TWI810192B - 軟骨細胞之品質保證 - Google Patents
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Abstract
本發明係關於一種方法，其係基於軟骨細胞上整聯蛋白α10與整聯蛋白α11之表現，其用於確定包含軟骨細胞之組成物的純度、品質、軟骨細胞身份識別程度、軟骨細胞力價及/或軟骨細胞表型程度，亦用於分離及富集高品質軟骨細胞的群體及控制高品質軟骨細胞的培養與擴增。本發明亦與包含軟骨細胞的組成物有關。
Description
本發明係關於具有高品質的軟骨細胞組成物以及用於軟骨細胞組成物品質保證與品質控制的方法。
受傷後，對於關節之透明軟骨的損傷本身的痊癒能力有限。此可造成關節的加速退化以及早發性骨關節炎。今日，對於保存天然關節軟骨以延遲進行關節之關節造形術有持續增加的需求。
成年人類的關節軟骨細胞是一種獨特的細胞類型，其已達到發育終點的完全分化狀態。在軟骨基質內，軟骨細胞調節軟骨的恆定並將基質成分維持在平衡的低周轉狀態。
軟骨細胞，軟骨中唯一的細胞類型，其表現一些不同的整聯蛋白。整聯蛋白是跨膜醣蛋白的大家族，其介導細胞-細胞及細胞-基質交互作用。此超家族的所有已知成員皆為由α-及β-次單元構成之非共價相連的異二聚體。整聯蛋白α10β1是軟骨細胞上主要的與膠原蛋白結合之整聯蛋白。其由經分化的軟骨細胞以及具有軟骨性分化潛能的MSC表現。另一方面，整聯蛋白α11β1係由纖維母細胞(包括滑液纖維母細胞)表現。整聯蛋白α11β1亦可由單層培養物中的軟骨細胞表現，所述細胞可經部分去分化並產生纖維性第I型膠原蛋白而非軟骨性第II型膠原蛋白，因而提供了確定軟骨細胞製劑的純度與品質的方法。
用於治療關節軟骨損傷之基於軟骨細胞的細胞療法是以修補並復原透明軟骨為目標之有前景的方法。
基於軟骨細胞的細胞療法的主要限制與從軟骨生物檢體酵素性地移除軟骨基質以分離軟骨細胞的步驟相關。在此步驟中，來自非軟骨組織(諸如滑膜)的細胞可能會污染軟骨細胞製劑(Dai et al.2006,Stebuils et al.2005)從而影響了用於移植的軟骨細胞製劑的純度及品質。此外，一旦從軟骨基質分離，軟骨細胞通常會去分化(Rapko et al.2009)。這會導致其專一化的軟骨細胞特徵喪失，此可以第II型膠原蛋白之合成轉變為第I型膠原蛋白之合成來偵測。因此，對於軟骨細胞品質的品質控制需要強健的方法。
本案發明人發現了細胞表面蛋白質整聯蛋白α10β1及α11β1的表現程度與經分離且經培養之軟骨細胞的品質之間的關聯，並因此發現了限定軟骨細胞製劑、對軟骨細胞製劑進行品質確保及/或品質控制的新方式。
本文揭示內容是基於以下的發現：整聯蛋白α10比整聯蛋白α11至少4比1的表現比例是高品質軟骨細胞組成物及/或產品的指標。雖然整聯蛋白α10與整聯蛋白α11表現程度因培養條件而有所不同，其比例是高品質軟骨細胞組成物的預兆。
此外，本案發明人亦發現：˙整聯蛋白α10的表現可作為軟骨細胞身份識別(identity)的指標；˙整聯蛋白α10連同整聯蛋白α11的表現可作為經部分去分化(partially dedifferentiated)之軟骨細胞的指標；˙整聯蛋白α10的表現以及整聯蛋白α11的低表現或實質上不表現可作為經分化之軟骨細胞的指標；以及 ˙整聯蛋白α11的表現以及整聯蛋白α10的低表現或實質上不表現可作為非軟骨細胞身份識別的指標，包括經高度去分化的軟骨細胞、纖維母細胞狀細胞(fibroblast-like cells)及/或其他污染細胞。
因此，在一個態樣，本文揭示內容係關於一種包含軟骨細胞的組成物，其中該組成物之整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1。
在另一態樣中，本文揭示內容係關於一種用於判定包含軟骨細胞之組成物的品質的方法，其中該品質判定包含以下標準中的一或多者：˙軟骨細胞之身份識別，˙軟骨細胞之分化狀態，˙軟骨細胞之純度，及˙軟骨細胞之力價(potency)該方法包含以下步驟：a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現程度；c)將整聯蛋白α10的表現程度與整聯蛋白α11的表現程度進行比較，其中整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1為以下者的指標˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的軟骨細胞身份識別，˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞經分化的狀態，˙該軟骨細胞組成物之純度，及/或˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的力價，並藉此作為高品質軟骨細胞組成物的指標。
因此，本文揭示內容係關於確保並控制軟骨細胞組成物品質的方法。
在更進一步的態樣中，本文揭示內容係關於一種分離高品質軟 骨細胞之群體的方法，該方法包含以下步驟：a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現；並c)富集整聯蛋白α10比整聯蛋白α11之表現比例為至少4比1的軟骨細胞，藉此獲得經分離的高品質軟骨細胞群體。
在更進一步的態樣中，本文揭示內容係關於一種產生高品質軟骨細胞之群體的方法，該方法包含以下步驟：a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現；並c)使整聯蛋白α10比整聯蛋白α11之表現比例為至少4比1的軟骨細胞增殖，藉此產生高品質軟骨細胞群體。
在一個態樣中，本文揭示內容係關於一種用於使包含軟骨細胞的組成物之軟骨細胞的力價最佳化的方法，該方法包含誘導整聯蛋白α10的表現。
在一個態樣中，本文揭示內容涉及一種增加軟骨細胞增生速率的方法，該方法包含誘導整聯蛋白α10的表現。
在一個態樣中，本文揭示內容涉及一種軟骨細胞的試管內細胞製劑或細胞培養物，所述軟骨細胞的整聯蛋白α10比整聯蛋白α11之表現比例為至少4比1。
在一個態樣中，本發明涉及本文中所描述的方法中之任一者的用途，其係用於a)確保軟骨細胞組成物的品質；b)監測軟骨細胞組成物的一致性及/或再現性； c)預測軟骨細胞組成物及培養物的力價；d)軟骨細胞組成物的製程中控制e)軟骨細胞組成物擴增的製程中控制；g)進行軟骨細胞組成物之力價檢定；f)進行軟骨細胞組成物的放行(release)檢驗；及/或h)軟骨細胞組成物之臨床結果及/或的預測。
圖1A. 兩種人類軟骨細胞製劑(853及854，其以單層培養2-6繼代)上α10β1表現的流式細胞術分析。軟骨細胞被培養在含有人類血清(HS)或血小板溶胞產物(PL)的培養基中，添加或未添加抗壞血酸(A)。當軟骨細胞被培養於單獨HS中時，整聯蛋白表現降低。
圖1B. 四種人類軟骨細胞製劑(853、854、875及876)的流式細胞術分析，其於人類血清(HS)、血小板溶胞產物(PL)中，含或不含抗壞血酸(A)培養2-6繼代。繼代2的細胞僅於HS中培養。結果顯示整聯蛋白α10/整聯蛋白α11的平均值±SEM比率(n=2-4)。添加抗壞血酸(A)對於整聯蛋白α10/整聯蛋白α11比例的改變有明顯且立即的影響而偏向α10。此影響不論是使用HS或PL都是明顯的。
圖2. 生長動力學分析，其顯示培養於人類血清(HS)、HS與抗壞血酸(HSA)、血小板溶胞產物(PL)或PL與抗壞血酸(PLA)中之853軟骨細胞繼代3-6達到滿盤(confluency)的細胞培養時間。添加抗壞血酸(A)及PL(特別是A)對軟骨細胞增生有明顯的影響。
圖3A. 人類軟骨細胞製劑853、854、875及876上α10β1表現的流式細胞術分析，其於人類血清(HS)、人類血清加上抗壞血酸(HSA)或血小 板溶胞產物加上抗壞血酸(PLA)中培養。整聯蛋白α10β1(α10)之表現以四種軟骨細胞製劑的平均值±SEM顯示。這些細胞被用於圖4中的分化實驗。
圖3B. 人類軟骨細胞製劑853、854、875及876上ITGA10的基因表現分析，其於人類血清(HS)、人類血清加上抗壞血酸(HSA)或血小板溶胞產物加上抗壞血酸(PLA)中培養。對於四種細胞株以平均值±SEM顯示相對的ITGA10基因表現。使用GAPDH作為用以對照的持家基因(house-keeping gene)。
圖4A. 藉由免疫組織化學分析軟骨細胞小球(pellet)之組織切片中膠原蛋白II表現的評估記分系統。膠原蛋白II表現的程度以0-5的尺度記分。
圖4B. 人類軟骨細胞製劑853、854、875及876的第II型膠原蛋白(Col2)表現記分概覽，其在HS中擴增並於再分化培養基TIDA的存在下在小球團培養物中生長1-4週。
圖4C. 人類軟骨細胞製劑853、854、875及876的第II型膠原蛋白(Col2)表現記分概覽，其在HSA中擴增並於再分化培養基TIDA的存在下在小球團培養物中生長1-4週。
圖4D. 人類軟骨細胞製劑853、854、875及876的第II型膠原蛋白(Col2)表現記分概覽，其在PLA中擴增並於再分化培養基TIDA的存在下在小球團培養物中生長1-4週。
圖5. HS中以單層培養的人類軟骨細胞製劑853、854、875、876、803、811、816、842及914上整聯蛋白α10β1的表現(流式細胞術)與小球團培養中第II型膠原蛋白兩週後的表現(免疫組織化學)之間的關連。皮爾森相關分析(Pearson correlation analysis)證實高度相關，係數(R2)為0.75。若省略樣本914(其可被認為是離群值)，可達成0.93的R2(數據未顯示)。
圖6A. 以單層生長於PLA中並接著在含有再分化培養基TIDA的小球培養物中生長兩週之軟骨細胞製劑875的膠原蛋白II、膠原蛋白I及整聯蛋白α10β1的免疫組織化學分析。整聯蛋白α10β1被發現與第II型膠原蛋白共存於相同的區域，而第I型膠原蛋白主要表現在整聯蛋白α10β1很少或是沒有的外側區域。
圖6B. 以單層培養於PLA中並接著在含有TIDA的小球培養物中培養兩週之875軟骨細胞整聯蛋白α11β1(B)整聯蛋白α10β1(C)、膠原蛋白II(D)、及)的螢光染色。(A)中顯示細胞核的DAPI染色且不同染色的合併圖片顯示於(E)中。以共軛焦顯微鏡術顯現染色。比例尺50μm。整聯蛋白α10β1被發現與第II型膠原蛋白共存於相同的區域，而整聯蛋白α11β1表現在發現第I型膠原蛋白表現的小球外側區域(參見圖6A)。
圖7A. 人類纖維母細胞狀滑膜細胞(human fibroblast-like synoviocyte，HFLS)、軟骨細胞製劑875、HFLS-OA(來自骨關節炎患者的纖維母細胞狀細胞s)以及人類鼻軟骨細胞(HNC)上整聯蛋白α11β1(X軸)的流式細胞術分析。結果顯示整聯蛋白α11β1表現在纖維母細胞狀細胞上但不表現在軟骨細胞上。側散射(SSC-A)顯示於Y軸上。
圖7B. 軟骨細胞及滑液纖維母細胞狀細胞之混合物上整聯蛋白α11β1的流式細胞術分析。向HNC(人類鼻軟骨細胞)之製劑添加0、0.5%、1%、2.5%、5%、10%、25%、50%、100%的HFLS-OA(來自骨關節炎患者的人類纖維母細胞狀軟骨細胞)。結果顯示整聯蛋白α11β1可偵測軟骨細胞製劑中即使是少量的纖維母細胞狀細胞，且整聯蛋白α11β1隨著添加的纖維母細胞狀細胞而增加。
圖7C. 整聯蛋白α11β1的表現與向軟骨細胞製劑添加HFLS-OA(來自骨關節炎患者的人類纖維母細胞狀軟骨細胞)之間的關連。向HNC(人 類鼻軟骨細胞)之製劑添加0、0.5%、1%、2.5%、5%、10%、25%、50%、100%的HFLS-OA。此證實整聯蛋白α11β1可被用於偵測並定量軟骨細胞製劑中污染的纖維母細胞狀細胞。
圖8A. 在小球團培養之前在來自樣本803及811的單層經培養之人類軟骨細胞上分析整聯蛋白α10(α10)及α11(α11)的表現。流式細胞術分析顯示樣本811中的低整聯蛋白α10/整聯蛋白α11比例以及樣本803中的高整聯蛋白α10/整聯蛋白α11比例。
圖8B. 來自樣本803及811在小球團中培養2及3週的軟骨細胞中Col2生產的組織學評估。分析軟骨細胞小球的組織切片之第II型膠原蛋白(Col2)之表現，並將Col2表現程度以0-5的尺度來記分。結果顯示來自軟骨細胞811之小球中Col2的無/極低表現以及來自軟骨細胞811之小球中Col2的高表現。
圖9. 人類軟骨細胞製劑803(高力價，參見圖8)及842(低力價)上整聯蛋白α10(X軸)整聯蛋白α11(Y軸)的流式細胞術分析。使用組合兩種抗體(分別針對整聯蛋白α10及α11)的結合來說明所述抗體的單一染色及雙重染色程度。右下方方塊代表整聯蛋白α10的高單一表現，左上方代表整聯蛋白α11的高單一表現，且右上方代表表現整聯蛋白α10及α11兩者的細胞。結果顯示軟骨細胞製劑842相較於803具有更多去分化細胞及非軟骨細胞性的細胞。
本文中所使用之「整聯蛋白α10」係指異二聚體蛋白質整聯蛋白α10β1中的α10次單元以及異二聚體蛋白質整聯蛋白α10β1。這樣的名稱並未排 除連接至α10次單元因而形成整聯蛋白α10β1異二聚體之β1次單元之存在。人類整聯蛋白α10鏈序列是已知的而且是公眾可於GenBankTM/EBI Data Bank以登錄號AF074015獲得的。
本文中所使用之「抗整聯蛋白α10抗體」係指能夠辨認並至少結合至整聯蛋白α10次單元但亦結合至異二聚體蛋白質整聯蛋白α10β1的抗體。這些抗體可以是辨認異二聚體蛋白質整聯蛋白α10β1之表位的抗體，其中該表位包含α10及β1次單元兩者之胺基酸殘基。這些抗體也可以是辨認異二聚體蛋白質整聯蛋白α10β1之表位的抗體，其中該表位包含單獨α10次單元之胺基酸殘基。
本文中所使用之「整聯蛋白α11」係指異二聚體蛋白質整聯蛋白α11β1中的α11次單元以及異二聚體蛋白質整聯蛋白α11β1。這樣的名稱並未排除連接至α11次單元因而形成整聯蛋白α10β1異二聚體之β1次單元之存在。
本文中所使用之「抗整聯蛋白α11抗體」係指能夠辨認並至少結合至整聯蛋白α11次單元但亦結合至異二聚體蛋白質整聯蛋白α11β1的質整聯蛋白α11次單元的抗體。這些抗體可以是辨認異二聚體蛋白質整聯蛋白α11β1之表位的抗體，其中該表位包含α11及β1次單元兩者之胺基酸殘基。這些抗體也可以是辨認異二聚體蛋白質整聯蛋白α11β1之表位的抗體，其中該表位包含單獨α11次單元之胺基酸殘基。
術語「整聯蛋白α10/11」係指整聯蛋白α10或α11，或整聯蛋白α10及整聯蛋白α11兩者。
本文中所使用的「抗壞血酸」包括(R)-3,4-二羥基-5-((S)-1,2-二羥乙基)呋喃-2(5H)-酮其衍生物，諸如L-抗壞血酸2-磷酸-倍半鎂鹽水合物。
本文中所使用之術語「鑑別(identifying)」係指辨認細胞為某種細胞類型(例如，軟骨細胞或纖維母細胞狀細胞)的行為。鑑別的一種替代 性術語是「偵測(detecting)」，其於本文中以相同的意義使用。
本文中所使用之術語「分離(isolating)」、「分選(sorting)」、「選擇(selecting)」、及「耗乏(depleting)」係指鑑別細胞為某種細胞類型並將其與不屬於此同一細胞類型或分化狀態的細胞分開。
本文中所使用之術語「組成物」可指細胞製劑，諸如軟骨細胞製劑。本文中所使用之術語「組成物」亦可指細胞培養物，諸如軟骨細胞培養物。軟骨細胞組成物亦可為軟骨細胞產品。軟骨細胞產品的例子為發明所屬技術領域中具有通常知識者習知，且可為懸浮液中經分離的軟骨細胞、以單層培養之軟骨細胞以及三維(3D)培養物，諸如球狀體(spheroid)、小球、細胞層片(cell sheet)以及在支架中培養的軟骨細胞。舉例來說，軟骨細胞支架可使用3D水凝膠、膠原蛋白基質、玻尿酸、聚乙醇酸(PGA)-血纖維蛋白以及聚乳酸(PLA)來製作。
本文中所使用之術語「力價」或「細胞力價」可定義為相關生物功能的定量尺度。力價試驗提供一種機制來詳細檢查生產方法及欲批次放行之最終細胞產品的品質、一致性及穩定性。
本發明之方法中的關鍵步驟是偵測整聯蛋白α10的表現以及整聯蛋白α11的表現。
在一個具體實例中，表現分析是藉由選自由以下者所組成之群組的方法進行：流式細胞術、ELISA、西方印漬術、免疫沉澱法、墨點印漬術(dot blot)、qPCR、免疫測定法、免疫螢光法、免疫組織化學、基因表現分析及任何其他合適的方法。較佳地，整聯蛋白α10及/或α11的表現分析是以使用特定抗體的流式細胞術進行。可對流式細胞術搭配應用多色分析，其為特別方便的。對於個別案例，發明所屬技術領域中具有通常知識者能夠適當地決定用 於測定表現程度的方法選項。
整聯蛋白α10及/或整聯蛋白α11的表現可使用同類型的方法分析。在一個具體實例中，整聯蛋白α10/11表現是藉由測量對應的蛋白質表現來分析。
在另一個具體實例中，整聯蛋白α10/11表現是藉由測量整聯蛋白α10/11的mRNA表現來分析。特定蛋白質之mRNA表現的偵測對發明所屬技術領域中具有通常知識者而言是熟知的，且通常可藉由使用對於目標mRNA有專一性的DNA或RNA探針，在探針不會雜合(hybridizing)至其他mRNA分子的雜合條件下探測mRNA來完成。亦可使用不同的聚合酶連鎖反應(PCR)，其對發明所屬技術領域中具有通常知識者而言是顯而易見的。
在一個具體實例中，該分析包括整聯蛋白α10及整聯蛋白α11表現的定量測定。
發明所屬技術領域中具有通常知識者已知數種用於偵測細胞標記表現的方法。因此，在本文揭示內容的一個具體實例中，細胞表現整聯蛋白α10/11的偵測是由選自由以下者所組成之群組的方法測定：免疫測定法、流式細胞術、免疫螢光法、免疫沉澱法、免疫組織化學及西方印漬術。在更進一步的具體實例中，整聯蛋白α10/11的表現是由任何免疫測定法偵測，諸如免疫化學實驗室指南(Methods in molecular biology,Humana Press Inc)中所描述的方法。所述偵測可藉由多種方法進行，例如：任何發明所屬技術領域中具有通常知識者已知的免疫方法，諸如免疫沉澱，西方印漬術、磁性啟動細胞分選(magnetic-activated cell sorting，MACS)或流式細胞術方法，例如：螢光啟動細胞分選(FACS)。
在一些具體實例中，整聯蛋白α10/11蛋白質表現是藉由抗整聯蛋白α10/11抗體偵測，其中該抗體可為單株抗體、多株抗體、單鏈抗體或其片 段。在另一個具體實例中，該抗體是非人類抗體、嵌合抗體、雙專一性抗體、人源化抗體或人類抗體。
該抗體可被共價連接至可偵測部分，諸如選自由以下者所組成之群組之可偵測部分：螢光團、酵素或放射性追蹤劑或放射性同位素。在一個較佳具體實例中，該抗體以一或多個螢光團標記。該螢光團可選自由以下者所組成之群組：藻紅素、異藻藍蛋白、螢光素、Texas red、Alexa Fluor 647及豔麗染劑(brilliant dyes)。亦可使用許多其他螢光團，且發明所屬技術領域中具有通常知識者會根據特定偵測方法並根據所用抗體的特性選擇最適合的螢光團。在一些具體實例中，將具有非重疊發射光譜的螢光團連接至抗整聯蛋白α10抗體及抗整聯蛋白α11抗體。
在一個具體實例中，該抗體被接附至固體撐體(support)，例如接附至磁珠。
在一個具體實例中，該抗體被接附至生物素。
此外，該抗體可具有選自由以下者所組成之群組的同型：IgA、IgD、IgG及IgM。
在一個具體實例中，該抗體是：a)單株抗體，其係由以寄存編號DSM ACC2583寄存於德國微生物菌種保存中心(Deutsche Sammlung von Microorganismen und Zellkulturen GmbH)的融合瘤細胞株產生；或b)抗體，其與以寄存編號DSM ACC2583寄存於德國微生物菌種保存中心的融合瘤產生之單株抗體競爭結合至相同表位；或c)a)或b)的片段，其中該片段能夠專一性地結合至整聯蛋白α10鏈的細胞外I域。
鑑別亦可藉由任何專一性地結合至整聯蛋白α10/11分子的專一 性分子(諸如蛋白質或胜肽)進行。這類蛋白質或胜肽的例子有結合至整聯蛋白α10/11分子的天然配體。這類天然配體可以重組方式製造，化學合成或從天然來源純化。
本案發明人發現具有整聯蛋白α10比整聯蛋白α11表現比例為至少4比1之特徵的軟骨細胞組成物是高品質的軟骨細胞組成物。
因此，本文揭示內容的一個態樣係關於一種包含軟骨細胞的組成物，其中該組成物之整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1。
在一個具體實例中，整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1，諸如至少5比1、諸如至少10比1、諸如至少15比1、諸如至少20比1、諸如至少25比1、諸如至少30比1、諸如至少35比1、諸如至少40比1、諸如至少45比1、諸如至少50比1、諸如至少60比1、諸如至少70比1、諸如至少80比1、諸如至少90比1、諸如至少100比1、諸如至少150比1、諸如至少200比1。在另一個具體實例中，該整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為低於200比1，諸如低於150比1、諸如低於100比1、諸如低於50比1、諸如低於25比1。
在一個具體實例中，整聯蛋白α11之表現至多為整聯蛋白α10之表現的25%，諸如至多為整聯蛋白α10之表現的20%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的15%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的10%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的5%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的4%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的3%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的2%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的1%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的0.5%。
在又另一個具體實例中，實質上不表現整聯蛋白α11。
在一個具體實例中，該組成物可包含經分化的軟骨細胞，且該經分化的軟骨細胞可表現整聯蛋白α10且實質上不表現整聯蛋白α11。
本文中所用之「實質上不表現整聯蛋白α11」意指表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10之細胞(即，單獨α11細胞)的百分比低於20%。在一些具體實例中，表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10之細胞的百分比低於15%，諸如低於10%、諸如低於5%、諸如低於4%、諸如低於3%、諸如低於2%、諸如低於1%、諸如低於0.5%。
在一個具體實例中，組成物可包含經部分去分化的軟骨細胞，且該經部分去分化的軟骨細胞可表現整聯蛋白α10及整聯蛋白α11兩者。經部分去分化的軟骨細胞是回復成更像纖維母細胞的軟骨細胞。取決於培養條件，其可再分化成軟骨細胞。
在一個具體實例中，包含軟骨細胞的組成物係選自由以下者所組成之群組：軟骨組織製劑、包含軟骨細胞的組織製劑、單層軟骨細胞細胞培養物以及三維(3D)軟骨細胞細胞培養物，諸如球狀體、小球或細胞層片。
在一個具體實例中，包含軟骨細胞的組成物係源自軟骨組織、包含軟骨細胞的組織、單層軟骨細胞細胞培養物以及三維軟骨細胞細胞培養物，諸如球狀體、小球、細胞層片或是源自在支架中培養的軟骨細胞。
在一個具體實例中，包含軟骨細胞的組成物可包含哺乳動物細胞。
在一個具體實例中，包含軟骨細胞的組成物可包含人類細胞。
在一個具體實例中，包含軟骨細胞的組成物可包含馬類細胞。
在一個具體實例中，包含軟骨細胞的組成物可包含犬類細胞。
在一個具體實例中，整聯蛋白α10及/或整聯蛋白α11是表現在哺乳動物軟骨細胞或纖維母細胞狀細胞的細胞表面上。
在一個具體實例中，整聯蛋白α10及/或整聯蛋白α11是以與整聯蛋白β1組合為異二聚體的方式表現。
在一個具體實例中，包含軟骨細胞的組成物可實質上不含污染細胞，其中該污染細胞可表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10，即，其可為單獨α11細胞。表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10的細胞可為污染細胞、纖維母細胞狀細胞或經高度去分化的細胞。表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10的細胞可為非功能性軟骨細胞且因此可能是軟骨細胞組成物的次要組分。
表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10的細胞數量越少，組成物中軟骨細胞的數量越多，而因此軟骨細胞組成物的純度越高。
可能可以藉由使經去分化的軟骨細胞的培養條件最佳化來誘導整聯蛋白α10的表現，且因此使軟骨細胞再分化。因此，當表現整聯蛋白α11而不表現整聯蛋白α10的細胞百分比低於20%，包含軟骨細胞的組成物可以界定為實質上不含污染細胞。在一些具體實例中，表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10之細胞的百分比可低於15%，諸如低於10%、諸如低於5%、諸如低於4%、諸如低於3%、諸如低於2%、諸如低於1%、諸如低於0.5%。
在一個具體實例中，包含軟骨細胞的組成物在全部組成物或細胞群體中可包含至少70%的軟骨細胞，諸如至少75%、諸如至少80%、諸如至少85%、諸如至少90%、諸如至少95%、諸如至少98%、諸如至少99%、諸如100%。
在一個具體實例中，包含軟骨細胞的組成物在全部組成物或細胞群體中可包含至少80%的軟骨細胞，諸如至少85%、諸如至少90%、諸如至少95%、諸如至少98%、諸如至少99%、諸如100%。
在一個具體實例中，包含軟骨細胞的組成物可進一步表現選自由以下者所組成之群組的二級標記：CEP-68/CRTAC1、GP-39軟骨醣蛋白、CD44、CD166、膠原蛋白IIA、膠原蛋白IIB、蛋白聚醣(Aggrecan)、茜素紅 (負)(Alizarian Red(neg))、艾爾遜藍(Alcian Blue)、CRTAC1、CEP-68、CD146、CD90、CD49e、CD63及Sca-1。
本文中所揭示之軟骨細胞組成物可調配成細胞懸浮液、細胞培養物、細胞單層或三維(3D)支架，諸如球狀體、小球、細胞層片以及在支架中培養的軟骨細胞。3D支架的例子是技術領域中已知的且可基於例如以下者的應用：3D水凝膠、膠原蛋白基質、玻尿酸、聚乙醇酸(PGA)-血纖維蛋白以及聚乳酸(PLA)。
本文中所揭示之軟骨細胞組成物接著可用於數種應用，例如在軟骨再生及軟骨修復的領域。本文中所揭示之軟骨細胞組成物可適用於自體及異體兩者之應用。
在一個態樣中，本文揭示內容係關於一種用於判定包含軟骨細胞之組成物的品質的方法，其中該品質判定包含以下標準中的一或多者：˙軟骨細胞之身份識別，˙軟骨細胞之分化狀態，˙軟骨細胞之純度，及˙軟骨細胞之力價，該方法包含以下步驟：a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現程度；c)將整聯蛋白α10的表現程度與整聯蛋白α11的表現程度進行比較，其中整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1為以下者的指標˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的軟骨細胞身份識別， ˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞經分化的狀態，˙該軟骨細胞組成物之純度，及/或˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的力價，並藉此作為高品質軟骨細胞組成物的指標。
在一個具體實例中，該方法可包含將整聯蛋白α10的表現程度與整聯蛋白α11的表現程度進行比較，其中該軟骨細胞組成物中至多20%之細胞表現α11且不表現或實質上不表現整聯蛋白α10(即，單獨α11細胞)是軟骨細胞組成物純度的指標，諸如至多15%之細胞、諸如至多10%之細胞、諸如至多5%之細胞、諸如至多4%之細胞、諸如至多3%之細胞、諸如至多2%之細胞、諸如至多1%之細胞、諸如至多0.5%之細胞。
事實上，表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10的細胞(單獨α11細胞)數量越少，組成物中軟骨細胞的數量越多，而因此軟骨細胞組成物的純度越高。
在一個具體實例中，該方法可包含將整聯蛋白α10的表現程度與整聯蛋白α11的表現程度進行比較，其中整聯蛋白α10連同整聯蛋白α11的表現是經部分去分化的軟骨細胞組成物的指標。舉例來說，表現整聯蛋白α10與整聯蛋白α11兩者的軟骨細胞可為經部分去分化的軟骨細胞。
在一個具體實例中，該方法可包含將整聯蛋白α10的表現程度與整聯蛋白α11的表現程度進行比較，其中整聯蛋白α10的表現以及實質上不表現整聯蛋白α11可為經分化的軟骨細胞組成物的指標。舉例來說，表現整聯蛋白α10但實質上不表現整聯蛋白α11的軟骨細胞可為經分化的軟骨細胞。
在一個具體實例中，該方法包括整聯蛋白α10及整聯蛋白α11表現的定量測定。
在一個具體實例中，該方法可包含將整聯蛋白α10的表現程度與 整聯蛋白α11的表現程度進行比較，其中整聯蛋白α10的表現以及實質上不表現整聯蛋白α11可為經分化的軟骨細胞組成物的指標。「實質上不表現整聯蛋白α11」可指包含於該組成物中之細胞少於20%表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10。在一些具體實例中，表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10的細胞百分比低於15%，諸如低於10%、諸如低於5%、諸如低於4%、諸如低於3%、諸如低於2%、諸如低於1%、諸如低於0.5%。
本案發明人亦發現軟骨細胞中表現整聯蛋白α11且實質上不表現整聯蛋白α10可為纖維母細胞狀細胞的指標。
在一個具體實例中，該方法進一步包含偵測二級軟骨細胞或纖維母細胞標記的表現，其中所述標記係選自由以下者所組成之群組：CEP-68/CRTAC1、GP-39軟骨醣蛋白、CD44、CD166、膠原蛋白IIA、膠原蛋白IIB、蛋白聚醣、茜素紅(負)、艾爾遜藍、CRTAC1、CEP-68、CD146、CD90、CD49e、CD63及Sca-1。對於個別案例，發明所屬技術領域中具有通常知識者能夠適當地決定用於測定所述標記表現的方法選項。
在一個具體實例中，該方法是在試管內進行。
在一個具體實例中，將細胞培養於為了誘導整聯蛋白α10表現而最佳化的培養基中，之後進行整聯蛋白α10及整聯蛋白α11的表現分析。整聯蛋白α10表現之誘導描述於本揭示內容之本文中。
在一個具體實例中，整聯蛋白α10及整聯蛋白α11的表現分析係同時進行。在另一個具體實例中，整聯蛋白α10及整聯蛋白α11的表現分析係分開進行。參見例如實施例4及圖7及9所報導之數據。
在一個態樣中，本發明係關於一種分離高品質軟骨細胞群體的方法，該方法包含以下步驟： a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現；並c)選擇整聯蛋白α10比整聯蛋白α11之表現比例為至少4比1的軟骨細胞，藉此獲得高品質軟骨細胞群體。
在一個具體實例中，高品質軟骨細胞群體可為具有以下特徵的軟骨細胞群體：整聯蛋白α10比整聯蛋白α11之表現比例為至少4比1。
在一個具體實例中，該方法可包括整聯蛋白α10及整聯蛋白α11表現的定量測定。
在一個具體實例中，整聯蛋白α10及/或整聯蛋白α11可表現在哺乳動物軟骨細胞及/或纖維母細胞狀細胞的細胞表面上。
在一個具體實例中，所獲得之該經分離的高品質軟骨細胞群體可為經富集及/或經純化的軟骨細胞群體。較佳地，該所獲得之經分離的軟骨細胞群體可經富集及/或經純化，使得該群體中之軟骨細胞具有整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的高表現比例。在一個具體實例中，所獲得的經分離之軟骨細胞群體中整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1，諸如至少5比1、諸如至少10比1、諸如至少15比1、諸如至少20比1、諸如至少25比1、諸如至少30比1、諸如至少35比1、諸如至少40比1、諸如至少45比1、諸如至少50比1、諸如至少60比1、諸如至少70比1、諸如至少80比1、諸如至少90比1、諸如至少100比1、諸如至少150比1、諸如至少200比1。
在一個具體實例中，整聯蛋白α11之表現至多為整聯蛋白α10之表現的25%，諸如至多為整聯蛋白α10之表現的20%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的15%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的10%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的5%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的4%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的3%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的2%、諸如至多為整聯蛋白 α10之表現的1%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的0.5%。
在又另一個具體實例中，在所獲得的經分離之軟骨細胞群體中實質上不表現整聯蛋白α11。
在一個具體實例中，所獲得的組成物在全部的細胞群體中可包含至少70%的軟骨細胞，諸如至少75%、諸如至少80%、諸如至少85%、諸如至少90%、諸如至少95%、諸如至少98%、諸如至少99%、諸如100%。
在又一個具體實例中，所獲得的組成物在全部的細胞群體中可包含至少80%的軟骨細胞，諸如至少85%、諸如至少90%、諸如至少95%、諸如至少98%、諸如至少99%、諸如100%。
在另一個具體實例中，所獲得群體可實質上不含污染細胞。在本文的前後文中，污染細胞可為軟骨細胞以外的細胞，諸如纖維母細胞或纖維母細胞狀細胞。在一個具體實例中，污染細胞可為表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10的細胞。
所獲得的組成物可包含經高度去分化的軟骨細胞及纖維母細胞狀細胞，當培養於理想條件下，其可再分化成軟骨細胞。
「實質上不表現整聯蛋白α11」與「實質上不含污染細胞」已於本文揭示內容中所定義。
在一個具體實例中，所述高品質軟骨細胞群體可為經整聯蛋白α10富集的軟骨細胞群體。該經整聯蛋白α10富集的群體可藉由包含耗乏表現整聯蛋白α11之細胞的方法獲得。在一個具體實例中，高品質軟骨細胞群體可實質上不表現整聯蛋白α11。
該經整聯蛋白α10富集的群體可藉由包含選擇表現整聯蛋白α10之細胞的方法獲得。表現整聯蛋白α10之細胞可如本文中所描述地來選擇，例如藉由使用抗整聯蛋白α10抗體、或藉由其他發明所屬技術領域中具有通常知 識者已知的方法。
該經整聯蛋白α10富集的群體可藉由包含在誘導整聯蛋白α10表現的條件下培養軟骨細胞組成物的方法獲得。可在本文揭示內容中找到所述整聯蛋白α10誘導條件的例子。可誘導整聯蛋白α10表現的劑及抗壞血酸及血小板溶胞產物。
在一個具體實例中，該整聯蛋白α10比整聯蛋白α11之比例為至少4比1之軟骨細胞的選擇可藉由分離表現整聯蛋白α10的軟骨細胞來進行。在另一個具體實例中，該選擇係藉由耗乏表現整聯蛋白α11的軟骨細胞來達成。
高品質軟骨細胞之群體的分離可基於用於以下者的方法：將表現整聯蛋白α10的軟骨細胞與實質上不表現整聯蛋白α10的軟骨細胞分離及/或與表現整聯蛋白α11但不表現或實質上不表現整聯蛋白α10的細胞分離。該分離可包括磁性分離，例如使用抗體塗覆的磁珠以及以接附至固體基質(例如：盤)的抗體「淘選(panning)」，或其他常見的技術。提供精確分離的技術包括螢光啟動細胞分選器，其可有不同程度的精製度，例如：發明所屬技術領域中具有通常知識者已知的複數個顏色通道、光散射偵測通道、阻抗通道等。
若使用抗體或其片段來偵測標記，其可接附至固體撐體(例如磁珠)以使得能夠高度專一性分離。所採用的特定分離方法(例如：離心、機械性分離，諸如管柱、膜或磁性分離)應最大化所收集的部分之生存力。可採用發明所屬技術領域中具有通常知識者已知的多種不同功效的技術。所採用的特定技術將視以下因素而定：分離效率、方法學之細胞毒性、執行的容易度與速度以及精密儀器及/或技術熟練度的需求。
在一個具體實例中，高品質軟骨細胞的群體係分離自候選組成物，該候選組成物係選自由以下者所組成之群組：軟骨組織製劑、包含軟骨細胞的組織製劑、單層軟骨細胞細胞培養物以及三維軟骨細胞細胞培養物，諸如 球狀體、小球、細胞層片及在各種支架中培養的軟骨細胞。
在一個具體實例中，高品質軟骨細胞的群體係分離自候選組成物，該候選組成物係源自軟骨組織、包含軟骨細胞的組織、單層軟骨細胞細胞培養物以及三維軟骨細胞細胞培養物，諸如球狀體、小球、細胞層片及在各種支架中培養的軟骨細胞。
在一個具體實例中，本文中所描述的方法可進一步包含偵測二級標記的表現，該二級標記係選自由以下者所組成之群組：CEP-68/CRTAC1、GP-39軟骨醣蛋白、CD44、CD166、膠原蛋白IIA、膠原蛋白IIB、蛋白聚醣、茜素紅(負)、艾爾遜藍、CRTAC1、CEP-68、CD49e、CD63、CD146、CD90及Sca-1。
本案發明人已證實誘導整聯蛋白α10表現對增生及力價的影響。
因此，在一個態樣中，本發明係關於一種用於使包含軟骨細胞的組成物之品質與軟骨細胞力價最佳化的方法，該方法包含誘導整聯蛋白α10的表現。在一個具體實例中，該方法進一步包含抑制導整聯蛋白α11的表現。
在另一態樣中，本發明涉及一種增加軟骨細胞增生速率的方法，該方法包含誘導整聯蛋白α10的表現。在一個具體實例中，該方法進一步包含抑制導整聯蛋白α11的表現。
在一個具體實例中，誘導整聯蛋白α10的表現係藉由以下方式進行：在包含可誘導整聯蛋白α10表現及/或抑制整聯蛋白α11之因子的培養基中培養表現整聯蛋白α10的細胞。
在一個具體實例中，誘導整聯蛋白α10的表現可藉由以下方式進行：在包含抗壞血酸及/或血小板溶胞產物的培養基中培養表現整聯蛋白α10的細胞。
在一個具體實例中，由此獲得之整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1，諸如至少5比1、諸如至少10比1、諸如至少15比1、諸如至少20比1、諸如至少25比1、諸如至少30比1、諸如至少35比1、諸如至少40比1、諸如至少45比1、諸如至少50比1、諸如至少60比1、諸如至少70比1、諸如至少80比1、諸如至少90比1、諸如至少100比1、諸如至少150比1、諸如至少200比1。
在一個具體實例中，所獲得的整聯蛋白α11之表現最多為所獲得的整聯蛋白α10之表現的25%，諸如最多為所獲得的整聯蛋白α10之表現的20%、諸如最多為所獲得的整聯蛋白α10之表現的15%、諸如最多為所獲得的整聯蛋白α10之表現的10%、諸如最多為所獲得的整聯蛋白α10之表現的5%、諸如最多為所獲得的整聯蛋白α10之表現的4%、諸如最多為所獲得的整聯蛋白α10之表現的3%、諸如最多為所獲得的整聯蛋白α10之表現的2%、諸如最多為所獲得的整聯蛋白α10之表現的1%、諸如最多為所獲得的整聯蛋白α10之表現的0.5%。
已知取決於整聯蛋白α10表現細胞所接觸的培養條件，其可表現不同程度的整聯蛋白α10。因此，誘導整聯蛋白α10在軟骨細胞中表現的一種方式可為改變培養條件之方式，例如藉由改變培養基。
在一個態樣中，本發明涉及一種軟骨細胞的試管內細胞製劑或細胞培養物，所述軟骨細胞的整聯蛋白α10比整聯蛋白α11之表現比例為至少4比1。在另一個具體實例中，該整聯蛋白α10比整聯蛋白α11之表現比率為至少4，諸如至少10、諸如至少15、諸如至少20、諸如至少25、諸如至少30、諸如至少35、諸如至少40、諸如至少45、諸如至少50、諸如至少60、諸如至少70、諸如至少80、諸如至少90、諸如至少100。在另一個具體實例中，該整聯蛋白 α10比整聯蛋白α11之表現比率可低於200，諸如低於150、諸如低於100。
在一個態樣中，本發明涉及一種軟骨細胞的試管內細胞製劑或細胞培養物，其中整聯蛋白α11之表現至多為整聯蛋白α10之表現的25%，諸如至多為整聯蛋白α10之表現的20%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的15%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的10%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的5%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的4%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的3%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的2%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的1%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的0.5%。
在一個具體實例中，本發明涉及一種經整聯蛋白α10富集的軟骨細胞群體，其係藉由抗整聯蛋白α10抗體及抗整聯蛋白α11抗體分離自細胞製劑/培養物。
在一個具體實例中，該經富集的軟骨細胞群體可藉由以下方式獲得：選擇具有高整聯蛋白α10表現的軟骨細胞或誘導整聯蛋白α10表現。在另一個具體實例中，該經富集的軟骨細胞群體可藉由以下方式獲得：耗乏表現整聯蛋白α11之高度去分化的軟骨細胞或纖維母細胞或抑制整聯蛋白α11的表現。
在一個具體實例中，該經富集的群體之整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例可為至少4比1，諸如至少5比1、諸如至少10比1、諸如至少15比1、諸如至少20比1、諸如至少25比1、諸如至少30比1、諸如至少35比1、諸如至少40比1、諸如至少45比1、諸如至少50比1、諸如至少60比1、諸如至少70比1、諸如至少80比1、諸如至少90比1、諸如至少100比1、諸如至少150比1、諸如至少200比1。
在一個具體實例中，該經富集的群體之整聯蛋白α11之表現至多可為整聯蛋白α10之表現的25%，諸如至多為整聯蛋白α10之表現的20%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的15%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的10%、諸 如至多為整聯蛋白α10之表現的5%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的4%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的3%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的2%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的1%、諸如至多為整聯蛋白α10之表現的0.5%。
在一個態樣中，本發明涉及本文中所描述的方法中之任一者的用途，其係用於a)確保軟骨細胞組成物的品質；b)監測軟骨細胞組成物的一致性及/或再現性；c)預測軟骨細胞組成物及培養物的力價，並由此預測其功能；d)軟骨細胞組成物的製程中控制e)軟骨細胞組成物擴增的製程中控制；f)進行軟骨細胞組成物的放行檢驗；g)進行軟骨細胞組成物之力價檢定；及/或h)軟骨細胞組成物之臨床結果的預測。
因此，在一個具體實例中，用於測定包含軟骨細胞之組成物的品質之方法，其包含以下步驟：a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現程度；c)將整聯蛋白α10的表現程度與整聯蛋白α11的表現程度進行比較，其中整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1為以下者的指標˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的軟骨細胞身份識別，˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞經分化的狀態，˙該軟骨細胞組成物之純度，及/或˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的力價， 可用於軟骨細胞組成物的品質確保。
因此，在一個具體實例中，本文揭示內容係關於用於測定包含軟骨細胞之組成物的品質之方法，其包含以下步驟：a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現程度；c)將整聯蛋白α10的表現程度與整聯蛋白α11的表現程度進行比較，其中整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1為以下者的指標˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的軟骨細胞身份識別，˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞經分化的狀態，˙該軟骨細胞組成物之純度，及/或˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的力價，其用於軟骨細胞組成物之品質確保及/或品質控制。
在一個具體實例中，本文揭示內容係關於用於測定包含軟骨細胞之組成物的品質之方法的用途，該方法包含以下步驟：a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現程度；c)將整聯蛋白α10的表現程度與整聯蛋白α11的表現程度進行比較，其中整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1為以下者的指標˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的軟骨細胞身份識別，˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞經分化的狀態，˙該軟骨細胞組成物之純度，及/或˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的力價，其係用於軟骨細胞組成物及/或軟骨細胞組成物擴增的製程中控制。
在一個具體實例中，本文揭示內容係關於用於測定包含軟骨細 胞之組成物的品質之方法的用途，該方法包含以下步驟：a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現程度；c)將整聯蛋白α10的表現程度與整聯蛋白α11的表現程度進行比較，其中整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1為以下者的指標˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的軟骨細胞身份識別，˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞經分化的狀態，˙該軟骨細胞組成物之純度，及/或˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的力價，其係用於進行軟骨細胞組成物的放行檢驗。
在一個具體實例中，本文揭示內容係關於用於測定包含軟骨細胞之組成物的品質之方法的用途，該方法包含以下步驟：a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現程度；c)將整聯蛋白α10的表現程度與整聯蛋白α11的表現程度進行比較，其中整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1為以下者的指標˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的軟骨細胞身份識別，˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞經分化的狀態，˙該軟骨細胞組成物之純度，及/或˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的力價，其係用於進行軟骨細胞組成物之力價檢定。
在存在有10% HS的DMEM或存在有5% PL的DMEM(有或沒有抗壞血酸(50μg/ml))中，培養來自四種不同製劑853、854、875及876之軟骨細胞。在繼代2、3、4及6之後，使用以下單株抗體藉由流式細胞術分析整聯蛋白α10β1及α11β1的表現：添加直接與藻紅素(PE)共軛之α10抗體以及直接與Alexa Fluor A647(Xintela AB)共軛之α11抗體(1μg/mL)，其係稀釋於FACS緩衝液中(PBS,1% FBS,0,1% NaN3)。
結論：此分析證實整聯蛋白α10β1之表面表現隨著在單獨HS存在下培養之軟骨細胞的繼代而減少。當軟骨細胞在PL存在下培養時，整聯蛋白α10之表面表現增加，並在所有六個繼代維持高表面表現。圖1A顯示得自軟骨細胞製劑853及854的結果。對培養基添加抗壞血酸維持且甚至無法預期地增加HS培養物中整聯蛋白α10β1的表現，特別是在較後期的繼代中，但並未改變在PL中培養的軟骨細胞上整聯蛋白α10β1已經有的高表現(圖1A)。流式細胞術分析無法預期地顯示將抗壞血酸添加至培養基降低整聯蛋白α11β1的表現，因而增加整聯蛋白α10β1/整聯蛋白α11β1的比率。如圖所示(圖1B，其中整理了得自軟骨細胞製劑853、854、875及875的結果)，此功效在有抗壞血酸存在之HS及PL培養兩者中都可見到。
研究軟骨細胞之特定生長速率與不同培養基之間的關係。為此目的，將得自製劑853之軟骨細胞培養在僅含有HS之培養基至繼代2。在繼代2之後，在缺乏或具有抗壞血酸的情況下將細胞培養在HS或PL中。當細胞達到80%滿盤，收集細胞、計數並以相同密度重新接種(re-seeded)。
結論：抗壞血酸及PL增加軟骨細胞的增生速率。在抗壞血酸存在下，相較於缺乏抗壞血酸的培養基，細胞在各繼代以較快的速率增生(圖2)。這在含有HS及PL的培養基兩者中都有看到。此功效在較後期的繼代(5- 6)中比較早的繼代更突出。在缺乏抗壞血酸的情況下，軟骨細胞達到滿盤需要較長的時間。相較於HS，PL亦增加了增生。
為研究培養條件(已知在軟骨細胞擴增期間會改變整聯蛋白α10β1及整聯蛋白α11β1之表現)是否會影響軟骨細胞的品質及力價(再分化能力)，進行以下實驗。
將得自製劑853、854、875及876的軟骨細胞在HS、HSA或PLA中培養四個繼代，並接著轉移至小球團培養。此外，就在開始小球團培養之前，藉由流式細胞術以及Q-PCR對不同軟骨細胞培養之樣本分析整聯蛋白α10β1-表現。
使用RNeasy Mini Kit(Qiagen，德國)分離軟骨細胞mRNA並從高品質全RNA樣本合成cDNA，在兩個相繼的qPCR分析中以GAPDH標準化並確認。使用基因專一性引子及TaqMan探針(基因表現檢定HS00174623_m1及Hs02758991_g1，來自Life Technology)，並依製造商的建議進行整聯蛋白α10的即時PCR偵測。偵測系統為StepOne Plus(Applied Biosystems)。將整聯蛋白α10之表現針對對照GAPDH標準化並計算整聯蛋白α10之相對定量值(RQ)。
將軟骨細胞以單層培養於培養基(α-最低必須培養基(α-MEM)及Ham’s F12，來自Biochrom，比例1：1)中，有3mM麩醯胺酸(glutamin)，HS(10%)或PL(5%)，有或沒有L-抗壞血酸2-磷酸-倍半鎂鹽水合物(A)及抗生素-抗黴劑。再繼代4之後，使細胞脫離、將細胞離心、並再懸浮於TIDA培養基(DMEM F12，有高葡萄糖(4.5g/L無酚紅)、抗生素-抗黴劑(1x)、TGFβ1(13ng/ml)、胰島素/轉鐵蛋白(Transferin)/硒(ITS- X；1x)、地塞米松(Dexamethasone)(10nM)、A(50μg/ml)及HS(2%))中。將含有200000個細胞的樣本轉移至14ml的離心管(falcon tube)中，並將細胞懸浮液離心以形成小球。接著將細胞小球在缺氧條件下(4% O2，5% CO2及95%濕度)培養1-4週，並接著以免疫組織化學(IHC)分析。
將軟骨細胞小球包埋在TissueTek中並冷凍。將切片收集在玻片上並以一級單株抗體(抗膠原蛋白I、抗膠原蛋白II或抗α10整聯蛋白)並接著以二級抗體抗小鼠-HRP(聚合物，DAKO)免疫標定。
單層培養後的結果證實了實施例2中的發現，顯示相較於僅有HS，在單層培養期間PL及抗壞血酸誘導整聯蛋白α10的表現並清楚地增加整聯蛋白α10β1在軟骨細胞上的表現。流式細胞術數據(圖3A)指出當使用PL及HS與抗壞血酸時(圖3A)的α10β1表現增加。在基因表現層次上可看到類似的結果，由整聯蛋白α10的基因轉錄本(ITGA10)表示(圖3B)。
為了評估在小球團培養物中之軟骨細胞的品質與力價，基於軟骨專一性第II型膠原蛋白之表現的免疫組織化學分析建立計分系統。代表增加之第II型膠原蛋白表現的計分之標稱範圍為從0-5(圖4A)。
於表4中總結了各種培養狀況(HS、HAS及PLA)的第II型膠原蛋白的得分。這些結果顯示當在HS中培養細胞時，不同軟骨細胞製劑之間第II型膠原蛋白表現(再分化/力價)的大幅變異(圖4B)。軟骨細胞製劑853在所有時間顯示第II型膠原蛋白的低表現，而876顯示在一週後已經有一些第II型膠原蛋白的表現，並在三週後有高表現。
在HSA(有抗壞血酸的HS)中培養的軟骨細胞被證實在第II型膠原蛋白表現上有不一致的情形。來自製劑875及876的軟骨細胞在四週後顯示 第II型膠原蛋白的高表現，而853及854在四週的檢定期間並未達到高評分(圖4C)。另一方面，當細胞培養在PLA中時，所有的軟骨細胞製劑皆依循一致的第II型膠原蛋白表現模式。第II型膠原蛋白的表現快速增加且所有四種軟骨細胞製劑在三週後皆已達到最高得分。(圖4D)。
為研究在HS中單層擴增之後軟骨細胞上整聯蛋白α10β1的表現與其力價(再分化潛力)之間可能的關聯，對培養於HS中之來自9種個別製劑的軟骨細胞進行了皮爾森相關分析(803、811、816、842、853、854、875、876及914)，以小球團培養物中第II型膠原蛋白的表現(第二週及第三週)來判斷。
圖5說明了經單層培養的軟骨細胞上整聯蛋白α10β1表現程度與其在小球團培養物中第II型膠原蛋白生產能力之間的高度相關(2週後的R2值為0.75)。這證實了整聯蛋白α10β1是軟骨細胞品質的標記且可預測軟骨細胞的力價。
此外，為研究在HS中單層擴增後軟骨細胞上整聯蛋白α10比上整聯蛋白α11之表現比率(α10/α11比率)與其力價(再分化能力)之間可能的關聯，分析了具有低(811)及高(803)再分化能力的軟骨細胞上的α10/α11比率，以小球團培養物中第II型膠原蛋白的表現(第二週及第三週)來判斷。
圖8證實具有低α10/α11比例的軟骨細胞製劑(811)的再分化能力弱，而具有高α10/α11比例的軟骨細胞製劑(803)的再分化能力強。這證實了i α10/α11比例可用於判定軟骨細胞品質並可預測軟骨細胞力價，且特別是軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的軟骨細胞身份識別與經分化狀態。
結論(II)：此結果顯示單層培養物中軟骨細胞上的整聯蛋白α10/整聯蛋白α11比率與後續小球團培養物中的Col-II表現相關(圖8)。這證實了整聯蛋白α10/整聯蛋白α11的比率可用於預測經培養之軟骨細胞的再分化潛力 與功能，並可用於判定軟骨細胞組成物中軟骨細胞的經分化狀態與功能力價。
為證實標記整聯蛋白α10β1及整聯蛋白α11β1分別與軟骨及纖維膠原蛋白共存於相同區域，以IHC及免疫螢光研究蛋白質表現模式。使用源自軟骨細胞製劑875的小球，在PL以及抗壞血酸(PLA)中單層擴增，並接著在TIDA分化培養基存在下中以小球團培養物培養兩週。小球以IHC(圖6A)及免疫螢光(圖6B)分析以證實所述整聯蛋白與膠原蛋白的表現模式。
將軟骨細胞小球包埋在TissueTek(Sakura，Jpn)中並在乾冰上冷凍。將切片(8μm，在MICROM HM 500 OM cryostat中製作)收集在SuperFrost Plus玻片上並用於以與針對其他抗原之抗體混合的一級抗體並以與螢光團共軛的二級Ab/Abs進行免疫標記。
在驢或山羊中針對兔、小鼠或山羊IgG's或針對雞IgY製作用於多重標記的二級抗體(經高度親和性純化，主要是Fab2片段)，以含有1% BSA的PBS稀釋。對於兩種表位的同時螢光顯影，一級與二級係以混合物應用。
結論：IHC染色顯示整聯蛋白α10β1清楚地與第II型膠原蛋白共存於小球的中央區域，而膠原蛋白I主要在小球外側部分(於該處無或少整聯蛋白α10β1)被觀察到(圖6A)。使用免疫螢光染色，確認整聯蛋白α10β1與膠原蛋白II清楚地共存於相同區域，且更進一步地整聯蛋白α11β1主要出現在富含膠原蛋白I之小球外側部分的細胞上(圖6B)。
為了評估以估算整聯蛋白α10β1及整聯蛋白α11β1之表現量來確定作為軟骨細胞製劑之品質檢定的身份識別與純度的可行性，使用軟骨細胞與纖維母細胞狀滑膜細胞之組合。將不同量的纖維母細胞狀滑膜細胞添加至軟骨細胞製劑並藉由流式細胞術分析整聯蛋白α10β1及α11β1。使用來自健康個體的纖維母細胞狀滑膜細胞(HFLS)與來自骨關節炎患者的纖維母細胞狀滑膜細胞(HFLS-OA)以及來自製劑875的軟骨細胞與來自人類鼻軟骨(HNC)的軟骨細胞。為研究試驗的靈敏度，將增量的滑膜細胞(HFLS-OA)添加至HNC細胞，範圍從0.5%到100%的HFLS-OA。
結論(I)：流式細胞術分析證實整聯蛋白α11β1高度表現在HFLS與HFLS-OA上，但不在來自製劑875或HNC的軟骨細胞上(圖7A)。
當藉由增加HNC細胞之製劑中滑膜細胞(HFLS-OA)的量來研究試驗靈敏度時(圖7B及7C)，該分析捕捉到大部分所添加的HFLS-OA，並且甚至能夠偵測是最低含量(0.5%)的HFLS-OA細胞(圖7C)。結果與使用HFLS類似(資料未顯示)。因此，整聯蛋白α11β1的流式細胞術分析可以作為偵測軟骨細胞製劑中可能的污染性纖維母細胞、纖維母細胞狀細胞或其他整聯蛋白α11β1表現細胞的有效方法，並提供分析軟骨細胞製劑之純度與品質的靈敏方式。
此外，如圖9所示，進行人類軟骨細胞製劑803(高力價，參見圖8)及842(低力價，資料未顯示)上整聯蛋白α10(X軸)整聯蛋白α11(Y軸)的流式細胞術分析。使用組合兩種抗體(分別針對整聯蛋白α10及α11)的結合來說明所述抗體的單一染色及雙重染色程度。
結論(II)：流式細胞術分析證實803主要是整聯蛋白α10的單一表現，代表軟骨細胞之純的群體以及經高度分化的狀態。842具有更多的整聯蛋白α11表現，代表經部分去分化的狀態(具有α11及α10兩者的細胞)並且 顯示有已去分化的細胞及/或污染性細胞(僅有α11)。這證實了組合針對整聯蛋白α10與α11的抗體確定了整聯蛋白α10與整聯蛋白α11之比例，並且可以確定軟骨細胞的分化狀態及純度，且因此確定軟骨細胞組成物的品質。
Claims (28)
- 一種包含經分離且經培養之軟骨細胞的組成物，其中該軟骨細胞係在擴增單層培養物中培養，且其中該組成物之整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1。
- 根據請求項1之組成物，其中該整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少5比1。
- 根據請求項1至2中任一項之組成物，其中該組成物包含經分化的軟骨細胞，且其中該經分化的軟骨細胞表現整聯蛋白α10且實質上不表現整聯蛋白α11，及/或其中該組成物包含經部分去分化的(partially dedifferentiated)軟骨細胞，且其中該經部分去分化的軟骨細胞表現整聯蛋白α10及整聯蛋白α11兩者。
- 根據請求項1至2中任一項之組成物，其中該組成物係選自由以下者所組成之群組：軟骨組織製劑、包含軟骨細胞的組織製劑、單層軟骨細胞之細胞培養物，及/或其中該組成物係源自軟骨組織、包含軟骨細胞的組織、單層軟骨細胞之細胞培養物以及三維軟骨細胞之細胞培養物，其中該三維軟骨細胞之細胞培養物是球狀體(spheroid)、小球(pellet)、細胞層片(cell sheet)或是在支架中培養的軟骨細胞。
- 根據請求項1至2中任一項之組成物，其中該組成物實質上不含污染細胞，其中該污染細胞表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10，及/或其中該組成物在全部組成物或細胞群體中包含至少80%的軟骨細胞。
- 根據請求項1至2中任一項之組成物，其中該軟骨細胞進一步表現選自由以下者所組成之群組的二級標記：CEP-68/CRTAC1、GP-39軟骨醣蛋白、CD44、CD166、膠原蛋白IIA、膠原蛋白IIB、蛋白聚醣(Aggrecan)、茜 素紅(負)(Alizarian Red(neg))、艾爾遜藍(Alcian Blue)、CRTAC1、CEP-68、CD146、CD90、CD49e、CD63及Sca-1。
- 一種用於判定包含經分離且經培養之軟骨細胞之組成物的品質的方法，其中該軟骨細胞係在擴增單層培養物中培養，且其中該品質判定包含以下標準中的一或多者：˙軟骨細胞之身份識別，˙軟骨細胞之分化狀態，˙軟骨細胞之純度，及˙軟骨細胞之力價(potency)該方法包含以下步驟：a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現程度；c)將整聯蛋白α10的表現程度與整聯蛋白α11的表現程度進行比較，其中整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少4比1是以下者的指標˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的軟骨細胞身份識別，˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞經分化的狀態，˙該軟骨細胞組成物之純度，及/或˙該軟骨細胞組成物中之軟骨細胞的力價，並藉此作為高品質軟骨細胞組成物的指標。
- 一種分離高品質軟骨細胞之群體的方法，該方法包含以下步驟：a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現；並c)富集整聯蛋白α10比整聯蛋白α11之表現比例為至少4比1的軟骨細胞， 藉此獲得經分離的高品質軟骨細胞群體，其中該軟骨細胞係在擴增單層培養物中培養。
- 一種產生高品質軟骨細胞之群體的方法，該方法包含以下步驟：a)提供包含軟骨細胞的候選組成物；b)分析該組成物中整聯蛋白α10和整聯蛋白α11的表現；並c)使整聯蛋白α10比整聯蛋白α11之表現比例為至少4比1的軟骨細胞增殖，藉此產生高品質軟骨細胞群體，其中該軟骨細胞係在擴增單層培養物中培養。
- 根據請求項7至9中任一項之方法，其中該整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少10比1，及/或其中整聯蛋白α11之表現至多為整聯蛋白α10之表現的25%。
- 根據請求項7至9中任一項之方法，其中整聯蛋白α10及整聯蛋白α11兩者的表現是經部分去分化之軟骨細胞組成物的指標，及/或-其中整聯蛋白α10的表現及整聯蛋白α11實質上不表現是經分化之軟骨細胞組成物的指標，及/或-其中該軟骨細胞組成物中至多20%之細胞表現α11且實質上不表現整聯蛋白α10是該軟骨細胞組成物純度的指標，及/或-其中該軟骨細胞組成物中至多20%之細胞表現α11且實質上不表現整聯蛋白α10是該軟骨細胞組成物純度的指標，及/或-其中該軟骨細胞組成物或群體中實質上不表現整聯蛋白α11。
- 根據請求項7至9中任一項之方法，其中該候選組成物係選自由以下者所組成之群組：軟骨組織製劑、包含軟骨細胞的組織製劑、單層軟骨細 胞之細胞培養物，及/或其中該候選組成物係源自軟骨組織、包含軟骨細胞的組織、單層軟骨細胞之細胞培養物以及三維軟骨細胞之細胞培養物，其中該三維軟骨細胞之細胞培養物是球狀體、小球、細胞層片或是在支架中培養的軟骨細胞。
- 根據請求項7至9中任一項之方法，其中該表現分析是藉由選自由以下者所組成之群組的方法進行：流式細胞術、ELISA、西方印漬術、免疫沉澱法、墨點印漬術(dot blot)、qPCR、免疫測定法、免疫螢光法、基因表現分析及任何其他合適的方法。
- 根據請求項7至9中任一項之方法，其進一步包含偵測二級標記之表現，該二級標記係選自由以下者所組成之群組：CEP-68/CRTAC1、GP-39軟骨醣蛋白、CD44、CD166、膠原蛋白IIA、膠原蛋白IIB、蛋白聚醣、茜素紅(負)、艾爾遜藍、CRTAC1、CEP-68、CD49e、CD63、CD146、CD90及Sca-1。
- 根據請求項7至9中任一項之方法，其中細胞表現整聯蛋白α10的分析包括測量整聯蛋白α10的蛋白質表現，其中該整聯蛋白α10的蛋白質表現是藉由抗整聯蛋白α10抗體偵測，及/或其中細胞表現整聯蛋白α11的分析包括測量整聯蛋白α11的蛋白質表現，其中該整聯蛋白α11的蛋白質表現是藉由抗整聯蛋白α11抗體偵測。
- 根據請求項7至9中任一項之方法，其中分析整聯蛋白α10的表現包括測量整聯蛋白α10的mRNA表現，及/或其中分析整聯蛋白α11的表現包括測量整聯蛋白α11的mRNA表現。
- 根據請求項15之方法，其中該用於偵測表現的抗體是單株抗體、多株抗體、單鏈抗體或其片段。
- 根據請求項15之方法，其中該抗整聯蛋白α10抗體是： a)單株抗體，其係由以寄存編號DSM ACC2583寄存於德國微生物菌種保存中心(Deutsche Sammlung von Microorganismen und Zellkulturen GmbH)的融合瘤細胞株產生；或b)抗體，其與以寄存編號DSM ACC2583寄存於德國微生物菌種保存中心的融合瘤產生之單株抗體競爭結合至相同表位；或c)a)或b)的片段，其中該片段能夠專一性地結合至該整聯蛋白α10鏈的細胞外I域及/或細胞質域。
- 根據請求項7至9中任一項之方法，其中所獲得的軟骨細胞組成物或群體在總細胞群體中包含至少80%的軟骨細胞。
- 根據請求項7至9中任一項之方法，其中所獲得的軟骨細胞組成物或群體包含至多20%的污染細胞，其中該污染細胞表現整聯蛋白α11但不表現整聯蛋白α10。
- 根據請求項7至9中任一項之方法，其中該方法進一步包含-在誘導整聯蛋白α10表現的條件下培養所述軟骨細胞的組成物，-選擇表現整聯蛋白α10的細胞，及/或-耗乏表現整聯蛋白α11的細胞。
- 一種用於使包含軟骨細胞的組成物之軟骨細胞力價最佳化的方法，其中該軟骨細胞係在擴增單層培養物中培養，該方法包含誘導整聯蛋白α10的表現。
- 一種用於增加軟骨細胞增生速率的方法，其中該軟骨細胞係在擴增單層培養物中培養，該方法包含誘導該軟骨細胞整聯蛋白α10的表現。
- 根據請求項22至23中任一項之方法，其進一步包含抑制整聯蛋白α11的表現。
- 根據請求項22至23中任一項之方法，其中該整聯蛋白α10表現 細胞的誘導是在包含抗壞血酸及/或血小板溶胞產物的培養基中進行。
- 根據請求項22至23中任一項之方法，其中藉此獲得之整聯蛋白α10比整聯蛋白α11的表現比例為至少5比1。
- 根據請求項22至23中任一項之方法，其中所獲得的整聯蛋白α11之表現至多為所獲得的整聯蛋白α10之表現的25%。
- 一種根據請求項7至21中任一項的方法之用途，其係用於a)確保軟骨細胞組成物的品質；b)監測軟骨細胞組成物的一致性及/或再現性；c)預測軟骨細胞組成物的力價；d)軟骨細胞組成物的製程中控制；e)軟骨細胞組成物擴增的製程中控制；f)進行軟骨細胞組成物的放行(release)檢驗；g)進行軟骨細胞組成物之力價檢定；及/或h)軟骨細胞組成物之臨床結果的預測。
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