконів вакцини змішували і готували загальний пул з якого відбирали їсм З вакцини. Ступінь інактивації вірусів визначали шляхом трьох послідовних "сліпих" пасажів, тобто введення біопрепарату у алантоїсну порожнину ембріонів курей по 0,2см3. Ембріони інкубували (о) в інкубаторі або термостаті протягом 120 годин при температурі 37,5"С. Ембріони, які загинули за період юю інкубації, бракували і визначали причину їх загибелі. Від тих ембріонів, що залишились живими, відбирали екстраембріональну рідину і проводили другий ,сліпий" пасаж шляхом введення її 9-10- добовим ембріонам - І курей, які інкубували у вказаному вище режимі. Після цього так само проводили третій "сліпий" пасаж. їз 50 Екстраембріональну рідину кожного ембріона третього пасажу перевіряли на гемаглютинаційну активність вірусуExample 1. Control of the completeness of the inactivation of HC and IBC viruses was carried out on 9-10-day-old SPF embryos of chickens or embryos with low titers of antibodies to HC and IBC viruses obtained from chickens free from acute infectious diseases of poultry farming . The contents of 3 vials of the vaccine were mixed and a common pool was prepared from which the vaccine was taken. The degree of virus inactivation was determined by three consecutive "blind" passages, i.e. introduction of the biological preparation into the allantoic cavity of chicken embryos by 0.2 cm3. Embryos were incubated (o) in an incubator or thermostat for 120 hours at a temperature of 37.5°C. Embryos that died during the incubation period were missing and the cause of their death was determined. From those embryos that remained alive, extraembryonic fluid was collected and a second "blind" passage by introducing it to 9-10-day-old embryos - I chickens, which were incubated in the above mode. After that, the third "blind" passage was conducted in the same way. iz 50 The extraembryonic fluid of each third-passage embryo was tested for hemagglutination activity of the virus

ХН У реакції гемаглютинації (РГА) на склі з 196-ми еритроцитами півня. Одночасно ставили усі необхідні 4) контролі. Ембріони третього пасажу перевіряли на наявність патологоанатомічних змін, характерних для ІБК (затримка розвитку, муміфікація ембріона, характерна поза з закинутими на голову лапками, можливе відкладання сечокислих солей у нирках сечоводів).HN In the hemagglutination reaction (HGA) on glass with 196 rooster erythrocytes. At the same time, all the necessary 4) controls were installed. Embryos of the third passage were checked for the presence of pathoanatomical changes characteristic of IBD (delayed development, mummification of the embryo, a characteristic posture with legs thrown over the head, possible deposition of uric acid salts in the kidneys of the ureters).

Приклад 2.Example 2.

Контроль повноти інактивації вірусу СЗН-76 проводили на 11-добових ембріонах качок методом трьохControl of the completeness of the inactivation of the SZN-76 virus was carried out on 11-day-old duck embryos by the method of three

Р» послідовних "сліпих" пасажів за схемою наведеною у прикладі 1. Екстраембріональну рідину кожного ембріона третього пасажу перевіряли на гемаглютинаційну активність вірусу СЗН-76 у реакції гемаглютинації (РГА) на склі з 196-ми еритроцитами півня. бо Приклад 3.P» of successive "blind" passages according to the scheme given in example 1. The extraembryonic fluid of each embryo of the third passage was tested for the hemagglutination activity of the SZN-76 virus in the hemagglutination reaction (HGA) on glass with 196 rooster erythrocytes. because Example 3.

Для приготування 195-ної суспензії еритроцитів півня відбирали кров у півнів віком Є місяців і старше із підкрильцевої вени у стерильну колбу з 595 розчином лимоннокислого натрію у співвідношенні 1:11. Одержану кров відмивали фізіологічним розчином, осаджуючи центрифугуванням. Відмивання повторювали тричі до одержання прозорої рідини над осадом еритроцитів. Із осаду відмитих еритроцитів готували 195-у суспензію на 65 фізіологічному розчині, яку зберігали при температурі від 4" до 8"С не більше двох діб.To prepare the 195 suspension of rooster erythrocytes, blood was collected from roosters aged 1 months and older from the subclavian vein into a sterile flask with 595 solution of sodium citric acid in a ratio of 1:11. The obtained blood was washed with a physiological solution, precipitated by centrifugation. Washing was repeated three times until a clear liquid was obtained above the sediment of erythrocytes. From the sediment of washed erythrocytes, the 195th suspension was prepared in 65% physiological solution, which was stored at a temperature of 4" to 8"C for no more than two days.

Приклад 4.Example 4.

На предметне скло наносили одну краплю екстраембріональної рідини ембріонів курей або качок і змішували її з краплею 19б5-ї суспензії еритроцитів. Одержану суміш залишали при кімнатній температурі.One drop of extra-embryonic fluid of chicken or duck embryos was applied to a glass slide and mixed with a drop of 19b5 erythrocyte suspension. The resulting mixture was left at room temperature.

Вакцину вважали інактивованою, якщо в екстраембріональній рідині ембріонів курей і качок після третього пасажу не було гемаглютинації еритроцитів при добре вираженій реакції у контролях, а також не було виявлено патологоанатомічних змін у ембріонах, що характерні для ІБК.The vaccine was considered inactivated if there was no hemagglutination of erythrocytes in the extraembryonic fluid of chicken and duck embryos after the third passage with a well-expressed reaction in the controls, and no pathological changes in the embryos characteristic of IBK were detected.

Приклад 5.Example 5.

Контроль вакцини на нешкідливість здійснювали на 10-ти курчатах 90-120-добового віку, одержаних з птахогосподарств, благополучних щодо гострих інфекційних захворювань птиці Для випробувань 7/0 Використовували З флакони вакцини. З кожного флакону стерильним шприцом відбирали у стерильну пробірку по 10см? вакцини та одержану пробу ретельно змішували. Вакцину вводили 10-ти курчатам внутрішньом'язово в ділянці стегна або у грудний м'яз в об'ємі трьох імунізуючих доз. Після щеплення за клінічним станом птиці спостерігали 30 днів, після чого проводили забій курей з метою візуальної оцінки стану тканини на розрізі в місці ін'єкції вакцини.The control of the vaccine for harmlessness was carried out on 10 chickens 90-120 days old, obtained from poultry farms, which are safe in relation to acute infectious diseases of poultry. For tests 7/0, Z vials of the vaccine were used. 10 cm was taken from each vial with a sterile syringe into a sterile test tube? vaccines and the resulting sample were thoroughly mixed. The vaccine was administered to 10 chickens intramuscularly in the thigh area or in the pectoral muscle in the volume of three immunizing doses. After vaccination, the clinical condition of the birds was observed for 30 days, after which the chickens were slaughtered for the purpose of visual assessment of the condition of the tissue on the cut at the site of vaccine injection.

Вакцина вважається нешкідливою, якщо при введенні 90-120-денним курчатам в об'ємі трьох імунізуючих доз під час спостереження (30 днів) не було зареєстровано випадків захворювання або загибелі птиці, а на розрізі в місці ін'єкції відсутні запальні процеси та залишкові кількості біопрепарату.The vaccine is considered harmless if, when administered to 90-120-day-old chickens in the volume of three immunizing doses, during observation (30 days), no cases of disease or death of the bird were registered, and there are no inflammatory processes and residual amounts on the incision at the injection site biological drug.

Приклад 6.Example 6.

Контроль антигенної активності вакцини проводили на 20-ти головах ремонтного молодняка курей 90-120-денного віку, одержаних з птахогосподарств, благополучних щодо гострих інфекційних захворювань. Для випробування брали З флакони вакцини, і з кожного відбирали по 5Осм З біопрепарату, які об'єднували у загальну пробу. Вакцину вводили птиці внутрішньом'язево одноразово в об'ємі О,5см З. До вакцинації і черезThe control of the antigenic activity of the vaccine was carried out on 20 heads of repair young chickens aged 90-120 days, obtained from poultry farms safe from acute infectious diseases. Three vials of the vaccine were taken for the test, and 5Osm of the biological preparation were taken from each, which were combined into a total sample. The vaccine was injected into the bird intramuscularly once in a volume of 0.5 cm Z. Before vaccination and through

ЗО днів після щеплення у сироватці крові курей визначали титри антитіл до вірусів НХ, ІБК та СЗН-76 методом імуноферментного аналізу (ІФА) із застосуванням відповідних діагностичних наборів.30 days after vaccination, titers of antibodies to HC, IBC and SZN-76 viruses were determined in the blood serum of chickens by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) using appropriate diagnostic kits.

Приклад 7. «Example 7. "

Контроль якості вакцини проводили шляхом перевірки органоліптичних, фізико-хімічних і біологічних показників. З цією метою проводили вибірку з різних місць серії вакцини у кількості, яка визначалась по формулі: п-0,4М, де п - необхідна для контролю кількість упаковок (об'єм вибірки) |се)Vaccine quality control was carried out by checking organoleptic, physicochemical and biological parameters. For this purpose, a sample was taken from different places of the vaccine series in the amount determined by the formula: n-0.4M, where n is the number of packages required for control (sample volume) |se)

М - кількість флаконів у серії «M - the number of vials in the series "

Із вибірки відбирали 10 флаконів вакцини методом випадкового відбору. З них 5 флаконів використовували для проведення випробувань, а 5 - направляли у архів контролера для зберігання протягом 18 місяців. -From the sample, 10 vials of vaccine were selected by random selection. Of these, 5 vials were used for testing, and 5 were sent to the controller's archive for storage for 18 months. -

Вакцина, що запропонована проти Ньюкаслської хвороби, інфекційного бронхіту курей та синдрому зниження сч несучості - 76 є високоіїмуногенною та нешкідлива при її застосуванні. (Се)The vaccine proposed against Newcastle disease, infectious bronchitis of chickens, and the syndrome of reduced egg-carrying capacity - 76 is highly immunogenic and harmless when used. (Se)

Claims (1)

Формула винаходу Емульсинвакцина асоційована інактивована проти Ньюкаслської хвороби (НХ), інфекційного бронхіту курей « (ІБК) та синдрому зниження несучості-76 (СЗН-76), що містить віруси інактивовані зі штамів ХН, ІБК та СЗН-76, - с яка відрізняється тим, що використовують інактивований вірус Ньюкаслської хвороби (штам "Ла-Сота"), и інактивований вірус інфекційного бронхіту курей (штам "Н-52"), інактивований вірус синдрому зниження ,» несучості- 76 (штам "І- 497") у суміші з ад'ювантом.The formula of the invention is the inactivated Emulsynvaccine associated against Newcastle disease (NH), infectious bronchitis of chickens (IBK) and the syndrome of reduced laying capacity-76 (SZH-76), which contains inactivated viruses from the strains of ХН, IBK and SZH-76, which differs in that , which use the inactivated virus of Newcastle disease (strain "La Sota") and the inactivated virus of infectious bronchitis of chickens (strain "H-52"), the inactivated virus of the syndrome of reduction of carrying capacity-76 (strain "I-497") in a mixture with adjuvant. Офіційний бюлетень "Промислоава власність". Книга 1 "Винаходи, корисні моделі, топографії інтегральних (о) мікросхем", 2003, М 12, 15.12.2003. Державний департамент інтелектуальної власності Міністерства освіти і з науки України. -І їз 50 42)Official bulletin "Industrial Property". Book 1 "Inventions, useful models, topographies of integrated (o) microcircuits", 2003, M 12, 15.12.2003. State Department of Intellectual Property of the Ministry of Education and Science of Ukraine. -I ride 50 42) Р 60 б5R 60 b5
UA2003054367A 2003-05-15 2003-05-15 Emulsion vaccine associated inactivated against newcastle disease, infectious bronchitis of fowls, and syndrome of decreasing egg production-76 UA62746C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UA2003054367A UA62746C2 (en) 2003-05-15 2003-05-15 Emulsion vaccine associated inactivated against newcastle disease, infectious bronchitis of fowls, and syndrome of decreasing egg production-76

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UA2003054367A UA62746C2 (en) 2003-05-15 2003-05-15 Emulsion vaccine associated inactivated against newcastle disease, infectious bronchitis of fowls, and syndrome of decreasing egg production-76

Publications (2)

Publication Number Publication Date
UA62746A true UA62746A (en) 2003-12-15
UA62746C2 UA62746C2 (en) 2006-07-17

Family

ID=34392554

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UA2003054367A UA62746C2 (en) 2003-05-15 2003-05-15 Emulsion vaccine associated inactivated against newcastle disease, infectious bronchitis of fowls, and syndrome of decreasing egg production-76

Country Status (1)

Country Link
UA (1) UA62746C2 (en)

Also Published As

Publication number Publication date
UA62746C2 (en) 2006-07-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Spackman et al. Practical aspects of vaccination of poultry against avian influenza virus
Ifrah et al. The role of the bursa of Fabricius in the immune response to vaccinal antigens and the development of immune tolerance in chicks (Gallus domesticus) vaccinated at a very young age
Grund et al. Avian paramyxovirus serotype 1 isolates from the spinal cord of parrots display a very low virulence
Ganapathy et al. Vaccination of commercial broiler chicks against avian metapneumovirus infection: a comparison of drinking-water, spray and oculo-oral delivery methods
Manvell et al. Experimental assessment of the pathogenicity of two avian influenza A H5 viruses in ostrich chicks (Struthio camelus) and chickens
KR20090088121A (en) The method of preparing an inactivated vaccine comprising antigen-antibody complex and the use of thereof as veterinary composition
Nazmi et al. Diatoms and diatomaceous earth as novel poultry vaccine adjuvants
Suartini et al. Intravenous administration of chicken immunoglobulin has a curative effect in experimental infection of canine parvovirus
CN104606675A (en) Preparation method of poultry multi-linked specific egg yolk antibodies and transfer factors
Mishra et al. Studies on the pathogenicity of Newcastle disease virus isolates in guinea fowl
Islam et al. Isolation and characterization of infectious laryngotracheitis virus in layer chickens
UA62746A (en) Associated inactivated emulsion vaccine against newcastle disease, infectious bronchitis of chickens and syndrome of decreasing egg production-76
NZ520761A (en) In ovo protection against infectious bronchitis of chicken by vaccinating a fertile containing an embryo
Islam et al. Comparative efficacy of imported fowl pox virus vaccine with locally produced one in backyard chicks
RU2702834C1 (en) Strain of influenza virus a/unl/hk/2:6/2017 (h5n8) for producing inactivated and live influenza vaccines
Roy et al. Unexpected Newcastle disease virus in day old commercial chicks and breeder hen
RU2685121C1 (en) Vaccine strain of influenza virus a/17/hongkong/2017/75108 (h7n9) for producing potentially pandemic live intranasal influenza vaccine
Samina et al. Day-old vaccination with live-in-oil vaccines: Newcastle disease (ND) and infectious bursal disease (IBD) in chicks and ND in turkey poults
JPH05501565A (en) Methods of using vaccine conjugates, vaccine preparations and articles of manufacture
US20010046500A1 (en) In ovo protection against infectious bronchitis
JPS62201573A (en) Influenza vaccine for poultry
Alhaj Ali Response of Innate Immune Genes to Newcastle Disease Virus (NDV) Challenge in Chicken Embryos Incubated under Different Lighting Regimens
RU2306949C2 (en) Protective medium for virus vaccine production in aviculture
EP1923070A1 (en) Vaccine for vaccinating feline against influenza virus
Denica et al. Titer detection of Avian Influenza (AI) antibody in Philippine chicken breed: A case study in Gorontalo city