TWI680295B - 即時量測細胞聚落之裝置及其方法 - Google Patents

即時量測細胞聚落之裝置及其方法 Download PDF

Info

Publication number
TWI680295B
TWI680295B TW106106898A TW106106898A TWI680295B TW I680295 B TWI680295 B TW I680295B TW 106106898 A TW106106898 A TW 106106898A TW 106106898 A TW106106898 A TW 106106898A TW I680295 B TWI680295 B TW I680295B
Authority
TW
Taiwan
Prior art keywords
cell
culture
conductive
medium layer
colony
Prior art date
Application number
TW106106898A
Other languages
English (en)
Other versions
TW201833548A (zh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Priority to TW106106898A priority Critical patent/TWI680295B/zh
Publication of TW201833548A publication Critical patent/TW201833548A/zh
Application granted granted Critical
Publication of TWI680295B publication Critical patent/TWI680295B/zh

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analyzing Materials By The Use Of Electric Means (AREA)

Abstract

本發明係提供一種即時量測細胞聚落之裝置及其方法,其係透過一導電介質層調節細胞培養區域之電阻抗,使其得以於細胞生長為聚落的過程中即時量測電阻抗值,藉此訊號得知細胞數目、存活率、生長速率及聚落大小等資訊,解決習知因無法於細胞聚落形成的過程中即時獲得細胞生長狀況,以致於實驗效率及準確率不佳等問題。

Description

即時量測細胞聚落之裝置及其方法
本發明係關於一種量測細胞聚落之裝置及其方法,尤指一種可於細胞生長為細胞聚落(cell colony)的過程中,透過即時量測電阻抗值而獲得細胞生長資訊之裝置及其方法。
近十年來,全球因癌症致死人數逐年攀升,癌症預防及癌症治療也成為各個國家備受重視之議題,並紛紛投入大量資源於癌症研究上。
因致癌因子誘發基因突變等因素,使正常細胞生長失去正常調控,而轉變為癌細胞。正常細胞根據其組織來源,具有特定之最大分裂次數,且細胞彼此相互接觸後,即停止生長分裂;然而,有別於正常細胞,癌細胞在適當的環境下,仍可持續進行細胞分裂,且癌細胞生長不會因細胞間相互接觸而停止,因此癌細胞過度生長分裂後將形成三維聚落(3D colony)。
為能使癌症研究更近似於生理狀態,體外細胞培養亦從單層培養(monolayer culture)發展成三維培養(3D culture),三維培養係將細胞與特定比例之培養膠體,即培養基與膠之混合物混合後進行培養,因膠體提供固態環境,使癌細胞得以形成三維聚落。然而,癌症相關研究,包括建立藥物篩選平台及探討致病機制等,均需準確量化所培養之細胞已獲得細胞生長相關資訊,目前為止,尚未提出合適之測量方法於細胞生長的同時即時量測三維細胞聚落之生長狀況。
習知常見用於量化三維細胞聚落之方法包含兩種;其一,係將細胞於適當的膠體中培養特定的期間後,再將三維細胞聚落自膠體取出,接著以液態培養基混合後進行細胞計數;其二,係將細胞於適當的膠體中培養特定的期間後,直接將細胞染色後以肉眼觀察,或是拍攝後以影像進行計數。然上述兩種方式皆為終點式(end point)測量,造成研究上諸多限制,例如:進行時間進程(time course)實驗時,將耗費大量時間及耗材,亦難以確保每一組實驗之一致性。此外,細胞染色條件亦影響染色效率及正確性,進一步而言,染色時間過短,或退染時間過長,可能造成訊號太弱而影響影像品質;若染色時間過長,或退染時間過短,亦可能造成偽訊號的現象。由此可知,無論是人工計數或肉眼觀察,均存在主觀判斷之及訊號之差異,無法精準量化。
有鑑於上述習知技術之缺點,實有必要建立準確並可即時量測細胞聚落之方法,以期促進癌症研究之效率及精準度。
本發明之一目的,係提供一種即時量測細胞聚落之裝置及其方法,其係利用一導電介質層來調整細胞培養腔室內之細胞培養環境之電阻值,使其得以藉由量測電阻抗值以於細胞生長為細胞聚落之過程中即時獲得細胞生長狀況。
本發明之一目的,係提供一種即時量測細胞聚落之裝置及其方法,其係以一液態培養基將至少一細胞並培養於一導電介質層上,使該細胞得以於該導電介質層表面生長為細胞聚落,並於形成細胞聚落之過程中即時量測電阻抗值以獲得細胞生長狀況。
本發明之一目的,係提供一種即時量測細胞聚落之裝置及其方法,其係以一非液態培養基將至少一細胞培養於一導電介質層上,使該細胞得以懸浮於該非液態培養基中生長為細胞聚落,並於形成細胞聚落之過程中即時量測電阻抗值以獲得細胞生長狀況。
為了達到上述之目的,本發明揭示了一種即時量測細胞聚落之方法,其係包含步驟:設置至少一細胞培養腔室於一非導電基板上;形成一導電介質層於該非導電基板上且於該細胞培養腔室內;以一培養基於該導電介質層上培養至少一細胞;提供一電源,使一正極及一負極產生電流導通,並於該導電介質層、該培養基及該細胞形成一電場;以及於該細胞之培養過程中量測一電阻抗值。
而本發明亦揭示一種用於上述即時量測細胞聚落方法之裝置,其係包含:一非導電基板;至少一細胞培養腔室,其係設置於該非導電基板上;一導電介質層,其係設置於該非導電基板上且於該細胞培養腔室內;以及一正極及一負極,係於一電源提供後產生電流導通;其中,至少一細胞以一培養基培養於該導電介質層上,並於該正極及該負極產生電流導通後,於該導電介質層、該培養基及該細胞形成一電場。
本發明之一實施例中,其亦揭露該導電介質層之材料係選自由瓊脂糖凝膠(agarose hydrogel)及甲基纖維素(methylcellulose, MC)所組成之群組中之一或其任意組合。
本發明之一實施例中,其亦揭露該培養基係一液態培養基或一非液態培養基。
本發明之一實施例中,其亦揭露該細胞係於該導電介質層表面生長為至少一細胞聚落(cell colony),或懸浮於該非液態培養基中生長為至少一細胞聚落。
本發明之一實施例中,其亦揭露該正極及該負極係平行設置於該導電介質層下。
本發明之一實施例中,其亦揭露該正極及該負極係分別設置於該導電介質層下及該細胞培養腔室上。
為使對本發明之特徵及所達成之功效有更進一步之瞭解與認識,謹佐以較佳之實施例及配合詳細之說明,說明如後:
本實施案例提供一種即時量測細胞聚落之裝置及其方法,其目的係解決目前尚未有合適之方法,得以於細胞生長為細胞聚落之過程中,即時獲得細胞生長狀況,導致癌症研究受到限制,且缺乏效率及準確性。利用本實施案例所揭示之方法,可根據實驗需求,即時記錄細胞聚落生長情形,因此實驗設計毋須受到時間、耗材及人力的限制,解決習知僅能終點式(end point)測量之瓶頸。以下,將針對本發明之各實施案例進行說明。
首先,請參閱第1圖、第2A圖及第2B圖,其係本發明之方法流程圖、本發明之第一實施例之裝置示意圖及本發明之第一實施例之電場方向示意圖。如圖所示,第一實施例之方法包含下述步驟:
步驟S10:設置至少一細胞培養腔室於一非導電基板上;
步驟S12:形成一導電介質層於該非導電基板上且於該細胞培養腔室內;
步驟S14:以一培養基於該導電介質層上培養至少一細胞;
步驟S16:提供一電源,使一正極及一負極產生電流導通,並於該導電介質層、該培養基及該細胞形成一電場;以及
步驟S18:於該細胞之培養過程中量測一電阻抗值。
如第2A圖所示,本實施例於步驟S10中,係先提供該非導電基板100,其材料可選用玻璃,但不限於此,該非導電基板100包含該正極102及該負極104,使其得以於供應電源後產生如第2B圖所示之電場;該非導電基板100所包含之電極為平面電極,並可以指叉式排列於該非導電基板100上,但電極之形式不限於此。
接著,設置該細胞培養腔室110於該非導電基板100,使該細胞培養腔室110位於該正極102及該負極104之間;於本實施例中,可依據實驗需求決定所設置之細胞培養腔室之數量,包含常見之24孔、48孔及96孔之細胞培養腔室,每一細胞培養腔室即代表一個獨立的細胞培養區域。
而後,形成該導電介質層120於該非導電基板100上,並位於該細胞培養腔室110之內;所述之該導電介質層之材料係可選用瓊脂糖凝膠(agarose hydrogel)、甲基纖維素(methylcellulose, MC)或兩者之組合,但所選用之材料及使用之比例不在此限。
接續係將預混於該培養基140之該細胞注入該細胞培養腔室110,並於該導電介質層120上,其中,該培養基140係一液態培養基,其係依據所培養之細胞類型選擇;於本實施例中,該細胞將貼附於該導電介質層120之表面,隨著培養時間增加而生長為一細胞聚落130,由於生物細胞具有極低的導電性,當電子移動過程中受到該細胞聚落130阻礙,即可偵測到電阻抗值,電阻抗值越大意即細胞聚落越大,如此即可於形成該細胞聚落130之過程中,即時量測電阻抗值,所獲得之電阻抗值包含電阻抗大小以及電阻抗相角,其分別對應細胞數目及聚落大小,藉此以即時得知細胞的生長狀態。
請搭配參閱第1圖、第3A圖及第3B圖,其係本發明之方法流程圖、本發明之第二實施例之裝置示意圖及本發明之第二實施例之電場方向示意圖。如圖所示,本實施例之量測方法包含步驟如下:
於本實施例中,僅電極相對於細胞之設置方向,以及細胞生長方式與前述之第一實施例不同,說明如下:
如第3A圖所示,本實施例之該電極200,可為正極或負極,且該電極202係對應該電極200為負極或正極,使其得以於供應電源後產生如第3B圖所示之電場。
此外,於本實施例中,該培養基240係一非液態培養基,其係依據所培養之細胞選擇不同種類之培養基,並與各式比例之瓊脂糖凝膠、甲基纖維素或兩者之組合進行混合,所述之比例係依照不同器官之細胞所需之生長環境硬度進行調整,於均勻混合後注入該細胞培養腔室210,並進一步以一液態培養基250將該細胞培養腔室210之空隙填滿,使電子得以流通;於本實施例中,該細胞將懸浮於該培養基240中,並隨著培養時間增加進而生長為一細胞聚落230。
由於細胞培養基含有數種鹽類及氨基酸等物質,均為良好的導電體,如此當培養基中存在具電阻特性之物質時,將因導電率太高而無法量測以獲得電阻值之變化;據此,本實施例係形成該導電介質層220於該電極200上,藉由上述之導電介質層來提高細胞周圍環境之電阻,;所述之該導電介質層之材料係可選用瓊脂糖凝膠(agarose hydrogel)、甲基纖維素(methylcellulose, MC)或兩者之組合,當兩者組合使用時,其較佳比例為5:5,但所選用之材料及使用之比例不在此限。如此使得本發明之量測方法得以量測因細胞存在培養基中所造成電阻值之變化,達到即時量測細胞聚落之目的。
以下例舉特定實施例,然其僅為例示說明,而非用以限制本發明其他形式實施。
[實施例1]
細胞培養 將人類肝癌細胞(Human hepatoma cells, Huh7)以改良杜氏伊格爾培養基(Dulbecco’s modified eagle medium, DMEM)培養於培養盤中,該培養基係包含10%之胎牛血清、100 U/mL 之青黴素鈉(penicillin G sodium)、100 mg/mL 之鏈黴素(streptomycin)及d 0.25 mg/mL之兩性黴素B(amphotericin B)。該人類肝癌細胞係以標準細胞培養流程放大其細胞數,待所生長之細胞數足以進行實驗時,再以0.05%之胰蛋白酶(trypsin)水解細胞貼附於培養盤之結構,使得細胞脫離培養盤,計數細胞並進行後續流程。
製備可即時量測電阻抗之細胞培養裝置 提供一個包含10個細胞培養腔室之細胞培養裝置,該細胞培養裝置係包含一玻璃基板,其嵌有10個鉻/金平面指叉式電極(planar interdigitated electrodes)甲、一聚二甲基矽氧烷(polydimethylsiloxane)層,並透過一元件將其區隔成十個培養區域,並對應於該玻璃基板之該些電極。於執行細胞培養前,該細胞培養裝置需經過清洗、殺菌並於紫外光下照射至少16個小時。
形成導電介質層 將1% (w/v)之瓊脂糖凝膠及1% (w/v)之甲基纖維素以5:5之比例均勻混合,並注入各細胞培養腔室中,待凝固後即於該玻璃基板上形成導電介質層。
細胞聚落之培養 於前述之細胞培養步驟中所得之細胞中取得10000顆,並與前述之培養基均勻混合,置於上述之細胞培養裝置中,使其於導電介質層之表面生長,並於37°C、5%二氧化碳及溼度適當之培養箱中培養7天。
藥物處理 上述之細胞經過三天的培養後即形成細胞聚落,接著製備濃度不同之抗癌藥物阿黴素(Doxorubicin)並以DMEM培養基調整其體積至20 L,於第60個小時,即第2.5天時,分別將不同濃度之阿黴素加到不同的培養區域中,且每24小時添加一次抗癌藥物。
於細胞聚落形成之過程中即時量測電阻抗 提供0.1有效電壓值(Vrms)之電位至該細胞培養裝置,且以10赫茲(Hz)至100千赫茲(kHz)之條件量測電阻抗值。於本實施例中,係以1千赫茲進行電阻抗之量測,電阻抗之變化可反映細胞聚落之增生數量。結果如第5圖所示。
第4圖為細胞聚落培養過程中所量測之電阻抗值。如圖所示,在未處理抗癌藥物之前,細胞數量均隨著培養時間增加而增加,於培養第2.5天時對細胞聚落處理抗癌藥物,處理抗癌藥物之細胞與未處理抗癌藥物之細胞相較之下,其細胞數量隨著培養時間增加而逐漸減少,且細胞存活數量與抗癌藥物之濃度呈現負相關的趨勢。如此可見,本實施例所提供之量測方法,確實能夠精準並正確地量測細胞數量,清楚顯示抗癌藥物之毒殺效果,具有高度靈敏性。
[實施例2]
細胞培養 與實施例1所述之方法相同,如此不再贅述。
製備可即時量測電阻抗之細胞培養裝置 提供一包含9個細胞培養腔室之細胞培養裝置,該細胞培養裝置係包含一玻璃基板,其嵌有9個鉻/金量測電極、一聚二甲基矽氧烷(polydimethylsiloxane)層,並透過一元件將其區隔成九個培養區域,並對應於該玻璃基板之該些量測電極以及一ITO導電層,其作為接地電極,如此,當提供電源時即可於導電介質層、培養基及細胞聚落形成電場,藉此以量測電阻抗。於執行細胞培養前,該細胞培養裝置需經過清洗、殺菌並於紫外光下照射至少16個小時。
形成導電介質層 與實施例1所述之方法相同,如此不再贅述。
細胞聚落之培養 取1% (w/v)之瓊脂糖凝膠(agarose hydrogel)及1.8% (w/v)之甲基纖維素(methylcellulose, MC)以特定比例混合成培養膠體,於前述之細胞培養步驟中所得之細胞中取得10000顆,並以1.8% (w/v)之甲基纖維素混合並包覆該些細胞,從中取得濃度為50 L cells/MC之細胞混合液,並置於上述之細胞培養裝置中,接著再將前述之培養膠體置於該細胞混合液上,於37°C、5%二氧化碳及溼度適當之培養箱中培養7天。
藥物處理 製備濃度不同之抗癌藥物阿黴素(Doxorubicin)並以DMEM培養基調整其體積至100 L,於細胞經過三天的培養後,分別將不同濃度之阿黴素加到不同的細胞培養腔室中。所述之阿黴素係一種常見的抗癌藥物,本實施例利用阿黴素確認本發明之量測方法用於即時量測細胞聚落時之實用性及靈敏度。
於細胞聚落形成之過程中即時量測電阻抗 於細胞聚落培養期間,可依據實驗需求隨時量測電阻抗。提供0.1有效電壓值(Vrms)之電位至該細胞培養裝置,且以10赫茲(Hz)至100千赫茲(kHz)之條件量測電阻抗值。於本實施例中,係以1千赫茲進行電阻抗之量測,所獲得之電阻抗大小之變化可反映細胞聚落之增生數量,所獲得之電阻抗相角(impedance phase angle)則可反映細胞聚落之大小。結果如第6A圖、第6B及第6C圖所示。
第5A圖係以顯微鏡拍攝之細胞聚落圖,其拍攝之時間點分別為細胞培養後第1、第3、第5及第7天;第5B圖係於細胞聚落培養過程中所量測之電阻抗值;第5C圖係於細胞聚落培養過程中所量測之電阻抗相角。如圖所示,在未處理抗癌藥物之前,細胞數量均隨著培養時間增加而增加,且細胞聚落大小亦隨著培養時間增加而增大,於培養第三天時對細胞聚落處理抗癌藥物,處理抗癌藥物之細胞與未處理抗癌藥物之細胞相較之下,其細胞數量隨著培養時間增加而逐漸減少,且細胞存活數量與抗癌藥物之濃度呈現負相關的趨勢,此外,細胞聚落之大小亦隨著培養時間增加而逐漸變小,並同樣與抗癌藥物之濃度呈現負相關的趨勢。由此可以,本實施例所提供之量測方法,確實能夠精準並正確地量測細胞聚落之細胞數量及細胞聚落之大小,亦具有高度靈敏性。
綜上所述,本發明所提供之即時量測細胞聚落之裝置及其方法,其利用導電介質層調整細胞培養腔室內之細胞培養環境之電阻抗,使其得以於導電介質層、培養基及細胞聚落產生電場,如此可經量測之後獲得電阻抗值及電阻抗相角,再透過準確量化前述之資訊而獲得細胞聚落之細胞數量及細胞聚落大小等細胞生長相關資訊,解決習知以人工計算細胞數或以影像計算細胞數之精準度及效率不佳等問題。
惟以上所述者,僅為本發明之較佳實施例而已,並非用來限定本發明實施之範圍,舉凡依本發明申請專利範圍所述之形狀、構造、特徵及精神所為之均等變化與修飾,均應包括於本發明之申請專利範圍內。
100‧‧‧非導電基板
102‧‧‧正極
104‧‧‧負極
110‧‧‧細胞培養腔室
120‧‧‧導電介質層
130‧‧‧細胞聚落
140‧‧‧培養基
200‧‧‧電極
202‧‧‧電極
210‧‧‧細胞培養腔室
220‧‧‧導電介質層
230‧‧‧細胞聚落
240‧‧‧培養基
250‧‧‧液態培養基
第1圖:其係本發明之方法流程圖; 第2A圖:其係本發明之第一實施例之裝置示意圖; 第2B圖:其係本發明之第一實施例之電場方向示意圖; 第3A圖:其係本發明之第二實施例之裝置示意圖; 第3B圖:其係本發明之第二實施例之電場方向示意圖; 第4圖:其係本發明之第一實施例之細胞聚落培養過程中所量測之電阻抗值; 第5A圖:其係本發明之第二實施例之顯微鏡拍攝之細胞聚落圖; 第5B圖:其係本發明之第二實施例之細胞聚落培養過程中所量測之電阻抗值;以及 第5C圖:其係本發明之第二實施例之細胞聚落培養過程中所量測之電阻抗相角。

Claims (6)

  1. 一種即時量測細胞聚落之方法,其係包含步驟:設置至少一細胞培養腔室於一非導電基板上;形成一導電介質層於該非導電基板上且於該細胞培養腔室內,該導電介質層之材料係為瓊脂糖凝膠(agarose hydrogel)及甲基纖維素(methylcellulose,MC)之組合;以一培養基於該導電介質層上培養至少一細胞,該培養基係一非液態培養基;提供一電源,使一正極及一負極產生電流導通,並於該導電介質層、該培養基及該細胞形成一電場;以及於該細胞之培養過程中量測一電阻抗值。
  2. 如申請專利範圍第1項所述之即時量測細胞聚落之方法,其中該細胞係懸浮於該非液態培養基中生長為至少一細胞聚落。
  3. 一種即時量測細胞聚落之裝置,其係包含:一非導電基板;至少一細胞培養腔室,其係設置於該非導電基板上;一導電介質層,其係設置於該非導電基板上且於該細胞培養腔室內,該導電介質層之材料係為瓊脂糖凝膠(agarose hydrogel)及甲基纖維素(methylcellulose,MC)之組合;以及一正極及一負極,係於一電源提供後產生電流導通;其中,至少一細胞以一培養基培養於該導電介質層上,該培養基係一非液態培養基,並於該正極及該負極產生電流導通後,於該導電介質層、該培養基及該細胞形成一電場。
  4. 如申請專利範圍第3項所述之即時量測細胞聚落之裝置,其中該細胞係懸浮於該非液態培養基中生長為至少一細胞聚落。
  5. 如申請專利範圍第3項所述之即時量測細胞聚落之裝置,其中該正極及該負極係平行設置於該導電介質層下。
  6. 如申請專利範圍第3項所述之即時量測細胞聚落之裝置,其中該正極及該負極係分別設置於該導電介質層下及該細胞培養腔室上。
TW106106898A 2017-03-02 2017-03-02 即時量測細胞聚落之裝置及其方法 TWI680295B (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
TW106106898A TWI680295B (zh) 2017-03-02 2017-03-02 即時量測細胞聚落之裝置及其方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
TW106106898A TWI680295B (zh) 2017-03-02 2017-03-02 即時量測細胞聚落之裝置及其方法

Publications (2)

Publication Number Publication Date
TW201833548A TW201833548A (zh) 2018-09-16
TWI680295B true TWI680295B (zh) 2019-12-21

Family

ID=64426125

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
TW106106898A TWI680295B (zh) 2017-03-02 2017-03-02 即時量測細胞聚落之裝置及其方法

Country Status (1)

Country Link
TW (1) TWI680295B (zh)

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TW200833710A (en) * 2007-02-07 2008-08-16 Academia Sinica Treatment for spinal muscular atrophy
TW200930809A (en) * 2008-01-02 2009-07-16 Nat Applied Res Laboratories Apparatus for cell number and cellular protein detecting and method thereof
TWM500251U (zh) * 2015-02-02 2015-05-01 Tatung Co 細胞狀態量測系統
CN104822390A (zh) * 2012-11-29 2015-08-05 耶达研究及发展有限公司 预防肿瘤转移、癌症治疗和预后及鉴定为推定转移抑制剂的试剂的方法

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TW200833710A (en) * 2007-02-07 2008-08-16 Academia Sinica Treatment for spinal muscular atrophy
TW200930809A (en) * 2008-01-02 2009-07-16 Nat Applied Res Laboratories Apparatus for cell number and cellular protein detecting and method thereof
CN104822390A (zh) * 2012-11-29 2015-08-05 耶达研究及发展有限公司 预防肿瘤转移、癌症治疗和预后及鉴定为推定转移抑制剂的试剂的方法
TWM500251U (zh) * 2015-02-02 2015-05-01 Tatung Co 細胞狀態量測系統

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Kin Fong Lei et al., "Real-time and non-invasive impedimetric monitoring of cell proliferation and chemosensitivity in a perfusion 3D cell culture microfluidic chip", Biosensors and Bioelectronics 51 (2014.01) 16–21. *

Also Published As

Publication number Publication date
TW201833548A (zh) 2018-09-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Guo et al. Accelerating bioelectric functional development of neural stem cells by graphene coupling: implications for neural interfacing with conductive materials
Kim et al. High-performance, polymer-based direct cellular interfaces for electrical stimulation and recording
AU2003216353B2 (en) Cell viability detection using electrical measurements
Kotnik et al. Induced transmembrane voltage and its correlation with electroporation-mediated molecular transport
US6482619B1 (en) Cell/tissue analysis via controlled electroporation
US6387671B1 (en) Electrical impedance tomography to control electroporation
US6403348B1 (en) Controlled electroporation and mass transfer across cell membranes
Napotnik et al. Electropermeabilization of endocytotic vesicles in B16 F1 mouse melanoma cells
Thielecke et al. A multicellular spheroid-based sensor for anti-cancer therapeutics
Manshian et al. Evaluation of quantum dot cytotoxicity: interpretation of nanoparticle concentrations versus intracellular nanoparticle numbers
Wei et al. 3D “honeycomb” cell/carbon nanofiber/gelatin methacryloyl (GelMA) modified screen-printed electrode for electrochemical assessment of the combined toxicity of deoxynivalenol family mycotoxins
Özdemir et al. xCELLigence Real Time Cell Analysis System A New Method for Cell Proliferation and Cytotoxicity
Hu et al. Gefitinib encapsulation based on nano-liposomes for enhancing the curative effect of lung cancer
Loewenstein et al. The electrical conductance and potential across the membrane of some cell nuclei
Song et al. Label-free and real-time monitoring of human mesenchymal stem cell differentiation in 2D and 3D cell culture systems using impedance cell sensors
Chu et al. Triboelectric current stimulation alleviates in vitro cell migration and in vivo tumor metastasis
TWI680295B (zh) 即時量測細胞聚落之裝置及其方法
Müller et al. Electrotransfection of anchorage-dependent mammalian cells
Lowick et al. Some microelectrophoretic studies of normal and tumour cells
Enomoto et al. Induction of distinct types of spontaneous electrical activities in mammary epithelial cells by epidermal growth factor and insulin.
Gabi et al. Influence of applied currents on the viability of cells close to microelectrodes
CN113151143A (zh) 一种用敏感频率电场抑制病变组织细胞生长的方法和装置
Ribeiro et al. Electroactive functional microenvironments from bioactive polymers: A new strategy to address cancer
Jentsch et al. Ion transport mechanisms in cultured bovine corneal endothelial cells
Demarest et al. Segregation of gastric Na and Cl transport: a vibrating probe and microelectrode study