UA16622U - Method for stimulating reparative regeneration of bone tissue - Google Patents
Method for stimulating reparative regeneration of bone tissue Download PDFInfo
- Publication number
- UA16622U UA16622U UAU200602060U UAU200602060U UA16622U UA 16622 U UA16622 U UA 16622U UA U200602060 U UAU200602060 U UA U200602060U UA U200602060 U UAU200602060 U UA U200602060U UA 16622 U UA16622 U UA 16622U
- Authority
- UA
- Ukraine
- Prior art keywords
- cells
- regeneration
- bone
- suspension
- biomatrix
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 14
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 title claims abstract description 12
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 title claims abstract description 11
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 title claims abstract description 11
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 title claims abstract description 4
- 210000002798 bone marrow cell Anatomy 0.000 claims abstract description 12
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims abstract description 11
- 230000007547 defect Effects 0.000 claims abstract description 11
- 210000000601 blood cell Anatomy 0.000 claims abstract description 4
- 210000001626 skin fibroblast Anatomy 0.000 claims abstract description 4
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 14
- 238000012876 topography Methods 0.000 claims 1
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 210000002805 bone matrix Anatomy 0.000 description 7
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 7
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 6
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N Diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 5
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 5
- 210000002381 plasma Anatomy 0.000 description 5
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 4
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 4
- 239000000463 material Substances 0.000 description 4
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 4
- 210000001909 alveolar process Anatomy 0.000 description 3
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 3
- 210000001847 jaw Anatomy 0.000 description 3
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 3
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 2
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 2
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 2
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 description 2
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 2
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 2
- 230000000472 traumatic effect Effects 0.000 description 2
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- KIUKXJAPPMFGSW-DNGZLQJQSA-N (2S,3S,4S,5R,6R)-6-[(2S,3R,4R,5S,6R)-3-Acetamido-2-[(2S,3S,4R,5R,6R)-6-[(2R,3R,4R,5S,6R)-3-acetamido-2,5-dihydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-4-yl]oxy-2-carboxy-4,5-dihydroxyoxan-3-yl]oxy-5-hydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-4-yl]oxy-3,4,5-trihydroxyoxane-2-carboxylic acid Chemical compound CC(=O)N[C@H]1[C@H](O)O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O[C@H]3[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O3)C(O)=O)O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)NC(C)=O)[C@@H](C(O)=O)O1 KIUKXJAPPMFGSW-DNGZLQJQSA-N 0.000 description 1
- SQDAZGGFXASXDW-UHFFFAOYSA-N 5-bromo-2-(trifluoromethoxy)pyridine Chemical compound FC(F)(F)OC1=CC=C(Br)C=N1 SQDAZGGFXASXDW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 1
- 206010003694 Atrophy Diseases 0.000 description 1
- 229920002101 Chitin Polymers 0.000 description 1
- 229920001287 Chondroitin sulfate Polymers 0.000 description 1
- 108010080379 Fibrin Tissue Adhesive Proteins 0.000 description 1
- 108010066698 Hapcol Proteins 0.000 description 1
- 206010052428 Wound Diseases 0.000 description 1
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 1
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 1
- 230000037444 atrophy Effects 0.000 description 1
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 1
- 229940059329 chondroitin sulfate Drugs 0.000 description 1
- 230000001054 cortical effect Effects 0.000 description 1
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 210000003275 diaphysis Anatomy 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 230000003394 haemopoietic effect Effects 0.000 description 1
- 230000035876 healing Effects 0.000 description 1
- 238000010562 histological examination Methods 0.000 description 1
- 229920002674 hyaluronan Polymers 0.000 description 1
- 229960003160 hyaluronic acid Drugs 0.000 description 1
- 229910052588 hydroxylapatite Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000005847 immunogenicity Effects 0.000 description 1
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 1
- 239000000411 inducer Substances 0.000 description 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 1
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 1
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000011164 ossification Effects 0.000 description 1
- 230000002188 osteogenic effect Effects 0.000 description 1
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 1
- XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;hydroxide;triphosphate Chemical compound [OH-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D 0.000 description 1
- 201000001245 periodontitis Diseases 0.000 description 1
- 210000004976 peripheral blood cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000002980 postoperative effect Effects 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 210000005245 right atrium Anatomy 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 239000002356 single layer Substances 0.000 description 1
- 239000001509 sodium citrate Substances 0.000 description 1
- NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K sodium citrate Chemical compound O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000011477 surgical intervention Methods 0.000 description 1
- AWLILQARPMWUHA-UHFFFAOYSA-M thiopental sodium Chemical compound [Na+].CCCC(C)C1(CC)C(=O)NC([S-])=NC1=O AWLILQARPMWUHA-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 230000008733 trauma Effects 0.000 description 1
- 210000000689 upper leg Anatomy 0.000 description 1
Abstract
Description
Опис винаходуDescription of the invention
Запропонована корисна модель відноситься до галузі медицини, а саме до хірургічних дисциплін. 2 Актуальність проблеми усування післяопераційних та інших кісткових дефектів визначається тривалістю загоювання, неповноцінністю відновлення кістки та порівняльно високою частотою гнійних ускладнень кісткових ран (С.А. Чертов, 20021).The proposed useful model refers to the field of medicine, namely to surgical disciplines. 2 The urgency of the problem of eliminating postoperative and other bone defects is determined by the duration of healing, the inferiority of bone restoration and the relatively high frequency of purulent complications of bone wounds (S.A. Chertov, 20021).
До відомих способів застосування трансплантаційних матеріалів для усунення кісткових дефектів відносяться: тканинні трансплантати, які забираються у хворого, або ліофілізовані трансплантати; брефокістка; 70 препарати, які мають колаген: гідроксиапатит, гапкол, коллапол та інші; або біосіталли, які мають протеїн, хондроїтін-сульфат, хітин, гіалуронову кислоту та інші.Known methods of using transplant materials to eliminate bone defects include: tissue grafts, which are taken from the patient, or lyophilized grafts; brephocyst; 70 preparations containing collagen: hydroxyapatite, hapcol, kollapol and others; or biositals that have protein, chondroitin sulfate, chitin, hyaluronic acid, and others.
Однак, всі вони мають деякі недоліки: або травматичність забору матеріалу, імуногенність в тому або іншому ступені; деякі швидко розсмоктуються, а застосування препаратів з колагену ефективні при три- або двохстінкових дефектах у комплексі з мембранами. При таких захворюваннях, як пародонтит, при якому частіше 12 за все зменшується висота альвеолярного відростка за рахунок атрофії, всі перераховані трансплантаційні матеріали неефективні ІВ.М. Безруков, Т.Г. Робустова, 20001.However, all of them have some disadvantages: either the traumatic nature of material intake, immunogenicity to one degree or another; some are quickly absorbed, and the use of collagen preparations is effective for three- or two-walled defects in a complex with membranes. In diseases such as periodontitis, in which the height of the alveolar process decreases most often due to atrophy, all the listed transplant materials are ineffective IV.M. Bezrukov, T.G. Robustova, 20001.
Найбільш близьким до запропонованого є спосіб застосування нативних губчатих аутотрансплантатів, біологічна сумісність яких сприяє найбільш ранній адаптації і васкуляризації у порівнянні з іншими видами остеопластики, вони мають виражені остеогенні властивості. В них рано починається інтенсивне утворення кістки, в якому беруть участь клітини аутологічного кісткового мозку (В.М. Безруков, Т.Г. Робустова, 20001.The method of using native cancellous autografts, the biological compatibility of which contributes to the earliest adaptation and vascularization in comparison with other types of osteoplasty, is closest to the one proposed, and they have pronounced osteogenic properties. In them, intensive bone formation begins early, in which autologous bone marrow cells participate (V.M. Bezrukov, T.G. Robustova, 20001.
Однак, недоліком відомого способу аутопластики є те, що він занадто травматичний, потребує додаткової операційної травми, яка перевищує об'єм оперативного втручання, тому даний спосіб не слід використовувати для регенерації альвеолярного відростка.However, the disadvantage of the known method of autoplasty is that it is too traumatic, requires additional surgical trauma, which exceeds the volume of the surgical intervention, so this method should not be used for the regeneration of the alveolar process.
В основу корисної моделі поставлене завдання створити спосіб стимуляції репаративної регенерації кісткових тканин шляхом застосування аутологічних клітин, нанесених на біоматрицю для регенерації дефектів в щелеп, який, згідно винаходу, відрізняється тим, що в якості клітин використовують клітини кісткового мозку, суспензію клітин крові, фібробласти шкіри, а в якості біоматриці - коллапан.The useful model is based on the task of creating a method of stimulating the reparative regeneration of bone tissues by using autologous cells applied to a biomatrix for the regeneration of defects in the jaw, which, according to the invention, differs in that bone marrow cells, a suspension of blood cells, skin fibroblasts are used as cells , and collapan as a biomatrix.
Поставлену задачу вирішують шляхом застосування імплантаційних аутоклітин з індукторами репарації або регенерації уражених тканин. счThe task is solved by using implantation autocells with inducers of repair or regeneration of affected tissues. high school
Даний спосіб оснований на виділенні клітин, переносі їх на біоматрикси, які забезпечують регенерацію с кістки, причому застосовується техніка виділення стовбурових клітин, які імплантуються в тканини донора.This method is based on the selection of cells, their transfer to biomatrixes that provide regeneration from the bone, and the technique of selection of stem cells that are implanted in the donor's tissue is used.
Запропонований спосіб був експериментально проведений таким чином. оThe proposed method was experimentally carried out as follows. at
Експеримент проведений на 40 самцях-реципієнтах, а демінералізований кістковий матрикс та суспензії Ге) клітин плазми крові і фібробласти шкіри отримували від 6 самців-донорів. 3о Для демінералізації кісткового матрикса у щурів брали циліндр з кортикальної частини діафіза, частково -- подрібнювали і занурювали у посудину з магнітною мішалкою. Кістки оброблювали послідовно 2год в дистильованій воді, по їгод в 7095, 9695, 10095 розчинах етанолу і 30 хвилин в дистильованому ефірі.The experiment was conducted on 40 male recipients, and demineralized bone matrix and suspensions of blood plasma cells and skin fibroblasts were obtained from 6 male donors. 3o To demineralize the bone matrix in rats, a cylinder was taken from the cortical part of the diaphysis, partially crushed and immersed in a vessel with a magnetic stirrer. Bones were treated sequentially for 2 hours in distilled water, one by one in 7095, 9695, 10095 ethanol solutions and 30 minutes in distilled ether.
Висушували в ламінарному потоці повітря і занурювали в рідкий азот на 12 годин. «They were dried in a laminar air flow and immersed in liquid nitrogen for 12 hours. "
Кістки подрібнювали до розмірів фрагментів 300-450 мікрон. Отриманий порошок демінералізували протягом З 12 годин в 0,6М соляної кислоти, відмивали кислоту в дистильованій воді, дегідратували в етанолі і с діетиловому ефірі. Всі процедури здійснювали при 40С. Отриманий демінералізований кістковий матрикс :з» зберігали при 40С.The bones were crushed to the size of fragments of 300-450 microns. The resulting powder was demineralized for 12 hours in 0.6 M hydrochloric acid, the acid was washed in distilled water, dehydrated in ethanol and diethyl ether. All procedures were carried out at 40C. The resulting demineralized bone matrix was stored at 40C.
Клітини кісткового мозку отримували з стегнових кісток щурів. Отриманий кістковий мозок змішували з 415 фосфатно-сольовим буфером рнН?7,4, ресуспендували, двічі відмивали у буфері. Кількість клітин підрахували у - камері Горяєва за допомогою мікроскопа Біолам Р-ЇЇ (об'єктив 8х10 окуляр) і доводили клітинну суспензію до концентрації Зх108/мл.Bone marrow cells were obtained from the femurs of rats. The obtained bone marrow was mixed with 415 phosphate-salt buffer pH 7.4, resuspended, washed twice in the buffer. The number of cells was counted in the Horyaev chamber using a Biolam R-II microscope (objective 8x10 eyepiece) and the cell suspension was adjusted to a concentration of Х108/ml.
Ме Для отримання суспензії клітин плазми крові у тварин під наркозом тіопенталу натрію забирали кров зMe To obtain a suspension of blood plasma cells, blood was taken from animals under sodium thiopental anesthesia
Ге» правого передсердя в пластиковий шприц і стабілізували 3,895 розчином цитрату натрію у співвідношенні 1:10.Ge» of the right atrium into a plastic syringe and stabilized with 3.895 sodium citrate solution in a ratio of 1:10.
Кількість клітин підраховували в камері Горяєва за допомогою мікроскопа Біолам Р-8І і доводили клітинну о суспензію до концентрації 3х108/мл.The number of cells was counted in a Horyaev chamber using a Biolam P-8I microscope and the cell suspension was adjusted to a concentration of 3x108/ml.
Кз Клітини кісткового мозку і суспензію плазми крові готували в день експерименту.Kz Bone marrow cells and blood plasma suspension were prepared on the day of the experiment.
Донорські фібробласти отримували методом трипсинізації шкіри щурів-донорів. Для цього у щурів в асептичних умовах брали шматочок шкіри, обробляли 9695 спиртом і поміщали в поживне середовище. В стерильних умовах шкіру розрізали на шматочки ЗхЗмм, промивали фосфатно-сольовим розчином, переносили в посудину з магнітною мішалкою і ставили на 1Охв. на трипсинізацію. Розчин трипсину з розміщеними в ньому с клітинами зливали крізь стерильну лійку з двома шарами марлі в стерильну колбу і ставили в холодильник для зупинки трипсинізації. Для шматочків шкіри, що залишились, в посудину наливали нову порцію трипсину для подальшої трипсинізації. Цей процес повторювали кілька разів до повного виснаження тканин. во Отримані суспензії центрифугували, осад ресуспендували в живильному середовищі, підраховували кількість клітин у камері Горяєва і доводили клітинну суспензію до кінцевої концентрації 250-50Отис. клітин. По Тмл суспензії розливали у флакони, розміщали їх у термостаті при 379С. Через 2 дні моношар фібробластів відокремлювали від скла за допомогою розчину версену, відмивали у фосфатно-сольовому буфері, розводили в поживному середовищі до концентрації Зх105/мл. 65 Для дослідження реконструкції кістки і гемопоетичного мікрооточення був застосований синтетичний остеопластичний препарат "Коллапан".Donor fibroblasts were obtained by trypsinization of the skin of donor rats. To do this, a piece of skin was taken from rats in aseptic conditions, treated with 9695 alcohol and placed in a nutrient medium. Under sterile conditions, the skin was cut into pieces of ХХЗмм, washed with a phosphate-saline solution, transferred to a vessel with a magnetic stirrer and put on 1 Охв. for trypsinization. The trypsin solution with the cells placed in it was poured through a sterile funnel with two layers of gauze into a sterile flask and placed in a refrigerator to stop trypsinization. For the remaining pieces of skin, a new portion of trypsin was poured into the vessel for further trypsinization. This process was repeated several times until the tissues were completely exhausted. The obtained suspensions were centrifuged, the sediment was resuspended in a nutrient medium, the number of cells was counted in the Horyaev chamber, and the cell suspension was adjusted to a final concentration of 250-50%. cells According to Tml, the suspension was poured into vials and placed in a thermostat at 379C. After 2 days, the monolayer of fibroblasts was separated from the glass using versene solution, washed in a phosphate-salt buffer, diluted in a nutrient medium to a concentration of Х105/ml. 65 The synthetic osteoplastic drug "Kollapan" was used to study bone reconstruction and the hematopoietic microenvironment.
В експерименті використовували комбіновані трансплантати, які готували перед використанням: а) 20мкл суспензії клітин кісткового мозку в концентрації 3Зх108/мл змішували з 4мг демінералізованого кісткового матрикса; б) 2омкл суспензії клітин кісткового мозку (3х108/мл) змішували з 4мг гранул коллапана; в) 20мкл суспензії клітин плазми крові (3х105/мл) змішували з 4мг гранул коллапана; г) 20мкл суспензії фібробластів (3х109/мл) змішували з 4мг гранул коллапана.In the experiment, combined transplants were used, which were prepared before use: a) 20 μl of bone marrow cell suspension at a concentration of 3x108/ml was mixed with 4 mg of demineralized bone matrix; b) 2 μm of suspension of bone marrow cells (3x108/ml) was mixed with 4 mg of collapan granules; c) 20 μl suspension of blood plasma cells (3x105/ml) was mixed with 4 mg of collapan granules; d) 20 μl suspension of fibroblasts (3x109/ml) was mixed with 4 mg of collapan granules.
Тварини були розділені на 7 груп. Щурам у всіх групах, крім контрольної, наносили дозований дефект діаметром Змм і глибиною Змм в ділянці тіла нижньої щелепи справа і альвеолярного відростка за допомогою 70. фісурного бора під інгаляційним ефірним наркозом: 2-й групі наносили дозований дефект, 3-й групі - дефект заповнювали комбінованим трансплантатом з 20мкл суспензії клітин кісткового мозку і 4мг демінералізованого кісткового матрикса; 4-й групі тварин дефект заповнювали 2Омкл суспензії клітин кісткового мозку і 4мг гранул коллапана; 5-й групі - 2Омкл суспензії клітин плазми крові і 4мг гранул коллапана; 6-й групі дефект заповнювали гранулами коллапана; 7-й групі - 20мкл суспензії фібробластів і 4мг гранул коллапана.The animals were divided into 7 groups. Rats in all groups, except the control group, were given a dosed defect with a diameter of Zmm and a depth of Zmm in the area of the body of the lower jaw on the right and the alveolar process with the help of a 70. filled with a combined transplant with 20 μl of bone marrow cell suspension and 4 mg of demineralized bone matrix; In the 4th group of animals, the defect was filled with 2 μl of bone marrow cell suspension and 4 mg of collapan granules; 5th group - 2 omcl suspension of blood plasma cells and 4 mg of kollapan granules; In the 6th group, the defect was filled with kollapan granules; 7th group - 20 μl suspension of fibroblasts and 4 mg of collapan granules.
Дефект після заповнення трансплантатом покривали фібриновим клеєм.After filling the defect with a graft, it was covered with fibrin glue.
Для гістологічного дослідження у тварин забирали нижні щелепи. Фіксацію матеріалу здійснювали 1090 розчином нейтрального формаліну, щелепи декальцінували в 1095 розчині ЕДТА, знежирювали етанолом і заливали парафіном, після чого готували зрізи.Lower jaws were taken from animals for histological examination. Fixation of the material was carried out with a 1090 solution of neutral formalin, the jaws were decalcified in a 1095 solution of EDTA, degreased with ethanol and embedded in paraffin, after which sections were prepared.
Як показали наші дослідження, найбільш виражений ефект спостерігали при заміщенні дефекту демінералізованим кістковим матриксом з суспензією клітин кісткового мозку.As our research showed, the most pronounced effect was observed when the defect was replaced with a demineralized bone matrix with a suspension of bone marrow cells.
Заміна демінералізованого кісткового матрикса коллапаном зменшила активність регенераторних процесів, однак ця активність була суттєвою. При заміні клітин кісткового мозку клітинами периферійної крові ще більше знизило активність процесів регенерації, однак результативність їх була достатньо високою, перевищуючи комбінацію коллапана з суспензією фібробластів. що 2Replacing the demineralized bone matrix with kollapan reduced the activity of regenerative processes, but this activity was significant. When bone marrow cells were replaced by peripheral blood cells, the activity of regeneration processes decreased even more, but their effectiveness was quite high, exceeding the combination of collapan with a suspension of fibroblasts. what 2
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| UAU200602060U UA16622U (en) | 2006-02-24 | 2006-02-24 | Method for stimulating reparative regeneration of bone tissue |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| UAU200602060U UA16622U (en) | 2006-02-24 | 2006-02-24 | Method for stimulating reparative regeneration of bone tissue |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| UA16622U true UA16622U (en) | 2006-08-15 |
Family
ID=37504413
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| UAU200602060U UA16622U (en) | 2006-02-24 | 2006-02-24 | Method for stimulating reparative regeneration of bone tissue |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| UA (1) | UA16622U (en) |
-
2006
- 2006-02-24 UA UAU200602060U patent/UA16622U/en unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Yu et al. | Biomimetic periosteum-bone substitute composed of preosteoblast-derived matrix and hydrogel for large segmental bone defect repair | |
| Song et al. | The homing of bone marrow MSCs to non-osseous sites for ectopic bone formation induced by osteoinductive calcium phosphate | |
| Katthagen | Bone regeneration with bone substitutes: an animal study | |
| Yoshimi et al. | Self-assembling peptide nanofiber scaffolds, platelet-rich plasma, and mesenchymal stem cells for injectable bone regeneration with tissue engineering | |
| RU2491960C9 (en) | Three-dimensional matrixes from structured porous monetite for tissue engineering and bone regeneration and method of their obtaining | |
| Zhang et al. | Acceleration of bone regeneration in critical-size defect using BMP-9-loaded nHA/ColI/MWCNTs scaffolds seeded with bone marrow mesenchymal stem cells | |
| EP1272232A1 (en) | Calcium phosphate artificial bone as osteoconductive and biodegradable bone substitute material | |
| US9889233B2 (en) | Method of producing native components, such as growth factors or extracellular matrix proteins, through cell culturing of tissue samples for tissue repair | |
| Chakar et al. | Bone formation with deproteinized bovine bone mineral or biphasic calcium phosphate in the presence of autologous platelet lysate: comparative investigation in rabbit | |
| Zhu et al. | Nano-Hydroxyapatite scaffold based on recombinant human bone morphogenetic protein 2 and its application in bone defect repair | |
| EP4023267A1 (en) | Foraminifera-derived bone graft material | |
| Wang et al. | Study of a new nano-hydroxyapatite/basic fibroblast growth factor composite promoting periodontal tissue regeneration | |
| Baek et al. | Marine plankton exoskeleton-derived honeycombed hydroxyapatite bone granule for bone tissue engineering | |
| CN102327643A (en) | Biological scaffold used for bone tissue regeneration | |
| RU2645963C2 (en) | Method of increasing the volume of bone tissue of the crest of alveolar process of the jaw | |
| Labutin et al. | Human bone graft cytocompatibility with mesenchymal stromal cells is comparable after thermal sterilization and washing followed by γ-irradiation: an in vitro study | |
| US8367059B2 (en) | Materials and methods for cryopreserved bone constructs | |
| Herrera et al. | Osteogenic differentiation of adipose-derived canine mesenchymal stem cells seeded in porous calcium-phosphate scaffolds | |
| UA16622U (en) | Method for stimulating reparative regeneration of bone tissue | |
| RU2809154C1 (en) | Tissue-bioengineering design for replenishing volume of bone tissue of jaw bones | |
| RU2818176C1 (en) | Method for producing tissue-engineered periosteum from cell spheroids for repairing bone defects in patients | |
| RU2744756C1 (en) | Method of transplanting biocomposite spheroids to ensure the possibility of restoring the integrity of the bone in case of defects that exceed the critical size | |
| RU2676478C1 (en) | Method of preparing filling mass for closure of bone defect | |
| RU2644828C1 (en) | Method of bone defect closure | |
| Smolentsev et al. | Production of Xenogenic Bone Powder for Implants Using Supercritical Fluid Extraction |