UA133406U - A METHOD FOR OBTAINING ASEPTIC CULTURE OF FRAGMENTS OF ORIENTAL OAK PLANTS (QUERCUS ROBUR L.) - Google Patents

A METHOD FOR OBTAINING ASEPTIC CULTURE OF FRAGMENTS OF ORIENTAL OAK PLANTS (QUERCUS ROBUR L.) Download PDF

Info

Publication number
UA133406U
UA133406U UAU201809365U UAU201809365U UA133406U UA 133406 U UA133406 U UA 133406U UA U201809365 U UAU201809365 U UA U201809365U UA U201809365 U UAU201809365 U UA U201809365U UA 133406 U UA133406 U UA 133406U
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
fragments
sterilization
solution
shoots
washing
Prior art date
Application number
UAU201809365U
Other languages
Ukrainian (uk)
Inventor
Оксана Юріївна Чорнобров
Світлана Юріївна Білоус
Анатолій Іванович Карпук
Олександр Миколайович Мельник
Юрій Миколайович Марчук
Original Assignee
Національний Університет Біоресурсів І Природокористування України
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Національний Університет Біоресурсів І Природокористування України filed Critical Національний Університет Біоресурсів І Природокористування України
Priority to UAU201809365U priority Critical patent/UA133406U/en
Publication of UA133406U publication Critical patent/UA133406U/en

Links

Landscapes

  • Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)

Abstract

Спосіб отримання асептичної культури фрагментів пагонів рослин дуба звичайного (Quercus robur L.) включає стерилізацію рослинного матеріалу в асептичних умовах з використанням 70 % етилового спирту впродовж 1 хв, промивання водою, стерилізацію у розчині гіпохлориду натрію NaClO з наступним 3-кратним витримуванням у стерильній дистильованій воді, крім того, стерилізацію фрагментів пагонів проводять у 2,5 % розчині NaClO упродовж 8-15 хв з наступним промивання у стерильній дистильованій воді, після чого додатково витримують у розчині нітрату срібла 1,0 % AgNO3 упродовж 8-15 хв, причому фрагменти пагонів вводять на безгормональне живильне середовище за прописом Мурасіге і Скуга (МС) з додаванням 2 г/л активованого вугілля.A method of obtaining an aseptic culture of fragments of shoots of plants of oak common (Quercus robur L.) involves sterilization of plant material under aseptic conditions using 70% ethyl alcohol for 1 min, washing with water, sterilization in a solution of NaClO sodium hypochloride, followed by 3-fold extraction water, in addition, sterilization of the fragments of shoots is carried out in 2.5% NaClO solution for 8-15 min followed by washing in sterile distilled water, and then kept in a solution of silver nitrate 1.0% AgN O3 for 8-15 minutes, and the shoot fragments are introduced into a hormonal nutrient medium according to Murasige and Skuga (MS) with the addition of 2 g / l of activated carbon.

Description

Корисна модель належить до галузі сільського господарства, зокрема - лісівництва.The useful model belongs to the field of agriculture, in particular - forestry.

Відомий як найближчий аналог (Іп міо ргорадайоп ої техісап оак5 (Оцегсив 5рр.) Лозе зЗімезіге ОеїІдадіПо-Оіа? де Геоп, дове Егапсівсо МогаІез-Оотіпдиег, Магіа де! босото Запіов5-Known as the closest analogue (Ip mio rgoradayop oi tehisap oak5 (Ocegsiv 5yr.) Loze zZimezige OeiIdadiPo-Oia? de Geop, dove Egapsivso MogaIez-Ootipdieg, Magia de! bosoto Zapiov5-

Оіа?7, Еидепіо Реге2-Моїрпе-ВаїЇсни /Роїїроїапіса. - 2013. - Ме 35. - Р. 85-97. - режим доступу: пЕруЛлимли тедаус.ого/піті/621/62125675005/), який включає добір способу стерилізації жолудівOia?7, Eidepio Rege2-Moirpe-VaiYisni / Roiiiroiapisa. - 2013. - Me 35. - R. 85-97. - access mode: pEruLlimly tedaus.ogo/piti/621/62125675005/), which includes the selection of the method of sterilization of acorns

Опгетгсив 5рр. та полягає у їх промиванні у водопровідній воді, витримуванні тричі по 5 хв у рідкому милі (Оегтосієап 1 95 м/м), споліскуванні водопровідною водою, зануренні у 70 9о етиловий спирт на 1 хв, промиванні водою, стерилізації у 20 96 комерційному відбілоючому розчині (5,25 95 гіпохлорид натрію) упродовж 25 хв з наступним трьохразовим промиванням у стерильній дистильованій воді в асептичних умовах.Opgetgsiv 5 years. and consists in washing them in tap water, holding them three times for 5 min in liquid soap (Oegtosieap 1 95 m/m), rinsing with tap water, immersion in 70 9o ethyl alcohol for 1 min, washing with water, sterilization in 20 96 commercial bleaching solution (5.25 95 sodium hypochlorite) for 25 min followed by washing three times in sterile distilled water under aseptic conditions.

Недоліком вищезазначеного способу є його: 1) багатоступінчастість та тривалість, що не завжди прийнятно у виробничих умовах; 2) режим стерилізації відомим способом неефективно нейтралізував екзогенну мікробіоту фрагментів пагонів рослин Оцетгсив гориг Г. (далі - С). горик).The disadvantage of the above-mentioned method is its: 1) multi-stage and duration, which is not always acceptable in production conditions; 2) the sterilization regime by a known method ineffectively neutralized the exogenous microbiota of plant shoot fragments Otsetsgsiv Gorig H. (hereinafter - C). bitter).

Задачею корисної моделі є розроблення способу отримання асептичних фрагментів пагонів рослин Опцегсиз гориг Г.. (далі - С). гориг) у культурі іп міо для одержання у стислі строки значної кількості стерильного життєздатного рослинного матеріалу 3 подальшим масовим мікроклональним розмноженням.The task of the useful model is to develop a method of obtaining aseptic fragments of plant shoots Opzegsyz gorig G. (hereinafter - C). gorig) in the ip myo culture to obtain in a short time a significant amount of sterile viable plant material 3 by further mass microclonal propagation.

Для стерилізації фрагментів пагонів рослин 0. гориг спочатку використовували відомий спосіб стерилізації жолудів Оцегсив 5рр. У результаті одержали незначну кількість асептичних експлантатів (20 95 комерційний відбілюючий розчин неефективно знешкоджував екзогенну мікробіоту, на 10-добу культивування понад 60 95 експлантатів були інфіковані). Для збільшення відсотка асептичності рослинного матеріалу окрім розчину МасіО використовували також 1,0 95 нітрат срібла АЯ9МО».To sterilize the fragments of the shoots of 0. gorig plants, the well-known method of sterilizing acorns was first used by Ocegsiv 5yr. As a result, a small number of aseptic explants were obtained (20 95 commercial bleaching solution ineffectively neutralized exogenous microbiota, on the 10th day of cultivation more than 60 95 explants were infected). In order to increase the percentage of asepticity of the plant material, in addition to the MasiO solution, 1.0 95 silver nitrate AYA9MO was also used."

Поставлена задача корисної моделі вирішується тим, що спосіб отримання асептичної культури фрагментів пагонів рослин дуба звичайного (Оийєтси5 гоБигі.) який включає стерилізацію рослинного матеріалу в асептичних умовах з використанням 70 95 етилового спирту впродовж 1 хв, промивання водою, стерилізацію у розчині гіпохлориду натрію МмасіюО з наступним З-кратним витримуванням у стерильній дистильованій воді згідно з пропонованим рішенням стерилізацію фрагментів пагонів проводять у 2,5 95 розчині МасіО упродовж 8-15 хв зThe set task of a useful model is solved by the fact that the method of obtaining an aseptic culture of fragments of shoots of common oak plants (Oiyetsy5 goBygi.) which includes sterilization of plant material in aseptic conditions using 70 95 ethyl alcohol for 1 min, washing with water, sterilization in a solution of sodium hypochlorite MmasiyuO with after three-fold exposure in sterile distilled water in accordance with the proposed solution, shoot fragments are sterilized in a 2.5 95 solution of MaciO for 8-15 minutes with

Зо наступним промивання у стерильній дистильованій воді, після чого додатково витримують у розчині нітрату срібла 1,0 95 АдМОз упродовж 8-15 хв, причому фрагменти пагонів вводять на безгормональне живильне середовище за прописом Мурасіге і Скуга (МС) з додаванням 2 г/л активованого вугілля.This is followed by washing in sterile distilled water, after which they are additionally kept in a solution of silver nitrate 1.0 95 AdMOz for 8-15 min, and fragments of shoots are injected into a hormone-free nutrient medium according to the prescription of Murashige and Skoog (MS) with the addition of 2 g/l of activated coal.

Спосіб отримання асептичних життєздатних фрагментів пагонів рослин 0). гориг, полягає у використанні пагонів завдовжки 15-20 см із 50-100-річних рослин-донорів у весняно-літній період та дозволяє значно скоротити тривалість стерилізації шляхом виключення операцій підготовчого етапу у нестерильних умовах. Для цього в нестерильних умовах пагони за допомогою скальпеля нарізають на фрагменти завдовжки 3,0-5,0 см з кількома бруньками. В умовах ламінарного боксу їх занурюють у 7095 етиловий спирт на 1 хв, промивають водою, стерилізують у 2,5 95 розчині МасіО упродовж 8-15 хв з наступним промиванням у стерильній дистильованій воді, далі стерилізацію продовжують у розчині 1,0 95 АдМОз упродовж 8-15 хв, після чого проводять триразове витримуванням у стерильній дистильованій воді. Потім рослинний матеріал нарізають на 1,0-1,5 см експлантати з однією брунькою та культивують на базовому безгормональному живильному середовищі МС з додаванням 2 г/л активованого вугілля.The method of obtaining aseptic viable fragments of plant shoots 0). gorig, consists in using shoots 15-20 cm long from 50-100-year-old donor plants in the spring-summer period and allows to significantly reduce the duration of sterilization by eliminating operations of the preparatory stage in non-sterile conditions. To do this, in non-sterile conditions, the shoots are cut into fragments 3.0-5.0 cm long with a few buds using a scalpel. In laminar box conditions, they are immersed in 7095 ethyl alcohol for 1 minute, washed with water, sterilized in a 2.5 95 solution of MaciO for 8-15 minutes followed by washing in sterile distilled water, then sterilization is continued in a solution of 1.0 95 AdMOz for 8 -15 min, after which it is held three times in sterile distilled water. Then the plant material is cut into 1.0-1.5 cm explants with one bud and cultivated on a basic hormone-free nutrient medium MS with the addition of 2 g/l activated carbon.

Технічне рішення корисної моделі дозволяє одержувати понад 8095 асептичних життєздатних фрагментів пагонів рослин СО). гтобиг з високою регенераційною здатністю та значно скоротити тривалість стерилізації.The technical solution of the useful model makes it possible to obtain more than 8095 aseptic viable fragments of CO plant shoots). htobig with high regeneration capacity and significantly reduce the duration of sterilization.

Claims (1)

ФОРМУЛА КОРИСНОЇ МОДЕЛІ Спосіб отримання асептичної культури фрагментів пагонів рослин дуба звичайного (Опйегсив гориї 3), який включає стерилізацію рослинного матеріалу в асептичних умовах з використанням 70 о етилового спирту впродовж 1 хв, промивання водою, стерилізацію у розчині гіпохлориду натрію МасСіО з наступним З-кратним витримуванням у стерильній дистильованій воді, який відрізняється тим, що стерилізацію фрагментів пагонів проводять у 2,595 розчині МасіО упродовж 8-15 хв з наступним промивання у стерильній дистильованій воді, після чого додатково витримують у розчині нітрату срібла 1,0 95 АдМОз упродовж 8-15 хв, причому фрагменти пагонів вводять на безгормональне живильне середовище за прописом Мурасіге і Скуга (МС) з додаванням 2 г/л активованого вугілля.USEFUL MODEL FORMULA The method of obtaining an aseptic culture of fragments of shoots of common oak plants (Opyegsiv horiya 3), which includes sterilization of plant material in aseptic conditions using 70% ethyl alcohol for 1 min, washing with water, sterilization in a solution of sodium hypochloride MaSiO followed by 3-fold keeping in sterile distilled water, which differs in that the sterilization of shoot fragments is carried out in a 2.595 solution of MaciO for 8-15 minutes, followed by washing in sterile distilled water, after which they are additionally kept in a solution of silver nitrate 1.0 95 AdMOz for 8-15 minutes , and fragments of shoots are injected into a hormone-free nutrient medium according to the prescription of Murashige and Skoog (MS) with the addition of 2 g/l of activated carbon.
UAU201809365U 2018-09-14 2018-09-14 A METHOD FOR OBTAINING ASEPTIC CULTURE OF FRAGMENTS OF ORIENTAL OAK PLANTS (QUERCUS ROBUR L.) UA133406U (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UAU201809365U UA133406U (en) 2018-09-14 2018-09-14 A METHOD FOR OBTAINING ASEPTIC CULTURE OF FRAGMENTS OF ORIENTAL OAK PLANTS (QUERCUS ROBUR L.)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
UAU201809365U UA133406U (en) 2018-09-14 2018-09-14 A METHOD FOR OBTAINING ASEPTIC CULTURE OF FRAGMENTS OF ORIENTAL OAK PLANTS (QUERCUS ROBUR L.)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
UA133406U true UA133406U (en) 2019-04-10

Family

ID=66043026

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UAU201809365U UA133406U (en) 2018-09-14 2018-09-14 A METHOD FOR OBTAINING ASEPTIC CULTURE OF FRAGMENTS OF ORIENTAL OAK PLANTS (QUERCUS ROBUR L.)

Country Status (1)

Country Link
UA (1) UA133406U (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2018505648A5 (en)
CN103461134A (en) Method for cultivating water lily aseptic seedling
CN108633376B (en) Culture method for non-symbiotic germination of paphiopedilum glaucescens seeds
CN106613934A (en) Method for rapidly propagating apple rootstock SH6
Sivanesan et al. In vitro shoot regeneration and microcorm development in Crocus vernus (L.) Hill
CN104604689B (en) The method of quick acquisition witloof explant and its healing rate of raising
Gheisari et al. In vitro callus induction and bulblet regeneration of hyacinth (Hyacinthus orientalis L.)
Jahan et al. Clonal propagation of Chrysanthemum morifolium ramat using various explants obtained from field grown plants
UA133406U (en) A METHOD FOR OBTAINING ASEPTIC CULTURE OF FRAGMENTS OF ORIENTAL OAK PLANTS (QUERCUS ROBUR L.)
Agogbua et al. Procedure for in vitro seed sterilization, germination and aseptic seedling establishment of Zehneria capillacea (Schumach) C. jeffrey
CN104488715B (en) A kind of method carrying out wide leaf spring grass bulb induction and plant regeneration by alabastrum
RU2490871C1 (en) Method of surface sterilisation of explants and apical buds of pine strawberry, grape, persimmon of variety "korolek" in vitro
CN108575188B (en) Method for improving germination rate of fraxinus chinensis seeds under tissue culture condition
CN107980632B (en) A kind of method of mongolian amygdalus seed tissue-culturing rapid propagation
Sabale et al. Elimination of bacterial contamination by using antibiotics in micropropagation of banana (Musa spp.) cv. Grand Naine
Sulusoglu et al. Effect of pretreatments on seed germination of Prunus laurocerasus L.(Cherry laurel)
Khan et al. Effect of nutrient media and phytohormones on in vitro establishment of Bambusa balcooa Roxb.
UA143906U (en) METHOD OF OBTAINING ASEPTIC CULTURE OF BETULA PENDULA ROTH IN VITRO
Mishra et al. IN FLU ENCE OF SOME PHYTOHORMONES BASED CUL TURE ME DIUM ON IN VI TRO MUL TI PLI CA TION OF GERBERA (Gerbera jamesonii)
Bisht et al. Effect of explant type and surface sterilants on asepsis and survival culture for callus induction in peach
Wong In vitro culture of'dog ridge'grapevine
UA115871U (en) A METHOD OF OBTAINING ASEPTIC CULTURE OF ARTIFICIALLY Awakened Shoots of the Tilia Cordata Mill Mill. "LIPY TG SHEVCHENKO" IN VITRO
Ayele et al. Low Cost Sterilization Technique and
Kothawale et al. Response of BA and NAA on shoot proliferation of Punica granatum L
Sukamto et al. Sterilization and Callus Formation of Rubber Meristem (Hevea brasiliensis Muell. Arg.)